JP2020537499A - 二重ハプテンプローブを用いたリコンビナーゼポリメラーゼ増幅の検出 - Google Patents

Abstract

本開示は、二重ハプテンプローブを用いて標的核酸配列を検出する方法および組成物に関する。より具体的には、本開示は、リコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）および二重ハプテンプローブを使用して、標的核酸配列を検出することに関する。場合によっては、検出はラテラルフローストリップ上である。【選択図】図４

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１７年９月１４日に出願された「二重ハプテンプローブを用いたリコンビナーゼポリメラーゼ増幅の検出」という表題の米国仮特許出願第６２／５５８，７０５号の利益を主張するものであり、その全体が参照により本明細書に組み込まれる。

本開示は、二重ハプテンプローブを用いた標的核酸配列を検出するための方法および組成物に関する。より具体的には、本開示は、リコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）および二重ハプテンプローブを用いて標的核酸配列を検出する方法および組成物に関する。場合によっては、検出はラテラルフローストリップ上での検出である。

特定の等温増幅法は、わずか数分以内で標的核酸を微量レベルから非常に高い検出可能なレベルに増幅することが可能である。このような等温法、例えば、リコンビナーゼポリメラーゼ増幅（ＲＰＡ）は、ユーザーが特定の配列を微量で検出することを可能にし得、ポイントオブケア検査を促進し診断の利便性およびスピードを向上させる。

ＲＰＡは、非実験室環境における使用に好適であることが示されており、標的ＤＮＡのＰＣＲベースの診断およびリアルタイム検出に相当する感受性が報告されている。しかし、これらのアッセイは、依然として実験室環境における使用またはスーツケースラボ型装置での使用により適している。したがって、いくつかのグループは、定性データのみが必要とされる状況のためのラテラルフローアッセイを開発した。ラテラルフロー試験は、訓練を受けていない人/家庭用の、実施が比較的簡単な試験であり、実施に高額な設備を必要としないため、資源の限られた環境における使用に好ましいフォーマットの１つである。しかし、ラテラルフロー技術は依然として、ラテラルフロー分析前の希釈工程を含む、多数の操作を必要とする。必要とされる操作数を削減することによる、ＲＰＡ増幅およびラテラルフロー検出の使用方法の単純化が依然として必要とされている。この改善は、ＲＰＡラテラルフローアッセイの消耗品の製造に有益であり、試験装置の簡素化、したがって消耗品のコスト削減を可能にし、このようなアッセイを実験室外での使用により適したものにする。

本開示は少なくとも部分的には、標的核酸配列のＲＰＡを、二重ハプテンプローブを用いて、ラテラルフローストリップ上で希釈工程なしで正確にかつ効率的に検出できるという発見に基づく。この発見を考慮して、二重ハプテンプローブを用いて標的核酸の存在または不在を検出するためのＲＰＡ組成物および方法が本明細書において提供される。これらの標的核酸配列は、疾患または障害の診断であり得る。

一態様において、本開示は、クラウディング剤；二重ハプテン脱離基を有するオリゴヌクレオチドプローブ；およびヌクレアーゼ酵素を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になるリコンビナーゼポリメラーゼ増幅組成物を特徴とする。別の態様において、本開示は、試料中に存在する標的核酸のラテラルフロー分析における使用のためのリコンビナーゼポリメラーゼ増幅組成物であって、ラテラルフロー試験ストリップ上での増幅産物の分離前の増幅混合物の希釈が不要であり、クラウディング剤；二重ハプテン脱離基を有するオリゴヌクレオチドプローブ；およびヌクレアーゼ酵素を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる、上記組成物を特徴とする。

すべての態様のいくつかの実施形態において、本明細書に記載の組成物および方法のクラウディング剤は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、フィコールまたはデキストランを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は、少なくとも１ｋＤａ、少なくとも２ｋＤａ、少なくとも３ｋＤａ、少なくとも４ｋＤａ、少なくとも５ｋＤａ、少なくとも６ｋＤａ、少なくとも８ｋＤａまたは少なくとも１０ｋＤａの分子量を有する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は、少なくとも１５％ｖ／ｖの濃度、少なくとも１２％ｖ／ｖの濃度、少なくとも１０％ｖ／ｖの濃度、少なくとも８％ｖ／ｖの濃度、少なくとも６％ｖ／ｖの濃度、少なくとも５％ｖ／ｖの濃度、少なくとも４％ｖ／ｖの濃度または少なくとも３％ｖ／ｖの濃度で組成物中に存在する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は、２０℃で５ｍＰａ／ｓ以下、４ｍＰａ／ｓ以下、３ｍＰａ／ｓ以下、２ｍＰａ／ｓ以下または１ｍＰａ／ｓ以下の粘度プロファイルを有する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤はＰＥＧであり、２０℃で３ｍＰａ／ｓ以下の粘度を有する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は３ｋＤａの分子量を有するＰＥＧであり、ＰＥＧは６．５％ｖ／ｖの濃度である。

すべての態様のいくつかの実施形態において、本明細書に記載の組成物および方法のオリゴヌクレオチドプローブは、脱離基をオリゴヌクレオチドに結合する塩基を欠くｄＲ−Ｏ−［Ｃ］ｎヌクレオチドを含む。すべての態様のいくつかの実施形態において、二重ハプテンを有するオリゴヌクレオチドプローブは、相補的ヌクレオチド配列にハイブリダイズされる場合にホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼにより切断されると、二重ハプテン脱離基を放出する。すべての態様のいくつかの実施形態において、二重ハプテン脱離基は、異なるエピトープを有する２つの免疫原性基を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、免疫原性基は、蛍光基、酵素またはそのフラグメント、ペプチドまたはそのフラグメント、ビオチンを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、免疫原性基は、ビオチン、フルオレセイン、ジゴキシゲニンまたはジニトロフェニルを含む群から選択される。

すべての態様のいくつかの実施形態において、本明細書に記載の組成物および方法のヌクレアーゼはホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼである。

別の態様において、本開示は、

（式中、ＲはＯＨまたは−ＮＨ（ＣＨ２）_６ＯＨである）
を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる組成物を特徴とする。

別の態様において、本開示は、

（式中、ＲはＯＨまたは−ＮＨ（ＣＨ２）_６ＯＨである）
を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる組成物を特徴とする。

別の態様において、本開示は、

（式中、ＤＭＴｒはジメトキシトリチルである）
を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる組成物を特徴とする。

別の態様において、本開示は、

（式中、ＤＭＴｒはジメトキシトリチルである）
を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる組成物を特徴とする。

別の態様において、本開示は、

（式中、ハプテン１およびハプテン２は本明細書に記載の免疫原性基であり；Ｚは（ｉ）アノマー炭素原子でβ立体配置の、各々ＲＮＡまたはＤＮＡオリゴヌクレオチドにおける脱塩基リボースまたはデオキシリボース環のＣｌ’；（ｉｉ）ＤＮＡまたはＲＮＡオリゴヌクレオチドに結合するように構成されたホスホロアミダイト化合物、から選択され、そこでＺがＤＮＡまたはＲＮＡホスホロアミダイトである場合、ハプテン１およびハプテン２の反応基は任意でピバロイル、ｔｅｒｔ−ブチルベンゾイル、アシル、ベンゾイル、またはイソブチリルで保護され得；Ｒは水素または直鎖もしくは分枝Ｃ１〜Ｃ６アルキルを表し；Ｘ１、Ｘ２およびＸ４は結合基であり、独立に不在であり得るか、または１つ以上の−Ｏ−、−Ｃ（＝Ｏ）−もしくは−ＮＲ−基により任意で中断され得る直鎖若しくは分枝Ｃ１〜Ｃ１２アルキルであり得；Ｘ３は直鎖または分枝Ｃ１〜Ｃ６アルキルであり；Ｘ５は、１つ以上の−Ｏ−、−Ｃ（＝Ｏ）−または−ＮＲ−基により任意で中断される直鎖または分枝Ｃ１〜Ｃ１２アルキルである）
を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる組成物を特徴とする。

いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、エキソヌクレアーゼにより切断可能であり、オリゴヌクレオチドは、切断されると二重ハプテン脱離基を放出する。いくつかの実施形態において、エキソヌクレアーゼはエキソヌクレアーゼＩＩＩである。いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは構造式５’Ｘ（ｎ）_ａＬ（ｎ）_ｂＨ（ｎ）_ｃＢ３’（式中、ｎはヌクレオチドであり、ａ、ｂおよびｃは整数であり、Ｘは５’ヘキシルまたはハプテンであり、ＨはＴＨＦ残基であり、ＢはＣ３スペーサーであり、Ｌは複数のハプテンを含む分枝修飾因子である）を有する。いくつかの実施形態において、ハプテンは、例えば、ＤＮＰおよびビオチンであるが、他のハプテン（例えば、ＦＡＭ）を利用してもよい。いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブはハプテン間のホスホロチオエート結合を含む。いくつかの実施形態において、ａおよびｃは少なくとも１５ヌクレオチドである。いくつかの実施形態において、ｂはゼロである。いくつかの実施形態において、ａは約１５であり、ｃは約３０である。いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは標的核酸に相補的である。いくつかの実施形態において、Ｌはシトシンヌクレオチドに置き換えられる。

別の態様において、本開示は、試料適用領域；試料適用領域下流にありそれと流体連通している試薬領域であって、標的核酸を増幅するための乾燥ＲＰＡ試薬組成物、増幅された標的核酸産物に特異的な結合剤および検出分子を含む、試薬領域；試薬領域の下流にあり、それと流体連通している少なくとも１つの試験領域であって、増幅された標的核酸産物に対し特異的な固定化捕捉分子を含む、少なくとも１つの試験領域；ならびに試験領域の下流にあるコントロール領域、を含むか、これからなるか、またはこれから本質的になる、ラテラルフローストリップを含むか、これからなるか、またはこれから本質的になる装置を特徴とする。いくつかの実施形態において、装置は、連続的な（例えば、同時の）ＲＰＡおよび検出を提供する。いくつかの実施形態において、装置は、試験領域に大重量吸収パッドを備える。

すべての態様のいくつかの実施形態において、乾燥ＲＰＡ試薬組成物は、クラウディング剤、リコンビナーゼ、ポリメラーゼ、ヌクレアーゼ、二重ハプテンプローブおよび検出分子を含む。すべての態様のいくつかの実施形態において、二重ハプテンプローブは、ビオチンとカルボキシフルオレセイン（ＦＡＭ）の、またはビオチンとジニトロフェニル（ＤＮＰ）のコンジュゲートを含む。すべての態様のいくつかの実施形態において、増幅された標的核酸に特異的な固定化捕捉分子は、抗ＦＡＭ捕捉分子または抗ＤＮＰ捕捉分子からなる群から選択される。すべての態様のいくつかの実施形態において、抗ＦＡＭまたは抗ＤＮＰは、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、およびＦＡＢ、ＳｃＦｖ、ＦｖまたはＤＡＢを含むこれらの機能的結合フラグメントからなる群から独立に選択される。すべての態様のいくつかの実施形態において、検出分子は、金ゾル、銀ゾル、ラテックスゾル、セルロースナノビーズまたはカーボンナノストリングおよび抗ビオチン捕捉分子からなる群から選択される。

すべての態様のいくつかの実施形態において、コントロール領域は、ラテラルフローストリップの正確な操作を示す結合領域を含む。すべての態様のいくつかの実施形態において、コントロール領域は抗マウス抗体捕捉ラインを含む。

別の態様において、本開示は、目的の標的核酸を含有することが疑われる試料を、標的核酸を増幅するためのＲＰＡ試薬、標的核酸に相補的な核酸配列および共有結合された二重ハプテン脱離基を含むオリゴヌクレオチドプローブ、ならびにヌクレアーゼと接触させることと；標的核酸を増幅して標的核酸産物を生成することと；標的核酸にハイブリダイズされたオリゴヌクレオチドプローブから切断された遊離二重ハプテン部分を検出することにより標的核酸産物を検出することを含むか、これらかなるか、またはこれらから本質的になる、増幅産物を検出する方法を特徴とする。

すべての態様のいくつかの実施形態において、ＲＰＡ試薬はラテラルフローストリップの試料適用領域に位置する。すべての態様のいくつかの実施形態において、試料とＲＰＡ試薬とが接触すると、核酸増幅がラテラルフローストリップ上で行われて、核酸増幅混合物を形成する。すべての態様のいくつかの実施形態において、核酸増幅は、ＲＰＡ混合物への他の液体の希釈または添加なしにラテラルフローストリップ上で行われる。いくつかの実施形態において、ＲＰＡ反応および検出は同時である。

すべての態様のいくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブから切断された二重ハプテン部分は、試料適用領域の下流に位置するラテラルフローの試験領域で選択的に捕捉される。すべての態様のいくつかの実施形態において、共有結合した二重ハプテンを含むオリゴヌクレオチドプローブは、ラテラルフローストリップの試験領域で選択的に捕捉されない。すべての態様のいくつかの実施形態において、ラテラルフローストリップは試験領域およびコントロール領域を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になり、ここで試験領域はオリゴヌクレオチドから切断された二重ハプテンの捕捉のための結合対メンバーを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になり、コントロール領域は、内部コントロールのための結合対メンバーを含む。すべての態様のいくつかの実施形態において、コントロール領域は、抗マウス抗体またはそのフラグメントを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、試験領域は、抗ＤＮＰ捕捉分子または抗ＦＡＭ捕捉分子を含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、抗ＦＡＭ捕捉分子は、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体およびこれらの機能的結合フラグメントからなる群から選択される。すべての態様のいくつかの実施形態において、抗ＤＮＰ捕捉分子は、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体またはこれらの機能的結合フラグメントからなる群から選択される。

すべての態様のいくつかの実施形態において、増幅産物を検出することは、二重ハプテン脱離基を試験領域で捕捉すること、および捕捉された二重ハプテン脱離基を検出分子で標識することを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、検出分子は、金ゾル、銀ゾル、ラテックスゾル、セルロースナノビーズおよびカーボンナノストリングからなる群から選択される。

別の態様において、本開示は、標的核酸を含有することが疑われる試料をラテラルフローストリップに適用することと；試料を、ラテラルフローストリップの試薬領域上で乾燥された標的核酸を増幅するためのＲＰＡ試薬混合物と接触させることと；増幅産物を、存在する場合、ラテラルフローストリップの試験領域上で検出することを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる方法を特徴とする。

すべての態様のいくつかの実施形態において、標的核酸を含有することが疑われる試料は、ラテラルフローストリップの適用領域に適用される。すべての態様のいくつかの実施形態において、ＲＰＡ試薬混合物は、クラウディング剤、リコンビナーゼ、ポリメラーゼ、ヌクレアーゼおよび二重ハプテンオリゴヌクレオチドプローブを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。

すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、フィコールおよびデキストランからなる群から選択される。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は少なくとも１ｋＤａ、少なくとも２ｋＤａ、少なくとも３ｋＤａ、少なくとも４ｋＤａ、少なくとも５ｋＤａ、少なくとも６ｋＤａ、少なくとも８ｋＤａまたは少なくとも１０ｋＤａの分子量を有する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は、少なくとも１５％ｖ／ｖ、少なくとも１２％ｖ／ｖの最終濃度、少なくとも１０％ｖ／ｖ、少なくとも８％ｖ／ｖ、少なくとも６％ｖ／ｖ、少なくとも５％ｖ／ｖ、少なくとも４％ｖ／ｖまたは少なくとも３％ｖ／ｖの最終濃度の濃度で混合物中に存在する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は、２０℃で５ｍＰａ／ｓ以下、４ｍＰａ／ｓ以下、３ｍＰａ／ｓ以下、２ｍＰａ／ｓ以下または１ｍＰａ／ｓ以下の粘度プロファイルを有する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤はＰＥＧであり、２０℃で３ｍＰａ／ｓ以下の粘度を有する。すべての態様のいくつかの実施形態において、クラウディング剤は３ｋＤａの分子量を含むＰＥＧであり、ここでＰＥＧは６．５％ｖ／ｖの最終濃度である。

すべての態様のいくつかの実施形態において、存在する場合、増幅産物を検出することは、増幅産物にハイブリダイズされたオリゴヌクレオチドプローブから切断された二重ハプテン部分を検出することを含むか、これらからなるか、またはこれらから本質的になる。すべての態様のいくつかの実施形態において、ＲＰＡ混合物の希釈は、増幅産物の検出前に必要とされない。

