JP2019043889A - メラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物 - Google Patents
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Abstract
【課題】新規なメラニン産生抑制剤、美白剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物を提供する。【解決手段】miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有することを特徴とするメラニン産生抑制剤、美白剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物である。【選択図】図2
Description
本発明は、メラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物に関する。
皮膚のシミなどの色素沈着は、ホルモンの異常や紫外線、皮膚局所の炎症が原因となってメラニンが過剰に形成されて皮膚内に沈着するものと考えられている。皮膚の色素沈着の原因となるこのメラニンは、表皮基底層にある色素細胞(メラノサイト)内のメラノソームと呼ばれる小器官において生成される。
皮膚における色素沈着を予防、改善するために美白作用を有する物質、メラニン生成を抑制する物質が用いられている。色素沈着を予防、改善する方法として、例えば、ビタミンCなどを経口摂取する方法、ビタミンC、コウジ酸、ハイドロキノン等を皮膚に局所塗布する方法等がある。ビタミンC、コウジ酸、ハイドロキノン等の物質は、メラニン合成に関与する酵素であるチロシナーゼの活性阻害効果を有している。
一方、miRNAは、細胞内在性の、20〜25塩基程度の非コードRNAである。miRNAは、ゲノムDNA上のmiRNA遺伝子から、まず数百〜数千塩基程度の長さの一次転写物(pri−miRNA)として転写され、次いで、プロセシングを受け、約60〜70塩基程度のヘアピン構造を有するpre−miRNAとなる。その後、核から細胞質内に移り、更にプロセシングを受けて、20〜25塩基程度の二量体(ガイド鎖およびパッセンジャー鎖)の成熟miRNAとなる。成熟miRNAは、そのうちのガイド鎖(アンチセンス鎖)がRISC(RNA−Induced Silencing Complex)と呼ばれるタンパク質と複合体を形成し、標的遺伝子のmRNAに作用することで、標的遺伝子の翻訳を阻害する働きをすることが知られている。
特許文献1には、miRNA−141、miRNA−200aが、ともにDlx5遺伝子の3’非翻訳領域への結合を介して間葉系細胞の分化を抑制すること、miRNA−208がEts1遺伝子を標的にして分化を抑制すること、これらのmiRNAの阻害剤が間葉系細胞の分化を促進する分化促進剤として骨粗鬆症等の疾患を予防・治療するための医薬として用いられうることが記載されている。
標的遺伝子の翻訳を阻害する働きを有するmiRNAを利用して、メラニンの生成を抑制したり、シミ等の色素沈着を予防、改善したりすることができる医薬品の開発が望まれている。
本発明は、上記の課題に鑑みてなされたものであり、本発明の目的は、標的遺伝子の翻訳を阻害する働きを有するmiRNAを利用した新規なメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物を提供することにある。
本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、miRNA−141及びmiRNA−200aにメラニン生成を抑制する作用があることを見出し、本発明を完成するに至った。
より具体的には、miRNA−141及びmiRNA−200aがメラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害していることを見出し、本発明を完成するに至った。
より具体的には、miRNA−141及びmiRNA−200aがメラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害していることを見出し、本発明を完成するに至った。
従って、前記課題は、本発明によれば、miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するメラニン産生抑制剤により解決される。
本発明のメラニン産生抑制剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができる。
本発明のメラニン産生抑制剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができる。
また、前記課題は、本発明によれば、miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有する美白剤により解決される。
このとき、前記美白剤がシミの予防用又は治療用であるであるとよい。
このとき、前記シミは、雀卵斑、日光性黒子、肝斑又は両側性遅発性太田母斑様色素斑であるとよい。
本発明の美白剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができ、シミの予防や治療に好適に用いることができる。
このとき、前記美白剤がシミの予防用又は治療用であるであるとよい。
このとき、前記シミは、雀卵斑、日光性黒子、肝斑又は両側性遅発性太田母斑様色素斑であるとよい。
本発明の美白剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができ、シミの予防や治療に好適に用いることができる。
また、前記課題は、本発明によれば、miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するMITFの遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物、美白用化粧料組成物により解決される。
本発明によれば、新規なメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物を提供することができる。
本発明のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害することで、メラニンの産生を効果的に抑制し、シミの予防や治療に好適に用いることができる。
本発明のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害することで、メラニンの産生を効果的に抑制し、シミの予防や治療に好適に用いることができる。
以下、本発明の実施形態について、図1乃至4を参照しながら説明する。
本実施形態は、MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物に関するものである。
本実施形態は、MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物及び美白用化粧料組成物に関するものである。
<メラノサイトにおけるメラニンの生成>
