JP2023520803A

JP2023520803A - 口蹄疫ウイルス様粒子抗原、及びそのワクチン組成物、調製方法と使用

Info

Publication number: JP2023520803A
Application number: JP2022561005A
Authority: JP
Inventors: ケゴンティアン; ウェンチャンパン; ヤンシャオ; シュケチャン
Original assignee: Pulaike Biological Engineering Co Ltd
Current assignee: Pulaike Biological Engineering Co Ltd
Priority date: 2020-04-29
Filing date: 2020-08-28
Publication date: 2023-05-19
Also published as: CN113563432A; CN113563432B; WO2021217982A1; US20230149529A1

Abstract

本発明は、Ａ型口蹄疫ウイルス流行株ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなるＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原を提供し、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ２抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．１に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．２に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．３に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされる。

Description

本発明は、ウイルス性抗原及び該抗原の医薬調合品に属する。具体的には、本発明は、口蹄疫ウイルス様粒子抗原、それにより調製されたワクチン組成物及びその調製方法と使用に関する。

口蹄疫（ｆｏｏｔ-ａｎｄ-ｍｏｕｔｈｄｉｓｅａｓｅ、ＦＭＤ）は、急性で、接触伝染性が高く、急速に遠距離伝播可能な動物疾患であり、哺乳類動物間で感染性が最も強い疾患であり、その中でも、偶蹄類動物が該疾患にかかる場合、全世界に重大な経済的損失をもたらすことになる。口蹄疫の危害に遭う動物には、牛、羊、豚が含まれる。病原体は、口蹄疫ウイルス（ＦＭＤＶ）であり、それがピコルナウイルスファミリーのアフトウイルスである。該ウイルスは、７つの血清型(Ａ、Ｏ、Ｃ、Ａｓｉａ１、ＳＡＴ１、ＳＡＴ２及びＳＡＴ３型)に分けられるが、そのうち、Ｏ型口蹄疫ウイルス及びＡ型口蹄疫ウイルスが主に我が国で流行している。ワクチン免疫はこの疾患を制御し、家畜を危害から保護する有効な手段である。

Ａ型口蹄疫の継続的な伝播に伴い、我が国で流行しているＡ型口蹄疫ウイルスは大幅に変化し、従来と異なり、自然流行の過程で、Ａ型口蹄疫ウイルスは主に牛、羊の感染及び発病を引き起こし、豚の症例が少ない。しかし、現在流行しているＡ型口蹄疫は牛、豚にいずれも病原性を有し、且つ毒性はその前のＡ型ウイルスの１０倍以上である。市場において生物安全性及び免疫効果がいずれも優位性を有するワクチンが欠けている。

ウイルス様粒子(ＶＬＰs)は、体外及び／又は体内で発現される時に自発的にウイルスカプシド構造にパッケージング可能なウイルス様粒子であって、ウイルスと類似したシェル構造を有するが、ウイルス複製能力を持たないシュードタイプウイルスである。ＶＬＰｓワクチンは、体が抗感染や抗腫瘍免疫を生み出すように効果的に刺激できる。ウイルス様粒子に基づいて設計されたワクチンは、比較的理想的なワクチン形態を呈する。したがって、理想的な口蹄疫毒株配列を選別してウイルス様粒子を調製することは、当面の急務であり、国が提案する重大な動物疫病を効果的に予防及び管理し、畜産の健全で持続可能な発展を確保するという要求にも合致する。

発明の内容

従来技術中のＡ型口蹄疫ウイルス流行株の問題を解決するために、本発明は、Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原を提供し、前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原はＡ型口蹄疫ウイルス流行株ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなり、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ２抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．１に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．２に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．３に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされる。

前記口蹄疫ウイルス様粒子抗原は、良好な免疫原性を有し、それにより調製されたワクチン組成物は、一回の免疫だけでＡ型口蹄疫ウイルス流行株に対する完全な保護を提供することができる。同時に前記口蹄疫ウイルス様粒子抗原は、良好な安定性を有し、４℃で３ヶ月間放置した後、リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、ウイルス様粒子は充実した状態を保ち、凝集現象がない。

前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原は、現在の流行株から由来し、現在の流行野生毒株に対して完全な保護を生成することができる。

本発明は、さらに、免疫量の前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原と、薬学的に許容される担体とを含有するワクチン組成物を提供する。

本発明のＡ型流行株口蹄疫ウイルス様粒子ワクチンは、抗原の含有量がわずか１６０μｇ／ｍｌである場合、免疫後１４日目に１：１２８以上の抗体価に達することができ、且つ長期間の高力価の抗体価を維持することができ、肥育期間全体に対して保護を生成することができ、良好な免疫原性を示す。

本発明の一実施形態として、本発明に記載のワクチン組成物において、前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量は、１６０～２４０μｇ／ｍｌである。

Ａ型流行株口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量は、１６０μｇ／ｍｌ、１７０μｇ／ｍｌ、１８０μｇ／ｍｌ、１９０μｇ／ｍｌ、２００μｇ／ｍｌ、２１０μｇ／ｍｌ、２２０μｇ／ｍｌ、２３０μｇ／ｍｌ、２４０μｇ／ｍｌから選択することができる。

Ａ型流行株口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量がわずか１６０μｇ／ｍｌであっても、免疫後１４日目に１：１２８以上の抗体価に達することができ、即ち免疫保護を生成することができ、且つ長期間の高力価の抗体価を維持することができる。

本発明の一好ましい実施形態として、本発明に記載のワクチン組成物において、前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量は、１６０μｇ／ｍｌ、又は２００μｇ／ｍｌ、又は２４０μｇ／ｍｌである。

本発明の一実施形態として、本発明に記載のワクチン組成物において、前記薬学的に許容される担体はアジュバントを含み、前記アジュバントは、（１）鉱物油、アルミニウムゲルアジュバント、サポニン、アブリジン、アジピン酸ジデシル（ＤＤＡ）、（２）油中水型エマルション、水中油型エマルション、水中油中水型エマルション、又は（３）アクリル酸又はメタクリル酸の重合体、無水マレイン酸とアルケニル誘導体との共重合体、及びＲｉＢｉアジュバントシステム、ブロック共重合体、ＳＡＦ－ｍ、モノホスホリルリピドＡ、Ａｖｒｉｄｉｎｅ脂質－アミンアジュバント、大腸菌易熱性エンテロトキシン、コレラ毒素、ＩＭＳ１３１４、ムラミルジペプチド、ＭｏｎｔａｎｉｄｅＩＳＡ２０６、Ｇｅｌアジュバントのうちの１種又は複数種から選択され、好ましくは、サポニンはＱｕｉｌＡ、ＱＳ－２１、ＧＰＩ－０１００であり、好ましくは、前記アジュバントはＩＳＡ２０６アジュバントである。

前記アジュバントの含有量は、５％～６０％Ｖ／Ｖであり、好ましくは３０％～６０％Ｖ／Ｖであり、より好ましくは５０％Ｖ／Ｖである。

本発明の一実施形態として、本発明に記載のワクチン組成物において、前記ワクチン組成物は、さらに、免疫量のＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプ（ｔｏｐｏｔｙｐｅ）ウイルス様粒子抗原及び／又は免疫量のＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を含有し、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原は、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス流行株ＶＰ４、ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなり、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ４抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．４に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ２抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．５に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．６に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．７に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原は、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス流行株ＶＰ０、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなり、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ０抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．８に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．９に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．１０に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされる。

