JP2711720B2 - ニユーロキニンa拮抗剤 - Google Patents
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Description
プチド誘導体類に関する。
びニューロキニンBは、身体組織内に広く分布し、広範
囲の生物学的効果をもつことが示された天然ペプチドの
一群である。物質PとニューロキニンBの作用剤と拮抗
剤が知られており、ニューロキニンAの作用剤も同様に
知られているが、ニューロキニンAの拮抗剤はまだ報告
されたことがない。出願人らはニューロキニンA拮抗剤
の一部類を今発見した。このような化合物類は生化学的
観点から興味があるだけでなく、このような化合物には
価値ある薬理学的及び医学的有用性もある。
れられるその塩は、ニューロキニンAの拮抗剤である。
2−10個の炭素原子のアシル基であり、 A1は結合又は1−4個のアミノ酸からなる基であり、 A2は結合又はAsp又はGluであり、 A3は任意のアミノ酸であり、 A4はPhe又はN−Me−Pheであり、 A5はlle,Val,Leu,Phe,Ala,Tyr,Nle,Met又はN−Me−Val
であり、 A6はGly又はSarであり、かつ Yは式 の基であって、ここでBは次式、すなわち のいずれか一であり、ここでRは水素原子又は1−4個
の炭素原子のアルキル基又はフェニルアルキレン基であ
って、その場合アルキレン部分は直鎖又は分枝鎖であ
り、1−6個の炭素原子をもち、フェニル部分は未置換
か、又はC1-4アルキル、C1-4アルコキシ、ヒドロキシ、
又はハロゲン基でモノ置換されており、 R1とR2は各々独立にイソプロピル、イソブチル、第二ブ
チル、n−ブチル、及び2−(メチルチオ)エチル基か
ら選ばれる。これらの新規なペプチド誘導体類はニュー
ロキニンAの拮抗剤であり、従って有用な抗喘息剤、抗
炎症剤及び抗関節炎剤である。
般的略号が本明細書で使用される。
フェニルアラニン DAla(又はa)−D−アラニン Ac−アセチル Suc−サクシニル pClPhe−パラ−クロロ−フェニルアラニン pNO2Phe−パラ−ニトロ−フェニルアラニン NMeVal−N−メチル−バリン アルキル基及びアルコキシ基のアルキル部分は直鎖、
分枝鎖又は環式アルキル基、例えばメチル、エチル、プ
ロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、第三ブチ
ル、ペンチル、イソペンチル、第二ペンチル、シクロペ
ンチル、ヘキシル、イソヘキシル、シクロヘキシル、及
びシクロペンチルメチルを包含する意図がある。本発明
のフェニルアルキレン基のアルキレン部分は、1−4個
の炭素原子を含有し、直鎖又は分枝鎖、例えばメチレ
ン、エチレン、プロピレン、ブチレン、イソプロピリデ
ン、及び第二ブチリデンでありうる。本発明のフェニル
アルキレン基のフェニル部分は未置換か、又はオルト、
メタ、又は好ましくはパラ位置にモノ置換されたもので
ありうる。未置換フェニル又はパラヒドロキシフェニル
が好ましい。2−10個の炭素原子のアシル基は、基当た
り1個又は2個のカルボニル部分をもった直鎖、分枝
鎖、環式、飽和及び不飽和のアシル基、例えばアセチ
ル、ベンゾイル、サクシニル、マレイル及びグルタリル
を包含する意図がある。ハロゲン基はフルオロ、クロ
ロ、ブロモ、又はヨード基である。本発明のX基では、
水素、アルキル、又はアシル部分はアミノ末端アミノ酸
のアルファアミノ基に結合されている。アミノ末端アミ
ノ酸のアミノ基が2個のアルキル又はアシル基で置換さ
れた場合のペプチド類も、本発明のペプチドの範囲内に
あると考えられる。
2個の炭素末端アミノ酸の正常なペプチドアミド結合を
変更した場合のペプチド類を包含していることは自明で
あり、これらの2個の変更アミノ酸は、本明細書で化学
的にはY基として描かれている。ペプチド化学者に使用
される慣用の命名法を用いると、カルボニル基をメチレ
ン基へ還元することによって変更された結合をアミドと
してもった2個のLeu残基(すなわちR1とR2が各々第二
ブチル基)からなるY基は、Leuψ[CH2NH]Leuと指定
できる。この指定は、最後から2番目のLueのアミドカ
ルボニル基がメチレン基へ還元されることを示す。本発
明のペプチド誘導体類の記述に使用されるその他の命名
の指定はψ[CH2S]、ψ[CH2O]、ψ[CH=CH]、ψ
[C(O)CH2]、ψ[CH(OH)CH2]、及びψ[NHC(O)]
である。
は、X基がA2基に直接に結合されること、又はA2も結合
の場合はXがA3基に直接に結合されることを意味してい
る。同様に、A2の定義との関連で用いられる「結合」と
いう用語は、A1がA3基に直接結合されること、又はA1も
結合の場合はXがA3基に直接に結合されることを意味し
ている。
は、天然のアミノ酸類と同様に、ペプチド化学の当業者
が天然ペプチド類の合成類似体類をつくる時に一般的に
使用される他の「非タンパク性」α−アミノ酸類を包含
する意図がある。天然のアミノ酸はグリシン、アラニ
ン、バリン、ロイシン、イソロイシン、セリン、メチオ
ニン、スレオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリ
