JP2019119737A - 皮膚外用組成物 - Google Patents
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Abstract
【課題】優れた抗シワ効果を奏する抗シワ皮膚外用組成物を提供すること。【解決手段】レチノール及びツバキ種子油を含む、皮膚外用組成物。【選択図】なし
Description
本発明は、皮膚外用組成物等に関する。
皮膚老化に伴って肌にはシワが増える。シワには、眼の下に細く横に入り、深さが表皮レベルのシワ（表皮性シワ）から、目尻や額などの表情筋の方向と垂直の細かいひだとして現れ、シワの深さが真皮レベルのシワ（真皮性シワ）や、目や口の周り、顔の輪郭などの大きなひだとして現れるシワ（老人性シワ）などがある。このような、表皮や真皮などの部位に総合的に作用してシワの形成防止や改善に多面的に作用する解決を目指して、研究がなされている。
レチノールおよびその誘導体は、視覚をはじめとする生体機能の維持や、皮膚および粘膜などの正常上皮組織の再生機能などに関与することが知られているビタミンの一種であり、尋常性魚鱗癬などの角化異常皮膚疾患の外用医薬品として知られ、また、レチノール誘導体は、上皮組織の活性を維持し、紫外光線のシグナル透過を遮断することによって皮膚の老化を抑制することが知られており、皮膚老化防止用の化粧料などとして広く利用されている。
またさらに、特定のアミノ酸配列を有するペプチドユニットを縮合して得られるポリペプチド（ポリ（プロリン−ヒドロキシプロリン−グリシン））にコハク酸を介してレチノールを結合した物質は細胞毒性が低く、表皮におけるヒアルロン酸産生を増大し、また、真皮におけるコラーゲンの合成を促進できることが見出されている（特許文献１）。
本発明の目的は、優れた抗シワ効果（例えば、シワ形成防止効果、シワ改善効果、美肌効果、又は肌質改善効果等の効果）を奏する抗シワ皮膚外用組成物を提供することにある。
本発明者らは、レチノールにツバキ種子から得られる油（ツバキ種子油）を組み合わせて用いることにより、格段に高いＨＡＳ２及び／又はＨＡＳ３遺伝子発現亢進効果を得られることを見出し、さらに改良を重ねて本発明を完成させるに至った。
本発明は例えば以下の項に記載の主題を包含する。
項１．
レチノール及びツバキ種子油を含む、皮膚外用組成物。
項２．
ツバキ種子油の脂肪酸含有比率が、以下の通りである、項１に記載の組成物。
パルミチン酸：７．５〜２０．０％
オレイン酸：６２．０〜８５．０％
リノール酸：３．５〜１０．０％
リノレン酸：１．５％以下
ステアリン酸：０．５〜５．０％
項３．
抗シワ皮膚外用組成物である、項１又は２に記載の組成物。
項４．
表皮細胞ヒアルロン酸産生亢進用組成物である、項１〜３のいずれかに記載の組成物。
項５．
皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該組成物に皮膚適用時抗シワ効果を付与若しくは増強する方法。
項６．
皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該レチノールの有する皮膚適用時抗シワ効果を増強する方法。
項１．
レチノール及びツバキ種子油を含む、皮膚外用組成物。
項２．
ツバキ種子油の脂肪酸含有比率が、以下の通りである、項１に記載の組成物。
パルミチン酸：７．５〜２０．０％
オレイン酸：６２．０〜８５．０％
リノール酸：３．５〜１０．０％
リノレン酸：１．５％以下
ステアリン酸：０．５〜５．０％
項３．
抗シワ皮膚外用組成物である、項１又は２に記載の組成物。
項４．
表皮細胞ヒアルロン酸産生亢進用組成物である、項１〜３のいずれかに記載の組成物。
項５．
皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該組成物に皮膚適用時抗シワ効果を付与若しくは増強する方法。
項６．
皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該レチノールの有する皮膚適用時抗シワ効果を増強する方法。
本発明の皮膚外用組成物を用いることにより、優れた抗シワ効果（より具体的には、例えば、シワ形成防止効果、シワ改善効果、美肌効果、又は肌質改善効果等）を得ることができる。
以下、本発明の各実施形態について、さらに詳細に説明する。
本発明に包含される皮膚外用組成物は、レチノール及びツバキ種子油を含む。以下、当該組成物を本発明の皮膚外用組成物とよぶことがある。
レチノールは、次の構造式で表される化合物であり、上述の通り、皮膚老化防止用化粧品等に利用されている。
