JP2022022807A

JP2022022807A - 抗糖化用組成物、及び抗糖化用組成物の製造方法

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Publication number: JP2022022807A
Application number: JP2020117235A
Authority: JP
Inventors: 孝久田; Takashi Hisada; 優子加賀; Yuko Kaga; 裕司山口; Yuji Yamaguchi; 節子榊; Setsuko Sakaki; 裕行竹中; Hiroyuki Takenaka
Original assignee: Tokyo University of Marine Science and Technology NUC; Micro Algae Corp
Current assignee: Tokyo University of Marine Science and Technology NUC; Micro Algae Corp
Priority date: 2020-07-07
Filing date: 2020-07-07
Publication date: 2022-02-07
Anticipated expiration: 2040-07-07
Also published as: JP7300121B2

Abstract

【課題】終末糖化産物の生成を抑制する抗糖化用組成物を提供する。【解決手段】抗糖化用組成物は、イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物の水溶性抽出物を有効成分として含有する。【選択図】図２

Description

本発明は、抗糖化用組成物、及び抗糖化用組成物の製造方法に関する。

ブドウ糖などの還元糖とタンパク質から終末糖化産物が生成する反応を糖化という。タンパク代謝によって血中に遊離した終末糖化産物は、通常は腎臓で体外へ排出されるが、生体内の組織タンパク、特に寿命の長いタンパク質が糖化を受けると終末糖化産物が長期に渡り体内にとどまることになる。このため加齢や生活習慣病により終末糖化産物が生体内に蓄積されると、肌の弾力の低下、動脈硬化、骨粗しょう症、白内障、認知症の原因になるとも考えられている。そのため、終末糖化産物の生成を抑制することにより各疾病リスク軽減や老化の抑制につながることが期待されている。

特許文献１に開示されるように、藍藻綱ネンジュモ目ノストック属に属する藻体として、例えば、イシクラゲ（Nostoc commune）、ハッサイ（Nostoc flagelliforme）、葛仙米（Nostoc sphaericum）が知られている。これらの藻体は、蛋白質、ビタミン類、多糖類、各種ミネラルを豊富に含有しており、古来より中国や日本等において食用に供されてきた。

特開平９－１４９７７４号公報

本発明は、本研究者らによる鋭意研究の結果、イシクラゲに由来する組成物が生体内における終末糖化産物の生成を抑制する効果を発揮することを新たに見出したことに基づいてなされたものである。本発明の目的は、終末糖化産物の生成を抑制する抗糖化用組成物、及び抗糖化用組成物の製造方法を提供することにある。

上記課題を解決する抗糖化用組成物は、イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物を有効成分として含有する。
上記課題を解決する抗糖化用組成物は、イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物の水溶性抽出物を有効成分として含有する。

上記課題を解決する抗糖化用組成物の製造方法は、イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させることにより、イシクラゲの乳酸菌処理物を得る発酵工程を有する。
上記抗糖化用組成物の製造方法において、水を含む抽出溶媒により前記乳酸菌処理物の水溶性抽出物を得る抽出工程を有することが好ましい。

本発明によれば、終末糖化産物の生成を抑制できる。

乳酸菌処理の前後におけるグルコース及び乳酸の含有量の変化を示すＨＰＬＣチャート。乳酸菌処理の前後における抗糖化活性の変化を示すグラフ。乳酸菌処理の前後における総フェノール含有量、鉄還元能、及びＯ_２ ^－ラジカル消去能の各変化を示すグラフ。

以下、本発明を具体化した実施形態の抗糖化用組成物、及び抗糖化用組成物の製造方法を詳細に説明する。
抗糖化用組成物は、イシクラゲを特定の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物の水溶性抽出物を有効成分として含有する。抗糖化用組成物の製造方法は、イシクラゲを特定の乳酸菌により発酵させることにより、イシクラゲの乳酸菌処理物を得る発酵工程と、水を含む抽出溶媒により乳酸菌処理物の水溶性抽出物を得る抽出工程とを有する。以下、抗糖化用組成物の原料、及び抗糖化用組成物の製造方法の各工程について説明する。

［原料］
抗糖化用組成物は、藍藻綱ネンジュモ目ノストック属に属する陸棲藍藻の一種であるイシクラゲ（Nostoc commune）を原料とする。

［発酵工程］
発酵工程に供されるイシクラゲは、採取したままの状態、採取後に破砕処理した状態、採取後に乾燥処理した状態、並びに採取後に破砕処理及び乾燥処理した状態のいずれの状態であってもよい。発酵工程を効率的に行う観点から、粉砕処理した状態のイシクラゲを用いることが好ましい。上記粉砕処理には、例えば、カッター、裁断機、クラッシャー、ミル、グラインダー、ニーダー、乳鉢等を用いることができる。

