JP2017538414A - クロストリジウム神経毒融合タンパク質、プロペプチド融合体、それらの発現及び使用方法 - Google Patents

クロストリジウム神経毒融合タンパク質、プロペプチド融合体、それらの発現及び使用方法 Download PDF

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Abstract

本発明は、クロストリジウム神経毒の軽鎖領域及びクロストリジウム神経毒の重鎖領域を含み、この軽鎖及び重鎖領域がジスルフィド結合によって連結している融合タンパク質に関する。当該融合タンパク質は、軽鎖領域の上流に位置する一本鎖抗体もまた有し、この一本鎖抗体は、抗原結合活性を有する。また、治療剤、治療方法、プロペプチド融合体、単離核酸分子、発現系、宿主細胞、及び融合タンパク質の発現方法についても開示する。【選択図】図８

Description

本願は、２０１４年１２月９日に出願された米国仮特許出願第６２／０８９，６４６号及び２０１５年２月２０日に出願された米国仮特許出願第６２／１１８，９７０号の利益を主張する。
本発明は、国立衛生研究所によって付与された助成金番号ＲＯ１ＡＩ０９３５０４のもとで、政府の支援によってなされた。政府は本発明に一定の権利を有する。
発明の分野
本発明は、一本鎖抗体を含むクロストリジウム神経毒融合タンパク質、プロペプチド融合体、及びその方法に関する。
発明の背景
細胞内標的への抗体の送達
標準的な抗体は、大型の多量体タンパク質であり、細胞膜を貫通できず、したがって、細胞の細胞質区画内の標的に直接アクセスできない。多くの薬学的に重要な標的が細胞の細胞質に専ら露出していることから、抗体または抗体由来断片を細胞内標的に送達するための複数の技術的アプローチが検証されている。これらの方法は、核酸及び他のタンパク質分子を細胞内区画に送達するために用いられてきた方法に類似している。そのような方法として、電気穿孔法、超音波処理、及びマイクロインジェクションなどの物理的方法、リポソームまたはポリマーシェル内へのカプセル化、及び細胞質へアクセスするためにエンドサイトーシス及び／または細胞膜への浸透を容易にするポリマー及び脂質との複合体形成が挙げられる（Ｔｏｒｃｈｉｌｉｎ，“Ｍｕｌｔｉｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ａｎｄ Ｓｔｉｍｕｌｉ‐Ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｎａｎｏｃａｒｒｉｅｒｓ，”Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ：Ｏｆｆｉｃｉａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ａｒｂｅｉｔｓｇｅｍｅｉｎｓｃｈａｆｔ ｆｕｒ Ｐｈａｒｍａｚｅｕｔｉｓｃｈｅ Ｖｅｒｆａｈｒｅｎｓｔｅｃｈｎｉｋ ｅ．Ｖ． ７１（３）：４３１‐４４４（２００９）；Ｔｏｒｃｈｉｌｉｎ，“Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎ ａｎｄ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，”Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ Ｔｏｄａｙ：Ｔｅｃｈｎｏｌ．（２００９）；Ｅｌ‐Ｓａｙｅｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｍａｒｔ Ｐｏｌｙｍｅｒｉｃ Ｃａｒｒｉｅｒｓ ｆｏｒ Ｅｎｈａｎｃｅｄ Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，”Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｏｎ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｔｈｅｒａｐｙ ５（１）：２３‐３２（２００５））。
一本鎖抗体またはその断片は、多量体抗体では不可能な方法によって、細胞の細胞質に送達することができる。これらには、以下が含まれる：（１）ウイルスキャリアを用いるか、またはその他の方法で宿主細胞に遺伝子を組み込むことによる、抗体断片をコードする核酸の標的細胞への遺伝子移入；（２）抗体が細胞膜に浸透することを可能にするタンパク質形質導入ドメイン（ＰＴＤ）（例えば、ＴＡＴ融合ドメイン）への抗体の融合；（３）細胞膜を介して自然に移行可能な細胞標的化タンパク質またはドメインに対する抗体の化学的または遺伝学的融合（Ｍａｒｓｃｈａｌｌ ｅｔ ａｌ．，“Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｔｏ ｔｈｅ Ｃｙｔｏｐｌａｓｍ，”ｍＡｂｓ ３（１）：３‐１６（２０１１））。
これらの方法論すべてが有効であることがｉｎ ｖｉｔｒｏにおいて実証されているものの、これらはすべて治療用途には限界がある（Ｍａｒｓｃｈａｌｌ ｅｔ ａｌ．，“Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｔｏ ｔｈｅ Ｃｙｔｏｓｏｌ：Ｄｅｂｕｎｋｉｎｇ ｔｈｅ Ｍｙｔｈｓ，”ｍＡｂｓ ６（４）：９４３‐９５６（２０１４）；Ｙｉｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｏｎ‐Ｖｉｒａｌ Ｖｅｃｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｇｅｎｅ‐Ｂａｓｅｄ Ｔｈｅｒａｐｙ，”Ｎａｔｕｒｅ Ｒｅｖｉｅｗｓ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ １５（８）：５４１‐５５５（２０１４））。特に、遺伝子移入に基づく方法は、主に毒性及び特異性の欠如の点から、治療用製品で使用することに対しては限界があることが周知である。ウイルス媒介性の形質導入は、臨床応用のために検証されてはいるものの、治療介入に重大なリスクを示すと考えられており、規制上の大きな障壁に直面している。神経細胞特異的ウイルスキャリアは、臨床用途には利用できない。タンパク質形質導入ドメインの利用は、神経細胞特異的ではなく、同様に安全面での重大な懸念を有する。細胞膜を介して自然に移行可能なタンパク質への抗体の化学的または遺伝学的融合が広範に研究されている。ＲＮＡｓｅ Ａスーパーファミリーのリボヌクレアーゼを抗体に融合することが行われたが、この融合の目的は、ＲＮＡｓｅ活性を目的の細胞へ標的化するために抗体を使用することであった（Ｓｃｈｉｒｒｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｔａｒｇｅｔｅｄ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ＲＮａｓｅｓ（ＩｍｍｕｎｏＲＮａｓｅｓ），”Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎｉｏｎ ｏｎ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｔｈｅｒａｐｙ ９（１）：７９‐９５（２００９））。同様に、ジフテリア毒素（Ｗｅａｖｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｒａｎｓｆｅｒｒｉｎ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ Ｌｉｇａｎｄ‐Ｔａｒｇｅｔｅｄ Ｔｏｘｉｎ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ （Ｔｆ‐ＣＲＭ１０７） ｆｏｒ Ｔｈｅｒａｐｙ ｏｆ Ｍａｌｉｇｎａｎｔ Ｇｌｉｏｍａｓ，”Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏ‐Ｏｎｃｏｌｏｇｙ ６５（１）：３‐１３（２００３））及びリシン（Ｍｅｓｓｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，“Ａ Ｐｈａｓｅ Ｉ Ｓｔｕｄｙ ｏｆ Ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ Ｔｈｅｒａｐｙ ｗｉｔｈ Ｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎｓ ＩｇＧ‐ＨＤ３７‐Ｄｅｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｅｄ Ｒｉｃｉｎ Ａ Ｃｈａｉｎ （ｄｇＡ） ａｎｄ ＩｇＧ‐ＲＦＢ４‐ｄｇＡ （Ｃｏｍｂｏｔｏｘ） ｉｎ Ｐａｔｉｅｎｔｓ ｗｉｔｈ Ｒｅｆｒａｃｔｏｒｙ ＣＤ１９（＋），ＣＤ２２（＋） Ｂ Ｃｅｌｌ Ｌｙｍｐｈｏｍａ，”Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ：Ａｎ Ｏｆｆｉｃｉａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ ｆｏｒ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ６（４）：１３０２‐１３１３（２０００））を、毒素の標的化送達を可能にする抗体へ融合することが行われており、ここでもまた、特定の細胞の細胞質に毒素を標的化するために用いる抗体に対して融合が行われる。これらの場合のいずれにおいても、抗体を神経細胞へ送達するために毒素を用いている例はなく、実際に毒素は神経細胞に特異的に向けられているわけではない。
抗体のカチオン化を利用して、一本鎖抗体の送達を向上させるなどの、抗体を細胞へ送達しやすくするための工夫も行われている。（Ｌｉ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｅｌｌ‐Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｎｇ Ａｎｔｉ‐ＧＦＡＰ ＶＨＨ ａｎｄ Ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｉｎｇ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｆｕｓｉｏｎ Ｐｒｏｔｅｉｎ ＶＨＨ‐ＧＦＰ Ｓｐｏｎｔａｎｅｏｕｓｌｙ Ｃｒｏｓｓ ｔｈｅ Ｂｌｏｏｄ‐Ｂｒａｉｎ Ｂａｒｒｉｅｒ ａｎｄ Ｓｐｅｃｉｆｉｃａｌｌｙ Ｒｅｃｏｇｎｉｚｅ Ａｓｔｒｏｃｙｔｅｓ：Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｔｏ Ｂｒａｉｎ Ｉｍａｇｉｎｇ，”ＦＡＳＥＢ Ｊｏｕｒｎａｌ：Ｏｆｆｉｃｉａｌ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｆｅｄｅｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏｃｉｅｔｉｅｓ ｆｏｒ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ ２６（１０）：３９６９‐３９７９（２０１２））。そのメカニズムはおそらくは、カチオン性抗体と負に荷電した細胞膜との相互作用が高まることに関係しており、また、細胞結合の特異性は、抗体のみに由来しており、送達媒体に由来するものではないと考えられる。
Ｔｈａｎｏｎｇｓａｋｓｒｉｋｕｌ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｓｍ：Ａ Ｎｏｖｅｌ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｐｐｒｏａｃｈ，”Ｔｏｘｉｎｓ ３（５）：４６９‐４８８（２０１１）は、ボツリヌス神経毒を阻害するＶＨＨ（一本鎖抗体）血清型Ａの酵素活性を細胞透過性ペプチド（「ＣＰＰ」）に遺伝的に融合することができたが、神経細胞に機能的抗体を送達するこの技術の成功を示すデータは、その後提示されていない。この仮定ＶＨＨ‐ＣＰＰ融合タンパク質を神経細胞内部に導入するメカニズムは示唆されていない。
ＢｏＮＴが神経細胞への標的化選択性を有することから、いくつかの研究室は、治療剤を送達するためにＢｏＮＴに基づいた分子媒体を使用することを検討するようになった。初期の研究は、野生型ＢｏＮＴの重鎖（「ＨＣ」）及び軽鎖（「ＬＣ」）が分離可能であり、また、野生型ＬＣを用いて、またはＬＣを無毒化できるＨｉｓ２２７＞Ｔｙｒのような点突然変異を有し得る組換え型ＬＣを用いて、ｉｎ ｖｉｔｒｏで野生型ＨＣを再構成できることを報告した（Ｚｈｏｕ ｅｔ ａｌ．，“Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ：Ａ Ｓｉｎｇｌｅ Ｍｕｔａｔｉｏｎ Ａｂｏｌｉｓｈｅｓ Ｉｔｓ Ｃｌｅａｖａｇｅ ｏｆ ＳＮＡＰ‐２５ ａｎｄ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｃｉｔｙ Ａｆｔｅｒ Ｒｅｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ Ｗｉｔｈ ｔｈｅ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ，”Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ３４（４６）：１５１７５‐１５１８１（１９９５）；Ｍａｉｓｅｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔ Ｃｈａｉｎｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ Ａ ａｎｄ Ｂ Ｉｎ ｔｈｅ Ｂｌｏｃｋａｄｅ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｔｒａｎｓｍｉｔｔｅｒ Ｒｅｌｅａｓｅ，”Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．１７７（３）：６８３‐６９１（１９８８）；Ｓａｔｈｙａｍｏｏｒｔｈｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ， Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ， Ｐａｒｔｉａｌ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｈｅａｖｙ ａｎｄ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅｓ Ａ， Ｂ， ａｎｄ Ｅ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６０（１９）：１０４６１‐１０４６６（１９８５））。再構成したＢｏＮＴホロトキシン誘導体は、ＬＣを神経細胞質ゾルに輸送する能力が著しく低下しており、おそらくは、ＨＣ‐ＬＣ分離に必要な厳しい条件、及びタンパク質を再生して元のジスルフィド結合を再構築することが困難であったことに起因していたと考えられる。
デキストランをＨＣに化学的にカップリングして蛍光マーカーまたは治療剤の付着用部位を提供することによって、単離した野生型ＨＣを標的化送達に用いる試みもなされている（Ｇｏｏｄｎｏｕｇｈ ｅｔ ａｌ．，“Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ａ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｖｅｈｉｃｌｅ ｆｏｒ Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｔｒａｎｓｐｏｒｔ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａｎｔａｇｏｎｉｓｔｓ，”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ． ５１３：１６３‐１６８（２００２））。この「半合成」ＢｏＮＴ誘導体は神経細胞に内部移行したが、デキストランはエンドソーム区画に局在したままであり、取込みの特異性は不確実であった。細胞質ゾルへの移行には、毒素ＬＣに関連する構造的特徴が必要であるため、ＢｏＮＴのＨＣへ積荷分子を直接化学的または生化学的に付着させるだけでは、細胞質ゾルの送達を達成するには不十分である可能性がある（Ｂａｌｄｗｉｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｃ‐Ｔｅｒｍｉｎｕｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ Ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｅｓ ｔｏ Ｓｏｌｕｂｉｌｉｔｙ， Ｃａｔａｌｙｓｉｓ， ａｎｄ Ｓｔａｂｉｌｉｔｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒ．Ｐｕｒｉｆ．３７（１）：１８７‐１９５（２００４）；Ｂｒｕｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ Ｂｅｌｔ ａｓ ａｎ Ｉｎｔｒａｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ，”ＰＬｏＳ Ｐａｔｈｏｇ．３（９）：ｅ１１３（２００７））。さらに、化学的方法を用いてＢｏＮＴトキソイドに積荷を付着させる場合、積荷の付着は十分に選択的ではなく、その結果、異種の誘導体集団を産生する。これらの問題はまた、ＢｏＮＴ輸送経路を確定的に示すためのプローブとしての化学標識ＢｏＮＴの有用性をも制限する。
Ｂａｄｅ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ｄ Ｅｎａｂｌｅｓ Ｃｙｔｏｓｏｌｉｃ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｏｆ Ｅｎｚｙｍａｔｉｃａｌｌｙ Ａｃｔｉｖｅ Ｃａｒｇｏ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｔｏ Ｎｅｕｒｏｎｓ Ｖｉａ Ｕｎｆｏｌｄｅｄ Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ Ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅｓ，”Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．９１（６）：１４６１‐１４７２（２００４）は、ＬＣプロテアーゼに対する不活性化突然変異（Ｅ２３０＞Ａ）の存在下または非存在下において大腸菌（Ｅ．ｃｏｌｉ）で発現する効果的な送達媒体としてのＢｏＮＴ／Ｄの組換え全長誘導体を記載した。神経細胞培養におけるプロトタイプの積荷タンパク質の送達を評価するために、緑色蛍光タンパク質（「ＧＦＰ」）、ジヒドロ葉酸レダクターゼ、ホタルルシフェラーゼ、またはＢｏＮＴ／Ａ ＬＣを、組換えＢｏＮＴ／ＤホロトキシンのＮ末端に融合させた。細胞質ゾルへの送達は、ＢｏＮＴ／Ｄ細胞質基質であるシナプトブレビンの切断を測定することによって評価した。ジヒドロ葉酸レダクターゼ及びＢｏＮＴ／Ａ ＬＣが効果的に送達されることが報告された。ルシフェラーゼまたはＧＦＰが積荷の場合、対応するＢｏＮＴ／Ｄ ＬＣ触媒活性の細胞質ゾルへの送達は有意に減少したが、これはおそらく、積荷のサイズの大きさ（ルシフェラーゼ）またはその剛性（ＧＦＰ）に起因したものである（Ｂｒｅｊｃ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ｂａｓｉｓ ｆｏｒ Ｄｕａｌ Ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｐｈｏｔｏｉｓｏｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ａｅｑｕｏｒｅａ ｖｉｃｔｏｒｉａ Ｇｒｅｅｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐｒｏｔｅｉｎ，”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ） ９４（６）：２３０６‐１２３１（１９９７）；Ｐａｌｍ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ｂａｓｉｓ ｆｏｒ Ｓｐｅｃｔｒａｌ Ｖａｒｉａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ｇｒｅｅｎ Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ Ｐｒｏｔｅｉｎ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．４（５）：３６１‐３６５（１９９７））。送達した活性型軽鎖は、神経細胞の細胞質内において非常に低い濃度でも有効であるため、大腸菌で発現した組換えＢｏＮＴ／Ｄを用いた軽鎖送達の効率は、示されたデータからは明らかではない。
