JP2022553129A - ポリオウイルス受容体(pvr)に対する抗体およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
i.配列番号10~12に記載される配列を含む3つ一組のCDR配列と、
ii.4つ一組の重鎖フレームワーク(FR)配列、すなわち(A)配列番号18、22、および26からなる群から選択されるFR-H1、(B)配列番号19、23、および28からなる群から選択されるFR-H2、(C)配列番号20、24、27、および29からなる群から選択されるFR-H3、ならびに(D)配列番号21および25からなる群から選択されるFR-H4と
を含む鎖可変領域を含む。
i.配列番号13~15に記載される配列を含む3つ一組のCDR配列と、
ii.4つ一組の軽鎖フレームワーク配列、すなわち(A)配列番号30および34からなる群から選択されるFR-L1、(B)配列番号31および37からなる群から選択されるFR-L2、(C)配列番号32、35、および36からなる群から選択されるFR-L3、ならびに(D)配列番号33であるFR-L4と
を含む軽鎖可変領域を含む。
i.配列番号10~12に記載される配列を含む3つ一組のCDR配列と、
ii.4つ一組の重鎖(HC)フレームワーク(FR)配列、すなわち(A)配列番号18、22、および26からなる群から選択されるFR-H1、(B)配列番号19、23、および28からなる群から選択されるFR-H2、(C)配列番号20、24、27、および29からなる群から選択されるFR-H3、(D)配列番号21および25からなる群から選択されるFR-H4と
を含み、軽鎖可変領域は、
i.配列番号13~15に記載される配列を含む3つ一組のCDR配列と、
ii.4つ一組の軽鎖(LC)フレームワーク配列(FR)、すなわち(A)配列番号30および34からなる群から選択されるFR-L1、(B)配列番号31および37からなる群から選択されるFR-L2、(C)配列番号32、35、および36からなる群から選択されるFR-L3、ならびに(D)配列番号33であるFR-L4と
を含む。
i.配列番号1に記載の重鎖可変領域配列および配列番号2に記載の軽鎖可変領域配列、
ii.配列番号4に記載の重鎖可変領域配列および配列番号8に記載の軽鎖可変領域配列、
iii.配列番号5に記載の重鎖可変領域配列および配列番号2に記載の軽鎖可変領域配列、
iv.配列番号5に記載の重鎖可変領域配列および配列番号8に記載の軽鎖可変領域配列、
v.配列番号4に記載の重鎖可変領域配列および配列番号2に記載の軽鎖可変領域配列、
vi.配列番号1に記載の重鎖可変領域配列および配列番号8に記載の軽鎖可変領域配列、
vii.配列番号6に記載の重鎖可変領域配列および配列番号2に記載の軽鎖配列、ならびに
viii.配列番号6に記載の重鎖可変領域配列および配列番号8に記載の軽鎖可変領域配列
からなる群から選択される。
i.配列番号1に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、
ii.配列番号3に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、
iii.配列番号4に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、
iv.配列番号5に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、ならびに
v.配列番号6に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列
からなる群から選択される。
i.少なくとも抗原結合部分を含む、PVRに特異的な抗体またはその抗体断片で試料をインキュベートする工程と、
ii.検出可能なプローブを用いて結合したPVRを検出する工程と
を含む。
iii.(ii)の量を、既知量のPVRを含有する基準試料から得た標準曲線と比較する工程と、
iv.標準曲線から試料中のPVRの量を算出する工程と
をさらに含む。
本明細書中のある態様では、抗ヒトPVR(抗hPVR)抗体またはその抗原結合断片が記載される。ある実施形態では、抗体またはその抗原結合断片は、PVR-TIGIT界面にてヒトPVRに結合する。ある実施形態では、抗hPVR抗体またはその抗原結合断片は、TIGIT、CD96、およびCD226のうちのいずれか1つ以上と競合可能である。
ある実施形態では、本明細書に開示される抗hPVR抗体は、癌または腫瘍の処置に有用である。処置とは、処置される疾病を改善または回復させることに努める方法を指す。癌に関して、処置として、腫瘍体積の減少、腫瘍体積の成長低下、無増悪生存期間の増加、または全体的な平均余命が挙げられるが、これらに限定されるものではない。ある実施形態では、処置は、処置される癌の寛解に影響を及ぼす。ある実施形態では、処置は、以前に処置された癌または腫瘍の再発あるいは進行を予防することを意図した、予防または維持用量としての使用を包含している。すべての個体が、施される処置に対して均等にまたは全く反応するわけではないが、それでもこれらの個体は処置されると見なされると、当業者は理解する。