発酵工程に供されるイシクラゲは、イシクラゲの破砕物に水に懸濁させた懸濁液の状態、又はイシクラゲの破砕物に水を添加して混錬した混錬物の状態であることが好ましい。イシクラゲの懸濁液を調製する場合の水の添加量は、例えば、イシクラゲの質量に対して５～５０倍量である。

発酵工程に供されるイシクラゲには、殺菌処理されたものであることが好ましい。殺菌処理の方法としては、オートクレーブを用いた高圧加熱殺菌処理などの公知の方法を用いることができる。

発酵工程では、上記の各処理が適宜施されたイシクラゲに特定の乳酸菌を接種し、特定の処理温度にて特定の処理時間、放置することによりイシクラゲを発酵させる。
発酵工程に用いるラクトコッカス属の乳酸菌としては、例えば、ラクトコッカス・ラクチス（Lactococcus lactis）、ラクトコッカス・チュンガンゲンシス（Lactococcus chungangensis）、ラクトコッカス・プランタルム（Lactococcus plantarum）、ラクトコッカス・ラフィノラクチス（Lactococcus raffinolactis）が挙げられる。

これらの中でもラクトコッカス・ラクチスが好ましい。なお、ラクトコッカス・ラクチスは、基準種、及びその亜種であるラクトコッカス・ラクチス亜種クレモリス（cremoris）、ラクトコッカス・ラクチス亜種ホルドニエ（hordniae）、ラクトコッカス・ラクチス亜種ラクチス（lactis）を含む。

イシクラゲを発酵させるための処理温度は、例えば、１５～４０℃である。イシクラゲを発酵させる際の処理時間は特に限定されるものではなく、処理温度や乳酸菌の種類などに応じて、イシクラゲが十分に発酵されるまでの時間を適宜、設定すればよい。例えば、イシクラゲの懸濁液を用いた場合には、懸濁液のｐＨを測定し、懸濁液のｐＨが処理前と比較して低下した状態で安定したことをもって、イシクラゲが十分に発酵されたと判断することができる。上記処理時間は、例えば、２～７日間である。

上記の発酵工程により、イシクラゲを特定の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物が得られる。なお、発酵工程後の反応物全体をそのまま乳酸菌処理物としてもよいし、発酵工程後の反応物を濃縮したり、乾燥させたりしたものを乳酸菌処理物としてもよい。

［抽出工程］
抽出工程は、乳酸菌処理物に含まれる水溶性成分を抽出溶媒に溶かす抽出ステップと、水不溶性成分を分離する分離ステップとを有する。

抽出ステップに用いる抽出溶媒としては、水、又は水と親水性有機溶媒との混合溶媒を用いることができる。親水性有機溶媒としては、例えば、メタノールやエタノール等の炭素数１～５の低級アルコール、アセトン、及び酢酸エチルが挙げられる。抽出方法としては、公知の抽出方法、例えば、冷水抽出、温水抽出、熱水抽出、及び蒸気抽出のいずれの方法を用いてもよい。また、抽出溶媒には、例えば、有機塩、無機塩、緩衝剤、及び乳化剤等の添加剤が含まれていてもよい。

抽出ステップの抽出操作としては、乳酸菌処理物と抽出溶媒とを所定時間、接触させる。乳酸菌処理物と抽出溶媒と混合比率は、抽出溶媒や抽出方法等に応じて適宜設定すればよい。抽出操作において、抽出効率を高めるために、必要に応じて攪拌処理、加圧処理、及び超音波処理等の処理を更に行ってもよい。また、抽出操作は同一の乳酸菌処理物に対して一回のみ行なってもよいし、複数回繰り返して行なってもよい。

分離ステップでは、抽出ステップ後の懸濁液に対して、固液分離操作を行うことにより、懸濁液を抽出液と水不溶性成分とに分離する。固液分離処理の方法としては、ろ過や遠心分離等の公知の分離法を用いることができる。

なお、発酵工程を、水を含む懸濁液中で行った場合には、抽出ステップを省略して分離ステップを行ってもよい。つまり、発酵工程により得られる乳酸菌処理物としての乳酸菌処理液を分離ステップに供する懸濁液と見なして、乳酸菌処理液に対して分離ステップを行ってもよい。

