JP2019172696A

JP2019172696A - セロトニン放出ホルモン、アドレナリン放出ホルモン、ノルアドレナリン放出ホルモン、グルタミン酸放出ホルモンおよび副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン関連の医学的状態の処置および診断のためのマイクロｒｎａおよび該マイクロｒｎａを含む組成物

Info

Publication number: JP2019172696A
Application number: JP2019114138A
Authority: JP
Inventors: チェン，アロン; Chen Alon; イスラー，オルナ; Issler Orna
Original assignee: Yeda Research and Development Co Ltd
Current assignee: Yeda Research and Development Co Ltd
Priority date: 2014-02-05
Filing date: 2019-06-19
Publication date: 2019-10-10
Also published as: JP2017506228A; CA2936158A1; IL246942A0; IL246942B; WO2015118537A3; CN106715695A; US20210230597A1; JP2021020951A; BR112016018145A2; WO2015118537A2; US20160348101A1; US11680263B2; US20190055561A1; EP3102679A2; CA2936158C; US10975373B2; US10125365B2; CN111733231A; CN106715695B; EP3102679B1

Abstract

【課題】双極性障害を処置する方法の提供。【解決手段】治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質または前記ｍｉＲ−１３５もしくは前記その前駆物質をコードする核酸分子を対象に投与することにより、双極性障害を処置する。ｍｉＲ−１３５がｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂからなる群から選択される。【選択図】なし

Description

本発明はそのいくつかの実施形態において、マイクロＲＮＡに関し、限定するものではないが、より具体的には、疾患を診断し、処置し、また、処置をモニターするための該マイクロＲＮＡの使用に関する。

大うつ病などの気分障害、および不安障害は、世界中で人口の約１０％が罹患する最も一般的で、増加傾向にある健康問題の一部である。数十年の研究にもかかわらず、うつ病発症の背後に潜む機構、易罹患性および利用可能な治療法は部分的に理解されているにすぎない。現在、患者の約１／３だけが、利用可能な処置に応答するに過ぎず、したがって、その病理学をより良く理解することが強く求められている。
うつ病の病因に関する現在の定説は、環境要因と遺伝性素因との間の複雑な相互作用からなり、エピジェネティックプロセスの機構的役割が示唆されている。

セロトニン（５ＨＴ）は、様々な認知機能、情動機能および生理学的機能を調節するために脳全体に広範囲に投射する縫線核（ＲＮ）によって脳内で産生されるモノアミン神経伝達物質である。調節不全のセロトニン活性と、うつ病とのつながりは十分に確立されている［非特許文献１］。５ＨＴのレベル、ならびに、その産生、分泌、再取り込みおよび不活性化に関わる遺伝的回路がうつ病では調節不全となっている。さらに、ほとんどの現在利用可能な抗うつ剤は、５ＨＴ系に関連づけられるタンパク質の機能を標的としており、シナプスにおいて５ＨＴレベルが増加している［非特許文献２］。利用可能な治療剤は、症状の軽減が認められるまでに長期間の投与を必要とする。

マイクロＲＮＡ（ｍｉＲ）は、遺伝子発現を転写後に抑制する内在性の小さい（およそ２２ヌクレオチドの）ノンコーディングＲＮＡ分子のサブセットである。ｍｉＲは、プライマリーｍｉＲ分子として転写され、細胞核内でプロセッシングされて、ステムループ構造を有する前駆体ｍｉＲになり、その後、この前駆体ｍｉＲは細胞質に放出され、そこで、活性な成熟型ｍｉＲにさらにプロセッシングされる。成熟型ｍｉＲは続いて、ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体に組み込まれ、主に、特定のｍＲＮＡ分子の３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）に結合することによって機能する。結合は、ｍｉＲの５’末端に位置する６〜８番目のヌクレオチド配列であるシード配列を介して生じる。このシード配列は、標的ｍＲＮＡの３’ＵＴＲにある相補的なシードマッチ配列に対して塩基対形成する。ｍｉＲの結合は、直接的なｍＲＮＡ不安定化または翻訳抑制を引き起こし、最終的には、標的遺伝子のタンパク質レベルが減少する。

ｍｉＲは神経系に多量に存在しており、初期の研究は主に、発生、癌および神経変性障害、ならびに、可塑性などの正常なプロセスとの関連においてニューロンに集中している［非特許文献３］。種々の成体げっ歯類またはヒト脳構造におけるｍｉＲレベルが一連の行動操作および薬理学的操作により影響を受けるといういくつかのｍｉＲスクリーニング調査が報告された［非特許文献４］。加えて、ｍｉＲが、ヒトおよびマウスモデルの両方で、精神医学的障害、例えば、統合失調症、自閉症、ならびに、同様に、うつ病および不安症において一定の役割を果たすことが示唆されている［非特許文献５］。近年、いくつかの調査により、５ＨＴ系の調節におけるｍｉＲの新たに出現した役割、および、うつ病関連障害とのそれらの潜在的連関を示す、５ＨＴ関連遺伝子の調節におけるｍｉＲの関与が明らかにされている［非特許文献６］。

特許文献１（ＳｔｏｆｆｅｌＭ．ら）は、マイクロＲＮＡの発現を調節する化学修飾されたオリゴヌクレオチドを開示している。特許文献１はさらに、中枢神経系の疾患を処置するための、マイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１２２、ｍｉＲ−１６、ｍｉＲ−１９２およびｍｉＲ−１９４）のサイレンシング方法を開示する。

米国特許出願公開第２０１０−２２２４１３号公報

ＭｉｃｈｅｌｓｅｎＫＡ．ｅｔａｌ．，ＢｒａｉｎＲｅｓＲｅｖ（２００７）５５（２）：３２９−４２ＫｒｉｓｈｎａｎＶａｎｄＮｅｓｔｌｅｒＥＪ，Ｎａｔｕｒｅ（２００８）４５５：８９４−９０２ＫｏｓｉｋＫＳ．ＮａｔＲｅｖＮｅｕｒｏｓｃｉ（２００６）７：９１１−２０Ｏ’ＣｏｎｎｏｒＲ．Ｍ．ｅｔａｌ．，ＭｏｌＰｓｙｃｈｉａｔｒｙ（２０１２）１７：３５９−３７６ＭｉｌｌｅｒＢＨａｎｄＷａｈｌｅｓｔｅｄｔＣ，ＢｒａｉｎＲｅｓ（２０１０）１３３８：８９−９９ＭｉｌｌａｎＭＪ．ＣｕｒｒＯｐｉｎＰｈａｒｍａｃｏｌ（２０１１）１１（１）：１１−２２

本発明のいくつかの実施形態の態様では、処置を必要としている対象の双極性障害を処置する方法であって、治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはｍｉＲ−１３５もしくはその前駆物質をコードする核酸分子をその対象に投与することにより、双極性障害を処置することを含む方法が提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、治療上の有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはｍｉＲ−１３５もしくはその前駆物質をコードする核酸分子の、それを必要としている対象の双極性疾患を処置するために特定された薬物の製造のための使用が提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、ｍｉＲ−１３５、その前駆物質およびｍｉＲ−１３５またはその前駆物質をコードする核酸分子ならびに双極性障害の処置のための薬物からなる群から選択される薬剤を包装するパッケージ材料を含む製品が提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、抗うつ剤または気分障害の処置用の薬物の処置をモニターする方法であって、（ａ）処置を必要とするヒト対象を抗うつ剤または気分障害の処置用の薬物により処置すること、および、（ｂ）ヒト対象の生物試料中のｍｉＲ−１３５の発現レベルを処置の前後で測定することを含む方法が提供され、抗うつ剤または気分障害の処置用薬物による処置の前におけるｍｉＲ−１３５の発現レベルと比較して、抗うつ剤による処置後におけるｍｉＲ−１３５のより高い発現レベルにより、処置が効果的であることが示される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、診断を必要としているヒト対象の気分障害を診断する方法であって、ヒト対象の生物試料におけるｍｉＲ−１３５の発現レベルを測定することを含む方法が提供され、健康なヒト対象の生物試料に比べて、ｍｉＲ−１３５のより低い発現レベルが、気分障害を示す。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、ｍｉＲ−１３５を含む単離ポリヌクレオチドが提供され、ｍｉＲ−１３５は、ロックド核酸（ＬＮＡ）および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される修飾を含む。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、配列番号１９４、配列番号１９５、配列番号１９６、配列番号１９７、配列番号１９８、配列番号１９９、配列番号２００、配列番号２０１、配列番号２０２、配列番号２０３、配列番号２０４、配列番号２０５、配列番号２０６、配列番号２０７、配列番号２０８および配列番号２０９からなる群から選択される修飾ｍｉＲ１３５を含む単離ポリヌクレオチドが提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２、ｍｉＲ−２６、ｍｉＲ−２７、ｍｉＲ−１５およびｍｉＲ−１９からなる群から選択されるマイクロＲＮＡを含む単離ポリヌクレオチドが提供され、マイクロＲＮＡは、ロックド核酸（ＬＮＡ）および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される修飾を含む。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、本発明のいくつかの実施形態の単離核酸、および薬学的に許容可能なキャリアを含む医薬組成物が提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；および神経膠細胞中のジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される遺伝子の発現をアップレギュレーションする方法であって、（ａ）神経膠細胞中のｍｉＲ−１３５またはその前駆物質の活性または発現をダウンレギュレーションすること、および（ｂ）神経膠細胞中の遺伝子の発現を測定し、それにより、遺伝子の発現をアップレギュレーションすることを含む方法が提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；および神経膠細胞中のジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される遺伝子の発現をダウンレギュレーションする方法であって、（ａ）神経膠細胞中のｍｉＲ−１３５またはその前駆物質の活性または発現をアップレギュレーションすること、および（ｂ）神経膠細胞中の遺伝子の発現を測定し、それにより、遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む方法が提供される。

本発明のいくつかの実施形態の態様では、セロトニンレベルの上昇が処置を必要としている対象にとって治療上有益である医学的状態を処置する方法であって、対象にｍｉＲ−１３５標的の活性または発現をダウンレギュレーションすることが可能な、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；およびジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される薬剤を投与することを含む方法が提供され、前記薬剤はｍｉＲ−１３５ではなく、それにより、該医学的状態を処置する。

本発明のいくつかの実施形態では、医学的状態は、双極性障害、うつ病、大うつ病、不安症、ストレス、疲労、認知機能障害、パニック発作、強迫行動、嗜癖、社会恐怖症、統合失調症、睡眠障害、摂食障害、成長障害および生殖障害からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂからなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、配列番号５８〜６２に示される通りである。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、配列番号１９２〜１９３に示される通りのｍｉＲ−１３５＊を含む。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は修飾糖−リン酸骨格および修飾塩基からなる群から選択される修飾を含む。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は糖およびヌクレオシド間結合の両方における修飾を含む。

本発明のいくつかの実施形態では、修飾は、ホスホロチオエート、キラルホスホロチオエート、ジチオリン酸、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、メチルホスホネート、アルキルホスホネート、キラルホスホネート、ホスフィネート、ホスホルアミデート、アミノアルキルホスホルアミデート、チオノホスホルアミデート、チオノアルキルホスホネート、チオノアルキルホスホトリエステル、ボラノホスフェート、リン酸ジエステル、２’−Ｏ−メトキシエチル、２’−Ｏ−メチル、２’−フルオロ、ロックド核酸（ＬＮＡ）、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、配列番号１９４〜２０９に示される通りである。

本発明のいくつかの実施形態では、双極性障害は、双極Ｉ型、双極ＩＩ型、急速交代型双極性障害、気分循環症および特定不能の双極性障害（ＢＤ−ＮＯＳ）からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、配列番号５８、配列番号５９、配列番号６０、配列番号６１および配列番号６２からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、配列番号１９２および配列番号１９３からなる群から選択されるｍｉＲ−１３５＊を含む。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５は、配列番号１９４、配列番号１９５、配列番号１９６、配列番号１９７、配列番号１９８、配列番号１９９、配列番号２００、配列番号２０１、配列番号２０２、配列番号２０３、配列番号２０４、配列番号２０５、配列番号２０６、配列番号２０７、配列番号２０８および配列番号２０９からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、双極性障害の処置用薬物は、リチウム、抗精神病薬物および気分安定剤薬物からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、方法は、（ｃ）ステップ（ｂ）でｍｉＲ−１３５のより高い発現レベルが観察される場合に、ヒト対象を処置することをさらに含む。

本発明のいくつかの実施形態では、方法は、処置に先立ってヒト対象から生物試料を得ることをさらに含む。

本発明のいくつかの実施形態では、気分障害は双極性障害を含む。

本発明のいくつかの実施形態では、抗うつ剤は、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）、三環系抗うつ剤およびノルアドレナリン再取り込み阻害剤（ＮＲＩ）からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、気分障害の処置用薬物は、リチウム、抗精神病薬物および気分安定剤薬物からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、生物試料は、全血、血清、血漿および白血球からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、気分障害は、双極性障害、うつ病、大うつ病、不安症、ストレス、疲労、認知機能障害、パニック発作、強迫行動、嗜癖、社会恐怖症、統合失調症、睡眠障害、および摂食障害からなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、ｍｉＲ−１３５はｍｉＲ−１３５ａまたはｍｉＲ−１３５ｂからなる群から選択される。

本発明のいくつかの実施形態では、対象はヒト対象である。

別途定義されない限り、本明細書で使用されるすべての技術的用語および／または科学的用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載される方法および材料と類似または同等である方法および材料を本発明の実施形態の実施または試験に使用することができるが、例示的な方法および／または材料が下記に記載される。矛盾する場合には、定義を含めて、本特許明細書が優先する。加えて、材料、方法および実施例は例示にすぎず、限定であることは意図されない。

本明細書では、添付の図面を参照しながら、本発明のいくつかの実施形態を例示の目的のみで説明する。ここで特に詳細に参照する図面に関しては、示されている詳細事項は例示であり、本発明の実施形態を図解により考察することを目的としていることを強調しておきたい。その際、図面により行う説明によって、本発明の実施形態を実施する方法が当業者に明らかになるであろう。

図１Ａは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ａは、５ＨＴニューロンにおける示差的に発現したｍｉＲＮＡのグラフである。Ｌｏｗｅｓｓ正規化値が、平均対数強度に対してプロットされるスポット強度のｌｎ２倍率変化として示される（ＭＡプロット）。図１Ｂは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｂは、対照と比較して、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−３７５の増大したレベルを示す、ｍｉＲのリアルタイムＰＣＲにおけるアレイ結果の検証である。ｎ＝５個の５ＨＴ細胞、ｎ＝４個の非５ＨＴ。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊Ｐ＝０．００７１。図１Ｃは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｃは、対照と比較して、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５ａの低下したレベルを示す、ｍｉＲのリアルタイムＰＣＲにおけるアレイ結果の検証である。Ｎ＝５個の５ＨＴ細胞、ｎ＝４個の非５ＨＴ。＊＊Ｐ＝０．００７５。図１Ｄは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｄは、Ｓｌｃ６ａ４についての生物情報学予測を５ＨＴマイクロアレイ結果と組み合わせることを表し、インビトロ試験のために選ばれるｍｉＲを位置づけるバンダイアグラムである。図１Ｅは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｅは、Ｈｔｒ１ａについての生物情報学予測を５ＨＴマイクロアレイ結果と組み合わせることを表し、インビトロ試験のために選ばれるｍｉＲを位置づけるバンダイアグラムである。図１Ｆは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｆは、Ｔｐｈ２についての生物情報学予測を５ＨＴマイクロアレイ結果と組み合わせることを表し、インビトロ試験のために選ばれるｍｉＲを位置づけるバンダイアグラムである。図１Ｇは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｇは、ＭａｏＡについての生物情報学予測を５ＨＴマイクロアレイ結果と組み合わせることを表し、インビトロ試験のために選ばれるｍｉＲを位置づけるバンダイアグラムである。図１Ｈは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｈは、ｍｉＲ−１８１ｃおよびｍｉＲ−２７ｂがＴｐｈ２の３’ＵＴＲを標的とすることができることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイ結果を示すグラフである。図１Ｉは、セロトニン（５ＨＴ）ニューロンにおけるマイクロＲＮＡ発現を示す。図１Ｉは、ｍｉＲ−２７ｂがＨｔｒ１ａＭａｏＡを標的とすることができることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイ結果を示すグラフである。図２Ａは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ａは、ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂ（それぞれ、配列番号２４および２６）がＳｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲを標的とすることの説明である。図２Ｂは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｂは、ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂ（それぞれ、配列番号２４および２６）がＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲを標的とすることの説明である。図２Ｃは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｃは、ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂがＳｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲを標的とすることができることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイ結果のグラフである。ルシフェラーゼアッセイのデータは、記載された遺伝子の３’ＵＴＲおよび空ベクター、または、特定のｍｉＲを過剰発現するベクターを遺伝子導入されたＨＥＫ２９３細胞における、同時遺伝子導入されたホタルルシフェラーゼレポーターの活性に対して正規化されたウミシイタケルシフェラーゼ活性を示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＝０．０１４、＊＊＊Ｐ＝０．０００２、ｍｉＲ−１６については＃ｐ＜０．０５３５、ｍｉＲ−２７については＃Ｐ＝０．０９６７。図２Ｄは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｄは、ｍｉＲ−１３５ａ、ｍｉＲ−１３５ｂ、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１ＣおよびｍｉＲ−２６ａがＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲを標的とすることができることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイ結果のグラフである。＊＊＊Ｐ＜０．０００１、＊＊Ｐ＝０．００２９。図２Ｅは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｅは、ｍｉＲ−１３５に対するシードマッチ（配列番号２７〜４１）の、ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲの保存を示す。図２Ｆは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｆは、ｍｉＲ−１３５についてのＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲシードマッチ（配列番号４２〜５４）を示す。シード１がマウスの３’ＵＴＲにおいてのみ現れ、シード２が高度に保存されていることを示している。図２Ｇは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｇは、ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲにおけるｍｉＲ−１３５のシードマッチでの変異がｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂの抑制因子効果をブロックしたことを示すグラフである。＊＊＊Ｐ＜０．０００１、＊＊Ｐ＝０．００３２。図２Ｈは、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲ（配列番号２５）とＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ（配列番号２７）を標的とするマイクロＲＮＡを示す。図２Ｈは、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲにおけるｍｉＲ−１３５のシードマッチでの変異を個々に行った場合および両方を一緒に行った場合を例示するグラフであり、ｍｉＲ−１３５ｂが両方のシードマッチを介してＨｔｒ１ａを標的とし、ｍｉＲ−１３５ａはシード２を介してのみ標的とすることを示している。＊＊＊Ｐ＜０．０００１。図３Ａは、異なる条件下でのｍｉＲ−１３５ａレベルとｍｉＲ−１３５ｂレベルを示す。図３Ａは、急性ストレスの後でのＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ａレベルのダウンレギュレーションを示すグラフである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ（０群ではｎ＝８、９０群ではｎ＝１０、２４群ではｎ＝９）を表す。＊＊＊Ｐ＜０．０００１、＊Ｐ＝０．０３５７。図３Ｂは、異なる条件下でのｍｉＲ−１３５ａレベルとｍｉＲ−１３５ｂレベルを示す。図３Ｂは、急性ストレスの後でのＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ｂレベルのダウンレギュレーションを示すグラフである。＊＊＊Ｐ＜０．０００１、＊＊Ｐ＝０．００５５。図３Ｃは、異なる条件下でのｍｉＲ−１３５ａレベルとｍｉＲ−１３５ｂレベルを示す。図３Ｃは、マウスが社会的敗北にさらされたかどうかに関係なく、イミプラミンの急性投与および長期投与の後でのＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ａレベルのアップレギュレーションを例示するグラフである（対照長期生理食塩水および対照長期イミプラミンではｎ＝８、対照急性投与のイミプラミンではｎ＝７、社会的敗北に対する長期生理食塩水ではｎ＝１１、社会的敗北に対する長期イミプラミンではｎ＝９）。＊＊Ｐ＝０．００３。図３Ｄは、異なる条件下でのｍｉＲ−１３５ａレベルとｍｉＲ−１３５ｂレベルを示す。図３Ｄは、マウスが社会的敗北にさらされたかどうかに関係なく、イミプラミンの急性投与および長期投与の後でのＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ｂレベルのアップレギュレーションを示すグラフである。＊＊Ｐ＝０．００９３。図３Ｅは、異なる条件下でのｍｉＲ−１３５ａレベルとｍｉＲ−１３５ｂレベルを示す。図３Ｅは、ＮＲＩまたは生理食塩水ではなく、ＳＳＲＩの急性投与または長期投与の後のＲＮでのｍｉＲ−１３５ａレベルにおける増大を示すグラフである。（急性生理食塩水（ｎ＝７）を除く各群でｎ＝８）。＊＊＊Ｐ＜０．０００１。図３Ｆは、異なる条件下でのｍｉＲ−１３５ａレベルとｍｉＲ−１３５ｂレベルを示す。図３Ｆは、ＳＳＲＩまたはＮＲＩの急性投与または長期投与の後でのＲＮにおける変化しないｍｉＲ−１３５ｂレベルを示すグラフである。図４Ａは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図４Ａは、ｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現のためのレンチウイルスの模式図である。図４Ｂは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図４Ｂは、成体マウスの背側縫線核（ｒａｐｈａｅｎｕｃｌｅｕｓ）（ＤＲＮ）におけるインビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示すリアルタイムＰＣＲ結果を例示するグラフである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す（ＧＦＰ注入はｎ＝５、ｍｉＲ−１３５ＯＥはｎ＝３）。Ｐ＝０．００３２。図４Ｃは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図３Ｃは、注入部位におけるＧＦＰ染色を明らかにすることによるＤＲＮ注入部位を示す。（区分マップはＰａｘｉｎｏｓから引用）。図４Ｄは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図３Ｄは、注入部位におけるＧＦＰ染色を明らかにすることによるＤＲＮ注入部位を示す。（区分マップはＰａｘｉｎｏｓから引用）。図４Ｅは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図４Ｅは、対照マウスと比較して、ＲＮ中のｍｉＲ−１３５ｂを過剰発現するマウスにおける強制水泳試験（ｆｏｒｅｓｔｓｗｉｍｔｅｓｔ）での低下した不動時間を示すグラフである（対照：ｎ＝９、ｍｉＲ−１３５：ｎ＝９）。３分でＰ＝０．００８８、４分でＰ＝０．００３３０。図４Ｆは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図４Ｆは、対照マウスと比較して、ＲＮにおいてｍｉＲ−１３５ｂを過剰発現するマウスにおける尾懸垂試験での低下した不動時間を示すグラフである。Ｐ＝０．０７３５１。図４Ｇは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図４Ｇは、対照と比較して、ＲＮにおいてｍｉＲ−１３５ｂを過剰発現するマウスのホームケージでの自発運動における差がないことを示すグラフである。図４Ｈは、インビボでのｍｉＲ−１３５ｂの過剰発現を示す。図４Ｈは、対照と比較して、ＲＮにおいてｍｉＲ−１３５ｂを過剰発現するマウスのホームケージでの自発運動における差がないことを示すグラフである。図５は、ルシフェラーゼ遺伝子の後にクローン化されるＡＤＲｂ１の３’ＵＴＲを示す。Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２プラスミドにおいてルシフェラーゼ遺伝子の下流側にクローン化された、４つのｍｉＲ−１９結合部位を有する無変異型（上段）のＡＤＲｂ１３’ＵＴＲ、および、４つすべてのｍｉＲ−１９結合部位を欠いている変異型（下段）のＡＤＲｂ１の３’ＵＴＲの例示である。図６Ａは、ｍｉＲ−１９ｂがその３’ＵＴＲのシードマッチを介してＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲを標的とすることを示す。図６Ａは、ＧＦＰプラスミドを遺伝子導入した後の、低い内在性ｍｉＲ−１９レベルを発現するＨＴ２２細胞において測定される正規化されたルシフェラーゼレベルを示すグラフである。図６Ｂは、ｍｉＲ−１９ｂがその３’ＵＴＲのシードマッチを介してＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲを標的とすることを示す。図６Ｂは、プレ−ｍｉＲ−１９ｂ過剰発現（ＯＥ）プラスミドを遺伝子導入した後の、低い内在性ｍｉＲ−１９レベルを発現するＨＴ２２細胞において測定される正規化されたルシフェラーゼレベルを示すグラフである。図６Ｃは、ｍｉＲ−１９ｂがその３’ＵＴＲのシードマッチを介してＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲを標的とすることを示す。図６Ｃは、対照プラスミドを遺伝子導入した場合の高い内在性ｍｉＲ−１９レベルを発現するＨＥＫ２９３Ｔ細胞において測定された正規化されたルシフェラーゼレベルを示すグラフである。＊＊＊Ｐ＜０．００５。ウミシイタケルシフェラーゼ活性をホタルルシフェラーゼの発現レベルによって正規化し、対照処置の存在時における変異型のＡｄｒｂ１−３’ＵＴＲ（Ａｄｒｂ１−ｍｕｔ）によって達成される活性の比率として示した。図６Ｄは、ｍｉＲ−１９ｂがその３’ＵＴＲのシードマッチを介してＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲを標的とすることを示す。図６Ｄは、対照としてｍｉＲ−１９ｂノックダウン（ＫＤ）プローブまたはスクランブル化プローブを遺伝子導入した場合の高い内在性ｍｉＲ−１９レベルを発現するＨＥＫ２９３Ｔ細胞において測定された正規化されたルシフェラーゼレベルを示すグラフである。＊＊＊Ｐ＜０．００５。ウミシイタケルシフェラーゼ活性をホタルルシフェラーゼの発現レベルによって正規化し、対照処置の存在時における変異型のＡｄｒｂ１−３’ＵＴＲ（Ａｄｒｂ１−ｍｕｔ）によって達成される活性の比率として示した。図６Ｅは、ｍｉＲ−１９ｂがその３’ＵＴＲのシードマッチを介してＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲを標的とすることを示す。図６Ｅは、ｍｉＲ−１９ｂのｍｉＡｒｒｅｓｔプラスミドまたは対照のｍｉＡｒｒｅｓｔプラスミドを遺伝子導入した場合の高い内在性ｍｉＲ−１９レベルを発現するＨＥＫ２９３Ｔ細胞において測定された正規化されたルシフェラーゼレベルを示すグラフである。＊＊＊Ｐ＜０．００５。ウミシイタケルシフェラーゼ活性をホタルルシフェラーゼの発現レベルによって正規化し、対照処置の存在時における変異型のＡｄｒｂ１−３’ＵＴＲ（Ａｄｒｂ１−ｍｕｔ）によって達成される活性の比率として示した。図７Ａは、扁桃体（ａｍｙｇｄａｌｅ）におけるｍｉＲＮＡの示差的発現を示し、ａｇｉｌｅｎｔアレイの結果で、急性ストレス後９０分での扁桃体におけるｍｉＲＮＡの示差的発現を示すグラフである。正規化された値が、条件の全体にわたる平均強度に対してプロットされるスポット強度のｌｏｇ２比率（ストレス対対照）として示される（Ｎ＝２，２）。それぞれのｍｉＲＮＡの強度を生物学的反復の全体にわたる平均正規化強度として計算した。ｍｉＲ−１５ａおよびｍｉＲ−１５ｂは赤色で示される。ｍｉＲ−１２４、すなわち、ストレスプロトコルによって影響されない十分に確立されたニューロンマーカーが、白色で示される。図７Ｂは、扁桃体（ａｍｙｇｄａｌｅ）におけるｍｉＲＮＡの示差的発現を示し、ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘアレイの結果で、急性ストレス後９０分での扁桃体におけるｍｉＲＮＡの示差的発現を示すグラフである。正規化された値が、条件の全体にわたる平均強度に対してプロットされるスポット強度のｌｏｇ２比率（ストレス対対照）として示される（Ｎ＝２，２）。それぞれのｍｉＲＮＡの強度を生物学的反復の全体にわたる平均正規化強度として計算した。ｍｉＲ−１５ａおよびｍｉＲ−１５ｂは赤色で示される。ｍｉＲ−１２４、すなわち、ストレスプロトコルによって影響されない十分に確立されたニューロンマーカーが、白色で示される。図７Ｃは、扁桃体（ａｍｙｇｄａｌｅ）におけるｍｉＲＮＡの示差的発現を示し、ｍｉＲ−１５ａおよびｍｉＲ−１５ｂが半保存的なシードマッチを副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン１型受容体の３’ＵＴＲに有することを示す［ＣＲＨＲ１、ｔａｒｇｅｔｓｃａｎ．ｏｒｇからの改編］。図７Ｄは、扁桃体（ａｍｙｇｄａｌｅ）におけるｍｉＲＮＡの示差的発現を示し、ｍｉＲ−１５ｂ−ＥＧＦＰ過剰発現プラスミドまたはＧＦＰ発現プラスミドと、ＣＲＦＲ１−３’ＵＴＲによって制御されるルシフェラーゼレポータープラスミドとを同時遺伝子導入されたＨＥＫ２９３Ｔ細胞において測定されたルシフェラーゼ活性を示すグラフである。ウミシイタケルシフェラーゼ活性をホタルルシフェラーゼの発現レベルによって正規化した。図８は、ｍｉＲ−１８２がＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲを標的とすると想定されることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイ結果を示すグラフである。ルシフェラーゼアッセイのデータは、記載された遺伝子の３’ＵＴＲおよび空ベクター、または、特定のｍｉＲを過剰発現するベクターを遺伝子導入されたＨＥＫ２９３細胞における、同時遺伝子導入されたホタルルシフェラーゼレポーターの活性に対して正規化されたウミシイタケルシフェラーゼ活性を示す。図９は、長期の社会的敗北の後における低下した発現についての傾向を示す、成体マウスのＤＲＮにおけるｍｉＲ−１８２発現レベルのリアルタイムＰＣＲ結果を示すグラフである。データは平均±ＳＥＭを表す。ｎ＝７（対照）および１８（社会的敗北群におけるマウス）、＃＝ｐ＝０．１。図１０は、２つのアルゴリズムにおけるｍｉＲ−１８２の標的についてのインシリコ生物情報学予測を表すバンダイアグラム、ならびに、この予測において現れる正常なニューロン機能および病理学的ニューロン機能について大きな関連性がある潜在的な標的遺伝子のリストである。図１１Ａは、ｍｉＲ−１８２の過剰発現またはノックダウンを示す。図１１Ａは、ｍｉＲ−１８２の過剰発現のためのレンチウイルスの模式図である。図１１Ｂは、ｍｉＲ−１８２の過剰発現またはノックダウンを示す。図１１Ｂは、Ｎ２Ａ細胞株におけるインビトロでのｍｉＲ−１８２の過剰発現を示すリアルタイムＰＣＲ結果を示すグラフである。図１１Ｃは、ｍｉＲ−１８２の過剰発現またはノックダウンを示す。図１１Ｃは、ｍｉＲ−１８２のノックダウンのためのレンチウイルスの模式図である。図１２Ａは、ＮＲＩのレボキセチンを急性（１回）投与した場合に、ｍｉＲ−１９ａのレベルがＮＲＩの急性投与の後ではＰＦＣにおいて低下したことを示す。図１２Ｂは、ＮＲＩのレボキセチンを急性（１回）投与した場合に、ｍｉＲ−１９ｂのレベルがＮＲＩの急性投与の後ではＰＦＣにおいて低下したことを示す。図１２Ｃは、ＮＲＩのレボキセチンを長期（１８日間）投与した場合に、ＮＲＩの長期投与の後ではｍｉＲ−１９ａのレベルが増大したことを示す。図１２Ｄは、ＮＲＩのレボキセチンを長期（１８日間）投与した場合に、ＮＲＩの長期投与の後ではｍｉＲ−１９ｂのレベルが増大したことを示す。図１３Ａは、社会的敗北に供されたマウスのＰＦＣにおけるｍｉＲ−１９レベルを示す。ｍｉＲ−１９ａのレベルを、社会的敗北パラダイムに供されたマウスから採取された扁桃体由来の試料で測定した。ＰＦＣにおけるｍｉＲ−１９ａのレベルが、対照マウスに対して、社会的敗北に対する「感受性あり」として分類されるマウスにおいて上昇した。図１３Ｂは、社会的敗北に供されたマウスのＰＦＣにおけるｍｉＲ−１９レベルを示す。ｍｉＲ−１９ｂのレベルを、社会的敗北パラダイムに供されたマウスから採取された扁桃体由来の試料で測定した。ＰＦＣにおけるｍｉＲ−１９ｂのレベルが、対照マウスに対して、社会的敗北に対する「感受性あり」として分類されるマウスにおいて上昇した。図１３Ｃは、社会的敗北に供されたマウスの扁桃体におけるｍｉＲ−１９レベルを示す。ｍｉＲ−１９ａのレベルを、社会的敗北パラダイムに供されたマウスから採取された扁桃体由来の試料で測定した。ｍｉＲ−１９ａのレベルは、対照マウスに対して、社会的敗北に対する「感受性あり」として分類されるマウスの扁桃体において上昇した。図１３Ｄは、社会的敗北に供されたマウスの扁桃体におけるｍｉＲ−１９レベルを示す。ｍｉＲ−１９ｂのレベルを、社会的敗北パラダイムに供されたマウスから採取された扁桃体由来の試料で測定した。ｍｉＲ−１９ｂのレベルを、社会的敗北パラダイムに供されたマウスから採取された扁桃体由来の試料で測定したｍｉＲ−１９ｂのレベルは、対照マウスに対して、社会的敗北に対する「感受性あり」として分類されるマウスの扁桃体において上昇した。図１４は、ｍｉＲＮＡ−１９ｂがＣＢ１の３’ＵＴＲを標的とすることを示す。ＣＢ１の３’ＵＴＲ、および、ｍｉＲ−１９ｂまたはＧＦＰ対照のどちらかを過剰発現するプラスミドによるＨＴ−２２細胞の遺伝子導入は、正規化されたルシフェラーゼレベルにおける５０％の低下を引き起こした。図１５Ａは、マウス脳の冠状切片の模式図で、ＢＬＡを含む脳におけるいくつかの核を示す（ＰａｘｉｎｏｓおよびＦｒａｎｋｌｉｎによるマウス脳からの改編）。図１５Ｂは、マウス脳の冠状切片の模式図で、脳におけるＣＢ１分布を示す（ＡｌｌｅｎＢｒａｉｎＡｔｌａｓからの改編、ｗｗｗ．ｍｏｕｓｅ．ｂｒａｉｎ−ｍａｐ．ｏｒｇ／）。注目すべきことに、ＣＢ１がＢＬＡに多く存在することがこの分布によって明らかである。図１６は、扁桃体の基底外側核（ＢＬＡ）における記憶固定についての提案された機構の模式図である。コルチコステロン（ＣＯＲＴ）は、内在性カンナビノイド（ｅＣＢ）の合成を誘導するためにＧｓ−ｃＡＭＰ／ＰＫＡ経路を活性化する未だ特徴づけられていない膜結合型グルココルチコイド受容体（ｍｂＧＲ）に結合する。内在性カンナビノイドがシナプスの中に放出され、そこでそれらはＧＡＢＡ作動性末端のＣＢ１受容体に結合して、ＧＡＢＡ放出を阻害する。このＧＡＢＡ放出の阻害がノルエピネフリン（ＮＥ）放出を脱抑制し、シナプス後のβ−アドレナリン受容体のＮＥ活性化を増大させ、これにより、情緒的嫌悪記憶の固定を増大させる。図１７Ａは、ＲＩＳＣ複合体におけるＡｇｏ２を示し、ＲＩＳＣ複合体において、ｍｉＲＮＡとｍＲＮＡとの相互作用を伝達するＡｇｏ２の模式図である。図１７Ｂは、ＲＩＳＣ複合体におけるＡｇｏ２を示し、抗Ａｇｏ２抗体を用いて行われたウエスタンブロット分析を示す。このＩＰは、Ａｇｏ２抗体により１回、ＩｇＧ１対照により１回沈殿させられた全脳試料を比較したときに認識できるように、Ａｇｏ２タンパク質に対して特異的であった。注目すべきことに、Ａｇｏ２タンパク質は、ＩｇＧ１対照により沈殿させた試料では検出されなかった。図１８Ａは、社会的回避試験を示す図で、マウスを慣らすために単独で３分間迷路に置き、マウスの動きを記録し、プロットした。図１８Ｂは、社会的回避試験を示す図で、マウスを慣らすために単独で３分間迷路に置き、マウスの動きを記録し、プロットした。図１８Ｃは、社会的回避試験を示す図で、３分後、新規ＩＣＲマウスを、被験マウスの隣のチャンバーに置き、被験マウスの動きを再び記録し、プロットした。図１８Ｄは、社会的回避試験を示す図で、新規ＩＣＲマウスを、被験マウスの隣のチャンバーに置き、被験マウスの動きを再び記録し、プロットした。図１９Ａは、アレイ中のアップレギュレーションされた、選択されたｍｉＲＮＡのヒートマップ図を示す。図１９Ｂは、アレイ中のダウンレギュレーションされた、選択されたｍｉＲＮＡのヒートマップ図を示す。図２０Ａは、マイクロアレイ結果からのｍｉＲ−１５ａのｌｏｇ２発現を示す。赤色ドットがアレイの１回の反復を示す。対照群（ＣＮＴ）は４回の反復を行い、「感受性あり」群（ＳＵＳＣ）は３回の反復を行い、「立ち直りが早い」群（ＲＥＳＩＬ）は３回の反復を行った。黒色線により、それぞれの群における反復の平均を示した。図２０Ｂは、マイクロアレイ結果からのＦＫＢＰ５のｌｏｇ２発現を示す。赤色ドットがアレイの１回の反復を示す。対照群（ＣＮＴ）は４回の反復を行い、「感受性あり」群（ＳＵＳＣ）は３回の反復を行い、「立ち直りが早い」群（ＲＥＳＩＬ）は３回の反復を行った。黒色線により、それぞれの群における反復の平均を示した。図２０ＣはマウスＦＫＢＰ５の３’ＵＴＲ配列を示す（ｔａｒｇｅｔｓｃａｎ．ｏｒｇから引用）。図２１Ａは、社会的敗北後の対照マウスに対して、「感受性あり」マウスにおける扁桃体のｍｉＲ−１５ａのレベルのレベルを示す。ｍｉＲ−１５ａのレベルは、社会的敗北に供され、かつ、「感受性あり」として特徴づけられるマウスの扁桃体において上昇した。図２１Ｂは、社会的敗北後の対照マウスに対して、「感受性あり」マウスにおける扁桃体のＦＫＢＰ５のレベルを示す。ＦＫＢＰ５のレベルは、社会的敗北に供され、「感受性あり」として特徴づけられたマウスの扁桃体において低下した。図２２は、Ｓｔｘ１ａ、Ｓｇｋ１およびＡｄｒｂ２の３’ＵＴＲの模式図である（これらはそれぞれが単一のｍｉＲＮＡ−１５結合部位を有する）。図２３は、対照マウスに対して、社会的敗北に供されたマウスにおける扁桃体のｍｉＲ−１８１のレベルを示す。注目すべきことに、ｍｉＲ−１８１のレベルが、社会的敗北に供されたマウスの扁桃体において上昇した。図２４は、ｍｉＲ−１８１およびグルタミン酸受容体についての生物情報学予測を組み合わせることを表すバンダイアグラムを示す。図２５は、ｍｉＲ−１８１の６個の潜在的標的の無変異型の３’ＵＴＲの模式図である。図２６は、ストレス後の縫線核におけるｍｉＲ１８２の発現レベルを示す。注目すべきことに、急性３０分拘束ストレスは、リアルタイムＰＣＲによって測定されるように、ストレス後２４時間で試験されたとき、ＲＮにおけるｍｉＲ１８２の低下した発現レベルを引き起こした。＊＊＝Ｐ＜０．０１；各群ｎ＝８。図２７は、ｍｉＲ１８２がＤＳＣＡＭ、Ｌ１ＣＡＭ、およびＴＳＮＡＸ３’ＵＴＲを標的とすることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイの結果を示す。図２７は、記載された遺伝子の３’ＵＴＲおよび空ベクター、または、特定のｍｉＲを過剰発現するベクターにより遺伝子導入されたＮ２ａ細胞における同時遺伝子導入されたホタルルシフェラーゼレポーターの活性に対して正規化されるウミシイタケルシフェラーゼ活性を示す、ルシフェラーゼアッセイのデータを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５；＊＊Ｐ＜０．０１；＊＊＊Ｐ＜０．００１。図２８は、ｍｉＲ１８２が、Ｌ１ＣＡＭ３’ＵＴＲを標的とすることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイの結果を示す。図２８は、Ｌ１ｃａｍの３’ＵＴＲにおけるｍｉＲ１８２シードマッチでの変異はｍｉＲ１８２の抑制効果（ｒｅｐｒｅｓｏｒｉｃｅｆｆｅｃｔ）をブロックしたことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図２９は、ｍｉＲ１８２が、ＴＳＮＡＸ３’ＵＴＲを標的とすることを示すルシフェラーゼレポーターアッセイの結果を示す。図２９は、Ｔｓｎａｘの３’ＵＴＲにおけるｍｉＲ１８２シードマッチでの変異はｍｉＲ１８２の抑制効果（ｒｅｐｒｅｓｏｒｉｃｅｆｆｅｃｔ）をブロックしたことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３０Ａは、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏにおけるｍｉＲ１３５ｂＫＤの検証を示す。図３０Ａは、ｍｉＲ１３５によるＨｔｒ１ａの標的化がｍｉＲ１３５ｂのＫＤ構築物によってブロックされたことを示す、ルシフェラーゼレポーターアッセイの結果である。図３０Ｂは、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏにおけるｍｉＲ１３５ｂＫＤの検証を示す。図３０Ｂは、ｍｉＲ１３５によるｓｌｃ６ａ４（図３０Ｂ）の標的化がｍｉＲ１３５ｂのＫＤ構築物によってブロックされたことを示す、ルシフェラーゼレポーターアッセイの結果である。図３０Ｃは、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏにおけるｍｉＲ１３５ｂＫＤの検証を示す。図３０Ｃは、ｍｉＲ１３５ｂＫＤウイルスベクターおよび対照ウイルスベクターの模式図である。図３０Ｄは、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏにおけるｍｉＲ１３５ｂＫＤの検証を示す。図３０Ｄは、ＤＲＮ注入部位の例示である（Ｐａｘｉｎｏｓからの引用である）。図３０Ｅは、ｉｎｖｉｔｒｏおよびｉｎｖｉｖｏにおけるｍｉＲ１３５ｂＫＤの検証を示す。図３０Ｅは、ｍｉＲ１３５ＫＤレンチウイルスを感染させたＤＲＮのＧＦＰ染色である。図３１Ａは、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスにおける増大した不安様行動およびＳＳＲＩに対する弱化した応答を示し、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスの行動がオープンフィールド試験において対照マウスと類似していたことを示す。各群ｎ＝１０〜１１。図３１Ｂは、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスにおける増大した不安様行動およびＳＳＲＩに対する弱化した応答を示し、高架式十字迷路（ｐｕｌｓｅｍａｚｅ）において、対照マウスと比較して、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスにおける増大した不安様行動を示す。〜＝ｐ＜０．１、＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝１０〜１１。図３１Ｃは、明暗箱テストにおいて、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスが、急性ストレスの後ではなく、基礎的ストレス条件のもとでは、対照マウスと比較して、明箱においてより多くの時間を過ごしたことを示す。＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝１０〜１１。図３１Ｄは、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスが、急性ストレスの後ではなく、基礎的ストレス条件のもとで、対照マウスと比較して、明箱をより多く訪れたことを示す。＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝１０〜１１。図３１Ｅは、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスが、急性ストレスの後ではなく、基礎的ストレス条件のもとで、対照マウスと比較して、明箱において短い距離しか移動しなかったことを示す。＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝１０〜１１。図３１Ｆは、基礎的条件およびＳＳＲＩ投与後の両方で尾懸垂試験において、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスと対照マウスとの間に差がないことを示しており、それにもかかわらず、両方の群において、基礎的条件と比較して、不動時間の減少が、ＳＳＲＩ処置の後で認められた。不動時間が両方の群においてＳＳＲＩによって減少したが、しかしながら、その減少が、試験の最後の２分で、対照と比較して、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスでは弱まった。＊＊＊＝Ｐ＜０．００１。各群ｎ＝１０〜１１。図３１Ｇは、基礎的条件およびＳＳＲＩ投与後の両方で尾懸垂試験において、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスと対照マウスとの間に差がないことを示しており、それにもかかわらず、両方の群において、基礎的条件と比較して、不動時間の減少が、ＳＳＲＩ処置の後で認められた。不動時間が両方の群においてＳＳＲＩによって減少したが、しかしながら、その減少が、試験の最後の２分で、対照と比較して、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスでは弱まった。＊＝Ｐ＜０．０５；＊＊＊＝Ｐ＜０．００１。各群ｎ＝１０〜１１。図３２は、ｍｉＲ１３５マウスの誘導可能な過剰発現系の模式図である。ｍｉＲ１３５ａ配列およびＧＦＰレポーターの前の、ｌｏｘＰ化トランザクショナル停止を発現するトランスジェニックマウス。変異トランスジェニックマウスは５−ＨＴのｅＰｅｔ陽性細胞においてのみｍｉＲ１３５ａを発現する。図３３Ａは、５−ＨＴニューロンにおいてｍｉＲ１３５を過剰発現しているマウス系統の検証を示す。図３３Ａは、ｍｉＲ１３５が、対照マウスと比較して、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスのＲＮにおいて過剰発現されたことを示す。＊＝ｐ＜０．０５；各群ｎ＝４。図３３Ｂは、５−ＨＴニューロンにおいてｍｉＲ１３５を過剰発現しているマウス系統の検証を示す。図３３Ｂは、ｍｉＲ１３５標的遺伝子のｍＲＮＡが、Ｓｌｃ６ａ４について、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスのＲＮにおいてダウンレギュレーションされたことを示す。＊＝ｐ＜０．０５；各群ｎ＝４。図３３Ｃは、５−ＨＴニューロンにおいてｍｉＲ１３５を過剰発現しているマウス系統の検証を示す。図３３Ｃは、ｍｉＲ１３５標的遺伝子のｍＲＮＡが、Ｈｔｒ１ａについて、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスのＲＮにおいてダウンレギュレーションされたことを示す。＃＝ｐ＜０．１；各群ｎ＝４。図３４Ａは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスにおいて社会的敗北後の不安様行動およびうつ様行動が低下したことを示す。図３４Ａは、社会的敗北後に、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスが、オープンフィールド試験において低下した不安様行動を有することを示す。＃＝ｐ＜０．１；＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝７〜１１。図３４Ｂは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスにおいて社会的敗北後の不安様行動およびうつ様行動が低下したことを示す。図３４Ｂは、社会的敗北後に、明暗箱テストにおけるｍｉＲ１３５ＯＥマウスの、対照と比較してより少ない不安様行動を示す。＊＝ｐ＜０．０５；＊＊＝ｐ＜０．０１。各群ｎ＝７〜１１。図３４Ｃは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスにおいて社会的敗北後の不安様行動およびうつ様行動が低下したことを示す。図３４Ｃは、社会的敗北後に、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスの高架式十字迷路における、対照と比較して低下した不安様行動を示す。＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝７〜１１。図３４Ｄは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスにおいて社会的敗北後の不安様行動およびうつ様行動が低下したことを示す。図３４Ｄは、社会的敗北後に、尾懸垂試験において、対照と比較して、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスの不動時間の減少に向かう傾向を示す。＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝７〜１１。図３４Ｅは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスにおいて社会的敗北後の不安様行動およびうつ様行動が低下したことを示す。図３４Ｅは、社会的敗北後に、強制水泳試験において、対照と比較して、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスにおける減少した不動時間を示す。＊＝ｐ＜０．０５。各群ｎ＝７〜１１。図３５Ａは、５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡ「フィンガープリント」を示す。図３５Ａは、５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡ「フィンガープリント」を測定する実験計画の模式図を示す。ｅＰｅｔ−ＥＹＦＰマウス胎仔後脳を切開し、５ＨＴ−ＹＦＰ陽性およびＹＦＰ陰性細胞にＦＡＣＳ分別した。２つの集団からのｍｉＲ発現をＡｇｉｌｅｎｔマイクロＲＮＡマイクロアレイを使って比較した。図３５Ｂは、５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡ「フィンガープリント」を示す。図３５Ｂは、リアルタイムＰＣＲによる細胞表現型の検証により、ＹＦＰが、５ＨＴなし細胞に比べて、５ＨＴで有意に富化されたことを示す。バーは、±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３５Ｃは、５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡ「フィンガープリント」を示す。図３５Ｃは、リアルタイムＰＣＲによる細胞表現型の検証により、ＴＰＨ２が、５ＨＴなし細胞に比べて、５ＨＴで有意に富化されたことを示す。バーは、±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３５Ｄは、５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡ「フィンガープリント」を示す。図３５Ｄは、リアルタイムＰＣＲによる細胞表現型の検証により、５ＨＴなしの細胞においてＧＡＢＡ作動性マーカーのＧＡＤ６７が有意に高かったことを示す。バーは、±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３６Ａは、ｍｉＲ−１３５バリアントの進化における保存を示す。図３６Ａは、ｍｉＲ−１３５ａ−１が、進化により交互に保存され、同時に、色を付けて強調した成熟型ｍｉＲ配列はほぼ完全に保存されたことを示す。データはＵＣＳＣゲノムブラウザ（ＫｅｎｔＷＪ，２００２）から修正した。図３６Ｂは、ｍｉＲ−１３５バリアントの進化における保存を示す。図３６Ｂは、ｍｉＲ−１３５ａ−２が、進化により交互に保存され、同時に、色を付けて強調した成熟型ｍｉＲ配列はほぼ完全に保存されたことを示す。データはＵＣＳＣゲノムブラウザ（ＫｅｎｔＷＪ，２００２）から修正した。図３６Ｃは、ｍｉＲ−１３５バリアントの進化における保存を示す。図３６Ｃは、ｍｉＲ−１３５ｂが、進化により交互に保存され、同時に、色を付けて強調した成熟型ｍｉＲ配列はほぼ完全に保存されたことを示す。データはＵＣＳＣゲノムブラウザ（ＫｅｎｔＷＪ，２００２）から修正した。図３７Ａは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ａは、成熟型ｍｉＲ−１３５ａとｍｉＲ−１３５ｂとの間での整列化は１つのヌクレオチドの差異を示す。図３７Ｂは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ｂは、マウスＲＮ中でのｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂの発現レベルを示す。図３７Ｃは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ｃは、成体マウスＲＮ中のいくつかのｍｉＲの発現プロファイルは、ｍｉＲ−１３５ａがｍｉＲ−１２４より約５倍少なく、ｍｉＲ−１６より２．５倍少ないことを示す。バーは、平均±ｓ．ｅ．ｍを表す。図３７Ｄは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ｄは、社会的敗北にさらしたマウスは、長期イミプラミンで処理しなければ、社会的回避が高まったことを示す。相互作用比率を、親しみのないマウスの近くの区域で過ごした時間を、居住の間に同じ区域で過ごした時間で除算し、１００を乗じて計算した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３７Ｅは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ｅは、ｍｉＲ−１３５ａレベルが、長期（図３７Ｅ）イミプラミン投与後にＲＮ中でアップレギュレーションした。また、長期社会的敗北プロトコルへの暴露後は、無変化であった。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊Ｐ＜０．０１。図３７Ｆは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ｆは、ｍｉＲ−１３５ａレベルが、急性（図３７Ｆ）イミプラミン投与後にＲＮ中でアップレギュレーションした。また、長期社会的敗北プロトコルへの暴露後は、無変化であった。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊Ｐ＜０．０１。図３７Ｇは、抗うつ処置後の成体マウスＲＮのアップレギュレーションされたｍｉＲ−１３５を示す。図３７Ｇは、ＮＲＩまたは生理食塩水ではなく、ＳＳＲＩの急性投与または長期投与の後のＲＮでのｍｉＲ−１３５ａレベルにおける有意な増大を示すグラフである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３８Ａは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ａは、コンディショナルにｍｉＲ−１３５を過剰発現させたマウスモデルの模式図を示す。ｍｉＲ−１３５ａおよびＧＦＰ配列の上流に、ＬｏｘＰ化した転写性ストップ配列を遺伝子導入したマウスをｅＰｅｔ−Ｃｒｅリコンビナーゼマウスと交雑させた。二重遺伝子導入マウスは特に５ＨＴ陽性細胞においてｍｉＲ−１３５ａを過剰発現する。ｍｉＲ−１３５ａの導入遺伝子のみを有し、ｅＰｅｔ−Ｃｒｅ導入遺伝子を含まない同腹仔のマウスを対照として使用した。図３８Ｂは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｂは、ＲＮ中のｍｉＲ−１３５ａ発現レベル発現レベルが、対照と比較して、ｍｉＲ−１３５過剰発現（ＯＥ）マウスで約２倍アップレギュレーションしたことを示す。図３８Ｃは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｃは、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子のＳｌｃ６ａ４のｍＲＮＡが、対照同腹仔に比べて、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスでダウンレギュレーションしたことを示す。バーは、平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＃Ｐ＜０．１；＊Ｐ＜０．０５。図３８Ｄは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｄは、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子のＨｔｒ１ａのｍＲＮＡは、対照同腹仔に比べて、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスでダウンレギュレーションしたことを示す。バーは、平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＃Ｐ＜０．１；＊Ｐ＜０．０５。図３８Ｅは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｅは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスおよびそれらの対照同腹仔を、「基礎的」ストレス条件下または長期社会的敗北後に試験した結果を示す。「基礎的」条件下の遺伝子型間で差異は観察されなかったが、長期社会的敗北後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは、明箱中でより多くの時間を過ごした。ｍｉＲ−１３５マウスの行動成績は、社会的敗北プロトコル後に大きくは異ならなかった。対照的に、対照マウスは、社会的敗北後に、すべての測定された明暗箱テストパラメータにおいて不安様行動の大きな増加を示した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３８Ｆは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｆは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスおよびそれらの対照同腹仔を、「基礎的」ストレス条件下または長期社会的敗北後に試験した結果を示す。「基礎的」条件下の遺伝子型間で差異は観察されなかったが、長期社会的敗北後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは、明るいコンパートメントをより頻繁に訪問した。ｍｉＲ−１３５マウスの行動成績は、社会的敗北プロトコル後に大きくは異ならなかった。対照的に、対照マウスは、社会的敗北後に、すべての測定された明暗箱テストパラメータにおいて不安様行動の大きな増加を示した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３８Ｇは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｇは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスおよびそれらの対照同腹仔を、「基礎的」ストレス条件下または長期社会的敗北後に試験した結果を示す。「基礎的」条件下の遺伝子型間で差異は観察されなかったが、長期社会的敗北後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは、明箱中でより長距離移動した。ｍｉＲ−１３５マウスの行動成績は、社会的敗北プロトコル後に大きくは異ならなかった。対照的に、対照マウスは、社会的敗北後に、すべての測定された明暗箱テストパラメータにおいて不安様行動の大きな増加を示した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３８Ｈは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｈは、高架式十字迷路テストにおいて、社会的敗北に暴露された対照マウスは、「基礎的」条件下でテストした対照マウスに比べて、壁のない走行路中で、より少ない時間を過ごしたことを示す。ｍｉＲ−１３５ＯＥ群では、「基礎的」およびストレス条件間で有意差は観察されなかった。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３８Ｉは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｉは、高架式十字迷路テストでは、社会的敗北に暴露された対照マウスは、「基礎的」条件下でテストした対照マウスに比べて、壁のない走行路中で、より小さい頻度の訪問をしたことを示す。ｍｉＲ−１３５ＯＥ群では、「基礎的」およびストレス条件間で有意差は観察されなかった。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊Ｐ＜０．０１。図３８Ｊは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｊは、高架式十字迷路テストにおいて、社会的敗北に暴露された対照マウスは、「基礎的」条件下でテストした対照マウスに比べて、壁のない走行路中で、より短い距離を移動したことを示す。ｍｉＲ−１３５ＯＥ群では、「基礎的」およびストレス条件間で有意差は観察されなかった。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊Ｐ＜０．０１。図３８Ｋは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｋは、強制水泳試験において、「基礎的」ストレス条件下でテストした場合に、群間で有意差は観察されなかったことを示す。線グラフは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。図３８Ｌは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｌは、強制水泳試験において、長期社会的敗北後のテストした場合、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは、対照同腹仔に比べて、不動の増加を示したことを示す。線グラフは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３８Ｍは、社会的敗北に対する行動回復力を生じさせる５ＨＴニューロンにおける特異的なｍｉＲ−１３５過剰発現を示す。図３８Ｍは、オープンフィールド試験における合計移動距離で測定して、ｍｉＲ−１３５ＯＥと対照同腹仔との間で移動動作の差異は観察されなかったことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。図３９Ａは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ａは、「ｍｉＲ−１３５捕捉」構造の模式図を示す。図３９Ｂは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｂは、ｍｉＲ−１３５ＫＤおよび対照ウイルスベクターの模式図を示す。図３９Ｃは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｃは、ｍｉＲ−１３５ＫＤレンチウイルス感染が、これらの遺伝子およびｍｉＲ−１３５を内在性に発現しているＲＮ４６ａ細胞中のＨｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４のｍＲＮＡ発現レベルを高めたことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５；＊＊＊Ｐ＜０．００１；＊＊Ｐ＜０．０１。図３９Ｄは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｄは、注射部位を示す脳断面マップで、ＰａｘｉｎｏｓおよびＦｒａｎｋｌｉｎのマウス脳アトラス（Ｐａｘｉｎｏｓ、１９９７）から修正を加えたもの（左パネル）、およびｍｉＲ−１３５ＫＤレンチウイルスに感染した成体マウスのＤＲＤのＧＦＰ免疫染色したものを示す。図３９Ｅは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｅは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、明るいコンパートメント中で、対照ＫＤ注入マウスに比べて、より少ない時間を過ごしたことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３９Ｆは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｆは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、明るいコンパートメント中で、対照ＫＤ注入マウスに比べて、訪問がより少なかったことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３９Ｇは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｇは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、明るいコンパートメント中で、対照ＫＤ注入マウスに比べて、より短い距離を移動したことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３９Ｈは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｈは、明暗箱テストでは、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、明るいコンパートメント中で、対照ＫＤ注入マウスに比べて、より短い距離を移動したことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３９Ｉは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｉは、高架式十字迷路テストでは、壁のない走行路中で、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、より少ない時間を過ごす傾向を示した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＃Ｐ＜０．１。図３９Ｊは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｊは、高架式十字迷路テストでは、壁のない走行路中で、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、より少ない頻度の訪問をしたことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＃Ｐ＜０．１。図３９Ｋは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｋは、高架式十字迷路テストでは、壁のない走行路中で、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、有意により短い距離を移動したことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図３９Ｌは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｌは、高架式十字迷路テストでは、壁のない走行路中で、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、有意により短い距離を移動したことを示す。図３９Ｍは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｍは、強制水泳試験において、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、「基礎的」条件下で試験した場合、不動時間に関し、対照マウスと差異はなかったが、ＳＳＲＩ投与の３０分後に試験した場合、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、不動時間の増加を示し、抗うつ剤に対する減弱した応答を示したことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５；＊＊＊Ｐ＜０．００１。図３９Ｎは、成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させたことを示す。図３９Ｎは、オープンフィールド試験における合計移動距離で測定して、ｍｉＲ−１３５ＫＤと対照マウスとの間で移動動作の有意差は観察されなかったことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。図４０Ａは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ａは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図を示す。ＰｒＬ−前辺縁皮質、ＢＬＡ−扁桃体基底外側部、ＣＡ１Ｖ−海馬ＣＡ１腹側、ＤＲＶ−背側縫線核、腹側領域、ＭｎＲ−正中縫線核。断面マップは（Ｐａｘｉｎｏｓ、１９９７）から引用。図４０Ｂは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｂは、異なる脳部位をＨＰＬＣで測定した５ＨＴレベルでは、対照と比較して、基礎的ストレス条件のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおける５ＨＴレベルの減少が認められたことを示す。さらに、５ＨＴレベルは、基礎的ストレス条件と比較して、社会的敗北に暴露された対照マウスはダウンレギュレーションされたが、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスでは観察されなかった効果である。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｃは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｃは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいてアップレギュレーションされたことを示す。さらに、５ＨＴ代謝は、同じ遺伝子型由来の対照マウスと比較して、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中のＢＬＡ、ＣＡ１Ｖ、ＤＲＶおよびＭｎＲにおいて減少した。ＰｒＬ、ＤＲＶおよびＭｎＲ５ＨＴでは、基礎的条件と比較して、社会的敗北に暴露した対照マウスで代謝がアップレギュレーションした。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｄは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｄは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図を示す。ＰｒＬ−前辺縁皮質、ＢＬＡ−扁桃体基底外側部、ＣＡ１Ｖ−海馬ＣＡ１腹側、ＤＲＶ−背側縫線核、腹側領域、ＭｎＲ−正中縫線核。断面マップは（Ｐａｘｉｎｏｓ、１９９７）から引用。図４０Ｅは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｅは、異なる脳部位をＨＰＬＣで測定した５ＨＴレベルでは、対照と比較して、基礎的ストレス条件のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおける５ＨＴレベルの減少が認められたことを示す。さらに、５ＨＴレベルは、基礎的ストレス条件と比較して、社会的敗北に暴露された対照マウスはダウンレギュレーションされたが、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスでは観察されなかった効果である。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｆは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｆは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいてアップレギュレーションされたことを示す。さらに、５ＨＴ代謝は、同じ遺伝子型由来の対照マウスと比較して、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中のＢＬＡ、ＣＡ１Ｖ、ＤＲＶおよびＭｎＲにおいて減少した。ＰｒＬ、ＤＲＶおよびＭｎＲ５ＨＴでは、基礎的条件と比較して、社会的敗北に暴露した対照マウスで代謝がアップレギュレーションした。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｇは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｇは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図を示す。ＰｒＬ−前辺縁皮質、ＢＬＡ−扁桃体基底外側部、ＣＡ１Ｖ−海馬ＣＡ１腹側、ＤＲＶ−背側縫線核、腹側領域、ＭｎＲ−正中縫線核。断面マップは（Ｐａｘｉｎｏｓ、１９９７）から引用。図４０Ｈは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｈは、異なる脳部位をＨＰＬＣで測定した５ＨＴレベルでは、対照と比較して、基礎的ストレス条件のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおける５ＨＴレベルの減少が認められたことを示す。さらに、５ＨＴレベルは、基礎的ストレス条件と比較して、社会的敗北に暴露された対照マウスはダウンレギュレーションされたが、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスでは観察されなかった効果である。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｉは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｉは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいてアップレギュレーションされたことを示す。さらに、５ＨＴ代謝は、同じ遺伝子型由来の対照マウスと比較して、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中のＢＬＡ、ＣＡ１Ｖ、ＤＲＶおよびＭｎＲにおいて減少した。ＰｒＬ、ＤＲＶおよびＭｎＲ５ＨＴでは、基礎的条件と比較して、社会的敗北に暴露した対照マウスで代謝がアップレギュレーションした。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｊは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｊは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図を示す。ＰｒＬ−前辺縁皮質、ＢＬＡ−扁桃体基底外側部、ＣＡ１Ｖ−海馬ＣＡ１腹側、ＤＲＶ−背側縫線核、腹側領域、ＭｎＲ−正中縫線核。断面マップは（Ｐａｘｉｎｏｓ、１９９７）から引用。図４０Ｋは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｋは、異なる脳部位をＨＰＬＣで測定した５ＨＴレベルでは、対照と比較して、基礎的ストレス条件のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおける５ＨＴレベルの減少が認められたことを示す。さらに、５ＨＴレベルは、基礎的ストレス条件と比較して、社会的敗北に暴露された対照マウスはダウンレギュレーションされたが、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスでは観察されなかった効果である。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｌは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｌは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいてアップレギュレーションされたことを示す。さらに、５ＨＴ代謝は、同じ遺伝子型由来の対照マウスと比較して、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中のＢＬＡ、ＣＡ１Ｖ、ＤＲＶおよびＭｎＲにおいて減少した。ＰｒＬ、ＤＲＶおよびＭｎＲ５ＨＴでは、基礎的条件と比較して、社会的敗北に暴露した対照マウスで代謝がアップレギュレーションした。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｍは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｍは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図を示す。ＰｒＬ−前辺縁皮質、ＢＬＡ−扁桃体基底外側部、ＣＡ１Ｖ−海馬ＣＡ１腹側、ＤＲＶ−背側縫線核、腹側領域、ＭｎＲ−正中縫線核。断面マップは（Ｐａｘｉｎｏｓ、１９９７）から引用。図４０Ｎは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｎは、異なる脳部位をＨＰＬＣで測定した５ＨＴレベルでは、対照と比較して、基礎的ストレス条件のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおける５ＨＴレベルの減少が認められたことを示す。さらに、５ＨＴレベルは、基礎的ストレス条件と比較して、社会的敗北に暴露された対照マウスはダウンレギュレーションされたが、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスでは観察されなかった効果である。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４０Ｏは、５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ−１３５の過剰発現が脳の５ＨＴレベルを変化させ、社会的敗北誘導５ＨＴ減少を阻止したことを示す。図４０Ｏは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいてアップレギュレーションされたことを示す。さらに、５ＨＴ代謝は、同じ遺伝子型由来の対照マウスと比較して、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中のＢＬＡ、ＣＡ１Ｖ、ＤＲＶおよびＭｎＲにおいて減少した。ＰｒＬ、ＤＲＶおよびＭｎＲ５ＨＴでは、基礎的条件と比較して、社会的敗北に暴露した対照マウスで代謝がアップレギュレーションした。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４１Ａは、うつ病ヒト患者の血液におけるｍｉＲ−１３５レベル低下を示す。図４１Ａは、うつ病ヒト患者の全血中のｍｉＲ−１３５ａレベルは、健康な対照に比べて、確実に減少したことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４１Ｂは、うつ病ヒト患者の血液におけるｍｉＲ−１３５レベル低下を示す。図４１Ｂは、ｍｉＲ−１６血中濃度は群間で大きくは異ならないことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。図４１Ｃは、うつ病ヒト患者の血液におけるｍｉＲ−１３５レベル低下を示す。図４１Ｃは、認知行動療法（ＣＢＴ）で３ヶ月間処置したうつ病患者は、全血中ｍｉＲ−１３５ａレベルの有意な増加を示したことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５。図４１Ｄは、うつ病ヒト患者の血液におけるｍｉＲ−１３５レベル低下を示す。図４１Ｄは、ｍｉＲ−１６レベルは全患者群で類似であったことを示す。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。図４１Ｅは、うつ病ヒト患者の血液におけるｍｉＲ−１３５レベル低下を示す。図４１Ｅは、正常な状態（上段パネル）、うつ病（中段パネル）、および抗うつ剤投与（下段パネル）下でのセロトニン作動性シナプス成分の調節におけるｍｉＲ−１３５の関与を説明する提案モデルの模式図を示す。図４２Ａは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ａは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来のＲＮ顕微解剖部位の模式図を示す。ＤＲＤ−背側縫線核、背側部、ＤＲＩ−背側縫線核、維管束間部、ＤＲＶＬ−背側縫線核、腹外側部、ＶＬＰＡＧ−腹外側中脳水道周囲灰白質；ＤＲＣ−背側縫線核、尾側部。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４２Ｂは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｂは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、ＤＲＶＬを除いて示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｃは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｃは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｄは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｄは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来のＲＮ顕微解剖部位の模式図を示す。ＤＲＤ−背側縫線核、背側部、ＤＲＩ−背側縫線核、維管束間部、ＤＲＶＬ−背側縫線核、腹外側部、ＶＬＰＡＧ−腹外側中脳水道周囲灰白質；ＤＲＣ−背側縫線核、尾側部。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４２Ｅは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｅは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、ＤＲＶＬを除いて示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｆは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｆは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｇは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｇは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来のＲＮ顕微解剖部位の模式図を示す。ＤＲＤ−背側縫線核、背側部、ＤＲＩ−背側縫線核、維管束間部、ＤＲＶＬ−背側縫線核、腹外側部、ＶＬＰＡＧ−腹外側中脳水道周囲灰白質；ＤＲＣ−背側縫線核、尾側部。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４２Ｈは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｈは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、ＤＲＶＬを除いて示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｉは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｉは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｊは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｊは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来のＲＮ顕微解剖部位の模式図を示す。ＤＲＤ−背側縫線核、背側部、ＤＲＩ−背側縫線核、維管束間部、ＤＲＶＬ−背側縫線核、腹外側部、ＶＬＰＡＧ−腹外側中脳水道周囲灰白質；ＤＲＣ−背側縫線核、尾側部。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４２Ｋは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｋは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、ＤＲＶＬを除いて示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４２Ｌは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥのＲＮ構造における５ＨＴレベルを示す。図４２Ｌは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ａは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ａは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図である。ＩＬ−下辺縁皮質、ＢＮＳＴ−分界条の床核、ＣｅＡ−扁桃体中心核、Ｓ−海馬台。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４３Ｂは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｂは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｃは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｃは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｄは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｄは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図である。ＩＬ−下辺縁皮質、ＢＮＳＴ−分界条の床核、ＣｅＡ−扁桃体中心核、Ｓ−海馬台。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４３Ｅは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｅは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｆは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｆは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｇは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｇは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図である。ＩＬ−下辺縁皮質、ＢＮＳＴ−分界条の床核、ＣｅＡ−扁桃体中心核、Ｓ−海馬台。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４３Ｈは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｈは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｉは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｉは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｊは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｊは、基礎的条件下または長期社会的敗北後の、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴおよび対照マウス脳由来の顕微解剖部位の模式図である。ＩＬ−下辺縁皮質、ＢＮＳＴ−分界条の床核、ＣｅＡ−扁桃体中心核、Ｓ−海馬台。断面マップは（ＰａｘｉｎｏｓＧ．，１９９７）から引用。図４３Ｋは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｋは、対照と比較して、基礎的ストレス条件において、ｍｉＲ−１３５ＯＥ−５ＨＴマウスの、示された全脳領域の５ＨＴレベルが減少したことを示す。さらに、基礎的条件下に比べて、社会的敗北に暴露された対照マウスの５ＨＴレベルが減少した。この効果はｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスではないものである。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４３Ｌは、「基礎的」条件下および長期ストレス条件後のｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの脳構造における５ＨＴレベルを示す。図４３Ｌは、対照と比較して、基礎的ストレス条件下で、５ＨＴレベルに対する代謝物５ＨＩＡＡのレベル間の比として計算された５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴマウスにおいて増加したことを示す。さらに、基礎的条件下で試験した同じ遺伝子型由来のマウスと比較して、５ＨＴ代謝は、長期社会的敗北に暴露されたｍｉＲ−１３５ＯＥ５ＨＴ中の記載した全ての領域で減少した。バーは平均±ｓ．ｅ．ｍ．を表す。＊Ｐ＜０．０５、＊＊Ｐ＜０．０１、＊＊＊Ｐ＜０．００１。図４４は、ｍｉＲ−１３５オリゴヌクレオチドに対する修飾を示す。５’Ｐｈは、５’リン酸化（ｐｈｏｓｐｈｙｌａｔｉｏｎ）を示し、下線太字は２’Ｏ−メチル化を示す。

