JP2022503943A - Ｆｌｔ３およびａｘｌの阻害剤としての３，９－ジアザスピロ［５，５］ウンデカン系化合物 - Google Patents

Abstract

本発明は、ＦＬＴ３およびＡＸＬの阻害剤としての新規化合物を開示し、具体的に、式（Ｉ）で表われる化合物およびその薬学的に許容される塩を開示する。

Description

関連出願への相互参照

本出願は、２０１８年９月３０日に出願されたＣＮ２０１８１１１５７８４２．２、２０１９年３月１４日に出願されたＣＮ２０１９１０１９３１５０．１に基づく優先権を主張する。

本発明は、ＦＬＴ３およびＡＸＬの阻害剤としての化合物に関し、具体的に、式（Ｉ）で表われる化合物およびその薬学的に許容される塩、ならびにＡＭＬを治療する医薬品の調製におけるその使用に関する。

急性骨髄性白血病（ＡＭＬ）は、成人において最も多く見られる急性白血病であり、骨髄造血細胞の悪性増殖によって引き起こされる疾患である。ＡＭＬの発生率は３．４／１０万で、患者の年齢の中央値は６７歳である。現在、ＡＭＬの治療は、依然として化学療法に依存する必要があり、また、緩和された患者の約７０％が最終的に再発し、難治性白血病になってしまう。さらに、ＡＭＬの予後は、特に高齢の患者や体力の弱い患者では不良である。薬剤耐性は、ＡＭＬの治療が失敗する最も重要な理由であるが、白血病における薬剤耐性のメカニズムはまだ不明である。したがって、新しい標的とその阻害剤を見つけることは、ＡＭＬの治療効果を高め、予後を改善するために非常に重要である。

ＦＬＴ３受容体は、ＩＩＩ型受容体チロシンキナーゼファミリーのメンバーである。ＦＬＴ３変異は、ＡＭＬで最も多く見られる遺伝子変異であり、主にＦＬＴ３の膜近傍ドメインの内部タンデム複製（ＩＴＤ）変異およびループでの点変異（ＴＫＤ）を含む。これらの変異により、下流のシグナル伝達経路が継続的に活性化され、変異細胞が過剰に増殖する。現在、ＦＬＴ３はＡＭＬ治療の重要な標的として見なされており、また、ＦＬＴ３阻害剤もＡＭＬ治療の最も有望な分子標的薬であると考えられている。

ＡＸＬは、Ｕｆｏ、Ａｒｋ、またはＴｙｒｏ７とも呼ばれている。その異常な発現は、腫瘍細胞のアポトーシスに対する拮抗作用を活性化し、腫瘍細胞の浸潤および転移を促進し、腫瘍の血管新生を促進することができる。これらの作用は、いずれも腫瘍の発生や発達を促進する。ＡＸＬの高発現は、ＡＭＬ患者の生存率の低下や予後の悪化を引き起こす。なお、ＡＸＬの過剰発現は、標的薬物および化学療法薬の薬剤耐性と密接に関連している。最近、ＡＸＬは免疫療法にも可能性があることが分かってきた。したがって、ＦＬＴ３とＡＸＬの二重阻害剤の開発は、ＡＭＬの治療においてより優れた治療効果を達成することが期待されている。

ＷＯ２０１２０５３６０６Ａ１は、化合物Ａ（ＷＯ２０１２０５３６０６Ａ１の実施例１７６）を報告し、このようなタイプの分子はＦＬＴ３阻害活性を有し、ＡＭＬの治療に用いられることが言及されているが、具体的な試験データは示されていない。

ＷＯ２０１０１２８６５９Ａ１は、ＦＬＴ３阻害活性を有する化合物Ｂ（ＷＯ２０１０１２８６５９Ａ１の実施例５４７）を報告した。この化合物を用いて再発または難治性のＡＭＬを治療する第ＩＩＩ相臨床試験は進行中である。

本発明は、式（Ｉ）で表われる化合物またはその薬学的に許容される塩を提供する。

さらに、本発明は、癌を治療する医薬品の調製における式（Ｉ）で表される化合物またはその薬学的に許容される塩の使用を提供する。

本発明の一部の実施形態において、前記の癌とは、急性骨髄性白血病を指す。

発明の効果
本発明は、新規のＦＬＴ３／ＡＸＬ二重阻害剤を提供する。従来技術と比較して、本発明は、インビトロで予想外に高い酵素活性、細胞活性を有し、特に、ＦＬＴ３変異の酵素活性試験において顕著な利点を有する。また、本発明の薬物動態特性は、従来技術よりも優れている。ＭＶ４－１１のインビボ実験において、本発明は、低用量でも良好な腫瘍阻害活性を示す。薬物離脱リバウンド実験（ｄｒｕｇ ｗｉｔｈｄｒａｗａｌ－ｒｅｂｏｕｎｄ ａｓｓａｙ）では、本発明の化合物が強力な持続性腫瘍抑制能力を有することが証明された。Ｍｏｌｍ－１３のインビボ実験において、本発明は、予想外に優れた腫瘍阻害効果を示し、これは、従来技術よりも明らかに優れている。