本発明の皮膚外用組成物におけるレチノールの含有量は、本発明の効果が損なわれない限り、特に制限されないが、例えば０．００５〜１質量％程度、０．０１〜０．５質量％程度、又は０．０２〜０．１質量％程度が好ましく挙げられる。また例えば組成物が液状である場合、１０−６〜１０−２Ｍ程度であることが好ましく、１０−５〜１０−２．５Ｍ程度であることがより好ましい。
本発明に用いるツバキ種子油は、ツバキの種子から抽出して得られる油である。ツバキとしては、ツバキ科ツバキ属に属する植物であって、その種子油が本発明の効果を得られるものであれば、特に制限はされない。なかでもヤブツバキ（Ｃａｍｅｌｌｉａ Ｊａｐｏｎｉｃａ）が好ましい。ツバキ種子から油を抽出する方法は特に制限されず、公知の方法又は公知の方法から容易に想到する方法を用いることができる。例えば、圧搾方法、又は煮出し方法等を用いることができる。また、ツバキ種子油としては、市販品を購入して用いることもできる。
ツバキ種子油は、種々の脂肪酸を含む。その脂肪酸含有比率が、次のようになるものが本発明に用いるのに、より好ましい。パルミチン酸：７．５〜２０．０％、オレイン酸：６２．０〜８５．０％、リノール酸：３．５〜１０．０％、リノレン酸：１．５％以下、ステアリン酸：０．５〜５．０％。
本発明の皮膚外用組成物に含まれるツバキ種子油の含有量は、本発明の効果が得られる範囲であれば、特に制限はされないが、例えば、０．０００５〜１０質量％程度が好ましく、０．００１〜５質量％程度がより好ましく、０．０１〜２質量％程度がさらに好ましく、０．１〜２質量％程度がよりさらに好ましい。当該範囲の上限は０．５、０．０５、０．０１質量％又は０．００５質量％程度であってもよい。
また、本発明の皮膚外用組成物には、皮膚外用組成物（特に外用医薬品組成物及び化粧品組成物）に使用される公知の成分をさらに含有していてもよい。このような成分としては、例えば、水、油剤、界面活性剤、保湿剤、高級アルコール、金属イオン封鎖剤、天然及び合成高分子、水溶性及び油溶性高分子、紫外線遮蔽剤、各種抽出液、有機染料等の色剤、防腐剤、酸化防止剤、色素、増粘剤、ｐＨ調整剤、香料、冷感剤、制汗剤、殺菌剤、皮膚賦活剤、各種粉体等の成分が挙げられる。これらの成分の配合量も、公知の皮膚外用組成物への配合量の情報に基づき、適宜設定することができる。特に制限されないが、例えば、１〜９９．９質量％程度、又は５０〜９９．９質量％程度であり得る。
特に制限されるわけではないが、本発明の皮膚外用組成物は、液状組成物であることが好ましい。また、本発明の皮膚外用組成物の使用形態としては、例えば、フェイスパック、ペースト、軟膏、クリーム、ジェル、ローション、乳液、美容液、化粧水、スプレー剤、ヘアケア剤などが挙げられる。
このような本発明の皮膚外用組成物は、公知の方法又は公知の方法から容易に想到される方法により製造することができる。例えば、レチノール及びツバキ種子油並びにその他の皮膚外用組成物に使用される公知の成分を適宜混合することにより製造することができる。
また、本発明の皮膚外用組成物は、レチノール及びツバキ種子油を含有することにより、皮膚（特に表皮細胞）において、優れたヒアルロン酸合成酵素遺伝子（特にＨＡＳ２及び／又はＨＡＳ３）発現亢進効果、並びに／あるいは、細胞増殖因子の遺伝子（特にＨＢ−ＥＧＦ遺伝子）発現亢進効果を奏する。また、本発明の皮膚外用組成物は、皮膚（特に表皮細胞）において、優れたヒアルロン酸産生亢進効果を奏する。
Ｈｙａｌｕｒｏｎａｎ Ｓｙｎｔｈａｓｅ（ＨＡＳ）はヒアルロン酸合成酵素であり、ＨＡＳ２及びＨＡＳ３は、それぞれがその１種である。ＨＡＳの発現が亢進することで、ヒアルロン酸合成が促進され、これにより抗シワ効果が好ましく奏される。また、ｈｅｐａｒｉｎ−ｂｉｎｄｉｎｇ ＥＧＦ−ｌｉｋｅ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ（ＨＢ−ＥＧＦ）は、皮膚細胞増殖に関わっていること、特にＨＢ−ＥＧＦが増えれば皮膚ターンオーバーが早まり新しい皮膚に生まれ変わることが知られている。これにより、外傷や日焼け、あるいはシワやシミが解消され得る。
このため、本発明は、レチノール及びツバキ種子油を含有するヒアルロン酸合成（産生ともいえる）亢進用組成物、及び、レチノール及びツバキ種子油を含有する細胞（特に皮膚細胞、中でも表皮細胞）増殖促進用若しくは皮膚ターンオーバー用組成物をも包含する。これらの組成物に含まれる各成分については、上述の記載が好ましく当てはまる。
