JP2020507322A - 人工エネルギー再生システムを必要としない新規の無真核細胞発現システム - Google Patents

人工エネルギー再生システムを必要としない新規の無真核細胞発現システム Download PDF

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Abstract

本開示は、クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼが人工エネルギー再生を提供するために反応に加えられない、色素体、ミトコンドリアおよび/または葉緑体を含有する細胞溶解物を利用した反応における生物学的マクロ分子のインビトロ合成のためのシステム、方法およびキットに関する。【選択図】図1A

Description

優先権の主張
本出願は、2017年2月9日に出願された米国仮特許出願第62/457,073号の優先権の利益を主張するものであり、その開示内容はこの参照によりその全体で本明細書に組み込まれる。
本開示は、バイオポリマーのインビトロ製造に関する。一部の実施形態は、無真核細胞システム中の例えばポリペプチド、ポリヌクレオチド、および/または多糖の製造に関する。特定の実施形態は、細胞小器官(例えば、色素体、ミトコンドリアまたはクロロプラスト)を利用して無細胞システムにおけるバイオポリマーの継続的製造のためのエネルギーを提供することで、システム内のある特定の望ましくないエネルギー貯蔵分子、例えばクレアチンリン酸の必要性がなくなる。
新しい治療タンパク質、技術酵素、タンパク質エンジニアリング、および機能ゲノミクスの需要増加は、迅速かつ効率的なタンパク質製造およびスクリーニングプラットフォームを必要とする。Leader et al.(2008)Nat.Rev.Drug Discov.7(1):21−39;Swartz(2012)Aiche J.58(1):5−13。無細胞タンパク質合成(CFPS)の新たな技術は、この需要を満たすのに役立ち得る。Carlson et al.(2012)Biotechnol.Adv.30(5):1185−94。細胞系発現と比較して、CFPSは、短いプロセス時間ならびに反応条件の直接的制御および監視などの利点を提供する。Swartz(2012)、上記.労力を要するクローニングおよび形質転換ステップのない複数のタンパク質の同時発現のために、PCR産物を直接使用することができる。Wu et al.(2007)Angew.Chem.Int.Ed.Engl.46(18):3356−8;Yabuki et al.(2007)J.Struct.Funct.Genomics 8(4):173−91;Gan & Jewett(2014)Biotechnol.J.9(5):641−51。CFPSプラットフォームにより、タンパク質の折り畳みを促進するアクセサリー因子の追加(Ozawa et al(2005)J.Biomol.NMR 32(3):235−41;Endo et al.(2006)Mol.Biotechnol.33(3):199−209;Matsuda et al(2006)J.Struct.Ltd.Genomics 7(2):93−100)、または非天然アミノ酸の組み込み(Albayrak & Swartz(2013)Nucleic Acids Res.41(11):5949−63);White et al.(2013)Methods 60:70−4)が可能となる。また、生細胞で製造できない細胞毒性タンパク質の発現を促進する。Xu et al.(2005)Appl.Biochem.Biotechnol.127(1):53−62;Schwarz et al.(2008)Proteomics 8(19):3933−46;Xun et al.(2009)Protein Expr.Purif.68(1):22−7。
大腸菌(Escherichia coli)無細胞溶解物は広く使用されており、その低コスト、スケーラビリティ、高生産性のため有利である。Zawada et al.(2011)Biotechnol.Bioeng.108(7):1570−8;Caschera & Noireaux(2014)Biochimie 99:162−8.しかしながら、溶解物は細菌から生じるため、非効率的な酸化的折り畳みにより、またシャペロンおよびグリコシル化機構の欠如により、複数のサブドメインを有する複合タンパク質の製造には不適切である。無真核細胞システムは、かかるタンパク質の発現のためにより適しており、翻訳後修飾のほとんどの形態をサポートする。Chang et al.(2005)J.Mol.Biol.353(2):397−409;Zhang & Kaufman(2006)Handb.Exp.Pharmacol.(172):69−91。最も頻繁に使用されるシステムは、小麦胚芽抽出物(WGE)、昆虫細胞抽出物(ICE)、およびウサギ網赤血球溶解物(RLL)に基づく。しかし、これらのシステムは高価であり、抽出物調製は複雑である。Carlson et al.(2012),上記。これにより、Leishmania tarentolae(Mureev et al(2009)Nat.Biotechnol.27(8):747−52)、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞(Brodel et al(2014)Biotechnol.Bioeng.111(1):25−36)、およびSaccharomyces cerevisiae(Hodgman&Jewett(2013)Biotechnol.Bioeng.110(10):2643−54;Gan & Jewett(2014)、上記)に基づくものなどのさらなる真核CFPSの需要が生じた。
無細胞システムを使用するインビトロタンパク質合成は、例えば、そのようなシステムの特徴である短い反応時間および低タンパク質製造量によって制限されてきた。これらの性質は、不良なタンパク質収量および製造されたタンパク質の単位当たりの過剰コストにつながる。
連続流れシステムを使用して、連続的な翻訳反応の使用を通してより長い反応時間が得られ得る。Spirin et al.(1988)Science 242:1162−1164。連続的な反応は、何十時間(または何百時間もの)以上にわたって実施され、連続流れに依存する方法は、必要な反応基質をチャンバーに絶えず供給する必要がある。したがって、これらの反応は、かなりの時間およびリソースの投資を必要とする。さらに、「連続的な」システムでの翻訳は、大量のタンパク質を製造する方向に向けられ、システムは、静的(「バッチ」)インビトロ翻訳反応を実施するために使用されるものと実質的に異なる。静的反応は、小さな反応容量(例えばマイクロリットル)で実行することができ、分取量(例えばミリグラム)のタンパク質を製造する方向には向けられない。こうしたバッチ反応は、1〜2時間で完了し得る。前述の全ての理由から、対応するバッチシステムと比較して反応期間およびタンパク質収量を増加させる一方で、連続反応システムはより高価な試薬を必要とする。
開示
本明細書に開示される一般的な戦略は、無細胞溶解物系反応において細胞小器官を利用して、反応システム内のエネルギー再生を提供する。この戦略は、一部の例では、バイオポリマー(例えば、ポリヌクレオチド、ポリペプチド、多糖、および複合炭水化物)の改善されたインビトロ合成を達成するために有用である。特定の実施形態では、無真核細胞システムにおけるミトコンドリアの存在は、従来のバッチ式および連続反応に対する改善された反応システムをもたらし、これは例えば、エネルギー送達試薬(例えば、クレアチンリン酸および/またはクレアチンキナーゼ)の添加、および/またはアミノ酸補充の必要性を著しく低減または除去する一方、反応期間を長くすることによる。一部の例では、開示された無細胞重合反応は、当該技術分野で現在利用されている従来的反応よりも著しく効率的である。
反応体積中で細胞小器官(例えば、色素体、葉緑体および/またはミトコンドリア)を含む細胞溶解物、ポリマー鋳型およびポリマーのモノマー単位を合わせることを含む、バイオポリマーの合成方法が本明細書に記載される。一部の実施形態では、反応体積は、例えば、クレアチンリン酸/クレアチンキナーゼエネルギー再生システムを含まず、それにより、反応体積にリン酸塩が加えられないか、または最小のリン酸塩が加えられるようになる。特定の実施形態では、細胞小器官はミトコンドリアである。一部の実施形態では、細胞溶解物は、真核細胞溶解物;例えば、植物(例えば、タバコ、トウモロコシおよびダイズ)細胞由来の溶解物である。一部の例における細胞溶解物は、Bright Yellow−2(BY−2)タバコ細胞由来の溶解物である。一部の実施形態では、ポリマー鋳型はDNA分子またはRNA分子である。ポリマー鋳型としてRNAを利用する反応は、翻訳反応を通してモノマーアミノ酸からバイオポリマーとしてポリペプチドを製造する。ポリマー鋳型としてDNAを利用する反応を利用して、インビトロ複製または転写反応を通してモノマーヌクレオチドからバイオポリマーとしてさらなる核酸分子(例えば、DNAおよびRNA)を製造してもよく、または鋳型からの転写に連結させた翻訳反応を通してポリペプチドを製造してもよい。ある特定の実施形態では、バイオポリマーのエネルギーフリー合成の方法は、例えば、限定されないが、細胞小器官、ポリマー鋳型および/またはモノマー単位を反応体積に加えること、および/または反応体積からバイオポリマーを単離することを含み得る。一部の例では、溶解物の成分が、TCAサイクルからの中間体で始まる内因性生合成経路を用いてアミノ酸を生成できるので、反応体積は、タンパク質の発現をサポートするためのアミノ酸補充を必要としない。したがって、一部のこうした例では、細胞小器官を含む溶解物中に存在するアミノ酸は、ポリペプチドの持続した合成をサポートするのに十分であり得る。
開示された細胞溶解物システムは、エネルギー再生システムに不適当と考えられる量で反応体積が外因性クレアチンリン酸および/またはクレアチンキナーゼを含む限り、最小量の外因性クレアチンリン酸、最小量のクレアチンキナーゼまたはその両方を補充されてもよい。例えば、反応体積は、15mM以下、10mM以下、5mM以下、1mM以下、500μM以下、100μM以下、50μM以下、または10μM以下の添加されたクレアチンリン酸を含有し得る。別の例では、反応体積は、100μg/mL以下、50μg/mL以下、10μg/mL以下、5μg/mL以下、1μg/mL以下、0.5μg/mL以下、または0.1μg/mL以下の添加されたクレアチンキナーゼを含有し得る。これらの量は、バイオポリマー合成を維持するため(本明細書に開示される長期の期間にわたりバイオポリマー合成を維持するためなど)に適しておらず、したがって、本明細書に開示される方法およびシステムに従い、色素体、ミトコンドリア、または葉緑体などの細胞小器官を含めることを必要とする。
