JP2019506865A - 改善された内部移行特性を有する多重特異性抗原結合分子 - Google Patents
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Abstract
Description
本発明は、多重特異性抗原結合分子、該多重特異性抗原結合分子を含む組成物、および疾患の処置における該多重特異性抗原結合分子の使用に関する。
最初のモノクローナル抗体の開発以来、ヒトの治療のための抗体のさらなる最適化に研究が向けられてきた。最初のモノクローナル抗体は、マウスおよびラットが起源であった。抗体テクノロジーの発展は、減少した免疫原性リスクプロファイルを有するヒト化抗体およびヒト抗体の利用可能性をもたらした。遺伝学的および化学的な改変は、増大した治療可能性を有するより強力な抗体の開発をもたらしている。これには、最適化されたFcによって媒介されるエフェクター機能を有する抗体、または最適化された結合特性を有する抗体、または傷害性分子とのコンジュゲーションを通して最適化された抗腫瘍活性を有する抗体(抗体薬物コンジュゲート)が含まれる。
結合、親和性、およびK D
「結合」という用語は、本明細書において使用されるように、例えば、約10-8Mまたはそれ未満のKD値に相当する結合親和性での、抗体のような抗原結合分子の、予め決定された抗原または標的との結合をさす。
本明細書において使用されるように、本発明の文脈の中での「抗体」(Ab)という用語は、抗原との抗体結合に関連した生理学的応答を誘導し、促進し、増強し、かつ/またはモジュレートするため、適切な機能的に定義された期間、典型的な生理学的条件の下で、抗原と特異的に結合する能力を有し、好ましくは、二重特異性抗体の場合のように2種類の異なる抗原に二重に結合する、免疫グロブリン分子、免疫グロブリン分子の断片、またはそれらのいずれかの誘導体をさす。
本発明の多重特異性抗体、具体的には、二重特異性抗体は、DuoBody(登録商標)テクノロジーとしても公知の、Labrijn et al., Efficient generation of stable bispecific IgG1 by controlled Fab-arm exchange,PNAS,vol.110,no.13,pp.5145-5150,March 2013、WO 2011/131746 A2、またはLabrijn et al. Controlled Fab-arm exchange for the generation of stable bispecific IgG1,Nat Protoc,2014 Oct;9(10):2450-63に記載されるような調節Fabアーム交換(FAE)を通して生成され得る。簡単に説明すると、このインビトロの方法においては、CH3領域と共に免疫グロブリンのFc領域をいずれも含む2種類の異なる抗体が提供され、それぞれのCH3領域の配列は、異なっており、対応する変異を含有している。その結果として、第1のCH3領域と第2のCH3領域との間のヘテロ二量体相互作用は、第1および第2のCH3領域の各々のホモ二量体相互作用より強力である。抗体は、ヒンジ領域内のシステインがジスルフィド結合異性化を受けることを可能にし、調節Fabアーム交換によって二重特異性抗体を入手するため、還元条件の下でインキュベートされる。その後、ジスルフィド結合の酸化を可能にするため、(二重特異性抗体を含有している)混合物から還元剤が除去される。CH3領域の配列は、対応する変異、即ち、2個のCH3領域の異なる位置における変異、好ましくは、一方のIgG1分子のCH3領域の405位における変異および他方のIgG1分子のCH3領域の409位における変異を含有している。多重特異性抗体は、以下に限定されるわけではないが、タンデムscFv、タンデムscFv-Fc、ノブ・イントゥ・ホールIgG、scFv-Fcノブ・イントゥ・ホール、scFv-Fc-scFv、F(ab')2、Fab-scFv、(Fab'scFv)2、ダイアボディ、scダイアボディ、scダイアボディ-Fc、もしくはscダイアボディ-CH3、トリオマブ、kih IgG共通LC、CrossMab、DVD-Ig、2イン1-IgG、IgG-scFv、バイナノボディ、BiTE、TandAb、DART、DART-Fc、scFv-HSA-scFv、orthoFab-IgG、4価Tv-IgG、DNL-Fab3のようなドックアンドロック(DNL)フォーマット、およびアジメトリック足場、または類似した分子のようなその他のテクノロジーおよびフォーマットを使用して生成されてもよい。
多重特異性抗原結合分子によるTおよびEの両方の結合は好ましくは、標的T単独との結合によるよりも大きい程度に、本発明の多重特異性抗原結合分子の内部移行を誘導し、薬物がコンジュゲートされた本発明の多重特異性抗体の細胞傷害も誘導する。例えば、多重特異性抗原結合分子によるTおよびEの結合、好ましくは、同時結合によって誘導される内部移行は、Tとの結合のみを含有しておりEとの結合は含有していない対照構築物の存在下で測定される内部移行のレベルより、10%超、例えば、20%超、30%超、40%超、50%超、60%超、70%超、80%超、90%超、100%超、110%超、150%超、200%超、300%超、400%超、500%超、750%超、1000%超、2000%超、または5000%超、高くなり得る。
