JP2021520201A - 抗cd27抗体およびその使用 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2018年4月4日出願の米国仮出願62/652,790の利益を主張し、その内容を全体として引用により本明細書に包含させる。
本明細書に関連して、電子的に提供した配列表(名称:13107-WO-PCT_ST25.txt、サイズ:23,885バイト;および作成日:2019年4月1日)は、引用により全体として本明細書に包含される。
本発明は、CD27に特異的に結合するモノクローナル抗体(mAb)ならびに対象における癌を処置する方法であって、該対象に該抗CD27抗体(Ab)を単剤療法としてまたは免疫チェックポイント阻害剤などの抗癌剤および/またはある化学療法および放射線療法と組み合わせて投与することを含む、方法に関する。
ヒト癌は、多数の遺伝的および後成的改変を担持し、免疫系により潜在的に認識可能であるネオアンチゲンを産生する(Chakravarthi et al., 2016)。Tリンパ球およびBリンパ球からなる適応免疫系は強力な抗癌能を有し、広い能力で、多様な腫瘍抗原に応答する特異性を獲得する。さらに、免疫系は、相当な柔軟性および記憶要素を含む。適応免疫系のこれら属性全てをうまく利用することは、免疫療法を、全ての癌処置モダリティ中で独特のものとする。
本発明は、表面プラズモン共鳴(SPR)またはフローサイトメトリーにより測定して、ヒトCD27(hCD27)に特異的に結合し、そのCD70リガンドとの結合を遮断しないmAbまたはその抗原結合部分であって、ここで、Abまたはそのフラグメントが(a)hCD27に約100nM以下、約90nM以下、約80nM以下、約70nM以下、約60nM以下、約50nM以下、約40nM以下、約1nM〜約100nM、約10nM〜約70nM、約10nM〜約50nM、または約40nM〜約45nMのKDで結合するおよび/または(b)抗CD3 Abおよび抗CD28 Abで刺激したナイーブヒトT細胞において約0.5nM以下、約0.4nM以下、約0.3nM以下、約0.005nM〜約0.5nM、約0.01nM〜約0.4nM、または約0.02nM〜約0.25nMのEC50でNF−κBおよびMAPKシグナル伝達を誘導するmAbまたはその抗原結合部分に関する。
からなる群から選択される、1以上の特徴を有する。
本発明は、CD27に特異的に結合するmAbおよび患者における癌を処置する方法であって、該患者に抗CD27 Abを単独でまたは免疫チェックポイント阻害剤などの抗癌剤との組み合わせで投与することを含む、方法に関する。
本開示がより容易に理解され得るように、一部用語をまず定義する。本明細書で使用されている場合、ここで特に明示する場合を除き、次の用語の各々は、以下に示す意味を有する。さらなる定義が、本明細書中で示される。
ある態様において、本発明は、hCD27に特異的に結合する単離Ab、特にmAbまたはその抗原結合部分に関する。ある実施態様において、hCD27の配列は、配列番号1に示す。
本発明のmAbまたはその抗原結合部分を含む抗CD27 AbはCD27に特異的に結合する。Abは、一般に1μM〜10pM以下の解離定数(KD)により反映される高親和性で、同族抗原に特異的に結合する。約100μMより大きいあらゆるKDは、非特異的結合と一般に考えられる。ここで使用する、抗原に「特異的に結合する」IgG Abは、約100nM以下のKDを有することを意味する、高親和性である抗原および実質的に同一抗原に結合するが、無関係抗原に高親和性で結合しないAbをいう。抗原は、ある抗原と高度の配列同一性を示すならば、例えば、ある抗原の配列と少なくとも80%、少なくとも90%、好ましくは少なくとも95%、より好ましくは少なくとも97%またはさらにより好ましくは少なくとも99%配列同一性を示すならば、該ある抗原と「実質的に同一」である。ある実施態様において、hCD27と特異的に結合するAbは、ある霊長類種、例えば、カニクイザルからのCD27抗原と交差反応性も有する。ある実施態様において、hCD27に特異的に結合するAbは、齧歯類種、例えばマウスおよび/またはラットからのCD27抗原またはCD27以外の抗原、例えば、AxlまたはPD−1抗原と交差反応しない。
水素/重水素交換マススペクトロメトリー(HDX−MS)およびタンパク質の高速光化学酸化(FPOP)を含む種々の方法を利用して、Abの結合エピトープを精査できる。
本発明はまたhCD27に特異的に結合し、配列番号8に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むVHおよび配列番号9に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むVLの各々にCDR1、CDR2およびCDR3ドメインを含む、単離Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分も提供する。
(a) 配列番号2に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR1、配列番号3に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR2および配列番号4に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR3を含むVH;および
(b) 配列番号5に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR1、配列番号6に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR2および配列番号7に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR3を含むVL
を含む、hCD27に特異的に結合する単離Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分を提供する。
本発明の範囲内にまた包含されるのは、CD27、例えば、hCD27および/またはカニクイザルCD27(cCD27)に特異的に結合し、hCD27への結合について対照Abまたはその対照抗原結合部分と交差競合する、単離Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分である。Ab対が、抗原、例えば、CD27への結合について「交差競合する」能力は、第一Abが、第二Abと抗原の実質的に同じエピトープ領域に結合し、その特定のエピトープ領域で第二Abの結合を立体的に妨害し、逆に、第二Abが第一Abと抗原の実質的に同じエピトープ領域に結合し、その特定のエピトープ領域で第一Abの結合を立体的に妨害することを示す。それ故に、試験Abが、例えば、mAb BMS−986215のhCD27への結合を競合的に阻害する能力は、該試験Abが、mAb BMS−986215とhCD27の実質的に同じエピトープ領域に結合することを示す。
ある実施態様において、mAbまたはその抗原結合部分を含む本発明の単離Abは、ここに記載する1以上の特徴を有する。
ある実施態様において、mAbまたはその抗原結合部分を含む本発明の単離Abは、ヒトT細胞と約0.1nM以下、約0.09nM以下、約0.08nM以下、約0.07nM以下、約0.06nM以下、約0.05nM以下、約0.04nM以下、約0.01nM〜約0.1nM、約0.015nM〜約0.09nMまたは約0.02nM〜約0.08nMのEC50で結合する。
本発明により提供される抗CD27 Abは、完全長Abに加えて抗原結合フラグメントも含む。Abの抗原結合機能が完全長Abのフラグメントにより実施され得ることは十分に示されている。Abの「抗原結合部分」なる用語内に包含される結合フラグメントの例は、(i)VL、VH、CLおよびCH1ドメインからなる一価フラグメントであるFabフラグメント;(ii)ヒンジ領域でジスルフィド架橋により結合された2つのFabフラグメントからなるビバレントフラグメントであるF(ab’)2フラグメント;(iii)VHおよびCH1ドメインからなるFdフラグメント;(iv)Abの単一アームのVLおよびVHドメインからなるFvフラグメント;および(v)Abの単一モノマー可変ドメインからなる単一ドメインAb(sdAb)またはナノボディを含む。慣用のAb、ラクダ、アルパカおよびラマなどのラクダ類およびサメおよびエイなどの軟骨魚類は、3つのCDRを含む重鎖ホモ二量体からなる重鎖Ab(hcAb)のサブセットを含み、軽鎖を欠く。最初のsdAbは、もともとラクダ類(VHHフラグメントから称される)または軟骨魚類(VNARフラグメント)で見られるhcAbから操作(engineering)されたが、慣用のAbからの二量体可変ドメインを分けることによっても産生され得る。重鎖可変ドメイン由来sdAbに加えて、軽鎖由来のナノボディも特定抗原に選択的に結合することが示されている。