エンドソーム区画から細胞質ゾルへの組換え毒素ＬＣの移行をうまく設計することは、特に困難であることが判明した。この移行は、内腔環境を酸性化することによって、ＢｏＮＴヘテロ二量体の立体構造変化を誘発するか、またはトランスロケーションメディエーターとの相互作用ができるようにする必要がある（Ｂｒｕｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ Ｂｅｌｔ ａｓ ａｎ Ｉｎｔｒａｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ，”ＰＬｏＳ Ｐａｔｈｏｇ．３（９）：ｅ１１３ （２００７）；Ｋａｍａｔａ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｎｖｏｌｖｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｐｈｏｓｐｈｏｌｉｐｉｄｓ Ｉｎ ｔｈｅ Ｉｎｔｏｘｉｃａｔｉｏｎ Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ，”Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．１１９９（１）：６５‐６８（１９９４）；Ｔｏｒｔｏｒｅｌｌａ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ Ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａ Ｔｏｘｉｎ Ｓｈｏｗｓ ａｌｌ Ｔｈｒｅｅ Ｄｏｍａｉｎｓ Ｕｎｄｅｒｇｏ Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ｃｈａｎｇｅｓ ａｔ Ｌｏｗ ｐＨ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０（４６）：２７４３９‐２７４４５（１９９５）；Ｔｏｒｔｏｒｅｌｌａ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｓｈｏｗｓ Ａｌｌ Ｔｈｒｅｅ Ｄｏｍａｉｎｓ ｏｆ Ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａ Ｔｏｘｉｎ Ｐｅｎｅｔｒａｔｅ Ａｃｒｏｓｓ Ｍｏｄｅｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０（４６）：２７４４６‐２７４５２（１９９５））。ＢｏＮＴ ＬＣとＨＣのトランスロケーションドメインとの間で協同作用が必要であることは、ＬＣが細胞質ゾルへ首尾良く移行するために、いくつかのＢｏＮＴ血清型のＨＣＮならびにジフテリア及び炭疽毒素に共通して存在するデカペプチドモチーフが必要であることを示す証拠によって裏付けられている（Ｒａｔｔｓ ｅｔ ａｌ．，“Ａ Ｃｏｎｓｅｒｖｅｄ Ｍｏｔｉｆ ｉｎ Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ Ｈｅｌｉｘ １ ｏｆ Ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａ Ｔｏｘｉｎ Ｍｅｄｉａｔｅｓ Ｃａｔａｌｙｔｉｃ Ｄｏｍａｉｎ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｔｏ ｔｈｅ Ｃｙｔｏｓｏｌ，”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．（ＵＳＡ） １０２（４３）：１５６３５‐１５６４０（２００５））。
組換えＢｏＮＴを発現させる努力により、効果的な免疫原を産生することに成功し、これらは上皮トランスサイトーシスに適したものである場合もあるが、それでもなお、これらの努力の結果として、野生型毒素と同等の効率で神経細胞の細胞質ゾルを標的化するのに必要な構造的特徴を有する組換えタンパク質を産生することはできなかった。これらの限界は、天然の毒素構造、ジスルフィド結合、及び生理学的な輸送を保持する完全長ＢｏＮＴ誘導体を産生可能な発現系を選択することの重要性を際立たせている。また、複数の研究室による研究が、野生型ボツリヌス菌（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ）神経毒血清型Ａ（「ＢｏＮＴ／Ａ」）の構造ドメインがニューロンエキソサイトーシスをいかにして無効化するかについて明らかにしているが、重要な疑問は未解決のままである。
神経細胞への送達のためにクロストリジウム神経毒を用いて一本鎖抗体を送達するという事例は存在しない。神経細胞内の細胞内標的を標的とした一本鎖抗体の開発には多くの研究努力がなされているが、いずれの場合も抗体を融合タンパク質として送達するのではなく、遺伝子移入によって細胞内抗体として発現させる。Ｔｒｅｍｂｌａｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｃａｍｅｌｉｄ Ｓｉｎｇｌｅ Ｄｏｍａｉｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ （ＶＨＨｓ） ａｓ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｃｅｌｌ Ｉｎｔｒａｂｏｄｙ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ａｇｅｎｔｓ ａｎｄ Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｓ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ （ＢｏＮＴ） Ｐｒｏｔｅａｓｅｓ，”Ｔｏｘｉｃｏｎ：Ｏｆｆｉｃｉａｌ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｎ Ｔｏｘｉｎｏｌｏｇｙ ５６（６）：９９０‐９９８（２０１０）は、遺伝子移入によって神経細胞に発現させた抗ボツリヌス神経毒血清型Ａ ＶＨＨ細胞内抗体が、野生型ＢｏＮＴ／Ａによる不死化神経細胞株の中毒状態を予防することができたことを報告した。遺伝子移入はまた、抗ボツリヌス神経毒血清型Ａ ＶＨＨへのプロテアソーム標的化配列の融合が、野生型ＢｏＮＴ／Ａによる中毒状態からの回復を促進し得ることを実証するためにも用いた（Ｋｕｏ ｅｔ ａｌ．，“Ａｃｃｅｌｅｒａｔｅｄ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｃｅｌｌ Ｒｅｃｏｖｅｒｙ ｆｒｏｍ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｉｎｔｏｘｉｃａｔｉｏｎ ｂｙ Ｔａｒｇｅｔｅｄ Ｕｂｉｑｕｉｔｉｎａｔｉｏｎ，”ＰｌｏＳ Ｏｎｅ ６（５）：ｅ２０３５２（２０１１）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用される）。細胞内抗体として発現させる一本鎖抗体はまた、ハンチントン病、パーキンソン病、及び神経細胞に影響を及ぼす可能性のある他のタンパク質ミスフォールディング障害の治療可能性を有することが示された（Ｂｕｔｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｔｈｅｒａｐｉｅｓ ｔｏ Ｃｏｕｎｔｅｒａｃｔ Ｍｕｔａｎｔ Ｈｕｎｔｉｎｇｔｉｎ ａｎｄ Ｒｅｌａｔｅｄ Ｔｏｘｉｃ Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，”Ｐｒｏｇｒｅｓｓ ｉｎ Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ９７（２）：１９０‐２０４（２０１２）；Ｂｕｔｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｉｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ Ａｎｔｉ‐Ｈｕｎｔｉｎｇｔｉｎ Ｐｒｏｔｅａｓｏｍｅ‐Ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｉｎｔｒａｂｏｄｉｅｓ Ｍｅｄｉａｔｅ Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ Ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｕｔａｎｔ Ｈｕｎｔｉｎｇｔｉｎ Ｅｘｏｎ １ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｆｒａｇｍｅｎｔｓ，”ＰｌｏＳ Ｏｎｅ ６（１２）：ｅ２９１９９（２０１１）；Ｍｅｓｓｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｎｔｒａｂｏｄｉｅｓ ａｓ Ｎｅｕｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，”Ｎｅｕｒｏｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ：Ｔｈｅ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｓｏｃｉｅｔｙ ｆｏｒ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ＮｅｕｒｏＴｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ １０（３）：４４７‐４５８（２０１３））。これらの一本鎖抗体のいずれも、これまで、クロストリジウム神経毒と遺伝学的に融合した後に送達することを目的として検証されたことはなかった。
クロストリジウム神経毒
ボツリヌス菌及び破傷風菌（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｔｅｔａｎｉ）の神経毒は、神経細胞に対する非常に強力かつ特異的な毒性物質である（Ｊｏｈｎｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｓｔｒａｉｎｓ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ Ｉｎｆａｎｔ Ｂｏｔｕｌｉｓｍ Ｃａｓｅ ｉｎ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｋｉｎｇｄｏｍ，”Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４３：２６０２‐２６０（２００５）；Ｓｃｈｉａｖｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ Ａｆｆｅｃｔｉｎｇ Ｎｅｕｒｏｅｘｏｃｙｔｏｓｉｓ，”Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．８０：７１７‐７６６（２０００）；Ｓｉｍｐｓｏｎ，“Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｍａｊｏｒ Ｓｔｅｐｓ ｉｎ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ａｃｔｉｏｎ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．４４：１６７‐１９３（２００４））。これらの神経毒は、人に知られている最も致命的な物質の一つである。両毒素は、冒した神経細胞において神経伝達物質の放出を阻害することによって作用する。破傷風毒素（「ＴｅＮＴ」）は、主に末梢神経系と中枢神経系を連結する介在ニューロンに作用し、ボツリヌス神経毒（「ＢｏＮＴ」）は、末梢神経系の神経筋接合部及び他のコリン作動性シナプスに作用する。これらの神経毒は両方とも、影響を受けた神経細胞の軸索からシナプスへの神経伝達物質の放出を阻害することにより作用し、麻痺をもたらす。
現在記載されている８つのＢｏＮＴ血清型（Ａ〜Ｈ）及び複数のサブタイプは、全て共通の構造的特徴を有している（Ｓｍｉｔｈ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｅｑｕｅｎｃｅ Ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ Ｉｍｐａｃｔｓ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｂｉｎｄｉｎｇ ａｎｄ Ｎｅｕｔｒａｌｉｚａｔｉｏｎ，”Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．７３：５４５０‐５４５７（２００５）；Ｂａｒａｓｈ ｅｔ ａｌ．，“Ａ Ｎｏｖｅｌ Ｓｔｒａｉｎ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ ｔｈａｔ Ｐｒｏｄｕｃｅｓ Ｔｙｐｅ Ｂ ａｎｄ Ｔｙｐｅ Ｈ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎｓ，”Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．２０９：１８３‐９１（２０１４）；Ｄｏｖｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｎｏｖｅｌ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ｈ Ｇｅｎｅ，”Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．２０９：１９２‐２０２（２０１４）；Ｈｉｌｌ ｅｔ ａｌ．，“Ｇｅｎｅｔｉｃ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｗｉｔｈｉｎ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ， Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｇｅｎｅ Ｃｌｕｓｔｅｒｓ ａｎｄ Ｔｏｘｉｎ Ｓｕｂｔｙｐｅｓ，”Ｃｕｒｒ．Ｔｏｐ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．３６４：１‐２０（２０１３））。ＢｏＮＴはその毒性にもかかわらず、少用量であれば塗布して局所的に筋肉群を麻痺させ、それによって標的化した治療的麻痺の効果を有するため、医薬品として広く使用されている。およそ０．５ｎｇ／ｋｇのマウスＬＤ５０を有するＢｏＮＴ／Ａは、臨床医学において最もよく使用される血清型であり（例えば、それぞれ商品名Ｂｏｔｏｘ（登録商標）、Ｄｙｓｐｏｒｔ（登録商標）、及びＸｅｏｍｉｎ（登録商標）で販売されているＯｎａ‐、Ａｂｏ‐、及びＩｎｃｏｂｏｔｕｌｉｎｕｍトキシンＡ）、広範囲の適応症に対して承認されている。
ＢｏＮＴは、それらのメタロプロテアーゼ実体（軽鎖（ＬＣ））を神経細胞の細胞質ゾルへ送達するうえで理想的に進化した構造的及び輸送的特徴を有する。それらは、腸及び肺の上皮性関門を通過し、循環器系に入ることができる。循環器系から、主として活性型神経筋接合部を標的とし、神経伝達物質の放出をブロックし、末梢神経筋遮断を引き起こす（Ｆｕｊｉｎａｇａ，“Ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ ｗｉｔｈ ｔｈｅ Ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ Ｂａｒｒｉｅｒ，”Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２０１０：９７４９４３（２０１０）；Ｊａｈｎ ｅｔ ａｌ．，“ＳＮＡＲＥｓ‐Ｅｎｇｉｎｅｓ ｆｏｒ Ｍｅｍｂｒａｎｅ Ｆｕｓｉｏｎ，”Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．７：６３１‐６４３（２００６）；Ｍｏｎｔａｌ，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ： Ａ Ｍａｒｖｅｌ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｄｅｓｉｇｎ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．７９：５９１‐６１７（２０１０））。呼吸器系の麻痺は死亡につながる（Ｓｃｈｉａｖｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ Ａｆｆｅｃｔｉｎｇ Ｎｅｕｒｏｅｘｏｃｙｔｏｓｉｓ，”Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．８０：７１７‐７６６（２０００））。すべてのＢｏＮＴ血清型は、同様の構造的特徴、及びシナプス小胞放出のための分子機構のすべての標的可溶性Ｎ‐エチルマレイミド感受性因子付着タンパク質受容体（「ＳＮＡＲＥ」）成分を有する（Ｊｏｈｎｓｏｎ，“Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ Ｔｏｘｉｎｓ ａｓ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｇｅｎｔｓ：Ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｏｆ Ｎａｔｕｒｅ’ｓ Ｍｏｓｔ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５３：５５１‐５７５（１９９９））。例えば、野生型（ｗｔ）ＢｏＮＴ／Ａは、内在性クロストリジウムプロテアーゼによるタンパク質分解を経て活性化され、軽鎖（ＬＣ、Ｍｒ約５０，０００）及び必須のジスルフィド結合により結合した重鎖（ＨＣ、Ｍｒ約１００，０００）を含むヘテロダイマーを生成する一本鎖タンパク質（Ｍｒ約１５０，０００）として合成される（Ｓｃｈｉａｖｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ Ａｆｆｅｃｔｉｎｇ Ｎｅｕｒｏｅｘｏｃｙｔｏｓｉｓ，”Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．８０：７１７‐７６６（２０００）；Ｊｏｈｎｓｏｎ，“Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ Ｔｏｘｉｎｓ ａｓ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｇｅｎｔｓ：Ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｏｆ Ｎａｔｕｒｅ’ｓ Ｍｏｓｔ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５３：５５１‐５７５（１９９９）；Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ Ａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３：１‐８（１９９４））。
成熟野生型ＢｏＮＴ／Ａ毒素は、３つの主要機能ドメインを含むジスルフィド結合性のヘテロ二量体である：（１）毒性の原因であるＬＣメタロプロテアーゼドメイン；（２）重鎖（ＨＣ）Ｃ末端領域（ＨＣ）を含む受容体結合ドメイン；及び（３）ＬＣの細胞質ゾルへの推進を担うＨＣ Ｎ末端領域（ＨＮ）を含む重鎖（ＨＣ）トランスロケーションドメイン（Ｓｃｈｉａｖｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ Ａｆｆｅｃｔｉｎｇ Ｎｅｕｒｏｅｘｏｃｙｔｏｓｉｓ，”Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．８０：７１７‐７６６（２０００）；Ｓｉｍｐｓｏｎ，“Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｍａｊｏｒ Ｓｔｅｐｓ ｉｎ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ａｃｔｉｏｎ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．４４：１６７‐１９３（２００４）；Ｊｏｈｎｓｏｎ，“Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ Ｔｏｘｉｎｓ ａｓ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｇｅｎｔｓ：Ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｏｆ Ｎａｔｕｒｅ’ｓ Ｍｏｓｔ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５３：５５１‐５７５（１９９９）；Ｄｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，“ＳＶ２ ｉｓ ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｆｏｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ，”Ｓｃｉｅｎｃｅ ３１２：５９２‐５９６（２００６）；Ｍａｈｒｈｏｌｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｓｙｎａｐｔｉｃ Ｖｅｓｉｃｌｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ ２Ｃ Ｍｅｄｉａｔｅｓ ｔｈｅ Ｕｐｔａｋｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｉｎｔｏ Ｐｈｒｅｎｉｃ Ｎｅｒｖｅｓ，”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．５８０：２０１１‐２０１４（２００６））。