本発明のＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原は、良好な免疫原性を有し、ワクチン免疫後１４日目に１：１２８以上のＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプ抗体価に達することができる。前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原は、良好な安定性を有し、４℃で３ヶ月間放置した後、リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、ウイルス様粒子は充実した状態を保ち、凝集現象がない。

本発明のＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原は、良好な免疫原性を有し、ワクチン免疫後１４日目に１：１２８以上のＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプ抗体価に達することができる。前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原は、良好な安定性を有し、４℃で３ヶ月間放置した後、リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、ウイルス様粒子は充実した状態を保ち、凝集現象がない。

本発明の一好ましい実施形態として、本発明に記載のワクチン組成物において、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００～２００μｇ／ｍｌであり、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００～２００μｇ／ｍｌである。

Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００μｇ／ｍｌ、１１０μｇ／ｍｌ、１２０μｇ／ｍｌ、１３０μｇ／ｍｌ、１４０μｇ／ｍｌ、１５０μｇ／ｍｌ、１６０μｇ／ｍｌ、１７０μｇ／ｍｌ、１８０μｇ／ｍｌ、１９０μｇ／ｍｌ、２００μｇ／ｍｌから選択することができる。

Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量がわずか１００μｇ／ｍｌでも、免疫後１４日目に１：１２８以上の抗体価に達することができ、即ち免疫保護を生成することができ、且つ長期間の高力価の抗体価を維持することができ、良好な免疫原性を示す。

Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００μｇ／ｍｌ、１１０μｇ／ｍｌ、１２０μｇ／ｍｌ、１３０μｇ／ｍｌ、１４０μｇ／ｍｌ、１５０μｇ／ｍｌ、１６０μｇ／ｍｌ、１７０μｇ／ｍｌ、１８０μｇ／ｍｌ、１９０μｇ／ｍｌ、２００μｇ／ｍｌから選択することができる。

Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量がわずか１００μｇ／ｍｌでも、免疫後１４日目に１：１２８以上の抗体価に達することができ、即ち免疫保護を生成することができ、且つ長期間の高力価の抗体価を維持することができ、良好な免疫原性を示す。

本発明によるＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物は、２種類のＯ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原が相乗効果を発揮し、抗原の含有量が半減してもワクチンの各組成の免疫効果を発揮することができる。

本発明の一より好ましい実施形態として、本発明に記載のワクチン組成物において、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００μｇ／ｍｌ、又は１５０μｇ／ｍｌ、又は２００μｇ／ｍｌであり、前記Ｏ型ＣＡＴＨＡＹトポタイプ口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量は、１００μｇ／ｍｌ、又は１５０μｇ／ｍｌ、又は２００μｇ／ｍｌである。

本発明の一実施形態として、前記薬学的に許容される担体は、薬物、免疫刺激剤、酸化防止剤、界面活性剤、着色剤、揮発性油、緩衝剤、分散剤、推進剤及び防腐剤を含有し、前記免疫刺激剤は、α－インターフェロン、β－インターフェロン、γ－インターフェロン、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ－ＣＳＦ）、マクロファージコロニー刺激因子（Ｍ－ＣＳＦ）及びインターロイキン２（ＩＬ２）を含有する。

このような組成物を調製するためには、本分野で公知の方法を使用することができる。

本発明は、さらに、前記ワクチン組成物を調製するための方法に関し、前記方法は、（１）前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ２抗原タンパク質の遺伝子、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ３抗原タンパク質の遺伝子及び前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ１抗原タンパク質の遺伝子を、それぞれクローニングし、同一のタンデム発現ベクターに組み換えるステップと、（２）前記ステップ（１）の組み換え発現ベクターを宿主に形質転換又は形質導入し、Ａ型口蹄疫ウイルス組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ２抗原タンパク質、組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ３抗原タンパク質及び組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ１抗原タンパク質を可溶性発現し、発現されたＡ型口蹄疫ウイルス組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ２抗原タンパク質、組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ３抗原タンパク質及び組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ１抗原タンパク質はウイルス様粒子抗原に自己集合され得るステップと、（３）前記ステップ（２）のＡ型口蹄疫ウイルスの組み換え抗原を分離・精製し、酵素切断・精製してＳＵＭＯ融合タグを除去するステップと、（４）ウイルス様粒子抗原を自己集合させ、アジュバントを加え、前記ワクチン組成物を得るステップと、を含む。本発明は、Ａ型流行株口蹄疫ウイルスＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質を発現することにより、安定して自己集合されたウイルス様粒子を得ることができる。Ａ型流行株口蹄疫ウイルスＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質をタンデム発現することにより、後続の抗原の精製及び分離に有利する。発現・精製された活性タンパク質は、Ａ型流行株口蹄疫ウイルス様粒子抗原に効率的に自己集合することができる。

本発明の一実施形態として、本発明に記載の方法では、前記ステップ（１）のタンデム発現ベクターは、ｐＥＴ２８ａ、ｐＥＴ２８ｂ、ｐＥＴ３２ａであり、前記ステップ（２）の宿主は、Ｅ．ｃｏｌｉＢＬ２１（ＤＥ３）、ＯｒｉｇａｍｉＢ（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ、Ｒｏｓｅｔｔａ－ｇａｍｉＢ（ＤＥ３）である。

本発明は、タンデム発現ベクター及び宿主菌を選択することにより、ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質に対してタンデム発現を行い、後続の抗原分離・精製に有利し、プログラムを簡略化する。発現、精製及び自己集合してウイルス様粒子となる可溶性タンパク質は、生物活性を有する。

本発明の一好ましい実施形態として、本発明に記載の方法では、前記ステップ（２）において、宿主細胞が増幅された後、ＩＰＴＧを加えて、前記タンパク質の発現を誘導する。

本発明の一好ましい実施形態として、本発明に記載の方法では、前記ステップ（３）の分離・精製工程は、前記菌体を破砕した後、上澄み液を取り、硫酸アンモニウム分級沈降法及びクロマトグラフィー法を用いて前記ウイルス様粒子抗原を精製する。

本発明は、初めてＡ型口蹄疫ウイルスの３つの構造タンパク質ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１を採用し、口蹄疫ウイルス様粒子を生産することができ、免疫原性に優れ、生物安全リスクがないなどの利点を有する。本発明により調製されたウイルス様粒子ワクチン組成物は、Ａ型流行株口蹄疫に保護活性を提供することができるだけでなく、且つ抗体の生成が速く、抗体の生成レベルが高く、免疫持続期間が長く、長時間の免疫保護を維持することができる。

本発明は、さらに、前記ワクチン組成物の、Ａ型口蹄疫を予防及び／又は治療するための薬物の調製における使用に関する。

本発明に記載の調製された口蹄疫ウイルス感染を予防及び／又は治療するための薬物の投与対象は、豚を含む。

本発明のワクチン組成物は、一回の免疫後、１３３日間に達する時間で１：１２８以上の抗体価を維持し、豚に対して完全な保護を生成し、該時間は肥育期間全体をカバーすることができる。