上記の抽出工程により、乳酸菌処理物の水溶性抽出物が得られる。なお、抽出工程における固液分離処理後の抽出液全体をそのまま水溶性抽出物としてもよいし、抽出液を濃縮したり、乾燥させたりしたものを水溶性抽出物としてもよい。

本実施形態の抗糖化用組成物は、イシクラゲを特定の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物の水溶性抽出物を有効成分として含有するものであり、上記有効成分により、生体内における終末糖化産物の生成を抑制する効果を発揮する。よって、本実施形態の抗糖化用組成物は、終末糖化産物の生成を抑制する効果の発揮を目的とした飲食品、化粧品、皮膚外用材、医薬品、医薬部外品等の各分野に好ましく適用することができる。なお、上記有効成分をそのまま抗糖化用組成物として構成してもよいし、終末糖化産物の生成の抑制を目的とした飲食品、化粧品、皮膚外用材に上記有効成分を配合して飲食品、化粧品、皮膚外用材自体を抗糖化用組成物として構成してもよい。

飲食品としては、例えば、各種飲料類（果汁又は野菜汁入り飲料、清涼飲料、ミネラル飲料、スポーツドリンク、茶類飲料、コーヒー、炭酸飲料、牛乳やヨーグルト等の乳製品等）、ゼリー状食品（ゼリー、寒天、ゼリー状飲料等）、カプセル（ソフトカプセル、ハードカプセル）、各種菓子類が挙げられる。飲食品には、ペクチンやカラギーナン等のゲル化剤、グルコース、ショ糖、果糖、乳糖、ステビア、アスパルテーム、糖アルコール等の糖類・甘味料、香料等の食品添加剤、植物性油脂及び動物性油脂等の油脂等を適宜、含有させることができる。また、飲食品の用途としては、特に限定されず、いわゆる一般食品、健康食品、機能性食品、栄養機能食品、栄養補助食品、サプリメント、特定保健用食品、機能性表示食品、病者用食品として適用することができる。

抗糖化用組成物を化粧品として使用する場合の剤形は特に限定されるものではない。具体的な剤形としては、例えば、液状、粉末状、ペースト状、固形状が挙げられる。また、添加剤として、例えば、賦形剤、基剤、乳化剤、溶剤、安定剤等を含有してもよい。

抗糖化用組成物を皮膚外用材として使用する場合の形態は特に限定されるものではない。具体的な形態としては、例えば、乳液、石鹸、洗顔料、入浴剤、クリーム、乳液、化粧水、日焼け・日焼け止めローション、パック、シャンプー、リンス、トリートメント、洗浄料が挙げられる。

抗糖化用組成物を医薬品、医薬部外品として使用する場合の投与方法は特に限定されるものではない。具体的な投与方法としては、例えば、服用（経口摂取）による投与、血管内投与、経腸投与、経皮投与、腹腔内投与が挙げられる。また、抗糖化用組成物を医薬品、医薬部外品として使用する場合の剤形は特に限定されるものではない。具体的な剤形としては、例えば、散剤、粉剤、顆粒剤、錠剤、カプセル剤、丸剤、坐剤、液剤、注射剤が挙げられる。また、添加剤として、例えば、賦形剤、基剤、乳化剤、溶剤、安定剤等を含有してもよい。

次に、本実施形態の効果について記載する。
（１）抗糖化用組成物は、イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物の水溶性抽出物を有効成分として含有する。

上記構成によれば、生体内における終末糖化産物の生成を抑制する効果が得られる。また、終末糖化産物の生成を抑制することにより、肌の弾力の低下、動脈硬化、骨粗しょう症、白内障、認知症、メタボリックシンドローム、血管の老化、皮膚の老化等の終末糖化産物に起因する症状の改善効果及び予防効果が期待できる。

（２）抗糖化用組成物の製造方法は、イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させることにより、イシクラゲの乳酸菌処理物を得る発酵工程と、水を含む抽出溶媒により乳酸菌処理物の水溶性抽出物を得る抽出工程とを有する。

上記構成によれば、生体内における終末糖化産物の生成を抑制する効果を発揮する抗糖化用組成物を製造できる。
なお、本実施形態は、以下のように変更して実施することができる。本実施形態及び以下の変更例は、技術的に矛盾しない範囲で互いに組み合わせて実施することができる。