活性型神経細胞を特異的に標的とする野生型ＢｏＮＴ／Ａの毒性と医薬効力とを、同じ多段階分子機構が担っており、この特異性は、小型シナプス小胞の内腔に突出して存在するＢｏＮＴ／Ａ受容体であるシナプス小胞タンパク質２（「ＳＶ２」）が、シナプス小胞融合事象の間に細胞膜上にのみ露出するという事実に由来する（Ｄｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，“ＳＶ２ ｉｓ ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｆｏｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ，”Ｓｃｉｅｎｃｅ ３１２（５７７３）：５９２‐５９６（２００６））。野生型ＢｏＮＴ／Ａの結合及び内部移行にはガングリオシドも関与し（Ｊｏｈｎｓｏｎ，“Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ Ｔｏｘｉｎｓ ａｓ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｇｅｎｔｓ：Ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｏｆ Ｎａｔｕｒｅ’ｓ Ｍｏｓｔ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５３：５５１‐５７５（１９９９）；Ｋｅｌｌｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｐｅｒｓｉｓｔｅｎｃｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａｃｔｉｏｎ ｉｎ Ｃｕｌｔｕｒｅｄ Ｓｐｉｎａｌ Ｃｏｒｄ Ｃｅｌｌｓ，”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ． ４５６：１３７‐１４２（１９９９））、内部移行の直後にＢｏＮＴ／Ａは初期エンドソーム区画に見出され（Ｓｉｍｐｓｏｎ，“Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｍａｊｏｒ Ｓｔｅｐｓ ｉｎ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ａｃｔｉｏｎ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．４４：１６７‐１９３（２００４）；Ｆｉｓｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｒｕｃｉａｌ Ｒｏｌｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｄｉｓｕｌｆｉｄｅ Ｂｒｉｄｇｅ Ｂｅｔｗｅｅｎ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｌｉｇｈｔ ａｎｄ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎｓ ｉｎ Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ Ａｃｒｏｓｓ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２８２：２９６０４‐２９６１１（２００７）；Ｆｉｓｃｈｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｉｎｇｌｅ Ｍｏｌｅｃｕｌｅ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａｔｅｓ Ｄｕｒｉｎｇ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ Ａｃｒｏｓｓ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ，”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０４：１０４４７‐１０４５２（２００７））、ＢｏＮＴ／Ａはシナプス小胞の再生にも関連している。エンドソームの酸性化に際して、ＢｏＮＴ／Ａは機能的に重要な立体構造変化を受け、ＬＣがＨＣを介して神経細胞の細胞質へ移行することが可能になる（Ｂａｎｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｆｏｒ Ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ Ｓｔｕｄｉｅｓ ａｎｄ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐ．Ｐｕｒｉｆ．７１：６２‐７３（２０１０）；Ｐｅｌｌｅｔｔ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ， Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ， ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ａ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ａｔｏｘｉｃ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ，”Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．４０５：６７３‐６７７（２０１１））。バフィロマイシンまたはコンカナマイシンＡなどの薬剤による初期エンドソーム酸性化プロセスの中断は、神経細胞の細胞質への軽鎖の移行を防止する（Ｓｉｍｐｓｏｎ，“Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｍａｊｏｒ Ｓｔｅｐｓ ｉｎ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ａｃｔｉｏｎ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．４４：１６７‐１９３（２００４））。神経細胞の細胞質ゾルにおいて、Ｚｎ２＋‐エンドペプチダーゼであるＬＣは、シナプス小胞エキソサイトーシスに必要なＳＮＡＲＥタンパク質であるシナプトソーム関連タンパク質２５（「ＳＮＡＰ‐２５」）を特異的に切断する（Ｍａｈｒｈｏｌｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｓｙｎａｐｔｉｃ Ｖｅｓｉｃｌｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ ２Ｃ Ｍｅｄｉａｔｅｓ ｔｈｅ Ｕｐｔａｋｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｉｎｔｏ Ｐｈｒｅｎｉｃ Ｎｅｒｖｅｓ，”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．５８０：２０１１‐２０１４（２００６））。ＳＮＡＰ‐２５の切断は、神経伝達物質の放出を阻害し、末梢神経筋麻痺を引き起こす。
組換え完全長ＢｏＮＴヘテロ二量体誘導体の産生を可能にする組換えクロストリジウム構築物、バキュロウイルス発現系、及び精製方法に基づく技術プラットフォームが開発されている（Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許第７，７８５，６０６号参照）。このプラットフォームは、天然の毒素の構造及び輸送特性を保持する組換えボツリヌス神経毒のバイオエンジニアリングに、現代の分子生物学のツールを適用できるようにする（Ｂａｎｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｆｏｒ Ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ Ｓｔｕｄｉｅｓ ａｎｄ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒ．Ｐｕｒｉｆ．７１：６２‐７３（２０１０））。ボツリヌス菌神経毒血清型Ａの無毒性誘導体（「ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ」）は、このプラットフォームを用いて産生した野生型ボツリヌス菌神経毒血清型Ａ（ＢｏＮＴ／Ａ）の組換え誘導体である。この誘導体（すなわち、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ）は、機能的な受容体結合ドメイン及びトランスロケーションドメイン、ならびに積荷部位を表す配列に融合した無毒性軽鎖（ＬＣ）を含む（Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許出願公開第２０１１／０２０６６１６号参照）。一実施形態では、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ ＬＣは、プロテアーゼの酵素コアに導入した２つの突然変異を有し、それにより、その強力な毒性を劇的に低下させている。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄは、野生型毒素より１００，０００倍高いＬＤ５０を有する。従前の分析からは、全身腹腔内投与後のマウスの横隔膜の神経筋接合部にＢｏＮＴ／Ａ ａｄが蓄積し、神経細胞培養物から、ＳＮＡＰ‐２５との複合体として免疫沈降することができ（Ｂａｎｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｆｏｒ Ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ Ｓｔｕｄｉｅｓ ａｎｄ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒ．Ｐｕｒｉｆ．７１：６２‐７３（２０１０）；Ｐｅｌｌｅｔｔ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ， Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ， ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｃｔｉｖｉｔｙ ｏｆ ａ Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ａｔｏｘｉｃ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ，”Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．４０５：６７３‐６７７（２０１１））、野生型ＢｏＮＴ／Ａよりも遅い速度でＳＮＡＰ‐２５を切断し、神経細胞内にマイクロモル濃度で蓄積することが示されている（Ｖａｚｑｕｅｚ‐Ｃｉｎｔｒｏｎ，“Ａｔｏｘｉｃ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ ａｓ ａ Ｐｒｏｔｏｔｙｐｅ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｖｅｈｉｃｌｅ ｆｏｒ Ｔａｒｇｅｔｅｄ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｔｏ ｔｈｅ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｃｙｔｏｐｌａｓｍ，”ＰＬｏＳＯｎｅ ９（１）：ｅ８５５１７（２０１４））。
本発明は、当該技術分野における欠点を克服することを目的とする。これは、神経細胞の細胞質に露出する標的に対する機能的一本鎖抗体の送達に関連する課題を克服することを含む。
本発明の１つの態様は、クロストリジウム神経毒の軽鎖領域及びクロストリジウム神経毒の重鎖領域を含む融合タンパク質に関する。軽鎖及び重鎖領域は、ジスルフィド結合によって連結している。一本鎖抗体は軽鎖領域の上流に位置する。一本鎖抗体は、抗原結合活性を有する。
本発明の別の態様は、本発明の融合タンパク質及び薬学的に許容可能な担体を含む治療剤に関する。
本発明のさらなる態様は、クロストリジウム神経毒の毒性作用についての対象の治療方法に関する。本方法は、クロストリジウム神経毒の毒性作用について対象を治療するのに有効な条件下で、本発明の治療剤を対象に投与することを含む。
本発明のさらに別の態様は、治療方法に関する。本方法は、対象に治療を提供するのに有効な条件下で、本発明の融合タンパク質を対象に投与することを含む。
さらに、本発明のさらなる態様は、プロペプチド融合体に関する。プロペプチド融合体は、クロストリジウム神経毒の軽鎖領域及びクロストリジウム神経毒の重鎖領域を有する。軽鎖及び重鎖領域は、ジスルフィド結合によって連結している。中間領域は、軽鎖及び重鎖領域を連結し、高特異性プロテアーゼ切断部位を含む。高特異性プロテアーゼ切断部位は、高特異性プロテアーゼが認識して切断できる３つ以上の特異的な隣接するアミノ酸残基を有する。一本鎖抗体は軽鎖領域の上流に位置する。一本鎖抗体は、抗原結合活性を有する。
本発明の別の態様は、本発明のプロペプチド融合体をコードする単離核酸分子に関する。
本発明のさらなる態様は、本発明による核酸分子を異種ベクターに含む発現系に関する。
本発明のさらに別の態様は、本発明の核酸分子を含有する宿主細胞に関する。
さらに、本発明のさらなる態様は、融合タンパク質の発現方法に関する。本方法は、本発明の核酸分子、前記核酸分子に機能的に連結した異種プロモーター、及び前記核酸分子に機能的に連結した３′調節領域を含む核酸構築物を提供することを含む。核酸構築物は、融合タンパク質のプロペプチドを発現するのに有効な条件下で宿主細胞に導入される。
本発明の別の態様は、本発明のプロペプチド融合タンパク質を高特異性プロテアーゼ切断部位で切断することによって産生する融合タンパク質に関する。軽鎖領域及び重鎖領域は、ジスルフィド結合によって連結している。
本発明の背景において上述した抗体の送達方法は、薬学的な応用に対して制限があり、本発明はこれを克服しようとするものである。具体的には、上記の方法は、神経細胞の細胞質に露出した標的に対し、機能的一本鎖抗体を特異的に送達することができない。抗体を無毒性クロストリジウム神経毒誘導体に融合させることにより、本明細書に記載の融合タンパク質は、一本鎖抗体を神経細胞に導き、内部移行したエンドソームから細胞質に移行させて、遠位の神経細胞体及び他の神経細胞への逆行輸送によって抗体を潜在的に送達するとともに、経口及び吸入を含む複数の経路によって治療剤を投与する手段を提供する。
一本鎖抗体は、様々な治療目的を含む様々な目的のために開発されている。本発明は、組換えクロストリジウム神経毒誘導体への一本鎖抗体の遺伝学的融合に基づく細胞内標的への一本鎖抗体の送達分子及び送達方法に関し、本発明により、クロストリジウム神経毒誘導体は分子媒体として働き、これは神経細胞の細胞質への抗体の輸送を標的指向させかつシャペロンとして補助し、それによって抗体が特異的な神経細胞内タンパク質を標的とすることを可能にする。したがって、本発明の一実施形態によれば、抗体は薬剤であり、組換えクロストリジウム神経毒誘導体は主に抗体の送達媒体として働く。
本明細書に記載の以下の実施例は、クロストリジウム神経毒の無毒性誘導体を用いた一本鎖抗体の良好な送達に関する証拠を提供する。本発明の融合タンパク質は、神経細胞を標的とし、神経細胞培養物の細胞質ゾル画分にマイクロモル濃度で蓄積可能であり、シナプスタンパク質と共局在する。一本鎖抗体を送達することにより、神経細胞の細胞質に存在する病原性タンパク質を標的とし、及びこれを排除することができ、多数の神経症状の治療薬として役立てることができる。
図１Ａ〜Ｂは、全長一本鎖発現産物のプロセシング前（図１Ａ）及びプロセシング後（図１Ｂ）の、クロストリジウム神経毒（例えば、ＢｏＮＴ）の模式図である。このクロストリジウム神経毒は一本鎖抗体融合タンパク質ではない。すなわち、融合一本鎖抗体を含有していない。具体的には、図１Ａは、プロセシング前のＢｏＮＴの全長一本鎖発現産物の模式図である。アフィニティー精製タグ（「ＡＰＴ」）は、Ｎ末端（ＡＰＴＮ）及びＣ末端（ＡＰＴＣ）にそれぞれ存在し、２段階アフィニティー精製に使用する。検出タグ（「ＤＴ」）を配置して、成熟ヘテロダイマーの軽鎖及び重鎖を検出する。例えば、免疫細胞化学（ＩＣＣ）技術を用いたタンパク質の視覚化のために、ＬＣのＮ末端上にＯｌｌａｓタグ及びＨＣのＣ末端上にＨＡタグを導入してもよい。図１Ｂは、本明細書において「高特異性プロテアーゼ切断部位」とも呼ぶ制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位を切断し、ＡＰＴを除去し、ＬＣとＨＣの間にある発現産物を切り出す制限特異性プロテアーゼ（「ＲＳＰ」）による切断を介して図１Ａに示す実施形態の発現産物をプロセシングすることによって産生したＢｏＮＴのジスルフィド結合型ＬＣ‐ＨＣヘテロ二量体の模式図である。 ｉｎ ｖｉｔｒｏでの成熟完全長ＢｏＮＴ神経毒（すなわち、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１、以下に記載）薬物担体の一実施形態について、ＳＮＡＰ‐２５の切断がないことを示すウェスタンブロット結果の写真である。Ｅ１９ラット海馬神経細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで１４日間培養し（１４ＤＩＶ）、次いで５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１に、０、１、２４、または４８時間曝露した。ＯＬＬＡＳタグに対するモノクローナル抗体及びＨＡタグに対するモノクローナル抗体を用いてウェスタンブロット分析を行い、それぞれＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣ及びＨＣの存在を検出及び測定した。ＶＡＭＰ‐２を添加対照として用いた。このブロットは、ＳＮＡＰ‐２５がＢｏＮＴ／Ａの天然の基質であるにもかかわらず、ＳＮＡＰ‐２５切断が検出されなかったことを示している。図２はまた、ＶＡＭＰ‐２は他のＢｏＮＴ血清型の基質であるが、この特異的誘導体が、その変化した一次構造にもかかわらず、ＶＡＭＰ‐２に対する切断活性を有さないことも示している。 図３Ａ〜Ｃは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣが、神経細胞の細胞質ゾルに独占的に露出するシナプスタンパク質と共局在することを示す写真である。Ｅ１９ラット海馬神経細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで１０日間培養し、次いで５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１に１６時間曝露した。共焦点顕微鏡分析は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣがＶＡＭＰ‐２（図３Ａ）およびＳＮＡＰ‐２５（図３Ｂ）と共局在することを示す。図３Ｃにおいて、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣは初期エンドソームマーカーＥＥＡ１と共局在しない。 図４Ａ〜Ｂは、全長一本鎖発現産物（すなわち、プロペプチド融合体）のプロセシング前（図４Ａ）およびプロセシング後（図４Ｂ）の、本発明の融合タンパク質の一実施形態の模式図である。特に、図４Ａは、プロセシング前の全長一本鎖発現産物（プロペプチド融合体）を示す模式図である。アフィニティー精製タグ（ＡＰＴ）を、Ｎ末端（ＡＰＴＮ）及びＣ末端（ＡＰＴＣ）にそれぞれ配置し、２段階アフィニティー精製のために使用する。一本鎖抗体（ＶＨＨ）のＮ末端上の検出タグ（ＤＴ１）は、免疫細胞化学（ＩＣＣ）または他の免疫学的技術を用いてタンパク質を視覚化するためのものである。スペーサー配列（「ＳＳ」）を、ＶＨＨとＬＣのＮ末端との間に配置する。図４Ｂは、制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）による切断により、ＡＰＴを除去するとともにＬＣとＨＣとの発現産物を切り出すことによる発現産物のプロセシングによって産生するジスルフィド結合型ＬＣ‐ＨＣヘテロ二量体を示す模式図である。一実施形態において、このプロペプチド融合体及び融合タンパク質を、「ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨ」と呼ぶ。 図５Ａ〜Ｂは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨ（以下に記載する本発明の融合タンパク質の一実施形態）が神経細胞の細胞質ゾルに内部移行することを示す写真である。Ｅ１９ラット海馬神経細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで１０日間培養し、次いで５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨに２４時間曝露した。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨ ＬＣは、残存ＳＮＡＰ‐２５切断活性（例えば、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０）を保有するＢｏＮＴ／Ａ ａｄ分子と同じパターンを有することを、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣとＳＮＡＰ‐２５（図５Ａ）およびＶＡＭＰ‐２（図５Ｂ）との共局在によって示す。 図６Ａ〜Ｂは、分解促進ドメイン（「ＡＤＤ」）と呼ぶ、細胞内排除促進タンパク質を標的とする配列を含む本発明の一実施形態によるプロペプチド融合体（図６Ａ）および融合タンパク質（図６Ｂ）の模式図である。例えば、ＢｏＮＴ／Ｂに結合するＢ１０‐ＶＨＨを有するＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１を、プロテアソーム経路による排除のために複合体への標識として付加するＡＤＤシグナルと共に例示する。構築物のＲＳＰプロセシング前（図６Ａ、プロペプチド融合体）およびＲＳＰプロセシング後（図６Ｂ、融合タンパク質）の模式図を示す。 図７Ａ〜Ｂは、本発明の一実施形態によるプロペプチド融合体（図７Ａ）および融合タンパク質（図７Ｂ）の模式図である。図中、成熟ヘテロダイマー（図７Ｂ）のＮ末端アミノ酸がリジン（‐Ｋ‐）残基となって、プロテアソーム系による分解を促進するようにプロペプチドを設計する。 図８Ａ〜Ｂは、本発明の一実施形態による、ＲＳＰプロセシング前（図８Ａ）およびＲＳＰプロセシング後（図８Ｂ）を示すプロペプチド融合体の模式図である。本明細書に示す実施形態によれば、プロペプチド融合体（図８Ａ）は、図４Ａのプロペプチド融合体と同じ構造を有するが、検出タグ（ＤＴ）が欠けている。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列の間にテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号５）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号６）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号７）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号８）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。 