JP2022500060A - 等温増幅および相対存在比を使用した宿主ｒｎａの評価 - Google Patents

Abstract

診断スコアを推定するための方法は、試験サンプルの第１のアリコートを第１の反応容器に添加し、試験サンプルの第２のアリコートを第２の反応容器に添加することを含む。試験サンプルは、第１の標的核酸および第２の標的核酸を含む。第２の標的核酸は、第１の標的核酸よりも予想存在比が低い。第２のアリコートは、第１のアリコートよりも体積が大きい。第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値は、それぞれ、第１の反応容器において第１のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行し、第２の反応容器において第２のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することによって推定される。診断スコアは、第１の相対存在比値と第２の相対存在比値に基づいて推定される。【選択図】図９Ａ

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１８年９月１９日に出願された米国仮特許出願第６２／７３３，５１７号の利益を主張し、前記仮特許出願の全体が、参照により本明細書に組み込まれる。

本開示は、診断スコアを推定する方法に関する。より具体的には、本開示は、リアルタイム定量的等温増幅を使用して診断スコアを推定する方法に関する。試験サンプルは、第１の標的核酸および第２の標的核酸を含む。第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値は、リアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することによって推定される。診断スコアは、第１の相対存在比値と第２の相対存在比値に基づいて推定される。

サンプル中の他の遺伝子および核酸の中で、低い存在比（例えば、少ないコピー数）で存在する標的遺伝子の定量は困難な場合があり得る。現在の検出方法は、遺伝子または遺伝子の転写に関連する生成物（例えば、ｍＲＮＡ）の増幅（例えば、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ））を伴うことが多い。逆転写酵素（ＲＴ）−ＰＣＲの出現により、ＲＮＡ分子を特異的に標的化してｃＤＮＡ分子を形成することができる。得られたｃＤＮＡ分子自体は増幅のテンプレートとして使用可能であり、サンプル中の標的遺伝子または遺伝子生成物の検出を容易に向上させる。等温増幅法により、増幅速度はより速く、機器の複雑性はより低くなる。しかしながら、リアルタイム定量的ループ介在等温増幅（リアルタイムｑＬＡＭＰ）ベースの方法などの等温増幅技術では、哺乳類ＲＮＡ標的の標的核酸の１，０００コピー未満の標的核酸を確実に定量できない場合がある（Ｎｉｘｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２０１４），Ｂｉｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ，２：４−１０を参照）。

急性感染症（細菌およびウイルスなど）の診断が改善されると、罹患率および死亡率が低下し得る。しかしながら、急性感染症を検出する方法は、特異性、感度および速度の点で不十分である。一部の増幅技術は血液培養物から直接病原体を検出できるが、これらの試験は特定の病原体の選択されたサブセットに依存する傾向があり、これは一部の病原体が検出されないことを意味する。さらに、多くの感染症は血流に入らないため、非侵襲的方法では検出できない。したがって、細菌感染症とウイルス感染症とを分類するために宿主応答（宿主遺伝子発現など）を評価し、診断および／または治療レジメンなどの結果に宿主応答を相関させる必要性が残っている。

本明細書中で提供されるのは、リアルタイム定量的等温増幅を使用して試験サンプルの診断スコアを推定するための方法である。いくつかの実施形態において、この方法は、少なくとも１つの第１の標的核酸と、少なくとも１つの第２の標的核酸と、参照核酸とを含有する試験サンプルを得ることを含む。第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の各々は、哺乳類宿主核酸を含む。この方法は、第１の標的核酸の定量的等温増幅のための第１の反応容器に試験サンプルの第１のアリコートを添加することと、第２の標的核酸の定量的等温増幅のための第２の反応容器に試験サンプルの第２のアリコートを添加することと、をさらに含む。第１の反応容器および第２の反応容器の各々は、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する。第２の標的核酸は、試験サンプルにおいて第１の標的核酸よりも予想存在比が低い。第１のアリコートは、第１の体積を有する。第２のアリコートは、第１の体積よりも大きい第２の体積を有する。この方法はさらに、第１の反応容器内で第１の反応を開始し、第１の反応における第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定し、第１の反応における参照核酸の第１の参照閾値までの時間値を決定し、かつ、少なくとも第１の閾値までの時間値および第１の参照閾値までの時間値に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することにより、第１の反応容器内で第１のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することを含む。この方法はさらに、第２の反応容器内で第２の反応を開始し、第２の反応における第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定し、第２の反応における参照核酸の第２の参照閾値までの時間値を決定し、かつ、少なくとも第２の閾値までの時間値および第２の参照閾値までの時間値に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することにより、第２の反応容器内で第２のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することを含む。この方法はさらに、第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値に基づいて試験サンプルの診断スコアを推定することを含む。

別の態様において、本明細書中で提供されるのは、リアルタイム定量的等温増幅を使用して診断スコアを推定する方法である。いくつかの実施形態において、この方法は、哺乳類対象から試験サンプルを得ることを含む。試験サンプルは、少なくとも１つの第１の標的核酸と、少なくとも１つの第２の標的核酸と、参照核酸とを含有する。第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の各々は、目的のコホート集団にわたって検証されるように、リアルタイム定量的等温増幅のダイナミックレンジ内にある試験サンプル中の予想濃度を有する。この方法はさらに、試験サンプルのアリコートを、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する少なくとも１つの反応容器に添加することと、少なくとも１つの反応容器内で等温増幅の少なくとも１つの反応を開始することと、少なくとも１つの反応における第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定することと、少なくとも１つの反応における第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定することと、少なくとも１つの反応における参照核酸の参照閾値までの時間値を決定することと、少なくとも第１の閾値までの時間値および参照閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸に対する、第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することと、少なくとも第２の閾値までの時間値および参照閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸に対する、第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することと、第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値および第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプルの診断スコアを推定することと、を含む。

別の態様において、本明細書中で提供されるのは、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定するための方法である。いくつかの実施形態において、この方法は、第１の標準曲線と、第２の標準曲線と、参照標準曲線とを得ることを含む。第１の標準曲線は、第１の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第１の関数を含む。第２の標準曲線は、第２の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第２の関数を含む。参照標準曲線は、参照核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける参照関数を含む。第１の標準曲線、第２の標準曲線および参照標準曲線は、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行する前に生成される。この方法はさらに、哺乳類対象から試験サンプルを得ることを含む。試験サンプルは、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸を含有する。この方法はさらに、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する少なくとも１つの反応容器に試験サンプルを添加することと、少なくとも１つの反応容器内で等温増幅の少なくとも１つの反応を開始することと、少なくとも１つの反応における第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定することと、少なくとも１つの反応における第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定することと、少なくとも１つの反応における参照核酸の参照閾値までの時間値を決定することと、第１の標準曲線の第１の関数を使用して、第１の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の開始コピー数を推定することと、第２の標準曲線の第２の関数を使用して、第２の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の開始コピー数を推定することと、参照標準曲線によって提供される参照関数を使用して、参照閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸の参照開始コピー数を推定することと、第１の標的核酸の第１の開始コピー数および参照核酸の参照開始コピー数に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することと、第２の標的核酸の第２の開始コピー数および参照核酸の参照開始コピー数に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することと、第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値に基づいて試験サンプルの診断スコアを推定することと、試験サンプルの診断スコアを所定の閾値診断スコアと比較することにより、病状の臨床診断を行うことと、含む。

別の態様において、本明細書中で提供されるのは、リアルタイム定量的等温増幅を使用して試験サンプルの診断スコアを推定するための装置である。いくつかの実施形態において、この装置は、試験サンプルの第１のアリコートを保持するように構成された第１の反応容器、および試験サンプルの第２のアリコートを保持するように構成された第２の反応容器を含む。試験サンプルは、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸を含有する。第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の各々は、哺乳類宿主核酸を含む。第１の反応容器および第２の反応容器の各々は、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する。第１のアリコートは第１の体積を有し、第２のアリコートは第１の体積よりも大きい第２の体積を有する。第２の標的核酸は、試験サンプルにおいて第１の標的核酸よりも予想存在比が低い。この装置は、第１の閾値蛍光強度値および第２の閾値蛍光強度値を記憶するためのコンピュータメモリをさらに含む。この装置はさらに、第１の標的核酸および参照核酸を増幅する第１の反応容器において第１の等温増幅反応を開始するための手段を含む。第１の等温増幅反応は、第１の標的核酸に関連する第１の蛍光および参照核酸に関連する第１の参照蛍光を生成し得る。この装置はさらに、第１の反応容器に光学的に連結された第１の蛍光検出器および第１の参照蛍光検出器を含む。第１の蛍光検出器は、時間の関数として第１の蛍光の強度を測定し、時間の関数として第１の参照蛍光の第１の参照強度を測定するように構成される。この装置はさらに、第２の標的核酸および参照核酸を増幅する第２の反応容器内で第２の等温増幅反応を開始するための手段を含む。第２の等温増幅反応は、第２の標的核酸に関連する第２の蛍光および参照核酸に関連する第２の参照蛍光を生成し得る。この装置はさらに、第２の反応容器に光学的に連結された第２の蛍光検出器および第２の参照蛍光検出器を含む。第２の蛍光検出器は、時間の関数として第２の蛍光の強度を測定し、時間の関数として第２の参照蛍光の第２の参照強度を測定するように構成される。この装置はさらに、第１の蛍光検出器、第２の蛍光検出器、第１の参照蛍光検出器、第２の参照蛍光検出器およびコンピュータメモリに連結されたコンピュータプロセッサを含む。コンピュータプロセッサは、関数時間としての第１の蛍光の強度および第１の閾値蛍光強度値に基づいて、第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定し、関数時間としての第１の参照蛍光の強度および第１の閾値蛍光強度値に基づいて、参照核酸の第１の参照閾値までの時間値を決定し、少なくとも第１の閾値までの時間値および第１の参照閾値までの時間値に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定し、関数時間としての第２の蛍光の強度および第２の閾値蛍光強度値に基づいて、第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定し、関数時間としての第２の参照蛍光の強度および第２の閾値蛍光強度値に基づいて、参照核酸の第２の参照閾値までの時間値を決定し、少なくとも第２の閾値までの時間値および第２の参照閾値までの時間値に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定し、第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値に基づいて、試験サンプルの診断スコアを推定するように構成される。

いくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅アッセイにおける、時間の関数としての蛍光強度の例示的なプロットを示す。 いくつかの実施形態による、標的核酸の濃度が異なる８つのサンプルのリアルタイム定量的等温増幅アッセイにおける時間の関数としての蛍光強度の例示的なプロットを示す。 いくつかの実施形態による、図２に示す蛍光曲線から得られたコピー数の対数に対する閾値までの時間値を表すデータポイントの散布図およびデータポイントの線形回帰から得られた直線を示す。 いくつかの実施形態による、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法を示す簡略化されたフローチャートを示す。 他のいくつかの実施形態による、試験サンプルのリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法を示す簡略化されたフローチャートを示す。 いくつかの実施形態による、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法を示す簡略化されたフローチャートを示す。 いくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅アッセイを使用して相対存在比値を推定するための装置の概略ブロック図を示す。 ゴールドスタンダードアッセイ（ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒ）と比較した、定量的リアルタイム等温増幅アッセイを使用して決定された、参照核酸（ＹＷＨＡＢ）に対する標的核酸（ＩＦＩ２７）の相対存在比に関するピアソン係数との相関プロットを示すグラフである。値は、両アッセイ共Ｌｏｇ_２（存在比倍率（Ｆｏｌｄ Ａｂｕｎｄａｎｃｅ））としてプロットされ、診断に応じて割り当てられる：丸はウイルス感染症を表し、四角は細菌性敗血症を表す。三角は健康な対照を表す。線は、標準的な線形回帰分析による曲線適合を表す。 いくつかの実施形態による、等温増幅アッセイおよびゴールドスタンダードのＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒによって決定された診断スコアに関連付けられたピアソン係数との相関プロットを示す。 いくつかの実施形態による、ｑＬＡＭＰアッセイに基づくＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒスコア分布を示す。 いくつかの実施形態による、ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒに基づくＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒスコア分布を示す。 いくつかの実施形態による、カットオフ値が標準曲線滴定への線形回帰適合のｙ切片として定義される例を示す。 いくつかの実施形態による、マルチボリューム反応容器を使用したｑＬＡＭＰアッセイの実験結果を示す。

本発明を説明する前に、本発明は、記載された特定の実施形態に限定されず、当然それ自体変化し得ることを理解されたい。本明細書で使用される用語は、特定の実施形態を説明するためのものにすぎず、限定することを意図したものではないことも理解されたい。

本開示は、試験サンプル中の標的核酸の相対存在比を決定するための方法、装置およびキットを提供する。ｑＰＣＲは当該技術分野で周知であるが、等温増幅技術は、臨床的に関連するサンプル中の標的核酸を定量する方法をさらに進歩させることができなかった。例えば、細菌またはウイルスの核酸を定量するためのｑＬＡＭＰ法は、１，０００コピー未満では信頼できない場合がある（Ｎｉｘｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２０１４），Ｂｉｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ ２：４−１０を参照）。したがって、必要なのは、サンプル中の標的核酸の開始コピー数とは無関係に、サンプル中の標的哺乳類ｍＲＮＡの存在を定量するための方法である。本明細書中で提供されるのは、開始コピー数に基づくものではなく、サンプル中の標的核酸または参照核酸の絶対定量を必要としない、試験サンプル中の参照核酸に対する標的核酸の相対存在比を決定するための方法、装置およびキットである。これら方法、装置およびキットは、リアルタイム定量的等温増幅を利用して、試験サンプル中の標的核酸および参照核酸を増幅する。いくつかの態様において、標的核酸は、細菌またはウイルス感染症に応答して宿主によって発現される哺乳類宿主核酸（例えば、ｍＲＮＡ）である。相対定量は、同じアッセイで各標的に対して標準曲線を実行する必要なしに、またはさらには標準曲線を使用せずに、サンプル全体にわたって安定して、複数の哺乳類ＲＮＡマーカーに依存する特定の診断アルゴリズム（例えば、公開特許出願第ＷＯ２０１６／１４５４２６号、第ＷＯ２０１７／０６６６４１号、第ＷＯ２０１８／００４８０６号および第ＷＯ２０１７／２１４０６１号を参照）の計算を行うのに十分である。

いくつかの実施形態において、定量的リアルタイム等温増幅は、鎖置換増幅（ＳＤＡ）、転写介在増幅（ＴＭＡ）、核酸配列ベースの増幅（ＮＡＳＢＡ）、リコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）、分岐増幅、ヘリカーゼ依存性等温ＤＮＡ増幅（ＨＤＡ）、ニッキング酵素増幅反応（ＮＥＡＲ）およびループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）（例えば、Ｎｏｔｏｍｉ ｅｔ ａｌ．，（２０００）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２８（１２）Ｅ６３（参照により本明細書に組み込まれる））を含む。

別段の定義がない限り、本明細書で使用される技術用語および科学用語はすべて、本発明が属する技術の分野における当業者によって一般に理解されているのと同じ意味を有する。本発明の実施または試験には、本明細書に記載されているのと類似または同等の任意の方法および材料を使用することができるが、好ましい方法および材料について記載する。本明細書に言及されているすべての刊行物およびアクセッション番号は、刊行物の引用に関連する方法および／または材料を開示および記載するために、参照により本明細書に組み込まれる。

一般に、本明細書で使用される命名法、ならびに細胞培養、分子生物学、有機化学および以下に記載される核酸化学およびハイブリダイゼーションにおける実験手順は、当該技術分野で周知であり、一般的に使用されるものである。核酸およびペプチド合成には、標準的な技術が使用される。これらの技術および手順は、一般に、本文書全体に提供されている、当該技術分野における従来の方法および様々な一般的参考文献に従って実行される（一般に、Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，２ｄ ｅｄ．（１９８９）Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．（参照により本明細書に組み込まれる）を参照）。

別段の定義がない限り、本明細書で使用される技術用語および科学用語はすべて、本主題が属する技術の分野における当業者によって一般に理解されているのと同じ意味を有する。本明細書の開示全体を通して言及されるすべての特許、特許出願、公開出願および刊行物、ＧＥＮＢＡＮＫ配列、ウェブサイト、ならびに他の出版物は、特に明記しない限り、それらの全体が参照により組み込まれる。本書の用語に複数の定義がある場合は、本章における定義が優先される。ＵＲＬ、または他のかかる識別子もしくはアドレスを参照する場合、かかる識別子は変更されることがあり、インターネット上の特定の情報は移り変わることがあるが、同等の情報は既知であり、インターネットおよび／または好適なデータベースを検索するなどして容易にアクセスできるものと理解される。それらの参照は、かかる情報の利用可能性および公的普及を証明するものである。

本明細書で使用される場合、「ａ（一つの）」、「ａｎ（一つの）」、および「ｔｈｅ（その）」という用語は、１つまたは複数を意味するように定義され、文脈が不適切でない限り、複数形を含む。本出願では、特に明記されていない限り、単数形の使用には複数形が含まれる。