i.配列番号1に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、
ii.配列番号3に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、
iii.配列番号4に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、
iv.配列番号5に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列、ならびに
v.配列番号6に記載の重鎖可変領域配列および配列番号9に記載の軽鎖可変領域配列
からなる群から選択される。
ある実施形態では、本開示の抗PVR抗体は、1つ以上の薬学的に許容可能な賦形剤、担体、および希釈剤を含む医薬組成物に含まれる。担体は、製剤の他の成分と適合可能であり、その受容者に対して過度に有害ではないという意味で、薬学的に許容可能である必要がある。活性薬剤は、上述のように所望の薬理学的効果を達成するのに有効な量で、かつ所望の曝露を達成するのに適切な量で提供される。
WO2017/149538に開示されるキメラ抗PVR抗体5B9の可変領域は、軽鎖のCDR2中に脱アミド化配列(アスパラギンーグリシン)を担持する(WASSRHNG、配列番号17)。残基アスパラギンN56に点変異を導入することにより、7個のキメラ変異体を生成した。N56置換変異体の結合親和性を評価するために、野生型(WT)および置換変異体IgG4(S241P)モノクローナル抗体を、タンパク質A捕捉チップ上に固定した。ヒスチジンタグ(PVR-HIS、Sino Cat.no.10109-H08H)にコンジュゲートさせた分析物PVRを対象に結合の試験を行った。希釈範囲:50nM~3.125nMの5点2倍希釈。使用条件:計測器:Biacore T200評価ソフトウェアV2.0.1を実行するBiacore T200(シリアル番号1909913)。泳動用緩衝液:HBS-P+、300mM NaCl、1mg/ml BSA。流速:30μl/min。会合:350s、解離:800s。再生:10mMグリシンpH1.5。解析:1:1の結合。置換のKD Kを親N56変異体(VH0VK0)のKDに分割することにより、各置換の相対的KDを確立させた。親和性の有意な(25%超)改善は、N56E(Asp)およびN56D(Glu)変異体で顕著であった(図1A)。親5B9抗体を用いた競合アッセイにおいてフローサイトメトリーにより、HEK293 EBNA細胞上で発現されたヒトPVRへのキメラ変異体の結合を評価した(WT、図1B)。
ヒト(タンパク質id:Q92692)およびミドリザル(アフリカミドリザル、タンパク質id:UniProtkB-P32506)の細胞結合PVRに対するN56置換変異抗体の結合を調べた。図2Aは、ヒトPVRを発現するNCI-H1975細胞に対する、飽和濃度(10μg/ml)で添加された全変異体の相対的結合を表す。図2Bは、ミドリザルPVRを発現するVero細胞に対する、飽和濃度(10μg/ml)で添加された全変異体の相対的結合を表す。検出において、ヤギ抗ヒト647抗体(Jackson immunoresearch 109-606-088)を1:250希釈で使用した。Absの細胞結合をFACSにより解析した。各変異体のMFIを親抗体(K0)のMFIで割ることにより、倍率変化を算出した。交差反応性の顕著な(25%超)増加を、N56EおよびN56D変異体に認めた。
健康なドナー由来のNK細胞を、選択されたN5 6置換変異体、および標的乳癌細胞株(MDA-MB-231)の存在下、2:1のE:T比、37℃で2時間インキュベートした。CD107aの表面発現誘導によりNK細胞活性化を測定し、対照IgGの倍率変化を各変異体に対して算出した(Y軸)。すべてのモノクローナル抗体は、600pM(0.09ug/ml)で使用した(両側スチューデントt検定により*p<0.04、**p<0.01)。図3に示すように、N56EおよびN56T変異体では、CD107a発現の上昇により証明されるように、K0と比較してNK活性化の改善を認めた。
ヒトPBMCをCFSE(C34554ThermoFischer)で蛍光標識し、2.5ul/mlのPHA-L(Roche)の存在下にあるA549標的乳癌細胞、および4ug/mlで示された抗体変異体によりインキュベートした。96時間の培養後、免疫細胞を回収し、抗ヒトCD8により染色し、FACSにより解析した。CD8+T細胞の細胞増殖を、CFSEシグナル強度により評価した。IgGで処置した細胞のCFSEレベルを1とした。結果は、この対照に比べて増殖が増大した倍数として提示する。増殖の増加の結果、CFSEシグナルが減少したため、Y軸は、この比の逆数値を表す。実験は4通り行った。単一PBMCドナーについての結果を示す。このデータより、変異体N56EおよびN56Tは、親抗体と比較して、腫瘍細胞の存在下でのCD8+T細胞の増殖に対し顕著に強力な効果があることが認められる(図4、両側スチューデントt検定により*p<0.05、**p<0.01)。
