JP2023553758A - 抗SIRPα抗体およびその適用 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は生物学の分野に属し、抗SIRPα抗体に関する。
SIRPαはマクロファージ、単球、樹状細胞、顆粒球などの骨髄細胞の表面に発現する膜貫通タンパク質であり、免疫グロブリンスーパーファミリー(IgSF)のメンバーである。SIRPαは、N末端細胞外領域、膜貫通領域およびC末端細胞内領域から構成される。細胞外領域は3つのIgSFドメイン(N末端はIg-Vドメインである)を含み、細胞内領域は免疫受容体チロシンベース阻害モチーフ(ITIM)を含む。SIRPαの主要なリガンドはCD47であり、これは、正常組織および病変において広く発現される膜貫通糖蛋白のグループである。マクロファージなどの骨髄細胞上のSIRPαへのCD47の結合は、SIRPα細胞内領域におけるITIMのリン酸化をもたらし、このことは次に、ホスファターゼSHP-1およびSHP-2を動員および活性化し、それによって、下流のシグナル伝達を介してマクロファージの食作用を阻害する。正常組織はCD47を発現し、CD47-SIRPαシグナル伝達を誘導することによって、自己防御機構として「私を食べるな」というシグナルを放出する。
本発明はSIRPαに特異的に結合することができ、腫瘍治療の大きな可能性を有する新規な抗SIRPα抗体を提供することを目的とする。
前記VH CDR1が配列番号3、13、23または33に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VH CDR2が配列番号4、14、24または34に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VH CDR3が配列番号5、15、25または35に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VL CDR1が配列番号8、18、28または38に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VL CDR2が配列番号9、19、29または39に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VL CDR3は、配列番号10、20、30または40に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなる。
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号3に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号4に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号5に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号8に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号9に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号10に記載されている。
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号13に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号14に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号15に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号18に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号19に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号20に記載されている。
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号23に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号24に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号25に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号28に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号29に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号30に記載されている。
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号33に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号34に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号35に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号38に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号39に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号40に記載されている。
(1)本明細書に開示される核酸分子を含むベクター、宿主細胞、微生物など;または、
(2)上記(1)の発現産物、懸濁液、上清など。
図1は、SIRPαのCD47への結合に対するマウスモノクローナル抗体の遮断効果を示す。
本発明は、以下の具体的な実施例を参照して説明されるであろう。以下の手順で使用される試薬および器具は特に明記しない限り、当技術分野で従来のものであり、市販されている;使用される方法は当技術分野では全て従来のものであり、当業者は本方法を確実に実施し、実施例の説明に従って、対応する結果を得ることができる。