本発明はそのいくつかの実施形態において、マイクロＲＮＡに関し、より具体的には、限定するものではないが、疾患、診断、モニタリングおよび処置のための該マイクロＲＮＡの使用に関する。

本発明の原理および操作は、図面および付随する説明の参照により、より良く理解することができる。

本発明の少なくとも１つの実施形態を詳細に説明する前に、本発明は、下記の説明で示される、または、実施例によって例示される詳細事項への適用に必ずしも限定されないことを理解されたい。本発明は他の実施形態が可能であり、または、様々な方法で実施、または、実行することができる。また、本明細書中において用いられる表現法および用語法は説明のためであって、限定として見なされるべきでないことを理解されたい。

調節不全のセロトニン活性と、精神障害、例えば、不安症およびうつ病など、とのつながりはこれまでに立証されているが、それにもかかわらず、これらの病理の根底にある分子的機構は完全には理解されていない。マイクロＲＮＡ（ｍｉＲ）は、遺伝子発現を転写後に調節し、脳に多く存在する小さいＲＮＡ分子のサブセットである。

本発明を実施に移しているとき、本発明者らは、特定のマイクロＲＮＡ（ｍｉＲ）が、セロトニン（５ＨＴ）神経膠関連遺伝子の調節に関与していること、したがって、異常なセロトニンレベルに伴う医学的状態（例えば、精神障害など）を調節することに関与していることを発見した。

本明細書中、下記および下記の実施例セクションにおいて例示されるように、本発明者らは、５ＨＴレポーターマウス（ｅＰＥＴ−ＹＦＰ）の縫線核（ＲＮ）から得られる５ＨＴニューロンにおけるｍｉＲ発現パターンを、ｍｉＲマイクロアレイを使用して明らかにした（下記の実施例セクションにおける表２Ａ〜Ｂ参照）。アレイから得られるセロトニン作動性ニューロンの特有のｍｉＲ発現プロフィルを生物情報学的に分析して、重要なセロトニン作動性関連遺伝子（例えば、セロトニン輸送体（Ｓｌｃ６ａ４、図１Ｄ）、セロトニン自己受容体（Ｈｔｒ１ａ、図１Ｅ）、トリプトファンヒドロキシラーゼ２（Ｔｐｈ２、図１Ｆ）およびモノアミンヒドロキシラーゼ（ＭａｏＡ、図１Ｇ）など）を標的とすることが推定されるｍｉＲを特定した。これらの遺伝子の３’ＵＴＲのｍｉＲＮＡによる標的化をさらにインビトロで試験し、５ＨＴニューロン遺伝子を特異的に標的とし、これらを調節する特定のｍｉＲ（例えば、ｍｉＲ−１３５）を例示した（図１Ｈ〜Ｉおよび図２Ｃ〜Ｄ参照）。さらに、本発明者らは、ｍｉＲ−１３５の発現レベルが、急性ストレスの後で（図３Ａ〜Ｄ）、また、抗うつ剤による処置の後で（図３Ｅ〜Ｆ）、ＲＮにおいて変化することを示した。成体マウスのＲＮにおけるインビボでのｍｉＲ−１３５の過剰発現は社会的敗北の後におけるうつ病様行動を低下させた（図４Ａ〜Ｈ）。さらに、本発明者らは、ニューロン活性の調節因子としてのｍｉＲ−１８２の活性（Ｈｔｒ１ａの直接的な抑制を介した、図８）、および、精神病理学的行動の調節因子としてのｍｉＲ−１８２の活性（図９）、ならびに、ストレス応答の調節因子としてのｍｉＲ−１５の活性［ＣＲＨ１Ｒ（図７Ａ〜Ｂ）、ＦＫ５０６結合タンパク質５（ＦＫＢＰ５）（図２１Ａ〜Ｂ）、ならびに、Ｓｔｘ１ａ、Ｓｇｋ１およびＡｄｒｂ２（図２２）の直接的な抑制を介した］を例示している。本発明者らはまた、ｍｉＲ−１９によるベータアドレナリン作動性受容体（Ａｄｒｂ１）およびカナビノイド受容体１（ＣＢ１）の特異的な標的化を例示している。ｍｉＲ−１９の過剰発現はＡｄｒｂ１を抑制し（図６Ａ〜Ｃ）、一方、ｍｉＲ−１９のノックダウンはＡｄｒｂ１の発現を高めた（図６Ｄ〜Ｅ）。ｍｉＲ−１９の過剰発現はまた、ＣＢ１を抑制した（図１４）。本発明者らはまた、ｍｉＲ−１８１に対する標的を発見している。特に、本発明者らは、ｍｉＲ−１８１がグルタミン酸受容体を特異的に調節することを例示している（図２４および図２５）。まとめると、これらの結果は、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２、ｍｉＲ−２６、ｍｉＲ−２７、ｍｉＲ−１５およびｍｉＲ−１９などのｍｉＲＮＡまたは当該ｍｉＲＮＡを調節する配列の、治療法としての使用を実証するものである。

本発明を実施にさらに移す間に、本発明者は、ｍｉＲ１３５を、４％もの人々を襲う双極性障害の処置用の強力な治療薬として使用することができることを発見した。

本発明をさらに実施に移す間に、本発明者らは、ｍｉＲ−１３５がうつ病ヒト患者の血液中で大きくダウンレギュレーションされ（健康な対照と比べて）、患者の精神医学的スコアの改善後にアップレギュレーションされることを発見した。実際に、ｍｉＲ−１３５は、正常な条件下で、無変異型セロトニン作動性緊張の維持に関与する不可欠な調節エレメントであり、また、抗うつ剤に対する脳反応に不可欠であることが明らかになった（図４１Ｅの図式モデルを参照されたい）。

ｍｉＲ−１３５のレベルの増加は、Ｓｌｃ６ａ４およびシナプス前のＨｔｒ１ａレベルの両方を抑制し、うつ病性症状の減少に関連する、シナプス間隙中の５ＨＴを増加させることが明らかになった。さらに、本発明者らが行った生物情報学分析により、双極性感情障害またはリチウム作用を含む精神神経疾患に関連するｍｉＲ１３５の新しい標的が予測された。したがって、これらの標的は精神神経疾患の治療的介入の標的として使用することができる。

現在のアッセイは、精神医学的状態での患者のスクリーニングおよび処置のモニタリングの両方のための非侵襲的試験をさらに提供する。前記を総合して、これらの結果により、ｍｉＲ−１３５が、患者の心理的なバランスの連続的モニタリングが不可欠な、気分障害などの精神医学的状態の診断および管理のための重要なツールとして位置づけられる。

従って、本発明の一態様では、セロトニンレベルの上昇が治療上有益である医学的状態の処置を必要とする対象を処置する方法であって、少なくとも１つのマイクロＲＮＡまたはその前駆体をコードする外因性ポリヌクレオチドを対象の細胞に投与し、または、対象の細胞において発現させることを含む方法が提供される。

特定の実施形態では、セロトニンレベルの上昇が治療上有益である医学的状態を処置するために、マイクロＲＮＡはｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−２６およびｍｉＲ−１８２を含む。

本発明の一態様では、処置を必要としている対象の双極性障害を処置する方法であって、治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはｍｉＲ−１３５またはその前駆物質をコードする核酸分子をその対象に投与することにより、双極性障害を処置することを含む方法が提供される。

本発明の別の態様では、アドレナリンまたはノルアドレナリンの低いレベルが治療上有益である医学的状態の処置を必要とする対象を処置する方法であって、マイクロＲＮＡまたはその前駆体をコードする外因性ポリヌクレオチドを対象の細胞に投与し、または、対象の細胞において発現させることを含む方法が提供される。

特定の実施形態では、アドレナリンまたはノルアドレナリンの低いレベルが治療上有益である医学的状態を処置するために、マイクロＲＮＡはｍｉＲ−１９を含む。

本発明の別の態様では、副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン（ＣＲＨ）の低いレベルが治療上有益である医学的状態の処置を必要とする対象を処置する方法であって、マイクロＲＮＡまたはその前駆体をコードする外因性ポリヌクレオチドを対象の細胞に投与し、または、対象の細胞において発現させることを含む方法が提供される。

特定の実施形態では、副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン（ＣＲＨ）の低いレベルが治療上有益である医学的状態を処置するために、マイクロＲＮＡはｍｉＲ−１５を含む。

本発明の別の態様では、グルタミン酸受容体の低いレベルが治療上有益である医学的状態の処置を必要とする対象を処置する方法であって、マイクロＲＮＡまたはその前駆体をコードする外因性ポリヌクレオチドを対象の細胞に投与し、または、対象の細胞において発現させることを含む方法が提供される。

特定の実施形態では、グルタミン酸受容体の低いレベルが治療上有益である医学的状態を処置するために、マイクロＲＮＡはｍｉＲ−１８１を含む。

用語「処置」は、疾患、障害もしくは状態の発症を抑制すること、もしくは停止させること、および／または、疾患、障害もしくは状態の軽減、寛解もしくは退行を生じさせること、あるいは、疾患、障害もしくは医学的状態を、疾患、障害もしくは状態の危険性があると思われる、疾患、障害もしくは状態を有すると未だ診断されていない対象において生じさせないことを意味する。当業者は、様々な方法およびアッセイを使用して、疾患、障害もしくは状態の発症を評価することができること、また、同様に、様々な方法論およびアッセイを使用して、疾患、障害もしくは状態の軽減、寛解もしくは退行を評価することができることを理解するであろう。

本明細書中で使用される場合、用語の「対象」または「それを必要としている対象」には、症状に苦しんでいる、または症状を発生する危険のある哺乳動物、例えば、任意の年齢の、人間、男性、または女性、が含まれる。

本明細書中で使用される場合、表現の「セロトニンレベルの上昇が治療上有益である医学的状態」は、セロトニンのレベルを増大させることにより、それに伴う疾患または医学的症状の発生を防ぐことができるか、あるいは、それに伴う疾患進行または医学的症状を停止することができる疾患または障害を意味する（本明細書中下記でさらに詳述される）。

本明細書中で使用される場合、用語「セロトニン」は、モノアミン神経伝達物質［５−ヒドロキシトリプタミン（５−ＨＴ）とも呼ばれる］を意味する。セロトニンは、例えば、ＣＡＳ番号５０−６７−９で示される。

一実施形態では、セロトニンレベルをシナプス間隙において増大させる方法であって、少なくとも１つのマイクロＲＮＡまたはその前駆体をコードする外因性ポリヌクレオチドを対象の神経膠細胞（例えば、セロトニン作動性ニューロン）に投与するか、または、対象の神経膠細胞（例えば、セロトニン作動性ニューロン）において発現させることを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「シナプス間隙」は、電気的または化学的なシグナルが通過する２つのニューロンの間の領域を意味する。

「神経膠細胞」は、ニューロンまたはグリア細胞（例えば、乏突起膠細胞または星状膠細胞）を意味する。

本明細書中で使用される場合、用語「セロトニン作動性ニューロン」は、セロトニンを分泌するか、または、セロトニンの再取り込み（すなわち、その細胞表面に発現されるセロトニン輸送体による）が可能であるニューロンを意味する。

セロトニンレベルの上昇が治療上有益である医学的状態には、例えば、うつ病、大うつ病、不安症、ストレス、疲労、認知機能障害、パニック発作、脅迫行動、嗜癖、社会恐怖症を含むいずれかの気分障害、統合失調症、睡眠障害、食品関連障害（例えば、摂食障害）、成長障害および生殖障害を含めてよい。特定の実施形態では、セロトニンレベルの上昇が治療上有益である医学的状態はうつ病を含む。

特定の実施形態では、セロトニンレベルの上昇が治療上有益である医学的状態は双極性障害を含む。

本明細書で使用される場合、双極性感情障害、躁うつ病（ｍａｎｉｃ−ｄｅｐｒｅｓｓｉｖｅｄｉｓｏｒｄｅｒ）、または躁うつ病（ｍａｎｉｃｄｅｐｒｅｓｓｉｏｎ）としても知られる「双極性障害」は、気分障害として分類される精神疾患を意味する。通常、双極性障害の個体は１種または複数種の異常に高揚した状態（臨床的には躁病と呼ばれる）の発症を経験する。躁病は異なるレベルの重症度で発生することがある。より軽度レベルの躁病、または「軽躁病」では、個体は精力的で激しやすいように見えることがあり、また、極めて創造力に富む場合がある。躁病がより重症になるに伴い、個体は迷走的、突発的に行動を始め、多くの場合、将来に関し、非現実的な考えによる不十分な決定を行い、睡眠が極めて困難になることがある。最も重篤なレベルでは、個体は精神障害を経験することがある。躁病の発症は通常、うつ病の発症もしくは症状、または躁病とうつ病に両方の特徴を示す混ざり合った発症と交互に起こる。このような発症は通常、正常な状態の期間で分離される。躁病とうつ病の発症は、数日から数ヶ月の期間継続することがあるが、一部の患者では、うつ病と躁病が急速に交替し、急速交代型と呼ばれる。

本発明のいくつかの実施形態による双極性障害は、任意のタイプの双極性障害および任意の形態および／または派生型の双極性障害が包含され、限定されないが、躁病、急性躁病、重症型躁病、軽躁病、うつ病、中等度うつ病、気分変調症、重症型うつ病、躁病および／またはうつ病の発症、精神障害／精神病症状（例えば、幻覚、妄想）、混合双極性状態、双極Ｉ型障害、双極ＩＩ型障害、急速交代型双極性障害、気分循環症および／または特定不能の双極性障害（ＢＤ−ＮＯＳ）が含まれる。

一実施形態では、双極性障害の処置は、治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはｍｉＲ−１３５もしくはその前駆物質をコードする核酸分子を対象に投与することにより、行うことができる。

一実施形態では、双極性障害の処置はさらに、対象に双極性障害の処置用薬物を投与することにより行うことができる。

本教示により使うことができる双極性障害の処置用の代表的薬物としては、さらに詳細に以降で記載されるリチウム、抗精神病薬物および気分安定剤薬物が挙げられるが、これらに限定されない。

一実施形態では、治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはｍｉＲ−１３５またはその前駆物質をコードする核酸分子の、処置を必要としている対象の双極性疾患を処置するために特定された薬物の製造のための使用が提供される。

したがって、一実施形態では、医学的状態が気分障害、例えば、双極性疾患、うつ病または不安症である場合、マイクロＲＮＡはｍｉＲ−１３５である。

気分障害、例えば、双極性疾患、うつ病または不安症は、必ずしもセロトニンに関連付けられない場合もある。

一実施形態では、セロトニンレベルの上昇が処置を必要としている対象にとって治療上有益である医学的状態を処置する方法であって、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；およびジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）からなる群から選択されるｍｉＲ−１３５標的遺伝子の活性または発現をダウンレギュレーションすることが可能な薬剤を対象に投与することを含む方法が提供される。

特定の実施形態では、薬剤はｍｉＲ−１３５ではない。

本教示により使用することができる薬剤（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子の活性または発現をダウンレギュレーションすることが可能な薬剤）は、以降で詳細に記述される。

本明細書中で使用される場合、表現の「アドレナリンまたはノルアドレナリンの低いレベルが治療上有益である医学的状態」は、アドレナリンまたはノルアドレナリンの発現または活性を低下させることにより、それに伴う疾患または医学的症状の発生を妨げることができるか、あるいは、それに伴う疾患進行または医学的症状を停止することができる疾患または障害を意味する（本明細書中下記でさらに詳述される）。

本明細書中で使用される場合、用語「アドレナリン」は、ホルモンおよび神経伝達物質（エピネフリンとしても知られている）を意味する。アドレナリンは、例えば、ＣＡＳ番号５１−４３−４で示される。

本明細書中で使用される場合、用語の「ノルアドレナリン」は、ホルモンおよび神経伝達物質として作用するカテコールアミンを意味する（ノルエピネフリンとしても知られる）。アドレナリンは、例えば、ＣＡＳ番号（ｌ）５１−４１−２（ｌ）および１３８−６５−８（ｄｌ）で示される。

アドレナリンまたはノルアドレナリンの低いレベルが治療上有益である医学的状態には、例えば、ストレス関連障害、不安症、記憶障害、心臓の病気（例えば、動悸、頻脈、および不整脈）、頭痛、振戦、高血圧および急性肺水腫を含めることができる。

本明細書中で使用される場合、表現「副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン（ＣＲＨ）の低いレベルが治療上有益である医学的状態」は、ＣＲＨの発現または活性を低下させることにより、それに伴う疾患または医学的症状の発生を妨げることができるか、あるいは、それに伴う疾患進行または医学的症状を停止させることができる疾患または障害を意味する（本明細書中、下記でさらに詳述される）。

本明細書中で使用される場合、用語「副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン（ＣＲＨ）」は、ポリペプチドホルモンおよび神経伝達物質を意味する（副腎皮質刺激ホルモン放出因子（ＣＲＦ）またはコルチコリベリンとしても知られている）。ＣＲＨは、例えば、ＮＰ＿０００７４７．１で示される。

ＣＲＨの低いレベルが治療上有益である医学的状態には、例えば、ストレス、うつ病、不安、疲労、認知機能障害、パニック発作、脅迫行動、嗜癖、社会恐怖、睡眠障害、食品関連障害、成長障害、生殖障害および肥満を含めることができる。

本明細書中で使用される場合、表現「グルタミン酸受容体の低いレベルが治療上有益である医学的状態」は、グルタミン酸受容体の発現または活性を低下させることにより、それに伴う疾患または医学的症状の発生を妨げることができるか、あるいは、それに伴う疾患進行または医学的症状を停止させることができる疾患または障害を意味する（本明細書中、下記でさらに詳述される）。

本明細書中で使用される場合、用語「グルタミン酸受容体」は、典型的にはニューロン細胞の膜に位置するシナプス受容体を意味する（例えば、Ｇｒｍ１、Ｇｒｉｋ３、Ｇｒｍ５、Ｇｒｉａ２、Ｇｒｉｋ２およびＧｒｍ７）。グルタミン酸受容体は、例えば、ＮＰ＿０００８２２．２［グルタミン酸受容体イオンチャネル型カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）］；ＮＰ＿０００８１７．２、ＮＰ＿００１０７７０８８．１、ＮＰ＿００１０７７０８９．１、［グルタミン酸受容体イオンチャネル型ＡＭＰＡ２（Ｇｒｉａ２）］；ＮＰ＿００１１５９７１９．１、ＮＰ＿０６８７７５．１、ＮＰ＿７８６９４４．１［グルタミン酸受容体イオンチャネル型カイニン酸２（Ｇｒｉｋ２）］；ＮＰ＿０００８３３．１、ＮＰ＿００１１３７３０３．１［グルタミン酸受容体代謝型５（Ｇｒｍ５）］；ＮＰ＿０００８３５．１、ＮＰ＿８７０９８９．１［グルタミン酸受容体代謝型７（Ｇｒｍ７）］；ＮＰ＿０００８２９．２、ＮＰ＿００１１０７８０１．１［グルタミン酸受容体代謝型１（Ｇｒｍ１）］で示される。

グルタミン酸受容体の低いレベルが治療上有益である医学的状態には、例えば、てんかん発作（例えば、てんかん）、ハンチントン病、統合失調症、脆弱Ｘ症候群、全般性不安障害および癌（例えば、メラノーマ）を含めることができる。

本明細書中で使用される場合、用語「マイクロＲＮＡまたはその前駆体」は、転写後の調節因子として作用するマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）分子を意味する。マイクロＲＮＡは典型的には、プレ−ｍｉＲ（プレ−マイクロＲＮＡ前駆体）からプロセッシングされる。プレ−ｍｉＲは、例えば、培養細胞に遺伝子導入されたとき、機能的なｍｉＲＮＡに効率よくプロセッシングされる、ＲＮＡポリメラーゼＩＩＩによって転写される一組の前駆体ｍｉＲＮＡ分子である。プレ−ｍｉＲを使用して、特異的ｍｉＲＮＡ活性を、このｍｉＲＮＡを通常は発現しない細胞型において誘発することができ、したがって、その標的の機能を、「（ｍｉＲＮＡ）機能獲得」実験においてその発現をダウンレギュレーションすることによって検討することができる。様々なプレ−ｍｉＲ設計が、ｍｉＲＮＡレジストリにおいて列挙されている公知ｍｉＲＮＡのすべてに対して存在しており、また、どのような研究のためにでも容易に設計することができる。マイクロＲＮＡは、本明細書中下記でさらに記載するように、細胞自体に投与されるか、または、核酸構築物中に連結される前駆体分子からコードすることが可能である。一実施形態では、この用語は、５プライム（すなわち、ｍｉＲ）または３プライム（すなわち、ｍｉＲ＊）およびそれらの前駆物質を含む、任意のタイプのマイクロＲＮＡを包含する。

本明細書で使用される場合、用語の「ｍｉＲ−１３５またはその前駆物質」は、ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂ５プライム（すなわち、ｍｉＲ−１３５）または３プライム（すなわち、ｍｉＲ−１３５＊）およびそれらの前駆物質を含む任意のタイプのｍｉＲ−１３５を含むことを意味する。代表的前駆体ｍｉＲ−１３５としては、受入番号ＭＩ００００４５２、ＥＮＴＲＥＺＧＥＮＥ：４０６９２５および配列番号５８で示されるｍｉＲ−１３５ａ−１；受入番号ＭＩ００００４５３、ＥＮＴＲＥＺＧＥＮＥ：４０６９２６および配列番号５９で示されるｍｉＲ−１３５ａ−２；ならびに受入番号ＭＩ００００８１０、ＥＮＴＲＥＺＧＥＮＥ：４４２８９１および配列番号６０で示されるｍｉＲ−１３５ｂが挙げられるが、これらに限定されない。代表的成熟型ｍｉＲ−１３５としては、受入番号ＭＩＭＡＴ００００４２８（配列番号６１）で示されるｍｉＲ−１３５ａおよび受入番号ＭＩＭＡＴ００００７５８（配列番号６２）で示されるｍｉＲ−１３５ｂが挙げられるが、これらに限定されない。代表的成熟型ｍｉＲ−１３５＊としては、受入番号ＭＩＭＡＴ０００４５９５（配列番号１９２）で示されるｍｉＲ−１３５ａ＊および受入番号ＭＩＭＡＴ０００４６９８（配列番号１９３）で示されるｍｉＲ−１３５ｂ＊が挙げられるが、これらに限定されない。

本教示のマイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１３５）は、任意のマイクロＲＮＡ標的に対し、結合、付着、調節、プロセッシング、妨害、増強、安定化および／または脱安定化を行うことができることは理解されよう。このような標的は、限定されないが、ＤＮＡ分子、ＲＮＡ分子およびポリペプチドを含む、任意の分子、例えば、セロトニン関連遺伝子、例えば、セロトニン輸送体（すなわち、ＳＥＲＴまたはＳｌｃ６ａ４）、セロトニン抑制性受容体１ａ（Ｈｔｒ１ａ）、トリプトファンヒドロキシラーゼ２（Ｔｐｈ２）およびモノアミンヒドロキシラーゼ（ＭａｏＡ）など；アドレナリンまたはノルアドレナリン受容体（アドレナリン作動性受容体、例えば、Ａｄｒ１など）；アデニル酸シクラーゼ１型（ＡＤＣＹ１）；ＣＲＨ受容体、例えば、Ｃｒｈ１Ｒなど；または、任意の他の分子、例えば、ＦＫ５０６結合タンパク質５（ＦＫＢＰ５）、カナビノイド受容体１（ＣＢ１）、ダウン症候群細胞接着分子（Ｄｓｃａｍ）、トランスリン会合タンパク質Ｘ（Ｔｓｎａｘ）および細胞接着分子Ｌ１（Ｌ１ｃａｍ）；ならびに下表１に記載のストレス関連精神神経疾患（例えば、双極性障害）に関連するその他の標的であってよいが、これらに限定されない。

(表１)
表１：ストレス関連精神神経疾患に関連するｍｉＲ−１３５の推定標的

本発明のマイクロＲＮＡを、例えば、マイクロＲＮＡレジストリ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｓａｎｇｅｒ．ａｃ．ｕｋ／Ｓｏｆｔｗａｒｅ／Ｒｆａｍ／ｍｉｒｎａ／ｉｎｄｅｘ．ｓｈｔｍｌ）を含む、様々なデータベースを使って特定することができることは理解されよう。

本発明の方法は、対象にマイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１３５）またはその作動因子を投与すること、または対象の細胞中でマイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１３５またはその前駆物質）もしくはその前駆物質をコードした外因性の核酸分子（すなわち、ポリヌクレオチド）を発現させることにより、行うことができる。用語の「ポリヌクレオチド」は、リボ核酸（ＲＮＡ）、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）またはそれらの模倣体の一本鎖または二本鎖のオリゴマーまたはポリマーを意味する。この用語には、天然に存在する核酸分子（例えば、ＲＮＡまたはＤＮＡ）に由来するポリヌクレオチドおよび／またはオリゴヌクレオチド、天然に存在する塩基、糖および共有結合性のヌクレオシド間結合（例えば、骨格）から構成される合成ポリヌクレオチド分子および／またはオリゴヌクレオチド分子、ならびに、天然に存在するそれぞれの部分と同様に機能する天然に存在しない部分を有する合成ポリヌクレオチドおよび／またはオリゴヌクレオチドが含まれる。このような修飾または置換オリゴヌクレオチドは、例えば、向上した細胞取り込み、核酸標的に対する向上した親和性およびヌクレアーゼの存在下での増加した安定性などの望ましい特性のために、天然型よりも好ましい場合がある。

本発明のポリヌクレオチドの長さは、必要に応じて１００ヌクレオチド以下、必要に応じて９０ヌクレオチド以下、必要に応じて８０ヌクレオチド以下、必要に応じて７０ヌクレオチド以下、必要に応じて６０ヌクレオチド以下、必要に応じて５０ヌクレオチド以下、必要に応じて４０ヌクレオチド以下、必要に応じて３０ヌクレオチド以下（例えば、２９ヌクレオチド、２８ヌクレオチド、２７ヌクレオチド、２６ヌクレオチド、２５ヌクレオチド、２４ヌクレオチド、２３ヌクレオチド、２２ヌクレオチド、２１ヌクレオチド、２０ヌクレオチド、１９ヌクレオチド、１８ヌクレオチド、１７ヌクレオチド、１６ヌクレオチド、１５ヌクレオチド）、必要に応じて１２ヌクレオチド〜２４ヌクレオチド、必要に応じて５ヌクレオチド〜１５ヌクレオチド、必要に応じて５ヌクレオチド〜２５ヌクレオチド、最も好ましくは約２０〜２５ヌクレオチドである。

本発明の教示に従って設計されるポリヌクレオチド（オリゴヌクレオチドを含む）は、酵素的合成および固相合成の両方を含めて、当技術分野で知られている任意のオリゴヌクレオチド合成法に従って作製することができる。固相合成を実行するための様々な設備および試薬は、例えば、ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓから市販されている。このような合成のためのいずれかの他の手段も採用することができる。オリゴヌクレオチドの実際の合成は、十分に当業者の能力の範囲内にあり、固相化学、例えば、シアノエチルホスホラミダイト、続けて、脱保護、および、例えば、自動化トリチル−オン法またはＨＰＬＣによる精製を使用して、確立された方法により実施することができる。これらの方法は、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．ａｎｄＲｕｓｓｅｌｌ，Ｄ．Ｗ．（２００１），”ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ”；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｒ．Ｍ．ｅｔａｌ．，ｅｄｓ．（１９９４，１９８９），”ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，” ＶｏｌｕｍｅｓＩ−ＩＩＩ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，Ｍａｒｙｌａｎｄ；Ｐｅｒｂａｌ，Ｂ．（１９８８），”ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＧｕｉｄｅｔｏＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ，” ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ；およびＧａｉｔ，Ｍ．Ｊ．，ｅｄ．（１９８４），”ＯｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ”、中に詳しく記載されている。

ＲＮＡ分子を含むポリヌクレオチドは、本明細書中下記でさらに記載される発現ベクターを使用して生物学的に生成することができることは理解されよう。あるいは、ＲＮＡ分子を含むポリヌクレオチドは、天然に存在するヌクレオチドまたは以下に示す種々修飾されたヌクレオチドを使用して化学的に合成することができる。

一実施形態では、本発明のポリヌクレオチドは修飾ポリヌクレオチドである。ポリヌクレオチドは、当技術分野で知られている様々な方法を使用して修飾することができる。

したがって、本発明のポリヌクレオチドは所望の特徴を付与する修飾を含むように合成することができる。例えば、修飾により、安定性、標的核酸とのハイブリダイゼーション熱力学、特定の組織もしくは細胞型に対する標的化、または細胞透過性、例えば、エンドサイトーシス依存性または非依存性機序を改善することができる。修飾はまた、配列特異的を高め、およびその結果として、オフサイトターゲティングを減らすことができる。化学的修飾については、以下でより詳細に記載する。

一実施形態では、ポリヌクレオチドは単一修飾を含む。別の実施形態では、ポリヌクレオチドは、２、３、４、５個またはそれを超える修飾を含む。

例えば、本発明のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドは、３’から５’へのホスホジエステル連結で結合する、プリン塩基およびピリミジン塩基からなる複素環式ヌクレオシドを含むことができる。

使用されるオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドは、本明細書中下記で幅広く記載されるように、骨格（例えば、糖リン酸骨格）、ヌクレオシド間結合または塩基のいずれかで修飾されるのが好ましい。

本発明のこの態様に従って有用である好ましいオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドの具体的な例には、修飾された骨格または非天然型ヌクレオシド間結合を含有するオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドが含まれる。修飾された骨格を有するオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドには、下記において開示されるように、リン原子を骨格に保持するものが含まれる：米国特許第４，４６９，８６３号、同第４，４７６，３０１号、同第５，０２３，２４３号、同第５，１７７，１９６号、同第５，１８８，８９７号、同第５，２６４，４２３号、同第５，２７６，０１９号、同第５，２７８，３０２号、同第５，２８６，７１７号、同第５，３２１，１３１号、同第５，３９９，６７６号、同第５，４０５，９３９号、同第５，４５３，４９６号、同第５，４５５，２３３号、同第５，４６６，６７７号、同第５，４７６，９２５号、同第５，５１９，１２６号、同第５，５３６，８２１号、同第５，５４１，３０６号、同第５，５５０，１１１号、同第５，５６３，２５３号、同第５，５７１，７９９号、同第５，５８７，３６１号、同第５，６２５，０５０号および同８，０１７，７６３号、ならびに米国特許出願公開第２０１００２２２４１３号。これらの特許は、参照により本明細書に組み込まれる。

一実施形態では、ポリヌクレオチドは、ヌクレオチド配列の５’末端または３’末端にリン修飾ヌクレオチド間結合を含む。

好ましい修飾オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチド骨格には、例えば、ホスホロチオアート；キラルなホスホロチオアート；ホスホロジチオアート；ホスホトリエステル；アミノアルキルホスホトリエステル；メチルホスホナートおよび他のアルキルホスホナート（３’−アルキレンホスホナートおよびキラルなホスホナートを含む）；ホスフィナート；ホスホルアミダート（３’−アミノホスホルアミダートおよびアミノアルキルホスホルアミダートを含む）；チオノホスホルアミダート；チオノアルキルホスホナート；チオノアルキルホスホトリエステル；ならびに、通常の３’−５’連結を有するボラノホスホナート、これらの２’−５’連結類似体、および、逆の極性を有するもの（この場合、ヌクレオシド単位の隣接対が、３’−５’から５’−３’に、または、２’−５’から５’−２’に連結される）；ならびにホウ素ホスホネートが含まれる。上記修飾体の様々な塩、混合塩および遊離酸形態も同様に使用することができる。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、ヌクレオチド配列の５’末端または３’末端のヌクレオチド間結合にホスホロチオエートを含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、ヌクレオチド配列の５’末端または３’末端のヌクレオチド間結合にボラノホスフェートを含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、ヌクレオチド配列の５’末端または３’末端のヌクレオチド間結合にメチルホスホネートを含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、ヌクレオチド配列の５’末端または３’末端のヌクレオチド間結合にリン酸ジエステルを含む。

一実施形態では、ポリヌクレオチドは糖修飾（例えば、リボース修飾）を含む。

一実施形態では、ポリヌクレオチドはリボースの２位に対応する修飾を含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、少なくとも１つの２’修飾ヌクレオチド、例えば、２’−デオキシ、２’−フルオロ、２’−デオキシ−２’−フルオロ、２’−Ｏ−メチル、２’−Ｏ−メトキシエチル（２’−Ｏ−ＭＯＥ）、２’−Ｏ−アミノプロピル（２’−Ｏ−ＡＰ）、２’−Ｏ−ジメチルアミノエチル（２’−Ｏ−ＤＭＡＯＥ）、２’−Ｏ−ジメチルアミノプロピル（２’−Ｏ−ＤＭＡＰ）、２’−Ｏ−ジメチルアミノエチルオキシエチル（２’−Ｏ−ＤＭＡＥＯＥ）、２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）、または２’−Ｏ−Ｎ−メチルアセトアミド（２’−Ｏ−ＮＭＡ）を含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、少なくとも１つの２’−Ｏ−メチル修飾ヌクレオチドを含み、また、いくつかの実施形態では、修飾ポリヌクレオチドの全てのヌクレオチドは、２’−Ｏ−メチル修飾を含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、修飾ヌクレオチド間結合および糖骨格修飾を含む。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、リン修飾ヌクレオチド間結合および糖骨格修飾（例えば、２’修飾ヌクレオチド）を含む。

代表的修飾ｍｉＲ−１３５ポリヌクレオチドとしては、配列番号１９４〜２０９が挙げられるが、これらに限定されない。

あるいは、リン原子を含まない修飾オリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチド骨格は、短鎖アルキルまたはシクロアルキルのヌクレオシド間連結、ヘテロ原子およびアルキルまたはシクロアルキルの混合型ヌクレオシド間連結、または、１つもしくは複数の短鎖ヘテロ原子ヌクレオシド間連結または複素環ヌクレオシド間連結によって形成される骨格を有する。これらには、下記の米国特許において開示されるように、モルホリノ連結（部分的にはヌクレオシドの糖部分から形成される）；シロキサン骨格；スルフィド骨格、スルホキシド骨格およびスルホン骨格；ホルムアセチル骨格およびチオホルムアセチル骨格；メチレンホルムアセチル骨格およびメチレンチオホルムアセチル骨格；アルケン含有骨格；スルファマート骨格；メチレンイミノ骨格およびメチレンヒドラジノ骨格；スルホナート骨格およびスルホンアミド骨格；アミド骨格を有するもの；ならびに、Ｎ、Ｏ、ＳおよびＣＨ２の混合成分部分を有する他のものが含まれる：米国特許第５，０３４，５０６号、同第５，１６６，３１５号、同第５，１８５，４４４号、同第５，２１４，１３４号、同第５，２１６，１４１号、同第５，２３５，０３３号、同第５，２６４，５６２号、同第５，２６４，５６４号、同第５，４０５，９３８号、同第５，４３４，２５７号、同第５，４６６，６７７号、同第５，４７０，９６７号、同第５，４８９，６７７号、同第５，５４１，３０７号、同第５，５６１，２２５号、同第５，５９６，０８６号、同第５，６０２，２４０号、同第５，６１０，２８９号、同第５，６０２，２４０号、同第５，６０８，０４６号、同第５，６１０，２８９号、同第５，６１８，７０４号、同第５，６２３，０７０号、同第５，６６３，３１２号、同第５，６３３，３６０号、同第５，６７７，４３７号および同第５，６７７，４３９号。

本発明に従って使用することができるその他のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドは、糖およびヌクレオシド間連結の両方において修飾されるものであり、すなわち、ヌクレオチド単位の骨格が新規な基により置き換えられたものである。塩基単位は、適切なポリヌクレオチド標的との相補性のために維持される。このようなオリゴヌクレオチド模倣体の一例には、ペプチド核酸（ＰＮＡ）が含まれる。ＰＮＡオリゴヌクレオチドは、糖−骨格がアミド含有骨格、特に、アミノエチルグリシン骨格により置き換えられたオリゴヌクレオチドを意味する。塩基は保持され、骨格のアミド部分のアザ窒素原子に直接的または間接的に結合される。ＰＮＡ化合物の調製を教示する米国特許には、米国特許第５，５３９，０８２号、同第５，７１４，３３１号および同第５，７１９，２６２号が含まれるが、これらに限定されない。これらのそれぞれが参照によって本明細書中に組み込まれる。本発明において使用することができる他の骨格修飾が米国特許第６，３０３，３７４号に開示されている。

一実施形態では、本発明のポリヌクレオチドは、標的核酸と非相補性の内部（すなわち、非末端）領域中にヌクレオチドの化学的修飾を有することができる。例えば、修飾ヌクレオチドは、バルジを形成するｍｉＲＮＡの領域に組み込むことができる。修飾は、例えば、リンカーによってｍｉＲＮＡに結合したリガンドを含めることができる。修飾は、例えば、薬物動態学またはポリヌクレオチドの安定性を改善し、またはポリヌクレオチドの標的核酸に対するハイブリダイゼーション特性（例えば、ハイブリダイゼーション熱力学）を改善することができる。

いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドのバルジ領域に組み込まれたまたはつなぎ止められた修飾またはリガンドの配向は、バルジ領域中の空間を占める向きにされる。例えば、修飾は、インターカレーターとして機能する核酸鎖またはリガンド上の修飾塩基または糖を含むことができる。これらはバルジ中に配置されるのが好ましい。インターカレーターは芳香族、例えば、多環式芳香族または複素環式芳香族化合物であってよい。多環式インターカレーターは、積層能力を有し、２、３、または４個の縮合環を有する系を含むことができる。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドのバルジ領域に組み込まれたまたはつなぎ止められた修飾またはリガンドの配向は、バルジ領域中の空間を占める向きにされる。この配向は、ポリヌクレオチドのハイブリダイゼーション特性、または他の場合に望ましい特性の改善を容易にする。

一実施形態では、ポリヌクレオチドはアミノグリコシドリガンドを含むことができ、これは、ポリヌクレオチドに改善されたハイブリダイゼーション特性または改善された配列特異性を持たせることができる。代表的アミノグリコシドには、グリコシル化ポリリジン；ガラクトシル化ポリリジン；ネオマイシンＢ；トブラマイシン；カナマイシンＡ；およびアミノグリコシドのアクリジンコンジュゲート、例えば、ネオ−Ｎ−アクリジン、ネオ−Ｓ−アクリジン、ネオ−Ｃ−アクリジン、トブラ−Ｎ−アクリジン、およびＫａｎａＡ−Ｎ−アクリジンなどが含まれる。アクリジン類似体の使用により、配列特異性を高めることができる。例えば、ネオマイシンＢは、ＤＮＡに比べて、ＲＮＡに対する高親和性を有するが、低配列特異性である。いくつかの実施形態では、アミノグリコシドリガンドのグアニジン類似体（グアニジノグリコシド）はポリヌクレオチド薬剤につなぎ止められる。グアニジノグリコシドでは、アミノ酸上のアミン基はグアニジン基と交換される。グアニジン類似体の結合により、ポリヌクレオチドの細胞透過性を高めることができる。

ポリヌクレオチドは、標的ＲＮＡと二本鎖を形成するのに十分な相補性を有する領域（例えば、７、８、９、１０、または１１ヌクレオチド長さの領域）により挟まれた非相補性領域（例えば、３、４、５、または６ヌクレオチド長さの領域）を含むように設計および合成することができる。

標的に対するヌクレアーゼ耐性および／または結合親和性を高めるために、本発明のポリヌクレオチドは、２’−Ｏ−メチル、２’−フッ素、２’−Ｏ−メトキシエチル、２’−Ｏ−アミノプロピル、２’−アミノ、および／またはホスホロチオエート結合を含めることができる。ロックド核酸（ＬＮＡ）、例えば、リボース環が２’−Ｏ原子と４’−Ｃ原子を連結するメチレン架橋により「ロック」された核酸類似体、エチレン核酸（ＥＮＡ）、例えば、２’−４’−エチレン架橋核酸、および２−アミノ−Ａ、２−チオ（例えば、２−チオ−Ｕ）、Ｇクランプ修飾などの特定のヌクレオベース修飾の包含により、同様に標的に対する結合親和性を高めることができる。オリゴヌクレオチド骨格中へのピラノース糖の包含もまた、ヌクレオチド鎖切断開裂を減らすことができる。

３’カチオン性基の組み込みにより、またはヌクレオシドを３’−３’連結を有する末端で反転することにより、ポリヌクレオチドをさらに修飾することができる。別の選択肢としては、３’−末端をアミノアルキル基、例えば、３’Ｃ５−アミノアルキルｄＴでブロックすることができる。その他の３’コンジュゲートは、３’−５’エキソヌクレアーゼ開裂を抑制することができる。理論に束縛されるものではないが、３’コンジュゲート、例えば、ナプロキセンまたはイブプロフェンは、エキソヌクレアーゼを、オリゴヌクレオチドの３’末端への結合から立体的にブロックすることにより、エキソヌクレアーゼ開裂を抑制することができる。たとえ小さいアルキル鎖、アリール基、もしくは複素環コンジュゲートまたは修飾糖（Ｄ−リボース、デオキシリボース、グルコースなど）であっても、３’−５’−エキソヌクレアーゼをブロックすることができる。

５’−末端を、アミノアルキル基、例えば、５’−Ｏ−アルキルアミノ置換基でブロックすることができる。その他の５’コンジュゲートは、５’−３’エキソヌクレアーゼ開裂を抑制することができる。理論に束縛されるものではないが、５’コンジュゲート、例えば、ナプロキセンまたはイブプロフェンは、エキソヌクレアーゼを、オリゴヌクレオチドの５’末端への結合から立体的にブロックすることにより、エキソヌクレアーゼ開裂を抑制することができる。たとえ小さいアルキル鎖、アリール基、もしくは複素環コンジュゲートまたは修飾糖（Ｄ−リボース、デオキシリボース、グルコースなど）であっても、３’−５’−エキソヌクレアーゼをブロックすることができる。