定義と用語
特に明記しない限り、本明細書で使用される以下の用語は、以下の意味を有することを意図している。特定の用語は、特定の定義がない場合に、不定または不明瞭と見なされるべきではないが、通常の意味で理解されるべきである。本明細書に商品名が記載される場合、その対応する商品またはその活性成分を指す。

ここで、用語「薬学的に許容される」とは、これらの化合物、材料、組成物、および/または剤形について、信頼性のある医学的判断の範囲内で、ヒトおよび動物の組織と接触して使用することに適し、過度の毒性、刺激、アレルギー反応または他の問題または合併症を伴うことなく、合理的な利益/リスク比に見合うことをいう。

用語「薬学的に許容される塩」とは、本発明で発見された特定の置換基を有する化合物を比較的毒性のない酸または塩基と反応させることで調製される本発明の化合物の塩を指す。本発明の化合物が比較的酸性の官能基を含む場合、純粋な溶液または適宜な不活性溶媒中で、このような化合物を十分な量の塩基と接触させることで、塩基付加塩を得ることができる。薬学的に許容される塩基付加塩は、ナトリウム、カリウム、カルシウム、アンモニウム、有機アミンもしくはマグネシウムの塩、または類似の塩を含む。本発明の化合物が比較的塩基性の官能基を含む場合、純粋な溶液または適宜な不活性溶媒中で、このような化合物を十分な量の酸と接触させることで、酸付加塩を得ることができる。薬学的に許容される酸付加塩は、無機酸塩と有機酸塩を含む。上記の無機酸塩として、例えば、塩酸、臭化水素酸、硝酸、炭酸、重炭酸塩、リン酸、リン酸一水素塩、リン酸二水素塩、硫酸、硫酸水素塩、ヨウ化水素酸、亜リン酸などの無機酸塩が挙げられる。上記の有機酸塩として、例えば、酢酸、プロピオン酸、イソ酪酸、マレイン酸、マロン酸、安息香酸、コハク酸、スベリン酸、フマル酸、乳酸、マンデル酸、フタル酸、ベンゼンスルホン酸、ｐ－トルエンスルホン酸、クエン酸、酒石酸、メタンスルホン酸などの類似の酸の塩や、アミノ酸（アルギニンなど）の塩、およびグルクロン酸などの有機酸の塩が挙げられる。本発明の一部の特定の化合物は、塩基性官能基と酸性官能基の両方を含むため、塩基付加塩または酸付加塩のいずれかに変換することができる。

本発明の薬学的に許容される塩は、通常の化学的方法によって、酸性または塩基性部分を含む親化合物から調製することができる。一般的に、このような塩は、水または有機溶媒または両者の混合物中で、これらの化合物を遊離酸／塩基として化学量論量の適宜な塩基／酸と反応させることで調製される。

本発明は以下の略語を使用する。ａｑは、水を表す。ＨＡＴＵは、Ｏ－（７－アザベンゾトリアゾール－１－イル）－Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’－テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスフェートを表す。ＥＤＣは、Ｎ－（３－ジメチルアミノプロピル）－Ｎ’－エチルカルボジイミド塩酸塩を表す。ｍ－ＣＰＢＡは、３－クロロペルオキシ安息香酸を表す。ｅｑは、当量または等価を表す。ＣＤＩは、カルボニルジイミダゾールを表す。ＤＣＭは、ジクロロメタンを表す。ＰＥは、石油エーテルを表す。ＤＩＡＤは、ジイソプロピルアゾジカルボキシレートを表す。ＤＭＦは、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドを表す。ＤＭＳＯは、ジメチルスルホキシドを表す。ＥｔＯＡｃは、酢酸エチルを表す。ＥｔＯＨは、エタノールを表す。ＭｅＯＨは、メタノールを表す。ＣＢｚは、アミノ保護基であるベンジルオキシカルボニルを表す。ＢＯＣは、アミノ保護基であるｔｅｒｔ－ブチルカルボニルを表す。ＨＯＡｃは、酢酸を表す。ＮａＣＮＢＨ_３は、シアノ水素化ホウ素ナトリウムを表す。ｒ．ｔ．は、室温を表す。Ｏ／Ｎは、一晩を表す。ＴＨＦは、テトラヒドロフランを表す。Ｂｏｃ_２Ｏは、ジ－ｔｅｒｔ－ブチルジカーボネートを表す。ＴＦＡは、トリフルオロ酢酸を表す。ＤＩＰＥＡは、ジイソプロピルエチルアミンを表す。ＳＯＣｌ_２は、塩化チオニルを表す。ＣＳ_２は、二硫化炭素を表す。ＴｓＯＨは、ｐ－トルエンスルホン酸を表す。ＮＦＳＩは、Ｎ－フルオロ－Ｎ－（フェニルスルホニル）ベンゼンスルホンアミドを表す。ＮＣＳは、１－クロロピロリジン－２，５－ジオンを表す。ｎ－Ｂｕ_４ＮＦは、テトラブチルアンモニウムフルオリドを表す。ｉＰｒＯＨは、２－プロパノールを表す。ｍｐは、融点を表す。ＬＤＡは、リチウムジイソプロピルアミドを表す。