範囲は、本明細書では、「ａｂｏｕｔ（約）」１つの特定値から、および／または「約」別の特定値までとして表現することができる。本明細書で使用される場合、「約」という用語は、近似（ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｙ）、〜の辺り（ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｇｉｏｎ ｏｆ）、大体（ｒｏｕｇｈｌｙ）、またはおおよそ（ａｒｏｕｎｄ）を意味する。「約」という用語を数値範囲と組み合わせて使用する場合、この用語は、示された数値の上下の境界を拡張することによってその範囲を変更する。一般に、「約」という用語は、本明細書では、表示値の上下１０％だけ分散した数値に変更するために使用される。かかる範囲を表現する場合、別の実施形態は、１つの特定値からおよび／または他の特定値までを含む。同様に、値を近似値として表現する場合、先行詞「約」を使用することにより、指定された値が別の実施形態を形成することが理解される。各範囲の端点が範囲に含まれることがさらに理解される。

本明細書で使用される場合、「ｏｒ（または／もしくは）」という単語は、特定リストの任意の１つのメンバーを意味し、そのリストのメンバーの任意の組み合わせも含む。

本明細書で使用される場合、「ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ（含む）」という用語、ならびに他の形態（例えば、「ｉｎｃｌｕｄｅ」、「ｉｎｃｌｕｄｅｓ」および「ｉｎｃｌｕｄｅｄ」）は、限定的ではない。

本明細書で使用される場合、「相対存在比値」という用語は、試験サンプル中の標的核酸の測定値を指す。いくつかの実施形態において、相対存在比値は、遺伝子発現の差が異なるサンプル（例えば、異なる対象から得られたサンプルまたは単一の被験者から異なる時間（例えば、前処理と後処理）に得られたサンプル）間で比較できるように、試験サンプル中の標的核酸およびハウスキーピング遺伝子の等温増幅を実行することによって推定される。

本明細書で使用される場合、「標的核酸」という用語は、例えば、病原性（例えば、細菌またはウイルス）活性に応答して、哺乳類宿主遺伝子から発現される哺乳類ＲＮＡ配列を指す。哺乳類ＲＮＡとしては、ヒト、ならびに、ウマ、ネコ、イヌ、ブタおよびヒツジなどのヒト以外の哺乳動物を挙げることができる。好ましい実施形態では、標的核酸は哺乳類ｍＲＮＡである。いくつかの実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主ｍＲＮＡ内のスプライスジャンクションを包含する。

本明細書で使用される場合、「参照核酸」または「内因性対照」という用語は、標的核酸量を正規化するために使用される試験サンプル中に存在する核酸を指す。参照核酸は、試験サンプルに通常見られる天然の核酸（ハウスキーピング遺伝子ｍＲＮＡなど）を含み得るか、または標的核酸量を正規化するために試験サンプル内にスパイクされた既知量の入力材料を含み得る。

本明細書で使用される場合、「試験サンプル」という用語は、哺乳類から得られた生物学的サンプルを指す。場合によっては、生物学的サンプルは、臨床手順中に得られるか、または医師または医師助手によって得られる臨床サンプルであり、例えば、子宮頸部または膣スワブ、鼻腔スワブ、血液または血液成分サンプル（血漿、血清またはＰＭＢＣなど）である。いくつかの実施形態において、生物学的サンプルは、粘液、便または尿サンプルなどの排泄された生物学的サンプルを含む。いくつかの実施形態において、試験サンプルは、鼻腔スワブ、頬スワブ、フィンガースティック血液などの自己収集標本である。

「等温増幅」という用語は、一定の単一増幅温度（例えば、約３０℃〜約９５℃）を使用して標的核酸が増幅されるプロセスを指す。標準的なＰＣＲとは異なり、等温増幅反応は、増幅された標的核酸分子（すなわち、アンプリコン）の集団を形成するための、アニーリングされたオリゴヌクレオチドの変性、ハイブリダイゼーションおよび伸長の複数のサイクルを含まない。ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）、核酸配列ベースの増幅ＮＡＳＢＡ、リコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）、ニッキング酵素増幅反応（ＮＥＡＲ）およびヘリカーゼ依存性増幅（ＨＤＡ）を含むがこれらに限定されない、当該技術分野で知られている様々なタイプの等温用途がある。

本明細書で使用される場合、「リアルタイム定量的等温増幅」という用語は、標的核酸が一定温度で増幅され、標的核酸の増幅速度が蛍光、濁度（ｔｕｂｉｄｉｔｙ）または同様の手段（ＮＥＡＲまたはＬＡＭＰなど）によって監視されるプロセスを指す。いくつかの態様において、ＲＮＡ（ｍＲＮＡなど）は、生物学的サンプルから単離され、ｃＤＮＡを合成するためのテンプレートとして使用される。逆転写は、ｍＲＮＡをｃＤＮＡに変換するための周知の方法である。増幅された標的核酸の生成物を検出および定量できるように、ｃＤＮＡ分子は等温増幅条件下で増幅される。本明細書で使用される場合、「増幅速度」は、標的核酸アンプリコンが生成される速度である。

本明細書で使用される場合、「ポリメラーゼ」は、ポリヌクレオチド、例えば、ＤＮＡおよび／またはＲＮＡのテンプレート指向性合成を実行する鎖置換活性と共に使用される１つ以上の酵素を指す。この用語は、全長ポリペプチドおよびポリメラーゼ活性を有するドメインの両方を包含する。市販のポリメラーゼ酵素のさらなる例としては、クレノウフラグメント（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ（登録商標）Ｉｎｃ．）、Ｔａｑ ＤＮＡポリメラーゼ（ＱＩＡＧＥＮ）、９°Ｎ（商標）ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ（登録商標）Ｉｎｃ．）、Ｄｅｅｐ Ｖｅｎｔ（商標）ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ（登録商標）Ｉｎｃ．）、Ｍａｎｔａ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｅｎｚｙｍａｔｉｃｓ（登録商標））、Ｂｓｔ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ（登録商標）Ｉｎｃ．）およびｐｈｉ２９ ＤＮＡポリメラーゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ（登録商標）Ｉｎｃ．）が挙げられるが、これらに限定されない。Ｂｓｔ２．０、Ｂｓｔ３．０およびＢｓｔ２．０ ＷａｒｍＳｔａｒｔ（登録商標）ＤＮＡポリメラーゼ（すべてＮｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ（登録商標）Ｉｎｃ．から市販されている）などのポリメラーゼは、ＬＡＭＰに適している。ＬＡＭＰは、ＤＮＡポリメラーゼと共に逆転写酵素（ＲＴａｓｅ）を使用すると、ＲＮＡに適用できる。

ポリメラーゼには、ＤＮＡ依存性ポリメラーゼおよび逆転写酵素などのＲＮＡ依存性ポリメラーゼの両方が含まれる。ＤＮＡ依存性ＤＮＡポリメラーゼの少なくとも５つのファミリーが知られているが、ほとんどはファミリーＡ、ＢおよびＣに分類される。他のタイプのＤＮＡポリメラーゼとしては、ファージポリメラーゼが挙げられる。同様に、ＲＮＡポリメラーゼとしては、典型的には、真核生物ＲＮＡポリメラーゼＩ、ＩＩおよびＩＩＩ、ならびに細菌ＲＮＡポリメラーゼ、ならびにファージおよびウイルスポリメラーゼが挙げられる。ＲＮＡポリメラーゼは、ＤＮＡ依存性およびＲＮＡ依存性であり得る。

本明細書で使用される場合、「標準曲線」という用語は、当該技術分野において明白かつ通常の意味が与えられている。通常、標準曲線は、例えばテンプレートの段階希釈によって、標的核酸の異なる濃度のサンプルのセットから導き出される。閾値までの時間値は、濃度の対数（例えば、１０を底とする）に対してプロットされる。最小二乗適合が標準曲線として使用される。

本明細書で使用される場合、「等温増幅のためのマスターミックス」という用語は、等温増幅アッセイを実行するために必要なｄＮＴＰ、塩（例えば、マグネシウム）および緩衝液などの複数の成分を指す。場合によっては、等温増幅のためのマスターミックスは、リアルタイム定量的等温増幅マスターミックスである。いくつかの実施形態において、等温増幅のためのマスターミックスは、増幅されるプライマー、プローブおよび核酸テンプレートを除いて、等温増幅反応を実行するために必要とされるすべての成分を含有する。

「蛍光標識」または「フルオロフォア」という用語は、約４００〜約９００ｎｍの蛍光発光極大を有する化合物を指す。括弧内の発光極大（単位：ｎｍ）を有するこれらの化合物としては、Ｓｙｔｏ−９、Ｓｙｔｏ−８２、Ｃｙ２（商標）（５０６）、ＧＦＰ（レッドシフト）（５０７）、ＹＯ−ＰＲＯ（商標）−１（５０９）、ＹＯＹＯ（商標）−１（５０９）、Ｃａｌｃｅｉｎ（５１７）、ＦＩＴＣ（５１８）、ＦｌｕｏｒＸ（商標）（５１９）、Ａｌｅｘａ（商標）（５２０）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ１１０（５２０）、５−ＦＡＭ（５２２）、Ｏｒｅｇｏｎ Ｇｒｅｅｎ（商標）５００（５２２）、Ｏｒｅｇｏｎ Ｇｒｅｅｎ（商標）４８８（５２４）、Ｒｉｂｏ Ｇｒｅｅｎ（商標）（５２５）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ Ｇｒｅｅｎ（商標）（５２７）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ １２３（５２９）、ＭａｇｎｅｓｉｕｍＧｒｅｅｎ（商標）（５３１）、ＣａｌｃｉｕｍＧｒｅｅｎ（商標）（５３３）、ＴＯ−ＰＲＯ（商標）−１（５３３）、ＴＯＴＯ（登録商標）−１（５３３）、ＪＯＥ（５４８）、ＢＯＤＩＰＹ（登録商標）５３０／５５０（５５０）、Ｄｉ１（５６５）、ＢＯＤＩＰＹ（登録商標）５５８／５６８（５６８）、ＢＯＤＩＰＹ（登録商標）５６４／５７０（５７０）、Ｃｙ３（商標）（５７０）、Ａｌｅｘａ（商標）５４６（５７０）、ＴＲＩＴＣ（５７２）、ＭａｇｎｅｓｉｕｍＯｒａｎｇｅ（商標）（５７５）、Ｐｈｙｃｏｅｒｙｔｈｒｉｎ Ｒ＆Ｂ（５７５）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ Ｐｈａｌｌｏｉｄｉｎ（５７５）、ＣａｌｃｉｕｍＯｒａｎｇｅ（商標）（５７６）、Ｐｙｒｏｎｉｎ Ｙ（５８０）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ Ｂ（５８０）、ＴＡＭＲＡ（５８２）、ＲｈｏｄａｍｉｎｅＲｅｄ（商標）（５９０）、Ｃｙ３．５（商標）（５９６）、ＲＯＸ（６０８）、Ｃａｌｃｉｕｍ Ｃｒｉｍｓｏｎ（商標）（６１５）、Ａｌｅｘａ（商標）５９４（６１５）、ＴｅｘａｓＲｅｄ（登録商標）（６１５）、Ｎｉｌｅ Ｒｅｄ（６２８）、ＹＯ−ＰＲＯ（商標）−３（６３１）、ＹＯＹＯ（商標）−３（６３１）、Ｒ−ｐｈｙｃｏｃｙａｎｉｎ（６４２）、Ｃ−Ｐｈｙｃｏｃｙａｎｉｎ（６４８）、ＴＯ−ＰＲＯ（商標）−３（６６０）、ＴＯＴＯ（登録商標） −３（６６０）、ＤｉＤ ＤｉｌＣ（５）（６６５）、Ｃｙ５（商標）（６７０）、Ｔｈｉａｄｉｃａｒｂｏｃｙａｎｉｎｅ（６７１）およびＣｙ５．５（６９４）が挙げられるが、これらに限定されない。さらなるフルオロフォアは、ＰＣＴ特許公開第ＷＯ０３／０２３３５７号および米国特許第７，６７１，２１８号に開示されている。これらのおよび他の好適な蛍光色素クラスの例としては、Ｈａｕｇｌａｎｄ ｅｔ ａｌ．，Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐｒｏｂｅｓ ａｎｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，Ｓｉｘｔｈ Ｅｄ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｅｕｇｅｎｅ，Ｏｒｅ．（１９９６）；米国特許第３，１９４，８０５号、第３，１２８，１７９号、第５，１８７，２８８号、第５，１８８，９３４号、第５，２２７，４８７号、第５，２４８，７８２号、第５，３０４，６４５号、第５，４３３，８９６号、第５，４４２，０４５号、第５，５５６，９５９号、第５，５８３，２３６号、第５，８０８，０４４号、第５，８５２，１９１号、第５，９８６，０８６号、第６，０２０，４８１号、第６，１６２，９３１号、第６，１８０，２９５号および第６，２２１，６０４号、欧州特許第１４０８３６６号；Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｈｅｍ． Ｓｏｃ． Ｐｅｒｋｉｎ Ｔｒａｎｓ．２：１１９５−１２０４（１９９３）；Ｗｈｉｔａｋｅｒ，ｅｔ ａｌ．，Ａｎａｌ． Ｂｉｏｃｈｅｍ．２０７：２６７−２７９（１９９２）；Ｋｒａｓｏｖｉｓｋｉｉ ａｎｄ Ｂｏｌｏｔｉｎ，Ｏｒｇａｎｉｃ Ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ，ＶＣＨ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎ Ｙ．（１９８８）；Ｚｏｌｌｉｇｅｒ，Ｃｏｌｏｒ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，ＶＣＨ Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎ Ｙ．（１９９１）；Ｈｉｒｓｃｈｂｅｒｇ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３７：１０３８１−１０３８５（１９９８）；Ｆｉｅｓｅｒ ａｎｄ Ｆｉｅｓｅｒ，ＲＥＡＧＥＮＴＳ ＦＯＲ ＯＲＧＡＮＩＣ ＳＹＮＴＨＥＳＩＳ，Ｖｏｌｕｍｅｓ １ ｔｏ １７，Ｗｉｌｅｙ，ＵＳ（１９９５）；ならびにＧｅｉｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ ３５９：８５９−８６１（１９９２）に見出すことができる。

クエンチャーとフルオロフォアとの対、ならびにそれらのオリゴヌクレオチドへの結合を選択するための当該技術分野における広範なガイダンスが存在する（Ｈａｕｇｌａｎｄ，１９９６、米国特許第３，９９６，３４５号および第４，３５１，７６０号など）。例示的なクエンチャーは、米国特許第６，７２７，３５６号（参照により本明細書に組み込まれる）に記載されている。他のクエンチャーとしては、ビスアゾクエンチャー（米国特許第６，７９０，９４５号）およびＢｉｏｓｅａｒｃｈ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｉｎｃ．の色素（Ｂｌａｃｋ Ｈｏｌｅ（商標）Ｑｕｅｎｃｈｅｒｓとして提供：ＢＨ−１、ＢＨ−２およびＢＨ−３クエンチャー）、Ｄａｂｃｙｌ、ＴＡＭＲＡおよびカルボキシテトラメチルローダミンが挙げられるが、これらに限定されない。

任意の好適なフルオロフォアを使用して、等温増幅反応中に組み込まれたプライマー、プローブまたはヌクレオチドを蛍光標識することができる。いくつかの実施形態において、蛍光標識は、これらに限定されないが、Ｓｙｔｏ−９、Ｓｙｔｏ−８２、ＳＹＢＲ（登録商標）、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３２５８またはＤＡＰＩなどのインターカレート剤である。

本明細書で使用する場合、「閾値までの時間」という用語は、等温増幅が開始された瞬間から、標的核酸の濃度を表す蛍光強度が所定の閾値に達する瞬間までの経過時間を指す。等温増幅が開始されてからの時間に対する蛍光強度のプロット（例えば、図１に示されるような）において、閾値までの時間は、蛍光曲線が閾値を表す水平な線と交差するＸ軸交差点である。

本明細書で使用される場合、「コピー数」という用語は、元の試験サンプル中に存在する（すなわち、リアルタイム定量的等温増幅前の）標的核酸分子または参照核酸分子の数を指す。

本明細書で使用される場合、「Ｎ倍段階希釈」という用語は、好適な緩衝液（生理食塩水、水など）を使用して、一定の希釈係数（１：５、１：１０、１：２０または１：５０）で、溶液の第１の成分（参照核酸など）を段階的に希釈することを指す。例えば、１０倍段階希釈は、第１の成分（１００ｍｇ／ｍｌの濃度で存在する参照核酸など）を希釈係数１０（１：１０など）で段階希釈して、１０ｍｇ／ｍｌの濃度で存在する参照核酸の第１の段階希釈物を形成し、続いて、第１の段階希釈物の２度目の１０倍希釈を行う（例えば、１ｍｇ／ｍｌの濃度で存在する参照核酸の２度目の段階希釈物を形成するため）ことなどを必要とする。