他の態様において、本発明は、細胞毒素または放射性同位体などの治療剤に連結した、ここに開示する単離抗CD27 Abの何れかまたはその抗原結合部分に関する。このようなコンジュゲートを、ここでは「イムノコンジュゲート」と称する。細胞毒素を、当分野で利用可能なリンカーテクノロジーを使用して、本発明のAbとコンジュゲートさせ得る。放射性イムノコンジュゲートの製造法も当分野で確立されている。
他の態様において、本発明は、抗CD27 mAbまたはその抗原結合部分と異なる結合特異性を有する結合ドメインに結合した、ここに開示する単離抗CD27 Abの何れかまたはその抗原結合部分を含む二特異的分子に関する。結合ドメインは、産生された二特異的分子が少なくとも2つの異なる結合部位または標的分子に結合するように、機能的分子、例えば、他のAb、Abの抗原結合部分または受容体のリガンドであり得る。
本発明の他の態様は、本発明の単離抗CD27 Abをコードする核酸に関する。本発明は、ここに記載するCD27 Abまたはその抗原結合部分の何れかをコードする単離核酸を提供する。「単離」核酸は、天然に存在する核酸と著しく異なる、すなわち、特有の化学的同一性、性質および有用性を有する、核酸組成物をいう。例えば、単離DNAは、天然DNAと異なり、天然DNAの独立した(free-standing)部分であり、天然にみられる大型の構造複合体、染色体の必須部分ではない。さらに、単離DNAは、天然DNAと異なり、とりわけ、遺伝子発現を測定し、疾患診断または治療有効性予測のための、バイオマーカー遺伝子または変異を測定および検出するための、PCRプライマーまたはハイブリダイゼーションプローブとして使用され得る。単離核酸はまた、当分野で周知の標準技術を使用して他の細胞要素または他の混入物、例えば、他の細胞核酸またはタンパク質を実質的に含まないように精製することもできる。
ここに開示する癌処置法、組成物またはキットでの使用に適する抗PD−1 Abは、高特異性および親和性でPD−1に結合し、PD−L1および/またはPD−L2のPD−1への結合を遮断し、PD−1シグナル伝達経路の免疫抑制性効果を阻害する、単離Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分を含む。同様に、これらの方法での使用に適する抗PD−L1は、高特異性および親和性でPD−L1に結合し、PD−L1のPD−1およびCD80(B7−1)への結合を遮断し、PD−1シグナル伝達経路の免疫抑制性効果を阻害する単離Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分を含む。ここに開示する治療方法の何れにおいても、抗PD−1または抗PD−L1 Abは、それぞれPD−1受容体またはPD−L1リガンドに結合し、受容体−リガンド結合についてAb全体に類似する機能的性質を示し、T細胞活性阻害を反転させ、それにより免疫応答を上方制御する、抗原結合部分またはフラグメントを含む。
PD−1と高親和性で特異的に結合するmAbは、米国特許8,008,449に開示されている。他の抗PD−1 mAbは、例えば、米国特許7,488,802、8,168,757、8,354,509および9,205,148に開示されている。米国特許8,008,449に開示の抗PD−1 mAbは、次の特徴のいくつかまたは全てを有することが示されている。(a)SPR(BIACORE(登録商標))バイオセンサー系により決定して、約50nM以下のKDでヒトPD−1に結合する;(b)ヒトCD28、CTLA−4またはICOSに実質的に結合しない;(c)混合リンパ球反応(MLR)アッセイでT細胞増殖、インターフェロン−γ産生およびIL−2分泌を増加させる;(d)ヒトPD−1およびカニクイザルPD−1に結合する;(e)PD−L1およびPD−L2のPD−1への結合を阻害する;(f)CD4+CD25− T細胞の増殖およびインターフェロン−γ産生に対するTreg細胞による阻害から解放する;(g)抗原特異的記憶応答を刺激する;(h)Ab応答を刺激する;および(i)インビボで腫瘍細胞増殖を阻害する。本発明の処置方法、組成物またはキットに有用な抗PD−1 Abは、ヒトPD−1と高親和性で特異的に結合し、前記特徴の少なくとも5つ、好ましくは全てを示すmAbを含む。例えば、ここに開示する治療法での使用に適する抗PD−1 Abは、(a)SPR(BIACORE(登録商標))により決定して、約10nM〜0.1nMのKDでヒトPD−1に結合する;(b)MLRアッセイでT細胞増殖、インターフェロン−γ産生およびIL−2分泌を増加させる;(c)PD−L1およびPD−L2のPD−1への結合を阻害する;(d)CD4+CD25− T細胞の増殖およびインターフェロン−γ産生に対するTregによる阻害を反転させる;(e)抗原特異的記憶応答を刺激する;および(f)インビボで腫瘍細胞増殖を阻害する。
抗PD−1および抗PD−L1が同じシグナル伝達経路を標的とし、臨床治験で種々の癌に同等レベルの有効性を示すことが示されているため(例えば、Brahmer et al., 2012;WO2013/173223参照)、抗PD−L1 Abは、ここに開示する治療方法における組み合わせで、抗PD−1 Abと置き換え得る。
単剤療法としての抗CD27 Abでの癌処置
実施例8に記載のとおり、抗mCD27 mAb、8H5は、CT26 結腸癌および線維肉腫腫瘍モデルで腫瘍増殖を阻害した(図14および表7参照)。従って、本発明は、癌を有する対象を処置する方法であって、対象が処置されるように、対象に治療有効量のここに開示する抗CD27 Ab、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかまたは該抗CD27 Ab、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかを含む医薬組成物を投与することを含む、方法を提供する。
実施例8に記載のとおり、抗mCD27 mAb、8H5は、CT26結腸癌、SA1N線維肉腫およびEG7リンパ腫マウスモデルを含む、種々の癌タイプにおける、抗mPD−1 mAb活性を増強する(図14および表7参照)。それ故に、抗CD27 Abは、抗PD−1 Abなどのチェックポイント阻害剤と合わせたとき、腫瘍増殖阻害にはるかに有効である。従って、本発明は、癌を有する対象を処置する方法であって、対象が処置されるように、対象に治療有効量の:(a)ここに開示する抗CD27 Ab、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかまたは該抗CD27 Ab、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかを含む医薬組成物;および(b)癌処置のためのさらなる治療剤を投与することを含む、方法を提供する。
癌細胞攻撃および破壊のために事実上無限の柔軟性を有する免疫系の利用に基づく腫瘍免疫療法は、極めて広範な癌の処置に適用可能である(例えば、Yao et al., 2013; Callahan et al., 2016; Pianko et al., 2017; Farkona et al., 2016; Kamta et al., 2017参照)。
上記のとおり、本発明は、癌を有する対象を処置する方法において使用するための、単離抗CD27 Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分を提供する。本発明は、さらに癌を有する対象を処置する方法において組み合わせて使用するための、単離抗CD27 Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分および単離抗PD−1/抗PD−L1 Ab、好ましくはmAbまたはその抗原結合部分などのチェックポイント阻害剤を提供する。抗CD27 Abを、単剤療法としてまたは抗PD−1/抗PD−L1 Abなどのチェックポイント阻害剤と組み合わせで、ここに開示する全範囲の癌の処置に使用し得る。
ここに開示する治療方法の何れかに使用するAbは、組成物、例えば、Abおよび薬学的に許容される担体を含む医薬組成物に含まれ得る。ここで使用する「薬学的に許容される担体」は、生理学的に適合性である、全ての溶媒、分散媒体、コーティング、抗細菌および抗真菌剤、等張および吸収遅延剤などを含む。好ましくは、Abを含む組成物の担体は、静脈内(IV)、筋肉内、皮下(SC)、非経腸、脊髄または上皮投与(例えば、注射または点滴による)に適する。