表面抗原分類63(CD63、Uniprot ID P08962)分子は、リソソーム関連膜糖タンパク質3(LAMP-3)としても公知である。CD63は、血小板糖タンパク質40(Pltgp40)、黒色腫抗原ME491もしくはMLA1、眼黒色腫関連抗原(OMA81H)、テトラスパニン30(TSPAN30)、グラニュロフィシン(granulophysin)、またはリソソーム膜内在性タンパク質1(LIMP-1)としても公知である。CD63は、テトラスパニンスーパーファミリーのメンバーであり、広範に発現する。CD63遺伝子は、ヒト染色体12q13に位置しており、最初の特徴決定されたテトラスパニンであった。最初、CD63は、Pltgp40として公知の、活性化血小板の細胞表面上に存在するタンパク質として発見され、また、初期ヒト黒色腫細胞においても発見され、そこではME491として公知であった。
腫瘍関連抗原は、(ある種の)腫瘍細胞の表面上に発現し、正常細胞においてはより少ない程度に表面発現が見出される抗原である。本明細書において使用されるように、「腫瘍関連抗原」という用語は、腫瘍細胞の(外)表面に優先的に発現する、タンパク質またはポリペプチドをさすのみならず、炭水化物、糖タンパク質、脂質、リポタンパク質、リポ多糖、またはその他の非タンパク質ポリマーもさす。「優先的に発現する」という用語は、この文脈の中で使用されるように、非腫瘍細胞における抗原の発現レベルより、少なくとも10%、例えば、少なくとも20%、少なくとも30%、少なくとも40%、少なくとも50%、少なくとも60%、少なくとも70%、少なくとも80%、少なくとも90%、少なくとも100%、少なくとも110%のようなである、少なくとも150%、少なくとも200%、少なくとも300%、少なくとも400%、少なくとも500%、少なくとも750%、少なくとも1000%、少なくとも2000%、または少なくとも5000%大きいレベルで、抗原が腫瘍細胞において発現することを意味する。腫瘍関連抗原は、腫瘍細胞によって合成された任意のタンパク質、糖タンパク質、またはその他の高分子に由来し得る。
一つの局面において、本発明は、第1の抗原結合ドメインと第2の抗原結合ドメインとを含む多重特異性抗原結合分子に関し、第1の抗原結合ドメインが標的分子(T)と特異的に結合し、かつ第2のドメインが内部移行性エフェクタータンパク質(E)と特異的に結合し、かつ第2の抗原結合ドメインがEとの解離定数KD値10-9〜10-8Mを有する。
(a)それぞれSEQ ID NO:2、3、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:9、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3、または
(b)それぞれSEQ ID NO:2、10、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3、または
(c)それぞれSEQ ID NO:2、11、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3、または
(d)それぞれSEQ ID NO:2、12、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3
を含む。
(i)第1の重鎖定常配列(CH)を含む第1の重鎖を含み、第1のCHが第1のCH3領域を含む、第1の結合アームと、
(ii)第2の重鎖定常配列(CH)を含む第2の重鎖を含み、第2のCHが第2のCH3領域を含む、第2の結合アームと
を含む二重特異性抗体であり、
第1のCH3領域の配列および第2のCH3領域の配列は異なっており、かつ、これらの配列は、第1の結合アームおよび第2の結合アームの各々のホモ二量体相互作用よりも第1の結合アームと第2の結合アームとの間のヘテロ二量体相互作用の方が強力であるような配列である。
ヒトHER2抗体IgG1-153のクローニングおよび作製は、他の場所;de Goeij B.E.C.G.MAbs,2014.6(2):p.392-402に記載されている。マウスモノクローナルCD63抗体2192の重鎖および軽鎖の可変ドメイン領域(下記表1を参照すること、SEQ ID NO:1および5)は、ハイブリドーマ由来RNAからの可変領域の5'RACEおよび配列決定によって、ハイブリドーマ2.19(Metzelaar M.J.Virchows Arch B Cell Pathol Incl Mol Pathol,1991.61(4):p.269-77)から入手された。可変領域を、適切なヒト重鎖定常ドメイン変異(K409RまたはF405L)と共に適切なヒト軽鎖定常ドメイン(コドン最適化、Invitrogen)を含有している哺乳動物発現ベクターpcDNA3.3(Invitrogen)へクローニングした。ヒト-マウスキメラCD63抗体は、野生型IgG1-CD63と呼ばれた。IgG1-CD63親和性バリアントのパネルを生成することを目的として、部位特異的変異誘発または直接遺伝子合成のいずれかによって、IgG1-CD63抗体の変異を可変ドメインに導入した。