また、本発明は、（ｉ）皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該組成物に皮膚適用時抗シワ効果を付与若しくは増強する方法、並びに、（ｉｉ）皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該レチノールの有する皮膚適用時抗シワ効果を増強する方法、も好ましく包含する。
（ｉ）の方法では、皮膚外用組成物において、レチノール及びツバキ種子油という特定の成分を組み合わせて含ませることによって、当該組成物自体の皮膚適用時抗シワ効果を増強させるか、あるいは当該組成物自体にレチノール及びツバキ種子油以外には皮膚適用時抗シワ効果を奏する成分が含まれていない場合には、当該効果を付与することができる。また、（ｉｉ）の方法では、もともとレチノール自体に皮膚適用時の抗シワ効果が期待されるところ、ツバキ種子油をレチノールと組み合わせて用いる（つまり、皮膚外用剤にレチノール及びツバキ種子油を含ませる）ことによって、当該レチノールの抗シワ効果を増強することができる。
なお、本明細書において「含む」とは、「本質的にからなる」と、「からなる」をも包含する（The term "comprising" includes "consisting essentially of” and "consisting of."）。
以下、本発明をより具体的に説明するが、本発明は下記の例に限定されるものではない。なお、以下、特に断らない限り、以下の検討に用いた各種組成物中の成分含有割合を示す％は質量（ｗ／ｗ）％を表す。ＣＯ２濃度の％はｖ／ｖ％である。なお、用いたツバキ種子油の脂肪酸含有比率は、次の範囲を満たした。パルミチン酸：７．５〜２０．０％、オレイン酸：６２．０〜８５．０％、リノール酸：３．５〜１０．０％、リノレン酸：１．５％以下、ステアリン酸：０．５〜５．０％。
ヒアルロン酸合成酵素遺伝子及び細胞増殖促進遺伝子の発現検討
ＮＨＥＫ細胞（正常ヒト表皮角化細胞；新生児由来）を用いて、レチノール及びツバキ種子油により、ヒアルロン酸合成酵素遺伝子（ＨＡＳ２）及び細胞増殖促進遺伝子（ＨＢ−ＥＧＦ）の発現が変化するかを検討した。なお、細胞、培地及び培地関連試薬については、全て市販品を購入して用いた（倉敷紡績株式会社又はシグマアルドリッチ）。
ＮＨＥＫ細胞（正常ヒト表皮角化細胞；新生児由来）を用いて、レチノール及びツバキ種子油により、ヒアルロン酸合成酵素遺伝子（ＨＡＳ２）及び細胞増殖促進遺伝子（ＨＢ−ＥＧＦ）の発現が変化するかを検討した。なお、細胞、培地及び培地関連試薬については、全て市販品を購入して用いた（倉敷紡績株式会社又はシグマアルドリッチ）。
＜増殖培地調製方法＞
３７℃に恒温化したＨｕＭｅｄｉａ−ＫＢ２培地 ５００ｍＬに同じく恒温化したインスリン ０．５ｍｌ、ｈＥＧＦ ０．５ｍｌ、ハイドロコ−チゾル ０．５ｍｌ、ＢＰＥ（ウシ脳下垂体抽出液）２ｍｌ、ゲンタマイシン／アンフォテリシンＢ ０．５ｍｌ（抗菌剤）を加えた。これを緩やかに混合した後、４℃に保存した。
３７℃に恒温化したＨｕＭｅｄｉａ−ＫＢ２培地 ５００ｍＬに同じく恒温化したインスリン ０．５ｍｌ、ｈＥＧＦ ０．５ｍｌ、ハイドロコ−チゾル ０．５ｍｌ、ＢＰＥ（ウシ脳下垂体抽出液）２ｍｌ、ゲンタマイシン／アンフォテリシンＢ ０．５ｍｌ（抗菌剤）を加えた。これを緩やかに混合した後、４℃に保存した。
＜凍結ＮＨＥＫ細胞の解凍及び培地交換方法＞
凍結ＮＨＥＫ細胞の入ったアンプル２本を３７℃の恒温槽で解凍した。解凍後、予め１５ｍｌチューブに分注した４℃のＨｕｍｅｄｉａ−ＫＧ２培地 ６ｍｌに細胞溶液を混合した。予め３７℃に恒温化したＨｕｍｅｄｉａ−ＫＧ２培地 ３９ｍｌを１３ｍｌずつ３つのフラスコに移した。混合した細胞溶液を接着細胞培養フラスコ（ＳＵＭＩＬＯＮ ２５０ｍＬ）に２ｍｌずつ移し、細胞が均一になるように混合させてから、しばらく静置した。３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターで培養した。翌日以降、細胞密度が８０％コンフルエントになるまで１日１回培地交換を行なった。
凍結ＮＨＥＫ細胞の入ったアンプル２本を３７℃の恒温槽で解凍した。解凍後、予め１５ｍｌチューブに分注した４℃のＨｕｍｅｄｉａ−ＫＧ２培地 ６ｍｌに細胞溶液を混合した。予め３７℃に恒温化したＨｕｍｅｄｉａ−ＫＧ２培地 ３９ｍｌを１３ｍｌずつ３つのフラスコに移した。混合した細胞溶液を接着細胞培養フラスコ（ＳＵＭＩＬＯＮ ２５０ｍＬ）に２ｍｌずつ移し、細胞が均一になるように混合させてから、しばらく静置した。３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターで培養した。翌日以降、細胞密度が８０％コンフルエントになるまで１日１回培地交換を行なった。
＜ＮＨＥＫ細胞の継代培養方法＞