また本発明の範囲内にあるのは、治療用途のための抗CD27 Abを含むキットである。キットは、一般にキットの内容物の意図する使用および使用の指示を含むラベルを含む。用語ラベルは、キット上にまたはキットと共に提供されるまたは他の方法でキットに付随する、あらゆる文書または記録媒体を含む。従って、本発明は、癌を有する対象を処置するためのキットであって、(a)約0.1〜約20mg/kg体重の投与量の範囲のここに開示する抗CD27 Abまたはその抗原結合部分、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかまたは該抗CD27 Abまたはその抗原結合部分、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかを含む医薬組成物の1回以上;および(b)ここに開示する治療方法の何れかにおける該mAbの使用指示を含む、キットを提供する。本発明は、さらに癌を有する対象を処置するためのキットであって、(a)約0.1〜約20mg/kg体重の投与量の範囲のここに開示する抗CD27 Abまたはその抗原結合部分、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかまたは該抗CD27 Abまたはその抗原結合部分、イムノコンジュゲートまたは二特異的分子の何れかを含む医薬組成物の1以上;(b)約50〜約2000mgの投与量の範囲のPD−1またはPD−L1に特異的に結合するAbまたはその抗原結合部分の何れかの1回以上;および(c)ここに開示する組み合わせ治療方法の何れかにおける抗CD27 mAbおよびチェックポイント阻害剤、例えば、抗PD−1/抗PD−L1 mAbの使用指示を含む、キットを提供する。
CD27に対するmAb産生
ヒト抗CD27 mAbを、ヒトAb遺伝子を発現するトランスジェニックマウスをヒトCD27(hCD27)抗原で免疫化することにより産生し、マウスでCD27に特異的なヒトIgのレパートリーを形成させた。ラット抗マウスCD27 mAbを、ラットをマウスCD27(mCD27)抗原で免疫化して、産生した。
hCD27に対するHuMAbを、ヒトIgトランスジェニックマウス(KMマウス、系統番号325432)を、hFcおよびヒスチジンタグタンパク質含有組み換えhCD27(rhCD27−hFc−his)ならびにhCD27で安定的にトランスフェクトしたCHO細胞で交互に免疫化して産生した。
マウス脾細胞を、免疫化後陽性抗CD27 IgG力価を示した上記免疫化マウスから単離した。ハイブリドーマを、脾細胞とマウス骨髄腫SP2/0融合パートナーの融合により産生した。
mCD27に対するサロゲートmAbを、ラットをFcタグタンパク質を含む組み換えマウスCD27(rmCD27−Fc)で免疫化することにより産生した。
ヒト抗ヒトCD27 mAbのスクリーニングおよび選択
ヒトCD27に選択的に結合するmAbのスクリーニング
hCD27に結合するHuMAbを産生するために、ヒトIgトランスジェニックマウスを、実施例1に記載のとおりhCD27抗原で免疫化した。
ハイブリドーマ上清を、酵素結合免疫吸着アッセイ(ELISA)でまずhCD27への結合についてスクリーニングした。次いで、抗原特異性をhCD27+ T細胞への結合により確認した。続いて、Abをフローサイトメトリーおよび表面プラズモン共鳴(SPR)でCD27とCD70の相互作用を遮断する能力について試験した。
抗CD27 Abのアゴニスト活性を、インビトロでCHO−svCD3−CD32aアッセイを使用して決定した。このアッセイにおいて、抗CD27アゴニストAbは、CD32aへの結合により架橋し、ヒトCD4+ T細胞のsvCD3介在活性化を増強させた。
リードmAb、非リガンドブロッカークローン16D9を、h−およびcCD27へのその優れた結合親和性および活性化T細胞のその優れたアゴニズムにより選択した。リードmAbは、ヒトCD3+ T細胞と共培養したIL−2−活性化ヒトNK細胞を使用して、比較的中程度のレベルのADCC活性を有することが決定された。
クローン16D9を、その後、軽鎖CDRにおけるVH−A28TおよびVK−I20T−I22T−D43Aフレームワーク復帰とS93N変異に付した。修飾クローンは、ヒトIgG1として操作され、BMS−986215と名付けられた。BMS−986215は、CD27アゴニズムに必要なFc架橋をさせるために、hIgG1として操作された。
HuMAb BMS−986215のVH、VL、CH、CL、重鎖および軽鎖のアミノ酸配列を表3に示す。
BMS−986215の結合動態、結合親和性、交差反応性、組織特異性および安定性による特徴づけ
BMS−986215はヒトおよびカニクイザルCD27に特異的に結合する
表面プラズモン共鳴(SPR)分析は、BMS−986215のhCD27への特異的結合を確認した。BMS−986215のFabフラグメントおよびhCD27−マウスFcまたはhCD27−Hisタグタンパク質を使用して測定した、AbのhCD27への見かけの親和性(KD)は、SPRで約40nMと決定された。測定値は37℃で41〜44nMおよび25℃で13〜16nMであった。25℃から37℃での親和性の3倍喪失は、結合速度が不変のままであるのに対し、解離速度増加によるものであった。動態分析は、1:1フィット結合モデルを使用した。KDは、スキャッチャード分析で0.045nMと決定された。
BMS−986215のヒトT細胞への結合のEC50値は、フローサイトメトリーにより0.044nMと決定された(範囲0.022〜0.076nM、0.044±0.011nM、n=5)。BMS−986215のカニクイザルT細胞への結合のEC50値はフローサイトメトリーで0.131nMと決定され(範囲0.03569〜0.2657、0.131±0.069nM、n=3)、BMS−986215がcCD27と交差反応することが示された。
BMS−986215によるCD27へのCD70結合阻害またはその逆は、SPRまたはフローサイトメトリーにより検出されず、リガンド非遮断AbであるこのmAbと一致した。図2Bおよび2D参照。例えば、フローサイトメトリー分析を、10μg/ml 可溶性ヒトCD70、CD27のリガンドで前処理し、続いてBMS−986215、1F5およびヒトIgG1(対照)Abで処理したヒトT細胞を使用して実施した。Abの結合の存在または非存在を、標識抗ヒトIgG Abを使用して検出した。BMS−986215の結合が検出され、CD27へのCD70結合がBMS−986215の結合を遮断しないことが示された。本アッセイを模式的に示す図2Aおよび結果のグラフを示す図2B参照。リガンド遮断1F5Abの結合は検出されなかった。同上。他のフローサイトメトリー分析を実施し、そこで、ヒトT細胞を10μg/ml 可溶性ヒトCD70存在下BMS−986215、1F5およびヒトIgG1(対照)Abに曝した。CD70を標識抗CD70 Abにより検出した。CD70はBMS−986215の濃度を上げても検出可能なままであり、CD70結合がBMS−986215により遮断されなかったことを示す。本アッセイを模式的に示す図2Cおよび結果のグラフを示す図2D参照。CD70の結合は、リガンド遮断Ab 1F5の濃度が増加するにつれ、減少した。Id。
予備的組織交差反応性評価において、フルオレセインイソチオシアネート(FITC)コンジュゲートBMS−986215(研究グレード)を、22の正常ヒト組織(各1または2ドナー)の凍結切片に適用した。予想通り、特異的染色が胸腺、扁桃および脾臓の単核細胞(MNC)サブセット、リンパ系富組織(結腸、小腸および胃)および稀に他の組織(甲状腺、肺、皮膚、子宮、前立腺、肝臓、腎臓、膵臓、副腎、下垂体、胎盤および精巣)で観察された(データは示していない)。一般に、陽性細胞は背景炎症性病変と相関する。扁桃、胸腺および小腸に最大数の陽性染色細胞があった。陽性染色リンパ球は、胸腺髄質および扁桃におけるT細胞富領域(毛包間領域)および脾臓(毛包周囲様/辺縁帯およびPALS)で高濃度であった。小腸で、陽性細胞は主に基底粘膜固有層および限局性リンパ系集合体/濾胞に分布した。大脳、小脳、心臓および末梢神経は陰性であった。
BMS−986215エピトープマッピング