化合物は、当技術分野における従来の命名原則に従って、またはＣｈｅｍＤｒａｗ（登録商標）ソフトウェアによって命名され、市販の化合物は、メーカのカタログ名を使用する。

本発明は、実施例により以下に詳細に記載される。しかしながら、これらの例が本発明に対して不利な制限を有することは意図されていない。本発明の化合物は、以下に挙げられる具体的な実施形態、他の化学合成法と組み合わせた実施形態、および当業者によく知られている同等のものを含む当業者に周知の様々な合成法によって調製することができる。好ましい実施形態には、本発明の実施例が含まれるが、これに限定されない。本発明の精神および範囲から逸脱することなく、本明細書に開示される実施形態に様々な変更および修正を加えることができることは当業者には明らかであろう。

実施例１

工程Ａ：化合物１－１（３０ｇ，２３０．５２ｍｍｏｌ，２８．５７ｍＬ，１当量）を水（６００ｍＬ）に加え、さらに水酸化ナトリウム（１１．９９ｇ，２９９．６７ｍｍｏｌ，１．３当量）を添加し、２０℃で１６時間撹拌した。系の温度を０℃～５℃に冷却した後、さらに亜硝酸ナトリウム（１７．５０ｇ，２５３．５７ｍｍｏｌ，１．１当量）の水（６０ｍＬ）溶液をゆっくり添加し、硫酸で系のｐＨを４に調節し、さらに２０℃で１２時間撹拌した。該水相を酢酸エチル（４００ｍＬ×２）で抽出し、有機相を合わせ、飽和食塩水（１００ｍＬ×２）で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮して、化合物１－２を得た。^１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ＣＤＣｌ_３） δ＝８．８３－８．５４（ｍ，１Ｈ），７．５６（ｓ，１Ｈ），２．８０（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，２Ｈ），１．１３（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，３Ｈ）．

工程Ｂ：化合物１－２（２０ｇ，１９７．８２ｍｍｏｌ，１当量）をイソプロパノール（４００ｍＬ）に溶解し、さらに化合物１－３（５０ｇ，１９７．４１ｍｍｏｌ，０．９９８当量，ｐ－トルエンスルホン酸塩）を添加し、２０℃で該混合系を１６時間撹拌した。反応液を水（３００ｍＬ）に注ぎ、酢酸エチル（５００ｍＬ×３）で抽出し、有機相を合わせ、飽和食塩水（８００ｍＬ）で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮して化合物１－４を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：１６５．３［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｃ：化合物１－４（３１ｇ，１８８．８４ｍｍｏｌ，１当量）をＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（３００ｍＬ）に溶解し、０℃まで冷却した後、温度を５℃未満に保ちながら塩化ホスホリル（７８．５２ｇ，５１２．０９ｍｍｏｌ，４７．５９ｍＬ，２．７１当量）をゆっくりと滴下した。滴下完了後、系を８０℃に加熱して２時間攪拌した。反応液を氷（９００ｇ）に滴下し、２０℃に自然昇温し、１６時間撹拌した。固体を沈殿させ、濾過し、フィルターケーキを回収し、真空下で乾燥させて化合物１－５を得た。

工程Ｄ：亜硝酸ｔｅｒｔ－ブチル（２０．６１ｇ，１９９．８８ｍｍｏｌ，２３．７７ｍＬ，２．５当量）および臭化銅（２１．４３ｇ，９５．９４ｍｍｏｌ，４．４９ｍＬ，１．２当量）をＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（２００ｍＬ）に溶解し、系を６５℃に加熱した後、化合物１－５（１４．６ｇ，７９．９５ｍｍｏｌ，１当量）のＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（１５０ｍＬ）溶液を滴下した。６５℃で０．５時間反応した後、反応液を氷水（１０００ｇ）に注ぎ、析出した固体を濾過し、フィルターケーキを酢酸エチル（３００ｍＬ）に溶解し、再び濾過し、濾液を濃縮して化合物１－６を得た。^１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ＤＭＳＯ－ｄ_６） δ＝２．９２（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，２Ｈ），１．２３（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，３Ｈ）．