一部の実施形態は、人工エネルギー再生システムを使用することなく、バイオポリマーを合成するためのシステムを含む。これらの実施形態では、システムは、水性細胞溶解物、(内因性または外因性の)細胞小器官、ポリマー鋳型を含む。特定の実施形態では、システムはポリマーのモノマー単位も含む。インビトロバイオポリマー合成のための従来の無細胞システムはさらに、クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼを含み、これは合成反応が進行するにつれてシステム内のエネルギー再生に使用される。本明細書の実施形態では、システムはクレアチンリン酸を実質的に欠いており、クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼがシステムに添加されない。ある特定の例では、システムはクレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼのいずれも含まない。特定の実施形態では、バイオポリマーの合成のためのシステムは、例えば、限定されないが、pH緩衝剤、マグネシウム(例えば、Mg(CNO)、カリウム(例えば、KCNO)、ヌクレオシド(例えば、ヌクレオチド三リン酸、ヌクレオシド二リン酸、およびヌクレオチド一リン酸)、酵素(例えば、RNAポリメラーゼ)、およびクロラムフェニコールをさらに含んでもよい。特定の実施形態では、グルタミン酸塩以外のアミノ酸はシステムに既に存在するもの(すなわち、溶解物中および細胞小器官中に存在するアミノ酸)に追加されない。一部の例では、前述のシステムは、20時間を超える長期(例えば、約40時間)の活性を示してもよく、加えられるクレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼを含む以外は同一の従来のシステムより有意に多くの(例えば、約60%多くの)標的タンパク質を製造してもよい。
一部の実施形態は、人工エネルギー再生システムを使用することなくバイオポリマーを合成するためのキットを含む。一部の実施形態では、キットは、人工エネルギー再生システムを使用することなくバイオポリマーを合成するためのシステムの成分、およびキットの使用を指示するための書面説明書を含む。例えば、限定されないが、キットは、一つ以上の別々の体積中に配置された、水性細胞溶解物、(内因性または外因性の)細胞小器官、ポリマー鋳型、およびポリマーのモノマー単位のうちの一つ以上と共に、キットの成分の混合を指定する説明書ならびにクレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼを含まない任意の外因性成分を含んでもよい。さらなる例として、キットは、pH緩衝剤、マグネシウム、カリウム、ヌクレオシド、酵素(例えば、RNAポリメラーゼ)、およびクロラムフェニコールのうちの一つ以上をさらに含んでもよい。特定の実施形態によるバイオポリマーの合成のためのキットは、水性細胞溶解物(例えば、葉緑体および/またはミトコンドリアを含む)、ポリマーのモノマー単位(例えば、ヌクレオシド)、および書面説明書を含んでもよい。こうした特定の実施形態では、書面説明書は、ユーザーが、組み合わせにクレアチンリン酸(エネルギー再生のためのクレアチンキナーゼと共に)を加えることなく、これらの成分を目的のポリマー鋳型(例えば、ポリペプチドをコードするDNA分子)および任意の他の試薬に合わせることを指示するものであってもよい。
本明細書の実施形態は、進行中の合成反応におけるエネルギー再生のために活性ミトコンドリアを組み込み、それによって、インビトロ合成の状況内でミトコンドリア機能に影響する化合物またはタンパク質を定量的に調べるために利用され得る。さらに、TCAサイクルの中間体は、アミノ酸の補充が長期のポリペプチド合成に必要ないように、アミノ酸を産生するために合成反応の間に利用され得る。一部の実施形態では、本明細書の方法、システム、およびキットで使用するための細胞溶解物は、合成反応の酸素依存性を減少させる葉緑体を含む。例えば、細胞溶解物は、色素体、葉緑体および/またはミトコンドリアが溶解物中に保持されるように、光合成活性細胞から調製されてもよく、一方で望ましくない細胞材料は除去される。このような特定の例では、本明細書の方法、システム、およびキットは、色素体由来エネルギー、ミトコンドリア由来エネルギー再生、葉緑体由来エネルギー再生、または両方の組み合わせを利用し得る。
前記および他の特徴は、添付図面を参照して進めるいくつもの実施形態の以下の詳細な説明からより明らかになるであろう。
図1は、タバコBY−2細胞溶解物(BYL)を含む人工エネルギー再生を伴わないバイオポリマーの合成のためのシステムの成分および性能を含む。図1(A)は、クレアチンリン酸(CP)およびクレアチンキナーゼ(CK)を含むシステムとの本システムの性能の比較を示す。鋳型としてレポーター遺伝子(すなわち、eYFP)を使用して25℃で52時間、連結された転写翻訳反応を行った。蛍光レポータータンパク質の収量は、485/20nmの励起および528/20nmの吸収フィルターと共に蛍光リーダーを使用して蛍光強度を測定することにより決定した。) 図1(B)は、それぞれアジ化ナトリウム(アジド)およびテレノイルトリフルオロアセトン(TTA)による電子伝達系阻害の阻害のレポーター収量に対する効果を示す。三つの独立した転写翻訳実験から、平均および標準偏差を算出した。 図2は、人工エネルギー再生を使用することなく合成するためのシステムにおけるATP生成の提案される機構を表す図を含む。ミトコンドリアの内側に位置するTCAサイクルを通して、主にNADHの形態の、還元性同等物を製造するためにグルタミン酸を使用する。NADHは酸化的リン酸化の燃料となり、酸素は最終的な電子受容体として機能し、ADPはATPに変換される。 図3は、人工エネルギー再生を使用することなく合成するためのシステムにおけるeYFP収量および微生物増殖に対する異なる抗菌物質の効果を示すチャートを含む。鋳型としてpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを使用して25℃および700rpmで45時間、連結されたBYL反応を実施した。eYFPの収量は、蛍光リーダーを使用して蛍光強度を測定することにより決定した。LBプレート上に0.2μLのBYL反応量をプレーティングした後、それを37℃で16時間インキュベートすることによりコロニー形成単位(CFU)の数を決定した。三つの独立した実験からの平均および標準偏差を算出した。図3(A)は、微生物増殖(CFU/μl)に対する異なる濃度のクロラムフェニコールの影響を含む。 図3(B)は、eYFP収量に対する異なる抗菌物質の影響を、抗菌物質なし(100%)での標準的な反応における収量に対して正規化したものを含む。 図3(C)は、微生物増殖(CFU/μl)に対する異なる抗菌物質の影響を含む。 図3(D)は、eYFPの収量(μg/mL)に対する異なる濃度のクロラムフェニコールの影響を含む。 図4は、人工エネルギー再生を使用することなく合成するためのシステムで使用されるNTP混合物のDoEベースの最適化の視覚的表現を含む。クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼなしでの連結されたBYLシステムにおけるeYFP合成についての応答表面および輪郭プロットが提示されている。反応体積の他の成分が最適濃度で維持された時の、収量に対する異なるNTPおよびグルタミン酸マグネシウムの効果が示されている。プロットは、グルタミン酸マグネシウムとATP(図4(A))、グルタミン酸マグネシウムとGTP(図4(B))、およびグルタミン酸マグネシウムとCTP/UTP(図4(C))の間の有意な相互作用を示す。DNA鋳型としてプラスミドpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを使用して25℃および700rpmで46時間、反応を実施した。蛍光リーダーを使用して蛍光強度を測定することにより、eYFPの収量(相対蛍光単位RFUで提供)を決定した。 図5は、人工エネルギー再生を使用することなく合成するためのシステムにおける生産性に対する溶解物濃度の増加の効果を示す棒グラフを含む。マンニトール(青)を用いて調製したBY−2細胞溶解物との反応を、ソルビトール(緑)を用いて調製した新しい溶解物との反応と比較した。反応は、96ウェルプレート中50μLの体積で行った。薄色のバーは40%(v/v)の溶解物反応を表し、暗色バーは60%(v/v)の溶解物反応を表す。「M」および「S」は、プロトプラスト形成、脱液胞化(evacuolation)、および溶解物調製中の脱液胞化プロトプラストの洗浄のための、それぞれマンニトールおよびソルビトールの使用を指す。DNA鋳型としてpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを使用して25℃および700rpmで48時間、連結反応を実施した。eYFPの収量は、蛍光リーダーを使用して蛍光強度を測定することにより決定した。二つの独立した実験から平均および標準偏差を算出した。日付は、大きな「BYLミックス」の融合日、およびそれぞれの新しい溶解物の調製日をそれぞれ示す。 図6は、人工エネルギー再生なしの連結されたIVTT反応におけるeYFP産生に対するエクトイン、ヒドロキシエクトイン、およびグルコシルグリセリドールの効果を示す棒グラフを含む。0〜8%(v/v)の量のエクトイン、ヒドロキシエクトイン、およびグルコシルグリセロールを試料に添加し、プラスミドpIVX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを鋳型として使用した。96ウェルプレートを使用して、60%(v/v)の溶解物部分50μL中、25℃および500rpmで44時間、制御湿度(70%)で反応を実施した。産生されたeYFPの量は、eYFP標準と比較して、蛍光リーダーの使用により決定した。eYFP標準は、IVTT転写翻訳システムを使用して製造し、Strep−Tactin(登録商標)Sepharose(登録商標)により精製した。次いで、精製されたeYFPの濃度を比色アッセイを使用して決定した。データは、三つの独立した転写翻訳実験の平均および標準偏差を表す。 図7は、人工エネルギー再生なしの連結されたIVTT反応に対するグルコシルグリセロールの影響を示す棒グラフを含む。五つの異なる溶解物バッチにおいてプラスミドpIVX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPから産生されたeYFPの量を比較した。反応は、60%または80%(v/v)の溶解物を用いて、および0.5%(v/v)のグルコシルグリセロール(GG)を用いずにまたは用いて、実施した。反応は、96ウェルプレート中50μLの体積で、25℃および500rpmで48時間、制御湿度(70%)で行った。データは、三つの独立した転写翻訳実験の平均および標準偏差を表す。 図8は、人工エネルギー再生なしの連結されたIVTT反応におけるeYFP産生の経時的なグラフィカル表現を含む。反応は、0.5%(v/v)のグルコシルグリセロール(GG)なしまたはありで、60%または80%(v/v)の溶解物のいずれかを含んだ。プラスミドpIVX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを鋳型として使用し、産生されたeYFPの量(eYFP標準と比較した)を蛍光リーダーの使用により決定した。反応は、50μLの体積で96ウェルプレート中、25℃および500rpmで64時間、Kuhner(商標)シェーカー中の制御湿度(70%)下で実施した。データは、異なる溶解物バッチを使用した三つの独立した転写翻訳実験の平均および標準偏差を表す。 図9は、人工エネルギー再生なしの連結されたIVTT反応におけるeYFPの産生に対する分岐鎖アミノ酸(BCAA)の効果を含む。0〜2mMのBCAAを最後の成分としてプラスミドpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを鋳型として使用する連結されたIVTT反応に加えた。反応は、96ウェルプレート中50μLの体積で、25℃および500rpmで66時間行った。産生されたeYFPの量は、eYFP標準と比較して、蛍光リーダーの使用により決定した。データは、六つの独立した転写翻訳実験の平均および標準偏差を表す。溶解物を振盪フラスコ(SF)または連続的発酵(CF)から調製した。
I.いくつかの実施形態の概要