図１３Ａ〜Ｂは、本発明の一実施形態によるプロペプチド融合体（図１３Ａ）および融合タンパク質（図１３Ｂ）の模式図であり、融合タンパク質のクロストリジウム神経毒部分は、残存ＳＮＡＰ‐２５切断活性を有する（すなわち、ＢｏＮＴ ＬＣ ａｄ‐０）。図１３Ａは、プロセシング前の全長一本鎖発現産物（プロペプチド融合体）の模式図である。（２段階）アフィニティー精製に使用するために、ＡＰＴをそれぞれＮ末端（ＡＰＴＮ）及びＣ末端（ＡＰＴＣ）に配置する。免疫細胞化学（ＩＣＣ）技術を用いたタンパク質の視覚化のために、ＬＣのＮ末端上にＤＴ（ＤＴ１）を導入する。図１３Ｂは、図１３Ａのプロペプチド融合体の融合タンパク質産物の模式図であって、ＲＳＰによる切断を介した発現産物のプロセシングによって産生するジスルフィド結合型ＬＣ‐ＨＣヘテロ二量体を示しており、ここで、ＲＳＰによる切断は、ＡＰＴを除去し、ＬＣとＨＣとの発現産物を切り出す。 ｉｎ ｖｉｔｒｏでのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０タンパク質（すなわち、融合型一本鎖抗体を有さない限り、非融合型タンパク質）のＳＮＡＰ‐２５切断を示す。Ｅ１９ラット海馬神経細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで１４日間培養し、次いで異なる濃度のＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０に７２時間曝露した。ウェスタンブロット分析は、ＳＮＡＰ‐２５の切断産物及び非切断産物を示す。 Ｅ１９ラット海馬神経細胞培養物中の成熟全長ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨ融合タンパク質（すなわち、図１３Ｂに示す融合タンパク質の構造を有する）のＳＮＡＰ‐２５切断を示す。ＬＣがＳＮＡＰ‐２５基質へアクセスするには、細胞質へのＬＣ送達が必要であることから、ＳＮＡＰ‐２５切断を、ＬＣ及びその関連ＶＨＨ積荷の細胞質への送達に対するレポーターとして使用する。Ｅ１９ラット海馬神経細胞をｉｎ ｖｉｔｒｏで１４日間培養し、次に５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨに０、１、２４、４８及び７２時間、曝露した。βアクチンを添加対照として用いた。 ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨの指外転スコア（ＤＡＳ）評価の結果を示す写真であり、ＬＣ ａｄ‐０の上流にＶＨＨを配置しても、ｉｎ ｖｉｖｏでのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨの麻痺活性が消失しないことを示している。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 本発明のプロペプチド融合体及び融合タンパク質を形成するための一本鎖抗体を有するボツリヌス菌血清型Ｃの無毒性誘導体の二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号９）及びアミノ酸配列（配列番号１０）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図１７Ａ〜Ｌは、図４Ａの一般的な構成の１つの具体的な実施形態を示す。 Ｃｙｔｏ‐３０２（ＢｏＮＴ／Ａ‐Ｂ１０を保有するＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０融合タンパク質、その配列を図１９Ａ〜Ｌに示し、模式的に図１３Ａに示す）が、神経細胞に内部移行した後に、ＬＣ／Ｂ結合一本鎖抗体としてその活性を保持することを示している。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット海馬神経細胞を５０ｎＭ Ｃｙｔｏ‐３０２または緩衝液に２４時間曝露した。細胞を洗浄し、５０％の条件培地でさらに２４時間追跡した。細胞を洗浄し、０．５％Ｔｒｉｔｏｎ（商標）Ｘ１００緩衝液で抽出し、ＢｏＮＴ／Ｂ軽鎖を細胞質ゾル抽出物に加え、１時間インキュベートした。ＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣは、タンパク質のＣ末端に６‐Ｈｉｓタグを有し、簡単に同定できる。次いで、試料を抗ＢｏＮＴ／Ａポリクローナル抗体と共に１時間インキュベートし、続いてプロテインＧ磁気ビーズで免疫沈降した。ウェスタンブロット分析：レーン１：Ｃｙｔｏ‐３０２で処理していない細胞の投入溶解産物。レーン２：Ｃｙｔｏ‐３０２で処理した投入溶解細胞産物。レーン３〜５：免疫沈降後の試料。レーン３：溶解産物を含まない試験管内ＩＰ。Ｃｙｔｏ‐３０２及びＬＣ／Ｂを０．５％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ‐１００溶解緩衝液中で混合した。レーン４：Ｃｙｔｏ‐３０２で処理していない細胞のＩＰ。レーン５：Ｃｙｔｏ‐３０２で処理した細胞のＩＰ。レーン６：４ｎｇのＬＣ／Ｂのみ。レーン７：プロテインＧ単独の対照。レーン４と５の比較は、ＬＣ／Ｂに対するＢｏＮＴ融合ＶＨＨが神経細胞の細胞質への送達後に回収することができ、回収したＶＨＨが免疫沈降実験においてＬＣ／Ｂを沈降させる能力を保持していることを示す。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１１）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１２）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 本発明のプロペプチド融合体の一実施形態をコードする二本鎖ＤＮＡ配列（配列番号１３）及びそのプロペプチド融合体のアミノ酸配列（配列番号１４）を示す。ＤＮＡ配列及び／またはその翻訳アミノ酸配列の機能的及び／または構造的特徴を識別するために、二本鎖ＤＮＡ配列に沿ってテキストボックスを提示する。図示する実施形態は、図１３Ａの模式図に対応する。 図２１Ａ〜Ｃは、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄプロペプチド精製及びプロセシングの結果を、クーマシーＢＢ Ｒ‐２５０染色した還元１２％ＳＤＳ‐ＰＡＧＥにおいて示す。図２１Ａは、レーン１〜６においてＮｉ‐ＮＴＡ ＳｕｐｅｒＦｌｏｗクロマトグラフィー精製、レーン８〜１１においてＳｔｒｅｐＴａｃｔｉｎアガロースクロマトグラフィー、及びレーン１２においてＢｏＮＴ／Ｃ ａｄプロペプチドの溶出を示す。図２１Ｂは、タバコエッチ病ウイルス（ＴＥＶ）によるタンパク質分解切断によるＢｏＮＴ／Ｃ ａｄプロペプチドのヘテロ二量体へのプロセシングを示す。レーン１〜５：非還元試料、レーン６〜１０：β‐メルカプトエタノールの添加による還元試料。レーン１及び６：ＴＥＶなし；レーン２〜５及び７〜１０はＴＥＶで以下の時間処理した：レーン２及び７、１時間；レーン３及び８、６時間；レーン４及び９、２４時間；レーン５及び１０、４８時間。図２１Ｃは、ＴＥＶの除去を示す。レーン１：ロード；レーン２〜４：５ｍＭイミダゾールで洗浄；レーン６〜８：４０ｍＭイミダゾールで洗浄；レーン９〜１０：２５０ｍＭでのＴＥＶの溶出。 ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄが細胞ベースのアッセイにおいて野生型ＢｏＮＴ／Ｃ基質に対して触媒的に活性でないことを示す。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット皮質神経細胞を異なる濃度のＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに９６時間曝露し、ウェスタンブロットにより分析した。図２２Ａは、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄがシンタキシン‐１を切断しないことを、陽性対照として０．５ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃで処理した細胞と比較して示す。ＶＡＭＰ‐２は内部添加対照として機能する。 ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄが細胞ベースのアッセイにおいて野生型ＢｏＮＴ／Ｃ基質に対して触媒的に活性でないことを示す。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット皮質神経細胞を異なる濃度のＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに９６時間曝露し、ウェスタンブロットにより分析した。図２２Ｂは、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄがシンタキシン‐１またはＳＮＡＰ‐２５を切断しないことを確認する。ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ ＬＣの検出は、皮質細胞に関連するＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの存在を示す。ＶＡＭＰ‐２は内部添加対照として機能する。 図２３Ａ〜Ｂは、神経細胞培養物中でＢｏＮＴ／Ｃ ａｄがシナプス前性マーカーＶＡＭＰ‐２と共局在することを示す。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット海馬培養物を２５ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに１６時間曝露した。細胞を免疫細胞化学用に調製し、共焦点顕微鏡法を用いて分析した。図２３Ａは、ＶＡＭＰ‐２及びＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ ＬＣについて染色した細胞を示す。図２３Ｂは、ＶＡＭＰ‐２及びＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ ＨＣで染色した細胞を示す。 神経細胞培養物中でＢｏＮＴ／Ｃ ＬＣが初期エンドソームマーカーＥＥＡ‐１とほとんど共局在しないことを示す。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット海馬培養物を２５ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄで１６時間処理した。細胞を免疫細胞化学用に調製し、共焦点顕微鏡法を用いて分析した。細胞をＥＥＡ‐１及びＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ ＬＣについて染色した。 ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの全身投与後の神経筋接合部への輸送を示す。６週齢のマウスに０．４ｍｇ／ｋｇのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを腹腔内注射した。全身注入の２４時間後、マウスを安楽死させ、横隔膜を単離し、染色用に調製した。組織をシンタキシン、ＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣ及びαブンガロトキシンで染色し、共焦点顕微鏡法で分析した。図２５Ａは、神経筋接合部の側面図を示す；左下から時計回りに：ＢｏＮＴ／Ｃ‐ＨＣ、シンタキシン、αブンガロトキシン、ならびにＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣ、シンタキシン、及びαブンガロトキシンの複合体。棒線＝１０μｍである。 ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの全身投与後の神経筋接合部への輸送を示す。６週齢のマウスに０．４ｍｇ／ｋｇのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを腹腔内注射した。全身注入の２４時間後、マウスを安楽死させ、横隔膜を単離し、染色用に調製した。組織をシンタキシン、ＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣ及びαブンガロトキシンで染色し、共焦点顕微鏡法で分析した。左下から時計回りに：ＢｏＮＴ／Ｃ‐ＨＣ、シンタキシン、αブンガロトキシン、ならびにＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣ、シンタキシン、及びαブンガロトキシンの複合体。棒線＝１０μｍである。 神経細胞培養物中でＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ Ｂ８（「Ｃ／Ｂ８」）がシナプスタンパク質と共局在することを示す一連の写真である。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット海馬培養物を２５ｎＭのＣ／Ｂ８で２４時間処理した。細胞をＩＣＣ用に調製し、共焦点顕微鏡法を用いて分析した。上部パネル：シナプシン‐１及びＣ‐ＬＣ／Ｂ８について染色した（ＢｏＮＴ／Ｃ ＬＣに対するモノクローナル抗体を用いて）細胞。下部パネル：ＶＡＭＰ‐２に対する免疫染色。棒線＝１０μｍである。 Ｃ／Ｂ８が、細胞ベースのアッセイ系においてＳＮＡＰ‐２５に対する野生型ＢｏＮＴ／Ａ ＬＣの活性をブロックすることを示す。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９皮質神経細胞を、５ｐＭの野生型ＢｏＮＴ／Ａ及び５０ｎＭのＣ／Ｂ８、５０ｎＭのＢ８単独、５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ‐ａｄ（ＢｏＮＴ／Ｃ分子媒体のみ）、５０ｎＭのＪＬＪＧ３単独（ＢｏＮＴ／Ｂ に対するＶＨＨ）、または５０ｎＭ ＪＬＪＧ３／Ｃ（ＪＬＪＧ３を有するＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ）。Ｃ／Ｂ８に同時曝露した試料（矢印で示す）のみが、ＳＮＡＰ‐２５切断の部分的阻害を示す。 Ｃ／Ｂ８がＢｏＮＴ／Ａ ＬＣ活性をブロックし、毒物への曝露後モデルの細胞ベースの系においてＳＮＡＰ‐２５の回収を促進することを示す。１４‐ＤＩＶ Ｅ１９皮質神経細胞を５ｐＭのＢｏＮＴ／Ａで９０分間毒物と接触させた。細胞を細胞培地で２回洗浄し、５０ｎＭのＣ／Ｂ８の存在下で追跡し、処理した１日後（Ｄ１）、４日後（Ｄ４）、及び７日後（Ｄ７）に、ウェスタンブロットによって分析した。非処理群（ｎ／ｔ）またはＣ‐ａｄ（分子媒体単独）と比較して、Ｃ／Ｂ８で処理した細胞は７日目までＳＮＡＰ‐２５の回収を示す。 ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ分子媒体と比較したＣ／Ｂ８のｉｎ ｖｉｖｏ有効性を示す。１０匹のマウスの群に、２ＭＩＰＬＤ５０ユニットを腹腔内注射した。毒物投与３時間後に、プラセボ（緩衝液のみ）、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または０．４ｍｇ／ｋｇのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄをマウスに注入した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 毒物投与後の異なる時間における標準的な抗体ベースの抗毒素に対するＣ／Ｂ８の有効性を示すグラフである。１０匹のマウスの群に、１．２ＭＩＰＬＤ５０の腹腔内投与で毒物投与した。毒物投与の６時間後に、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素のいずれかをマウスに腹腔内注射した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 毒物投与後の異なる時間における標準的な抗体ベースの抗毒素に対するＣ／Ｂ８の有効性を示すグラフである。１０匹のマウスの群に、１．２ＭＩＰＬＤ５０の腹腔内投与で毒物投与した。毒物投与の１２時間後に、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素のいずれかをマウスに腹腔内注射した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 毒物投与後の異なる時間における標準的な抗体ベースの抗毒素に対するＣ／Ｂ８の有効性を示すグラフである。１０匹のマウスの群に、１．２ＭＩＰＬＤ５０の腹腔内投与で毒物投与した。毒物投与の２０時間後に、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素のいずれかをマウスに腹腔内注射した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 毒物投与後の異なる時間における標準的な抗体ベースの抗毒素に対するＣ／Ｂ８の有効性を示すグラフである。１０匹のマウスの群に、４ＭＩＰＬＤ５０の腹腔内投与で毒物投与した。毒物投与の６時間後に、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素のいずれかをマウスに腹腔内注射した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 毒物投与後の異なる時間における標準的な抗体ベースの抗毒素に対するＣ／Ｂ８の有効性を示すグラフである。１０匹のマウスの群に、４ＭＩＰＬＤ５０の腹腔内投与で毒物投与した。毒物投与の８時間後に、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素のいずれかをマウスに腹腔内注射した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 毒物投与後の異なる時間における標準的な抗体ベースの抗毒素に対するＣ／Ｂ８の有効性を示すグラフである。１０匹のマウスの群に、４ＭＩＰＬＤ５０の腹腔内投与で毒物投与した。毒物投与の１０時間後に、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素のいずれかをマウスに腹腔内注射した。生存率を毎日測定し、毒物投与後の時間（日）に対して生存率をプロットした。 ＤＮＡ構築物がコードする融合タンパク質の分子構築に用いる前記ＤＮＡ構築物の一実施形態の模式図である。特に、図３２は、任意のボツリヌス菌血清型のＢｏＮＴ ＬＣ及びＢｏＮＴ ＨＣをコードするヌクレオチドを有するＤＮＡ構築物を示し、ＢｏＮＴ ＬＣとＢｏＮＴ ＨＣは、ＲＳＰコード配列によって分けられかつこの配列と隣接し、必要に応じて、ＡＦＰ及びＤＴを含むが必ずしもこれらに限定されないタグコード配列（タグ）を有し、かつヌクレオチドスペーサー及び／またはリンカーも含む。必要に応じて、ＬＣとＨＣコード配列との間のＲＳＰを、ヌクレオチドスペーサー配列（ＳＳ）によってさらに分ける。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質をコードするＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１６）を示す。図３３Ａ〜Ｎの配列は、図３２に一般的に表すＤＮＡ構築物の具体例である。特に、図３３Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣドメイン及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣドメインを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号１８）を示す。図３４Ａ〜Ｎの配列は、図３２に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３４Ａ〜Ｎの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態の模式図である。特に、図３５は、上流にＲＳＰ及びＡＤＤを有する任意の血清型のＢｏＮＴ ＬＣを示す。ＲＳＰは、切断後に、正に荷電したアミノ酸（‐Ｘ＋‐）がＡＤＤ領域のすぐ上流（またはＮ末端）に位置するように選択する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２０）を示す。図３６Ａ〜Ｆの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３６Ａ〜Ｆの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２０）を示す。図３６Ａ〜Ｆの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３６Ａ〜Ｆの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２０）を示す。図３６Ａ〜Ｆの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３６Ａ〜Ｆの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２０）を示す。図３６Ａ〜Ｆの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３６Ａ〜Ｆの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２０）を示す。図３６Ａ〜Ｆの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３６Ａ〜Ｆの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号１９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２０）を示す。図３６Ａ〜Ｆの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３６Ａ〜Ｆの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２２）を示す。図３７Ａ〜Ｅの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３７Ａ〜Ｅの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２２）を示す。