水素/重水素交換マススペクトロメトリー(HDX−MS)およびタンパク質の高速光化学酸化(FPOP)方法を、BMS−986215が結合するCD27の領域のプローブに利用した。CD27/BMS−986215のHDX−MS実験は62%配列包括度を提供し、CD27のN末端およびC末端領域を含んだ。FPOP測定は、CD27の81%配列包括度をもたらし、CD27の中間領域を含んだ。CD27の総配列包括度は、複合HDX−MSおよびFPOPデータセットで98%であった。図3(A)参照。図3(A)に示す配列は、配列番号1のアミノ酸1〜20のシグナルペプチド配列がない成熟CD27タンパク質である。図3(A)のアミノ酸1〜172は、配列番号1のアミノ酸21〜192に対応する。
エピトープマッピング実験前に、非重水素化実験を実施して、組み換え完全長hCD27−Hisタグ(10μM)およびCD27とBMS−986215のタンパク質複合体(1:1モル比)の共通ペプチドのリストを作成した。HDX−MS実験で、5μLの各サンプル(CD27またはCD27とBMS−986215)を20μLのD2O緩衝液(10mM リン酸緩衝液、D2O、pD7.0)で希釈して、標識反応を開始させた。20秒、1分、10分および240分の種々の時間、反応させた。各標識反応時間の最後に、クエンチング緩衝液(100mM リン酸緩衝液と4M GdnClおよび0.4M TCEP、pH2.5、1:1、v/v)を加えて反応停止させた。1μLのペプシン/プロテアーゼXIII(1mg/mLで1:1、v/v)を加え、タンパク質を氷上で3分間消化させた。消化溶液を、分析のためにWaters HDX-MS系(Waters Corporation, Milford, MA)に注入した。共通消化性ペプチドの重水素取り込みレベルを、BMS−986215非存在下または存在下、モニターした。
CD27におけるBMS−986215のHDX−MSデータ分析は、BMS−986215がCD27のN末端のTPAPKSCPERHYWAQGKLCCQ(配列番号15、成熟タンパク質のアミノ酸1〜21または配列番号1のアミノ酸21〜41に対応する)領域を含むエピトープに結合することを示す。
FPOP実験を、CD27およびCD27/BMS−986215のFab複合体(1:1モル比、7.5μM最終濃度)で実施した。KrFエキシマレーザーを使用して、H2O2光分解によりヒドロキシル基を作製し、励起波長を248nmに設定した。標識直前、各5μLのヒスチジンおよびH2O2を一定量のタンパク質に加えた。タンパク質溶液の最終体積は50μLであり、ヒスチジンおよびH2O2の最終濃度はそれぞれ500μMおよび15mMであった。レーザーエネルギーを28mJ/パルス(7.4Hz)に調節した。FPOPおよび無レーザー対照実験両者をデュプリケートで実施した。各繰り返しを、11μLのクエンチング溶液(800nMのカタラーゼ四量体および200mMのメチオニン)を含むマイクロ遠心チューブに集めた。サンプルを変性させ、還元し、アルキル化し、トリプシン消化させた。データ取得を、Thermo Q Exactive Plusマススペクトロメーター(Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA)と、Waters Acquity UPLC系(Waters Corporation)で実施した。ByonicTMサーチエンジン(Proten Metrics, San Carlos, CA)を使用して、シーケンシングカバレッジを得て、酸化部位を同定した。トリプシン性ペプチドの相対的酸化レベルを、各繰り返しで手動計算した。遊離および結合状態で相対的酸化に統計的有意差があるペプチドのみ(スチューデントのT検定に基づく、p値<0.05)を、さらなる分析について考慮した。
FPOP実験において、4つのCD27ペプチドが酸化レベルで有意な差を示した:HYWAQGK(配列番号16、成熟タンパク質のアミノ酸11〜17または配列番号1のアミノ酸31〜37に対応する)、LCCQMCEPGTFLVK(配列番号17、成熟タンパク質のアミノ酸18〜31または配列番号1のアミノ酸38〜51に対応する)、DCDQHR(配列番号18、成熟タンパク質のアミノ酸32〜37または配列番号1のアミノ酸52〜57に対応する)およびDCDQHR(配列番号19、成熟タンパク質のアミノ酸88〜93または配列番号1のアミノ酸108〜113に対応する)。Fabへの結合によるFPOP保護パーセンテージを(CD27における相対的%FPOP差−Fabにおける相対的%FPOP差)/(CD27における相対的%FPOP差)×100として計算した。図3(C)は、これら4つのペプチドのFPOP保護パーセンテージを示す。DCDQHRペプチドは最高FPOP保護パーセンテージ(75%)を有することが示され、BMS−986215Fabとの相互作用でCD27の結合エピトープを示す。
上記HDX−MSおよびFPOP実験に基づき、BMS−986215が結合するCD27エピトープは、配列番号1のアミノ酸21〜41および52〜57に対応する、2つの不連続結合領域、TPAPKSCPERHYWAQGKLCCQ(配列番号15)およびDCDQHR(配列番号18)を含むと考えられる。
BMS−986215によるCD27アゴニズムは、T細胞活性化を増加させる
抗CD27 mAbアゴニストは、活性のためにFcγR相互作用(すなわち、架橋)を必要とする。リガンド遮断mAb(例えば1F5)存在下、FcγR+細胞なしでは、T細胞のCD27共刺激はない。図4(A)参照。しかしながら、BMS−986215mAbは非リガンド遮断mAbであり、生物学的アッセイを、その活性決定のために実施した。1F5などのリガンド遮断mAbと異なり、データは、BMS−986215は、CD70存在下、FcγR結合なしでT細胞を共刺激可能であったことを示す。図4(B)参照。
初代T細胞シグナル伝達アッセイを、抗CD3 Abおよび抗CD28 Abで刺激したナイーブで活性化前ヒトT細胞におけるNF−κBおよびMAPKシグナル伝達誘導に対するBMS−986215の効果を観察するために実施した。簡潔には、ヒトCD4+ T細胞を抗CD3および抗CD28 Abで24時間刺激した。細胞を、10,000細胞/ウェルで384ウェルプレートに播種し、Ab添加前2時間飢餓状態とした。次いで、細胞を、用量/タイムコースでクロスリンカーと組み合わせたBMS−986215、1F5またはhIgG1(対照)Abで処理し、NF−κBおよびMAPKシグナル伝達を分析した。
BMS−986215は、0.02nM〜0.23nMのEC50でNF−κBおよびMAPKシグナル伝達を誘導することが観察された。例えば、図5(A)〜(C)は、Ab処理に由来するNF−κBシグナル強度を示し、1F5と比較して、BMS−986215によりNF−κBが多く誘導された。
CD4+ T細胞およびCHO−svCD3−CD32a細胞の共培養物を使用して、T細胞増殖およびIFN−γ分泌に対するBMS−986215の効果をアッセイした。簡潔には、健常ドナー血液サンプルからのヒトCD4+ T細胞を、CHO−svCD3−CD32a細胞(抗CD3 OKT3 mAbおよびhCD32a−131His(FcγRIIa)由来の一本鎖抗CD3 scFvAbを発現するCHO細胞)と共培養した。共培養物をBMS−986215、1F5またはhIgG1(対照)Abで処理し、T細胞増殖およびIFN−γ分泌を分析した。
BMS−986215はT細胞を共刺激することが観察され、0.001nM〜0.028nMのEC50で増殖およびIFN−γ分泌増強をもたらした。BMS−986215の平均EC50値は、増殖およびIFN−γ分泌それぞれ0.009nMおよび0.0078nMであった。例えば、図6(A)〜(B)は、一般に1F5と比較して、BMS−986215による増殖およびIFN−γ分泌のはるかに大きな誘導を示す。図6(A)でT細胞増殖と関連するEC50値は、BMS−986215および1F5でそれぞれ0.004503nMおよび0.03566nMであった。図6(B)でIFN−γ分泌と関連するEC50値は、BMS−986215および1F5でそれぞれ0.006235nMおよび0.04017nMであった。
CD4+CD45RO+記憶T細胞またはCD4+CD45RA+ナイーブT細胞とCHO−svCD3−CD32a細胞の共培養物を使用したアッセイも実施した。共培養物をBMS−986215、1F5またはhIgG1(対照)Abで処理し、T細胞増殖およびIFN−γ分泌を分析した。結果を図7に示し、BMS−986215は、1F5よりはるかに高いレベルのT細胞増殖およびIFN−γ分泌をもたらした。例えば、BMS−986215は、CD4+CD45RO+記憶T細胞の増殖およびIFN−γ産生を、それぞれ0.005nMおよび0.015nMのEC50値でもたらし、1F5の対比するEC50値は、それぞれ0.073nMおよび0.089nMであった。