プトファン、システイン、プロリン、ヒスチジン、アス
パラギン酸、アスパラギン、グルタミン酸、グルタミ
ン、アルギニン、オルニチン、及びリジンである。「非
タンパク」α−アミノ酸の例は、ノルロイシン、ノルバ
リン、アロイソロイシン、ホモアルギニン、チアプロリ
ン、デヒドロプロリン、ヒドロキシプロリン(Hyp)、
ホモセリン、シクロヘキシルグリシン(Chg)、α−ア
ミノ−n−酪酸(Aba)、シクロヘキシルアラニン(Ch
a)、アミノフェニル酪酸(Pba)、フェニル部分のオル
ト、メタ、又はパラ位置が以下のもの、すなわち(C1−
C4)アルキル、(C1−C4)アルコキシ、ハロゲン、又は
ニトロ基の1個又は2個で置換されているか、又はメチ
レンジオキシ基で置換されているフェニルアラニン類、
β−2、3及び4−チエニルアラニン、β−2及び3−
フラニルアラニン、β−2、3−及び4−ピリジルアラ
ニン、β−(ベンゾチエニル−2−及び3−イル)アラ
ニン、β−(1−及び2−ナフチル)アラニン、セリン
やスレオニン又はチロシンの0−アルキル化誘導体類、
S−アルキル化システイン、チロシンの0−硫酸エステ
ル、3,5−ジヨードチロシン、及び天然アミノ酸のD−
異性体類である。
子を含有している。他に特定的に指示がなければ、本明
細書で引用される光学活性アミノ酸類はL−立体配置の
ものである。本明細書に書かれているペプチド類の構造
は、従来どおり、アミノ末端が連鎖の左側にあり、カル
ボキシ末端が連鎖の右側にあるように書かれている。こ
れと一致し、従来用法とも一致しているが、B基の描き
方は、左側の開放原子価がH基、R1基、及びNH基をもっ
たY基の炭素原子に結合され、またB基の右側の開放原
子価がH基、R2基及びCONH2基をもったY基の炭素原子
に結合されるようになっている。
酸と薬学的に受け入れられる塩類を形成できる。適当な
塩類を形成する無機酸の例は、塩酸、臭化水素酸、硫酸
及び燐酸と、オルト燐酸−水素ナトリウムや硫酸水素カ
リウムのような酸金属塩類を包含する。適当な塩類を形
成する有機酸の例は、モノ−、ジ−、及びトリカルボン
酸を包含する。このような酸類の例は、酢酸、グリコー
ル酸、乳酸、ピルビン酸、マロン酸、こはく酸、グルタ
ール酸、フマール酸、りんご酸、酒石酸、くえん酸、ア
スコルビン酸、マレイン酸、ヒドロキシマレイン酸、安
息香酸、ヒドロキシ安息香酸、フェニル酢酸、珪皮酸、
サリチル酸、2−フェノキシ安息香酸、及びメタンスル
ホン酸や2−ヒドロキシエタンスルホン酸のようなスル
ホン酸類である。カルボキシ末端アミノ酸部分の塩類
は、任意適当な無機又は有機塩基類で形成される無毒性
のカルボン酸塩類を包含する。例として、これらの塩類
は、アルカリ金属、例えばナトリウムとカリウム;カル
シウムとマグネシウムのようなアルカリ土類金属;アル
ミニウムを含めた第IIIA属の軽金属;及び有機第一級、
第二級及び第三級アミン類、例えばトリエチルアミンを
含めたトリアルキルアミン類、プロカイン、ジベンジル
アミン、1−エテナミン、N,N′−ジベンジルエチレン
ジアミン、ジヒドロアビエチルアミン、N−(低級)ア
ルキルピペリジン、及びその他の任意適当なアミンを包
含する。
物類が好ましい。本発明者は、Xが水素で、A1が結合で
ある場合の式1ペプチド誘導体類が好ましいと考える。
また、XがGlt、Mal、Fum及び特にSucである場合の式1
ペプチド誘導体類が好ましいと考える。A1がHis-Lys-Th
r、Lys-Thr、Thr、Asp-Val-Pro-Lys-Ser、Val-Pro-Lys-
Ser、Pro-Lys-Ser、Lys-Ser、Ser、pGlu-Pro-Ser-Lys、
Pro-Ser-Lys、Ser-Lys、又はLysである場合の式1ペプ
チド誘導体類も好ましい。特に好ましいものは、A1がHi
s-Lys-Thr、Lys-Thr、又はThrである場合の式1ペプチ
ド誘導体類である。A2がAspの場合の式1ペプチド誘導
体が好ましい。本発明者はまた、A3がGln、Asn、Sar、
及び特にAlaかAerである場合の式1ペプチド誘導体類が
好ましいと考える。更に、A4がPheの場合の式1ペプチ
ド誘導体類、並びにA5がValの場合及びA6がGlyの場合の
式1ペプチド誘導体類が好ましい。また、Bが−CH2NH
−の場合、並びにR1がイソブチル、すなわち2−メチル
プロピルの場合、及びR2が2−メチルチオエチル、イソ
ブチル又はn−ブチルの場合の式1ペプチド誘導体類が
好ましい。R1とR2が各々イソブチルの場合の化合物類は
特に好ましい。最も好ましい式1ペプチド誘導体類は、
RがHかメチル基である場合のH−Asp-Ser-Phe-Val-Gl
y-Leuψ[CH2NH]−Leu-NH2である。
手順によってつくられる。このような手順は、自動化ペ
プチド合成機を使用するなど、確立された自動化方法を
用いて実施できる固体相配列手順を包含している。本発
明のペプチド誘導体類をつくるには、変更されたペプチ
ド結合をもった炭素末端ジペプチドに対応する変更ジペ
プチド又はその前駆体を樹脂支持体に結合させる。各変
更ペプチド結合をつくるために使用される手順は、この
技術で周知であり、熟練ペプチド化学者が容易に実施で