粗溶解物に基づく無細胞タンパク質合成(CFPS)システムは、インビボシステムに対していくつもの利点を提供し、広範な応用、特に、タンパク質エンジニアリング、バイオ医薬品製造、および研究において有用である。従来の粗溶解物は、翻訳、タンパク質折り畳み、およびエネルギー代謝に必要な成分を含み、そのため、RNA鋳型によりコードされるほぼあらゆるタンパク質が、溶解物にエネルギー貯蔵試薬が補充される限り、アミノ酸、ヌクレオチド、および塩の存在下でその中で合成される。連結された転写/翻訳システムでは、DNA鋳型からのタンパク質の合成を指示するために、RNAポリメラーゼを加えることができる。細胞内合成とは対照的に、CFPSは、より短いプロセス時間、タンパク質加水分解の減少、ならびに毒性タンパク質および定義された位置において特定の化学基または非天然アミノ酸を含有するタンパク質を発現する能力を許容し得る。さらに、反応は直接的に制御および監視され得る。
追加的なエネルギー貯蔵試薬の必要性を排除する、人工エネルギー再生システムなしで細胞溶解物を利用するバイオポリマー合成(例えば、ポリペプチド合成)のための無細胞システムが本明細書に開示される。実施形態において、システムは、酸化的リン酸化による合成反応の間のエネルギー再生のために細胞小器官(例えば、色素体、ミトコンドリアまたは葉緑体)を含む真核細胞溶解物を利用する。ある特定の例では、細胞溶解物は、BY−2細胞に由来するミトコンドリアを含むタバコBY−2溶解物である。酸化的リン酸化中の細胞真核システムでは、電子は、ミトコンドリアの内膜内に位置する電子伝達系を介して電子供与体から酸素のような電子受容体へと移動する。これらの酸化還元反応はエネルギーを放出し、それはADPをATPにリン酸化するために使用される。本明細書の実施形態は、このプロセスからのエネルギーを利用して、溶解物中のバイオポリマーの継続的合成を促進する。したがって、本明細書の実施形態では、電子伝達系の阻害剤および気密条件を使用して、酸化的リン酸化によるエネルギー再生を停止させ、それにより、システムの翻訳作用を終了させることにより合成反応を停止させることができる。一部の実施形態では、システムは、嫌気性または実質的に嫌気性の条件で反応が進行することを可能にすることができる色素体、葉緑体を含む。
従来の無真核細胞システム(例えば、小麦胚芽抽出物、および昆虫細胞抽出物)はミトコンドリアを欠いている。代わりに、これらのシステムは、必要なATP再生を達成してタンパク質の発現をサポートするために、クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼの追加を必要とする。タンパク質の発現をサポートするためにエネルギー再生のために反応混合物に加えられる遊離リン酸(クレアチンリン酸に由来する)の多くの蓄積は、これらのシステムの性能における有意な制限因子である。Ezure et al.(2006)Biotechnol.Prog.22(6):1570−7;Takai et al.(2010)Curr.Pharm.Biotechnol.11:272−8;Brodel et al.(2014)Biotechnol.Bioeng.111(1):25−36;Hodgman&Jewett(2013)、上記;Schoborg et al.(2014)Biotechnol.J.9(5):630−40。システムに導入された遊離リン酸は、マグネシウム(転写および翻訳に必要)に結合し、合成性能の早期の崩壊および低い生成物収量をもたらす。
合成性能を長持ちさせるために、現在利用可能な無真核細胞システムは、透析モードで「連続流れ」反応を使用して、長持ちするエネルギー供給源を提供し、反応区画内のリン酸のような阻害成分を希釈する。バイオポリマー合成のための人工エネルギー再生システムを含まない本明細書に記載のシステムは、阻害成分の産生がより少なく、かつそれら自体のエネルギー再生能力を有するので、反応透析の必要性を低減または排除する。しかしながら、本明細書のシステムは、実施者の裁量によって望ましい場合、連続流れの構成で利用されてもよい。
従来の無真核細胞タンパク質発現システムと比較して、本明細書に記載されるバイオポリマー合成のシステムは一般的に安価であり、またそれらはより長くタンパク質を製造し、結果的にバイオポリマー収量の増加をもたらす。さらに、本明細書のシステムは、例えば、無細胞タンパク質発現のさらなる促進因子として、ミトコンドリアおよび/または葉緑体機能に影響を与える化合物または経路を調査する可能性を提供する。したがって、本明細書の実施形態の基本的に異なるシステムは、いっそうさらなる利益を提供するように最適化され得る。
本明細書に記載されるバイオポリマー合成のための一部のシステムは、微生物の増殖をサポートする能力があり、かかる増殖によって、IVTT反応および/またはタンパク質分解における基質の枯渇が生じ、標的タンパク質の終了が低減されることがある。したがって、一部の実施形態では、システムは、微生物増殖を阻害するクロラムフェニコールを含み、これはこれらの実施形態においてタンパク質の発現を改善し得る。特定の実施形態では、システムは、例えば、10〜500μg/mL(例えば、25〜250μg/mL、50〜200μg/mL、および100〜200μg/mL)の量のクロラムフェニコールを含む。
連結されたインビトロ転写/翻訳(IVTT)反応における特定の量のNTPは、一部の実施形態において驚くべきロバストな発現を提供し得るという発見が本明細書に記載され、該発現は、標準的なNTP量から予測されたものの約20%以上(例えば、18%以上、19%以上、20%以上、21%以上、22%以上、23%以上、24%以上、25%以上、18〜25%多い、19〜23%多い、約20%多い)であり得る。したがって、一部の例では、システムは、約150mMのATP、約40mMのGTP、約20mMのCTP、および約20mMのUTPを含み得る。これらの低減された量のNTPを利用することのさらなる利点は費用の低減であり、これは従来の植物細胞システムよりもGTP(最も高価なNTP)の量が低減されることによる。
また、本明細書のシステムのいくつかの修正は、生成物収量および/または品質にかなりの改善を与え得るという驚くべき発見が本明細書に記載される。例えば、プロトプラスト形成および溶解物調製の脱液胞化工程の間のソルビトールの使用は、タンパク質産生量の増加をもたらし得ると同時に、ソルビトールはマンニトールなどの他の一般的に使用される浸透圧剤よりも安価であるので、システムのコストをさらに低減させ得る。さらなる例として、IVTT反応の溶解物の比率を50〜90%(例えば、55〜85%)(v/v)に増加させることは、いくつかの標的タンパク質のより高い発現を引き起こす。したがって、本明細書において特定の例は、例えば、約60体積%(例えば、58%、59%、60%、61%、および62%)、または約80体積%(例えば、78%、89%、80%、81%、および82%)の量で、プロトプラスト形成および脱液胞化の間にソルビトールを用いて調製された、細胞溶解物の使用を含む。また別の例として、グルコシルグリセロールの添加は、IVTT反応のタンパク質収量を劇的に増加させる。例えば、グルコシルグリセロールのない標準反応と比較して、0,25%〜4%の量のグルコシルグリセロールは最大80%多くのタンパク質をもたらした。いかなる特定の理論にも束縛されるものではないが、グルコシルグリセロールは、推定ではタンパク質および膜の安定性を増加させることによって、反応収量を高める。したがって、一部の実施形態では、システムは0.25〜4%(例えば、0.25〜2%、0.25〜1%、約0.5%、および1.5%)のグルコシルグリセロールを含む。さらなる例として、必要ではないが、分岐アミノ酸(BCAA)BCAAの追加を利用してタンパク質産生量を増加させることができる。したがって、一部の実施形態では、システムは、約0.25〜4mMの量または0.5〜2mMの量(例えば、0.48〜2.2mM、0.5〜2.0mM、0.5〜1mM、および約1mM)のBCAAを含む。
前述の修飾によれば、本明細書の特定の実施形態では、連結されたIVTT反応における標的タンパク質の製造は、最大64時間延長され得る。一例では、80体積%の溶解物および0.5体積%のグルコシルグリセロールとの反応は、ほぼ2.5mg/mLのeYFPをもたらす。
II.略語
AAD−12 アリールオキシアルカノエートジオキシゲナーゼ−12
ADP アデノシン二リン酸
ATP アデノシン三リン酸
BCAA 分岐鎖アミノ酸
BY−2 Bright Yellow−2
BYL BY−2細胞溶解物
CFPS 無細胞タンパク質合成
CFU コロニー形成単位
CHO チャイニーズハムスター卵巣
CL セルラーゼ酵素
CK クレアチンキナーゼ
CP クレアチンリン酸
Cry1F Bacillus thuringiensis Cry1Fデルタ−エンドトキシン
Cry3A B.thuringiensis Cry3Aデルタ−エンドトキシン
CTP シチジン三リン酸
DMSO ジメチルスルホキシド
DOE 実験の設計
DTT ジチオスレイトール
EDTA エチレンジアミン四酢酸
eYFP 強化黄色蛍光タンパク質
FADH フラビンアデニンジヌクレオチド
GTP グアノシン三リン酸
ICE 昆虫細胞抽出物
IMAC 固定化金属親和性クロマトグラフィー
IVTT インビトロ転写および翻訳
NADH ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
NADPH ニコチンアミドアデニンジヌクレオチドリン酸
NEB New England Biolabs
NTP ヌクレオチド三リン酸
PCR ポリメラーゼ連鎖反応
PEG ポリエチレングリコール
RLL ウサギ網赤血球溶解物
SEC サイズ排除クロマトグラフィー
TCAサイクルトリカルボン酸サイクル(「クレブスサイクル」)
TTA テノイルトリフルオロアセトン
UTP ウリジントリリン
UTR 非翻訳領域
WGE 小麦胚芽抽出物
III.用語
単離された:「単離された」生物学的成分(例えば、核酸またはタンパク質)は、当該成分が天然に存在している、生物体の細胞中の他の生物学的成分(すなわち、他の染色体および染色体外のDNAおよびRNA、ならびにタンパク質)から、当該成分において化学的変化または機能的変化に影響を与えながら、実質的に分離され、離れて産生され、または精製されている(例えば、核酸は、染色体中の残りのDNAと当該核酸を繋ぐ化学的結合を破壊することにより、染色体から単離することができる)。「単離されている」核酸分子およびタンパク質としては、標準的な精製法により精製された核酸分子およびタンパク質が挙げられる。またこの用語は、宿主細胞中での組み換え発現により調製された核酸およびタンパク質、ならびに化学的に合成された核酸分子、タンパク質、およびペプチドを包含する。
核酸分子:本明細書において使用される場合、「核酸分子」という用語は、多量体型のヌクレオチドを指す場合があり、RNA、cDNA、ゲノムDNAのセンス鎖とアンチセンス鎖の両方を含み、ならびにそれらの合成型および混合型ポリマーを含む場合がある。ヌクレオチドは、リボヌクレオチド、デオキシリボヌクレオチド、またはいずれかのタイプのヌクレオチドの修飾型を指す場合がある。本明細書で使用される場合、「核酸分子」は、「核酸」および「ポリヌクレオチド」と同義である。別段の言及がない限り、核酸分子は通常、少なくとも10塩基の長さである。前記用語はDNAの一本鎖および二本鎖の形を含む。核酸分子は、天然型、および/または非天然型のヌクレオチド結合によって、共に連結された天然型ヌクレオチドおよび修飾ヌクレオチドのいずれか、または両方を含んでもよい。