2ドナーからのCD4+CD25− T細胞を別々にB細胞と共培養し、ブドウ球菌エンテロトキシンB(SEB)で刺激し、BMS−986215または抗キーホールリンペットヘモシアニンAb、g1F糖型(KLH−g1f)で処理(各Ab10μg/mlで使用)したさらなるアッセイを実施した。結果を図8に示し、BMS−986215は、100ng/mlのSEBを使用したときより2.5倍大きな平均IFN−γ分泌の誘導をもたらした。
SEBで刺激したT細胞を、クロスリンカー存在下または非存在下、可溶性BMS−986215の存在下にインターロイキン−2(IL−2)産生をアッセイした。3ドナー(ドナーA〜C)のバフィーコートから単離した新鮮PBMCを、100,000細胞/ウェルで組織培養プレートに播種した。SEBを80ng/mLで加えた。細胞を可溶性抗ヒトIgG1(hIgG1)、抗ヒトOX40(OX40.21)、対照抗hCD27(1F5−IgG1)またはBMS−986215Abで処理した。Abを、クロスリンカーとして2.5μg/mL 抗ヒトFcγ Ab(Jackson ImmunoResearch, West Grove, PA)の存在下または非存在下、3倍でタイトレーションした。SEBまたはAb処理をしないPBMC(細胞のみ)およびSEBで処理するがAbではないないPBMC(SEBのみ)を対照として使用した。
結果を図9に示す。ドナーAおよびBからのPMBCを、可溶性Ab架橋無し(図9(A)および(C))または有り(図9(B)および(D))で処理した。ドナーCからのPMBC(図9(E))は、可溶性Abの架橋でのみ処理した。結果は、IL−2分泌が、可溶性架橋BMS−986215存在下、SEB刺激ヒトPBMCから、hIgG1と比較して、約50%を超えて増加されることを示す。
PD−1遮断と組み合わせたときのIL−2産生に対するBMS−986215の効果を決定するためのさらなるアッセイを実施した。簡潔には、2ドナー(ドナーAおよびB)のバフィーコートから単離した新鮮PBMCを、100,000細胞/ウェルで組織培養プレートに播種した。SEBを80ng/mLで加えた。細胞を5μg/mlの可溶性抗ヒトIgG1(hIgG1)、1F5またはBMS−986215Ab単独で処理するかまたはPD−1遮断のための0.1μg/mlのニボルマブまたはCTLA−4遮断のためのイピリムマブとタンデムでタイトレーションした。SEBまたはAb処理をしないPBMC(細胞のみ)を対照として使用した。
結果を図10に示す。BMS−986215によるIL−2放出は、PD−1遮断と併用したとき、PD−1遮断をしない場合と比較して、2倍増加した。
制御性T細胞またはTregとして知られるフォークヘッドボックスP3(Foxp3)+ CD4+ T細胞は免疫応答を抑制し、腫瘍が免疫監視を回避することを可能とする。一般に、TregはCD45RAまたはCD45ROで発現される。TregはレスポンダーT細胞(Tresp)を抑制し得る。
Treg介在抑制に対するBMS−986215の効果を調べた。
最初のアッセイにおいて、CD45RA+ Tregを、50,000細胞/ウェルで組織培養プレートに播種し、50,000標識Tresp/ウェルを加えて1:2希釈した。次に、ウェルあたり樹状細胞(MDDC)由来の5,000の単球を0.3μg/mL 可溶性ムロモナブ−CD3(OKT3)、抗ヒトCD3 mAbと共に加えた。次いで、可溶性BMS−986215または対照IgG1 Abを10μg/mLで加えた。細胞を96時間、37℃でインキュベートし、Treg:Tresp比およびCD4+ Trespのパーセンテージ増殖を、蛍光活性化セルソーティング(FACS)により決定した。結果を図11(A)に示す。MDDCおよび可溶性OKT3存在下の共培養CD4+ TrespのTreg介在抑制は、対照IgG1 Abと比較して、2つの実験でBMS−986215により70%を超えて大きく反転した。
第二のアッセイにおいて、96ウェルU底プレートを3μg/mL OKT3および10μg/mLのBMS−986215、1F5または抗KLH Abで被覆した。次に、ウェルあたり20,000 Trespを加えた。さらなるIL−2は加えなかった。次いで、1μg/mLの可溶性抗CD28 Abを加えた。細胞を7日間培養し、TrespおよびFoxp3+ Treg細胞数を決定した。結果を図11(B)および(C)に示す。BMS−986215は、Foxp3+ Tregより大きなTresp拡大をもたらした。
BMS−986215、1F5またはIgG1(対照)Abを、10:1比のエフェクター対標的(n=8)でのエフェクター細胞としての初代ナチュラルキラー(NK)細胞および標的細胞としての活性化T細胞またはRamos細胞の共培養に加えた。結果をT細胞にについて図12示す。BMS−986215は、ADCC活性の中程度の誘導を示す、T細胞またはRamos細胞の20〜44%溶解を誘導した。
Fcエフェクター機能分析は、低レベルのADCP、CDCおよびC1q結合活性を示した(データは示していない)。
抗PD−1 mAbと併用したまたは併用しないBMS−986215は、8健常ヒトドナーからの新鮮全血サンプルの自発的サイトカイン分泌に介在しなかった(データは示していない)。
CD4+ T細胞とCHO−OKT3細胞の共培養物を使用して、FcγR非存在下、T細胞増殖およびIFN−γ分泌に対するBMS−986215の効果をアッセイした。簡潔には、ヒトCD4+ T細胞をCHO−OKT3細胞(抗CD3 OKT3 mAb由来一本鎖抗CD3 scFvAbを発現するCHO細胞)と共培養した。共培養物をBMS−986215、1F5またはhIgG1(対照)Abで、10μg/ml 可溶性ヒトCD70(shCD70)と併用してまたは併用せずに処理して、T細胞増殖およびIFN−γ分泌を分析した。図13(A)においてアッセイを模式的に示す。
結果を図13に記載し、これは、1F5ではなく、BMS−986215が、FcγR非存在下かつshCD70と併用せずに、T細胞増殖(B)およびIFN−γ分泌(C)の増強により、弱アゴニスト活性を示したことを示す。1F5ではなく、BMS−986215が、可溶性CD70タンパク質によるT細胞増殖(D)およびIFN−γ分泌(E)の誘導により測定して、ヒトT細胞活性化を増強した。
前臨床薬物動態、受容体占拠予測および毒性検討
カニクイザルサルにおけるBMS−986215の薬物動態および毒性
表6は、カニクイザルサルに0.2mg/kgおよび4mg/kgを単回静脈内投与後のBMS−986215の薬物動態(PK)パラメータを要約する。0.2mg/kg用量では約6時間後および4mg/kg用量では約24時間後にCmaxに達した。試験した用量が20倍増加すると、全身クリアランス(CLT)は、2.2mL/時間/kgから0.39mL/時間/kgに減少した。その結果、半減期(t1/2)は2.2日から14日に伸びた。さらに、抗薬物Ab(ADA)が、0.2mg/kgの血清サンプルで検出された。これは、標的介在薬物沈着(TMDD)を示唆し、ADAはサルにおいてBMS−986215で観察された非線形PKをもたらした可能性がある。カニクイザルT細胞への結合についてのBMS−986215のEC50は、約5ng/mLである。
各用量レベルで、BMS−986215を、3匹のサルに1.6mL/kgで静脈内投与した;薬力学比較のため、2匹のサルに媒体を投与した。評価基準は臨床観察、血液試験、PK、CD27受容体占拠(RO)、循環CD27レベル、リンパ球サブセット分析、サイトカインレベルおよびADA決定を含んだ。血液サンプルを、投与前および投与後42日まで種々の間隔で得た。全体として、有害臨床的観察がなく、血液試験パラメータの変化がないことを含み、有害所見はなかった。循環CD27レベルに時間および用量依存性的増加があった。CD4+およびCD8+ T細胞に対する90%を超える高いBMS−986215CD27 ROが、0.2mg/kgで約7日および4mg/kgで実験期間中(42日)検出された。CD4+、Treg(Foxp3+/CD4+)、CD8+ T、CD20+ BおよびNK細胞を含む循環リンパ球サブセットまたは循環サイトカインレベルに有意な変化はなかった。
PKパラメータは非コンパートメント方法で計算した。値は平均±SDである。(N=3)
CD27 ROを、サルPK/RO試験の全血から決定し、下記Emaxモデルを使用して、血清BMS−986215濃度とリンクさせた。
BMS−986215のヒトPKパラメータを、サルデータから推定した。非線形PKであるため、ヒトクリアランスを、下記のとおり、非標的および標的介在排出過程両者を考慮に入れて、予測する。
纏めると、BMS−986215は、カニクイザルサルで非線形PKを示し、2.