皮膚における色素沈着の原因となるメラニンは、メラニン細胞(melanocyte、メラノサイト)内の小器官であるメラノソームで生成される。メラニン細胞は、メラニン形成細胞や色素細胞とも呼ばれる。
図1にメラニン生成のプロセスを示すように、メラニンはアミノ酸であるチロシンから作られる。このプロセスでは、チロシナーゼ、チロシナーゼ関連タンパク−1(TRP−1)、チロシナーゼ関連タンパク−2(TRP−2)などの酵素が関わっている。これらの酵素の生成には色素細胞特異的転写因子である小眼球症関連転写因子(MITF)が関わっている。
皮膚における色素沈着の原因となるメラニンは、メラニン細胞(melanocyte、メラノサイト)内の小器官であるメラノソームで生成される。メラニン細胞は、メラニン形成細胞や色素細胞とも呼ばれる。
図1にメラニン生成のプロセスを示すように、メラニンはアミノ酸であるチロシンから作られる。このプロセスでは、チロシナーゼ、チロシナーゼ関連タンパク−1(TRP−1)、チロシナーゼ関連タンパク−2(TRP−2)などの酵素が関わっている。これらの酵素の生成には色素細胞特異的転写因子である小眼球症関連転写因子(MITF)が関わっている。
小眼球症関連転写因子(以下、MITFという。Microphthalmia associated transcription factor)は、メラノサイトの分化・増殖を制御するマスター転写因子であり、メラニン合成酵素であるチロシナーゼ、チロシナーゼのアミノ酸配列と40%の類似性を持つTRP−1やTRP−2/ドーパクロムトートメラーゼ(DCT)に対して特異的に発現を促進する。
紫外線やα−メラノサイト刺激ホルモン(以下、α−MSHという。α−melanocyte stimulating hormone)によって刺激を受けると、メラニン合成酵素であるチロシナーゼが活性化されて、メラノサイト中のチロシンを基質として酵素反応によってドーパに変換する。チロシナーゼは、更にドーパにも作用し、ドーパクロム、インドールキノン(インドール−5,6−キノン)に変換し、酸化重合反応で次第に黒くなり、メラニン色素が生成する。
<メラニンの過剰産生に起因する色素斑>
メラニンの過剰産生に起因する皮膚の色素斑(いわゆるシミ)は、皮膚の色素異常を伴う疾患に起因して生じる。
ここで、皮膚の色素異常を伴う疾患とは、例えば、老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑、色素性母斑、青色母斑、太田母斑、後天性真皮メラノサイトーシス、色素沈着型接触皮膚炎、アジソン病、その他色素沈着等を含むが、これらに限定されない。
メラニンの過剰産生に起因する皮膚の色素斑(いわゆるシミ)は、皮膚の色素異常を伴う疾患に起因して生じる。
ここで、皮膚の色素異常を伴う疾患とは、例えば、老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑、色素性母斑、青色母斑、太田母斑、後天性真皮メラノサイトーシス、色素沈着型接触皮膚炎、アジソン病、その他色素沈着等を含むが、これらに限定されない。
老人性色素斑は、日光性黒子、日光黒子、日光性色素斑などとも呼ばれる。紫外線が表皮細胞に作用することで、メラノサイト増殖及び分化促進因子の分泌が促される。また、紫外線はメラノサイトに直接作用することで、メラノサイト活性化因子に対する受容体の発現を向上させる。老人性色素斑は、紫外線によるメラノサイトの増加及びメラニン合成の促進が長年繰り返されることで生じる色素斑である。日本人では、年齢の進行(加齢)とともに老人性色素斑が認められる頻度が増え、60歳代になると、ほぼ全ての人に老人性色素斑が認められる。
雀卵斑、いわゆるソバカスは、両頬から鼻にかけての部位に出現する点状色素斑であり、遺伝性が強いことが知られている。雀卵斑は3歳頃から出現し始め、思春期頃に最も顕著なものとなる。雀卵斑では、メラニン産生が促進されている。
肝斑は、30歳代の女性に多く発生する色素斑であり、左右対称性の扁平な褐色斑が頬や口周囲及び前額部に生じる。肝斑では、表皮基底層のメラノサイトのメラニン産生が促進されている。肝斑の原因としては、紫外線が挙げられるが、妊娠時、閉経時、月経不順などにより発症が増えるため、女性ホルモンが関与しているとされている。
両側性遅発性太田母斑様色素斑は、顔面に青みがかった茶褐色の色素斑がいくつかまとまって出現する後天性の皮膚疾患であり、後天性真皮メラノサイトーシス(Acquired Dermal Melanocytosis、ADM)とも呼ばれる。両側性遅発性太田母斑様色素斑では、メラニン色素を生成するメラノサイトが、表皮よりも深い真皮層にあることを特徴とし、20〜30歳代から中年の女性に多く見られ、特に日本人や中国人に多い疾患である。
<miRNA−141、miRNA−200a>
本発明の実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有する。
本発明の実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有する。
本明細書では、miRNA、pri−miRNA、pre−miRNAにおいて、最終的に標的となる遺伝子のmRNAと対合するmRNAに対するアンチセンス鎖(又は当該アンチセンスセンス鎖を含むRNA領域)をガイド鎖と表現し、前記アンチセンス鎖に対するセンス鎖(又は当該センス鎖を含むRNA領域)をパッセンジャー鎖というものとする。
(miRNA)
MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAとは、当該非翻訳領域に結合してMITF遺伝子の翻訳を抑制する作用を有する1本鎖RNA(二本鎖miRNAのガイド鎖に相当する。)を意味している。そのようなRNAは、miRNA−141およびmiRNA−200aであり、その成熟配列はそれぞれ以下に示すとおりであり(配列番号1〜4)、マウス、ヒト等で保存されている。
MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAとは、当該非翻訳領域に結合してMITF遺伝子の翻訳を抑制する作用を有する1本鎖RNA(二本鎖miRNAのガイド鎖に相当する。)を意味している。そのようなRNAは、miRNA−141およびmiRNA−200aであり、その成熟配列はそれぞれ以下に示すとおりであり(配列番号1〜4)、マウス、ヒト等で保存されている。
(ヒト)
miRNA−141:5’−UAACACUGUCUGGUAAAGAUGG−3’(配列番号1)
miRNA−200a:5’−UAACACUGUCUGGUAACGAUGU−3’(配列番号2)
(マウス)
miRNA−141:5’−UAACACUGUCUGGUAAAGAUGG−3’(配列番号3)
miRNA−200a:5’−UAACACUGUCUGGUAACGAUGU−3’(配列番号4)
miRNA−141:5’−UAACACUGUCUGGUAAAGAUGG−3’(配列番号1)
miRNA−200a:5’−UAACACUGUCUGGUAACGAUGU−3’(配列番号2)
(マウス)
miRNA−141:5’−UAACACUGUCUGGUAAAGAUGG−3’(配列番号3)