一実施形態では、ポリヌクレオチドは、標的化を改善する修飾、例えば、本明細書で記載の標的化修飾を含む。一本鎖オリゴヌクレオチド薬剤を特定の細胞型に標的化する修飾の例には、炭水化物糖、例えば、Ｎ−アセチルガラクトサミン、マンノース；ビタミン、例えば、葉酸；その他のリガンド、例えば、ＲＧＤおよびＲＧＤ模倣体；およびナプロキセン、イブプロフェンまたはその他の既知のタンパク質結合分子を含む小分子が挙げられる。

本発明のポリヌクレオチドは、当技術分野において既知の手順を使用した化学合成および／または酵素連結反応を使って構築することができる。例えば、ポリヌクレオチドは化学的に合成することができる。天然に存在するヌクレオチドまたは分子の生物学的安定性を高めるまたはポリヌクレオチドと標的核酸との間で形成される二本鎖の物理的安定性を高めるように設計された、様々に修飾されたヌクレオチドを使って化学的に合成することができ、例えば、ホスホロチオエート誘導体およびアクリジン置換ヌクレオチドを使用することができる。

本発明のオリゴヌクレオチドまたはポリヌクレオチドはまた、塩基修飾または塩基置換を含んでもよい。本明細書中で使用される場合、「非修飾」塩基または「天然」塩基には、プリン塩基のアデニン（Ａ）およびグアニン（Ｇ）、ならびに、ピリミジン塩基のチミン（Ｔ）、シトシン（Ｃ）およびウラシル（Ｕ）が含まれる。「修飾」塩基には、限定されないが、他の合成塩基および天然塩基、例えば、５−メチルシトシン（５−ｍｅ−Ｃ）；５−ヒドロキシメチルシトシン；キサンチン；ヒポキサンチン；２−アミノアデニン；アデニンおよびグアニンの６−メチル誘導体および他のアルキル誘導体；アデニンおよびグアニンの２−プロピル誘導体および他のアルキル誘導体；２−チオウラシル、２−チオチミンおよび２−チオシトシン；５−ハロウラシルおよびシトシン；５−プロピニルウラシルおよび５−プロピニルシトシン；６−アゾウラシル、６−アゾシトシンおよび６−アゾチミン；５−ウラシル（シュードウラシル）；４−チオウラシル；８−ハロ、８−アミノ、８−チオール、８−チオアルキル、８−ヒドロキシおよび他の８−置換されたアデニンおよびグアニン；５−ハロ、特に５−ブロモ、５−トリフルオロメチルおよび他の５−置換されたウラシルおよびシトシン；７−メチルグアニンおよび７−メチルアデニン；８−アザグアニンおよび８−アザアデニン；７−デアザグアニンおよび７−デアザアデニン；ならびに、３−デアザグアニンおよび３−デアザアデニンなどが含まれる。追加の修飾塩基としては、下記で開示のものが含まれる：米国特許第３，６８７，８０８号；Ｋｒｏｓｃｈｗｉｔｚ，Ｊ．Ｉ．，ｅｄ．（１９９０），”ＴｈｅＣｏｎｃｉｓｅＥｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａＯｆＰｏｌｙｍｅｒＳｃｉｅｎｃｅＡｎｄＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，” ８５８−８５９ページ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ；Ｅｎｇｌｉｓｃｈｅｔａｌ．（１９９１），”ＡｎｇｅｗａｎｄｔｅＣｈｅｍｉｅ，” ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＥｄｉｔｉｏｎ，３０，６１３；およびＳａｎｇｈｖｉ，Ｙ．Ｓ．，”ＡｎｔｉｓｅｎｓｅＲｅｓｅａｒｃｈａｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，” Ｃｈａｐｔｅｒ１５，２８９−３０２ページ，Ｓ．Ｔ．ＣｒｏｏｋｅａｎｄＢ．Ｌｅｂｌｅｕ，ｅｄｓ．，ＣＲＣＰｒｅｓｓ，１９９３。このような修飾塩基は、本発明のオリゴマー化合物の結合親和性を増大させるために特に有用である。これらには、５−置換ピリミジン、６−アザピリミジン、ならびに、２−アミノプロピルアデニン、５−プロピニルウラシルおよび５−プロピニルシトシンを含むＮ−２−置換プリン、Ｎ−６−置換プリンおよびＯ−６−置換プリンが含まれる。５−メチルシトシン置換は、核酸二本鎖の安定性を０．６〜１．２℃増加させることが示されており（Ｓａｎｇｈｖｉ，Ｙ．Ｓ．ｅｔａｌ．（１９９３），”ＡｎｔｉｓｅｎｓｅＲｅｓｅａｒｃｈａｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，” ２７６−２７８ページ，ＣＲＣＰｒｅｓｓ，ＢｏｃａＲａｔｏｎ）、現時点では好ましい塩基置換であり、より具体的には、２’−Ｏ−メトキシエチル糖修飾と組み合わされた場合に好ましい。

一実施形態では、修飾ポリヌクレオチドは、薬剤、例えば、コレステロールの安定性、分布または細胞取り込みを改善するために選択されたリガンドに結合するようにさらに修飾される。

したがって、ポリヌクレオチドは非ヌクレオチド部分、例えば、コレステロール部分を含むように修飾することができる。非ヌクレオチド部分（例えば、コレステロール部分）を、例えば、ポリヌクレオチドの３’または５’末端に結合することができる。

特定の実施形態では、本発明のｍｉＲＮＡポリヌクレオチドは、配列番号５８〜９４で示される核酸配列を有する（表１Ａ参照）。

（表１Ａ）
表１Ａ：ｍｉＲＮＡポリヌクレオチド配列

本明細書中上記で述べられているように、また、下記の実施例セクションにおいて示されるように、マイクロＲＮＡは、特定の前駆体（すなわち、プレ−ｍｉＲＮＡ）に由来するプロセッシングされた分子であり、特定のｍｉＲＮＡ機能のアップレギュレーションを、特定のｍｉＲＮＡ前駆体分子を使用して達成することができる。

特定の実施形態では、ｍｉＲ−１３５はｍｉＲ−１３５ａまたはｍｉＲ−１３５ｂを含む。

特定の実施形態では、本発明の前駆体ｍｉＲ−１３５ポリヌクレオチドは、配列番号５８〜６０で示される核酸配列を有する。

特定の実施形態では、本発明の成熟型ｍｉＲ−１３５ポリヌクレオチドは、配列番号６１〜６２で示される核酸配列を有する。

特定の実施形態では、本発明の成熟型ｍｉＲ−１３５＊ポリヌクレオチドは、配列番号１９２〜１９３で示される核酸配列を有する。

同様に意図されるものが、ｍｉＲＮＡおよびその前駆体に対して相同的な配列である。相同性のレベルは、成熟型ｍｉＲＮＡについては比較的高いものとするべきであるが、配列変化が、成熟型ｍｉＲに対応する核酸セグメントではなくヘアピン配列においてである限り、前駆体レベルではより大きな自由度が許容される（例えば、少なくとも６０％、７０％、８０％、８５％、９０％、９５％またはそれ以上）。

そのような前駆体ポリヌクレオチド薬剤は典型的には、発現構築物の一部として標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）に投与される。この場合、ポリヌクレオチド薬剤は、標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）におけるマイクロＲＮＡの発現を構成的または誘導可能な様式で行わせることができるシス作用調節エレメント（例えば、プロモーター）の制御下で核酸構築物中に連結される。

本発明のマイクロＲＮＡポリヌクレオチド薬剤の例には、ｍｉＲ−１５（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９４８５）、ｍｉＲ−１９（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９４８９．１）、ｍｉＲ−２６（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９５００および同ＮＲ＿０２９４９９）、ｍｉＲ−２７（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９５０１）、ｍｉＲ−１３５（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９６７７．１、ＮＲ＿０２９６７８．１、ＮＲ＿０２９８９３．１）、ｍｉＲ−３３５（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９８９９．１）、ｍｉＲ−１８１（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９６１１．１）およびｍｉＲ−１８２（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ受入番号ＮＲ＿０２９６１４）が含まれるが、これらに限定されない。

そのような前駆体ポリヌクレオチド薬剤は典型的には、発現構築物の一部として標的細胞（例えば、神経膠細胞、神経叢（ＣＰ）細胞、幹細胞または分化幹細胞）に投与される。この場合、ポリヌクレオチド薬剤は、標的細胞（例えば、神経膠細胞、ＣＰ細胞、幹細胞または分化幹細胞）におけるマイクロＲＮＡの発現を構成的または誘導可能な様式で行わせることができるシス作用調節エレメント（例えば、プロモーター）の制御下で核酸構築物中に連結される。

ニューロン細胞特異的プロモーターの例には、ニューロン特異的エノラーゼ遺伝子プロモーター、シナプシンプロモーター、強化シナプシンプロモーター、カルシウムカルモジュリンプロモーターおよびＴｈｙ１プロモーターが含まれるが、これらに限定されない。

代表的神経膠細胞特異的プロモーターには、グリア線維酸性タンパク質（ＧＦＡＰ）プロモーターが含まれる。

脈絡膜層神経叢特異的プロモーターの例としては、２型コルチコトロピン放出因子受容体のβスプライスバリアント（ＣＲＦＲ２β）プロモーター、Ｇタンパク質共役受容体１２５（ＧＰＲ１２５）プロモーターおよびトランスサイレチンプロモーターが挙げられるが、これらに限定されない。

一実施形態では、プロモーター配列（例えば、脈絡叢特異的プロモーター）は、核酸構築物上のポリヌクレオチド配列（例えば、ｍｉＲ−１３５ポリヌクレオチド配列）の３’に配置され、その発現は構成的であるが、組織特異性である。

別の実施形態では、脈絡叢特異的プロモーター配列は、核酸構築物上のポリヌクレオチド配列（例えば、ｍｉＲ−１３５ポリヌクレオチド配列）に対して配置され、その発現は組織特異性であるが、また、外因的に調節可能な方式で制御可能でもある。

対象のポリヌクレオチドが脈絡叢の細胞中で特異的に、および外因的に制御可能な方式の両方で発現される事を確実にするために、核酸構築物は、脈絡叢特異的プロモーターの制御下でトランス活性化因子をコードするポリヌクレオチドを含むように設計することができる。ポリヌクレオチドは、誘導性プロモーターの制御下で、同じ核酸構築物中に、または追加の構築物中に挿入することができる。誘導因子と組み合わせたトランス活性化因子は、誘導性プロモーター由来の発現を調節するように作用する。

本発明で用いるのに好適な誘導性プロモーターは、ポリヌクレオチド配列の転写を指示することが可能な応答エレメントであるのが好ましい。適切な応答エレメントは、例えば、テトラサイクリン応答エレメント（例えば、ＧｏｓｓｅｎとＢｕｊａｒｄにより記載されているもの（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：５５４７−５５１，１９９２））；エクジソン誘導性（ｅｃｔｙｓｏｎｅ−ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ）応答エレメント（ＮｏＤｅｔａｌ．，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ．９３：３３４６−３３５１，１９９６）；Ｍａｙｏらにより記載されているものなどの金属イオン応答エレメント（Ｃｅｌｌ．２９：９９−１０８，１９８２）；Ｂｒｉｎｓｔｅｒら（Ｎａｔｕｒｅ２９６：３９−４２，１９８２）およびＳｅａｒｌｅら（Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：１４８０−１４８９，１９８５）；Ｎｏｕｅｒらにより記載されているものなどのヒートショック応答エレメント（ＨｅａｔＳｈｏｃｋＲｅｓｐｏｎｓｅ，ｅｄ．Ｎｏｕｅｒ，Ｌ．，ＣＲＣ，ＢｏｃａＲａｔｏｎ，Ｆｌａ．，ｐｐ１６７−２２０，１９９１）；またはＬｅｅらにより記載されているものなどのホルモン応答エレメント（Ｎａｔｕｒｅ２９４：２２８−２３２，１９８１）；Ｈｙｎｅｓら（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ７８：２０３８−２０４２，１９８１）；Ｋｌｏｃｋら（Ｎａｔｕｒｅ３２９：７３４−７３６，１９８７）；およびＩｓｒａｅｌとＫａｕｆｍａｎ（Ｎｕｃｌ．ＡｃｉｄｓＲｅｓ．１７：２５８９−２６０４，１９８９）であってよい。好ましくは、応答エレメントはエクジソン誘導性応答エレメントであり、より好ましくは、応答エレメントはテトラサイクリン応答エレメントである。

心臓細胞特異的プロモーターの例には、心臓ＮＣＸ１プロモーターおよびα−ミオシン重鎖（αＭＨＣ）プロモーターが含まれるが、これらに限定されない。

本発明の発現構築物はまた、当該ベクターを真核生物における複製および組み込みを好適にするさらなる配列を含むことができる（例えば、シャトルベクター）。典型的なクローニングベクターは、転写および翻訳開始配列（例えば、プロモーター、エンハンサー）、ならびに、転写および翻訳ターミネーター（例えば、ポリアデニル化シグナル）を含む。本発明の発現構築物はさらにエンハンサーを含むことができ、これは、プロモーター配列に対して近位または遠位に位置してよく、プロモーター配列からの転写をアップレギュレーションするように機能することができる。

エンハンサーエレメントは、連結されている同種プロモーターまたは異種プロモーターからの転写を１，０００倍にまで刺激することができる。エンハンサーは、転写開始部位の下流側または上流側に置かれたときに活性である。ウイルスに由来する多くのエンハンサーエレメントは広範な宿主範囲を有しており、また、様々な組織において活性である。例えば、ＳＶ４０初期遺伝子エンハンサーは、多くの細胞型に対して好適である。本発明に好適である他のエンハンサー／プロモーターの組合せには、ポリオーマウイルスまたはヒトもしくはマウスのサイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、および、様々なレトロウイルス（例えば、マウス白血病ウイルス、マウス肉腫ウイルスまたはラウス肉腫ウイルス、および、ＨＩＶなど）から得られる長い縦列反復（ＬＴＲ）に由来する組合せが含まれる。Ｇｌｕｚｍａｎ，Ｙ．ａｎｄＳｈｅｎｋ，Ｔ．，ｅｄｓ．（１９８３）．ＥｎｈａｎｃｅｒｓａｎｄＥｕｋａｒｙｏｔｉｃＧｅｎｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＰｒｅｓｓ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．を参照されたい。この文献は参照により本明細書中に組み込まれる。

ポリアデニル化配列もまた、検出可能な部分の発現効率を増大させるために本発明の発現構築物に加えることができる。正確で効果的なポリアデニル化のために、２つの異なった配列エレメントが必要となる：ポリアデニル化部位の下流側に位置するＧＵリッチ配列またはＵリッチ配列、および、この部位の１１〜３０ヌクレオチド上流側に位置する６ヌクレオチドの高度に保存された配列、すなわち、ＡＡＵＡＡＡ。本発明に好適な終結シグナルおよびポリアデニル化シグナルには、ＳＶ４０に由来するシグナルが含まれる。

既に記載された実施形態に加えて、本発明の発現構築物は典型的には、クローン化された核酸の発現レベルを増大させるために、または、組換えＤＮＡを有する細胞の特定を容易にするために意図される他の特化されたエレメントを含有することができる。例えば、いくつかの動物ウイルスは、許容細胞型におけるウイルスゲノムの染色体外複製を促進するＤＮＡ配列を含有する。これらのウイルスレプリコンを有するプラスミドは、適切な因子が、プラスミドで運ばれる遺伝子、または、宿主細胞のゲノムとともに運ばれる遺伝子によって提供される限り、エピソームとして複製される。

本発明の発現構築物は真核生物レプリコンを含んでも、または含まなくてもよい。真核生物レプリコンが存在する場合は、ベクターは、真核生物細胞における増幅を、適切な選択マーカーを使用して行うことができる。構築物が真核生物レプリコンを含まない場合には、エピソーム増殖を行うことができない。代わりに、組換えＤＮＡが、操作された細胞のゲノムに一体化され、そこでプロモーターが、所望の核酸の発現を指示する。

核酸構築物は、適切な遺伝子送達ビークル／方法（遺伝子導入、形質導入など）および適切な発現系を使用して本発明の標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）に導入することができる。

哺乳動物発現ベクターの例には、ｐｃＤＮＡ３、ｐｃＤＮＡ３．１（＋／−）、ｐＧＬ３、ｐＺｅｏＳＶ２（＋／−）、ｐＳｅｃＴａｇ２、ｐＤｉｓｐｌａｙ、ｐＥＦ／ｍｙｃ／ｃｙｔｏ、ｐＣＭＶ／ｍｙｃ／ｃｙｔｏ、ｐＣＲ３．１、ｐＳｉｎＲｅｐ５、ＤＨ２６Ｓ、ＤＨＢＢ、ｐＮＭＴ１、ｐＮＭＴ４１およびｐＮＭＴ８１（これらはＩｎｖｉｔｒｏｇｅｎから入手可能である）、ｐＣＩ（これはＰｒｏｍｅｇａから入手可能である）、ｐＭｂａｃ、ｐＰｂａｃ、ｐＢＫ−ＲＳＶおよびｐＢＫ−ＣＭＶ（これらはＳｔｒａｔｅｇｅｎｅから入手可能である）、ｐＴＲＥＳ（これはＣｌｏｎｔｅｃｈから入手可能である）、ならびに、それらの誘導体が含まれるが、これらに限定されない。

真核生物ウイルス（例えば、レトロウイルスなど）から得られる調節エレメントを含有する発現ベクターもまた使用することができる。ＳＶ４０ベクターには、例えば、ｐＳＶＴ７およびｐＭＴ２が含まれる。ウシパピローマウイルスに由来するベクターには、ｐＢＶ−１ＭＴＨＡが含まれ、エプスタイン・バールウイルスに由来するベクターには、ｐＨＥＢＯおよびｐ２Ｏ５が含まれる。他の例示的なベクターには、ｐＭＳＧ、ｐＡＶ００９／Ａ＋、ｐＭＴＯ１０／Ａ＋、ｐＭＡＭｎｅｏ−５およびバキュロウイルスｐＤＳＶＥが含まれる。

発現構築物は、ウイルスであってもよい。ウイルス構築物の例には、アデノウイルスベクター、レトロウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクター、アデノ関連ウイルスベクター、ポリオーマウイルスベクター、アルファウイルスベクター、ラブドウイルスベクター、レンチウイルスベクターおよびヘルペスウイルスベクターが含まれるが、これらに限定されない。

レトロウイルスベクターは、本発明との使用のために特に好適である一群のベクターを表す。欠陥レトロウイルスベクターが、遺伝子の哺乳動物細胞への移入に定常的に使用されている（総説については、Ｍｉｌｌｅｒ，Ａ．Ｄ．（１９９０）、Ｂｌｏｏｄ、７６、２７１参照）。本発明のポリヌクレオチドを含む組換えレトロウイルスを、よく知られている分子技術を使用して構築することができる。レトロウイルスのゲノムの一部を除去して、レトロウイルス複製装置を欠陥にし、その後、この複製欠陥レトロウイルスをビリオンにパッケージングすることができ、このビリオンを使って、標準的な技術を用いながら、ヘルパーウイルスの使用により標的細胞に感染させることができる。組換えレトロウイルスを作製するため、および、細胞にウイルスをインビトロまたはインビボで感染させるためのプロトコルを、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌｅｔａｌ．（１９９４）ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（ＧｒｅｅｎｅＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＡｓｓｏｃｉａｔｅｓ，Ｉｎｃ．＆ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，Ｉｎｃ．）中で見つけることができる。レトロウイルスは、様々な遺伝子を多くの異なる細胞型（ニューロン細胞、上皮細胞、内皮細胞、リンパ球、筋芽細胞、肝細胞および骨髄細胞を含む）に導入するために使用されてきた。

一実施形態では、レンチウイルスベクター（レトロウイルスベクターの１つのタイプ）が本教示に従って使用される。レンチウイルスベクターは、分裂中の細胞と同様に、非分裂細胞のゲノムに組み込むそれらの能力のためにベクターとして広範囲に使用されている。これはＲＮＡの形態のウイルスのゲノムが、ウイルスが細胞に進入したときに逆転写されて、ＤＮＡを産生し、このＤＮＡがその後、ウイルスインテグラーゼ酵素によってゲノムのランダムな位置に挿入される。ベクター（プロウイルス）はゲノムに留まり、細胞が分裂するとき、細胞の子孫に伝えられる。安全性の理由から、レンチウイルスベクターは、それらの複製に必要な遺伝子を決して含まない。レンチウイルスを作製するために、いくつかのプラスミドが、いわゆるパッケージング細胞株（一般にはＨＥＫ２９３）に遺伝子導入される。１つまたは複数のプラスミド（これらは一般にパッケージングプラスミドと呼ばれる）により、ビリオンタンパク質、例えば、カプシドおよび逆転写酵素などがコードされる。別のプラスミドは、ベクターによって送達される遺伝物質を含有する。遺伝物質は、一本鎖のＲＮＡウイルスゲノムを産生するために転写され、また、Ψ（プシー）配列の存在によって印が付けられる。この配列を使って、ゲノムがビリオン中にパッケージングされる。

本発明のポリヌクレオチド配列を神経膠細胞または心臓細胞に導入し、当該細胞において発現させるための好適なレンチウイルスベクターの具体的な一例は、レンチウイルスｐＬＫＯ．１ベクターである。

本発明のこの態様により使用することができる別の好適な発現ベクターは、アデノウイルスベクターである。アデノウイルスは、広範囲に研究され、定常的に使用されている遺伝子移入ベクターである。アデノウイルスベクターの重要な利点には、分裂細胞および休止細胞の比較的大きい形質導入効率、広範囲の上皮組織に対する固有の指向性、ならびに、高力価物の容易な製造が含まれる（Ｒｕｓｓｅｌ，Ｗ．Ｃ．（２０００），ＪＧｅｎＶｉｒｏｌ，８１，５７〜６３）。アデノウイルスＤＮＡは核に輸送されるが、そこに組み込まれることはない。したがって、アデノウイルスベクターによる変異誘発の危険性が最小限に抑えられ、一方で、短期間の発現が、癌細胞を処置するために特に適している。実験的な癌処置において使用されるアデノウイルスベクターが、Ｓｅｔｈらの（１９９９）“Ａｄｅｎｏｖｉｒａｌｖｅｃｔｏｒｓｆｏｒｃａｎｃｅｒｇｅｎｅｔｈｅｒａｐｙ，” ｐｐ．１０３−１２０，Ｐ．Ｓｅｔｈ，ｅｄ．，Ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓｅｓ：ＢａｓｉｃＢｉｏｌｏｇｙｔｏＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ，Ｌａｎｄｅｓ，Ａｕｓｔｉｎ，ＴＸ）により記載されている。

好適なウイルス発現ベクターはまた、レトロウイルス成分およびアデノウイルス成分を組み合わせたキメラアデノウイルス／レトロウイルスベクターであってよい。このようなベクターは、腫瘍細胞を形質導入するための従来型の発現ベクターよりも効率的な場合がある（Ｐａｎｅｔａｌ．（２００２）．ＣａｎｃｅｒＬｅｔｔｓ１８４，１７９−１８８）。

各種方法を使って、本発明の核酸構築物を哺乳動物細胞に導入することができる。このような方法は、Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔａｌ．，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇｓＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙ，ＮｅｗＹｏｒｋ（１９８９，１９９２），ｉｎＡｕｓｕｂｅｌｅｔａｌ．，ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙａｎｄＳｏｎｓ，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，Ｍｄ．（１９８９），Ｃｈａｎｇｅｔａｌ．，ＳｏｍａｔｉｃＧｅｎｅＴｈｅｒａｐｙ，ＣＲＣＰｒｅｓｓ，ＡｎｎＡｒｂｏｒ，Ｍｉｃｈ．（１９９５），Ｖｅｇａｅｔａｌ．，ＧｅｎｅＴａｒｇｅｔｉｎｇ，ＣＲＣＰｒｅｓｓ，ＡｎｎＡｒｂｏｒＭｉｃｈ．（１９９５），Ｖｅｃｔｏｒｓ：ＡＳｕｒｖｅｙｏｆＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇＶｅｃｔｏｒｓａｎｄＴｈｅｉｒＵｓｅｓ，Ｂｕｔｔｅｒｗｏｒｔｈｓ，ＢｏｓｔｏｎＭａｓｓ．（１９８８）およびＧｉｌｂｏａｅｔａｔ．［Ｂｉｏｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ４（６）：５０４−５１２，１９８６］に一般的に記載されており、例えば、組換えウイルスベクターの安定なまたは一時的な遺伝子導入、リポフェクション、電気穿孔および感染を含む。さらに、ポジティブ−ネガティブ選択法に関する米国特許第５，４６４，７６４号および同第５，４８７，９９２号を参照されたい。

本発明の発現構築物をウイルス感染によって標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）に導入するとき、感染のためのウイルス用量は、少なくとも１０３、１０４、１０５、１０６、１０７、１０８、１０９、１０１０、１０１１、１０１２、１０１３、１０１４、１０１５またはそれを超えるｐｆｕまたはウイルス粒子である。

血液脳関門を回避するために、本発明の構築物を脳内に（脳室を介して）、嗅球中に（鼻腔内投与を介して）、脊髄を介して（例えば、硬膜外カテーテルにより）または脈絡叢中で発現させることにより、直接投与することができる。これに関しては本明細書でさらに詳述される。

あるいは、脂質に基づく系を、これらの本発明の構築物の標的細胞（例えば、神経膠細胞などの脳細胞）への送達に使用することができる。

リポソームには、一定量を包む脂質二重層から構成される任意の合成（すなわち、天然に存在しない）構造物が含まれる。リポソームは、エマルション、フォーム、ミセル、不溶性単分子膜、液晶、リン脂質分散物およびラメラ層などを含む。リポソームは、当技術分野における公知方法のいずれかによって調製することができる［Ｍｏｎｋｋｏｎｅｎ，Ｊ．ｅｔａｌ．，１９９４，Ｊ．ＤｒｕｇＴａｒｇｅｔ，２：２９９−３０８；Ｍｏｎｋｋｏｎｅｎ，Ｊ．ｅｔａｌ．，１９９３，Ｃａｌｃｉｆ．ＴｉｓｓｕｅＩｎｔ．，５３：１３９−１４５；ＬａｓｉｃＤＤ．，ＬｉｐｏｓｏｍｅｓＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙＩｎｃ．，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，１９９３，６３−１０５．（ｃｈａｐｔｅｒ３）；ＷｉｎｔｅｒｈａｌｔｅｒＭ，ＬａｓｉｃＤＤ，ＣｈｅｍＰｈｙｓＬｉｐｉｄｓ，１９９３Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ；６４（１−３）：３５−４３］。リポソームは、正荷電、中性または負荷電であってよい。単核食細胞系（ＭＰＳ）取り込みのために、リポソームは疎水性とすることができ、これは、リポソーム膜の（例えば、ポリエチレングリコール結合脂質および親水性粒子の使用による）親水性での遮蔽がＭＰＳ取り込みを受けにくくする場合があるからである。必要に応じて、リポソームが、立体的に遮蔽された脂質（例えば、ガングリオシド−ＧＭ１およびホスファチジルイノシトールなど）を含まず、これは、これらの脂質がＭＰＳ取り込みを妨げるからである。

リポソームは単一脂質層であっても、または、多層状であってもよい。治療剤が親水性である場合、その送達を、大きい単層小胞を使用してさらに改善することができ、これは、それらの内部体積がより大きいからである。逆に、治療剤が疎水性である場合、その送達を、多層小胞を使用してさらに改善することができる。あるいは、治療剤（例えば、オリゴヌクレオチド）は脂質二重層を透過することができず、結果として、リポソーム表面に吸着されたままとなるであろう。この場合には、リポソームの表面積を増大することにより、治療剤の送達をさらに改善することができる。本発明による好適なリポソームは非毒性のリポソームであり、例えば、ホスファチジルコリンホスホグリセロールおよびコレステロールから調製されるリポソームである。使用されるリポソームの直径は０．１〜１．０ミクロンの範囲であってよい。しかしながら、食作用細胞による食作用に好適である他のサイズ範囲も使用することができる。リポソームのサイズ調整を行うために、ホモジナイゼーションが使用される場合があり、これは、大きいリポソームをより小さいリポソームに細分化するための剪断エネルギーに依拠する。都合よく使用することができるホモジナイザーには、Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ（Ｂｏｓｔｏｎ，ＭＡ）によって製造されるマイクロフルイダイザーが含まれる。典型的なホモジナイゼーション手順では、リポソームは、選択されたリポソームサイズが観測されるまで、標準的な乳化ホモジナイザーに通して再循環される。粒子サイズ分布を従来のレーザービーム粒子サイズ識別によってモニターすることができる。小細孔のポリカルボナート膜または非対称セラミック膜を通したリポソームの押出しが、リポソームサイズを比較的明確なサイズ分布にまで小さくするための効果的な方法である。典型的には、懸濁物が、所望されるリポソームサイズ分布が達成されるまで１回または複数回、その膜を通して循環される。リポソームが、リポソームサイズを徐々に減少させるために、細孔が順次小さくなる膜を通して押し出してもよい。

当技術分野で知られているいずれかの方法を使って、マイクロＲＮＡポリヌクレオチド薬剤（ｍｉＲ−１３５またはその前駆物質）をリポソームに組み込むことができる。例えば、マイクロＲＮＡポリヌクレオチド薬剤（ｍｉＲ−１３５またはその前駆物質）がリポソーム内にカプセル化することができる。あるいは、マイクロＲＮＡポリヌクレオチド薬剤がリポソームの表面に吸着されてもよい。本発明のリポソームに医薬品を組み込むために使用することができる他の方法には、Ａｌｆｏｎｓｏら［Ｔｈｅｓｃｉｅｎｃｅａｎｄｐｒａｃｔｉｃｅｏｆｐｈａｒｍａｃｙ，ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇ，ＥａｓｔｏｎＰａ１９ｔｈｅｄ．，（１９９５）］およびＫｕｌｋａｒｎｉｅｔａｌ．，［Ｊ．Ｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌ．１９９５，１２（３）２２９−４６］によって記載された方法がある。

本発明の方法において使用されるリポソームは、血液関門を通過することができる。したがって、一実施形態では、本発明のリポソームは、血液関門を標的とする多糖（例えば、マンノース）をその膜部分に含まない。任意選択で、本発明のリポソームは、リポソームを血液関門上の受容体に対して標的化するペプチドをその膜部分に含まない。そのようなペプチドの例には、トランスフェリン、インスリン、ＩＧＦ−１、ＩＧＦ−２、抗トランスフェリン受容体抗体、抗インスリン受容体抗体、抗ＩＧＦ−１受容体抗体および抗ＩＧＦ−２受容体抗体が含まれるが、これらに限定されない。

本発明に特に好適するリポソームを特定するために、例えば、米国特許出願公開第２００４０２６６７３４号および同第２００４０２６６７３４号、ならびに、Ｄａｎｅｎｂｅｒｇらの、Ｊｏｕｒｎａｌｏｆｃａｒｄｉｏｖａｓｃｕｌａｒｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ２００３，４２：６７１−９；Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ２００２，１０６：５９９−６０５；Ｃｉｒｃｕｌａｔｉｏｎ２００３，１０８：２７９８−８０４に記載されたアッセイなどのスクリーニングアッセイを行うことができる。

本発明のこの態様より使用することができる他の非脂質系ベクターには、ポリリシン、デンドリマーおよびガゴマーが含まれるが、これらに限定されない。

用いられる方法または構築物にかかわらず、上記で詳述されたように、マイクロＲＮＡをコードする核酸構築物を含む単離細胞が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「単離された」は、天然の環境から、例えば、人体から少なくとも部分的に分離されたことを意味する。

一実施形態では、シス作用調節エレメントの転写制御下で、少なくとも１つのマイクロＲＮＡまたはその前駆体を発現する核酸構築物を含む単離細胞が提供され、該マイクロＲＮＡは、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１５、ｍｉＲ−１９、ｍｉＲ−２６、ｍｉＲ−２７、ｍｉＲ−１８１およびｍｉＲ−１８２からなる群から選択される。

特定の実施形態では、シス作用調節エレメントの転写制御下で、少なくとも１つのマイクロＲＮＡまたはその前駆体を発現する核酸構築物を含む単離神経膠細胞が提供され、該マイクロＲＮＡは、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−２６およびｍｉＲ−１８２からなる群から選択される。

特定の実施形態では、シス作用調節エレメントの転写制御下で、ｍｉＲ−１９またはその前駆体を発現する核酸構築物を含む単離細胞が提供される。

特定の実施形態では、シス作用調節エレメントの転写制御下で、ｍｉＲ−１５またはその前駆体を発現する核酸構築物を含む単離細胞が提供される。

特定の実施形態では、細胞は神経膠細胞または心臓細胞である。

特定の実施形態では、神経膠細胞はセロトニン作動性ニューロンなどのニューロンである。

マイクロＲＮＡまたはその前駆体は、細胞、すなわち、本発明の標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）にインビボで（すなわち、生物または対象の体内に）、または、エクスビボで（例えば、組織培養において）与えられることになる。細胞がエクスビボで処置される場合、方法は好ましくは、このような細胞を個体に戻すステップを含む（エクスビボ細胞治療）。

エクスビボ治療のために、細胞（例えば、乏突起膠細胞などの神経膠細胞、ＣＰ細胞、幹細胞および／または分化幹細胞）は好ましくは、本発明の薬剤（例えば、マイクロＲＮＡ、例えば、ｍｉＲ−１３５もしくはその前駆物質またはマイクロＲＮＡ、例えば、ｍｉＲ−１３５をコードするポリヌクレオチドもしくはその前駆物質）により処置され、その後、その細胞が、それを必要としている対象に投与される。

本発明のエクスビボ処置細胞の投与を、任意の好適な導入経路、例えば、静脈内、腹腔内、腎臓内、胃腸管内、皮下、経皮、筋肉内、皮内、クモ膜下腔内、硬膜外および直腸などを使用して行うことができる。現状好ましい実施形態では、本発明のエクスビボ処置細胞は、静脈内、腎臓内、胃腸管内および／または腹腔内投与を使用して個体に導入することができる。

本発明の細胞（例えば、乏突起膠細胞などの神経膠細胞、ＣＰ細胞、幹細胞、分化幹細胞および／または心臓細胞）は、ヒト死体またはヒトドナーなどの自己供給源または同種供給源から得ることができる。非自己細胞は、身体に投与されたときには免疫反応を誘導する可能性があるので、いくつかの取り組みが、非自己細胞を拒絶する可能性を軽減するために開発されている。これらには、レシピエントの免疫系を抑制すること、または、非自己細胞を移植前に、免疫隔離する半透過性膜でカプセル化することが含まれる。

カプセル化技術は一般には、小さい球状ビークルを伴うマイクロカプセル化として、また、より大きい平坦シートおよび中空繊維膜を伴うマクロカプセル化として分類される（Ｕｌｕｄａｇ，Ｈ．ｅｔａｌ．（２０００）．Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｏｆｍａｍｍａｌｉａｎｃｅｌｌｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ．ＡｄｖＤｒｕｇＤｅｌｉｖＲｅｖ４２，２９−６４）。

マイクロカプセルの調製方法は、当技術分野では知られており、例えば、下記の文献において開示されている方法が含まれる：Ｌｕ，Ｍ．Ｚ．ｅｔａｌ．（２０００）．Ｃｅｌｌｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎｗｉｔｈａｌｇｉｎａｔｅａｎｄａｌｐｈａ−ｐｈｅｎｏｘｙｃｉｎｎａｍｙｌｉｄｅｎｅ−ａｃｅｔｙｌａｔｅｄｐｏｌｙ（ａｌｌｙｌａｍｉｎｅ）．ＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌＢｉｏｅｎｇ７０，４７９−４８３；Ｃｈａｎｇ，Ｔ．Ｍ．ａｎｄＰｒａｋａｓｈ，Ｓ．（２００１）Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅｓｆｏｒｍｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎｏｆｅｎｚｙｍｅｓ，ｃｅｌｌｓａｎｄｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄｍｉｃｒｏｏｒｇａｎｉｓｍｓ．ＭｏｌＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ１７，２４９−２６０；およびＬｕ，Ｍ．Ｚ．，ｅｔａｌ．（２０００）．Ａｎｏｖｅｌｃｅｌｌｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎｍｅｔｈｏｄｕｓｉｎｇｐｈｏｔｏｓｅｎｓｉｔｉｖｅｐｏｌｙ（ａｌｌｙｌａｍｉｎｅａｌｐｈａ−ｃｙａｎｏｃｉｎｎａｍｙｌｉｄｅｎｅａｃｅｔａｔｅ）．ＪＭｉｃｒｏｅｎｃａｐｓｕｌ１７，２４５−５２１。

例えば、マイクロカプセルは、修飾コラーゲンを、メチルアクリル酸２−ヒドロキシエチル（ＨＥＭＡ）、メタクリル酸（ＭＡＡ）およびメタクリル酸メチル（ＭＭＡ）のターポリマー殻との複合体（これは２〜５μｍのカプセル厚さを生じる）中で使用して調製される。このようなマイクロカプセルはさらに、負荷電の滑らかな表面を与えるために、および、血漿タンパク質の吸収を最小限に抑えるために、さらに２〜５μｍのターポリマー殻によりカプセル化することができる（Ｃｈｉａ，Ｓ．Ｍ．ｅｔａｌ．（２００２）．Ｍｕｌｔｉ−ｌａｙｅｒｅｄｍｉｃｒｏｃａｐｓｕｌｅｓｆｏｒｃｅｌｌｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ．Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ２３，８４９−８５６）。

他のマイクロカプセルは、海洋多糖であるアルギン酸塩（Ｓａｍｂａｎｉｓ，Ａ．（２００３）．Ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄｉｓｌｅｔｓｉｎｄｉａｂｅｔｅｓｔｒｅａｔｍｅｎｔ．ＤｉａｂｅｔｅｓＴｈｅｃｈｎｏｌＴｈｅｒ５，６６５−６６８）またはその誘導体をベースにしたものである。例えば、マイクロカプセルを、塩化カルシウム存在下で、ポリアニオンのアルギン酸ナトリウムおよびセルロース硫酸ナトリウムと、ポリカチオンのポリ（メチレン−コ−グアニジン）塩酸塩との間での高分子電解質複合体化によって調製することができる。

細胞のカプセル化は、より小さいカプセルが使用されるときには改善されることは理解されよう。したがって、例えば、カプセル化された細胞の品質管理、機械的安定性、拡散特性およびインビトロ活性は、カプセルサイズが１ｍｍから４００μｍに縮小されたときに改善された（Ｃａｎａｐｌｅ，Ｌ．ｅｔａｌ．（２００２）．Ｉｍｐｒｏｖｉｎｇｃｅｌｌｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎｔｈｒｏｕｇｈｓｉｚｅｃｏｎｔｒｏｌ．ＪＢｉｏｍａｔｅｒＳｃｉＰｏｌｙｍＥｄ１３，７８３−９６）。さらに、７ｎｍもの小さい良好に制御された細孔サイズ、調整された表面化学、および、精密な微小構造を有するナノ多孔性バイオカプセルは、細胞のための微小環境を首尾良く免疫隔離することが明らかになった（Ｗｉｌｌｉａｍｓ，Ｄ．（１９９９）．Ｓｍａｌｌｉｓｂｅａｕｔｉｆｕｌ：ｍｉｃｒｏｐａｒｔｉｃｌｅａｎｄｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｉｎｍｅｄｉｃａｌｄｅｖｉｃｅｓ．ＭｅｄＤｅｖｉｃｅＴｅｃｈｎｏｌ１０，６−９；およびＤｅｓａｉ，Ｔ．Ａ．（２００２）．Ｍｉｃｒｏｆａｂｒｉｃａｔｉｏｎｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙｆｏｒｐａｎｃｒｅａｔｉｃｃｅｌｌｅｎｃａｐｓｕｌａｔｉｏｎ．ＥｘｐｅｒｔＯｐｉｎＢｉｏｌＴｈｅｒ２，６３３−６４６を参照されたい）。

エクスビボ処置と併せて使用することができる免疫抑制剤の例には、メトトレキサート、シクロホスファミド、シクロスポリン、シクロスポリンＡ、クロロキン、ヒドロキシクロロキン、スルファサラジン（スルファサラゾピリン）、金塩、Ｄ−ペニシラミン、レフルノミド、アザチオプリン、アナキンラ、インフリキシマブ（ＲＥＭＩＣＡＤＥ（登録商標））、エタネルセプト、ＴＮＦアルファ遮断薬、炎症性サイトカインを標的とする生物製剤、および、非ステロイド性抗炎症薬（ＮＳＡＩＤ）が含まれるが、これらに限定されない。ＮＳＡＩＤの例には、アセチルサリチル酸、サリチル酸コリンマグネシウム、ジフルニサル、サリチル酸マグネシウム、サルサラート、サリチル酸ナトリウム、ジクロフェナク、エトドラク、フェノプロフェン、フルルビプロフェン、インドメタシン、ケトプロフェン、ケトロラク、メクロフェナメート、ナプロキセン、ナブメトン、フェニルブタゾン、ピロキシカム、スリンダク、トルメチン、アセトアミノフェン、イブプロフェン、Ｃｏｘ−２阻害剤およびトラマドールが含まれるが、これらに限定されない。

インビボ治療のために、薬剤（例えば、マイクロＲＮＡ、例えば、ｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはマイクロＲＮＡもしくはその前駆物質をコードするポリヌクレオチド）が、それ自体で、または、医薬組成物の一部として対象に投与される。好ましくは、このような組成物は、血液脳関門（ＢＢＢ）の通過を可能にするように処方される。

中枢神経系（ＣＮＳ）への薬物送達のための従来の取り組みには、下記のことが含まれる：神経外科的戦略（例えば、脳内注射または脳室内注入）；ＢＢＢの内在性輸送経路の１つを利用する試みでの、薬剤の分子的操作（例えば、内皮細胞表面分子に対する親和性を有する輸送ペプチドを、自身でＢＢＢを越えることができない薬剤との組合せで含むキメラな融合タンパク質の作製）；薬剤の脂質溶解性を増大させるために設計される薬理学的戦略（例えば、水溶性薬剤を脂質キャリアまたはコレステロールキャリアにコンジュゲートすること）；および、ＢＢＢの完全性の、（頸動脈内へのマンニトール溶液の注入または生物学的活性剤（例えば、アンギオテンシンペプチドなど）の使用から生じる）高浸透圧破壊による一時的な破壊。

ＢＢＢの背後への薬物送達の方法には、脳内埋め込み（例えば、針によるものなど）および対流増進送達が含まれる。マンニトールを、ＢＢＢの迂回に使用することができる。同様に、粘膜投与（例えば、鼻腔投与）を、ＢＢＢを迂回するために使用することができる。

本発明のマイクロＲＮＡポリヌクレオチド薬剤はまた、好適なキャリアまたは賦形剤と混合される医薬組成物として生物に投与することができる。

本明細書中で使用される「医薬組成物」は、本明細書中に記載される有効成分の１つまたは複数と、例えば、生理学的に好適なキャリアおよび賦形剤などの他の化学的成分との調製物を意味する。医薬組成物の目的は、生物に対する化合物の投与を容易にすることである。

本明細書中において、用語の「有効成分」は、生物学的効果を説明することができるペプチドを意味する。（例えば、マイクロＲＮＡ、例えば、ｍｉＲ−１３５、その前駆物質またはマイクロＲＮＡもしくはその前駆物質をコードするポリヌクレオチド）。

以降では、表現「生理学的に許容可能なキャリア」および表現「薬学的に許容可能なキャリア」は、同義に使用できるが、生物に対する著しい刺激を生じさせず、投与された化合物の生物学的な活性および性質を妨げないキャリアまたは希釈剤を意味する。アジュバントはこれらの表現に包含される。

本明細書中において、用語「賦形剤」は、有効成分の投与をさらに容易にするために医薬組成物に添加される不活性な物質を意味する。賦形剤の非限定的な例としては、炭酸カルシウム、リン酸カルシウム、様々な糖およびデンプン、セルロース誘導体、ゼラチン、植物油およびポリエチレングリコールが挙げられる。

薬物の処方および投与のための技術は「Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＳｃｉｅｎｃｅｓ，” ＭａｃｋＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ，ｌａｔｅｓｔｅｄｉｔｉｏｎ」に見出すことができる。この文献は、参照により本明細書に組み込まれる。

好適な投与経路には、例えば、経口送達、直腸送達、経粘膜送達、特に経鼻送達、腸管送達、または非経口送達（これには、筋肉内注射、皮下注射および髄内注射、ならびに、クモ膜下注射、直接的な脳室内注射、静脈内注射、腹腔内注射、鼻内注射または眼内注射が含まれる）を含めることができる。

あるいは、例えば、患者の組織領域に直接的に医薬組成物の注射により、全身的な方法ではなく局所的に医薬組成物を投与することができる。

本発明の医薬組成物は、当該技術分野において周知のプロセスによって、例えば、従来の混合、溶解、造粒、糖衣錠作製、湿式粉砕、乳化、カプセル化、包括化または凍結乾燥のプロセスによって製造することができる。

従って、本発明により使用される医薬組成物は、薬剤として使用することができる調製物への有効成分の加工を容易にする賦形剤および補助剤を含む１種または複数種の生理学的に許容可能なキャリアを使用して従来の方式で処方することできる。適切な処方は、選ばれた投与経路に依存する。

注射の場合、医薬組成物の有効成分は、水溶液中で、好ましくは生理学的に適合する緩衝液、例えば、例えば、ハンクス溶液、リンゲル溶液、または生理学的食塩緩衝液中で処方することができる。経粘膜投与の場合、浸透されるバリヤーに対して適切な浸透剤が製剤に使用される。このような浸透剤は当該技術分野において既知である。

経口投与の場合、医薬組成物は、活性化合物を当該技術分野において周知の薬学的に許容可能なキャリアと組み合わせることによって容易に処方することができる。このようなキャリアは、医薬組成物を、患者が経口摂取するための、錠剤、ピル、糖衣錠、カプセル、液剤、ゲル、シロップ、スラリー剤および懸濁物などとして処方することを可能にする。経口使用される薬理学的調製物は、固体の賦形剤を使用し、得られた混合物を場合により粉砕し、錠剤または糖衣錠コアを得るために、必要に応じ、好適な補助剤を添加した後、顆粒の混合物を処理して作製することができる。好適な賦形剤は、特に、ラクトース、スクロース、マンニトールまたはソルビトールを含む糖などの充填剤；セルロース調製物、例えば、トウモロコシデンプン、コムギデンプン、コメデンプン、ジャガイモデンプン、ゼラチン、トラガカントゴム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ナトリウムカルボメチルセルロースなど；および／またはポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）などの生理学的に許容可能なポリマーである。必要に応じ、架橋ポリビニルピロリドン、寒天、またはアルギン酸もしくはその塩（例えば、アルギン酸ナトリウムなど）などの崩壊剤を加えることができる。

糖衣錠コアには、好適なコーティングが設けられる。この目的のために、濃縮糖溶液を使用することができ、この場合、糖溶液は、場合により、アラビアゴム、タルク、ポリビニルピロリドン、カルボポールゲル、ポリエチレングリコール、二酸化チタン、ラッカー溶液、および好適な有機溶媒または溶媒混合物を含むことができる。色素または顔料を、活性化合物の量を特定するために、または活性化合物の量の種々の組合せを特徴づけるために、錠剤または糖衣錠コーティングに加えることができる。

経口使用することができる医薬組成物としては、ゼラチンから作製されたプッシュ・フィット型カプセル、ならびに、ゼラチンおよび可塑剤、例えば、グリセロールまたはソルビトールから作製された軟いシールされたカプセルが挙げられる。プッシュ・フィット型カプセルは、充填剤（例えば、ラクトースなど）、結合剤（例えば、デンプンなど）、滑剤（例えば、タルクまたはステアリン酸マグネシウムなど）、および場合により安定化剤との混合として有効成分を含有することができる。軟カプセルでは、有効成分は、好適な液体、例えば、脂肪油、流動パラフィンまたは液状のポリエチレングリコールに溶解または懸濁することができる。さらに、安定化剤が加えてもよい。経口投与される配合物はすべて、選ばれた投与経路について好適な投薬量でなければならない。

口内投与の場合、組成物は、従来の方法で処方された錠剤またはトローチ剤の形態を取ることができる。

鼻吸入による投与の場合、本発明による使用のための有効成分は、好適な噴射剤（例えば、ジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタンまたは二酸化炭素）の使用により加圧パックまたはネブライザーからのエアロゾルスプレー形の形態で都合よく送達される。加圧されたエアロゾルの場合、投与単位は、定量を送達するためのバルブを備えることによって決定することができる。ディスペンサーにおいて使用される、例えば、ゼラチン製のカプセルおよびカートリッジは、化合物および好適な粉末基剤、例えば、ラクトースまたはデンプンの粉末混合物を含めて処方することができる。

本明細書中に記載される医薬組成物は、例えば、ボーラス注射または連続注入による非経口投与用として処方することができる。注射用製剤は、場合により保存剤が添加された、例えば、アンプルまたは複数回投与容器における単位剤形で提供することができる。組成物は、油性ビークルまたは水性ビークル中の懸濁剤または溶液剤またはエマルションにすることができ、懸濁化剤、安定化剤および／または分散化剤などの製剤化剤を含有することができる。

非経口投与される医薬組成物には、水溶性形態の活性調製物の水溶液が含まれる。さらに、有効成分の懸濁剤は、必要に応じて油系または水系の注射用懸濁剤として調製することができる。好適な親油性の溶媒またはビークルとしては、脂肪油、例えば、ゴマ油、または合成脂肪酸エステル。例えば、オレイン酸エチル、トリグリセリドまたはリポソームが挙げられる。水性の注射用懸濁剤は、懸濁剤の粘度を増大させる物質、例えば、ナトリウムカルボキシメチルセルロース、ソルビトールまたはデキストランなどを含有することができる。場合により、懸濁剤はまた、高濃度溶液の調製を可能にするために、有効成分の溶解性を増大させる好適な安定化剤または薬剤を含有することができる。

あるいは、有効成分は、好適なビークル、例えば、無菌の、発熱性物質非含有水溶液を使用前に用いて構成される粉末形態であってよい。

本発明の医薬組成物はまた、例えば、カカオ脂または他のグリセリドなどの従来の座薬基剤を使用して、座薬または停留浣腸剤などの直腸用組成物として処方することができる。

本発明に関連した使用のために好適な医薬組成物として、有効成分が、その意図された目的を達成するために有効な量で含有される組成物が含まれる。より具体的には、治療有効量は、処置されている対象の障害（例えば、双極性疾患などの気分障害）の症状を防ぐ、改善するあるいは回復させるために効果的であるか、または、処置されている対象の生存を延ばすために効果的である、有効成分（例えば、マイクロＲＮＡ）の量を意味する。

本発明の一実施形態では、ｍｉＲ−１３５の過剰発現が抗うつ効果を有する。

治療有効量の決定は、特に本明細書中で提供される詳細な開示を考慮すれば、十分に当業者の能力の範囲内で行える。

本発明の方法において使用されるいずれかの調製物に関して、治療有効量または用量は、最初はインビトロおよび細胞培養アッセイから推定することができる。例えば、用量は、動物モデルで処方して、所望の濃度または力価を実現することができる。このような情報を使って、ヒトにおける有用な用量をより正確に決定することができる。

本明細書中に記載される有効成分の毒性および治療効力は、インビトロ、細胞培養物、または実験動物での標準的な薬学的手順によって決定することができる。これらのインビトロ、細胞培養アッセイおよび動物調査から得られたデータは、ヒトにおける使用のための投与量範囲の処方に使用することができる。投与量は、用いられる剤形および利用される投与経路に依存して変化してもよい。正確な処方、投与経路および投与量は、患者の状態を考慮して個々の医師によって選択することができる（例えば、Ｆｉｎｇｌ，ｅｔａｌ．，１９７５，ｉｎ “ＴｈｅＰｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌＢａｓｉｓｏｆＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ”，Ｃｈ．１ｐ．１を参照のこと）。

投薬量および投薬間隔を、生物学的効果を誘導または抑制するための有効成分の十分な血漿中レベル（最小有効濃度、ＭＥＣ）を得るために個々に調節することができる。ＭＥＣはそれぞれの調製物について変化すると思われるが、インビトロデータから推定することができる。ＭＥＣを達成するために必要な投薬量は個々の特性および投与経路に依存する。検出アッセイを使用して、血漿中濃度を求めることができる。

処置される状態の重篤度および応答性に依存して、投薬は、単回または複数回投与で行うことができ、処置過程は、数日から数週間まで、または治癒が得られるまで、または疾患状態の軽減が達成されるまで続く。

投与される組成物の量は、当然のことではあるが、処置されている対象、苦痛の重篤度、投与様式、処方医の判断などに依存するであろう。投与量および投与時期は、個体の変化する状態の注意深い連続したモニタリングに応じて変わるであろう。

本発明の薬剤を、ヒトへの処置に先立って試験することができる動物モデルが存在することは理解されよう。例えば、うつ病、ストレス、不安症の動物モデル、例えば、学習性無力モデル（ＬＨ）、長期軽度ストレス（ＣＭＳ）モデル、社会的敗北ストレス（ＳＤＳ）モデル、母性剥奪モデルおよび睡眠遮断モデルなどを使用することができる。例えば、例えば、変異体Ｐｏｌｇ（Ｄ１８１Ａ）のニューロン特異的発現遺伝子導入マウス［Ｋａｔｏｅｔａｌ．，ＮｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅａｎｄＢｉｏｂｅｈａｖｉｏｒａｌＲｅｖｉｅｗｓ（２００７）６（３１）：８３２−８４２（参照により本明細書に組み込まれる）により教示されるように］、ならびに十分に確立されているアンフェタミン誘導運動亢進［例えば、米国特許第６，５５５，５８５号で教示されている］およびケタミン誘導運動亢進［Ｇｈｅｄｉｍｅｔａｌ．，ＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｓｙｃｈｉａｔｒｉｃＲｅｓｅａｒｃｈ（２０１２）４６：１５６９−１５７５により教示される］（これらの文献は参照により組み込まれる）の躁病ラットモデルを含む双極性疾患の動物モデルを使用することができる。

本発明の組成物は、必要に応じ、有効成分を含有する１種または複数種の単位剤形を含むことができるパックまたはディスペンサーデバイス（例えば、ＦＤＡ承認キットなど）で提供することができる。パックは、例えば、金属ホイルまたはプラスチックホイルを含むことができる（例えば、ブリスターパックなど）。パックまたはディスペンサーデバイスには、投与のためのインストラクションを付随させてもよい。パックまたはディスペンサーデバイスはまた、医薬品の製造、使用または販売を規制する政府当局によって定められた形式で、容器に付随する通知によって適応させることも可能で、この場合、このような通知は、組成物の形態、あるいはヒトまたは動物への投与の当局による承認を反映する。このような通知は、例えば、処方薬物について米国食品医薬品局によって承認されたラベルであってもよく、または、承認された製品インサートであってもよい。適合性のある医薬キャリア中で処方された本発明の調製物を含む組成物もまた、上記でさらに詳述されたように、示された状態を処置するために調製し、適切な容器に入れて標識することができる。

本発明の治療組成物は、マイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１３５またはそれをコードするポリヌクレオチド）に加えて、うつ病、ストレス、不安症、断眠などの処置のための他の公知薬物を含めることができることは理解されよう：そのような薬物は、例えば、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）、セロトニン−ノルエピネフリン再取り込み阻害剤（ＳＮＲＩ）、ノルアドレナリン作動性かつ特異的なセロトニン作動性抗うつ剤（ＮａＳＳＡ）、ノルエピネフリン（ノルアドレナリン）再取り込み阻害剤（ＮＲＩ）、ノルエピネフリン−ドパミン再取り込み阻害剤、選択的セロトニン再取り込み強化剤、ノルエピネフリン−ドパミン脱抑制剤、三環系抗うつ剤（例えば、イミプラミン）、モノアミンオキシダーゼ阻害剤（ＭＡＯＩ）であり、これらに限定されない。これらの薬物は、単一の包装物または別個の包装物で製品に含めることができる。

一実施形態では、本発明の治療用組成物は、マイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１３５またはそれをコードするポリヌクレオチド）に加えて、双極性障害処置用の薬物を含む。本教示にしたがって、双極性障害の処置用の任意の薬物または薬物の任意の組み合わせを使用することができ、これら薬物には、リチウム（例えば、炭酸リチウム、クエン酸リチウム、硫酸リチウム）、抗精神病薬物（例えば、以降で詳述する、定型抗精神病および非定型抗精神病）気分安定剤薬物（例えば、バルプロ酸（ＶＰＡ、バルプロ酸）、鉱物、抗けいれん薬、抗精神病薬）および抗うつ薬が含まれるが、これらに限定されない。