きるものである。Bが−NHCO−基の場合の式1ペプチド
誘導体類、すなわちψ[NHCO]化合物類をつくるための
手順は、チヨレフ(Chorev)及びグッドマン(Goodma
n)、Int.J.Pept.Protein Res.21巻(3号)258-268頁
(1983年)から知られる。Bが−COCH2−又は−CH(OH)C
H2−基の場合の式1ペプチド誘導体類、すなわちそれぞ
れψ[COCH2]及びψ[CH(OH)CH2]化合物類をつくる手
順は、ホラデイ(Holladay)及びリッチ(Rich)、Tetr
ahedron Letters 24巻(41号)4401-4404頁(1983年)
から知られる。Bが−CH2NH−基の場合の式1ペプチド
誘導体類、すなわちψ[CH2NH]化合物類をつくる手順
は、ササキ(Sasaki)及びコイ(Coy)、Peptides8巻11
9-121頁(1987年)から知られ、下により詳細に記述さ
れている。Bが−CH2S−基の場合のペプチド誘導体類、
すなわちψ[CH2S]化合物類をつくる手順は、スパトー
ラ(Spatola)及びダーラク(Darlak)、Tetrahedron L
etters 44巻(3号)821-833頁(1988年)から知られ
る。Bが−CH2O−基の場合の式1ペプチド誘導体類、す
なわちψ[CH2O]化合物類をつくる手順は、テンブリン
ク(TenBrink)J.Org.Chem.52巻 418-422頁(1987年)
から知られる。
合物類は、式2のN−メトキシ−N−メチルアミドを還
元して式3のアルデヒドをつくることによって調製され
る。還元は、水素化アルミニウムリチウム(LAH)の使
用など当業者に一般的に知られ、容易に実施される任意
の方法で実施できる。この還元は、テトラヒドロフラン
(THF)又はジエチルエーテルのようなエーテル性溶媒
などの非反応性溶媒中における式2化合物の、典型的に
は約0℃に冷却された溶液に、約1モル当量のLAHを添
加して都合よく実施できる。反応が実質的に終了した
後、典型的には約30分後、例えば10%硫酸水素カリウム
又はナトリウム、次いで水を添加して、反応混合物を停
止させる。次に、例えば水性混合物をジエチルエーテル
のような溶媒で抽出し、エーテル相を冷たい希塩酸水溶
液で洗い、乾燥し溶媒を除去することによって、生成物
を単離できる。粗生成物は、例えば55%酢酸エチル/ヘ
キサンで溶離するシリカゲルカラムのようなカラムクロ
マトグラフィによって精製できる。
させる。
樹脂を表わす。初めに生成されるシフ塩基生成物を、例
えばシアノホウ水素化ナトリウムを使用してその場で還
元すると、式7の樹脂に結合された変更ジペプチドを生
ずる。
は樹脂を表わす。
プチドに順序に従って添加できる。
るN−Boc保護された酸から通常の方法でつくられる。
カルボニルジイミダゾールは、ジエチルエーテルのよう
なエーテル性溶媒中のN−Boc保護されたアミノ酸の乾
燥溶液に添加される。反応混合物を10分ないし1時間、
典型的には約15−20分かきまぜる。DMF中のN,0−ジメチ
ルヒドロキシルアミンHCl、及びジイソプロピルエチル
アミンのような立体障害アミンを加え、混合物を室温で
約6時間ないし第24時間かきまぜる。次に所望の化合物
は溶媒蒸発によって単離され、相生成物の精製は例えば
塩化メチレンで溶離するシリカゲル上のフラッシュクロ
マトグラフィによって行なわれる。
の技術で慣用的に使用される任意適当な樹脂であり、好
ましくは0.5%ないし約3%のジビニルベンゼンで架橋
されたポリスチレンであって、これは初期に導入される
α−アミノ保護アミノ酸とのエステル形成用の部位を提
供するためにクロロメチル化又はヒドロキシメチル化さ
れている。
nszky)ら、Chem.Ind.(London)38巻1597-1598頁(196
6年)に記述されている。クロロメチル化樹脂はバイオ
・ラド・ラボラトリーズ(カリフォルニア州リットモン
ド)から市販されており、このような樹脂の調製はスチ
ュワート(Stewart)ら、「固体相ペプチド合成」(フ
リーマン社、サンフランシスコ1969年)第1章1−6頁
に記述されている。保護アミノ酸は、ギシン(Gisi
n)、Helv.Chem.Acta 56巻1476頁(1973年)の手順によ
って、樹脂に結合できる。樹脂結合され保護された多く
のアミノ酸が市販されている。一例として、カルボキシ
末端がThr残基の場合の本発明ポリペプチドをつくるに
は、第三ブチロキシカルボニル(Boc)保護されたThr
で、ベンジル化ヒドロキシメチル化フェニルアセトアミ
ドメチル(PAM)樹脂に結合されたものが使用でき、市
販されている。
プリング後、塩化メチレン中のトリフルオロ酢酸、トリ
フルオロ酢酸のみ、又はジオキサン中のHClを用いるな
ど、任意適当な手順を用いて保護基を除去する。脱保護
は、0℃と室温の間の温度で実施される。特定的α−ア
ミノ保護基を除去するためのその他の標準的な開裂試薬
及び条件も使用できる。α−アミノ保護基の除去後、そ
の他のアミノ保護アミノ酸類が所望の順序で段階的にカ
ップリングされる。その代わりに、樹脂支持されたアミ
ノ酸配列とのカップリングに先立って、複数のアミノ酸
基を溶液法によってカップリングできる。