本明細書で使用される場合、「線形回帰」という用語は、従属変数と１つ以上の独立変数との間の関係をモデル化するための統計的な線形アプローチを指す。線形回帰において、関係は、未知のモデルパラメーターがデータから推定される線形予測関数（ｌｉｎｅａｒ ｐｒｅｄｉｃｔｏｒ ｆｕｎｃｔｉｏｎｓ）を使用してモデル化される。このようなモデルは線形モデルと呼ばれる。通常、単一の独立変数の場合、（ｘ，ｙ）データポイントが散布図としてグラフ形式でプロットされる。ここで、ｘは独立変数であり、ｙは従属変数である。線形回帰は、従属変数と独立変数の間との関係を表す「最適線」を得ることを目的としている。線形回帰モデルは、最小二乗アプローチを使用して適合される場合が多いが、他のノルムにおける「コスト関数」を最小化するなど、他の方法（例えば、Ｌ１−ノルムペナルティまたはＬ２−ノルムペナルティ）でも適合され得る。

本明細書で使用される場合、定量的等温増幅アッセイの「線形ダイナミックレンジ」という用語は、閾値までの時間対濃度の対数（例えば、２または１０を底とする）のプロットが線形である標的核酸の入力濃度の範囲を指す。

本明細書で使用される場合、「ダイナミックレンジ」という用語は、所与のアッセイ（例えば、ＬＡＭＰ）が検出することができるサンプル濃度または入力量の範囲（最大から最小まで）を指す。

本明細書で使用される場合、「診断スコア」という用語は、病状を分類または診断するための統合されたスコアを指す。診断スコアは、特定のアルゴリズムを使用して病状に関連すると識別されたいくつかのバイオマーカーの発現レベルを、臨床的に関連する閾値を適用できる単一のスコアに結合する。例示的なアルゴリズムについては、以下のＪ、ＫおよびＬ章で説明する。

本明細書で使用される場合、「集団試験」という用語は、１つ以上のバイオマーカーの発現レベルの統計を確立するための臨床的に代表的な集団の研究を指す。本明細書で使用される「臨床的に代表的な集団」という用語は、統計的有意性を確立するのに十分な大きさの個人のグループを指す。例えば、集団試験では、特定の疾患がある患者とない患者のバイオマーカーを測定し、スチューデントのｔ検定、ウェルチのｔ検定、マンホイットニーのＵ検定、または分散分析（ＡＮＯＶＡ）、Ｆ検定などを使用してバイオマーカーが差次的に発現されるか否かを確認することができる。統計的有意性は、例えば、ｐ＜０．０５に設定することができる。

本明細書で使用される場合、「機械学習モデル」という用語は、コンピュータシステムがパターンおよび一連の試験データからの推論に依存するタスクを実行するために使用するアルゴリズムまたは統計モデルを指す。いくつかのバイオマーカーを診断スコアに統合する特定のアルゴリズムは、機械学習モデルであり得る。例示的な機械学習モデルには、線形回帰、ロジスティック回帰、決定木、サポートベクターマシン（ＳＶＭ）、ランダムフォレスト、Ｋ−平均法、人工ニューラルネットワーク（ＡＮＮ）などが含まれる。

本明細書で使用される場合、「ホットスタート」という用語は、増幅に使用されるポリメラーゼを不活性化することによって核酸の非特異的増幅を防ぐ増幅プロセスのバリエーションを指す。ホットスタートは、プライマーダイマーの形成およびプライマーの非標的核酸への非特異的アニーリング（その後、非標的核酸は増幅中に伸長される）を低減する。ホットスタートには様々な手法がある（例えば、Ｐａｕｌ ｅｔ ａｌ．，（２０１０）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．，６３０：３０１−１８を参照）。例えば、ポリメラーゼは、抗体、アプタマーまたは化学修飾を使用することによって不活性化することができ、その結果、ポリメラーゼ（室温および／または氷上で適度に活性であり得る）は、最適以下の温度で機能するのを阻止される。ホットスタートプロセスでは、最初の活性化ステップ（９５℃など）を実行して、ポリメラーゼを活性化する。この最初の熱活性化ステップはまた、ポリメラーゼに連結した抗体を不活性化するか、またはポリメラーゼから化学修飾（リジン修飾など）を除去する。これらの成分が不活性化されると、ポリメラーゼは試験サンプル中に存在する標的核酸を増幅することができる。いくつかの実施形態において、本明細書に開示される方法は、リアルタイム定量的等温増幅アッセイで使用される抗体、アプタマーまたはポリメラーゼに対する化学修飾などのホットスタート機構を含む。

「プライマー」は、標的核酸上の相補的配列にハイブリダイズし、核酸合成の開始点として機能するポリヌクレオチド配列を指す。プライマーは様々な長さであり得、長さが８０ヌクレオチド未満、例えば、長さが２０〜７０ヌクレオチドである場合が多い。一実施形態において、本出願の全長標的特異的プライマーは、３０〜６５ヌクレオチド長、例えば、３０、３５、４０、４５、５０、５５、６０または６５ヌクレオチド長を含み得る。いくつかの実施形態において、多重増幅反応混合物は、２０〜６５ヌクレオチド長の１つ以上の完全長の標的特異的プライマーを含み得る。異なる長さの標的特異的プライマーを多重増幅反応で使用して、多重全長標的特異的プライマーのうちの１つまたは複数が、多重全長標的特異的プライマー対の残りと比較して異なるヌクレオチド長を含むようにすることができる（４５ヌクレオチドのヌクレオチド長を有する第１の全長標的特異的プライマーおよび５８ヌクレオチドのヌクレオチド長を有する第２の全長標的特異的プライマーを含む多重増幅反応など）。等温増幅で使用するためのプライマーの長さおよび配列は、当業者に知られている原理に基づいて設計することができる。例えば、Ｉｎｎｉｓ ｅｔ ａｌ．，ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ（Ｉｎｎｉｓ ｅｔ ａｌ．，ｅｄｓ，１９９０）を参照。プライマーの設計および評価には様々なツールがある（ＮＣＢＩ−Ｂｌａｓｔソフトウェアなど）。本出願では、等温増幅反応中のミスハイブリダイゼーションの可能性を低減するために、高度に縮重した配列を有するプライマーを回避することができる。プライマーは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、またはＤＮＡおよびＲＮＡ部分のキメラから調製できる。場合によっては、プライマーは、１つ以上の修飾ヌクレオシド（２−アミノ−デオキシアデノシンなど）または非天然ヌクレオチド塩基（ＤＮＡプライマー中のウラシルなど）を含み得る。場合によっては、プライマーは、ＦＲＥＴドナーおよびＦＲＥＴアクセプター部分などの蛍光標識を含むことができる。

本明細書で使用される場合、「プローブ」という用語は、天然に存在するか、合成的に、組換え的に、または増幅によって生成されるかにかかわらず、目的の別のオリゴヌクレオチドにハイブリダイズすることができるオリゴヌクレオチドを指す。プローブは一本鎖または二本鎖であり得る。プローブは、特定の遺伝子配列の検出、同定および単離に役立つ。一実施形態において、本発明において使用される任意のプローブは、標識が、蛍光、放射性および発光システムを含む任意の検出システムにおいて検出可能であるように標識されることが企図される。本発明が特定の検出システムまたはラベルに限定されることを意図するものではない。

本明細書で使用される場合、「アンプリコン」という用語は、当該技術分野における通常の慣習的な使用を保持している。アンプリコンは、ＤＮＡまたはｃＤＮＡテンプレートから生成された増幅生成物である。

本明細書で使用される場合、「相対定量」という用語は、単一サンプルにおける標的核酸の発現レベルと参照核酸の発現レベルとの間の比較、または異なるサンプルにおける同じ標的核酸の発現レベル間の比較を指す。相対定量は、サンプル中の標的核酸の絶対量を決定することを含む「絶対定量」とは対照的である。

Ａ．試験サンプル
いくつかの実施形態において、本明細書に記載される方法、装置および関連キットは、試験サンプルを利用する。いくつかの実施形態において、試験サンプルは、疾患または病状を特定する目的で診断評価のために採取された臨床サンプル（例えば、鼻腔スワブ、生検または採血）から得られる。いくつかの実施形態において、試験サンプルは、医師または獣医によって得られる。いくつかの実施形態において、試験サンプルは、鼻腔スワブ、頬スワブなどの自己収集標本である。いくつかの実施形態において、試験サンプルは、医療装置（例えば、白血球アフェレーシス装置）によって得られる。任意の好適な試験サンプルを使用して、本発明を実施してもよい。

いくつかの実施形態において、サンプルは、ヒトなどであるがこれに限定されない哺乳類から得られる。いくつかの実施形態において、サンプルは、チンパンジー、ネコ、イヌ、ブタ、ヒツジまたはウシなどであるがこれらに限定されない非ヒト哺乳類から得られる。いくつかの実施形態において、試験サンプルは、健康なまたは疾患のある哺乳類から得られる。いくつかの実施形態において、サンプルは、ウイルス感染症または細菌感染症と診断された、またはその疑いがある哺乳類対象から得られる。いくつかの実施形態において、哺乳類対象は、細菌感染症（例えば、Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）を有している疑いがある。いくつかの実施形態において、哺乳類対象は、ウイルス感染症（例えば、ＨＩＶ）を有している疑いがある。

いくつかの実施形態において、宿主から得られる試験サンプルは、尿、唾液、血液または血液成分（血清、血漿および末梢血単核細胞（ＰＭＢＣ）などであるが、これらに限定されない）などの体液を含む。任意の好適な体液を使用して、本発明を実施してもよい。

Ｂ．標的核酸
いくつかの実施形態において、本明細書に記載される方法、装置および関連キットは、標的核酸を利用する。いくつかの実施形態において、標的核酸は、哺乳類核酸である。いくつかの実施形態において、標的核酸は、宿主核酸（例えば、宿主の細胞によって生成されるか、または試験サンプルの供給源から得られたサンプルにおいて検出される）である。いくつかの実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主核酸（哺乳類ＤＮＡまたはＲＮＡなど）である。いくつかの実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主ＲＮＡである。好ましい実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主ｍＲＮＡである。一実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主ｍＲＮＡ内のスプライスジャンクションを包含する。一実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主ｍＲＮＡと同時に検出される病原体起源の核酸を包含する。

いくつかの実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主から得られたサンプル中に存在し、標的核酸は、宿主サンプルから単離される（ＲＮＡ抽出など）。いくつかの実施形態において、標的核酸は、哺乳類宿主（全血など）から得られたサンプル中に存在し、標的核酸は、宿主サンプル（例えば、ＱＩＡａｍｐ ＲＮＡ血液ミニキット、Ｑｉａｇｅｎ、カタログ番号：５２３０４）から単離される。

いくつかの実施形態において、哺乳類宿主の標的核酸は、参照核酸と比較して、試験サンプル中により多く存在する。いくつかの実施形態において、哺乳類宿主の標的核酸は、参照核酸と比較して、試験サンプル中により少なく存在する。任意の好適な哺乳類宿主核酸を使用して、本発明を実施してもよい。

Ｃ．参照核酸
いくつかの実施形態において、本明細書に記載される方法、装置および関連キットは、参照核酸を利用する。いくつかの実施形態において、参照核酸は、哺乳類核酸である。いくつかの実施形態において、参照核酸は、宿主核酸（例えば、宿主の細胞によって生成されるか、または試験サンプルの供給源から得られたサンプルにおいて検出される）である。いくつかの実施形態において、参照核酸は、哺乳類宿主核酸（哺乳類ＤＮＡまたはＲＮＡなど）である。いくつかの実施形態において、参照核酸は、哺乳類宿主ＲＮＡである。好ましい実施形態では、参照核酸は、哺乳類宿主ｍＲＮＡである。いくつかの実施形態において、哺乳類宿主核酸は、標的核酸と比較して、試験サンプル中により多く存在する。いくつかの実施形態において、哺乳類宿主核酸は、標的核酸と比較して、試験サンプル中により少なく存在する。好ましい実施形態では、参照核酸および標的核酸は、異なる遺伝子によって発現される。さらに別の実施形態において、参照核酸および標的核酸は、同じ哺乳類生物（例えば、ヒトまたはマウス）からの異なる遺伝子によって発現される。任意の好適な参照核酸を使用して、本発明を実施してもよい。

ハウスキーピング遺伝子
いくつかの実施形態において、参照核酸は、対応するｍＲＮＡ転写物などのハウスキーピング遺伝子またはその生成物である。いくつかの実施形態において、参照核酸は、プレｍＲＮＡ分子、５’キャップｍＲＮＡ分子、３’アデニル化ｍＲＮＡ分子または成熟ｍＲＮＡ分子であるｍＲＮＡ転写物を含む。好ましい実施形態では、参照核酸は、試験サンプルの供給源でもある哺乳類宿主から得られた成熟ｍＲＮＡ分子である。

いくつかの実施形態において、参照核酸は、哺乳類ハウスキーピング遺伝子またはその遺伝子生成物（例えば、ｍＲＮＡ）である。いくつかの実施形態において、ハウスキーピング遺伝子は、哺乳類宿主における１つ以上の細胞集団によって構成的に発現される（すなわち、継続的に転写される）遺伝子である。構成的に発現される遺伝子は、必要な場合にのみ転写される遺伝子を指す通性遺伝子と対比され得る。本発明との使用に好適である例示的なハウスキーピング遺伝子としては、アクチン、ＧＡＰＤＨおよびユビキチンが挙げられる。任意の好適なハウスキーピング遺伝子を使用して、本発明を実施してもよい。

いくつかの実施形態において、ハウスキーピング遺伝子またはその生成物は、宿主の細胞によって比較的一定の速度で発現され、その結果、ハウスキーピング遺伝子の発現速度は、他の宿主遺伝子またはその遺伝子生成物の発現に対する参照点として使用できる。

いくつかの実施形態において、参照核酸は、ヒトハウスキーピング遺伝子である。本発明との使用に好適である例示的なヒトハウスキーピング遺伝子としては、ＫＰＮＡ６、ＲＲＥＢ１、ＹＷＨＡＢ、染色体１オープンリーディングフレーム４３（Ｃ１ｏｒｆ４３）、荷電多小胞体タンパク質２Ａ（ＣＨＭＰ２Ａ）、ＥＲ膜タンパク質複合体サブユニット７（ＥＭＣ７）、グルコース−６−リン酸イソメラーゼ（ＧＰＩ）、プロテアソームサブユニット、ベータタイプ２（ＰＳＭＢ２）、プロテアソームサブユニット、ベータタイプ４（ＰＳＭＢ４）、メンバーＲＡＳ癌遺伝子ファミリー（ＲＡＢ７Ａ）、受容体補助タンパク質５（ＲＥＥＰ５）、核内低分子リボ核タンパク質Ｄ３（ＳＮＲＰＤ３）、バロシン含有タンパク質（ＶＣＰ）および液胞タンパク質ソーティング２９ホモログ（ＶＰＳ２９）が挙げられるが、これらに限定されない。いくつかの実施形態において、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ／ｔａｕ／ａｃ／ｉｌ〜ｅｌｉｅｉｓ／ＨＫＧ／で提供される任意のハウスキーピング遺伝子を使用することができる（Ｅｉｓｅｎｂｅｒｇ ａｎｄ Ｌｅｖａｎｏｎ．，Ｔｒｅｎｄｓ Ｇｅｎｅｔ．（２０１３），１０：５６９−７４を参照）。

いくつかの実施形態において、参照核酸は、ブタハウスキーピング遺伝子である。本発明との使用に好適である例示的なブタハウスキーピング遺伝子としては、ＡＣＴＢ、Ｂ２Ｍ、ＧＡＰＤＨ、ＨＭＢＳ、ＳＤＨＡ、ＨＰＲＴ１、ＴＢＰ、ＹＷＨＡＺおよびＲＰＬ３２が含まれるが、これらに限定されない。

いくつかの実施形態において、参照核酸は、ウシハウスキーピング遺伝子である。本発明との使用に好適である例示的なウシハウスキーピング遺伝子としては、ＡＣＴＢ、ＧＡＰＤＨ、ＨＭＢＳ、ＳＦ３Ａ１ ＨＰＲＴ１、Ｈ２ＡおよびＳＤＨＡが挙げられるが、これらに限定されない。

いくつかの実施形態において、参照核酸は、ウマハウスキーピング遺伝子である。本発明との使用に好適である例示的なウシハウスキーピング遺伝子には、ＡＣＴＢ、ＧＡＰＤＨ、ＴＯＰ２Ｂ、ＫＲＴ８およびＲＰＳ９が含まれるが、これらに限定されない。

Ｄ．試験サンプル処理
１．反応容器
いくつかの実施形態では、試験サンプルからの標的核酸および参照核酸が、第１の反応容器に供給される。本明細書で使用される場合、「反応容器」は、本発明を実施することができるシステムを指し、好適な表面（ガラス、プラスチック、シリコン、金属酸化物、ビーズおよびシラン化（例えば、アルコキシシラン）表面を含むが、これらに限定されない）上または内の試験管、マイクロ遠心チューブ、ウェル、チャンバー、マイクロウェル（例えば、９６、３８４、および１５３６ウェルアッセイプレート）、キャピラリーチューブ、マイクロ流体デバイスもしくは試験サイトを含むが、これらに限定されない。任意の好適な反応容器を使用して、本発明を実施してもよい。

いくつかの実施形態において、反応容器は、定量的等温増幅法の間、１０００μＬ未満の液体を収容する。別の実施形態において、反応容器は、定量的等温増幅法の間、約１５μＬ〜約７５０μＬの液体を収容する。