本教示により使うことができる代表的な定型抗精神病薬物としては、低効力薬物：クロルプロマジン（ラーガクチル、ソラジン）、クロルプロチキセン（Ｔｒｕｘａｌ）、チオリダジン（メラリル）、メソリダジンおよびレボメプロマジン；中程度効力薬物：ロキサピン（ロキサパック、ロキシタン）、モリンドン（モーバン）、ペルフェナジン（トリラホン）、およびチオチキセン（ナーベン）；高効力薬物：ハロペリドール（ハルドール、セレネース）、フルフェナジン（プロリキシン）、ドロペリドール、ズクロペンチキソール（クロピキソール）、フルペンチキソール（デピキソール）、プロクロルペラジンおよびトリフロペラジン（ステラジン）が挙げられるが、これらに限定されない。さらに、プロクロルペラジン（コンパジン、ブッカステム、ステメチル）およびピモジド（オーラップ）を使用することができる。

本教示により使用することができる代表的非定型抗精神病薬物（第二世代抗精神病薬とも呼ばれる）としては、アミスルプリド（ソリアン）、アリピプラゾール（エビリファイ）、アセナピン（サフリス）、ブロナンセリン（ロナセン）、ビトペルチン（ＲＧ１６７８）、ブレクスピプラゾール（ＯＰＣ−３４７１２）、カルピプラミン（プラジニル）、クロカプラミン（クロフェクトン）、クロザピン（クロザリル）、カリプラジン（ＲＧＨ−１８８）、イロペリドン（ファナプト）、ルラシドン（ラツーダ）、ＬＹ２１４００２３、メルペロン（Ｂｕｒｏｎｉｌ）、モサプラミン（クレミン）、オランザピン（ジプレキサ）、パリペリドン（インヴェガ）、ペロスピロン（ルーラン）、ピマバンセリン（ＡＣＰ−１０３）、クエチアピン（セロクエル）、レモキシプリド（ロキシアム）、リスペリドン（リスパダール）、セルチンドール（サードレクト）、スルピリド（スルピリド）、バビカセリン（ＳＣＡ−１３６）、ジプラシドン（ジオドン）、ゾテピン（ニポレプト）およびジクロナピン（Ｌｕ３１−１３０）が挙げられるが、これらに限定されない。

本教示により使用することができる代表的気分安定剤としては、鉱物（例えば、リチウム）；バルプロ酸（デパケン）を含む抗けいれん薬気分安定剤、ジバルプロエクスナトリウム（デパコート）、およびバルプロ酸ナトリウム（デパコン、エピリム）、ラモトリギン（ラミクタール）、カルバマゼピン（テグレトール）、オクスカルバゼピン（トリレプタル）、トピラマート（トパマックス）、リルゾール（リルテック）、およびガバペンチン（ニューロンチン）；抗精神病薬（上述の通り）；および栄養補助食品（例えば、オメガ−３脂肪酸）が挙げられるが、これらに限定されない。

本教示により使用することができる代表的抗うつ剤には、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ、例えば、シタロプラム、エスシタロプラム、フルオキセチン、フルボキサミン、パロキセチンおよびセルトラリンなど）、セロトニン−ノルエピネフリン再取り込み阻害剤（ＳＮＲＩ、例えば、デスベンラファキシン、デュロキセチン、ミルナシプランおよびベンラファキシンなど）、ノルアドレナリン作動性かつ特異的なセロトニン作動性抗うつ剤（例えば、ミアンセリンおよびミルタザピンなど）、ノルエピネフリン（ノルアドレナリン）再取り込み阻害剤（ＮＲＩ、例えば、アトモキセチン、マジンドール、レボキセチンおよびビロキサジンなど）、ノルエピネフリン−ドパミン再取り込み阻害剤（例えば、ブプロピオンなど）、選択的セロトニン再取り込み強化剤（例えば、チアネプチンなど）、ノルエピネフリン−ドパミン脱抑制剤（ＮＤＤＩ、例えば、アゴメラチンなど）、三環系抗うつ剤（第三級アミン三環系抗うつ剤および第二級アミン三環系抗うつ剤を含む）、および、モノアミンオキシダーゼ阻害剤（ＭＡＯＩ）が挙げられるが、これらに限定されない。

一実施形態では、抗うつ剤は、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）、三環系抗うつ剤およびノルアドレナリン再取り込み阻害剤（ＮＲＩ）を含む。

特定の実施形態では、抗うつ剤は、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）を含む。

追加の非医薬品治療方法を、本教示と組み合わせて用いることができ、これらの方法には、臨床心理学、電気痙攣療法、措置入院、光線療法、心理療法、経頭蓋磁気刺激および認知行動療法が含まれるが、これらに限定されないことは理解されよう。

本発明者らは、ｍｉＲ−２７の過剰発現がＭａｏＡの抑制をもたらすこと（実施例１（本明細書中下記）参照）、ｍｉＲ−１３５の過剰発現がＳｌｃ６ａ４の抑制をもたらすこと（実施例１（本明細書中下記）参照）、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−２６、ｍｉＲ−１８１またはｍｉＲ−１８２の過剰発現がＨｔｒ１ａの抑制をもたらすこと（実施例１（本明細書中下記）参照）、ｍｉＲ−１９の過剰発現がＡｄｒ１の抑制をもたらし（実施例２（本明細書中下記）参照）、また、ＣＢ１の抑制をもたらすこと（実施例３Ｂ（本明細書中下記）参照）、および、ｍｉＲ−１５の過剰発現がＣｒｈ１Ｒの抑制をもたらし（実施例４（本明細書中下記）参照）、また、ＦＫＢＰ５の抑制をもたらすこと（実施例４Ｂ（本明細書中下記）参照）を明らかにした。

従って、本発明の一実施形態では、セロトニン輸送体（Ｓｌｃ６ａ４）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１３５およびｍｉＲ−３３５からなる群から選択されるマイクロＲＮＡまたはその前駆体の活性もしくは発現を調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「セロトニン輸送体（Ｓｌｃ６ａ４）」は、シナプス間隙からのセロトニンの再取り込みに関与するモノアミン輸送体タンパク質（ＳＥＲＴとも呼ばれる）を意味する。代表的なＳｌｃ６ａ４がＮＰ＿００１０３６．１で示される。

別の実施形態では、セロトニン抑制性受容体１ａ（Ｈｔｒ１ａ）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２およびｍｉＲ−２６からなる群から選択されるマイクロＲＮＡまたはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「セロトニン抑制性受容体１ａ（Ｈｔｒ１ａ）」は、シナプス前ニューロンおよびセロトニン放出の媒介性抑制において自己受容体として機能するＧタンパク質共役受容体を意味する。代表的なＨｔｒ１ａがＮＰ＿０００５１５．２で示される。

別の実施形態では、モノアミンヒドロキシラーゼ（ＭａｏＡ）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−２７またはその前駆体の活性もしくは発現を調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「モノアミンヒドロキシラーゼ（ＭａｏＡ）」は、アミン系神経伝達物質、例えば、ドパミン、ノルエピネフリンおよびセロトニンを分解する酵素を意味する。代表的なＭａｏＡがＮＰ＿０００２３１．１で示される。

本発明の一実施形態では、トリプトファンヒドロキシラーゼ２（Ｔｐｈ２）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１８１およびｍｉＲ２７からなる群から選択されるマイクロＲＮＡまたはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「トリプトファンヒドロキシラーゼ２（Ｔｐｈ２）」は、セロトニンの生合成における最初の律速段階を触媒する酵素を意味する。代表的なＴｐｈ２がＮＰ＿ＮＰ＿７７５４８９．２で示される。

別の実施形態では、ベータアドレナリン作動性受容体１（Ａｄｒｂ１）遺伝子の発現を神経膠細胞または心臓細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１９またはその前駆体の活性もしくは発現を調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「ベータアドレナリン作動性受容体１（Ａｄｒｂ１）」は、アドレナリンおよびノルアドレナリンの生理学的作用を伝達する受容体を意味する。代表的なＡｄｒｂ１がＮＰ＿０００６７５．１で示される。

別の実施形態では、ベータ２型アドレナリン作動性受容体（Ａｄｒｂ２）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１５またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「ベータ２型アドレナリン作動性受容体（Ａｄｒｂ２）」は、クラスＣのＬ型カルシウムチャネルＣａ（Ｖ）１．２と直接会合する受容体を意味する。Ａｄｒｂ２は、例えば、ＮＰ＿００００１５．１で示される。

別の実施形態では、ＣＲＨ１型受容体遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１５またはその前駆体の活性もしくは発現を調整することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「ＣＲＨ１型」は、副腎皮質刺激ホルモン放出ホルモン（ＣＲＨ）と結合する受容体を意味する。ＣＲＨ１型は、例えば、ＮＰ＿００１１３８６１８．１、ＮＰ＿００１１３８６１９．１、ＮＰ＿００１１３８６２０．１およびＮＰ＿００４３７３．２で示される。

別の実施形態では、グルタミン酸受容体遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１８１またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

別の実施形態では、上記グルタミン酸受容体遺伝子は、さらに上述されるように、グルタミン酸受容体代謝型１（Ｇｒｍ１）、グルタミン酸受容体イオンチャネル型カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）、グルタミン酸受容体代謝型５（Ｇｒｍ５）、グルタミン酸受容体イオンチャネル型カイニン酸２（Ｇｒｉｋ２）およびグルタミン酸受容体代謝型７（Ｇｒｍ７）を含む。

別の実施形態では、ダウン症候群細胞接着分子（Ｄｓｃａｍ）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１８２またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「ダウン症候群細胞接着分子（Ｄｓｃａｍ）」は、ニューロンの自己回避において一定の役割を果たす細胞接着分子を意味する。Ｄｓｃａｍは、例えば、ＮＰ＿００１３８０．２で示される。

別の実施形態では、細胞接着分子Ｌ１（Ｌ１ｃａｍ）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１８２またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調整することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「細胞接着分子Ｌ１（Ｌ１ｃａｍ）」は、ニューロンの細胞接着分子を意味する。Ｌ１ｃａｍは、例えば、ＮＰ＿０００４１６．１、ＮＰ＿００１１３７４３５．１、ＮＰ＿０７６４９３．１．で示される。

別の実施形態では、トランスリン会合タンパク質Ｘ（Ｔｓｎａｘ）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１８２またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「トランスリン会合タンパク質Ｘ（Ｔｓｎａｘ）」は、トランスリンと特異的に相互作用するタンパク質を意味する。Ｔｓｎａｘは、例えば、ＮＰ＿００５９９０．１で示される。

別の実施形態では、カナビノイド受容体１（ＣＢ１）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１９またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「カナビノイド受容体１（ＣＢ１）」は、（ＣＮＲ１としても知られている）細胞膜受容体を意味する。ＣＢ１は、例えば、ＮＰ＿００１１５３６９８．１、ＮＰ＿００１１５３７３０．１、ＮＰ＿００１１５３７３１．１、ＮＰ＿０５７１６７．２、ＮＰ＿１４９４２１．２で示される。

別の実施形態では、ＦＫ５０６結合タンパク質５（ＦＫＢＰ５）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１５またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「ＦＫ５０６結合タンパク質５（ＦＫＢＰ５）」は、免疫抑制剤ＦＫ５０６およびラパマイシンに特異的に結合するタンパク質を意味する。ＦＫＢＰ５は、例えば、ＮＰ＿００１１３９２４７．１、ＮＰ＿００１１３９２４８．１、ＮＰ＿００１１３９２４９．１、ＮＰ＿００４１０８．１で示される。

別の実施形態では、シンタキシン１ａ（Ｓｔｘ１ａ）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１５またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「シンタキシン１ａ（Ｓｔｘ１ａ）」は、神経系特異的タンパク質を意味する。Ｓｔｘ１ａは、例えば、ＮＰ＿００１１５９３７５．１、ＮＰ＿００４５９４．１で示される。

別の実施形態では、血清／グルココルチコイド調節キナーゼ（Ｓｇｋ１）遺伝子の発現を神経膠細胞において調節する方法であって、ｍｉＲ−１５またはその前駆体の活性もしくは発現を神経膠細胞において調節することを含む方法が提供される。

本明細書中で使用される場合、用語「血清／グルココルチコイド調節キナーゼ（Ｓｇｋ１）」は、セリン／トレオニンプロテインキナーゼを意味する。Ｓｇｋ１は、例えば、ＮＰ＿００１１３７１４８．１、ＮＰ＿００１１３７１４９．１、ＮＰ＿００１１３７１５０．１、ＮＰ＿００５６１８．２で示される。

本教示は、上述の遺伝子の発現レベルをアップレギュレーションすること（すなわち、増大させること）またはダウンレギュレーションすること（すなわち、低下させること）を意図している。

本教示による遺伝子発現のダウンレギュレーションは通常、マイクロＲＮＡポリヌクレオチドを標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）に投与することによって、または、標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）において発現させることによって行われる（本明細書中上記でさらに詳しく示されている）。

特定の実施形態では、調節がＳｌｃ６ａ４遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節は、ｍｉＲ−１３５および／またはｍｉＲ−３３５をアップレギュレーションすることを含む。

特定の実施形態では、調節が、Ｈｔｒ１ａ遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節は、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２および／またはｍｉＲ−２６をアップレギュレーションすることを含む。

特定の実施形態では、調節することが、ＭａｏＡ遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節することは、上記ｍｉＲ−２７をアップレギュレーションすることを含む。

特定の実施形態では、調節が、Ａｄｒｂ１遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節は、ｍｉＲ−１９をアップレギュレーションすることを含む。

特定の実施形態では、調節が、ＣＲＨ１型受容体遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節は、ｍｉＲ−１５をアップレギュレーションすることを含む。

特定の実施形態では、調節することが、ＣＢ１遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節することは、ｍｉＲ−１９をアップレギュレーションすることを含む。

特定の実施形態では、調節が、ＦＫＢＰ５遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む場合、該調節は、ｍｉＲ−１５をアップレギュレーションすることを含む。

一実施形態では、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；および神経膠細胞中のジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される遺伝子の発現を神経膠細胞においてダウンレギュレーションする方法であって、（ａ）神経膠細胞中のｍｉＲ−１３５もしくはその前駆物質の活性または発現をアップレギュレーションすること、および（ｂ）神経膠細胞中の遺伝子の発現を測定し、それにより、遺伝子の発現をダウンレギュレーションすること、を含む方法が提供される。

特定の実施形態では、遺伝子の発現のダウンレギュレーションは、ｍｉＲ−１３５ではないマイクロＲＮＡまたはその前駆物質の活性もしくは発現をアップレギュレーションすることにより行われる。

特定の実施形態では、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子の発現は、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子の活性または発現をダウンレギュレーションすることができる薬剤を対象に投与することにより行われる。

遺伝子（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子）または遺伝子産物のダウンレギュレーションは、転写および／または翻訳を妨げる種々の分子［例えば、ＲＮＡサイレンシング剤（例えば、アンチセンス、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、マイクロＲＮＡ）、リボザイム、ＤＮＡザイムおよびＣＲＩＳＰＲシステム（例えば、ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓ）］を使ってゲノムおよび／または転写物レベルで、または、例えば、ポリペプチドを切断するアンタゴニスト、酵素などを使ってタンパク質レベルで行うことができる。

下記は、本発明のいくつかの実施形態の遺伝子または遺伝子産物の発現レベルおよび／または活性をダウンレギュレーションすることが可能な薬剤のリストである。

ポリペプチド遺伝子産物の活性をダウンレギュレーションすることができる薬剤の一例は、遺伝子産物（すなわち、タンパク質）に特異的に結合することができる抗体または抗体断片である。このような抑制は、細胞外ポリペプチド、細胞表面ポリペプチドまたは分泌されたポリペプチドに対しては、特に価値がある。本明細書で使用される場合、「エピトープ」という用語は、抗体のパラトープが結合する抗原上の任意の抗原決定基を意味する。

エピトープ決定基は通常、アミノ酸または炭水化物側鎖などの化学的に活性な分子表面基で構成されており、通常は特定の３次元構造特性、ならびに特定の電荷特性を有する。

本発明で使用される「抗体」という用語は、完全な抗体分子、ならびにマクロファージに結合可能なその機能性断片、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２およびＦｖを含む。これらの機能性抗体断片は次のように定義される：（１）Ｆａｂ、完全な軽鎖および１つの重鎖の一部が得られる全長抗体の酵素パパインによる消化により生成することができる抗体分子の一価の抗原結合断片を含む断片；（２）Ｆａｂ’、全長抗体をペプシンで処理した後、還元して、抗体分子当たり、完全な軽鎖および重鎖の一部を生じさせて得ることができる抗体分子の断片；（３）（Ｆａｂ’）２、全長抗体を酵素ペプシンで処理し、その後の還元を行わないで得ることができる抗体の断片；（Ｆａｂ’）２は、２つのジスルフィド結合により保持されている２つのＦａｂ’断片のダイマーである；（４）Ｆｖ、二本鎖として発現された、軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を含む遺伝子組み換えされた断片と定義される；および（５）単鎖抗体（「ＳＣＡ」）、適切なポリペプチドリンカーにより遺伝的に融合された単鎖分子として連結された軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を含む遺伝子組み換えされた分子。

ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、およびその断片の生成方法は、この技術分野では広く知られている（例えば、ＨａｒｌｏｗａｎｄＬａｎｅ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙ，ＮｅｗＹｏｒｋ，１９８８を参照されたい。この文献は参照により本明細書に組み込まれる）。

遺伝子（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子）のダウンレギュレーションはＲＮＡサイレンシングによっても実現することができる。本明細書で使用される場合、語句の「ＲＮＡサイレンシング」は、対応するタンパク質をコードする遺伝子の発現の抑制または「サイレンシング」を生ずるＲＮＡ分子により媒介される一連の調節機序［例えば、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）、転写遺伝子サイレンシング（ＴＧＳ）、転写後遺伝子サイレンシング（ＰＴＧＳ）、クエリング、コサプレッション、および翻訳抑制］を意味する。ＲＮＡサイレンシングは、植物、動物、および真菌を含む多くの種類の生物で観察されている。

本明細書で使用される場合、「ＲＮＡサイレンシング剤」という用語は、標的遺伝子の発現を特異的に抑制または「サイレンシング」することができるＲＮＡを意味する。特定の実施形態では、ＲＮＡサイレンシング剤は、転写後サイレンシング機序によりｍＲＮＡ分子の完全なプロセッシング（例えば、完全翻訳および／または発現）を妨害することができる。ＲＮＡサイレンシング剤には、ノンコーディングＲＮＡ分子、例えば、対形成鎖を含むＲＮＡ二本鎖、ならびにこのような低分子ノンコーディングＲＮＡを生成することができる前駆物質ＲＮＡが含まれる。代表的ＲＮＡサイレンシング剤には、ｓｉＲＮＡ、ｍｉＲＮＡおよびｓｈＲＮＡなどのｄｓＲＮＡが含まれる。一実施形態では、ＲＮＡサイレンシング剤はＲＮＡ干渉を誘導することができる。別の実施形態では、ＲＮＡサイレンシング剤は翻訳抑制を媒介することができる。

本発明の一実施形態では、ＲＮＡサイレンシング剤は、標的ＲＮＡ（例えば、標的遺伝子）に特異的であり、９９％以下の標的遺伝子に対する全体的相同性を示す、例えば、９８％、９７％、９６％、９５％、９４％、９３％、９２％、９１％、９０％、８９％、８８％、８７％、８６％、８５％、８４％、８３％、８２％、８１％未満の標的遺伝子に対する全体的相同性を示す遺伝子もしくはスプライスバリアントを交差抑制またはサイレンシングしない。

ＲＮＡ干渉は、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）により媒介される動物の配列特異的転写後遺伝子サイレンシングのプロセスを意味する。植物での対応するプロセスは通常、転写後遺伝子サイレンシングまたはＲＮＡサイレンシングと呼ばれ、また、真菌の場合には、クエリングとも呼ばれる。転写後遺伝子サイレンシングのプロセスは、外来性遺伝子の発現を防ぐために進化的に保存されている細胞の防護機序であると考えられており、通常、多様な植物相および門により共有されている。このような外来性遺伝子発現からの保護は、ウイルス感染に由来する、または相同一本鎖ＲＮＡまたはウイルスゲノムＲＮＡを特異的に破壊する細胞応答を介したトランスポゾンエレメントの宿主ゲノムへのランダム組み込みに由来する二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）の産生に呼応して進化した可能性がある。

細胞中の長いｄｓＲＮＡの存在は、ダイサーと呼ばれるリボヌクレアーゼＩＩＩ酵素の活性を刺激する。ダイサーは、ｄｓＲＮＡの、低分子干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）として知られる短片ｄｓＲＮＡへのプロセッシングに関与する。ダイサー活性由来の低分子干渉ＲＮＡは通常、約２１〜約２３ヌクレオチドの長さで、約１９塩基対の二本鎖を含む。ＲＮＡｉ反応は、通常ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）と呼ばれるエンドヌクレアーゼ複合体を特徴とする。ＲＩＳＣは、ｓｉＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖に相補的な配列を有する一本鎖ＲＮＡの切断を媒介する。標的ＲＮＡの切断は、ｓｉＲＮＡ二本鎖のアンチセンス鎖に相補的な領域の中央で起こる。

したがって、本発明のいくつかの実施形態では、ｍＲＮＡからのタンパク質発現をダウンレギュレーションするようにｄｓＲＮＡを使用することが意図されている。

一実施形態では、ｄｓＲＮＡは３０ｂｐより大きい。より長いｄｓＲＮＡ（すなわち、３０ｂｐより大きいｄｓＲＮＡ）の使用は、これらのより長い領域の二本鎖ＲＮＡによりインターフェロンおよびＰＫＲ反応の誘導が生じるという考えのために、極めて限定されてきた。しかし、長いｄｓＲＮＡに使用により、細胞が最適サイレンシング配列を選択することができ、多くのｓｉＲＮＡ試験を行う必要性が軽減される；および恐らく最も重要なことであると思われるが、長いｄｓＲＮＡを治療薬として使用する場合に、ウイルス回避を防ぐことができるであろうという点で多くの利点を得ることができる。

種々の調査により、長いｄｓＲＮＡを使用して、ストレス応答を誘導することなくまたは大きなオフターゲット効果を生ずることなく、遺伝子発現をサイレンシングすることができることが示された−例えば、［Ｓｔｒａｔｅｔａｌ．，ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓｅａｒｃｈ，２００６，Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ．１３３８０３−３８１０；ＢｈａｒｇａｖａＡｅｔａｌ．ＢｒａｉｎＲｅｓ．Ｐｒｏｔｏｃ．２００４；１３：１１５−１２５；ＤｉａｌｌｏＭ．，ｅｔａｌ．，Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ．２００３；１３：３８１−３９２；ＰａｄｄｉｓｏｎＰ．Ｊ．，ｅｔａｌ．，Ｐｒｏｃ．ＮａｔｌＡｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．２００２；９９：１４４３−１４４８；ＴｒａｎＮ．，ｅｔａｌ．，ＦＥＢＳＬｅｔｔ．２００４；５７３：１２７−１３４］を参照されたい。

いくつかの実施形態による本発明はまた、遺伝子発現をダウンレギュレーションするためのインターフェロンおよびＰＫＲ経路を誘発しないように特異的に設計された長いｄｓＲＮＡの導入も意図している。例えば、ＳｈｉｎａｇｗａとＩｓｈｉｉ［Ｇｅｎｅｓ＆Ｄｅｖ．１７（１１）：１３４０−１３４５，２００３］は、ＲＮＡポリメラーゼＩＩ（ＰｏｌＩＩ）プロモーターから長い二本鎖ＲＮＡを発現するための、ｐＤＥＣＡＰと命名されたベクターを開発した。ｐＤＥＣＡＰからの転写物は、５’−キャップ構造および３’−ポリ（Ａ）テールの両方を欠くために、ｐＤＥＣＡＰからの長いｄｓＲＮＡはインターフェロン応答を誘発しない。

哺乳動物系で、インターフェロンおよびＰＫＲ経路を回避する別の方法は、低分子阻害性ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）の遺伝子導入または内在性発現を介した導入によるものである。

用語の「ｓｉＲＮＡ」は、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）経路を誘発する低分子阻害性ＲＮＡ二本鎖（一般的には、１８〜３０塩基対）を意味する。通常は、ｓｉＲＮＡは、中央１９ｂｐ二重鎖領域および対称２塩基３’−オーバーハングを有する２１マーとして終端に化学的に合成されるが、最近、２５〜３０塩基長さの化学的合成ＲＮＡ二本鎖は、２１マーのものに比べて、同じ位置で、効力を１００倍も増加させることができることが記載された。ＲＮＡｉの誘発に関して、より長いＲＮＡを使って得られた効力で観察された増加は、産物（２１マー）に代えて基質（２７マー）をダイサーに供給したこと、およびこれがｓｉＲＮＡ二本鎖のＲＩＳＣへの移行の速度と効率を改善することが原因であると理論付けされる。

３’−オーバーハングの位置がｓｉＲＮＡの効力に影響を与え、アンチセンス鎖上に３’−オーバーハングを有する非対称の二本鎖は、３’−オーバーハングをセンス鎖上に有するものより強力であることが明らかになった（Ｒｏｓｅｅｔａｌ．，２００５）。アンチセンス転写物を標的化すると、反対の効力パターンが観察されるので、これは、非対称の鎖のＲＩＳＣ中への組み込みに起因する可能性がある。

二本鎖干渉ＲＮＡ（例えば、ｓｉＲＮＡ）の鎖を連結してヘアピンまたはステムループ構造（例えば、ｓｈＲＮＡ）を形成することができる。したがって、述べたように、本発明のいくつかの実施形態のＲＮＡサイレンシング剤は、低分子ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）であってもよい。

本明細書で使用される場合、用語の「ｓｈＲＮＡ」は、ステムループ構造を有するＲＮＡ薬剤を意味し、相補的配列の第１と第２の領域を含み、相補性の程度および領域の方位は領域間で塩基対形成が起こるのに十分であり、第１と第２の領域はループ領域により連結され、ループはループ領域内のヌクレオチド（またはヌクレオチド類似体）間の塩基対形成の欠如から生じている。ループ中のヌクレオチドの数は、３〜２３、または５〜１５、または７〜１３、または４〜９、または９〜１１である。ループ中のいくつかのヌクレオチドは、ループ中の他のヌクレオチドとの塩基対相互作用に関与することができる。ループの形成に使用することができるオリゴヌクレオチド配列の例には、５’−ＵＵＣＡＡＧＡＧＡ−３’（Ｂｒｕｍｍｅｌｋａｍｐ，Ｔ．Ｒ．ｅｔａｌ．（２００２）Ｓｃｉｅｎｃｅ２９６：５５０）および５’−ＵＵＵＧＵＧＵＡＧ−３’（Ｃａｓｔａｎｏｔｔｏ，Ｄ．ｅｔａｌ．（２００２）ＲＮＡ８：１４５４）が含まれる。得られた単鎖オリゴヌクレオチドが、ＲＮＡｉ機構と相互作用可能な二本鎖領域を含むステムループまたはヘアピン構造を形成することは、当業者なら分かるであろう。

本発明のいくつかの実施形態での使用に適するＲＮＡサイレンシング剤の合成は、以下のように行うことができる。第１に、標的遺伝子ｍＲＮＡ配列をＡＵＧ開始コドンの下流でＡＡジヌクレオチド配列をスキャンする。ＡＡおよび３’隣接１９ヌクレオチドのそれぞれの存在を、潜在的ｓｉＲＮＡ標的部位として記録する。非翻訳領域（ＵＴＲ）は調節タンパク質結合部位がより多いので、ｓｉＲＮＡ標的部位は読み枠から選択されるのが好ましい。ＵＴＲ結合タンパク質および／または翻訳開始複合体は、ｓｉＲＮＡエンドヌクレアーゼ複合体の結合と干渉する可能性がある［ＴｕｓｃｈｌＣｈｅｍＢｉｏｃｈｅｍ．２：２３９−２４５］。しかし、５’ＵＴＲを標的としたｓｉＲＮＡが細胞性ＧＡＰＤＨｍＲＮＡの約９０％の減少を媒介し、タンパク質レベルを完全に消滅させた（ｗｗｗ．ａｍｂｉｏｎ．ｃｏｍ／ｔｅｃｈｌｉｂ／ｔｎ／９１／９１２．ｈｔｍｌ）場合のＧＡＰＤＨに関し示されたように、非翻訳領域を標的としたｓｉＲＮＡも効果的である場合がある。

第２に、潜在的標的部位は、ＮＣＢＩサーバー（ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ＢＬＡＳＴ／）から入手可能なＢＬＡＳＴソフトウェアなどの任意の配列整列化ソフトウェアを使って、適切なゲノムデータベース（例えば、ヒト、マウス、ラットなど）と比較されるその他のコード配列に対する有意な相同性を示す推定標的部位は取り除かれる。

適格標的配列は、ｓｉＲＮＡ合成用のテンプレートとして選択される。好ましい配列は、低Ｇ／Ｃ含量を含むものである。理由は、これらが５５％より高いＧ／Ｃ含量のものと比較して、遺伝子サイレンシングを媒介する点で、より効果的であることが実証されているからである。いくつかの標的部位は評価のために標的遺伝子の長さに沿って選択されるのが好ましい。選択されたｓｉＲＮＡのより良好な評価のために、陰性対照を同時に使用するのが好ましい。陰性対照ｓｉＲＮＡは、ｓｉＲＮＡと同じ組成でゲノムに対して大きな相同性がないヌクレオチド組成を含むのが好ましい。したがって、いずれか他の遺伝子に対し何ら有意な相同性を示さない前提で、スクランブル化したｓｉＲＮＡのヌクレオチド配列を使うのが好ましい。

本発明のいくつかの実施形態のＲＮＡサイレンシング剤は、ＲＮＡのみを含む分子に限定される必要はなく、化学修飾されたヌクレオチドおよび非ヌクレオチドをさらに包含することは理解されよう。

いくつかの実施形態では、本明細書で提供されるＲＮＡサイレンシング剤は、細胞透過性ペプチドと機能的に関連してもよい。本明細書で使用される場合、「細胞透過性ペプチド」は、血漿および／または細胞の核膜を通過する膜透過性複合体の輸送に関連するエネルギー非依存性（すなわち、非エンドサイトーシスの）転座特性を付与する短い（約１２〜３０残基）アミノ酸配列または機能性モチーフを含むペプチドである。本発明のいくつかの実施形態の膜透過性複合体に使われる細胞透過性ペプチドは、好ましくは少なくとも１つの非機能性のシステイン残基を含み、この残基は、遊離状態であるか、または誘導体化されて、ジスルフィドとの結合のために修飾されている二本鎖リボ核酸とジスルフィド結合を形成する。このような特性を付与する代表的アミノ酸モチーフは、米国特許第６，３４８，１８５号に挙げられている。この特許の内容は、参照により明示的に本明細書に組み込まれる。本発明のいくつかの実施形態の細胞透過性ペプチドとして、好ましくは、ペネトラチン、トランスポータン、ｐＩｓｌ、ＴＡＴ（４８−６０）、ｐＶＥＣ、ＭＴＳ、およびＭＡＰを含むが、これらに限定されない。

ＲＮＡサイレンシング剤を使って標的化されるｍＲＮＡには、発現が望ましくない表現型形質と相関するｍＲＮＡが挙げられるが、これらに限定されない。標的化されてもよい代表的ｍＲＮＡは、短縮タンパク質をコードする、すなわち、欠失を含むｍＲＮＡである。したがって、本発明のいくつかの実施形態のＲＮＡサイレンシング剤は、欠失の両側の架橋領域を標的にすることができる。このようなＲＮＡサイレンシング剤の細胞への導入により、変異タンパク質のダウンレギュレーションが生じ、同時に、非変異タンパク質は影響を受けないで残される。

遺伝子（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子）のダウンレギュレーションが可能な別の薬剤は、標的遺伝子のｍＲＮＡ転写物またはＤＮＡ配列を特異的に切断することができるＤＮＡザイム分子である。ＤＮＡザイムは、一本または二本鎖標的配列の両方を切断することができる一本鎖ポリヌクレオチドである（Ｂｒｅａｋｅｒ，Ｒ．Ｒ．ａｎｄＪｏｙｃｅ，Ｇ．ＣｈｅｍｉｓｔｒｙａｎｄＢｉｏｌｏｇｙ１９９５；２：６５５；Ｓａｎｔｏｒｏ，Ｓ．Ｗ．＆Ｊｏｙｃｅ，Ｇ．Ｆ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ，Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ１９９７；９４３：４２６２）。ＤＮＡザイム用の一般的モデル（「１０−２３」モデル）が提案されている。「１０−２３」ＤＮＡザイムは、それぞれ７〜９デオキシリボヌクレオチドの２つの基質認識ドメインにより挟まれた１５デオキシリボヌクレオチドの触媒ドメインを有する。このタイプのＤＮＡザイムはその基質ＲＮＡをプリン：ピリミジン接合部で効果的に切断する（Ｓａｎｔｏｒｏ，Ｓ．Ｗ．＆Ｊｏｙｃｅ，Ｇ．Ｆ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ，Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ１９９；ＤＮＡザイムの総説については、Ｋｈａｃｈｉｇｉａｎ，ＬＭ［ＣｕｒｒＯｐｉｎＭｏｌＴｈｅｒ４：１１９−２１（２００２）］を参照されたい）。

一本鎖および二本鎖標的切断部位を認識する合成の、操作されたＤＮＡザイムの作製と増幅の例は、米国特許第６，３２６，１７４号（Ｊｏｙｃｅｅｔａｌ．）で開示されている。最近、ヒトウロキナーゼ受容体を標的とする類似の設計のＤＮＡザイムが、ウロキナーゼ受容体発現を抑制し、大腸癌細胞のインビボ転移の抑制に成功したことが観察された（Ｉｔｏｈｅｔａｌ，２０００２，Ａｂｓｔｒａｃｔ４０９，ＡｎｎＭｅｅｔｉｎｇＡｍＳｏｃＧｅｎＴｈｅｒｗｗｗ．ａｓｇｔ．ｏｒｇ）。別の適用では、ｂｃｒ−ａｂ１癌遺伝子に相補的なＤＮＡザイムが、ＣＭＬおよびＡＬＬの症例で、白血病細胞中の癌遺伝子発現を抑制し、自家骨髄移植における再発率を下げることに成功した。

遺伝子（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子）のダウンレギュレーションは、遺伝子をコードするｍＲＮＡ転写物に特異的にハイブリダイズすることができるアンチセンスポリヌクレオチドを使って行うことができる。

遺伝子を効率的にダウンレギュレーションするために使用することができるアンチセンス分子の設計は、アンチセンス手法に重要な２つの側面を考慮しながら行う必要がある。第１の側面は、オリゴヌクレオチドの適切な細胞の細胞質中への送達であり、第２の側面は、細胞内の指定されたｍＲＮＡに対し、その翻訳を抑制するように、特異的に結合するオリゴヌクレオチドの設計である。

遺伝子（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子）のダウンレギュレーションが可能な別の薬剤は、遺伝子をコードするｍＲＮＡ転写物を特異的に切断することができるリボザイム分子である。目的のタンパク質をコードするｍＲＮＡの切断により遺伝子発現の配列特異的抑制を行うために、リボザイムがますます使用されるようになってきている［Ｗｅｌｃｈｅｔａｌ．，ＣｕｒｒＯｐｉｎＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．９：４８６−９６（１９９８）］。任意の特異的標的ＲＮＡを切断するためのリボザイム設計の実現性により、リボザイムが基礎研究および治療への応用の両方での有益な手段になった。治療薬の分野では、リボザイムは、感染症におけるウイルスＲＮＡ、癌における主要な癌遺伝子および遺伝病における特異的体細胞変異を標的にするために利用されている［Ｗｅｌｃｈｅｔａｌ．，ＣｌｉｎＤｉａｇｎＶｉｒｏｌ．１０：１６３−７１（１９９８）］。特に注意すべきは、ＨＩＶ用のいくつかのリボザイム遺伝子治療プロトコルは既に第１相臨床試中であることである。最近になって、リボザイムは遺伝子導入動物研究、遺伝子標的検証および経路解明のために使われている。いくつかのリボザイムは、種々の段階の臨床試験中である。ＡＮＧＩＯＺＹＭＥは、ヒト臨床試験で試験される最初の化学合成リボザイムであった。ＡＮＧＩＯＺＹＭＥは、血管新生経路における主要成分であるＶＥＧＦ−ｒ（血管内皮細胞増殖因子受容体）の形成を特異的に抑制する。ＲｉｂｏｚｙｍｅＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃ．、ならびにその他の会社は、動物モデルでの抗血管新生治療薬の重要性を実証した。ＨＥＰＴＡＺＹＭＥ、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）ＲＮＡを選択的に破壊するように設計されたリボザイムは、細胞培養アッセイでＣ型肝炎ウイルスＲＮＡの減少に効果的であることが明らかになった（ＲｉｂｏｚｙｍｅＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌｓ，Ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ − ＷＥＢホームページ）。

遺伝子（例えば、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子）のダウンレギュレーションが可能な別の薬剤は、ＲＮＡ誘導性エンドヌクレアーゼ技術、例えば、ＣＲＩＳＰＲシステムである。

本明細書で使用される場合、用語の「ＣＲＩＳＰＲシステム」は、ＣｌｕｓｔｅｒｅｄＲｅｇｕｌａｒｌｙＩｎｔｅｒｓｐａｃｅｄＳｈｏｒｔＰａｌｉｎｄｒｏｍｉｃＲｅｐｅａｔｓ（規則的な間隔をもってクラスター化された短鎖反復回文配列）としても知られ、ひとまとめにして言えば、ＣＲＩＳＰＲ関連遺伝子の発現または活性の管理に関与する転写物およびその他のエレメントを意味し、これらには、Ｃａｓ遺伝子（例えば、ＣＲＩＳＰＲ関連エンドヌクレアーゼ９）をコードする配列、ｔｒａｃｒ（トランス活性化ＣＲＩＳＰＲ）配列（例えば、ｔｒａｃｒＲＮＡまたは活性な部分ｔｒａｃｒＲＮＡ）、ｔｒａｃｒメイト配列（「ダイレクトリピート」およびｔｒａｃｒＲＮＡ処理部分ダイレクトリピート）または限定されないがｃｒＲＮＡ配列もしくはｓｇＲＮＡ配列（すなわちシングルガイドＲＮＡ）を含むガイド配列（「スペーサー」とも呼ばれる）が含まれる。

いくつかの実施形態では、１つまたは複数のＣＲＩＳＰＲシステムのエレメントは、Ｉ型、ＩＩ型、またはＩＩＩ型ＣＲＩＳＰＲシステム由来である。いくつかの実施形態では、１つまたは複数のＣＲＩＳＰＲシステムのエレメント（例えば、Ｃａｓ）は、内在性ＣＲＩＳＰＲシステム、例えば、化膿性の連鎖球菌、髄膜炎ナイセリア、ストレプトコッカス・サーモフィルスまたはトレポネーマ・デンティコラを含む特定の生物体由来である。

一般に、ＣＲＩＳＰＲシステムは、標的配列の部位でのＣＲＩＳＰＲ複合体の形成を促進するエレメント（内在性ＣＲＩＳＰＲシステムとの関係においては、プロトスペーサーとも呼ばれる）により特徴付けられる。

ＣＲＩＳＰＲ複合体の形成との関係においては、「標的配列」は、ガイド配列（すなわち、ガイドＲＮＡ）が相補性を有するように設計される配列を意味し、標的配列とガイド配列との間のハイブリダイゼーションがＣＲＩＳＰＲ複合体の形成を促進する。ハイブリダイゼーションを生じ、ＣＲＩＳＰＲ複合体の形成が促進されるのに十分な相補性があれば、完全な相補性は必ずしも必要ではない。したがっていくつかの実施形態では、標的配列に対する全体的相同性は、５０％、６０％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％または９９％であってよい。標的配列は、ＤＮＡまたはＲＮＡポリヌクレオチドなどの任意のポリヌクレオチドを含むことができる。いくつかの実施形態では、標的配列は細胞の核中または細胞質中に位置している。

したがって、ＣＲＩＳＰＲシステムは２つの異なる成分、標的配列とハイブリダイズするガイドＲＮＡ（ｇＲＮＡ）、およびヌクレアーゼ（例えば、ＩＩ型Ｃａｓ９タンパク質）を含み、ｇＲＮＡは標的配列を標的にし、ヌクレアーゼ（例えば、Ｃａｓ９タンパク質）は標的配列を切断するか、または標的遺伝子をサイレンシングする。ガイドＲＮＡは、内在性細菌性ｃｒＲＮＡおよびｔｒａｃｒＲＮＡの組み合わせを含む、すなわち、ｇＲＮＡはｃｒＲＮＡの標的化特異性と、ｔｒａｃｒＲＮＡの足場特性（Ｃａｓ９結合に必要）とを併用することができる。あるいは、ガイドＲＮＡは、直接Ｃａｓを結合することができるシングルガイドＲＮＡ（ｓｇＲＮＡ）を含む。

通常、内在性ＣＲＩＳＰＲシステムとの関係においては、ＣＲＩＳＰＲ複合体（標的配列にハイブリダイズするガイド配列を含み、１種または複数種のＣａｓタンパク質と複合体形成している）の形成は、標的配列内またはその近傍で（例えば、標的配列から１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、２０、５０、またはそれより多い塩基対内の）１つの鎖または両鎖の切断を生ずる。これにより、例えば、挿入または欠失により目的遺伝子（すなわち、標的配列）の破壊が起こる。

一実施形態では、Ｃａｓタンパク質（例えば、Ｃａｓ９）は、ヌクレアーゼ活性がなく（すなわち、触媒的に不活性）であり、「デッド（ｄｅａｄ）」（ｄＣａｓ９）と呼ばれる。本教示にしたがって、触媒的に不活性なＣａｓ９タンパク質を使用して、ＤＮＡに結合することができ（ガイドＲＮＡの特異性に基づいて）、通常はこれにより、ＲＮＡポリメラーゼ結合または伸長の妨害が起こり、転写の抑制に繋がる。したがって、ｄＣａｓ９を転写抑制に使用することができる。

上述のように、ｔｒａｃｒＲＮＡ配列は、野性型ｔｒａｃｒ配列の全てまたは一部を含むまたはその配列の全てまたは一部（例えば、約、または約２０、２６、３２、４５、４８、５４、６３、６７、８５、またはそれより多いヌクレオチドを超える野性型ｔｒａｃｒ配列）から構成することができ、例えば、ｔｒａｃｒＲＮＡ配列の少なくとも一部と、ガイド配列（例えば、ｃｒＲＮＡ）に機能的に連結されているｔｒａｃｒメイト配列の全てまたは一部とのハイブリダイゼーションにより、ＣＲＩＳＰＲ複合体の一部を形成してもよい。

いくつかの実施形態では、ｔｒａｃｒ配列は、ハイブリダイズするｔｒａｃｒメイト配列に対し、十分な相補性を有し、ＣＲＩＳＰＲ複合体の形成に関与する。機能を果たすのに十分であれば、標的配列と同様に、完全な相補性は必要ない。いくつかの実施形態では、最適に整列される場合は、ｔｒａｃｒ配列は、メイト配列の長さに沿って、少なくとも５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％または９９％の配列相補性を有する。

ＣＲＩＳＰＲ／Ｃａｓの細胞中への導入は、ＣＲＩＳＰＲシステムのエレメントの発現が１種または複数種の標的部位でのＣＲＩＳＰＲ複合体の形成を指示するように、ＣＲＩＳＰＲシステムの１種または複数種のエレメントの発現を進行させる１種または複数種のベクターを使って行うことができる。例えば、Ｃａｓ酵素、メイト配列に連結されたガイド配列、およびｔｒａｃｒＲＮＡ配列は、別のベクター上の別の調節エレメントにそれぞれ機能的に連結されるであろう。あるいは、同じまたは異なる調節エレメントから発現された２つ以上のエレメントは、第１のベクターに含まれないＣＲＩＳＰＲシステムのいずれかの成分を提供する１種または複数種の追加のベクターと、単一ベクター中で結合される。単一ベクター中で結合されるＣＲＩＳＰＲシステムエレメントは、任意の好適な向きに、例えば、第１のエレメントを、第２のエレメントに対し、５’に（５’の「上流に」）または３’に（３’の「下流に」）配置することができる。第１のエレメントのコード配列を、第２のエレメントのコード配列の同じまたは反対の鎖上に配置することができる。単一プロモーターがＣＲＩＳＰＲ酵素をコードする転写物、ならびに１種または複数種のイントロン配列中に（例えば、それぞれ、異なるイントロン中に、２種以上が少なくとも１つのイントロン中に、または全てが単一イントロン中に）埋め込まれた、１つまたは複数のガイド配列、メイト配列（必要に応じて、ガイド配列に機能的に連結された配列）、およびｔｒａｃｒＲＮＡ配列の発現を促進することができる。

あるいは、本発明の別の実施形態では、遺伝子発現のアップレギュレーションが、マイクロＲＮＡの発現をダウンレギュレーションすることができる薬剤を標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）に投与することによって、または、標的細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）において発現させることによって行われる。

上で考察したように、マイクロＲＮＡのダウンレギュレーションを、転写および／または翻訳を妨害する様々な分子（例えば、ＲＮＡサイレンシング剤、リボザイム、ＤＮＡザイムおよびアンチセンス）を使用してゲノムレベルおよび／または転写物レベルで達成することができる。

マイクロＲＮＡの発現をダウンレギュレーションする方法は、当該技術分野で公知である。

ｍｉＲの活性をダウンレギュレーションする核酸薬剤には、標的模倣物、マイクロＲＮＡ耐性遺伝子およびｍｉＲＮＡ阻害剤が含まれるが、これらに限定されない。標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的は、下記のミスマッチの１つまたは複数が許される場合には、マイクロＲＮＡに対して本質的に相補的である：
（ａ）マイクロＲＮＡの５’末端におけるヌクレオチドと、標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的における対応するヌクレオチド配列との間における１つのミスマッチ；
（ｂ）マイクロＲＮＡの１位〜９位におけるヌクレオチドのいずれか１つと、標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的における対応するヌクレオチド配列との間における１つのミスマッチ；または
（ｃ）マイクロＲＮＡの１２位〜２１位におけるヌクレオチドのいずれか１つと、標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的における対応するヌクレオチド配列との間における３つのミスマッチ、ただし、この場合、連続するミスマッチは最大でも２つである。

標的模倣ＲＮＡは、例えば、ミスマッチを生ずるｍｉＲＮＡの１０番目または１１番目のヌクレオチドに対して相補的である標的配列のヌクレオチドに多様性を導入するように配列を修飾することによってｍｉＲＮＡ誘導切断に対して耐性を付与するように修飾された標的ＲＮＡと本質的に類似している。

あるいは、マイクロＲＮＡ耐性標的を組み込むことができる。したがって、サイレント変異を標的遺伝子のマイクロＲＮＡ結合部位に導入することにより、ＤＮＡ配列および生じたＲＮＡ配列が、マイクロＲＮＡの結合を妨げるように変化するが、タンパク質のアミノ酸配列は変化しないままにすることができる。したがって、新しい配列を既存の結合部位に代えて合成することができるが、この場合、新しい配列において、ＤＮＡ配列が変化し、それにより、ｍｉＲＮＡがその標的に結合しなくなる。

特定の実施形態では、標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的は、標的遺伝子を認識するプレｍｉＲＮＡに元々結合しているプロモーターに連結され、細胞内に導入される。このようにして、ｍｉＲＮＡ標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的ＲＮＡが、ｍｉＲＮＡと同じ環境のもとで発現され、また、標的模倣物またはマイクロＲＮＡ耐性標的ＲＮＡが、ｍｉＲＮＡ誘導の切断によって分解される非標的模倣物／マイクロＲＮＡ耐性標的ＲＮＡを置換することになるであろう。

非機能的ｍｉＲＮＡアレルまたはｍｉＲＮＡ耐性標的遺伝子もまた、ｍｉＲＮＡコードアレルまたはｍｉＲＮＡ感受性標的遺伝子を置換するために相同的組換えによって導入することができる。

組換え発現は、目的とする核酸（例えば、ｍｉＲＮＡ、標的遺伝子、サイレンシング剤など）を適切なプロモーターの発現下で核酸発現構築物にクローン化することによって達成される。

本発明の他の実施形態では、合成一本鎖核酸がｍｉＲＮＡ阻害剤として使用される。ｍｉＲＮＡ阻害剤は、典型的には長さが約１７ヌクレオチド〜２５ヌクレオチドであり、成熟型ｍｉＲＮＡの５’端から３’端への配列に対して少なくとも９０％相補的である５’端から３’端への配列を含む。特定の実施形態では、ｍｉＲＮＡ阻害剤分子は、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４もしくは２５ヌクレオチドの長さであり、または、それらから導き出すことが可能な任意の範囲である。さらに、ｍｉＲＮＡ阻害剤は、成熟型ｍｉＲＮＡ、特に、成熟型の天然に存在するｍｉＲＮＡの５’端から３’端への配列に対して、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９、９９．１、９９．２、９９．３、９９．４、９９．５、９９．６、９９．７、９９．８、９９．９もしくは１００％相補的であるか、または、少なくとも９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９、９９．１、９９．２、９９．３、９９．４、９９．５、９９．６、９９．７、９９．８、９９．９もしくは１００％相補的であるか、または、それらから導き出すことが可能な任意の範囲である（５’端から３’端への）配列を有する。

本発明の他の実施形態では、マイクロＲＮＡのダウンレギュレーションは、マイクロＲＮＡまたはその前駆物質と特異的にハイブリダイズすることができるアンチセンスポリヌクレオチドを使って行うことができる。

本発明のマイクロＲＮＡアンチセンス薬剤（例えば、抗ｍｉＲＮＡオリゴ）も同様に化学的修飾、分子修飾および／または追加の部分、例えば、コレステロール部分（例えば、アンタゴｍｉｒ）を含むことができる。

ｍｉＲＮＡ阻害剤を、一過性遺伝子導入技術を使用して細胞と接触させることができる。ｍｉＲＮＡ阻害剤はＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓなどの会社から市販されている。

あるいは、ｍｉＲＮＡ阻害剤は、本明細書中で上記されるように発現ベクターの一部であってもよい。この場合、細胞に一過性または安定的にベクターを遺伝子導入することができる。

特定の実施形態では、調節が、Ｔｐｈ２遺伝子の発現をアップレギュレーションすることを含む場合、該調節は、ｍｉＲ−１８１および／またはｍｉＲ−２７をダウンレギュレーションすることを含む。

別の特定の実施形態では、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；および神経膠細胞中のジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される遺伝子の発現を神経膠細胞においてアップレギュレーションする方法であって、（ａ）神経膠細胞中のｍｉＲ−１３５もしくはその前駆物質の活性または発現をダウンレギュレーションすること、および（ｂ）神経膠細胞中の遺伝子の発現を測定し、それにより、遺伝子の発現をアップレギュレーションすること、を含む方法が提供される。

特定の実施形態では、いずれかのこれらの遺伝子の発現のアップレギュレーションは、マイクロＲＮＡ（例えば、ｍｉＲ−１３５）またはその前駆物質の活性または発現をダウンレギュレーションすること以外の方法で行われる。したがって、遺伝子の活性または発現のアップレギュレーションは、遺伝子またはその標的の過剰発現により影響を受けることがある。

一実施形態では、マイクロＲＮＡの発現をダウンレギュレーションすることが、マイクロＲＮＡと特異的に結合し、その発現をダウンレギュレーションする核酸配列の使用によって達成される。本発明により使用できる代表的な核酸配列は、任意の製造者から、例えば、Ｇｅｎｅｃｏｐｏｅｉａから購入することができる（ｍｉＡｒｒｅｓｔ、マイクロＲＮＡベクターに基づく阻害剤）。

従って、別の実施形態では、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２、ｍｉＲ−２６、ｍｉＲ−２７、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１５およびｍｉＲ−１９またはその前駆体の発現をダウンレギュレーションするための核酸配列を含む単離ポリヌクレオチドが提供される。

ｍｉＲ−１８１の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１３４〜１３７、および配列番号１５４〜１５７で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−１８２の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１３８〜１４１、および配列番号１４７で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−２６の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１２６〜１２９、および配列番号１４５〜１４６で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−２７の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１３０〜１３３、および配列番号１５２〜１５３で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−１３５の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１１０〜１１３、および配列番号１４２〜１４３で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−３３５の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１１４〜１１７、および配列番号１４４で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−１５の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１１８〜１２１、および配列番号１５０〜１５１で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−１９の発現をダウンレギュレーションするために本発明により使用できる代表的なポリヌクレオチドには、配列番号１２２〜１２５、および配列番号１４８〜１４９で示されるポリヌクレオチドが含まれるが、これらに限定されない。

このような核酸配列はさらに、本明細書中上記でさらに詳しく記載されたような発現ベクターに含まれてもよい。

本発明はさらに、細胞（例えば、神経膠細胞または心臓細胞）中のマイクロＲＮＡレベルをダウンレギュレーションまたはアップレギュレーションした後で、標的遺伝子（例えば、転写物またはポリペプチド）の発現を評価することを意図している。