本開示で使用する用語「１つ以上の」または「少なくとも１つ」は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０個のまたはさらにそれより多い化合物を表す。

本明細書で使用する「試料」は、その環境（動物、細胞由来の血液もしくは組織、または組織培養物由来の順化培地）から分離された、かつ分析物または他の所望の物質を含有することが疑われるか、またはこれらを含有することが公知である、生物学的物質を指す。試料はまた、例えば、特定の疾患または状態を有する対象由来の、組織または体液の部分的に精製された画分であり得る。参照試料は、疾患または状態を有しないドナーからの「正常な」試料であり得る。参照試料はまた、未処理のドナーもしくは活性剤で処理されていない（例えば、未処理またはビヒクルのみの投与）または疾患状態を誘発する条件に曝されていない細胞培養物に由来するものであり得る。参照試料はまた、細胞を試験される剤と接触させる前の「ゼロ時点」で取得され得る。

本明細書で使用する節の見出しは、構成上の目的のためであるにすぎず、記載する対象物を限定するものとして決して解釈されるべきではない。組み込まれた参考文献の用語の定義が、本教示に提供される定義と異なると思われる場合、本教示で提供される定義が優先されるべきである。わずかで非実質的な偏差が、本明細書の本教示の範囲内であるとして、本教示で考察される温度、濃度および時間などの測定値の前に「約」が含蓄されることが認識されるであろう。本出願において、特に特に明記しない限り、単数形の使用は、複数形の使用を含む。また、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」、「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」、「含んでいる（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」、「含有する（ｃｏｎｔａｉｎ）」、「含有する（ｃｏｎｔａｉｎｓ）」、「含有している（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｅ）」、「含む（ｉｎｃｌｕｄｅｓ）」および「含んでいる（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」は、限定することを意図しない。先行の一般的説明および以下の詳細な説明はいずれも単なる例示および説明にすぎず、開示を限定するものではないことが理解されるべきである。本明細書で使用する冠詞「１つの（ａ、ａｎ）」は、冠詞の文法上の目的語の１つまたは１超（すなわち、少なくとも１つ）を指す。例として、「１つの要素」は、１つの要素または１超の要素を意味する。

特に定義されない限り、本明細書で使用するすべての技術および科学用語は、本開示が属する技術分野の当業者に一般に理解されているのと同じ意味を有する。方法および材料は、本開示における使用のために本明細書に記載され、当技術分野で公知の他の好適な方法および材料も使用できる。材料、方法および例は、例示にすぎず、限定することを意図するものではない。本明細書で言及されるすべての刊行物、特許出願、特許、配列、データベースエントリーおよび他の参考文献は、その全体が参照により組み込まれる。矛盾する場合、定義を含む本明細書が優先される。

本開示の１つ以上の実施形態の詳細は、添付の図面および以下の説明に記載される。本開示の他の特徴、目的および利点は、説明および図面から、ならびに特許請求の範囲から明らかとなるであろう。

ラテラルフローストリップ上での無希釈検出のための少量の二重ハプテン分析物を用いる例示的なＲＰＡ反応方法を示す。図１ｉ）は、偽ＲＰＡ反応における３ｋＤａ ＰＥＧ誘導性コアセルベートの形成およびコアセルベートへのＦＡＭ標識核酸の局在化を示す画像である。図１ｉｉ）は、本開示による例示的な二重ハプテン分析物の構造式を示す図であり、アミノ修飾プローブオリゴヌクレオチドへの合成後結合のための、ビオチン−ＦＡＭ、ビオチン−ＤＮＰおよび一般的な標識の構造式が示されている。図１ｉｉｉ）は、偽ＲＰＡ反応において泳動緩衝液で希釈されたか、または無希釈で行われた、二重標識オリゴヌクレオチド、ビオチン−ＦＡＭ二重標識（Ｒ＝ＯＨ）およびビオチン−ＦＡＭ Ｆｐｇプローブの検出を示す画像である。 本開示による二重ハプテンＦｐｇプローブを用いるラテラルフローストリップ上でのＲＰＡの直接分析を示す。図２ｉ）は、ＲＰＡコアセルベートからの増幅誘導分析物の放出、およびラテラルフローストリップ上でのその後の検出を示す略図である。図２ｉｉ）は、無希釈ＲＰＡ検出のためのプロトタイプアッセイの画像である。図２ｉｉｉ）は、フローコントロールを組み込む乾燥コンジュゲートフォーマット試験ストリップの画像である。 プローブ最適化による偽陽性シグナルの減少を示す。図３ｉ）は例示的なラテラルフローアッセイの画像を示し、ここで非特異的シグナルはＦｐｇ依存性であり得る。図３ｉｉ）は、例示的なＦｐｇ二重ハプテンプローブ（標識された「プローブ１」または「ｒｓ１２０７４４５」）のヘアピンおよび自己二量体構造の図である。図３ｉｉｉ）は、減少された二次構造を有する例示的なＦｐｇ二重ハプテンプローブを含有する増幅の画像を示し、例示的なＦｐｇ二重ハプテンプローブはラテラルフロー上で分析したとき、減少された偽陽性シグナルを示す。 ｒｓ１２０７４４５（ゲノムＤＮＡ）およびカンピロバクタージェジュニ（ＰＣＲ産物）鋳型ＤＮＡの無希釈ＲＰＡ検出の画像を示す。 大腸菌Ｏ１５７：Ｈ７血清マーカーアッセイを示す。図５ｉ）は、ｒｆｂＥＯ１５７アッセイのＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｆｐｇ蛍光データである。ＮＴＣ（赤）、ならびに１０（黄）、１００（緑）および１０００（青）を含有する反応を４連で行った。蛍光反応を、プロトタイプの直接ラテラルフローアッセイと比較した。図５ｉｉ）はｆｌｉＣ_Ｈ７のＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｆｐｇの、各Ｆｐｇ二重ハプテンプローブアッセイとの比較である。 「連続フロー」ラテラルフローストリップ分析を示す画像である。 サルモネラＩｎｖＡ標的に対するＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏアッセイのラテラルフロー分析の画像である。 ラテラルフローストリップ上にて無希釈で行った場合の、二重標識アンプリコンの限定的な検出についての機構を示す図である。 無希釈Ｅｘｏ ＲＰＡ ＬＦ検出の概要を示す。 無希釈Ｆｐｇ対Ｅｘｏ ＲＰＡ ＬＦを示す。 Ｅｘｏ ＬＦを用いる同時増幅／検出を示す。 例示的な連続フロー装置を示す。

本開示は、少なくとも一部は、標的核酸配列のＲＰＡを、二重ハプテンプローブを用いて、ラテラルフローストリップ上で希釈工程なしで正確かつ効率的に検出できるという発見に基づく。その目的で、二重ハプテンプローブを用いて標的核酸の存在または不在を検出するためのＲＰＡ組成物が、本明細書において提供される。また、その目的で、本出願は、二重ハプテンプローブを用いてラテラルフローストリップ上で標的核酸配列を検出する方法を開示する。

本開示は、二重ハプテンプローブを用いてラテラルフローストリップ上で標的核酸配列を検出するためのＲＰＡ組成物および方法を記載するが、当業者であれば、開示された方法および組成物が、当技術分野で公知の他の核酸増幅法（例えば、等温核酸増幅法）に適当であり得ることを認識するであろう。

核酸の迅速で費用対効果の高い高感度の検出は、感染症の診断における病原体検出および食品検査に用いられる現在の慣行を改善することができる。さらに、アッセイの複雑性を低減できれば、核酸増幅試験を、資源の限られた家庭用のシナリオで展開することができよう。

新規なＲＰＡ Ｆｐｇ（ホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼ）プローブ化学が開発され、これは、無希釈ＲＰＡ反応における増幅産物のラテラルフロー検出を可能にする。ＲＰＡ反応の粘性の性質を克服するために、新しいタイプの二重ハプテン標識が、Ｆｐｇ ＲＰＡプローブ用に開発された。例示的なアッセイは既存のＦｐｇ蛍光アッセイ（ｒｓ１２０７４４５ヒトゲノム遺伝子座およびカンピロバクタージェジュニの１６Ｓ ｒＲＮＡ）に基づき、それを新規な二重ハプテンプローブ化学での使用のために修飾した。本明細書に開示された二重ハプテンプローブ技術は次いで、大腸菌Ｏ１５７：Ｈ７（ｒｆｂ_Ｏ１５７およびｆｌｉＣ_Ｈ７）の遺伝子をセロタイピングするための２つの新規なシングルプレックスアッセイの開発に適用された。これらの遺伝子マーカーは、Ｏ１５７：Ｈ７の複雑な遺伝的特徴により他のＮＡＡＴが見逃し得る大腸菌Ｏ１５７：Ｈ７の形態を同定することが予想される。目的は、食品衛生検査における使用のためのＯ１５７：Ｈ７のマルチプレックス検査のための一段階「試料イン／結果アウト」核酸ラテラルフローイムノアッセイ（ＮＡＬＦＩＡ）および消耗品を開発することであった。さらに、新規な二重ハプテンプローブ化学の汎用性は、この技術を幅広い標的種に容易に適用でき、非実験室アッセイの開発を可能にすることを意味する。

以下の実施例において、新規な核酸ラテラルフロー化学が、ヒトゲノム標的（ｒｓ１２０７４４５）、カンピロバクタージェジュニ１６ＳｒＤＮＡおよび重要な食品病原体大腸菌Ｏ１５７：Ｈ７の２つの遺伝子マーカーに適用された。４つのアッセイはすべて、増幅反応あたり１０〜１００コピーのＤＮＡの分析感受性を有する。さらにアッセイは、既存のＲＰＡ Ｎｆｏラテラルフローアッセイ法と比較してより少ないハンズオン工程を必要とする。

データは、増幅された標的核酸の検出をＲＰＡと同時に行うことができることを示した（「連続フロー」）。これにより、試験時間を短縮することが可能である（試料から結果まで約３０分）。単純化されたワークフローは、連続フロー化学を、ポイントオブケアなどの（例えば、図１２に示す装置または他の装置を用いる）、非実験室環境での使用に理想的な、費用対効果のある使い捨ての消耗品に容易に適応できることを意味する。

場合によっては、本明細書に記載される二重標識オリゴヌクレオチドプローブは、二機能性構造（例えば、二重ハプテン脱離基）に結合されたオリゴヌクレオチドを含む。二機能性構造は、２つの部分、例えば、２つのハプテンを含んでよく、ハプテンの１つが、第１の結合対の第１のメンバーであり、第２のハプテンが、第２の結合対の第１のメンバーである。プローブは、標的核酸に結合される場合、二機能性構造がオリゴヌクレオチドから切断され二機能性構造を放出するように構成される。この遊離二機能性構造（例えば、遊離二重標識）は次いで、例えば、ラテラルフローストリップ上を含む、いくつかの方法により検出され得る。

「結合対のメンバー」は、第１および第２の部分の１つであることを意味し、前記第１および前記第２の部分が、互いに対して特異的な結合親和性を有する。本開示における使用に適した結合対としては、抗原／抗体（例えば、ジゴキシゲニン／抗ジゴキシゲニン、ジニトロフェニル（ＤＮＰ）／抗ＤＮＰ、ダンシル−Ｘ／抗ダンシル、フルオレセイン／抗フルオレセイン、ルシファーイエロー／抗ルシファーイエロー、ペプチド／抗ペプチド、配位子／受容体およびローダミン／抗ローダミン）、ビオチン／アビジン（またはビオチン／ストレプトアビジン）およびカルモジュリン結合タンパク質（ＣＢＰ）／カルモジュリンが挙げられるが、これらに限定されない。他の好適な結合対としては、ポリペプチド、例えば、ＦＬＡＧペプチド（ＤＹＫＤＤＤＤＫ）［Ｈｏｐｐら、ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，６：１２０４ １２１０（１９８８）］；ＫＴ３エピトープペプチド（Ｍａｒｔｉｎら、Ｓｃｉｅｎｃｅ ２５５：１９２ １９４（１９９２））；チューブリンエピトープペプチド（Ｓｋｉｎｎｅｒら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ ２６６：１５１６３ １５１６６（１９９１）；およびＴ７遺伝子１０タンパク質ペプチドタグ（Ｌｕｔｚ−Ｆｒｅｙｅｒｍｕｔｈら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ、８７：６３９３ ６３９７（１９９０））およびこれらに対する各抗体が挙げられる。一般に、好ましい実施形態において、結合対パートナーのより小さいものが、立体的な条件が重要であり得るため、検出可能な標識として作用する。

本発明の方法に関連して増幅に適した核酸（例えば、ポリヌクレオチド）としては、二本鎖および一本鎖核酸分子、例えば、ＤＮＡおよびＲＮＡ分子が挙げられる。ポリヌクレオチドは、ゲノム、染色体、プラスミド、ミトコンドリア、細胞およびウイルス核酸起源のものであり得る。二本鎖ポリヌクレオチドについて、増幅は１本または両方の鎖のいずれかの増幅であり得る。

本明細書に記載されるように、ＲＰＡは、オリゴヌクレオチドプライマーと鋳型二本鎖核酸中の相同配列をペアリングさせることができる、リコンビナーゼとして公知の酵素を使用する。このような方法で、ＤＮＡ合成は、鋳型二本鎖核酸における定められた地点に向けられる。配列特異的(例えば、遺伝子特異的)プライマーを用いて、鋳型核酸が存在する場合、指数関数的増幅反応が開始される。反応は急速に進行し、わずか数コピーの鋳型核酸から、検出可能なレベルの増幅産物へと、鋳型二本鎖核酸中に存在する配列が数分以内に特異的に増幅される。ＲＰＡ法は、例えば、米国特許第７，２７０，９８１号、米国特許第７，３９９，５９０号、米国特許第７，６６６，５９８号、米国特許第７，４３５，５６１号、米国特許出願公開第２００９／００２９４２１号および国際公開第２０１０／１４１９４０号に開示されており、これらはすべて本明細書に参照により組み込まれる。

本明細書に開示される組成物は、標的核酸配列を増幅する一組のプライマーを含有し得る。プライマーは、標的核酸配列に相補的である配列、または標的核酸配列と１つ以上の位置で異なる配列からなり得る。本明細書に記載されるように、標的核酸配列と１つ以上の位置で異なるプライマーを有するＲＰＡの増幅産物は、標的配列と１つ以上の位置で異なり得る。本明細書に記載されるＲＰＡ反応の増幅産物は、標的配列を含み得る。

一組のプライマーは、標的核酸配列を増幅し得るか、またはこれらは、標的核酸配列と１つ以上の位置で異なる配列を導入し得る。この導入された配列は、標的核酸配列からなり得る。第１のプライマーは標的核酸配列に相補的であり得る。第２のプライマーは、標的核酸配列に相補的である第１の部分、および標的核酸配列と１つ以上の位置で異なる第２の部分を含み得る。２つのプライマーが核酸配列を増幅する場合、第２のプライマーは、増幅される産物に１つ以上の異なる位置を組み込む。この増幅された領域は、標的核酸配列と１つ以上の位置で異なり、標的配列からなり得る。場合によっては、増幅された領域は、標的核酸配列と同じである。

用語「第１」および「第２」は、これらの相対的な意味においてのみ本開示で用いられる。特に明記しない限り、これらの用語は、実施形態の１つ以上の説明において単に便宜上用いられることが理解されるであろう。用語「第１」および「第２」は、１つの要素を別の要素と区別するためにのみ用いられ、開示された技術の権利の範囲が、これらの用語により限定されるべきではない。例えば、第１の要素を、第２の要素と称してもよく、同様に、第２の要素を第１の要素と称してもよい。