miRNA−200a:5’−UAACACUGUCUGGUAACGAUGU−3’(配列番号4)
これらのmiRNAは、その塩基配列に基づき、従来公知の手法を用いて、天然物から単離することにより、化学的に合成することにより、あるいはin vivoまたはin vitroで遺伝子工学的に生産させることができる。また、これらのmiRNAは、内在性の成熟型miRNAを模倣するように合成された類縁体であってもよい。そのような類縁体は、例えば、Ambion社などから入手可能であり、一本鎖であってもよいし、相補鎖を備える二本鎖であってもよい。
ここで、表1に示すように、miRNA−141及びmiRNA−200a(配列番号1〜4)は、標的遺伝子であるMITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合することによってMIFTの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害することが予想される。
(miRNA前駆体)
miRNA前駆体(miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体)としては、例えば、pri−miRNA、pre−miRNAなどが挙げられる。その具体例としては、例えば、マウス及びヒトに関し、以下の表1に示すpri−miRNA及びpre−miRNAがそれぞれ挙げられる。これらのmiRNA前駆体も、従来公知の手法を用いて、天然物から単離することにより、化学的に合成することにより、あるいはin vivo又はin vitroで遺伝子工学的に生産させることができる。さらに、miRNA前駆体は、内在性のmiRNA前駆体を模倣するように合成された、miRNA前駆体の類縁体であってもよい。miRNA前駆体は、一本鎖であってもよいし、相補鎖を備える二本鎖であってもよい。
miRNA前駆体(miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体)としては、例えば、pri−miRNA、pre−miRNAなどが挙げられる。その具体例としては、例えば、マウス及びヒトに関し、以下の表1に示すpri−miRNA及びpre−miRNAがそれぞれ挙げられる。これらのmiRNA前駆体も、従来公知の手法を用いて、天然物から単離することにより、化学的に合成することにより、あるいはin vivo又はin vitroで遺伝子工学的に生産させることができる。さらに、miRNA前駆体は、内在性のmiRNA前駆体を模倣するように合成された、miRNA前駆体の類縁体であってもよい。miRNA前駆体は、一本鎖であってもよいし、相補鎖を備える二本鎖であってもよい。
(miRNA等のDNA構築物)
miRNA(miRNA−141、miRNA−200a)及びmiRNA前駆体(miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体)をコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物は、in vivo又はin vitroでこれらのRNA鎖を転写可能にコードしたDNAコンストラクトである。たとえば、in vitroでmiRNA等を転写可能なコンストラクトは、ウイルスプロモーターの制御下にmiRNA等をコードするDNAを連結したベクターが挙げられる。また、in vivoでmiRNA等を転写可能なコンストラクトは、哺乳類細胞で有効なプロモーターの制御下にmiRNA等をコードするDNAを連結したベクターが挙げられる。このようなin vivo又はin vitro転写用のベクターは商業的に入手が可能であり、そのプロトコルに従い、miRNA等の塩基配列に基づけば、容易にかかるベクターを構築できる。
miRNA(miRNA−141、miRNA−200a)及びmiRNA前駆体(miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体)をコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物は、in vivo又はin vitroでこれらのRNA鎖を転写可能にコードしたDNAコンストラクトである。たとえば、in vitroでmiRNA等を転写可能なコンストラクトは、ウイルスプロモーターの制御下にmiRNA等をコードするDNAを連結したベクターが挙げられる。また、in vivoでmiRNA等を転写可能なコンストラクトは、哺乳類細胞で有効なプロモーターの制御下にmiRNA等をコードするDNAを連結したベクターが挙げられる。このようなin vivo又はin vitro転写用のベクターは商業的に入手が可能であり、そのプロトコルに従い、miRNA等の塩基配列に基づけば、容易にかかるベクターを構築できる。
<メラニン産生抑制剤>
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤(メラニン生成抑制剤、メラニン産出抑制剤)は、MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分とするメラニン産生抑制剤である。
ここで、「メラニン産生抑制剤」とは、メラノサイトにおけるメラニンの産生を抑制する剤のことをいう。
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤(メラニン生成抑制剤、メラニン産出抑制剤)は、MITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分とするメラニン産生抑制剤である。
ここで、「メラニン産生抑制剤」とは、メラノサイトにおけるメラニンの産生を抑制する剤のことをいう。
<美白剤>
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤は、メラニン産生を抑制する作用を有しているため、美白剤として用いることもできる。
ここで、「美白」とは、皮膚の黒化やシミやソバカスなどの色素斑、具体的にはメラニンの過剰産生による皮膚の色調・色素変化などの色素異常を消失、軽減(治療)及び/又は予防し、皮膚本来の色調を維持又は回復(復活)する作用、例えば肌を白くする作用である。
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤は、メラニン産生を抑制する作用を有しているため、美白剤として用いることもできる。
ここで、「美白」とは、皮膚の黒化やシミやソバカスなどの色素斑、具体的にはメラニンの過剰産生による皮膚の色調・色素変化などの色素異常を消失、軽減(治療)及び/又は予防し、皮膚本来の色調を維持又は回復(復活)する作用、例えば肌を白くする作用である。
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤又は美白剤を皮膚に用いることにより、美白効果を得ることができ、メラニンの過剰産生に起因する色素斑(例えば老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等)の治療を行うこともできる。