本発明において、用語「抗体」は抗原を特異的に認識して結合することができる免疫グロブリンであり、様々な抗体構造を包含し、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、二重特異性抗体または抗体断片、合成抗体、組換えにより産生された抗体、ヒト抗体、非ヒト抗体(例えば、マウス抗体)、ヒト化抗体、キメラ抗体、ならびに細胞内抗体および抗体断片が挙げられるが、これらに限定されない。抗体断片としては例えばFab断片、Fab’断片、F(ab’)2断片、Fv断片、Fd断片、Fd’断片、一本鎖Fv(scFv)、一本鎖Fab(scFab)、または上記抗体のいずれかの抗原結合断片が挙げられるが、これらに限定されない。本明細書で提供される抗体は任意のクラス(例えば、IgG、IgM、IgD、IgE、IgA、またはIgY)、任意のサブクラス(例えば、IgG1、IgG2、lgG3、IgG4、IgA1、またはIgA2)またはタイプ(例えば、IgG2aまたはIgG2b)の免疫グロブリンのメンバーを含む。好ましい態様において、本明細書に開示される抗体は、マウス抗体、キメラ抗体またはヒト化抗体である。
本発明は、ヒトSIRPαタンパク質に対して高い親和性を有する抗SIRPα抗体を提供する。抗体はSIRPαのそのリガンドCD47への結合を効果的に阻害し、それによってCD47/SIRPαへの下流のシグナル伝達を遮断し、マクロファージによる腫瘍細胞の食作用を促進し、さらに腫瘍細胞の排除を実現することができる。細胞表面上のSIRPαタンパク質に結合する場合、本明細書に記載される抗SIRPα抗体はエンドサイトーシスを引き起こし得、細胞表面上のSIRPαタンパク質の発現の低減をもたらし、それによって、CD47/SIRPαシグナル伝達をさらに低減させる。
本明細書で提供される抗SIRPα抗体およびその抗原結合断片およびそれを含む医薬組成物は、癌を診断、予後診断、治療または阻害するために使用することができる。本発明は、本明細書に開示される抗SIRPα抗体またはその断片を、必要とする対象に投与することによって、対象における癌を治療するための方法に関する。本明細書に記載される治療化合物には本明細書に開示される抗体(本明細書に開示されるバリアントおよび誘導体を含む)および本明細書に開示される抗体をコードする核酸またはポリヌクレオチド(本明細書に開示されるバリアントおよび誘導体を含む)が含まれるが、これらに限定されない。
本実施例は、ハイブリドーマ技術を用いたマウス抗ヒトSIRPαモノクローナル抗体の調製について記載する。SIRPαタンパク質(Uniprot:P78324)の細胞外領域を免疫原として発現させた。ヒトIgG1 Fcタグを、SIRPαタンパク質細胞外領域のアミノ酸配列(Glu31-Arg370)のC末端に融合させた。次いで、この遺伝子をベクターV152(Huabioから入手)へとクローニングして、ベクターV152-SIRPα ECD-Fcを作製した。このベクターを、293細胞(入手元:ATCC)へと一過性にトランスフェクトした。5日後、細胞培養上清を回収し、プロテインA(製造元:Solarbio、カタログ番号I8090)で精製した。マウス抗ヒトSIRPαモノクローナル抗体を調製するために、4週齢のBAL B/cマウス(Huabio社製)に対して、100μgのSIRPαタンパク質により免疫化した。最初の免疫化から14日目および28日目に、免疫化したマウスを50μgのSIRPαタンパク質で再び免疫化した。免疫化したマウスの血清力価を、ELISAにより測定した。96ウェルプレートを、PBS(製造元:ZSGB-BIO、カタログ番号ZLI-9062)に希釈したSIRPα(1μg/mL)により、4℃で一晩コーティングした。プレートを1%BSA-PBSブロッキング溶液により、37℃で1時間ブロッキングし、PBSTで洗浄した。免疫化したマウスからの血清希釈物をプレートに添加し、プレートを37℃で1時間インキュベートした。プレートを洗浄し、HRP標識ヤギ抗マウスIgG(製造元:Abcam、カタログ番号Ab205719、1:10000希釈)を添加した。37℃で0.5時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、TMB溶液(製造元:InnoReagents、カタログ番号TMB-S-00)を加えた。室温、暗所にて5分間インキュベートした後、2NのH2SO4を加えて反応を停止させた。450nmの吸光度をマイクロプレートリーダーにより読み取った。十分な力価の抗SIRPα抗体を有するマウスを、42日目に追加投与として50μgのSIRPαタンパク質により免疫化した。3~5日後、マウスを屠殺した。脾臓細胞を回収し、遠心分離によってIMDM基礎培地(製造元:BasalMedia、カタログ番号L610KJ)で2~3回洗浄し、次いで、1:1の比率でマウス骨髄腫細胞SP2/0(Huabioにから入手)と混合した。混合した細胞にPEG(製造元:Roche、カタログ番号25771700)を加え、穏やかに攪拌し、37℃で30秒、混合物を静置した。融合細胞を、15%ウシ胎仔血清(製造元:Tianhang Biotechnology、カタログ番号11011-8611)および1×HAT(製造元:Sigma、カタログ番号H262-1VL)を含むIMEM選択培地中で希釈し、200μL/ウェルを96ウェル細胞培養板に添加し、5%CO2インキュベーター中にて、37℃でインキュベートした。10~14日後、ハイブリドーマ細胞の上清中の抗SIRPα抗体をELISAによって検出した。11種の異なるハイブリドーマクローン、10F11-5-6、1B6-1-1、27A11-1-8、14B11-5-4、31D4-4-5、7C2-3-8、30C1-6-4、4A3-5-1、6H1-8-6、9A12-5および10F4-15を同定し、さらなる分析を行った。
SIRPαタンパク質に対するマウス抗体の結合能をELISAによって検出した。具体的な方法は、実施例1に記載の通りである。マウス抗体を1μg/mLのPBSで3倍に連続希釈し、合計で7つの濃度勾配を調製した。結果は表5のとおりであった。