本明細書に開示されるＲＰＡ組成物は、原核生物、ウイルスまたは真核生物起源に由来し得るリコンビナーゼを含有する。例示的なリコンビナーゼとしては、ＲｅｃＡおよびＵｖｓＸ（例えば、任意の種から得られるＲｅｃＡタンパク質またはＵｖｓＸタンパク質）、ならびにこれらのフラグメントまたは変異体、ならびにこれらの組み合わせが挙げられる。ＲｅｃＡおよびＵｖｓＸタンパク質は、任意の種から得られ得る。ＲｅｃＡおよびＵｖｓＸフラグメントまたは変異体タンパク質はまた、利用可能なＲｅｃＡおよびＵｖｓＸタンパク質および核酸配列、ならびに分子生物学技術（例えば、米国特許第８，０７１，３０８号に記載のＵｖｓＸの変異体型を参照）を用いて生成され得る。例示的なＵｖｓＸタンパク質としては、ミオウイルス科ファージに由来するもの、例えば、Ｔ４、Ｔ２、Ｔ６、Ｒｂ６９、Ａｅｈ１、ＫＶＰ４０、アシネトバクターファージ１３３、エロモナスファージ６５、シアノファージＰ−ＳＳＭ２、シアノファージＰＳＳＭ４、シアノファージＳ−ＰＭ２、Ｒｂ１４、Ｒｂ３２、アエロモナスファージ２５、ビブリオファージｎｔ−１、ｐｈｉ−１、Ｒｂ１６、Ｒｂ４３、ファージ３１、ファージ４４ＲＲ２．８ｔ、Ｒｂ４９、ファージＲｂ３およびファージＬＺ２が挙げられる。追加の例示的なリコンビナーゼタンパク質としては、古細菌ＲＡＤＡおよびＲＡＤＢタンパク質、ならびに真核生物（例えば、植物、哺乳動物および真菌）Ｒａｄ５１タンパク質（例えば、ＲＡＤ５１、ＲＡＤ５１Ｂ、ＲＡＤ５１Ｃ、ＲＡＤ５１Ｄ、ＤＭＣ１、ＸＲＣＣ２、ＸＲＣＣ３およびｒｅｃＡ）が挙げられる（例えば、Ｌｉｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．１０３：１０３２８〜１０３３３、２００６を参照）。

本開示の任意の方法において、リコンビナーゼ（例えば、ＵｖｓＸ）は、変異体またはハイブリッドリコンビナーゼであり得る。いくつかの実施形態において、変異体ＵｖｓＸは、Ｒｂ６９ ＵｖｓＸアミノ酸配列に少なくとも１つの変異を含むＲｂ６９ＵｖｓＸであり、そこで変異は、（ａ）６４位でのヒスチジンではないアミノ酸、６４位でのセリン、Ｃ端での１つ以上のグルタミン酸残基の付加、Ｃ端での１つ以上のアスパラギン酸残基の付加、およびこれらの組み合わせからなる群から選択される。他の実施形態において、変異体ＵｖｓＸは、Ｔ６ＵｖｓＸアミノ酸配列中に少なくとも１つの変異体を有するＴ６ＵｖｓＸであり、そこで変異は、（ａ）６６位でのヒスチジンではないアミノ酸；（ｂ）６６位でのセリン；（ｃ）Ｃ端での１つ以上のグルタミン酸残基の付加；（ｄ）Ｃ端での１つ以上のアスパラギン酸残基の付加；ならびに（ｅ）これらの組み合わせからなる群から選択される。ハイブリッドリコンビナーゼタンパク質を使用する場合、ハイブリッドタンパク質は、例えば、異なるＵｖｓＸ種由来のアミノ酸配列を含む少なくとも１つの領域を含むＵｖｓＸタンパク質であり得る。領域は、例えば、ＵｖｓＸのＤＮＡ結合ループ−２領域であり得る。

本明細書に開示されるＤＮＡポリメラーゼは、真核生物または原核生物ポリメラーゼであり得る。真核生物ポリメラーゼの例としては、Ｐｏｌ−α、Ｐｏｌ−β、Ｐｏｌ−δ、Ｐｏｌ−εおよびこれらの変異体もしくはフラグメント、またはこれらの組み合わせが挙げられる。原核生物ポリメラーゼの例としては、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩ（例えば、クラノウフラグメント）、バクテリオファージＴ４ ｇｐ４３ ＤＮＡポリメラーゼ、バシルスステアロサーモフィルスポリメラーゼＩ大フラグメント、Ｐｈｉ−２９ ＤＮＡポリメラーゼ、Ｔ７ＤＮＡポリメラーゼ、バチルスサブティリスＰｏｌＩ、黄色ブドウ球菌ＰｏｌＩ、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩ、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩＩ、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩＩＩ、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＩＶ、大腸菌ＤＮＡポリメラーゼＶ、およびこれらの変異体もしくはフラグメント、またはこれらの組み合わせが挙げられる。いくつかの実施形態において、ＤＮＡポリメラーゼは、３’−５’エキソヌクレアーゼ活性を欠く。いくつかの実施形態において、ＤＮＡポリメラーゼは鎖置換特性を有し、例えば、クラスＰｏｌＩまたはＰｏｌＶの真核生物ポリメラーゼの大フラグメントである。

いくつかの実施形態において、1つ以上のプローブ（例えば、分子ビーコンプローブ）は、免疫原性であり得る、検出可能な標識で二重標識される。場合によっては、検出可能な標識はハプテンである。プローブ上の２つのハプテンは同じであるか、またはこれらは異なり得る。場合によっては、検出可能な標識の１つは、結合対の１つのメンバーである。本明細書に記載のプローブは、ハプテン、酵素、酵素基質、補酵素、酵素阻害剤、蛍光体、消光剤、染色体、磁性粒子またはビーズ、レドックス感受性部分（例えば、電気化学的に活性な部分）、発光マーカー、放射性同位体（放射性ヌクレオチドを含む）、および結合対のメンバーで標識され得る。より具体的な例としては、フルオレセイン、フィコビリタンパク質、テトラエチルローダミンおよびβ−ガラクトシダーゼが挙げられる。結合対としては、ビオチン／ストレプトアビジン、ビオチン／アビジン、ビオチン／ニュートラアビジン、ビオチン／キャプトアビジン、エピトープ／抗体、タンパク質Ａ／免疫グロブリン、タンパク質Ｇ／免疫グロブリン、タンパク質Ｌ／免疫グロブリン、ＧＳＴ／グルタチオン、Ｈｉｓタグ／金属（例えば、ニッケル、コバルトまたは銅）、抗原／抗体、ＦＬＡＧ／Ｍ１抗体、マルトース結合タンパク質／マルトース、カルモジュリン結合タンパク質／カルモジュリン、酵素／酵素基質、受容体／配位子の結合対、ならびに結合対の類似体および変異体が挙げられ得る。

本明細書で使用する用語「ハプテン」は、例えば、これに対して産生される抗体などの、結合対と特異的に反応する免疫原性の小分子を指す。本明細書で提供する方法における使用のためのハプテンとしては、例えば、ジゴキシゲニン、フルオレセイン、ジニトロフェニル、グルタチオンおよびビオチンが挙げられる。本明細書に記載のハプテンはまた、例えば、免疫原性基を含み得る。場合によっては、免疫原性基は、蛍光基、その酵素もしくはフラグメント、そのペプチドもしくはフラグメント、またはビオチンを含む。場合によっては、免疫原性基は、ビオチン、フルオレセイン、ジゴキシゲニンまたはジニトロフェニルを含むリストから選択される。

本明細書で使用する用語「蛍光標識」および「蛍光体」は、互換的に用いられ、物質が、様々な波長（励起波長）の放射線により照射されたとき、特定の波長（放出波長）の電磁エネルギーを放出する任意の物質を指し、かつ試料中の目的の分析物と特異的に相互作用または反応して１種以上の光シグナルを発生できる、化学または生化学分子またはそのフラグメントを包含することが意図される。

本明細書で提供する方法における使用のための代表的な蛍光体としては、例えば、ＦＡＭ、（テトラメチルローダミン）Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ（商標）、緑色蛍光タンパク質、青色蛍光タンパク質、赤色蛍光タンパク質、フルオレセイン、フルオレセイン−５−イソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、シアニン色素（Ｃｙ３、Ｃｙ３．５、Ｃｙ５、Ｃｙ５．５、Ｃｙ７）、ボディピー色素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）および／またはＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ色素（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）、ダンシル、ダンシルクロリド（ＤＮＳ−Ｃ１）、５−（ヨードアセトアミダ）フルオレセイン（５−ＩＡＦ）、６−アクリロイル−２−ジメチルアミノナフタレン（アクリロダン）、７−ニトロベンゾ−２−オキサ−１，３−ジアゾール−４−イルクロリド（ＮＢＤ−Ｃ１）、臭化エチジウム、ルシファーイエロー、ローダミン色素（５−カルボキシローダミン６Ｇ塩酸塩、リサミンローダミンＢ塩化スルホニル、ローダミン−Ｂ−イソチオシアネート（ＲＩＴＣ）、ローダミン８００）、テトラメチルローダミン５−（および６−）イソチオシアネート（ＴＲＩＴＣ）、Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ（商標）、塩化スルホニル、１−アニリノナフタレン−８−スルホン酸（ＡＮＳ）および６−（ｐ−トルイジニル）ナフタレン−２−スルホン酸（ＴＮＳ）を含むがこれらに限定されないナフタルアミンスルホン酸、アントロイル脂肪酸、ＤＰＨ、パリナリン酸、ＴＭＡ−ＤＰＨ、フルオレニル脂肪酸、フルオレセイン−ホスファチジルエタノールアミン、Ｔｅｘａｓ ｒｅｄ−ホスファチジルエタノールアミン、ピレニル−ホスファチジルコリン、フルオレニル−ホスホチジルコリン、メロシアニン５４０、ナフチルスチリル、３，３’ジプロピルチアジカルボシアニン（ｄｉＳ−Ｃ３−（５））、４−（ｐ−ジペンチルアミノスチリル）−１−メチルピリジニウム（ｄｉ−５−ＡＳＰ）、Ｃｙ−３ヨードアセトアミド、Ｃｙ−５−Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド、Ｃｙ−７−イソチオシアネート、ＩＲ−１２５、チアゾールオレンジ、アズールＢ、ナイルブルー、Ａｌフタロシアニン、オキサシン１，４’，６−ジアミジノ−２−フェニルインドール（ＤＡＰＩ）、ヘキスト３３３４２、ＴＯＴＯ、アクリジンオレンジ、エチジウムホモダイマー、Ｎ（エトキシカルボニルメチル）−６−メトキシキノリニウム（ＭＱＡＥ）、フラ−２、カルシウムグリーン、カルボキシＳＮＡＲＦ−６、ＢＡＰＴＡ、クマリン、フィトフルオース、コロネン、ならびに金属配位子錯体が挙げられる。

蛍光消光剤はまた、検出可能な標識と見なされることに留意されるべきである。例えば、蛍光消光剤を蛍光色素に接触させ得、消光量を検出する。

本明細書に記載の実施形態はまた、特定の標的核酸配列を切断できる薬剤またはヌクレアーゼを含み得る。本明細書で使用する用語「ヌクレアーゼ」は、核酸の加水分解を触媒し、核酸のヌクレオチドサブユニット間でのホスホジエステル結合を切断できる酵素を指す。「制限ヌクレアーゼ」は、制限部位として公知の特定の認識ヌクレオチド配列でまたはその近くで核酸分子を標的とし切断するヌクレアーゼである。ヌクレアーゼは、エンドヌクレアーゼ（すなわち、ポリヌクレオチド鎖内のホスホジエステル結合を切断する酵素）およびエキソヌクレアーゼ（すなわち、ポリヌクレオチド鎖の末端（ｅｘｏ）から一つずつ切断することにより作用する酵素）にさらに分類され得るが、一部の酵素は、両方に分類され得る。ヌクレアーゼは天然の制限エンドヌクレアーゼまたは人工エンドヌクレアーゼであり得る。

場合によっては、本明細書に記載の二重ハプテンプローブは、オリゴヌクレオチドプローブが、相補的ヌクレオチド配列にハイブリダイズされると、ホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼ（「ｆｐｇ」）により切断されて、二重ハプテン脱離基（例えば、二重標識）を放出するように構成される。場合によっては、ヌクレアーゼはホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼである。

いくつかの実施形態において、エキソヌクレアーゼ（例えば、ＥｘｏＩＩＩ）により切断可能なハプテン（例えば、二重ハプテンまたは高次のハプテン）プローブが本明細書で提供される。いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、構造式５’Ｘ（ｎ）_ａＬ（ｎ）_ｂＨ（ｎ）_ｃＢ３’（式中、ｎはヌクレオチドであり、ａ、ｂおよびｃは整数であり、Ｘは５’ヘキシルまたはハプテンであり、ＨはＴＨＦ残基であり、ＢはＣ３スペーサーであり、Ｌは複数のハプテンを含む分枝修飾因子である）を有する。いくつかの実施形態において、ハプテンは、例えば、ＤＮＰおよびビオチンであるが、他のハプテンを利用してもよい（例えば、ＦＡＭ）。いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは、ハプテン間のホスホロチオエート結合を含む。いくつかの実施形態において、ａおよびｃは１〜５０ヌクレオチドであり、ｂは０〜５０ヌクレオチドである。いくつかの実施形態において、ａおよびｃは少なくとも１５ヌクレオチドである。いくつかの実施形態において、ｂはゼロである。いくつかの実施形態において、ａは約１５であり、ｃは約３０である。いくつかの実施形態において、オリゴヌクレオチドプローブは標的核酸に相補的である。いくつかの実施形態において、Ｌはシトシンヌクレオチドに置き換えられる。プローブのさらなる詳細は以下の実施例１６に記載される。

標的アンプリコンを含有するＲＰＡ反応で、ＥｘｏＩＩＩは、プローブの脱塩基残基Ｈを切断し、ＥｘｏＩＩＩによるその後の３’−５’消化が、２つの別個のハプテンで標識されたモノヌクレオチドＬ（５’−ホスフェートおよび３’−ＯＨ）を遊離させる。この二重ハプテン標識モノヌクレオチドは、自由にＲＰＡコアセルベートを出て、可視化粒子およびＬＦストリップの試験ライン上の抗体と相互作用する。

さらに、1つ以上の一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質が、反応中に進行する様々な交換反応の際に核酸を安定化するために用いられ得る。1つ以上の一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質は、任意の種、例えば、原核生物、ウイルスまたは真核生物種に由来し得るか、またはこれらから得られ得る。非限定的な例示的一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質としては、大腸菌ＳＳＢ、およびミオウイルス科ファージに由来するもの、例えば、Ｔ４、Ｔ２、Ｔ６、Ｒｂ６９、Ａｅｈ１、ＫＶＰ４０、アシネトバクターファージ１３３、アエロモナスファージ６５、シアノファージＰ−ＳＳＭ２、シアノファージＰＳＳＭ４、シアノファージＳ−ＰＭ２、Ｒｂ１４、Ｒｂ３２、アエロモナスファージ２５、ビブリオファージｎｔ−１、ｐｈｉ−１、Ｒｂ１６、Ｒｂ４３、ファージ３１、ファージ４４ＲＲ２．８ｔ、Ｒｂ４９、ファージＲｂ３およびファージＬＺ２が挙げられる。一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質のさらなる例としては、Ａ．デニトリフィカンスＡｌｉｄｅ＿２０４７、バークホルデリアタイランデンシスＢｔｈａＢ＿３３９５１、プレボテラパレンスＨＭＰＲＥＦ９１４４＿０１２４および真核生物一本鎖ＤＮＡ結合タンパク質複製タンパク質Ａが挙げられる。

本開示の方法のいずれかは、クラウディング剤の存在下で行われ得る。いくつかの実施形態において、クラウディング剤は、ポリエチレングリコール、ポリエチレンオキシド、ポリビニルアルコール、ポリスチレン、フィコール、デキストラン、ポリ（ビニルピロリドン）（ＰＶＰ）およびアルブミンの１つ以上を含み得る。いくつかの実施形態において、クラウディング剤は、２００，０００Ｄａ未満の分子量を有する。さらにクラウディング剤は、例えば、約０．５％〜約１５％重量対体積（ｗ/ｖ）の量で存在し得る。場合によっては、クラウディング剤はＰＥＧである。

場合によっては、クラウディング剤は、少なくとも１ｋＤａ、少なくとも２ｋＤａ、少なくとも３ｋＤａ、少なくとも４ｋＤａ、少なくとも５ｋＤａ、少なくとも６ｋＤａ、少なくとも８ｋＤａまたは少なくとも１０ｋＤａの分子量を有する。