別の実施形態において、試験サンプルからの標的核酸は、第１の反応容器に収容され、試験サンプルからの参照核酸は、第２の反応容器に収容される。反応容器は、任意の有用な寸法（幅、長さ、高さなど）のものであり得、任意の好適な材料から構成され得る。好ましくは、本出願の反応容器（複数可）は、マイクロリットルまたはナノリットルのスケールである。

いくつかの実施形態において、複数の反応容器が複数の標的核酸に使用され、各反応容器はそれぞれの標的核酸の等温増幅に使用される。

いくつかの実施形態において、反応容器は、定量的等温増幅の前、後または最中に、標的核酸または参照核酸を試験サンプルから単離するための捕捉領域をさらに含むことができる。一実施形態において、反応容器は、定量的等温増幅後に試験サンプルから標的核酸および／または参照核酸を単離するための捕捉領域を含むことができる。いくつかの実施形態において、捕捉領域は、フィルター、マトリックス、ポリマー、ゲル、および本明細書に記載される任意のものを含む膜（例えば、シリカ膜、ガラス繊維膜、セルロース膜、ニトロセルロース膜、ポリスルホン膜、ナイロン膜、ポリフッ化ビニリデン膜、ビニルコポリマー膜もしくはイオン交換膜、繊維（例えば、ガラス繊維）、または粒子（シリカ粒子、ビーズ、アフィニティー樹脂もしくはイオン交換樹脂など）を含むことができる。

任意の好適な材料を反応容器として使用することができる。反応容器を形成するために使用される材料は、反応容器の適切な機能のために望ましい物理的および化学的特性に関して選択される。好適な材料としては、シリコーンポリマー（例えば、ポリジメチルシロキサンおよびエポキシポリマー）、ポリイミド（例えば、市販のＫａｐｔｏｎ（登録商標）（ポリ（４，４’ーオキシジフェニレン−ピロメリットイミド（ＤｕＰｏｎｔ、デラウェア州ウィルミントン））およびＵｐｉｌｅｘ（商標）（ポリ（ビフェニルテトラカルボン酸二無水物）（宇部工業株式会社、日本）））、ポリカーボネート、ポリエステル、ポリアミド、ポリエーテル、ポリウレタン、ポリフルオロカーボン、フッ素化ポリマー（例えば、ポリフッ化ビニリデン、ポリフッ化ビニリデン、ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、パーフルオロアルコキシポリマー、フッ素化エチレン−プロピレン、ポリエチレンテトラフルオロエチレン、ポリエチレンクロロトリフルオロエチレン、パーフルオロポリエチレン、パーフルオロスルホン酸、パーフルオロポリイミド、ＦＦＰＭ／ＦＦＫＭ（過フッ素化エラストマー［パーフルオロエラストマー］）、ＦＰＭ／ＦＫＭ（フルオロカーボン［クロロトリフルオロエチレンビニリデンフルオリド］）、およびそれらのコポリマー）、ポリエーテルエーテルケトン（ＰＥＥＫ）、ポリスチレン、ポリ（アクリロニトリル−ブタジエン−スチレン）（ＡＢＳ）、アクリレートおよびポリメチルメタクリレートなどのアクリル酸ポリマー、および他の置換および非置換ポリオレフィン（例えば、シクロオレフィンポリマー、ポリプロピレン、ポリブチレン、ポリエチレン（ＰＥ、例えば、架橋ＰＥ、高密度ＰＥ、中密度ＰＥ、線状低密度ＰＥ、低密度ＰＥまたは超高分子量ＰＥ）、ポリメチルペンテン、ポリブテン−１、ポリイソブチレン、エチレンプロピレンゴム、エチレンプロピレンジエンモノマー（Ｍクラス）ゴム）、ならびにそれらのコポリマー（例えば、シクロオレフィンコポリマー）などのポリマー材料；酸化アルミニウム、酸化ケイ素、酸化ジルコニウムなどのセラミック；シリコン、ガリウムヒ素などの半導体；ガラス；金属；ならびにそれらのコーティングされた組み合わせ、複合材料および積層体が挙げられる。

２．等温増幅タイミング機構
ホットスタート
いくつかの実施形態において、本明細書において提供される方法、装置およびキットは、標的核酸の増幅を確実にするために様々な機構を利用し、参照核酸を（例えば、互いに、および様々な非連続の実験反復にわたって）確実に比較することができる。場合によっては、方法および装置は、試験サンプル中の非特異的（例えば、偽）増幅生成物の生成を低減または阻害する「ホットスタート」機構を含む。ホットスタートは、各反応が同時に開始することを保証し得る。ホットスタート増幅を実行するための様々な技術が当該技術分野で知られている（例えば、Ｐａｕｌ ｅｔ ａｌ．，（２０１０）Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ．，６３０：３０１−１８を参照）。任意の好適なホットスタート機構を使用して、本発明を実施してもよい。

いくつかの実施形態において、「ホットスタート」機構は、定量的等温増幅アッセイのポリメラーゼ（例えば、ＲＮＡポリメラーゼまたはＤＮＡポリメラーゼ）を不活性化する１つ以上の抗体を含む。

いくつかの実施形態において、「ホットスタート」機構は、定量的等温増幅アッセイのポリメラーゼを不活性化する１つ以上のアプタマーを含む（例えば、ＷａｒｍＳｔａｒｔ ＬＡＭＰキット、Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓカタログ番号：Ｅ１７００Ｓ；およびＷａｒｍＳｔａｒｔ ＲＴｘ逆転写酵素、Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓカタログ番号：Ｍ０３８０Ｓを参照）。ポリメラーゼと共に使用するのに適した核酸ベースのアプタマーとしては、米国特許第５，４７５，０９６号、第５，６７０，６３７号、第５，６９６，２４９号、第５，８７４，５５７号および第５，６９３，５０２号に記載されているものが挙げられる。

いくつかの実施形態において、「ホットスタート」機構は、定量的等温増幅アッセイのポリメラーゼを不活性化する１つ以上の化学修飾を含む。いくつかの実施形態において、これら１つ以上の化学修飾は、増幅反応が９０℃を超える温度に達するまでポリメラーゼが不活性であるように、ポリメラーゼに存在する１つ以上のリジン残基が化学的に修飾されるリジン修飾を含む。

ホットスタート機構では、加熱を使用してポリメラーゼを活性化する。また、この最初の熱活性化は、ポリメラーゼに連結した抗体を不活性化するか、またはポリメラーゼから化学修飾（例えば、リジン修飾）を除去し得る。これらの成分が不活性化されると、ポリメラーゼは試験サンプルに存在する標的核酸を増幅することができる。

同時増幅
いくつかの実施形態において、本明細書において提供される方法、装置およびキットは、標的核酸の増幅を確実にするために同時増幅ステップを利用し、参照核酸を（例えば、互いに、および様々な非連続の実験反復にわたって）確実に比較することができる。いくつかの実施形態において、試験サンプル中の標的核酸の増幅（例えば、第１の反応容器内）は、試験サンプル中の参照核酸の増幅（第２の反応容器内）と同時に起こる。いくつかの実施形態において、同時増幅ステップは、同じ反応容器内で同時に（例えば、同一の開始および停止増幅反応時間）標的核酸および参照核酸を増幅することを含む。いくつかの実施形態において、同時増幅は、標的核酸および参照核酸の増幅（同じまたは異なる反応容器内）が、標的核酸および参照核酸の各々が同じ指定温度（例えば、６５℃）に達するまでは始まらず、その温度に達したら増幅反応が同時に開始するような「ホットスタート」機構を含み得る。

非同時増幅
いくつかの実施形態において、本明細書において提供される方法、装置およびキットは、２つ以上の反応を（例えば、互いに、および様々な非連続の実験反復にわたって）確実に比較できるように、増幅反応を開始するための時間インジケータを使用した標的核酸および参照核酸の非同時増幅ステップを利用する。いくつかの実施形態において、試験サンプル中の標的核酸の増幅（例えば、第１の反応容器内）は、試験サンプル中の参照核酸の増幅（例えば、第２の反応容器内）と比較して非同時的に起こる。いくつかの実施形態において、非同時増幅は、例えば、時間１で標的核酸に相補的なプライマーおよび／またはプローブを提供し、後の時間（例えば、時間２）で参照核酸に相補的なプライマーおよび／またはプローブを提供することによって、同じ反応容器内で標的核酸および参照核酸を増幅することを含む。非同時増幅アプローチを使用して試験サンプル中の標的核酸の相対存在比値を得るために、標的核酸の増幅のための増幅反応の長さを決定することが重要である。増幅反応の長さがわかれば、参照核酸の増幅を実行するための基礎として使用できる。このように、標的核酸および参照核酸の各々は、増幅反応の出力を互いに確実に比較することができるように、同じ期間および同じ条件下で増幅される。

Ｅ．等温増幅
本明細書に記載されているのは、標的核酸の等温増幅のための方法、装置および関連キットである。等温増幅アッセイには、ＰＣＲで必要とされる周期的な加熱および冷却ステップは含まれていない。そのため、等温増幅アッセイは、等温増幅を実行するためにサーモサイクラーなどの高価な機器を必要としない（例えば、Ｇｉｌｌ ａｎｄ Ｇｈａｅｍｉ，（２００８）Ｎｕｃｌｅｏｓ．Ｎｕｃｌｅｏｔ．Ｎｕｃｌ．，２７：２２４−２４３、Ｋｉｍ ａｎｄ Ｅａｓｌｅｙ（２０１１），Ｂｉｏａｎａｌｙｓｉｓ，３：２２７−２３９およびＹａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｂｉｏｓｙｓｔ．，１０：９７０−１００３を参照）。いくつかの実施形態において、等温増幅は、リアルタイムの等温増幅アッセイを含む。いくつかの実施形態において、等温増幅アッセイは、リアルタイム定量的等温増幅アッセイである。定量的等温増幅とも呼ばれるリアルタイム等温増幅は、増幅生成物の量をリアルタイムで測定するために使用される場合が多い。通常、定量的等温増幅には、サンプル中の標的核酸の開始量の定量を可能にする、増幅反応における一連の標準と共に、標識プローブ（例えば、フルオロフォア含有プローブまたは蛍光色素）の使用が含まれる。

いくつかの実施形態において、等温増幅は、逆転写酵素および、Ｂｓｔポリメラーゼなどであるがこれに限定されない鎖置換型等温酵素を含む。逆転写酵素等温増幅は、ＲＮＡからＤＮＡを合成および増幅するために使用される方法である。逆転写酵素は、ＲＮＡを相補的ＤＮＡ（ｃＤＮＡ）に逆転写する酵素であり、その後、このＤＮＡ（ｃＤＮＡ）は等温増幅によって増幅される。逆転写酵素等温増幅は、遺伝子発現プロファイリング、遺伝子発現の決定、または転写開始部位および終止部位を含むＲＮＡ転写生成物の配列の同定に使用できる。

いくつかの実施形態において、等温増幅は、鎖置換増幅（ＳＤＡ）を含む。ＳＤＡは、特定の制限酵素がＤＮＡにニックを入れる能力と、５’−３’エキソヌクレアーゼ欠損ポリメラーゼが下流の鎖を伸長および置換する能力に依存している。指数関数的な核酸増幅は、センス反応とアンチセンス反応を組み合わせることによって達成することができ、センス反応からの鎖置換は、アンチセンス反応のテンプレートとして機能する。例えば、ＤＮＡを切断しないが、Ｎｔ．ＡｌｗｌなどのＤＮＡ鎖のうちの１つにニックを生成するニッカーゼ酵素を使用することができる。ＳＤＡはまた、熱安定性制限酵素（例えば、Ａｖａｌ）および熱安定性ポリメラーゼ（例えば、Ｂｓｔポリメラーゼ）の組み合わせを含み得る。このような組み合わせは、増幅効率を約１０倍に高めることが知られており、したがって、試験サンプル中に単一コピーとして存在する標的核酸の増幅を可能にする。

いくつかの実施形態において、増幅反応アッセイは、転写介在増幅（ＴＭＡ）または核酸配列ベースの増幅（ＮＡＳＢＡ）を含む。ＴＭＡおよびＮＡＳＢＡでは、ＲＮＡポリメラーゼを使用してＲＮＡ配列を増幅する。一般に、この方法は、第１および第２のプライマーおよび２つまたは３つの酵素（例えば、ＲＮＡポリメラーゼ、逆転写酵素および任意にＲＮａｓｅ Ｈ）、ならびにＲＮＡポリメラーゼのプロモーター配列を有する第１のプライマーを利用する。標的核酸増幅の第１のステップにおいて、第１のプライマーは、規定された部位で標的ＲＮＡ（例えば、リボソームＲＮＡ）にハイブリダイズする。逆転写酵素は、プロモータープライマーの３’末端からの伸長により、標的ｒＲＮＡのｃＤＮＡコピーを作成する。得られたＲＮＡ：ＤＮＡ二重鎖のＲＮＡは、逆転写酵素（存在する場合）のＲＮａｓｅ活性または追加のＲＮａｓｅ Ｈによって分解される可能性がある。次に、第２のプライマーがｃＤＮＡコピーに結合し、ＤＮＡの新しい鎖が逆転写酵素によるこのプライマーの末端から合成され、二本鎖ＤＮＡ分子を作成する。ＲＮＡポリメラーゼは、ＤＮＡテンプレートのプロモーター配列を認識し、転写を開始する。新しく合成された各ＲＮＡアンプリコンは、上述のプロセスに再び入り、新たなラウンドの複製のテンプレートとして機能する。

いくつかの実施形態において、増幅反応は、リコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）を含む。したがって、標的核酸の等温増幅は、対向するオリゴヌクレオチドプライマーのテンプレート核酸への結合およびポリメラーゼによるプライマーの伸長によって達成される（例えば、Ｐｉｅｐｅｎｂｕｒｇ ｅｔ ａｌ．，（２００６）ＰｌｏＳ Ｂｉｏｌ．，４（７）；ｅ２０４を参照）。場合によっては、等温増幅反応は、リコンビナーゼ（例えば、細菌からのＲｅｃＡまたはバクテリオファージＴ４からのＵｖｓＸ）、１つ以上の補因子（例えば、ＡＴＰまたはＵｖｓＹ）、および／または１つ以上の一本鎖結合タンパク質（ＳＳＢ）を含む。

いくつかの実施形態において、等温増幅アッセイは、ヘリカーゼ依存性増幅（ＨＤＡ）を含む。ＨＤＡは、ＤＮＡヘリカーゼ酵素を使用してプライマーハイブリダイゼーションおよび後続のＤＮＡポリメラーゼによるプライマー伸長のための一本鎖テンプレートを生成するインビボシステムを模倣している。ＨＤＡ反応の第１のステップでは、ヘリカーゼ酵素が標的核酸に沿って移動し、プライマーが標的領域にアニーリングできるようにする一本鎖標的領域を作成する。次に、ＤＮＡポリメラーゼは、遊離デオキシリボヌクレオシド三リン酸（ｄＮＴＰ）を使用して、各プライマーの３’末端を伸長し、２つのＤＮＡ複製を生成する。複製された２本のＤＮＡ鎖は、独立してＨＤＡの次のサイクルに入り、標的核酸の指数関数的な核酸増幅をもたらす。

いくつかの実施形態において、等温増幅アッセイは、ローリングサークル増幅（ＲＣＡ）を含む。通常、ＲＣＡでは、ポリメラーゼが円形テンプレートの周囲にプライマーを連続的に伸長させ、円形テンプレートの多数の繰り返しコピーを含む長い増幅生成物を生成する。反応終了までに、ポリメラーゼは円形テンプレートの何千ものコピーを生成し、コピーの鎖は元の標的核酸につながれている。ＲＣＡは、標的核酸の空間分解能および迅速な核酸増幅を可能にする。分岐増幅はＲＣＡのバリエーションであり、閉じた円形プローブ（Ｃプローブ）または南京錠プローブおよび高い処理能力を持つポリメラーゼを利用して、等温条件下でＣプローブを指数関数的に増幅する。