したがって、標的遺伝子（例えば、Ｓｌｃ６ａ４、Ｈｔｒ１ａ、ＭａｏＡ、Ａｄｒｂ１、Ａｄｒｂ２、ＣＲＨｔｙｐｅ１ｒｅｃｅｐｔｏｒ、ＣＢ１、ＦＫＢＰ５、Ｔｐｈ２、Ｇｒｍ１、Ｇｒｉｋ３、Ｇｒｍ５、Ｇｒｉｋ２、Ｇｒｍ７、Ｇｒｉａ２、Ｄｓｃａｍ、Ｌ１ｃａｍ、Ｔｓｎａｘ、Ｓｇｋ１、Ｓｔｘ１ａ、Ａｄｃｙａｐ１、Ａｄｃｙａｐ１ｒ１、Ａｄｒａ２ａ、Ａｎｋ３、Ａｒｃ、Ａｒｈｇａｐ６、Ａｔｆ３、Ｂａｃｅ１、Ｃａｃｎａ１ｄ、Ｃａｄｍ３、Ｃｐｌｘ１、Ｃｐｌｘ２、Ｃｓｍｄ１、Ｃｓｎｋ１ｇ１、Ｄｃｘ、Ｄｉｒａｓ２、Ｄｌｇ２、Ｅｌｋ１、Ｆｒｋ、Ｆｕｔ９、Ｇａｂｒｂ２、Ｇａｔａ３、Ｇｈｓｒ、Ｇｐｒ３、Ｇｒｉａ３、Ｇｒｋ５、Ｇｓｋ３ｂ、Ｈｃｎ１、Ｈｃｎ２、Ｉｍｐａ１、Ｋａｌｒｎ、Ｋｃｎｎ３、Ｋｐｎａ３、Ｍｙｔ１ｌ、Ｎｃｏａ２、Ｎｄｒｇ４、Ｎｏｓ１ａｐ、Ｎｒ３ｃ２、Ｎｔｎｇ１、Ｎｕｃｋｓ１、Ｐｄｅ１ａ、Ｐｄｅ４ａ、Ｐｄｅ８ｂ、Ｐｌｃｂ１、Ｐｒｌｒ、Ｒａｂ１ｂ、Ｒａｐ２ａ、Ｒｏｒｂ、Ｓｉｒｔ１、Ｓｌｃ１２ａ６、Ｓｌｃ５ａ７、Ｓｐ１、Ｓｖ２ｂ、Ｓｙｎｅ１、Ｓｙｔ１、Ｓｙｔ２、Ｓｙｔ３、Ｔｇｆｂｒ２、Ｔｈｒｂ、Ｔｒｐｃ６、Ｖａｍｐ２、Ｗｎｔ３および／またはＺｂｅｄ４）核酸配列（例えば、転写物）の存在および／またはレベルは、標的遺伝子の核酸配列（例えば、ＮＭ＿００１０４５．４で示されるＳｌｃ６ａ４またはその一部；例えば、ＮＭ＿０００５２４．３で示されるＨｔｒ１ａまたはその一部；例えば、ＮＭ＿０００２４０．３もしくはＮＭ＿００１２７０４５８．１で示されるＭａｏＡまたはその一部；例えば、ＮＭ＿０００６８４．２で示されるＡｄｒｂ１またはその一部；例えば、ＮＭ＿００００２４．５で示されるＡｄｒｂ２またはその一部；例えば、ＮＭ＿００１１４５１４６．１、ＮＭ＿００１１４５１４７．１で示されるＣＲＨ１型受容体またはその一部；例えば、ＮＭ＿００１１６０２２６．１，ＮＭ＿０３３１８１．３で示されるＣＢ１またはその一部；例えば、ＮＭ＿００１１４５７７５．１、ＮＭ＿００１１４５７７７．１で示されるＦＫＢＰ５またはその一部；例えば、ＮＭ＿１７３３５３．３で示されるＴｐｈ２またはその一部；例えば、ＮＭ＿０００８３８．３、ＮＭ＿００１１１４３２９．１で示されるＧｒｍ１またはその一部；例えば、ＮＭ＿０００８３１．３で示されるＧｒｉｋ３またはその一部；例えば、ＮＭ＿０００８４２．３、ＮＭ＿００１１４３８３１．２で示されるＧｒｍ５またはその一部；例えば、ＮＭ＿００１１６６２４７．１、ＮＭ＿０２１９５６．４で示されるＧｒｉｋ２またはその一部；例えば、ＮＭ＿０００８４４．３、ＮＭ＿１８１８７４．２で示されるＧｒｍ７またはその一部；例えば、ＮＭ＿０００８２６．３、ＮＭ＿００１０８３６１９．１で示されるＧｒｉａ２またはその一部；例えば、ＮＭ＿００１３８９．３で示されるＤｓｃａｍまたはその一部；例えば、ＮＭ＿０００４２５．３、ＮＭ＿００１１４３９６３．１、ＮＭ＿０２４００３．２で示されるＬ１ｃａｍまたはその一部；例えば、ＮＭ＿００５９９９．２で示されるＴｓｎａｘまたはその一部；例えば、ＮＭ＿００１１４３６７６．１、ＮＭ＿００１１４３６７７．１、ＮＭ＿００１１４３６７８．１で示されるＳｇｋ１またはその一部および／または例えば、ＮＭ＿００１１６５９０３．１、ＮＭ＿００４６０３．３で示されるＳｔｘ１ａまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１１７．４、ＮＭ＿００１０９９７３３．１で示されるＡｄｃｙａｐ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１１８．４、ＮＭ＿００１１９９６３５．１、ＮＭ＿００１１９９６３６．１、ＮＭ＿００１１９９６３７．１で示されるＡｄｃｙａｐ１ｒ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００６８１．３で示されるＡｄｒａ２ａまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１４９．３、ＮＭ＿００１２０４４０３．１、ＮＭ＿００１２０４４０４．１もしくはＮＭ＿０２０９８７．３で示されるＡＮＫ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿０１５１９３．４で示されるＡｒｃまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００１２８７２４２．１、ＮＭ＿００６１２５．２、ＮＭ＿０１３４２３．２、ＮＭ＿０１３４２７．２で示されるＡｒｈｇａｐ６またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１０３０２８７．３、ＮＭ＿００１０４０６１９．２、ＮＭ＿００１２０６４８４．２、ＮＭ＿００１２０６４８６．２、ＮＭ＿００１２０６４８８．２、ＮＭ＿００１６７４．３で示されるＡｔｆ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１２０７０４８．１、ＮＭ＿００１２０７０４９．１、ＮＭ＿０１２１０４．４、ＮＭ＿１３８９７１．３、ＮＭ＿１３８９７２．３、ＮＭ＿１３８９７３．３で示されるＢａｃｅ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００７２０．３、ＮＭ＿００１１２８８３９．２、ＮＭ＿００１１２８８４０．２で示されるＣａｃｎａ１ｄまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１２７１７３．１、ＮＭ＿０２１１８９．３で示されるＣａｄｍ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿００６６５１．３で示されるＣｐｌｘ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１００８２２０．１、ＮＭ＿００６６５０．３で示されるＣｐｌｘ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿０３３２２５．５で示されるＣｓｍｄ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿０２２０４８．３で示されるＣｓｎｋ１ｇ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００５５５．３、ＮＭ＿００１１９５５５３．１、ＮＭ＿１７８１５１．２、ＮＭ＿１７８１５２．２、ＮＭ＿１７８１５３．２で示されるＤｃｘまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０１７５９４．３で示されるＤｉｒａｓ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１４２６９９．１、ＮＭ＿００１１４２７００．１、ＮＭ＿００１１４２７０２．１、ＮＭ＿００１２０６７６９．１、ＮＭ＿００１３６４．３で示されるＤｌｇ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１１４１２３．２、ＮＭ＿００１２５７１６８．１、ＮＭ＿００５２２９．４で示されるＥｌｋ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００２０３１．２で示されるＦｒｋまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００６５８１．３で示されるＦｕｔ９またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００８１３．２、ＮＭ＿０２１９１１．２で示されるＧａｂｒｂ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１００２２９５．１、ＮＭ＿００２０５１．２で示されるＧａｔａ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿００４１２２．２、ＮＭ＿１９８４０７．２で示されるＧｈｓｒまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００５２８１．３で示されるＧｐｒ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００８２８．４、ＮＭ＿００１２５６７４３．１、ＮＭ＿００７３２５．４で示されるＧＲＩＡ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿００５３０８．２で示されるＧｒｋ５またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１４６１５６．１、ＮＭ＿００２０９３．３で示されるＧＳＫ３Ｂまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０２１０７２．３で示されるＨｃｎ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１９４．３で示されるＨｃｎ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１４４８７８．１、ＮＭ＿００１１４４８７９．１、ＮＭ＿００５５３６．３で示されるＩＭＰＡ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１０２４６６０．３、ＮＭ＿００３９４７．４、ＮＭ＿００７０６４．３，またはＫａｌｒｎで示されるその一部、例えば、ＮＭ＿００１２０４０８７．１、ＮＭ＿００２２４９．５、ＮＭ＿１７０７８２．２で示されるＫＣＮＮ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿００２２６７．３で示されるＫｐｎａ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿０１５０２５．２で示されるＭｙｔ１ｌまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００６５４０．２で示されるＮｃｏａ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿０２０４６５．３、ＮＭ＿０２２９１０．３、ＮＭ＿００１１３０４８７．１、ＮＭ＿００１２４２８３６．１で示されるＮｄｒｇ４またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１２６０６０．１、ＮＭ＿００１１６４７５７．１、ＮＭ＿０１４６９７．２で示されるＮＯＳ１ＡＰまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０００９０１．４、ＮＭ＿００１１６６１０４．１で示されるＮｒ３ｃ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１１３２２６．１、ＮＭ＿００１１１３２２８．１、ＮＭ＿０１４９１７．２で示されるＮｔｎｇ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿０２２７３１．４で示されるＮｕｃｋｓ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００５０１９．４、ＮＭ＿００１００３６８３．２、ＮＭ＿００１２５８３１２．１で示されるＰｄｅ１ａまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１１１３０７．１、ＮＭ＿００１１１１３０８．１、ＮＭ＿００１１１１３０９．１で示されるＰｄｅ４ａまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００３７１９．３、ＮＭ＿００１０２９８５１．２、ＮＭ＿００１０２９８５２．２で示されるＰｄｅ８ｂまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０１５１９２．３、ＮＭ＿１８２７３４．２で示されるＰｌｃｂ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００９４９．５、ＮＭ＿００１２０４３１５．１、ＮＭ＿００１２０４３１６．１で示されるＰｒｌｒまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０３０９８１．２で示されるＲａｂ１ｂまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０２１０３３．６で示されるＲａｐ２ａまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００６９１４．３で示されるＲｏｒｂまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１４２４９８．１、ＮＭ＿０１２２３８．４で示されるＳｉｒｔ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿１３３６４７．１、ＮＭ＿００５１３５．２、ＮＭ＿００１０４２４９５．１で示されるＳｌｃ１２ａ６またはその一部、例えば、ＮＭ＿０２１８１５．２で示されるＳｌｃ５ａ７またはその一部、例えば、ＮＭ＿１３８４７３．２、ＮＭ＿００３１０９．１、ＮＭ＿００１２５１８２５．１で示されるＳｐ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１６７５８０．１、ＮＭ＿０１４８４８．４で示されるＳｖ２ｂまたはその一部、例えば、ＮＭ＿０３３０７１．３、ＮＭ＿１８２９６１．３で示されるＳｙｎｅ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１３５８０５．１、ＮＭ＿００１１３５８０６．１、ＮＭ＿００５６３９．２で示されるＳｙｔ１またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１３６５０４．１、ＮＭ＿１７７４０２．４で示されるＳｙｔ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１１６０３２８．１、ＮＭ＿００１１６０３２９．１、ＮＭ＿０３２２９８．２で示されるＳｙｔ３またはその一部、例えば、ＮＭ＿００１０２４８４７．２、ＮＭ＿００３２４２．５で示されるＴｇｆｂｒ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿０００４６１．４、ＮＭ＿００１１２８１７６．２、ＮＭ＿００１１２８１７７．１、ＮＭ＿００１２５２６３４．１で示されるＴｈｒｂまたはその一部、例えば、ＮＭ＿００４６２１．５で示されるＴｒｐｃ６またはその一部、例えば、ＮＭ＿０１４２３２．２で示されるＶａｍｐ２またはその一部、例えば、ＮＭ＿０３０７５３．４で示されるＷｎｔ３またはその一部および／または、例えば、ＮＭ＿０１４８３８．２で示されるＺｂｅｄ４またはその一部）にハイブリダイズすることができる単離ポリヌクレオチド（例えば、ポリヌクレオチドプローブ、オリゴヌクレオチドプローブ／プライマー）を使って決定することができる。このようなポリヌクレオチドはどのようなサイズ、例えば、短いポリヌクレオチド（例えば、１５〜２００塩基）および中間的なポリヌクレオチド（例えば、２００〜２０００塩基）、または、２０００塩基より大きい長いポリヌクレオチドも可能である。

本発明によって使用される単離ポリヌクレオチドプローブは、本発明の標的遺伝子ＲＮＡ転写物に対して特異的である直接的または間接的に標識されたＲＮＡ分子（例えば、ＲＮＡオリゴヌクレオチド、インビトロ転写されたＲＮＡ分子）、ＤＮＡ分子（例えば、オリゴヌクレオチド、ｃＤＮＡ分子、ゲノム分子）および／またはそれらの類似体［例えば、ペプチド核酸（ＰＮＡ）］のいずれであってもよい。

本発明の教示に従って設計されるオリゴヌクレオチドは、本明細書中上記で詳しく記載されているように、当該技術分野で知られている任意のオリゴヌクレオチド合成法により生成することができる。

本発明のオリゴヌクレオチドは、本明細書中上記される配列変化体との特異的なハイブリダイズが可能な少なくとも１７塩基、少なくとも１８塩基、少なくとも１９塩基、少なくとも２０塩基、少なくとも２２塩基、少なくとも２５塩基、少なくとも３０塩基、または、少なくとも４０塩基のオリゴヌクレオチドである。

本発明のオリゴヌクレオチドは、３’から５’へのホスホジエステル連結で結合する、プリン塩基およびピリミジン塩基からなる複素環式ヌクレオシドを含むことができる。

好ましくは、使用されるオリゴヌクレオチドは、本明細書中上記で広範に記載されているように、骨格（例えば、糖リン酸骨格）、ヌクレオシド間結合および／または塩基のいずれかにおいて修飾されたオリゴヌクレオチドである。

本発明によって使用される単離ポリヌクレオチドは、タグ分子または標識分子を使用して直接的または間接的に標識することができる。このような標識は、例えば、蛍光性分子（例えば、フルオレセインまたはＴｅｘａｓＲｅｄ）、放射性分子（例えば、３２Ｐ−γ−ＡＴＰまたは３２Ｐ−α−ＡＴＰ）および発色性基質［例えば、ファストレッド、ＢＣＩＰ／ＩＮＴ、（ＡＢＣＡＭ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＭＡから入手可能である）］であってよい。直接的な標識は、標識分子を（例えば、固相合成を使用して）ポリヌクレオチドに共有結合によりコンジュゲートすることによって、または、（例えば、インビトロ転写反応またはランダムプライム標識を使用する）重合を介した取り込みによって達成することができる。間接的な標識は、標識されていないタグ分子（例えば、ジゴキシゲニンまたはビオチン）をポリヌクレオチドに共有結合的にコンジュゲートし、または取り込み、続いて、このポリヌクレオチドを、その標識されていないタグを特異的に認識することができる標識された分子（抗ジゴキシゲニン抗体またはストレプトアビジン）に結合させることによって達成することができる。

上記のポリヌクレオチドは様々なＲＮＡ検出方法において用いることができ、例えば、ノーザンブロット分析、逆転写ＰＣＲ（ＲＴ−ＰＣＲ）［例えば、半定量的ＲＴ−ＰＣＲ、定量的ＲＴ−ＰＣＲ、例えば、ＬｉｇｈｔＣｙｃｌｅｒ（商標）（Ｒｏｃｈｅ）を使用］、ＲＮＡインサイツハイブリダイゼーション（ＲＮＡ−ＩＳＨ）、インサイツＲＴ−ＰＣＲ染色［例えば、ＮｕｏｖｏＧＪ，ｅｔａｌ．１９９３，Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎｏｆｐｏｌｙｍｅｒａｓｅｃｈａｉｎｒｅａｃｔｉｏｎ（ＰＣＲ）−ａｍｐｌｉｆｉｅｄｈｅｐａｔｉｔｉｓＣｃＤＮＡ．ＡｍＪＳｕｒｇＰａｔｈｏｌ．１７：６８３−９０、およびＫｏｍｍｉｎｏｔｈＰ，ｅｔａｌ．１９９４，ＥｖａｌｕａｔｉｏｎｏｆｍｅｔｈｏｄｓｆｏｒｈｅｐａｔｉｔｉｓＣｖｉｒｕｓｄｅｔｅｃｔｉｏｎｉｎａｒｃｈｉｖａｌｌｉｖｅｒｂｉｏｐｓｉｅｓ．Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｏｆｈｉｓｔｏｌｏｇｙ，ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，ｉｎｓｉｔｕｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ，ｒｅｖｅｒｓｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅｐｏｌｙｍｅｒａｓｅｃｈａｉｎｒｅａｃｔｉｏｎ（ＲＴ−ＰＣＲ）ａｎｄｉｎｓｉｔｕＲＴ−ＰＣＲ．ＰａｔｈｏｌＲｅｓＰｒａｃｔ．，１９０：１０１７−２５に記載］、および、オリゴヌクレオチドマイクロアレイ分析［例えば、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘマイクロアレイ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ（登録商標）、ＳａｎｔａＣｌａｒａ，ＣＡ）を使用］などにおいて用いることができる。

標的遺伝子（例えば、Ｓｌｃ６ａ４、Ｈｔｒ１ａ、ＭａｏＡ、Ａｄｒｂ１、Ａｄｒｂ２、ＣＲＨｔｙｐｅ１ｒｅｃｅｐｔｏｒ、ＣＢ１、ＦＫＢＰ５、Ｔｐｈ２、Ｇｒｍ１、Ｇｒｉｋ３、Ｇｒｍ５、Ｇｒｉｋ２、Ｇｒｍ７、Ｇｒｉａ２、Ｄｓｃａｍ、Ｌ１ｃａｍ、Ｔｓｎａｘ、Ｓｇｋ１、Ｓｔｘ１ａ、Ａｄｃｙａｐ１、Ａｄｃｙａｐ１ｒ１、Ａｄｒａ２ａ、Ａｎｋ３、Ａｒｃ、Ａｒｈｇａｐ６、Ａｔｆ３、Ｂａｃｅ１、Ｃａｃｎａ１ｄ、Ｃａｄｍ３、Ｃｐｌｘ１、Ｃｐｌｘ２、Ｃｓｍｄ１、Ｃｓｎｋ１ｇ１、Ｄｃｘ、Ｄｉｒａｓ２、Ｄｌｇ２、Ｅｌｋ１、Ｆｒｋ、Ｆｕｔ９、Ｇａｂｒｂ２、Ｇａｔａ３、Ｇｈｓｒ、Ｇｐｒ３、Ｇｒｉａ３、Ｇｒｋ５、Ｇｓｋ３ｂ、Ｈｃｎ１、Ｈｃｎ２、Ｉｍｐａ１、Ｋａｌｒｎ、Ｋｃｎｎ３、Ｋｐｎａ３、Ｍｙｔ１ｌ、Ｎｃｏａ２、Ｎｄｒｇ４、Ｎｏｓ１ａｐ、Ｎｒ３ｃ２、Ｎｔｎｇ１、Ｎｕｃｋｓ１、Ｐｄｅ１ａ、Ｐｄｅ４ａ、Ｐｄｅ８ｂ、Ｐｌｃｂ１、Ｐｒｌｒ、Ｒａｂ１ｂ、Ｒａｐ２ａ、Ｒｏｒｂ、Ｓｉｒｔ１、Ｓｌｃ１２ａ６、Ｓｌｃ５ａ７、Ｓｐ１、Ｓｖ２ｂ、Ｓｙｎｅ１、Ｓｙｔ１、Ｓｙｔ２、Ｓｙｔ３、Ｔｇｆｂｒ２、Ｔｈｒｂ、Ｔｒｐｃ６、Ｖａｍｐ２、Ｗｎｔ３および／またはＺｂｅｄ４）アミノ酸配列（例えば、タンパク質）の存在および／またはレベルは、例えば、免疫複合体［すなわち、生物試料中に存在する標的遺伝子抗原（アミノ酸配列）と、特異的抗体との間で形成された複合体］の形成を介した特異的抗体を使って決定することができる。

本発明の免疫複合体は、使用される方法および生物学的試料に応じて変化する場合がある様々な温度、塩濃度およびｐＨ値で形成することができ、当業者は、それぞれの免疫複合体の形成のために好適な条件を調節することができる。

本明細書で使用される用語「抗体」は、完全な抗体分子、ならびにその機能的な断片、例えば、Ｆａｂ、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆｖ、または単一ドメイン分子、例えば抗原のエピトープに対するＶＨおよびＶＬを含む。これらの機能性抗体断片は次のように定義される：（１）Ｆａｂ、完全な軽鎖および１つの重鎖の一部が得られる全長抗体の酵素パパインによる消化により生成することができる抗体分子の一価の抗原結合断片を含む断片；（２）Ｆａｂ’、全長抗体をペプシンで処理した後、還元して、抗体分子当たり、完全な軽鎖および重鎖の一部を生じさせて得ることができる抗体分子の断片；（３）（Ｆａｂ’）２、全長抗体を酵素ペプシンで処理し、その後の還元を行わないで得ることができる抗体の断片；（Ｆａｂ’）２は、２つのジスルフィド結合により保持されている２つのＦａｂ’断片のダイマーである；（４）Ｆｖ、二本鎖として発現された、軽鎖の可変領域および重鎖に可変領域を含む遺伝子組み換えされた断片と定義される；（５）単鎖抗体（「ＳＣＡ」）、適切なポリペプチドリンカーにより遺伝的に融合された単鎖分子として連結された軽鎖の可変領域および重鎖の可変領域を含む遺伝子組み換えされた分子；および（６）単一ドメイン抗体は、抗原に対し十分な親和性を示す単一ＶＨまたはＶＬドメインから構成される。

本発明による抗体断片は、抗体のタンパク質分解的加水分解によって調製することができ、あるいは、断片をコードするＤＮＡの大腸菌または哺乳動物細胞（例えば、チャイニーズハムスター卵巣細胞培養または他のタンパク質発現システム）における発現によって調製することができる。抗体断片は、従来の方法による全長抗体のペプシン消化またはパパイン消化によって得ることができる。例えば、抗体断片は、抗体をペプシンで酵素切断して、Ｆ（ａｂ’）２として示される５Ｓ断片を得ることによって作製することができる。この断片は、チオール還元剤、および場合により、ジスルフィド連結の切断から生じるスルフヒドリル基に対する保護基を使用してさらに切断して、３．５ＳのＦａｂ’一価断片を作製することができる。あるいは、ペプシンを使用する酵素切断により、２つの一価Ｆａｂ’断片およびＦｃ断片が直接的に得られる。これらの方法は、例えば、Ｇｏｌｄｅｎｂｅｒｇの米国特許第４，０３６，９４５号および同第４，３３１，６４７号、ならびにそれらに含まれる参考文献に記載されている（これらの特許は参照によりその全体が本明細書に組み込まれる）。また、Ｐｏｒｔｅｒ，Ｒ．Ｒ．，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．，７３：１１９〜１２６，１９５９も参照されたい。抗体を切断する他の方法、例えば、一価の軽鎖−重鎖断片を形成させるための重鎖の分離、断片のさらなる切断、または他の酵素的、化学的もしくは遺伝学的な技術などもまた、断片が、完全な抗体によって認識される抗原に結合する限り、使用することができる。

Ｆｖ断片はＶＨ鎖およびＶＬ鎖の会合を含む。この会合は、Ｉｎｂａｒｅｔａｌ．［Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ’ｌＡｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ６９：２６５９−６２（１９７２０］に記載されているように非共有結合性であってよい。あるいは、可変鎖を、分子間ジスルフィド結合によって連結することができ、または、グルタルアルデヒドなどの化学薬品によって架橋することができる。好ましくは、Ｆｖ断片は、ペプチドリンカーによって連結されたＶＨ鎖およびＶＬ鎖を含む。これらの単鎖抗原結合タンパク質（ｓｃＦｖ）は、オリゴヌクレオチドによりつながれたＶＨドメインおよびＶＬドメインをコードするＤＮＡ配列を含む構造遺伝子を構築することによって調製される。この構造遺伝子は発現ベクターに導入され、続いて、発現ベクターは大腸菌などの宿主細胞に導入される。組換え宿主細胞により、２つのＶドメインを架橋するリンカーペプチドを有する単一ポリペプチド鎖が合成される。ｓｃＦｖを製造するための様々な方法が、例えば、ＷｈｉｔｌｏｗａｎｄＦｉｌｐｕｌａ，Ｍｅｔｈｏｄｓ２：９７−１０５（１９９１）；Ｂｉｒｄｅｔａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ２４２：４２３−４２６（１９８８）；Ｐａｃｋｅｔａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ１１：１２７１−７７（１９９３）；および米国特許第４，９４６，７７８号（この特許は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる）に記載されている。

抗体断片の別の形態は、単一の相補性決定領域（ＣＤＲ）をコードするペプチドである。ＣＤＲペプチド（「最小認識ユニット」）は、目的とする抗体のＣＤＲをコードする遺伝子を構築することによって得ることができる。このような遺伝子は、例えば、抗体産生細胞のＲＮＡから可変領域を合成するためにポリメラーゼ連鎖反応を使用することによって調製される。例えば、ＬａｒｒｉｃｋおよびＦｒｙの［Ｍｅｔｈｏｄｓ，２：１０６−１０（１９９１）］を参照されたい。

抗体はまた、ファージディスプレーライブラリー［ＨｏｏｇｅｎｂｏｏｍａｎｄＷｉｎｔｅｒ，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２７：３８１（１９９１）；Ｍａｒｋｓｅｔａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２２：５８１（１９９１）］を含む、この分野で知られている様々な技術を使用して製造することができる。ＣｏｌｅらおよびＢｏｅｒｎｅｒらの技術もまた、ヒトモノクローナル抗体を調製するために利用することができる［Ｃｏｌｅｅｔａｌ．，ＭｏｎｏｃｌｏｎａｌＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓａｎｄＣａｎｃｅｒＴｈｅｒａｐｙ，ＡｌａｎＲ．Ｌｉｓｓ，ｐ．７７（１９８５）およびＢｏｅｒｎｅｒｅｔａｌ．，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．，１４７（１）：８６−９５（１９９１）］。同様に、ヒト免疫グロブリン遺伝子座を、内在性免疫グロブリン遺伝子が部分的または完全に不活性化されている遺伝子組換え動物（例えば、マウス）に導入することによって作製することができる。抗原投与したとき、ヒト抗体の産生が認められ、この場合、その産生は、遺伝子再配置、組み立ておよび抗体レパートリーを含むすべての点に関してヒトにおいて見られる産生と非常に似ている。この方法は、例えば、米国特許第５，５４５，８０７号、同第５，５４５，８０６号、同第５，５６９，８２５号、同第５，６２５，１２６号、同第５，６３３，４２５号、同第５，６６１，０１６号、および下記の科学的刊行物：Ｍａｒｋｓｅｔａｌ．，Ｂｉｏ／Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ１０，：７７９−７８３（１９９２）；Ｌｏｎｂｅｒｇｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅ３６８：８５６−８５９（１９９４）；Ｍｏｒｒｉｓｏｎ，Ｎａｔｕｒｅ３６８８１２−１３（１９９４）；Ｆｉｓｈｗｉｌｄｅｔａｌ．，ＮａｔｕｒｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ１４，８４５−５１（１９９６）；Ｎｅｕｂｅｒｇｅｒ，ＮａｔｕｒｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ１４：８２６（１９９６）；およびＬｏｎｂｅｒｇａｎｄＨｕｓｚａｒ，Ｉｎｔｅｒｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３，６５−９３（１９９５）に記載されている。

本発明により使用できる代表的な抗体には、例えば、下記の抗体が含まれる：例えば、ＡｂｎｏｖａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、ＡｂｇｅｎｔおよびＭＢＬＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌから入手可能な抗Ｓｌｃ６ａ４抗体；例えば、ＮｏｖｕｓＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｓ、ＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨおよびＡｂｎｏｖａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから入手可能な抗Ｈｔｒ１ａ抗体；例えば、ＡｂｎｏｖａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ、ＰｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈＧｒｏｕｐ，Ｉｎｃ．およびＡｂｇｅｎｔから入手可能な抗ＭａｏＡ抗体；例えば、Ｂｉｏｒｂｙｔ、Ａｂｇｅｎｔ、および、ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ−ｏｎｌｉｎｅから入手可能な抗Ａｄｒｂ１抗体；例えば、ＴｏｃｒｉｓＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、ＡｂｎｏｖａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎおよびａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ−ｏｎｌｉｎｅから入手可能な抗Ａｄｒｂ２抗体；例えば、ＭｙＢｉｏＳｏｕｒｃｅ．ｃｏｍ、ＡｂｃａｍおよびＮｏｖｕｓＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｓから入手可能な抗ＣＲＨ１型受容体抗体；例えば、ＳａｎｔａＣｒｕｚＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｉｎｃ．およびＥｐｉｔｏｍｉｃｓ，Ｉｎｃ．から入手可能な抗ＣＢ１抗体；例えば、ＢＤＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓおよびＡｂｎｏｖａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから入手可能な抗ＦＫＢＰ５抗体；例えば、ＮｏｖｕｓＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｓおよびＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨから入手可能な抗Ｔｐｈ２抗体；例えば、ＮｏｖｕｓＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｓおよびＢｉｏｒｂｙｔから入手可能な抗Ｇｒｍ１抗体；例えば、ＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨおよびＡｔｌａｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓから入手可能な抗Ｇｒｉｋ３抗体；例えば、ＢｉｏｒｂｙｔおよびＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨから入手可能な抗Ｇｒｍ５抗体；例えば、ＰｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈＧｒｏｕｐ，Ｉｎｃ．，ＡｖｉｖａＳｙｓｔｅｍｓＢｉｏｌｏｇｙおよびＡｂｇｅｎｔから入手可能な抗Ｇｒｉｋ２抗体；例えば、ＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨおよびａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ−ｏｎｌｉｎｅから入手可能な抗Ｇｒｍ７抗体；例えば、ＰｒｏｔｅｉｎｔｅｃｈＧｒｏｕｐ，Ｉｎｃ．およびＡｂｎｏｖａＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから入手可能な抗Ｇｒｉａ２抗体；例えば、ＮｏｖｕｓＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｓおよびＲ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓから入手可能な抗Ｄｓｃａｍ抗体；例えば、ＧｅｎｅＴｅｘ，ＮｏｖｕｓＢｉｏｌｏｇｉｃａｌｓおよびＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨから入手可能な抗Ｌ１ｃａｍ抗体；例えば、ＢＤＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓおよびＧｅｎＷａｙＢｉｏｔｅｃｈ，Ｉｎｃ．から入手可能な抗Ｔｓｎａｘ抗体；例えば、Ｅｐｉｔｏｍｉｃｓ，Ｉｎｃ．およびＡｃｒｉｓＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓＧｍｂＨから入手可能な抗Ｓｇｋ１抗体；ならびに／または、例えば、ＭＢＬＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌおよびＳｐｒｉｎｇＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅから入手可能な抗Ｓｔｘ１ａ抗体。

本発明の免疫複合体の形成を検出するために様々な方法を使用することができ、当業者は、どの方法が、それぞれの免疫複合体のために、および／または、診断に使用される細胞の型のために好適であるかを決定することができる。

本発明の免疫複合体に使用される特異的抗体（例えば、抗Ｓｌｃ６ａ４抗体；抗Ｈｔｒ１ａ抗体；抗ＭａｏＡ抗体；抗Ａｄｒｂ１抗体；抗Ａｄｒｂ２抗体；抗ＣＲＨ１型受容体抗体；抗ＣＢ１抗体；抗ＦＫＢＰ５抗体；抗Ｔｐｈ２抗体；抗Ｇｒｍ１抗体；抗Ｇｒｉｋ３抗体；抗Ｇｒｍ５抗体；抗Ｇｒｉｋ２抗体；抗Ｇｒｍ７抗体；抗Ｇｒｉａ２抗体；抗Ｄｓｃａｍ抗体；抗Ｌ１ｃａｍ抗体；抗Ｔｓｎａｘ抗体；抗Ｓｇｋ１抗体および／または抗Ｓｔｘ１ａ抗体）は当該技術分野において既知の方法を使用して標識することができる。標識抗体は、一次抗体（すなわち、特定の抗原、例えば、標的遺伝子特異的抗原に結合する抗体）であっても、または、一次抗体に結合する二次抗体（例えば、標識ヤギ抗ウサギ抗体、標識マウス抗ヒト抗体）であってもよいことは理解されよう。抗体は標識に直接にコンジュゲートすることができ、または、酵素にコンジュゲートすることができる。

本発明の抗体は、（抗体にコンジュゲート化された蛍光性色素を使用して）蛍光標識することができ、または、（例えば、放射能標識された、例えば、１２５Ｉ抗体を使用して）放射能標識することができ、または、酵素（例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ）にコンジュゲートすることができ、比色反応を生じさせるための発色性基質と一緒に使用することができる。本発明の酵素コンジュゲート抗体によって利用される発色性基質には、ＡＥＣ、ファストレッド、ＥＬＦ−９７基質［２−（５’−クロロ−２−ホスホリルオキシフェニル）−６−クロロ−４（３Ｈ）−キナゾリノン］、ｐ−ニトロフェニルホスフェート（ＰＮＰＰ）、フェノールフタレインジホスフェート、およびＥＬＦ３９−ホスフェート、ＢＣＩＰ／ＩＮＴ、ＶｅｃｔｏｒＲｅｄ（ＶＲ）、アルカリホスファターゼ酵素のためのサーモン・マゼンタホスフェート（ＡｖｉｖｉＣ．，ｅｔａｌ．，１９９４，ＪＨｉｓｔｏｃｈｅｍ．Ｃｙｔｏｃｈｅｍ．１９９４；４２：５５１−４）、および、ＮｏｖａＲｅｄ、ジアミノベンジジン（ＤＡＢ）、Ｖｅｃｔｏｒ（Ｒ）ＳＧ基質、ペルオキシダーゼ酵素のためのルミノール型化学発光基質が含まれるが、これらに限定されない。これらの酵素基質は、Ｓｉｇｍａ（ＳｔＬｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ）、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＰｒｏｂｅｓＩｎｃ．（Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ，ＵＳＡ）、ＶｅｃｔｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｃ．（Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ，ＣＡ，ＵＳＡ）、ＺｙｍｅｄＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｃ．（ＳａｎＦｒａｎｃｉｓｃｏ，ＣＡ，ＵＳＡ），ＤａｋｏＣｙｔｏｍａｔｉｏｎ（Ｄｅｎｍａｒｋ）から市販されている。

可溶性の（例えば、分泌された、排出された）標的遺伝子ポリペプチドを含有する可能性のある生物学的試料（例えば、血液試料または血清など）の免疫複合体の検出は、蛍光活性化細胞分取（ＦＡＣＳ）、酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）、ウエスタンブロット分析および放射免疫アッセイ（ＲＩＡ）分析、免疫沈殿（ＩＰ）を使用して行うことができ、または、分子量に基づく手法により行うことができる。

ウエスタンブロットでは、タンパク質が細胞試料から抽出され、電気泳動（例えば、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）および膜（例えば、ナイロンまたはＰＶＤＦ）へのブロッティングに供される。次に、膜は、直接に標識するか、または２次標識抗体に結合することができる特異的抗体（例えば、抗Ｓｌｃ６ａ４抗体；抗Ｈｔｒ１ａ抗体；抗ＭａｏＡ抗体；抗Ａｄｒｂ１抗体；抗Ａｄｒｂ２抗体；抗ＣＲＨ１型受容体抗体；抗ＣＢ１抗体；抗ＦＫＢＰ５抗体；抗Ｔｐｈ２抗体；抗Ｇｒｍ１抗体；抗Ｇｒｉｋ３抗体；抗Ｇｒｍ５抗体；抗Ｇｒｉｋ２抗体；抗Ｇｒｍ７抗体；抗Ｇｒｉａ２抗体；抗Ｄｓｃａｍ抗体；抗Ｌ１ｃａｍ抗体；抗Ｔｓｎａｘ抗体；抗Ｓｇｋ１抗体および／または抗Ｓｔｘ１ａ抗体）と相互作用する。検出は、オートラジオグラフィー、比色反応または化学発光によって行うことができる。この方法は、基質の量の定量化と、電気泳動期間中のアクリルアミドゲルにおける移動距離を示す膜上の相対的位置によるその固有の特性の決定との両方を可能にする。

生物学的試料中の抗原の濃度が低い場合、抗原（標的遺伝子アミノ酸配列）の検出を免疫沈殿（ＩＰ）によって行うことができる。免疫沈殿分析では、特異的抗体（例えば、抗Ｓｌｃ６ａ４抗体；抗Ｈｔｒ１ａ抗体；抗ＭａｏＡ抗体；抗Ａｄｒｂ１抗体；抗Ａｄｒｂ２抗体；抗ＣＲＨ１型受容体抗体；抗ＣＢ１抗体；抗ＦＫＢＰ５抗体；抗Ｔｐｈ２抗体；抗Ｇｒｍ１抗体；抗Ｇｒｉｋ３抗体；抗Ｇｒｍ５抗体；抗Ｇｒｉｋ２抗体；抗Ｇｒｍ７抗体；抗Ｇｒｉａ２抗体；抗Ｄｓｃａｍ抗体；抗Ｌ１ｃａｍ抗体；抗Ｔｓｎａｘ抗体；抗Ｓｇｋ１抗体および／または抗Ｓｔｘ１ａ抗体）は、標的遺伝子ポリペプチドを含む試料（例えば、細胞溶解物）と直接に相互作用することができ、形成された複合体をさらに、ビーズにコンジュゲートした二次抗体を使用して検出することができる（例えば、特異的抗体がマウスモノクローナル抗体である場合、二次抗体は、例えば、Ｓｅｐｈａｒｏｓｅビーズにコンジュゲートした抗マウス抗体であってよい）。次に、ビーズを遠心分離によって沈殿させることができ、その後、沈殿したタンパク質（例えば、標的遺伝子ポリペプチドおよび特異的抗体）を、（例えば、９５℃での変性を使用して）ビーズから引き離し、さらに、抗体を使用するウエスタンブロット分析に供することができる。あるいは、特異的抗体およびビーズコンジュゲート二次抗体を、抗原（標的遺伝子ポリペプチド）を含有する生物学的試料に加え、それにより、免疫複合体を形成させることができる。あるいは、標的遺伝子ポリペプチドが高グリコシル化タンパク質である場合、標的遺伝子ポリペプチドはまた、ビーズに同様にコンジュゲート可能なグリコシル化ポリペプチドと結合することができる基質、例えば、コンカバリンＡ（ＧＥＨｅａｌｔｈｃａｒｅＢｉｏ−Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｕｐｐｓａｌａ，Ｓｗｅｄｅｎ）などを使用して沈殿させることができ、その後、上述の特異的抗体を使用するウエスタンブロット分析を行うことができる。

ＦＡＣＳ分析は、細胞膜上に存在する抗原の検出を可能にする。簡単に説明すると、上記のような特異的抗体が蛍光団に連結され、検出は、細胞が光ビームを通過する際にそれぞれの細胞から放射される光の波長を読み取る細胞分取装置によって行われる。この方法では、２つ以上の抗体を同時に用いることができる。

標的遺伝子ポリペプチドの存在および／またはレベルはまた、ＥＬＩＳＡを使用して求めることもできる。簡単に説明すると、標的遺伝子抗原を含有する試料が表面（例えば、マイクロタイタープレートのウエルなど）に固定される。酵素に結合した抗原特異的抗体（例えば、抗Ｓｌｃ６ａ４抗体；抗Ｈｔｒ１ａ抗体；抗ＭａｏＡ抗体；抗Ａｄｒｂ１抗体；抗Ａｄｒｂ２抗体；抗ＣＲＨ１型受容体抗体；抗ＣＢ１抗体；抗ＦＫＢＰ５抗体；抗Ｔｐｈ２抗体；抗Ｇｒｍ１抗体；抗Ｇｒｉｋ３抗体；抗Ｇｒｍ５抗体；抗Ｇｒｉｋ２抗体；抗Ｇｒｍ７抗体；抗Ｇｒｉａ２抗体；抗Ｄｓｃａｍ抗体；抗Ｌ１ｃａｍ抗体；抗Ｔｓｎａｘ抗体；抗Ｓｇｋ１抗体および／または抗Ｓｔｘ１ａ抗体）は、抗原に適用され、抗原に結合することができる。その後、抗体の存在は、抗体に結合された酵素を用いる比色反応によって検出され、定量される。この方法において一般に用いられる酵素には、西洋ワサビペルオキシダーゼおよびアルカリホスファターゼが含まれる。十分に校正され、また、応答の直線の範囲内である場合は、試料に存在する基質の量は、生成される色の量に比例する。一般に、定量精度を改善するために、基質標準が用いられる。

標的遺伝子ポリペプチドの存在および／またはレベルはまた、放射免疫アッセイ（ＲＩＡ）を使用して求めることができる。１つの形式では、この方法は、所望の抗原（標的遺伝子ポリペプチド）を、特異的抗体と、沈殿可能なキャリア（例えば、アガロースビーズなど）に固定化されている放射標識抗体結合タンパク質（例えば、Ｉ１２５により標識されたプロテインＡ）による沈殿を伴う。沈殿したペレットのカウント数は抗原の量に比例する。

ＲＩＡの代替方式では、標識抗原と、非標識抗体結合タンパク質とが用いられる。未知量の抗原を含有する試料が様々な量で加えられる。標識された抗原から得られる沈殿したカウント数の減少が添加試料における抗原の量に比例している。

標的遺伝子ポリペプチドの存在および／またはレベルはまた、分子量に基づく手法を使用して求めることができる。免疫複合体は、その成分よりも大きい分子量を示すので、分子量のそのような変化を検出することが可能な方法も用いることができる。例えば、免疫複合体をゲル遅延度アッセイによって検出することができる。簡単に説明すると、非変性アクリルアミドゲルに、試料を加える。その成分と比較した場合のタンパク質産物の大きさ（分子量）の変化により、免疫複合体の存在が示される。高分子量側へのこのようなシフトを、非特異的タンパク質染色（例えば、銀染色またはクーマシー（Ｃｏｍｍａｓｓｉｅ）ブルー染色）を使用して見ることができる。

組織切片（例えば、パラフィン包埋物または凍結切片などの生物試料中の標的遺伝子ポリペプチドのインサイツ検出を、細胞上の抗体の結合をインサイツで検出する免疫学的染色法を使用して行うことができる。免疫学的染色手順の方法には、蛍光標識免疫組織化学（抗体にコンジュゲートされた蛍光色素を使用する）、放射能標識免疫組織化学（放射能標識された（例えば、１２５Ｉ）抗体を使用する）、および、免疫細胞化学［酵素（例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼまたはアルカリホスファターゼ）と発色性基質とを使用し、比色反応を生じさせる］が含まれるが、これらに限定されない。抗体にコンジュゲートされた酵素は、本明細書中上に記載されるような様々な発色性基質を利用できることは理解されよう。

好ましくは、本発明によって使用される免疫学的染色は免疫組織化学および／または免疫細胞化学である。

免疫学的染色の後に、染色されなかった細胞区画に結合する色素を使用して、細胞の対比染色が行われるのが好ましい。例えば、標識抗体が、細胞質に存在する抗原に結合する場合、核染色（例えば、ヘマトキシリン−エオシン染色）が適切な対比染色である。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−１８１および／またはｍｉＲ−２７のダウンレギュレーション後にＴｐｈ２遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−１３５および／またはｍｉＲ−３３５のアップレギュレーション後に、Ｓｌｃ６ａ４遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−１３５、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２および／またはｍｉＲ−２６のアップレギュレーション後にＨｔｒ１ａ遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−２７のアップレギュレーション後に、ＭａｏＡ遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−１９のアップレギュレーション後に、Ａｄｒｂ１遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ＣＢ１をアップレギュレーションした後にＣＢ１遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−１５のアップレギュレーション後に、ＣＲＨ１型受容体遺伝子の発現を測定することを含む。

一実施形態では、方法は、ｍｉＲ−１５のアップレギュレーション後に、ＦＫＢＰ５遺伝子の発現を測定することを含む。

本明細書で上述したように、本発明者らは、ｍｉＲ−１３５のレベルが、（健康なヒト対象に比較して）うつ病、不安症、双極性障害およびストレスを含む気分障害のヒト対象の血液試料中で有意にダウンレギュレーションされ、また、（処置の開始前の同じ対象または非処置ヒト対象に比べて）抗うつ療法で処置されているヒト対象の血液試料中でアップレギュレーションされることをさらに認識した。

したがって、診断を必要としているヒト対象の気分障害を診断する方法であって、ヒト対象の生物試料中のｍｉＲ−１３５の発現レベルを測定することを含む方法が提供され、健康なヒト対象の生物試料中に比べて、ｍｉＲ−１３５のより低い発現レベルが、気分障害を示す。

本発明にしたがって、いずれの気分障害も診断することができ、気分障害には、双極性障害、うつ病、大うつ病、不安症、ストレス、疲労、認知機能障害、パニック発作、強迫行動、嗜癖、社会恐怖症、統合失調症、睡眠障害、および摂食障害（例えば、神経性食欲不振症、神経性過食症、特定不能の摂食障害、気晴らし食い症候群（ＢＥＤ）または異食症摂食障害）が含まれるが、これらに限定されない。

ｍｉＲ−１３５（例えば、ｍｉＲ−１３５ａ）の発現レベルの測定は通常、生物試料で行われる。

特定の実施形態では、「生物試料」という用語は、体液、例えば、新鮮な全血、分画全血、血漿、血清、脳脊髄液（ＣＳＦ）、尿、リンパ液、および呼吸、腸および尿生殖路の各種外分泌物、涙液、唾液、乳汁、ならびに単核細胞（例えば、リンパ球、単球、樹状細胞）を含む白血球を意味する。

通常、全血および分画全血（すなわち、例えば、遠心分離により別々の成分に分画された血液試料）は、血漿、白血球、血小板および赤血球を含むすべての血液成分を含む。血清は、血液細胞でもなく、凝固因子でもない血液成分であり、血漿からフィブリノーゲンを除いたものである。血清は、血液凝固（凝結）に使用されないタンパク質、および電解質、抗体、抗原、ホルモン、ならびに外因性の物質（例えば、薬物および微生物）を含む。さらに、血漿は、凝固因子の他に、血清の全ての成分を含む。

特定の実施形態では、生物試料は全血試料である。

特定の実施形態では、生物試料は血清または血漿試料である。

特定の実施形態では、生物試料は単核細胞試料である。

特定の実施形態では、生物試料は赤血球を欠いている。

特定の実施形態では、生物試料は少なくとも９０％が白血球（例えば、少なくとも９０％が単核細胞）である。

ｍｉＲ−１３５の発現レベルの測定は、当業者に知られているいずれかの方法によって、例えば、ノーザンブロット分析、ＲＮアーゼ保護アッセイおよびＰＣＲ（例えば、リアルタイムＰＣＲ）によって行うことができる。

上述のように、健康なヒト対象（すなわち、気分障害に罹患していない対象）の生物試料中に比べて、低いｍｉＲ−１３５の発現レベルは、気分障害を示す。

一実施形態では、健康なヒト対象の生物試料中に比べて、低いｍｉＲ−１３５の発現レベルは、統計的に有意である。

気分障害のヒト対象のｍｉＲ−１３５の発現レベルは、健康なヒト対象のレベルに比べて、約５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％だけ低い可能性がある。

診断は、ゴールドスタンダード法を使用してさらに評価し、確立することができる。通常は、患者の全病歴、身体診察、および、症状の徹底的評価のうちの少なくとも１つが、障害（うつ病または双極性障害を含む気分障害）の特定に役立つ。例えば、ハミルトンうつ病評価尺度およびベックうつ病質問票などの標準化された質問票が有益な場合がある。

双極性障害の診断は、定型基準を使ってさらに評価することができる。最も広範に使用されている双極性障害の診断基準は、米国精神医学会の精神障害の診断と統計のためのマニュアル（例えば、バージョンＤＳＭ−ＩＶ−ＴＲ）、ならびに世界保健機関の疾病および関連保健問題の国際統計分類（例えば、ＩＣＤ−１０）である。

さらに、医学的疾患、例えば、甲状腺機能低下症または甲状腺機能亢進症、代謝障害、全身感染症または慢性疾患、および梅毒またはＨＩＶ感染症を除外する検査を実施することができる。脳波を使って、てんかんを除外することができ、頭部のＣＴスキャンにより脳病変を除外することができる。

本発明者らは、ヒト対象のｍｉＲ−１３５（例えば、ｍｉＲ−１３５ａ）の血中レベルが、抗うつ剤療法後にアップレギュレーションされることをさらに示した（下記実施例セクションの実施例１６を参照されたい）。

したがって、本発明の別の実施形態では、抗うつ剤または気分障害（例えば、双極性障害）の処置用の薬物の処置をモニターする方法であって、（ａ）処置を必要とするヒト対象を抗うつ剤または気分障害の処置用の薬物により処置すること、および、（ｂ）ヒト対象の生物試料中のｍｉＲ−１３５の発現レベルを処置の前後で測定することを含む方法が提供され、抗うつ剤または気分障害の処置用薬物による処置の前におけるｍｉＲ−１３５の発現レベルと比較して、抗うつ剤による処置後におけるｍｉＲ−１３５のより高い発現レベルにより、処置が効果的であることが示される。

一実施形態では、方法は、（ｃ）ステップ（ｂ）でｍｉＲ−１３５のより高い発現レベルが観察される場合に、処置を改善するために、ヒト対象を処置することをさらに含む。

血液試料（例えば、新鮮な全血、分画全血、血漿または血清）は通常、抗うつ剤または気分障害の処置用の薬物による処置後のヒト対象から得られるが、血液試料は、ｍｉＲ−１３５レベルのさらなる比較のために処置前の対象から得ることもできる。

特定の実施形態では、ｍｉＲ−１３５はｍｉＲ−１３５ａを含む。

本明細書中で使用される場合、用語の「抗うつ剤」は、大うつ病および気分変調症などの気分障害、および社会不安障害などの不安障害を改善するために使用される薬物を意味する。代表的な抗うつ剤には、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ、例えば、シタロプラム、エスシタロプラム、フルオキセチン、フルボキサミン、パロキセチンおよびセルトラリンなど）、セロトニン−ノルエピネフリン再取り込み阻害剤（ＳＮＲＩ、例えば、デスベンラファキシン、デュロキセチン、ミルナシプランおよびベンラファキシンなど）、ノルアドレナリン作動性および特異的なセロトニン作動性抗うつ剤（例えば、ミアンセリンおよびミルタザピンなど）、ノルエピネフリン（ノルアドレナリン）再取り込み阻害剤（ＮＲＩ、例えば、アトモキセチン、マジンドール、レボキセチンおよびビロキサジンなど）、ノルエピネフリン−ドパミン再取り込み阻害剤（例えば、ブプロピオンなど）、選択的セロトニン再取り込み強化剤（例えば、チアネプチンなど）、ノルエピネフリン−ドパミン脱抑制剤（ＮＤＤＩ、例えば、アゴメラチンなど）、三環系抗うつ剤（第三級アミン三環系抗うつ剤および第二級アミン三環系抗うつ剤を含む）、および、モノアミンオキシダーゼ阻害剤（ＭＡＯＩ）が含まれるが、これらに限定されない。

本明細書で使用される場合、「気分障害の処置用の薬物」という用語は、双極性障害を含む気分障害の処置に使用されるいずれかの薬物またはそれらの薬物の任意の組み合わせを意味する。代表的薬物には、リチウム（例えば、炭酸リチウム、クエン酸リチウム、硫酸リチウム）、抗精神病薬物（例えば、上記で詳述した、定型抗精神病および非定型抗精神病）気分安定剤薬物（例えば、上記で詳述した、バルプロ酸（ＶＰＡ、バルプロ酸）、鉱物、抗けいれん薬、抗精神病薬）が含まれるが、これらに限定されない。

本方法に包含されるその他の処置選択肢（単独でまたは上記と組み合わせて）には、非薬物療法が挙げられ、この方法には、臨床心理学、電気痙攣療法、措置入院、光線療法、心理療法、経頭蓋磁気刺激および認知行動療法が含まれるが、これらに限定されない。

処置前のｍｉＲ−１３５発現レベルに比べて、処置後に有意により高いｍｉＲ−１３５の発現レベルが得られる場合には、効果的な抗うつ／気分障害処置が決定される。

処置後のヒト対象のｍｉＲ−１３５の発現レベルは、抗うつまたは気分障害処置前の対象のレベルに比べて、約５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％または１００％だけ高い可能性がある。

処置のモニタリングは、患者の満足な状態を評価することによって、また、加えて、あるいは、代わりに、対象を、行動試験、ＭＲＩ、または、当業者に既知のいずれかの他の方法に供することによって行うことも可能である。

本出願から成熟する特許の存続期間中には、多くの関連するｍｉＲＮＡの阻害剤または代替的なｍｉＲＮＡの修飾が開発されることが予想され、マイクロＲＮＡの用語の範囲は、すべてのそのような新しい技術を先験的に包含することが期待される。

本明細書中で使用される用語「約」は、±１０％を意味する。

用語の「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ、ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ、ｉｎｃｌｕｄｅｓ、ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」、「有する（ｈａｖｉｎｇ）」、およびそれらの同根語は、「含むが、それらに限定されない（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇｂｕｔｎｏｔｌｉｍｉｔｅｄｔｏ）」ことを意味する。

用語「からなる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇｏｆ）」は、「含み、それらに限定される（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇａｎｄｌｉｍｉｔｅｄｔｏ）」ことを意味する。

表現「から本質的になる（ｃｏｎｓｉｓｔｉｎｇｅｓｓｅｎｔｉａｌｌｙｏｆ）」は、さらなる成分、工程および／または部分が、主張される組成物、方法または構造の基本的かつ新規な特徴を実質的に変化させない場合にのみ、組成物、方法または構造がさらなる成分、工程および／または部分を含み得ることを意味する。

本明細書中で使用される場合、単数形（「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」）は、文脈がそうでないことを明確に示さない限り、複数の参照物を包含する。例えば、用語「化合物（ａｃｏｍｐｏｕｎｄ）」または用語「少なくとも１つの化合物」は、その混合物を含めて、複数の化合物を包含することができる。

本出願を通して、本発明の様々な実施形態を範囲形式で提示することができる。範囲形式での記載は単に便宜上および簡潔化のためであり、本発明の範囲に対する柔軟性のない限定として解釈すべきでないことを理解されたい。従って、範囲の記載は、具体的に開示された可能なすべての部分範囲、ならびに、その範囲に含まれる個々の数値を有すると見なさなければならない。例えば、１〜６などの範囲の記載は、具体的に開示された部分範囲（例えば、１〜３、１〜４、１〜５、２〜４、２〜６、３〜６など）、ならびに、その範囲に含まれる個々の数値（例えば、１、２、３、４、５および６）を有すると見なさなければならない。このことは、範囲の広さにかかわらず、適用される。

数値範囲が本明細書中で示される場合には常に、示された範囲に含まれる任意の言及された数字（分数または整数）を含むことが意図される。第１の示された数字および第２の示された数字「の範囲である／の間の範囲」という表現、および、第１の示された数字「から」第２の示された数「まで及ぶ／までの範囲」という表現は、同義に使用され、第１の示された数字と、第２の示された数字と、その間のすべての分数および整数とを含むことが意図される。

本明細書中で使用される用語「方法」は、所与の課題を達成するための様式、手段、技術および手順を意味し、これには、化学、薬理学、生物学、生化学および医学の技術分野の実施者に知られているそのような様式、手段、技術および手順、または、知られている様式、手段、技術および手順から、化学、薬理学、生物学、生化学および医学の技術分野の実施者によって容易に開発されるそのような様式、手段、技術および手順が含まれるが、それらに限定されない。

明確にするため別個の実施形態の文脈で説明されている本発明の特定の特徴が、単一の実施形態に組み合わせて提供されることもできることは分かるであろう。逆に、簡潔にするため単一の実施形態で説明されている本発明の各種の特徴は別個にまたは適切なサブコンビネーションで、あるいは本発明の他の記載される実施形態において好適なように提供することもできる。種々の実施形態の文脈において記載される特定の特徴は、その実施形態がそれらの要素なしに動作不能である場合を除いては、それらの実施形態の不可欠な特徴であると見なされるべきではない。

本明細書中上記に描かれるような、および、下記の請求項のセクションにおいて特許請求されるような本発明の様々な実施形態および態様のそれぞれは、実験的裏付けが下記の実施例において見出される。

実施例
次に下記の実施例が参照されるが、下記の実施例は、上記の説明と一緒に、本発明を非限定様式で例示する。

通常、本明細書で使用される命名法と、本発明で利用される実験方法には、分子、生化学、微生物学および組み換えＤＮＡの技術が含まれている。これらの技術は文献に詳細に説明されている。例えば以下の文献を参照されたい：”ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡｌａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ” Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔａｌ．，（１９８９）；”ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ” ＶｏｌｕｍｅｓＩ−ＩＩＩＡｕｓｕｂｅｌ，Ｒ．Ｍ．，ｅｄ．（１９９４）；Ａｕｓｕｂｅｌｅｔａｌ．，”ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ”，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙａｎｄＳｏｎｓ，Ｂａｌｔｉｍｏｒｅ，Ｍａｒｙｌａｎｄ（１９８９）；Ｐｅｒｂａｌ，”ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＧｕｉｄｅｔｏＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ”，ＪｏｈｎＷｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ（１９８８）；Ｗａｔｓｏｎｅｔａｌ．，”ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＤＮＡ”，ＳｃｉｅｎｔｉｆｉｃＡｍｅｒｉｃａｎＢｏｏｋｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ；Ｂｉｒｒｅｎｅｔａｌ．（ｅｄｓ）”ＧｅｎｏｍｅＡｎａｌｙｓｉｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌＳｅｒｉｅｓ”，Ｖｏｌｓ．１−４，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，ＮｅｗＹｏｒｋ（１９９８）；米国特許第４，６６６，８２８号；同第４，６８３，２０２号；同第４，８０１，５３１号；同第５，１９２，６５９号および同第５，２７２，０５７号に示された方法；”ＣｅｌｌＢｉｏｌｏｇｙ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＨａｎｄｂｏｏｋ”，ＶｏｌｕｍｅｓＩ−ＩＩＩＣｅｌｌｉｓ，Ｊ．Ｅ．，ｅｄ．（１９９４）；”ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ” ＶｏｌｕｍｅｓＩ−ＩＩＩＣｏｌｉｇａｎＪ．Ｅ．，ｅｄ．（１９９４）；Ｓｔｉｔｅｓｅｔａｌ．（ｅｄｓ），”ＢａｓｉｃａｎｄＣｌｉｎｉｃａｌＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ”（８ｔｈＥｄｉｔｉｏｎ），Ａｐｐｌｅｔｏｎ＆Ｌａｎｇｅ，Ｎｏｒｗａｌｋ，ＣＴ（１９９４）；ＭｉｓｈｅｌｌａｎｄＳｈｉｉｇｉ（ｅｄｓ），”ＳｅｌｅｃｔｅｄＭｅｔｈｏｄｓｉｎＣｅｌｌｕｌａｒＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ”，Ｗ．Ｈ．ＦｒｅｅｍａｎａｎｄＣｏ．，ＮｅｗＹｏｒｋ（１９８０）；利用可能なイムノアッセイは、特許および科学文献に広範囲にわたり記載されており、例えば、米国特許第３，７９１，９３２号；同第３，８３９，１５３号；同第３，８５０，７５２号；同第３，８５０，５７８号；同第３，８５３，９８７号；同第３，８６７，５１７号；同第３，８７９，２６２号；同第３，９０１，６５４号；同第３，９３５，０７４号；同第３，９８４，５３３号；同第３，９９６，３４５号；同第４，０３４，０７４号；同第４，０９８，８７６号；同第４，８７９，２１９号；同第５，０１１，７７１号および同第５，２８１，５２１号を参照されたい；“ＯｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅＳｙｎｔｈｅｓｉｓ” Ｇａｉｔ，Ｍ．Ｊ．，ｅｄ．（１９８４）；“ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄＨｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ” Ｈａｍｅｓ，Ｂ．Ｄ．，ａｎｄＨｉｇｇｉｎｓＳ．Ｊ．，ｅｄｓ．（１９８５）；“ＴｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｎｄＴｒａｎｓｌａｔｉｏｎ” Ｈａｍｅｓ，Ｂ．Ｄ．，ａｎｄＨｉｇｇｉｎｓＳ．Ｊ．，Ｅｄｓ．（１９８４）；“ＡｎｉｍａｌＣｅｌｌＣｕｌｔｕｒｅ” Ｆｒｅｓｈｎｅｙ，Ｒ．Ｉ．，ｅｄ．（１９８６）；”ＩｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄＣｅｌｌｓａｎｄＥｎｚｙｍｅｓ” ＩＲＬＰｒｅｓｓ，（１９８６）；“ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＧｕｉｄｅｔｏＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ” Ｐｅｒｂａｌ，Ｂ．，（１９８４）および“ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ” Ｖｏｌ．１−３１７，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ；“ＰＣＲＰｒｏｔｏｃｏｌｓ：ＡＧｕｉｄｅＴｏＭｅｔｈｏｄｓＡｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ”，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ＳａｎＤｉｅｇｏ，ＣＡ（１９９０）；Ｍａｒｓｈａｋｅｔａｌ．，“ＳｔｒａｔｅｇｉｅｓｆｏｒＰｒｏｔｅｉｎＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄＣｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ − ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＣｏｕｒｓｅＭａｎｕａｌ” ＣＳＨＬＰｒｅｓｓ（１９９６）；これら全ては、あたかも本明細書で完全に記載されているかのように、参照により組み込まれる。その他の一般的な文献は、本明細書全体を通して提供される。それらの文献に記載の方法は当技術分野で周知であると考えられるが、読者の便宜のために提供されている。それらの文献に含まれるすべての情報は参照により本明細書に組み込まれる。