2〜14日範囲の終末t1/2であった。非線形PKは標的介在薬物沈着(TMDD)およびおそらくADA形成によるものである可能性がある。
現在、末梢血受容体占拠(RO)は、血漿濃度を使用して、ヒトにおいて容易に予測され得る。サルで観察されたBMS−986215のCD27 ROについての良好なインビトロ−インビボ相関に基づき、BMS−986215について、0.7mg/kgを3週毎投与のヒト用量が、トラフで90%を超えるROを達成すると予測される。
ヒト癌におけるCD27およびCD70発現
複数のヒト癌におけるCD27発現の免疫組織化学分析
可能性のある疾患適応症を特定するため、複数の癌タイプにおけるCD27の発現プロファイルおよび分布を、市販抗CD27 mAb、クローン137B4を使用して、通常の完全サイズホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)切片で、免疫組織化学(IHC)により検討した。6種の腫瘍タイプおよび各腫瘍タイプで22〜55のサンプル、すなわち、乳腺癌(BrC、n=35)、子宮頸癌(CC、n=23)、結腸直腸腺癌(CRC、n=22)、頭頸部扁平上皮細胞癌(HNSCC、n=46)、肝細胞癌(HCC、n=55)および卵巣腺癌(OvC、n=27)をIHC染色に付した。さらに、多くの例で(n=13〜37サンプル)、隣接切片で市販抗CD70 mAbを使用して、CD70発現を評価した。
CD27+染色が試験した全腫瘍タイプの腫瘍浸潤リンパ球(TIL)のサブセットで観察された。一般に、CD27+ TILは、CD3+ TILに極めて類似したパターンを示した。稀な例として、CD27+ TILはCD3+ TILより顕著に豊富であり、T細胞に加えて、B細胞におけるCD27の発現が示唆された。6腫瘍タイプのうち、HNSCCおよびCCでCD27+ TILが最高レベルであり、続いてCRC、BrCおよびHCCであり、OvCは最低レベルを示した。
CD70+染色は、TILの小分画で観察され、CD27+染色より頻度が著しく低かった。6腫瘍タイプのうち、CC、HCCおよびCRCは、HNSCC、BrCおよびOvCより高レベルのCD70+ TILを示した。TILでのCD70発現検出に加えて、CD70+標識は、腫瘍細胞で、約30%のCCおよび15%のOvC例を確認した。しかしながら、これらCD70+腫瘍細胞例で、大部分は極めて低い発現体であった。カットオフとして10%腫瘍細胞+を使用して、約15%のCC例が陽性と考えられた。
他の共刺激およびチェックポイント受容体で観察されるとおり、癌ゲノムアトラス(TCGA)データベースは、CD27が他のT細胞シグネチャーと相関する様式で、大部分の腫瘍においてRNAレベルで発現されることを示す。リンパ腫は例外であり、CD27は悪性B細胞により発現される。CD27発現それ自体は生存とは有意に相関しないが、子宮頸癌および頭頸部癌は例外であり、その高発現が生存改善と相関した(それぞれp=0.00001および0.01)。Bリンパ腫後、最高にCD27を発現する腫瘍は、甲状腺、腎臓細胞、肺および頭頸部であった。
子宮頸癌TCGAデータセットにおいて、高CD27発現集団中、高CD70発現体は低CD70発現体より生存が良好であり、BMS−986215によるCD27アゴニズム増加が、利益をもたらしたことが示唆される。
可溶性CD27(sCD27)は、臨床治験における薬力学(PD)マーカーとして追跡し得る、免疫細胞活性化のマーカーであり得ることが示唆される(Huang et al., 2013)。すなわち、ステージI〜IV黒色腫、CRC、RCCおよび肺癌の患者からの血清でsCD27レベルについて試験し、正常健常ボランティア(NHV)血清サンプルからの非癌対照と比較した。癌患者の一部個体は、NHV(2000〜7000pg/mL)と比較して、血清sCD27レベルが2〜3倍高かった(2000〜15,000pg/mL)。これは、sCD70がNHV(500pg/mL)に対して癌患者(150pg/mL)で低いとして報告された文献のものと異なり、かつ高い。
抗CD27 mAb処置カニクイザルサルにおいて、末梢T細胞活性化検出のためのアッセイで活性化または増殖増加が示されなくても、sCD27レベルが増加することが判明した。それ故に、抗CD27処置後にみられるsCD27上昇は、FcRn介在循環t1/2円超の結果である可能性がある。
マウス腫瘍試験
非リガンド遮断CD27 mAbがマウス腫瘍モデルで抗腫瘍活性を有することを示すために、ラット抗マウスCD27 mAbを実施例1に記載のとおり産生し、クローン8H5をBMS−986215のサロゲートとして役立つリガンド非遮断アゴニストAbとして選択した。このサロゲート抗CD27 Abは、0.25nM親和性でmCD27に結合し、マウスCD70結合を遮断せず、マウス脾臓T細胞でアゴニスト活性を示し、mIgG1およびmIgG2a Fcバリアントを用いてエンジニアリングされた。そのようなものとして、8H5はBMS−986215の適当なサロゲートである。
クローン8H5は、特に、PD−1チェックポイント遮断と組み合わせて、固形および血液マウス腫瘍モデルの両者で抗腫瘍活性を示した。例えば、CT26マウス結腸癌モデルの結果を示す図14およびSA1N線維肉腫、CT26およびEGT T細胞リンパ腫マウスモデルで得られた結果を要約する表7参照。8H5のmIgG1アイソタイプは、mIgG2aおよびmIgG1、D265A対照(図14(A))と比較して、CT26モデルで21%腫瘍増殖阻害のわずかな抗腫瘍活性しか示さなかった(TGI;図14(B)))。8H5のmIgG2aアイソタイプはわずかに高いが、なお中程度の抗腫瘍活性を示し(図14(C))、mIgG1もIgG2aアイソタイプも、処置した10匹のマウスで、無腫瘍(TF)マウスを全くもたらさなかった。
mIgG1−D265Aアイソタイプを有する抗mPD−1 Ab、4H2の抗腫瘍活性も試験した。4H2は、Fc部分が異なるマウスIgGアイソタイプのFc部分で置き換えられた、ラットIgG2a抗マウスPD−1 Abから構築されたキメララット−マウス抗mPD−1 Abである(WO2006/121168)。CT26腫瘍モデルで、4H2は中程度の抗腫瘍活性を示し、27%TGIおよび処置した10匹中2匹のTFマウスをもたらした(図14(D))。この抗PD−1活性は8H5により増強され、8H5、mIgG1との組み合わせが70%TGIおよび3/10 TFマウスをもたらす(図14(E);表7)および8H5、mIgG2aとの組み合わせが76%TGIおよび4/10 TFマウス(図14(F);表7)をもたらすことにより示される。これは、抗CD27がインビボで癌細胞増殖減少に、抗PD−1などのチェックポイント阻害剤と相乗的に相互作用することを示す。これらAbの組み合わせは、組み合わせの抗腫瘍効果が各個々のAbにより示される阻害レベルの和より大きいならば、相乗的である。
T細胞表面受容体(共刺激性および共阻害性両者)に特異的なAbのアイソタイプの変動は、これらAbの抗腫瘍活性能を変える可能性があり得る。腫瘍担持マウスをmIgG1およびmIgG2a(活性化FcγR結合体)mAbとして発現される単剤8H5で処置したとき、強力な抗腫瘍活性がSA1N線維肉腫モデルで観察された。8H5のmIgG1アイソタイプは強力な抗腫瘍活性を示し、52%TGIおよび処置した12匹中8匹のTFマウスをもたらした(表7)。8H5のmIgG2aアイソタイプはさらに強力であり、98%TGIおよび処置した12匹中11匹のTFマウスをもたらした(表7)。単剤療法活性は、腫瘍部位でのCD8+ T細胞拡大およびTreg枯渇と相関した。最近の前臨床試験は、アゴニストCD27 Abは、PD−1遮断と組み合わせたとき抗原特異的CD8+ T細胞の活性を増加させることを示し、これは腫瘍根絶に有効である(Ahrends et al., 2016)。抗マウスPD−1と組み合わせた抗マウスCD27アイソタイプは、25日目のTGIで測定して、CT26モデルにおけると同等レベルの抗腫瘍活性(それぞれ70%および76%TGI)および総無腫瘍(TF)マウス数(それぞれ3/10および4/10 TF)を示した。表7参照。