増殖培地を吸引し、３７℃に恒温化したＨＥＰＥＳ緩衝液を５ｍＬ加え、軽く細胞層を洗浄した。ＨＥＰＥＳ緩衝液を吸引し、０．２５％トリプシン溶液を２ｍＬ加え、３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターで３分静置した。その後、フラスコ底面に接着している細胞をはがした（フラスコの淵を軽く叩き、細胞をはがす）。そこに３７℃に恒温化したトリプシン中和液を４ｍＬ加えてトリプシン酵素の反応を停止させた。細胞懸濁液を５０ｍｌファルコンに回収し、遠心した（ＲＴ、１，０００ｒｐｍ、５ｍｉｎ）。上清を吸引し、Ｈｕｍｅｄｉａ−ＫＧ２培地１０ｍｌに混合した後、血球計算盤で細胞数を計測した。その後、接着細胞２４ｗｅｌｌプレートに培地量９５０μＬ、細胞数が１．２×１０５個になるよう蒔いた。翌日、培地交換を行なった。
増殖培地を吸引し、３７℃に恒温化したＨＥＰＥＳ緩衝液を５ｍＬ加え、軽く細胞層を洗浄した。ＨＥＰＥＳ緩衝液を吸引し、０．２５％トリプシン溶液を２ｍＬ加え、３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターで３分静置した。その後、フラスコ底面に接着している細胞をはがした（フラスコの淵を軽く叩き、細胞をはがす）。そこに３７℃に恒温化したトリプシン中和液を４ｍＬ加えてトリプシン酵素の反応を停止させた。細胞懸濁液を５０ｍｌファルコンに回収し、遠心した（ＲＴ、１，０００ｒｐｍ、５ｍｉｎ）。上清を吸引し、Ｈｕｍｅｄｉａ−ＫＧ２培地１０ｍｌに混合した後、血球計算盤で細胞数を計測した。その後、接着細胞２４ｗｅｌｌプレートに培地量９５０μＬ、細胞数が１．２×１０５個になるよう蒔いた。翌日、培地交換を行なった。
＜試料添加方法＞
増殖培地を吸引し、ＰＢＳ １ｍｌで洗浄した後、Ｈｕｍｅｄｉａ−ＫＢ２培地 １ｍｌに混合した検討試料（レチノール及び／又はツバキ種子油）を添加し、２４時間培養した。なお、レチノールは１０−５Ｍの終濃度となるよう培地に添加した。ツバキ種子油は、ＨＡＳ２遺伝子の発現解析時には終濃度０．００１％又は０．００５％となるように培地に添加し、ＨＢ−ＥＧＦ遺伝子の発現解析時には終濃度０．１質量％となるように培地に添加した。また、レチノールの代わりにＤＭＳＯ（ジメチルスルホキシド）を培地中で１／１０００に希釈される容量加えたものも同様に２４時間培養した。
増殖培地を吸引し、ＰＢＳ １ｍｌで洗浄した後、Ｈｕｍｅｄｉａ−ＫＢ２培地 １ｍｌに混合した検討試料（レチノール及び／又はツバキ種子油）を添加し、２４時間培養した。なお、レチノールは１０−５Ｍの終濃度となるよう培地に添加した。ツバキ種子油は、ＨＡＳ２遺伝子の発現解析時には終濃度０．００１％又は０．００５％となるように培地に添加し、ＨＢ−ＥＧＦ遺伝子の発現解析時には終濃度０．１質量％となるように培地に添加した。また、レチノールの代わりにＤＭＳＯ（ジメチルスルホキシド）を培地中で１／１０００に希釈される容量加えたものも同様に２４時間培養した。
＜細胞回収方法＞
Ｈｕｍｅｄｉａ−ＫＢ２培地を吸引し、ＰＢＳ １ｍｌで洗浄した。ＰＢＳを吸引し、ＲＬＴ（細胞溶解液） ３５０μｌを加え、プレートシェイカーで３ｍｉｎ振盪した。２４ｗｅｌｌプレートの周りをビニールテープで覆い、−８０℃へ保存した。
Ｈｕｍｅｄｉａ−ＫＢ２培地を吸引し、ＰＢＳ １ｍｌで洗浄した。ＰＢＳを吸引し、ＲＬＴ（細胞溶解液） ３５０μｌを加え、プレートシェイカーで３ｍｉｎ振盪した。２４ｗｅｌｌプレートの周りをビニールテープで覆い、−８０℃へ保存した。
＜ｃＤＮＡの作製＞
−８０℃から２４ｗｅｌｌプレートを取り出し、恒温槽で解凍した。７０％ ＥｔＯＨ ３５０μｌを加え、プレートシェイカーで３分振盪した。Ｔｏｔａｌ ＲＮＡサンプルはＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社）を用いて抽出した。ＮＡＮＯＤＲＯＰ ２０００ Ｓｐｅｃｔｒｉｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ）でＲＮＡ濃度を測定し、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＲＴ ｒｅａｇｅｎｔ Ｋｉｔ（タカラバイオ社）を用いて、約５００ｎｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡからｃＤＮＡを作製した。