セロトニンニューロンにおけるｍｉＲの示差的発現
材料および実験手順
５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡマイクロアレイ
ｅＰＥＴＹＦＰマウスの１２日目の胎仔由来の後脳細胞を培養し、選別して、５ＨＴニューロンを周りの非５ＨＴニューロンから区別した。ｍｉＲＮＡ集団を含む総ＲＮＡを製造者の説明書に従って精製し、標識し、ＳａｎｇｅｒｍｉＲＢａｓｅ（リリース１２．０）に基づくＡｇｉｌｅｎｔマウスｍｉＲＮＡマイクロアレイ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈ，Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，ＯＮ，Ｃａｎａｄａ）設計番号０２１８２８を使ってハイブリダイゼーションした。マイクロアレイを走査し、データを、ＦｅａｔｕｒｅＥｘｔｒａｃｔｉｏｎＳｏｆｔｗａｒｅ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して抽出し、処理した。走査後、ＧｅｎｅＶｉｅｗ．ｔｘｔファイルの強度出力データを分析して、マイクロＲＮＡの相対的発現差異を、Ｐａｒｔｅｋ（登録商標）ＧｅｎｏｍｉｃｓＳｕｉｔｅ（ＰａｒｔｅｋＩｎｃ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を使用して定量化した。データをｌｏｇ２変換し、分位数正規化し、ＧｅｎｅＶｉｅｗファイルにおけるフラグ「ｇＩｓＧｅｎｅＤｅｔｅｃｔｅｄ」に従って選別した。６６６個のマウスｍｉＲのうち、この選別工程により、１９８個がさらなる分析のために残った。その後、示差的に発現したｍｉＲを、１．５倍の変化を有意とする閾値を使ってＡＮＯＶＡにより特定した。コントラストをＡＮＯＶＡ検定の範囲内で計算した。ＢｅｎｊａｍｉｎｉおよびＨｏｃｈｂｅｒｇ補正を偽陽性低減のために使用した（多重検定補正）。

Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２ルシフェラーゼ発現プラスミドへの３’ＵＴＲのクローン化
Ｓｌｃ６ａ４、Ｈｔｒ１ａ、ＭａｏＡおよびＴｐｈ２の３’ＵＴＲ配列をマウスのゲノムＤＮＡまたは全脳ｃＤＮＡからＰＣＲ増幅した。３’ＵＴＲのＰＣＲフラグメントを製造者のガイドラインに従ってｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）に連結し、さらに、Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２レポータープラスミド（Ｐｒｏｍｅｇａ）におけるルシフェラーゼの３’末端での単一ＮｏｔＩ部位にサブクローン化した。変異３’ＵＴＲ配列（これはｍｉＲ−１３５シード配列を欠いている）を、シードマッチ配列全体にわたるプライマーオーバーハングとともに合成した。クローン化配向を診断的切断および配列決定によって確認した。

遺伝子導入およびルシフェラーゼアッセイ
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を７０％〜８５％の集密度まで４８ウエル形式でポリ−Ｌ−リシン上で成長させ、下記のプラスミドでポリエチレンイミンを使用して遺伝子導入した：５ｎｇのＰｓｉｃｈｅｃｋ２−３’ＵＴＲプラスミドおよび特定のｍｉＲＮＡのための、２１５ｎｇの過剰発現ベクター、または空のｍｉＲ−ｖｅｃ過剰発現プラスミド。遺伝子導入の２４時間後、細胞を溶解し、ルシフェラーゼレポーター活性を以前に記載のようにアッセイした［ＣｈｅｎＡ．ｅｔａｌ．ＭｏｌＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌ（２００５）１９：４４１−５８］。ウミシイタケルシフェラーゼの値を、対照のホタルルシフェラーゼ（同じベクターから転写されるが、試験されている３’ＵＴＲによって影響されない）のレベルに対して正規化し、１条件あたり６回のウエル反復を平均化した。

動物および収容
成体のＣ５７ＢＬ／６Ｊ雄マウス（１０週齢）（Ｈａｒｌａｎ，Ｊｅｒｕｓａｌｅｍ，Ｉｓｒａｅｌ）を逆の１２時間明暗周期で温度制御室（２２±１℃）に収容した。食物および水を自由に摂取させた。すべての実験プロトコルが、ＷｅｉｚｍａｎｎＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＳｃｉｅｎｃｅの実験動物委員会によって承認された。

急性拘束ストレスパラダイム
成体マウスをそれらの暗周期中に５０ｍｌの通気されたチューブに３０分間入れた。

長期社会的敗北
マウスを、以前に記載した社会的敗北プロトコルに供した［ＫｒｉｓｈｎａｎＶ．ｅｔａｌ．Ｃｅｌｌ（２００７）１３１：３９１−４０４］。簡単に説明すると、マウスを攻撃的ＩＣＲマウスのホームケージに入れ、これらのマウスは５分間にわたって物理的に相互に影響し合った。この期間中に、ＩＣＲマウスは侵入マウスを攻撃し、侵入マウスは従属的態度を示した。その後、穴の開いた透明なプレキシガラス仕切り板を動物の間に置き、マウスを、感覚的接触を可能とするために２４時間にわたって同じケージに留めた。その後、この手順を、その後の１０日のそれぞれについて、未知のＩＣＲマウスを用いて繰り返した。

抗うつ処置
マウスは、三環系のイミプラミンまたはＳＳＲＩのフルオキセチンまたはＮＲＩのレボキセチン（生理食塩水中の２０ｍｇ／ｋｇ）または生理食塩水のｉ．ｐ．注射を受けた。長期注射を１８日間〜２１日間連続して行い、急性注射を脳の顕微解剖の２４時間前に行った。

縫線核の顕微解剖および血漿収集
脳を取り出し、アクリル脳マトリックス（Ｓｔｏｅｌｔｉｎｇ）に置いた後、マウスの縫線核（ＲＮ）から脳試料を採取した。スライス片を、指定解剖学的マーカーに基づいて、標準的なカミソリ刃（ＧＥＭ）を使用して採取した。先を鈍くした１４Ｇ注射器を使用して、ＲＮ領域を、マトリックスから取り出された３ｍｍのスライス片から抜き取った。加えて、体幹血液を、凝固を避けるためにＥＤＴＡ含有チューブに集めた。遠心分離を３，５００ｇ、４℃で３０分間行った後、血漿を分離し、ＲＮＡ精製まで−７０℃で保持した。

マイクロＲＮＡの精製および定量ＲＴ−ＰＣＲ発現分析
マイクロＲＮＡを含むｍＲＮＡを、ｍｉＲＮｅａｓｙミニキット（Ｑｉａｇｅｎ）を製造者の説明書に従って使用して、選別されたニューロン、凍結された脳打ち抜き物および血漿から単離し、ｍｉＳｃｒｉｐｔ逆転写キットｍｉＲＮＡを使用して処理し、ｃＤＮＡを生成した。その後、ｃＤＮＡ試料を、ＳＹＢＲ（登録商標）ＧｒｅｅｎＰＣＲキット（Ｑｉａｇｅｎ）を製造者のガイドラインに従って使用して、ＡＢ７５００サーモサイクラー（ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）で分析した。それぞれのｍｉＲのための特異的プライマーを市販のユニバーサルプライマーと一緒に使用し、同時に、Ｕ６のｓｎＲＮＡを内部対照として使用した。

（表１Ｂ）
表１Ｂ：リアルタイムＰＣＲに使用したプライマー配列

（表１Ｃ）
表１Ｃ：分子クローニングに使用したプライマー配列

ｍｉＲ１３５ｂ過剰発現ウイルスベクターのクローン化
プレ−ｍｉＲ−１３５ｂを、制限酵素のＡｇｅＩ部位を付加するプライマーとともにマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲによって増幅し、その後、ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）に挿入（ｉｎＳｌｃ６ａ４ｅｄ）した。ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙの配列決定、ならびに、ＡｇｅＩによるｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙおよびｐＥＧＦＰベクター（ＣｌｏｎｔｅｃｈｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｃ．，ＭｏｕｎｔａｉｎＶｉｅｗ，ＣＡ）の両方を消化の後、未成熟ｍｉＲ−１３５ｂ配列をｐＥＧＦＰベクターに連結して、発現プラスミドｐＥＧＦＰ−ｍｉＲ−１３５ｂを構築した。その後で、ｐＥＧＦＰ−ｍｉＲ−１３５ｂを、ｐＣＳＣ−Ｅ／Ｓｙｎ−ｅＧＦＰプラスミドを同じ酵素で切断するのと並行してＢａｍＨＩおよびＢｓｒＧＩによって切断し、ｍｉＲ−１３５ｂ−ｅＧＦＰ配列をｐＣＳＣ−Ｅ／Ｓｙｎに連結して、ｐＣＳＣ−ｅＳＮＹ−ｐｒｅ−ｍｉＲ−１３５ｂ−ｅＧＦＰプラスミドを構築し、これを制限エンドヌクレアーゼ分析およびＤＮＡ配列決定によって確認した。

レンチウイルスベクターの作製
組換えレンチウイルスを、以前に記載のように［ＮａｌｄｉｎｉＬｅｔａｌ．，ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ（１９９６）９３：１１３８２−８］、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞の一過性遺伝子導入によって作製した。簡単に説明すると、感染性レンチウイルスを遺伝子導入後４８時間および７２時間で集め、０．４５μｍ細孔の酢酸セルロースフィルターでろ過し、超遠心分離によって濃縮した。

レンチウイルスの脳内注入
定位手術およびレンチウイルス送達部位の精密な制御を提供するために、本発明者らは、コンピューター誘導定位機器およびモーター駆動ナノインジェクター（ＡｎｇｌｅＴｗｏ（商標）ＳｔｅｒｅｏｔａｘｉｃＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔ、ｍｙＮｅｕｒｏｌａｂ）を使用した。以前に記載されたように［ＳｉｎｇｅｒＯ．ｅｔａｌ．ＮａｔＮｅｕｒｏｓｃｉ（２００５）、８、１３４３〜９］、マウスを全身麻酔下で定位装置上に置き、座標を、ＦｒａｎｋｌｉｎおよびＰａｘｉｎｏｓのアトラスによって定義されるように決定した。レンチウイルス調製物を、モーター駆動のナノインジェクターシステムにつながれるＨａｍｉｌｔｏｎシリンジを使用して送達し、溶液を毎分０．２μｌの速度で注入した。２週間の回復期間の後、マウスを行動調査および生理学的調査に供し、その後で麻酔し、リン酸塩緩衝４％パラホルムアルデヒドで灌流した。固定された脳を、免疫組織化学を使用して注入部位の正確さを確認するために３０μのスライス片に順次切片化した。

免疫組織化学
免疫組織化学のために使用される手順を以前の記載のように行った［ＣｈｅｎＡｅｔａｌ．ＪＮｅｕｒｏｓｃｉ（２００６）２６：５５００−１０］。ＧＦＰ免疫染色のために、本発明者らは、一次抗体としての、ウサギ中で産生されたビオチン化抗ＧＦＰ抗体（Ａｂｃａｍ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＵＫ）、および、二次抗体としてのストレプトアビジンコンジュゲートＣｙ２［ＪａｃｋｓｏｎＩｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｃ、ＷｅｓｔＧｒｏｖｅ，ＰＡ，ＵＳＡ）を使用した。

行動評価
すべての行動評価を、各試験の前の２時間、試験部屋で慣らした後に、暗期中に行った。

尾懸垂試験
尾懸垂試験をＴＳＥ尾懸垂モニター（ＴＳＥＳｙｓｔｅｍｓ、ＢａｄＨｏｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で行った。それぞれのマウスをその尾の先端をテープで固定し、力センサーから１０分間ぶら下げた。不動で過ごした時間と、もがき反応で過ごした時間とを、事前設定された閾値に基づいてソフトウェアによって計算し、記録した。

修正強制水泳試験
尾懸垂試験を以前に記載のように行った［ＫｒｉｓｈｎａｎＶａｎｄＮｅｓｔｌｅｒＥＪ，Ｎａｔｕｒｅ（２００８）４５５：８９４−９０２］。簡単に説明すると、使用した装置は、２５℃の水が１５ｃｍの深さまで満たしたプラスチックバケツ（直径１８ｃｍ）であった。それぞれのマウスをバケツの中心に置いて、６分間のビデオ記録を行う試験期間を開始した。２〜６分の試験期間中に、不動で過ごした時間の継続期間を、ＥｔｏＶｉｓｉｏｎＸＴ（Ｎｏｌｄｕｓ，Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ，Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）を使用して自動的にスコア化した。

自発運動活性
移動における差から生じる行動的効果の可能性に関して制御するために、マウスの自発運動活性を、数日の馴化へ移行する前の４８時間の期間にわたって調べた。マウスを、特殊なホームケージに１匹ずつ収容し、自発運動を、ＩｎｆｒａＭｏｔシステム（ＴＳＥＳｙｓｔｅｍｓ，ＢａｄＨａｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を使用して測定した。

統計分析
データを平均＋／−ＳＥＭとして表した。統計学的有意性について検定するために、２つの群のみが比較される場合にはスチューデントｔ検定を使用した（例えば、マイクロアレイ検証ｑＰＣＲ間など）。１元配置ＡＮＯＶＡを使用して、ルシフェラーゼアッセイにおける異なる処置間などの多群間を比較した。２つの独立変数の場合（例えば、急性および長期の両期間のＳＳＲＩおよびＮＲＩの注入）には２元配置ＡＮＯＶＡを使用した。必要な場合には、ポストホックｔ検定を使用して、統計学的有意性を明らかにした。群間の差は、ｐ＜０．０５であるとき、有意であると見なした。

結果
５ＨＴニューロンを、ｅＰＥＴＹＦＰの胎仔のＲＮから単離し、それらのｍｉＲ発現プロフィルを、ｍｉＲマイクロアレイを使用して、同じ核から得られる非５ＨＴニューロンと比較した（図１Ａ）。非５ＨＴニューロンと比較して、５ＨＴニューロンにおいて、１４個のｍｉＲが２倍を超えてアップレギュレーションされることが見出され、２７個が、２倍を超えてダウンレギュレーションされることが見出された（下表２Ａ〜Ｂ参照）。アレイ結果の代表的な検証を、５ＨＴニューロンにおいてアップレギュレーションされるｍｉＲ、例えば、ｍｉＲ−３７５（Ｐ＝０．００７１；図１Ｂ）に対して、また、ダウンレギュレーションされるｍｉＲ、例えば、ｍｉＲ−１３５ａ（Ｐ＝０．００７５；図１Ｃ）に対して、リアルタイムＰＣＲを使用して行った。５ＨＴニューロンの調節因子としてのｍｉＲの役割をさらに調査するために、広範囲の生物情報学的分析を仮説方式で行った。精神病理と関連することが以前に実証された既知セロトニン関連遺伝子の標的化予測をマイクロアレイ結果と組み合わせた。ＲＮにおける５ＨＴニューロンにおいて発現される下記の４つのタンパク質コード標的遺伝子を試験のために選定した：セロトニン輸送体（これは５ＨＴ再取り込に関わっており、また、ＳＥＲＴまたはＳｌｃ６ａ４としても知られる）；セロトニン抑制性受容体１ａ（Ｈｔｒ１ａとしても知られる）；トリプトファンヒドロキシラーゼ２（Ｔｐｈ２）（これは脳における５ＨＴ合成の律速酵素である）；およびモノアミンヒドロキシラーゼ（ＭａｏＡ）（これは５ＨＴを不活性化する）。これらの遺伝子についてのマイクロＲＮＡ標的化予測を、ＴａｒｇｅｔＳｃａｎ［ｗｗｗ．ｔａｒｇｅｔｓｃａｎ．ｏｒｇ］およびＭｉｒａｎｄａ［ｗｗｗ．ｍｉｃｒｏｒｎａ．ｏｒｇ］の２つの異なるウエブ型アルゴリズムを使用して行い、非５ＲＨ細胞と比較して、５ＨＴニューロンのｍｉＲアレイにおいて少なくとも±１．５の変化をしている９１個のｍｉＲのリストと組み合せた。ｍｉＲアレイデータおよび生物情報学的分析に基づいて、８個のｍｉＲをさらなるインビトロ調査のために選定した（図１Ｄ〜Ｇ）。

(表２Ａ)
表２Ａ：非セロトニン作動性に比べて、５ＨＴニューロンにおいてアップレギュレーション（２倍を超えて）されるｍｉＲのリスト

(表２Ｂ)
表２Ｂ：非セロトニン作動性に比べて、５ＨＴニューロンにおいてダウンレギュレーション（２倍を超えて）されるｍｉＲのリスト

インビトロルシフェラーゼアッセイを、試験した５ＨＴ関連遺伝子の３’ＵＴＲと、それを推定上の標的とすることが予測されるｍｉＲとの間のｍｉＲ−標的相互作用を調べるために行った。本発明者らは、Ｔｐｈ２の３’ＵＴＲがｍｉＲ−２７ｂ（Ｐ＝０．００５１）およびｍｉＲ−１８１Ｃによりわずかに（およそ２０％）抑制され（Ｐ＝０．０３０５、図１Ｈ）、さらに、ＭａｏＡの３’ＵＴＲも、ｍｉＲ−２７ｂにより抑制される（Ｐ＝０．０００８、図１Ｉ）ことを見出した。ｍｉＲ−１３５がＳｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲを標的とすること（図２Ａおよび図２Ｃ）およびＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲを標的とすること（図２Ｂおよび図２Ｄ）により、これらの転写物の翻訳の確実な抑制が生じた。ｍｉＲ−１３５ａは、およそ３０％の抑制をＳｌｃ６ａ４（Ｐ＝０．０１４）およびＨｔｒ１ａ（Ｐ＜０．０００１）に対してもたらしたが、ｍｉＲ−１３５ｂは、およそ５０％の抑制をＳｌｃ６ａ４（Ｐ＝０．０００２）およびＨｔｒ１ａ（Ｐ＜０．０００１）に対して引き起こした。加えて、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲの有意な抑制が、ｍｉＲ−３３５（Ｐ＜０．０００１）、ｍｉＲ−１８１ｃ（Ｐ＝０．００２９）およびｍｉＲ−２６ａ（Ｐ＜０．０００１）によってもたらされた（図２Ｄ）。さらなるゲノム的取り組みの生物情報学的分析により、ｍｉＲ−１３５シードマッチの高度な保存がｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲにおいて明らかにされ（図２Ｅ）、また、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲにおける２つの特定されたシードマッチのうちの１つにおいて高度な保存が明らかにされた（図２Ｆ）。ｍｉＲ−１３５のｍｉＲシードマッチを除去したＳｌｃ６ａ４転写物の３’ＵＴＲにおける変異調査では、Ｓｌｃ６ａ４のｍｉＲ−１３５ａ標的化およびｍｉＲ−１３５ｂ標的化の両方がそのシードマッチ配列により媒介されたことが明らかにされた。ｍｉＲ−１３５によって誘導される抑制が、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲにおける変異によって完全にブロックされた（図２Ｇ）。Ｈｔｒ１ａのｍｉＲ−１３５シードマッチを個々に、または、両方を変異させることにより、ｍｉＲ−１３５ａが、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲを、近位側ではなく、遠位側のシードマッチを介して抑制したこと、一方、ｍｉＲ−１３５ｂは両方の予測された部位を介して作用することが明らかにされた（図２Ｈ）。

本発明者らはさらに、種々の環境的攻撃または薬理学的処置の後におけるインビボでのＲＮ−ｍｉＲ−１３５発現の調節を調べた。マウスの操作（すなわち、急性拘束ストレス）の後、ＲＮを取り出し、ＲＮＡを抽出し、ｍｉＲ−１３５レベルを、リアルタイムＰＣＲを使用して調べた。５ＨＴレベルは、急性ストレスによって警戒態勢が取られることが知られているので、本発明者らは、ｍｉＲ−１３５のレベルを急性拘束ストレス後の種々の時点で調べ、ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂの両方が急性ストレス後９０分でダウンレギュレーションされることを見出した（Ｐ＜０．０００１）。これらのｍｉＲの低下したレベルは、対照マウスと比較して、ストレス後２４時間でも依然としてそのままであった（ｍｉＲ−１３５ａではＰ＝０．０３５７、図３Ａ；ｍｉＲ−１３５ｂではＰ＝０．００５５、図３Ｂ）。そのうえ、５ＨＴニューロン機能、ならびに、Ｓｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａの発現レベルは、うつ病患者において、また、抗うつ剤の薬物治療の後で強く影響されることが知られているので、本発明者らは、うつ病様行動の誘導のための環境モデル（長期社会的敗北モデル）にさらされたマウス、および、三環系抑うつ剤のイミプラミンにさらされたマウスにおけるこれら２つのｍｉＲバリアントのレベルを調べた。興味深いことに、長期社会的敗北のストレスは縫線核においてｍｉＲ−１３５のレベルを変化させなかったが、急性投与または長期投与されたイミプラミンは、ストレス負荷マウスおよびストレス非負荷マウスの両方で、ＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ａの発現レベルを増大させ（Ｐ＝０．００３；図３Ｃ）、ｍｉＲ−１３５ｂの発現レベルを増大させた（Ｐ＝０．００９３；図３Ｄ）。イミプラミンは特異的な５ＨＴ再取り込み阻害剤ではないので、本発明者らはさらに、急性および長期の両方の選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）のフルオキセチンおよびノルアドレナリン再取り込み阻害剤（ＮＲＩ）のレボキセチンの影響を調べ、急性および長期の両方のＳＳＲＩ処置の後ではｍｉＲ−１３５ａレベルにおける確実な増大をＲＮにおいて見出し（Ｐ＜０．０００１、図３Ｅ）、ｍｉＲ−１３５ｂレベルにおける増大は見出せなかった（図３Ｆ）。

動物状況全般におけるｍｉＲ−１３５レベルの重要性をさらに調査するために、本発明者らは、ｍｉＲ−１３５のレベルをインビボで、特に成体マウスのＲＮにおいて操作し、マウスのうつ病様行動に対するその影響を調べた。この目的のために、本発明者らは、強化型シナプシンプロモーター（これはまた、ＧＦＰレポーターを共発現させた）を使用して、ｍｉＲ−１３５ｂをニューロンにおいて特異的に過剰発現する組換えレンチウイルスを構築した（上記材料および実験手順のセクションおよび図４Ａを参照）。本発明者らは、このレンチウイルスを成体マウスのＲＮに注入することによってこのレンチウイルスをインビボで調べ、ＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ｂレベルを対照レンチウイルス注入マウスに対して比較した。ｍｉＲ−１３５ｂレベルのリアルタイムＰＣＲ分析では、対照レンチウイルス注入マウスと比較して１０倍の誘導が明らかにされた（Ｐ＝０．００３２、図４Ｂ）。過剰発現ｍｉＲ−１３５ｂを注入された成体マウスを、長期社会的敗北に供し、うつ病様行動を開始させて、その後、行動を試験した。行動試験の後、マウスを灌流処置し、脳を、注入部位の位置に関して分析した（図４Ｃ〜Ｄ）。ＲＮでｍｉＲ−１３５を過剰発現するマウスは、ホームケージでのそれらの自発運動における変化を何ら認めることなく（図４Ｇ〜図４Ｈ）、強制水泳において低下した不動時間を示し（Ｐ＝０．００８８（３分の時点で）、Ｐ＝０．００３３０（４分の時点で）；図４Ｅ）、また、尾懸垂試験において低下した不動時間を示した（Ｐ＝０．０７３５６（試験の最後の５分で）、図４Ｆ）。このことは、ｍｉＲ−１３５の過剰発現の抗うつ効果を示唆している。

まとめると、本発明者らは、ＲＮのセロトニン作動性ニューロンおよびセロトニン非作動性ニューロンの特異的なｍｉＲ発現フィンガープリントを明らかにした。本発明者らは、この特異なデータセットを、５ＨＴ関連遺伝子のｍｉＲ標的化のための生物情報学予測と組み合わせた。本発明者らは、Ｔｐｈ２、ＭａｏＡ、Ｓｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａについての標的化予測を、３’ＵＴＲルシフェラーゼアッセイを使用して、また、変異調査においてインビトロで調べ、他のｍｉＲ−標的相互作用のなかでもとりわけ、Ｓｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａの両方の３’ＵＴＲに対するｍｉＲ−１３５の強い阻害効果を明らかにした。最後に、本発明者らは、成体マウスのＲＮにおけるｍｉＲ−１３５の部位特異的な過剰発現が社会的敗北後の低下したうつ病様行動をもたらすことを明らかにした。

ｍｉＲ−１９は１型ベータアドレナリン作動性受容体（Ａｄｒｂ１）を特異的に標的とする
材料および実験手順
Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２ルシフェラーゼ発現プラスミドへの３’ＵＴＲのクローン化
ＡＤＲｂ１の３’ＵＴＲ配列をマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲ増幅した。変異３’ＵＴＲ配列（これは４つすべてのｍｉＲ−１９シードマッチを欠いている）が、ＥｐｏｃｈＢｉｏｌａｂｓ，Ｉｎｃ．（ＴＸ，ＵＳＡ）によって合成された。３’ＵＴＲのＰＣＲ断片を製造者のガイドラインに従ってｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）に連結し、さらに、Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２レポータープラスミド（Ｐｒｏｍｅｇａ）におけるルシフェラーゼの３’末端での単一ＮｏｔＩ部位にサブクローン化した。クローン化配向を診断的切断および配列決定によって確認した。

遺伝子導入およびルシフェラーゼアッセイ
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞またはＨＴ２２ニューロン細胞を７０％〜８５％の集密度まで４８ウエル形式でポリ−Ｌ−リシン上で成長させ、下記のプラスミドでポリエチレンイミンを使用して遺伝子導入した：Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２−３’ＵＴＲプラスミド、プレ−ｍｍｕ−ｍｉＲ−１９ｂ過剰発現ｐＥＧＦＰプラスミドまたはｐＥＧＦＰプラスミド単独（ｃｌｏｎｔｅｃｈ）、ｍｉＲ−１９ｂノックダウン（ＫＤ）プラスミド（Ｇｅｎｅｃｏｐｏｅｉａ）または対照ＫＤプラスミド（Ｇｅｎｅｃｏｐｏｅｉａ）。遺伝子導入の２４時間後、細胞を溶解し、ルシフェラーゼレポーター活性を以前に記載のようにアッセイした［ＣｈｅｎＡ．ｅｔａｌ．ＭｏｌＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌ（２００５）１９：４４１−５８］。ウミシイタケルシフェラーゼの値を、対照のホタルルシフェラーゼ（同じベクターから転写されるが、試験されている３’ＵＴＲによって影響されない）のレベルに対して正規化し、１条件あたり６回のウエル反復を平均化した。

結果
いくつかの反復体をその３’ＵＴＲに含有する別個の進化的に保存されたｍｉＲＮＡ標的配列を用いたストレス関連遺伝子についての生物情報学的分析により、ｍｉＲ−１９が、１型ベータアドレナリン作動性受容体（Ａｄｒｂ１）の標的化のための有力な候補として示され、この場合、３つの高度に保存されたｍｉＲ−１９シードマッチと、１つのそれほど高度に保存されていないｍｉＲ−１９シードマッチとがＡｄｒｂ１の３’ＵＴＲに存在する。Ａｄｒｂ１は、扁桃体、海馬および室傍核（ＰＶＮ）を含む脳の様々な領域において発現されるアドレナリン作動性受容体である。扁桃体のＡｄｒｂ１は以前には、影響を不安様行動［ＦｕＡｅｔａｌ．，ＢｒａｉｎＲｅｓ（２００８）１２１１：８５−９２；ＲｕｄｏｙＣＡａｎｄＶａｎＢｏｃｋｓｔａｅｌｅＥＪ，ＰｒｏｇＮｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌＢｉｏｌＰｓｙｃｈｉａｔｒｙ（２００７）３１：１１１９−２９］および恐怖記憶［ＲｏｏｚｅｎｄａａｌＢｅｔａｌ．，ＪＮｅｕｒｏｓｃｉ（２００４）２４：８１６１−９；ＲｏｏｚｅｎｄａａｌＢｅｔａｌ．，Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ（２００６）１３８：９０１−１０］に及ぼすとして記載された。興味深いことに、Ａｄｒｂ１は、扁桃体のＣＲＦ陽性細胞の表面に見出されたものであり、Ｇを介してその影響を発揮し、それにより、アデニル酸シクラーゼ（ＡＣ）をさらに活性化するＧタンパク質共役型受容体（ＧＰＣＲ）である。ＡＣをコードする１０個の遺伝子（すなわち、ＡＤＣＹ１〜１０）が知られている。これらのうちの３つ（ＡＤＣＹ１、ＡＤＣＹ７およびＡＤＣＹ９）が、ｍｉＲ−１９によって標的とされることが生物情報学により予測された。ＡＤＣＹ１は脳特異的な発現を有しており、マウス前脳におけるその過剰発現が認知記憶およびＬＴＰを高めることが以前に示された［ＷａｎｇＨｅｔａｌ．，ＮａｔＮｅｕｒｏｓｃｉ（２００４）７：６３５−４２］。

ｍｉＲ−１９が実際に、Ａｄｒｂ１またはＡＤＣＹ１の発現を、Ａｄｒｂ１−３’ＵＴＲまたはＡＤＣＹ１−３’ＵＴＲにおけるその推定される標的配列を介して調節するかどうかを調べるために、無変異型または変異型のＡｄｒｂ１−３’ＵＴＲ（図５）またはＡＤＣＹ１−３’ＵＴＲをＰｓｉｃｈｅｃｋ２発現プラスミド中のルシフェラーゼ遺伝子の下流側にクローン化した。変異型のＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲには、ｍｉＲ−１９ｂの４つすべてのシードマッチが存在しなかった（図５）。変異型の部分的ＡＤＣＹ１−３’ＵＴＲには、（３つのうちの）保存されたシードマッチのみが存在しなかった。

ルシフェラーゼアッセイを、ｍｉＲ−１９とＡｄｒｂ１−３’ＵＴＲとの間における相互作用、および、同様に、ｍｉＲ−１９とＡＤＣＹ１−３’ＵＴＲとの間における相互作用の性質を明らかにするために使用した。ＨＴ２２細胞（これは低レベルのｍｉＲ−１９を内在的に発現する）では、無変異型または変異型のどちらかのＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲによって制御されるルシフェラーゼレベルの間に、差は認められなかった（図６Ａ）。しかしながら、ｍｉＲ−１９ｂをＨＴ２２細胞中で過剰発現させると、ルシフェラーゼレベルが、変異型のＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲに対して、無変異型によって推進される場合には有意に低くなった（正規化ルシフェラーゼ発現の一般的な、非特異的と思われる低下に加えて）（およそ２倍低くなった）（図６Ｂ）。高レベルのｍｉＲ−１９ｂを内在的に発現するＨＥＫ２９３Ｔ細胞では、ＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲによって調節されるルシフェラーゼ発現レベルが、変異型のＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲによって調節されるときに発現されるルシフェラーゼ発現レベルの２〜４倍低かった（図６Ｃ）。

ｍｉＲのノックダウン（ＫＤ）系を、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞のｍｉＲ−１９レベルを操作するために使用した。すなわち、（１）ｍｉＲＣＵＲＹＬＮＡＫＤプローブ（Ｅｘｉｑｏｎ，ＭＡ，ＵＳＡ；図６Ｄ）、および、（２）プラスミドに基づくノックダウン配列ｍｉＡｒｒｅｓｔ（Ｇｅｎｅｃｏｐｏｅｉａ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ，ＵＳＡ；図６Ｅ）。ＬＮＡ−抗ｍｉＲ−１９ｂは、ＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲ下で調節されるときに発現されるルシフェラーゼ活性を対照のスクランブル化ＫＤプローブに対して約２０％高め、また、変異型のＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲに対する影響を何ら有していなかった（図６Ｄ）。一方、プラスミドに基づくｍｉＲ−１９ｂＫＤは、対照ＫＤ配列に対して、無変異型のＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲによって調節されるルシフェラーゼ発現における２倍までの増強を引き起こした（図６Ｅ）。変異型のＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲによって推進されるルシフェラーゼ活性に対するルシフェラーゼレベルの完全なレスキューが何ら達成されなかった。このことは、プローブ／ゲノム配列のｍｉＲ−１９ｂ特異性（スピアリング（ｓｐｅａｒｉｎｇ）ｍｉＲ−１９ａ調節）、完全にダウンレギュレーションすることが困難な可能性のあるＨＥＫ２９３Ｔ細胞における高いｍｉＲ−１９レベル、または、ＡＤＲｂ１−３’ＵＴＲにおける同じシードマッチ配列に結合する可能性のあるＨＥＫ２９３Ｔ細胞で発現される他の可能なｍｉＲＮＡの影響、のいずれかによって説明できるであろう。
（実施例３Ａ）

ｍｉＲ−１９ａおよびｍｉＲ−１９ｂは長期ストレスの後にＰＦＣおよび扁桃体においてアップレギュレーションされる
材料および実験手順
動物および収容
ｍｉＲ１７〜９２ｆｌｘ／ｆｌｘマウス［ＶｅｎｔｕｒａＡｅｔａｌ，Ｃｅｌｌ（２００８）８７５−８６：（５）１３２；７］をＣａｍＫＩＩａ−Ｃｒｅマウス［ＤｒａｇａｔｓｉｓＩｅｔａｌＧｅｎｅｓｉｓ．（２０００）２６（２）：１３３−５］と交雑する。遺伝子導入マウスまたは成体Ｃ５７ＢＬ／６Ｊ雄マウスを逆の１２時間の明暗周期で温度制御室（２２±１℃）に収容する。食物および水を自由に摂取させる。すべての実験プロトコルが、ＷｅｉｚｍａｎｎＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＳｃｉｅｎｃｅの実験動物委員会によって承認された。

成体脳中のｍｉＲ−１９ｂ操作のためのレンチウイルスの作製
レンチウイルスプラスミドのＲＮＡポリメラーゼＩＩＩ−Ｈ１プロモーターの後に、ｍｉＲ−１９ｂのＫＤ配列を挿入した。加えて、レンチウイルスプラスミド中で、プレ−ｍｉＲ−１９ｂ配列をニューロン特異的プロモーター（強化型シナプシン、ＥＳｙｎ）の後にクローン化した。レンチウイルスをインビボでのｍｉＲ−１９−ＫＤ実験およびプレ−ｍｉＲ−１９ｂ過剰発現発現（ＯＥ）実験の両方用として生成する。これらのレンチウイルスを使用して、ｍｉＲ−１９ｂのレベルを、ｍｉＲ−１９のレベルが行動的／薬理学的攻撃の後で変化することが見出される標的領域中で操作する。

前脳でｍｉＲ−１９を欠いているマウスの作製
前脳でｍｉＲ−１９を欠いているマウスを作製するために、本発明者らは、条件型のｍｉＲクラスターｍｉＲ１７〜９２を有するマウスを用いて、Ｃｒｅリコンビナーゼをコードする遺伝子をＣａｍＫＩＩａプロモーターの下流に保持するマウスを育種中である。ｍｉＲ−１９ファミリーはｍｉＲ−１９ａおよびｍｉＲ−１９ｂを含む。ｍｉＲ−１９ｂは、マウスゲノム中に２つの同一コピーのｍｉＲ−１９ｂ−１およびｍｉＲ−１９ｂ−２を有する。ｍｉＲ１９ａおよびｍｉＲ−１９ｂ−１は、同じｍｉＲＮＡクラスターに、すなわち、ｍｉＲ１７〜９２に位置し、これに対して、ｍｉＲ−１９ｂ−２は、異なるゲノム遺伝子座（ｍｉＲ１０６ａ〜３６３）に位置する。後者は、マウス組織における発現をほとんど、または全く有していないようであり、したがって、ｍｉＲ１７〜９２クラスターのノックアウトは、前脳におけるｍｉＲ−１９ａおよびｍｉＲ−１９ｂ発現レベルに対する非常に大きな影響を可能にするために十分であることが予想される。

行動的／薬理学的攻撃
前脳でｍｉＲ１７〜９２クラスターを欠いているマウス、または、ｍｉＲ−１９が特異的に操作されたマウス（特定の脳領域において過剰発現またはダウンレギュレーション（ＫＤ）されたマウス）の、ＡＤＲｂ１、ＡＤＣＹ１ならびに他の転写物および遺伝子産物の発現レベルについて調査する。また、これらの動物の、不安症様行動、自発運動活性および記憶成績について試験することになる。さらに、ｍｉＲ−１９ａおよびｍｉＲ−１９ｂの発現レベルが、目的の種々の領域（例えば、海馬、扁桃体および前脳）におけるＷＴ型マウスにおけるノルアドレナリン再取り込み阻害剤のレボキセチンによる急性および長期の全身的処置の後で調べられる。

結果
ｍｉＲＮＡ−１９とＡｄｒｂ１との間における生理学的つながりを、レボキセチン（ノルアドレナリン再取り込み阻害剤（ＮＲＩ））が急性または長期のどちらかで注射されたマウスの前頭前皮質（ＰＦＣ）におけるｍｉＲ−１９ａ／ｂのレベルを評価することによって調査した（図１２Ａ〜Ｄ）。図１２Ａ〜Ｄに示すように、ｍｉＲ−１９ａ／ｂレベルがレボキセチンの急性投与の後ではダウンレギュレーションされ（図１２Ａ、Ｂ）、レボキセチンの長期投与の後ではアップレギュレーションされた（図１２Ｃ、Ｄ）。

次に、ｍｉＲ−１９ａおよびｂのレベルを社会的敗北プロトコルに供されたマウスのＰＦＣおよび扁桃体中で測定することにより、ｍｉＲ−１９のレベルをストレス後に評価した（図１３Ａ〜Ｄ）。図１３Ａ〜Ｄに示すように、ｍｉＲ−１９ａおよびｂのレベルが長期ストレスの後ではＰＦＣおよび扁桃体の両方において増大した。これらの結果は、中枢ストレス応答の調節におけるｍｉＲ−１９の関与を実証している。
（実施例３Ｂ）

ｍｉＲＮＡ−１９およびカナビノイド受容体１（ＣＢ１）
材料および実験手順
動物および収容
上記実施例３Ａで記載の通りである。

成体脳におけるｍｉＲＮＡ−１９ｂ操作のためのレンチウイルスの作製
上記実施例３Ａで記載の通りである。

結果
ＣＢ１は、脳における最も多く発現されるＧＰＣＲの１つであり、皮質、扁桃体、海馬、脳幹神経節および小脳において特に多い（図１５Ａ〜Ｂ）［ＨｅｒｋｅｎｈａｍＭ．ｅｔａｌ．，ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ：ｔｈｅｏｆｆｉｃｉａｌｊｏｕｒｎａｌｏｆｔｈｅＳｏｃｉｅｔｙｆｏｒＮｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ（１９９１）１１：５６３−５８３；Ｍａｃｋｉｅ，Ｋ．Ｈａｎｄｂｏｏｋｏｆｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ（２００５）２９９−３２５］。ＣＢ１受容体は、神経伝達を調節するためにＣＢ１受容体がうまく配置されている軸索および軸索終末において高度に発現される。本発明者らは、ＣＢ１が、ｍｉＲＮＡ−１９との適合性を有する２つのシード部位を含有することを見出した。

ルシフェラーゼアッセイを、ｍｉＲＮＡ−１９とＣＢ１−３’ＵＴＲとの間における相互作用の性質を明らかにするために使用した。ｍｉＲＮＡ−１９ｂをＣＢ１の３’ＵＴＲと一緒にＨＴ２２細胞中で過剰発現させた場合、ルシフェラーゼレベルが、同じ３’ＵＴＲにより過剰発現されるＧＦＰと比較したときには有意に低くなった（５０％）（図１４）。このことは、ＣＢ１レベルの調節におけるｍｉＲ−１９の可能な役割を裏付けている。さらなる変異実験が、観測された調節に対する予測されたｍｉＲ−１９シード配列の役割（Ａｄｒｂ１について上記で記載されるような）を確認するために行われる。

興味深いことに、以前の研究は、嫌悪記憶の固定が、扁桃体の基底外側核（ＢＬＡ）における、グルココルチコイド、ノルアドレナリン作動性およびカンナビノイド信号伝達の間でのやりとりによって促進されることが説得力をもって明らかにされている［Ｒｏｏｚｅｎｄａａｌ，Ｂ．ｅｔａｌ．Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙｏｆｌｅａｒｎｉｎｇａｎｄｍｅｍｏｒｙ（２００６）８６：２４９−２５５］。ＨｉｌｌおよびＭｃＥｗｅｎによって提案されたモデル［ＨｉｌｌＭ．Ｎ．ａｎｄＭｃＥｗｅｎＢ．Ｓ．ＰｒｏｃｏｆｔｈｅＮａｔＡｃａｄｏｆＳｃｉｏｆｔｈｅＵＳＡ（２００９）１０６：４５７９−４５８０］は、記憶固定のためのＢＬＡにおける可能な作用機構を示す（図１６）。

今回の結果において示されるように、ＭｉＲＮＡ−１９はＡｄｒｂ１およびＣＢ１の両方をインビトロで調節するようにみえる。例えば、Ａｄｒｂ１およびＣＢ１のレベルを変化させる可能性があるＢＬＡに特異的に送達されるレンチウイルスを使用するｍｉＲ−１９の過剰発現およびノックダウンが、学習パラダイムおよび記憶パラダイム（例えば、ストレス性の攻撃にさらされることを伴う、または伴わない恐怖条件づけなど）におけるマウスの成績を調べる試験と併せて行われる。
（実施例３Ｃ）

長期ストレスに供されたマウスにおける示差的に発現されるｍｉＲＮＡの特定
材料および実験手順
Ａｇｏ２タンパク質の免疫沈殿
同じ群（「感受性あり」、「立ち直りが早い」または対照）の一部である３匹の動物から得られた３個の扁桃体のプールを、ＲＮａｓｅ阻害剤、プロテアーゼ阻害剤およびホスフェート阻害剤が補充されたＮＰ４０緩衝液中でホモジナイズした。試料を、４℃で２時間、連続的に撹拌しながら維持した。その後、試料を、１２０００ｒｐｍで２０分間、微量遠心分離器を使って４℃で遠心分離し、上清を、氷上に保持された新しいチューブに入れ、ペレットを廃棄した。磁気プロテインＧビーズ（Ｄｙｎａｂｅａｄｓ，Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を、室温で回転させながらＡｇｏ２モノクローナル抗体（ＷＡＫＯ）と１０分間インキュベーションした。数回の洗浄の後、試料をＡｇｏ２被覆のプロテインＧビーズに加え、撹拌下、４℃で一晩インキュベーションした。翌日、ビーズをＰＢＳにより３回洗浄した。ＲＮＡ精製のために、ビーズをＲＬＴ緩衝液中でホモジナイズした（ＲＮｅａｓｙキット、ｍｉＲＮＡ補助プロトコル）。ウエスタンブロット分析のために、試料緩衝液中でビーズを煮沸し、ビーズからタンパク質を放出させた。

ＲＮＡ精製およびマイクロアレイ
Ａｇｏ２免疫沈殿試料からのＲＮＡを、Ｑｉａｇｅｎの補助プロトコル１：ｍｉＲＮＡ含有総ＲＮＡの精製、に従って、ＲＮｅａｓｙｐｌｕｓキット（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して単離した。すべての他の目的のためのＲＮＡを、ｍｉＲＮｅａｓｙｍｉｎｉキット（Ｑｉａｇｅｎ）を製造者の推奨法に従って使用して、凍結した脳打ち抜き物から単離し、ＲＮＡの完全性を、Ａｇｉｌｅｎｔ２１００バイオアナライザーを使用して評価した。Ａｇｏ２免疫沈殿の後の、ストレス負荷マウスの組織に由来するＲＮＡを、ＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘｍｉＲＮＡ２．０アレイ（濃縮ＲＮＡプロトコル）およびＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘＭｏｕｓｅＧｅｎｅ１．０ＳＴアレイでさらに分析した。

結果
長期ストレスパラダイムに供されたマウスの扁桃体から単離した示差的に発現されたｍｉＲＮＡ、および／または、「立ち直りが早い」もしくは「感受性あり」の行動表現型に伴う示差的に発現されたｍｉＲＮＡを特定し、調査するために、社会的敗北プロトコルを使用した（方法のセクションを参照）。

社会的敗北パラダイムの後でのｍｉＲＮＡとそれらの標的遺伝子の３’ＵＴＲとの間の真の結びつきを確認するために、Ａｇｏ２複合体の免疫沈殿（ＩＰ）を行い、共沈殿したｍｉＲＮＡおよびｍＲＮＡの集団を分析した。成熟型ｍｉＲＮＡが形成されると、成熟型ｍｉＲＮＡがＲＩＳＣ複合体に取り込まれた。ＲＩＳＣ複合体中では、Ａｇｏ２は、特定のｍｉＲＮＡとその標的ｍＲＮＡの３’ＵＴＲとの間での相互作用を容易にする［ＭｅｉｓｔｅｒＧ．ｅｔａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒｃｅｌｌ（２００４）１５：１８５−１９７］（図１７Ａ）。

Ａｇｏ２複合体を、実際に、その結合したＲＮＡと一緒に沈殿させることができることを確認するために、ＩＰを、無処置マウスの扁桃体に対して行った。ＩＰを、モノクローナルＡｇｏ２抗体と反応するプロテインＧ磁気ビーズを使用して行った。図１７Ｂに示されるように、特異的なＡｇｏ２バンドが、ＮＩＨ３Ｔ３細胞の抽出物（図１７Ｂ、レーン１）、または、扁桃体組織の抽出物（図１７Ｂ、レーン２）から沈殿した。

ＩＰの特異性を明らかにするために、全脳試料を２つに分け、１つを抗Ａｇｏ２により沈殿させ、他方を対照のＩｇＧ１非特異的抗体により沈殿させた。特異的なＡｇｏ２バンドがＡｇｏ２沈殿物にのみ存在した（図１７Ｂ、レーン３、４）。

したがって、Ａｇｏ２複合体を沈殿させ、沈殿物におけるｍｉＲＮＡ集団ならびにｍＲＮＡ集団を分析することによって、所与のｍｉＲＮＡとその標的となったｍＲＮＡの３’ＵＴＲとの間における正しい結びつきを特定の脳領域において発見するためのより大きな機会が得られた。

社会的敗北パラダイムに供されたマウスの扁桃体由来のＡｇｏ２会合ＲＮＡの単離
次に、Ａｇｏ２のＩＰ実験の具体的な結果に基づいて、社会的敗北プロトコルに供されたマウスの脳でのｍｉＲＮＡおよびそれらの標的ｍＲＮＡにおける潜在的な違いを明らかにするために、同じ戦略を実行した。

１０日間の社会的敗北パラダイムの後、マウスを、対照、「感受性あり」および「立ち直りが早い」の３つの群に分類した。マウスが社会的敗北パラダイムの期間中に攻撃を受けたものと同じ系統に由来する新しいマウスと遭遇したときに社会的回避を示したときには、このマウスを「感受性あり」として特徴づけた。マウスが新しい攻撃的マウスを避けず、そのマウスと触れ合う場合には、このマウスを「立ち直りが早い」として特徴づけた。社会的敗北に供されたマウスの大部分が典型的には、社会的回避を示し、したがって、「感受性あり」として類別されることになる。実験におけるマウスのおよそ１０％〜２０％のみが、「立ち直りが早い」と予想される。下記に示されるのは、行われた社会的回避試験の一例である。

図１８Ａにおいて明らかにされるように、マウスを、慣らすために３分間、社会的迷路に単独で置いた。カメラが、迷路全体にわたるマウスの動きを追跡した。図１８Ｃにおいて、同じマウスが、仕切り板の向こう側に置かれた新たなＩＣＲマウスにさらされた。カメラは、マウスを、新たなマウスの場所から遠位側の活動領域の最も遠い隅で探知した。この応答は社会的回避と見なされ、したがって、このマウスは「感受性あり」として分類された。対照的に、図１８Ｂおよび図１８Ｄでは、マウスは社会的回避を示さず、したがって、「立ち直りが早い」として分類された。

４０匹のマウスが社会的敗北パラダイムを受け、４０匹のマウスが対照としての役割を果たした。社会的回避試験のあと、９匹の「立ち直りが早い」マウス、９匹の「感受性あり」マウスおよび１２匹の対照マウスを脳の顕微解剖のために選択した。脳の試料を、体幹血液と一緒に、扁桃体、ＢＮＳＴ、ＰＦＣ、背側縫線核および海馬から、社会的回避試験の８日後に集めた。

３匹の異なるマウスから得られた３つの扁桃体打ち抜き物のプールを一緒にし、抗Ａｇｏ２を使って免疫沈殿を行った。ＩＰ後、ＲＮＡを沈殿物から抽出した。３つの扁桃体をそれぞれの群から取り出した後、「立ち直りが早い」マウスからの３つのＲＮＡ試料、「感受性あり」マウスからの３つのＲＮＡ試料、および、対照マウスからの４つのＲＮＡ試料、すなわち、合計で１０個のＲＮＡ試料が存在した。それぞれの試料をマウスＳＴマイクロアレイで、および、ｍｉＲＮＡアレイで調べた（ともにＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ）。対照群に対する「感受性あり」または「立ち直りが早い」の２つの群のそれぞれにおいてアップレギュレーションまたはダウンレギュレーションされた遺伝子およびｍｉＲＮＡを調べた。特定のｍｉＲＮＡと標的遺伝子との間での相互作用が生じる場合は、本発明者らは、それらの総レベルにおける正反対の相関を予測した。しかしながら、ＲＩＳＣ複合体（抗Ａｇｏ２を使って沈殿した）中に存在するｍＲＮＡは、未だ断片化されていないので、高レベルにあることが予想された。したがって、アレイデータを検査している間、本発明者らは、対照試料に対してアップまたはダウンレギュレーションのどちらかをともに示すｍｉＲＮＡおよび潜在的ｍＲＮＡ標的を調べた。理由は、このことが、それらがＲＩＳＣ複合体において相互作用する兆候であったからである。

マイクロアレイ結果
下記表３は、従来のフィルターを使用して分析された予備的アレイ結果である。

(表３Ａ−３Ｂ)
表３Ａ〜Ｂ：Ａｇｏ２を使ったＩＰ後にアップレギュレーションされた（表３Ａ）またはダウンレギュレーションされた（表３Ｂ）扁桃体ｍｉＲＮＡのリスト
（表３Ａ）
（表３Ｂ）
＊表３Ａ〜Ｂの両方で、データを、対照に対する「感受性あり」または「立ち直りが早い」マウスの倍率変化として表した。太字の値は有意に変化したものを示す。

「感受性あり」群および「立ち直りが早い」群のマウスにおいて有意にアップレギュレーションされているいくつかのｍｉＲＮＡを選択し、ヒートマップで示した（図１９Ａ〜Ｂ参照）。

遺伝子発現アレイ（ｍＲＮＡ）

(表４)
表４：Ａｇｏ２を使ったＩＰ後にアップレギュレーションされた扁桃体ｍｉＲＮＡのリスト
＊データを、対照に対する「感受性あり」または「立ち直りが早い」マウスの倍率変化として表した。太字の値は有意に変化したものを示す。

(表５)
表５：Ａｇｏ２を使ったＩＰ後にダウンレギュレーションされた扁桃体ｍＲＮＡのリスト
脳におけるいくつかの潜在的ｍｉＲＮＡおよびそれらの推定標的が分析される。
(実施例４Ａ)

ストレス応答の調節因子としてのｍｉＲ−１５ａおよびｍｉＲ−１５ｂ
材料および実験手順
総ＲＮＡ抽出
扁桃体組織を急性ストレス手順の９０分後に切開した。総ＲＮＡを、ｍｉＲＮＡを保存するためにｍｉＲＮｅａｓｙキット（Ｑｉａｇｅｎ）を使用して単離した。凍結された脳打ち抜き物を溶解緩衝液に移し、直ちにホモジナイズした。ニューロン一次培養物またはＮ２ａ細胞培養物を氷上のウエル内で溶解した。さらなる処理を製造者の推奨法に従って行った。ＲＮＡ抽出物を使用するまで−８０℃で貯蔵した。

ｍｉＲＮＡアレイ
ｍｉＲＮＡの示差的発現を製造者の説明書に従ってＡｇｉｌｅｎｔ（Ａｇｉｌｅｎｔ，ＳａｎｔａＣｌａｒａ，ＣＡ，ＵＳＡ）またはＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ，ＳａｎｔａＣｌａｒａ，ＣＡ，ＵＳＡ）のｍｉＲＮＡマイクロアレイによってアッセイした。ｍｉＲＮＡの示差的発現を、Ａｇｉｌｅｎｔアレイを使用して評価するために、１試料あたり１００ｎｇの総ＲＮＡ（３つの対照試料および２つの急性ストレス試料）をそれぞれ、製造者の説明書に従って標識し、ハイブリダイゼーションした。アレイを、Ａｇｉｌｅｎｔマイクロアレイスキャナーを使用して走査した。データを、ＡｇｉｌｅｎｔＦｅａｔｕｒｅＥｘｔｒａｃｔｉｏｎソフトウェアｖ９を使用して抽出し、Ｐａｒｔｅｋ（登録商標）ＧｅｎｏｍｉｃｓＳｕｉｔｅ（ＰａｒｔｅｋＩｎｃ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｉｓｓｏｕｒｉ，ＵＳＡ）を使用して分析した。ＧｅｎｅＶｉｅｗ．ｔｘｔファイルからのデータを対数変換および分位数正規化に供した。ｍｉＲＮＡの示差的発現を、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘアレイを使用して評価するために、１試料あたり１μｇの総ＲＮＡ（２つの対照試料および２つの急性ストレス試料）をそれぞれ、製造者の説明書に従って標識し、ハイブリダイゼーションした。アレイを、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘマイクロアレイスキャナーを使用して走査した。データを、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘスキャナーソフトウェアを使用して抽出し、ＡｆｆｙｍｅｔｒｉｘｍｉＲＮＡＱＣｔｏｏｌソフトウェアのデフォルトパラメータを使用して正規化した（バックグラウンド調節、分位数正規化、対数変換および閾値決定）。４つのファイルからの正規化データを、ＰａｒｔｅｋＧｅｎｏｍｉｃｓソフトウェアにインポートした。これらのマイクロアレイのいずれにも提示されない遺伝子は除いた。ｍｉＲＮＡ分布における違いのために、異なる対数比カットオフ（それぞれのアレイについて約１の標準誤差に対応する）をそれぞれのアレイについて選定した：Ａｇｉｌｅｎｔについては０．２、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘについては０．４。対数比がカットオフよりも大きいｍｉＲＮＡをアレイ間で比較した。共通するｍｉＲＮＡを記録する。

Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２ルシフェラーゼ発現プラスミドへの３’ＵＴＲのクローン化
ＣＲＦＲ１の３’ＵＴＲ配列をマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲ増幅した。３’ＵＴＲのＰＣＲ断片を製造者のガイドラインに従ってｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）に連結し、さらに、Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２レポータープラスミド（Ｐｒｏｍｅｇａ）におけるルシフェラーゼの３’末端での単一ＮｏｔＩ部位にサブクローン化した。クローン化配向を診断的切断および配列決定によって確認した。

遺伝子導入およびルシフェラーゼアッセイ
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を７０％〜８５％の集密度まで４８ウエル形式でポリ−Ｌ−リシン上で成長させ、下記のプラスミドでポリエチレンイミンを使用して遺伝子導入した：Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２−３’ＵＴＲプラスミド、プレ−ｍｍｕ−ｍｉＲ−１５過剰発現ｐＥＧＦＰプラスミドまたはｐＥＧＦＰプラスミド単独（ｃｌｏｎｔｅｃｈ）。遺伝子導入の２４時間後、細胞を溶解し、ルシフェラーゼレポーター活性を以前の記載のようにアッセイした［ＣｈｅｎＡ．ｅｔａｌ．ＭｏｌＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌ（２００５）１９：４４１−５８］。ウミシイタケルシフェラーゼの値を、対照のホタルルシフェラーゼ（同じベクターから転写されるが、試験されている３’ＵＴＲによって影響されない）のレベルに対して正規化し、１条件あたり６回のウエル反復を平均化した。

結果
ｍｉＲ−１５ａおよびｍｉＲ−１５ｂは、急性拘束ストレス後９０分でアップレギュレーションとして現れた（図７Ａ〜Ｂ）。ｍｉＲ−１５ａおよびｍｉＲ−１５ｂの両方は、ＣＲＦＲ１−３’ＵＴＲを標的とすることが生物情報学的に予測された（図７Ｃ）。ＨＥＫ２９３Ｔ細胞中のｍｉＲ−１５ｂのインビトロ過剰発現は、ＣＲＦＲ１−３’ＵＴＲによって制御されるルシフェラーゼ発現のレベルを有意に低下させた（図７Ｄ）。
（実施例４Ｂ）

ＦＫＢＰ５に対するｍｉＲ１５の効果
材料および実験手順
上記実施例４Ａで示される通りである。

結果
アレイの結果では、ｍｉＲ−１５ａおよびＦＫ５０６結合タンパク質５（ＦＫＢＰ５としても知られる）はともに、対照群と比較して、「感受性あり」マウスおよび「立ち直りが早い」マウスにおいてアップレギュレーションされた（図２０Ａ〜Ｂ）。このことは、長期ストレスの結果としてのＲＩＳＣ複合体中でのそれらのアップレギュレーションを示唆している。

遺伝子調査では、外傷後ストレス障害、うつ病および不安症におけるＦＫＢＰ５の一定の役割を特定された。例えば、ＦＫＢＰ５における一ヌクレオチド多型（ＳＮＰ）が、成人の外傷後ストレス障害（ＰＴＳＤ）の重篤度を予測させる小児期の外傷と相互作用することが見出されている［Ｂｉｎｄｅｒ，Ｅ．Ｂ．ｅｔａｌ．，Ｎａｔｕｒｅｇｅｎｅｔｉｃｓ（２００４）３６：１３１９−１３２５］。これらの知見により、小児として虐待されている、これらのＳＮＰを有する個体は、成人としてＰＴＳＤに対する感受性がより大きいことが示唆される。ＦＫＢＰ５はまた、現在ＰＴＳＤを患っている個体ではそれほど発現されないことが見出されている［Ｙｅｈｕｄａ，Ｒ．ｅｔａｌ．，Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌｐｓｙｃｈｉａｔｒｙ（２００９）６６：７０８−７１１］。ＦＫＢＰ５遺伝子は、多数のポリアデニル化部位を有することが見出されており、また、より高比率のうつ病性障害と統計学的に関連する［Ｂｉｎｄｅｒｅｔａｌ．上掲］。

ＦＫＢＰ５の３’ＵＴＲのさらなる分析により、ＦＫＢＰ５の３’ＵＴＲが、ｍｉＲ−１５に対する１つの保存されたシードマッチを有することが明らかにされた（図２０Ｃ）。

実際、ｍｉＲ−１５ａがＦＫＢＰ５のｍＲＮＡを調節する場合、ｍｉＲ−１５ａおよびＦＫＢＰ５の両方が、（マイクロアレイの結果（図２０Ｂ）によって示されるように）Ａｇｏ−２沈殿物においてアップレギュレーションされ、扁桃体試料におけるＦＫＢＰ５のｍＲＮＡまたはタンパク質の全体的レベルが低下するはずであると予想された。

扁桃体においてｍｉＲ−１５ａとＦＫＢＰ５との間での相互作用が生じているかどうかを調べるために、「感受性あり」マウスおよび対照マウスの扁桃体由来の総ＲＮＡ試料に対するリアルタイムＰＣＲ分析を行った。図２１Ａ〜Ｂに示すように、ｍｉＲ−１５ａのレベルが、感受性ありのマウスから採取された総ＲＮＡ抽出物において増大し、これに対して、ＦＫＢＰ５のレベルが低下した。これらの結果は、ｍｉＲ−１５ａが長期ストレス条件の後の扁桃体においてＦＫＢＰ５のレベルを抑制することを示した。

ＦＫＢＰ５の無変異型および変異型の３’ＵＴＲ形態のルシフェラーゼアッセイ分析のためのクローン化が、ｍｉＲ−１５ａとＦＫＢＰ５との間における直接的な相互作用がインビトロで生じるかどうかを明らかにするために行われる。

ＦＫＢＰ５に加えて、ｍｉＲ−１５は、Ｓｔｘ１ａ（シンタキシン１ａ）、Ｓｇｋ１（血清／グルココルチコイド調節キナーゼ）およびＡｄｒｂ２を含めて、ストレス応答に関与する多くの遺伝子を潜在的に調節することができる（図２２）。
（実施例４Ｃ）

ｍｉＲ−１８１はグルタミン酸受容体を調節する
材料および実験手順
Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２ルシフェラーゼ発現プラスミドへの３’ＵＴＲのクローン化
Ｇｒｍ１、Ｇｒｉｋ３、Ｇｒｍ５、Ｇｒｉｋ２およびＧｒｍ７の３’ＵＴＲ配列をマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲ増幅した。３’ＵＴＲのＰＣＲ断片を製造者の指針に従ってｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）またはｐＪＥＴ１．２ベクター（Ｆｅｒｍｅｎｔａｓ）に連結し、さらに、Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２レポータープラスミド（Ｐｒｏｍｅｇａ）中のルシフェラーゼの３’末端の単一ＮｏｔＩまたはＸｈｏＩ部位にサブクローン化した。クローン化配向を診断的切断および配列決定によって確認した。

長期社会的敗北
マウスを、以前に記載した社会的敗北プロトコルに供した［ＫｒｉｓｈｎａｎＶ．ｅｔａｌ．Ｃｅｌｌ（２００７）１３１：３９１−４０４］。簡単に説明すると、マウスを攻撃的ＩＣＲマウスのホームケージに入れ、そこで、マウスは５分間にわたって物理的に触れ合った。この期間中に、ＩＣＲマウスは侵入マウスを攻撃し、侵入マウスは従属的態度を示した。その後、穴の開いた透明なプレキシガラス仕切り板を動物の間に置き、マウスを、感覚的接触を許すために２４時間にわたって同じケージに留めた。その後、この手順を、その後の１０日のそれぞれについて、未知のＩＣＲマウスを用いて繰り返した。

結果
ｍｉＲ−１８１ｄのレベルが、長期ストレスに苦しむマウスにおいて有意に増大した（図２３）。ｍｉＲ−１８１と潜在的なｍＲＮＡ標的との間における相互作用を見出そうとする試みにおいて、本発明者らは、ｍｉＲ−１８１が多くの型のグルタミン酸受容体を調節することが可能であることを発見した。一般に、グルタミン酸受容体は下記の２つのグループに分けることができる：イオンチャネル型グルタミン酸受容体（ｉＧｌｕＲ）、これは、グルタミン酸がこの受容体が結合するときに活性化するイオンチャネル細孔を形成する；および、代謝型グルタミン酸受容体（ｍＧｌｕＲ）、これは、Ｇタンパク質を伴うシグナル伝達カスケードを介して原形質膜上のイオンチャネルを間接的に活性化する。

多くの特異的サブタイプのグルタミン酸受容体のなかで、グルタミン酸よりも高い選択性で受容体に結合する化学物質によって一次サブタイプを参照することが慣例的である。だが、様々なサブタイプが特定され、化学的親和性が測定されているので、研究は進行中である。いくつかの化合物がグルタミン酸受容体の研究では定常的に用いられており、受容体サブタイプと関連付けられる：

(表６)
表６：サブグループに分類されたグルタミン酸受容体

図２４および２５に示されるように、ｍｉＲ−１８１の保存されているすべての予測標的のなかで、６つのグルタミン酸受容体（Ｇｒｍ１、Ｇｒｉｋ３、Ｇｒｍ５、Ｇｒｉａ２、Ｇｒｉｋ２およびＧｒｍ７）が存在する。

ｍｉＲ−１８１ａが海馬ニューロンにおけるＧｒｉａ２の表面発現を制御することが以前に示されている［Ｓａｂａ．Ｒ．ｅｔａｌ．，ＭｏｌｅｃｕｌａｒａｎｄＣｅｌｌｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（２０１２）３２（３）：６１９−３２］。ルシフェラーゼアッセイを、ｍｉＲＮＡ−ｍＲＮＡ相互作用を確認するために実施中である。さらに、条件的なｍｉＲ−１８１ＫＯマウス系統が特定のｃｒｅ系統と交雑され、それにより、特定の脳核におけるｍｉＲ−１８１の欠失を得ている。
（実施例５Ａ）

ｍｉＲ−１８２ａは、正常なニューロン活性の微調整因子であり、また、精神病理学的行動の微調整因子である
材料および実験手順
Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２ルシフェラーゼ発現プラスミドへの３’ＵＴＲのクローン化
Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲ配列をマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲ増幅した。３’ＵＴＲのＰＣＲ断片を製造者のガイドラインに従ってｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）に連結し、さらに、Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２レポータープラスミド（Ｐｒｏｍｅｇａ）におけるルシフェラーゼの３’末端での単一ＮｏｔＩ部位にサブクローン化した。クローン化配向を診断的切断および配列決定によって確認した。

遺伝子導入およびルシフェラーゼアッセイ
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を７０％〜８５％の集密度まで４８ウエル形式でポリ−Ｌ−リシン上で成長させ、次記のプラスミドでポリエチレンイミンを使用して遺伝子導入した：Ｐｓｉｃｈｅｃｋ２−３’ＵＴＲプラスミド、プレ−ｍｍｕ−ｍｉＲ−１８２過剰発現ｐＥＧＦＰプラスミドまたはｐＥＧＦＰプラスミド単独（ｃｌｏｎｔｅｃｈ）。遺伝子導入の２４時間後、細胞を溶解し、ルシフェラーゼレポーター活性を以前に記載のようにアッセイした［ＣｈｅｎＡ．ｅｔａｌ．ＭｏｌＥｎｄｏｃｒｉｎｏｌ（２００５）１９：４４１−５８］。ウミシイタケルシフェラーゼの値を、対照のホタルルシフェラーゼ（同じベクターから転写されるが、試験されている３’ＵＴＲによって影響されない）のレベルに対して正規化し、１条件あたり６回のウエル反復を平均化した。

長期社会的敗北
マウスを、以前に記載した社会的敗北プロトコルに供した［ＫｒｉｓｈｎａｎＶ．ｅｔａｌ．Ｃｅｌｌ（２００７）１３１：３９１−４０４］。簡単に説明すると、マウスを攻撃的ＩＣＲマウスのホームケージに入れ、これらのマウスは５分間にわたって物理的に相互に影響し合った。この期間中に、ＩＣＲマウスは侵入マウスを攻撃し、侵入マウスは従属的態度を示した。その後、穴の開いた透明なプレキシガラス仕切り板を動物の間に置き、マウスを、感覚的接触を許すために２４時間にわたって同じケージに留めた。その後、この手順を、その後の１０日のそれぞれについて、未知のＩＣＲマウスを用いて繰り返した。

縫線核の顕微解剖および血漿収集
脳を取り出し、アクリル脳マトリックス（Ｓｔｏｅｌｔｉｎｇ）に置いた後、マウスの縫線核（ＲＮ）から脳試料を採取した。スライス片を、指定解剖学的マーカーに基づいて、標準的なカミソリ刃（ＧＥＭ）を使用して採取した。先を鈍くした１４Ｇ注射器を使用して、ＲＮ領域を、マトリックスから取り出された３ｍｍのスライス片から抜き取った。

ｍｉＲ１８２過剰発現ウイルスベクターのクローン化
プレ−ｍｉＲ−１８２を、制限酵素のＡｇｅＩ部位を付加するプライマーとともにマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲによって増幅し、その後、ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）に挿入（ｉｎＳｌｃ６ａ４ｅｄ）した。ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙの配列決定、ならびに、ＡｇｅＩによるｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙおよびｐＥＧＦＰベクター（ＣｌｏｎｔｅｃｈｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｃ．，ＭｏｕｎｔａｉｎＶｉｅｗ，ＣＡ）の両方を消化の後、未成熟ｍｉＲ−１８２配列をｐＥＧＦＰベクターに連結して、発現プラスミドｐＥＧＦＰ−ｍｉＲ−１８２を構築した。その後で、ｐＥＧＦＰ−ｍｉＲ−１８２を、ｐＣＳＣ−Ｅ／Ｓｙｎ−ｅＧＦＰプラスミドを同じ酵素で切断するのと並行してＢａｍＨＩおよびＢｓｒＧＩによって切断し、ｍｉＲ−１８２−ｅＧＦＰ配列をｐＣＳＣ−Ｅ／Ｓｙｎに連結して、ｐＣＳＣ−ｅＳＮＹ−ｐｒｅ−ｍｉＲ−１８２−ｅＧＦＰプラスミドを構築し、これを制限エンドヌクレアーゼ分析およびＤＮＡ配列決定によって確認した。

結果
現在に至るまで、ｍｉＲ−１８２は、主に癌関連の研究、例えば、ヒト肺腺癌細胞、神経膠腫、乳癌、膀胱癌、メラノーマおよびＤＮＡ修復において報告されていた。加えて、ｍｉＲ−１８２は、発達過程（例えば、内耳および網膜の発達など）に関与すること、Ｔリンパ球の活性化において免疫系に関与すること、また、狼瘡疾患に関与することが見出された。神経系においては、ｍｉ−Ｒ１８２が、感覚器官特異的なラット後根神経節において、また、概日時計調整因子として暗示され、一方で、プレ−ｍｉＲ−１８２の遺伝子変化型の間における相関が大うつ病患者において見出された［ＳａｕｓＥｅｔａｌ．，ＨｕｍＭｏｌＧｅｎｅｔ．（２０１０）１９（２０）：４０１７−２５］。加えて、ｍｉＲ−１８２が、立ち直りが早い行動から学習性無力行動までの雄ラットの前頭前皮質においてダウンレギュレーションされるとして他の１２個のｍｉＲに位置づけられた［ＳｍａｌｈｅｉｓｅｒＮＲｅｔａｌ．，ＩｎｔＪＮｅｕｒｏｐｓｙｃｈｏｐｈａｒｍａｃｏｌ．（２０１１）１−１１］。

５ＨＴｍｉＲマイクロアレイ分析の一部として行われたＨｔｒ１ａ３’ＵＴＲの生物情報学的分析では、ｍｉＲ−１８２によるこの遺伝子の標的化の可能性が暗示された。したがって、本発明者らは、ルシフェラーゼアッセイを介したインビトロ試験を行い、これにより、ｍｉＲ−１８２によるＨｔ１ａ３’ＵＴＲの強い抑制が明らかにされた（図８）。ｍｉＲ−１８２の２つの保存されたシードマッチ配列がＨｔｒ１ａのマウス３’ＵＴＲに現れた。

調節調査では、対照と比較して、長期社会的敗北にさらされた成体雄マウスのＲＮにおけるｍｉＲ−１８２発現レベルのダウンレギュレーションの強い傾向が示された（図９）。このことは、うつ病様行動を誘導することが知られている環境刺激に対する分子応答におけるｍｉＲ−１８２の関与を示唆している。

ｍｉＲ−１８２の標的化予測を２つのデータベースで生成するさらなる生物情報学分析では、正常な状態および病理学的な状態の両方におけるニューロン活性に関連づけられる遺伝子を含む、潜在的な標的のロングリストが明らかにされた（図１０）。

ｍｉＲ−１８２を特異的なｍｉＲ標的相互作用の特定についてインビトロでさらに試験するために、また、正常な行動および病理学的な行動の調節におけるｍｉＲ−１８２の役割をインビボで明らかにするために、ｍｉＲ−１８２を操作するためのプラスミドおよびレンチウイルス系を開発した。ニューロン特異的過剰発現のレンチウイルスを製造し（図１１Ａ）、ニューロン細胞株Ｎ２ａでインビトロ試験を行った。これらの結果により、対照と比較して、増大したｍｉＲ−１８２レベルが、ｍｉＲ−１８２過剰発現レンチウイルスに感染した細胞において明らかにされた（図１１Ｂ）。ｍｉＡｒｒｅｓｔと名づけられた、ｍｉＲ−１８２に特異的なノックダウンプラスミド配列（Ｇｅｎｅｃｏｐｏｅｉａ，Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ，ＭＤ，ＵＳＡ、図１１Ｃ）を購入し、ウイルス構築物にサブクローン化した（図１１Ｃ）。これらの系が、細胞培養において、また、成体マウス脳への部位特異的注入によって試験される。

ｍｉＲ−１８２用のヌルマウスが、網膜の発達におけるｍｉＲの役割を調査するために開発される。近年、本発明者らは、この系統のための繁殖ペアを得た。コロニーが生じると、ｍｉＲ−１８２ＫＯおよびそれらのＷＴ型の同腹子（ｌｉｔｅｒｍａｔｅ）が行動的および生理学的に表現型分類されている。
(実施例６)

急性ストレスによるｍｉＲ１８２発現レベルの調節
材料および実験手順
上記実施例５Ａに記載の通りである。

結果
ｍｉＲ１８２レベルに対する急性ストレスの効果を調べた。図２６に示されるように、急性拘束ストレスは、マウスの縫線核（ＲＮ）において、ストレス誘導後２４時間でｍｉＲ１８２発現レベルの低下を引き起こした（Ｐ＜０．０１）。ｍｉＲ１８２は、急性ストレス後および長期ストレス後の両方で縫線核において低下した発現レベルを示した。このことは、ｍｉＲ１８２が、可能性として、シナプスの５−ＨＴレベルを調節する標的遺伝子Ｈｔ１ａの効力を生じさせることによって、縫線核におけるストレスに対する分子応答の調節に一定の役割を有することを示唆している。

ｍｉＲ１８２の予測標的遺伝子に関するｍｉＲ−標的相互作用アッセイ
ルシフェラーゼアッセイを使用して、ｍｉＲ１８２の１１個の予測された標的遺伝子（これらは広範囲の生物情報学的調査により選定された）を調べた（図２７）。標的遺伝子の３’ＵＴＲをインビトロ試験して、ｍｉＲ１８２が、コンジュゲートされたレポーター遺伝子ルシフェラーゼの活性によって測定される抑制効果を有するかを調べた。試験された１１個の遺伝子のうち、３つの遺伝子、すなわち、Ｄｓｃａｍ（ダウン症候群細胞接着分子）、Ｌ１ｃａｍ（細胞接着分子Ｌ１）およびＴｓｎａｘ（トランスリン会合タンパク質Ｘ）により、ルシフェラーゼアッセイの場合のようにｍｉＲ１８２による抑制効果が明らかにされた（図２７）。ｍｉＲ１８２の上記標的遺伝子の３’ＵＴＲを試験した場合、ｍｉＲ１８２に対する保存されたシードマッチ配列が、Ｔｓｎａｘ、Ｌ１ｃａｍの両方およびＤｓｃａｍにおいて認められ、このことは、このｍｉＲ−標的相互作用が機能的役割を有することを示唆した（データは示さず）。

次に、これら３つの遺伝子に対するｍｉＲ１８２の直接的な抑制効果を確認した。したがって、３’ＵＴＲを、ｍｉＲ１８２のシードマッチ配列を除くために変異させ、通常の３’ＵＴＲをルシフェラーゼアッセイによってインビトロで変異型３’ＵＴＲと比較した。Ｌ１ｃａｍの３’ＵＴＲに対するｍｉＲ１８２の抑制効果が、そのシードマッチ配列を変異させた場合にはなくなり（図２８）、また、同様に、Ｔｓｎａｘに対するｍｉＲ１８２の影響が、変異させた３’ＵＴＲではなくなった（図２９）。このことは、ｍｉＲ１８２がこの遺伝子を直接的に標的としたことを示している。変異させた３’ＵＴＲを有するＤｓｃａｍおよびＨｔｒ１ａに対しても同様な確認が行われる。

ｍｉＲ１８２を欠いているマウスモデルが、ｍｉＲ１８２とその標的遺伝子との間での相互作用をインビボで調査するために使用される。本発明者らは、ｍｉＲ１８２ＫＯマウスの行動表現型を、社会的行動、学習および記憶、ならびに、統合失調症様行動に関する試験により調査している。
(実施例７)

ｍｉＲ１３５ノックダウン系の確立；クローン化、レンチウイルス作製、ならびに、インビトロおよびインビボでの検証
材料および実験手順
ｍｉＲ１３５ＫＤウイルスベクターのクローン化
ｍｉＲ１３５ｂＫＤプラスミドのｐＥＺＸ−Ｈ１−ｍｉＲ１３５ＫＤ−ＣＭＶ−ｍＣｈｅｒｒｙおよび対照のｐＥＺＸ−Ｈ１−対照ＫＤ−ＣＭＶ−ｍＣｈｅｒｒｙをＧｅｎｅＣｏｐｅｉａ（ＵＳＡ）から購入した。Ｈ１プロモーターおよびＫＤ配列を、側方ＮｈｅＩ部位を有するプライマーを使用して増幅し、ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙに連結した。ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙを配列決定し、ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙおよびｐ１５６−ｐＲＲＬ−ＣＭＶ−ＧＦＰの両方をＮｈｅＩ部位により消化した後、Ｈ１−ＫＤｍｉＲと、ニック導入のｐ１５６とを連結して、ｐ１５６−ｐＲＲＬ−Ｈ１−ｍｉＲ１３５ｂＫＤ−ＣＭＶ−ＧＦＰおよびｐ１５６−ｐＲＲＬ−Ｈ１−対照ＫＤ−ＣＭＶ−ＧＦＰを作製した。

結果
マウスの５−ＨＴ関連行動に対するＲＮにおける低下したｍｉＲ１３５レベルの影響を評価するために、プラスミドベースｍｉＲ１３５ｂ阻害剤を利用し、その効率をルシフェラーゼアッセイで試験した。このアッセイでは、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞が、ｍｉＲ１３５ＯＥプラスミド、ｍｉＲ１３５ＫＤプラスミドおよび３’ＵＴＲプラスミドにより同時遺伝子導入され（ｃｏ−ｔｒａｎｓｅｃｔｅｄ）、ｍｉＲ１３５ｂＫＤプラスミドが、Ｓｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲに対するｍｉＲ１３５の抑制効果をブロックできるかが試験された。Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲのｍｉＲ１３５ｂ抑制効果がｍｉＲ１３５ＫＤプラスミドによってブロックされた（図３０Ａ）。同様に、Ｓｌａｃ６ａ４の３’ＵＴＲに対するｍｉＲ１３５ｂの効果がｍｉＲ１３５ＫＤによってブロックされた（図３０Ｂ）。これらの結果は、ｍｉＲ１３５ＫＤプラスミドが実際にｍｉＲ１３５の生物学的活性をブロックすることを示している。

ｍｉＲ１３５ＫＤ配列および対照配列をウイルスベクターにサブクローン化し（図３０Ｃ）、異なるノックダウン（ＫＤ）配列を発現するレンチウイルスを作製した。脳組織に感染するレンチウイルスの能力を試験するために、マウスのＲＮにレンチウイルスのいずれか１つを感染させた。実際、感染はＧＦＰの発現を誘発し（図３０Ｄ〜Ｅ）、これにより、ｍｉＲ１３５ｂＫＤレンチウイルスの脳組織に感染する能力を明らかにした。
(実施例８)

成体マウスのＲＮにおけるｍｉＲ１３５ノックダウンの行動的効果
材料および実験手順
行動評価
マウスを、上記実施例６で記載されるような不安症およびうつ病様行動に関する試験を使用して行動的に特徴づけした。

結果
ｍｉＲ１３５ＫＤレンチウイルスのインビトロおよびインビボ検証の後で、ｍｉＲ１３５ＫＤレンチウイルスを使用して、ＲＮにおけるｍｉＲ１３５のレベルを操作し、また、マウスの行動に対するそれらの影響を試験した。成体マウスに、ｍｉＲ１３５ＫＤレンチウイルスまたはＫＤ対照レンチウイルスのどちらかをＲＮに対して注入し、回復期間の後、マウスを不安症およびうつ病様行動について試験した。ｍｉＲ１３５は５−ＨＴの負の調節因子を抑制するので、本発明者らは、ｍｉＲ１３５ＫＤがシナプスにおける５−ＨＴレベルを低下させ、それによって、増大した不安症およびうつ病様行動を引き起こすことを予想した。

オープンフィールド試験において、差が群間に何ら認められず（図３１Ａ）、しかしながら、高架式十字迷路試験では、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスが、壁のない走行路において時間をあまり費やさない傾向（Ｐ＝０．０６４４）および壁のない走行路においてあまり訪問しない傾向（Ｐ＝０．０５７２）を明らかにすることによって（図３１Ｂ）、より大きい不安様行動を明らかにした。加えて、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスは、壁のない走行路において有意に少ない距離を歩行し（Ｐ＝０．０４３３）、壁のない走行路におけるより長い訪問傾向を有した（Ｐ＝０．０１２４）（図３１Ｂ）。同様に、基礎的ストレス条件のもとで行われた明暗箱テストにおいて、ｍｉＲ１３５ＫＤマウスは、明箱において時間をあまり過ごさないこと（Ｐ＝０．０４５４、図３１Ｃ）、明箱をあまり訪問しないこと（Ｐ＝０．０１０７、図３１Ｄ）、および、明箱においてより小さい距離を歩行すること（Ｐ＝０．０４０２ｓ、図３１Ｅ）によって、対照と比較して、有意に増大した不安様行動を明らかにした。これらの結果は、急性ストレス後４０分および２４時間でのｍｉＲ１３５レベルにおける低下を示した（図３０Ａ〜Ｂ）。したがって、現在の理論は、ストレスを受けたｍｉＲ１３５ＫＤマウスは、急性ストレスの後で試験されたとき、不安様行動がそれらの対照と異ならないと思われるということであった。これは、対照マウスはまた、ストレスに起因する低下したｍｉＲ１３５レベルを有すると思われるからである。実際、明暗箱テストで再試験されたときの群間には、急性ストレス後４０分または２４時間で試験されたときの両方で、いずれのパラメーターにおいても、どのような差も認められなかった（図３１Ｃ〜Ｅ）。

ｍｉＲ１３５ＫＤのうつ病様行動を、基礎的条件下および薬理学的操作後の両方で試験した。ｍｉＲ１３５のレベルは、ＳＳＲＩ投与後、ＲＮにおいて増大することが示されたので（図３１Ｅ）、推測は、ｍｉＲ１３５レベルの低下は、ＳＳＲＩに対する低下した応答をもたらすか可能性があるということであった。基礎的レベルおよびＳＳＲＩ投与後の両方で行われた尾懸垂試験では、ｍｉＲ１３５ｂＫＤマウスと、対照ＫＤマウスとの間には、不動時間において差が無く（図３１Ｆ）、ＳＳＲＩ処置に起因する不動時間の予想された減少が観測された（Ｐ＜０．０００８）。しかしながら、強制水泳試験では、ＳＳＲＩ注射の主効果（Ｐ＜０．０００１）に加えて、ＳＳＲＩが注射されたｍｉＲ１３５ＫＤマウスの方が、対照ＫＤマウスと比較して、試験の最後の２分においてより高い程度の不動であった（Ｐ＝０．０１４１、５分；Ｐ＝０．０４０４、６分；図３１Ｇ）。このことは、ＳＳＲＩの抗うつ効果が、ｍｉＲ１３５のレベルをＲＮにおいて低下させることによって弱まることを示唆している。この結果は、ｍｉＲ１３５が、ＳＳＲＩによって引き起こされる行動変化をもたらす内在的変化の一部であることを暗示している。
(実施例９)

５−ＨＴニューロン中のｍｉＲ１３５の過剰発現
材料および実験手順
５−ＨＴニューロン中でｍｉＲ１３５ａを過剰発現するマウスを、ｍｉＲ１３５およびその標的遺伝子の発現レベルと行動的なものの両方の点で、それらの同腹子対照に対して比較した。

結果
特にマウスのＲＮ中の５−ＨＴニューロンにおいてｍｉＲ１３５のレベルを操作することの効果を不安症およびうつ病様行動について試験した。その目的のために、Ｃｒｅ−ｌｏｘＰ系を使用する遺伝子系を開発した。具体的には、５−ＨＴ特異性を、Ｃｒｅリコンビナーゼを５−ＨＴＲＮ陽性ニューロン中で特異的に発現するｅＰｅｔＣｒｅマウスを使用して得た。また、ｍｉＲ１３５の過剰発現を、５−ＨＴ特異的Ｃｒｅ系統（ｅＰｅｔＣｒｅ）を、ｍｉＲ１３５ａに対して条件的過剰発現を有するトランスジェニックマウス系統と交雑することによって行った（図３２）。

特に、５−ＨＴニューロン中でｍｉＲ１３５を過剰発現するマウス（ｍｉＲ１３５ＯＥ）のＲＮにおけるｍｉＲ１３５発現レベルを、ｍｉＲ１３５のリアルタイムＰＣＲによって試験し、ｍｉＲ１３５の条件的過剰発現アレルに対し陽性であるが、ｅＰｅｔＣＲＥに対し陰性である対照マウスと比較した。ｍｉＲ１３５ＯＥマウスは、対照マウスと比較して、２倍近い過剰発現を明らかにした（図３３Ａ；Ｐ＜０．０５）。ｍｉＲ１３５の過剰発現レベルは、ＳＳＲＩ投与後のマウスのＲＮで測定されるレベルと類似していた。このことは、このマウス系統が、ｍｉＲ１３５の抗うつ剤の特徴を研究するための良好なモデルであることを示唆している。加えて、ｍｉＲ１３５標的遺伝子のｍＲＮＡ、すなわち、Ｓｌｃ６ａ４（図３３Ｂ；Ｐ＜０．０５）およびＨｔｒ１ａ（図３３Ｃ；Ｐ＜０．１）が、対照と比較して、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスのＲＮでダウンレギュレーションされ、このことにより、その標的遺伝子のｍｉＲ１３５によるインビボ抑制が明らかにされた。

ｍｉＲ１３５の過剰発現を特に５−ＨＴニューロンにおいて試験するために、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスおよびそれらの同腹子対照を長期社会的敗北パラダイム（うつ病および不安様行動を誘導することが知られている手順）に供し、続いて、不安症およびうつ病様行動について試験した。

ｍｉＲ１３５ＯＥマウスは、対照の同腹子と比較して、社会的敗北の後に増大した不安様行動を明らかにした。オープンフィールドでは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスの増大した不安の傾向が、中心への時間および中心訪問回数において観測された（Ｐ＜０．１、図３４Ａ）。一方、明暗箱テストでは、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスはより多くの時間を明箱において過ごし（Ｐ＜０．０５、図３４Ｂ）、明箱においてあまり時間を過ごさなかった（Ｐ＜０．０１、図３４Ｂ）。類似する結果が高架式十字迷路において観測され（Ｐ＜０．０５、図３４Ｂ）、一方、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスは、より多くの時間を壁のない走行路において過ごし（Ｐ＜０．０５、図３４Ｃ）、より長い距離を壁のない走行路において移動した（Ｐ＜０．０５、図３４Ｃ）。

社会的敗北後のｍｉＲ１３５ＯＥマウスのうつ病様行動が、対照同腹子のうつ病様行動よりも少なかった。強制水泳試験における著しく減少した不動時間（Ｐ＜０．０５、図３４Ｅ）に加えて、対照と比較して、ｍｉＲ１３５ＯＥマウスの減少した不動時間への傾向が、尾懸垂試験において観測された（Ｐ＜０．１、図３４Ｄ）。

ｍｉＲ−１３５セクションにおける材料および実験手順
５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡマイクロアレイ
ｅＰｅｔ−ＥＹＦＰマウスの１２日目の胎仔由来の後脳細胞を培養し、前に記載（Ｗｙｌｉｅｅｔａｌ．，２０１０）のようにＦＡＣＳ選別して、５ＨＴＹＦＰ陽性ニューロンを周りの非５ＨＴＹＦＰ陰性細胞から区別した。ｍｉＲＮＡ集団を含み、それぞれの細胞型由来の３つの生物学的反復を有する総ＲＮＡを製造者の説明書に従って精製し、標識し、ＳａｎｇｅｒｍｉＲＢａｓｅ（リリース１２．０）をベースにしたＡｇｉｌｅｎｔＭｏｕｓｅｍｉＲＮＡＭｉｃｒｏａｒｒａｙ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈ，Ｍｉｓｓｉｓｓａｕｇａ，ＯＮ，Ｃａｎａｄａ）設計番号０２１８２８を使ってハイブリダイゼーションした。マイクロアレイを走査し、データを、ＦｅａｔｕｒｅＥｘｔｒａｃｔｉｏｎＳｏｆｔｗａｒｅ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を使用して抽出し、処理した。走査後、ＧｅｎｅＶｉｅｗ．ｔｘｔファイルの強度出力データを分析して、マイクロＲＮＡの相対的発現差異を、Ｐａｒｔｅｋ（登録商標）ＧｅｎｏｍｉｃｓＳｕｉｔｅ（ＰａｒｔｅｋＩｎｃ．，Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を使用して定量化した。データをｌｏｇ２変換し、分位数正規化し、ＧｅｎｅＶｉｅｗファイルのフラグ「ｇＩｓＧｅｎｅＤｅｔｅｃｔｅｄ」に従って選別した。６６６個のマウスｍｉＲのうち、この選別ステップ後に、１９８個がさらなる分析のために残った。その後、示差的に発現したｍｉＲを、１．５倍の変化率の閾値を使って特定した。

ｐｓｉＣＨＥＫ−２ルシフェラーゼ発現プラスミドへの標的転写物３’ＵＴＲのクローン化
Ｓｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ配列をマウスのゲノムＤＮＡからＰＣＲ増幅した。３’ＵＴＲのＰＣＲ断片を製造者のガイドラインに従ってｐＧＥＭ−Ｔｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）に連結し、さらに、ｐｓｉＣＨＥＣＫ−２レポータープラスミド（Ｐｒｏｍｅｇａ）におけるルシフェラーゼの３’末端の単一ＮｏｔＩ部位にサブクローン化した。ｍｉＲ−１３５シード配列を欠いている変異３’ＵＴＲ配列を、シードマッチ配列全体にわたるプライマーオーバーハングとともに合成した。クローン化配向を診断的切断および配列決定によって確認した。

(表７)
表７：クローニングに使用したオリゴヌクレオチドプライマー

遺伝子導入およびルシフェラーゼアッセイ
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を７０％〜８５％の集密度まで組織培養プレートのポリ−Ｌ−リシン上で成長させ、次記のプラスミドでポリエチレンイミンを使用して遺伝子導入した：野生型または変異型３’ＵＴＲおよび特定のｍｉＲＮＡ（配列番号２１０で示されるｍｉＲ−１３５ａまたは配列番号２１１で示されるｍｉＲ−１３５ｂ）用の過剰発現ベクターを含むｐｓｉＣＨＥＣＫ−２プラスミド、または空の過剰発現プラスミド。遺伝子導入の２４時間後、細胞を溶解し、ルシフェラーゼレポーター活性を以前に記載のようにアッセイした（Ｋｕｐｅｒｍａｎｅｔａｌ．，２０１１）。ウミシイタケルシフェラーゼの値を、対照のホタルルシフェラーゼ（同じベクターから転写されるが、試験されている３’ＵＴＲによって影響されない）のレベルに対して正規化し、１条件あたり６回の反復を平均化した。

動物および収容
成体Ｃ５７ＢＬ／６雄マウス（Ｈａｒｌａｎ，Ｊｅｒｕｓａｌｅｍ，Ｉｓｒａｅｌ）をインビボレンチウイルス実験用に使用した。特異的にセロトニン作動性ニューロン中でＣｒｅリコンビナーゼを発現しているｅＰｅｔ−Ｃｒｅマウスを以前記載したように使用した（Ｓｃｏｔｔｅｔａｌ．，２００５）。ｍｉＲ−１３５過剰発現用の条件付きカセットを有する遺伝子導入マウスも使用した。マウスを逆の１２時間の明暗周期で温度制御室（２２±１℃）に収容した。食物および水を自由に摂取させた。すべての実験プロトコルを雄マウスで行い、これらはＷｅｉｚｍａｎｎＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＳｃｉｅｎｃｅの研究所実験動物委員会によって承認された。

アンフェタミン誘導運動亢進ラットモデル
これらの実験では、ラットを均等に４つの処置群に分割する。ラットをｍｉＲ−１３５、リチウム、バルプロ酸、または生理食塩水（対照）で前処置した後、各群の半分のラットにアンフェタミン（０．５ｍｇ／ｋｇ皮下（ｓ．ｃ．）に）を投与し、残りの半分のラットに生理食塩水を投与（ｓ．ｃ．）する。

あるいは、最初に、ラットにアンフェタミン（０．５ｍｇ／ｋｇ皮下（ｓ．ｃ．）に）または生理食塩水（ｓ．ｃ．）を投与し、続けて、ｍｉＲ−１３５、リチウム、バルプロ酸、または生理食塩水（対照）で処置する。

１０分後、全てのラットを活動量計に置き、前処置されたまたはｍｉＲ−１３５で処置されたラットの活動を、非処置ラット（対照群）および前処置されたまたはリチウムまたはバルプロ酸で処置されたラットと比較する。１週後に、手順が繰り返される。

ケタミン誘導運動亢進ラットモデル
これらの実験では、ラットを４つの処置群：対照、リチウム、バルプロ酸およびｍｉＲ−１３５処理ラット、に均等に分割し、次のように処置する：
ラットは、ｍｉＲ−１３５、リチウム（４７．５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．、１日２回）、バルプロ酸（２００ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．、１日２回）または対照としての生理食塩水（ｉ．ｐ．、１日２回）で前処置される（１４日間）。８〜１４日の間に、これらのラットはケタミン（２５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）または生理食塩水で処置される。
逆プロトコルでは、ラットはケタミン（２５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）または生理食塩水を最初に投与され、続けて、ｍｉＲ−１３５、リチウム、バルプロ酸、または生理食塩水を７日間投与される。その後、ラットの活動性が本明細書で考察のようにモニターされる。

長期社会的敗北
マウスを、以前に記載した社会的敗北プロトコルに供した（Ｅｌｌｉｏｔｔｅｔａｌ．，２０１０）。簡単に説明すると、マウスを攻撃的ＩＣＲマウスのホームケージに入れ、そこで、マウスは５分間にわたって物理的に触れ合った。この期間中に、ＩＣＲマウスは侵入マウスを攻撃し、侵入マウスは従属的態度を示した。その後、穴の開いた透明なプレキシガラス仕切り板を動物の間に置き、マウスを、感覚的接触を許すために２４時間にわたって同じケージに留めた。その後、この手順を、その後の１０日のそれぞれについて、未知のＩＣＲマウスを用いて繰り返した。

抗うつ剤処置
マウスは、三環系のイミプラミンまたはＳＳＲＩのフルオキセチンまたはＮＲＩのレボキセチン（生理食塩水中の２０ｍｇ／ｋｇ）または生理食塩水のｉ．ｐ．注射を受けた。長期注射を１８日間〜２１日間連続して行い、急性注射を脳の顕微解剖の２４時間前に行った。行動試験のために、試験の３０分前に、マウスに２０ｍｇ／ｋｇのＳＳＲＩをｉ．ｐ．注射した。

脳顕微解剖
アクリル脳マトリックス（Ｓｔｏｅｌｔｉｎｇ）を使って、マウスの縫線核（ＲＮ）から脳試料を採取した。スライス片を、指定解剖学的マーカーに基づいて、標準的なカミソリ刃を使用して採取した。先を鈍くした１４Ｇ注射器を使用して、縫線核領域を、２ｍｍのスライス片から抽出し、ＲＮＡ精製まで組織を−７０℃で保持した。

マイクロＲＮＡの精製および定量リアルタイムＰＣＲ発現分析
マイクロＲＮＡを含むｍＲＮＡを、ｍｉＲＮｅａｓｙミニキット（Ｑｉａｇｅｎ）を製造者の説明書に従って使用して単離し、ｍｉＳｃｒｉｐｔ逆転写キットを使用して処理し、ｃＤＮＡを生成した。その後、試料を、ＳＹＢＲ（登録商標）ＧｒｅｅｎＰＣＲキット（Ｑｉａｇｅｎ）を製造者のガイドラインに従って使用して、ＡＢ７５００サーモサイクラー（ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）で分析した。それぞれのｍｉＲのための特異的プライマーを市販のユニバーサルプライマーと一緒に使用し、同時に、Ｕ６のｓｎＲＮＡを内部対照として使用した。ｍＲＮＡ定量化のために、ソフトウェア「ｐｒｉｍｅｒｅｘｐｒｅｓｓ２」を使って、それぞれの転写物用に特異的プライマーを設計し、以前記載したように（Ｈａｒａｍａｔｉｅｔａｌ．，２０１１）リアルタイムＰＣＲを使って発現を試験した。

(表８)
表８：マイクロＲＮＡリアルタイムＰＣＲ用に使用したオリゴヌクレオチドプライマー

(表９)
表９：ｍＲＮＡリアルタイムＰＣＲ用に使用したオリゴヌクレオチドプライマー

ｍｉＲ−１３５ノックダウンレンチウイルス構築物のクローニング、レンチウイルスの作製およびインビトロ検証
ｍｉＲ−１３５ノックダウン（ＫＤ）プラスミドのｐＥＺＸ−Ｈ１−ｍｉＲ１３５ＫＤ−ＣＭＶ−ｍＣｈｅｒｒｙおよび対照のｐＥＺＸ−Ｈ１−対照ＫＤ−ＣＭＶ−ｍＣｈｅｒｒｙをＧｅｎｅＣｏｐｅｉａ（ＵＳＡ）から購入した。Ｈ１プロモーターおよびＫＤ配列を、ＮｈｅＩ側方部位を有するプライマーを使用して増幅し、ｐＧＥＭ−ＴＥａｓｙベクターに連結した。Ｈ１−１３５ＫＤ断片をＮｈｅＩ制限酵素部位を使ってｐ１５６−ｐＲＲＬ−ＣＭＶ−ＧＦＰレンチウイルス構築物にサブクローン化し、ｐ１５６−ｐＲＲＬ−Ｈ１−ｍｉＲ−１３５ｂＫＤ−ＣＭＶ−ＧＦＰおよびｐ１５６−ｐＲＲＬＨ１−対照ＫＤ−ＣＭＶ−ＧＦＰレンチウイルス構築物を生成し、これをＤＮＡ配列決定によりさらに確認した。組換えレンチウイルスを、以前に記載のように（Ｔｉｓｃｏｒｎｉａｅｔａｌ．，２００６）、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞の一過性遺伝子導入によって作製した。簡単に説明すると、感染性レンチウイルスを遺伝子導入後４８時間および７２時間で集め、０．４５μｍ細孔の酢酸セルロースフィルターでろ過し、超遠心分離によって濃縮した。ｍｉＲ−１３５ＫＤ効率検証のために、ラット縫線核細胞株（ＲＮ４６Ａ）をｍｉＲ−１３５ＫＤまたは対照ＫＤレンチウイルスに感染させ、４８時間後、ｍＲＮＡを採取し、Ｈｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４の発現レベルをリアルタイムＰＣＲを使って試験した。

レンチウイルスの脳内注入
定位手術およびレンチウイルス送達のために、コンピューター誘導定位機器およびモーター駆動ナノインジェクター（ＡｎｇｌｅＴｗｏ（商標）ＳｔｅｒｅｏｔａｘｉｃＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔ、ｍｙＮｅｕｒｏｌａｂ）を以前記載したように（Ｌｅｂｏｗｅｔａｌ．，２０１２）使用した。マウスを全身麻酔下で定位装置上に置き、レンチウイルス調製物をＦｒａｎｋｌｉｎおよびＰａｘｉｎｏｓのアトラスによって定義された座標の、ＤＲ：ＭＬ０ｍｍ；ＡＰ −４．６ｍｍ；ＤＶ −３．９ｍｍ（傾き３００）に送達した。０．２μｌ／１分の速度で注入を行った。２週間の回復期間の後、マウスを行動調査および生理学的調査に供した。表現型分類後、マウスを麻酔し、リン酸塩緩衝４％パラホルムアルデヒドで灌流した。固定された脳を、免疫組織化学を使用して注入部位の位置を確認するために３０ｍｍのスライス片に順次切片化した。

免疫組織化学
免疫組織化学用に使用した手順は、以前に記載したとおりである（Ｒｅｇｅｖｅｔａｌ．，２０１１）。ＧＦＰ免疫染色のために、一次抗体としての、ヤギ中で産生されたビオチン化抗ＧＦＰ抗体（Ａｂｃａｍ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＵＫ）、および、二次抗体としてのストレプトアビジンコンジュゲートＣｙ２［ＪａｃｋｓｏｎＩｍｍｕｎｏｒｅｓｅａｒｃｈＬａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓＩｎｃ、ＷｅｓｔＧｒｏｖｅ，ＰＡ，ＵＳＡ）を使用した。

行動評価
すべての行動評価を、試験部屋に各試験の前の２時間慣らした後の暗期の期間中に行った。高架式十字迷路、明暗箱テストおよびオープンフィールド試験を使ってマウスの不安症様行動を試験し、うつ病様行動に対しては、強制水泳試験を使用した。

オープンフィールド試験：オープンフィールド試験を５０ｘ５０ｘ２２ｃｍのホワイトボックス中で行い、１２０ルクスに照らした。マウスをボックス中に１０分間置いた。ボックス中のマウスの自発運動をビデオ録画追跡システム（ＶｉｄｅｏＭｏｔ２；ＴＳＥＳｙｓｔｅｍｓ，ＢａｄＨａｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を使用して定量化した。

明暗箱テスト：明暗箱テスト装置は、黒色の暗いコンパートメント（１４ｘ２７ｘ２６ｃｍ）および連結された白色１２００ルクスに照明された明るいコンパートメント（３０ｘ２７ｘ２６ｃｍ）に分割されたポリ塩化ビニルボックスから構成された。５分の試験中、明るいコンパートメントで過ごした時間、明箱中を移動した距離、および、明暗箱移動の回数を、ビデオ録画追跡システム（ＶｉｄｅｏＭｏｔ２；ＴＳＥＳｙｓｔｅｍｓ，ＢａｄＨａｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて定量化した。

高架式十字迷路テスト：この試験装置は十字形状を有し、２つの障壁と、２つの照明された（６ルクス）壁のない走行路を含む。５分の試験中、進入回数、移動した距離、および、壁のない走行路で過ごした時間が、ビデオ録画追跡システム（ＶｉｄｅｏＭｏｔ２；ＴＳＥＳｙｓｔｅｍｓ，ＢａｄＨａｍｂｕｒｇ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を使用して自動的にスコア化された。

修正強制水泳試験：強制水泳試験を以前記載したように行った（Ｋｒｉｓｈｎａｎｅｔａｌ．，２００７）。装置は、２５℃の水が１５ｃｍの深さにまで満たされた１８ｃｍの直径のプラスチックバケツである。それぞれのマウスをバケツの中心に置いて、６分間のビデオ記録を行う試験期間を開始した。３〜６分の試験期間中に、不動で過ごした時間の継続期間を、ＥｔｈｏＶｉｓｉｏｎＸＴ（Ｎｏｌｄｕｓ，Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ，Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）を使用して自動的にスコア化した。

社会的回避試験：社会的回避試験では、１５ｃｍｘ３５ｃｍの活動領域にマウスを置いた。この活動領域は、１５ｃｍｘ８ｃｍのチャンバーに隣接し、両者は、完全な感覚的接触を可能とする小さい開口スリットを有する仕切板で分離されている。試験したマウスは活動領域で３分間慣らされ、その後、未知のＩＣＲマウスを隣接チャンバーにさらに３分間配置した。仕切板の近くで過ごした時間がビデオ追跡を使ってＥｔｈｏｖｉｓｉｏｎソフトウェア（Ｎｏｌｄｕｓ，Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ，Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）により定量化された。マウスが、未知のＩＣＲの近くの一定の領域で過ごした時間を、マウスが居住の間に同じ領域で過ごした時間で除算し、１００を掛けて、相互作用比率を計算した。

顕微解剖、試料調製および５ＨＴおよび５−ＨＩＡＡの濃度のＨＰＬＣ−ＥＤ分析
以前記載したように（Ｎｅｕｆｅｌｄ−Ｃｏｈｅｎｅｔａｌ．，２０１０ａ）、Ｐａｌｋｏｖｉｔｓ顕微解剖技術（Ｐａｌｋｏｖｉｔｚ，１９８８）を使って顕微解剖を行った。冠状脳切片（３００μｍ）をＬｅｉｃａＣＭ１９５０低温槽（ＮｏｒｔｈＣｅｎｔｒａｌＩｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ，ＵＳＡ）を使って採取した。この切片をスライドガラスに取り付け、−１０℃の冷却板上で実体顕微鏡下、種々の内径の顕微解剖針を使って顕微解剖した。顕微解剖物をそれぞれ１００μＬの酢酸塩緩衝液（３．０ｇ／Ｌの酢酸ナトリウム、４．３ｍＬ／Ｌの氷酢酸；ｐＨは５．０に調節）を含むチューブに入れた。次に、試料をホモジナイズし、４℃、１３，０００ｒｐｍで３分間遠心分離した。ペレットをタンパク質含量用に、１７５μＬの０．２ＭのＮａＯＨで再構成し、以前記載したように（Ｅｖａｎｓｅｔａｌ．，２００８）、電気化学検出を備えた高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ−ＥＤ）を使った５ＨＴおよび５−ヒドロキシインドール酢酸（ＨＩＡＡ）の検出用に５０μＬの上清を使用した。ＨＰＬＣクロマトグラフシステム（ＥＳＡ，Ｃｈｅｌｍｓｆｏｒｄ，ＭＡ，ＵＳＡ）に試料を注入するＥＳＡモデル５４２オートサンプラーに試料を入れた。ＨＰＬＣシステムはまた、移動相（９．５３ｇ／Ｌの二水素オルトリン酸カリウム二水和物、３００ｍｇ／Ｌのオクタンスルホン酸、３５ｍｇ／ＬのＥＤＴＡ、９２０ｍＬ／ＬのＨＰＬＣグレードＨ２０、および８０ｍＬ／ＬのＨＰＬＣグレードメタノール；ｐＨは、オルトリン酸を使って３．４に調節）をクロマトグラフシステムに圧送するＥＳＡモデル５８２ＳｏｌｖｅｎｔＤｅｌｉｖｅｒｙＭｏｄｕｌｅから構成される。クロマトグラフ分離が起こる固定相は、一体型プレカラム／カラムシステム（Ｕｌｔｒａｓｐｈｅｒｅ−ＸＬ３μｍＯｃｔｙｌＧｕａｒｄＣａｒｔｒｉｄｇｅ，５／７０ｘ４．６ｍｍ；ＭＡＣ−ＭＯＤＡｎａｌｙｔｉｃａｌ，ＵＳＡ）から構成された。０ｍＶに設定された電極電位を有するＥＳＡ５０２１ＣｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇＣｅｌｌおよびそれぞれ２５ｍＶと２５０ｍＶに設定されたチャネル１およびチャネル２電極電位を有するＥＳＡ５０１４ＢＭｉｃｒｏｄｉａｌｙｓｉｓＣｅｌｌに連結されたデュアルポテンショスタットを備えたＥＳＡモデル５２００ＡＣｏｕｌｏｃｈｅｍＩＩ検出器を使って電気化学検出を行った。クロマトグラフィー解析ソフトウェア（ＥＺＣｈｒｏｍＥｌｉｔｅｆｏｒＷｉｎｄｏｗｓ，Ｖｅｒｓｉｏｎ２．８；ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，ＵＳＡ）を使って、各実験に対し、既知の濃度の５ＨＴおよび５−ＨＩＡＡの平均ピーク高さをマニュアルで決定し、未知の試料の濃度計算に使用した。５ＨＴおよび５−ＨＩＡＡの組織中濃度をタンパク質の量に標準化した。

ヒト試料調査
症例対照研究：大うつ病と診断された（Ｎ＝９）または双極性障害と診断された（Ｎ＝２）男性患者１１人、および１２人の健康な男性患者を、詳細に記述された調査（Ｍｅｎｋｅｅｔａｌ．，２０１２）から選択した。簡単に説明すると、患者はマックスプランク精神医学研究所から補充し、抑うつ症候群で入院の最初の５日以内にＲＮＡ用の採血を行った入院時の平均ＨＲＤＳスコアは、２４．３（ＳＤ：５．３で範囲は１７〜３２）であった。対照は、統合国際診断面接（ＣＩＤＩ）（ＷｉｔｔｃｈｅｎＨＵ，１９９９）を使って生涯精神疾患の不存在で選別され、また、ＨＲＤＳを使って現時点の精神症状の不存在で選別された。午後６時に絶食の２時間後に、ＰＡＸｇｅｎｅ（ＰｒｅＡｎａｌｙｔｉＸＧｍｂＨ，Ｈｏｍｂｒｅｃｈｔｉｋｏｎ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）全血ＲＮＡ採集チューブを使って全血を採取した。核酸のカラム精製のために、ＰＡＸｇｅｎｅＢｌｏｏｄＲＮＡＫｉｔを使ってＱｉａｇｅｎ法により総ＲＮＡをＰＡＸｇｅｎｅ全血試料から単離した（ＰｒｅＡｎａｌｙｔｉＸＧｍｂＨ，Ｈｏｍｂｒｅｃｈｔｉｋｏｎ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）。Ａｇｉｌｅｎｔ２１００Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，ＵＳＡ）および２６０ｎｍのＵＶ吸収（Ｎａｎｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を使って、ＲＮＡの品質、濃度および純度を評価した。

認知行動療法（ＣＢＴ）：この分析の患者は、認知行動療法（ＣＢＴ）に対する寛解の神経画像処理およびその他の生物学的予測因子を特定するようにデザインされた無作為化臨床試験由来であった。全ての患者は、この試験に参加する前に書面でのインフォームドコンセントを提出した。この試験は、ヘルシンキ宣言とその修正に準拠し、エモリー大学の研究所の審査委員会の承認の下で行われた。試験デザインは、（Ｄｕｎｌｏｐｅｔａｌ．，２０１２）に詳細に記述されている。簡単に説明すると、適格参加者は、精神病性特徴のないＭＤＤの一次診断用の精神障害の診断と統計のためのマニュアル、第４版（ＤＳＭ−ＩＶ）基準に適合した１８〜６０歳の成人外来患者とした。患者は１６セッションのＣＢＴを受けた。ＣＢＴは標準化プロトコル（Ｂｅｃｋｅｔａｌ．，１９７９）にしたがって提供された。全患者は、ハミルトンうつ病評価尺度（ＨＲＤＳ）を使って、症状の変化を最初の６週間の間、毎週評価し、その後、残りの６週間の間、隔週に評価した。全患者は、無作為化時に１５以上のＨＲＤＳスコアであった。この試験から、ベースラインの、２週目（Ｎ＝１６）の、および１２週目のＲＮＡ用の採血をした１２人の患者が選択された。ベースライン採血では、現用の薬剤処置は許容されなかった。７５％の患者が女性で、８７％がヨーロッパ系であった。ＣＢＴ群の平均年齢は４２．４（ＳＤ：９．６）歳であった。全血をＴｅｍｐｕｓＲＮＡチューブ（ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）に集め、ＴｅｍｐｕｓＳｐｉｎＲＮＡＩｓｏｌａｔｉｏｎＲｅａｇｅｎｔｋｉｔ（ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使って抽出した。ＲＮＡ品質および量をそれぞれ、Ａｇｉｌｅｎｔ２１００Ｂｉｏａｎａｌｙｚｅｒ（ＡｇｉｌｅｎｔＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，ＰａｌｏＡｌｔｏ，ＣＡ，ＵＳＡ）および光度測定（ｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒｉｃ）法（Ｎａｎｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ，Ｉｍｐｌｅｎ，Ｍｕｎｉｃｈ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を使って測定した。