「色素斑を治療する」とは、例えば、本実施形態のメラニン産生抑制剤又は美白剤の有効成分であるmiRNAを投与する前の状態と比べて、色素斑(老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等)の症状が軽減することをいう。
<遺伝子発現抑制剤>
本実施形態に係るMITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物は、MITF遺伝子の発現を翻訳レベルで阻害するため、MITFの遺伝子発現抑制剤としても用いることができる。
本実施形態に係るMITF遺伝子の3’非翻訳領域に結合するmiRNAであるmiRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNAを転写可能に保持するDNA構築物は、MITF遺伝子の発現を翻訳レベルで阻害するため、MITFの遺伝子発現抑制剤としても用いることができる。
<用途>
本実施形態に係るmiRNA−141及び/又はmiRNA−200aを有効成分として含有するメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、メラノサイトにおいてメラニンの産生が促進されて色素斑が生じた患者や、皮膚の色素異常を伴う疾患(老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等)の確定診断を受けた患者に投与される。
また、本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、化粧料組成物、医薬組成物等の組成物として構成され、色素斑が生じたことを自覚した者や、色素斑が生じる可能性の高い者等に、予防的に投与される。
本実施形態に係るmiRNA−141及び/又はmiRNA−200aを有効成分として含有するメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、メラノサイトにおいてメラニンの産生が促進されて色素斑が生じた患者や、皮膚の色素異常を伴う疾患(老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等)の確定診断を受けた患者に投与される。
また、本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、化粧料組成物、医薬組成物等の組成物として構成され、色素斑が生じたことを自覚した者や、色素斑が生じる可能性の高い者等に、予防的に投与される。
一般的に、メラノサイトにおけるメラニンの産生は、紫外線への暴露、加齢、遺伝的要因など、様々な要因によって引き起こされることが知られている。
よって、本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を、紫外線への暴露、加齢、遺伝的要因により、皮膚の色素異常を伴う疾患(老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等)に罹患する可能性の高い人(罹患する可能性の高い環境にある人)、例えば、屋外に滞在する時間が長く紫外線への暴露が多い人、加齢が進んだ人、家族が皮膚の色素異常を伴う疾患を罹患している家庭の人に対して投与できる。
よって、本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を、紫外線への暴露、加齢、遺伝的要因により、皮膚の色素異常を伴う疾患(老人性色素斑、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等)に罹患する可能性の高い人(罹患する可能性の高い環境にある人)、例えば、屋外に滞在する時間が長く紫外線への暴露が多い人、加齢が進んだ人、家族が皮膚の色素異常を伴う疾患を罹患している家庭の人に対して投与できる。
また、40歳以降の年齢のヒトに、特に60歳または65歳以上の高齢者にmiRNA−141及び/又はmiRNA−200aを有効成分として含有するメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を投与することができる。
30歳以上のヒト、特に60歳または65歳以上の高齢者は、加齢によって老人性色素斑が生じる傾向があるが、miRNA−141及び/又はmiRNA−200aが備える、メラニン産生の抑制作用により、加齢に伴って生じる色素斑を抑制することができる。
30歳以上のヒト、特に60歳または65歳以上の高齢者は、加齢によって老人性色素斑が生じる傾向があるが、miRNA−141及び/又はmiRNA−200aが備える、メラニン産生の抑制作用により、加齢に伴って生じる色素斑を抑制することができる。
さらに、遺伝的要因により発症する可能性が指摘されている皮膚の色素異常を伴う疾患、例えば、雀卵斑、肝斑、両側性遅発性太田母斑様色素斑等に罹患する可能がある人に対して、本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を投与することができる。
具体的には、雀卵斑が発症し始める3歳よりも前の年齢の人、肝斑が発症し始める30歳よりも前の人(特に、男性よりも肝斑を発症する頻度が高いことが知られている女性)、両側性遅発性太田母斑様色素斑が発症し始める20歳よりも前の人に対して、本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を投与することができる。
具体的には、雀卵斑が発症し始める3歳よりも前の年齢の人、肝斑が発症し始める30歳よりも前の人(特に、男性よりも肝斑を発症する頻度が高いことが知られている女性)、両側性遅発性太田母斑様色素斑が発症し始める20歳よりも前の人に対して、本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を投与することができる。
本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤によれば、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害することができるため、メラニンの過剰産生が関連する疾病の予防・治療への応用が期待される。
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤を投与する対象は、上記症状又は状態の者や、ヒト以外の動物に限定されるものではない。
また、本実施形態に係るmiRNA−141及び/又はmiRNA−200aを有効成分として含有するメラニン産生抑制剤、美白剤は、薬理学的に許容され得る添加剤を加え、化粧料組成物、医薬組成物等の組成物等として用いることができる。
(化粧料組成物)
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、化粧料組成物として利用することができる。
該化粧料組成物は、あらゆる形態の化粧料に適用することができる。例えば、ローション、乳液、クリーム、美容液などのスキンケア化粧料、ファンデーション、コンシーラー、化粧下地、口紅、頬紅、アイシャドウ、アイライナーなどのメイクアップ化粧料、日焼け止め化粧料などに適用することができる。