アミノ酸変異は、抗体名に示された(即ち、抗CD63-N74Hは、重鎖(SEQ ID NO:1、表1)のアミノ酸74位にアスパラギンからヒスチジンへの変異を有し、抗CD63-LN54Hは、SEQ ID NO:5、表1においてナンバリングされるような軽鎖の54位にアスパラギンからヒスチジンへの変異を有する)。抗体は、Vink T.Methods,2014.65(1):p.5-10によって記載されるように、HEK-293 freestyle細胞(Invitrogen)における重鎖ベクターおよび軽鎖ベクターの同時トランスフェクションおよび一過性発現によって作製された。二重特異性抗体(Duobody)は、Labrijn A.F.Nat Protoc,2014.9(10):p.2450-63によって記載されたような調節Fabアーム交換によって作製された。HIV gp120に特異的なヒト抗体IgG1-b12が、アイソタイプ対照として含まれていた(Parren P.W.H.I.AIDS,1995.9(6):p.F1-6を参照すること)。
ADCの有効性を向上させるため、1本のFabアームによって標的タンパク質(T)と特異的に結合し、第2のFabアームが、細胞傷害性ペイロードの内部移行およびリソソーム送達を容易にするエフェクタータンパク質(E)に結合する二重特異性ADCを生成した。得られたbsADCは、TおよびEの両方を発現する細胞において細胞傷害を誘導するべきである。Tを発現するがEを発現しない細胞においても、いくらかの細胞傷害が誘導され得るが、Eを発現するがTを発現しない細胞においては、bsADCは細胞傷害を誘導するべきでない。CD63がエフェクタータンパク質(E)として使用される。bsAbの腫瘍特異性を確実にするため、bsAbの抗CD63アーム(E)は、好ましくは、腫瘍特異的アーム(T)の非存在下では結合せず内部移行しないか、または極めて限定された程度にのみ、それを行うべきである。可変領域に変異を有するIgG1-CD63バリアントのパネルを、前記のように生成した。IgG1-CD63抗体バリアントを、ELISAによって可溶性CD63との結合についてスクリーニングした。簡単に説明すると、ELISAプレート(Greiner)を、0.8μg/mLヤギ抗ヒトIgG(Jackson)によって4℃で一晩コーティングした。プレートを2%ニワトリ血清によってブロッキングし、1μg/mLの抗CD63 mAb 2192のヒスチジン変異型バリアントと共にインキュベートした。段階希釈された(1〜0.0005μg/mL)組換えヒトCD63(Creative Biomart)を添加し、続いて、1μg/mLのマウス抗ポリヒスチジンビオチン(R&D)を添加した。反応をABTSを使用して可視化し、シュウ酸によって停止させた。405nmにおける蛍光を、GraphPad Prism 6ソフトウェアを使用して測定し、図示した。
C末端でポリヒスチジンタグと融合し、N末端でシグナルペプチドと融合している組換えヒトCD63第2細胞外ドメイン(Ala 103-Val 203)に対する抗CD63抗体(Creative BioMart)の結合速度論を、Octet HTX(ForteBio)で、標識なしのバイオレイヤー干渉法を使用して査定した。wt IgG1-CD63またはその親和性バリアントを、1μg/mLで、Anti-Human IgG Fc Capture Biosensors(ForteBio)へ1000秒間固定化した。ヒトHisタグ付きCD63(100nM、50nM、25nM、および12.5nM、濃度は13kDaという予測分子量を使用して算出された)の会合および解離の速度論を、30℃で、1000sの会合時間、2000sの解離時間、および1000rpmのシェーカースピードを使用して、Sample Diluent(ForteBio)において決定した。データトレースを、会合および解離の工程でSample Diluentにのみ曝露された参照センサーを使用して補正し、Y軸を基線に整列させ、工程間補正およびサビツキー・ゴーレイ(Savitzky-Golay)フィルタリングを適用した。会合速度定数Kon(1/Ms)、解離速度定数Kdis(1/s)、および平衡解離定数KD(M)を、1:1モデルおよびグローバルフルフィット(global full fit)を使用して、ForteBio Data Analysis Software v8.1によって決定した。200sの解離時間が使用された親和性バリアントT71、P72、N74、Y121、LV49、およびLY51を除き、1000sの解離時間をKDの算出のために使用した。
標的タンパク質(T)およびエフェクタータンパク質(E)の両方を発現する腫瘍細胞へのbsADCの結合は、優先的に細胞傷害をもたらすべきである。しかしながら、腫瘍関連標的タンパク質(T)の非存在下では、bsADCは、好ましくは、細胞傷害を誘導するべきでない。異なる抗CD63親和性バリアントを使用して、CD63(E)およびHER2(T)を標的とする多数のbsADCを生成した。CD63およびHIV gp120を標的とするbsADCを生成するためにも、同一の抗CD63親和性バリアントを使用した。HIV gp120は、試験された腫瘍細胞において発現しないウイルスタンパク質である。従って、CD63およびgp120を標的とするbsADC(即ち、CD63抗体およびgp120特異的抗体IgG1-b12に由来する結合ドメインを含有しているbsADC)は、CD63にのみ結合することができ、それは、Tの発現を欠く正常組織に対するADCの活性を反映する。