工程Ｅ：化合物１－６（４ｇ，１６．２３ｍｍｏｌ，１当量）および化合物１－７（１．９７ｇ，１４．３１ｍｍｏｌ，０．８８２当量）を１，４－ジオキサン（５０ｍＬ）に溶解し、さらにＮ，Ｎ－ジイソプロピルエチルアミン（５．０３ｇ，３８．９５ｍｍｏｌ，６．７８ｍＬ，２．４当量）を添加した。該混合物を６５℃に加熱し、１２時間撹拌した。水（１００ｍＬ）を反応液に注ぎ、２０℃で０．５時間撹拌した。該混合物を濾過し、フィルターケーキを水で洗浄し、真空下で乾燥させて化合物１－８を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：３１０．９，３１２．９［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｆ：５℃～８℃で、酢酸アンモニウム（２．０４ｇ，２６．４２ｍｍｏｌ，０．１当量）を化合物１－１０（８９．６５ｇ，７９２．５９ｍｍｏｌ，８４．５８ｍＬ，３当量）のメタノール（１００ｍＬ）溶液に加え、さらに化合物１－９（５０ｇ，２６４．２０ｍｍｏｌ，４９．０２ｍＬ，１当量）を添加した。次に、１０℃以下でアンモニア水（５１．８５ｇ，３６９．８７ｍｍｏｌ，５６．９８ｍＬ，２５％，１．４当量）を該混合液に加えた。０℃～５℃で該混合液を１時間攪拌した後、反応混合物を２０℃に昇温し、２０時間撹拌した。この系に水（１００ｍＬ）を添加し、５５℃に加熱した。７０℃を超えないように温度を保ちながら、塩酸（１２ｍｏｌ／Ｌ）でｐＨを４に調節した後、混合物を１０℃まで冷却し、３０分間攪拌した後、濾過してフィルターケーキを水で洗浄し、減圧下で乾燥させて化合物１－１１を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：３２３．１［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｇ：硫酸（１６１．９２ｇ，１．６５ｍｏｌ，８８ｍＬ，１０．６５当量）および水（１２．００ｇ，６６６．１０ｍｍｏｌ，１２ｍＬ，４．３０当量）の混合液に、化合物１－１１（４９．９５ｇ，１５４．９５ｍｍｏｌ，１当量）を加え、この時、温度を４０℃に昇温した。さらに、該混合物を８０℃に加熱して２時間攪拌した。次に、水（２０．００ｇ，１．１１ｍｏｌ，２０ｍＬ，７．１６当量）を添加し、さらに１００℃に加熱して１．５時間攪拌した。この反応液に、水（２５０ｍＬ）を添加し、３０℃で１２時間攪拌した後、濾過し、フィルターケーキを水で洗浄し、減圧下で乾燥して化合物１－１２を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：３４２．０［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｈ：水酸化ナトリウム水溶液（５ｍｏｌ／Ｌ，１８３．４５ｍＬ，８当量）に、化合物１－１２（３９．１４ｇ，１１４．６６ｍｍｏｌ，１当量）を加え、該混合液を８０℃に加熱し、２時間攪拌した。この系の温度を６０℃まで冷却し、塩酸（１２ｍｏｌ／Ｌ，７５ｍＬ，７．８５当量）をゆっくりと添加し、温度７５℃に加熱して、塩酸（１２ｍｏｌ／Ｌ，１５ｍＬ，１．５７当量）を滴下した。さらに、該混合物を８５℃に加熱し、１時間攪拌した後、２５℃まで冷却し、１６時間で撹拌した。反応液に、水（２００ｍＬ）を添加し、１０℃まで冷却し、濾過し、フィルターケーキを水（３００ｍＬ）で洗浄し、減圧下で乾燥して化合物１－１３を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：２７３．１［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｉ：化合物１－１３（２８ｇ，１０２．８１ｍｍｏｌ，１当量）をテトラヒドロフラン（３００ｍＬ）に溶解し、該混合物を７０℃に加熱した後、この溶液に、水素化リチウムアルミニウム（１５．６１ｇ，４１１．２５ｍｍｏｌ，４当量）を数回分けて加えた。該混合物を７０℃で１２時間撹拌した。室温まで冷却した後、反応液に飽和硫酸ナトリウム溶液（３０ｍＬ）をゆっくりと滴下した後、濾過して、酢酸エチル（１００ｍＬ）でフィルターケーキを洗浄した。濾液を合わせて濃縮し、化合物１－１４を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：２４５．１［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｊ：化合物１－１４（０．５ｇ，２．０５ｍｍｏｌ，１当量）および化合物１－１５（３１７．３９ｍｇ，２．０５ｍｍｏｌ，１当量）をＮ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（１０ｍＬ）に溶解し、炭酸カリウム（５６５．５５ｍｇ，４．０９ｍｍｏｌ，２当量）を加えた。該混合物を８０℃に加熱して１２時間撹拌した。反応液を水（６０ｍＬ）に注ぎ、酢酸エチル（６０ｍＬ×２）で抽出し、有機相を合わせ、飽和食塩水（６０ｍＬ）で洗浄し、乾燥させた後、濃縮して化合物１－１６を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：３８０．０［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｋ：化合物１－１６（５５０ｍｇ，１．４５ｍｍｏｌ，１当量）のジクロロメタン（１５ｍＬ）溶液に、ヨードメタン（２４６．８５ｍｇ，１．７４ｍｍｏｌ，１０８．２７μL，１．２当量）を加え、該混合物を２５℃で１２時間撹拌した。反応液を濃縮して化合物１－１７を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：３９４．１［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｌ：化合物１－１７（６２０ｍｇ，１．１９ｍｍｏｌ，１当量）のエタノール（２０ｍＬ）溶液に、湿ったパラジウム炭素（１００ｍｇ，１０％）を加え、水素ガスで置換した後、該混合物を６０℃に加熱し、水素ガス圧力５０ｐｓｉの条件下で、１２時間反応した。次に、濾過し、濾液を濃縮して化合物１－１８を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：２７４．１［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｍ：化合物１－１８（３００ｍｇ，１．１０ｍｍｏｌ，１当量）と化合物１－８（３４１．４３ｍｇ，１．１０ｍｍｏｌ，１当量）の１，４－ジオキサン（１０ｍＬ）溶液に、酢酸パラジウム（２４．６３ｍｇ，１０９．７２μｍｏｌ，０．１当量）、４，５－ビス（ジフェニルホスフィノ）－９，９－ジメチルキサンテン（６３．４９ｍｇ，１０９．７２μｍｏｌ，０．１当量）および炭酸カリウム（３０３．２９ｍｇ，２．１９ｍｍｏｌ，２当量）を加えた。この系を窒素ガスで置換した後、８０℃に加熱し、窒素雰囲気下で１２時間撹拌した。反応液を濾過し、フィルターケーキを酢酸エチル（６０ｍＬ）で洗浄し、濾液を濃縮し、得られた粗生成物を精製して化合物１－１９を得た。ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：５０４．２［Ｍ＋Ｈ^＋］．