−８０℃から２４ｗｅｌｌプレートを取り出し、恒温槽で解凍した。７０％ ＥｔＯＨ ３５０μｌを加え、プレートシェイカーで３分振盪した。Ｔｏｔａｌ ＲＮＡサンプルはＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社）を用いて抽出した。ＮＡＮＯＤＲＯＰ ２０００ Ｓｐｅｃｔｒｉｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ）でＲＮＡ濃度を測定し、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＲＴ ｒｅａｇｅｎｔ Ｋｉｔ（タカラバイオ社）を用いて、約５００ｎｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡからｃＤＮＡを作製した。
＜リアルタイムＰＣＲ＞
Ｐｒｉｍｉｘ Ｅｘ Ｔａｑ（タカラバイオ社）１０μｌにプライマー、ＲＯＸ ＤｙｅＩＩとＲＮＡ Ｆｒｅｅ水を加え、１８μｌの混液を調製し、２μｌ（約５０ｎｇ）のｃＤＮＡサンプルを加えて、Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ測定サンプルを各プライマーごとに調製した。内在性コントロールとしてβ−ａｃｔｉｎ、ターゲット遺伝子としてＨＡＳ２及びＨＢ−ＥＧＦを選択した。Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｔａｎｄａｒｄ７５００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）により、ターゲット遺伝子の発現解析（相対定量）を検量線法により行なった。
Ｐｒｉｍｉｘ Ｅｘ Ｔａｑ（タカラバイオ社）１０μｌにプライマー、ＲＯＸ ＤｙｅＩＩとＲＮＡ Ｆｒｅｅ水を加え、１８μｌの混液を調製し、２μｌ（約５０ｎｇ）のｃＤＮＡサンプルを加えて、Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ測定サンプルを各プライマーごとに調製した。内在性コントロールとしてβ−ａｃｔｉｎ、ターゲット遺伝子としてＨＡＳ２及びＨＢ−ＥＧＦを選択した。Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｔａｎｄａｒｄ７５００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）により、ターゲット遺伝子の発現解析（相対定量）を検量線法により行なった。
ＨＡＳ２遺伝子の発現解析結果（ＤＭＳＯ添加時を１としたときの遺伝子発現割合）を図１に示す。図１において、＊＊＊は、有意差が有ることを示す（＊＊＊：Ｐ＜０．００１）。また、図において、棒グラフの上部の＊＊＊は、コントロール（ＤＭＳＯ添加）と比べて有意差があることを、横棒上部の＊＊＊は、当該横棒の端部に位置するサンプルどうしを比較して有意差があることを、それぞれ示す。また、ＨＢ−ＥＧＦ遺伝子解析の結果、ＤＭＳＯ添加時を１としたときの遺伝子発現割合は、レチノールのみ添加時が約６．４であり、レチノール及びツバキ種子油添加時が約９．９であって、レチノールのみ添加時に比べてレチノール及びツバキ種子油添加時の方が有意に高かった（Ｐ＜０．０５）。
三次元皮膚モデルを用いたヒアルロン酸合成及び細胞増殖促進遺伝子の発現検討
三次元皮膚モデルを用いて、レチノール及びツバキ種子油 により、ヒアルロン酸合成酵素遺伝子（ＨＡＳ３）及び細胞増殖促進遺伝子（ＨＢ−ＥＧＦ）の発現が変化するかを検討した。さらに、最終産物であるヒアルロン酸産生量の発現が変化するかについても検討した。なお、細胞、培地及び培地関連試薬については、全て市販品を購入して用いた（ＭａｔＴｅｋ又は倉敷紡績株式会社又はシグマアルドリッチ）。
三次元皮膚モデルを用いて、レチノール及びツバキ種子油 により、ヒアルロン酸合成酵素遺伝子（ＨＡＳ３）及び細胞増殖促進遺伝子（ＨＢ−ＥＧＦ）の発現が変化するかを検討した。さらに、最終産物であるヒアルロン酸産生量の発現が変化するかについても検討した。なお、細胞、培地及び培地関連試薬については、全て市販品を購入して用いた（ＭａｔＴｅｋ又は倉敷紡績株式会社又はシグマアルドリッチ）。
＜三次元皮膚モデルの培養方法＞
ＭａｔＴｅｋ社のキット（ＥＰＩ−２００）を用いて、三次元皮膚モデルを培養した。具体的には、３７℃に恒温化したＡｓｓａｙ培地を２４ｗｅｌｌプレートに５００μｌずつ加え、そこにＭａｔＴｅｋ社により調製されたＮＨＥＫ細胞（正常ヒト表皮角化細胞；新生児由来）からなる三次元皮膚モデルをのせた。３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターで１日培養した。