核酸分子は、当業者によって容易に理解されるように、化学的または生化学的に修飾されてもよく、あるいは非天然または誘導体化ヌクレオチド塩基を含んでもよい。かかる修飾としては、例えば、標識、メチル化、一つ以上の天然型ヌクレオチドとアナログの置換、ヌクレオチド間修飾(例えば、非荷電結合:例えばホスホン酸メチル、リン酸トリエステル、ホスホロアミダート、およびカルバマート;荷電結合:例えばホスホロチオアートおよびホスホロジチオアート;ペンデント部分(pendent moieties):例えば、ペプチド;インターカレーター:例えば、アクリジン、ソラレンなど;キレーター;アルキレーター;および修飾結合:例えば、アルファアノマー核酸など)が挙げられる。また、「核酸分子」という用語は、一本鎖、二本鎖、部分的に二重、三重、ヘアピン型、環状および南京錠型立体配座を含む位相幾何学立体配座も含む。
外因性: 「外因性」という用語は、本明細書の細胞溶解物に加えられる成分(例えば、色素体、ミトコンドリアまたはクロロプラスト)に適用される場合、その細胞溶解物とは異なる起源を有するこうした成分を意味する。例えば、その細胞溶解物を起源としない該溶解物に加えられる色素体、ミトコンドリア、または葉緑体は、該細胞溶解物にとって外因性である。外因性という用語は、いずれの場合にもその細胞溶解物自体に由来しない限り、細胞溶解物を派生させるために使用される細胞種と同じ細胞種または異なる細胞種(例えば、異なる組織または異なる種由来の細胞)からの色素体、ミトコンドリア、または葉緑体などの細胞小器官に適用されてもよい。さらに、外因性という用語は、本明細書に開示されるシステムの細胞溶解物で使用される色素体、ミトコンドリア、または葉緑体といった細胞小器官に別個にまたは追加で加えられるエネルギー再生システムの成分(例えば、クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼ)を意味するために本明細書において使用され得る。
IV.バイオポリマー合成システム
本開示は、人工再生システムを使用することなく、バイオポリマーを合成するためのシステムを提供する。本明細書のシステムには、酸化的リン酸化が活性化され、エネルギー貯蔵試薬の非存在下での収量の増加を提供する、バイオポリマーの強化されたインビトロ合成を達成する組成物および方法が含まれる。収量の改善は、反応IVTT成分の組み合わせによって得られ、これは実施者によって組み立てられて混合されてもよく、または予混合された成分、混合されていない成分、もしくはこれら二つの組み合わせとしてキットに提供されてもよい。実施者は、自分が提供する成分と組み合わせて、キットの成分の一部またはすべてを利用してもよい;例えば、一部の実施形態では、キットは、DNAまたはRNA鋳型以外のタンパク質合成のためのシステムのすべての成分を含み、DNAまたはRNA鋳型は選択されたタンパク質を合成するために実施者によって提供される。システムのすべての成分が、適切な環境条件下で反応体積中で混合されると、反応が開始され、明細書に記載される重要な変更と共に、一般的に従来のインビトロ無細胞合成反応にしたがって進行する。反応は、成分(例えば、NTPおよびアミノ酸)の一つ以上が反応体積中で使い果たされるまで、またはシステム内のエネルギー再生プロセスを終了するために環境条件を調節することによって停止されるまで進行が許容され得る。
本明細書に開示される方法および組成物は、真核細胞の細胞質環境を模倣し、先行技術の方法に対してタンパク質の製造およびタンパク質の折り畳みにおいて有意な改善をもたらす。例えば、細胞小器官の存在に起因して、酸化的リン酸化は反応体積で活性であるため、本明細書のシステムは、合成阻害に伴う二次エネルギー源の必要性を低減または完全に回避する。
本明細書の実施形態のシステムは、例えば、DNAの増幅、DNAまたはRNA鋳型からのRNAの転写、ポリペプチドへのRNAの翻訳、および単糖からの複合炭水化物の合成を含む、バイオポリマーの製造/複製に有用である。強化された合成は、一部の例では、システムで合成されるバイオポリマーの合計量または相対量の増加;単位時間当たりに合成されるバイオポリマーの合計量または相対量の増加;合成される生物学的活性バイオポリマー(例えば、適切に折り畳まれたかつ/または翻訳後修飾されたタンパク質)の合計量または相対量の増加;合成される可溶性バイオポリマーの合計量または相対量の増加、ならびに所与の量のバイオポリマーを合成するために必要な時間および/または費用の支出の低減のうちの一つ以上を含む。
本明細書の特定の実施形態は、mRNAの翻訳を達成してポリペプチドを産生させ、この翻訳はDNA鋳型からのmRNAのインビトロ合成に連結されてもよい。こうした無細胞システムは、mRNAの翻訳に必要なすべての因子、例えば、リボソーム、アミノ酸、tRNA、アミノアシル合成酵素、伸長因子、開始因子、およびリボソームリサイクル因子を含有する。本明細書の例では、このような無細胞システムは、真核細胞、例えば植物細胞(例えば、タバコBY−2細胞)から本明細書に記載される方法で調製された細胞溶解物を含む。
細胞溶解物
本明細書の実施形態は、任意の真核細胞溶解物を利用するように適合され得る。無真核細胞溶解物は、様々な翻訳後プロセシング活性を保持する。真核細胞溶解物はまた、多種多様なウイルスおよび他の原核性RNA、ならびに真核性mRNAのインビトロでの翻訳をサポートする。細胞溶解物が由来する生物体のコドン用法から逸脱するコドン用法を有する鋳型mRNAは、例えば、該生物体中の希少なtRNAおよび/またはアミノ酸をシステムに補充することによって、効率的に使用され得る。本明細書の特定の例は、タバコBY−2細胞溶解物を利用し、これはバッチ培養および攪拌タンク発酵槽の両方における懸濁培養において簡便かつコスト効果の高い発酵を提供することが示され、また充分に確立された遺伝子改変ツールに適している。
本明細書の実施形態による細胞溶解物の調製は、特に、細胞壁(植物細胞の場合)および細胞膜の破壊/除去、分解液胞の除去、および内因性mRNAの除去を含み得る。
細胞壁および膜は、一部の実施形態では、例えば、限定されないが、機械的破壊、液体均質化、酵素消化、高周波音波、減圧、凍結/解凍サイクル、および手動粉砕などの技術によって破壊され得る。本明細書の特定の実施形態では、植物細胞溶解物は、一つ以上の細胞壁消化酵素(例えば、Cellulase Onozuka RS(商標)、Pectolyase Y−23(商標)、Macerozyme R−10)、および液体酵素(例えば、Rohament CL(商標)、Rohament PL(商標)、およびRohapect UF(商標);これらは元々、果物ジュースおよび抽出物の製造を意図していた)を使用して細胞壁を消化することにより調製される。Rohament CL(商標)はセルラーゼ濃縮物を含み、Rohament PL(商標)はペクチナーゼ濃縮物であり、Rohapect UF(商標)は、専用のペクチナーゼおよびアラバナーゼを含む酵素複合体を含有する。これらの酵素の組み合わせの使用により、従来の方法と比較して、100倍を超えてプロトプラスト形成のコストが低減された。
また、溶解物の調製の間、あらゆる分解液胞は除去され得る。こうした液胞は、ポリペプチドおよびmRNAの合成を妨げるプロテアーゼおよびリボヌクレアーゼなどの望ましくない酵素を含有する。本明細書の一部の実施形態では、分解液胞は、Percoll勾配またはその他の任意の密度勾配において遠心分離により除去される。液胞は低密度を有し、したがってプロトプラストから分離されることができ、高密度脱液胞化プロトプラストが得られる。一部の例では、段階的なスクロース密度勾配を脱液胞化のために利用してもよく、ここでプロトプラストはPercollフリーの上層に直接塗布される。遠心分離後、脱液胞化プロトプラストは、例えば、40%〜70%のPercoll層(使用される勾配に応じて)の間の界面で濃縮された液体から分離されるが、分離された低密度の液胞は低密度の勾配にあり、例えば、上層上に浮遊する。
次いで、不安定な細胞成分を酸化から保護するために、脱液胞化プロトプラストを洗浄し、その後、Dounce組織粉砕機または窒素分解によって破壊してもよい。核および破壊されていない細胞の除去後、18Sおよび28SリボソームRNAの完全性が主に影響を受けないまま、溶解物を処理して内因性mRNAを破壊し、バックグラウンドの翻訳を最小化し得る。本明細書の特定の例において、ヌクレアーゼS7が使用される。
鋳型
本明細書のシステムでバイオポリマーの合成を指示するために、保存された情報がポリマーに変換されるように、反応に鋳型が存在する必要がある。無細胞タンパク質合成のための鋳型は、対象の任意のポリヌクレオチド(DNA)またはポリペプチド(DNAおよび/またはmRNA)をコードするmRNAまたはDNAのいずれかであり得る。連結された転写/翻訳システムは、認識可能なプロモーターを用いてDNA鋳型からmRNAを連続的に生成する。内因性RNAポリメラーゼが使用されてもよく、または外因性RNAポリメラーゼ(例えば、ファージRNAポリメラーゼ、一般的にT7またはSP6)が、反応混合物に直接添加されてもよい。別の方法として、mRNAは、RNA依存性RNAポリメラーゼであるQBレプリカ―ぜの鋳型にメッセージを挿入することによって継続的に増幅されてもよい。一部の実施形態では、複数のクローニング領域の一端にポリA配列を含有するベクターをIVTT反応の鋳型として使用する。例えば、このようなベクターは、複数のクローニング領域の反対側末端にSP6、T7、またはT3 RNAポリメラーゼプロモーターを含有してもよく、その結果、ベクターへのクローニングは、5’末端および3’末端におけるポリA配列のRNAポリメラーゼプロモーターに隣接する遺伝子を産生する。mRNAが鋳型として利用される実施形態では、精製されたmRNAは、反応混合物に添加される前に化学修飾によって安定化され得る。
本明細書の実施形態による鋳型として利用されるDNAまたはmRNA配列のヌクレオチド配列は、より高いレベルの発現を達成するように最適化され得る。いくつかのmRNA構造特性は、コード配列の5’末端および3’末端における非翻訳領域(UTR)を含む翻訳効率に影響を及ぼす。5’UTRの構造は、翻訳開始、終結、およびmRNA安定性に影響を与える。翻訳開始の速度制限ステップの一つは、43S開始前複合体へのmRNAの結合である。翻訳機構は、リーダーシーケンスにおける5’キャップまたは翻訳エンハンサーによってリクルートされる。本明細書のある特定の実施形態では、鋳型mRNAは、PCITE2aにおける5’UTR(これは脳心筋炎ウイルス(EMCV)に由来する内部リボソーム進入部位(IRES)を含有する);ベクターpF3Aにおけるオオムギ黄萎ウイルス(BYDV)の配列;バキュロウイルスポリヘドリン遺伝子の5’UTR;ポリA配列を含む合成の3’UTR;およびARC−1配列エレメントを含む5’UTR(これは内部18S rRNAセグメントに相補的であり、40Sリボソームサブユニットへの結合を促進する場合がある);タバコモザイクウイルス(TMV)5’−UTR(オメガ配列)(最初のGUAトリプレットの上流にGAAAGAを付加することによって改善され得る)を含む群から選択される非翻訳領域を含有してもよい。
一部の実施形態では、例えば、キャップアナログm7G[5’]ppp[5’]Gの存在下で、キャップされたmRNAをインビトロで製造するためにDNA分子が使用される。非組み込みヌクレオチドおよびキャップアナログは、ゲル濾過によって除去されてもよく、その後、ポリペプチド合成の鋳型としての役割を果たす、精製されたmRNAが本明細書に記載される無細胞システムに導入され得る。
モノマー