いくつかの実施形態において、クラウディング剤は、少なくとも１５％ｖ／ｖの濃度、少なくとも１２％ｖ／ｖの濃度、少なくとも１０％ｖ／ｖの濃度、少なくとも８％ｖ／ｖの濃度、少なくとも６％ｖ／ｖの濃度、少なくとも５％ｖ／ｖの濃度、少なくとも４％ｖ／ｖの濃度、または少なくとも３％ｖ／ｖの濃度で組成物中に存在する。

場合によっては、クラウディング剤は、２０℃で５ｍＰａ／ｓ以下、４ｍＰａ／ｓ以下、３ｍＰａ／ｓ以下、２ｍＰａ／ｓ以下または１ｍＰａ／ｓ以下の粘度プロファイルを有する。

場合によっては、クラウディング剤は、３ｋＤａの分子量および６．５％の最終濃度を有するＰＥＧである。場合によっては、クラウディング剤はＰＥＧであり、２０℃での粘度は３ｍＰａ／ｓ以下である。

リコンビナーゼ負荷タンパク質を使用する場合、リコンビナーゼ負荷タンパク質は、原核生物、ウイルスまたは真核生物起源のものであり得る。例示的なリコンビナーゼ負荷タンパク質としては、大腸菌ＲｅｃＯ、大腸菌ＲｅｃＲ、ＵｖｓＹ、およびこれらの変異体もしくはフラグメント、またはこれらの組み合わせが挙げられる。例示的なＵｖｓＹタンパク質としては、ミオウイルス科ファージ由来のもの、例えば、Ｔ４、Ｔ２、Ｔ６、Ｒｂ６９、Ａｅｈ１、ＫＶＰ４０、アシネトバクターファージ１３３、アエロモナスファージ６５、シアノファージＰ−ＳＳＭ２、シアノファージＰＳＳＭ４、シアノファージＳ−ＰＭ２、Ｒｂ１４、Ｒｂ３２、アエロモナスファージ２５、ビブリオファージｎｔ−１、ｐｈｉ−１、Ｒｂ１６、Ｒｂ４３、ファージ３１、ファージ４４ＲＲ２．８ｔ、Ｒｂ４９、ファージＲｂ３およびファージＬＺ２が挙げられる。本開示の方法のいずれかにおいて、リコンビナーゼ負荷剤は、ミオウイルス科ファージ由来であり得る。ミオウイルス科ファージは、例えば、Ｔ４、Ｔ２、Ｔ６、Ｒｂ６９、Ａｅｈ１、ＫＶＰ４０、アシネトバクターファージ１３３、アエロモナスファージ６５、シアノファージＰ−ＳＳＭ２、シアノファージＰＳＳＭ４、シアノファージＳ−ＰＭ２、Ｒｂ１４、Ｒｂ３２、アエロモナスファージ２５、ビブリオファージｎｔ−１、ｐｈｉ−１、Ｒｂ１６、Ｒｂ４３、ファージ３１、ファージ４４ＲＲ２．８ｔ、Ｒｂ４９、ファージＲｂ３またはファージＬＺ２であり得る。

さらに、本開示の方法のいずれかは、ブロックされたプライマーで行われ得る。ブロックされたプライマーは、ポリメラーゼで伸長できないプライマーである。ブロックされたプライマーを使用する場合、プライマーをブロック解除して伸長を可能にするために、ブロック解除剤が用いられ得る。ブロック解除剤は、プライマーからブロッキング基を切断できるエンドヌクレアーゼまたはエキソヌクレアーゼであり得る。例示的なブロック解除剤としては、大腸菌エキソヌクレアーゼＩＩＩおよび大腸菌エンドヌクレアーゼＩＶが挙げられる。

本開示の方法は、標的核酸が制限エンドヌクレアーゼまたはヌクレアーゼのための天然の切断部位を含み得る、標的核酸配列の検出を含む。さらに切断部位は、標的核酸配列と１つ以上の位置で異なるプライマーで標的配列を増幅することにより標的核酸配列中に導入され得る。人工的な切断部位、または標的核酸配列において見出されなかった切断部位の導入は、標的核酸配列または標的核酸配列中のＳＮＰの存在を検出するために用いられ得る。

本明細書に記載の方法はまた、本明細書に記載の様々な制限エンドヌクレアーゼまたはヌクレアーゼを用いて並行して行われ得る。増幅産物の検出は並行して行われ得、増幅率が参照試料と比較される。本明細書に記載の方法は、標的配列の検出、または配列のジェノタイピングに用いられ得る。

実施形態のいくつかにおいて、核酸増幅産物の増加のモニタリングは、経時的な反応混合物中の増幅産物の数もしくは割合を決定すること、または二重標識、例えば、二重ハプテンもしくは遊離二重ハプテン／標識の数もしくは割合を決定することを含み得る。

いくつかの実施形態において、二重ハプテンは目視検出できる。いくつかの実施形態において、二重ハプテン標識は、蛍光、位相差顕微鏡、発光検出、スペクトル（カラー）検出、磁性検出、放射性同位体検出および／または電気化学検出を用いて検出される。当業者であれば、混合物中の核酸増幅産物の量を測定する当技術分野で公知の任意の技術が、増幅産物を検出し経時的な増幅産物の増加をモニタリングするために用いられ得ることを認識するであろう。本明細書に記載のＲＰＡ法の一部において、検出可能な標識は、ＲＰＡ反応の進行（増幅産物の生成）をモニタリングするために用いられ得る。

本明細書に開示される方法および組成物は、例えば、標的核酸配列を検出するために用いられ得る。本開示はまた、野生型アレルと比較してＳＮＰを含む変異型アレルを同定できる。場合によっては、このＳＮＰは、特定の疾患状態もしくは診断と（例えば、鎌状赤血球貧血症の診断、または腫瘍もしくは癌の診断と）、または薬物耐性もしくは感受性と関連し得る。本明細書に記載の等温増幅反応法および組成物は、標的配列および／またはこれに関連する多型の迅速な検出を可能にする。

実施例
実施例１：ラテラルフローストリップ材料および製造
緩衝剤用の試薬および化学物質を、ＦｉｓｈｅｒまたはＳｉｇｍａから購入した。

ラテラルフローストリップを、特に明記しない限り、Ｐｒｉｍａ４０ニトロセルロース（ＧＥ）、接着性バッキングカード（ＨＦ０００ＭＣ１００、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）およびＣＦ５吸収パッド材料（ＧＥ）を用いて調製した。連続フロー実験については、試験した追加のウィッキングパッド材料は、ＣＦ６（ＧＥ）およびＧｒａｄｅ３２０濃重量セルロース（Ａｈｌｓｔｒｏｍ）を含んだ。ＤＮＰ（ＭＡＢ２２２３、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）および抗ＦＡＭ（ＭＩＦ２９０２、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ）モノクローナル抗体、ならびに抗マウスポリクローナル抗体（Ａ１６１６２、Ｎｏｖｅｘ）を、製造業者の使用説明書に従って、Ａｍｉｃｏｎ Ｕｌｔｒａ１０ｋ ＭＷＣＯ遠心分離濃縮器を用いて貯蔵緩衝液を１０ｍＭリン酸ナトリウムｐＨ７．４＋０．００５％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ１００と交換することにより抗調製し、分注した。精製した抗体を予め切断されたストリップ上にスポットする（０．５μｇ／ストリップ）か、またはＢｉｏｄｏｔ ＺＸ１０１０分注プラットフォームを用いて１μｇ／ｃｍ膜の速度で膜上に分注した。膜またはドットストリップを、強制空気オーブン内で４０℃にて１時間乾燥した後、積層した。

特に明記しない限り、ストリップ積層体を、バッキングカード（３００ｍｍ×４５ｍｍに予め切断）の１つの長辺と同一平面上に３００ｍｍ×２５ｍｍの抗ＦＡＭ／抗ＤＮＰ膜を積層することにより調製した。次いで、ウィッキングパッドが膜と２ｍｍ重なるように、ＣＦ５吸収材の３００ｍｍ×２２ｍｍストリップをバッキングカードの上辺と同一平面上に積層した。積層したカードを次いで、Ｂｉｏｄｏｔ ＣＭ５０００ギロチンを用いて５ｍｍ×４５ｍｍのストリップに切断した。切断したストリップをデシケーター中で室温にて貯蔵した後、使用した。

コンジュゲートパッドを使用した場合、金コンジュゲートを９０００×ｇで２０分間の遠心分離により緩衝液交換し、上清を除去し、金を、５０ｍＭホウ砂、１０％スクロース、１％カゼインおよび０．５％Ｂｒｉｊ−３５中で原体積に再構成した。コンジュゲートを、３μｌ／ｃｍの速度でＢｉｏｄｏｔ ＺＸ１０１０分注器を用いてガラス繊維ストリップ（ＧＦＤＸ１０３０００、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）上に噴霧した。次いで、金コンジュゲートパッドを４０℃で２時間乾燥した後、積層した。

実施例２：２０ｎｍ金コロイドへの抗ビオチンのコンジュゲーション
モノクローナル抗ビオチン（ａｂ２０１３４１、Ａｂｃａｍ）を、製造業者の使用説明書に従ってＡｂＰｕｒｅ ＢＳＡ除去キット（Ｉｎｎｏｖａ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて調製しコンジュゲートした。精製した抗ビオチンを、コンジュゲーション行程中に抗ビオチンが０．５ｍｇ／ｍｌで存在した以外は、同様に製造業者の使用説明書に従ってＩｎｎｏｖａＣｏａｔ金２０ｎｍキット（Ｉｎｎｏｖａ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて金にコンジュゲートした。抗ビオチン金を、上に記載されるようにコンジュゲートパッド上に噴霧する場合を除き、典型的にはＲＰＡ反応に直接添加した。

実施例３：オリゴヌクレオチドおよびプローブ標識化
オリゴヌクレオチドプライマーおよび非標識ＦｐｇラテラルフロープローブをＥｕｒｏｇｅｎｔｅｃから得た。脱塩基ｄＲ部位にアミノ修飾および３’末端にＣ３スペーサー修飾を有する非標識プローブを購入した。蛍光ＦｐｇプローブはすべてＬＧＣ Ｂｉｏｓｅａｒｃｈから得た。

実施例４：二重ハプテン標識の合成およびオリゴ標識化
Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｍｔｔ）−Ｗａｎｇ樹脂をＭｅｒｃｋから購入した。定性ニンヒドリン試験キットをＡｎａｓｐｅｃから購入した。ジクロロメタン（ＤＣＭ）、ペプチド合成グレードのＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、（ベンゾトリアゾル−１−イルオキシ）トリピロリジノホスホニウムヘキサフルオロホスフェート（ＰｙＢＯＰ）、Ｎ−メチルモルホリン（ＮＭＭ）、ピペリジン、Ｄ−ビオチン、トリイソプロピルシラン（ＴＩＳ）、５（６）−カルボキシフルオレセイン、メタノール、ギ酸、アセトニトリル、ジエチルエーテル、ＨＰＬＣ用トリエチルアミン（ＴＥＡ）、酢酸、ＮａＨＣＯ_３、ＮａＯＨ、２，４−ジニトロフルオロベンゼンおよびＮ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチル−Ｏ−（Ｎ−スクシンイミジル）ウロニウムテトラフルオロボレート（ＴＳＴＵ）をＦｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃから購入した。トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）、Ｎ，Ｎ’−ジクロロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（ＮＨＳ）、Ｎ−ＤＮＰ−Ｌ−Ｌｙｓ、１，１，１，３，３，３−ヘキサフルオロ−２−プロパノール（ＨＦＩＰ）、Ｎ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン（ＤｉＰＥＡ）、ＬＣＭＳ用トリエチルアミン（ＴＥＡ）およびＬＣＭＳ用水をＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈから購入した。ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）をＡｐｐｌｉＣｈｅｍから購入した。ＨＣｌおよびアセトンをＶＷＲから購入した。ミリポア水を合成および脱塩に使用した。ＨＰＬＣグレードの水をＨＰＬＣ精製に使用した。ＮＡＰ−１０サイズ排除（ＳＥ）カラムをＧＥから購入した。Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドビオチン（ビオチン−ＯＳｕ）をＩｒｉｓ Ｂｉｏｔｅｃｈから購入した。

ＬＣＭＳ分析をＡｇｉｌｅｎｔ ６４１０Ｂトリプル四重極ＥＳＩ−ＭＳを備えたＡｇｉｌｅｎｔ １２００ ＬＣシステムで行った。すべてのＬＣ法で、Ａｇｉｌｅｎｔ Ｅｃｌｉｐｓｅ Ｐｌｕｓ Ｃ１８、３．５μｍ、３．０×１５０ｍｍカラムを室温で使用した。引用した収率はすべて、２５４ｎｍでの吸光度に基づく。ＬＣ溶媒：Ａ＝水＋０．１％ギ酸；Ｂ＝アセトニトリル＋０．１％ギ酸；Ｃ＝２００ｍＭ ＨＦＩＰ、４ｍＭ ＴＥＡ水溶液；Ｄ＝メタノール。ＬＣ法：１（溶媒ＡおよびＢ）＝２５分にわたって５〜９５％Ｂ、次いで５分間９５％Ｂ；２（溶媒ＣおよびＤ）＝３分にわたって２０％Ｄ、次いで、５分にわたって２０〜３０％Ｄ、７分にわたって３０〜５０％Ｄ、次いで５分にわたって５０〜６０％Ｄ、次いで１分にわたって６０〜８０％Ｄ、次いで１分にわたって８０％Ｄ。

標識オリゴヌクレオチドのＲＰ−ＨＰＬＣ精製を、フラクションコレクターを備えたＡｇｉｌｅｎｔ １１００／１２００ ＬＣシステムおよびＯｌｉｇｏ−ＲＰガードカートリッジ（ＡＪＯ−８１３５、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ）を備えたＰｈｅｎｏｍｅｎｅｘ Ｃｌａｒｉｔｙ １０μ Ｏｒｉｇｏ−ＲＰ２５０×４．６ｍｍカラムで行った。ＬＣ溶媒Ａ＝メタノール；Ｂ＝５０ｍＭ ＴＥＡＡ、ｐＨ７．４中の５％ｖ／ｖアセトニトリル。精製のためのＬＣ法：５分にわたって５％Ｂ；３５分にわたって５〜５０％Ｂ；５分にわたって５０〜６０％Ｂ。クロマトグラムを２５４ｎｍおよび４９４ｎｍ（Ｂｉｏ−ＦＡＭ標識化）または３６０ｎｍ（Ｂｉｏ−ＤＮＰ標識化）のいずれかで記録した。

最終標識オリゴヌクレオチドを、Ｔｈｅｒｍｏ−Ｆｉｓｈｅｒ ＮａｎｏＤｒｏｐ２０００を用いて２６０ｎｍで定量し、Ｂｉｏ−ＦＡＭ標識については_ε２６０＝２０９６０Ｍ^−１ｃｍ^−１を想定し、Ｂｉｏ−ＤＮＰ標識については_ε２６０を無視した。ＮＭＲ分析を、Ｂｒｕｋｅｒ Ａｖａｎｃｅコンソールを備えたＯｘｆｏｒｄ ４００ＭＨｚマグネットを用いて行った。ｄ６−ＤＭＳＯ（９９．９％原子Ｄ）をＳｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈから購入した。