ＭａｔＴｅｋ社のキット（ＥＰＩ−２００）を用いて、三次元皮膚モデルを培養した。具体的には、３７℃に恒温化したＡｓｓａｙ培地を２４ｗｅｌｌプレートに５００μｌずつ加え、そこにＭａｔＴｅｋ社により調製されたＮＨＥＫ細胞（正常ヒト表皮角化細胞；新生児由来）からなる三次元皮膚モデルをのせた。３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターで１日培養した。
＜試料添加方法＞
三次元皮膚モデルに検討試料（レチノール及び／又はツバキ種子油）５０μｌを添加し、２４時間（リアルタイムＰＣＲによる遺伝子の発現解析実験）あるいは４８時間（ヒアルロン酸産生の定量実験）培養した（皮膚全体に添加試料がまんべんなく浸るように添加した）。レチノールは０．０５％の濃度となるよう調整してから、三次元皮膚モデルに添加した。ツバキ種子油は、ＨＡＳ３遺伝子の発現解析時には濃度１％又は２％となるように調整してから三次元皮膚モデルに添加し、ＨＢ−ＥＧＦ遺伝子の発現解析時には濃度２％、３％、又は５％となるように調整してから三次元皮膚モデルに添加し、ヒアルロン酸産生の定量実験時には濃度１％、２％、又は３％となるように調整してから三次元皮膚モデルに添加した。また、無添加の条件においても２４時間あるいは４８時間培養した。
三次元皮膚モデルに検討試料（レチノール及び／又はツバキ種子油）５０μｌを添加し、２４時間（リアルタイムＰＣＲによる遺伝子の発現解析実験）あるいは４８時間（ヒアルロン酸産生の定量実験）培養した（皮膚全体に添加試料がまんべんなく浸るように添加した）。レチノールは０．０５％の濃度となるよう調整してから、三次元皮膚モデルに添加した。ツバキ種子油は、ＨＡＳ３遺伝子の発現解析時には濃度１％又は２％となるように調整してから三次元皮膚モデルに添加し、ＨＢ−ＥＧＦ遺伝子の発現解析時には濃度２％、３％、又は５％となるように調整してから三次元皮膚モデルに添加し、ヒアルロン酸産生の定量実験時には濃度１％、２％、又は３％となるように調整してから三次元皮膚モデルに添加した。また、無添加の条件においても２４時間あるいは４８時間培養した。
なお、添加するレチノール溶液の濃度調整は、Ｄｅｃａｇｌｙｎ １−Ｌ、１，３−ＢＧ及びイオン交換水の混合液にレチノール１％の濃度となるよう溶解した濃縮液をまず調製し、これをイオン交換水で希釈することにより、行った。また、添加するツバキ種子油の濃度調整は、Ｄｅｃａｇｌｙｎ １−Ｌ、１，３−ＢＧ及びイオン交換水の混合液にツバキ種子油２０％の濃度となるよう溶解した濃縮液をまず調製し、これをイオン交換水で希釈することにより、行った。
＜三次元皮膚モデルの回収方法＞
新たな２４ｗｅｌｌプレートにＰＢＳを５００μＬ加え、三次元皮膚モデルを移した。皮膚上に残っている液体をアスピレーターで軽く吸引し、ＰＢＳで洗浄した。ピンセットでカップから三次元皮膚モデルを切り離し、ピンセットを使ってメンブレンを剥がした。耐熱チューブに剥がした三次元皮膚モデルを入れ、液体窒素で凍結した後、−８０℃へ保存した。
新たな２４ｗｅｌｌプレートにＰＢＳを５００μＬ加え、三次元皮膚モデルを移した。皮膚上に残っている液体をアスピレーターで軽く吸引し、ＰＢＳで洗浄した。ピンセットでカップから三次元皮膚モデルを切り離し、ピンセットを使ってメンブレンを剥がした。耐熱チューブに剥がした三次元皮膚モデルを入れ、液体窒素で凍結した後、−８０℃へ保存した。
＜三次元皮膚モデルからのＲＮＡ抽出及びｃＤＮＡの作製＞
１５ｍＬファルコンプラスティックチューブにＲＬＴ（細胞溶解液）を６００μＬ添加し、氷冷した。−８０℃で保存していた凍結サンプルを液体窒素で冷やした後、ＲＬＴに入れ、ホモジナイザーＰＯＬＹＴＲＯＮ（ＫＩＮＥＭＡＴＩＣＡ社）を用いて４０秒間ホモジナイズした。三次元皮膚モデル破砕液を１．５ｍｌチューブに回収し、遠心した（ＲＴ、１４，０００ｒｐｍ、５ｍｉｎ）。上清を回収し、等量の７０％ ＥｔＯＨ ３５０μｌを加え、ボルテックスで攪拌した。Ｔｏｔａｌ ＲＮＡサンプルはＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社）を用いて抽出した。ＮＡＮＯＤＲＯＰ ２０００ Ｓｐｅｃｔｒｉｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ）でＲＮＡ濃度を測定し、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＲＴ ｒｅａｇｅｎｔ Ｋｉｔ（タカラバイオ社）を用いて、約５００ｎｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡからｃＤＮＡを作製した。