連結されたIVTT反応において、リボヌクレオチド三リン酸(ATP、GTP、CTP、UTP)およびアミノ酸は、所望のバイオポリマーを合成するために使用されるモノマー単位としてシステムで必要とされる。本明細書の一部の実施形態では、システムは、従来のエネルギー再生システムを伴う同等のシステムに対して、一つ以上のNTPのレベルが低減されて作動する。これらの実施形態では、開示されたシステムは、システムの作動に対する費用を有利に減少させる。ある特定の実施形態では、開示されたシステムは、2〜10mM、例えば4〜8mM、または5〜7mMのATPの最終ATP濃度で作動する。ある特定の実施形態では、開示されたシステムは、0.8〜2.5mM、例えば1〜2mMまたは1.4〜1.8mMのGTPの最終GTP濃度で作動する。ある特定の実施形態では、開示されたシステムは、0.4〜2.4mM、例えば0.5〜2mMまたは0.6〜1.0mMのCTPの最終CTP濃度で作動する。また、ある特定の実施形態では、開示されたシステムは、0.4〜2.4mM、例えば0.5〜2mMまたは0.6〜1.0mMのUTPの最終UTP濃度で作動する。例えば、システムは、6mMまたは約6mMのATP、1.6mMまたは約1.6mMのGTP、0.8mMまたは約0.8mMのCTP、および0.8mMまたは約0.8mMのUTPの最終NTP濃度で作動し得る。特定の例において、合成反応は、約150mMのATP、約40mMのGTP、約20mMのCTP、および約20mMのUTPを含有する低濃度NTP混合物で補充され、NTPの最終濃度を提供するのに十分な量でミックスがシステムに追加される。アミノ酸はまた、例えば、最終濃度20〜500pMの最終濃度まで加えられ得る。放射性標識アミノ酸(例えば、35SメチオニンおよびHロイシンを連結反応で使用し、その後、対応するアミノ酸をアミノ酸混合物から外してもよい。

塩の濃度は、本明細書の実施形態によるシステムで制御される。例えば、システムは、例えば、限定されないが、カリウム、マグネシウム、アンモニウム、および(例えば、酢酸または硫酸の)マンガンなどの他の生物学的に関連する塩などの一つ以上の塩を加えられてもよい。こうした塩のうちの一つ以上は、カウンター陰イオンとしてアミノ酸を有してもよい。合成反応の機能に関してイオン種の間に相互依存性がある。反応媒体内の特定のイオンの濃度を変化させたとき、それに応じて別のイオンの濃度が変化し得る。例えば、追加された塩の濃度は、ヌクレオチドなどの他の成分の変化にしたがって同時に制御され得る。さらに、連続流反応器内の成分の濃度レベルは、経時的に変化し得る。
マグネシウム
マグネシウムは、リボソームの組み立てを強化し、組み立てられたリボソームの安定性を強化するため、タンパク質の翻訳に重要である。マグネシウムはまた、ポリメラーゼ結合の促進において役割を果たすようである。本明細書の実施形態では、細胞溶解物のマグネシウム濃度は、追加的なマグネシウム化合物によって調節され得る。一部の実施形態では、さらなるマグネシウム化合物は塩であり、例えば、塩化マグネシウム、酢酸マグネシウム、グルタミン酸マグネシウムである。転写および翻訳を連結するために、十分な量のマグネシウム塩を溶解物に添加して、最終マグネシウム濃度を、RNAがDNAから転写され、かつRNAがタンパク質に翻訳されるレベルまで上昇させてもよい。一部の例では、最終的なマグネシウム濃度は1〜20mMに調整され得る。例えば、最終マグネシウム濃度は、使用される溶解物に応じて、5〜15mM、7〜13mM、2.5mM〜5.5mM、2.5mM〜3.5mM、2.6mM〜3.0mM、3.0mM〜5.25mM、または4.0mM〜4.75mMであり得る。
本明細書のシステムにおけるマグネシウム濃度の精密な制御を提供するために、溶解物のマグネシウムレベルは、余分なマグネシウムを添加する前に、マグネシウムアッセイの使用を通して直接測定されてもよい。例えば、Lancer「Magnesium Rapid Star Diagnostic Kit」(Oxford LabWareDivision(商標)、Sherwood Medical Co.、St.Louis、MO)は、生体液のマグネシウムレベルを正確に測定できる一つのアッセイである。溶解物の所与のバッチについてマグネシウムイオン濃度が既知であると、追加的なマグネシウムを追加して、溶解物のマグネシウム濃度を望ましい範囲内にもたらし得る。
上述のように、反応の最終マグネシウム濃度は、他の条件および考慮事項によって影響を受ける。したがって、例えば、リボヌクレオチド三リン酸濃度が上昇すると、リボヌクレオチド三リン酸は溶液中のマグネシウムと会合またはキレート化する傾向があるので、最適なマグネシウム濃度は同時に増加する。したがって、リボヌクレオチド三リン酸濃度が増加すると、追加的なマグネシウムも反応に一般的に加えられる。マグネシウムの最適濃度も細胞溶解物のタイプによって変化する。追加する必要があるマグネシウムの量はまた、反応混合物で使用される溶解物の濃度によって変化し、溶解物の濃度を増加させると溶解物自体からのマグネシウムの寄与が増加する。
カリウム
一般的に、望ましいレベルのバイオポリマー合成を達成するために、カリウムもシステムに加えられる。カリウム(例えば、酢酸カリウムおよびグルタミン酸カリウム)は、一般的に5〜250mM(例えば、5〜100mM、5〜75mM、5〜50mM、および5〜30)の濃度で存在する。特定の例では、カリウム濃度は10〜20mMであってもよく、さらに具体的には約20mMであってもよい。マグネシウムの場合と同様に、内因性の細胞溶解物成分の存在により、最終的なカリウム濃度はわずかに変化し得る。
追加の成分
合成反応の効率または安定性を改善するために必要に応じて、追加的な成分も特定の実施形態ではシステムに追加されてもよい。絶対的に必要ではないが、連結された転写および翻訳反応への一つの一般的な追加は、例えば、鎖伸長の効率を刺激するのに十分な量のポリアミンである。ポリアミンは、最適なマグネシウムレベルにも影響を与え、翻訳反応のための効果的なマグネシウム濃度を少し低下させることが知られている。したがって、ポリアミンは、一部のレベルでマグネシウムを置換することができ、特定の例では連結された転写および翻訳のための最適なマグネシウムレベルの低下を許容し得る。
望ましくない酵素活性に対する代謝阻害剤を反応混合物に加えてもよい。あるいは、望ましくない活性に関与する酵素または因子は、抽出物から直接除去されてもよく、または望ましくない酵素をコードする遺伝子は、不活性化または染色体から欠失されてもよい。
宿主生物体(Muller&Blobel(1984)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.81:7421−5を参照)から精製された、または合成の小胞もシステムに加えられ得る。これらは、タンパク質合成および折り畳みを強化するために使用され得る。例えば、本明細書に記載されるシステムは、膜タンパク質を活性化するため;例えば、タンパク質を挿入もしくは移動させるか、または他の化合物を移動させるために、無細胞反応のために使用されてもよく、またこれらのプロセスは、所望の膜タンパク質を含有する小胞を加えることによって特定の実施形態で支援されてもよい。
上記成分に加えて、その他の材料(タンパク質合成に特に利用されるもの)を本明細書に記載されるシステムに加えることができる。このような材料には、例えば、限定されないが、他の塩、フォリン酸、環状AMP、タンパク質または核酸分解酵素の阻害剤、RNasin、タンパク質合成の阻害剤または調節剤、酸化/還元電位の調整剤、DTT、クロラムフェニコール、非変性界面活性剤、緩衝剤成分(反応pHを安定化させるために溶液中で使用され得るものなど)、PEG、Triton X−100、スペルミン、スペルミジン、およびプトレシンなどが含まれ得る。
一部の実施形態は、人工再生システムを使用することなくバイオポリマーを合成するためのシステムの成分を含むキットを含む。特定の実施形態では、キットは細胞溶解物を含み得る。代替的に、キットは、細胞溶解物の調製のための細胞を得るために培養および増幅させるための細胞を含み得る。特定の実施形態では、キットは、塩、NTP、酵素(例えば、ポリメラーゼおよびヌクレアーゼ)、酵素阻害剤(例えば、RNasin)、鋳型、およびその他の添加剤(例えば、クロラムフェニコール)のうちの一つ以上を含み得る。特定の例において、キットは、システム内の鋳型として使用するために、目的遺伝子をクローニングすることができるネイキッドベクターを含み得る。細胞溶解物を含むキットでは、溶解物は標準であってもよく、またはその塩濃度の調整がすでに製造中に行われているタイプであってもよく、または追加的に、連結された転写および翻訳のために必要な成分、試薬もしくは緩衝液のうちの一つ以上が含まれているタイプであってもよい。特定の例では、キットは鋳型を含まない場合があるが、代わりに鋳型の提供をユーザーに依存してもよい。キットは、合成反応を実施するために、キットの成分を利用する方法をユーザーに知らせるために、一組の説明書を含むか、または説明を含むウェブサイトへのリンクを含んでもよい。
V.バイオポリマー合成方法
上述のシステムは、一つ以上のバイオポリマーのインビトロ合成方法において使用されてもよい。インビトロ合成とは、生物学的抽出物および/または定義された試薬を含む反応混合物中の生物学的マクロ分子の無細胞合成を指す。本明細書のシステムを使用して、これらの構成が当技術分野で公知であるように、バッチ、連続フロー、および半連続フロー構成で無細胞合成反応を実施し得る。一部の実施形態では、バッチ培養細胞を使用してもよい。一部の実施形態では、再現性のある均質な細胞材料の供給を確実にするために、細胞を攪拌タンク発酵槽内で連続的に生育させることができる。
静的IVTT反応の使用と、連続またはフロースルー反応との間で違いがあり、これは一部の用途で考慮され得るが、他の用途ではそうではない。例えば、連続システムは一般的にタンパク質の大規模産業製造に使用されるが、静的システム反応は小規模のインビトロ翻訳(例えば、研究の状況)により適する。連続的な翻訳は実施することがはるかに高価であり、機器への投資、ならびに多くの量の試薬を必要とする。特に、連続真核生物反応作業を行うために使用されるRNAポリメラーゼのレベルは、単純な研究用途に対して禁止されている場合がある(すなわち、20,000〜30,000U/反応)。さらに、連続反応は、比較的大容量で実施されるように設計されているが、静的反応は、典型的には100μl以下のオーダーに過ぎないため、追加的な装置は必要なく、また少量の試薬のみを必要とする。
本明細書のシステムは、大規模反応器、小規模反応器を利用することができ、または複数の同時合成を実施するために多重系とされてもよい。連続反応は、試薬の流れを導入するために供給機構を使用し、プロセスの一部として最終生成物を単離してもよい。連続反応および静的反応の両方では、活性合成の期間を延長するために追加的な試薬を導入し得る。反応器は、バッチ、拡張バッチ、半バッチ、半連続型、流加バッチ、および連続的などの任意のモードで実行されてもよく、そのモードは適用目的にしたがって選択されてもよい。
反応は、これも用途および使用される装置に応じて、任意の容量で行われ得る。例えば、小規模反応では、反応容量は、1〜15μl、少なくとも15μl、少なくとも50μl、少なくとも100μl、少なくとも0.5mL、または少なくとも1mLであるが、10mL未満であってもよい。原則として、十分な酸素(またはその他の電子受容体)が供給される限り、反応は任意のスケールで行われ得る。最大量の生成物の製造のために、産業バイオリアクターを使用してもよい。
本明細書の方法は、合成されたバイオポリマーを単離するための手段、例えばタンパク質単離手段を利用してもよい。一部の実施形態では、連続操作モードで動作し、反応器からの生成物出力は膜を通して流れ、タンパク質単離手段に入る。半連続操作モードでは、膜の外側または外部表面は、所定の順序で周期的に変更される所定の溶液と接触する。これらの溶液は、アミノ酸およびヌクレオチドなどの基質を含み得る。この時点で、反応器は、透析または透析ろ過バッチまたは流加バッチモードで動作する。フィード溶液は、同じ膜または別個の注射ユニットを通して反応器に供給されてもよい。合成されたタンパク質は反応器内に蓄積され、次いでシステム操作の完了後にタンパク質精製の通常方法にしたがって単離され、精製される。