本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、化粧料組成物として利用することができる。
該化粧料組成物は、あらゆる形態の化粧料に適用することができる。例えば、ローション、乳液、クリーム、美容液などのスキンケア化粧料、ファンデーション、コンシーラー、化粧下地、口紅、頬紅、アイシャドウ、アイライナーなどのメイクアップ化粧料、日焼け止め化粧料などに適用することができる。
本実施形態に係る化粧料組成物には、本実施形態に係るメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤に加え、通常化粧料組成物に用いることができる成分を、1種または2種以上自由に選択して配合することが可能である。
例えば、基材、保存剤、乳化剤、着色剤、防腐剤、界面活性剤、紫外線吸収剤、酸化防止剤、保湿剤、紫外線吸収剤、香料、防腐防黴剤、体質顔料、着色顔料、アルコール、水などの、化粧品分野で通常使用し得る全ての添加剤を含有させることができる。
例えば、基材、保存剤、乳化剤、着色剤、防腐剤、界面活性剤、紫外線吸収剤、酸化防止剤、保湿剤、紫外線吸収剤、香料、防腐防黴剤、体質顔料、着色顔料、アルコール、水などの、化粧品分野で通常使用し得る全ての添加剤を含有させることができる。
本実施形態に係る化粧料組成物において、メラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤の含有量は特に限定されず、目的に応じて自由に設定することが可能である。
また、本実施形態に係る化粧料組成物には、miRNA−141やmiRNA−200aなどのmiRNA以外に、メラニン産生抑制作用、美白があることが知られている他の物質を1種以上添加することも可能である。
また、本実施形態に係る化粧料組成物には、miRNA−141やmiRNA−200aなどのmiRNA以外に、メラニン産生抑制作用、美白があることが知られている他の物質を1種以上添加することも可能である。
(医薬組成物)
本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、医薬組成物として利用することができる。
本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、医薬の分野では、当該作用を有効に発揮できる量のmiRNAと共に、薬学的に許容される担体や添加剤を配合することにより、当該作用を有する医薬組成物が提供される。当該医薬組成物は、医薬品であっても医薬部外品であってもよい。
当該医薬組成物は、外用的に適用されても、また内用的に適用されても良い。従って、当該医薬組成物は、経皮適用剤、経粘膜適用剤、静脈注射、皮下注射、皮内注射、筋肉注射及び/又は腹腔内注射等の注射剤、内服剤等の製剤形態で使用することができる。
当該医薬組成物の剤型としては、適用の形態により、適当に設定できるが、例えば、液剤、懸濁剤などの液状製剤、軟膏剤、またはゲル剤等の半固形剤、錠剤、顆粒剤、カプセル剤、粉末剤、散剤などの固形製剤が挙げられる。
本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、医薬組成物として利用することができる。
本実施形態のメラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤は、医薬の分野では、当該作用を有効に発揮できる量のmiRNAと共に、薬学的に許容される担体や添加剤を配合することにより、当該作用を有する医薬組成物が提供される。当該医薬組成物は、医薬品であっても医薬部外品であってもよい。
当該医薬組成物は、外用的に適用されても、また内用的に適用されても良い。従って、当該医薬組成物は、経皮適用剤、経粘膜適用剤、静脈注射、皮下注射、皮内注射、筋肉注射及び/又は腹腔内注射等の注射剤、内服剤等の製剤形態で使用することができる。
当該医薬組成物の剤型としては、適用の形態により、適当に設定できるが、例えば、液剤、懸濁剤などの液状製剤、軟膏剤、またはゲル剤等の半固形剤、錠剤、顆粒剤、カプセル剤、粉末剤、散剤などの固形製剤が挙げられる。
本実施形態に係る医薬組成物には、薬学的に許容される添加剤を1種または2種以上自由に選択して含有させることができる。
例えば、本実施形態に係る医薬組成物を経皮的に適用させる場合、例えば、基材、賦形剤、増粘剤、吸収促進剤、界面活性剤、保存剤、安定化剤、防腐剤、酸化防止剤等の、医薬製剤の分野で通常使用し得る全ての添加剤を含有させることができる。また、ドラックデリバリーシステム(DDS)を利用した製剤等にすることもできる。
例えば、本実施形態に係る医薬組成物を経皮的に適用させる場合、例えば、基材、賦形剤、増粘剤、吸収促進剤、界面活性剤、保存剤、安定化剤、防腐剤、酸化防止剤等の、医薬製剤の分野で通常使用し得る全ての添加剤を含有させることができる。また、ドラックデリバリーシステム(DDS)を利用した製剤等にすることもできる。
本実施形態に係る医薬組成物において、メラニン産生抑制剤、美白剤、遺伝子発現抑制剤の含有量は特に限定されず、目的に応じて自由に設定することが可能である。
本実施形態に係る医薬組成物には、miRNA−141やmiRNA−200aなどのmiRNA以外に、メラニン産生抑制作用、美白があることが知られている他の物質を1種以上添加することも可能である。
本実施形態に係る医薬組成物には、miRNA−141やmiRNA−200aなどのmiRNA以外に、メラニン産生抑制作用、美白があることが知られている他の物質を1種以上添加することも可能である。
以下、具体的実施例に基づいて本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
以下の実施例では、miRNA−141およびmiRNA−200aを用い、メラニンの生成に与える影響の検討を行った。
以下の実施例では、miRNA−141およびmiRNA−200aを用い、メラニンの生成に与える影響の検討を行った。
<試験1 細胞へのmiRNAの導入>
miRNA−141およびmiRNA−200aによるα−メラノサイト刺激ホルモン(α−MSH)誘導によるメラニン生成の効果を検討するために、マウスメラノーマB16−4A5細胞(理化学研究所)に模擬人工miRNA−141及びmiRNA−200a(ともにAmbion社製)、標的を有さないmiRNAであるmiRNA−Negative Control(miRNA−NC)を以下の方法により導入した。
miRNA−141およびmiRNA−200aによるα−メラノサイト刺激ホルモン(α−MSH)誘導によるメラニン生成の効果を検討するために、マウスメラノーマB16−4A5細胞(理化学研究所)に模擬人工miRNA−141及びmiRNA−200a(ともにAmbion社製)、標的を有さないmiRNAであるmiRNA−Negative Control(miRNA−NC)を以下の方法により導入した。