N56E抗体変異体は、競合アッセイにおいて最良のパフォーマンスを示し、ヒト化におけるリード変異体として選択された。構造解析に基づき、5B9ヒト化変異体を作製するために使用された大規模な一組の予備的配列セグメントを識別した。これらセグメントを選択し、ヒトMHCクラスII対立遺伝子へのペプチド結合のin silico解析においてiTope(商標)技術(Perry et al 2008)、および既知の抗体配列関連のT細胞エピトープ(Bryson et al 2010)のTCET(商標)を使用して解析した。配列セグメントのうち、ヒトMHCクラスIIに対する顕著な非ヒト生殖系列バインダとして識別されたもの、またはTCED(商標)に対して顕著なヒットを記録したものは、廃棄した。この結果として一組のセグメントが減少し、上記のように、これらの組合せをさらに解析して、セグメント間の接合部は起こり得るT細胞エピトープを含有しないことを確認した。選択された配列セグメントは、顕著なT細胞エピトープを欠いた完全なV領域配列にアセンブルした。その後、5本の重鎖(VH1~VH5)および4本の軽鎖(N56E置換を含有)(Vκ1~Vκ4)の配列を選択した。
TIGIT、CD96、およびCD226がPVRに結合するのを遮断する能力についてNB1088を試験した。ヒトPVRを安定して発現する解離CHO細胞(チャイニーズハムスター卵巣)を、氷上で20分間、示された濃度でNB1088でインキュベートし、続いて、ビオチン化組換えTIGIT、CD96、またはCD226-Fcを、それぞれ氷上でさらに120分間、10ug/mlで添加した。洗浄後、表面結合NB1088は抗ヒトAlexa-488コンジュゲート二次抗体により検出し、ビオチン化タンパク質はAlexa647コンジュゲートストレプトアビジンにより検出して、フローサイトメトリーにより解析した。図8Aは、NB1088は約3.3ナノモルのEC50をもってPVRに結合することを示す。PVR結合においてTIGIT、CD96、またはCD226と競合するためのNB1088のIC50は、図8B~8Dに示すようにそれぞれ1.1、1.1、および1.9である。
NB1088がin vitroでT細胞およびNK細胞の活性を刺激する能力を判定した。抗原特異的ヒトパピローマウイルス(HPV)アッセイを使用して、30,000のHPV+ヒト頚部類表皮癌細胞株(CaSki細胞)、および30,000のHPV特異的CD8 T細胞を、対照IgGまたはNB1088とともに10ug/mlで一晩共培養させた。上清へのインターフェロンγの放出を、ヒトインターフェロンγ特異的MSDシステムを用いて検出した。図9Aに示すように、NB1088は、HPV+CaSki細胞でインキュベートしたときに、ヒトHPV特異的CD8+(細胞傷害性)T細胞からのインターフェロンγ放出を増加させた。同種系におけるCD8T細胞活性を試験するために、PBMCは、フィトヘマグルチニン(PHA)およびインターロイキン2(IL2)で事前に3日間活性化させ、PHA/IL2の不在下で一晩静置させてから、磁気による陰性単離手順を使用してCD8T細胞を単離した。10,000個のA549腫瘍細胞および100,000個の健常ドナーCD8+T細胞を、100U/mlのIL2および1ug/mlの抗CD28抗体の存在下で一晩共培養させた。図9Bに示すように、NB1088は、CD8+T細胞からのインターフェロンγ放出を、抗PD-1(ペンブロリズマブ)よりも大きく増加させ、この放出は、NB1088と抗PD-1抗体を組み合わせるとさらに増加した。
NB1088がCD226の機能に影響を及ぼす能力を判定した。CD226(DNAM-1)は、NK細胞およびT細胞により発現される細胞表面糖タンパク質受容体であり、PVRのリガンドとして機能しCD8+TおよびNK細胞による腫瘍死滅を助ける。その機能において、CD226はTIGITおよびCD96とは反対であり、これらはT細胞およびNK細胞上で発現される阻害分子である。そのため、NB1088に起因したCD226機能の増加より、NB1088はT細胞およびNK細胞の活性を増強させ、広範な抗腫瘍活性を有することが認められる。CD226の発現および機能に対するNB1088の影響を、上記のように抗原特異的および同種異系の共培養系を対象に試験した。図11Aと図11Bに示すように、CD8 T細胞およびNK細胞とPVR+標的細胞との共培養により、CD8 T細胞およびNK細胞上でのCD226表面発現に大きな低下が生じた。