いくつかの実施形態において、等温増幅アッセイは、ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）を含む。ＬＡＭＰは選択性を提供し、ポリメラーゼと、標的核酸中の異なる配列を認識する特別に設計されたプライマーのセットとを採用している（例えば、Ｎｉｘｏｎ ｅｔ ａｌ．，（２０１４）Ｂｉｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｏｎ，２：４−１０；Ｓｃｈｕｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，（２０１６）Ａｎａｌ Ｍｅｔｈｏｄｓ．，８：２７５０−２７５５；およびＳｃｈｏｅｐｐ ｅｔ ａｌ．，（２０１７）Ｓｃｉ．Ｔｒａｎｓｌ．Ｍｅｄ．，９：ｅａａｌ３６９３を参照）。ＰＣＲとは異なり、標的核酸は、複数のインナーおよびアウタープライマーならびに鎖置換活性を持つポリメラーゼを使用して、一定温度（例えば、６０〜６５℃）で増幅される。場合によっては、標的核酸のセンス鎖およびアンチセンス鎖の一部に相補的な核酸配列を含むインナープライマー対が、ＬＡＭＰを開始する。インナープライマーによる鎖置換合成に続いて、アウタープライマー対によってプライミングされた鎖置換合成は、一本鎖アンプリコンの放出を引き起こす可能性がある。一本鎖アンプリコンは、標的核酸の他方の末端にハイブリダイズし、ステムループ核酸構造を生成する第２のインナーおよび第２のアウタープライマーによってプライミングされたさらなる合成のためのテンプレートとして役立ち得る。後続のＬＡＭＰサイクリングでは、１つのインナープライマーが生成物上のループにハイブリダイズし、置換および標的核酸合成を開始して、元のステムループ生成物と、２倍の長さのステムを有する新しいステムループ生成物とを生成する。さらに、アンプリコンループ構造の３’末端は、自己テンプレート鎖合成の開始部位として機能し、追加のループ構造を形成するヘアピン様アンプリコンを生成して、自己テンプレート増幅の後続のラウンドをプライミングする。増幅は、標的核酸の多くのコピーの蓄積と共に継続する。ＬＡＭＰプロセスの最終生成物は、同じ鎖内の標的核酸配列の交互に反転した反復間のアニーリングによって形成された複数のループを備えたカリフラワー様構造の標的核酸の連結反復を伴うステムループ核酸である。

いくつかの実施形態において、等温増幅アッセイは、標的核酸を定量するためのデジタル逆転写ループ介在等温増幅（ｄＲＴ−ＬＡＭＰ）反応を含む（例えば、Ｋｈｏｒｏｓｈｅｖａ ｅｔ ａｌ．，（２０１６）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，４４：２ ｅ１０を参照）。通常、ＬＡＭＰアッセイは、増幅反応中に検出可能なシグナル（蛍光など）を生成する。いくつかの実施形態において、蛍光を検出および定量することができる。蛍光を検出および定量するための任意の好適な方法を使用することができる。場合によっては、Ａｐｐｌｉｅｄ ＢｉｏｓｙｓｔｅｍのＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏなどのデバイスを使用して、等温増幅アッセイからの蛍光を検出および定量できる。

Ｆ．検出
定量的リアルタイム等温増幅によって試験サンプル中の標的核酸の増幅を検出するための任意の好適な方法を使用して、本発明を実施してもよい。いくつかの実施形態において、試験サンプル中の標的核酸の定量的リアルタイム等温増幅は、標的核酸の等温増幅中に組み込まれたヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体に結合した１つ以上の異なる（別個の）蛍光標識を検出することによって決定され得る（５−ＦＡＭ（５２２ｎｍ）、ＲＯＸ（６０８ｎｍ）、ＦＩＴＣ（５１８ｎｍ）およびナイルレッド（６２８ｎｍ）など）。別の実施形態において、試験サンプル中の標的核酸の定量的リアルタイム等温増幅は、標的核酸の等温増幅中に組み込まれたヌクレオチドまたはヌクレオチド類似体に結合した単一のフルオロフォア種（例えば、ＲＯＸ（６０８ｎｍ））の検出によって決定することができる。いくつかの実施形態において、使用される各フルオロフォア種は、その他のフルオロフォア種とは異なる蛍光シグナルを放出し、その結果、各フルオロフォアは、アッセイに存在する他のフルオロフォア種の中で容易に検出され得る。

いくつかの実施形態において、定量的リアルタイム等温増幅によって試験サンプル中の標的核酸の増幅を検出する方法は、ＳＹＴＯ色素（ＳＹＴＯ９またはＳＹＴＯ８２）などのインターカレート蛍光色素を使用することを含み得る。

いくつかの実施形態において、定量的リアルタイム等温増幅によって試験サンプル中の標的核酸の増幅を検出する方法は、非標識プライマーを使用して試験サンプル中の標的核酸を等温増幅することと、標識プローブ（例えば、フルオロフォアを有する）を使用して試験サンプル中の標的核酸の等温増幅を検出することと、を含み得る。

いくつかの実施形態において、定量的リアルタイム等温増幅によって試験サンプル中の標的核酸の増幅を検出する方法は、非標識プライマーを使用して試験サンプル中に存在する標的核酸を等温増幅することと、５’末端で５−ＦＡＭ色素ラベルを有するプローブを使用し、かつ、３’末端でマイナーグルーブバインダー（ＭＧＢ）および非蛍光クエンチャーを使用して、標的核酸の等温増幅を検出することを含み得る（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃ製ＴａｑＭａｎ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ａｓｓａｙｓなど）。

いくつかの実施形態において、試験サンプル中の標的核酸の増幅の検出は、一段階または二段階の定量的リアルタイム等温増幅アッセイを使用して実行することができる。一段階の定量的リアルタイム等温増幅アッセイでは、逆転写を定量的等温増幅と組み合わせて、単一の定量的リアルタイム等温増幅アッセイを形成する。一段階アッセイにより、ハンズオン操作の数と、試験サンプルを処理するための合計時間が削減される。場合によっては、例えば、逆転写反応からのｃＤＮＡの一部が他の反応に必要であるか、または保持される場合、定量的リアルタイム等温増幅アッセイは、二段階アッセイを含み得る。二段階アッセイは、逆転写が実行される第１の段階と、次いで定量的等温増幅が実行される第二段階と、を含む。一段階アッセイまたは二段階アッセイのいずれを実行すべきか決定することは、当業者の範囲内である。

Ｇ．標準曲線の生成
等温増幅アッセイは、異なる効率で異なる核酸を増幅し得るため、リアルタイム等温増幅アッセイで測定された閾値までの時間値を、標的核酸および参照核酸の絶対コピー数に合わせて較正する必要があり得る。これは、標的核酸および参照核酸の等温増幅の標準曲線を確立することによって達成することができる。標準曲線は、複数の既知の入力濃度で定量されたキャリブレータサンプルを使用してリアルタイム等温増幅アッセイを実行することによって得ることができる。

いくつかの実施形態において、標準曲線を生成するために、定量されたキャリブレータサンプルは、定量された材料の段階希釈を実行することによって得られる。一例として、およそ１×１０^９コピー／標的核酸のμＬの濃度を有するテンプレートが調製される。異なる入力濃度のキャリブレータサンプルを得るために、１０倍濃度間隔でテンプレートを緩衝液中で希釈して、およそ１０^９コピー／μＬ〜およそ１０^２コピー／μＬの濃度範囲をカバーするテンプレートを得る。例えば、８つのキャリブレータサンプルが、それぞれ約１×１０^９、１×１０^８、１×１０^７、１×１０^６、１×１０^５、１×１０^４、１×１０^３および１×１０^２コピー／μｌの濃度で得られる。各キャリブレータサンプルの正確な濃度は、当該技術分野で知られている方法を使用して決定することができる。

標準曲線を得るために、リアルタイム等温増幅アッセイが、それぞれの濃度の標的核酸を含む既知の量（例えば、１μＬ）のそれぞれのキャリブレータサンプルを含む各アリコートに対して実行される。例えば、各アリコートは、１μＬのそれぞれのキャリブレータサンプルを含み得る。例えば、１０^９コピー／μＬ〜１０^２コピー／μＬの濃度範囲をカバーする８つのキャリブレータサンプルがある上述の例では、８つのキャリブレータサンプルの８つのアリコートは、それぞれ以下のコピー数の標的核酸を含有する：コピー数_１＝１×１０^９、コピー数_２＝１×１０^８、コピー数_３＝１×１０^７、コピー数_４＝１×１０^６、コピー数_５＝１×１０^５、コピー数_６＝１×１０^４、コピー数_７＝１×１０^３、コピー数_８＝１×１０^２。

それぞれのキャリブレータサンプルに対するリアルタイム等温増幅アッセイでは、標的核酸用の蛍光色素（ｄｓＤＮＡ色素など）または蛍光標識をインターカレートすることによって放出される蛍光の強度が時間の関数として測定される。図１は、いくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅アッセイにおける、時間の関数としての蛍光強度の例示的なプロット１１０を示す。破線１２０は、所定の閾値強度を表す。等温増幅を開始した瞬間からの経過時間は、閾値までの時間Ｔｔである。図２は、いくつかの実施形態による、標的核酸の濃度が異なる８つのサンプルのリアルタイム定量的等温増幅アッセイにおける時間の関数としての蛍光強度の例示的なプロット２１０を示す。それぞれの閾値までの時間値は、時間の関数として各それぞれの蛍光曲線２１０から決定することができる。したがって、８つの閾値までの時間値Ｔｔ_１、Ｔｔ_２、Ｔｔ_３、Ｔｔ_４、Ｔｔ_５、Ｔｔ_６、Ｔｔ_７、Ｔｔ_８が、それぞれ８つのキャリブレータサンプルについて得られる。

指数関数的増幅の場合、閾値までの時間は、開始コピー数（テンプレート存在比とも呼ばれる）の対数（例えば、１０を底とする対数）に直線的に比例する。図３は、いくつかの実施形態による、図２に示される蛍光曲線から得られたデータポイント（丸で表される）の散布図を示す。各データポイントは、データペア［Ｌｏｇ_１０（コピー数），Ｔｔ］を表す（コピー数は、等温増幅アッセイにおける核酸の開始コピー数を指すことに留意されたい）。図示されるように、データポイントはほぼ直線３１０上にある。プロット内のデータポイントに対して線形回帰を実行して、総偏差が最小であるデータポイントに最適な直線３１０を得る。線形回帰の結果は、次の方程式で表される直線である。
Ｔｔ＝ｍ×Ｌｏｇ_{１０（コピー数）＋}ｂ （１）
式中、ｍは直線３１０の傾き、ｂはｙ切片である。傾きｍは、標的核酸の等温増幅の効率を表し、ｂは、テンプレートのコピー数がゼロに近づくときの閾値までの時間を表す。方程式（１）で表される直線を標準曲線と呼ぶ。

いくつかの実施形態において、より高いレベルのデータ信頼性を得るために、等温増幅アッセイの反復（例えば、三重反復）を各サンプルに対して実行することができる。反復した閾値までの時間値を平均し、標準偏差を計算することができる。

所与の等温増幅アッセイに関する標準曲線が確立されると、その標準曲線を使用することによって、未知の開始コピー数の標的核酸の等温増幅アッセイを将来実行するために、以下の方程式を用いて閾値までの時間値を開始コピー数に変換することができる。

標準曲線のダイナミックレンジ
通常、すべての低いコピー数または非常に高いコピー数のデータポイントは、直線３１０から外れる可能性がある。データポイントを直線３１０で表すことができるコピー数の範囲は、標準曲線のダイナミックレンジと呼ばれる。閾値までの時間と標準曲線で表されるコピー数の対数との間の線形関係は、ダイナミックレンジ内でのみ有効である。

標的核酸および参照核酸の増幅効率が所与の等温増幅アッセイで異なる場合、標的核酸および参照核酸について別々の標準曲線を得る必要があり得る。したがって、２セットのリアルタイム等温増幅アッセイ、つまり、標的核酸の標準曲線を確立するための１セットと、参照核酸の標準曲線を確立するためのもう１セットとを実行することができる。複数の標的核酸が考慮される場合、各標的核酸の標準曲線が得られ得る。

オフボード標準曲線
いくつかの実施形態において、標準曲線は、試験サンプルを得る前に生成される。つまり、標準曲線は、試験サンプルの定量的等温増幅とオンボードでは生成されない。このような標準曲線は、オフボード標準曲線と呼ばれることがある。以下に説明するように、オフボード標準曲線を使用して、相対存在比値を推定することができる。

Ｈ．相対存在比値の推定
標的核酸Ａの未知の入力濃度の試験サンプルについて、第１のリアルタイム等温増幅アッセイを試験サンプルの第１のアリコートに対して実行して、標的核酸Ａに関する第１の閾値までの時間値Ｔｔ_Ａを得る。第２のリアルタイム等温増幅アッセイを試験サンプルの第２のアリコートに対して実行して、参照核酸に関する第２の閾値までの時間値Ｔｔ_Ｂを得る。第１のアリコートおよび第２のアリコートには、実質的に同量の試験サンプルが含有されている。第１の閾値までの時間値Ｔｔ_Ａは、標的核酸Ａの標準曲線を使用して、標的核酸Ａの開始コピー数に変換することができる：

第２の閾値までの時間値Ｔｔ_Ｂは、参照核酸Ｂの標準曲線を使用して、参照核酸Ｂの開始コピー数に変換することができる：

標的核酸Ａの開始コピー数を、参照核酸Ｂのコピー数に対して正規化することにより、次のような相対存在比が得られる：

例えば、標的核酸Ａの開始コピー数が１０００であり、参照核酸Ｂの開始コピー数が１０である場合、相対存在比（Ａ／Ｂ）は次のように計算することができる。

第１のアリコートと第２のアリコートに異なる量の試験サンプルが含有されている場合、相対存在比は次のように得られる。

式中、Ｍ_１およびＭ_２は、それぞれ、第１のアリコートおよび第２のアリコートの質量（または体積）である。

例えば、Ｍ_１＝１、Ｍ_２＝２の場合、標的核酸の開始コピー数であるコピー数_Ａは１０００であり、参照核酸の開始コピー数であるコピー数_Ｂは１０であり、相対存在比（Ａ／Ｂ）は、次のように計算できる：

いくつかの他の実施形態において、１つの等温増幅アッセイは、標的核酸Ａおよび参照核酸Ｂの両方に対して実行され得る。等温増幅アッセイは、試験サンプルの同じアリコートに対して実行されるので、方程式（５）を使用して、相対存在比を得ることができる。

標準曲線を使用しない相対存在比
標的核酸および参照核酸の増幅効率が既知の値とほぼ同じであり、標的核酸の予想コピー数および参照核酸の予想コピー数がダイナミックレンジ内にある場合、相対存在比は、標準曲線を使用せずに、閾値までの時間値から直接得ることができる。例えば、標的核酸および参照核酸の両方の増幅効率がｍであり、同様の効率の結果として両方のアッセイでｂが同一であると仮定すると、相対存在比は次のように計算できる：

上述のように、標的核酸および参照核酸の増幅効率が既知の値とほぼ同じである場合、試験サンプル中の標的核酸の相対存在比を決定することは、標的核酸の開始コピー数に基づいておらず、サンプル中の標的核酸の絶対定量を必要としない。

Ｉ．複数の標的核酸
いくつかの実施形態において、１つの標的核酸の相対存在比値は、試験サンプル中のさらなる標的核酸の１つ以上のさらなる相対存在比値と組み合わせて使用することができる。いくつかの実施形態において、試験サンプル中の複数の標的核酸の複数の相対存在比を、単一の診断スコアを出力できるアルゴリズムへの入力として使用することができ、診断スコアとしては、試験サンプルにおいてウイルス感染症と細菌感染症を区別するおよび／または試験サンプルが細菌感染症および／またはウイルス感染症を有していると診断することができるものなどがある（例えば、Ｓｗｅｅｎｅｙ ｅｔ ａｌ．，（２０１６），Ｓｃｉ．Ｔｒａｎｓｌ．Ｍｅｄ．，８：３４６ｒａｓ９１３４６ｒａ９１を参照）。

いくつかの実施形態において、評価のために選択される標的核酸は、ＣＴＳＢ、ＴＮＩＰ１、ＧＰＡＡ１およびＨＫ３などの、細菌感染症の結果として宿主発現が増加することが知られている標的核酸から選択される。いくつかの実施形態において、評価のために選択される標的核酸は、ＩＦＩ２７、ＪＵＰ、およびＬＡＸ１などの、ウイルス感染症の結果として宿主発現が増加することが知られている標的核酸から選択される。

いくつかの実施形態において、遺伝子を、機械学習または他のアルゴリズムを使用して組み合わせて、細菌感染症とウイルス感染症を区別できるものなど、単一の診断スコアを生成する。このようなスコアは、細菌感染症の患者においては高く、ウイルス感染症の患者においては低くなる場合があるため、診断スコアが設定された閾値を超える患者を診察する医師は、抗生物質による治療行為を行うこととなる。これらの実施形態において、アルゴリズムスコアは、任意の個々の遺伝子レベルのみよりも高い診断力を有する（例えば、細菌感染症をウイルス感染症から区別するための受信者操作特性曲線の下により大きな領域を有する）。

いくつかの実施形態において、複数のバイオマーカーを単一の診断スコアに統合するためのアルゴリズムのタイプとしては、幾何平均の差、算術平均の差、合計の差、単純な合計などが挙げられるが、これらに限定されない。いくつかの実施形態において、診断スコアは、回帰モデル、ツリーベースの機械学習モデル、サポートベクターマシン（ＳＶＭ）モデル、人工ニューラルネットワーク（ＡＮＮ）モデルなどの機械学習モデルを使用して、複数のバイオマーカーの相対存在比値に基づいて評価することができる。

Ｊ．オフボード標準曲線を使用してリアルタイム定量的等温増幅を実行することにより診断スコアを推定する方法
絶対定量では通常、適切な較正と十分な精度を確保するために、試験サンプルと同じアッセイで標準曲線を作成する必要がある。このようにして得られた標準曲線は、オンボードスタンド曲線と呼ばれる。いくつかの実施形態によれば、複数のバイオマーカーのリアルタイム定量的等温増幅を使用して診断スコアを推定する方法は、相対定量のみを必要とし、したがって、オフボード標準曲線を使用することができる。これにより、正確な診断を確実かつ経済的に行うことができる、新たなクラスの超高速診断リアルタイム定量的等温増幅アッセイが可能になり得る。

