JP2020117529A - 神経系疾患治療剤 - Google Patents
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Abstract
Description
必要になる可能性が高く、医療費の面でも社会に及ぼす影響の大きい疾患である。脳梗塞の範囲は、血流が完全に遮断された虚血中心部(ischemic core、単にcore、核ともいう
)と側副血行路により血流が得られる周辺部ペナンブラ(penumbra、半影帯)に分けられる。Core部の神経細胞は速やかに死滅するため(1次損傷)、この部分のレスキューは困
難であるが、penumbra部は細胞死を免れている部分であるため生き残る可能性があり、この部分をいかにレスキューするかが脳梗塞の急性期治療の肝となる。脳梗塞病変部の組織学的な変化としては、(1)神経細胞のアポトーシス、(2)炎症の惹起、(3)血液脳関
門(BBB)の崩壊などが起こっている。わが国で現在使用されている脳梗塞治療薬として
は、ウロキナーゼや抗凝固・抗血小板剤の他、血液を希釈するもの、浮腫を軽減するものなどがある。フリーラジカルを除去する薬剤としてエダラボン(商品名ラジカット)が2001年にわが国において承認されたが、欧米等ではまだ承認されていない。2005年からは血栓溶解療法(t-PA)が承認されたが、使用が発症から4.5時間以内に限定されている。こ
のように2005年以降は、脳梗塞の新しい治療薬が出てきていない状況である。
時の直達外力による神経細胞や血管組織のダメージ(一次損傷)に引き続き、血液脊髄関門の破綻に伴った一連の反応(二次損傷)が起こる事で損傷範囲が拡大する。一次損傷は避けようの無いものであり、二次損傷をいかに軽減するかが急性期〜亜急性期脊髄損傷治療において重要となる。しかし現在臨床で急性期脊髄損傷に対し安全に使用できる有効な治療薬は存在せず、従来使用されてきたメチルプレドニゾロン大量療法も、その副作用の重篤さからアメリカの急性期脊髄損傷治療ガイドラインでは『ルーティーンで使用すべきではない』と明記され、脊髄損傷に対しては有効な新規治療薬が切望されている状況である。
軸索が遠位方向へ伸長し、目標となる筋肉の再神経化が起こる。最終的には、再生軸索の周囲を取り巻いたシュワン細胞による髄鞘が形成される。しかし、再生神経の伸長速度は非常に遅く、目標となる筋肉までの距離が長い場合には筋萎縮が生じて十分な機能回復が望めなくなる。ところで、前述した再生過程の各段階においては、マクロファージが重要な役割を担っていることが近年明らかになり注目されている。マクロファージの炎症を起こす働きはよく知られているが、これとは逆に抗炎症性の働きを持つ表現型も持っており、それぞれM1型、M2型と呼ばれ、その表現型間には連続性がある(M1-M2間のシフトが起
きる)と考えられている。そして、一般的に、抗炎症性の表現型であるM2マクロファージを増加させた方が神経再生は促進されると言われている。
経炎、脊髄変化といった神経学的変化も起こりうることが知られている(特許文献1)。
ン濃度低下が脳虚血のリスクを低下させる可能性が示唆されている(非特許文献1)。
、M1マクロファージ/ミクログリア誘導が抑制されること、並びに脳梗塞等の神経疾患を改善することは開示されていない。
ことを課題とする。
効果を有することを見出した。さらに、ビタミンB12がアポトーシス抑制作用、ネクロー
シス抑制作用、軸索伸展促進作用、M2マクロファージ/ミクログリア誘導促進作用、M1マクロファージ/ミクログリア誘導抑制作用、神経再生促進作用等を有することをも見出した。これらの知見に基づいてさらに研究を進めた結果、本発明が完成した。
項1. ビタミンB12を含有する、神経系疾患治療剤。
経系疾患の治療方法。
ラミン、スルフィトコバラミン、アデノシルコバラミン、及びそれらの塩からなる群より選択される少なくとも1種である、項1〜10のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
の神経系疾患治療剤。
いずれかに記載の神経系疾患治療剤。
ーシス抑制剤、ネクローシス抑制剤、軸索伸展促進剤、M2マクロファージ/ミクログリア誘導促進剤、M1マクロファージ/ミクログリア誘導抑制剤、神経再生促進剤等(本明細書において、「本発明の剤」と示すこともある。)に関する。以下、これらについて説明する。