部分的Treg枯渇に加えて、8H5 mIgG1または8H5 mIgG2aで処置したマウスのCD4+およびCD8+ T細胞数は、腫瘍部位と比較して、末梢(例えば、血液および脾臓)で減少した。腫瘍内でmIgG2aアイソタイプより大きなCD8+ T細胞がmIgG1で観察されたが、mIgG2aは、Treg枯渇により強力であるように見えた。これらのデータは、抗CD27アイソタイプバリアントが、主としてTreg枯渇(mIgG2a)および/またはCD8+ T細胞拡大(mIgG1)により抗腫瘍活性をもたらすことを示唆する。これらの試験は、CD27アゴニズムおよびPD−1遮断が同系腫瘍モデルで腫瘍負荷低減および生存増加をもたらすことを示している。表7参照。
aAJマウスでのデータ
bBALB/cマウスでのデータ
cC57BL/6マウスでのデータ
略語:TGI=接種後21〜28日目の腫瘍増殖阻害;TF=試験終了時の無腫瘍
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Claims (20)
- 表面プラズモン共鳴(SPR)またはフローサイトメトリーにより測定して、ヒトCD27に特異的に結合し、そのCD70リガンドの結合を遮断せず、ここで、
(a) ヒトCD27に約100nM以下、約90nM以下、約80nM以下、約70nM以下、約60nM以下、約50nM以下、約40nM以下、約1nM〜約100nM、約10nM〜約70nM、約10nM〜約50nMまたは約40nM〜約45nMのKDで結合するおよび/または
(b) 抗CD3抗体および抗CD28抗体で刺激されたナイーブヒトT細胞で約0.5nM以下、約0.4nM以下、約0.3nM以下、約0.005nM〜約0.5nM、約0.01nM〜約0.4nMまたは約0.02nM〜約0.25nMのEC50でNF−κBおよびMAPKシグナル伝達を誘導する、
モノクローナル抗体またはその抗原結合部分。 - 水素−重水素交換マススペクトロメトリー(HDX−MS)および/またはタンパク質の高速光化学酸化(FPOP)エピトープマッピングにより決定して、凡そアミノ酸残基21〜41および52〜57(その配列は配列番号1)に跨る不連続領域に位置するエピトープに特異的に結合する、モノクローナル抗体またはその抗原結合部分。
- ヒトCD27に特異的に結合し、
(a) 配列番号2に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR1、配列番号3に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR2および配列番号4に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR3を含む重鎖可変領域(VH)を含む;
(b) 配列番号5に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR1、配列番号6に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR2および配列番号7に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むCDR3を含む軽鎖可変領域(VL)を含む;
(c) 配列番号8に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むVHを含む;
(d) 配列番号9に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含むVLを含む;
(e) 配列番号12に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含む重鎖を含む;
(f) 配列番号13に示す配列を有する連続的に結合したアミノ酸を含む軽鎖を含む;および/または
(g) BMS−986215と命名されたモノクローナル抗体である、
モノクローナル抗体またはその抗原結合部分。 - 請求項3に記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分と同じヒトCD27のエピトープに特異的に結合する、モノクローナル抗体またはその抗原結合部分。
- (a) 表面プラズモン共鳴(SPR)またはフローサイトメトリーにより測定して、CD27へのCD70の結合を阻害しない;
(b) SPRまたはフローサイトメトリーにより測定してラットCD27および/またはマウスCD27に特異的に結合しない;
(c) CD30、HVEM、DR5、4−1BB、CD40、OX40、GITRおよびこれらの何れかの組み合わせからなる群から選択されるTNF受容体スーパーファミリーメンバーの1以上に特異的に結合しない;
(d) 10μg/mLまでの濃度でヒト組織の1以上に特異的に結合せず、ここで、ヒト組織は甲状腺、肺、皮膚、子宮、前立腺、肝臓、腎臓、膵臓、副腎、下垂体、胎盤、精巣、大脳、小脳、心臓、末梢神経およびこれらの何れかの組み合わせからなる群から選択される;
(e) 抗CD3 Abおよび抗CD28 Abで刺激したナイーブで活性化前ヒトT細胞においてNF−κBおよびMAPKシグナル伝達を誘導できる;
(f) CHO−svCD3−CD32Aアッセイにおいて増殖および/またはIFN−γ分泌を誘導できる;
(g) CD4+CD45RO+記憶T細胞の増殖を誘導できる;
(h) ブドウ球菌エンテロトキシンB(SEB)刺激ヒト末梢血単核細胞(PBMC)からのIL−2放出増加を誘導できる;
(i) 抗計画死1(抗PD−1)抗体と組み合わせたときIL−2放出を少なくとも2倍増加させる;
(j) 単球由来樹状細胞(MDDC)および可溶性OKT3存在下共培養CD4+レスポンダーT細胞のTreg介在抑制を反転させる;および
(k) ヒトT細胞増殖および可溶性CD70によるIFN−γ分泌の誘導の増強ができる
から選択される1以上の特徴を有する、請求項1〜4の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分。 - モノクローナル抗体またはその抗原結合部分ヒトCD27に約100nM以下、約90nM以下、約80nM以下、約70nM以下、約60nM以下、約50nM以下、約40nM以下、約1nM〜約100nM、約10nM〜約70nM、約10nM〜約50nMまたは約40nM〜約45nMのKDで結合する、請求項2〜5の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分。
- モノクローナル抗体またはその抗原結合部分が:
(a) ヒトT細胞に約0.1nM以下、約0.09nM以下、約0.08nM以下、約0.07nM以下、約0.06nM以下、約0.05nM以下、約0.04nM以下、約0.01nM〜約0.1nM、約0.025nM〜約0.075nMまたは約0.03nM〜約0.06nMのEC50で結合する;
(b) カニクイザルT細胞に約0.5nM以下、約0.4nM以下、約0.3nM以下、約0.2nM以下、約0.1nM以下、約0.01nM〜約0.5nM、約0.025nM〜約0.4nM、約0.04〜約0.3nMまたは約0.06〜約0.2nMのEC50で結合する;および/または
(c) ヒトIgG1、IgG2、IgG3またはIgG4アイソタイプのものである重鎖定常領域を含む、
請求項1〜6の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分。 - (a) ヒト抗体またはそのフラグメントである;
(b) ヒト化抗体またはそのフラグメントである;
(c) キメラ抗体またはそのフラグメントである;
(d) ヒトCD27アゴニストである;
(e) SPRまたはフローサイトメトリーで測定してCD27へのCD70の結合を阻害しない;
(f) SPRまたはフローサイトメトリーで測定してラットCD27および/またはマウスCD27に特異的に結合しない;
(g) CD30、HVEM、DR5、4−1BB、CD40、OX40、GITRおよびこれらの何れかの組み合わせからなる群から選択されるTNF受容体スーパーファミリーメンバーの1以上に特異的に結合しない;