・抗糖化用組成物は、乳酸菌処理物をそのまま有効成分として含有する構成であってもよい。この抗糖化用組成物を製造する場合、抽出工程は省略される。
・抗糖化用組成物は、目的とする効果を損なわない範囲において、他の成分を含有していてもよい。

・抗糖化用組成物の摂取量及び摂取期間は、特に限定されず、摂取者の身体機能の状態、年齢、性別、及びその他の条件を考慮し、適宜、決定される。
・抗糖化用組成物は、ヒトを対象として適用することができるのみならず、家畜等の飼養動物に対する飼料、薬剤等に適用してもよい。

次に、試験例を挙げて上記実施形態をさらに具体的に説明する。
（第１サンプルの調製）
微細藻の粉末に１０倍量又は４０倍量の蒸留水を添加し、ｐＨ７．０に調整した後、オートクレーブを用いて１２１℃で１５分間、加熱したものを第１サンプルとした。微細藻としては、イシクラゲ、ノストコプシス、ハッサイ、アシツキ、スピルリナ、デュナリエラ、クロロゴニウム、チノリモ、エンセキソウ、ユーグレナを用いた。なお、イシクラゲは、沖縄の宮古島にて採取したものを用いた。

（乳酸菌による発酵）
調製した各第１サンプルの１０％水懸濁液（５ｍＬ）に、ＭＲＳブイヨンで３７°Ｃ、２４時間、前培養した下記の乳酸菌Ａ及び乳酸菌Ｂのいずれかの乳酸菌（５μＬ）を接種し、３７℃で４日間培養したものを第２サンプルとした。また、乳酸菌を接種しない点を除いて同様に処理したブランクを用意した。

乳酸菌Ａ：Lactococcus lactis sp lactis
乳酸菌Ｂ：Lactobacillus plantarum
各第２サンプル及び各ブランクのｐＨを測定するとともに、第２サンプルのｐＨとブランクのｐＨの差分であるΔｐＨを求めた。その結果を表１に示す。

表１に示すように、イシクラゲは、特定の乳酸菌に該当する乳酸菌Ａを用いた場合には、ｐＨが１．０低下し、特定の乳酸菌に該当しない乳酸菌Ｂを用いた場合よりもｐＨの低下は大きかった。イシクラゲに近縁なネンジュモ属の藻体であるハッサイ及びアシツキを含めて、イシクラゲ以外の微細藻は、ラクトコッカス属の乳酸菌Ａ及びラクトバチルス属の乳酸菌Ｂのいずれの乳酸菌を用いた場合にも、ｐＨの低下は小さかった。

次に、ｐＨが大きく変化したイシクラゲと乳酸菌Ａとの組み合わせに関して、乳酸菌処理の前後におけるグルコース及び乳酸の各含有量を測定した。また、乳酸菌処理の前後における抗糖化活性を評価した。さらに、糖化反応には酸化反応が関与するため、総フェノール含有量、及び抗酸化活性として鉄還元能とＯ_２ ^－ラジカル消去能の変化も評価した。

（測定サンプルの調製）
イシクラゲの第２サンプルを遠心機で遠心分離処理（４０００ｇ×５ｍｉｎ、４℃）した後、上清を分離し、これを測定サンプルとした。このとき、上清を分離できなかった場合には、更に等量の蒸留水を加え、１時間振とうした後、再度、同様の遠心分離処理を行った後、上清を分離し、これを測定サンプルとした。

（グルコース及び乳酸の各含有量の測定）
測定サンプルを高速液体クロマトグラフィーに供し、下記の分析条件にて分析を行った。スタンダードには、０．５％グルコース溶液及び０．５％乳酸溶液を用いた。その結果を図１のＨＰＬＣチャートに示す。図１に示すように、乳酸菌処理を行うことにより、グルコースを示すピークが減少し、乳酸を示すピークが出現した。

カラム：Trangenomic ICSep ORH-801 (Transgenomic, NE)
カラム温度：３５℃
移動相：０．０１ｍｏｌ／ＬのＨ_２ＳＯ_４溶液
流速：０．８ｍＬ／ｍｉｎ
検出：示差屈折計
（抗糖化活性の測定）
抗糖化活性の測定は、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）＋フルクトース（Ｆｒｕ）モデル及びＢＳＡ＋メチルグリオキサール（ＭＧＯ）モデルを用いた。前者は生体内糖化反応の全般と、後者は生体内糖化反応の中盤以後のモデルとして用いられている。