CD63に対する低下した親和性を有するCD63×b12二重特異性抗体が、より少ない内部移行およびリソソーム輸送を示すことを確認するため、共焦点顕微鏡実験を実施した。SK-OV-3細胞を、37℃で16時間、カバーガラス(Thermo Fisher Scientific)上で培養した。抗体(2μg/mLおよび10μg/mL)を添加し、細胞を37℃で16時間インキュベートした。細胞を、固定し、透過処理し、ヒトIgGについて染色するためのヤギ抗ヒトIgG1-FITC(Jackson)およびリソソームについて染色するためのマウス抗ヒトCD107a-APC(BD)と共に45分間インキュベートした。カバーガラスを、顕微鏡用スライドにマウントし(Calbiochem)、LAS-AFソフトウェアが装備されたLeica SPE-II共焦点顕微鏡(Leica Microsystems)によって画像化した。12ビットグレイスケールTIFF画像を、MetaMorph(登録商標)ソフトウェア(Molecular Devices)を使用して、共局在について分析した。共局在を、リソソームマーカーLAMP1とオーバーラップする抗体の全ピクセル強度を表す任意単位[AU]として図示した。異なる画像の間の細胞密度の差を補正するため、この値をLAMP1の全ピクセル強度で割った。
bsCD63×b12-ADCとしては、限定された細胞傷害を誘導するが、bsCD63×HER2-ADCとしては、低いIC50値で細胞傷害を誘導する能力に基づき、クローン抗CD63-N74Hをさらなる分析のために選択した。HER2陽性SK-OV-3細胞とのbsHER2×CD63N74Hの結合を、フローサイトメトリー(FACS Canto II,BD Biosciences)を使用して試験した。段階希釈された抗体を、SK-OV-3細胞と共に、4℃で30分間インキュベートした。抗体結合をフィコエリトリンがコンジュゲートされたヤギ抗ヒトIgG抗体(Jackson)使用して検出し、試料をフローサイトメーターで分析した。IgG1-b12をアイソタイプ対照抗体として使用した。図7に示される得られたデータは、2回の実験の平均値である。
モデル腫瘍抗原HER2を発現しない健常組織において、bsHER2×CD63N74Hが結合せず、蓄積しないことを証明するため、bsHER2×CD63N74Hならびに一価および二価の対照抗体をFITCとコンジュゲートした。HER2を発現しない健常ドナーの顆粒球および血小板において、蓄積を調査した。健常ドナー由来の全血試料をヘパリンチューブに収集した。全血を10%熱不活化cosmic仔ウシ血清が補足されたRPMI-1640で1:2希釈した。抗CD63抗体を、製造業者の説明書に従って、FITC(Thermo Scientific)とコンジュゲートし、10μg/mLの最終濃度で全血細胞へ添加した。
bsHER2×CD63N74Hの内部移行およびリソソーム共局在を、経時的に追跡した。SK-OV-3細胞(20.000)を、37℃で16時間、カバーガラス(Thermo Fisher Scientific)上で増殖させた。抗体処理の1時間前に、リソソーム活性を阻止するため、細胞を50μg/mLロイペプチン(Sigma)と共にプレインキュベートした。抗体(5μg/mLまたは1μg/mL)を添加し、細胞を37℃で1時間、3時間、または16時間インキュベートした。細胞を固定し、透過処理し、ヒトIgGについて染色するためのヤギ抗ヒトIgG1-FITC(Jackson)およびリソソームについて染色するためのマウス抗ヒトCD107a-APC(BD)と共に45分間インキュベートした。核を染色するため、ヘキスト(Molecular Probes、1:10.000)を添加した(RTで5分)。カバーガラスを顕微鏡用スライドにマウントし(Calbiochem)、LAS-AFソフトウェアが装備されたLeica SPE-II共焦点顕微鏡(Leica Microsystems)によって画像化した。12ビットグレイスケールTIFF画像を、MetaMorph(登録商標)ソフトウェア(Molecular Devices)を使用して、共局在について分析した。共局在を、リソソームマーカーLAMP1とオーバーラップする抗体の全ピクセル強度を表す任意単位[AU]として図示した。異なる画像の間の細胞密度の差を補正するため、この値をLAMP1の全ピクセル強度で割った。全IgG染色を、FITCの全ピクセル強度として図示し、LAMP1の全ピクセル強度で割った。
HER2ダウンモジュレーションELISAを使用して、bsHER2×CD63N74Hによって観察された強力なリソソームターゲティングが、標的抗原の増大したダウンモジュレーションをもたらすか否かを調査した。AU565細胞、SK-OV-3細胞、およびColo205細胞を、T25フラスコ(Greiner)に播種し(細胞100万個/フラスコ)、コンフルエントな単層を入手するため、37℃で一晩インキュベートした。抗体を添加し(10μg/mL)、細胞を37℃でさらに3日間培養し、洗浄し、溶解した。全タンパク質レベルを、製造業者の説明書に従って、ビシンコニン酸(BCA)タンパク質アッセイ試薬(Pierce)を使用して定量化した。次に、ELISAプレート(Greiner)を、1μg/mLウサギ抗ヒトHER2(Cell Signalling Technology)でコーティングし、2%ニワトリ血清(Hyclone)によってブロッキングし、50μL細胞溶解物と共にインキュベートした。HER2を検出するため、ヤギ抗ヒトHER2-ビオチン(R&D、50ng/mL)を添加し、続いて、ストレプトアビジン-ポリHRP(Sanquin、100ng/mL)を添加した。反応をABTSを使用して可視化し、シュウ酸によって停止させた。405nmにおける蛍光を測定し、HER2の量を未処理の細胞に対する百分率として表した。