実施例５：Ｂｉｏ−ＦＡＭ二重ハプテン標識の固相合成
（Ｄ−）Ｂｉｏ−（Ｌ−）Ｌｙｓ（５（６）ＦＡＭ）−ＯＨを、Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｍｔｔ）−Ｗａｎｇ樹脂から出発して、標準的な固相合成技術（Ｗ．Ｃ．ＣｈａｎおよびＰ．Ｄ．Ｗｈｉｔｅ、ｉｎ Ｆｍｏｃ Ｓｏｌｉｄ Ｐｈａｓｅ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ、Ｗ．Ｃ．ＣｈａｎおよびＰ．Ｄ．Ｗｈｉｔｅ、Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ、Ｏｘｆｏｒｄ、２０００、ｃｈ．３、４１〜７６頁）を用いて合成した。具体的には、樹脂（０．２５ｇ、０．５７ｍｍｏｌ／ｇ負荷）をＤＣＭで１時間膨張させた後、小試料を試験して遊離アミンの不在を確認した（定性ニヒドリン試験）。Ｆｍｏｃ保護基を、ＤＭＦ中の２０％ｖ／ｖピペリジンを用いて除去し（２×６分）、樹脂をＤＭＦ（３回）、次いでＤＣＭ（３回）で洗浄した後、遊離アミンの存在を定性ニヒドリン試験で確認した。Ｄ−ビオチン（３当量）を、超音波処理しながらＤＭＦ（４．３ｍＬ）中のＰｙＢＯＰ（３当量）およびＮＭＭ（５当量）で４分間活性化した後、樹脂と６０℃で３８分間反応させた。その後、樹脂をＤＭＦ（３回）およびＤＣＭ（３回）で洗浄した。樹脂試料のニヒドリン試験により遊離アミンの不在を確認した後、これをＤＣＭ中の１％ｖ／ｖ ＴＦＡ、５％ｖ／ｖ ＴＩＳで３０分間脱保護し（２回）、その後ＤＭＦ（３回）およびＤＣＭ（３回）で洗浄した。樹脂試料のニヒドリン試験は、遊離アミンを示した。５（６）−カルボキシフルオレセイン（３当量）を、ＤＭＦ（４．３ｍＬ）中のＰｙＢＯＰ（３当量）およびＮＭＭ（５当量）で１０秒間活性化した後、樹脂と６０℃で３８分間反応させた。その後、樹脂をＤＭＦ（３回）およびＤＣＭ（３回）で洗浄した。樹脂をＤＭＦ中の２０％ｖ／ｖピペリジンで処理して（２×１０分）フルオレセイン二量体を切断した後、樹脂をＤＭＦ（３回）、ＤＣＭ（３回）、次いでＭｅＯＨ（３回）で洗浄した。洗浄した樹脂を乾燥し、冷蔵庫（約５℃）に一晩貯蔵した。遊離標識を得るために、樹脂をＤＣＭ中で膨張させ（２時間）、次いで、膨張した樹脂の約半分を２．５ｍＬの９０／２．５／２．５ ｖ／ｖ／ｖ ＴＦＡ／ＴＩＳ／Ｈ_２Ｏで室温にて２時間切断し、ＴＦＡ（２×１ｍＬ）で洗浄した。合わせた切断混合物およびＴＦＡ洗浄液をガラスＲＢフラスコ内で真空乾燥し、次いでＤＣＭ洗浄液を含む５ｍＬエッペンドルフチューブに移し、Ａｒ（ｇ）で送風除去し、氷冷ジエチルエーテル（４．５ｍＬ）を添加して、黄色固体を沈殿させ、遠心分離によりペレット化した。上清を捨て、ペレットをジエチルエーテル（２×４．５ｍＬ）で遠心洗浄した。３０ｍｇ（収率５８％）の黄色固体を得た。産物のＬＣＭＳ（方法１）は良好な純度（９０％、ｔ_Ｒ１１．８５分）；ＥＳＩ−ＭＳ（ｐｏｓ．ｍ/ｚ）：７３１．３（１００％、［Ｍ＋Ｈ］^＋）を示した。遊離標識の２．０５ｍＭ ＤＭＳＯ溶液を調製し、これを遊離Ｂｉｏ−ＦＡＭ標識を使用するラテラルフロー試験のためにさらに水で希釈した。

実施例６：アミノ修飾ＦＰＧプローブへのＢｉｏ−ＦＡＭ標識の結合
Ｂｉｏ−ＦＡＭ二重標識（５ｍｇ、６．８μｍｏｌ）をＤＣＣ（２．１ｍｇ、１０μｍｏｌ）およびＮＨＳ（１．２ｍｇ、１０μｍｏｌ）で暗所にて３時間活性化し、次いで、反応混合物の試料を、メタノールで希釈し、ＬＣＭＳ（方法１）により分析し、それは収率２１％でＢｉｏ−ＦＡＭ ＮＨＳエステルの存在を示した（ｔ_Ｒ１２．９７分；ＥＳＩ−ＭＳ（ｐｏｓ．ｍ/ｚ）：８２８．８（９％、[Ｍ＋Ｈ]^＋）。３．５時間の反応時間後、１０μＬの活性化混合物を水（２０μＬ）および１Ｍ ｐＨ９ ＮａＨＣＯ_３水溶液（１０μＬ）中約１ｍＭでアミノ修飾プローブオリゴ（ｒｓ１２０７４４５）の混合物に添加した。標識化混合物をボルテックスし、１０分間超音波処理し、ボルテックスし、次いで暗所で室温において一晩放置した。混合物を次いで、ＮＡＰ−１０ ＳＥカラムにより脱塩し、ＲＰ−ＨＰＬＣ（標的ｔ_Ｒ２９．７８分）により精製し、標的画分を真空濃縮し、ＮＡＰ−１０ＳＥにより脱塩し、さらに真空濃縮して、１９０μＬの１３．４μＭ標的Ｂｉｏ−ＦＡＭ標識オリゴ溶液を得た（収率２５％）。標識オリゴをＬＣＭＳ（方法２により）により特性評価した；純度９４％、_ｔＲ１１．５８分、ＥＳＩ−ＭＳ（負）：計算値１１５８４．４、実測値１１５８４．４。ＵＶ−Ｖｉｓ特性評価（Ｔｈｅｒｍｏ−Ｆｉｓｈｅｒ ＮａｎｏＤｒｏｐ２０００）は、２５９および４９６ｎｍに吸収ピークを示し、ＦＡＭ−標識ＤＮＡオリゴと一致していた。

実施例７：Ｂｉｏ−ＤＮＰ二重ハプテン標識の溶液相合成
（Ｄ−）Ｂｉｏ−（Ｌ−）Ｌｙｓ（ＤＮＰ）−ＯＨを、ＦＡＭの代わりにＤＮＰ部分を組み込むためにＤＭＦ（４．３ｍＬ）中の２，４−ジニトロフルオロベンゼン（３当量）およびＤｉＰＥＡ（４当量）を用いて、Ｂｉｏ−ＦＡＭ標識について上記したように標準的な固相合成技術を用いて合成した。しかし、改善された溶液相合成を、本明細書に記載されるように開発した。具体的には、ビオチン−ＯＳｕ（６０２μｍｏｌ、１．０５当量）およびＮ−ＤＮＰ−Ｌ−Ｌｙｓ（１当量）をＤＭＦ（５．７ｍＬ）およびＤｉＰＥＡ（０．２５ｍＬ）中に懸濁し、３０分間超音波処理して透明な溶液を得た後、室温で撹拌した。２時間後、沈殿物が反応混合物中で観察され、これを室温で一晩撹拌放置した後、濾過し（２回、Ｗｈａｔｍａｎ Ｎｏ．１濾紙）、アセトン（１０ｍＬ）およびジエチルエーテル（１３０ｍＬ）で洗浄して、黄色固体（２４４ｍｇ）を回収した。黄色固体の第２収穫物（３０ｍｇ）を、有機洗浄液を合わせ、追加のジエチルエーテル（１００ｍＬ）を添加した後上記のように濾過し、さらなるジエチルエーテル（１００ｍＬ）で洗浄することにより得た。標的標識のＤｉＰＥＡ塩の収穫物両方を合わせ、０．５Ｍ ＮａＯＨ水溶液（５ｍＬ）に溶解して、濃オレンジ−黄色溶液を得た後、１Ｍ ＨＣｌ水溶液（５ｍＬ）を添加して、カルボン酸標的を黄色固体として沈殿させた。混合物を氷上で冷却した後、固体を吸引濾過して（２回、Ｗｈａｔｍａｎ Ｎｏ．１濾紙により）回収し、氷冷１Ｍ ＨＣｌ水溶液（２×２５ｍＬ）、次いでＨ_２Ｏ（２×２５ｍＬ）、次いでジエチルエーテル（６５０ｍＬ）で洗浄した。洗浄液を捨て、黄色固体を真空乾燥して、標的を良好な収率で得た（０．４１ｍｍｏｌ、７２％）。ＬＣＭＳ（方法１）純度９７％、ｔ_Ｒ１３．７１分、ＥＳＩ−ＭＳ（ｐｏｓ．ｍ/ｚ）：５３９．２（１８％、［Ｍ＋Ｈ］^＋）；１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ｄ６−ＤＭＳＯ）δ_Ｈ１２．５１（ｂｒｓ、１Ｈ、ＯＨ）、８．８８（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝５．８Ｈｚ、ＮＨ−Ａｒ）、８．８６（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝２．７Ｈｚ、Ａｒ−Ｈ３）、８．２５（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝９．７、２．６Ｈｚ、Ａｒ−Ｈ５）、８．０５（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝７．８Ｈｚ、ＮＨＣ（Ｏ）ＣＨ_２）、７．２２（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝９．７Ｈｚ、Ａｒ−Ｈ６）、６．３８（ｄ、２Ｈ、Ｊ＝１６．２Ｈｚ、ＮＨＣ（Ｏ）ＮＨ）、４．２９（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝７．５、５．０Ｈｚ、ＣＨ（ＣＨ_２）Ｓ）、４．２０〜４．１０（ｍ、２Ｈ、ＣＨＣＯ_２Ｈ、ＮＨＣＨＣＨ（Ｒ）Ｓ）、３．５２〜３．４３（ｍ、２Ｈ、ＣＨ_２ＮＨＡｒ）、３．１０〜３．０６（ｍ、１Ｈ、ＮＨＣＨＣＨ（Ｒ）Ｓ）、２．８０（ｄｄ、１Ｈ、Ｊ＝１２．４、５．０Ｈｚ、ＣＨ（Ｈ）Ｓ）、２．５６（ｄ、１Ｈ、Ｊ＝１２．４Ｈｚ、ＣＨ（Ｈ）Ｓ）、２．１１（ｔ、２Ｈ、ＮＨＣ（Ｏ）ＣＨ_２）、１．７８〜１．２５（ｍ、１２Ｈ、６ｘＣＨ_２）。

実施例８：アミノ修飾ＦＰＧプローブへのＢｉｏ−ＤＮＰ標識の結合
Ｂｉｏ−ＤＮＰ二重標識（１０ｍｇ、１８．６μｍｏｌ）をＴＳＴＵ（８．４ｍｇ、２７．９μｍｏｌ）およびＤｉＰＥＡ（９．７μＬ、２７．９μｍｏｌ）で８分間活性化し、次いで、反応混合物の試料をアセトニトリルで希釈し、ＬＣＭＳ（方法１）により分析し、それは収率１９％でＢｉｏ−ＤＮＰ ＮＨＳエステルの存在を示した（ｔ_Ｒ１５．０９分；ＥＳ−ＭＳ（ｐｏｓ．ｍ/ｚ）：６３６．３（９％、［Ｍ＋Ｈ］^＋）。１．５時間の反応時間後、１０μＬの活性化混合物を水（２０μＬ）および１Ｍ ｐＨ９ ＮａＨＣＯ_３水溶液（１０μＬ）中約１ｍＭでアミノ修飾プローブオリゴ（ｒｓ１２０７４４５）の混合物に添加した。標識化混合物をボルテックスし、１０分間超音波処理し、次いで暗所で室温において一晩放置した。混合物を次いで、ＮＡＰ−１０ ＳＥカラムにより脱塩し、ＲＰ−ＨＰＬＣ（標的ｔ_Ｒ３１．１０分）により精製し、標的画分を真空濃縮し、ＮＡＰ−１０ＳＥにより脱塩し、さらに真空濃縮して、４７０μＬの７．１μＭ標的Ｂｉｏ−ＤＮＰ標識オリゴ溶液を得た（収率１７％）。標識オリゴをＬＣＭＳ（方法２）により特性評価した；純度９０％、ｔ_Ｒ１０．４８分、ＥＳＩ−ＭＳ（負）：計算値１１３９２．４、実測値１１３９２．２。

実施例９：ＲＰＡ条件
すべてのＲＰＡ反応を、特に明記しない限り４０℃で２０分間インキュベートした。ラテラルフロー用のＲＰＡ製剤（Ｆｐｇ）は、各々４２０ｎＭの適当なフォワードおよびリバースプライマー、１２０ｎＭの二重ハプテンＦｐｇプローブ、５０ｍＭトリス酢酸ｐＨ８．３、１００ｍＭ ＫＯＡｃ、５ｍＭ ＤＴＴ、１×クレアチンキナーゼ、３０μｇ Ｇｐ３２、３０μｇ ＵｖｓＸ、７μｇ ＵｖｓＹ、６．５％ ３ｋＤａ ＰＥＧ、５．７％トレハロース、８．６μｇ ＤＮＡポリメラーゼＩ（黄色ブドウ球菌）、９．４８μｇ Ｆｐｇ、１×Ｅ−ｍｉｘ、１．８ｍＭ ｄＮＴＰおよび０．５％Ｂｒｉｊ−３５を含有する。反応を、１００μｌの最終体積に適当な鋳型およびＭｇ（ＯＡｃ）_２（最終濃度２２．５ｍＭ）を含有する混合物を添加することにより開始した。

Ｎｆｏ ＲＰＡ反応製剤は、Ｇｐ３２（２８μｇ／反応）およびポリメラーゼ（１２．８μｇ／反応）以外はＦｐｇと同じであった。さらに、ＦｐｇをＮｆｏ（エンドヌクレアーゼＩＶ；４．６μｇ／反応）で置き換えた。

蛍光Ｆｐｇ反応を、Ｔ８装置（Ａｘｘｉｎ）で製造業者の使用説明書に従い市販のＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｆｐｇキットを用いて行った。反応を４０℃で２０分間インキュベートした。

実施例１０：ラテラルフローストリップ検出
特に明記しない限り、１．５μｌ抗ビオチン金を、終了したＲＰＡ反応に直接添加し、ラテラルフローストリップを添加した。ストリップを２０分間ウィッキングさせた後、室温で１０分間乾燥した。吸収パッドおよびガラス繊維コンジュゲートパッド（適当な場合）を除去し、ストリップをスキャンした。

ＰＣＲＤストリップ（Ａｂｉｎｇｄｏｎ Ｈｅａｌｔｈ）上での希釈検出を、７０μｌ ＰＣＲＤ抽出緩衝液中での５μｌアンプリコンの希釈により行った。全７５μｌを製造業者の使用説明書に従ってＰＣＲＤ装置で処理した。

実施例１１：ラテラルフローストリップ上での新規な分析物の無希釈検出
今日まで、ラテラルフロー装置でのＲＰＡ産物の検出は、ＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏ化学と組み合わせて市販のＮＡＬＦＩＡストリップ、例えば、Ｍｉｌｅｎｉａ Ｈｙｂｒｉｄｅｔｅｃｔストリップ、Ａｂｉｎｇｄｏｎ Ｈｅａｌｔｈ ＰＣＲＤストリップおよびＵＳｔａｒ装置などを用いることにより行われており、これは一本鎖核酸に結合された各標識を含む二重ハプテン標識アンプリコンを生成し、これはハイブリダイズして、サンドイッチラテラルフローイムノアッセイにより検出され得る二重ハプテン標識を形成する。この技術は、感受性および特異性に関して蛍光プローブに基づく方法と同等の働きをするが、エンドユーザーは、アッセイストリップに沿った標識の移動を可能にし、したがってこのようなラテラルフローストリップ上で増幅産物を成功裏に決定できるように、粘性の高いアンプリコンを最初に希釈しなくてはならない（図８）。ラテラルフローストリップ上で無希釈で行った場合の二重標識アンプリコンの限定的な検出についての機構を示す図を、図８に示す。ＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏ反応は３’ブロックハプテン標識プローブ（内部テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）残基を含有）、ハプテン標識リバースプライマーおよびエンドヌクレアーゼＩＶ（Ｎｆｏ）を含有する。この試験において、プローブは典型的にはビオチンで標識され、リバースプライマーはＤＮＰまたはＦＡＭのいずれかで標識された。増幅すると、ビオチン標識プローブは新たに合成されたＤＮＰ／ＦＡＭ標識鎖に結合する。プローブが結合したら、ＮｆｏはＴＨＦ残基のホスホジエステル結合５’を切断する（工程１）。切断されたプローブは、プローブを効果的に伸長する鎖置換ポリメラーゼのプライマーとして作用し、３’ブロックを除去する（工程２）。ＲＰＡの連続ラウンドはしたがって、二重ハプテン標識アンプリコンを生成する（工程３）。しかし、反応が希釈されない限り、分析物の大部分がＲＰＡコアセルベート中に補足されたままであり（工程４）、それを試験ラインでの結合にほとんど利用できず、偽陰性／弱い真陽性の試験ラインシグナルを生じると考えられる。