ビタミンB12には、コバラミン、その誘導体、及びそれらの塩が含まれる。ビタミンB12として、具体的には、コバラミン、コバラミンのコバルトイオンが置換されたもの、及びそれらの誘導体が挙げられる。より具体的な例としては、メチルコバラミン、シアノコバラミン、ヒドロキソコバラミン、スルフィトコバラミン、アデノシルコバラミン、それらの塩等が挙げられる。これらの中でも、メチルコバラミン、シアノコバラミン、ヒドロキソコバラミン、それらの塩が好ましく、メチルコバラミン、その塩がより好ましい。
カリ金属塩; カルシウム塩、マグネシウム塩等のアルカリ土類金属塩等が挙げられる。
れば特に限定されず、例えば水、エタノール、グリセロール、酢酸等が挙げられる。
ビタミンB12は、神経系疾患治療効果を有する。このため、ビタミンB12は、神経系疾患治療剤の有効成分として利用することができる。
制作用、神経再生促進作用等を有する。このため、ビタミンB12は、アポトーシス抑制剤
、ネクローシス抑制剤、軸索伸展促進剤、M2マクロファージ/ミクログリア誘導促進剤、M1マクロファージ/ミクログリア誘導抑制剤、M1:M2比(M2マクロファージ/ミクログリアに対するM1マクロファージ/ミクログリアの比)抑制剤、神経再生促進剤等の有効成分として利用することができる。
することができる。
づいて治療可能な神経系疾患である。
。)を含有する限りにおいて特に制限されず、必要に応じてさらに他の成分を含んでいてもよい。他の成分としては、薬学的に許容される成分であれば特に限定されるものではない。他の成分としては、薬理作用を有する成分のほか、添加剤も含まれる。添加剤として
は、例えば基剤、担体、溶剤、分散剤、乳化剤、緩衝剤、安定剤、賦形剤、結合剤、崩壊剤、滑沢剤、増粘剤、保湿剤、着色料、香料、キレート剤等が挙げられる。
ーシス抑制作用、軸索伸展促進作用、M2マクロファージ/ミクログリア誘導促進作用、M1マクロファージ/ミクログリア誘導抑制作用(なお、M1マクロファージ/ミクログリアからM2マクロファージ/ミクログリアへのシフト作用であることも否定されない。)、神経再生促進作用等を発揮し得る。そのため、本発明の剤は、これらの効果及び/又は作用を有する他の成分を含まなくとも、その所望の効果を発揮することができるが、薬理作用を有する他の成分が含有されていてもよい。
する。)こともできる。
一日あたり0.01〜100 mg/kg体重、好ましくは0.05〜50 mg/kg体重である。上記投与量は
、年齢、病態、症状により適宜増減することもできる。
リア誘導抑制作用、神経再生促進作用の発揮に適した濃度(例えば5nM〜100μM、好まし
くは10nM〜50μM、より好ましくは20nM〜10μM、さらに好ましくは50nM〜5μM、よりさらに好ましくは100nM〜1μM)に保つことができ、より効果的にこれらの作用を発揮させる
ことができる。また、本発明の剤は、その適用対象にもよるが、点滴注射剤であることが好ましく、点滴静注用製剤であることがより好ましい。
メチルコバラミンを用いて、大脳皮質神経細胞のアポトーシス抑制作用をTUNELアッセ
イで調べた。具体的には以下のとおりである。
大脳皮質神経は定法に従って採取培養した。Sprague Dawley(SD)ラット(妊娠18日目)の胎仔から大脳皮質を切離し、10%ウシ胎児血清(FBS)及び1%ペニシリン/ストレプトマイシンを含有し、氷冷したダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)に回収した。軟膜及び血管を除去し、DMEM(FBS未添加、1%ペニシリン/ストレプトマイシン含有)へ移して剪
刀で1 mm大に細断した。細胞混合液にパパイン(最終濃度2 mg/ml)を添加し、37℃で30
分間反応させた。Dnase I(70 U/ml)を添加し30秒間反応させたのち、10% FBS及び1%ペ
ニシリン/ストレプトマイシンを含有したDMEMを添加し反応を停止させた。細胞混合液を800rpmで遠心分離したのち、10% FBS及び1%ペニシリン/ストレプトマイシンを含有したDMEMで再懸濁し、Poly-L lysine(PLL)でコーティングしたdishに播種した。細胞播種4時間後に、培地をNeurobasal 培地(10% B27サプリメント、1%ペニシリン/ストレプトマイシン含有)に交換した。