１５ｍＬファルコンプラスティックチューブにＲＬＴ（細胞溶解液）を６００μＬ添加し、氷冷した。−８０℃で保存していた凍結サンプルを液体窒素で冷やした後、ＲＬＴに入れ、ホモジナイザーＰＯＬＹＴＲＯＮ（ＫＩＮＥＭＡＴＩＣＡ社）を用いて４０秒間ホモジナイズした。三次元皮膚モデル破砕液を１．５ｍｌチューブに回収し、遠心した（ＲＴ、１４，０００ｒｐｍ、５ｍｉｎ）。上清を回収し、等量の７０％ ＥｔＯＨ ３５０μｌを加え、ボルテックスで攪拌した。Ｔｏｔａｌ ＲＮＡサンプルはＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（キアゲン社）を用いて抽出した。ＮＡＮＯＤＲＯＰ ２０００ Ｓｐｅｃｔｒｉｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ（Ｔｈｅｒｍｏ ＳＣＩＥＮＴＩＦＩＣ）でＲＮＡ濃度を測定し、ＰｒｉｍｅＳｃｒｉｐｔ ＲＴ ｒｅａｇｅｎｔ Ｋｉｔ（タカラバイオ社）を用いて、約５００ｎｇのＴｏｔａｌ ＲＮＡからｃＤＮＡを作製した。
＜リアルタイムＰＣＲ＞
リアルタイムＰＣＲは上記と同様にして行った。すなわち、Ｐｒｉｍｉｘ Ｅｘ Ｔａｑ（タカラバイオ社）１０μｌにプライマー、ＲＯＸ ＤｙｅＩＩとＲＮＡ Ｆｒｅｅ水を加え、そこに約５０ｎｇ のｃＤＮＡサンプルを加えて、Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ測定サンプルをプライマーごとに２０μｌずつ調製した。内在性コントロールとしてβ−ａｃｔｉｎ、ターゲット遺伝子としてＨＡＳ３及びＨＢ−ＥＧＦを選択した。Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｔａｎｄａｒｄ７５００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）により、ターゲット遺伝子の発現解析（相対定量）を検量線法により行なった。
リアルタイムＰＣＲは上記と同様にして行った。すなわち、Ｐｒｉｍｉｘ Ｅｘ Ｔａｑ（タカラバイオ社）１０μｌにプライマー、ＲＯＸ ＤｙｅＩＩとＲＮＡ Ｆｒｅｅ水を加え、そこに約５０ｎｇ のｃＤＮＡサンプルを加えて、Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ測定サンプルをプライマーごとに２０μｌずつ調製した。内在性コントロールとしてβ−ａｃｔｉｎ、ターゲット遺伝子としてＨＡＳ３及びＨＢ−ＥＧＦを選択した。Ｒｅａｌ−Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｔａｎｄａｒｄ７５００（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）により、ターゲット遺伝子の発現解析（相対定量）を検量線法により行なった。
ＨＡＳ３遺伝子の発現解析結果（コントロール（無添加）を１としたときの遺伝子発現割合）を図２に示す。また、ＨＢ−ＥＧＦ遺伝子解析の結果（コントロール（無添加）を１としたときの遺伝子発現割合）を図３に示す。図２及び図３において、＊＊＊、＊＊、＊、及び＋は、有意差が有ることを示す（＊＊＊：Ｐ＜０．００１、＊＊：Ｐ＜０．０１、＊：Ｐ＜０．０５、＋：Ｐ＜０．１）。棒グラフの上部のこれらの記号は、コントロール（無添加））と比べて有意差があることを示す。また、横棒上部のこれらの記号は、当該横棒の端部に位置するサンプルどうしを比較して有意差があることを、それぞれ示す。なお、図２において、ツバキ種子油のみを加えた場合（「１％ツバキ油」及び「２％ツバキ油」）の結果を示す棒グラフ上部の記号は、コントロール（無添加）と比べて低下したことについて有意差があることを示す。
＜三次元皮膚モデルからのヒアルロン酸抽出＞
−８０℃で保存していた凍結サンプル（三次元皮膚モデル）を凍結乾燥機ＦＤＵ−２２００（東京理化器械株式会社）で３時間凍結乾燥させ、乾燥重量を測定した。乾燥重量１０ｍｇに対し、２．５％アクチナーゼＥ（科研製薬株式会社）／１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ８．０）溶液を１ｍｌ添加し、ヒートブロックにて５５℃で２４時間反応させ、タンパク質分解処理を行なった。ヒートブロックにて１００℃で１０分反応させ、アクチナーゼを煮沸失活させた。その後、遠心して（ＲＴ、１２，０００ｒｐｍ、１０ｍｉｎ）、上清を回収した。