本開示は、エンドユーザーが、少ない数のハンズオン工程で、特に、ＲＰＡアンプリコン混合物からの直接の良好なラテラルフロー分離のために希釈工程を必要とせずに、ラテラルフロー測定を行う手段を提供する（直接検出）。

最初に、ラテラルフロー装置上での希釈なしでのＲＰＡの直接分析は失敗に終わった。標準的なＲＰＡ増幅混合物で用いられる３５ｋＤａ ＰＥＧの高い濃度は、反応の粘性が高すぎて十分にウィッキングできず、金コロイドのかなりの部分がストリップの近位端で凝集したことを意味した。本開示は改善されたＲＰＡ混合物を提供し、それは３５ｋＤａ ＰＥＧを用いる場合に観察される影響を軽減するように設計される。改質されたＲＰＡ混合物は、クラウディング剤として低分子量ＰＥＧ（６．５％ ３ｋＤａ ＰＥＧ）および０．５％ｖ／ｖＢｒｉｊ−３５を利用し、これはニトロセルロース膜からの金コロイドの移動を著しく改善する。市販のＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏ化学（３５ｋＤａ ＰＥＧを含む）は、アンプリコンが、市販またはインハウスで製造された既存のラテラルフローアッセイストリップ上で、泳動用緩衝液で適切に希釈されると、アンプリコンの何らかの検出を可能にするが、低ＭＷ ＰＥＧ（６．５％ ３ｋＤａ ＰＥＧ）Ｎｆｏ ＲＰＡをストリップ上で無希釈で行った場合、１０００コピーの鋳型対ＮＴＣを含有するＲＰＡ反応において試験スポットでの検出可能なシグナルの刺激はほとんどなかった（図７）。

サルモネラＩｎｖＡ標的に対するＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏアッセイのラテラルフロー分析を、図７に示す。ＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏ反応（ＮＴＣおよび反応あたり１０００コピーの鋳型ＤＮＡ；ＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｎｆｏ反応は３５ｋＤａ ＰＥＧを含有する）。ＲＰＡを、市販のラテラルフローストリップ（ＰＣＲＤ、左のパネル）およびインハウスで製造された抗ＦＡＭストリップ（中央のパネル）上で泳動用緩衝液中で１／５０に希釈して分析した。並行して、３ｋＤａ ＰＥＧ ＲＰＡ反応を、同じバッチの抗ＦＡＭストリップ（右のパネル）上で無希釈で分析した。

二重ハプテン標識がラテラルフローストリップ上での直接無希釈検出により適しているかどうかを決定するために、３種類の分析物を、ＴＢＳＴ（０〜１２０ｎＭ）または６．５％ ３ｋＤａ ＰＥＧ中のＲＰＡ成分すべてを含有する偽ＲＰＡ反応にスパイクした後、ストリップ上で分析した。３つの分析物は以下のものであった：１）各々ＦＡＭおよびビオチンにより５’および３’末端で標識された２８ｍｅｒオリゴヌクレオチド；ハプテン標識アンプリコンを刺激するために使用される；２）新規なＢｉｏ−ＦＡＭ二重ハプテンプローブ；３）脱塩基ｄＲ基がＢｉｏ−ＦＡＭ二重ハプテンで標識される、Ｆｐｇプローブ。重要なことに、すべての３つの分析物は緩衝液にスパイクされたとき同程度に検出され、陽性シグナルは試験した最小濃度の分析物（約１ｎＭ）に観察された。検出をスパイクした偽ＲＰＡに対して無希釈で行った場合、分析物の不在下で泳動したストリップは、いくらかの弱い非特異的シグナルを示した。弱いシグナルはまた、二重標識オリゴヌクレオチドおよび二重ハプテンＦｐｇプローブについて最大１２０ｎＭの分析物で観察された。しかし、陰性試料に対する試験ラインシグナルの顕著な刺激は、遊離二重ハプテン分析物についてのみ観察された（図１ｉｉｉ）。これらのデータは、小さな標識はラテラルフローストリップ上でのＲＰＡ産物の無希釈検出に使用できるが、標識された核酸標識（既存の市販のＮｆｏ ＲＰＡ反応から遊離される）は、ＲＰＡコアセルベート内でのこのような嵩高いプローブの局在化により、容易に検出できないという仮説と一致し、このことはラテラルフローストリップ上でのこのような標識の検出の利用可能性を制限する。

実施例１２：ラテラルフローストリップ上でのＲＰＡの直接検出
ＲＰＡの検出に二重ハプテン分析物を使用するには、増幅が行われるまで標識を効果的に捕捉することが必要とされる。したがって、二重ハプテン標識（ｒｓ１２０７４４５プローブ１）にコンジュゲートし得る、内部アミノ修飾ｄＲ脱塩基部位を有する、ｒｓ１２０７４４５標的に対するＦｐｇプローブを購入した。ＲＰＡ中、プローブはアンプリコンにハイブリダイズし、この時点でＦｐｇはβδ除去によりｄＲ基の５’および３’で脱塩基部位を切断し（図２ｉ）、工程１）、二重ハプテン標識を放出する（図２ｉ）、工程２）。二重ハプテン分析物は、そのサイズが小さいので、ＲＰＡコアセルベートから自由に脱出でき（図２ｉ）、工程３）、このようにしてそれはラテラルフローストリップ上でサンドイッチイムノアッセイにより検出され得る（図２ｉ、工程４）。重要なことに、未処理のプローブ（それは両方のハプテンに結合されるため理論上検出可能であり得る）は、ＲＰＡコアセルベート中に捕捉されている可能性があり、これによりそれは、増幅が起こらないＲＰＡ反応においてほぼ検出不可能になる。この影響は、偽ＲＰＡ反応にスパイクされた純粋なプローブが、遊離標識よりも検出しにくいという事実により例証される（図１ｉｉｉ）。

Ｆｐｇ二重ハプテンプローブをラテラルフロー上でのＲＰＡの直接エンドポイント検出に使用できることの原理証明を得るために、ｒｓ１２０７４４５二重ハプテンプローブ（プローブ１）を含有する１０、１００および１０００コピー／反応のヒトｇＤＮＡ（さらにＮＴＣ）に対して低ＭＷ ＰＥＧ ＲＰＡ反応を４連で行った。１．５μｌ抗ビオチン金を添加し、ストリップをアンプリコン／金混合物に滴下した。いくらかの非特異的シグナルがＮＴＣ反応で観察されたが、試験ラインシグナルのわずかな刺激が１０コピーの鋳型を含有するＲＰＡの複製物の２／４で観察された。ＮＴＣに対する試験ラインシグナルの強力な刺激は、反応あたり≧１００コピーのｇＤＮＡを含有するすべての反応で観察された（図２ｉｉ）。これらの予備データは、新しいＦｐｇプローブ化学が、ラテラルフローストリップ上でのＲＰＡ産物の無希釈検出を可能にすることを示している。

多くの市販のＮＡＬＦＩＡストリップは、コロイドをコンジュゲートパッド中に乾燥させることにより、検出コンジュゲートをストリップ上に組み込む。さらに、ほとんどのストリップはフローコントロールラインも含み、それはストリップが効果的にウィッキングされたことを確認するように作用する。ストリップがこれらの特徴を組み込むＲＰＡの直接検出用に製造されたかどうかを決定するために、ストリップに、抗ＤＮＰ試験ライン、抗マウスフローコントロールライン（試験ラインをバイパスする任意のコンジュゲートを結合する）および乾燥抗ビオチン金コロイドを含有するガラス繊維コンジュゲートパッドを並べた。ｒｓ１２０７４４５アッセイを次いで、１０００コピーのヒトｇＤＮＡの存在下または不在下で行った後、反応が終了したらストリップをＲＰＡに直接滴下した。すべての場合において、フローコントロールラインの強いシグナルから明らかなように、有効なフローが観察された。先に観察されたものと同様に、いくらかの弱い非特異的シグナルが陰性増幅で抗ＤＮＰ試験ラインに観察されたが、試験ラインシグナルの顕著な刺激が鋳型不含増幅と比較して陽性増幅で観察された（図２ｉｉｉ）。

総合すれば、これらのデータは、新しい二重Ｆｐｇハプテンプローブを、ラテラルフローストリップ上でのＲＰＡ産物の直接無希釈検出に使用できることを示している。

実施例１３：陰性ＲＰＡ反応における偽陽性シグナルに対するプローブ設計の影響
非特異的シグナルがいくつかの陰性反応で目視観察できる。しかし、デジタルリーダー（このような装置は、市販のラテラルフローアッセイで常套的に用いられる）を利用するならば、計装は画像分析アルゴリズムによりバックグランドシグナルを減算するように構成され得る。アッセイ試験ストリップが、資源の限られた環境で用いられる場合、アッセイストリップを目で可視化する必要があり得、この場合、ユーザーが結果を誤って解釈する可能性を軽減するために、試験ラインでの非特異的シグナルを最小限に抑える能力が望ましい。

ラテラルフローストリップがストリップリーダーを用いて分析される場合、これは任意の分析でバックグラウンドシグナルを減算し得るため、非特異的シグナルが陰性反応で観察されるという事実は、必ずしも問題になるわけではない。しかし、ストリップが、資源が不足した環境で用いられる場合、ストリップを目で可視化できることが望ましく、この場合、試験ラインでの非特異的シグナルはあまり望ましくない。したがって、ノイズが試験ラインへのオリゴヌクレオチドプローブの直接的な結合によるものであるのか、またはＦｐｇ酵素によるプローブの異常な処理の結果であるのかを決定するために、Ｆｐｇの存在下または不在下でｒｓ１２０７４４５の低ＭＷ ＰＥＧ Ｆｐｇ ＲＰＡ反応を行うことにより偽陽性シグナルの原因を決定した。Ｆｐｇの存在下で、ｒｓ１２０７４４５ ＲＰＡは、ＮＴＣ反応中の偽陽性シグナルを示し、１０００コピーのヒトゲノムＤＮＡ鋳型を含有する反応で試験ラインシグナルの刺激が示された。Ｆｐｇの不在下で行われた反応は、ＮＴＣ反応での大幅に減少された非特異的シグナル（および１０００コピーの鋳型ＤＮＡを含有する反応での増幅なし）を示し、ｒｓ１２０７４４５二重ハプテンプローブが異常に処理され、偽陽性シグナルを生じたことを示唆している（図３ｉ）。場合によっては、Ｆｐｇの不在下でいくらかの非特異的シグナルが残り、このシグナルは、膜のブロッキングにより効果的に除去され得る。

Ｆｐｇ−依存性非特異的シグナルの原因を決定するために、ｒｓ１２０７４４５二重ハプテンプローブ配列をＮｅｔＰｒｉｍｅｒ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗｐｒｅｍｉｅｒｂｉｏｓｏｆｔ．ｃｏｍ／ｎｅｔｐｒｉｎｔｅｒで入手可能）またはＯｌｉｇｏＡｎａｌｙｓｅｒ ３．１プログラム（ＩＤＴ；ｈｔｔｐｓ：／／ｅｕ．ｉｄｔｄｎａ．ｃｏｍ/ｃａｌｃ／ａｎａｌｙｚｅｒで入手可能）を用いて、ヘアピン、プライマー／プローブおよびプローブ／プローブ二量体について分析した。これらの分析は、プローブが弱いヘアピン構造（ΔＧ＝−７．９ｋｃａｌ／ｍｏｌ）および強い自己二量体（ΔＧ＝−１４．１９ｋｃａｌ／ｍｏｌ）を形成し得ることを示した。いずれの場合においても、ｄＲ基（図３ｉｉにおいて赤でハイライト表示）は、二本鎖領域にあり、したがってＦｐｇ酵素のための基質として作用し得、ＮＴＣ ＲＰＡ反応においてＦｐｇ依存性ノイズが存在する理由についての有力な説明を提供する。

２つの新しいｒｓ１２０７４４５プローブを設計した：１）プローブ１ｍｏｄ−このプローブは、プローブ１と同じ配列を有し、同じ構造を形成する。しかし、ここで、脱塩基部位は推定二本鎖領域の外に位置し、Ｆｐｇで処理されないはずである；２）プローブ２−この二重ハプテンプローブは、ｒｓ１２０７４４５アンプリコン内の異なる領域にハイブリダイズするように設計される。このプローブは、プローブ１およびプローブ１ｍｏｄに対し減少されたヘアピン（ΔＧ＝−２．０７ｋｃａｌ／ｍｏｌ）および自己二量体（ΔＧ＝−８．０５ｋｃａｌ／ｍｏｌ）を示している。さらにｄＲ基は、二本鎖領域の外側に位置し、Ｆｐｇの基質として作用しないはずである（図３ｉｉおよびｉｉｉ）。

改善されたプローブ設計が、陽性増幅におけるＲＰＡを検出する能力を維持しながら陰性増幅における非特異的シグナルを減少し得るかどうかを決定するために、３つのプローブの存在下でＮＴＣおよび陽性（１０００コピーのヒトｇＤＮＡを含有）ＲＰＡ反応をラテラルフローストリップ上で無希釈で検出した。すべての陽性反応は、陰性増幅を上回る試験ラインシグナルでの顕著な刺激を示し、ＲＰＡが予想通りに行われたことを示唆する（図３ｉｉｉ）。ｒｓ１２０７４４５プローブ１は、陰性増幅で最大のバックグラウンドシグナルを示した。非特異的シグナルはプローブ１ｍｏｄを含有する陰性増幅でかろうじて検出でき、プローブ２を含有する反応では視認できなかった（図３ｉｉｉ）。したがって、二次構造、自己もしくは交差二量体を形成しないか、またはこれを形成する可能性を低減するプローブを設計することにより、陰性増幅における非特異的シグナルを効果的に低減または排除できる。場合によっては、これらの構造は回避できず、脱塩基部位は任意の二本鎖領域の外側に位置しなくてはならない。

実施例１４：ラテラルフロー上でのＲＰＡの直接検出―他の標的に対する分析感受性および適用性
ＲＰＡの直接検出についてＦｐｇ二重ハプテンプローブのさらなる例証を行った。ｒｓ１２０７４４５アッセイとカンピロバクタージェジュニに対する別の既存のインハウスアッセイを最初に比較した。Ｃ．ジェジュニアッセイは、１６Ｓ ｒＲＮＡに対して標的化された先に設計したプライマーを利用し、唯一の変更は、既存のＦｐｇプローブ配列を、直接ラテラルフロー検出用に設計された新しい二重ハプテン標識プローブと交換したことであった。

両方の例において、低ＭＷ ＰＥＧ ＲＰＡを４連で行い、反応は１０、１００または１０００コピーの適当な鋳型ＤＮＡ（ｒｓ１２０７４４５およびカンピロバクターアッセイ各々に対するヒトｇＤＮＡおよび合成１６Ｓ Ｃ．ジェジュニｒＤＮＡ鋳型）を含有した。ＲＰＡ産物を次いで、抗ＤＮＰラテラルフローストリップ上で無希釈で分析した。改善されたｒｓ１２０７４４５アッセイ（ｒｓ１２０７４４５プローブ２を利用）では、シグナルはＮＴＣ反応での試験ラインで観察されなかった。試験ラインは弱かったが、１０コピーの鋳型ＤＮＡを含有するすべてのＲＰＡに存在し（図４ｉに緑の輪郭で示される、ストリップ端でより明らかである）、良好なシグナルが≧１００コピーのヒトｇＤＮＡを含有するすべてのＲＰＡ反応の試験ストリップ上で観察された（図４ｉ）。

Ｃ．ジェジュニアッセイでは、弱い偽陰性シグナルがすべてのＮＴＣに存在した（このプローブはラテラルフロー用に再設計されなかったことに留意されるべきであり、これは、何らかの微量の二次構造および自己二量体化を示す）。しかし、非常に強い試験ラインシグナルが、≧１０コピーの鋳型ＤＮＡを含有するすべての増幅で観察された（図４ｉｉ）。