以下、本発明の実施形態について説明する。

定義
「口蹄疫ウイルス」は、ピコルナウイルス科、口蹄疫ウイルス属に属する。該ウイルスにはＯ、Ａ、Ｃ、ＳＡＴ１、ＳＡＴ２、ＳＡＴ３（即ち南アフリカ口蹄疫ウイルス１、２、３型）及びＡｓｉａ１（アジア１型）の７つの血清型があり、各型の間に交差保護反応がなく、各型内には、さらに複数の亜型がある。ウイルスは、中心が約８０００個の塩基からなる一本鎖プラス鎖ＲＮＡであり、感染と遺伝の基礎となり、周囲に被覆されたタンパク質がウイルスの抗原性、免疫性及び血清学的反応能力を決定する。ウイルスカプシドは、対称性のある２０面体である。口蹄疫ウイルスは、偶蹄類動物間伝染性の高い疾患である口蹄疫の病原体である。国際獣疫事務局は口蹄疫を「動物伝染病分類リストＡ」のうち第１位に位置付け、中国は、口蹄疫を「入国動物検疫伝染病１類」に位置付け、我が国の口蹄疫に対する予防及び治療は、主にワクチン注射接種によることであり、口蹄疫が発生した動物は捕殺される。

「抗原（Ａｎｔｉｇｅｎ）」とは、体に免疫応答を引き起こさせるように誘導することができる物質を指し、即ち、Ｔ／Ｂリンパ球表面の抗原レセプター（ＴＣＲ／ＢＣＲ）により特異的に識別及び結合可能であり、Ｔ／Ｂ細胞を活性化することで、増殖・分化させて、免疫応答産物（感作リンパ球又は抗体）を生成させ、対応する産物と体内外で特異的な結合を引き起こし得る物質を指す。

「ウイルス様粒子（ｖｉｒｕｓ－ｌｉｋｅｐａｒｔｉｃｌｅｓ、ＶＬＰｓ）」は、１種又は複数種のウイルス構造タンパク質から集合してなった粒子であり、ウイルス粒子と類似した外部構造及び抗原性を有するが、ウイルス遺伝子を含まない。

「口蹄疫ウイルスＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質」は、ＦＭＤＶ構造タンパク質前駆体タンパク質Ｐ１がプロテアーゼ３Ｃにより触媒されてＶＰ０、ＶＰ３及びＶＰ１に加工される。これらの３種類のタンパク質は、二十面体のウイルスカプシドに自己集合することができる。ＶＰ０タンパク質は、Ｐ１がプロテアーゼ３Ｃによって切断された後の中間体であり、ウイルス粒子形成の最終段階で、ＶＰ０が成熟してＶＰ４とＶＰ２とに分解される。

本発明で使用される用語「ワクチン」及び「ワクチン組成物」とは、口蹄疫ウイルス様粒子抗原を含有する薬物組成物を指し、該薬物組成物は、口蹄疫に対する豚の免疫反応を誘発、刺激又は増強することができる。

用語「免疫量」とは、「免疫有効量」として理解されるべきであり、免疫保護量又は免疫応答を引き起こす有効量とも称され、レシピエントの体内で免疫応答を効果的に誘導可能な抗原量である。当該量は、健康への悪影響又はその合併症を含む、疾患の徴候又は症状を予防又は改善するのに十分である。前記免疫応答は、診断目的又はその他の試験に十分であり得、或いは、病原体による感染によって引き起こされる健康への悪影響又はその合併症を含む、疾患の前兆又は症状の予防に適し得る。体液免疫力又は細胞媒介性免疫或いはその両方とも誘導され得る。免疫原性組成物に対する動物の免疫応答は、例えば、抗体価の測定やリンパ球増殖分析によって間接的に評価されるか、或いは、野生型毒株での攻撃後の前兆又は症状のモニタリングによって直接的に評価され得る。該ワクチンにより提供される保護性免疫力は、例えば、死亡率、発病率の低下、温度数値、被験者の全体的な生理学的状況及び全体的な健康及び表現といった被験者の臨床前兆を測定することによって評価され得る。前記免疫応答は、細胞性及び／又は体液性免疫力の誘導を含み得るが、これらに限定されない。