細胞を、96穴組織培養プレートに播種し(細胞5,000個/ウェル)、37℃で6時間付着させた。段階希釈されたADC(10〜0.0005μg/mL)を添加し、細胞を37℃でさらに3日間インキュベートした。細胞生存度を、製造業者のガイドラインに従って、CellTiter-GLO(Promega)を使用して査定した。生存細胞の百分率を、未処理の細胞に対する百分率として図示した。
bsHER2×CD63N74H-ADCの抗腫瘍効果を、SK-OV-3腫瘍異種移植片において調査した。6〜11週齢の雌SCIDマウス(C.B-17/IcrPrkdc-scid/CRL)を、Charles Riverから購入した。マウスの右側腹部に5×106個のSK-OV-3細胞を接種することによって、皮下腫瘍を誘導した。腫瘍体積を、0.52×長さ×幅2(mm3)としてデジタルノギス測定から算出した。腫瘍が200〜400mm3に達した時、マウスを、等しい腫瘍サイズ分布を有する7匹のマウスの群に分類し、mAbを腹腔内注射した(8mg/kg)。研究中、血漿中のヒトIgGの存在を確認するため、血液試料をヘパリン含有チューブに収集した。IgGレベルを比濁計(Siemens Healthcare)を使用して定量化した。血漿中にヒトIgGを示さなかったマウスは、分析から排除した。
他の腫瘍抗原の内部移行およびリソソームターゲティングを増強するためにも同様に、Eに対する低親和性結合ドメインを使用することができるか否かを調査した。インテグリンは、内部移行のためにクラスター形成に頼ることが記載されている。従って、一価インテグリン抗体は、最小の内部移行およびリソソームターゲティングを示すと予想され、従って、TおよびEを標的とする二重特異性フォーマットにおいて内部移行が増強され得るか否かを試験するための適切なモデルシステムを表し得る。この目的のため、インテグリンβ1を標的とする抗体huK20を選択した。抗体huK20の配列を、WO1996/008564から入手し、その実施例1に記載されたようにして、クローニングし、作製した。
インテグリンβ1およびCD63の二重ターゲティングがbsβ1×CD63N74Hの増大したリソソーム共局在をもたらすか否かを調査するため、細胞膜上にインテグリンβ1の異なるコピー数を有する腫瘍細胞株によって共焦点顕微鏡実験を実施した。20.000個のSK-OV-3細胞、NCI-H1975細胞、およびMDA-MB-468細胞を、37℃で4時間、カバーガラス(Thermo Fisher Scientific)上で増殖させた。抗体処理の1時間前に、リソソーム活性を阻止するため、50μg/mLロイペプチン(Sigma)と共に細胞をプレインキュベートした。抗体(2μg/mL、0.4μg/mL、および0.08μg/mL)を添加し、細胞を37℃で16時間インキュベートした。細胞を固定し、透過処理し、ヒトIgGについて染色するためのヤギ抗ヒトIgG1-FITC(Jackson)およびリソソームについて染色するためのマウス抗ヒトCD107a-APC(BD)と共に45分間インキュベートした。ヘキスト(Molecular Probes、1:10.000)を、核を染色するために添加した(RTで5分間)。カバーガラスを顕微鏡用スライドにマウントし(Calbiochem)、LAS-AFソフトウェアが装備されたLeica SPE-II共焦点顕微鏡(Leica Microsystems)によって画像化した。12ビットグレイスケールTIFF画像を、MetaMorph(登録商標)ソフトウェア(Molecular Devices)を使用して共局在について分析した。共局在は、リソソームマーカーLAMP1とオーバーラップする抗体の全ピクセル強度を表す任意単位[AU]として図示された。異なる画像の間の細胞密度の差を補正するため、この値をLAMP1の全ピクセル強度で割った。
bsβ1×CD63N74Hの内部移行およびリソソーム共局在の速度論をよりよく理解するため、bsβ1×CD63N74Hの内部移行およびリソソーム共局在を経時的に追跡した。SK-OV-3細胞(20.000個)を、37℃で16時間、カバーガラス(Thermo Fisher Scientific)上で増殖させた。抗体処理の1時間前に、リソソーム活性を阻止するため、50μg/mLロイペプチン(Sigma)と共に細胞をプレインキュベートした。抗体(2μg/mL)を添加し、細胞を37℃で1時間、3時間、または16時間インキュベートした。細胞を固定し、透過処理し、ヒトIgGについて染色するためのヤギ抗ヒトIgG1-FITC(Jackson)およびリソソームについて染色するためのマウス抗ヒトCD107a-APC(BD)と共に45分間インキュベートした。ヘキスト(Molecular Probes、1:10.000)を、核を染色するために添加した(RTで5分間)。カバーガラスを顕微鏡用スライドにマウントし(Calbiochem)、LAS-AFソフトウェアが装備されたLeica SPE-II共焦点顕微鏡(Leica Microsystems)によって画像化した。12ビットグレイスケールTIFF画像を、MetaMorph(登録商標)ソフトウェア(Molecular Devices)を使用して共局在について分析した。共局在を、リソソームマーカーLAMP1とオーバーラップする抗体の全ピクセル強度を表す任意単位[AU]として図示し、LAMP1の全ピクセル強度で割った。全IgG染色をFITCの全ピクセル強度として図示し、LAMP1の全ピクセル強度で割った。