図４は、いくつかの実施形態による、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法を示す簡略化されたフローチャートを示す。

４０２では、第１の標準曲線、第２の標準曲線および参照標準曲線が得られる。第１の標準曲線は、第１の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第１の関数を含む。第２の標準曲線は、第２の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第２の関数を含む。参照標準曲線は、参照核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける参照関数を含む。第１の標準曲線、第２の標準曲線および参照標準曲線は、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行する前に生成される。

４０４では、試験サンプルを哺乳類対象から得る。試験サンプルは、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸を含有する。

４０６では、試験サンプルを少なくとも１つの反応容器に添加する。少なくとも１つの反応容器には、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスが収容されている。

４０８では、少なくとも１つの反応容器内で等温増幅の少なくとも１つの反応を開始する。

４１０では、少なくとも１つの反応における第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定する。

４１２では、少なくとも１つの反応における第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定する。

４１４では、少なくとも１つの反応における参照核酸の参照閾値までの時間を決定する。

４１６では、第１の標準曲線の第１の関数を使用して、第１の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の開始コピー数を推定する。

４１８では、第２の標準曲線の第２の関数を使用して、第２の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の開始コピー数を推定する。

４２０では、参照標準曲線によって提供される参照関数を使用して、参照閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸の参照開始コピー数を推定する。

４２２では、第１の標的核酸の第１の開始コピー数および参照核酸の参照開始コピー数に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定する。

４２４では、第２の標的核酸の第２の開始コピー数および参照核酸の参照開始コピー数に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定する。

４２６では、第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値に基づいて試験サンプルの診断スコアを推定する。

４２８では、試験サンプルの診断スコアを所定の閾値診断スコアと比較することにより、病状の臨床診断を行う。

いくつかの実施形態において、等温増幅は、ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）である。

いくつかの実施形態において、少なくとも１つの反応容器内での等温増幅の少なくとも１つの反応は、ホットスタート機構を使用して開始される。

いくつかの実施形態において、診断スコアは、第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値と、第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値との間の差に関連する。

図４に図示される特定のステップは、本発明のいくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する特定の方法を提供することを理解されたい。別の実施形態によれば、他の一連のステップも実行され得る。例えば、本発明の代替実施形態は、上記で概説したステップを異なる順序で実行してもよい。さらに、図４に示される個々のステップは、個々のステップに適切な様々なシーケンスで実行され得る複数のサブステップを含み得る。さらに、特定の用途に応じて、追加のステップを追加または削除できる。当業者は、多くの変形、修正および代替を認識する。

Ｋ．標準曲線を使用せずにリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法
いくつかの実施形態によれば、診断スコアを推定する方法は、標準曲線を使用せずにリアルタイム定量的等温増幅を利用することができる。例えば、診断スコアは、以前に同定された複数のバイオマーカーの発現レベルを統合し得る。同定されたバイオマーカーの等温増幅アッセイが線形ダイナミックレンジ内で実行されると予想されることが標的試験集団全体で事前に検証されている場合、閾値までの時間値は標準曲線を使用してコピー数に変換されることなく、診断スコアを推定するためのアルゴリズムに直接プラグインすることができる。いくつかの実施形態において、臨床的に関連する閾値診断スコアは、集団研究によって確立され得る。集団研究では、目的の患者の臨床コホート全体にわたってリアルタイム定量的等温増幅アッセイが実行される。リアルタイム定量的等温増幅アッセイから得られた閾値までの時間値は、閾値診断スコアを確立するための統計モデルを訓練するために使用される。閾値診断スコアが確立されると、それを使用して患者を診断することができる。

図５は、他のいくつかの実施形態による、標準曲線を使用せずに試験サンプルのリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法を示す簡略化されたフローチャートを示す。

５０２では、試験サンプルを哺乳類対象から得る。試験サンプルは、少なくとも１つの第１の標的核酸と、少なくとも１つの第２の標的核酸と、参照核酸とを含有する。第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の各々は、目的のコホート集団にわたって検証されるように、リアルタイム定量的等温増幅のダイナミックレンジ内にある試験サンプル中の予想濃度を有する。

５０４では、試験サンプルのアリコートを、記第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する少なくとも１つの反応容器に添加する。

５０６では、少なくとも１つの反応容器内で等温増幅の少なくとも１つの反応を開始する。

５０８では、少なくとも１つの反応における第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定する。

５１０では、少なくとも１つの反応における第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定する。

５１２では、少なくとも１つの反応における参照核酸の参照閾値までの時間値を決定する。

５１４では、少なくとも第１の閾値までの時間値および参照閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸に対する、第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定する。

５１６では、少なくとも第２の閾値までの時間値および参照閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸に対する、第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定する。

５１８では、第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値および第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプルの診断スコアを推定する。

いくつかの実施形態において、方法５００は、試験サンプルを得る前に、目的のコホート集団全体にわたってリアルタイム定量的等温増幅を実行して、臨床的に関連する閾値診断スコアを確立することと、試験サンプルの診断スコアを推定した後、試験サンプルの診断スコアを閾値診断スコアと比較することによって、病状の臨床診断を行うことと、をさらに含む。

いくつかの実施形態において、等温増幅は、ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）である。

いくつかの実施形態において、診断スコアは、第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値と、第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値との間の差に関連する。

いくつかの実施形態において、試験サンプルは、複数の第１の標的核酸および複数の第２の標的核酸を含有する。診断スコアは、複数の第１の標的核酸の閾値までの時間値に基づく第１の統計値と、複数の第２の標的核酸の閾値までの時間値に基づく第２の統計値との間の差に関連する。

図５に図示される特定のステップは、本発明のいくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定するための特定の方法を提供することを理解されたい。別の実施形態によれば、他の一連のステップも実行され得る。例えば、本発明の代替実施形態は、上記で概説したステップを異なる順序で実行してもよい。さらに、図５に示される個々のステップは、個々のステップに適切な様々なシーケンスで実行され得る複数のサブステップを含み得る。さらに、特定の用途に応じて、追加のステップを追加または削除できる。当業者は、多くの変形、修正および代替を認識する。

Ｌ．マルチボリュームリアルタイム定量的等温増幅アッセイを使用して診断スコアを推定する方法
いくつかの実施形態によれば、複数のバイオマーカーを使用して診断スコアを推定する方法は、上述のようなマルチボリュームリアルタイム定量的等温増幅アプローチを利用することができる。例えば、７つの同定された標的遺伝子ＩＦＩ２７、ＪＵＰ、ＬＡＸ１、ＨＫ３、ＴＮＩＰ１、ＧＰＡＡ１、ＣＴＳＢを含むＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒ ｑＬＡＭＰアッセイにおいて、７つの標的遺伝子のいくつかは、試験サンプル内の他のいくつかの標的遺伝子よりも多く存在すると予想される。体積が大きい反応容器内により多く存在すると予想される遺伝子、および体積が小さい反応容器内により少なく存在すると予想される遺伝子について、リアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することが有利である可能性がある。このように、限られた量の試験サンプルが与えられると、定量的等温増幅アッセイは、予想存在比が高い遺伝子と予想存在比が低い遺伝子の両方に対して首尾よく実行することができる。

いくつかの実施形態において、様々な遺伝子について予想される相対存在比は、ウェルに割り当てる前の集団試験によって確立され得る。集団試験では、統計的有意性を確立するのに十分な大きさの臨床的に代表的な集団における様々な遺伝子について、リアルタイム定量的等温増幅アッセイが実行される。例えば、集団試験では、スチューデントのｔ検定、ウェルチのｔ検定、マンホイットニーのＵ検定、または分散分析（ＡＮＯＶＡ）、Ｆ検定などを使用することができる。統計的有意性は、例えば、ｐ＜０．０５に設定することができる。

図６は、いくつかの実施形態による、試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定する方法を示す簡略化されたフローチャートを示す。

６０２では、試験サンプルを得る。試験サンプルは、少なくとも１つの第１の標的核酸と、少なくとも１つの第２の標的核酸と、参照核酸とを含有する。第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の各々は、哺乳類宿主核酸を含む。

６０４では、第１の標的核酸の定量的等温増幅のための第１の反応容器に試験サンプルの第１のアリコートを添加し、第２の標的核酸の定量的等温増幅のための第２の反応容器に試験サンプルの第２のアリコートを添加する。第１の反応容器および第２の反応容器の各々は、第１の標的核酸、第２の標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する。第２の標的核酸は、試験サンプルにおいて第１の標的核酸よりも予想存在比が低い。第１のアリコートは、第１の体積を有する。第２のアリコートは、第１の体積よりも大きい第２の体積を有する。

６０６では、第１の反応容器内で第１の反応を開始し、第１の反応における第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定し、第１の反応における参照核酸の第１の参照閾値までの時間値を決定し、かつ、少なくとも第１の閾値までの時間値および第１の参照閾値までの時間値に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することにより、第１の反応容器内で第１のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行する。

６０８では、第２の反応容器内で第２の反応を開始し、第２の反応における第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定し、第２の反応における参照核酸の第２の参照閾値までの時間値を決定し、かつ、少なくとも第２の閾値までの時間値および第２の参照閾値までの時間値に基づいて、参照核酸に対する、試験サンプル中の第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することにより、第２の反応容器内で第２のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行する。

６１０では、第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値に基づいて、試験サンプルの診断スコアを推定する。

いくつかの実施形態において、方法６００は、試験サンプルの第１のアリコートを第１の反応容器に添加し、試験サンプルの第２のアリコートを第２の反応容器に添加する前に、臨床的に代表的な集団における第１の標的核酸および第２の標的核酸について試験リアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することによって、第２の標的核酸が第１標的核酸よりも低い予想存在比を有することを確立することをさらに含む。

いくつかの実施形態において、診断スコアは、第１の相対存在比値と第２の相対存在比値との間の差に関連する。

いくつかの実施形態において、試験サンプルは複数の第１の標的核酸および複数の第２の標的核酸を含有し、診断スコアは、複数の第１の標的核酸の相対存在比値に基づく第１の統計値と、複数の第２の標的核酸の相対存在比値に基づく第２の統計値との間の差に関連する。いくつかの実施形態において、第１の統計値は、複数の第１の標的核酸の相対存在比値の幾何平均を含み、第２の統計値は、複数の第２の標的核酸の相対存在比値の幾何平均を含む。いくつかの実施形態において、診断スコアは、患者が細菌感染症またはウイルス感染症を有するか否かを診断するために使用される。いくつかの実施形態において、複数の第１の標的核酸はウイルス感染症により多い遺伝子を含み、複数の第２の標的核酸は細菌感染症により多い遺伝子を含む。例えば、複数の第１の標的核酸はＩＦＩ２７、ＪＵＰおよびＬＡＸ１を含み得、複数の第２の標的核酸はＨＫ３、ＴＮＩＰ１、ＧＰＡＡ１およびＣＴＳＢを含み得る。

いくつかの実施形態において、試験サンプルは、複数の第１の標的核酸および複数の第２の標的核酸を含有する。診断スコアは、回帰モデル、ツリーベースの機械学習モデル、サポートベクターマシンモデルまたは人工ニューラルネットワーク（ＡＮＮ）モデルを使用して、複数の第１の標的核酸の相対存在比値および複数の第２の標的核酸の相対存在比値に基づいて推定される。

いくつかの実施形態において、第１のリアルタイム定量的等温増幅アッセイおよび第２のリアルタイム定量的等温増幅アッセイの各々は、リアルタイム定量的ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）アッセイである。

いくつかの実施形態において、第１の反応容器における第１の反応および第２の反応容器における第２の反応の各々は、ホットスタート機構を使用して開始される。

図６に図示される特定のステップは、本発明のいくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定するための特定の方法を提供することを理解されたい。別の実施形態によれば、他の一連のステップも実行され得る。例えば、本発明の代替実施形態は、上記で概説したステップを異なる順序で実行してもよい。さらに、図６に示される個々のステップは、個々のステップに適切な様々なシーケンスで実行され得る複数のサブステップを含み得る。さらに、特定の用途に応じて、追加のステップを追加または削除できる。当業者は、多くの変形、修正および代替を認識する。

Ｍ．プラットフォーム／デバイス
いくつかの態様において、本開示は、試験サンプル中の標的核酸の相対存在比を得るためのプラットフォームまたはデバイスを提供する。方法を実施するための任意の好適なデバイスまたはプラットフォームを使用することができる。いくつかの実施形態において、デバイスは、試験サンプル中の宿主哺乳類核酸を比較定量するのに有用であり、宿主哺乳類核酸は、細菌感染症またはウイルス感染症などの急性感染症を有している宿主を反映している。いくつかの実施形態において、急性感染症は敗血症を誘発している。

いくつかの実施形態において、デバイスは、マイクロ流体デバイスである。いくつかの実施形態において、マイクロ流体デバイスは、同じ反応容器内での標的核酸および参照核酸の増幅を可能にする。別の実施形態において、マイクロ流体デバイスは、別個の反応容器（別個のウェルなど）における標的核酸および参照核酸の増幅を可能にする。

サンプルを一定の温度まで加熱し、蛍光、濁度、発光、吸光度（色）または磁気／電磁電流を監視できる任意のデバイスを等温増幅に使用できる。いくつかの実施形態において、デバイスは、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃのＴａｑＭａｎ遺伝子発現アッセイである。

いくつかの実施形態において、方法を実施するためのデバイスとしては、（等温条件下で）Ａｐｐｌｉｅｄ ＢｉｏｓｙｓｔｅｍのＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏリアルタイムＰＣＲシステムなどであるがこれに限定されない蛍光標識検出システムが挙げられる。

当業者に明らかであるように、本発明を実施するために使用されるプラットフォームまたはデバイスは、任意の有用な寸法（長さ、幅および深さなど）を含むことができる。いくつかの実施形態において、デバイスは、標的核酸および参照核酸を含有する１つ以上の反応容器を利用するベンチトップサイズのデバイスである。いくつかの実施形態において、反応容器は、９６ウェルプレートなどの単一ユニットに収納されている。いくつかの実施形態において、反応容器（または複数のハウジングユニット）は、デバイス内で順次または同時に保管、試験および／または分析することができる。

図７は、いくつかの実施形態による、リアルタイム定量的等温増幅アッセイを使用して相対存在比値を推定するための装置７００の概略ブロック図を示す。

装置７００は、１つ以上の反応容器７１０を含む。各反応容器７１０は、少なくとも１つの標的核酸および参照核酸を含有する試験サンプルのアリコートを保持するように構成される。各反応容器７１０は、さらに、少なくとも１つの標的核酸および参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを保持するように構成される。マスターミックスには、少なくとも１つの標的核酸および参照核酸を検出するための蛍光標識も含まれている。

いくつかの実施形態において、１つ以上の反応容器７１０は、少なくとも第１の反応容器および第２の反応容器を含む。第１の反応容器は、試験サンプルの第１のアリコートおよび第１の標的核酸の等温増幅のためのマスターミックスの第１の部分を保持するように構成されてもよい。第２の反応容器は、試験サンプルの第２のアリコートおよび第２の標的核酸の等温増幅のためのマスターミックスの第２の部分を保持するように構成されてもよい。いくつかの実施形態において、１つ以上の反応容器７１０は、試験サンプルの第３のアリコートおよび参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスの第３の部分を保持するように構成された第３の反応容器を含む。

装置７００は、１つ以上の反応容器７１０内で等温増幅反応を開始するための等温増幅手段７２０をさらに含む。例えば、等温増幅手段７２０は、反応容器７１０およびその内容物を、少なくとも１つの標的核酸および参照核酸の等温増幅を開始するのに必要な温度まで加熱するための加熱要素および温度制御を含み得る。等温増幅反応は、少なくとも１つの標的核酸に関連する蛍光および参照核酸に関連する蛍光を生成し得る。

装置７００は、１つ以上の反応容器７１０に光学的に連結された１つ以上の蛍光検出器７３０をさらに含む。各蛍光検出器７３０は、等温増幅反応中に、それぞれの標的核酸に関連する蛍光または参照核酸に関連する蛍光をリアルタイムで検出するように構成される。したがって、それぞれの標的核酸に関連する蛍光の強度を時間の関数として測定することができ、参照核酸に関連する蛍光の強度を時間の関数として測定することができる。いくつかの実施形態において、各蛍光検出器は、等温増幅反応中に一定間隔でそれぞれの標的核酸に関連する蛍光を検出するように構成される。例えば、等温増幅反応中に、一定間隔の蛍光検出が、毎分１回、３０秒に１回、２０秒に１回、１０秒に１回、５秒に１回、または毎秒１回行われ得る。