るα−アミノ保護基は、この技術で知られた任意のこの
ような保護基でありうる。考えられるα−アミノ保護基
の部類としては、(1)アシル型保護基、例えばホルミ
ル、トリフルオロアセチル、フタリル、トルエンスルホ
ニル(トシル)、ベンゼンスルホニル、ニトロ−フェニ
ルスルフェニル、トリチルスルフェニル、o−ニトロフ
ェノキシアセチル、及びα−クロロブチリル;(2)芳
香族ウレタン型保護基、例えばベンジロキシカルボニル
及び置換ベンジロキシカルボニル、例えばp−クロロベ
ンジロキシカルボニル、p−ニトロベンジロキシカルボ
ニル、p−ブロモベンジロキシカルボニル、p−メトキ
シベンジロキシカルボニル、1−(p−ビフェニリル)
−1−メチルエトキシカルボニル、α,α−ジメチル−
3,5−ジメトキシベンジロキシカルボニル及びベンズヒ
ドロキシカルボニル;(3)脂肪族ウレタン保護基、例
えば第三ブチロキシカルボニル(Boc)、ジイソプロピ
ルメトキシカルボニル、イソプロピロキシカルボニル、
エトキシカルボニル及びアリロキシカルボニル;(4)
シクロアルキルウレタン型保護基、例えばシクロベンチ
ロキシカルボニル、アダマンチロキシカルボニル、及び
シクロヘキシロキシカルボニル;(5)フェニルチオカ
ルボニルのようなチオウレタン型保護基;(6)トリフ
ェニルメチル(トリチル)とベンジルのようなアルキル
型保護基;及び(7)トリメチルシランのようなトリア
ルキルシラン基がある。好ましいα−アミノ保護基は第
三ブチロキシカルボニルである。
ある。添加アミノ酸がGln、Asn又はArgの場合の特に適
したカップリング試薬は、N,N′−ジイソプロピルカル
ボジイミドと1−ヒドロキシベンゾトリアゾールであ
る。これらの試薬の使用はニトリル及びラクタムの形成
を予防する。その他のカップリング剤は(1)カルボジ
イミド(例えばN,N′−ジシクロヘキシルカルボジイミ
ドとN−エチル−N′−(γ−ジメチルアミノプロピル
カルボジイミド);(2)シアナミド類(例えばN,N′
−ジベンジルシアナミド);(3)ケテンイミン類;
(4)イソキサゾリウム塩(例えばN−エチル−5−フ
ェニル−イソキサゾリウム−3′−スルホネート);
(5)環中に1−4個の窒素を含有する芳香族性で単環
の窒素含有複素環式アミド類、例えばイミダゾリド類、
ピラゾリド類及び1,2,4−トリアゾリド類(有用な特定
的な複素環式アミド類はN,N′−カルボニルジイミダゾ
ールとN,N′−カルボニル−ジ−1,2,4−トリアゾールを
包含する);(6)アルコキシル化アセチレン(例えば
エトキシアセチレン);(7)アミノ酸のカルボキシル
部分と混合無水物を形成する試薬(例えばエチルクロロ
フォルメートとイソブチルクロロフォルメート)又はカ
ップリングしようとするアミノ酸の対称無水物(例えば
Boc-Ala−O−Ala-Boc);及び(8)一つの環上に1個
のヒドロキシ基をもった窒素含有複素環式化合物類(例
えばN−ヒドロキシフタルイミド、N−ヒドロキシサク
シンイミド及び1−ヒドロキシベンゾトリアゾール)で
ある。その他の活性化試薬と、ペプチドのカップリング
におけるそれらの使用は、ケイパー(Kapoor)、J.Phar
m.Sci.59巻1−27頁(1970年)に記述されている。出願
人らは、Arg、Asn及びGlnを除き、すべてのアミノ酸に
対するカップリング試薬として、対称的無水物の使用を
好ましいと考える。
で固体相反応器に導入され、ジメチルホルムアミド:塩
化メチレン(1:1)又はジメチルホルムアミドのみ、又
は好ましくは塩化メチレンのみの媒体中でカップリング
が行なわれる。不完全なカップリングが起こる場合は、
α−アミノ保護基の除去前に、固体相反応器中で次のア
ミノ酸のカップリングに先立って、カップリング手順を
繰り返す。各合成段階でのカップリング反応の成功は、
イー・カイザー(E.Kaiser)ら、Analyt.Biochem.34巻5
95頁(1970年)に記述されたとおりに、ニンヒドリン反
応によって監視される。
ら除去される。これは樹脂結合ポリペプチドを無水フッ
化水素酸中の硫化ジメチル、p−クレゾール、及びチオ
クレゾールの溶液で処理するなど加水分解によって行な
うことができる。
ミノ酸類の多くは連鎖生成中に保護を必要とするような
官能基をもっている。適当な保護基の選定と使用は当業
者の能力の範囲内にあり、保護しようとするアミノ酸
と、ペプチド上の他の保護アミノ酸残基の存在に依存し
よう。このような側鎖保護基の選択は、α−アミノ部分
の保護基の間裂中にそれが除去されてはならないという
点で決定的重要性をもっている。例えば、リシンに適し
た側鎖保護基はベンジロキシカルボニル及び置換ベンジ
ロキシカルボニル[この置換基はハロゲン(例えばクロ
ロ、ブロモ、フルオロ)及びニトロ(例えば2−クロロ
ベンジロキシカルボニル、p−ニトロベンジロキシカル
ボニル、3,4−ジクロロベンジロキシカルボニル)から
選ばれる]、トシル、t−アミロキシカルボニル、t−
ブチロキシカルボニル、及びジイソプロピルメトキシカ
ルボニルである。スレオニンとセリンのアルコール性ヒ
ドロキシル基はアセチル、ベンゾイル、第三ブチル、ト
リチル、ベンジル、2,6−ジクロロベンジル又はベンジ
ロキシカルボニル基で保護できる。アスパラギン酸とグ