Claims (53)
- 第1の抗原結合ドメインと第2の抗原結合ドメインとを含む多重特異性抗原結合分子であって、該第1の抗原結合ドメインが標的分子(T)と特異的に結合し、かつ該第2の抗原結合ドメインが内部移行性エフェクタータンパク質(E)と特異的に結合し、かつ該第2の抗原結合ドメインがEとの解離定数KD値10-9〜10-8Mを有する、多重特異性抗原結合分子。
- (i)前記第1の抗原結合ドメインを含む第1の結合アームと、(ii)前記第2の抗原結合ドメインを含む第2の結合アームとを含む、請求項1に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 二重特異性抗原結合分子である、請求項1または2に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 10-9より高く10-8Mより低い、Eとの解離定数KD値を、前記第2の抗原結合ドメインが有する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第2の抗原結合ドメインが、Eとの解離定数KD値2.0×10-9〜9.0×10-9Mを有する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第2の抗原結合ドメインが、Eとの解離定数KD値2.0×10-9〜7.3×10-9Mを有する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Eが、細胞表面に発現する分子であり、該分子が該細胞へ内部移行する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記標的分子(T)の存在下でのみ、Eとの結合によって前記細胞へ内部移行する、請求項7に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第1のドメインが前記標的分子(T)と特異的に結合した場合にのみ、前記多重特異性抗原結合分子がEとの結合によって前記細胞へ内部移行する、請求項7または8に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Eと結合すると、Tを発現しない細胞と比較してより効率的に、Tを発現する細胞へ内部移行する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Tと結合すると、Eを発現しない細胞と比較してより効率的に、Eを発現する細胞へ内部移行する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Eと結合すると、Tを発現する細胞中のリソソーム区画へ輸送される、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Eと結合すると、Tを発現しない細胞と比較してより効率的に、Tを発現する細胞中のリソソーム区画へ輸送される、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Tと結合すると、Eを発現しない細胞と比較してより効率的に、Eを発現する細胞中のリソソーム区画へ輸送される、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Eが、CD63、MHC-I、クレメン(Kremen)1、クレメン2、LRP5、LRP6、トランスフェリン受容体、LDLr、MAL、V-ATPアーゼ、およびASGRからなる群より選択される、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- EがCD63である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Eが、Eと細胞表面に発現する内部移行性の受容体分子との間の相互作用によって細胞へ内部移行する可溶性リガンドである、請求項1〜6のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Tが、細胞表面に発現する標的分子である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- Tが腫瘍関連抗原である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- TがHER2である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第1の抗原結合ドメインおよび/または前記第2の抗原結合ドメインが、少なくとも1個の抗体可変領域を含む、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 