装置７００は、コンピュータメモリ７４０をさらに含む。いくつかの実施形態において、コンピュータメモリは、１つ以上の標準曲線を記憶するように構成される。例えば、第１の標準曲線は、第１の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第１の関数を提供し得る。第２の標準曲線は、第２の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第２の関数を提供し得る。第３の標準曲線は、参照核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第３の関数を提供し得る。第１の標準曲線、第２の標準曲線および第３の標準曲線は、キャリブレータサンプルの以前の等温増幅反応から得ることができ、試験サンプルのその後の等温増幅反応において使用するためにメモリ７４０に記憶される。いくつかの実施形態において、コンピュータメモリ７４０は、１つ以上の閾値蛍光強度値を記憶するように構成される。

装置７００は、蛍光検出器７３０およびメモリ７４０に連結されたコンピュータプロセッサ７５０をさらに含む。メモリ７４０はさらに、コンピュータプロセッサ７５０によって実行される命令を記憶することができる。

いくつかの実施形態において、プロセッサ７５０は、関数時間としての第１の標的核酸に関連する蛍光の強度および記憶された第１の閾値蛍光強度値に基づいて、第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定し、かつ、第１の標準曲線によって提供される第１の関数を使用して、第１の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の第１の標的核酸の開始コピー数を推定するように構成される。プロセッサ７５０はさらに、関数時間としての第２の標的核酸に関連する蛍光の強度および記憶された第２の閾値蛍光強度値に基づいて、第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定し、かつ、第２の標準曲線によって提供される第１の関数を使用して、第２の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の第２の標的核酸の開始コピー数を推定するように構成される。プロセッサ７５０はさらに、関数時間としての参照核酸に関連する蛍光の強度および記憶された第３の閾値蛍光強度値に基づいて、参照核酸の第３の閾値までの時間値を決定し、かつ、第３の標準曲線によって提供される第３の関数を使用して、第３の閾値までの時間値に基づいて、試験サンプル中の参照核酸の開始コピー数を推定するように構成される。プロセッサ７５０はさらに、第１の標的核酸の開始コピー数および参照核酸の開始コピー数に基づいて、参照核酸に対する試験サンプル中の第１の標的核酸の相対存在比値を推定し、かつ、第２の標的核酸の開始コピー数および参照核酸の開始コピー数に基づいて、参照核酸に対する試験サンプル中の第２の標的核酸の相対存在比値を推定するように構成される。プロセッサ７５０は、第１の標的核酸の第１の相対存在比値および第２の標的核酸の第２の相対存在比値に基づいて、試験サンプルの診断スコアを推定するように構成され得る。

Ｎ．キット
いくつかの態様において、本開示は、試験サンプル中の標的核酸の相対存在比値を計算するためのキットを提供する。いくつかの実施形態において、キットは、少なくとも１つの反応容器と、リアルタイム定量的等温増幅を実行するための１つ以上の構成要素（例えば、ＲＮＡポリメラーゼ、逆転写酵素および／またはＤＮＡポリメラーゼ）と、を含む。いくつかの実施形態において、キットは、２つ以上の反応容器（例えば、第１の反応容器および第２の反応容器）を含むことができる。いくつかの実施形態において、キットは、等温増幅のためのマスターミックスを含む。いくつかの実施形態において、キットは、リアルタイム定量的等温増幅のためのマスターミックスを含む。キットには、リアルタイム定量的等温増幅アッセイからの結果を解釈するための説明書が付属している場合がある。リアルタイム定量的等温増幅アッセイを行うための説明書（書面、ＣＤ−ＲＯＭなど）もキットに含まれている場合がある。

以下の例は、特許請求の範囲に記載された発明を限定するためではなく、例証するために提供されている。

実施例１：等温増幅アッセイの構成
等温アッセイプライマーは、フォワードインナープライマー（ＦＩＰ）およびフォワードアウタープライマー（Ｆ３）ならびに対応するバックワードインナープライマー（ＢＩＰ）およびバックワードアウタープライマー（Ｂ３）を、フォワードおよびバックワードレート増強プライマー（ＦＲ、ＢＲ）と共に含む。アッセイは、ＷａｒｍＳｔａｒｔ（ホットスタートとも呼ばれる）ＬＡＭＰ ２Ｘマスターミックス（ＮＥＢ、ＣＡＴ＃Ｅ１７００Ｓ）を使用して、製造元のプロトコルを２０μＬの総反応体積に調整し、任意の蛍光色素を最終濃度１ｘに添加して実行する。プライマーを、１．６μＭのＦＩＰ／ＢＩＰ、０．２μＭのＦ３／Ｂ３、および０．４μＭのＦＲ／ＢＲの最終濃度で添加する。アッセイの忠実度を向上させるために、アッセイには１ｍＭのｄＵＴＰ（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＣＡＴ＃Ｒ０１３３）が追加されている。テンプレートを、経験に基づいて最適化した質量のサンプル材料を含有する標準の１μＬ体積に添加する。最後に、水を加えて、反応あたりの最終体積を２０μＬにする。９６ウェルプレート（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ ＣＡＴ＃４３４６９０６）にアッセイを分配して、リアルタイムＰＣＲ機器を使用した定量増幅を行う。

定量的等温増幅を、ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ ６ ＦｌｅｘリアルタイムＰＣＲシステム（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ）上で、ＦＡＭ／ＳＹＢＲ Ｇｒｅｅｎチャネルを使用して実行して、色素の蛍光を監視する。サイクリング条件には、２５℃での５分間の保持ステップと、それに続く６５℃での６０分間の保持ステップが含まれ、その間、蛍光は２０秒間隔で監視される。ウォームスタートポリメラーゼを含有するＮＥＢキットを使用すると、溶液温度が４５℃に達したときにのみ等温反応の開始が保証される。これにより、異なる実験（ｒｕｎｓ）で決定された同等の閾値までの時間（Ｔｔ）値が、それらの実験全体での反応開始からの等しい時間経過を表すことを保証することにより、プレート／実験全体でのアッセイの比較が可能になる。これにより、様々な効率のアッセイを相対的な標的定量と比較できるように、アッセイを以前に決定された標準曲線に合わせて較正することもできる。

実施例２：標準曲線の取得および相対存在比の算出
等温増幅アッセイを較正するために、目的のｍＲＮＡ配列に対応する二本鎖ＤＮＡテンプレートは、定量した対照サンプルとして使用される商業ベンダー（Ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ ＤＮＡ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓなど）によって合成される。凍結乾燥合成テンプレートを、およそ１×１０^９コピー／μＬの最終濃度になるようにＴＥ緩衝液｛２０ｍＭのトリス（ｐＨ８．０）、０．５ｍＭのＥＤＴＡ｝に再懸濁させる。各テンプレートの正確な濃度は、Ｑｕｂｉｔ蛍光光度計および関連するＱｕｂｉｔ ｄｓＤＮＡ ＨＳアッセイキット（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ＣＡＴ＃Ｑ３２８５１など）を使用して、製造元のプロトコルに従って決定される。この値は、後続の回帰分析で使用される。標準曲線分析のためのサンプルを生成するために、各テンプレートを、１０倍濃度間隔でＴＥ緩衝液で希釈して、およそ約１０^９コピー／μＬ〜およそ１０^２コピー／μＬの範囲をカバーするサンプルを得た。対応する等温増幅アッセイのテンプレートとして１μＬの入力を使用して、各サンプルに関する閾値までの時間（Ｔｔ）を３回決定する。

実施例３：閾値強度の選択
閾値は、使用されている蛍光色素またはプローブ、および蛍光が検出されている機器の関数である。一般原則として、閾値は、増幅の線形フェーズで、バックグラウンドシグナルを大幅に上回り、かつ、複数の実験の反復全体にわたって結果として得られる閾値までの時間（Ｔｔ）の最小標準偏差を維持する点を特定することによって決定される。標準曲線を決定するとき、および目的のサンプル中の標的存在比を測定するときの両方で、所与の標的に同じ閾値を使用する必要がある。標的ごとに一意の標準曲線を決定する場合、異なる標的に同じ閾値を使用する必要はないが、標準曲線の較正を行わない相対比較では、すべての標的に同じ閾値を維持することが重要である。

実施例４：等温増幅による標的核酸の相対的定量およびゴールドスタンダードｍＲＮＡ定量アッセイとの比較
本明細書に記載される等温増幅アッセイを使用して患者の血液サンプルからの相対的ｍＲＮＡ定量の性能を評価するために、参照核酸（本明細書では「ハウスキーピング遺伝子ＹＷＨＡＢ」と呼ばれる）に対する標的核酸（本明細書では「バイオマーカーＩＦＩ２７」と呼ばれる）の相対存在比値を決定し、ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒ（ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．、シアトル）で実施したゴールドスタンダードｍＲＮＡ定量アッセイを使用して得られた測定値と比較した。ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇは非常に正確であり、複数の遺伝子の発現レベルを一度に測定するための有用なツールである。しかしながら、臨床応用には遅すぎる可能性もある（１アッセイあたり４〜６時間）。

サンプル選択およびＲＮＡ抽出
臨床現場で予想される標的核酸の存在比の範囲を概括するために、健康な対照群（ａ ｓｅｔ ｏｆ ｈｅａｌｔｈｙ ｃｏｎｔｒｏｌｓ）（６）に加えて、ウイルス感染症（６）または細菌性敗血症（８）を呈する患者からサンプルを選択した（表１を参照）。サンプルを、ＰＡＸｇｅｎｅ Ｂｌｏｏｄ ＲＮＡ Ｔｕｂｅｓ（ＰｒｅＡｎａｌｙｔｉＸ，ＧｍｂＨ）内に収集し、製造元のプロトコルに従って処理してから、−８０℃で保存した。

分析時に、サンプルを室温で２時間解凍した後、１０回よりも多く反転させて、バキュテナーの内容物を均質化した。Ｑｉａｃｕｂｅ（Ｑｉａｇｅｎ、メリーランド）を使用して各サンプルのアリコートに対して最終的なＲＮＡ精製を実行し、Ｑｕｂｉｔ蛍光光度計（ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ、ウォルサム）を使用して精製した全ＲＮＡを定量した（表１を参照）。

結果−相対存在比の評価
参照核酸に対する標的核酸の相対存在比を評価するために、各標的核酸または参照核酸を、上述した一段階の逆転写−等温増幅アッセイを使用して、５０ｎｇの全ＲＮＡからシングルプレックス増幅した。

閾値までの時間（Ｔｔ）値を、各サンプル中の各標的核酸および各参照核酸について決定し、次に、以前に決定された標準曲線を使用してＬｏｇ_２（テンプレートコピー数）に変換した。次に、２つの測定値の比率をとることにより、ＹＷＨＡＢに対するＩＦＩ２７の相対存在比を算出した（表１を参照）。

同じＲＮＡサンプルをＮａｎｏＳｔｒｉｎｇｎＣｏｕｎｔｅｒでも分析した。これにより、増幅することなくサンプル中に存在する宿主ｍＲＮＡ転写生成物を直接定量できる。ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒを使用して得たＩＦＩ２７およびＹＷＨＡＢの転写生成物の存在比値を対数変換し、これらの値の比率を決定して、上述の等温増幅アッセイを使用して得た測定値と比較した。

ゴールドスタンダードに対する等温増幅アッセイの性能を定量するために、等温増幅アッセイを使用して決定した相対存在比値をＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒを使用して決定した値の関数としてプロットし、すべてのサンプルにわたってこれら測定値間のピアソン相関係数を算出した（図７を参照）。

図８は、等温増幅アッセイおよびゴールドスタンダードのＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒによって決定された参照核酸（ＹＷＨＡＢ）の存在比に対する標的核酸（ＩＦＩ２７）の存在比に関連するピアソン係数との相関プロットを示している。値は、両アッセイ共Ｌｏｇ_２（折り畳み存在比）としてプロットし、診断に応じてコード化されている：丸はウイルス感染症を表し、四角は細菌性敗血症を表す。三角は健康な対照を表す。線は、解釈を容易にするために、標準的な線形回帰分析による曲線適合を表す。

等温増幅アッセイは、ゴールドスタンダードアッセイ（ｒ＝０．９７）との例外的な相関関係を実証し、相対存在比の測定値において優れた一致を示した。重要なことに、異なる診断（例えば、細菌性敗血症、ウイルス感染症、または健康なサンプル）を表すグループは、いずれのアッセイでもクラスター化され、等温増幅アッセイを使用しても臨床的有用性が維持されることを示している。

実施例５：ＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒ ｑＬＡＭＰアッセイおよびゴールドスタンダードｍＲＮＡ定量アッセイとの比較
７つの遺伝子のセットは、ウイルス感染症または細菌感染症の分類に有用なバイオマーカーとして以前から同定されていた。７つの遺伝子には、ウイルス感染症により多いＩＦＩ２７、ＪＵＰ、ＬＡＸ１、および細菌感染症により多いＨＫ３、ＴＮＩＰ１、ＧＰＡＡ１、ＣＴＳＢが含まれる。（米国特許出願公開第２０１９／０１４４９４３号を参照。）７つのバイオマーカーのレベルに基づく統合診断スコア（発熱スコアまたはＨｏｓｔ−Ｄｘ−Ｆｅｖｅｒスコアと呼ばれる）は、次の式に従って表されるように、幾何平均（ＤＧＭ）の差を使用して推定することができる：

実験では、ＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒ ｑＬＡＭＰアッセイは、分析検証コホート全体で７つの標的遺伝子の各々について検証された。全ＲＮＡを抽出し、ＱｕａｎｔＳｔｕｄｉｏ６ ｑＰＣＲマシンでＬＡＭＰアッセイを３回実行した。分析のゴールドスタンダードは、ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒの絶対ｍＲＮＡ数であった。両方の技術に関して、ＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒスコアは、方程式（８）で表されるように、ｍＲＮＡアッセイのＤＧＭとして算出された：

標準曲線を使用しない等温増幅を使用した相対定量
実験では、同じ細菌およびウイルスの臨床サンプルを２セットのアッセイで試験した。アッセイの各セットは、ＤＧＭアプローチを使用して組み合わせると、細菌感染症とウイルス感染症を分けることができる単一の診断スコアを作成する、以前に同定された７つのバイオマーカーを対象とした。アッセイの第１のセットでは、ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒデジタルｍＲＮＡプラットフォームを使用した。ここでは、ハウスキーパーで正規化された数をＤＧＭ方程式（例えば、方程式（８））に入力する。

アッセイの第２のセットは、同じｍＲＮＡを標的とする等温ｑＬＡＭＰアッセイのセットであった。各アッセイの閾値までの時間値Ｔｔを、ＤＧＭ方程式（例えば、方程式（８））に入力した。閾値までの時間値は、標準曲線を使用して絶対コピー数に変換されることなく、ＤＧＭ方程式に直接入力されることに留意されたい。

図９Ａは、等温増幅アッセイおよびゴールドスタンダードのＮａｎｏＳｔｒｉｎｇ ｎＣｏｕｎｔｅｒによって決定された診断スコアに関連付けられたピアソン係数との相関プロットを示す。黒丸はウイルス感染症を表し、灰色の丸は細菌感染症を表す。直線は、解釈を容易にするために、標準の線形回帰分析による曲線適合を表す。等温増幅アッセイは、ゴールドスタンダードアッセイとの例外的な相関関係を実証した（ｒ＝０．９４４）。これは、標準曲線を使用しなくてもｑＬＡＭＰ技術が、分析ゴールドスタンダードに対して関連する臨床サンプルにおいて非常に正確な診断結果をもたらすことができることを示している。

図９Ｂは、ｑＬＡＭＰアッセイに基づくＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒスコア分布を示す。図９Ｃは、ＮａｎｏＳｔｒｉｎｇｎＣｏｕｎｔｅｒに基づくＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒスコア分布を示す。異なる診断（例えば、細菌感染症またはウイルス感染症）を表すグループは、いずれのタイプのアッセイでもクラスター化されていることに留意されたい。これは、いずれかの技術で実行されたＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒが感染症クラスを正確に区別できること、およびＨｏｓｔＤｘ−Ｆｅｖｅｒバイオマーカーが基礎となる定量的技術に比較的鈍感であることを示している。しかしながら、技術的プラットフォームは、同様の相対定量を維持しながらも、異なる絶対数を生じさせる可能性があるため、最適な臨床カットオフは２つの技術で異なる場合がある。

実施例６：マルチボリューム等温ｑＬＡＭＰアッセイ
所与のテンプレート濃度でより大きな体積を調べることが、線形ダイナミックレンジの下限でのｑＬＡＭＰアッセイの成功率を改善し得るか否かを試験するために、実験を行った。仮説は次のとおりである。（ｉ）ｑＬＡＭＰは、ｑＰＣＲと同様に、反応容器内の標的遺伝子の任意であるが固定された閾値コピー数を蓄積するのに必要な時間を測定する。（ｉｉ）飽和結合条件下で、閾値数に達するのに必要な時間は、（ａ）反応が開始されたときに存在するコピーの数、および（ｂ）単位時間あたりの増加率（反応効率または増幅効率と呼ばれる）に依存する。

実験では、テンプレートの同じ濃度が２つの異なる体積（１０μＬおよび５０μＬ）にわたって維持される。測定した閾値までの時間値Ｔｔが事前定義されたカットオフ値を下回っている場合、等温増幅は成功したと見なされる。カットオフ値は、以下に例証するように、または他の手段によって、標準曲線滴定に対する線形回帰適合のｙ切片として定義することができる。