PLLコーティングした8 well chamber slideで培養した大脳皮質神経(実施例1-1)に20mMのグルタミン酸、10μMのメチルコバラミン(MeCbl)を添加し、18時間後にPromega deadend fluorometric TUNEL systemでアポトーシス細胞割合を評価した。4%パラホルムア
ルデヒド(PFA)で4℃25分間固定した。0.2% TritonX-100で5分間透過処理を行った後、incubation bufferを添加して37℃遮光下に60分間置き、標識を行った。核はDAPIで標識した。全細胞数、TUNEL陽性細胞数を計測した。
結果を図1に示す。また、図1の数値を表1に表す。TUNELアッセイにおいて、メチル
コバラミン単独添加ではアポトーシス細胞割合(%)はコントロールと同様であった。グ
ルタミン酸単独添加ではアポトーシス細胞割合の有意な増加が見られたが、グルタミン酸にメチルコバラミンを併用することにより、コントロールレベルまで有意にアポトーシス細胞割合が減少した。
メチルコバラミンを用いて、大脳皮質神経細胞のネクローシス抑制作用をLDHアッセイ
で調べた。具体的には以下のとおりである。
PLLコーティングした6 well chamber slideで培養した大脳皮質神経(実施例1-1)に、酸素−グルコース欠乏(OGD)負荷を行う30分前に10μMのメチルコバラミンを添加した。基準となる高コントロールにはN−メチル−Dアスパラギン酸(NMDA)を添加した。培地をearle’s balanced salt solution(EBSS)に交換し、酸素濃度1%の環境下に3時間のOGD
負荷を行った。通常の培地、酸素濃度環境下に戻し24時間後に上清を採取、cytotoxicity
detection kit plus(SIGMA)を用いてLDH活性を測定した。コントロール群、メチルコ
バラミン添加群のLDH活性度は、高コントロールのLDH活性に対する割合(%)で算出した
。
結果を図2に示す。また、図2の数値を表2に表す。OGD負荷によるLDHアッセイにおいて、ネクローシスの指標となるLDH活性の高コントロールに対しての割合が、メチルコバ
ラミン添加群でコントロール群に比し有意な低下が見られた。
メチルコバラミンを用いて、大脳皮質神経細胞の軸索伸展促進作用を神経突起伸展アッセイで調べた。具体的には以下のとおりである。
大脳皮質神経(実施例1-1)を播種して24時間後に各種薬剤を添加した。添加薬剤濃度
はメチルコバラミン(1nM、10nM、100nM、1μM、10μM、100μM)とした。細胞播種72時
間後に、抗TuJ1抗体で免疫蛍光染色し、軸索長(the longest neurite length per neuron)を計測した。ただし、別の神経と接していない細胞のみ計測し、各評価において少な
くとも30個以上の神経軸索を測定し、その平均値を算出し計測値とした。
結果を図3に示す。また、図3の数値を表3に表す。神経突起伸展アッセイにおいて、10μM濃度をピークに濃度依存性に軸索伸展が促進される傾向を認め、1μM及び10μMにおいては薬剤未添加のコントロール群と比較し、有意差を持って軸索伸展の促進を認めた。
メチルコバラミンを用いて、脳梗塞体積の縮小作用をTTC(2,3,5-Triphenyltetrazolium chloride)染色法で調べた。具体的には以下のとおりである。
8-9週齢の雄のC57BL/6Jマウス(24g前後)を使用した。右頭蓋骨上にレーザードプラ血流計用のプローブを装着し、中大脳動脈の血流をモニタリングできるようにした。右頚部を展開し、外頚動脈を結紮後、総頸動脈に切開を加えナイロン糸を挿入、血流モニタを見ながら先端を進めた。先端が中大脳動脈分岐部まで進み血流が低下したのを確認し、その状態で1時間、直腸温37℃で待機した後、ナイロン糸を抜去し総頚動脈を結紮した。メチ
ルコバラミンは持続投与のため、浸透圧ミニポンプを背部皮下に留置し1mg/kg/dayの用量でモデル完成後に投与した。未治療群では同様の方法で生食を投与した。術後は麻酔から覚醒するまで直腸温37℃で維持した。