図３７Ａ〜Ｅの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３７Ａ〜Ｅの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２２）を示す。図３７Ａ〜Ｅの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３７Ａ〜Ｅの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２２）を示す。図３７Ａ〜Ｅの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３７Ａ〜Ｅの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２２）を示す。図３７Ａ〜Ｅの配列は、図３５に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３７Ａ〜Ｅの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣをコードする。 図３８Ａ〜Ｃは、本発明の融合タンパク質の分子構築に用いるＤＮＡ構築物の実施形態の模式図である。特に、図３８Ａ〜Ｃは、図３５に記載の構築物の、図３２に記載の構築物へのクローニングを示す。図３８Ａ〜Ｃは、ドナー（図３８Ｂ）とレシピエント（図３８Ａ）構築物との間の対応するユニークな制限酵素部位（「ＵＲＳ」、破線は対応を示す）を示しており、これにより、ドナーＤＮＡをレシピエントＤＮＡに挿入することができる。得られる構築物（図３８Ｃ）は、図３５に記載の構築物のエレメントをコードしており、このエレメントが図３２に記載の構築物のタグ、ＲＳＰ、及びＢｏＮＴ ＬＣエレメントを置換している。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２４）を示す。図３９Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図３９Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２６）を示す。図４０Ａ〜Ｏの配列は、図３８Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４０Ａ〜Ｏの構築物は、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ‐０ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築に用いるＤＮＡ構築物の一実施形態の模式図である。特に、図４１は、ＶＨＨ領域、ならびに上流のＲＳＰ及び任意のタグ、リンカー、またはスペーサーを示す。ＶＨＨ＊として示すＶＨＨ領域は、必要に応じてスペーサーまたはリンカーを有する１つ以上のＶＨＨであってもよい。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２８）を示す。図４２Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４２Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＢｏＮＴ／Ａ ＬＣに対するＢ８ ＶＨＨをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号２８）を示す。図４２Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４２Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＢｏＮＴ／Ａ ＬＣに対するＢ８ ＶＨＨをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３０）を示す。図４３Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４３Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＪＬＪＧ３ ＶＨＨ及びＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＢ１０ ＶＨＨをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号２９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３０）を示す。図４３Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４３Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＪＬＪＧ３ ＶＨＨ及びＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＢ１０ ＶＨＨをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３２）を示す。図４４Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４４Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＪＬＪＧ３ ＶＨＨ及びＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＪＮＥ‐Ｂ１０ ＶＨＨをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３２）を示す。図４４Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４４Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＪＬＪＧ３ ＶＨＨ及びＢｏＮＴ／Ｂ ＬＣに対するＪＮＥ‐Ｂ１０ ＶＨＨをコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３４）を示す。図４５Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４５Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＥＰＥＡαシヌクレインＶＨＨ１及びＥＰＥＡαシヌクレインＶＨＨ２をコードしている。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３４）を示す。図４５Ａ〜Ｂの配列は、図４１に示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例である。特に、図４５Ａ〜Ｂの構築物は、ＶＨＨ領域にＥＰＥＡαシヌクレインＶＨＨ１及びＥＰＥＡαシヌクレインＶＨＨ２をコードしている。 図４６Ａ〜Ｃは、本発明の融合タンパク質の分子構築に用いるＤＮＡ構築物の実施形態の模式図である。特に、図４６Ａ〜Ｃは、図４１に記載の構築物の、図３８Ｃに記載の構築物へのクローニングを示す。図４６Ａ〜Ｃは、ドナー（図４６Ｂ）とレシピエント（図４６Ａ）構築物との間の対応するユニークな制限酵素部位（「ＵＲＳ」、破線は対応を示す）を示しており、これにより、ドナーＤＮＡをレシピエントＤＮＡに挿入することができる。得られる構築物（図４６Ｃ）は、図４１に記載の構築物のエレメントを保有しており、このエレメントが図３８Ｃに記載の構築物のタグ、ＲＳＰ、及びＡＤＤエレメントを置換している。 図４７Ａ〜Ｃは、本発明の融合タンパク質の分子構築に用いるＤＮＡ構築物の実施形態の模式図である。特に、図４７Ａ〜Ｃは、図４１に記載の構築物の、図３８Ｃに記載の構築物へのクローニングを示す。特に、図４７Ａ〜Ｃは、ドナー（図４７Ｂ）とレシピエント（図４７Ａ）構築物との間の対応するユニークな制限酵素部位（ＵＲＳ、破線は対応を示す）を示しており、これにより、ドナーＤＮＡをレシピエントＤＮＡに挿入することができる。得られる構築物（図４７Ｃ）は、図４１に記載の構築物、ならびに図３８Ｃに記載の構築物のエレメントを保有する。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３６）を示す。図４８Ａ〜Ｏの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号３８）を示す。図４９Ａ〜Ｐの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４２Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号３９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４０）を示す。図５０Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４１）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４２）を示す。図５１Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４３Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のヌクレオチド配列（配列番号４３）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４４）を示す。図５２Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造を有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４５）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４６）を示す。図５３Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４４Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４７）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号４８）を示す。図５４Ａ〜Ｐの配列は、図４６Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＺｒａＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。 本発明の融合タンパク質の分子構築のためのＤＮＡ構築物の一実施形態のＤＮＡ配列（配列番号４９）及びそのＤＮＡ構築物の対応するアミノ酸配列（配列番号５０）を示す。図５５Ａ〜Ｑの配列は、図４７Ｃに示す構築物の一般的な構造をコードする／有する構築物の具体例であって、図４５Ａ〜Ｂに記載の構築物をドナー配列とし、及び図４０Ａ〜Ｏに記載の構築物をレシピエント配列として、ＵＲＳ ＳｇｒＡＩ及びＢａｍＨＩを使用して得られる配列である。
発明の詳細な説明
本発明の一態様は、クロストリジウム神経毒の軽鎖領域及びクロストリジウム神経毒の重鎖領域を含む融合タンパク質に関する。軽鎖及び重鎖領域は、ジスルフィド結合によって連結している。一本鎖抗体は軽鎖領域の上流に位置する。一本鎖抗体は、抗原結合活性を有する。
クロストリジウム神経毒は、シナプス小胞エキソサイトーシスのためのニューロン機構を標的とする構造的に類似性の高いタンパク質ファミリーである。クロストリジウム属の嫌気性細菌が産生するボツリヌス神経毒及び破傷風神経毒は、静脈または筋肉経路で投与する場合に重量ベースで０．５〜２．５ｎｇ／ｋｇの範囲のＬＤ５０を有することが知られている最も有毒な物質である（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｏｃｃｕｐａｔｉｏｎａｌ Ｓａｆｅｔｙ ａｎｄ Ｈｅａｌｔｈｙ，“Ｒｅｇｉｓｔｒｙ ｏｆ Ｔｏｘｉｃ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｕｂｓｔａｎｃｅｓ （Ｒ‐ＴＥＣＳ），”Ｃｉｎｃｉｎｎａｔｉ， Ｏｈｉｏ：Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｏｃｃｕｐａｔｉｏｎａｌ Ｓａｆｅｔｙ ａｎｄ Ｈｅａｌｔｈ（１９９６）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
野生型ボツリヌス菌神経毒の一般的な構造的特徴は、Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許第７，７８５，６０６号に記載されており、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する。これらの構造的特徴は、ＢｏＮＴ／Ａを例として説明しているが、すべてのＢｏＮＴ血清型にわたって一般化される。
以下に考察するように、ボツリヌス神経毒は、一本鎖プロペプチドとして合成され、その後、特異的タンパク質分解切断事象により活性化し、ジスルフィド結合で連結した二量体を生成する。成熟ＢｏＮＴ／Ａは、Ｍｒ約５０，０００の３つの機能的ドメインからなり、このうち、毒性の原因となる触媒機能は軽鎖（残基１〜４３７）に限定されており、移行活性には重鎖のＮ末端側半分（残基４４８〜８７２）が関与、細胞結合にはＣ末端側半分（残基８７３〜１，２９５）が関与している（Ｊｏｈｎｓｏｎ，“Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ Ｔｏｘｉｎｓ ａｓ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ａｇｅｎｔｓ：Ｂｅｎｅｆｉｔｓ ｏｆ Ｎａｔｕｒｅ’ｓ Ｍｏｓｔ Ｔｏｘｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，”Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．５３：５５１‐５７５（１９９９）；Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｑ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．２８：４２３‐４７２（１９９５）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
以下に述べるように、ＢｏＮＴプロペプチドをコードするヌクレオチド配列に１つ以上の改変を導入することにより、ＢｏＮＴ血清型に対する組換え神経毒の、天然及び生理学的に活性な状態での最適な発現及び回収を達成する。これらの突然変異は、天然毒素の構造及び生物学的活性を保持する一方で組換えボツリヌス神経毒の収率を最大化するように、ならびに神経毒を無毒化、すなわち野生型ＢｏＮＴに比べて毒性が数桁低減するように設計されており、場合によっては基質切断活性が失われている。本発明の融合タンパク質は、少なくとも約０．１ｍｇ／Ｌ、少なくとも約０．５ｍｇ／Ｌ、少なくとも約１ｍｇ／Ｌ、少なくとも約５ｍｇ／Ｌ、少なくとも約１０ｍｇ／Ｌ、約１０〜２０ｍｇ／Ｌ、約２０〜３０ｍｇ／Ｌ、または少なくとも約３０ｍｇ／Ｌの収量もしくは濃度で単離することができる。以下に詳細に記載するように、本明細書に記載するプロペプチド融合体及びその発現方法の特定の利点の１つは、２段階の非変性及び高度に選択的なアフィニティー精製を用いて、融合タンパク質を均質に精製することができることである。
本発明の単離した融合タンパク質は、一実施形態によれば、生理学的に活性である。この生理学的活性には、野生型クロストリジウム神経毒の特性である、毒素免疫原性、経細胞輸送及び細胞内輸送、ならびに細胞認識のいずれか１つ以上が含まれるが、必ずしもこれらに限定するものではない。
クロストリジウム毒素の細胞結合及び内部移行のメカニズムは、依然としてほとんど理解されていない。明白に同定された単一の受容体はなく、結合定数は特徴付けられていない。全てのボツリヌス神経毒の重鎖のＣ末端部分は、ガングリオシド（シアル酸含有糖脂質）に結合し、特にＧ１ｂシリーズのガングリオシドに優先的に結合する（Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｑ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．２８：４２３‐４７２（１９９５）；Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ，“Ｈｏｗ Ｄｏ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎｓ Ｂｉｎｄ ｔｏ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ？”ＴＩＢＳ １１：３１４‐３１７（１９８６）；及びＶａｎ Ｈｅｙｎｉｎｇｅｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｆｉｘａｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ Ｔｏｘｉｎ ｂｙ Ｇａｎｇｌｉｏｓｉｄｅ，”Ｊ．Ｇｅｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．２４：１０７‐１１９（１９６１）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。ガングリオシド結合に関与する配列を、構造的に類似するＴｅＮＴ分子について同定した。前記配列はその重鎖のＣ末端側アミノ酸３４残基以内に位置する。この領域内では、ＢｏＮＴ／Ａ、／Ｂ、／Ｃ、／Ｅ、及び／Ｆは、ＴｅＮＴと高度の相同性を共有している（Ｓｈａｐｉｒｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｇａｎｇｌｉｏｓｉｄｅ Ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ Ｄｏｍａｉｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ Ｔｏｘｉｎ Ｕｓｉｎｇ ａ Ｎｏｖｅｌ Ｇａｎｇｌｉｏｓｉｄｅ Ｐｈｏｔｏａｆｆｉｎｉｔｙ Ｌｉｇａｎｄ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７２：３０３８０‐３０３８６（１９９７）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。複数の種類の証拠が、ボツリヌス神経毒の神経細胞膜への結合に関与する少なくとも１つの追加成分の存在を示唆している（Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｑ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．２８：４２３‐４７２（１９９５）；Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ，“Ｈｏｗ Ｄｏ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎｓ Ｂｉｎｄ ｔｏ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ？”ＴＩＢＳ １１：３１４‐３１７（１９８６）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。２つの報告（Ｎｉｓｈｉｋｉ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｈｉｇｈ‐Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｂｉｎｄｉｎｇ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｙｐｅ Ｂ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ ｔｏ Ｓｙｎａｐｔｏｔａｇｍｉｎ ＩＩ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｗｉｔｈ Ｇａｎｇｌｉｏｓｉｄｅｓ ＧＴ１ｂ／ＧＤ１ａ，”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．３７８：２５３‐２５７（１９９６）；Ｄｏｎｇ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｙｎａｐｔｏｔａｇｍｉｎｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ Ｍｅｄｉａｔｅ Ｅｎｔｒｙ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｂ ｉｎｔｏ Ｃｅｌｌｓ，”Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１６２：１２９３‐１３０３（２００３）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）において、シナプトタグミンは可能性のある補助的なＢｏＮＴ／Ｂ受容体候補として同定され、及びシナプトタグミンＩ及びＩＩは、ＢｏＮＴ／Ｇに対する神経細胞性受容体として位置づけられた（Ｒｕｍｍｅｌ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｙｎａｐｔｏｔａｇｍｉｎｓ Ｉ ａｎｄ ＩＩ Ａｃｔ ａｓ Ｎｅｒｖｅ Ｃｅｌｌ Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｇ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７９：３０８６５‐３０８７０（２００４）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。しかしながら、ボツリヌス神経毒の推定上の受容体結合ドメインにおける構造的類似性にもかかわらず、他の毒素サブタイプは、シナプトタグミンまたはシナプトタグミン関連分子に対して親和性を示さない。脂質ラフト（Ｈｅｒｒｅｒｏｓ ｅｔ ａｌ．，“Ｌｉｐｉｄ Ｒａｆｔｓ Ａｃｔ ａｓ Ｓｐｅｃｉａｌｉｚｅｄ Ｄｏｍａｉｎｓ ｆｏｒ Ｔｅｔａｎｕｓ Ｔｏｘｉｎ Ｂｉｎｄｉｎｇ ａｎｄ Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ Ｉｎｔｏ Ｎｅｕｒｏｎｓ，”Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｃｅｌｌ １２：２９４７‐２９６０（２００１）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）は、ＴｅＮＴの結合及び神経細胞への内部移行に関与する特殊化したドメインとして位置づけられるが、これらのドメインは複数の細胞型に広く分布しているため、神経細胞に対する毒素の高い特異性を簡単に説明することはできない。