総合すると、これらのデータは、ラテラルフローストリップ検出が、増幅反応の成功によってのみ制限されることを示唆している。直接検出ラテラルフローアッセイでの使用のための同じ改善されたＲＰＡ化学が、両方のケースで用いられた。さらに、データは、改善されたＦｐｇプローブ化学が、標的核酸の検出のために広範なＲＰＡ法に適用され得ることを示している。このように改善された技術は多くの可能性のある標的に容易に適用でき、分析感受性は、他の市販のＮＡＡＴアッセイフォーマットに相当すると予想される。いくらかの偽陽性シグナルがＣ．ジェジュニアッセイで観察されたが、このような観察は、ｒｓ１２０７４４５に対するアッセイで使用した修正されたプローブで観察されたように、プローブヌクレオチド配列を慎重に選択して、自己二量体／二次構造の形成の可能性を最小化するプロセスを通じて軽減され得ることが予想される。

改善された直接検出ラテラルフロー技術のさらなる例証を行った。大腸菌Ｏ１５７：Ｈ７の検出のための新規なＲＰＡプライマーおよびプローブを調製した。このようなアッセイは食品検査に使用でき、便試料を用いる疾患の迅速な診断における使用可能性を有する。大腸菌Ｏ１５７：Ｈ７のすべての菌株において高度に保存された領域を表す血清マーカー遺伝子（ｒｆｂ_Ｏ１５７）および（ｆｌｉＣ_Ｈ７）を同定するために使用できるＲＰＡラテラルフローアッセイを、開発した。新たに開発されたＲＰＡアッセイは、シングルプレックス検査として最初に設計され、将来のある時点で試験を生化学的にマルチプレックス化するための余地を有した（このようなプローブは、ラテラルフロー試験ストリップ上の異なる捕捉ラインで独立して検出され得るため、各々Ｂｉｏ−ＤＮＰおよびＢｉｏ−ＦＡＭ二重ハプテン標識で標識されたＦｐｇプローブを使用する）。

大腸菌血清型に対するすべてのプライマー／プローブの組み合わせの予備スクリーニングを、迅速増幅動態（１０コピーで＜６分の開始時間、高い最大蛍光を有する）で、反応あたり約１０コピーの分析感受性を示すプライマー／プローブの組み合わせを発見する意図で、等温Ｔ８装置を用いるＴｗｉｓｔＡｍｐ Ｆｐｇ蛍光プローブアッセイ（５．５％３５ｋＤａ ＰＥＧを含有）を使用して行った。蛍光アッセイで最適な性能を示したプローブを次いで修飾して、直接アッセイラテラルフローにおける使用のための低ＭＷ ＰＥＧ ＲＰＡでの二重ハプテンＦｐｇプローブとして使用した（プライマーは、蛍光アッセイとラテラルフローアッセイとで同じである）。

図５ｉ）は、ラテラルフローストリップ上での低ＭＷ ＰＥＧ ＲＰＡ反応の直接無希釈検出のためのアッセイに対する新規なｒｆｂ_Ｏ１５７蛍光Ｆｐｇアッセイ（３５ｋＤａ ＰＥＧ）の比較を示す。蛍光プローブアッセイ（３５ｋＤａ ＰＥＧを使用）は、１０コピーの鋳型ＤＮＡ（定量された合成ＤＮＡ）ですべての複製物においてＮＴＣベースライン（赤）を超えるシグナルを示す。予想通り、１００コピー（緑）および１０００コピー（青）を含有するすべての反応は陽性であり、開始時間および最大蛍光は反応あたりの鋳型ＤＮＡの量と十分に相関した。直接ラテラルフローアッセイにおいて、陽性試験ラインシグナルが１０コピーの鋳型ＤＮＡでの複製物４つのうち３つに観察された（≧１００コピーの鋳型を含有するすべての複製物は強く陽性であった）。視認できる偽陽性シグナルはＮＴＣでは観察されず、優れたプローブ設計はこのような人工産物を排除できることをさらに示す（ｒｓ１２０７４４５アッセイに使用したのと同じストリップ化学を大腸菌の検出でも利用したため）。

図５ｉｉ）は、直接ラテラルフロー方法と比較したｆｌｉＣ_Ｈ７蛍光プローブシングルプレックスの性能を示す。やはり、蛍光プローブアッセイは、試験したすべての複製物で１０コピー（黄）に対し強い増幅を示し、最大蛍光および開始時間は反応に存在する定量された合成ＤＮＡ鋳型のコピーの量と十分に相関した。Ｆｐｇ二重ハプテンラテラルフローアッセイでは、弱いシグナルが１０コピーで複製物４つのうち３つに観察され、より強いシグナルが１つの複製物に観察された。非常に弱い偽陽性シグナルが、ｆｌｉＣ_Ｈ７アッセイについてすべてのＮＴＣで観察された。しかし、このような非特異的シグナルは、先に示したようにさらなる反復プローブ設計およびブロッキング試薬の使用により排除され得るであろう。

これらのデータは、新規な二重ハプテンＦｐｇプローブ化学の汎用性を示し、感受性アッセイを、重要な病原体に対して比較的簡単に設計でき、既存の市販の蛍光Ｆｐｇアッセイと比較して同等のアッセイ感受性を達成できることを示す。

実施例１５：改善された使いやすいＦｐｇ二重ハプテンラテラルフローアッセイ−「連続フロー」
ＲＰＡ産物の直接の無希釈検出は、アッセイ消耗品の複雑性を低減でき、それによりエンドユーザーにとって試験手順がより簡単になると同時に、製造コストを削減する。本開示は試験時間を、Ｆｐｇ二重ハプテンラテラルフローＲＰＡアッセイを用いる約４０分から、必要とされるアッセイ感受性に応じて３０分以下に短縮できる。

実現可能性試験を行って、増幅サイクル全体でＲＰＡ反応に存在するラテラルフローアッセイストリップを有する利点を証明した。反応体積を１００μｌから２００μｌに増加させて、混合物がストリップに沿って移動した後に顕著な増幅が起こるという事実に合わせた。最初に、抗ビオチン金コロイド標識を、増幅の前にＲＰＡ反応混合物に直接入れて、アンプリコンの蓄積前にパッドからコンジュゲートが放出されるのを防止した。ストリップ上で処理できる反応体積を増加させるために、様々な大重量ウィッキングパッド材料（対照材料：ＣＦ５、中重量セルロース繊維；実験材料：ＣＦ６およびＧｒａｄｅ３２０、大重量セルロース）を評価した。ＲＰＡアッセイが進行するにつれてウィッキングパッドが装置から剥離するのを防止する一助となるように、アッセイストリップを接着カバーテープで積層した。

概念実証を、ラテラルフローアッセイ（３ｋＤａ ＰＥＧ）での使用のための２００μｌ凍結乾燥ＲＰＡペレットを用い、ｒｓ１２０７４４５Ｆｐｇ二重ハプテン（Ｂｉｏ−ＤＮＰ）アッセイを用いて確立した。ペレットを、０または５０００コピーいずれかの鋳型ＤＮＡプラス１．５μｌの抗ビオチン金コロイドを含有する緩衝液容器で水和し、抗ＤＮＰストリップをＣＦ５（対照）、ＣＦ６またはＧｒａｄｅ３２０大重量パッドで作られたウィッキングで水和した。すべての反応混合物を各ラテラルフローストリップに直ちに添加し、これを４０℃で３０分間インキュベートした。

図６において、示された吸収パッド材料で作られたストリップを、増幅中ＲＰＡ反応でインキュベートした。示されたデータは、ｒｓ１２０７４４５二重ハプテンＦｐｇアッセイに関するものであり、ＮＴＣ反応を、５０００コピーの鋳型ＤＮＡを含有するものと比較した。

対照（ＣＦ５）ストリップにおいて、非常に強い偽陽性シグナルがすべてのＮＴＣ反応で観察され、ごくわずかな試験ラインシグナルの刺激が５０００コピーのインプット鋳型ＤＮＡで観察された（図６ｉ）上部パネル）。しかし、ＣＦ６ストリップはいくつかの偽陽性シグナル（対照ストリップでよりも弱い）を生じた一方で、偽陽性応答はＧｒａｄｅ３２０ストリップを用いた場合効果的に除去された。これは、ＣＦ５またはＣＦ６材料と比較して改善された毛細管作用を有し得るＧｒａｄｅ３２０材料の大きい床体積に起因することが予想される。分析物は、ＣＦ５ストリップと比較してＧｒａｄｅ３２０材料ベースのストリップ中をより容易に流動し得、それにより、非特異的相互作用が起こるのに利用可能な時間を削減する。さらに、試験ラインシグナルでの顕著な刺激が、鋳型ＤＮＡを含有する増幅で見られた（図６、下部パネル）。

実施例１６：エキソプローブ設計
本実施例は、エキソヌクレアーゼＩＩＩ（エキソ）切断可能プローブのための例示的なプローブ設計を示す。例示的なプローブ構造を以下に示す。以下の配列は例示的なプローブである。配列は、増幅された標的ＤＮＡに相補的であるように設計される。
５’−ＸＡＡＡＴＴＴＣＴＡＣＴＴＴＴＧＧＣＣＡＧＴＴＣＴＡＣＡＡＴＴＴＧＴＴＬＨＡＴＡＴＣＡＣＡＴＧＧＡＴＧＴＢ−３’（配列番号１）
そこで
Ｘ＝５’ヘキシル
Ｈ＝ＴＨＦ残基
Ｂ＝Ｃ３スペーサー（３’−５’ヌクレアーゼ消化のブロック）
Ｌ＝ＤＮＰ ＴＥＧおよびビオチンヘキシルを含む分枝修飾因子；ＤＮＰ ＴＥＧおよびビオチンヘキシル部分の間のホスホロチオエート（ＰＳ）結合を使用して、内部ハプテン結合の安定性を確実にできる。

３’ブロックＢ（例えば、Ｃ３スペーサー、例えば、プロパノール）がプローブの不要なヌクレアーゼ消化を防止するように、プローブを設計する。分枝修飾因子Ｌを脱塩基ＴＨＦ残基Ｈの５’側に組み込む。上記の例において、Ｌは、Ｈのすぐ５’であるが、Ｌを５’方向にＨからさらに伸長し得ることが可能である。ＴＨＦ残基は相補的配列の上流の約３０ｎｔおよび相補的配列の下流の約１５ｎｔに位置する。

Ｌは、修飾シトシン（Ｃ）ヌクレオベースを表し、そのためプローブ配列中のＣ残基を置き換えねばならない。Ｌは以下の構造：

を有する市販のホスホロアミダイト（ＬＧＣ ＬＩＮＫ（Ｔｅｄｄｉｎｇｔｏｎ、ＵＫ）型番２１５０）を用いて固相オリゴ合成中に組み込まれる。

このホスホロアミダイトは、通常の固相ＤＮＡオリゴ合成の過程で組み込まれる。オリゴの５’−ＯＨを脱保護し（ＤＭＴｒ保護基を除去する）、次いで５’ブロックＸ（例えば、Ｃ６、例えば、ヘキシル）でキャップした後、上に示した修飾シトシンの環外アミンに結合されたレブリノイル保護基を除去する。これはヒドロキシル基を遊離させ、他のホスホロアミダイトを含むシトシンヌクレオベースをさらに分枝伸長することを可能にする。ハプテンを組み込むアミダイト、例えば、ＤＮＰ ＴＥＧ（以下の上部、ＬＧＣ ＬＩＮＫ型番２５４９）、次いでビオチン（「Ｂｉｏ」）ヘキシル（以下の下部、ＬＧＣ ＬＩＮＫ型番２１０９）は、分枝修飾因子Ｌでハプテンにより二重標識されたプローブを生成する。

標的アンプリコンを含有するＲＰＡ反応で、ＥｘｏＩＩＩはプローブの脱塩基残基Ｈを切断し、ＥｘｏＩＩＩによるその後の３’−５’消化は、２つの別個のハプテンで標識されるモノヌクレオチドＬ（５’−ホスフェートおよび３’−ＯＨを有する）を遊離させる。この二重ハプテン標識モノヌクレオチドは、自由にＲＰＡコアセルベートから出て、可視化粒子およびＬＦストリップの試験ライン上の抗体と相互作用する。

記載したエキソプローブ設計は、市販のホスホロアミダイトを用いて、分枝部位Ｌで様々なハプテンのモジュラー組み込みを可能にする。ＬでのＢｉｏ／ＤＮＰ、Ｂｉｏ／ＦＡＭおよびＦＡＭ／ＤＮＰ標識化はすべて可能であり、Ｌのシトシンヌクレオベースへのハプテンの結合の順番もまた自由に変更できる。最後に、第３の別個のハプテンが、未処理のプローブを結合し選別するために所望される場合、ハプテン（例えば、ＤＮＰ／ＦＡＭ／ＢＩＯ）を、例えば、ヘキシルの代わりにプローブの５’−キャップＸとして使用できる。上に示したＤＮＰ−ＴＥＧホスホロアミダイトが５’−キャップとして用いられる場合、追加の脱保護およびキャッピング工程を利用して、ＤＭＴｒ基を除去し、得られた５’−ＯＨを例えば、ヘキシルでブロックする。

図９は、Ｅｘｏプローブの例示的な構造およびそれらの使用を示す。左のパネルは、Ｆｐｇプローブ分析物とＥｘｏプローブ分析物の比較を示す。Ｅｘｏプローブは、テトラヒドロフラン残基の１ヌクレオチド上流に位置するＤＮＰ ＴＥＧおよびビオチンヘキシルで標識されたレブリノイルｄＣ分枝修飾因子を有する。右のパネルは、どのように分析物がＲＰＡにおいて生成されるかについて企図される機構を示す。プローブがアンプリコンの相補的鎖を結合する場合、ＥｘｏはＴＨＦで切断し、次いで、３’エキソヌクレアーゼ活性を用いて削り取り、ビオチン／ＤＮＰ標識シトシンを放出し、それが次いで、ストリップ上で検出される（抗ＤＮＰ試験ラインおよび抗ビオチン金コロイドまたは他のナノ粒子を使用する）。

反応製剤
簡単に言えば、Ｅｘｏ ＬＦ ＲＰＡ反応を４０℃で２０分間インキュベートする。ラテラルフロー（Ｅｘｏ）用のＲＰＡ製剤は、各々４２０ｎＭの適当なフォワードおよびリバースプライマー、１２０ｎＭの二重ハプテンＥｘｏプローブ、５０ｍＭトリス酢酸ｐＨ８．３、１００ｍＭ ＫＯＡｃ、５ｍＭ ＤＴＴ、１×クレアチンキナーゼ、３０μｇ Ｇｐ３２、３０μｇ ＵｖｓＸ、７μｇ ＵｖｓＹ、６．５％ ３ｋＤａ ＰＥＧ、５．７％トレハロース、８．６μｇ ＤＮＡポリメラーゼＩ（黄色ブドウ球菌）、１０μｇエキソヌクレアーゼＩＩＩ、５０ｍＭホスホクレアチン、２．５ｍＭ ＡＴＰ、１．８ｍＭ ｄＮＴＰおよび０．５％ Ｂｒｉｊ−３５を含有する。反応を、１００μｌの最終体積へと適当な鋳型およびＭｇ（ＯＡｃ）２を含有する混合物（最終濃度２２．５ｍＭ）を添加することにより開始する。

連続フロー−一段階ＲＰＡラテラルフロー
Ｅｘｏ ＬＦプローブ化学の高感受性は、ＲＰＡ核酸増幅およびストリップ検出が同時に行われる「連続フロー」システムにおける使用を可能にし、これは結果までの時間を鋳型の添加から約５分短縮できる（低いインプットＤＮＡコピー数に対して最適な感受性で２０〜３０分）。これを実現可能にするために、ラテラルフローストリップは、無希釈ＲＰＡ ＬＦシステム単独よりも多くの分析物を処理できなくてはならない。これは、エンドポイント検出ストリップで用いられるＣＦ５材料に対し大重量吸収パッド材料（例えば、Ｇｒａｄｅ３２０コットンリンター（Ａｈｌｓｔｒｏｍ））を用いて達成され得る。この材料は、より多くの分析物をストリップ上で流動させることを可能にするだけでなく、これはまた流動速度を増加させると思われ、これにより、他のパッド型に対して非特異的シグナルを減少させる。ストリップはまたカバーテープを包含し、これは濃重量吸収パッドを使用する場合に一般的な、剥離を低減することを助ける。