術後2日のマウス(実施例4-1)をサクリファイスし、大脳を摘出した。1mm毎に冠状断
でスライスし、2% TTC溶液に30分漬けた。実体顕微鏡で撮影した後、それぞれのスライスの梗塞面積を算出、全大脳スライスの梗塞面積を加える事で梗塞体積を算出した。1つの
スライスでの梗塞面積は、(健側半球面積−患側健常部面積)で計算した。
結果を図4に示す。また、図4の数値を表4に表す。マウスに対するtMCAO手術後2日に、TTC染色で脳梗塞体積を評価した。メチルコバラミン投与群ではコントロール群に比し
、1/2程度の有意な梗塞体積の縮小が見られた。
メチルコバラミンを用いて、M2マクロファージ誘導促進作用及びM1マクロファージ誘導抑制作用を、ウエスタンブロット法及び免疫組織学的評価法により調べた。具体的には以下のとおりである。
マウス由来マクロファージ細胞株J774A.1(JCRB9108)を、大阪府のJCRB細胞バンク(
培養資源研究室)より購入した。培養は10% FBS 及び1%ペニシリン/ストレプトマイシンを含有したDMEMで行った。
J774A.1細胞(実施例5-1)を直径6cmのディッシュに播種し、4日後にprotease inhibitor cocktailを溶解したcell lysis bufferを用いてタンパク質を収集した。BCAアッセイ
でタンパク質濃度を測定した後、サンプル50μgずつをSDS-PAGEで電気泳動し、polyvinylidene difluoride membraneに転写した。Blocking bufferで1時間のblockingを行った後
、一次抗体と4℃ over nightで反応させた。二次抗体は室温で1時間反応させ、ECLウェスタンブロッティング検出システムで検出した。M1マーカーであるiNOS及びIL-1βの検出時は、タンパク質収集の24時間前にリポ多糖(LPS)(100ng/ml)及びメチルコバラミンを
添加した。M2マーカーであるArg1及びCD206の検出時は、タンパク質収集の72時間前にIL-4(20ng/ml)及びメチルコバラミンを添加した。
J774A.1細胞(実施例5-1)を直径6cmのディッシュに播種し、4日後に4% PFAで20分間固定した。30分間ブロッキングし、一次抗体は4℃ over nightで反応させた。二次抗体は室温で1時間反応させ、核をDAPIで標識した。M1マーカーであるiNOSの検出時は、細胞固定
の24時間前にLPS(100ng/ml)及びメチルコバラミンを添加した。M2マーカーであるArg1
の検出時は、細胞固定の72時間前にIL-4(20ng/ml)及びメチルコバラミンを添加した。
抗体(Santa Cruz)、二次抗体はAlexa 488標識ヤギ抗ウサギIgG抗体(Lifetechnologies)もしくはAlexa 568標識ヤギ抗ウサギIgG抗体(Lifetechnologies)を使用した。
ウエスタンブロット法の結果を図5及び6に示す。また、図5の数値を表5に、図6の数値を表6に表す。M1マーカーではLPS単独添加に比し、IL-1βは100nM、iNOSは100nMか
ら10μMで有意なタンパク質量の減少が見られた。M2マーカーではIL-4単独添加に比し、Arg1は100nMと1μMで有意なタンパク質量の増加が見られた。CD206では100nMから1μMをピークとした傾向が見られた。
、iNOS陽性細胞率が有意に減少した。またM2マーカーであるArg1では、IL-4単独添加に比し、メチルコバラミン10nMから1μMを加えたもので、Arg1陽性細胞率が有意に増加した。
方向へのシフトが見られた。
メチルコバラミンによるマクロファージ誘導作用(実施例5)のメカニズムを解析した
。具体的には、IL-4、メチルコバラミン(100nM及び1mM)を添加後30分のAkt-mTOR経路(M2遺伝子を誘導する主なシグナル経路の一つ)におけるAkt、4EBP1及びS6Kの活性化をウ
エスタンブロットで評価した。該経路においては、上流からのシグナルによって、Aktの
リン酸化が起こり、さらに下流でmTORC1を介して、4EBP1のリン酸化及びS6Kのリン酸化が起こる。S6Kのリン酸化はシグナル上流にネガティブフィードバック作用をもたらす。ウ