実施例2の結果によれば、SIRPαに対するマウスモノクローナル抗体の結合能と、THP-1細胞に対する結合能とを組み合わせると、mAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14が最良の活性を有する分子である。したがって、mAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14を、これらのマウスmAbがSIRPαのCD47への結合を遮断できるかどうかを決定するために選択した。96ウェルプレートをCD47-Fc(製造元:Acrobiosystems、カタログ番号CD7-H5256)により、4℃で一晩コーティングした。プレートを洗浄し、1%BSA-PBSTブロッキング溶液でブロッキングした。37℃で1時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、異なる濃度の抗体(66.7nMから3倍希釈、合計で7つの濃度勾配)およびビオチン標識SIRPα(製造元:Acrobiosystems、カタログ番号CDA-H82F2)をプレートに添加した。37℃で1時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、HRP標識ストレプトアビジン(製造元:Abcam、カタログ番号:ab7403)を加えた。37℃で0.5時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、TMB溶液を加えた。室温の暗所にて0.5時間インキュベートした後、2NのH2SO4を加えて反応を停止させた。450nmの吸光度をマイクロプレートリーダーにより、読み取った。対照としてIgG(製造元:GenScript)を使用した。結果は、図1に示されるように、これらのマウス抗体が全て、様々な程度でSIRPαのCD47に対する結合を阻害することができることが実証された。
実施例2および実施例3の結果に基づいて、mAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14をヒト化のために選択した。これらの抗体の重鎖および軽鎖可変領域を、ヒトIgG遺伝子配列の利用可能なデータベースと比較して、最適なヒト生殖系列Ig遺伝子配列一致を同定した。具体的にはmAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14について選択されたヒト生殖系列IgG重鎖は、それぞれIGHV1-69-2*01、IGHV2-26*01、IGHV7-4-1*01およびIGHV4-31*02であり、mAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14について選択されたヒト生殖系列IgGL鎖はそれぞれIGKV4-1*01、IGKV1-9*01、IGKV4-1*01およびIGKV4-1*01であった。mAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14の重鎖CDRをヒト生殖系列IgG重鎖のフレームワーク領域に移植し、mAb#4、mAb#11、mAb#13およびmAb#14の軽鎖CDRをヒト生殖系列IgGL鎖フレームワーク領域に移植した。新しいヒト化分子を、それぞれ#4、#11、#13および#14と命名した。構築されたヒト化抗体の重鎖可変領域、軽鎖可変領域およびCDR領域の配列を表3に示す。#14抗体の重鎖および軽鎖配列を表4に示す。#4、#11および#13抗体の重鎖および軽鎖定常領域は、#14抗体の重鎖および軽鎖定常領域と一致する。#4、#11、および#13抗体の重鎖および軽鎖の完全なアミノ酸配列は、上記で開示した情報に基づいて当業者に公知である。
SIRPαタンパク質に対するヒト化抗体の結合をELISAによって検出した。96ウェルプレートを、PBS中、SIRPα(製造元:Acrobiosystems、カタログ番号SIA-H5225)(1μg/mL)にて、4℃で一晩コーティングした。次いで、プレートを1%BSA-PBSブロッキング溶液により、37℃で1時間ブロッキングした。プレートをPBSTで洗浄した。ヒト化抗体を異なる濃度に希釈し(66.7nMから3倍連続希釈し、全体で11の濃度勾配)、プレートに添加した。37℃で1時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、HRP標識ヤギ抗ヒトIgG(製造元:Abcam、カタログ番号Ab98595、1:10000希釈)を添加した。37℃で0.5時間インキュベートした後、プレートを洗浄し、TMB溶液を加えた。室温の暗所にて5分間インキュベートした後、2NのH2SO4を加えて反応を停止させた。450nmの吸光度をマイクロプレートリーダーにより読み取った。結果を図2に示す。#4、#11、#13および#14抗体のSIRPαに対する結合についてのEC50はそれぞれ1.833nM、0.4642nM、0.9517nMおよび0.6831nMであり、これらのヒト化分子は全てSIRPαへの高結合活性を有することが示された。
CD47へのSIRPαの結合に対するヒト化抗SIRPα抗体である、#4、#11、#13および#14のブロッキング効果を、実施例3に記載のように試験した。抗体を66.7nMから3倍連続希釈し、合計で11の濃度勾配を調製した。結果を図3に示します。#4、#11、#13および#14のIC50値は、それぞれ6.03nM、0.2086nM、1.5nMおよび0.1315nMであった。これは、これらのヒト化抗体の全てが、SIRPαのCD47に対する結合を効果的に遮断することができ、#11および#14抗体が他の2つのヒト化抗体よりも強い遮断効果を有したことを示す。
抗体-抗原結合動態を、H1S1Kバイオセンサー(製造元:ForteBio)を備えたOctet Red96システム(製造元:ForteBio)を用いて決定した。バイオセンサを直接用いて抗原を捕捉し、その直後に検体試料(抗体)に浸漬した。実験は、以下の5つの手順から構成されている:1.ベースライン(100秒)、2.ローディング(抗原SIRPαの捕捉)(500秒)、3.ベースライン(100秒)、4.会合(抗体への結合)(500秒)、5.解離(抗体解離)(1000秒)。試験終了後、再生緩衝液(グリシン、pH1.5)と中和緩衝液(PBS)とに交互に5秒間浸漬することによりセンサーを再生し、合計5サイクルを実施してセンサーを再生した。この実験における操作バッファはPBSであった。