NB1088は、共培養系に関係なくCD8 T細胞またはNK細胞上でのCD226の細胞表面発現を回復させたが(図11Aと11B)、抗TIGITは回復しなかった。NB1088処置後のT細胞およびNK細胞上でのCD226発現の増加の機能的結果を、上記の抗原特異的および同種異系の共培養系に僅かな修正を加えたものを用いて評価した(図12Aと12B)。CD226発現の増加は、対照IgGまたは抗TIGIT処置と比較して顕著に高いレベルの、NB1088処置後のインターフェロンγ放出と相関していた(図12Aと12B)。NB1088処置を行った優れたTおよびNK細胞活性は、少なくとも部分的にCD226活性を介して媒介された。抗CD226(DX11、20ug/ml)は、同種刺激および抗原刺激を行ったCD8 T細胞(図12A)ならびにA549共培養後のNK細胞(図12B)の両方により、NB1088依存性インターフェロンγ放出を抗TIGITで観察したレベルにまで低下させた。これらのデータが実証するところでは、NB1088は、CD226の発現および/または機能を増加させることにより、TIGIT遮断よりもT細胞およびNK細胞の活性を改善させる。
NB1088がヒト化マウスモデルの腫瘍A549(肺腺癌)またはHPAF(膵臓)のいずれかを死滅させる能力を判定した。簡単に説明すると、5×106の腫瘍細胞(A549またはHPAF)を、マトリゲル中1:1の比で活性化ヒト末梢血単核細胞と混合させ、免疫不全NOD/SCIDマウス(1条件につき動物12匹)の脇腹に皮下移植した。図13Aと13Bに示すように、NB1088は、抗PD-1抗体ペンブロリズマブと同様、少なくとも腫瘍体積を減少させることができた。NB1088はさらに、A549/PBMCモデルの腫瘍体積を減少させることができたが(図13C)、A549細胞単独では減少できなかった(図13D)。A549/PBMCモデルでは、腫瘍体積の減少は、NB1088で処置した腫瘍から単離されたCD8T細胞上でのCD226発現の増加と相関していた(図13E)。ex vivoでのCD8 T細胞エフェクタ機能に対するNB1088の効果も評価した(図14Aと14B)。腫瘍から消化された単細胞懸濁液を、ブレフェルジンAおよび抗CD107aの存在下で5時間、37℃で抗CD28/抗CD3により刺激した。刺激後、細胞を染色し、標準の表面/細胞内染色法によるフローサイトメトリーを用いてCD8+T細胞によるインターフェロンγの産生を検出した。図14Aと図14Bに示すように、NB1088は、全体的なインターフェロンγ陽性(図14A)および多機能性インターフェロンγ/CD107a二重陽性(図14B)の腫瘍に由来するCD8 T細胞の頻度を増加させた。さらに、NB1088で処置した腫瘍におけるインターフェロンγ陽性CD8+T細胞の頻度の増加は、CD226陽性CD8+T細胞のみから導かれるものであり(図14Cと14D)、NB1088の抗腫瘍活性に対するCD226機能のin vivoでの重要な寄与が示唆される。
カニクイザル(1用量群につきメス2匹)を対象に、単回または4×1週間のIVボーラス注射を2、50、または200mg/kgの用量で行った後、NB1088の薬物動態特性を測定した。さらに、循環末梢CD4 T細胞上でのCD226発現の変化を評価した。図15は、時間(時)および用量の関数としてのNB1088の血漿濃度(ug/ml)を示す。カニクイザルPBMCアッセイを用いたin vitro効力アッセイに基づき、IC90および10×IC90を算出した。NB1088は典型的なPKプロファイルを示し、200mg/kgの用量での反復投与後の試験期間中、10×IC90を超える濃度に達した。図15Bは、特異的抗体を用いたフローサイトメトリーにより測定したときの、投与前に正規化された循環CD4 T細胞上でのCD226発現レベルを示す。NB1088は、50mg/kg投与群および200mg/kg反復投与群においてCD226表面発現レベルを最大1.5倍増加させ、200mg/kg反復投与群では依然として上昇し続けた。これらのデータが示すところでは、NB1088は、カニクイザルのCD4 T細胞上でのCD226発現に関与し、これを調節することができる。
異なる起源のヒト癌におけるPVRの発現レベルを評価した。市販のウサギモノクローナル抗体クローンD3G7Hおよび癌組織マイクロアレイを用いた標準の免疫組織化学手順により、PVR発現を検出した。染色をデジタル化し、強度を定量化して、適応症内および適応症間のHスコアを算出した。図16は、様々な頻度で解析された大半の適応症におけるPVRの発現レベルの上昇を示す。PVRの発現上昇は、肝臓癌、結腸癌、副腎癌、子宮癌、精巣癌、扁平上皮肺癌、胃癌、食道癌、卵巣癌、膀胱癌、前立腺癌、胆管癌、皮膚癌、HNSCC癌、乳癌、膵臓癌、非小細胞肺癌、および黒色腫に認めた。これらのデータは、ヒト癌の複数の適応症における腫瘍進行にPVRが寄与することを示唆している。