エスタンブロットは、タンパク質収集の30分前にIL-4(20ng/ml)、メチルコバラミン、RAD001(200nM)を添加し、検出する一次抗体を変える以外は、実施例5-2と同様にして行
った。
。IL-4とメチルコバラミン100nMを併用すると、IL-4単独添加の場合よりそれぞれの活性
化が増強したが、メチルコバラミンを1mMにすると、4EBP1とS6Kの活性化に反し、上流のAktの活性は低下した。これに更にmTORの抑制剤であるRAD001を添加すると、上流のAktの
活性はレスキューされ、下流の4EBP1及びS6K活性の抑制が見られた。以上より、高濃度メチルコバラミン添加では下流からのネガティブフィードバック機構により、M2遺伝子誘導に向かう上流Akt活性が抑制される機構が示唆された。
坐骨神経損傷後のマクロファージ動態にメチルコバラミンが与える影響を免疫組織学的評価法で解析した。具体的には、坐骨神経損傷後1、3、7、14日での近位2.5mm、損傷部、遠位2.5mm、5.0mm、7.5mmの神経横断切片で、蛍光免疫染色でマクロファージを評価した
。なお、近位は軸索上の損傷部から細胞体側を意味し、遠位は軸索上の損傷部から軸索末端側を意味し、それぞれの距離は損傷部からの距離を示す(実施例8においても同様であ
る)。マクロファージはCD68、M1マーカーとしてiNOS、M2マーカーとしてCD206で標識し
た。M1マクロファージ割合(%)=M1マーカー陽性マクロファージ数(個/mm2 )/マクロファージ数(個/mm2)×100で算出した。より具体的には以下のとおりである。
6週齢の雄のWistarラット(200 g前後)を使用した。左坐骨神経を展開し、坐骨神経の近位側に鑷子で圧挫損傷を加えた。圧挫時間は10秒間、圧挫回数は3回とし、圧挫操作の
間隔は10秒間とした。筋膜及び皮膚を3-0 nylonで縫合した。坐骨神経展開のみを行った
非損傷群と未治療群、メチルコバラミン投与群を比較検討した。メチルコバラミンは持続投与のため、浸透圧ミニポンプを背部皮下に留置し1mg/kg/dayの用量で投与した。未治療群では同様の方法で生食を投与した。
術後1日、3日、7日、14日経過したラットを麻酔薬で鎮静をかけ、左坐骨神経を採取し
て4% PFAで7日間、20%スクロースで24時間固定後に凍結包埋した。包埋した組織を神経短軸方向に5μm厚でスライスしglass slideに置いた。スライス部位として損傷の近位2.5mm、損傷部位、遠位2.5mm、遠位5.0mm、遠位7.5mmの5箇所で行った。1時間乾燥させて、95%メタノールで30分間固定した。ブロッキング後に1次抗体を4℃ over nightで反応させた
。二次抗体は室温で1時間反応させ、核をDAPIで標識した。
抗体(Abcam)、抗CD206ウサギモノクローナル抗体(Abcam)、抗neurofilament 200(NF200)ウサギポリクローナル抗体(SIGMA)及び抗myelin Basic Protein(MBP)マウスモ
ノクローナル抗体(CALBIOCHEM)、二次抗体はAlexa 488標識ヤギ抗マウスIgG抗体(Lifetechnologies)、Alexa 488標識ヤギ抗ウサギIgG抗体(Lifetechnologies)、Alexa 568
標識ヤギ抗マウスIgG抗体(Lifetechnologies)及びAlexa 568標識ヤギ抗ウサギIgG抗体
(Lifetechnologies)を使用した。
結果を図9及び10に示す。また、図9の数値を表9−1、表9−2、及び表9−3に、図10の数値を表10−1、表10−2、及び表10−3に表す。メチルコバラミン投与群は未治療群と比較して、損傷部においては術後3、7、14日で集積マクロファージ数の有意な減少を認めた。遠位では損傷部に遅れるようにマクロファージ数が増加していったが、術後14日で有意差を認めた。
坐骨神経損傷後の神経再生動態にメチルコバラミンが与える影響を免疫組織学的評価法で解析した。具体的には、坐骨神経損傷2週後の損傷坐骨神経の横断切片を評価した。評
価部位はマクロファージ評価と同様に、近位2.5mm、損傷部、遠位2.5mm、5.0mm、7.5mmとした。再生軸索はNF200で標識、髄鞘をMBPで標識した。再生軸索の髄鞘化率を計算するため、髄鞘化率(%)=髄鞘化軸索数(個/mm2)/軸索数(個/mm2)×100として算出した。より具体的には、実施例7と同様の方法で行った。