PBMC細胞(製造元:Allcells、カタログ番号PB004F-C)を、1640基本培地(製造元:Gibco、カタログ番号22400-089)中にて、37℃、5%CO2で2~3時間培養した。非接着細胞をピペットで除去し、誘導培地(80ng/mLのM-CSF)を誘導のために添加した。十分なサイトカインを含む新鮮な培地を3日ごとに取り換えた。細胞を7日間培養し、マクロファージを得た。Raji細胞(Cell Bank of Chinese Academy of Sciencesから入手)を、CFSE試薬(製造元:Abcam、カタログ番号AB113853)の指示に従って蛍光標識した。標識Raji標的細胞と上記分化マクロファージを3:1の比率で均一に混合し、抗CD20抗体(ズベリタマブ、CAS RN: 2251143-19-6,WHO Drug Information,Vol.33,No.4,2019,914-915;濃度:0.05μg/mL、0.5μg/mL;製造元:BioRay)、抗CD20抗体(濃度:0.05μg/mL、0.5μg/mL)と#14抗体(濃度:10μg/mL)の組み合わせ、または抗CD20抗体(濃度:0.05μg/mL、0.5μg/mL)とKWAR23抗体(濃度:10μg)を加えた。細胞を37℃、5%CO2で4時間培養した。次いで、細胞をPBSで洗浄し、抗CD14-APC(製造元:BD Biosciences、カタログ番号555399)を加えた。暗所にて、4℃、30分間インキュベートした後、細胞を洗浄し、フローサイトメトリーによって分析した。食作用率(ADCP)は、以下の式に従って計算した:食作用率(%)=(APC+CFSE)陽性細胞の比率/APC陽性細胞の比率×100%。図6Aは、#14抗体が抗CD20抗体によって誘導されるRaji細胞の食作用を増強することができることを示す。
THP-1 細胞(Cell Bank of Chinese Academy of Sciencesから入手)を、10μg/mL抗体と4℃で30分間共インキュベートした。細胞を2回洗浄し、2つに分けた。一方を37℃で4時間インキュベートし、もう一方を対照として4℃でさらにインキュベートした。細胞を2回洗浄し、FITC標識ヤギ抗ヒトIgG(製造元:Abcam、カタログ番号ab97224)を添加した。暗所にて4℃、30分間インキュベートした後、細胞を洗浄し、次いでフローサイトメトリーによって分析した。エンドサイトーシス速度は、37℃対4℃での細胞表面蛍光の低下から計算した。エンドサイトーシス速度は、以下の式によって計算した:エンドサイトーシス速度(%)=(4℃における蛍光強度MFI-37℃における蛍光強度MFI)/4℃における蛍光強度MFI×100%。
#14抗体の抗腫瘍有効性を、hCD47-MC38マウス結腸癌モデルにおいて評価した。hCD47-MC38細胞(上海モデル生物から入手)を、hSIRPα/hCD47二重ヒト化C57BL/6マウス(上海モデル生物から入手)に接種した。腫瘍体積が約150mm3に達した段階で、#14抗体(200μg/マウス)を1週間に2回腹腔内注射によりマウスに投与し、対照群には同量のPBSを投与した。結果を図7に示す。#14抗体は、対照群と比較して、腫瘍増殖を連続的に阻害することができる。
Claims (11)
- 3つのCDR、VH CDR1、VH CDR2およびVH CDR3を含む重鎖可変領域と、3つのCDR、VL CDR1、VL CDR2およびVL CDR3を含む軽鎖可変領域とを含み、
前記VH CDR1が配列番号3、13、23または33に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VH CDR2が配列番号4、14、24または34に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VH CDR3が配列番号5、15、25または35に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VL CDR1が配列番号8、18、28または38に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VL CDR2が配列番号9、19、29または39に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなり、前記VL CDR3は、配列番号10、20、30または40に記載のアミノ酸配列を含むかまたはそれからなる、抗SIRPα抗体またはその抗原結合断片。 - VH CDR1、VH CDR2およびVH CDR3、ならびにVL CDR1、VL CDR2およびVL CDR3を含み、
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号3に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号4に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号5に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号8に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号9に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号10に記載されている;
または、
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号13に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号14に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号15に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号18に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号19に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号20に記載されている;
または、