用語「薬学的に許容される担体」とは、本発明に係るワクチン組成物のうち口蹄疫ウイルス抗原を除く他の全ての成分を指し、生体を刺激せず且つ使用される化合物の生物学的活性及び特性を妨げない担体又は希釈剤であり、好ましくはアジュバントである。用語「アジュバント」とは、アルミニウムゲルアジュバント、サポニン（ｓａｐｏｎｉｎ）、例えばＱｕｉｌＡ、ＱＳ－２１（ＣａｍｂｒｉｄｇｅＢｉｏｔｅｃｈＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、ＣａｍｂｒｉｄｇｅＭＡ）、ＧＰＩ－０１００（ＧａｌｅｎｉｃａＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、ＢｉｒｍｉｎｇｈａｍＡＬ）、油中水型エマルション、水中油型エマルション、水中油中水型エマルション、アクリル酸又はメタクリル酸の重合体、無水マレイン酸とアルケニル（ａｌｋｅｎｙｌ）誘導体との共重合体から選択される化合物を含み得る。用語「エマルション」は、特に軽質液体パラフィン油（欧州薬局方タイプ）、アルケンのオリゴマー化によるイソプレノイド油（ｉｓｏｐｒｅｎｏｉｄｏｉｌ）、例えばスクアラン（ｓｑｕａｌａｎｅ）又はスクワランオイル（ｓｑｕａｌｅｎｅｏｉｌ）、特にイソブテン又はデセン、酸又はアルコールの鎖状アルキル含有エステル、より特に、植物油、オレイン酸エチル、ジ（カプリル酸／カプリン酸）プロピレングリコール、トリ（カプリル酸／カプリン酸）グリセリル又はプロピレングリコールジオレエート、分岐鎖脂肪酸又はアルコールのエステル、特にイソステアリン酸エステルに基づく。油は、エマルションを形成するように、乳化剤と組み合わせて使用される。乳化剤は、好ましくは非イオン性界面活性剤、特にソルビタンのエステル、マンニド（ｍａｎｎｉｄｅ）のエステル（例えばマンニトールオレイン酸無水物）、脂肪族グリコール（ｇｌｙｃｏｌ）のエステル、ポリグリセリン（ｐｏｌｙｇｌｙｃｅｒｏｌ）のエステル、プロピレングリコールのエステル及びオレイン酸のエステル、イソステアリン酸のエステル、リシノール酸のエステル又はヒドロキシステアリン酸のエステルであり、これらはエトキシル化されていてもよく、また、ポリオキシプロピレン-ポリオキシエチレンブロック共重合体があり、特にＰｌｕｒｏｎｉｃ製品であり、特にＬ１２１である。Ｈｕｎｔｅｒらによって書かれた「Ｔｈｅｔｈｅｏｒｙａｎｄｐｒａｃｔｉｃａｌａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｏｆａｄｊｕｖａｎｔｓ（アジュバントの理論と実際の応用）」（ＤＥＳＳｔｅｗａｒｔ－Ｔｕｌｌ編、ジョン・ワイリー・アンド・サンズ、ニューヨーク、１９９５：５１－９４）及び、Ｔｏｄｄらによって書かれた「Ｖａｃｃｉｎｅ（ワクチン）」（１９９７、１５：５６４－５７０）を参照し得る。例えば、ＰｏｗｅｌｌＭとＮｅｗｍａｎＭによって書かれた「Ｖａｃｃｉｎｅｄｅｓｉｇｎ，ｔｈｅＳｕｂｕｎｉｔａｎｄａｄｉｕｖａｎｔａｐｐｒｏａｃｈ（ワクチン設計、サブユニット及びアジュバントアプローチ）」（プレナムプレス、１９９５）の第１４７ページに記述されているＳＰＴエマルション及び第１８３ページに記述されているＭＦ５９エマルションを使用し得る。用語「アクリル酸又はメタクリル酸の重合体」は、好ましくは、架橋されたアクリル酸又はメタクリル酸重合体、特に糖（ｓｕｇａｒ）のポリアルケニルエーテル又はポリオールと架橋されるものであり、これら化合物は、カルボマー（Ｃａｒｂｏｍｅｒ、商品名Ｃａｒｂｏｐｏｌ）と称されて知られている（Ｐｈａｍｅｕｒｏｐａ、１９９６、８（２））。当業者は、さらに、米国特許ＵＳ２９０９４６２を参照してもよく、該特許には、この種類のアクリル酸重合体が記載され、該アクリル酸重合体は、ポリヒドロキシル化された化合物と架橋され、前記化合物は、少なくとも３つのヒドロキシル基、好ましくは８つ未満のヒドロキシル基を有し、そのうち少なくとも３つのヒドロキシル基の水素原子は、少なくとも２つの炭素原子を有する不飽和脂肪族ラジカル（ａｌｉｐｈａｔｉｃｒａｄｉｃａｌ）に置換される。好ましい基は、例えば、ビニル基、アリル基及びその他のエチレン性不飽和基（ｅｔｈｙｌｅｎｉｃａｌｌｙｕｎｓａｔｕｒａｔｅｄｇｒｏｕｐ）などの２～４個の炭素原子を含有するものである。前記不飽和基自体は、メチル基などのその他の置換基を含んでいてもよい。これらの製品は、カーボポール（ＢＦＧｏｏｄｒｉｃｈ、Ｏｈｉｏ、ＵＳＡ）という名義で販売されており、特に適している。それらは、アリルスクロース又はペンタエリトリトールアリルエーテル（ａｌｌｙｌｐｅｎｔａｅｒｙｔｈｒｉｔｏｌ）と架橋される。そのうち、カーボポール９７４Ｐ、９３４Ｐ及び９７１Ｐが言及され、最も好ましくはカーボポール９７１Ｐが使用される。用語「無水マレイン酸とアルケニル誘導体との共重合体」は、無水マレイン酸とエチレンとの共重合体ＥＭＡ（Ｍｏｎｓａｎｔｏ）が考慮され得る。これらの重合体は水に溶解されて酸性溶液を生成し、中和を経て、好ましくは生理学的ｐＨに中和させて、免疫原性、免疫性又はワクチン性組成物自体を混入可能なアジュバント溶液を生成するようにする。用語「アジュバント」は、Ｒｉｂｉアジュバントシステム（ＲｉｂｉＩｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）、ブロック共重合体（Ｂｌｏｃｋｃｏ－ｐｏｌｙｍｅｒ）（ＣｙｔＲｘ、ＡｔｌａｎｔａＧＡ）、ＳＡＦ－Ｍ（Ｃｈｉｒｏｎ、ＥｍｅｒｙｖｉｌｌｅＣＡ）、モノホスホリルリピドＡ（ｍｏｎｏｐｈｏｓｐｈｏｒｙｌｌｉｐｉｄＡ）、アブリジン（Ａｖｒｉｄｉｎｅ）脂質－アミンアジュバント、大腸菌易熱性エンテロトキシン（組み換え又はその他）、コレラ毒素、ＩＭＳ１３１４、ムラミルジペプチド、Ｇｅｌアジュバント等をさらに含むが、これらに限定されない。好ましくは、前記アジュバントは白油、アルミニウムゲルアジュバント、サポニン、油中水型エマルション、水中油型エマルション、水中油中水型エマルション、アクリル酸又はメタクリル酸の重合体、無水マレイン酸とアルケニル（ａｌｋｅｎｙｌ）誘導体との共重合体、Ｒｉｂｉアジュバントシステム、ブロック共重合体、ＳＡＦ－ｍ、モノホスホリルリピドＡ、Ａｖｒｉｄｉｎｅ脂質－アミンアジュバント、大腸菌易熱性エンテロトキシン、コレラ毒素、ＩＭＳ１３１４、ムラミルジペプチド、ＭｏｎｔａｎｉｄｅＩＳＡ２０６或Ｇｅｌアジュバントのうちの１種又は複数種を含む。

「縮重配列」：分子生物学において、同一のアミノ酸が２つ以上のコドンを有する現象をコドン縮退（ｄｅｇｅｎｅｒａｃｙ）と称され、このような配列は縮重配列と呼ばれる。

「遺伝子組み換え」とは、異なる形質を制御する遺伝子の組み換えを指す。現代の遺伝子工学技術は、試験管内で人工設計に従って遺伝子組み換えを行い、組み換えＤＮＡとも称される。その目的は、一つの個体細胞内の遺伝子を異なる形質を持つその他の一つの個体細胞内のＤＮＡ分子に移して、遺伝子変異を引き起こすことである。ドナーからの標的遺伝子がレシピエント細菌に移入された後、遺伝子産物の発現を行うことができ、したがって通常の方法では得にくい製品が得られる。

「形質転換（ｔｒａｎｓｆｏｒｍａｔｉｏｎ）」とは、外来ＤＮＡの自動取得又は人工供給により、細胞又は培養されたレシピエント細胞が新しい遺伝的表現型を得るようにすることを指す。

「形質導入（ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ）」とは、ウイルスが感染された（ドナー）細胞から放出されて再び他の（レシピエント）細胞を感染させた時に、ドナー細胞とレシピエント細胞の間で発生されるＤＮＡ転移及び遺伝子組み換えを指す。

用語「予防及び／又は治療」は、口蹄疫ウイルス感染に言及する場合、口蹄疫ウイルスの複製を抑制すること、口蹄疫ウイルスの伝播を抑制すること、或いは口蹄疫ウイルスがその宿主体内で定着するのを防止すること、及び口蹄疫ウイルス感染の疾患又は病症の症状を軽減させることを指す。ウイルス負荷量が減少し、病症軽減及び/又は摂食量及び/又は成長が増加すると、前記治療は治療効果を達成すると考えられる。

以下では、具体的な実施例と併せて本発明をさらに説明することにする。本発明の利点及び特徴は、説明とともにより明確になるだろう。但し、これらの実施例は単に例示的なものであり、本発明の範囲に対するいかなる制限も構成しない。当業者は、本発明の精神及び範囲から逸脱することなく本発明の技術方案の詳細及び形態を修正又は置き換え得るが、これらの修正及び置き換えは、本発明の保護範囲に含まれることを理解すべきである。

本発明の実施例で使用される化学試薬は、いずれも分析用グレードであり、中国国家医薬集団（シノファームグループ）から購入されている。本発明に係る実験方法は、特に明記しない限り、いずれも従来の方法である。記載される生物材料は、特に明記しない限り、いずれも商業的ルートから入手され得る。

材料及び方法
ベクターの構築及び形質転換
Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１遺伝子を含有する組み換えベクターｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ２－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１