重鎖VH4および軽鎖VK2それぞれを有する変異体のうち1つに基づき、ヒト化IgG抗体を設計した。例示されたVK2配列は配列番号49に記載する。例示されたhIgG4(S241P)のVH4配列は配列番号50に、hIgG1の配列は配列番号51に記載する。さらに、CHO細胞にアミノ酸配列を発現させるように最適化された例示的なヌクレオチド配列を、次のように設計した。VK2では、ヌクレオチド配列は配列番号52または配列番号53に記載する。IgG4のVH4では、ヌクレオチド配列は配列番号54または配列番号55に記載する。
変異体H4K2-NTX-1088CおよびH3K4-NTX-1034Cに基づき、CAR-T構築物を設計した。ScFv分子のアミノ酸配列は、それぞれ配列番号56と57に記載する。親ジャーカット細胞、または抗hPVR CAR-Tを過剰発現するジャーカット細胞(40K/ウェル)を、A549またはMDA-231乳癌細胞(PVR陽性)とともに、1:1のE:Tで24時間インキュベートした。図18に示すように、両CAR-Tドライバは、示された標的の存在下で、数百pgのIL2の分泌を生じさせたが、親ジャーカット細胞ではIL2の分泌を検出できなかった。Biolegend hIL2(cat431804)を用いてIL2分泌を定量した。これらの結果が示すところでは、αPVR系のCAR-Tドライバは、PVRを発現する標的細胞の存在下でのT細胞活性化の誘導において高度に機能的である。
変異体H4K2-NTX-1088CおよびH3K4-NTX-1034Cに基づき、CAR-T構築物を設計した。scFv配列は、それぞれ配列番号56と57に記載する。
Claims (50)
- 重鎖と軽鎖とを含むヒト化抗体またはその抗原結合断片であって、重鎖可変領域は、配列番号1、配列番号3、配列番号4、配列番号5、および配列番号6からなる群から選択される配列に対して少なくとも約90%同一のアミノ酸配列を含み、軽鎖可変領域は、配列番号2、配列番号7、配列番号8、および配列番号9からなる群から選択される配列に対して少なくとも約90%同一のアミノ酸配列を含み、前記ヒト化抗体またはその抗原結合断片はヒトポリオウイルス受容体(CD155)に結合する、ヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖可変領域は、配列番号47に記載のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記軽鎖可変領域は、配列番号48に記載のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖可変領域は、配列番号47に記載のアミノ酸配列を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号48に記載のアミノ酸配列を含む、請求項1から3のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖可変領域が、
i.配列番号10~12に記載される配列を含む3つ一組のCDR配列と、
ii.4つ一組の重鎖フレームワーク(FR)配列、すなわち(A)配列番号18、22、および26からなる群から選択されるFR-H1、(B)配列番号19、23、および28からなる群から選択されるFR-H2、(C)配列番号20、24、27、および29からなる群から選択されるFR-H3、ならびに(D)配列番号21および25からなる群から選択されるFR-H4と
を含む、請求項1から4のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 前記軽鎖可変領域が、
i.配列番号13~15に記載される配列を含む3つ一組のCDR配列と、
ii.4つ一組の軽鎖フレームワーク配列、すなわち(A)配列番号30および34からなる群から選択されるFR-L1、(B)配列番号31および37からなる群から選択されるFR-L2、(C)配列番号32、35、および36からなる群から選択されるFR-L3、ならびに(D)配列番号33であるFR-L4と
を含む、請求項1から5のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。 - 前記重鎖可変領域は、配列番号1、配列番号3、配列番号4、配列番号5、および配列番号6からなる群から選択される配列に対して少なくとも95%同一のアミノ酸配列を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号2、配列番号7、配列番号8、および配列番号9からなる群から選択される配列に対して少なくとも95%同一のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖可変領域は、配列番号1、配列番号3、配列番号4、配列番号5、および配列番号6からなる群から選択される配列に対して少なくとも97%同一のアミノ酸配列を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号2、配列番号7、配列番号8、および配列番号9からなる群から選択される配列に対して少なくとも97%同一のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖可変領域は、配列番号1、配列番号3、配列番号4、配列番号5、および配列番号6からなる群から選択される配列と同一のアミノ酸配列を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号2、配列番号7、配列番号8、および配列番号9からなる群から選択される配列と同一のアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記重鎖可変領域は、配列番号1に記載のアミノ酸配列を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号2に記載のアミノ酸配列を含む、請求項1から9のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- IgG抗体である、請求項1から10のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- IgG4またはIgG1重鎖定常領域を含む、請求項11に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 前記IgG4重鎖定常領域の228位にてプロリンに置換されたセリン残基の改質を有するIgG4重鎖定常領域を含む、請求項12に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- Fab、F(ab)2、単一ドメイン抗体、または単鎖可変断片(scFv)である、請求項1から10のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 請求項1から14のいずれか一項に記載のヒト化抗体の単鎖可変断片(scFv)であって、配列番号56、配列番号57、および前記配列のいずれかに対し少なくとも90%の配列類似性を有するそれらのアナログから選択されるアミノ酸配列を含む単鎖可変断片(scFv)。
- 前記ヒト化抗体は、TIGIT、CD96、およびCD226のうち少なくとも1つへのPVRの結合を阻害する、請求項1から15のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片。
- 請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片の少なくとも1つの鎖もしくは領域をコードする核酸。
- 請求項17に記載の核酸を含む細胞株。
- チャイニーズハムスター卵巣細胞株である、請求項18に記載の細胞株。
- 請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体の重鎖可変領域配列と軽鎖可変領域配列との組合せを含むキメラ抗原受容体(CAR)。
- 前記重鎖可変領域は、配列番号1、配列番号3、配列番号4、配列番号5、および配列番号6からなる群から選択される配列に対して少なくとも90%の配列同一性を持つアミノ酸配列を含み、前記軽鎖可変領域は、配列番号2、配列番号7、配列番号8、および配列番号9からなる群から選択される配列に対して少なくとも90%の配列同一性を持つアミノ酸配列を含む、請求項20に記載のCAR。
- 配列番号56、配列番号57、および前記配列のいずれかに対して少なくとも90%の配列類似性を有するそれらのアナログから選択されるアミノ酸配列を含むScFvを含む、請求項21に記載のCAR。
- CD8ストークドメイン、CD28TMドメイン、41BBドメイン、およびCD3Zドメインからなる群から選択される少なくとも1つのドメインを含む、請求項20から22のいずれか一項に記載のCAR。
- 請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、あるいは請求項20および23のいずれか一項に記載のCARと、薬学的に許容可能な賦形剤、担体、または希釈剤とを含む医薬組成物。
- 静脈内投与のために製剤化される、請求項24に記載の医薬組成物。
- 腫瘍内投与のために製剤化される、請求項24に記載の医薬組成物。
- CD8+T細胞上でのCD226の表面発現および/またはシグナル伝達の増加に使用される、請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、請求項20または23に記載のCAR、あるいは請求項24から26のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 個体の癌の処置に使用される、請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、請求項20または23に記載のCAR、あるいは請求項24から26のいずれか一項に記載の医薬組成物。