工程Ｎ：化合物１－１９（２００ｍｇ，３９７．０８μｍｏｌ，１当量）をジメチルスルホキシド（２ｍＬ）およびエタノール（６ｍＬ）に溶解し、この系を０℃まで冷却した後、水酸化ナトリウム（４ｍｏｌ/L，２９７．８１μＬ，３当量）および過酸化水素（１３５．０６ｍｇ，１．１９ｍｍｏｌ，１１４．４６μＬ，純度３０％，３当量）を添加した。該反応液を２５℃に自然昇温し、１２時間撹拌した。

方法１：反応液を水（３０ｍＬ）に注ぎ、酢酸エチル（４０ｍＬ×３）で抽出し、有機相を合わせ、飽和食塩水（４０ｍＬ）で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させ、濃縮して得られた粗生成物を精製（分取高速液体クロマトグラフィー、カラム：Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｓｙｎｅｒｇｉ Ｃ１８ １５０＊２５＊１０μｍ；移動相：［水（０．１％トリフルオロ酢酸）－アセトニトリル］；アセトニトリル％：１０％－３７％，１０分間）して、式（Ｉ）で表われる化合物のトリフルオロ酢酸塩を得た。^１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ＤＭＳＯ－ｄ_６）δ＝１１．１３（ｓ，１Ｈ），９．２３（ｂｒ ｓ，１Ｈ），７．６１－７．４０（ｍ，３Ｈ），７．２８－７．１１（ｍ，２Ｈ），６．８５（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，１Ｈ），４．１８－４．０６（ｍ，１Ｈ），３．９９－３．９１（ｍ，２Ｈ），３．４１－３．３７（ｍ，２Ｈ），３．３０－３．２７（ｍ，２Ｈ），３．１３－２．９１（ｍ，６Ｈ），２．７９（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ，３Ｈ），２．６２－２．５５（ｍ，２Ｈ），２．３３－２．２８（ｍ，３Ｈ），２．０３－１．７８（ｍ，６Ｈ），１．７３－１．４４（ｍ，６Ｈ），１．１９（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，３Ｈ）．ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：５２２．０［Ｍ＋Ｈ^＋］．

方法２：水（２０ｍＬ）を反応液に添加し、３０分間攪拌した後、濾過し、フィルターケーキを水（１０ｍＬ）で洗浄し、フィルターケーキをエタノール（５ｍＬ）でスラリー化し、濾過し、減圧下で乾燥して式（Ｉ）で表われる化合物を得た。^１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ＤＭＳＯ－ｄ_６）δ＝１１．０１（ｓ，１Ｈ），７．５２（ｄ，Ｊ＝２．８Ｈｚ，１Ｈ），７．４３（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ，１Ｈ），７．３６（ｄｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，２．４Ｈｚ，１Ｈ），７．２０（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ，１Ｈ），６．９９（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，１Ｈ），６．７９（ｄ，Ｊ＝７．６Ｈｚ，１Ｈ），４．１５－４．０６（ｍ，１Ｈ），３．９５－３．９２（ｍ，２Ｈ），３．４２－３．３９（ｍ，２Ｈ），２．７４－２．７１（ｍ，４Ｈ），２．５６（ｑ，Ｊ＝７．６Ｈｚ，２Ｈ），２．２８－２．２５（ｍ，４Ｈ），２．２２（ｓ，３Ｈ），２．１４（ｓ，３Ｈ），１．８８－１．８４（ｍ，２Ｈ），１．６９－１．４５（ｍ，１０Ｈ），１．１８（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ，３Ｈ）．ＭＳ（ＥＳＩ）ｍ／ｚ：５２２．３［Ｍ＋Ｈ^＋］．

実験例１：インビトロでのＦＬＴ３阻害活性実験
実験材料：
ＦＬＴ３ Ｋｉｎａｓｅ Ｅｎｚｙｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ（キナーゼシステム）はＰｒｏｍｅｇａ社から購入した。Ｅｎｖｉｓｉｏｎマルチラベルアナライザー（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）。