図１０は、カットオフ値が標準曲線滴定に対する線形回帰適合のｙ切片として定義される例を示している。丸１０１０は、様々な入力濃度について測定された閾値までの時間値である。直線１０２０は、線形回帰適合によって得られた標準曲線を表す。水平の破線１０３０は、ｙ切片（例えば、方程式（１）または方程式（２）において表される標準曲線の「ｂ」の値）を示す。したがって、いくつかの実施形態において、測定された閾値までの時間値Ｔｔが水平の破線９３０より下にある場合、等温増幅は成功したと見なすことができる。

実験では、９６ウェルプレート上で、４８ウェルの各々に１０μＬの試験サンプルの第１のアリコートがそれぞれ充填され、他の４８ウェルの各々に５０μＬの試験サンプルの第２のアリコートがそれぞれ充填される。第１のアリコートと第２のアリコートのテンプレート濃度は同じである。

図１１は、ｑＬＡＭＰアッセイの実験結果を示る。黒丸は、２０μＬの反応体積で測定された閾値までの時間Ｔｔを表し、灰色の丸は、５０μＬの反応体積で測定された閾値までの時間値Ｔｔを表す。挿入図は、２０〜４０タイムサイクル（各２０秒）の閾値までの時間範囲を拡大したバージョンを示している。水平の破線は、前述のように、事前定義されたカットオフＴｔ値を示す。図示されるように、反応体積が多いほど、閾値までの時間値が早くなり、成功率が高くなる。

この実験は、所与の体積に分散された一定数のテンプレート分子について、固定数が線形ダイナミックレンジの下限に近い場合、体積の大部分を調べると、正確な（線形）測定値を生成する可能性が高くなることを実証している。したがって、存在比が低いバイオマーカーをアッセイするためにより大きなウェル体積を使用すると、線形ダイナミックレンジが改善され、アッセイで首尾よく実行できるサンプルの数が増える可能性がある。

本明細書に記載される実施例および実施形態は、例示のみを目的としており、それに照らして様々な修正または変更が当業者に提案され、本出願の精神および範囲ならびに添付の特許請求の範囲に含まれることが理解される。本明細書で引用される全ての刊行物、特許、および特許出願は、全ての目的のためにそれらの全体が参照により本明細書に組み込まれる。

Claims (27)

1. リアルタイム定量的等温増幅を使用して試験サンプルの診断スコアを推定するための方法であって、
   少なくとも１つの第１の標的核酸と、少なくとも１つの第２の標的核酸と、参照核酸とを含有する前記試験サンプルを得ることであって、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の各々が、哺乳類宿主核酸を含む、前記試験サンプルを得ることと、
   前記試験サンプルの第１のアリコートを前記第１の標的核酸の定量的等温増幅のための第１の反応容器に添加し、前記試験サンプルの第２のアリコートを前記第２の標的核酸の定量的等温増幅のための第２の反応容器に添加することであって、前記第１の反応容器および前記第２の反応容器の各々が、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容し、前記第２の標的核酸が、前記試験サンプルにおいて前記第１の標的核酸よりも低い予想存在比を有し、前記第１のアリコートが第１の体積を有し、前記第２のアリコートが前記第１の体積よりも大きい第２の体積を有する、第１のアリコートおよび第２のアリコートを添加することと、
   前記第１の反応容器内で第１のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを、
   前記第１の反応容器内で第１の反応を開始し、
   前記第１の反応における前記第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定し、
   前記第１の反応における前記参照核酸の第１の参照閾値までの時間値を決定し、かつ、
   少なくとも前記第１の閾値までの時間値および前記第１の参照閾値までの時間値に基づいて、前記参照核酸に対する、前記試験サンプル中の前記第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することにより、実行することと、
   前記第２の反応容器内で第２のリアルタイム定量的等温増幅アッセイを、
   前記第２の反応容器内で第２の反応を開始し、
   前記第２の反応における前記第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定し、
   前記第２の反応における前記参照核酸の第２の参照閾値までの時間値を決定し、かつ、
   少なくとも前記第２の閾値までの時間値および前記第２の参照閾値までの時間値に基づいて、前記参照核酸に対する、前記試験サンプル中の前記第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することにより、実行することと、
   前記第１の標的核酸の前記第１の相対存在比値および前記第２の標的核酸の前記第２の相対存在比値に基づいて前記試験サンプルの前記診断スコアを推定することと、を含む方法。
2. 前記試験サンプルの前記第１のアリコートを前記第１の反応容器に添加し、前記試験サンプルの前記第２のアリコートを前記第２の反応容器に添加する前に、臨床的に代表的な集団における前記第１標的核酸および前記第２標的核酸について試験リアルタイム定量的等温増幅アッセイを実行することによって、前記第２の標的核酸が前記第１標的核酸よりも低い予想存在比を有することを確立することをさらに含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記診断スコアが、前記第１の相対存在比値と前記第２の相対存在比値との間の差に関連する、請求項１に記載の方法。
4. 前記試験サンプルが複数の第１の標的核酸および複数の第２の標的核酸を含有し、前記診断スコアが、前記複数の第１の標的核酸の前記相対存在比値に基づく第１の統計値と、前記複数の第２の標的核酸の前記相対存在比値に基づく第２の統計値との間の差に関連する、請求項１に記載の方法。
5. 前記第１の統計値が、前記複数の第１の標的核酸の前記相対存在比値の幾何平均を含み、前記第２の統計値が、前記複数の第２の標的核酸の前記相対存在比値の幾何平均を含む、請求項４に記載の方法。
6. 前記第１の統計値が、前記複数の第１の標的核酸の算術平均または前記相対存在比値の合計を含み、前記第２の統計値が、前記複数の第２の標的核酸の算術平均または前記相対存在比値の合計を含む、請求項４に記載の方法。
7. 前記診断スコアが、患者が細菌感染症またはウイルス感染症を有しているか否かを診断するために使用される、請求項４に記載の方法。
8. 前記複数の第１の標的核酸がウイルス感染症により多い遺伝子を含み、前記複数の第２の標的核酸が細菌感染症により多い遺伝子を含む、請求項７に記載の方法。
9. 前記複数の第１の標的核酸がＩＦＩ２７、ＪＵＰおよびＬＡＸ１を含み、前記複数の第２の標的核酸がＨＫ３、ＴＮＩＰ１、ＧＰＡＡ１およびＣＴＳＢを含む、請求項８に記載の方法。
10. 前記試験サンプルが、複数の第１の標的核酸および複数の第２の標的核酸を含有し、前記診断スコアが、回帰モデル、ツリーベースの機械学習モデル、サポートベクターマシンモデルまたは人工ニューラルネットワーク（ＡＮＮ）モデルを使用して、前記複数の第１の標的核酸の前記相対存在比値および前記複数の第２の標的核酸の前記相対存在比値に基づいて推定される、請求項１に記載の方法。
11. 前記第１のリアルタイム定量的等温増幅アッセイおよび前記第２のリアルタイム定量的等温増幅アッセイの各々が、リアルタイム定量的ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）アッセイである、請求項１に記載の方法。
12. 前記第１の反応容器における前記第１の反応および前記第２の反応容器における前記第２の反応の各々が、ホットスタート機構を使用して開始される、請求項１に記載の方法。
13. リアルタイム定量的等温増幅を使用して診断スコアを推定する方法であって、
    哺乳類対象から試験サンプルを得ることであって、前記試験サンプルが、少なくとも１つの第１の標的核酸と、少なくとも１つの第２の標的核酸と、参照核酸とを含有し、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の各々が、目的のコホート集団にわたって検証されるように、前記リアルタイム定量的等温増幅のダイナミックレンジ内にある前記試験サンプル中の予想濃度を有する、試験サンプルを得ることと、
    前記試験サンプルのアリコートを、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する少なくとも１つの反応容器に添加することと、
    前記少なくとも１つの反応容器内で等温増幅の少なくとも１つの反応を開始することと、
    前記少なくとも１つの反応における前記第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定することと、
    前記少なくとも１つの反応における前記第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定することと、
    前記少なくとも１つの反応における前記参照核酸の参照閾値までの時間値を決定することと、
    少なくとも前記第１の閾値までの時間値および前記参照閾値までの時間値に基づいて、前記試験サンプル中の前記参照核酸に対する、前記第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することと、
    少なくとも前記第２の閾値までの時間値および前記参照閾値までの時間値に基づいて、前記試験サンプル中の前記参照核酸に対する、前記第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することと、
    前記第１の標的核酸の前記第１の閾値までの時間値および前記第２の標的核酸の前記第２の閾値までの時間値に基づいて、前記試験サンプルの前記診断スコアを推定することと、を含む方法。
14. 前記試験サンプルを得る前に、目的のコホート集団全体にわたってリアルタイム定量的等温増幅を実行して、臨床的に関連する閾値診断スコアを確立することと、
    前記試験サンプルの前記診断スコアを推定した後、前記試験サンプルの前記診断スコアを前記閾値診断スコアと比較することによって、病状の臨床診断を行うことと、をさらに含む、請求項１３に記載の方法。
15. 前記等温増幅が、ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）である、請求項１３に記載の方法。
16. 前記診断スコアが、前記第１の標的核酸の前記第１の閾値までの時間値と、前記第２の標的核酸の前記第２の閾値までの時間値との間の差に関連する、請求項１３に記載の方法。
17. 前記試験サンプルが複数の第１の標的核酸および複数の第２の標的核酸を含有し、前記診断スコアが、前記複数の第１の標的核酸の前記閾値までの時間値に基づく第１の統計値と、前記複数の第２の標的核酸の前記閾値までの時間値に基づく第２の統計値との間の差に関連する、請求項１３に記載の方法。
18. 前記少なくとも１つの反応容器内での等温増幅の前記少なくとも１つの反応が、ホットスタート機構を使用して開始される、請求項１３に記載の方法。
19. 試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行することによって診断スコアを推定するための方法であって、
    第１の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第１の関数を含む第１の標準曲線と、第２の標的核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける第２の関数を含む第２の標準曲線と、参照核酸の開始コピー数を閾値までの時間に関連付ける参照関数を含む参照標準曲線とを得ることであって、前記第１の標準曲線、前記第２の標準曲線および前記参照標準曲線が、前記試験サンプルに対してリアルタイム定量的等温増幅を実行する前に生成される、第１の標準曲線と、第２の標準曲線と、参照標準曲線とを得ることと、
    哺乳類対象から前記試験サンプルを得ることであって、前記試験サンプルが、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸を含有する、前記試験サンプルを得ることと、
    前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容する少なくとも１つの反応容器に前記試験サンプルを添加することと、
    前記少なくとも１つの反応容器内で等温増幅の少なくとも１つの反応を開始することと、
    前記少なくとも１つの反応における前記第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定することと、
    前記少なくとも１つの反応における前記第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定することと、
    前記少なくとも１つの反応における前記参照核酸の参照閾値までの時間値を決定することと、
    前記第１の標準曲線の前記第１の関数を使用して、前記第１の閾値までの時間値に基づいて、前記試験サンプル中の前記第１の標的核酸の第１の開始コピー数を推定することと、
    前記第２の標準曲線の前記第２の関数を使用して、前記第２の閾値までの時間値に基づいて、前記試験サンプル中の前記第２の標的核酸の第２の開始コピー数を推定することと、
    前記参照標準曲線によって提供される前記参照関数を使用して、前記参照閾値までの時間値に基づいて、前記試験サンプル中の前記参照核酸の参照開始コピー数を推定することと、
    前記第１の標的核酸の前記第１の開始コピー数および前記参照核酸の前記参照開始コピー数に基づいて、前記参照核酸に対する、前記試験サンプル中の前記第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定することと、
    前記第２の標的核酸の前記第２の開始コピー数および前記参照核酸の前記参照開始コピー数に基づいて、前記参照核酸に対する、前記試験サンプル中の前記第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定することと、
    前記第１の標的核酸の前記第１の相対存在比値および前記第２の標的核酸の前記第２の相対存在比値に基づいて前記試験サンプルの前記診断スコアを推定することと、
    前記試験サンプルの前記診断スコアを所定の閾値診断スコアと比較することにより、病状の臨床診断を行うことと、を含む方法。
20. 前記等温増幅が、ループ介在等温増幅（ＬＡＭＰ）である、請求項１９に記載の方法。
21. 前記少なくとも１つの反応容器内での等温増幅の前記少なくとも１つの反応が、ホットスタート機構を使用して開始される、請求項１９に記載の方法。
22. 前記診断スコアが、前記第１の標的核酸の前記第１の閾値までの時間値と、前記第２の標的核酸の前記第２の閾値までの時間値との間の差に関連する、請求項１９に記載の方法。
23. リアルタイム定量的等温増幅を使用して試験サンプルの診断スコアを推定するための装置であって、
    前記試験サンプルの第１のアリコートを保持するように構成された第１の反応容器、および前記試験サンプルの第２のアリコートを保持するように構成された第２の反応容器であって、
    前記試験サンプルが、第１の標的核酸と、第２の標的核酸と、参照核酸とを含有し、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の各々が、哺乳類宿主核酸を含み、
    前記第１の反応容器および前記第２の反応容器の各々が、前記第１の標的核酸、前記第２の標的核酸および前記参照核酸の等温増幅のためのマスターミックスを収容し、
    前記第１のアリコートが第１の体積を有し、前記第２のアリコートが前記第１の体積よりも大きい第２の体積を有し、前記第２の標的核酸が、前記試験サンプル中の前記第１の標的核酸よりも低い予想存在比を有する、第１の反応容器および第２の反応容器と、
    第１の閾値蛍光強度値および第２の閾値蛍光強度値を記憶するためのコンピュータメモリと、
    前記第１の標的核酸および前記参照核酸を増幅する前記第１の反応容器内で第１の等温増幅反応を開始するための手段であって、前記第１の等温増幅反応が、前記第１の標的核酸に関連する第１の蛍光および前記参照核酸に関連する第１の参照蛍光を生成する、手段と、
    前記第１の反応容器に光学的に連結された第１の蛍光検出器および第１の参照蛍光検出器であって、前記第１の蛍光検出器が、時間の関数として前記第１の蛍光の強度を測定し、時間の関数として前記第１の参照蛍光の第１の参照強度を測定するように構成された、第１の蛍光検出器および第１の参照蛍光検出器と、
    前記第２の標的核酸および前記参照核酸を増幅する前記第２の反応容器内で第２の等温増幅反応を開始するための手段であって、前記第２の等温増幅反応が、前記第２の標的核酸に関連する第２の蛍光および前記参照核酸に関連する第２の参照蛍光を生成する、手段と、
    前記第２の反応容器に光学的に連結された第２の蛍光検出器および第２の参照蛍光検出器であって、前記第２の蛍光検出器が、時間の関数として前記第２の蛍光の強度を測定し、時間の関数として前記第２の参照蛍光の第２の参照強度を測定するように構成された、第２の蛍光検出器および第２の参照蛍光検出器と、
    前記第１の蛍光検出器、前記第２の蛍光検出器、前記第１の参照蛍光検出器、前記第２の参照蛍光検出器および前記コンピュータメモリに連結されたコンピュータプロセッサであって、
    関数時間としての前記第１の蛍光の強度および前記第１の閾値蛍光強度値に基づいて、前記第１の標的核酸の第１の閾値までの時間値を決定し、
    時間の関数としての前記第１の参照蛍光の強度および前記第１の閾値蛍光強度値に基づいて、前記参照核酸の第１の参照閾値までの時間値を決定し、
    少なくとも前記第１の閾値までの時間値および前記第１の参照閾値までの時間値に基づいて、前記参照核酸に対する、前記試験サンプル中の前記第１の標的核酸の第１の相対存在比値を推定し、
    時間の関数としての前記第２の蛍光の強度および前記第２の閾値蛍光強度値に基づいて、前記第２の標的核酸の第２の閾値までの時間値を決定し、
    時間の関数としての前記第２の参照蛍光の強度および前記第２の閾値蛍光強度値に基づいて、前記参照核酸の第２の参照閾値までの時間値を決定し、
    少なくとも前記第２の閾値までの時間値および前記第２の参照閾値までの時間値に基づいて、前記参照核酸に対する、前記試験サンプル中の前記第２の標的核酸の第２の相対存在比値を推定し、
    前記第１の標的核酸の前記第１の相対存在比値および前記第２の標的核酸の前記第２の相対存在比値に基づいて、前記試験サンプルの前記診断スコアを推定するように構成されたコンピュータプロセッサと、を含む装置。
24. 前記マスターミックスが、前記第１の標的核酸を検出するための第１の蛍光標識と、前記第２の標的核酸を検出するための第２の蛍光標識と、前記参照核酸を検出するための第３の蛍光標識と、を含む、請求項２３に記載の装置。
25. 前記第１の蛍光標識、前記第２の蛍光標識および前記第３の蛍光標識の各々が、ＳＹＴＯ色素を含む、請求項２４に記載の装置。
26. 前記第１の閾値蛍光強度値および前記第２の閾値蛍光強度値が同じである、請求項２３に記載の装置。
27. 前記第１の閾値蛍光強度値および前記第２の閾値蛍光強度値が互いに異なる、請求項２３に記載の装置。

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