蘇州金唯智生物科技有限公司により配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．１に示されるＡ型口蹄疫ウイルスＶＰ２遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．２に示されるＡ型口蹄疫ウイルスＶＰ３遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．３に示されるＡ型口蹄疫ウイルスＶＰ１遺伝子断片を合成し、それぞれｐＥＴＳＵＭＯベクターに連結された。次に連結に成功した組み換えプラスミドをそれぞれテンプレートとし、ＲＢＳ－ＳＵＭＯ－ＶＰ２、Ｔ７－ＲＢＳ－ＳＵＭＯ－ＶＰ３及びＴ７－ＲＢＳ－ＳＵＭＯ－ＶＰ１を含有する断片を増幅した。それぞれＸｂａＩ／ＢａｍＨＩ、ＳａｃＩ／ＳａｌＩ、ＮｏｔＩ／ＸｈｏＩで酵素切断されて得られた断片を、順にｐＥＴ２８ａベクターにクローニングした。

連結産物をＣａＣｌ_２で調製されたＤＨ５αコンピテントセルに形質転換し、カナマイシン耐性の固体ＬＢ培地に塗布し、モノクローナルコロニーがはっきりと見える場合、モノクローナルをカナマイシン含有ＬＢ液体培地にピックアップし、３７℃、２３０回転／分間で１２時間一晩培養し、組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ２－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１を抽出した。

上記のＡ型口蹄疫ウイルスＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１遺伝子が挿入された組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ２－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１を、４０μｌの塩化カルシウム法で調製されたコンピテント大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）に形質転換し、カナマイシン耐性の固体ＬＢ培地に塗布し、３７℃で１０～１２時間静置培養し、モノコロニーがはっきりと見えるまでに、モノクローナルを４ｍｌのカナマイシン耐性の液体ＬＢ培地を含む試験管にピックアップし、３７℃、２３０回転／分間で１２時間振動培養し、その中から１ｍｌの菌液を取って－８０℃で凍結乾燥して保存した。

Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ４、ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１遺伝子を含有する組み換えベクター
蘇州金唯智生物科技有限公司により配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．４に示されるＯ型ＳＥＡトポタイプＶＰ４遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．５に示されるＯ型ＳＥＡトポタイプＶＰ２遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．６に示されるＯ型ＳＥＡトポタイプＶＰ３遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．７に示されるＯ型ＳＥＡトポタイプＶＰ１遺伝子断片を合成し、組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ４－ＳＵＭＯＶＰ２－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１付き、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ４、ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１遺伝子をタンデム発現可能な大腸菌発現菌株を構築し、－８０℃で凍結乾燥して保存した。

Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ０、ＶＰ３、ＶＰ１遺伝子を含有する組み換えベクター
蘇州金唯智生物科技有限公司により配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．８に示されるＯ型ＣＡＴＨＡＹトポタイプＶＰ０遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．９に示されるＯ型ＣＡＴＨＡＹトポタイプＶＰ３遺伝子断片、配列表ＳＥＱＩＤＮＯ．１０に示されるＯ型ＣＡＴＨＡＹトポタイプＶＰ１遺伝子断片を合成し、組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ０－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１付き、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ０、ＶＰ３、ＶＰ１遺伝子をタンデム発現可能な大腸菌発現菌株を構築し、－８０℃で凍結乾燥して保存した。

抗原タンパク質の発現、精製、集合及び口蹄疫ウイルス様粒子の同定
Ａ型口蹄疫ウイルス抗原及びウイルス様粒子
－８０℃から組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ２－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１付きの大腸菌種菌を取ってカナマイシン耐性の５０ｍｌのＬＢ液体培地に接種し、３７℃、２３０回転／分間で１２時間振動培養した後、１ＬのＬＢ液体培地に移し、３７℃で培養して発酵用種液を調製した。

使用された発酵槽は上海保興生物公司の５０Ｌ発酵槽であり、３０Ｌの培地を調合して発酵槽に投入し、１２１℃で３０分間滅菌した。翌日、３Ｌの種液を発酵槽に接種し、培養菌液の濃度がＯＤ６００値約１０程度に達した場合、培養温度を２５℃に下げ、ＩＰＴＧを最終濃度が０．５ｍＭになるように加えて、１２時間誘導培養した。発酵密度が約４０程度（ＯＤ６００）で培養を停止し、遠心分離して菌体を収集した。

菌体を再懸濁し、ホモジナイザーを用いて８００ｂａｒの圧力で菌体を４回破砕した。１３５００ｒｐｍで４０ｍｉｎ遠心分離し、上澄み液を取り、１５％ＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動により測定した。硫酸アンモニウム分級沈降法を用いてタンパク質の粗精製を行い、続いてクロマトグラフィー精製、酵素切断、クロマトグラフィー精製によるＳＵＭＯ融合タグの除去及びＡ型口蹄疫ウイルス様粒子の集合を行った。精製後のタンパク質はＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動により測定した。

リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡でＡ型口蹄疫ウイルス様粒子を観察した。

Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原及びウイルス様粒子
－８０℃から組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ４－ＳＵＭＯＶＰ２－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１付きの大腸菌種菌を取ってカナマイシン耐性の５０ｍｌのＬＢ液体培地に接種し、上記のＡ型口蹄疫ウイルス抗原の調製に類似した調製条件で種菌を培養し、再び１ＬのＬＢ液体培地に転移し、３７℃で培養した。
５０Ｌの発酵槽を使用し、上記Ａ型口蹄疫ウイルス抗原に類似した調製条件で、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス抗原を大規模発酵・発現した。
上記Ａ型口蹄疫ウイルス抗原に類似した調製条件で菌体中にタンデム発現された４つのＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス抗原を分離、精製及び同定した。
リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡でＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子を観察した。

Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原及びウイルス様粒子
－８０℃から組み換えプラスミドｐＥＴ２８ａ－ＳＵＭＯＶＰ０－ＳＵＭＯＶＰ３－ＳＵＭＯＶＰ１付きの大腸菌種菌を取ってカナマイシン耐性の５０ｍｌのＬＢ液体培地に接種し、上記Ａ型口蹄疫ウイルス抗原の調製に類似した調製条件で種菌を培養し、再び１ＬのＬＢ液体培地に転移し、３７℃で培養した。
５０Ｌ発酵槽を使用し、上記Ａ型口蹄疫ウイルス抗原に類似した調製条件で、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス抗原を大規模発酵・発現した。
上記Ａ型口蹄疫ウイルス抗原に類似した調製条件で菌体中にタンデム発現された３つのＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス抗原を分離、精製及び同定した。
リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡でＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子を観察した。

口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の調製
Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物
調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原をゆっくりアジュバントに加え、加える過程で絶えず回転速度８００ｒｐｍの乳化機で１２ｍｉｎ攪拌し、均一に混ぜて、４℃で保存すると、Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物になる。本発明に適用されたアジュバントは、当業者に知られているアジュバントであり得る。本発明では、選択されたアジュバントは二相アジュバント（水中油中水型エマルション）、例えばアジュバントＩＳＡ２０６（フランスセピック社）であってもよい。

Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物
調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原を取り、上記のＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物を調製する方法に従い、ワクチン組成物を調製した。本発明に適用されたアジュバントは、当業者に知られているアジュバントであり得る。本発明では、選択されたアジュバントは二相アジュバント（水中油中水型エマルション）、例えばアジュバントＩＳＡ２０６（フランスセピック社）であってもよい。

Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物
調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を取り、上記のＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物を調製する方法に従い、ワクチン組成物を調製した。本発明に適用されたアジュバントは、当業者に知られているアジュバントであり得る。本発明では、選択されたアジュバントは二相アジュバント（水中油中水型エマルション）、例えばアジュバントＩＳＡ２０６（フランスセピック社）であってもよい。

Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の免疫原性分析
Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の免疫原性
免疫後の豚血清中の抗体のＥＬＩＳＡ抗体レベルを採用してワクチン組成物中の抗原の免疫原性を検出する。
Ａ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚を選び、調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物で免疫した。免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、ブランク対照群は等量のＰＢＳで免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後７日目、１４日目、２１日目、２８日目に採血した。採集された血清に対して、Ａ型口蹄疫抗体ＥＬＩＳＡテストキットを使用して抗体の検出を行った。

Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の免疫持続期間実験
免疫後の豚血清中の抗体のＥＬＩＳＡ抗体レベルを採用してワクチン組成物中の抗原の免疫持続期間を検出した。
Ａ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚を選び、調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物で免疫した。免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、ブランク対照群は等量のＰＢＳで免疫し、いずれも一回免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後２１日目、２８日目、３５日目、７７日目、１０５日目、１３３日目に採血した。
市販不活化ワクチン（Ｒｅ－Ｏ／ＭＹＡ９８／ＪＳＣＺ／２０１３株＋Ｒｅ－Ａ／ＷＨ／０９株）免疫群を対照群とし、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、そのブランク対照群は等量のＰＢＳで免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後２１日目に採血して２回目の免疫を行い、２回目の免疫後、それぞれ７日目、１４日目、５６日目、８４日目、１１２日目に採血した。

Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物中の抗原の免疫原性
免疫後の豚血清中の抗体のＥＬＩＳＡ抗体レベルを採用してワクチン組成物中の抗原の免疫原性を検出した。
Ａ型、Ｏ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚を選び、調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物で免疫した。免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、ブランク対照群は２ｍｌのＰＢＳで免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後、それぞれ７日目、１４日目、２１日目、２８日目に採血した。

Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物中の抗原の免疫原性
免疫後の豚血清中の抗体のＥＬＩＳＡ抗体レベルを採用してワクチン組成物中の抗原の免疫原性を検出した。
Ａ型、Ｏ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚を選び、調製されたＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原及びＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を含有するワクチン組成物で免疫した。免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、対照群はＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物で免疫し、又はＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物で免疫した。免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、ブランク対照群は２ｍｌのＰＢＳで免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後、それぞれ７日目、１４日目、２１日目、２８日目に採血した。

実施例１Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子
Ａ型口蹄疫ウイルス抗原タンパク質を発現する菌体を再懸濁し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動で検出したところ、この時上澄み液中の３つのタンデム発現された目的タンパク質が発現されたことを示した。精製後のタンパク質をＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動により測定したところ、目的タンパク質がいずれも精製及び濃縮されたことを示した。

リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、Ａ型口蹄疫タンパク質がウイルス様粒子を形成し、且つ形成されたウイルス様粒子は充実で、集合効率が高く、凝集がないことが分かった。口蹄疫ウイルス様粒子を４℃で３ヶ月間放置した後、再びリンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、ウイルス様粒子は依然として充実で、凝集現象がないことが分かった。これは、本発明により選別された配列によって調製された口蹄疫タンパク質が安定したウイルス様粒子を形成したことを示す。

実施例２Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の調製
調製されたワクチン中の各成分の具体的な配合比を表１に示す。

実施例３Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物の免疫原性試験
Ａ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚２０匹を選び、ランダムに４つの群に分け、各群を５匹とした。１～３群は、それぞれ本発明の実施例２で調製されたワクチン１、ワクチン２、ワクチン３免疫群であり、第４群はブランク対照群であった。免疫群の免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、対照群は等量のＰＢＳで免疫した。

抗体価の結果から分かるように、ワクチン免疫前に全ての豚の抗体が陰性であり、一回免疫後１４日目にいずれも１：１２８以上に達すことができる。ブランク対照群の豚の抗体が陰性であり、変化がなかった。具体的な結果を表２に示す。

これは、本発明により調製されたウイルス様粒子は、高レベルの特異的抗体を迅速に形成することができ、抗原の含有量がわずか１６０μｇ／ｍｌであっても、免疫後１４日目にＡ型口蹄疫に対して非常に良好な免疫保護作用を果たすことができることを示す。

実施例４Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原含有ワクチン組成物の免疫持続期間の比較試験
Ａ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚２０匹を選び、ランダムに４つの群に分け、各群を５匹とした。第５群は本発明の実施例２で調製されたワクチン２免疫群であり、第７群は市販不活化ワクチン（Ｒｅ－Ｏ／ＭＹＡ９８／ＪＳＣＺ／２０１３株＋Ｒｅ－Ａ／ＷＨ／０９株）免疫群であり、第６群、第８群は対照群であった。第５群の免疫群の免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、第６群の対照群は等量のＰＢＳで免疫し、いずれも一回免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後２１日目、２８日目、３５日目、７７日目、１０５日目、１３３日目に採血した。第７群の免疫群の免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、第８群の対照群は等量のＰＢＳで免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、第７群、第８群は免疫後２１日目に採血して２回目の免疫を行い、２回目の免疫後、それぞれ７日目、１４日目、５６日目、８４日目、１１２日に採血した。

結果から分かるように、ワクチン免疫前に全ての豚の抗体はいずれも陰性であり、１回目免疫後２１日目にワクチン２免疫群は１：１２８以上に達することができ、市販ワクチン免疫群は１：１２８に達すことができず、市販ワクチン免疫群は２回目免疫後７日目に１：１２８に達することができる。ワクチン２免疫群は１回目免疫の１３３日目に、依然として比較的高い抗体レベルを維持し、ＥＬＩＳＡ抗体が１：１８０以上に達することができるが、市販ワクチン免疫群は２回目免疫後１１２日目に、豚の一部の抗体レベルが１：１２８の免疫保護限界値に近かった。対照群の豚の抗体は陰性であり、変化がなかった。具体的な結果を表３に示す。

上記実験から分かるように、本発明により調製されたウイルス様粒子ワクチン組成物が、市販の全ウイルス不活化ワクチンに比べて、Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原に対して抗体の生成が速いだけでなく、抗体レベルが高く、一回の免疫だけで良好な免疫保護作用を果たすことができ、そして免疫持続期間が著しく長くなり、より長時間の免疫保護を維持することができる。

実施例５Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子
Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスタンパク質抗原を発現する菌体を再懸濁し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動で検出したところ、この時上澄み液中の４つのタンデム発現された目的タンパク質が発現されたことを示した。精製後のタンパク質をＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動により測定したところ、目的タンパク質がいずれも精製及び濃縮されたことを示した。

リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプタンパク質がウイルス様粒子を形成し、且つ形成されたウイルス様粒子は充実で、集合効率が高く、凝集がないことが分かった。口蹄疫ウイルス様粒子を４℃で３ヶ月間放置した後、再びリンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、ウイルス様粒子は依然として充実で、凝集現象がないことが分かった。これは、本発明により選別された配列によって調製された口蹄疫タンパク質が安定したウイルス様粒子を形成したことを示す。

実施例６Ｏ型ＳＥＡトポタイプ、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の調製
調製されたワクチン中の各組成の具体的な配合比は表４に示す。