実験方法：
キット中の緩衝液稀を使用して、酵素、基質、ＡＴＰ（アデノシン三リン酸）および阻害剤を希釈した。
試験する化合物をピペットで８番目の濃度まで５倍希釈し、すなわち５μｍｏｌ／Ｌから０．０６５ｎｍｏｌ／Ｌまで希釈し、ジメチルスルホキシドの最終濃度が５％であった。実験は２回行った。各濃度勾配の阻害剤１μｌ、ＦＬＴ３酵素（１５ｎｇ）２μＬ、および基質とＡＴＰとの混合物（５０μｍｏｌ／ＬのＡＴＰ、０．１μｇ／μＬのＭＢＰ）２μＬをマイクロプレートに添加した。この時、化合物の最終濃度勾配は１μｍｏｌ／Ｌから０．０１３ｎｍｏｌ／Ｌであった。反応系を３０℃で１２０分間反応させた。反応完了後、５μＬのＡＤＰ－Ｇｌｏ試薬を各ウェルに加え、さらに３０℃で４０分間反応させた。反応完了後、１０μＬのキナーゼ検出試薬を各ウェルに添加し、３０℃で３０分間反応させた。その後、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒＥｎｖｉｓｉｏｎマルチラベルアナライザーによって０．５秒の積分時間で化学発光を読み取った。

データ分析：
元のデータを阻害率に換算し、４パラメータカーブフィッティングによってＩＣ_５０値を得た。ＦＬＴ３酵素に対する本発明の化合物の阻害活性を表１に示す。

実験結果：表１に示す。
結論：本発明化合物は、ＦＬＴ３に対して優れたインビトロ阻害活性を有する。

表１

実験例２：インビトロでのＡＸＬ阻害活性実験
実験材料：
ＡＸＬ Ｋｉｎａｓｅ Ｅｎｚｙｍｅ Ｓｙｓｔｅｍ（キナーゼシステム）はＰｒｏｍｅｇａ社から購入した。Ｅｎｖｉｓｉｏｎマルチラベルアナライザー（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）。

実験方法：
キット中の緩衝液稀を使用して、酵素、基質、ＡＴＰおよび阻害剤を希釈した。
試験する化合物をピペットで８番目の濃度まで５倍希釈し、すなわち５μｍｏｌ／Ｌから０．０６５ｎｍｏｌ／Ｌまで希釈し、ジメチルスルホキシドの最終濃度が５％であった。実験は２回行った。各濃度勾配の阻害剤１μｌ、ＡＸＬ酵素（６ｎｇ）２μＬ、および基質とＡＴＰとの混合物（５０μｍｏｌ／ＬのＡＴＰ、０．２μｇ／μＬのＡｘｌｔｉｄｅ）２μＬをマイクロプレートに添加した。この時、化合物の最終濃度勾配は１μｍｏｌ／Ｌから０．０１３ｎｍｏｌ／Ｌであった。反応系を３０℃で６０分間反応させた。反応完了後、５μＬのＡＤＰ－Ｇｌｏ試薬を各ウェルに加え、さらに３０℃で４０分間反応させた。反応完了後、１０μＬのキナーゼ検出試薬を各ウェルに添加し、３０℃で３０分間反応させた。その後、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒＥｎｖｉｓｉｏｎマルチラベルアナライザーによって０．５秒の積分時間で化学発光を読み取った。

データ分析：
元のデータを阻害率に換算し、４パラメータカーブフィッティングによってＩＣ_５０値を得た。ＡＸＬ酵素に対する本発明の化合物の阻害活性を表２に示す。

実験結果：表２に示す。
結論：本発明化合物は、ＡＸＬに対して優れたインビトロ阻害活性を有する。

表２

実験例３：インビトロでのＦＬＴ３変異の増殖阻害実験
実験方法：
ＫＩＮＯＭＥｓｃａｎ（商標）技術を使用して実験を行った。実験化合物は１００％ＤＭＳＯに保存された。実験は、３倍希釈および１１ポイントフィッティングによって実施された。Ｋｄの測定に使用されたすべての化合物を超音波によって分散した後、直接希釈して実験を行った。反応は、いずれも３８４ウェルのポリプロピレンプレートで実施した。それぞれの最終容量は０．０２ｍｌであった。プレートを室温で１時間振とうしながらインキュベートして処理した。最終的にｑＰＣＲ法によって溶離液中のキナーゼ濃度を測定し、フィッティングによってＫｄを得た。

実験結果：表３に示す。

表３

結論：本発明の化合物は、変異したＦＬＴ３標的に対して優れたインビトロ阻害活性を有する。１０種類の変異体では、いずれも既知の化合物Ｂよりも高い活性を示し、ここで、ＦＬＴ３（ＩＴＤ、Ｆ６９１Ｌ）に対する活性が３．６倍高く、ＦＬＴ３（Ｋ６６３Ｑ）に対する活性が５．９倍高くとなった。点突然変異がＦＬＴ３阻害剤の薬剤耐性の重要な原因であることを考えると、変異型ＦＬＴ３に対するより高い活性は臨床的に大きな意義がある。

実験例４：インビトロでのＭＶ－４－１１の増殖阻害実験
実験材料：
ＩＭＤＭ培地、ウシ胎児血清、ペニシリン／ストレプトマイシン抗生物質はＰｒｏｍｅｇａ（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）社から購入した。ＭＶ－４－１１細胞株は中国科学院細胞バンクから購入した。Ｅｎｖｉｓｉｏｎマルチラベルアナライザー（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）。