−８０℃で保存していた凍結サンプル（三次元皮膚モデル）を凍結乾燥機ＦＤＵ−２２００（東京理化器械株式会社）で３時間凍結乾燥させ、乾燥重量を測定した。乾燥重量１０ｍｇに対し、２．５％アクチナーゼＥ（科研製薬株式会社）／１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ ８．０）溶液を１ｍｌ添加し、ヒートブロックにて５５℃で２４時間反応させ、タンパク質分解処理を行なった。ヒートブロックにて１００℃で１０分反応させ、アクチナーゼを煮沸失活させた。その後、遠心して（ＲＴ、１２，０００ｒｐｍ、１０ｍｉｎ）、上清を回収した。
＜ヒアルロン酸産生の定量＞
得られた上清中のヒアルロン酸量をＨｙａｌｕｒｏｎａｎ Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（ｆｕｎａｋｏｓｈｉ）を用いて定量した。結果を図４に示す。図４において、＊＊＊及び＊は、有意差が有ることを示す（＊＊＊：Ｐ＜０．００１、＊：Ｐ＜０．０５）。横棒上部の、＊＊＊、及び＊は、当該横棒の端部に位置するサンプルどうしを比較して有意差があることを、それぞれ示す。
得られた上清中のヒアルロン酸量をＨｙａｌｕｒｏｎａｎ Ｑｕａｎｔｉｋｉｎｅ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ（ｆｕｎａｋｏｓｈｉ）を用いて定量した。結果を図４に示す。図４において、＊＊＊及び＊は、有意差が有ることを示す（＊＊＊：Ｐ＜０．００１、＊：Ｐ＜０．０５）。横棒上部の、＊＊＊、及び＊は、当該横棒の端部に位置するサンプルどうしを比較して有意差があることを、それぞれ示す。
なお、各ＰＣＲに用いた各プライマーの塩基配列は次の通りである。（Ｆ：はフォワードプライマーを、Ｒ：はリバースプライマーを示す。）
β−ａｃｔｉｎ
Ｆ：ＴＴＧＴＴＡＣＡＧＧＡＡＧＴＣＣＣＴＴＧＣＣ
Ｒ：ＡＴＧＣＴＡＴＣＡＣＣＴＣＣＣＣＴＧＴＧＴＧ
ＨＡＳ２
Ｆ：ＡＧＴＣＡＴＧＴＡＣＡＣＡＧＣＣＴＴＣＡＧＡＧＣＡ
Ｒ：ＣＡＣＣＴＣＣＡＡＣＣＡＴＧＧＧＡＴＣＴＴＣ
ＨＡＳ３
Ｆ：ＴＣＧＧＣＧＡＴＴＣＧＧＴＧＧＡＣＴＡ
Ｒ：ＣＣＴＣＣＡＧＧＡＣＴＣＧＡＡＧＣＡＴＣＴＣ
ＨＢ−ＥＧＦ
Ｆ：ＧＧＧＡＣＣＣＡＴＧＴＣＴＴＣＧＧＡＡＡＴＡ
Ｒ：ＣＣＡＧＧＡＴＧＧＴＴＧＴＧＴＧＴＧＧＴＣＡＴＡＧ
β−ａｃｔｉｎ
Ｆ：ＴＴＧＴＴＡＣＡＧＧＡＡＧＴＣＣＣＴＴＧＣＣ
Ｒ：ＡＴＧＣＴＡＴＣＡＣＣＴＣＣＣＣＴＧＴＧＴＧ
ＨＡＳ２
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ＨＡＳ３
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ＨＢ−ＥＧＦ
Ｆ：ＧＧＧＡＣＣＣＡＴＧＴＣＴＴＣＧＧＡＡＡＴＡ
Ｒ：ＣＣＡＧＧＡＴＧＧＴＴＧＴＧＴＧＴＧＧＴＣＡＴＡＧ
Claims (6)
- レチノール及びツバキ種子油を含む、皮膚外用組成物。
- ツバキ種子油の脂肪酸含有比率が、以下の通りである、請求項１に記載の組成物。
パルミチン酸：７．５〜２０．０％
オレイン酸：６２．０〜８５．０％
リノール酸：３．５〜１０．０％
リノレン酸：１．５％以下
ステアリン酸：０．５〜５．０％ - 抗シワ皮膚外用組成物である、請求項１又は２に記載の組成物。
- 表皮細胞ヒアルロン酸産生亢進用組成物である、請求項１〜３のいずれかに記載の組成物。
- 皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該組成物に皮膚適用時抗シワ効果を付与若しくは増強する方法。
- 皮膚外用組成物に、レチノール及びツバキ種子油を含ませることにより、当該レチノールの有する皮膚適用時抗シワ効果を増強する方法。
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| JPS54117036A (en) * | 1978-03-03 | 1979-09-11 | Pigeon Kk | Breast massage cream |
| JPS58140008A (ja) * | 1982-02-10 | 1983-08-19 | Hiroshi Sekimoto | 皮膚硬化防止化粧料 |
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| "オリブ油・つばき油の脂肪酸組成", 油化学, vol. 27, no. 4, JPN6022022121, 1978, pages 264, ISSN: 0004994746 * |
| CONCENTRATE OIL, DR.K, 2013年12月, MINTEL GNPD [ONLINE], JPN6022022117, ISSN: 0004994743 * |
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