試薬の流れがある場合、液体流の方向は膜に垂直および/または接線方向とすることができる。接線流は、ATPリサイクリングおよび膜の詰まりの防止に有効であり、垂直流に重ねられ得る。膜に垂直な流れは、陽圧ポンプまたは真空吸引ポンプによって生じるか、または影響を受け得る。膜の外部表面と接触する溶液は周期的に変更されてもよく、膜に対して定常的な接線流としてもよい。さらに、反応器は、適切な撹拌手段によって内部または外部で攪拌されてもよい。
反応器内のタンパク質合成の間、望ましいタンパク質を選択的に単離するためのタンパク質単離手段は、抗体分子または合成された所望のタンパク質を吸着するための成分を固定化された他の分子で被覆された粒子を充填したユニットおよび適切なサイズの細孔を有する膜を含み得る。タンパク質単離手段は、交互使用のための二つのカラムを含むことが好ましい。
翻訳反応で生成されるタンパク質の量は、様々な様式で測定することができる。一つの方法は、翻訳されている特定のタンパク質の活性を測定するアッセイの利用可能性に依存する。タンパク質活性を測定するためのアッセイの例は、ルシフェラーゼアッセイシステム、またはクロラムフェニコールアセチルトランスフェラーゼアッセイシステムである。これらのアッセイは、翻訳反応から産生される機能的に活性なタンパク質の量を測定する。活性アッセイは、不適切なタンパク質折り畳みまたはタンパク質活性に必要なその他の翻訳後修飾の欠如に起因して不活性の全長タンパク質を測定しない。代替的に、特定のタンパク質は、キャピラリー電気泳動によってそのサイズにしたがって検出され得る。
連結されたインビトロ転写および翻訳反応において製造されたタンパク質の量を測定する別の方法は、35S−メチオニン、H−ロイシン、またはl4C−ロイシンなどの放射性標識アミノ酸の既知量を使用して反応を実施した後、新規翻訳タンパク質に組み込まれた放射性標識アミノ酸の量を測定する。組み込みアッセイは、切断タンパク質産物を含む、反応で生成されたすべてのタンパク質中の放射性標識アミノ酸の量を測定することになる。放射線標識タンパク質はタンパク質ゲル上でさらに分離されてもよく、オートラジオグラフィーによって生成物が適切なサイズであること、および二次タンパク質生成物が製造されていないことが確認されてもよい。
実施例1:材料および方法
植物材料
タバコ細胞(Nicotiana tabacum L.cv.Bright Yellow 2、BY−2)を26℃の暗所で20〜25%の充填細胞容量を維持しながら5L発酵槽(Type 100e、Applicon(商標)Biotechnology、AC Schiedam、オランダ)または振盪フラスコ中で培養した。3%(w/v)のスクロース、1mg/Lのチアミン−HCl、0.2mg/Lの2,4ジクロロフェノキシ酢酸、100mg/Lのミオイノシトール、250mg/Lのオルトリン酸二水素カリウム、およびPluronic(登録商標)L−61消泡剤(BASF(商標)、Mount Olive、NJ、USA)を添加したMurashige−Skoog液体培地(MurashigeおよびSkoog基底塩混合物)を使用した。
BY−2細胞溶解物の調製
20〜25%の一定の充填細胞体積での発酵の指数増殖期の間に、BY−2細胞を採取した。プロトプラストを調製するために、発酵培地中で直接的に3%(v/v)のRohament(登録商標)CLおよび0.2%(v/v)のRohapect(登録商標)UF(ペクチナーゼおよびアラバナーゼ)(AB Enzyme(商標)、Darmstadt、Germany)で処理した。360mMのマンニトールを添加することにより容量オスモル濃度を調節した。
生じたプロトプラストを脱液胞化するために、50mLのポリプロピレン管(Greiner Bio−One(商標)、Frickenhausen、ドイツ)中の0.7Mのマンニトール、20mMのMgClおよび5mMのPIPES−KOH(pH 7.0)中に(底部から上部まで)70%(v/v、3ml)、40%(v/v、5ml)、30%(v/v、3ml)、15%(v/v、3ml)および0%(3ml)のPercoll(GE(商標)Healthcare、Munich、ドイツ)を含有する不連続Percoll勾配上にプロトプラストを層状とした。スインギング−バケットローター(JS−5.3、Beckmann−Coulter(商標)、Krefeld Germany)中25℃で1時間、6800×gで遠心分離後、40〜70%(v/v)のPercoll溶液境界面から脱液胞化プロトプラストを回収し、50mL当たり1錠のComplete EDTA−free Protease Inhibitor Mixture(Roche Diagnostics(商標)、Mannheim、ドイツ)を添加した3〜3.5容量のTR緩衝液(30mMのHEPES−KOH(pH 7.4)、60mMのグルタミン酸カリウム、0.5mMのグルタミン酸マグネシウム、2mMのDTT)に懸濁させた。
次いで、プロトプラストを、Dounce(商標)ホモジナイザー(Braun(商標)、Melsungen、ドイツ)の15ストロークを使用して氷上で破壊し、核および非破壊細胞を、500×gで10分間4℃で遠心分離することによって除去した。次いで上清を1mLのアリコート中、−80℃で凍結した。凍結の前に任意に、上清に0.5mMのCaClを補充し、20℃で15分間、75U/mLのヌクレアーゼS7(Roche Diagnostics)で処理し、その後、Ca2+イオンのキレート剤として2mMのEGTAを補充してヌクレアーゼを不活性化させることができる。
プラスミド構築物
ベクターpIVEX_GAAAGA_Omega_eYFP−Hisは、T7プロモーターおよび最初の6ヌクレオチドとしてGAAAGAを有するタバコモザイクウイルス5’オメガリーダー配列を含有するアニールしたオリゴヌクレオチドプライマー1(配列番号1)およびオリゴヌクレオチドプライマー2(配列番号2)をNspI部位およびNcoI部位を使用してpIVEX1.3_eYFP−His(Dr.Stefan Kubick(Fraunhofer Institute for Cell Therapy and Immunology IZI、Potsdam−Golm、ドイツ)の好意により提供された)に挿入することにより調製した。N末端ストレプトアビジンアフィニティタグを含有するベクターpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPについて、オリゴヌクレオチドプライマー3(配列番号3)およびオリゴヌクレオチドプライマー4(配列番号4)と共に鋳型としてpIX3.0_Strep−eYFP(Dr.Stefan Kubickの好意により提供された)を使用するPCRによりStrep−eYFP配列を増幅した。PCR産物をPciIおよびAcc65Iで消化し、pIVEX_GAAAGA_Omega_eYFP−HisのNcoI部位およびAcc65I部位に挿入した。
21333、22807、AAD12、Cry2A、Cry3A、Trap8VIP3A、VIP3A、Cry6A、17912、およびCry1Fを有するpIVEXベクターは、オリゴヌクレオチドプライマー5〜24(配列番号5〜24)を使用する遺伝子のPCR増幅、およびGibsonアセンブリー(NEB(商標)、Frankfurt、ドイツ)によりNcoIおよびKpnIで切断したpIVEX_GAAAGA_Omega_eYFP−HisへのPCR産物のその後の組込みにより作製した。
連結された転写翻訳無細胞タンパク質合成
連結された転写翻訳反応を、25℃および700rpmで40〜52時間、サーモミキサー(Ditabis(商標)、Pforheim、ドイツによるHLC)中で50μLのアリコートにおいて実施した。クレアチンリン酸とクレアチンキナーゼとの反応液は、40%(v/v)のタバコBY−2細胞溶解物(BYL)、20mMのHEPES−KOH pH 7.8、10mMのグルタミン酸マグネシウム、10mMのグルタミン酸カリウム、3mMのATP、1.2mMのGTP、1.2mMのCTP、1.2mMのUTP、100μg/mLのクロラムフェニコール、50ng/μLのT7 RNAポリメラーゼ、80ng/μlのプラスミド、30mMのクレアチンリン酸および100μg/mlのクレアチンキナーゼを含んだ。クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼを含まない反応液は、40%(v/v)のBYL、20mMのHEPES−KOH(pH 7.8)、9mMのグルタミン酸マグネシウム、20mMのグルタミン酸カリウム、4mMのATP、1.6mMのGTP、1.6mMのCTP、1.6mMのUTP、100μg/mLのクロラムフェニコール、30ng/μLのT7 RNAポメラ―ぜ、および40ng/μLのプラスミドを含んだ。
生成物の分析
eYFPからの蛍光シグナルは、485/20nmの励起および528/20nmの吸収フィルターを用いて、Synergy(商標)HT Multi−Mode Microplate Reader(Biotek(商標)、Bad Friedrichshall、ドイツ)を使用して定量化した。eYFPの量は、DNA鋳型なしのBYL翻訳反応におけるeYFPの異なる濃度に基づいて標準曲線を生成することによって決定した。eYFP標準は、大腸菌に基づく社内でのインビトロ翻訳システム(Zawada(2012)Methods Mol.Biol.805:31−41)を使用して製造し、固定化金属親和性クロマトグラフィー(IMAC)およびサイズ排除クロマトグラフィー(SEC)によって精製した。精製されたeYFPの濃度は、比色アッセイを使用して決定した。Bradford(1976)Anal.Biochem.72: 248−54.
標的タンパク質の残基特異的標識化
標的タンパク質をアミノ酸選択的に蛍光標識するために、FluoroTect(商標)GreenLys in vitro Translation Labeling System(Promega(商標)、Mannheim、ドイツ)を製造業者の指示にしたがって使用した。本製品は、蛍光団BODIPY(登録商標)−FLで標識された修飾電荷リシンtRNAを含有する。このシステムを使用すると、蛍光標識されたリシン残基は、翻訳中に複数の部位において新生タンパク質に組み込まれる。
JC−1染色
BYL中のミトコンドリアの存在は、親油性カチオン性プローブ5,6−ジクロロ−2−[3−(5,6−ジクロロ−1,3−ジエチル−1,3−ジヒドロ−2H−ベンズイミダゾール−2−イリデン)−1−プロペニル]−1,3−ジエチル−ヨウ化物(JC−1、Thermo Scientific(商標)、Waltham、MA、USA)を使用して実証した。生細胞中では、JC−1は、脱分極したミトコンドリア膜電位で緑色蛍光モノマー(490nm励起/530nm放射)として存在する。正常および過分極のミトコンドリア膜電位では、JC−1はミトコンドリア内で濃縮され、J凝集体を形成し、これは放射を530nmから590nmにシフトさせる。細胞ミトコンドリアは、増加していく負のミトコンドリア膜電位と共にJ凝集体の増加的により高度になっていく赤色蛍光(590nm)を示す。Nuydens et al.(1999)J.Neurosci.Methods 92:153−9;Reers et al.(1995)Methods Enzymol.260:406−17;Salvioli et al.(1997)FEBS Lett.411:77−82.