マウスメラノーマB16−4A5細胞を5×104 cells/mLとなるように10%牛胎児血清(以下FBS、fetal bovine serum)含有ダルベッコ改変イーグル(以下DMEM、Dulbecco’s Modified Eagle Medium、Hyclone)低グルコース培地にて調整後、12穴マルチウェルプレート(Nunc)播種し、一晩95%空気−5%二酸化炭素環境下にて接着させた。その後、培地を吸引除去し,リン酸緩衝液(PBS(−)、phosphate−buffered saline)にて洗浄後、Opti−MEM(登録商標)培地を900μL加えた。
細胞へ導入する模擬人工miRNA−141、miRNA−200a、miRNA−NCは、RNase−DNaseフリーの1.5mLエッペンチューブにLipofectamine(登録商標)RNAiMAX transfection reagent 3μL、模擬人工miRNA 2μL(終濃度:20nM),およびOpti−MEM培地を95μLそれぞれ加え、混液とした。攪拌後、クリーンベンチ内にて30分間静置した(30分静置の間、10分ごとに攪拌)。
導入模擬人工miRNA−溶液の準備が整った後、1.5mLエッペンチューブ内の模擬人工miRNA−溶液全量を細胞に添加し、95%空気−5%二酸化炭素環境下にて調製したインキュベーター内にて12時間細胞へ導入させた。12時間後、新鮮な10% FBS含有DMEM培地を交換した。
<試験2 メラニン生成試験>
模擬人工miRNA−を細胞に導入させた細胞または未処理の細胞を培養したウェルに終濃度が2μMとなるようにα−MSH(Sigma)を加え、メラニン生成を惹起させた。その後、95%空気−5%二酸化炭素環境に調整したインキュベーターにて72時間培養した。
72時間後、細胞培養をセルスクレーパーにて各ウェルからそれぞれ剥離し、1.5mLエッペンチューブに回収した。細胞懸濁液は、ただちに遠心分離に供し(560×g、4℃、10分)、細胞を沈澱させた。沈澱した細胞にPBS(−)を用いて2度洗浄した。洗浄後、細胞ペレットに1N NaOHを200μL加え50℃にて1時間細胞を溶解させた。
細胞溶解液を50μLずつ96穴マルチウェルプレートに分注し(一サンプル3ウェル)、475nmにおける吸光度をマイクロプレートリーダーにて測定する。メラニン量は、予め人工メラニンにて作成した標準曲線にて算出し、各サンプルのタンパク質濃度(Biorad DCTMプロテインアッセイキット)にて補正した。
模擬人工miRNA−を細胞に導入させた細胞または未処理の細胞を培養したウェルに終濃度が2μMとなるようにα−MSH(Sigma)を加え、メラニン生成を惹起させた。その後、95%空気−5%二酸化炭素環境に調整したインキュベーターにて72時間培養した。
72時間後、細胞培養をセルスクレーパーにて各ウェルからそれぞれ剥離し、1.5mLエッペンチューブに回収した。細胞懸濁液は、ただちに遠心分離に供し(560×g、4℃、10分)、細胞を沈澱させた。沈澱した細胞にPBS(−)を用いて2度洗浄した。洗浄後、細胞ペレットに1N NaOHを200μL加え50℃にて1時間細胞を溶解させた。
細胞溶解液を50μLずつ96穴マルチウェルプレートに分注し(一サンプル3ウェル)、475nmにおける吸光度をマイクロプレートリーダーにて測定する。メラニン量は、予め人工メラニンにて作成した標準曲線にて算出し、各サンプルのタンパク質濃度(Biorad DCTMプロテインアッセイキット)にて補正した。
(試験2の結果)
結果を図2に示す。図2は、左から順番に、(1)α−MSH処理なし、(2)α−MSH処理あり、(3)α−MSH処理+miRNA−NC処理、(4)α−MSH処理+miRNA−141、(5)α−MSH処理+miRNA−200a、(6)α−MSH処理+200μM アルブチンの結果である。
結果を図2に示す。図2は、左から順番に、(1)α−MSH処理なし、(2)α−MSH処理あり、(3)α−MSH処理+miRNA−NC処理、(4)α−MSH処理+miRNA−141、(5)α−MSH処理+miRNA−200a、(6)α−MSH処理+200μM アルブチンの結果である。
図2に示すように、α−MSHを添加するとマウスメラノーマB16−4A5細胞のメラニン生成が惹起された(図2の(1)及び(2))。
miRNA−141またはmiRNA−200aを導入すると、α−MSHにより惹起されるマウスメラノーマB16−4A5細胞におけるメラニン生成が抑制されることが確認された(図2の(4)及び(5))。
miRNA−141またはmiRNA−200aを導入すると、α−MSHにより惹起されるマウスメラノーマB16−4A5細胞におけるメラニン生成が抑制されることが確認された(図2の(4)及び(5))。
miRNA−141またはmiRNA−200aによるメラニン生成の抑制作用は、美白剤であるアルブチンと同程度であることが確認された(図2の(6))。
なお、標的を有さないmiRNA−NCを導入した場合、α−MSHにより惹起されるマウスメラノーマB16−4A5細胞におけるメラニン生成は抑制されることなく、促進された(図2の(3))。
なお、標的を有さないmiRNA−NCを導入した場合、α−MSHにより惹起されるマウスメラノーマB16−4A5細胞におけるメラニン生成は抑制されることなく、促進された(図2の(3))。
以上の結果は、図3に示す細胞の沈殿物を撮影した写真からも確認された。具体的には、miRNA−141またはmiRNA−200aを導入した場合(図3の(4)及び(5))、メラニン生成を惹起していないとき(図3の(1))や、アルブチンを添加したとき(図3の(6))と同様に白色を呈していた。一方、α−MSH処理のみを行った場合(図3の(2))や、標的を有さないmiRNA−NCを導入した場合(図3の(3))は、メラニン生成により黒色を呈していた。
以上のことから、miRNA−141、miRNA−200aはメラニンの生成を抑制する作用を有することがわかった。
<試験3 標的タンパク質発現解析>
(3.1.細胞の調整およびメラニン生成刺激後の細胞回収)
試験1にしたがい細胞を調整し培養後、各ウェルに終濃度が2μMとなるようにα−MSHを加えた(未処理のウェルには同量のジメチルスルホキシドを加えた)。培養72時間後にPBS(−)を用いて細胞を2回洗浄し、2% Protease inhibitor、2%Phosphatase inhibitor含有RIPA buffer(25mM Tris−HCl pH7.6、150mM NaCl、1%NP−40、1%sodium deoxycholate、0.1%sodium dodecyl sulfate(SDS))100μLを加えて細胞を溶解した。その後、セルスクレーパーにて剥離し、1.5mLエッペンチューブに回収した。回収した細胞溶解液は、30分間氷上で保管後、超音波破砕機を用いて細胞を破砕し(10秒×3回)、16,200×g、20分間、4℃で遠心分離後、上清をサンプル溶液として回収した。サンプル溶液中のタンパク質濃度は、Bio Rad DCプロテインアッセイキット(Bio Rad、Hercules、CA、USA)により測定した。タンパク濃度を調整したサンプル溶液に10%メルカプトエタノール含有サンプルバッファー(0.125M Tris−HCl(pH6.8)、10% Glycerol、4% SDS、0.004% bromophenol blue)を加えて98℃で5分間加熱し、SDS電気泳動供試サンプルとした。
(3.1.細胞の調整およびメラニン生成刺激後の細胞回収)