１．５ｍｏｌ／ＬのＦｒｕ溶液あるいは６０ｍｍｏｌ／ＬのＭＧＯ溶液（０．５ｍＬ）に測定サンプル（０．５ｍＬ）、５０ｍｍｏｌ／Ｌのリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ７．４，０．０２％アジ化ナトリウム）（０．５ｍＬ）を添加し、３７℃で２時間、放置した。その後、３０ｍｇ／ｍＬのＢＳＡ溶液（０．５ｍＬ）を添加し、３７℃で５日間、反応させた。

反応開始直後、反応５日後にそれぞれ９６ウェルプレートに反応液（０．２ｍＬ）をとり、マイクロプレートリーダーを用いて終末糖化産物の蛍光強度を測定した。このとき、ＢＳＡ＋Ｆｒｕモデルの場合には、励起波長３４０ｎｍ－蛍光波長４２０ｎｍにおける終末糖化産物の蛍光強度を測定し、ＢＳＡ＋ＭＧＯモデルの場合には、励起波長３４０ｎｍ－蛍光波長３８０ｎｍにおける終末糖化産物の蛍光強度を測定した。

反応開始直後における測定値を「Sample(0day)」、反応５日後における測定値を「Sample(5day)」とする。測定サンプルに代えて同量の蒸留水を添加した点を除いて同様に処理したブランク試験を行い、同様のタイミングにて終末糖化産物の蛍光強度を測定した。「Sample(0day)」と同じタイミングで測定した測定値を「blank(0day)」とし、「Sample(5day)」と同じタイミングで測定した測定値を「blank(5day)」とする。得られた各測定値から下記式を用いて抗糖化活性（％）を算出した。

また、測定サンプルをイシクラゲの第１サンプルに変更した点を除いて同様の方法により乳酸菌処理前の抗糖化活性（％）を算出した。それらの結果を図２のグラフに示す。図２に示すように、乳酸菌処理を行うことにより、いずれの活性評価モデルにおいても抗糖化活性が約２倍に増加した。

なお、「＊」及び「＊＊」はそれぞれ、乳酸菌処理前と乳酸菌処理後の有意差がＰ＜０．０５である場合、及びＰ＜０．０１である場合を示す。
（総フェノール化合物含有量の測定）
蒸留水を用いて適宜希釈した測定サンプルを９６ウェルマイクロプレートに０．０３ｍＬずつ分注した（ｎ＝３）。１０％（ｗ／ｖ）Folin-Ciocalteu’sフェノール試薬（０．０６ｍＬ）を加え、室温で３分間放置した後、グレーティングマイクロプレートリーダーでＯＤ７５０ｎｍにおける吸光度を測定した。この測定値の平均値を「Sample(Abs1)」とする。その後、１０％（ｗ／ｖ）炭酸ナトリウム溶液（０．１２ｍＬ）を加え、室温で６０分間放置し、同様に吸光度を測定した。この測定値の平均値を「Sample(Abs2)」とする。

測定サンプルに代えて同量の蒸留水を添加した点を除いて同様に処理したブランク試験を行い、同様のタイミングにてＯＤ７５０ｎｍにおける吸光度を測定した。このとき、「Sample(Abs1)」と同じタイミングで測定した測定値の平均値を「blank(Abs1)」とし、「Sample(Abs2)」と同じタイミングで測定した測定値の平均値を「blank(Abs2)」とする。

測定サンプルに代えて、標準試料としてのカテキン溶液を添加した点を除いて同様に処理した標準試験を行い、同様のタイミングにてＯＤ７５０ｎｍにおける吸光度を測定した。このとき、「Sample(Abs1)」と同じタイミングで測定した測定値の平均値を「standard(Abs1)」とし、「Sample(Abs2)」と同じタイミングで測定した測定値の平均値を「standard(Abs2)」とする。得られた各測定値の平均値から下記式を用いて総フェノール化合物含有量をカテキン当量として算出した。なお、下記式中の「Ｃ濃度」は、標準試験に用いたカテキン溶液の濃度である。

また、測定サンプルをイシクラゲの第１サンプルに変更した点を除いて同様の方法により乳酸菌処理前の総フェノール化合物含有量を算出した。

（鉄還元能の測定）
蒸留水を用いて適宜希釈した測定サンプルをマイクロプレートに０．０５ｍＬ分注し、０．１ｍｏｌ／ＬのｐＨ７．２リン酸緩衝液（０．０２５ｍＬ）、１％（ｗ／ｖ）フェリシアン化カリウム溶液（０．０２５ｍＬ）を加え、アルミホイルで覆い、３７℃、６０分間放置した。１０％トリクロロ酢酸溶液（０．０２５ｍＬ）、蒸留水（０．１ｍＬ）を加え、ＯＤ７００ｎｍにおける吸光度を測定した。この測定値を「Sample(Abs1)」とする。次に、０．１％Ｆｅ_２Ｃｌ_３溶液（０．０２５ｍＬ）を加え、同様に吸光度を測定した。この測定値を「Sample(Abs2)」とする。