BYL染色のために、JC−1を5mg/mLの濃度でDMSO中に溶解した。JC−1ストック溶液を、最終濃度5μg/mLで10分以内にミトコンドリアを染色するために1:1000希釈で使用した。
酸化的リン酸化の阻害剤を用いる無細胞タンパク質合成
無細胞タンパク質合成(50μL反応)を、クレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼのありおよびなしの両方で、BYL系への酸化的リン酸化の阻害剤の添加のありおよびなしで行った。阻害剤は以下を含有した:アジ化ナトリウム(0.05%、Bogucka & Wojtczak(1966)Biochim.Biophys.Acta 122:381−92)および2−テノイルトリフルオロアセトン(TTA、0.5mM);Tappel(1960)Biochem.Pharmacol.3:289−96)。アジ化ナトリウムを水中に溶解した。TTAをメタノールに溶解した。メタノールを用いて実施した陰性対照は、この溶媒がこの研究で使用される濃度でタンパク質合成に影響を与えなかったことを示した。
実施例2:人工エネルギー再生を伴わないタンパク質合成
リン酸の放出を減少させるために、クレアチンリン酸(CP)およびクレアチンキナーゼ(CK)から成る人工再生システムは、無細胞BYLシステムで省略された。可変濃度の反応成分との反応は、CPおよびCKありおよびなし;HEPES−KOH、pH 7.8(0〜80mM)、グルタミン酸マグネシウム(1〜12mM)、グルタミン酸カリウム(0〜40mM)、プラスミド(10〜100ng/μL(4.5〜43nM))、NTP(すなわち、ATP/(GTP/CTP/UTP))(0.5/0.2〜4/1.6mM)、およびT7 RNAポリメラーゼ(20〜80ng/μL)、CP(0〜40mM)およびCKありおよびなしで、esign xperiment(DoE)ベースのアプローチ(Design Expert v8.0(State−Ease(商標)Inc.,MN,USA)における分別設計(fractional designs)および応答表面モデル)を利用して考案した。クロラムフェニコールの濃度は、CP/CKのシステムから採用した。これらの実験から、両方のシステム(CP/CKありおよびなし)に対して好ましい反応成分濃度が得られた。表2
CP/CKありおよびCP/CKなしのBYLシステムの比較は、CP/CKなしのシステムが、約40時間(CP/CKありのBYLでの20時間と比較して)の長期的活性を示し、最大60%多くの標的タンパク質をもたらすことを明らかにした。図1A。BYLにおけるミトコンドリアの存在は、赤色で蛍光を発する選択的色素JC−1(Thermo Fischer Scientific、Waltham、MA、USA)を用いたBYLの染色によって実証され、ミトコンドリアはBYLにおいてそれらの特徴的な膜電位を保持することを示した。酸化的リン酸化によるエネルギー再生は、電子伝達系の二つの異なる阻害剤であるアジ化ナトリウムおよびテノイルトリフルオロアセトン(TTA)の使用によって実証された。アジ化ナトリウムおよびATPの両方は、標的タンパク質eYFPの劇的に減少した生合成によって示されるように、システムをほぼ完全に阻害することが見出された。図1(B)。
CP/CKなしのシステムにおけるエネルギーは、酸化的リン酸化によって提供されると考えられる。追加されたグルタミン酸マグネシウムおよびグルタミン酸カリウム由来のグルタミン酸は、ミトコンドリア内のクエン酸回路において代謝され、還元同等物であるNADHおよびFADHの生成がもたらされる。電子は、NADHおよびFADHを介して電子伝達系に入り、分子状酸素の消費による酸化的リン酸化を通してATPを生成する。図2。
CP/CKなしのBYLシステム内の10個の標的タンパク質の発現を、CP/CKありのBYLシステムと比較した。クレアチンリン酸(CP)およびクレアチンキナーゼ(CK)ありおよびなしの連結されたBYL転写翻訳反応は、25℃で40時間行った。それぞれの場合に、2μLの反応容量を4〜12%(w/v)の勾配のSDS−PAGEゲルにロードし、合成されたタンパク質の量をクマシー染色によって視覚化した。AAD12、Cry3A、およびCry1Fを含むいくつかの標的タンパク質は、クマシー染色ゲル中の強いバンドで表現されるように、最適化されたシステム(CP/CKなし)において有意に高い発現レベルを示した。
人工エネルギー再生システムを持たないBYLシステムは、安価かつより長く実行され、組み換え型タンパク質のレベルの増加につながる。さらに、BYLシステムは、ミトコンドリア機能に影響を与える化合物またはタンパク質を調査する可能性を提供する。
実施例3:人工エネルギー再生を伴わない連結された転写翻訳反応の修正
BY−2溶解物調製のためのソルビトールの使用
BY−2溶解物の調製のために、プロトプラスト形成および脱液胞化の間に容量オスモル濃度を調整するために多量の浸透性物質が必要である。マンニトールはこの目的のために日常的に使用され、溶解物調製の合計コストの約10%を占める。浸透性物質としてソルビトール(約10倍安価)を試験した。プロトプラスト形成および脱液胞化のためにマンニトールまたはソルビトールを使用した並行実験では、ソルビトールが驚くべきことにマンニトールとは同等ではなく、eYFPの発現により決定される溶解物の収量および溶解物の品質の両方に関してより優れていることが明らかとなった(図5)。さらに、ソルビトールのより高い溶解性が、緩衝液の調製を促進することが判明した。しかしながら、脱液胞化したプロトプラストの最終洗浄のためにはマンニトールがソルビトールより優れていることも判明し、この工程でのソルビトールの利用はより低いeYFP収量およびより粘性の反応混合物につながった。
微生物増殖の阻害
BY−2溶解物は、IVTT反応液がインキュベートされた時に微生物の増殖をサポートする能力があり、結果として反応基質の枯渇をもたらし、結果的に標的タンパク質の収量が低下する。したがって、いくつかの抗菌物質をIVTT反応システムで試験した。IVTTでのeYFP産生および微生物増殖に対する効果に関して、クロラムフェニコール、スペクチノマイシン、ストレプトマイシン、アンピシリン、およびアジ化ナトリウムを調査した。
抗菌物質をBYL反応液に加え、45時間のインキュベーション後、0.2μLのBYL反応混合物をLBプレート上に蒔き、微生物増殖を分析した。スペクチノマイシン、ストレプトマイシン、アンピシリン、およびアジ化ナトリウムは、微生物増殖に対して阻害効果を有しないか、またはeYFPの収量に有害な影響を示した。例えば、0.05%(w/v)の濃度でのアジ化ナトリウムは、恐らくミトコンドリアのエネルギー再生を阻害することにより、微生物増殖および翻訳活性の両方をほぼ完全に阻害した。クロラムフェニコールのみが、翻訳活性のいかなる喪失もなしに微生物の増殖を阻害することができ(図3B;図3C)、それにより、IVTTシステムにおける有用性が少なくともその他の抗菌物質とは異なる。用量応答試験は、100μg/mLのクロラムフェニコールで最も高いeYFP収量が達成されたが(図3D、200μg/mLのクロラムフェニコールで微生物増殖の完全な阻害が得られた(図3A)ことを指し示し、SDS−PAGE分析もまた、eYFP収量およびタンパク質安定性に対するクロラムフェニコールの保護効果を示した。クロラムフェニコールの存在下で実施した反応とは異なり、クロラムフェニコールなしの反応は有意なタンパク質分解を示した。
ヌクレオシド三リン酸
システム内のNTPの濃度をDoEベースのアプローチによって調整した。ATPおよびGTPは転写および翻訳の両方で使用される一方、CTPおよびUTPは転写でのみ使用されるため、CTPおよびUTPと比較して高濃度のATPおよびGTPは連結されたIVTTシステムに対して有益であると予測された。したがって、単一のNTPの濃度は、異なる量の固定NTPミックスを使用する代わりに、DoEベースの実験で変化させた。これらは、96回の実験での三次IV最適設計(cubic IV−optimal design)を使用して最適濃度についてスクリーニングされた。IVTT反応用のプラスミド鋳型は、pIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPであった。グルタミン酸マグネシウムの濃度は、NTPのマグネシウムへの結合によって調節した。表3は、スクリーンされた各因子の濃度範囲を示す。二次モデル(quadratic model)を実験データにフィッティングさせた。応答表面モデルを使用して、最も多くの生成eYFPタンパク質を生じる因子の値を予測した(Zhou et al.、2010)。すべての非有意項(ANOVAによりp>0.05)を無視し、モデルはANOVA表において有意であることが示された(表4)。
実験により、反応において、最も多くの標的タンパク質が6mMのATP、0.8mMのCTP、0.8mMのUTP、および1.6mMのGTPで産生されることが明らかになった。図4 これらの結果は、150/40/20/20mMのATP/GTP/CTP/UTPからなる新しいNTPミックスの開発につながった。2μlの新しいNTPミックスを使用すると、IVTTシステムでeYFPの収量は20%増加した。追加的な利益として、新しいNTPミックスは、他のヌクレオチドと比較して、ATPの10〜15倍の低コストのため、標準ミックスよりも約40%コストが低い。
より多くの溶解物量の使用
標的タンパク質発現に対するIVTT反応の溶解物部分の増加の効果を調査するために、マンニトールを用いて調製したBYLの他に、プロトプラスト形成および脱液胞化中にソルビトールを用いて調製したいくつかのBY−2溶解物を使用して、40%(20μl)または60%(30μl)の溶解物を用いる50μlの反応を行った。プラスミドpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを鋳型として使用して、25℃および700rpmで48時間にわたって反応を実施した。ソルビトールで調製した60%(v/v)の溶解物を用いる反応は約1mg/mLのeYFPを達成し、これは標準反応混合物と比較して80%高い収量に対応する(図5)。リボソーム、翻訳因子、シャペロン、およびミトコンドリアの増加した量がエネルギー生成を増加または長期化させ、それによってより高い収量が得られたと推定される。この結果は、そのような大量においてより大きな阻害を生成する有害因子を溶解物が含まないことを示す。
人工エネルギー再生システムを伴わない無細胞システムおよび小麦胚芽抽出物における標的タンパク質の発現
人工エネルギー再生を伴わない無細胞発現システムが、基質全体にわたり一般的に効果的であることを確認するために、該システムを使用して、eYFP以外の10個の追加的な標的遺伝子産物を発現させた。Strepタグ化eYFPおよび他の10個の標的タンパク質を、ソルビトールを用いて調製した60%のBY−2細胞溶解物中、マンニトールを用いて調製した40%のBY−2細胞溶解物中、およびCellFree(商標)SciencesのWGEシステムで発現させた。連結された転写翻訳反応を、50μLの容量で25℃および700rpmで40時間にわたって実施した。WGEシステムを使用した連結された転写および翻訳反応は、製造業者の指示にしたがって行った。それぞれの場合に、1μLの反応混合物および混合された二層反応液をそれぞれ4〜12%(w/v)の勾配のSDS PAGEゲルにロードし、標的タンパク質をクマシー染色により視覚化した。BYLシステムは、試験した異なる遺伝子のうちの一つごとに成功裏に転写し、また転写後に翻訳を行ってあらゆる場合にタンパク質を産生した。実際、BYLシステムは、WGEシステムを使用して製造されたものと比較して、一貫してより強いバンドを生じさせた。Strep−eYFPについて、三つのシステムで産生されたタンパク質を蛍光リーダーを使用して定量し、eYFP標準曲線と比較したところ、1115μg/mLおよび441μg/mLがBYLシステムの2セットの条件下で産生され、WGEシステムでは105μg/mLのみが産生されたことが明らかになった。
グルコシルグリセロールの添加およびより高い溶解物量の使用
人工的なエネルギー再生を伴わない無細胞溶解物の安定性を増加させるために、細胞および/またはタンパク質の凍結保護剤として記述された小分子が溶解物の翻訳活性を維持させることができるという仮説を立てた。こうした分子は極限環境微生物中に天然に存在し、浸透圧ストレス、熱、乾燥、およびUV光から極限環境微生物を保護し、表面での水密度の増加を引き起こしてタンパク質の天然コンホメーションを促進することにより膜およびタンパク質を安定化させる。しかしながら、凍結保護剤はIVTTシステムに強い阻害効果を呈することが予想された。
異なる濃度の凍結保護剤、エクトイン、ヒドロキシエクトイン、およびグルコシルグリセリドを連結されたIVTT反応に添加し、鋳型プラスミドpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPから産生されたeYFPの量を決定した。50μLのIVTT反応(60%(v/v)のBYL)を、96ウェルプレート中、25℃および500rpmで44時間、Kuhnerシェーカー(商標)の制御湿度で実施した。
エクトインおよびヒドロキシエクトインは、それぞれ最大1%および2%(v/v)の濃度でeYFPの収量に影響を与えなかった。図6 実際、より高濃度のエクトインおよびヒドロキシエクトインがシステムを阻害した。対照的に、グルコシルグリセロールは、eYFPの収量に強い正の影響を及ぼした。0.5%(v/v)のグルコシルグリセロールを含む反応液は、グルコシルグリセリドを含まない標準反応液と比較して、44時間後に約50%多くのeYFPをもたらした。図6