多重特異性抗体、好ましくは二重特異性抗体であるか、または、多重特異性の、好ましくは二重特異性の、それらの抗体断片もしくは組換え改変部分である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第1の抗原結合ドメインを含む第1の結合アームと前記第2の抗原結合ドメインを含む第2の結合アームとを含む二重特異性抗体である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第1の抗原結合ドメインが、第1の重鎖可変配列(VH)および第1の軽鎖可変配列(VL)を含み、かつ前記第2の抗原結合ドメインが、第2の重鎖可変配列(VH)および第2の軽鎖可変配列(VL)を含み、かつ該可変配列が各々、3つのCDR配列であるCDR1、CDR2、およびCDR3を含む、請求項23に記載の多重特異性抗原結合分子。
- (i)前記第1の結合アームが、第1の重鎖可変配列(VH)と第1の重鎖定常配列(CH)とを含む第1の重鎖、および第1の軽鎖可変配列(VL)と第1の軽鎖定常配列(CL)とを含む第1の軽鎖を含み、かつ(ii)前記第2の結合アームが、第2の重鎖可変配列(VH)と第2の重鎖定常配列(CH)とを含む第2の重鎖、および第2の軽鎖可変配列(VL)と第2の軽鎖定常配列(CL)とを含む第2の軽鎖を含む、請求項23または24に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第1の結合アームが、キメラ抗体にまたはヒト化抗体にまたはヒト抗体に由来する、請求項23〜25のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第2の結合アームが、キメラ抗体にまたはヒト化抗体にまたはヒト抗体に由来する、請求項23〜26のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 二重特異性抗体であり、該二重特異性抗体が、全長抗体、好ましくはIgG1抗体である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第2の抗原結合ドメインが、Eとの該第2の抗原結合ドメインの親和性をモジュレートする1個または複数個の変異を有する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第2の抗原結合ドメインが、Eとの該第2の抗原結合ドメインの親和性をモジュレートする1個または複数個の変異をVH中および/またはVL中に有する抗体に由来する、請求項29に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記変異が、1アミノ酸置換、好ましくは、1アミノ酸ヒスチジン置換である、請求項30に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第2のドメインが、
a. それぞれSEQ ID NO:2、3、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:9、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3、または
b. それぞれSEQ ID NO:2、10、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3、または
c. それぞれSEQ ID NO:2、11、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3、または
d. それぞれSEQ ID NO:2、12、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3
を含む、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。 - 前記第2の結合ドメインが、それぞれSEQ ID NO:2、12、および4に提供されるVH CDR 1、2、および3、ならびに、それぞれSEQ ID NO:6、7、および8に提供されるVL CDR 1、2、および3を含む、請求項32に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記第1の抗原結合ドメインおよび前記第2の抗原結合ドメインが各々、抗体重鎖可変ドメインと抗体軽鎖可変ドメインの対である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 腫瘍関連標的(T)×CD63二重特異性抗体である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- HER2×CD63二重特異性抗体である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- HER2を発現する細胞などの腫瘍関連標的(T)を発現する細胞との結合について、5.0μg/ml未満、例えば0.5μg/ml未満などの、フローサイトメトリーによって決定されたEC50値を有する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- KDが30℃でバイオレイヤー干渉法によって決定される、前記請求項のいずれかに一項記載の多重特異性抗原結合分子。