ルタミン酸のカルボン酸ヒドロキシル基は、ベンジル又
はシクロヘキシル基で保護できる。好ましい保護基はベ
ンジルである。
る。典型的には、保護基の除去はペプチド鎖合成が完了
してから行なわれるが、保護基はその他の任意適当な時
に除去できる。
作用するための能力は、バック(Buck)ら、Science 22
6巻987-989頁(1984年)の方法を使用して、これらのペ
プチドが哺乳類ニューロキニンA(NK2)受容体につい
てヨウ素化ニューロキニンAと競合する能力により、ま
たブリストウ(Bristow)ら、British J.Pharmacol.90
巻211-221頁(1987年)の方法を使用して、このような
化合物類がニューロキニンAで誘発されるホスファチジ
ルイノシトールの転換を刺激又は抑制する能力により、
又はジオン(Dion)ら、Life Science 41巻2269-2278頁
(1987年)の方法を使用して、ニューロキニンAで誘発
れる平滑筋収縮に拮抗する能力によって例証できる。
として作用する能力があるため、化合物類は免疫抑制剤
として、また関節炎、喘息、痛み、炎症、腫瘍成長、胃
腸の運動過剰、ハンチントン病、精神病、神経炎、神経
痛、片頭痛を含めた頭痛、高血圧、尿失禁、じんまし
ん、カルチノイド症候群、インフルエンザ、及び感冒の
処置に有用である。経口、非経口によらず、有効投与量
は当業者が容易に決定できるものであり、ニューロキニ
ンA(NK2)受容体の拮抗を生ずる投与量である。例え
ば、本発明ペプチドの有効投与量は、一日当たり患者の
体重kg当たり約0.5μgないし約500mgでありうる。化合
物類は活性化合物約1mgないし約500mgを含有する単位適
量形式で都合よく投与され、一日当たり1−4回ないし
それ以上の単位適量形式で投与できる。本明細書で使用
される用語「患者」とは、ヒトを含めた霊長類、羊、
馬、牛、豚、犬、猫、ラット、及びハツカネズミのよう
な哺乳類を意味する。
て生き残ることもあるが、出願人らは非経口投与、例え
ば皮下、静脈内、筋肉内又は腹膜内;デポー注射による
投与;移植製剤;又は鼻、のど、気管などの粘膜へ、本
発明のペプチド誘導体を含有するアエロゾル缶で、スプ
レー又は乾燥粉末型としての適用が好ましいと考える。
的に受入れられる希釈剤中の化合物の溶液又は懸濁液の
注射可能な適量として投与でき、担体は、表面活性剤そ
の他の薬学的に受け入れられる助剤を伴って、又は伴っ
ていない水や油類のような無菌液体でありうる。これら
の製剤に使用できる油類の例は、石油、動植物、又は合
成起源のもの、例えば落花生油、大豆油、及び鉱油であ
る。概して、水、食塩水、デキスオロース水溶液、及び
関連する糖溶液、エタノール及びプロピレングリコール
やポリエチレングリコールのようなグリコール類が、特
に注射液用に好ましい液体担体である。
き、これらは活性分の持続的放出を可能とするような方
法で処方できる。活性成分はペレットや小円筒形に圧縮
されて、皮下又は筋肉内にデポー注射剤又は移植剤とし
て移植できる。移植剤は生物劣化可能な重合体類や合成
シリコーン類、例えばダウコーニング・コーポレーショ
ンで製造されるシリコンゴムのシラスチックのような不
活性材料を使用できる。
ている。
によって例証される、H−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leu−
ψ[CH2NH]−Leu-NH2及びH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Lu
e−ψ[CH2N-(CH3)]−Leu-NH2によるニューロキニンA
受容体の拮抗 ハムスター数匹の膀胱を集めて刻み、120mM NaCl及び
5mM MClを含有する4℃の50mMトリス−HCl(pH7.4)中
で均質化し、48,000xGで15分の遠心分離にかけた。ペレ
ットを、10mM EDTAと300mM KClを含有する50mMトリス−
HCl(pH7.4)中で、4℃で30分間に再懸濁した。懸濁液
を上のように遠心分離し、ペレットを混ぜ物のない50mM
トリス−HCl(pH7.4)中で2回洗い、同様な遠心分離に
かけた。次に組織を培養緩衝液中に再懸濁し、各検定試
験管にアリコート(約3−5mgの組織)を加えて検定を
開始した。検定試験管は、50mMトリス−HCl(pH7.4)、
0.02%BSA、40μ/mlバシトラシン、4μg/mlキモスタチ
ン、4μg/mlロイペプチン、2mM MnCl2、0.1nM 125ヨー
ドヒスチジル1−ニューロキニンA(アマーシャム・コ
ープ)、及び0.03nMないし100μMの範囲の濃度の表題
化合物又は標準物質からなる培養緩衝液を含有した。検
定は、室温で120分間平衡化させた。この時間の後、各
試験管の内容物を、0.5% BSA中に事前浸漬したホワッ
トマンGF/Bフィルターに通して急いで濾過し、フィルタ
ーを氷冷した混ぜ物のない50mMトリス−HCl(pH7.4)
で、急いで2回洗った。フィルターに結合された放射能
をガンマ計測器で定量した。特異的結合(最大)は、1
μM未標識ニューロキニンAの存在下及び不在下の結合
間の差として定義された。ヨウ素化ニューロキニンA結