- 前記癌は固形腫瘍を含む、請求項28に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、CAR、あるいは医薬組成物。
- 前記癌は、肺癌、結腸癌、副腎癌、子宮癌、頭頸部癌、膵臓癌、および乳癌からなる群から選択される、請求項28に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、CAR、あるいは医薬組成物。
- 個体のCD8+T細胞においてCD226の表面発現および/またはシグナル伝達を増加させる方法であって、請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、請求項20または23に記載のCAR、あるいは請求項24から26のいずれか一項に記載の医薬組成物を治療上有効量で前記個体に投与する工程を含む方法。
- 前記CD8+T細胞は、腫瘍浸潤性CD8+T細胞である、請求項31に記載の方法。
- 癌に罹患した個体の癌を処置する方法であって、請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、請求項20または23に記載のCAR、あるいは請求項24から26のいずれか一項に記載の医薬組成物を治療上有効量で前記個体に投与する工程を含む方法。
- 必要とする個体の癌を処置する方法であって、請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片、請求項20または23に記載のCAR、あるいは請求項24から26のいずれか一項に記載の医薬組成物、およびPD-1、PD-L1、CTLA-4、またはCD112Rシグナル伝達の阻害剤を治療上有効量で前記個体に投与する工程を含む方法。
- 前記癌は固形腫瘍を含む、請求項33または34のいずれか一項に記載の方法。
- 前記癌は、神経膠芽腫、膵臓癌、乳癌、膀胱癌、腎臓癌、頭頸部癌、卵巣癌、結腸癌、子宮頸癌、前立腺癌、および肺癌からなる群から選択される、請求項33に記載の方法。
- 前記癌は血液癌を含む、請求項33または34のいずれか一項に記載の方法。
- PD-1シグナル伝達の前記阻害剤は、PD-1に結合する抗体またはその断片である、請求項34から37のいずれか一項に記載の方法。
- PD-1に結合する前記抗体またはその断片は、ペンブロリズマブ、ニボルマブ、AMP-514、ティスレリズマブ、スパルタリズマブ、およびそのPD-1結合断片から選択される、請求項38に記載の方法。
- PD-1シグナル伝達の前記阻害剤は、PD-L1またはPD-L2に特異的に結合する抗体である、請求項34から37のいずれか一項に記載の方法。
- PD-L1またはPD-L2に特異的に結合する前記抗体は、デュルバルマブ、アテゾリズマブ、アベルマブ、BMS-936559、またはFAZ053、あるいはそれらのPD-L1およびPD-L2結合断片から選択される、請求項40に記載の方法。
- PD-1シグナル伝達の前記阻害剤は、PD-1、PD-L1、またはPD-L2の小分子阻害剤を含む、請求項34から37のいずれか一項に記載の方法。
- 必要とする個体の癌を処置するための組成物を調製する方法であって、請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片と、薬学的に許容可能な賦形剤、担体、または希釈剤とを混合する工程を含む方法。
- 前記癌は固形腫瘍を含む、請求項43に記載の方法。
- 前記癌は、神経膠芽腫、膵臓癌、乳癌、膀胱癌、腎臓癌、頭頸部癌、卵巣癌、結腸癌、子宮頸癌、前立腺癌、および肺癌からなる群から選択される、請求項44に記載の方法。
- 前記癌は血液癌である、請求項43に記載の方法。
- 請求項1から16のいずれか一項に記載のヒト化抗体またはその抗原結合断片を産生する方法であって、ヒト化抗体またはその抗原結合断片の発現および分泌を可能にするのに十分な条件下、細胞培養培地において、前記ヒト化抗体またはその抗原結合断片をコードする核酸を含有する細胞株をインキュベートする工程を含む方法。
- 対象の癌を診断または予後診断する方法であって、請求項1から16のいずれか一項に記載の少なくとも1つのヒト化抗体またはその断片を用いて、前記対象の生物学的試料中のPVRの発現レベルを求める工程を含む方法。
- PVRの発現が対照または基準値より高い場合、対象の癌を診断または予後診断する工程を含む、請求項48に記載の方法。
- 請求項1から16のいずれか一項に記載の少なくとも1つの抗体または抗体断片と、PVR発現を測定するための手段とを含むキット。
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