(h) 10μg/mLまでの濃度でヒト組織の1以上に特異的に結合せず、ここで、ヒト組織は甲状腺、肺、皮膚、子宮、前立腺、肝臓、腎臓、膵臓、副腎、下垂体、胎盤、精巣、大脳、小脳、心臓、末梢神経およびこれらの何れかの組み合わせからなる群から選択される;
(i) 抗CD3 Abおよび抗CD28 Abで刺激したナイーブで活性化前ヒトT細胞においてNF−κBおよびMAPKシグナル伝達を、所望により約0.5nM以下、約0.4nM以下、約0.3nM以下、約0.005nM〜約0.5nM、約0.01nM〜約0.4nMまたは約0.02〜約0.25nMのEC50で、誘導する;
(j) CHO−svCD3−CD32Aアッセイにおいて増殖および/またはIFN−γ分泌を、所望により約0.05nM以下、約0.04nM以下、約0.03nM以下、約0.0005nM〜約0.05nM、約0.0005nM〜約0.04nM、約0.0005nM〜約0.03nM、約0.001nM〜約0.05nM、約0.001nM〜約0.04nMまたは約0.001nM〜約0.03nMのEC50で、誘導する;
(k) CD4+CD45RO+記憶T細胞の増殖を、所望により約0.01nM以下、約0.009nM以下、約0.008nM以下、約0.007nM以下、約0.006nM以下、約0.005nM以下、約0.001nM〜約0.01nM、約0.002nM〜約0.008nM、約0.003nM〜約0.007nMまたは約0.004nM〜約0.006nMのEC50で、誘導する;
(l) SEB刺激ヒトPBMCからのIL−2放出を、所望によりクロスリンカーの存在下で約50%または所望により抗PD−1抗体と組み合わせたとき少なくとも約2倍、刺激する;
(m) MDDCおよび可溶性OKT3存在下、共培養CD4+レスポンダーT細胞のTreg介在抑制を、所望により少なくとも約70%、反転させる;または
(n) 可溶性CD70によるヒトT細胞の増殖およびIFN−γ分泌の誘導を、所望により約0.01nM以下、約0.009nM以下、約0.008nM以下、約0.007nM以下、約0.006nM以下、約0.005nM以下、約0.001nM〜約0.01nM、約0.002nM〜約0.008nMまたは約0.003nM〜約0.005nMのEC50で増強するおよび所望によりIFN−γ分泌の誘導を約0.01nM以下、約0.009nM以下、約0.008nM以下、約0.007nM以下、約0.001nM〜約0.01nM、約0.002nM〜約0.008nMまたは約0.005nM〜約0.007nMのEC50で増強する、
請求項1〜7の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分。 - 請求項1〜8の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分および薬学的に許容される担体を含む、組成物。
- さらなる抗体またはその抗原結合部分をさらに含み、該さらなる抗体またはその抗原結合部分が抗PD−1抗体、抗計画死リガンド−1(PD−L1)抗体、抗細胞毒性Tリンパ球抗原−4(CTLA−4)抗体、抗リンパ球活性化遺伝子−3(LAG−3)抗体、抗BおよびTリンパ球アテニュエーター(BTLA)抗体、抗T細胞免疫グロブリンおよびムチンドメイン−3(TIM−3)抗体、抗キラー免疫グロブリン様受容体(KIR)抗体、抗キラー細胞レクチン様受容体G1(KLRG−1)抗体、抗アデノシンA2a受容体(A2aR)抗体、抗ナチュラルキラー細胞受容体2B4(CD244)抗体、抗CD160抗体、IgおよびITIMドメインを伴うT細胞免疫受容体(TIGIT)抗体、T細胞活性化のV−ドメインIgサプレッサー(VISTA)抗体、ニボルマブ、ペンブロリズマブ、セミプリマブ、アテゾリズマブ、デュルバルマブ、アベルマブ、BMS−936559と命名された抗体、抗誘導性T細胞共刺激分子(ICOS)抗体、抗CD137(4−1BB)抗体、抗CD134(OX40)抗体、抗CD27抗体、抗グルココルチコイド誘導性TNFR関連タンパク質(GITR)抗体、抗ヘルペスウイルス侵入メディエーター(HVEM)抗体およびこれらの何れかの組み合わせからなる群から選択される、請求項9に記載の組成物。
- 請求項1〜8の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分をコードする、単離核酸。
- 癌を有する対象を処置する方法であって、対象が処置されるように、対象に治療有効量の請求項1〜8の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分または請求項9もしくは10に記載の医薬組成物を投与することを含む、方法。
- 対象における腫瘍細胞増殖を阻害する方法であって、対象における腫瘍細胞増殖が阻害されるように、対象に治療有効量の請求項1〜8の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分または請求項9もしくは10に記載の医薬組成物を投与することを含む、方法。
- さらに対象に治療有効量の癌処置のためのさらなる治療剤を投与することを含み、所望により、さらなる治療剤が免疫系の阻害を低減するまたは刺激を増加する化合物である、請求項12または13に記載の方法。
- 癌が固形腫瘍であるまたは腫瘍細胞が固形腫瘍の細胞である、請求項12〜14の何れかに記載の方法。
- 固形腫瘍が結腸癌、線維肉腫、扁平上皮細胞癌、小細胞肺癌(SCLC)、非小細胞肺癌(NSCLC)、扁平上皮NSCLC、非扁平上皮NSCLC、頭頸部癌、乳癌、食道癌、胃癌、消化器癌、小腸癌、肝臓癌、肝細胞癌(HCC)、膵臓癌(PAC)、腎臓癌、腎細胞癌(RCC)、膀胱癌、尿道癌、輸尿管癌、結腸直腸癌(CRC)、結腸癌、肛門部癌、子宮内膜癌、前立腺癌、神経芽腫、神経膠腫、神経膠芽腫、生殖細胞腫瘍、小児肉腫、副鼻腔ナチュラルキラー、黒色腫、皮膚癌、骨癌、子宮頸癌、子宮癌、子宮内膜癌腫、卵管癌腫、卵巣癌、子宮頸癌腫、膣癌腫、外陰癌腫、精巣癌、内分泌系癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、副腎癌、軟組織肉腫、陰茎癌、腎盂癌腫、中枢神経系(CNS)新生物、原発CNSリンパ腫、腫瘍血管形成、脊髄軸腫瘍、脳癌、脳幹神経膠腫、下垂体腺腫、カポジ肉腫、類表皮癌、扁平上皮細胞癌、小児固形腫瘍、環境誘発癌、ウイルス関連癌、ウイルス起源の癌、進行型癌、切除不能癌、転移癌、難治性癌、再発性癌およびこれらの何れかの組み合わせから選択される癌である、請求項15に記載の方法。
- 癌が造血器腫瘍であるまたは腫瘍細胞が造血器腫瘍の細胞である、請求項12〜14の何れかに記載の方法。
- 造血器腫瘍が急性リンパ芽球性白血病(ALL)、急性骨髄性白血病(AML)、慢性リンパ球性白血病(CLL)、慢性骨髄性白血病(CML)、T細胞リンパ腫、ホジキンリンパ腫(HL)、非ホジキンリンパ腫(NHL)、多発性骨髄腫、くすぶり型骨髄腫、意義不明の単クローン性ガンマグロブリン血症(MGUS)、進行性、転移性、難治性および/または再発性血液系腫瘍および該血液系腫瘍の何れかの組み合わせから選択される、請求項17に記載の方法。
- 癌を有する対象を処置するためのキットであって、
(a)約0.1〜約20mg/kg体重の範囲の請求項1〜8の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分または請求項9もしくは10に記載の医薬組成物の1以上の投与量;および
(b)請求項12〜18の何れかに記載の方法において該1以上の投与量を使用するための指示
を含む、キット。 - 癌を有する対象を処置するためのキットであって、
(a) 約0.1〜約20mg/kg体重の範囲の請求項1〜8の何れかに記載のモノクローナル抗体またはその抗原結合部分または請求項9もしくは10に記載の医薬組成物の1以上の投与量;
(b) さらなる治療剤の1以上の投与量;および
(c) 請求項12〜18の何れかに記載の方法において該投与量を使用するための指示
を含む、
キット。
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