実験方法：
ＭＶ－４－１１細胞を白色の９６ウェルプレートに播種し、各ウェルに、１００００個のＭＶ－４－１１細胞を含む８０μＬの細胞懸濁液を含む。二酸化炭素インキュベーターで細胞プレートを一晩培養した。
試験する化合物をピペットで８番目の濃度まで５倍希釈し、すなわち２ｍｍｏｌ／Ｌから２６ｎｍｏｌ／Ｌまで希釈した。実験は２回行った。中間プレートに７８μＬの培地を加え、次に、対応する位置に応じて、勾配希釈した化合物を１ウェルあたり２μＬで中間プレートに移し、均一に混合した後、１ウェルあたり２０μＬで細胞プレートに移した。二酸化炭素インキュベーターで細胞プレートを３日間培養した。
Ｐｒｏｍｅｇａ ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ－Ｇｌｏ試薬を１ウェルあたり２５μＬで細胞プレートに添加し、室温で１０分間インキュベートして、発光シグナルを安定化させた。読み取りには、ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ Ｅｎｖｉｓｉｏｎマルチラベルアナライザーを使用した。

データ分析：
元のデータを阻害率に換算し、４パラメータカーブフィッティングによってＩＣ_５０値を得た。ＭＶ－４－１１細胞の増殖に対する本発明の化合物の阻害活性を表３に示す。

実験結果：表４に示す。

結論：本発明化合物は、ＭＶ－４－１１細胞の増殖に対して優れた阻害活性を有する。

表４

実験例５：マウスにおけるインビボ薬物動態研究
実験の目的：
本実験の目的は、静脈内注射および強制経口投与による単回投与後の化合物の薬物動態学的挙動を評価し、強制経口投与後のバイオアベイラビリティを調査することである。

実験の手順：
７～１０週齢のＣＤ－１雄マウスを選択した。静脈内投与および経口投与の用量は、それぞれ１ｍｇ／ｋｇおよび２．５ｍｇ／ｋｇであった。マウスは、投与前に少なくとも１２時間絶食させ、投与４時間後に摂食を再開した。実験期間中、マウスは水を自由に摂取できた。
実験当日、静脈内投与群の動物に、５ｍＬ／ｋｇの投与量で尾静脈への単回注射によって、対応する化合物を投与し；経口群に、１０ｍＬ／ｋｇの投与量で単回強制経口投与によって、対応する化合物を投与した。投与前に動物の体重を測定し、体重に基づいて投与量を計算した。サンプルを採取する時間は、０．０８３（注射群）、０．２５、０．５、１、２、４、８、２４時間であった。各時点で伏在静脈から約３０μＬの全血を採取し、血漿を調製して、高速液体クロマトグラフィー－タンデム質量分析（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）による濃度測定に供した。最後の時点でＰＫサンプルを採取した後、すべての動物をＣＯ_２麻酔で安楽死処置させた。薬物動態ソフトウェアＷｉｎＮｏｎｌｉｎ（商標）バージョン６．３（Ｐｈａｒｓｉｇｈｔ，Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ，ＣＡ）の非コンパートメントモデルを利用して血漿中濃度を処理し、線形対数台形法によって薬物動態パラメーターを算出した。

実験結果：マウスにおけるインビボＰＫ特性評価の結果を表５に示す。

実験結論：
マウスにおいて、本発明の化合物は、インビボクリアランス率が適切で、経口ＡＵＣ、バイオアベイラビリティが良好で、優れた薬物動態特性を有する。本発明の化合物は、化合物Ａと比較して、予想外に改善されたＰＫ特性を有する。

表５ インビボでの薬物動態特性評価の結果

実験例６：インビボでのＭＶ４－１１皮下異種移植腫瘍の抑制の実験
実験の目的：
本実験では、ヒト二表現型（ｂｉｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ）Ｂ骨髄単球性白血病細胞ＭＶ４－１１の皮下異種移植腫瘍のヌードマウスモデルを使用して、化合物の抗腫瘍効果を評価した。

実験の手順：
１０％ウシ胎児血清、１００Ｕ／ｍＬペニシリンおよび１００μｇ／ｍＬストレプトマイシンを添加したＲＰＭＩ１６４０培地、３７℃、５％ＣＯ_２細胞インキュベーター内という条件下、ヒト二表現型Ｂ骨髄単球性白血病細胞ＭＶ４－１１をインビトロで懸濁培養した。定期的な継代を週に２回行い、対数増殖期の細胞を回収し、カウントして接種に使用した。
各マウスの右頚背部に、１０×１０^６個のＭＶ４－１１細胞を皮下接種した。接種量は０．２ｍＬで、細胞懸濁液はＰＢＳとマトリゲル（体積比１：１）を混合したものであった。細胞接種後１３日目に、インビボでの有効性実験を行った。腫瘍の平均体積は１８１ｍｍ^３に達した。無作為にマウスを６匹ずつ群分けして、投与を開始した。
ノギスで腫瘍の直径を週に２回測定した。腫瘍の体積の計算式は、Ｖ＝０．５ａ×ｂ^２であり、ここで、ａおよびｂはそれぞれ腫瘍の長径および短径を表す。
投与１４日後、投与を停止し、腫瘍のリバウンドを観察した。