結果までの時間を短縮する以外に、全体としての連続フローシステムの利点は、１）増幅反応の処理／希釈が不要（汚染リスクを低減し、可能性のある消耗流体を単純化する）、２）消耗流体が減少される（基本的に消耗剤は、テラルフローストリップに直接接触する、ＲＰＡを行うための加熱チャンバである）。

図１０は、上の実施例に記載され上記のＦｐｇアッセイと比較された２つの大腸菌アッセイで上記の無希釈Ｅｘｏ ＬＦ化学を用いたデータを示す（数はインプットＤＮＡコピー数を示す；ＮＴＣ＝鋳型なし対照）。やはり、ストリップを、増幅後に添加する。Ｅｘｏアッセイはより高い感受性および強い試験ラインシグナルを示した。シグナルは、Ｆｐｇ化学よりも早く発生する。さらに、いくつかの偽陽性シグナルが残る一方で、それはＦｐｇ設定よりもはるかに改善されている。

図１１は、Ｅｘｏプローブ化学を用いた同時増幅／検出を示す。同時増幅および検出は、結果までの時間がより速く（２０〜３０分）、さらに消耗品の設計が単純化される利点を有する。図１０のデータは、エンドポイント検出と連続フローの比較を示す。これら２つの間で類似の感受性が観察される。偽陽性シグナルは連続フローにおいてより強く、これはカバーテープの存在によるものであり得る。

図１２は、一段階ＲＰＡラテラルフローにおける使用のための例示的な装置を示す。装置は、アッセイ試薬用の反応チャンバおよび増幅中の検出用のストリップチャンバを有する。図１２に示す装置において、反応チャンバとストリップチャンバの間にチャネルが存在し、これは、２つのチャンバ間の流動を可能にする。いくつかの実施形態において、チャンバは、ＲＰＡ成分を含有する凍結乾燥ペレットを保持する。鋳型ＤＮＡ、緩衝液を添加し、チャンバを４０℃の加熱ブロック上に配置すると、増幅が開始される。いくつかの実施形態において、チャンバは混合用の磁気撹拌棒を保持する。反応がストリップを進むと増幅が起こり、試験ラインシグナルが発生する。

他の実施形態
本開示をその詳細な説明と共に記載したが、前述の説明は例示を意図するものであり、添付の特許請求の範囲により定義される本開示の範囲を制限するものではないことを理解されるべきである。他の局面、利点および改変は、以下の特許請求の範囲内である。

Claims (56)

1. クラウディング剤、
   二重ハプテン脱離基を含むオリゴヌクレオチドプローブ、および
   ヌクレアーゼ酵素
   を含むリコンビナーゼポリメラーゼ増幅組成物。
2. クラウディング剤が、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、フィコール、またはデキストランを含む、請求項１に記載の組成物。
3. クラウディング剤が、少なくとも１ｋＤａ、少なくとも２ｋＤａ、少なくとも３ｋＤａ、少なくとも４ｋＤａ、少なくとも５ｋＤａ、少なくとも６ｋＤａ、少なくとも８ｋＤａ、または少なくとも１０ｋＤａの分子量を有する、請求項１または２に記載の組成物。
4. クラウディング剤が、少なくとも１５％ｖ／ｖの濃度、少なくとも１２％ｖ／ｖの濃度、少なくとも１０％ｖ／ｖの濃度、少なくとも８％ｖ／ｖの濃度、少なくとも６％ｖ／ｖの濃度、少なくとも５％ｖ／ｖの濃度、少なくとも４％ｖ／ｖの濃度、または少なくとも３％ｖ／ｖの濃度で組成物中に存在する、請求項１〜３のいずれか一項に記載の組成物。
5. クラウディング剤が、２０℃で５ｍＰａ／ｓ以下、４ｍＰａ／ｓ以下、３ｍＰａ／ｓ以下、２ｍＰａ／ｓ以下、または１ｍＰａ／ｓ以下の粘度プロファイルを有する、請求項１〜４のいずれか一項に記載の組成物。
6. クラウディング剤が、２０℃で３ｍＰａ／ｓ以下の粘度を有するＰＥＧである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の組成物。
7. クラウディング剤が、３ｋＤａの分子量を有するＰＥＧであり、かつＰＥＧが６．５％ｖ／ｖの濃度である、請求項１〜６のいずれか一項に記載の組成物。
8. オリゴヌクレオチドプローブが、オリゴヌクレオチドに脱離基を結合させる塩基を欠くｄＲ−Ｏ−［Ｃ］ｎヌクレオチドを含む、請求項１に記載の組成物。
9. ヌクレアーゼが、ホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼである、請求項１に記載の組成物。
10. 二重ハプテンを有するオリゴヌクレオチドプローブが、相補的ヌクレオチド配列にハイブリダイズする際にホルムアミドピリミジンＤＮＡグリコシラーゼにより切断されると、二重ハプテン脱離基を放出する、請求項１〜９のいずれか一項に記載の組成物。
11. 二重ハプテン脱離基が、異なるエピトープを有する２つの免疫原性基を含む、請求項１に記載の組成物。
12. 免疫原性基が、蛍光基、酵素またはそのフラグメント、ペプチドまたはそのフラグメント、ビオチンを含む、請求項１１に記載の組成物。
13. 免疫原性基が、ビオチン、フルオレセイン、ジゴキシゲニンまたはジニトロフェニルを含む群から選択される、請求項１２に記載の組成物。
14. 前記オリゴヌクレオチドプローブが、エキソヌクレアーゼにより切断可能であり、かつ前記オリゴヌクレオチドが、切断されると前記二重ハプテン脱離基を放出する、請求項１に記載の組成物。
15. 前記エキソヌクレアーゼが、エキソヌクレアーゼＩＩＩである、請求項１４に記載の組成物。
16. 前記オリゴヌクレオチドプローブが、構造式５’Ｘ（ｎ）_ａＬ（ｎ）_ｂＨ（ｎ）_ｃＢ３’（式中、ｎはヌクレオチドであり、ａ、ｂおよびｃは整数であり、Ｘは５’ヘキシルであり、ＨはＴＨＦ残基であり、ＢはＣ３スペーサーであり、Ｌは複数のハプテンを含む分枝修飾因子である）を有する、請求項１４に記載の組成物。
17. 前記ハプテンが、ＤＮＰ、ＦＡＭ、およびビオチンからなる群から選択される、請求項１６に記載の組成物。
18. 前記オリゴヌクレオチドプローブが、ハプテン間のホスホロチオエート結合を含む、請求項１６に記載の組成物。
19. 前記Ｃ３スペーサーが、プロパノールである、請求項１６に記載の組成物。
20. 次式
    

    

    
    （式中、ＲはＯＨまたは−ＮＨ（ＣＨ２）_６ＯＨである）
    を含む組成物。
21. 次式
    

    

    
    （式中、ＲはＯＨまたは−ＮＨ（ＣＨ２）_６ＯＨである）
    を含む組成物。
22. 次式
    

    

    （式中、ＤＭＴｒはジメトキシトリチルである）
    を含む組成物。
23. 次式
    

    

    
    （式中、ＤＭＴｒはジメトキシトリチルである）
    を含む組成物。
24. 次式
    

    

    
    （式中、ハプテン１およびハプテン２は請求項２２または２３に記載の免疫原性基であり、
    Ｚは（ｉ）アノマー炭素原子でβ立体配置を有する、ＲＮＡまたはＤＮＡオリゴヌクレオチド各々における脱塩基リボースまたはデオキシリボース環のＣｌ’；（ｉｉ）ＤＮＡまたはＲＮＡオリゴヌクレオチドに結合するように構成されたホスホロアミダイト化合物：から選択され、かつＺがＤＮＡまたはＲＮＡホスホロアミダイトである場合、ハプテン１およびハプテン２の反応基は任意でピバロイル、ｔｅｒｔ−ブチルベンゾイル、アシル、ベンゾイル、またはイソブチリルで保護され得、
    Ｒは水素、または直鎖もしくは分枝Ｃ１〜Ｃ６アルキルを表し、
    Ｘ１、Ｘ２およびＸ４は結合基であり、それは独立に不在であり得るか、または１つ以上の−Ｏ−、−Ｃ（＝Ｏ）−もしくは−ＮＲ−基により任意で中断され得る直鎖若しくは分枝Ｃ１〜Ｃ１２アルキルであり得、
    Ｘ３は直鎖または分枝Ｃ１〜Ｃ６アルキルであり、かつ
    Ｘ５は１つ以上の−Ｏ−、−Ｃ（＝Ｏ）−または−ＮＲ−基により任意で中断される直鎖または分枝Ｃ１〜Ｃ１２アルキルである）
    を含む組成物。
25. 試料適用領域、
    前記試料適用領域下流にありかつそれと流体連通している試薬領域であって、標的核酸を増幅するための乾燥ＲＰＡ試薬組成物、増幅された標的核酸産物に特異的な結合剤および検出分子を含む、試薬領域、
    前記試薬領域の下流にありかつそれと流体連通している少なくとも１つの試験領域であって、前記増幅された標的核酸産物に特異的な固定化捕捉分子を含む、試験領域、ならびに
    前記試験領域の下流にあるコントロール領域
    を含む、ラテラルフローストリップ
    を含む、装置。
26. 乾燥されたＲＰＡ試薬組成物が、クラウディング剤、リコンビナーゼ、ポリメラーゼ、ヌクレアーゼ、二重ハプテンプローブおよび検出分子を含む、請求項２５に記載の装置。
27. 二重ハプテンプローブが、ビオチンとカルボキシフルオレセイン（ＦＡＭ）のまたはビオチンとジニトロフェニル（ＤＮＰ）のコンジュゲートを含む、請求項２６に記載の装置。
28. 増幅された標的核酸に特異的な固定化捕捉分子が、抗ＦＡＭ捕捉分子または抗ＤＮＰ捕捉分子からなる群から選択される、請求項２５に記載の装置。
29. 抗ＦＡＭまたは抗ＤＮＰが、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、およびＦＡＢ、ＳｃＦｖ、ＦｖまたはＤＡＢを含むこれらの機能的結合フラグメントからなる群から独立に選択される、請求項２８に記載の装置。
30. 検出分子が、金ゾル、銀ゾル、ラテックスゾル、セルロースナノビーズ、またはカーボンナノストリング、および抗ビオチン捕捉分子からなる群から選択される、請求項２５に記載の装置。
31. コントロール領域が、ラテラルフローストリップの正確な操作を示す結合領域を含む、請求項２５に記載の装置。
32. コントロール領域が、抗マウス抗体捕捉ラインを含む、請求項２５に記載の装置。
33. 目的の標的核酸を含有することが疑われる試料を前記標的核酸を増幅するためのＲＰＡ試薬、前記標的核酸に相補的な核酸配列および共有結合された二重ハプテン脱離基を含むオリゴヌクレオチドプローブ、ならびにヌクレアーゼと接触させることと、
    前記標的核酸を増幅して標的核酸産物を生成することと、
    前記標的核酸にハイブリダイズされたオリゴヌクレオチドプローブから切断された遊離二重ハプテン部分を検出することにより前記標的核酸産物を検出すること
    を含む、増幅産物を検出する方法。
34. ＲＰＡ試薬が、ラテラルフローストリップの試料適用領域上に位置する、請求項３３に記載の装置。
35. 核酸増幅が、試料とＲＰＡ試薬の接触の際にラテラルフローストリップ上で行われて核酸増幅混合物を形成する、請求項３３に記載の方法。
36. 核酸増幅が、ＲＰＡ混合物への希釈または他の液体の添加なしにラテラルフローストリップ上で行われる、請求項３３に記載の方法。
37. オリゴヌクレオチドプローブから切断された二重ハプテン部分が、試料適用領域の下流に位置するラテラルフロー上の試験領域で選択的に捕捉される、請求項３３に記載の方法。
38. 共有結合された二重ハプテンを含むオリゴヌクレオチドが、ラテラルフローストリップ上の試験領域で選択的に捕捉されない、請求項３３〜３７のいずれか一項に記載の方法。
39. ラテラルフローストリップが、試験領域およびコントロール領域を含み、前記試験領域が、オリゴヌクレオチドから切断された二重ハプテンの捕捉のための結合対メンバーを含みかつ前記コントロール領域が、内部コントロールのための結合対メンバーを含む、請求項３３〜３８のいずれか一項に記載の方法。
40. コントロール領域が、抗マウス抗体またはそのフラグメントを含む、請求項３９に記載の方法。
41. 試験領域が、抗ＤＮＰ捕捉分子または抗ＦＡＭ捕捉分子を含む、請求項３９に記載の方法。
42. 抗ＦＡＭ捕捉分子が、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、またはこれらの機能的結合フラグメントからなる群から選択される、請求項４０に記載の方法。
43. 抗ＤＮＰ捕捉分子がモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、またはこれらの機能的結合フラグメントからなる群から選択される、請求項４２に記載の方法。
44. 増幅産物を検出することが、試験領域で二重ハプテン脱離基を捕捉することおよび捕捉された二重ハプテン脱離基を検出分子で標識することを含む、請求項３３〜４３のいずれか一項に記載の方法。
45. 検出分子が、金ゾル、銀ゾル、ラテックスゾル、セルロースナノビーズ、およびカーボンナノストリングからなる群から選択される、請求項４４に記載の方法。
46. 標的核酸を含有することが疑われる試料をラテラルフローストリップに適用することと、
    前記試料をラテラルフローストリップの試薬領域上に乾燥された標的核酸を増幅するためのＲＰＡ試薬混合物と接触させることと、
    増幅産物を、存在する場合、ラテラルフローストリップの試験領域上で検出すること
    を含む方法。
47. 標的核酸を含有することが疑われる試料が、ラテラルフローストリップの適用領域に適用される、請求項４６に記載の方法。
48. ＲＰＡ試薬混合物が、クラウディング剤、リコンビナーゼ、ポリメラーゼ、ヌクレアーゼ、および二重ハプテンオリゴヌクレオチドプローブを含む、請求項４７に記載の方法。
49. クラウディング剤が、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）、フィコール、およびデキストランからなる群から選択される、請求項４８に記載の方法。
50. クラウディング剤が、少なくとも１ｋＤａ、少なくとも２ｋＤａ、少なくとも３ｋＤａ、少なくとも４ｋＤａ、少なくとも５ｋＤａ、少なくとも６ｋＤａ、少なくとも８ｋＤａまたは少なくとも１０ｋＤａの分子量を有する、請求項４８または４９に記載の方法。
51. クラウディング剤が、少なくとも１５％ｖ／ｖ、少なくとも１２％ｖ／ｖの最終濃度、少なくとも１０％ｖ／ｖ、少なくとも８％ｖ／ｖ、少なくとも６％ｖ／ｖ、少なくとも５％ｖ／ｖ、少なくとも４％ｖ／ｖまたは少なくとも３％ｖ／ｖの最終濃度の濃度で混合物中に存在する、請求項４９または５０に記載の方法。
52. クラウディング剤が、２０℃で５ｍＰａ／ｓ以下、４ｍＰａ／ｓ以下、３ｍＰａ／ｓ以下、２ｍＰａ／ｓ以下または１ｍＰａ／ｓ以下の粘度プロファイルを有する、請求項４６〜５１のいずれか一項に記載の方法。
53. クラウディング剤が、ＰＥＧでありかつ２０℃で３ｍＰａ／ｓ以下の粘度を有する、請求項４６に記載の方法。
54. クラウディング剤が、３ｋＤａの分子量を含むＰＥＧでありかつＰＥＧが、６．５％ｖ／ｖの最終濃度である、請求項４６に記載の方法。
55. 増幅産物を、存在する場合、検出することが、増幅産物にハイブリダイズされたオリゴヌクレオチドプローブから切断された二重ハプテン部分を検出することを含む、請求項４８に記載の方法。
56. ＲＰＡ混合物の希釈が、増幅産物の検出前に必要とされない、請求項４６に記載の方法。

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