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号23に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号24に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号25に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号28に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号29に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号30に記載されている;
または、
前記VH CDR1のアミノ酸配列が配列番号33に記載されており;
前記VH CDR2のアミノ酸配列が配列番号34に記載されており;
前記VH CDR3のアミノ酸配列が配列番号35に記載されており;
前記VL CDR1のアミノ酸配列が配列番号38に記載されており;
前記VL CDR2のアミノ酸配列が配列番号39に記載されており;および、
前記VL CDR3のアミノ酸配列が配列番号40に記載されている、請求項1に記載の抗SIRPα抗体またはその抗原結合断片。 - 前記重鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号1、11、21もしくは31に記載されているか、またはそれに対して少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%もしくは少なくとも99%の配列同一性を有しており;前記軽鎖可変領域のアミノ酸配列が配列番号6、16、26もしくは36に記載されているか、またはそれに対して少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%もしくは少なくとも99%の配列同一性を有している、請求項1または2に記載の抗SIRPα抗体またはその抗原結合断片。
- 重鎖定常領域、軽鎖定常領域およびFc領域のうちの1つ以上をさらに含み;好ましくは、軽鎖定常領域がλ鎖またはκ鎖定常領域であり;より好ましくは、前記抗体またはその抗原結合断片がIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4タイプのものであり;さらにより好ましくは、前記抗体またはその抗原結合断片がキメラ抗体もしくはヒト化抗体またはそれらの抗原結合断片である、請求項1~3のいずれか1項に記載の抗SIRPα抗体またはその抗原結合断片。
- 請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合断片をコードするヌクレオチドを含む核酸分子であって;好ましくは、前記核酸分子が前記抗体またはその抗原結合断片の重鎖可変領域および/または軽鎖可変領域をコードし;より好ましくは、前記核酸分子が前記重鎖可変領域をコードし、対応するヌクレオチド配列が配列番号2、12、22もしくは32に記載されているか、もしくはそれに対して少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%もしくは少なくとも99%の配列同一性を有するか;または前記核酸分子が前記軽鎖可変領域をコードし、対応するヌクレオチド配列が配列番号7、17、27もしくは37に記載されるか、もしくはそれに対して少なくとも90%、少なくとも95%、少なくとも96%、少なくとも97%、少なくとも98%もしくは少なくとも99%の配列同一性を有する、核酸分子。
- 生体材料であって、前記生体材料が以下である生体材料:
(1)請求項5に記載の核酸分子を含むベクター、宿主細胞もしくは微生物;または、
(2)上記(1)の発現産物、懸濁液または上清。 - 請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合断片を含む組成物であって;好ましくは、前記組成物が、薬学的に許容可能な担体をさらに含む医薬組成物である、組成物。
- 請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体またはその抗原結合断片の調製方法であって、請求項6に記載の宿主細胞を培養して、前記抗体または前記抗原結合断片を発現させる工程と、前記抗体または前記抗原結合断片を単離する工程とを含む、調製方法。
- 腫瘍を治療するための薬剤の調製における、請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体もしくはその抗原結合断片、請求項5に記載の核酸分子、請求項6に記載の生体材料または請求項7に記載の組成物の使用であって;好ましくは、前記腫瘍はSIRPα陽性腫瘍であり;より好ましくは、前記腫瘍が白血病、リンパ腫、膀胱癌、乳癌、頭頸部癌、胃癌、黒色腫、膵臓癌、結腸直腸癌、食道癌、肝臓癌、腎臓癌、肺癌、前立腺癌、卵巣癌、甲状腺癌、神経膠腫および他の固形腫瘍などの血液学的腫瘍または固形腫瘍である、使用。
- SIRPαのCD47への結合を遮断する製剤の調製における、請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体もしくはその抗原結合断片、請求項5に記載の核酸分子、請求項6に記載の生体材料、または請求項7に記載の組成物の使用。
- 腫瘍を治療するための薬剤の調製における、1つ以上の追加の癌治療剤と組み合わせた、請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体もしくはその抗原結合断片、請求項5に記載の核酸分子、請求項6に記載の生体材料、または請求項7に記載の組成物の使用であって;好ましくは、前記腫瘍はSIRPα陽性腫瘍であり;好ましくは、前記追加の癌治療剤としては化学療法剤、放射線治療剤、および生体高分子薬物が挙げられるが、これらに限定されず;より好ましくは、前記生体高分子薬物が抗CD20抗体、セツキシマブ、またはトラスツズマブなどの腫瘍細胞表面抗原を標的とするモノクローナル抗体薬物であり;より好ましくは、前記抗CD20抗体がズベリタマブまたはリツキシマブである、使用。
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