合の試験化合物類又は標準による競合を、この最大競合
の百分率として表わした。IC50値(受容体結合の50%を
抑制するのに要する濃度)は、表題化合物の場合、100-
200nMであることがわかった(第1図)。
によって例証される、H−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leu−
ψ[CH2NH]−Leu-NH2及びH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Le
u−ψ[CH2N-(CH3)]−Leu-NH2によるニューロキニンA
受容体の拮抗 ハムスター数匹の膀胱を集めて刻み、組織チヨッパー
で350μmに刻んだ。刻んだ組織を37℃のクレブス=ヘ
ペス緩衝液中で30分培養し、新しい緩衝液と15分ごとに
代えた。次に、3H−イノシトール100-200μCiを含有す
るこの緩衝液中で組織を培養した。次に組織を洗い、ク
レブス=ヘペス(10mM Li+を含有)中で更に30分培養
し、15分ごとに新しい緩衝液と取り替えた。組織塊(検
定管当たり約10−20mg)の一部をLi+緩衝液中に入れ、2
5μl中の試験化合物を添加し、次に25μl中の種々の
濃度のニューロキニンAを加え、最終容量を250μlと
した。試験化合物を1nMないし100μMの範囲の濃度で評
価し、ニューロキニンAを1nMないし10μMの範囲の濃
度で評価した。また、試験化合物の作用活性を試験する
ために、指示濃度の試験化合物を単独で評価した。室温
で30分後、ホスファチジルイノシトールの転換をクロロ
ホルム:メタノール(1:2)940μlの添加と、これに続
いてクロロホルム310μlと水310μlの添加によって終
了させた。次に各管を15秒間うず巻状にかきまぜ、次い
で相分離のため3000rpmで10分間遠心分離した。上相
(水性)900μlを0.5mlバイオラドAG 1×8(フォルメ
ート)イオン交換カラムに充填した。底相(クロロホル
ム)50μlを各管から取り出し、計測バイアル中に入
れ、乾燥し、シンチレーション流体中で計測した。カラ
ム上のミネラルを次の順序で洗った。
l 3) 0.1M蟻酸中の1M蟻酸アンモニウム10ml最終(第
三)洗浄液を集め、1mlをACSシンチラント6mlと混合し
て計測した。各試料について、これらのカウント(全イ
ノシトールホスフェート)と対応する有機相のカウント
との比を計算した。試験化合物及び/又は標準物質の存
在下における比を、対照検定管(すなわち刺激性作用剤
を含まないもの)での比と比較した。投与量−応答曲線
を作図し、試験化合物がニューロキニンAで誘発される
ホスファチジルイノシトール転換を刺激ないし抑制する
能力について、グラフ分析により、又はコンピュータプ
ログラムの助けによって決定した。これは第2図と第3
図に例示されている。
(1987年)]に記述されているとおりに、ゴールデンシ
リア種の雄ハムスター(75-100g)からの膀胱細片を31
℃、静止張力1gのタイロード緩衝液に懸濁した。各試験
化合物の添加に先立って、エンケファリナーゼ抑制剤の
チオルファン10μMを15分間に緩衝液に添加した。累積
NKA投与量−応答曲線を、初めに試験化合物の不在下
に、次いで存在下に構築した。試験化合物を、これら自
体に収縮効果があるかどうかを確かめるために、同じく
累積的に添加した。観察された試験化合物の効果は、次
の累積濃度を添加する前に平坦化された。これらの条件
下に、NKA収縮効果のEC50は一般に10nMであり、文献の
値とよく一致していた。収縮データは静止張力以上に発
現した張力のグラムとして表現されている。これらの別
個のハムスター膀胱組織で、H−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-
Leu−ψ[CH2NH]−Leu-NH2又はH−Asp-Ser-Phe-Val-G
ly-Lue−ψ[CH2N-(CH3)]−Leu-NH2は10μMまで収縮
を起こさなかった。第4図と第5図は、試験化合物の不
在下及び存在下におけるNKA濃度の関数としての収縮力
を示す。
エイ(Fehrentz,J.A.)及びカストロ・ビー(Castro,
B.)Synthesis(1983年)676-678頁]: A.N−t−Boc−ロイシンN−メトキシ−N−メチルアミ
ドBoc−ロイシン水和物15.0ミリモルを乾燥エーテル30m
lに溶解した。溶液を無水MgSO4で乾燥し、固体を濾過に
よって除去した。カルボニルジイミダゾール16.5ミリモ
ルを濾液に加え、反応を室温で20分かきまぜた。生ずる
溶液に、ジメチルホルムアミド15mlとジイソプロピルエ
チルアミン3.9ml中の0,N−ジメチルヒドロキシルアミン
塩酸塩(22.5ミリモル)の懸濁液を添加した。反応混合
物を室温で一夜かきまぜた。反応を酢酸エチル75mlで希
釈し、冷たい1N HCl(3×40ml)、飽和NaHCO3(3×40
ml)及び飽和NaCl(1×40ml)で洗った。有機相をMgSO
4で乾燥し、濾過し、酢酸エチルを真空中で除去した。
分析データ:Rf(シリカゲルF254):0.51(酢酸エチル/
ヘキサン3:2);′H−NMR(CDCl3)TMS int):δ=0.