メチルコバラミンを用いて、脊髄損傷の治療作用をBBB(Basso-Beattie-Bresnahan)ス
コア、及びThermal algesimetry testにより調べた。具体的には以下のとおりである。
6週齢、メスのWistarラットを使用した。ラットは日本チャールスリバー(横浜市、日
本)から購入した。麻酔方法は3種混合麻酔薬を生理食塩水で1:10に希釈して腹腔内注射
にて投与した。1回当たりの麻酔投与量はミダゾラム0.2mg/kg、メデトミジン0.015mg/kg
、ブトルファノール0.25mg/kgとした。手術台に腹臥位に置き、背部正中を展開した。T10椎弓を切除し脊髄後面を露出させ、スピッツメスで左脊髄を半切した。皮膚を4-0ナイロ
ン糸で縫合し手術を終了した。メチルコバラミン投与群、未治療群およびSham群の3群を
比較した。メチルコバラミン投与群、未治療群は術直後に左背部皮下にそれぞれメチルコバラミン(1mg/kg/day)、生理食塩水を充填した浸透圧ミニポンプを留置した。Sham群はTh10椎弓の切除のみを行った。
ラットを個別にケージ内に入れ自由に歩かせ、5分間観察した。定法に従って、左下肢
の機能で0点(運動なし)から21点(通常の運動)の間でスコアリングを行った。評価は
術前、術後1, 7, 14, 21, 28日に行った。
ラットを個別に専用のケージ内に入れ、右足底に赤外線熱刺激を与え、熱さで後肢を引くまでの時間を測定した。皮膚へのダメージを避けるため、刺激時間は最大15秒とした。評価は術前、術後7, 14, 21, 28日に行った。
BBBスコアを図12に示す。また、図12の数値を表12に表す。メチルコバラミン投
与群において未治療群に比し、術後14, 21, 28日目に左下肢運動機能の有意な改善を認めた。
メチルコバラミンを用いて、M2ミクログリア誘導促進作用及びM1ミクログリア誘導抑制作用を、ウエスタンブロット法により調べた。具体的には以下のとおりである。
ミクログリア細胞株(6-3細胞)に対し、LPS(100ng/ml)、抗炎症性サイトカインとしてIL-4(20ng/ml)を添加し、そこへ各種濃度(1nM〜1mM)に調整したメチルコバラミン
を加え、それぞれ添加後1日、3日でタンパク質を回収した。電気泳動、メンブレンへの転写を行い、ブロッキング後、それぞれM1マーカー(iNOS, IL-1β)、M2マーカー(Arg1, CD206)に対する1次抗体を4℃ over nightで反応させた。二次抗体は室温で1時間反応さ
せ、検出器でバンド検出を行った。
)、二次抗体はAnti-Rabbit IgG, HRP-Linked Whole Ab Sheepを使用した。
ウエスタンブロット法の結果を図14〜15に示す。また、図14の数値を表14に、図15の数値を表15に表す。ミクログリアの炎症性(M1)マーカーではLPS単独添加に
比し、IL-1βは1μM、iNOSは10nM以上のメチルコバラミン添加で有意な蛋白質量の減少が見られた。抗炎症性(M2)マーカーではIL-4単独添加に比し、Arg1は1nMから10μMのメチルコバラミン添加で有意な蛋白質量の増加が見られた。CD206では10nMから100nMのメチルコバラミン添加で有意な増加が見られた。
メチルコバラミンを用いて、M2マクロファージ誘導促進作用及びM1マクロファージ誘導抑制作用を調べた。具体的には以下のとおりである。
実施例9-1のラット脊髄損傷モデルについて、術後7、14、28日経過したラットを麻酔薬で鎮静をかけ、4% PFAで灌流固定の後、損傷部を含んだ脊髄を採取して、20%スクロース
で24時間固定後に凍結包埋した。包埋した組織を神経短軸方向に5μm厚でスライスしglass slideに置いた。1時間乾燥させて、100%メタノールで30分間固定した。ブロッキング後に1次抗体を4℃ over nightで反応させた。二次抗体は室温で1時間反応させ、核をDAPIで標識した。
した。
サギIgG抗体とAlexa 568標識ヤギ抗マウスIgG抗体を使用した。
免疫蛍光染色の結果を図16〜22に示す。図16〜18は、単位面積あたりのマクロファージ数、M1(炎症性タイプ)マクロファージ数、M1マクロファージ割合、M2(抗炎症性タイプ)マクロファージ数、M2マクロファージ割合についての部位による変化を表し、図19〜20はこれらの術後の経過日数による変化を表す。図21は、M1/M2比について