試験1にしたがい細胞を調整し培養後、各ウェルに終濃度が2μMとなるようにα−MSHを加えた(未処理のウェルには同量のジメチルスルホキシドを加えた)。培養72時間後にPBS(−)を用いて細胞を2回洗浄し、2% Protease inhibitor、2%Phosphatase inhibitor含有RIPA buffer(25mM Tris−HCl pH7.6、150mM NaCl、1%NP−40、1%sodium deoxycholate、0.1%sodium dodecyl sulfate(SDS))100μLを加えて細胞を溶解した。その後、セルスクレーパーにて剥離し、1.5mLエッペンチューブに回収した。回収した細胞溶解液は、30分間氷上で保管後、超音波破砕機を用いて細胞を破砕し(10秒×3回)、16,200×g、20分間、4℃で遠心分離後、上清をサンプル溶液として回収した。サンプル溶液中のタンパク質濃度は、Bio Rad DCプロテインアッセイキット(Bio Rad、Hercules、CA、USA)により測定した。タンパク濃度を調整したサンプル溶液に10%メルカプトエタノール含有サンプルバッファー(0.125M Tris−HCl(pH6.8)、10% Glycerol、4% SDS、0.004% bromophenol blue)を加えて98℃で5分間加熱し、SDS電気泳動供試サンプルとした。
(3.2.SDS−PAGE)
泳動槽に目的とした検出タンパク質に適宜対応した10−15%ポリアクリルアミドゲルをそれぞれセットし、泳動バッファー(Bio Rad Tris/Glycine buffer)を泳動槽の約1/3まで入れた。ゲルの各レーンに10μL(サンプル濃度5−20μg/Lane)ずつサンプルを、先頭レーンには等量のタンパク質分子量マーカーを、使用しないレーンには等量のLaemmli sample bufferをアプライした。そして120 Vで90分泳動してサンプルのタンパク質を分離した。泳動後、ガラスプレートからゲルを外し、不要なゲルを切り取り、ブロッティングバッファー(Bio Rad Tris/Glycine buffer 10%、メタノール20%、超純水70%)に浸したろ紙の上に移した。
泳動槽に目的とした検出タンパク質に適宜対応した10−15%ポリアクリルアミドゲルをそれぞれセットし、泳動バッファー(Bio Rad Tris/Glycine buffer)を泳動槽の約1/3まで入れた。ゲルの各レーンに10μL(サンプル濃度5−20μg/Lane)ずつサンプルを、先頭レーンには等量のタンパク質分子量マーカーを、使用しないレーンには等量のLaemmli sample bufferをアプライした。そして120 Vで90分泳動してサンプルのタンパク質を分離した。泳動後、ガラスプレートからゲルを外し、不要なゲルを切り取り、ブロッティングバッファー(Bio Rad Tris/Glycine buffer 10%、メタノール20%、超純水70%)に浸したろ紙の上に移した。
(3.3.ウエスタンブロッティング)
Polyvinlidene difluoride膜(以下PVDF膜,GE Healthcare UK Ltd、Amersham Place、England)はメタノールに3分間浸し、親水化処理後、ブロッティングバッファーに浸して平衡化した。ブロッティングバッファーをよく染み込ませたスポンジとろ紙のそれぞれ2枚を一組とし、前述3.2.項のSDS−PAGEで得たゲルとPVDF膜を挟んだ。泳動槽にセット後、氷水で冷やしながら、60Vで90分間泳動し、SDS−PAGEによって分離したタンパク質をPVDF膜に転写した。PVDF膜をケース中で5% Skim milk (Becton、Dickinson and Company)を含んだ0.05% Tween 20含有トリス緩衝化生理食塩水(T−TBS)溶液に浸して60分間振盪した。T−TBSで洗浄後(10分×3回)、その後、各種一次抗体(MITF (Millipore社製)、、チロシナーゼ(Tyr、abcam社製)、β−actin(Sigma社製))溶液に浸して、4℃で一晩振盪した。翌日、T−TBSで洗浄後(10分×3回)、5%脱脂粉乳含有T−TBS溶液により希釈した二次抗体(ECL Anti−Rabbit IgG、Horseradish peroxidase linked whole antibody又はECL Anti−Mouse IgG、Horseradish peroxidase linked whole antibody、GE Healthcare)に浸して60分間振盪した。その後T−TBSで洗浄し(10分×3回)、ECL select western blotting detection reagent(GE Healthcare)を用い、化学発光検出装置(Davinch−Chemi CAS−400SM 和光純薬工業株式会社、大阪)により観察した。
Polyvinlidene difluoride膜(以下PVDF膜,GE Healthcare UK Ltd、Amersham Place、England)はメタノールに3分間浸し、親水化処理後、ブロッティングバッファーに浸して平衡化した。ブロッティングバッファーをよく染み込ませたスポンジとろ紙のそれぞれ2枚を一組とし、前述3.2.項のSDS−PAGEで得たゲルとPVDF膜を挟んだ。泳動槽にセット後、氷水で冷やしながら、60Vで90分間泳動し、SDS−PAGEによって分離したタンパク質をPVDF膜に転写した。PVDF膜をケース中で5% Skim milk (Becton、Dickinson and Company)を含んだ0.05% Tween 20含有トリス緩衝化生理食塩水(T−TBS)溶液に浸して60分間振盪した。T−TBSで洗浄後(10分×3回)、その後、各種一次抗体(MITF (Millipore社製)、、チロシナーゼ(Tyr、abcam社製)、β−actin(Sigma社製))溶液に浸して、4℃で一晩振盪した。翌日、T−TBSで洗浄後(10分×3回)、5%脱脂粉乳含有T−TBS溶液により希釈した二次抗体(ECL Anti−Rabbit IgG、Horseradish peroxidase linked whole antibody又はECL Anti−Mouse IgG、Horseradish peroxidase linked whole antibody、GE Healthcare)に浸して60分間振盪した。その後T−TBSで洗浄し(10分×3回)、ECL select western blotting detection reagent(GE Healthcare)を用い、化学発光検出装置(Davinch−Chemi CAS−400SM 和光純薬工業株式会社、大阪)により観察した。
(試験3の結果)
図4に示すように、マウスメラノーマB16−4A5細胞にmiRNA−141、miRNA−200a(Ambion社製)を導入し、メラニン生成刺激後の細胞から細胞溶解液を調製し、ウエスタンブロッティングンに供したところ、miRNA−141、miRNA−200aを導入した細胞群では、α−MSH処理、Negative control群に比べて、メラニン生成に関与するチロシナーゼ、TRP−1、TRP−2の発現を調整する転写因子であるMITFのタンパク発現を抑制されていた。miRNA−141、miRNA−200aによるMITFのタンパク発現の抑制作用は、α−MSH処理を行っていないときに匹敵していた。この結果からmicroRNA−141および−200aがMITFを標的遺伝子としていることが確認された。