95ppm(2d,6H,J=6.6Hz);1.42(s,11H);1.64-1.80
(m,1H);3.20(s,3H);3.80(s,3H);4.72(m,1H);5.
10(d,1H,J=7.5Hz)質量スペクトル:M+H+:理論値27
5、測定値275。
リモルを乾燥エーテル30mlに溶解した。この溶液に、水
素化アルミニウムリチウム3.2ミリモル(1M)テトラヒ
ドロフラン溶液)を添加した。反応を室温で20分かきま
ぜ、次いで水10ml中のNaHSO4(0.6g)の溶液を添加して
注意深く停止させた。反応混合物をエーテル75mlに添加
し、冷たい1NHCl(3×30ml)、飽和NaHCO3(3×30m
l)、及び飽和1N NaCl(3×30ml)で洗った。有機相を
MgSO4で乾燥し、濾過し、溶媒を真空中で除去した。分
析データ:Rf(シリカゲル60 F254):0.68(酢酸エチル
/ヘキサン3:2)。質量スペクトル:M=H+:理論値216、
測定値216。
成手法を用いた。Boc-Leu−樹脂(0.5ミリモル)の生成
後、Boc保護基を除去し、樹脂をジメチルホルムアミ
ド、ジクロロメタンで洗って乾燥した。
アミド10ml中の1%酢酸に溶解し、Leu−樹脂(0.5ミリ
モル、上のIIを参照)を含有する反応容器にこの溶液を
添加した。この混合物に、ジメチルホルムアミド2ml中
のNaCHBH3(150mg)の溶液を添加した。混合物を4時間
振とうし、反応容器から排出し、樹脂をジメチルホルム
アミド、及び次にジクロロメタンで洗った。
h×1)]を順序に従って添加して、自動化ペプチド合
成機でのペプチド合成を終了した。ペプチドを樹脂から
開裂し、無水HF/アニソール(10:1)を用いて全体的に
脱保護した。逆相HPLC手法を使用して、ペプチドを精製
した。分析データ:アミノ酸分布:(HCl消化)Asp(1:
03);Ser(0.93);Gly(1.01);Val(0.96;Phe(0.7
4).ペプチド含有量:53.4%.高速原子衝撃質量スペク
トル分析:M+H+.理論値735、観測値735。
(0.5ミリモル)(上のIIに従ってBoc−N−メチルロイ
シンから調製)をBoc-Leuアルデヒド(2.0ミリモル)と
反応させた。次に、上のIVに述べたとおりに、ペプチド
合成を完了させた。分析データ:アミノ酸分析:(HCl
消化物)Asp(1:01);Ser(0.89);Gly(1.02);Val
(1.00;Phe(0.98).ペプチド含有量:53.5%.高速原
子衝撃質量スペクトル分析:M+H+.理論値749、測定値7
49。
て調製する。次に、上のIIIに述べたとおりに、NaCNBH3
の存在下に、ジメチルホルムアミド中1%HOAc10ml中の
R−CHO(2.5ミリモル)と樹脂を反応させる。次に、上
のIVに述べたとおりに、ペプチド合成を完了させる。
置き換わる試験化合物の能力によって例証されるとお
り、NKA受容体での結合に対するH−Asp-Ser-Phe-Val-G
ly-Leuψ[CH2NH]Leu-NH2及びH−Asp-Ser-Phe-Val-Gl
y-Leuψ[CH2NCH3]Leu-NH2の拮抗能力を示す(実施例
1)。横座標(x軸)はニューロキニンA(NKA)受容
体の作用剤又は拮抗剤濃度(ナノモル)を対数で示す。
縦座標(y軸)は、最大特異結合の百分率として測定さ
れた、各試験作用剤又は拮抗剤について観察された特異
的結合を示す。
るNKA断片[NKA(3−10)]、及び同じく第四ないし第
十アミノ酸からなるNKA断片[NKA(4−10)]であっ
た。値は6−12回の実験のMEAN±S.E.M.である。IC50値
はグラフで50%抑制点から推定された。
シトール(P1)転換に対する効果(実施例2)によって
例証されるとおり、NKA受容体の結合に対するH−Asp-S
er-Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2NH]Leu-NH2の拮抗能力を例
示している。横座標(x軸)はNKA受容体の作用剤又は
拮抗剤濃度(nM)を対数で示す。縦座標(y軸)は、対
照の百分率として観察されたPI転換率を示す。
は、競合的な形でかなり右寄りのNKA投与量−応答曲線
をもたらした。値は1回の三重試験からのMEAN+S.E.M.