実施例７Ｏ型ＳＥＡトポタイプ、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の免疫原性試験
Ａ型、Ｏ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚２０匹を選び、ランダムに４つの群に分け、各群を５匹とした。９～１１群は、それぞれ本発明の実施例６で調製されたワクチン４、ワクチン５、ワクチン６免疫群であり、第１２群はブランク対照群であった。免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射し、対照群は２ｍｌのＰＢＳで免疫した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後、それぞれ７日目、１４日目、２１日目、２８日目に採血した。

採集された血清に対して、Ａ型口蹄疫抗体ＥＬＩＳＡテストキットを使用して関連抗体の検出を行った。結果は、ワクチン免疫前に全ての豚の抗体が陰性であり、１回免疫後１４日目にいずれも１：１２８以上に達することができるが、ブランク対照群の豚の抗体が陰性であり、変化がなかったことを示す。具体的な結果を表５に示す。

採集された血清に対して、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプ抗体ＥＬＩＳＡテストキットを使用して関連抗体の検出を行った。結果は、ワクチン免疫前に各免疫群の全ての豚の抗体が陰性であり、１回免疫後１４日目にいずれも１：１２８以上に達することができるが、ブランク対照群の豚の抗体が陰性であり、変化がなかったことを示す。具体的な結果を表６に示す。

上記試験から分かるように、本発明により調製されたＡ型、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子ワクチン組成物は高レベルの特異性抗体を迅速に形成することができ、Ａ型口蹄疫及びＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプに対して良好な免疫保護作用を果たすことができる。

実施例８Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子
Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスタンパク質抗原を発現する菌体を再懸濁し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動で検出したところ、この時上澄み液中の３つのタンデム発現された目的タンパク質が発現されることを示した。精製後のタンパク質をＳＤＳ－ＰＡＧＥ電気泳動により測定したところ、目的タンパク質がいずれも精製及び濃縮されたことを示した。

リンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプタンパク質がウイルス様粒子を形成し、且つ形成されたウイルス様粒子は充実で、集合効率が高く、凝集がないことが分かった。口蹄疫ウイルス様粒子を４℃で３ヶ月間放置した後、再びリンタングステン酸陰性染色と電子顕微鏡で観察したところ、ウイルス様粒子は依然として充実で、凝集現象がないことが分かった。これは、本発明により選別された配列によって調製された口蹄疫タンパク質が安定したウイルス様粒子を形成したことを示す。

実施例９Ｏ型（ＳＥＡトポタイプ、ＣＡＴＨＡＹトポタイプ）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の調製
調製されたワクチン中の各組成の具体的な配合比は表７に示す。

実施例１０Ｏ型（ＳＥＡトポタイプ、ＣＡＴＨＡＹトポタイプ）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の免疫原性試験
Ａ型、Ｏ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚３０匹を選び、ランダムに６つの群に分け、各群を５匹とした。１３～１５群は、それぞれ本発明の実施例９で調製されたワクチン７、ワクチン８、ワクチン９免疫群であり、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射した。１６～１７群は、それぞれ本発明の実施例９で調製されたワクチン１０、ワクチン１１免疫群であり、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射した。第１８群はブランク対照群であり、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌのＰＢＳを注射した。ワクチン免疫前に各豚に対して採血し、免疫後、それぞれ７日目、１４日目、２１日目、２８日目に採血した。

採集された血清に対して、Ａ型口蹄疫抗体ＥＬＩＳＡテストキットを使用して関連抗体の検出を行った。結果は、ワクチン免疫前に全ての豚の抗体が陰性であり、第１３群、第１４群、第１５群が１回目免疫後１４日目にいずれも１：１２８以上に達することができるが、第１６群、第１７群及びブランク対照群の豚の抗体が陰性であり、変化がなかったことを示す。具体的な結果を表８に示す。

採集された血清に対して、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプ抗体ＥＬＩＳＡテストキットを使用して関連抗体の検出を行った。結果から分かるように、ワクチン免疫前に全ての豚の抗体はいずれも陰性であり、第１３群、第１４群、第１５群、第１６群は１回目免疫後１４日目にいずれも１：１２８以上に達することができ、二価（三組成）口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の低含有量免疫群の抗体レベルは、依然として一価Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子ワクチン組成物の高含有量免疫群の抗体レベル以上に達することができ、第１７群及びブランク対照群の豚の抗体は陰性であり、変化がなかった。具体的な結果を表９に示す。第１３群、第１４群、第１５群は、第１６群中のＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプ抗体ＥＬＩＳＡ検出結果に比べて、本発明のＯ型（ＳＥＡ型、ＣＡＴＨＡＹ型）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物において、２種類のＯ型抗原の間に相乗効果が生じ、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量を半減させても免疫効果を確保することができる。

採集された血清に対して、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプ抗体ＥＬＩＳＡテストキットを使用して関連抗体の検出を行った。結果から分かるように、ワクチン免疫前に全ての豚の抗体はいずれも陰性であり、第１３群、第１４群、第１５群、第１７群は１回目免疫後１４日目にいずれも１：１２８以上に達することができ、二価（三組成）口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の低含有量免疫群の抗体レベルは、依然として一価Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子ワクチン組成物の高含有量免疫群の抗体レベル以上に達することができ、第１６群及びブランク対照群の豚の抗体は陰性であり、変化がなかった。具体的な結果を表１０に示す。第１３群、第１４群、第１５群は、第１７群中のＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプ抗体のＥＬＩＳＡ検出に比べて、本発明のＯ型（ＳＥＡトポタイプ、ＣＡＴＨＡＹトポタイプ）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物において、２種類のＯ型抗原の間に相乗効果が生じ、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量を半減させても免疫効果を確保することができる。

上記実験から分かるように、本発明により調製された二価（三組成）口蹄疫ウイルス様粒子は高レベルの特異性抗体を迅速に形成することができ、２種類のＯ型抗原の間に相乗効果が生じ、抗原の含有量を半減させてもＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプ及びＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプに対して良好な免疫保護作用を果たすことができる。同時に、一価Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子は良好な免疫反応を果たすことができ、豚に対する完全な保護を実現することを示す。

実施例１１Ｏ型（ＳＥＡトポタイプ、ＣＡＴＨＡＹトポタイプ）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物の攻撃・保護試験
Ａ型、Ｏ型口蹄疫ウイルス抗原と抗体がいずれも陰性である体重４０ｋｇ程度の健康で感染しやすい肥育豚３４匹を選び、ランダムに８つの群に分け、第１９～２３群の各群は５匹であり、第２４～２６群の各群は３匹であった。第１９～２１群は本発明の実施例９で調製されたワクチン８免疫群であり、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射した。第２２～２３群は市販不活化ワクチン（Ｒｅ－Ｏ／ＭＹＡ９８／ＪＳＣＺ／２０１３株＋Ｒｅ－Ａ／ＷＨ／０９株）免疫群であり、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌ注射した。第２４～２６群は対照群であり、免疫経路は頚部筋肉に２ｍｌのＰＢＳを注射した。免疫後に各群の臨床症状を観察した。免疫後２８日目、各匹に１０００ＩＤ５０の強毒で筋肉注射し、第１９群、第２２群、第２４群の攻撃毒株はＣＡＴＨＡＹトポタイプ毒株Ｏ／０７１８株であり、第２０群、第２３群、第２５群の攻撃毒株はＳＥＡトポタイプＯ／ＭＹＡ９８／ＢＹ／２０１０株であり、第２１群、第２６群の攻撃毒株はＡ型Ａ／ＧＤＭＭ／２０１３株であった。１０日間観察したところ、豚の少なくとも１蹄に水疱又は潰瘍が発生したものを発病と判定した。発病具合及びＰＤ５０値を表１１、１２、１３に示す。