実験結果：腫瘍に対する化合物の抑制の結果を表６に示す。

表６ ＭＶ４－１１の異種異所性移植実験の結果

実験結論：
本発明の化合物は、ヒト二表現型Ｂ骨髄単球性白血病細胞ＭＶ４－１１の異種移植腫瘍の増殖に対して有意な抑制効果を有する。本発明の化合物は、低用量（５ｍｇ／ｋｇ）でも、化合物Ａの高用量（２０ｍｇ／ｋｇ）と同等の腫瘍抑制効果を示す。薬物離脱リバウンド実験において、本発明の化合物は、化合物Ｂに比べて、同じ用量（５ｍｇ／ｋｇ）でより顕著な持続性腫瘍抑制効果を有する。

実験例７：ラットにおけるインビボ薬物動態研究
実験の目的：
本実験の目的は、静脈内注射および強制経口投与による単回投与後の化合物の薬物動態学的挙動を評価し、強制経口投与後のバイオアベイラビリティを調査することである。

実験の手順：
７～１０週齢のＳＤ雄ラットを選択した。静脈内投与および経口投与の用量は、それぞれ１ｍｇ／ｋｇおよび２．５ｍｇ／ｋｇであった。ラットは、投与前に少なくとも１２時間絶食させ、投与４時間後に摂食を再開した。実験期間中、ラットは水を自由に摂取できた。
実験当日、静脈内投与群の動物に、５ｍＬ／ｋｇの投与量で尾静脈への単回注射によって、対応する化合物を投与し；経口群に、１０ｍＬ／ｋｇの投与量で単回強制経口投与によって、対応する化合物を投与した。投与前に動物の体重を測定し、体重に基づいて投与量を計算した。サンプルを採取する時間は、０．０８３（注射群）、０．２５、０．５、１、２、４、８、２４時間であった。各時点で頸静脈から約２００μＬの全血を採取し、血漿を調製して、高速液体クロマトグラフィー－タンデム質量分析（ＬＣ－ＭＳ／ＭＳ）による濃度測定に供した。最後の時点でＰＫサンプルを採取した後、すべての動物をＣＯ_２麻酔で安楽死処置させた。薬物動態ソフトウェアＷｉｎＮｏｎｌｉｎ（商標）バージョン６．３（Ｐｈａｒｓｉｇｈｔ，Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ，ＣＡ）の非コンパートメントモデルを利用して血漿中濃度を処理し、線形対数台形法によって薬物動態パラメーターを算出した。

実験結果：ラットにおけるインビボＰＫ特性評価の結果を表７に示す。

表７ インビボでの薬物動態特性評価の結果

実験結論：
ラットにおいて、本発明の化合物は、インビボ経口ＡＵＣ、バイオアベイラビリティが優れ、良好な薬物動態特性を有する。本発明の化合物は、化合物Ｂと比較して、予想外に改善されたＰＫ特性を有する。

実験例８：インビボでのＭｏｌｍ－１３皮下異種移植腫瘍の抑制の実験
実験の目的：
本実験の目的は、ヒト急性骨髄腫ＭＯＬＭ－１３細胞株の皮下異種移植のＮＯＤ／ＳＣＩＤ雌マウスモデルにおける化合物の薬力学効果を評価することである。

実験の手順：
１０％ウシ胎児血清を含むＲＰＭＩ１６４０培地で、ＭＯＬＭ－１３細胞を培養した。対数増殖期のＭＯＬＭ－１３細胞を回収し、ヌードマウスの皮下腫瘍接種に適した濃度になるまでＰＢＳで再懸濁させた。
実験マウスの右頚背部に、０．１ｍｌのＰＢＳ（０．１ｍｌ／匹）に再懸濁した５×１０^６個のＭＯＬＭ－１３細胞を皮下接種した。腫瘍の成長を定期的に観察した。腫瘍が平均体積９８ｍｍ^３に成長した際、無作為にマウスを群分けして、腫瘍のサイズおよびマウスの体重に応じて投与した。
投与開始後、マウスの体重および腫瘍のサイズを週に３回測定した。腫瘍の体積の計算式は、腫瘍体積（ｍｍ^３）＝１／２×（ａ×ｂ^２）（ここで、ａは長径、ｂは短径を表す）である。

実験結果：腫瘍に対する化合物の抑制の結果を表８に示す。

表８ Ｍｏｌｍ－１３の異種異所性移植実験の結果

実験結論：
本発明の化合物は、ヒト由来のＭｏｌｍ－１３異種移植腫瘍の増殖に対して有意な抑制効果を有する。本発明の化合物は、化合物Ｂに比べて、同等の用量（１５ｍｇ／ｋｇ）でより優れた腫瘍抑制効果を示す。用量が５０ｍｇ／ｋｇである場合、腫瘍の体積はゼロに減少した。

データ分析：
元のデータを阻害率に換算し、４パラメータカーブフィッティングによってＩＣ_５０値を得た。ＭＶ－４－１１細胞の増殖に対する本発明の化合物の阻害活性を表４に示す。

Claims (3)

1. 

   式（Ｉ）で表われる化合物またはその薬学的に許容される塩。
2. 癌を治療する医薬品の調製における、式（Ｉ）で表われる化合物またはその薬学的に許容される塩の使用。
3. 癌が急性骨髄性白血病である、請求項２に記載の使用。