図4に示すように、マウスメラノーマB16−4A5細胞にmiRNA−141、miRNA−200a(Ambion社製)を導入し、メラニン生成刺激後の細胞から細胞溶解液を調製し、ウエスタンブロッティングンに供したところ、miRNA−141、miRNA−200aを導入した細胞群では、α−MSH処理、Negative control群に比べて、メラニン生成に関与するチロシナーゼ、TRP−1、TRP−2の発現を調整する転写因子であるMITFのタンパク発現を抑制されていた。miRNA−141、miRNA−200aによるMITFのタンパク発現の抑制作用は、α−MSH処理を行っていないときに匹敵していた。この結果からmicroRNA−141および−200aがMITFを標的遺伝子としていることが確認された。
また、miRNA−141、miRNA−200aを導入した細胞群では、α−MSH処理、Negative control群に比べて、チロシナーゼの発現が抑制されていた。
以上の結果から、miRNA−141、miRNA−200aは、メラニン生成に関与するチロシナーゼ、TRP−1、TRP−2の発現を調整する転写因子であるMITFの発現を抑制することで、メラニンの産生が抑制されていることがわかった。
従って、前記課題は、本発明によれば、miRNA−141、miRNA−200a、miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するメラニン産生抑制剤により解決される。
本発明のメラニン産生抑制剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができる。
本発明のメラニン産生抑制剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができる。
また、前記課題は、本発明によれば、miRNA−141、miRNA−200a、miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有する美白剤により解決される。
このとき、前記美白剤がシミの予防用又は治療用であるであるとよい。
このとき、前記シミは、雀卵斑、日光性黒子、肝斑又は両側性遅発性太田母斑様色素斑であるとよい。
本発明の美白剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができ、シミの予防や治療に好適に用いることができる。
このとき、前記美白剤がシミの予防用又は治療用であるであるとよい。
このとき、前記シミは、雀卵斑、日光性黒子、肝斑又は両側性遅発性太田母斑様色素斑であるとよい。
本発明の美白剤は、メラニン生成において重要な役割を果たす転写因子MITFの遺伝子発現を翻訳レベルで阻害するため、メラニンの産生を効果的に抑制することができ、シミの予防や治療に好適に用いることができる。
また、前記課題は、本発明によれば、miRNA−141、miRNA−200a、miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するMITFの遺伝子発現抑制剤、メラニン産生抑制用化粧料組成物、美白用化粧料組成物により解決される。
(miRNA前駆体)
miRNA前駆体(miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体)としては、例えば、pri−miRNA、pre−miRNAなどが挙げられる。その具体例としては、例えば、マウス及びヒトに関し、以下の表2に示すpri−miRNA及びpre−miRNAがそれぞれ挙げられる。これらのmiRNA前駆体も、従来公知の手法を用いて、天然物から単離することにより、化学的に合成することにより、あるいはin vivo又はin vitroで遺伝子工学的に生産させることができる。さらに、miRNA前駆体は、内在性のmiRNA前駆体を模倣するように合成された、miRNA前駆体の類縁体であってもよい。miRNA前駆体は、一本鎖であってもよいし、相補鎖を備える二本鎖であってもよい。
miRNA前駆体(miRNA−141の前駆体、miRNA−200aの前駆体)としては、例えば、pri−miRNA、pre−miRNAなどが挙げられる。その具体例としては、例えば、マウス及びヒトに関し、以下の表2に示すpri−miRNA及びpre−miRNAがそれぞれ挙げられる。これらのmiRNA前駆体も、従来公知の手法を用いて、天然物から単離することにより、化学的に合成することにより、あるいはin vivo又はin vitroで遺伝子工学的に生産させることができる。さらに、miRNA前駆体は、内在性のmiRNA前駆体を模倣するように合成された、miRNA前駆体の類縁体であってもよい。miRNA前駆体は、一本鎖であってもよいし、相補鎖を備える二本鎖であってもよい。
Claims (7)
- miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するメラニン産生抑制剤。
- miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有する美白剤。
- シミの予防用又は治療用であることを特徴とする請求項2記載の美白剤。
- 前記シミは、雀卵斑、日光性黒子、肝斑又は両側性遅発性太田母斑様色素斑であることを特徴とする請求項3記載の美白剤。
- miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するMITFの遺伝子発現抑制剤。
- miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有するメラニン産生抑制用化粧料組成物。
- miRNA−141、miRNA−200a、その前駆体及びこれらをコードするDNA構築物からなる群から選択される1種または2種以上を有効成分として含有する美白用化粧料組成物。
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JP2007209209A (ja) * | 2006-02-07 | 2007-08-23 | Naris Cosmetics Co Ltd | MITFのmRNA量によるメラニン産生抑制剤の評価法 |
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J.THORAC CARDIOVASC SURG.(2012 JUL),VOL.144,NO.1,P.256-262,E1-E2, JPN6018011583, ISSN: 0003768482 * |
MOL CELL ENDOCRINOL.(2015),VOL.410,P.19-26, JPN6018011582, ISSN: 0003768483 * |
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