ボツリヌス神経毒は、エネルギー依存的なメカニズムによってシナプス前膜を介して内部移行し（Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｑ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．２８：４２３‐４７２（１９９５）；Ｍａｔｔｅｏｌｉ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｙｎａｐｔｉｃ Ｖｅｓｉｃｌｅ Ｅｎｄｏｃｙｔｏｓｉｓ Ｍｅｄｉａｔｅｓ ｔｈｅ Ｅｎｔｒｙ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ ｉｎｔｏ Ｈｉｐｐｏｃａｍｐａｌ Ｎｅｕｒｏｎｓ，”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９３：１３３１０‐１３３１５（１９９６）；及びＭｕｋｈｅｒｊｅｅ ｅｔ ａｌ．，“Ｅｎｄｏｃｙｔｏｓｉｓ，”Ｐｈｙｓｉｏｌ．Ｒｅｖ．７７：７５９‐８０３（１９９７）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）、そして急速に小胞内に出現し、小胞内でそれらは、分解から少なくとも部分的に保護される（Ｄｏｌｌｙ ｅｔ ａｌ．，“Ａｃｃｅｐｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｒｅｓｉｄｅ ｏｎ Ｍｏｔｏｒ Ｎｅｒｖｅ Ｔｅｒｍｉｎａｌｓ ａｎｄ Ｍｅｄｉａｔｅ Ｉｔｓ Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ，”Ｎａｔｕｒｅ ３０７：４５７‐４６０（１９８４）；Ｃｒｉｔｃｈｌｅｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｆａｔｅ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ Ｔｏｘｉｎ Ｂｏｕｎｄ ｔｏ ｔｈｅ Ｓｕｒｆａｃｅ ｏｆ Ｐｒｉｍａｒｙ Ｎｅｕｒｏｎｓ ｉｎ Ｃｕｌｔｕｒｅ：Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ Ｒａｐｉｄ Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ，”Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１００：１４９９‐１５０７（１９８５）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。ＢｏＮＴの軽鎖と重鎖の複合体は、シャペロン様の様式でエンドサイトーシス小胞膜と相互作用し、凝集を防ぎ、滑面小胞体、ミトコンドリア、及び葉緑体のタンパク質透過／輸送チャネルと同様の様式で軽鎖の移行を促進する（Ｋｏｒｉａｚｏｖａ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｔｈｒｏｕｇｈ ｔｈｅ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ Ｃｈａｎｎｅｌ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．１０：１３‐１８（２００３）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。エンドソームの酸性化は、ポア形成を誘導すると考えられており、これにより、鎖間ジスルフィド結合の還元時に細胞質ゾルへの軽鎖の移行が可能になる（Ｈｏｃｈ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｈａｎｎｅｌｓ Ｆｏｒｍｅｄ ｂｙ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ， Ｔｅｔａｎｕｓ， ａｎｄ Ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａ Ｔｏｘｉｎｓ ｉｎ Ｐｌａｎａｒ Ｌｉｐｉｄ Ｂｉｌａｙｅｒｓ：Ｒｅｌｅｖａｎｃｅ ｔｏ Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ Ａｃｒｏｓｓ Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ，”Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：１６９２‐１６９６（１９８５）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。細胞質ゾル内で、軽鎖は、シナプス小胞エキソサイトーシス装置のタンパク質成分に特異的な亜鉛‐エンドペプチダーゼ活性を示す。ＴｅＮＴ及びＢｏＮＴ／Ｂ、／Ｄ、／Ｆ、及び／Ｇは、ＶＡＭＰ／シナプトブレビンを認識する。シナプス小胞膜のこの一体型タンパク質は、各神経毒ごとに異なる単一のペプチド結合部において切断される。ＢｏＮＴ／Ａ、／Ｃ、及び／Ｅは、シナプス前膜のタンパク質であるＳＮＡＰ‐２５をＣ末端内の２つの異なる部位で認識及び切断する。ＢｏＮＴ／Ｃはまた、神経細胞膜の別のタンパク質であるシンタキシンを切断する（Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ａｎｄ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｑ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．２８：４２３‐４７２（１９９５）；Ｓｕｔｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｒｙｓｔａｌ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ ａ ＳＮＡＲＥ Ｃｏｍｐｌｅｘ Ｉｎｖｏｌｖｅｄ ｉｎ Ｓｙｎａｐｔｉｃ Ｅｘｏｃｙｔｏｓｉｓ ａｔ ２．４Å Ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎ，”Ｎａｔｕｒｅ ３９５：３４７‐３５３（１９９８）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。シナプス放出機構の任意の成分の切断は、神経伝達物質放出の阻害をもたらし、最終的に神経筋麻痺を導く。
ボツリヌス神経毒の毒性は、多段階のメカニズムによってもたらされる。ＢｏＮＴは上皮性関門を通過することができ、循環器中で安定である。循環器を出たＢｏＮＴは、主に神経筋接合部のシナプス前膜を標的とし、そこから内部移行し、末梢神経系に対してその毒性効果を直接発揮する（Ｄｏｌｌｙ ｅｔ ａｌ．，“Ａｃｃｅｐｔｏｒｓ ｆｏｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｒｅｓｉｄｅ ｏｎ Ｍｏｔｏｒ Ｎｅｒｖｅ Ｔｅｒｍｉｎａｌｓ ａｎｄ Ｍｅｄｉａｔｅ Ｉｔｓ Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ，”Ｎａｔｕｒｅ ３０７：４５７‐４６０（１９８４）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。神経筋接合部の毒性には、ニューロン結合；シナプス小胞リサイクリングに関与するものと同様のエンドサイトーシス小胞への内部移行；毒素のタンパク質分解活性型ＬＣが神経細胞の細胞質に浸透することを可能にする酸性区画内での活性化；及びシナプス小胞エキソサイトーシスのための神経細胞機構における基質の標的認識及び触媒的切断が関係している。
一実施形態によれば、本発明の融合タンパク質は、クロストリジウム神経毒の生理学的輸送活性を有するが、無毒である。一実施形態では、融合タンパク質は無毒であってもよく、依然として基質切断活性を保持している。基質切断活性を保持していることにより、不活性な薬物担体（例えば、一本鎖抗体の担体）として機能する融合タンパク質の能力を制限してしまう可能性があるが、以下の実施例において考察するように、一本鎖抗体を細胞へ適切に送達するためのマーカーを設けるという追加の利点が得られる。別の実施形態では、融合タンパク質は無毒であり、ＳＮＡＰ‐２５切断活性が残っておらず、したがって、より不活性な薬物担体として機能する。本明細書中に記載する融合タンパク質のこれらの異なる特性は、以下により詳細に議論するように、本発明のプロペプチド融合体への特定のアミノ酸置換及び他の修飾の導入によって達成することができる。
「無毒」とは、融合タンパク質が野生型クロストリジウム神経毒に比べて少なくとも約１０００倍低下した毒性を有することを意味する。特定の例示的な実施形態では、本発明の融合タンパク質のＬＤ５０は、野生型クロストリジウム神経毒のＬＤ５０より少なくとも１，０００倍；２，０００倍；５，０００倍；７，０００倍；９，０００倍；１０，０００倍；２０，０００倍；３０，０００倍；４０，０００倍；５０，０００倍；６０，０００倍；７０，０００倍；８０，０００倍；９０，０００倍；１００，０００倍；または５００，０００倍以上高い。特定の投与様式（後述）はまた、融合タンパク質のＬＤ５０に影響を及ぼし得る。有意な量のそれらのＬＣを神経細胞の細胞質に送達する能力を保持する組換えＢｏＮＴ誘導体は、アミノ酸置換によってその基質切断能力を排除したとしても、ある程度の毒性を保持すると考え得る。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１の低毒性は、それがＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０（Ｅ２２４Ａ＞Ａ及びＹ３６６＞Ａ変異を含むＢｏＮＴ／Ａタンパク質誘導体）よりも薬物送達用の分子媒体として有用であり得ることを示唆している。ＢｏＮＴ／Ｃは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１またはａｄ‐０よりも有意に毒性が低い。
ボツリヌス神経毒毒性の原因となるエンドペプチダーゼ活性は、メタロプロテアーゼの特徴である軽鎖中のＨＥｘｘＨｘｘＨ（配列番号５１）モチーフの存在に関連すると考えられている。ＢｏＮＴ／Ａ軽鎖に突然変異を誘発し、続いて対応するｍＲＮＡをジャンボアメフラシ（Ａｐｌｙｓｉａ ｃａｌｉｆｏｒｎｉｃａ）シナプス前コリン作動性ニューロンへマイクロインジェクションすることにより、毒性の原因となる最小必須ドメインを同定した（Ｋｕｒａｚｏｎｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｉｎｉｍａｌ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｄｏｍａｉｎｓ Ｓｐｅｃｉｆｙｉｎｇ Ｔｏｘｉｃｉｔｙ ｏｆ ｔｈｅ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎｓ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ Ｔｏｘｉｎ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ，”Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６７：１４７２１‐１４７２９（１９９２）、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。ＢｏＮＴ／Ａ軽鎖の部位特異的突然変異誘発により、Ｚｎ２＋配位に関与するアミノ酸残基、及びＳＮＡＰ‐２５を切断する活性型メタロエンドペプチダーゼコア構造を特定した（Ｒｉｇｏｎｉ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｉｔｅ‐ｄｉｒｅｃｔｅｄ Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ Ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｓ Ａｃｔｉｖｅ‐Ｓｉｔｅ Ｒｅｓｉｄｕｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ，”Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．２８８：１２３１‐１２３７（２００１）、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。ボツリヌス神経毒及びその誘導体の三次元構造により、突然変異誘発の結果を確認し、タンパク質ドメインの空間的構成を詳細に記述した。ＢｏＮＴ／Ａホロトキシンについては、結晶構造が３．３Åの分解能で得られた（Ｌａｃｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｒｙｓｔａｌ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ ａｎｄ Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ Ｔｏｘｉｃｉｔｙ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．５：８９８‐９０２（１９９８）、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。ＢｏＮＴ／Ｂホロトキシン結晶構造は、１．８及び２．６Åの分解能で測定した（Ｓｗａｍｉｎａｔｈａｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｃａｔａｌｙｔｉｃ ａｎｄ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｓｉｔｅｓ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｂ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．７：６９３‐６９９（２０００）、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。近年、ＢｏＮＴ／Ｅ触媒ドメインの結晶構造が２．１Åの分解能で決定された（Ａｇａｒｗａｌ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ｅ Ｃａｔａｌｙｔｉｃ Ｄｏｍａｉｎ ａｎｄ Ｉｔｓ Ｍｕｔａｎｔ Ｇｌｕ２１２＞Ｇｌｎ Ｒｅｖｅａｌｓ ｔｈｅ Ｐｉｖｏｔａｌ Ｒｏｌｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｇｌｕ２１２ Ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ ｉｎ ｔｈｅ Ｃａｔａｌｙｔｉｃ Ｐａｔｈｗａｙ，”Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ４３：６６３７‐６６４４（２００４）、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。後の研究は、興味深い複数の構造的詳細を提供し、これはＢｏＮＴ／Ｅ ＬＣ Ｅ２１２＞Ｑ突然変異体におけるメタロエンドプロテオーム活性の完全な消失を説明するのに役立つ。アミノ酸配列とクロストリジウム毒素の生物学的活性との間の関係におけるこの詳細な情報の有効性を利用して、治療を目的に特別に改変した特性を有する改変毒素遺伝子を設計することができる。
本明細書に記載の融合タンパク質の一実施形態において、クロストリジウム神経毒は、ボツリヌス菌神経毒の血清型Ａ（ＢｏＮＴ／Ａ）、血清型Ｂ（ＢｏＮＴ／Ｂ）、血清型Ｃ（ＢｏＮＴ／Ｃ）、血清型Ｄ（ＢｏＮＴ／Ｄ）、血清型Ｅ（ＢｏＮＴ／Ｅ）、血清型Ｆ（ＢｏＮＴ／Ｆ）、血清型Ｇ（ＢｏＮＴ／Ｇ）、または血清型Ｈ（ＢｏＮＴ／Ｈ）である。
本明細書に記載の融合タンパク質において、軽鎖領域のクロストリジウム神経毒は、重鎖領域のクロストリジウム神経毒と同一であっても異なっていてもよい。例えば、融合タンパク質の一実施形態では、軽鎖領域のクロストリジウム神経毒はＢｏＮＴ／Ａの軽鎖領域であり、重鎖領域のクロストリジウム神経毒はＢｏＮＴ／Ａの重鎖領域である。別の非限定的な例において、軽鎖領域はＢｏＮＴ／Ａ由来であり、重鎖領域はＢｏＮＴ／Ｅ由来である。
一実施形態によれば、クロストリジウム神経毒の軽鎖及び重鎖領域は、その野生型の長さから短縮化されていない。言い換えれば、軽鎖領域及び重鎖領域は、その全長が、野生型軽鎖領域及び重鎖領域と同じであるか、またはほとんど同様である。
一実施形態では、融合タンパク質は、軽鎖領域に以下のアミノ酸置換を有する：Ｅ２２４＞Ａ及びＹ３６６＞Ａ、ならびに（ｉ）Ｑ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、及びＬ３２２＞Ｅまたは（ｉｉ）Ｑ１６３＞ Ｅ、Ｅ２６３＞Ｌ、及びＬ３２３＞Ｉのいずれか。これらの特定の突然変異は、ＢｏＮＴ／Ａ軽鎖に関するものである。本発明に従って、対応する突然変異をＢｏＮＴの他の血清型に対して設けてもよい。
一実施形態では、融合タンパク質は、軽鎖領域に以下のアミノ酸置換を有する：Ｅ４４６＞Ａ、Ｈ４４９＞Ｇ、Ｙ５９１＞Ａ。これらの特定の突然変異は、ＢｏＮＴ／Ｃ軽鎖に関するものである。本発明に従って、対応する突然変異をＢｏＮＴの他の血清型に対して作成してもよい。
本明細書中で使用する場合、用語「一本鎖抗体」は、単一ポリペプチド上の免疫グロブリン一本鎖可変ドメインを意味し、追加の可変免疫グロブリンドメインと対になることなく、抗原のエピトープに特異的に結合することができる。免疫グロブリン一本鎖可変ドメインの一例として、ラクダ科動物由来の「ＶＨＨドメイン」（または単に「ＶＨＨ」）が挙げられる。免疫グロブリン単一可変ドメインの別の例は、免疫グロブリン単一可変ドメインＶＨ及びＶＬ（ＶＨドメイン及びＶＬドメイン、人工構築物中に一緒に融合した場合）などの「ドメイン抗体」を含む。
本明細書中で使用する場合、用語「一本鎖抗体」は、追加の可変免疫グロブリンドメインと対形成することなく、抗原のエピトープに特異的に結合することができる免疫グロブリン単一可変ドメインを意味する。免疫グロブリン単一可変ドメインの一例は、ラクダ科動物由来の「ＶＨＨドメイン」（または単に「ＶＨＨ」）を含む。免疫グロブリン単一可変ドメインの別の例として、免疫グロブリン単一可変ドメインＶＨ及びＶＬ（ＶＨドメイン及びＶＬドメイン）などの「ドメイン抗体」が挙げられる。
一本鎖抗体またはその断片は、複数鎖抗体から生成し得るか（Ｓｈｅｅｔｓ ｅｔ ａｌ．，“Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｌａｒｇｅ Ｎｏｎｉｍｍｕｎｅ Ｐｈａｇｅ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｌｉｂｒａｒｙ： Ｔｈｅ Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｈｉｇｈ‐Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｈｕｍａｎ Ｓｉｎｇｌｅ‐Ｃｈａｉｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｔｏ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａｎｔｉｇｅｎｓ，”ＰＮＡＳ ＵＳＡ ９５（１１）：６１５７‐６１６２（１９９８）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）、またはサメやラクダ科動物のような一本鎖抗体を天然に産生する種に由来し得る（Ｄｕｍｏｕｌｉｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｉｎｇｌｅ‐Ｄｏｍａｉｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｗｉｔｈ Ｈｉｇｈ Ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎａｌ Ｓｔａｂｉｌｉｔｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉｅｎｃｅ：Ａ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｏｃｉｅｔｙ １１（３）：５００‐５１５（２００２）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。上記のように、一本鎖抗体の１つのクラスをＶＨＨ抗体と呼び、以下に、より詳細に記載する。
ＶＨＨ、ＶＨＨドメイン、ＶＨＨ抗体フラグメント、及びＶＨＨ抗体としても知られる「ＶＨＨドメイン」は、もともと、「重鎖抗体」の（すなわち、「軽鎖欠損抗体」の）抗原結合免疫グロブリン（可変）ドメインとして記載されていた（Ｈａｍｅｒｓ‐Ｃａｓｔｅｒｍａｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｎａｔｕｒａｌｌｙ Ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｄｅｖｏｉｄ ｏｆ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎｓ，”Ｎａｔｕｒｅ ３６３：４４６‐４４８（１９９３）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。用語「ＶＨＨドメイン」は、これらの可変ドメインを、従来の４鎖抗体に存在する重鎖可変ドメイン（一般的に「ＶＨドメイン」または「ＶＨドメイン」と呼ばれる）、及び従来の４鎖抗体に存在する軽鎖可変ドメイン（一般的に「ＶＬドメイン」または「ＶＬドメイン」と呼ばれる）と区別するために選ばれた。ＶＨＨドメインは、追加的な抗原結合ドメインを必要とせずにエピトープに特異的に結合することができる（ＶＨドメインとＶＬドメインが一体となってエピトープを認識する従来の４鎖抗体のＶＨまたはＶＬドメインとは対照的に）。ＶＨＨドメインは、単一の免疫グロブリンドメインによって形成される小型、頑健、及び効率的な抗原認識ユニットである。