の術後の経過日数による変化を表し、図22はこの部位による変化を表す。また、図16〜18の数値を、順に、表16〜18に表し、図22の数値を表19に表す。
ロファージが増加している傾向にあった。一部では有意差を認めた。
<実施例12-1.対象と方法>
8-10週齢の雄のC57BL/6Jマウス(24g前後)を使用し、ローズベンガルを投与後、レー
ザー光を照射することによる光凝固脳梗塞モデルを作製した。このモデルにおいては、マウスの頭蓋骨を大泉門より外側2mmを中心として、頭蓋骨にドリルを用いて穴を開け開頭
し、光感受性色素であるローズベンガルの投与5分後に右運動野中心にレーザー光を照射
し、右側運動野に脳梗塞を作製する。このように脳梗塞を作製した直後より、浸透圧ポンプ(ALZET Osmotic pumps:2週間用)を埋め込み、メチルコバラミン投与群(N=3)と未
治療群(N=4)に分けて、脳梗塞術後、2日後、4日後、7日後、9日後、11日後、14日後に
ロタロッドテスト(accelerating velocity:加速方式)を施行した。マウスが、ロタロ
ッドから落ちるまでの時間を計測し、Max 300秒をbaselineとして、その比率を算出した
。
結果を図23に示す。また、図23の数値を表20に表す。脳梗塞術後2,4,9日後に
おいて、メチルコバラミン投与群は未治療群に比して、有意にロタロッドテストによる脳機能改善を認めた。
Claims (18)
- ビタミンB12を含有する、神経系疾患治療剤。
- M2マクロファージ/ミクログリア誘導促進剤である、請求項1に記載の神経系疾患治療剤。
- M1マクロファージ/ミクログリア誘導抑制剤である、請求項1に記載の神経系疾患治療剤。
- 神経再生促進剤である、請求項1〜3のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
- 前記神経系疾患が、中枢神経系疾患である、請求項1〜4のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
- 前記中枢神経系疾患が、脳血管疾患である、請求項5に記載の神経系疾患治療剤。
- 前記脳血管疾患が、脳梗塞、脳出血、脳血栓症、脳動脈硬化症及び認知症からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項6に記載の神経系疾患治療剤。
- 前記神経系疾患が神経損傷である、請求項1〜4のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
- 前記神経損傷が中枢神経損傷である、請求項8に記載の神経系疾患治療剤。
- 前記中枢神経損傷が脊髄損傷である、請求項9に記載の神経系疾患治療剤。
- 前記ビタミンB12がメチルコバラミン、シアノコバラミン、ヒドロキソコバラミン、スル
フィトコバラミン、アデノシルコバラミン、及びそれらの塩からなる群より選択される少なくとも1種である、請求項1〜10のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。 - 前記ビタミンB12がメチルコバラミンである、請求項1〜11のいずれかに記載の神経系
疾患治療剤。 - 持続的に投与して用いられる、請求項1〜12のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
- 点滴静注用製剤である、請求項13に記載の神経系疾患治療剤。
- 発症から12〜24時間経過以降に投与を開始するように用いられる、請求項1〜14のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
- 発症直後から12時間以内に投与を開始するように用いられる、請求項1〜14のいずれかに記載の神経系疾患治療剤。
- 請求項1〜16のいずれかに記載の神経系疾患治療剤の製造のための、ビタミンB12の使
用。 - 神経系疾患の治療における使用のための、ビタミンB12含有組成物。
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