統計分析
データを平均＋／−ＳＥＭとして表した。統計学的有意性について検定するために、２つの群のみが比較される場合、例えば、マイクロアレイリアルタイムＰＣＲデータ検証、にはスチューデントｔ検定を使用した。１元配置ＡＮＯＶＡを使用して、ルシフェラーゼアッセイにおける異なる処置間などの多群間を比較した。２つの独立変数の場合（例えば、急性および長期の両期間のＳＳＲＩおよびＮＲＩの投与における注射）には２元配置ＡＮＯＶＡを使用した。必要に応じ、反復測定分析を行った。必要な場合には、ポストホックｔ検定を使用して、統計学的有意性を明らかにした。Ｊｍｐ７ソフトウェアを使って統計分析を行い、群間の差は、ｐ＜０．０５であるとき、有意であると見なした。
(実施例１０)

５ＨＴニューロンのマイクロＲＮＡ「フィンガープリント」
５ＨＴニューロンを、ｅＰｅｔ−ＥＹＦＰの胎仔のＲＮから単離し、それらのｍｉＲ発現プロフィルを、ｍｉＲマイクロアレイを使用して、同じ脳領域から得られる非５ＨＴ細胞と比較した（図３５Ａ）。関連マーカー遺伝子のｍＲＮＡ発現レベルを比較することにより細胞選別検証を行った。ｅＰｅｔ−陽性ニューロン用の蛍光マーカーであるＹＦＰが５ＨＴ集団中で大きく富化され（図３５Ｂ）、５ＨＴ産生において重要な酵素であるトリプトファンヒドロキシラーゼ２（ＴＰＨ２）が５ＨＴ細胞中で強く発現され（図３５Ｃ）、ＧＡＢＡの合成を触媒する酵素で、ＲＮ中の一般的非５ＨＴ神経伝達物質であるグルタミン酸デカルボキシラーゼ６７（ＧＡＤ６７）が非５ＨＴ細胞中で豊富であった（図３５Ｄ）。マイクロアレイから得られたｍｉＲ「フィンガープリント」（図１Ａ）は、１４個（下表１０）および２７個（下表１１）のｍｉＲを含んでいた。これらは非５ＨＴニューロンと比べて、５ＨＴニューロン中で、それぞれ２倍高い発現、または低い発現であった。アレイ結果の代表的な検証を、５ＨＴニューロンにおいて高発現されるｍｉＲ、例えば、ｍｉＲ−３７５（図１Ｂ）に対して、また、５ＨＴニューロン中で低レベルで発現されるｍｉＲ、例えば、ｍｉＲ−１３５ａ（図１Ｃ）に対して、リアルタイムＰＣＲを使用して行った。

(表１０)
表１０：マイクロＲＮＡマイクロアレイ結果−マウスＲＮの非５ＨＴ細胞に比べて、５ＨＴニューロン中で少なくとも２倍高く発現したマイクロＲＮＡのリスト
(表１１)
表１１：マイクロＲＮＡマイクロアレイ結果−マウスＲＮの非５ＨＴ細胞に比べて、５ＨＴニューロン中で少なくとも２倍低く発現したマイクロＲＮＡのリスト

５ＨＴニューロンの調節因子としてのｍｉＲの役割をさらに調査するために、広範囲の生物情報学的分析を仮説方式で行った。精神病理に関連することがこれまでに明らかにされたセロトニン作動性ニューロン中で発現される既知の５ＨＴ関連遺伝子の標的化予測を生物情報学的に基づきマイクロアレイ結果と組み合わせた。これらの遺伝子に対するマイクロＲＮＡ標的化予測を、ＴａｒｇｅｔＳｃａｎ［ｗｗｗ．ｔａｒｇｅｔｓｃａｎ．ｏｒｇ］およびＭｉｒａｎｄａ［ｗｗｗ．ｍｉｃｒｏｒｎａ．ｏｒｇ］の２つの異なるウエブ型アルゴリズムを使用して行い、非５ＨＴ細胞と比較して、５ＨＴニューロンのｍｉＲアレイにおいて少なくとも±１．５倍の変化をしている９１個のｍｉＲのリストと組み合せた。ＲＮの５ＨＴニューロン中で発現される２つのタンパク質をコードする標的遺伝子を選定した：セロトニン輸送体（これは５ＨＴ再取り込に関わっており、また、ＳＥＲＴまたはＳｌｃ６ａ４としても知られる）、およびセロトニン抑制性受容体１ａ（Ｈｔｒ１ａとしても知られる）。ｍｉＲアレイデータおよび生物情報学的分析に基づいて、７個のｍｉＲをさらなるインビトロ検証のために選定した（図１Ｄ〜Ｅ）。
(実施例１１)

ｍｉＲ−１３５はＨｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４転写物を標的にする
インビトロルシフェラーゼアッセイを、試験した５ＨＴ関連遺伝子の３’ＵＴＲと、これらの転写物を推定上の標的とすることが予測されるｍｉＲとの間のｍｉＲ−標的相互作用を調べるために行った。ｍｉＲ−１３５がＳｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲを標的とすること（図２Ａ、２Ｃ）およびＨｔｒ１ａが３’ＵＴＲを標的とすること（図２Ｂ、２Ｄ）により、これらの転写物の翻訳の確実な抑制が生じた。加えて、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲの有意な抑制が、ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１ｃおよびｍｉＲ−２６ａにより媒介された（図２Ｄ）。ｍｉＲ−１３５のＨｔｒ１ａとＳｌｃ６ａ４の両方に対する強力な効果のために、本調査はさらに、このｍｉＲ−標的相互作用に的を絞った。さらなる生物情報学的分析により、ｍｉＲ−１３５が高度に保存された３つのバリアント：ｍｉＲ−１３５ａ−１、ｍｉＲ−１３５ａ−２およびｍｉＲ−１３５ｂを有することが示された（図３６Ａ〜Ｃ）。さらに、Ｓｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲにおけるｍｉＲ−１３５のシードマッチ配列が高度に保存され（図２Ｅ）、また、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲにおける２つの特定されたシードマッチのうちの１つにおいて高度な保存が観察された（図２Ｆ）。ｍｉＲ−１３５のシードマッチが除去された場合の、Ｓｌｃ６ａ４転写物の３’ＵＴＲにおける変異調査で、ｍｉＲ−１３５により誘導される抑制がＳｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲにおける変異により完全にブロックされた（図２Ｇ）ことから、Ｓｌｃ６ａ４に対するｍｉＲ−１３５ａ標的化およびｍｉＲ−１３５ｂ標的化の両方がそのシードマッチ配列により媒介されたことが明らかにされた。Ｈｔｒ１ａのｍｉＲ−１３５シードマッチを個々に、または、両方を変異させることにより、ｍｉＲ−１３５ａが、Ｈｔｒ１ａの３’ＵＴＲを、近位側ではなく、遠位側のシードマッチを介して抑制したこと、一方、ｍｉＲ−１３５ｂは両方の予測された部位を介して作用することが明らかにされた（図２Ｈ）。
(実施例１２)

ＲＮ−ｍｉＲ−１３５レベルは抗うつ剤によりアップレギュレーションされる
Ｈｔｒ１ａ（Ｓａｖｉｔｚｅｔａｌ．，２００９）およびＳｌｃ６ａ４（Ｍｕｒｐｈｙｅｔａｌ．，２００８）の両方が、以前にうつ病および抗うつ剤細胞機構と関連付けられているので、本発明者は、抗うつ剤処置に応答したｍｉＲ−１３５発現の調節を調べようとした。成熟型ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂは１個のヌクレオチドが異なるのみである（図３７Ａ）が、それでも、顕微解剖した成体野生型マウスのＲＮから得たｃＤＮＡで行ったリアルタイムＰＣＲ結果で観察されたように、ＲＮ中で示差的に発現する（図３７Ｂ）。ｍｉＲ１３５ｂはｍｉＲ−１３５ａより約１０倍低く発現されたが、後者は、比較的高発現であり、脳中に最も豊富なｍｉＲであるｍｉＲ−１２４よりも５倍低いだけであり、以前に５ＨＴ機能に制御における役割を有することが示されたｍｉＲ−１６より２．５倍低いだけである（図３７Ｃ）。ＲＮ中でｍｉＲ−１３５ａがｍｉＲ−１３５ｂより高レベルで発現し、また、５ＨＴマイクロアレイ中で異なるように変えられたバリアントであったことを考慮して、本発明者はこの形態での調節の調査に的を絞った。次に、ｍｉＲ−１３５ａのレベルを、長期社会的敗北（うつ病様行動の誘導に使用される環境モデル）および三環系抗うつ剤による長期処置にさらしたマウスで試験した。

社会的回避試験を使って、社会的敗北が社会的回避を引き起こす場合があり、抗うつ剤投与がこれを逆転させることができることを実証した（図３７Ｄ）。実際に、１００％より低い相互作用比率から暗示されるように、社会的敗北にさらされ、生理食塩水を注射され、またイミプラミンを受けなかったマウスのみが社会的回避を発症した（図３７Ｄ）。興味深いことに、長期社会的敗北のストレスは縫線核におけるｍｉＲ−１３５ａのレベルを変化させなかったが、長期投与（図３７Ｅ）または急性投与（図３７Ｆ）されたイミプラミンは、ストレス負荷マウスおよびストレス非負荷マウスの両方で、ＲＮにおけるｍｉＲ−１３５ａの発現レベルを有意に増大させた。イミプラミンは特異的な５ＨＴ再取り込み阻害剤ではないので、急性および長期の両方の選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）のフルオキセチンおよびノルアドレナリン再取り込み阻害剤（ＮＲＩ）のレボキセチンの投与の効果をさらに調べ、急性および長期の両方のＳＳＲＩ処置の後ではｍｉＲ−１３５ａレベルのＲＮ中での確実な増大を見出したが、ＮＲＩ処置後の差異は観察されなかった（図３７Ｇ）。
(実施例１３)

特異的に５ＨＴニューロン中でのｍｉＲ−１３５の過剰発現により、社会的敗北後に不安症およびうつ病様行動が減少する
５ＨＴ−ｍｉＲ−１３５のインビボででの役割をさらに調査するために、ｍｉＲ−１３５をＲＮの５ＨＴニューロン中で特異的に過剰発現するマウスモデルを樹立した（ｍｉＲ−１３５ＯＥ）。Ｃｒｅリコンビナーゼを特異的にＲＮの５ＨＴ陽性ニューロン（ｅＰｅｔ−Ｃｒｅ）中で発現するマウスと、条件付きｍｉＲ−１３５ａカセットを保持する遺伝子導入マウス系統とを交雑した（図３８Ａ）。対照として、ｍｉＲ−１３５過剰発現導入遺伝子に対し陽性で、ｅＰｅｔ−Ｃｒｅに対し陰性のマウスを使用した。ｍｉＲ−１３５ａを特異的に５ＨＴニューロンで過剰発現しているマウスのＲＮ中のｍｉＲ−１３５ａ発現レベルを、リアルタイムＰＣＲで調べ、対照マウスに比べて、約２倍過剰発現していることを示した（図３８Ｂ）。このマウスのｍｉＲ−１３５の過剰発現レベルは、ＳＳＲＩ投与後のマウスのＲＮで測定されるレベルと類似していた。加えて、ｍｉＲ−１３５標的転写物Ｓｌｃ６ａ４（図３８Ｃ）およびＨｔｒ１ａ（図３８Ｄ）のレベルは、対照マウスに比べて、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスのＲＮ中で低下した。これは、ｍｉＲ−１３５標的遺伝子のインビボ抑制を示している。

ｍｉＲ−１３５ＯＥおよびそれらの同腹仔対照は、「基礎的」条件下、または次の長期社会的敗北プロトコル下で、不安症およびうつ病様行動の試験において、行動に対して特徴付けられた。「基礎的」条件下では、ｍｉＲ−１３５ＯＥと対照マウスとの間で不安症およびうつ病様行動の試験において、差異は観察されなかった（図３８Ｅ〜Ｊ、左バーおよび図３８Ｋ）。しかし、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは長期社会的敗北の影響に対する有意な立ち直りの速さを示した。明暗箱テストでは、社会的敗北にさらされたｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは、対照マウスと比較して、明箱中でより多くの時間を過ごし（図３８Ｅ）、明るいコンパートメントをより高頻度で訪問し（図３８Ｆ）、明箱中でより長い距離を移動した（図３８Ｇ）。ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスの行動成績は、社会的敗北プロトコルの後で有意に異ならなかった。対照的に、対照マウスは、社会的敗北後に、すべての測定された明暗箱テストパラメータにおいて不安症様行動の有意な増加を示した（図３８Ｅ〜Ｇ）。社会的敗北にさらされた対照マウスは、同じ条件下でテストしたｍｉＲ−１３５ＯＥマウスに比べて、壁のない走行路中で、より少ない時間を過ごし（図３８Ｈ）、より少ない数の訪問をし（図３８Ｉ）、より短い距離を移動した（図３８Ｊ）。このように、高架式十字迷路テストでも類似の結果が観察された。ｍｉＲ−１３５ＯＥ群では、「基礎的」とストレス条件との間で有意差は観察されなかった。類似した結果はうつ病様行動を評価する試験でも観察された。長期社会的敗北後のテストした場合、「基礎的」条件下では差異は観察されなかった（図３８Ｋ）が、強制水泳試験において、対照と比較して、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスは有意に小さい不動時間を示し（図３８Ｌ）、これは、減少したうつ病様行動として解釈される。これらの差異は、移動動作の変化を説明することはできないと思われる。理由は、オープンフィールドで移動した距離は両方の遺伝子型で類似であった（図３８Ｍ）ためである。まとめると、ｍｉＲ−１３５の５ＨＴニューロン中での特異的過剰発現は、長期ストレスが不安症およびうつ病様行動に与える有害作用に対し保護した。
(実施例１４)

成体マウスＲＮ中のｍｉＲ−１３５のノックダウンが不安様行動を高め、抗うつ剤に対する応答を低下させた
抗うつ剤処置および「基礎的」条件下での不安症様行動に呼応したうつ病様行動の媒介におけるｍｉＲ−１３５内在性レベルの重要性を判定するために、レンチウイルスベースシステムを樹立し、野性型マウスのＲＮ中のｍｉＲ−１３５の内在性レベルを特異的にノックダウン（ＫＤ）した。ｍｉＲ−１３５阻害剤（ｍｉＲＮＡ捕捉、図３９Ａ）または制御配列を含む発現プラスミドを、Ｈ１プロモーターおよびＧＦＰレポーター（図３９Ｂ）を含むレンチウイルス構築物にサブクローン化し、ｍｉＲ−１３５捕捉配列の恒常的発現を可能とした。これらの構築物から作製したレンチウイルスの標的遺伝子Ｈｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４の発現を抑制する効率を、ＲＮ４６Ａ細胞に感染させることによりインビトロで調べた。ＲＮ４６Ａ細胞は、Ｈｔｒ１ａ、Ｓｌｃ６ａ４の両方およびｍｉＲ−１３５を内在性に発現した。ｍｉＲ−１３５ＫＤレンチウイルスに感染したＲＮ４６Ａ細胞は、リアルタイムＰＣＲで試験して、ＫＤ対照レンチウイルスにより感染された細胞に比べて、有意に高いレベルのＨｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４のｍＲＮＡを発現した（図３９Ｃ）。

野性型成体マウスＲＮをｍｉＲ−１３５ＫＤまたは対照レンチウイルスに感染させ、回復期間後に、不安症およびうつ病様行動に試験を使ってマウス行動を評価した。感染の正確さは、その後、免疫組織化学を使って実証された（図３９Ｄ）。明暗箱テストでは、対照注入マウスに比べて、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは不安症様行動の有意な増加を示した（図３９Ｅ〜Ｈ）。ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは、明るいコンパートメント中で、より少ない時間を過ごし（図３９Ｅ）、より少ない回数訪問し（図３９Ｆ）、より短い距離を歩行した（図３９Ｇ）。同様に、高架式十字迷路テストでは、対照注入マウスに比べて、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは不安症様行動の有意な増加を示した。ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは迷路の壁のない走行路中で（図３９Ｉ〜Ｌ）、より短い時間を過ごし（図３９Ｉ）、より少ない回数訪問し（図３９Ｊ）、有意に少ない距離移動した（図３９Ｋ）。

ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスのうつ病様行動を、「基礎的」条件下およびＳＳＲＩ処置後の両方で試験した。強制水泳試験では、「基礎的」ストレス条件下でテストした場合、群間で差異は観察されなかった（図３９Ｍ）。しかし、ＳＳＲＩ投与後、対照注入マウスに比べて、ｍｉＲ−１３５ＫＤマウスは有意により多い不動であった（図３９Ｍ）。これは、ＳＳＲＩ誘導された抗うつ剤効果の誘導において、内在性ＲＮ−ｍｉＲ−１３５レベルの重要な役割を示唆している。ＲＮ中のｍｉＲ−１３５の低下したレベルはこれらのマウスの移動動作に影響を与えなかった（図３９Ｎ）。
(実施例１５)

ｍｉＲ−１３５過剰発現は５ＨＴレベルおよび代謝を変えた
ｍｉＲ−１３５レベルの変化が同様に中枢５ＨＴの組織中濃度およびその代謝回転に反映されているか否かを評価するために、ＲＮの細区画を顕微解剖し、また、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスモデルおよび対象同腹仔由来のこれらの領域により神経支配されている脳領域を顕微解剖した。図４０Ａ〜４０Ｏ、図４２Ａ〜Ｌおよび図４３Ａ〜Ｌは、「基礎的」条件下および社会的敗北プロトコル後の、これらのマウスの５ＨＴの濃度および５ＨＴ代謝（５ＨＩＡＡ／５ＨＴ比）を示す。

不安症およびうつ病関連神経回路内の５ＨＴの組織中濃度および５ＨＴ代謝は、ｍｉＲ−１３５遺伝子型により影響され、さらには、社会的敗北操作ｍｉＲ−１３５ＯＥは組織５ＨＴ濃度を低下させた。これは、セロトニン代謝を高め、不安症関連行動の調節およびストレスの速い立ち直りに関与する脳領域、例えば、前辺縁皮質（ＰｒＬ）、下辺縁皮質（ＩＬ）、扁桃体基底外側部（ＢＬＡ）、腹側海馬のＣＡ１領域（ＣＡ１Ｖ）、海馬台（Ｓ）、分界条の床核（ＢＮＳＴ）、扁桃体の中心核（ＣｅＡ）、背側縫線核の背側、腹側、尾側および維管束間部分（ＤＲＤ、ＤＲＶ、ＤＲＣ、ＤＲＩ）、および正中縫線核（ＭｎＲ）（図４０Ａ〜４０Ｏ、図４２Ａ〜Ｌおよび図４３Ａ〜Ｌ）における増加したセロトニン代謝回転と一致するパターンである。これらの結果は、「基礎的」条件下でのＨｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４発現のｍｉＲ−１３５ＯＥによる減少（図３８Ｃ〜Ｄ）と一致し、それぞれ、増加したセロトニン作動性ニューロン発火頻度およびセロトニン作動性信号伝達を生ずることが予測される効果である。

社会的敗北は、対照マウスにおける不安症関連脳領域の組織５ＨＴ濃度を低下させ、５ＨＴ代謝を高めた。これは、ＰｒＬおよびＢＮＳＴ（図４０Ａ〜４０Ｏおよび図４２Ａ〜Ｌ）を含む増加したセロトニン代謝回転と一致するパターンであり、以前の研究と変わらず、不安症関連の一部のセロトニン作動性ニューロンの社会的敗北誘導による活性化を示している。これらの社会的敗北の効果は、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおいては阻止され、これは、これらのマウスで観察された長期ストレスに対する行動回復力の機構的説明を示唆している。
(実施例１６)

血液中のｍｉＲ−１３５ａレベルは、うつ病患者ではダウンレギュレーションされ、治療によりアップレギュレーションされた。
循環ｍｉＲレベルは疾患状態と相関することが示されたので、本発明者は、血中ｍｉＲ−１３５レベルがうつ病ヒト患者で変化するか否かを試験した。ｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１６の相対的レベルを、２セットのヒト血液試料で試験した。１つは比較されたうつ病患者を適合する健康な対照と比較し、残りは、３ヶ月の認知行動療法（ＣＢＴ）を受けているうつ病患者の内でｍｉＲＮＡレベルを一定の期間にわたり変化させる。現時点のうつ病患者（平均ハミルトンうつ病評価尺度（ＨＲＤＤＳ）＝２４．３（ＳＤ：５．３）、すなわち、中等度から重篤なうつ病症状を有する）は、対照と比較して、ｍｉＲ−１３５ａレベルを確実に低下させ（図４１Ａ）、一方、ｍｉＲ−１６の有意な変化は観察されなかった（図４１Ｂ）。処置前および処置の３ヶ月後でのうつ病患者のｍｉＲ−１３５ａ血中濃度は、ＣＢＴ後、ｍｉＲ−１３５ａレベルの有意な増加を示した（図４１Ｃ）。ｍｉＲ−１６のレベルに対しては、同じ血液試料で何らの効果も観察されなかった（図４１Ｄ）。これらの結果は、ヒト血液中のｍｉＲ−１３５ａのレベルを、うつ病状態および処置に対する応答の可能なバイオマーカーとして示唆する。
(実施例１７)

アンフェタミン誘導された運動亢進ラットモデルにおけるｍｉＲ−１３５の抗双極性効果
ｍｉＲ−１３５の抗双極性効果を前臨床的に評価するために、ラットのインビボアンフェタミン誘導運動亢進躁病モデルを使った。これは双極性障害の躁病期に関連する。このモデルは、躁病患者の運動亢進に類似しているので、動物の活動レベルの誘導増加（運動亢進）に的を絞っている。げっ歯類における誘導された運動亢進の薬剤を使った処置による回復は、ヒト躁病の処置におけるこの薬剤の効力のある可能性を示している。リチウム（躁病に対する標準的薬剤）を使って常に分かることは、立ち上がり行動の低減である。モデルでは、立ち上がり行動は動物の垂直の活動を観察することにより追跡される。

したがって、ラットのアンフェタミン誘導された運動亢進の前の、ｍｉＲ−１３５による前処置が双極性疾患の処置のために試験される。さらに、ラットのアンフェタミン誘導された運動亢進後の、ｍｉＲ−１３５によるラットの処置が双極性疾患の処置のために試験される。

ラットは１２時間の明暗周期下で収容され、明期に行動試験が行われる。特に、ラットの活動性は、２レベルのレーザービームに基づく活動量計（Ｅｌｖｉｃｏｍ，Ｉｓｒａｅｌ）で追跡され、活動量計は、ラットの垂直移動（立ち上がり行動）のカウントが可能なコンピューター化システムを備えている。活動性は各セッションで３０分間記録され、得られた適切な動きは３０分毎に報告される。

ｍｉＲ−１３５で前処置または処置されたラットの活動性が、非処置ラット（対照群）および躁病用標準薬剤、すなわち、リチウムまたはバルプロ酸で前処置または処置されたラットと比較される。ラットは、アンフェタミンで誘発される前後で追跡される。統計解析は２元配置分散分析を使って行われる。
(実施例１８)

アンフェタミン誘導躁病ラットモデルにおけるｍｉＲ−１３５の抗双極性効果
ｍｉＲ−１３５の抗双極性効果を前臨床的に評価するために、ラットのインビボケタミン誘導運動亢進躁病モデルを使った。ケタミンは処置ラットの自発運動の亢進を誘導し、これは上記で考察したように、モニターすることができる。

ラットは、ｍｉＲ−１３５、または躁病の標準的薬剤、すなわち、リチウム（４７．５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．、１日２回）もしくはバルプロ酸（２００ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．、１日２回）、もしくは対照としての生理食塩水（ｉ．ｐ．、１日２回）で前処置される（１４日間）。８〜１４日の間に、これらのラットはケタミン（２５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）または生理食塩水で処置される。

逆プロトコルでは、ラットは最初にケタミン（２５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）または生理食塩水を投与され、続けて、ｍｉＲ−１３５、リチウム、バルプロ酸、または生理食塩水を７日間投与される。

ｍｉＲ−１３５で前処置または処置されたラットの活動性が、非処置ラット（対照群）および躁病用標準薬剤、すなわち、リチウムまたはバルプロ酸で前処置または処置されたラットと比較される。ラットは、ケタミンで誘発される前後で追跡される。統計解析は２元配置分散分析を使って行われる。

考察
今回の調査では、「基礎的」および誘発条件下での、中枢５ＨＴ系の活動性の調節における特定のｍｉＲの役割を明らかにした。セロトニン作動性ニューロンにおける特有のｍｉＲ発現の「フィンガープリント」を決定し、いくつかの５ＨＴ連関標的遺伝子を生物情報学的に特定した。インビトロルシフェラーゼアッセイおよび変異調査により、ｍｉＲ−１３５のＳｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａ転写物に対する強力な抑制作用が明らかになった。興味深いことに、ＲＮ中のｍｉＲ−１３５レベルは、急性または長期ＳＳＲＩ投与後に強くアップレギュレーションされた。より高いまたはより低いレベルのｍｉＲ−１３５を発現するように遺伝的に改変されたマウスモデルは、不安症およびうつ病様行動、５ＨＴおよび代謝、ならびに抗うつ剤処置に対する行動反応において大きな変化を示した。最終的に、うつ病ヒト患者の血中ｍｉＲ−１３５レベルおよび処置に対する応答が示された。

５ＨＴおよび非５ＨＴ細胞のマウスＲＮからの単離のためのｅＰｅｔ−ＥＹＦＰマウスモデルの使用により、初めて、特定のｍｉＲのセロトニン作動性ニューロンプロファイルの決定が可能となった。この手法は成功し、情報価値のあるものであったが、それでも、効率的に５ＨＴ陽性のニューロンを分別するために、成体脳組織ではなくマウスＲＮ胎仔を使用した。このことは、５ＨＴのｍｉＲプロファイルで提示される少なくとも一部のｍｉＲが発生過程に関連し、成体５ＨＴニューロンの機能に関連しないことを意味する。それにもかかわらず、特定の発生期間中のセロトニン作動性信号伝達が成体の不安症表現型に影響することが知られている（Ｇｒｏｓｓｅｔａｌ．，２００２）。興味深いことに、一般に細胞分化に関連しているｍｉＲ−３７５は、対照と比較して、５ＨＴニューロン中で強く発現したが、これはこれらの組織の示唆された一般的発生経路を裏付けている。

生物情報学的分析により、セロトニン受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）とセロトニン輸送体（ＳＥＲＴまたはＳｌｃ６ａ４）３’ＵＴＲとの間でいくつかの推定ｍｉＲ−標的相互作用が示唆され、５ＨＴマイクロアレイ中でｍｉＲが示差的に発現した。Ｈｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４は、うつ病および不安障害、ならびに抗うつ剤に対する応答において、セロトニン作動性システム機能に対し大きな役割を演ずることが示された（Ｓａｖｉｔｚｅｔａｌ．，２００９））および（Ｍｕｒｐｈｙｅｔａｌ．，２００８）。Ｈｔｒ１ａは、５ＨＴ産生細胞上でおよび５ＨＴ投射部位の脳全体にわたりシナプス後に自己受容体として発現される抑制性Ｇタンパク質共役受容体である。Ｈｔｒ１ａ自己受容体の刺激は、セロトニン作動性ニューロン発火および神経終末でのセロトニンの放出を抑制し、また、大抵のセロトニン作動性抗うつ剤、例えば、ＳＳＲＩでよく報告される治療の遅れの１つの原因であると想定されてきた。Ｓｌｃ６ａ４は、ナトリウムに依存する方式で、シナプス間隙からシナプス前のニューロン中へとセロトニンを再利用することにより、セロトニンの作用を終わらせる細胞膜輸送体である。Ｓｌｃ６ａ４は、最もよく使われる抗うつ剤の、異なるモノアミン再取り込み輸送体活性を抑制する、Ｓｌｃ６ａ４を含む前の世代の三環系抗うつ剤、またはより特異的なＳＳＲＩの直接的標的である。Ｓｌｃ６ａ４およびシナプス前のＨｔｒ１ａの両方の低下した活性は、シナプスにおける５ＨＴレベルを増加させることが予測され、これは、抗うつ剤作用およびうつ病症状の減少と一致する。ルシフェラーゼアッセイにより、ｍｉＲ−１３５バリアントがＳｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａ転写物の重要な抑制因子として確認された。変異調査により、観察されたｍｉＲ−１３５抑制効果の媒介におけるＨｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４の３’ＵＴＲのｍｉＲ−１３５シード結合部位の重要性がさらに示された。以前にこれらの遺伝子に関し報告された（Ｐｉｖａｅｔａｌ．，２０１０）、ヒトＳｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａの３’ＵＴＲ中の一塩基多型（ＳＮＰ）はｍｉＲ−１３５シードマッチ配列内には存在しない。

ｍｉＲ−１３５は、主として癌関連病態および発生過程に関与することが以前報告された。ｍｉＲ−１３５は、大腸腺腫症大腸菌遺伝子を標的とし、その結果、結腸直腸癌を促進し、化学療法耐性を変え、さらに古典的ホジキンリンパ腫のＪＡＫ２を調節することが示された。発生過程におけるｍｉＲ−１３５の役割が、巨核球形成、ブタの脳の発達、およびＳｍａｄ５（ＢＭＰ２骨形成信号の重要なトランスデューサー）の調節による骨形成分化の鉱質形成において明らかにされた。さらに、ｍｉＲ−１３５はＮＲ３Ｃ２を抑制することにより血圧の調節に関与し、心不全で潜在的な役割を有することが示唆された。

いくつかのマイクロＲＮＡスクリーニング調査により、種々の成体げっ歯類またはラット脳構造におけるマイクロＲＮＡレベルが一連の行動操作および薬理学的操作により影響を受けるということが報告された（Ｋｙｅｅｔａｌ．，２０１１）。ストレス性の攻撃は、異なる脳部位において、異なるパラダイムを使ってｍｉＲ発現を変えることが示された（Ｓｍａｌｈｅｉｓｅｒｅｔａｌ．，２０１１）。本発明者は、最近、不安症様行動の調節におけるｍｉＲ−３４の関与（Ｈａｒａｍａｔｉｅｔａｌ．，２０１１）を実証したが、ｍｉＲ−２２、ｍｉＲ−１３８−２、ｍｉＲ−１４８ａ、およびｍｉＲ−４８８はパニック障害に関連していた（Ｍｕｉｎｏｓ−Ｇｉｍｅｎｏｅｔａｌ．，２０１１）。今回の原稿で提示したマウスを使った調査により、抗うつ剤投与後の明らかなｍｉＲ−１３５のアップレギュレーションを明らかにした。ＳＳＲＩおよびＮＲＩ抗うつ剤のさらなる比較により、抗うつ剤が、ＮＲＩ特異的効果ではなく、ＳＳＲＩ特異的効果を示し、このことは、５ＨＴニューロンの生物学におけるｍｉＲ−１３５の役割をさらに示唆している。長期ストレスはうつ病の発生に対する増加した感受性に関連しているが、意外にも、長期ストレス条件はＲＮ中のｍｉＲ−１３５のレベルには影響を与えなかった。長期ＳＳＲＩ処置は、Ｓｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａタンパク質レベルの低減を促進するがｍＲＮＡでは促進しないことが報告され［Ｓｌｃ６ａ４（Ｂｅｎｍａｎｓｏｕｒｅｔａｌ．，２００２）、Ｈｔｒ１ａ（Ｓａｖｉｔｚｅｔａｌ．，２００９）］、これは、ＳＳＲＩ活性の媒介における転写後の機序の関与の可能性を示唆している。ｍｉＲ−１６は、Ｓｌｃ６ａ４標的とし、抗うつ剤応答で役割を有することが示された（Ｂａｕｄｒｙｅｔａｌ．，２０１０）が、リチウム投与はｍｉＲ発現を変えることが示された（Ｃｒｅｓｏｎｅｔａｌ．，２０１１）。大うつ病患者において、ｍｉＲ−１８２（Ｓａｕｓｅｔａｌ．，２０１０）とｍｉＲ−３０ｅ（Ｘｕｅｔａｌ．，２０１０ｂ）のバリアント間で関連が見出され、ｍｉＲ発現が自殺性うつ病の患者の前頭前野で変化した（Ｓｍａｌｈｅｉｓｅｒｅｔａｌ．，２０１２）。さらに、ｍｉＲ４４８は、脂肪組織成長の一部として、いくつかの５ＨＴ受容体の発現を制御し、また、セロトニン受容体１Ｂの多型がｍｉＲ９６による調節を抑え、攻撃行動と関連することが示された（Ｊｅｎｓｅｎｅｔａｌ．，２００９）。最後に、セロトニン受容体３Ｅ型のｍｉＲ５１０標的化部位は、過敏性腸症候群で一定の役割を果たすことが示された。

抗うつ剤処置はｃＡＭＰ信号伝達経路を活性化し、Ｃｒｅ部位に対するＣＲＥＢ結合を促進することが報告された。ｍｉＲ−１３５の５’フランキング領域のプロモーター分析により、いくつかの推定Ｃｒｅ部位が特定され、これは、観察されたＳＳＲＩによるｍｉＲ−１３５アップレギュレーションに対する有望な機序を示唆している。まとめると、Ｈｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４のｍｉＲ−１３５標的化を示す結果に加えて、抗うつ剤投与後の、ＲＮ中でのｍｉＲ−１３５発現レベル発現レベルのアップレギュレーションは、ｍｉＲ−１３５が内在性抗うつ剤であることを示唆する。

ｍｉＲ−１３５の内在性抗うつ剤としての役割をさらに裏付けるために、ｍｉＲ−１３５レベルがインビボで操作され、動物の行動に対するその効果が評価される一連の実験を行った。ｍｉＲ−１３５を５ＨＴニューロン中で、抗うつ剤処置後に観察されるものと同じレベルで、特異的に発現する遺伝子導入マウスモデルは、長期社会的敗北における行動上の有害な影響に対する強力な保護作用を示した。これらの結果は、Ｈｔｒ１ａ（Ｂｏｒｔｏｌｏｚｚｉｅｔａｌ．，２０１２）またはＳｌｃ６ａ４（Ｔｈａｋｋｅｒｅｔａｌ．，２００５）がｓｉＲＮＡ手法を使ってノックダウンされ、うつ病様行動の低減を示す場合に、または正確な遺伝子導入マウスモデルを使ってＨｔｒ１ａ自己受容体レベルが増加し、不安症およびうつ病様行動の高揚および抗うつ剤に対する応答の低下の原因となる場合（Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ−Ｊｏｎｅｓｅｔａｌ．，２０１０）に観察された効果に似ていた。対照的に、Ｈｔｒ１ａ（Ｓａｖｉｔｚｅｔａｌ．，２００９）およびＳｌｃ６ａ４（Ｈｏｌｍｅｓｅｔａｌ．，２００３）に対する発育ノックアウトマウスモデルは、不安症およびうつ病様行動の逆説的な増加を示し、これは、代償性発育変化により媒介されることが示唆された。Ｈｔｒ１ａおよびＳｌｃ６ａ４に加えて、ｍｉＲ−１３５ａが、観察された表現型に寄与すると思われるセロトニンニューロン中の他の遺伝子に影響する可能性もある。

補足的な手法を使って、成体野性型マウスのＲＮ中のｍｉＲ−１３５のレベルをレンチウイルスを使って特異的にノックダウンし、マウスの行動を「基礎的」（ストレスなしの）条件下でＳＳＲＩ投与後に評価した。ｍｉＲ−１３５を過剰発現しているマウスにより観察された行動とは対照的に、この低減されたレベルのｍｉＲは、不安症様行動の大幅な増加および抗うつ剤に対する減弱した応答を生じた。これらの結果は、「基礎的」条件下での攻撃に対する完全な応答および抗うつ剤作用の機序におけるその重要な役割を維持する上での、ｍｉＲ−１３５の重要な役割を裏付けている。これらの知見は、報告された文献と一致し、高レベルのＨｔｒ１ａが増加した行動上の失望および抗うつ剤に対する鈍くなった応答と関連する（Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ−Ｊｏｎｅｓｅｔａｌ．，２０１０）。さらに、ヒトＨｔｒ１ａ遺伝子中の多型は、より高いＨｔｒ１ａ自己受容体結合および増加した不安症およびうつ病と関連した（Ｆａｋｒａｅｔａｌ．，２００９）。対照的に、より短いプロモーターバリアントによるＳｌｃ６ａ４のより低い発現レベルは、増加した不安症およびうつ病ならびに抗うつ剤に対する低下した応答に関係することが報告された（ＨｏｍｂｅｒｇａｎｄＬｅｓｃｈ，２０１１）。

５ＨＴ回路におけるｍｉＲ−１３５の役割のさらなる裏付けは、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスモデルの脳全体にわたる５ＨＴレベルおよびその代謝の確実な変化を示すＨＰＬＣデータから明らかになった。５ＨＴが合成される縫線核の亜核と、不安症およびうつ病様行動の制御に重要な投射部位との両方において、「基礎的」ストレス条件下で、対照と比較して、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスでは５ＨＴレベルは低いが、５ＨＴ代謝は高かった。この５ＨＴレベルおよび５ＨＴ代謝の変化パターンは、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスにおける増加したセロトニン作動性ニューロン発火および増加したセロトニン作動性信号伝達と一致する。これらの差異は、成長期から成人期のｍｉＲ−１３５の過剰発現に関連する代償性変化の結果である可能性がある。しかし、低い「基礎的」５ＨＴレベルにもかかわらず、マウスは「基礎的」条件下で正常な行動を示し、これは、「基礎的」条件下でのそれらのより高い５ＨＴ代謝により示されるように、恐らく、より活性な５ＨＴ系に起因すると思われる。想定されるのは、ＲＮ中で５ＨＴ分泌の阻害剤として機能するＳｌｃ６ａ４およびＨｔｒ１ａのより低い発現レベルにより、マウスがより低いレベルの５ＨＴで正常に機能することが可能となるということであろう。興味深いことに、長期ストレスが、対照マウスの一部の脳領域での予想通りの５ＨＴ代謝の増加に付随して、５ＨＴレベルの低下を生じたが、一方で、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスではこれらの効果は観察されなかった。これらの変化により、ｍｉＲ−１３５ＯＥマウスで観察される長期ストレスに対する行動回復力の機構的説明を提供することができる。

病理学的条件のための非侵襲的バイオマーカーとして想定される循環ｍｉＲの使用は、成長中の分野であり、循環中のｍｉＲの比較的高いレベルおよび安定性であることから推進されている。細胞外のｍｉＲの役割と期限についてはほとんど分かっていないが、循環ｍｉＲは、異なるタイプの癌、心臓疾患、酸化的肝障害、敗血症、妊娠などの病態生理学的状態に関連付けられてきた。現在の研究では、うつ病患者の全血中のｍｉＲ−１３５のレベルが測定され、対応する対照に比べて、うつ病患者の血液中のｍｉＲ−１３５レベルの確実な低下が観察された。これらの知見は、ｍｉＲ−１３５が内在性抗うつ剤であることを示す動物モデル由来の以前のデータと一致し、また、ｍｉＲ−１３５を、うつ病状態および場合により処置に対する応答のための可能なバイオマーカーとして示唆する。

結論として、本発明者は、５ＨＴニューロンにより発現されるｍｉＲ−１３５は、正常な条件下で、無変異型セロトニン作動性緊張の維持に関与する不可欠な調節エレメントであり、また、抗うつ剤に対する脳応答に不可欠である（図４１Ｅの図式モデルを参照されたい）ことを提案する。ｍｉＲ−１３５のレベルの増加は、Ｓｌｃ６ａ４およびシナプス前のＨｔｒ１ａレベルの両方を抑制し、うつ病性症状の減少に関連する、シナプス間隙中の５ＨＴを増加させる。

本発明者らが行ったさらなる生物情報学分析により、双極性感情障害またはリチウム作用を含むストレス関連精神神経疾患に関連付けられる次のｍｉＲ１３５標的が予測された：アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）およびジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）。

全体として、これらのデータは、ｍｉＲ−１３５ａが双極性感情障害、その処置および診断の病態生理学において重要な役割を果たすことを示唆している。

本発明をその特定の実施態様と共に説明してきたが、多くの代替物、修正物および変形物があることは当業者には明らかであろう。従って、本発明は、添付の請求項の趣旨と広い範囲に入るこのような代替物、修正物および変形物のすべてを包含することが意図されている。

本明細書で挙げた刊行物、特許および特許出願はすべて、個々の刊行物、特許および特許出願のそれぞれがあたかも具体的に、個別に参照により組み込まれることが示されているのと同程度に、それら全体が本明細書に組み込まれる。さらに、本出願における任意の文献の引用または特定は、このような文献が本発明の先行技術として利用できるということの承認と解釈されるべきではない。セクションの見出しは、それらが使用されているその程度までに限定するものと解釈されるべきではない。

Claims

処置を必要としている対象の双極性障害を処置する方法であって、治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質または前記ｍｉＲ−１３５もしくは前記その前駆物質をコードする核酸分子を前記対象に投与することを含む、双極性障害を処置する方法。
治療有効量のｍｉＲ−１３５、その前駆物質または前記ｍｉＲ−１３５もしくは前記その前駆物質をコードする核酸分子の、それを必要としている対象の双極性疾患を処置するために特定された薬物の製造のための使用。
前記ｍｉＲ−１３５がｍｉＲ−１３５ａおよびｍｉＲ−１３５ｂからなる群から選択される、請求項１に記載の方法または請求項２に記載の方法。
前記ｍｉＲ−１３５が配列番号５８〜６２で示される、請求項１に記載の方法または請求項２に記載の使用。
前記ｍｉＲ−１３５が配列番号１９２〜１９３で示されるｍｉＲ−１３５＊を含む、請求項１に記載の方法または請求項２に記載の使用。
前記ｍｉＲ−１３５が修飾糖リン酸骨格および修飾塩基からなる群から選択される修飾を含む、請求項１に記載の方法または請求項２に記載の使用。
前記ｍｉＲ−１３５が糖およびヌクレオシド間連結の両方における修飾を含む、請求項１に記載の方法または請求項２に記載の使用。
前記修飾が、ホスホロチオエート、キラルホスホロチオエート、ジチオリン酸、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、メチルホスホネート、アルキルホスホネート、キラルホスホネート、ホスフィネート、ホスホルアミデート、アミノアルキルホスホルアミデート、チオノホスホルアミデート、チオノアルキルホスホネート、チオノアルキルホスホトリエステル、ボラノホスフェート、リン酸ジエステル、２’−Ｏ−メトキシエチル、２’−Ｏ−メチル、２’−フルオロ、ロックド核酸（ＬＮＡ）、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される、請求項６または７に記載の方法または使用。
前記ｍｉＲ−１３５が配列番号１９４〜２０９で示される、請求項６または７に記載の方法または使用。
前記双極性障害が、双極Ｉ型、双極ＩＩ型、急速交代型双極性障害、気分循環症および特定不能の双極性障害（ＢＤ−ＮＯＳ）からなる群から選択される、請求項１に記載の方法または請求項２に記載の使用。
ｍｉＲ−１３５、その前駆物質および前記ｍｉＲ−１３５もしくは前記その前駆物質をコードする核酸分子ならびに双極性障害の前記処置のための薬物からなる群から選択される薬剤を包装するパッケージ材料を含む製品。
前記ｍｉＲ−１３５が、配列番号５８、配列番号５９、配列番号６０、配列番号６１および配列番号６２からなる群から選択される、請求項１１に記載の製品。
前記ｍｉＲ−１３５が、配列番号１９２および配列番号１９３からなる群から選択されるｍｉＲ−１３５＊を含む、請求項１１に記載の製品。
前記ｍｉＲ−１３５が修飾糖リン酸骨格および修飾塩基からなる群から選択される修飾を含む、請求項１１に記載の製品。
前記ｍｉＲ−１３５が糖およびヌクレオシド間連結の両方における修飾を含む、請求項１１に記載の製品。
前記修飾が、ホスホロチオエート、キラルホスホロチオエート、ジチオリン酸、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、メチルホスホネート、アルキルホスホネート、キラルホスホネート、ホスフィネート、ホスホルアミデート、アミノアルキルホスホルアミデート、チオノホスホルアミデート、チオノアルキルホスホネート、チオノアルキルホスホトリエステル、ボラノホスフェート、リン酸ジエステル、２’−Ｏ−メトキシエチル、２’−Ｏ−メチル、２’−フルオロ、ロックド核酸（ＬＮＡ）、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される、請求項１４または１５に記載の製品。
前記ｍｉＲ−１３５が、配列番号１９４、配列番号１９５、配列番号１９６、配列番号１９７、配列番号１９８、配列番号１９９、配列番号２００、配列番号２０１、配列番号２０２、配列番号２０３、配列番号２０４、配列番号２０５、配列番号２０６、配列番号２０７、配列番号２０８および配列番号２０９からなる群から選択される、請求項１４または１５に記載の製品。
双極性障害の処置用の前記薬物が、リチウム、抗精神病薬物および気分安定剤薬物からなる群から選択される、請求項１１に記載の製品。
抗うつ剤または気分障害の処置用の薬物の処置をモニタリングする方法であって、
（ａ）処置を必要としているヒト対象を、抗うつ剤または気分障害の処置用の薬物で処置すること、および
（ｂ）前記ヒト対象の生物試料中のｍｉＲ−１３５の発現レベルを前記処置の前後で測定すること、を含み、前記抗うつ剤または前記気分障害の前記処置用の前記薬物による前記処置の前の前記ｍｉＲ−１３５の前記発現レベルと比較して、前記抗うつ剤または前記気分障害の前記処置用の前記薬物による前記処置の後の前記ｍｉＲ−１３５のより高い発現レベルにより、効果的処置であることが示される方法。
（ｃ）ステップ（ｂ）で前記ｍｉＲ−１３５のより高い発現レベルが観察される場合に、前記ヒト対象を処置すること、をさらに含む、請求項１９に記載の方法。
前記処置に先立って前記ヒト対象から生物試料を得ることをさらに含む、請求項１９に記載の方法。
前記気分障害が双極性障害を含む、請求項１９に記載の方法。
前記抗うつ剤が、選択的セロトニン再取り込み阻害剤（ＳＳＲＩ）、三環系抗うつ剤およびノルアドレナリン再取り込み阻害剤（ＮＲＩ）からなる群から選択される、請求項１９に記載の方法。
前記気分障害の前記処置用の前記薬物が、リチウム、抗精神病薬物および気分安定剤薬物からなる群から選択される、請求項１９に記載の方法。
診断を必要としているヒト対象の気分障害を診断する方法であって、前記ヒト対象の生物試料中のｍｉＲ−１３５の発現レベルを測定することを含み、健康なヒト対象の生物試料中のレベルに比べて、前記ｍｉＲ−１３５のより低い発現レベルが前記気分障害を示す方法。
前記生物試料が、全血、血清、血漿および白血球からなる群から選択される、請求項１９、２１または２５に記載の方法。
前記気分障害が、双極性障害、うつ病、大うつ病、不安症、ストレス、疲労、認知機能障害、パニック発作、強迫行動、嗜癖、社会恐怖症、統合失調症、睡眠障害、および摂食障害からなる群から選択される、請求項２５に記載の方法。
前記ｍｉＲ−１３５がｍｉＲ−１３５ａまたはｍｉＲ−１３５ｂからなる群から選択される、請求項２５に記載の方法。
前記対象がヒト対象である、請求項１に記載の方法、または請求項２に記載の使用。
ｍｉＲ−１３５を含む単離ポリヌクレオチドであって、前記ｍｉＲ−１３５が、ロックド核酸（ＬＮＡ）および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される修飾を含む、単離ポリヌクレオチド。
配列番号１９４、配列番号１９５、配列番号１９６、配列番号１９７、配列番号１９８、配列番号１９９、配列番号２００、配列番号２０１、配列番号２０２、配列番号２０３、配列番号２０４、配列番号２０５、配列番号２０６、配列番号２０７、配列番号２０８および配列番号２０９からなる群から選択される修飾ｍｉＲ１３５を含む単離ポリヌクレオチド。
ｍｉＲ−３３５、ｍｉＲ−１８１、ｍｉＲ−１８２、ｍｉＲ−２６、ｍｉＲ−２７、ｍｉＲ−１５およびｍｉＲ−１９からなる群から選択されるマイクロＲＮＡを含む単離ポリヌクレオチドであって、前記マイクロＲＮＡが、ロックド核酸（ＬＮＡ）および２’−フルオロアラビノオリゴヌクレオチド（ＦＡＮＡ）からなる群から選択される修飾を含む単離ポリヌクレオチド。
請求項３０、３１または３２に記載の単離ポリヌクレオチド、および薬学的に許容可能なキャリアを含む医薬組成物。
アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；および神経膠細胞中のジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される遺伝子の発現をアップレギュレーションする方法であって、
（ａ）前記神経膠細胞中のｍｉＲ−１３５またはその前駆物質の活性または発現をダウンレギュレーションすること、および
（ｂ）前記神経膠細胞中の前記遺伝子の発現を測定し、それにより、前記遺伝子の発現をアップレギュレーションすることを含む方法。
アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；および神経膠細胞中のジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択される遺伝子の発現をダウンレギュレーションする方法であって、
（ａ）前記神経膠細胞中のｍｉＲ−１３５またはその前駆物質の活性または発現をアップレギュレーションすること、および
（ｂ）前記神経膠細胞中の前記遺伝子の発現を測定し、それにより、前記遺伝子の発現をダウンレギュレーションすることを含む方法。
セロトニンレベルの上昇が、処置を必要としている対象にとって治療上有益である医学的状態を処置する方法であって、アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１（Ａｄｃｙａｐ１またはＰＡＣＡＰ）；アデニル酸シクラーゼ活性化ポリペプチド１受容体１（Ａｄｃｙａｐ１ｒ１）；アドレナリン受容体、アルファ２ａ（Ａｄｒａ２ａ）；アンキリン３（ＡＮＫ３）；活動依存性細胞骨格関連タンパク（Ａｒｃ）；ＲｈｏＧＴＰａｓｅ活性化タンパク質６（Ａｒｈｇａｐ６）；活性化転写因子３（Ａｔｆ３）；アミロイド前駆体タンパク質βサイト切断酵素１（Ｂａｃｅ１）；カルシウムチャネル、電圧依存性、Ｌ型、アルファ１Ｄサブユニット（Ｃａｃｎａ１ｄ）；細胞付着分子３（Ｃａｄｍ３）；コンプレキシン１（Ｃｐｌｘ１）；コンプレキシン２（Ｃｐｌｘ２）；ＣＵＢおよびＳｕｓｈｉ複数ドメイン１（Ｃｓｍｄ１）；カゼインキナーゼ１、ガンマ１（Ｃｓｎｋ１ｇ１）；ダブルコルチン（Ｄｃｘ）；ＤＩＲＡＳファミリー、ＧＴＰ結合ＲＡＳ様２（Ｄｉｒａｓ２）；ディスクラージホモログ２（ショウジョウバエ）（Ｄｌｇ２）；ＥＬＫ１、ＥＴＳ癌遺伝子ファミリーのメンバー（Ｅｌｋ１）；癌遺伝子関連キナーゼ（Ｆｒｋ）；フコシルトランスフェラーゼ９（アルファ（１，３）フコシルトランスフェラーゼ）（Ｆｕｔ９）；ガンマアミノ酪酸（ＧＡＢＡ−Ａ）受容体、サブユニットベータ２（Ｇａｂｒｂ２）；ＧＡＴＡ結合タンパク質３（Ｇａｔａ３）；成長ホルモン分泌促進物質受容体（Ｇｈｓｒ）；Ｇタンパク質共役受容体３（Ｇｐｒ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型ＡＭＰＡ３（アルファ３）（ＧＲＩＡ３）；グルタミン酸受容体、イオンチャネル型、カイニン酸３（Ｇｒｉｋ３）；Ｇタンパク質共役受容体キナーゼ５（Ｇｒｋ５）；グリコーゲン合成酵素キナーゼ−３ベータ（ＧＳＫ３Ｂ）；過分極活性化環状ヌクレオチド依存性カリウムチャネル１（Ｈｃｎ１）、過分極活性化環状ヌクレオチド依存性Ｋ＋２（Ｈｃｎ２）、５−ヒドロキシトリプタミン（セロトニン）受容体１Ａ（Ｈｔｒ１ａ）；イノシトール一リン酸分解酵素（ＩＭＰＡ１）、カリリン、ＲｈｏＧＥＦキナーゼ（Ｋａｌｒｎ）；カリウム中間体／小コンダクタンスカルシウム活性化チャネル、サブファミリーＮ、メンバー３（ＫＣＮＮ３）；カリオフェリンα３（インポーチンアルファ４）（Ｋｐｎａ３）；ミエリン転写因子１様（Ｍｙｔ１ｌ）；核内受容体転写共役因子２（Ｎｃｏａ２）；Ｎ−Ｍｙｃ下流調節遺伝子４（Ｎｄｒｇ４）；一酸化窒素合成酵素１（神経細胞）アダプタータンパク質（ＮＯＳ１ＡＰ）；核受容体サブファミリー３、グループＣ、メンバー２（Ｎｒ３ｃ２）；ネトリンＧ１（Ｎｔｎｇ１）；核カゼインキナーゼおよびサイクリン依存性キナーゼ基質１（Ｎｕｃｋｓ１）；ホスホジエステラーゼ１Ａ、カルモデュリン依存性（Ｐｄｅ１ａ）；ホスホジエステラーゼ４Ａ、ｃＡＭＰ特異的（Ｐｄｅ４ａ）；ホスホジエステラーゼ８Ｂ（Ｐｄｅ８ｂ）；ホスホリパーゼＣ、ベータ１（Ｐｌｃｂ１）；プロラクチン受容体（Ｐｒｌｒ）；ＲＡＢ１Ｂ、ＲＡＳ癌遺伝子ファミリーメンバー（Ｒａｂ１ｂ）；Ｒａｓ関連タンパク質Ｒａｐ−２ａ（Ｒａｐ２ａ）；レチノイド関連オーファン受容体ベータ（Ｒｏｒｂ）；サーチュイン１（サイレント交配型情報調節因子２、相同体）１（Ｓｉｒｔ１）；溶質輸送体ファミリー１２、（カリウム／塩化物輸送体）メンバー６（Ｓｌｃ１２ａ６）；溶質輸送体ファミリー５（コリン輸送体）、メンバー７（Ｓｌｃ５ａ７）；溶質輸送体ファミリー６（神経伝達物質輸送体、セロトニン）、メンバー４（Ｓｌｃ６ａ４）；トランス作用性転写因子１（Ｓｐ１）；シナプス小胞糖タンパク質２ｂ（Ｓｖ２ｂ）；シナプス核膜１（ネスプリン−１をコード）（Ｓｙｎｅ１）；シナプトタグミンＩ（Ｓｙｔ１）；シナプトタグミンＩＩ（Ｓｙｔ２）；シナプトタグミンＩＩＩ（Ｓｙｔ３）；形質転換増殖因子、ベータ受容体ＩＩ（Ｔｇｆｂｒ２）；甲状腺ホルモン受容体、ベータ（Ｔｈｒｂ）；一過性受容器電位カチオンチャネル、サブファミリーＣ、メンバー６（Ｔｒｐｃ６）；シナプス小胞結合膜タンパク質２（Ｖａｍｐ２）；無翅関連ＭＭＴＶ統合部位３（Ｗｎｔ３）；およびジンクフィンガー、ＢＥＤドメイン含有４（Ｚｂｅｄ４）、からなる群から選択されるｍｉＲ−１３５標的の活性または発現をダウンレギュレーションすることができる薬剤を前記対象に投与することを含み、前記薬剤がｍｉＲ−１３５ではなく、それにより前記医学的状態を処置する方法。
前記医学的状態が、双極性障害、うつ病、大うつ病、不安症、ストレス、疲労、認知機能障害、パニック発作、強迫行動、嗜癖、社会恐怖症、統合失調症、睡眠障害、摂食障害、成長障害および生殖障害からなる群から選択される、請求項３６に記載の方法。