ＶＨＨドメインは：ＦＲ１‐ＣＤＲ１‐ＦＲ２‐ＣＤＲ２‐ＦＲ３‐ＣＤＲ３‐ＦＲ４の構造を有し、上記のように、第二の免疫グロブリン可変ドメインの存在を必要とせずにエピトープに特異的に結合する。ＶＨＨドメインのアミノ酸残基は、Ｋａｂａｔ ｅｔ ａｌ．，Ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｏｆ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｔｅｒｅｓｔ，Ｕ．Ｓ． Ｐｕｂｌｉｃ Ｈｅａｌｔｈ Ｓｅｒｖｉｃｅｓ，ＮＩＨ Ｂｅｔｈｅｓｄａ，Ｍｄ．，Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ Ｎｏ．９１、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）によって与えられるＶＨドメインの一般的な番号付けに基づいて番号が付与されており、例えば、その全体を参照として本明細書に援用するＲｉｅｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｉｎｇｌｅ Ｄｏｍａｉｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ Ｃａｍｅｌ ＶＨ ａｎｄ Ｃａｍｅｌｉｓｅｄ Ｈｕｍａｎ ＶＨ Ｄｏｍａｉｎｓ，”Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２３１：２５‐３８（１９９９）の図２に示すラクダ科動物由来のＶＨＨドメインに対し、この番号付けが適用される。この番号付けによれば、ＦＲ１は１〜３０位のアミノ酸残基を含み、ＣＤＲ１は３１〜３５位のアミノ酸残基を含み、ＦＲ２は３６〜４９位のアミノ酸を含み、ＣＤＲ２は５０〜６５位のアミノ酸残基を含み、ＦＲ３は６６〜９４位のアミノ酸残基を含み、ＣＤＲ３は９５〜１０２位のアミノ酸残基を含み、ＦＲ４は１０３〜１１３位のアミノ酸残基を含む。しかしながら、当該技術分野で周知のように、ＶＨドメイン及びＶＨＨドメインについて、ＣＤＲの各々におけるアミノ酸残基の総数は様々に異なる場合があり、Ｋａｂａｔ氏の番号付けによって示されるアミノ酸残基の総数に対応しない場合がある（すなわち、Ｋａｂａｔ氏の番号付けによる１つ以上の位置が実際の配列では存在しないか、またはＫａｂａｔ氏の番号付けによって許容される数より多くのアミノ酸残基を実際の配列が含む場合がある）。これは、一般的に、実際の配列中において、Ｋａｂａｔ氏の番号付けが、アミノ酸残基の実際の番号付けに対応する場合もあるが、対応していない場合もあることを意味している。ＶＨドメインのアミノ酸残基に番号付けする別の方法は、ＶＨＨドメインに対する方法と同様にして適用することも可能だが、当該分野で公知である。
ＶＨＨドメイン中のアミノ酸残基の総数は、通常、１１０〜１２０、しばしば１１２〜１１５の範囲にある。しかしながら、より短い及びより長い配列も、本明細書に記載の目的に適する場合があることに留意すべきである。
ＶＨＨドメイン及びそれを含むポリペプチドのさらなる構造的特徴及び機能的特性は、以下のように要約することができる：ＶＨＨドメイン（これは、本質的に、軽鎖可変ドメインの存在、及びそれとの相互作用を必要とせずに、抗原に機能的に結合するように「設計」されている）は、単一の、比較的小型で機能的な抗原結合構造ユニット、ドメイン、またはポリペプチドとして機能することができる。この点は、ＶＨＨドメインを、従来の４鎖抗体のＶＨ及びＶＬドメインから区別する特徴であり、従来のＶＨ及びＶＬドメインの場合は、それ自体は一般に単一抗原結合タンパク質または免疫グロブリン単一可変ドメインとして実際に作用させるのに適しておらず、何らかの形態で組み合わせて機能的抗原結合ユニットを提供する必要がある（例えば、Ｆａｂフラグメントなどの従来の抗体断片などの形態で）。
これらの独特の性質のために、ＶＨＨドメインを単独またはより大きなポリペプチドの一部として使用することは、従来のＶＨ及びＶＬドメイン、ｓｃＦｖ、または従来の抗体断片（例えば、ＦａｂまたはＦ（ａｂ′）２フラグメント）の使用に比べて多数の有意な利点を提供する：高親和性及び高選択性で抗原に結合するために単一のドメインのみを必要とし、したがって２つの別個のドメインを存在させる必要がなく、これら２つのドメインを適切な立体配座及び立体配置で（すなわち、ｓｃＦｖの場合のように、特別に設計したリンカーの使用を通じて）存在させる必要もなく；ＶＨＨドメインは単一の遺伝子から発現し、翻訳後フォールディングまたは修飾を必要とせず；ＶＨＨドメインは、多価及び多特異性のフォーマットに容易に改変することができ；ＶＨＨドメインは高度に可溶性であり、凝集する傾向はなく；ＶＨＨドメインは、熱、ｐＨ、プロテアーゼ、及び他の変性剤または条件に対して安定であり、したがって冷凍装置を使用せずに、調製、保存または輸送して、コスト、時間及び環境の節約をもたらし得るものであって；ならびにＶＨＨドメインは、製造用に要求されるようなスケールであっても、調製が容易で比較的安価である。例えば、ＶＨＨドメインは、微生物発酵を用いて産生することができ、例えば、従来の抗体断片と同様に哺乳類発現系の使用を必要とせず；ＶＨＨドメインは、従来の４鎖抗体及びその抗原結合断片に比べて比較的小さく（およそ１５ｋＤａ、すなわち従来のＩｇＧに比べて１０分の１である）、したがって、そのような従来の４鎖抗体及びその抗原結合断片よりも、組織への高い浸透を示し、より高い用量で投与でき；ＶＨＨドメインは、いわゆるキャビティ結合特性を示す（とりわけ、従来のＶＨドメインに比べてそのＣＤＲ３ループが拡張されているため）ことができ、したがって、従来の４鎖抗体及びその抗原結合断片がアクセスできない標的及びエピトープにアクセスすることができる。
特定の抗原またはエピトープに結合するＶＨＨドメインを得る方法は、従前にＰＣＴ公開番号ＷＯ２００６／０４０１５３及びＷＯ２００６／１２２７８６に記載されており、これらの文献は参照としてその全体を本明細書に援用する。同様に前記文献に詳細に記載されているように、ラクダ科動物由来のＶＨＨドメインを、ＶＨＨ配列のアミノ酸配列中の１つ以上のアミノ酸残基を、ヒト由来の従来の４鎖抗体由来のＶＨドメイン中の対応する位置に存在する１つ以上のアミノ酸残基で置換することによって「ヒト化」することができる。ヒト化ＶＨＨドメインは、１つ以上の完全ヒトフレームワーク領域配列を含むことができ、さらにより具体的な実施形態では、ＤＰ‐２９、ＤＰ‐４７、ＤＰ‐５１、またはその一部に由来するヒトフレームワーク領域配列を、必要に応じてＪＨ５のようなＪＨ配列と組み合わせて含むことができる。
「Ｄａｂ」、「ドメイン抗体」及び「ｄＡｂ」としても知られる「ドメイン抗体」は、例えば、Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｉｎｄｉｎｇ Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ ｏｆ ａ Ｒｅｐｅｒｔｏｉｒｅ ｏｆ Ｓｉｎｇｌｅ Ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ Ｖａｒｉａｂｌｅ Ｄｏｍａｉｎｓ Ｓｅｃｒｅｔｅｄ ｆｒｏｍ Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ，”Ｎａｔｕｒｅ ３４１：５４４‐５４６（１９８９）；Ｈｏｌｔ ｅｔ ａｌ．，“Ｄｏｍａｉｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ｐｒｏｔｅｉｎｓ ｆｏｒ Ｔｈｅｒａｐｙ，”ＴＲＥＮＤＳ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ２１（１１）：４８４‐４９０（２００３）；及びＰＣＴ公開番号ＷＯ２００３／００２６０９に記載されており；これらの文献のすべては、その全体を参照として本明細書に援用する。
ドメイン抗体は、本質的に、非ラクダ哺乳類のＶＨまたはＶＬドメイン、特にヒト４鎖抗体に対応する。単一の抗原結合ドメインとして、すなわちＶＬまたはＶＨドメインとそれぞれ対合せずにエピトープを結合するために、そのような抗原結合特性に対する特異的選択を、例えばヒト単一ＶＨまたはＶＬドメイン配列のライブラリを用いて行う必要がある。ドメイン抗体は、ＶＨＨのように、およそ１３ｋＤａ〜およそ１６ｋＤａの分子量を有し、完全にヒト配列に由来する場合、ヒトにおける治療用途などのためにヒト化する必要がない。ＶＨＨドメインの場合と同様に、それらは原核生物の発現系においてもよく発現し、全体的な製造コストを有意に低減する。
ドメイン抗体及びＶＨＨドメインは、１つ以上のＣＤＲのアミノ酸配列に１つ以上の改変を導入することによって親和性成熟に供することができ、その改変により、得られる免疫グロブリン単一可変ドメインの、それぞれの抗原に対する親和性が、それぞれの親分子に比べて向上する。親和性成熟免疫グロブリン単一可変ドメイン分子は、例えば、参照としてその全体を援用するＪｏｈｎｓｏｎ＆Ｈａｗｋｉｎｓ，Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ｕｓｉｎｇ Ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ，Ｏｘｆｏｒｄ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ １９９６によって記載されるように、当該技術分野で公知の方法によって調製することができる。
二機能性一本鎖抗体構築物を設計する方法も開発されている（Ｙａｎｇ ｅｔ ａｌ．，“Ａ Ｎｏｖｅｌ Ｍｕｌｔｉｖａｌｅｎｔ， Ｓｉｎｇｌｅ‐Ｄｏｍａｉｎ Ａｎｔｉｂｏｄｙ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ ＴｃｄＡ ａｎｄ ＴｃｄＢ Ｐｒｅｖｅｎｔｓ Ｆｕｌｍｉｎａｎｔ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ Ｄｉｆｆｉｃｉｌｅ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ｉｎ Ｍｉｃｅ，”Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．２１０（６）：９６４‐９７２（２０１４）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。本明細書に記載する一本鎖抗体の他のすべての例と同様に、これらの二価一本鎖抗体はまた、本明細書に記載の融合タンパク質において使用する（すなわち、組み込む）ことができる。
ファージディスプレイまたは同様のハイスループット手法によって一本鎖抗体を最適化するために開発した方法は、本明細書に記載の融合タンパク質にも適用可能である。
本明細書に記載の融合タンパク質を作製するためのクロストリジウム神経毒の軽鎖領域、クロストリジウム神経毒の重鎖領域、及び一本鎖抗体の融合は、以下に記載の組換え技術に従って行うことができる。
一実施形態では、アミノ酸スペーサー配列は、軽鎖領域と一本鎖抗体との間に位置する。
本明細書に記載する融合タンパク質は、（ｉ）軽鎖及び重鎖の安定性、（ｉｉ）融合タンパク質による神経細胞の特異的ターゲティング、及び（ｉｉｉ）神経細胞質ゾルへの融合タンパク質の送達のために必要とされる構造的立体配座を有するように、クロストリジウム神経毒の軽鎖領域及び重鎖領域を有する。本明細書中で使用する場合、軽鎖及び重鎖の安定性のために必要とされる構造的立体配座を維持するということは、以下の１つ以上を意味している：対応する野生型分子と比較してＬＣまたはＨＣの切断がない、非特異的タンパク質分解に対して二次構造における露出部位がない、ならびに精製及び保存中の変性が最小限に抑えられている。
本明細書中で使用する場合、融合タンパク質による神経細胞の特異的ターゲティングに必要な構造的立体配座を維持すること、及び神経細胞の細胞質への融合タンパク質の送達に必要な構造的立体配座を維持することは、以下の１つ以上を意味する：ジスルフィド結合型ヘテロ二量体の形態にあり、それによってＨＣＣドメインが依然として神経細胞に特異的に結合することができる；ＨＣＮドメインを有し、エンドソーム酸性化後にＬＣ輸送細孔を形成することができる；ならびにＬＣ及びその関連ＶＨＨ積荷がＨＣＮ細孔を通過することができ、そこにおいてＶＨＨが抗原結合のための活性を維持している。
本明細書に記載の融合タンパク質は、抗原結合活性を有する一本鎖抗体を含む。本明細書中で使用する場合、「抗原結合活性」は、融合タンパク質が他のタンパク質または分子よりも高い親和性で抗原に（一本鎖抗体部分で）結合することを意味する。あるいは、「抗原結合活性」は、融合タンパク質が一本鎖抗体に特異的な単一の抗原のみと結合する（一本鎖抗体部分で）ことを意味する。「抗原結合活性」はまた、融合タンパク質が、クロストリジウム神経毒の軽鎖及び重鎖によって細胞に送達された後でもその機能を保持している機能的抗体を含むことを意味し得る。一実施形態において、抗体は、それをクロストリジウム神経毒の軽鎖及び重鎖領域への積荷として細胞に送達した後、細胞から抗体を除去した後に免疫学的試験を行うことによって、機能的または活性であると判定される。
一実施形態によれば、軽鎖領域の上流に位置する一本鎖抗体を含む融合タンパク質はさらに、一本鎖抗体のＮ末端に検出タグ（ＤＴ）を含み、ここで検出タグは、神経細胞の細胞質に対する一本鎖抗体の送達を検出することができる。検出タグの適切な例を以下に述べる。別の実施形態によれば、融合タンパク質は検出タグを含まない。
別の実施形態によれば、軽鎖領域の上流に位置する一本鎖抗体を含む融合タンパク質は、一本鎖抗体のＣ末端にスペーサー配列（ＳＳ）をさらに含み、ここでスペーサー配列は以下に記載する特性を有する。
本発明の別の態様は、本明細書に記載の融合タンパク質を含む治療剤に関する。一実施形態では、融合タンパク質を、薬学的に許容可能な担体とともに提供する。
一実施形態によれば、一本鎖抗体は、野生型ボツリヌス菌神経毒の軽鎖に対して特異的である。本実施形態によれば、治療剤は、野生型ボツリヌス菌神経毒の軽鎖が神経細胞の細胞質に浸透した後に解毒活性を発揮し、それによって解毒活性を発揮するための曝露後の時間ウィンドウを拡大することができる。クロストリジウム神経毒に対するこれらのタイプの有効な解毒剤を開発するには、毒素の輸送に重要な構造的特徴の保存が必要である。実用的な観点からは、これは、天然の毒素の構造的特徴及び毒性を保持する組換え分子を最初に産生し、次いで選択的修飾によって毒性を排除し、及び治療的有用性を導入することによって最も容易に達成される。
一実施形態では、解毒剤は、野生型クロストリジウム神経毒の生理活性を有し、その活性には、経細胞輸送及び細胞内輸送、ならびに細胞認識が含まれるが、必ずしもこれらに限定するものではない。
無毒性神経毒は、クロストリジウム神経毒中毒の候補解毒剤として検討することができる。融合タンパク質は、本明細書に記載の方法で造成した上記の無毒性誘導体を用いて作製する。非経口投与経路を最初に試験し、続いて適用可能な経口経路及び吸入経路を評価する。解毒剤としての有用性は、マウス横隔神経平滑筋における神経筋遮断を防止するか、またはそれぞれの血清型の細胞内基質の神経細胞培養中における切断を阻害する神経毒性誘導体の能力を試験することによってｉｎ ｖｉｔｒｏで評価することができる。上記の無毒性誘導体を用いて作製する融合タンパク質は、現在利用可能な抗体に基づく解毒剤より優れている場合があり、なぜならばそれらは、天然の毒素吸収及び輸送経路を効果的に模倣しており、したがって従来の抗体であれば効果的に毒素を標的化できない毒物投与された神経細胞内において野生型神経毒を隔離した後に有効であることが可能なためである。ｉｎ ｖｉｖｏでの解毒剤の有効性は、複数の投薬レジメンを用いて評価することができる。毒素と同時に投与した場合に有効であることが判明した神経毒誘導体について、危機状況下での解毒剤の使用に関連する追加の投薬量及びタイミングパラメータをさらに評価する。これらの手順を用いて、一連の無毒性誘導体及び融合タンパク質を作製し、それらの生物学的活性を体系的にカタログ化する。これらの十分に特徴付けた構築物及び毒素誘導体の有効性により、新規抗クロストリジウム神経毒治療剤の合理的な設計が可能になる。用量応答分析及び活性神経毒に対するチャレンジ試験によって、さらなる開発のための最良の候補解毒薬の選択を可能にするデータが得られる。
本発明のさらなる態様は、クロストリジウム神経毒の毒性作用に対する対象の治療方法に関する。本方法は、クロストリジウム神経毒の毒性作用に対して対象を治療するのに有効な条件下で、本明細書に記載の治療剤を対象に投与することを含む。
本明細書中に記載する本方法及び他の方法の実施に際して、投与は、経口、非経口、例えば、皮下、静脈内、筋肉内、関節内、腹腔内、鼻腔内滴下によって、または鼻、咽喉、及び気管支などの粘膜への塗布によって実行する。融合タンパク質（または治療剤）は、単独で、または適切な薬学的担体と共に投与してもよく、錠剤、カプセル剤、散剤、液剤、懸濁剤、または乳剤などの固体または液体形態であり得る。
融合タンパク質（または治療剤）は、例えば、不活性希釈剤または吸収可能な食用担体と共に経口投与されてもよく、または硬質または軟質シェルカプセルに封入してもよく、または錠剤に圧縮してもよく、または食品に直接組み込んでもよい。経口治療投与のために、神経毒（任意の積荷と一緒に）を賦形剤とともに含ませ、錠剤、カプセル、エリキシル、懸濁液、シロップなどの形態で使用してもよい。そのような組成物及び調製物は、少なくとも０．００１％の活性化合物を含有すべきである。これらの組成物中の化合物の割合は、もちろん様々に異なっていてもよく、好都合にはユニットの重量の約０．０１％〜約１０％の間であってもよい。そのような治療的に有用な組成物中の活性化合物の量は、適切な投与量が得られるような量である。一実施形態では、経口用量単位が約１μｇ〜１ｇの活性化合物を含有するように組成物を調製する。
錠剤、カプセルなどはまた、トラガントガム、アカシア、コーンスターチ、またはゼラチンなどの結合剤；リン酸二カルシウムのような賦形剤；コーンスターチ、ジャガイモデンプン、アルギン酸などの崩壊剤；ステアリン酸マグネシウムのような潤滑剤；及びスクロース、ラクトース、またはサッカリンのような甘味料を含有する。単位剤形がカプセルである場合、それは、上記のタイプの物質に加えて、脂肪油のような液体担体を含有してもよい。
コーティングとして、または単位剤形の物理的形態を変更するために、様々な他の物質が存在してもよい。例えば、錠剤はシェラック、砂糖、またはその両方でコーティングしてもよい。シロップは、活性成分に加えて、甘味料としてスクロース、防腐剤としてメチル及びプロピルパラベン、色素、ならびにチェリーまたはオレンジフレーバーのような香味料を含んでいてもよい。
融合タンパク質（または治療剤）は、非経口的に投与してもよい。水中でヒドロキシプロピルセルロースなどの界面活性剤と適切に混合して、溶液または懸濁液を調製することができる。グリセロール、液体ポリエチレングリコール、及びそれらの油中混合物中において、分散液を調製することもできる。油の例として、動物、植物、または合成由来の石油、例えば、ピーナッツ油、ダイズ油、または鉱油が挙げられる。一般的に、水、生理食塩水、水性デキストロース及び関連する糖溶液、ならびに以下のようなグリコール類、例えばプロピレングリコール、ヒアルロナン及びその誘導体、カルボキシメチルセルロース及び他の可溶性多糖誘導体、またはポリエチレングリコールなどは、特に注射剤のための好ましい液体担体である。貯蔵及び使用に関する通常の条件下でこれらの調製物は保存剤を含有し、これらの調製物を無菌条件下で製造しない場合でも、微生物の増殖を防ぐ。
注入用途に適した剤形として、滅菌水溶液または分散液、及び滅菌注入溶液または分散液の即時調製用の滅菌粉末が挙げられる。この剤形は、無菌である必要があり、また、容易に注入可能な程度には流動的である必要がある。この剤形は、製造及び貯蔵条件下で安定である必要があり、細菌及び真菌のなどの微生物の汚染作用から保護する必要がある。担体は、例えば、水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、及び液体ポリエチレングリコール）、それらの適切な混合物、及び植物油を含む溶媒または分散媒であり得る。
融合タンパク質（または治療剤）は、エアロゾルの形態で気道に直接投与してもよい。エアロゾルとして使用するために、溶液または懸濁液中の融合タンパク質（または治療剤）を、適切な噴射剤、例えば、プロパン、ブタンまたはイソブタンなどの炭化水素噴射剤、ならびに通常のアジュバントとともに加圧エアロゾル容器にパッケージングしてもよい。融合タンパク質（または治療剤）はまた、ネブライザーまたは噴霧器のような非加圧形態で投与してもよい。
ＢｏＮＴは、破壊されることなく、または局所毒性を引き起こすことなく、上皮表面を通過する。上皮の通過は、特異的結合及びトランスサイトーシスによって起こると考えられている。インタクトなＢｏＮＴ／Ａが、肺上皮を通過してタンパク質分解性不活性化に耐える能力を有することを、ラット初代肺胞上皮細胞及び不死化ヒト肺腺癌（Ｃａｌｕ‐３）細胞において示した。輸送速度は、基底‐頂端方向よりも頂端‐基底方向でより速く、血清型特異的毒素抗体によってブロックされた（Ｐａｒｋ ｅｔ ａｌ．，“Ｉｎｈａｌａｔｉｏｎａｌ Ｐｏｉｓｏｎｉｎｇ ｂｙ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ ａｎｄ Ｉｎｈａｌａｔｉｏｎ Ｖａｃｃｉｎａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ Ｉｔｓ Ｈｅａｖｙ‐Ｃｈａｉｎ Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ，”Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．７１：１１４７‐１１５４（２００３）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