測定サンプルに代えて同量の蒸留水を添加した点を除いて同様に処理したブランク試験を行い、同様のタイミングにてＯＤ７００ｎｍにおける吸光度を測定した。このとき、「Sample(Abs1)」と同じタイミングで測定した測定値を「blank(Abs1)」とし、「Sample(Abs2)」と同じタイミングで測定した測定値を「blank(Abs2)」とする。得られた各測定値から下記式を用いてＯＤ７００ｎｍにおける鉄還元能を算出し、鉄還元能が０．５となるサンプル濃度を算出した。標準物質にカテキンを用いて同様の操作を行うことにより算出した濃度を用いて、鉄還元能が０．５となるサンプル濃度をカテキン当量に換算した。

また、測定サンプルをイシクラゲの第１サンプルに変更した点を除いて同様の操作を行うことにより、乳酸菌処理前の鉄還元能のカテキン当量を算出した。

（Ｏ_２ ^－ラジカル消去能の測定）
蒸留水を用いて適宜希釈した測定サンプルをマイクロプレートに０．１ｍＬ分注し、０．２５ｍｏｌ／ＬのｐＨ７．２リン酸緩衝液（０．０５ｍＬ）、２ｍｍｏｌ／Ｌのβ－ＮＡＤＨ溶液（０．０２５ｍＬ）、０．５ｍｍｏｌ／Ｌのニトロブルーテトラゾリウム溶液（０．０２５ｍＬ）をそれぞれ加え、ＯＤ５６０ｎｍにおける吸光度を測定した。この測定値を「Sample(Abs1)」とする。次に、０．０３ｍＬのフェナジンメトサルフェート溶液（０．０２５ｍＬ）を加え、アルミホイルで覆い、室温で５分間放置し、同様に吸光度を測定した。この測定値を「Sample(Abs2)」とする。

測定サンプルに代えて同量の蒸留水を添加した点を除いて同様に処理したブランク試験を行い、同様のタイミングにてＯＤ５６０ｎｍにおける吸光度を測定した。このとき、「Sample(Abs1)」と同じタイミングで測定した測定値を「blank(Abs1)」とし、「Sample(Abs2)」と同じタイミングで測定した測定値を「blank(Abs2)」とする。得られた各測定値から下記式を用いてＯ_２ ^－ラジカル消去能を算出し、Ｏ_２ ^－ラジカル消去能が５０％となるサンプル濃度（ＩＣ５０％）を算出した。標準物質にカテキンを用いて同様の操作を行うことにより算出した濃度を用いて、測定サンプルのＩＣ５０％をカテキン当量に換算した。

また、測定サンプルをイシクラゲの第１サンプルに変更した点を除いて同様の操作を行うことにより、乳酸菌処理前のＯ_２ ^－ラジカル消去能のカテキン当量を算出した。

（総フェノール化合物含有量、及び抗酸化活性の評価）
総フェノール含有量の測定結果、並びに抗酸化活性としての鉄還元能及びＯ_２ ^－ラジカル消去能の各測定結果を図３のグラフに示す。図３に示すように、乳酸菌処理を行うことにより、総フェノール化合物含有量及び鉄還元能はわずかに低下したが、Ｏ_２ ^－ラジカル消去能は抗糖化活性と同様に約２倍上昇した。

なお、「＊」及び「＊＊」はそれぞれ、乳酸菌処理前と乳酸菌処理後の有意差がＰ＜０．０５である場合、及びＰ＜０．０１である場合を示す。

Claims

イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物を有効成分として含有する抗糖化用組成物。
イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させてなる乳酸菌処理物の水溶性抽出物を有効成分として含有する抗糖化用組成物。
イシクラゲをラクトコッカス属の乳酸菌により発酵させることにより、イシクラゲの乳酸菌処理物を得る発酵工程を有する抗糖化用組成物の製造方法。
水を含む抽出溶媒により前記乳酸菌処理物の水溶性抽出物を得る抽出工程を有する請求項３に記載の抗糖化用組成物の製造方法。