- (i)第1の重鎖定常配列(CH)を含む第1の重鎖を含み、該第1のCHが第1のCH3領域を含む、第1の結合アームと、
(ii)第2の重鎖定常配列(CH)を含む第2の重鎖を含み、該第2のCHが第2のCH3領域を含む、第2の結合アームと
を含む二重特異性抗体であり、
該第1のCH3領域の配列および該第2のCH3領域の配列が異なっており、かつ、これらの配列が、該第1の結合アームおよび該第2の結合アームの各々のホモ二量体相互作用よりも該第1の結合アームと該第2の結合アームとの間のヘテロ二量体相互作用の方が強力であるような配列である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。 - 前記第1の重鎖 CH3領域において、ヒトIgG1重鎖の位置T366、L368、K370、D399、F405、Y407、またはK409に対応する位置のアミノ酸のうちの少なくとも1個が置換されており、かつ前記第2の重鎖 CH3領域において、ヒトIgG1重鎖の位置T366、L368、K370、D399、F405、Y407、またはK409に対応する位置のアミノ酸のうちの少なくとも1個が置換されており、かつ該第1の重鎖および該第2の重鎖が、同一の位置においては置換されておらず、かつアミノ酸位置が、EUインデックスに従ってナンバリングされている、請求項39に記載の多重特異性抗原結合分子。
- (i)前記第1のCH3領域がF405L置換を有しかつ前記第2のCH3領域がK409R置換を有するか、または(ii)該第1のCH3領域がK409R置換を有しかつ該第2のCH3領域がF405L置換を有する、請求項40に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 細胞傷害性部分に、放射性同位体に、または薬物にコンジュゲートされている、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記細胞傷害性部分が、マイタンシン、カリチアマイシン、デュオカルマイシン、デュオスタチン(duostatin)、デュオスタチン3、デュオスタチン5、ラケルマイシン(rachelmycin)(CC-1065)、アウリスタチン(auristatin)、モノメチルアウリスタチンE、モノメチルアウリスタチンF、ドキソルビシン、ドラスタチン、ピロロベンゾジアゼピン、IGNに基づく毒素、αアマニチン、またはそれらのいずれかの類似体、誘導体、もしくはプロドラッグからなる群より選択される、請求項42に記載の多重特異性抗原結合分子。
- 前記多重特異性抗原結合分子によるTおよびEの結合が、T単独の結合より大きい程度に該多重特異性抗原結合分子の内部移行を誘導する、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。
- タンデムscFv、タンデムscFv-Fc、scFv-Fcノブ・イントゥ・ホール(knob-into-hole)、scFv-Fc-scFv、F(ab')2、Fab-scFv、(Fab'scFv)2、ダイアボディ(Diabody)、scダイアボディ、scダイアボディ-Fc、scダイアボディ-CH3、またはアジメトリック足場(azymetric scaffold)である、前記請求項のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子の二重特異性抗体断片。
- がんを処置および/または予防するための方法において使用するための、請求項1〜44のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子または請求項45に記載の二重特異性抗体断片。
- 前記がんが、子宮内膜/子宮頸がん、肺がん、悪性黒色腫、卵巣がん、膵臓がん、前立腺がん、精巣がん、滑膜肉腫などの軟部腫瘍、乳がん、脳腫瘍、白血病、リンパ腫、マスト細胞腫、腎臓がん、子宮頚がん、膀胱がん、食道がん、胃がん、または結腸直腸がんである、請求項46に記載の使用のための多重特異性抗原結合分子。
- 前記多重特異性抗原結合分子を対象へ投与する工程を含む、該対象における腫瘍を標的とする方法
において使用するための、請求項1〜44のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子。 - 請求項1〜44のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子を活性成分として含む、薬学的組成物。
- それを必要とする対象へ、請求項1〜44のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子または請求項49に記載の薬学的組成物を投与する工程を含む、疾患の処置の方法。
- 請求項1〜44のいずれか一項に記載の多重特異性抗原結合分子をコードする、核酸。
- 原核宿主細胞株または真核宿主細胞株において前記核酸を発現することができる、請求項51に記載の核酸を含有している発現ベクター。
- 請求項52に記載のベクターを含む、原核宿主細胞株または真核宿主細胞株。
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