グルコシルグリセロールの正の影響は、0.5%(v/v)のグルコシルグリセロールなしおよびありでのIVTT反応において五つの異なる溶解物バッチ(BYL 08.01.2016、BYL 21.01.2016、BYL 11.03.2016、BYL 01.04.2016、BYL 05.04.2016)にわたって一貫していた。50μLのIVTT反応を、96ウェルプレート中25℃および500rpmで48時間、制御湿度(70%)下で、鋳型としてプラスミドpIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを使用して60%および80%(v/v)の溶解物部分を用いて三連で実施した。60%(v/v)の溶解物および0.5%(v/v)のグルコシルグリセロールを使用する反応では、グルコシルグリセロールなしの反応と比較して、約80%多くのeYFPが産生された。図7 80%(v/v)の溶解物および0.5%(v/v)のグルコシルグリセロールを使用すると、eYFPの収量は、グルコシルグリセリドなしの80%(v/v)溶解物を使用する反応と比較して約110%(ほぼ2mg/mLのeYFP)増加した。図7
人工エネルギー再生を伴わない無細胞システムにおけるIVTT反応の時間経過を、64時間までの異なる時点で産生されたタンパク質の量を測定することによって決定した。図8 16時間後、0.5%グルコシルグリセロールありまたはなしでの60%または80%の溶解物を使用した反応は、ほぼ同量のタンパク質を産生した。図8 グルコシルグリセロールなしで、60%および80%(v/v)の両方の溶解物における翻訳活性は、24時間後にさらに増加しなかった。図8 しかしながら、グルコシルグリセロールを用いたeYFP産生は、60%および80%(v/v)の両方の溶解物で、少なくとも64時間まで生産性のほぼ直線的な増加を示した。図8 この結果は、グルコシルグリセロールが、翻訳活性を64時間を超えて延長するシステムに対する安定化効果を有することを裏付ける。平均して、80%(v/v)の溶解物および0.5%(v/v)グルコシルグリセロールを用いる反応は、ほぼ2.5mg/mLのeYFPをもたらした。
分岐鎖アミノ酸の添加
無細胞発現系におけるタンパク質合成を促進する分岐鎖アミノ酸(BCAA)の能力も試験し、BCAAの添加が標的タンパク質の収量を増加および安定化させることが観察された。システムに対するBCAAの正の効果を検証するために、振盪フラスコ(SF)または連続発酵(CF)から調製した四つの溶解物を使用する連結されたIVTT反応に異なる濃度のBCAAを加えた。Kuhner(商標)シェーカー中の制御された湿度においてプラスミド鋳型pIVEX_GAAAGA_Omega_Strep−eYFPを使用する25℃および500rpmでの66時間の96ウェルプレート中での80%(v/v)溶解物を用いる50μLのIVTT反応において、溶解物が振盪フラスコから調製されたのか、それとも連続発酵から調製されたのかに関わらず、BCAAは試験した全濃度においてeYFPの収量に正の影響を有した。図9 1mMのBCAAを含む反応により、BCAAなしの反応と比較して、約70%多くのeYFP(1mL当たり2.5mgのeYFPの平均収量)が得られた。

Claims (10)

  1. バイオポリマーの合成のためのシステムであって、前記システムが、
    色素体、葉緑体、ミトコンドリア、または葉緑体およびミトコンドリアを含む水性細胞溶解物、
    ポリマー鋳型、および
    前記ポリマーのモノマー単位、を含み、前記システムが、前記細胞溶解物、色素体、葉緑体、ミトコンドリア、または葉緑体およびミトコンドリアに対して外因性である加えられたクレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼを含まない、システム。
  2. pH緩衝剤、
    マグネシウム、好ましくはMg(CNO
    カリウム、好ましくはKCNO
    ヌクレオシド三リン酸、
    酵素、好ましくはRNAポリメラーゼ、および
    クロラムフェニコール、のうちの少なくとも一つをさらに含む、請求項1に記載のシステム。
  3. ミトコンドリアを含む植物細胞由来の水性細胞溶解物、DNA鋳型、HEPES−KOH pH7.8、Mg(CNO、KCNO、ヌクレオシド三リン酸、RNAポリメラーゼ、およびクロラムフェニコールから本質的になる、請求項1に記載のシステム。
  4. 少なくとも一つのバイオポリマーの合成方法であって、前記方法が、反応体積中で反応成分を合わせることを含み、前記反応成分が、
    色素体、葉緑体および/またはミトコンドリアを含む細胞溶解物、
    ポリマー鋳型、および
    前記ポリマーのモノマー単位、を含み、
    前記反応成分がクレアチンリン酸およびクレアチンキナーゼを含まない、方法。
  5. 以下の条件:
    前記方法によって製造されるバイオポリマーがポリペプチドである、
    前記方法が、RNAおよび前記RNAから翻訳されたポリペプチドの連結された合成のためのものである、
    前記細胞溶解物が真核細胞溶解物である、
    前記細胞溶解物がミトコンドリアを含む、
    前記色素体、葉緑体、および/またはミトコンドリアが、前記細胞溶解物に対して外因性である、
    前記反応成分がクレアチンキナーゼを含まない、
    前記ポリマー鋳型がRNA分子である、
    前記ポリマー鋳型がDNA分子である、
    前記ポリマーの前記モノマー単位がヌクレオチドである、
    前記ポリマーの前記モノマー単位が、前記細胞溶解物中に含まれるアミノ酸である、および
    前記反応が、電子伝達系を阻害することまたは前記反応から酸素を除去することによって停止させられる、のいずれかの組み合わせが満足される、請求項4に記載の方法。
  6. バイオポリマーの合成が20時間を超えて、好ましくは約40時間にわたり起こる、請求項4に記載の方法。
  7. キットであって、
    一つ以上の別個の体積に配置された、水性細胞溶解物、色素体、ミトコンドリアおよび/または葉緑体、およびポリマーのモノマー単位、ならびに
    キットの成分およびクレアチンリン酸を含まない任意の追加の成分の混合を指定する説明書 を含む、キット。
  8. 前記色素体、ミトコンドリアおよび/または葉緑体を含む前記細胞溶解物が一つの体積中に配置されており、かつ、前記ポリマーの前記モノマー単位が別個の体積中に配置されている、請求項7に記載のキット。
  9. 前記説明書が、前記細胞溶解物、色素体、ミトコンドリアおよび/または葉緑体、ならびに前記ポリマーのモノマー単位を、クレアチンリン酸を含まない反応体積中でポリマー鋳型と合わせるようにユーザーに指示する、請求項7に記載のキット。
  10. ポリマー鋳型をさらに含む、請求項7に記載のキット。
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Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2020185708A1 (en) * 2019-03-08 2020-09-17 Synvitrobio, Inc. Methods and compositions for cell-free biological reactions
WO2023278593A1 (en) * 2021-06-30 2023-01-05 Corteva Agriscience Llc Soybean and maize cell-free expression systems

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07298893A (ja) * 1994-05-04 1995-11-14 Cha-Yong Choi 無細胞システムにおける蛋白質の製造方法
JP2004105121A (ja) * 2002-09-20 2004-04-08 Masayuki Ishikawa 無細胞タンパク質合成方法
JP2007195545A (ja) * 2005-12-26 2007-08-09 Cellfree Sciences Co Ltd タンパク質合成・回収一体型無細胞タンパク質合成方法
JP2009022954A (ja) * 2008-08-25 2009-02-05 Toshiba Corp 抽出システム、抽出方法、タンパク質合成システム及びタンパク質合成方法
JP2012513213A (ja) * 2008-12-22 2012-06-14 グレーンライト バイオサイエンシーズ インコーポレーテッド 化合物の製造のための組成物および方法

Family Cites Families (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2904583B2 (ja) * 1991-10-11 1999-06-14 プロメガ・コーポレーション 真核無細胞抽出物中での転写と翻訳の共役
US5492817A (en) 1993-11-09 1996-02-20 Promega Corporation Coupled transcription and translation in eukaryotic cell-free extract
US5665563A (en) 1991-10-11 1997-09-09 Promega Corporation Coupled transcription and translation in eukaryotic cell-free extract
WO2003091413A2 (en) * 2002-04-23 2003-11-06 The Scripps Research Institute Expression of polypeptides in chloroplasts, and compositions and methods for expressing same
AU2003259912B2 (en) 2002-08-19 2008-10-23 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Improved methods of in vitro protein synthesis
DE10336705A1 (de) 2003-08-06 2005-03-10 Rina Netzwerk Rna Technologien Verfahren zur Herstellung eines Lysats zur zellfreien Proteinbiosynthese
EP2954066A1 (en) * 2013-02-08 2015-12-16 Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM) Cell-free translation system
WO2015165583A1 (en) 2014-04-28 2015-11-05 Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. Fermentation systems
WO2015193897A1 (en) * 2014-06-17 2015-12-23 B G Negev Technologies And Applications Ltd At Ben Genetically expanded cell free protein synthesis systems, methods and kits

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH07298893A (ja) * 1994-05-04 1995-11-14 Cha-Yong Choi 無細胞システムにおける蛋白質の製造方法
JP2004105121A (ja) * 2002-09-20 2004-04-08 Masayuki Ishikawa 無細胞タンパク質合成方法
JP2007195545A (ja) * 2005-12-26 2007-08-09 Cellfree Sciences Co Ltd タンパク質合成・回収一体型無細胞タンパク質合成方法
JP2009022954A (ja) * 2008-08-25 2009-02-05 Toshiba Corp 抽出システム、抽出方法、タンパク質合成システム及びタンパク質合成方法
JP2012513213A (ja) * 2008-12-22 2012-06-14 グレーンライト バイオサイエンシーズ インコーポレーテッド 化合物の製造のための組成物および方法

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BIOTECHNOL. BIOENG., 2015, VOL.112, NO.5, PP.867-878, JPN6021042445, ISSN: 0004631543 *
PROC. NAT. ACAD. SCI., 1975, VOL.72, PP.172-176, JPN6021042442, ISSN: 0004631541 *
PROC. NAT. ACAD. SCI., 1985, VOL.82, PP.3983-3987, JPN6021042443, ISSN: 0004631542 *

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