結果から分かるように、本発明のＯ型（ＳＥＡトポタイプ、ＣＡＴＨＡＹトポタイプ）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物は、口蹄疫Ｏ型ＳＥＡトポタイプ、Ｏ型ＣＡＴＨＡＹトポタイプ、Ａ型流行株の攻撃に対していずれも良好な免疫保護効果を有し、ＰＤ５０は１３．５９～１５．５９であり、市販不活化ワクチンは口蹄疫Ｏ型ＳＥＡトポタイプ流行株攻撃に対して完全に保護することができず、ＰＤ５０は７．１９であり、市販不活化ワクチンは口蹄疫Ｏ型ＣＡＴＨＡＹトポタイプ流行株攻撃に対して完全に保護することができず、ＰＤ５０は２．０１であった。

これは、本発明のＯ型（ＳＥＡトポタイプ、ＣＡＴＨＡＹトポタイプ）、Ａ型二価口蹄疫ウイルス様粒子ワクチン組成物は良好な免疫原性を有し、流行株の攻撃に抵抗することができ、従来の不活化ワクチンが流行株に対して効果的に保護ができないという問題を解決し、且つ生体安全性にも優れていることを示す。

上記は、本発明の好ましい実施例に過ぎず、いかなる形態においても本発明を限定するものではない。本発明が上記のように好ましい実施例により開示されているが、本発明が限定されることを意図するものではない。本分野を熟知している技術者であれば、本発明の技術的解決手段の範囲から逸脱しない範囲で、上記のように開示された技術内容を利用して変更又は修飾を等価変化とする若干の等価実施例を実施することができる。本発明の技術的解決手段から逸脱せず、本発明の技術実質によって上記の実施例に対して行われた任意の単純な修正、等価変化及び修飾は依然としてすべて本発明の技術的解決手段の範囲内に属する。

Claims

Ａ型口蹄疫ウイルス流行株ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなるＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原であって、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ２抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．１に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．２に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．３に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされる、Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原。
免疫量の請求項１に記載のＡ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原と、薬学的に許容される担体と、を含有するワクチン組成物。
前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量は、１６０～２４０μｇ／ｍｌであり、好ましくは、前記Ａ型口蹄疫ウイルス様粒子抗原の含有量は、１６０μｇ／ｍｌ、又は２００μｇ／ｍｌ、又は２４０μｇ／ｍｌである、請求項２に記載のワクチン組成物。
前記薬学的に許容される担体は、アジュバントを含み、前記アジュバントは、（１）鉱物油、アルミニウムゲルアジュバント、サポニン、アブリジン、ＤＤＡ、（２）油中水型エマルション、水中油型エマルション、水中油中水型エマルション、又は（３）アクリル酸又はメタクリル酸の重合体、無水マレイン酸とアルケニル誘導体との共重合体、及びＲＩＢＩアジュバントシステム、Ｂｌｏｃｋｃｏ－ｐｏｌｙｍｅｒ、ＳＡＦ－Ｍ、モノホスホリルリピドＡ、Ａｖｒｉｄｉｎｅ脂質－アミンアジュバント、大腸菌易熱性エンテロトキシン、コレラ毒素、ＩＭＳ１３１４、ムラミルジペプチド、ＭｏｎｔａｎｉｄｅＩＳＡ２０６、Ｇｅｌアジュバントのうちの１種又は複数種から選択され、好ましくは、サポニンはＱｕｉｌＡ、ＱＳ－２１、ＧＰＩ－０１００であり、好ましくは、前記アジュバントは、ＩＳＡ２０６アジュバントであり、
前記アジュバントの含有量は、５％～６０％Ｖ／Ｖ、好ましくは３０％～６０％Ｖ／Ｖであり、より好ましくは５０％Ｖ／Ｖである、請求項２に記載のワクチン組成物。
前記ワクチン組成物は、さらに、免疫量のＯ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原及び／又は免疫量のＯ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原を含有し、
前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原は、Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス流行株ＶＰ４、ＶＰ２、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなり、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ４抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．４に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ２抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．５に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．６に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．７に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、
前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原は、Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス流行株ＶＰ０、ＶＰ３、ＶＰ１抗原タンパク質から集合してなり、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ０抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．８に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ３抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．９に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされ、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルスＶＰ１抗原タンパク質は、ＳｅｑＩＤＮｏ．１０に示されるヌクレオチド配列又はその縮重配列によりコードされる、請求項２に記載のワクチン組成物。
前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００～２００μｇ／ｍｌであり、好ましくは、前記Ｏ型口蹄疫ＳＥＡトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００μｇ／ｍｌ、又は１５０μｇ／ｍｌ、又は２００μｇ／ｍｌであり、
前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００～２００μｇ／ｍｌであり、好ましくは、前記Ｏ型口蹄疫ＣＡＴＨＡＹトポタイプウイルス様粒子抗原の含有量は、１００μｇ／ｍｌ、又は１５０μｇ／ｍｌ、又は２００μｇ／ｍｌである、請求項５に記載のワクチン組成物。
請求項２に記載のワクチン組成物を調製する方法であって、前記方法は、
（１）前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ２抗原タンパク質の遺伝子、前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ３抗原タンパク質の遺伝子及び前記Ａ型口蹄疫ウイルスＶＰ１抗原タンパク質の遺伝子を、それぞれクローニングし、同一のタンデム発現ベクターに組み換えるステップと、
（２）前記ステップ（１）の組み換え発現ベクターを宿主に形質転換又は形質導入し、Ａ型口蹄疫ウイルス組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ２抗原タンパク質、組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ３抗原タンパク質及び組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ１抗原タンパク質を可溶性発現し、発現されたＡ型口蹄疫ウイルス組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ２抗原タンパク質、組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ３抗原タンパク質及び組み換えＳＵＭＯ－ＶＰ１抗原タンパク質はウイルス様粒子抗原に自己集合され得るステップと、
（３）前記ステップ（２）のＡ型口蹄疫ウイルスの組み換え抗原を分離・精製し、酵素切断・精製してＳＵＭＯ融合タグを除去するステップと、
（４）ウイルス様粒子抗原を自己集合させ、アジュバントを加え、前記ワクチン組成物を得るステップと、を含むワクチン組成物を調製する方法。
前記ステップ（１）のタンデム発現ベクターは、ｐＥＴ２８ａ、ｐＥＴ２８ｂ、ｐＥＴ３２ａであり、前記ステップ（２）の宿主は、Ｅ．ｃｏｌｉＢＬ２１（ＤＥ３）、ＯｒｉｇａｍｉＢ（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ、Ｒｏｓｅｔｔａ－ｇａｍｉＢ（ＤＥ３）である、請求項７に記載の方法。
前記ステップ（２）において、宿主細胞が増幅された後、ＩＰＴＧを加えて、前記タンパク質の発現を誘導する、請求項７に記載の方法。
請求項２～６のいずれか１項に記載のワクチン組成物の、Ａ型口蹄疫を予防及び／又は治療するための薬物の調製における使用。