である。
シトール(PI)転換に対する効果(実施例2)によって
例証されるとおり、NKA受容体の結合に対するH−Asp-S
er-Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2N(CH3)]−Leu-NH2(MDL 29
916)の拮抗能力を例示している。横座標(x軸)はNKA
受容体の作用剤又は拮抗剤濃度(nM)を対数で示す。縦
座標(y軸)は、対照の百分率として観察されたPI転換
率を示す。
N(CH3)]−Leu-NH2は、競合的な形でかなり右寄りのNKA
投与量−応答曲線をもたらした。これらのデータのシル
ド作図は競合的拮抗を示す−0.99の傾斜と、7.66のPA2
をもっている。100μMまでのH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly
-Leuψ[CH2N(CH3)]−Leu-NH2は、わずか5%の部分的
作用剤活性をもち、H−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[C
H2NH]−Leu-NH2は、わずか12%の部分的作用剤活性を
もっていた。値は1回の三重試験からのMEAN+S.E.M.で
ある。
る収縮活性に対するH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[C
H2NH]−Leu-NH2の拮抗効果(実施例3)を例示してい
る。横座標(x軸)は、NKA又は10μM H−Asp-Ser-Phe-
Val-Gly-Leuψ[CH2NH]−Leu-NH2を伴ったNKAの濃度
(ナノモルnM)を対数で示す。値は1回の三重試験から
のMEAN+S.E.M.である。
る収縮活性に対するH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[C
H2N(CH3)]−Leu-NH2の拮抗効果(実施例3)を例示し
ている。横座標(x軸)は、NKA又は10μM H−Asp-Ser-
Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2N(CH3)]−Leu-NH2を伴ったNKA
の濃度(ナノモルnM)を対数で示す。値は1回の三重試
験からのMEAN+S.E.M.である。
き換わる試験化合物の能力によって例証されるとおり、
NKA受容体での結合に対するH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-L
euψ[CH2NH]Leu-NH2及びH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Le
uψ[CH2NCH3]Leu-NH2の拮抗能力を示すグラフ(実施
例1)。 第2図は、ハムスター膀胱でのホスファチジルイノシト
ール(PI)転換に対する効果(実施例2)によって例証
されるとおり、NKA受容体の結合に対するH−Asp-Ser-P
he-Val-Gly-Leuψ[CH2NH]−Leu-NH2の拮抗能力を例示
しているグラフ。 第3図は、ハムスター膀胱でのホスファチジルイノシト
ール(PI)転換に対する効果(実施例2)によって例証
されるとおり、NKA受容体の結合に対するH−Asp-Ser-P
he-Val-Gly-Leuψ[CH2N(CH3)]−Leu-NH2(MDL 2991
6)の拮抗能力を例示しているグラフ。 第4図は、ハムスター膀胱製剤での、NKAで媒介される
収縮活性に対するH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2
NH]−Leu-NH2の拮抗効果(実施例3)を例示している
グラフ。 第5図は、ハムスター膀胱製剤での、NKAで媒介される
収縮活性に対するH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2
N(CH3)]−Leu-NH2の拮抗効果(実施例3)を例示して
いるグラフ。
Claims (7)
- 【請求項1】式 X−A1−A2−A3−A4−A5−A6−Y [式中Xは水素、1−6個の炭素原子のアルキル基、又
は2−10個の炭素原子のアシル基であり、 A1は結合であり、 A2はAspであり、 A3はSerであり、 A4はPheであり、 A5はValであり、 A6はGlyであり、かつ Yは式 の基であって、ここでBは次式、すなわち であり、 ここでRは水素原子又は1−4個の炭素原子のアルキル
基であり、 R1とR2は各々独立にイソブチル及び2−(メチルチオ)
エチル基から選ばれる]のペプチド誘導体、又は製薬学
的に受け入れられるその塩。 - 【請求項2】Xが水素である、特許請求の範囲第1項の
ペプチド誘導体。 - 【請求項3】R1がイソブチルである、特許請求の範囲第
1項のペプチド誘導体。 - 【請求項4】R1とR2が各々イソブチルである、特許請求
の範囲第1項のペプチド誘導体。 - 【請求項5】H-Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2NH]‐
Leu-NH2又はH−Asp-Ser-Phe-Val-Gly-Leuψ[CH2N(C
H3)]Leu-NH2である、特許請求の範囲第1項のペプチド
誘導体。 - 【請求項6】特許請求の範囲第1−5項のいずれか一の
ペプチド誘導体の有効量を含む必要な患者に投与される
べきニューロキニンAの拮抗剤。 - 【請求項7】式 [式中Bは の基であり、 ここでR′は水素原子又は1−4個の炭素原子のアルキ
ル基であり、 R1とR2は各々独立にイソブチル及び2−(メチルチオ)
エチル基から選ばれ、Bocはブチロキシカルボニル保護
基であり、丸で囲んだRは樹脂を表わす]の樹脂結合化
合物に対し、 アミノ保護基を除去することによって露出されている成
長中のペプチド鎖の末端アミノ基に於いて、A6からA1の
順序でアルファアミノ保護されたアミノ酸類を結合させ
ることを含めてなる、式 X−A1−A2−A3−A4−A5−A6−Y [式中Xは水素、1−6個の炭素原子のアルキル基、又
は2−10個の炭素原子のアシル基であり、 A1は結合であり、A2はAspであり、 A3はSerであり、 A4はPheであり、 A5はValであり、 A6はGlyであり、かつ Yは式 の基であって、ここでB、R1及びR2は上に定義されたと
おり]のペプチド誘導体類、又は薬学的に受け入れられ
るその塩の製法。
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