中枢神経系（「ＣＮＳ」）を標的とするためには、髄腔内または脳室内投与が必要である場合がある。投与はＣＮＳに直接行ってもよい。あるいは、ＣＮＳへの投与は、末梢神経細胞（運動ニューロン、侵害受容器）から脊髄神経節への逆行性輸送を伴い得る（Ｃａｌｅｏ ｅｔ ａｌ．，“Ａ Ｒｅａｐｐｒａｉｓａｌ ｏｆ ｔｈｅ Ｃｅｎｔｒａｌ Ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ：Ｂｙ Ｗｈａｔ Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ？”Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １０９：１５‐２４（２００９）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
一実施形態では、例えば併用療法として、融合タンパク質（または治療剤）を用いて、野生型クロストリジウム神経毒（例えば、ＢＯＴＯＸ（登録商標））の内在性医薬活性を増大させることができる。
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨ（以下に記載）を用いる場合、融合タンパク質のＶＨＨ部分とＳＮＡＰ‐２５切断活性は、相乗効果を発揮し得る。
融合タンパク質（または治療剤）を、薬学的に許容可能な水溶性ポリマー部分との複合体として投与することができる。一例として、ポリエチレングリコール複合体は、治療化合物の循環半減期を延長し、分子の免疫原性を低下させるのに有用である。特異的ＰＥＧ複合体は、Ｄａｕｇｓらの米国特許出願公開第２００６／００７４２００号に記載されており、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する。機能性に影響を及ぼす他の物質として、例えば、Ｔａｙｌｏｒの米国特許第７，８７９，３４１号及びＢｌａｎｄａらの米国特許出願公開第２０１２／０１４１５３２号に記載されているようなヒアルロン酸（「ＨＡ」）が挙げられ、これらの各々はその全体を参照として本明細書に援用する。リポソーム封入製剤をはじめとする液体剤形の例として、注入用溶液及び懸濁液が挙げられる。固体剤形の例として、カプセル、錠剤、及び制御放出剤形、例えばミニ浸透圧ポンプまたはインプラントが挙げられる。例えば、その全体を参照として本明細書に援用するＡｎｓｅｌ＆Ｐｏｐｏｖｉｃｈ，Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｄｏｓａｇｅ Ｆｏｒｍｓ ａｎｄ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ，５ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｌｅａ＆Ｆｅｂｉｇｅｒ １９９０），Ｇｅｎｎａｒｏ（ｅｄ．）；Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，１９ｔｈ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏｍｐａｎｙ １９９５）；及びＲａｎａｄｅ＆Ｈｏｌｌｉｎｇｅｒ，Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｓｙｓｔｅｍｓ（ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ １９９６）に示されるように、当業者は他の剤形を考案することができる。
一実施形態では、対象の治療は、投与する前に治療が必要な対象を選択することをさらに含む。
本明細書に記載の方法による治療対象の対象として、ヒト及び非ヒト霊長類、またはイヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ウサギ、もしくはげっ歯類（例えば、マウスまたはラット）が挙げられる。
特定の症状の治療を標的とするために開発された一本鎖抗体が知られており、例えば、ハンチントン病治療用のハンチントン・プロテイン、パーキンソン病治療用のシヌクレイン、悪性ニューロンのアップレギュレートされた細胞分裂遺伝子、非悪性型神経症におけるアップレギュレートされた遺伝子、アルツハイマー病においてアミロイド原線維の過剰蓄積を引き起こす遺伝子、潜伏性神経栄養性（ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ）ウイルス種、帯状疱疹の発症時に活性化するヘルペスウイルス、プリオン病、神経障害性疼痛（疼痛経路をダウンレギュレートする）、及び慢性疼痛の誘導物質を標的とする一本鎖抗体が挙げられる。これらの一本鎖抗体の治療標的は神経細胞の内部にあり、本発明の背景技術（前出）に記載するように、治療環境における一本鎖抗体の細胞内部への非ウイルス性送達には限界があった。本明細書に記載する治療方法は、これらの欠点を克服し、一本鎖抗体をクロストリジウム神経毒誘導体に融合し、それによって一本鎖抗体を神経細胞に誘導し、内部移行したエンドソームから細胞質内部へ移行させることによって、機能的一本鎖抗体を神経細胞の細胞質に露出する標的へ送達する。
本発明のさらなる態様は、プロペプチド融合体に関する。プロペプチド融合体は、クロストリジウム神経毒の軽鎖領域及びクロストリジウム神経毒の重鎖領域を含む。軽鎖及び重鎖領域は、ジスルフィド結合によって連結している。中間領域は、軽鎖及び重鎖領域を連結し、高特異性プロテアーゼ切断部位を含む。高特異性プロテアーゼ切断部位は、高特異性プロテアーゼが認識して切断できる３つ以上の特異的な隣接するアミノ酸残基を有する。一本鎖抗体は軽鎖領域の上流に位置する。一本鎖抗体は、抗原結合活性を有する。
ＢｏＮＴ／Ａプロペプチドは、Ｃｙｓ４２９とＣｙｓ４５３の間のジスルフィド結合によって連結した２つの鎖、すなわちＭｒ約５０，０００の軽鎖及びＭｒ約１００，０００の重鎖を有する。野生型ＢｏＮＴ／Ａプロペプチドは、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＡＢＰ４８１０６（配列番号５２）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
ＢｏＮＴ／Ｂプロペプチドは、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ７１３４３．１（配列番号５３）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
ＢｏＮＴ／Ｃプロペプチド（具体的には、ＢｏＮＴ血清型Ｃ１、本明細書においてはＢｏＮＴ／Ｃと呼ぶ）は、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＢＡＭ６５６９１．１（配列番号５４）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
ＢｏＮＴ／Ｄプロペプチドは、下記のＵｎｉＰｒｏｔＫＢ／Ｓｗｉｓｓ‐Ｐｒｏｔ：Ｐ１９３２１．１（配列番号５５）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
ＢｏＮＴ／Ｅプロペプチドは、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＧＱ２４４３１４．１（配列番号５６）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
ＢｏＮＴ／Ｆプロペプチドは、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ８１７１４．１（配列番号５７）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
ＢｏＮＴ／Ｇプロペプチドは、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ７４１６２．１（配列番号５８）に記載のアミノ酸配列を有する：
Figure 2017538414
。
８つのＢｏＮＴ血清型のすべてのプロペプチドは、ジスルフィド結合によって連結した軽鎖領域及び重鎖領域を有する。一つが軽鎖のＣ末端に隣接し、もう一つが重鎖のＮ末端に隣接する２つのシステイン（Ｃｙｓ）残基は、すべてのＢｏＮＴ血清型に存在する。これらの２つのＣｙｓ残基は、成熟神経毒においてＨＣ及びＬＣポリペプチドをともに保持する単一のジスルフィド結合を形成する。このジスルフィド結合によって、ＨＣ及びＬＣはそれらのそれぞれの生物学的役割を協調して実行することができ、それによって成熟神経毒はその天然の生理活性を発揮することができる。中間領域（すなわち、ＢｏＮＴ／ＡのＬｙｓ４３８〜Ｌｙｓ４４８：
Figure 2017538414
は、野生型ＢｏＮＴ／Ａの成熟の過程で排除されるアミノ酸であり、宿主微生物の内在性プロテアーゼによって切除されると考えられる。この切断事象により、生物学的に活性なＢｏＮＴ／Ａ ＨＣ‐ＬＣ二量体が生成する。
８つすべてのＢｏＮＴ血清型はまた、中間領域にＬｙｓまたはＡｒｇ残基を含み、これらの残基によって、プロペプチドはトリプシンによる活性化に対して感受性になる。早期の微生物培養物から回収した天然ＢｏＮＴ／Ａプロペプチドは、トリプシン分解によって活性化することができ、それとともにインタクトなＳ‐Ｓ結合軽鎖及び重鎖を産生する。プロペプチドには複数の追加的なトリプシン感受性部位が存在するが、それらは天然の毒素分子内のそれらの空間的位置が原因でタンパク質分解に対して耐性である（Ｄｅｋｌｅｖａ ｅｔ ａｌ．，“Ｎｉｃｋｉｎｇ ｏｆ Ｓｉｎｇｌｅ Ｃｈａｉｎ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｙｐｅ Ａ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ ｂｙ ａｎ Ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ Ｐｒｏｔｅａｓｅ，”Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．１６２：７６７‐７７２（１９８９）；Ｌａｃｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｒｙｓｔａｌ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ ａｎｄ Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ Ｔｏｘｉｃｉｔｙ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．５：８９８‐９０２（１９９８）、これらの文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。いくつかのＢｏＮＴ血清型の天然プロペプチドの第二の部位は、より高い酵素濃度またはインキュベーション時間に供した場合にはトリプシン切断に対して感受性になり得る（Ｃｈａｄｄｏｃｋ ｅｔ ａｌ．，“Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃａｔａｌｙｔｉｃａｌｌｙ Ａｃｔｉｖｅ，Ｎｏｎ‐Ｔｏｘｉｃ Ｅｎｄｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐｒ．Ｐｕｒｉｆ．２５：２１９‐２２８（２００２）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。このトリプシン感受性部位は、毒素受容体結合ドメインに隣接する領域に位置する。３次元結晶構造の情報が利用可能なＢｏＮＴ血清型において、ＨＣペプチドのこの領域は溶媒に対して露出されることが判明している（Ｌａｃｙ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｒｙｓｔａｌ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ ａｎｄ Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ ｆｏｒ Ｔｏｘｉｃｉｔｙ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．５：８９８‐９０２（１９９８）；Ｓｗａｍｉｎａｔｈａｎ ｅｔ ａｌ．，“Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｃａｔａｌｙｔｉｃ ａｎｄ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｓｉｔｅｓ ｏｆ Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｂ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．７：６９３‐６９９（２０００）、これらの文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。
本明細書に記載のプロペプチド融合体は、軽鎖及び重鎖領域を連結する中間領域を有し、この中間領域は、高特異性プロテアーゼ切断部位を有し、低特異性プロテアーゼ切断部位を有していない（すなわち、野生型の神経毒に対し、本融合体の中間領域には変異が導入されている）。本発明の目的のために、高特異性プロテアーゼ切断部位（本明細書では「制限特異性プロテアーゼ」または「ＲＳＰ」部位とも呼ぶ）は、高特異性プロテアーゼが認識し、切断を可能とする３残基以上の特異的な隣接するアミノ酸残基（例えば、エンテロキナーゼ切断部位、ＴＥＶ認識配列、またはＴｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製のＷＥＬＱｕｔプロテアーゼ）を有する。対照的に、低特異性プロテアーゼ切断部位は、プロテアーゼが認識し、切断を可能とする２残基以下の隣接するアミノ酸残基（例えば、トリプシン切断部位）を有する。当業者であれば理解可能なように、切断を行う特定の条件に応じて、選択すべき、特に好適な高特異性プロテアーゼの種類は異なったものになる。１つの高特異性プロテアーゼは、１つの条件セットの下では最も効果的であり得るが、異なる条件セットの下では、別の高特異性プロテアーゼが最も効果的であり得る。
ＢｏＮＴにおいて、重鎖のＮ末端に先行するアミノ酸は、トリプシンによるタンパク質分解に対して感受性のＬｙｓまたはＡｒｇ残基である。このトリプシン感受性部位は、重鎖のＮ末端の上流において、例えば５残基のアミノ酸からなるエンテロキナーゼ切断部位（すなわち、ＤＤＤＤＫ（配列番号６０））で置換することができる（Ｉｃｔｈｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許出願公開第２０１１／０２０６６１６号参照、前記文献は、８つのＢｏＮＴ血清型のうちの７つについてのアラインメントを示しており、その全体を参照として本明細書に援用する）。あるいは、トリプシン感受性部位は、重鎖のＮ末端の上流において、例えばＴＥＶ認識配列（すなわち、ＥＮＬＹＦＱ（配列番号６１））で置換することができる（Ｉｃｔｈｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許出願公開第２０１１／０２０６６１６号、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。これらの改変のいずれも、特異的な酵素による標準化された活性化を可能にする。ＢｏＮＴ血清型Ａ及びＣにおいて、この領域内のさらなるＬｙｓ残基を、ＧｌｎまたはＨｉｓのいずれかに突然変異させてもよく、それによって毒素の望ましくない非特異的活性化をもたらし得るさらなるトリプシン感受性部位を排除してもよい。トリプシン感受性認識配列は、血清型Ａ、Ｅ、及びＦの重鎖の受容体結合ドメインの上流にも存在する。Ｘ線結晶構造解析に示されるように、この領域のタンパク質分解に対する感受性は、毒素の３次元構造における溶媒への露出と相関している。したがって、血清型Ａ、Ｅ、及びＦでは、感受性残基をＡｓｎに改変する。
本明細書に記載のプロペプチド融合体は、軽鎖領域にアミノ酸置換を有し、この置換により、プロペプチドの成熟神経毒（すなわち、上記の本発明の融合タンパク質）は無毒性となる。一実施形態では、アミノ酸置換はＥ２２４＞Ａ及びＹ３６６＞Ａ（ＢｏＮＴ／Ａ ＬＣの）を含み、この置換は融合タンパク質を無毒化する。これに相当する突然変異を他のＢｏＮＴ血清型において作成し、同様にそれらを無毒化してもよい。別の実施形態によれば、プロペプチドは、これら２つの突然変異に加えて、配列番号５２のＢｏＮＴ Ａ／ＬＣの（ｉ）Ｑ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、及びＬ３２２＞Ｅまたは（ｉｉ）Ｑ１６３＞Ｅ、Ｅ２６３＞Ｌ、及びＬ３２３＞Ｉのいずれかを有する。これらの追加の突然変異をＢｏＮＴ／Ａ（すなわち、配列番号５２）に施し、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１（以下の段落で定義）を作製し、残存ＳＮＡＰ‐２５切断活性を低下させ、不活性な薬物担体としての性能を向上させる。これに相当するアミノ酸置換を、他の７つのＢｏＮＴ血清型において行ってもよい。別の実施形態では、アミノ酸置換は、Ｅ４４６＞Ａ、Ｈ４４９＞Ｇ、及びＹ５９１＞Ａ（配列番号５４のＢｏＮＴ／Ｃ ＬＣの）を含む。これらの追加の突然変異を、ＢｏＮＴ／Ｃ（すなわち、配列番号５４）に対して施し、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを作製する。
ＳＮＡＰ‐２５切断活性を保持していると、例えば、「ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ」（ＢｏＮＴ／Ａの無毒性誘導体）を不活性の薬物担体として使用するうえで、制約があると考え得る。したがって、一実施形態によれば、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ触媒活性に関連する毒性をさらに減少させるために、第２世代のＢｏＮＴ／Ａ ａｄ分子を生物工学的に作製し、そのような一実施形態を「ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１」と命名する。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１は、ＢｏＮＴ／Ａの無毒性軽鎖に追加のアミノ酸置換（例えば、ＢｏＮＴ／Ａ ＬＣのＱ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、及びＬ３２２＞Ｅ）を有し、これにより残存ＳＮＡＰ‐２５切断活性を排除し、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１がより不活性な薬物担体として機能できるように設計した組換えボツリヌス神経毒の無毒性誘導体である。突然変異を、コンピュータモデリングによって特異的に同定するとともに、タンパク質の安定性に必要な構造的特徴（突然変異を加えた軽鎖と重鎖偽基質のベルト領域との間の相互作用に関して）、ならびにその全身的及び神経内輸送特性を維持する一方で、ＬＣプロテアーゼによるＳＮＡＰ‐２５の触媒的切断を破壊するように設計した。
ＢｏＮＴ分子（または融合タンパク質）が基質切断活性を失っているかどうかの判定は、例えば、本明細書の実施例に記載のウェスタンブロット分析を用いて行うことができる。
他方、本明細書に記載の融合タンパク質は、何らかの残存基質切断活性を有することが望ましい場合がある。なぜなら、その活性が細胞内部区画への融合タンパク質の送達（特に、一本鎖抗体の送達）に対するマーカーとして機能し得るためである。本実施形態は、以下の実施例２に記載する。
一実施形態によれば、本明細書に記載のプロペプチド融合体は、軽鎖領域の上流に位置する第一検出タグ（ＤＴ１）及び第一アフィニティー精製タグ（ＡＰＴＮ）を有する。
別の実施形態によれば、本明細書に記載のプロペプチド融合体は、重鎖領域の下流に位置する第二検出タグ（ＤＴ２）及び第二アフィニティー精製タグ（ＡＰＴＣ）を有する。
一実施形態では、プロペプチド融合体は、ＬＣの上流にスペーサー配列（ＳＳ）、スペーサー配列（ＳＳ）の上流に位置する一本鎖抗体（ＶＨＨ）、一本鎖抗体の上流に位置する検出タグ（ＤＴ）、検出タグ（ＤＴ）の上流に位置する制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位及び制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位の上流に位置するアフィニティー精製タグ（ＡＰＴＮ）を含む。さらに、制限特異性（ＲＳＰ）部位は、ＬＣとＨＣとの間に位置する。別の制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位はＨＣの下流に位置し、アフィニティー精製タグ（ＡＰＴＣ）は制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位の下流に位置する。本実施形態を図４Ａに示す。プロペプチド融合体のこの実施形態のプロセシング時に、制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位での切断が生じ、図４Ｂに示すように、Ｓ‐Ｓ結合を除いてＬＣとＨＣが分けられ、アフィニティー精製タグ（ＡＰＴＮ及びＡＰＴＣ）が排除される。
別の実施形態では、図８Ａに示すように、プロペプチド融合体は、図４Ａに示すプロペプチド融合体の特徴を有するが、一本鎖抗体の上流に位置する検出タグを欠失している。一実施形態によれば、図８Ａのプロペプチド融合体の切断産物（すなわち、図８Ｂのタンパク質）は、医薬用途に適したタンパク質である。
さらに別の実施形態によれば、図６Ａに示すように、プロペプチド融合体は、分解促進ドメイン（ＡＤＤ）ならびに、場合により、一本鎖抗体の上流及び制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位の下流に位置する別の検出タグ（ＤＴ）、及びアフィニティー精製タグ（ＡＰＴＮ）を含む。図６Ｂに示すように、高特異性プロテアーゼでプロセシングした後、得られる融合タンパク質は、アフィニティー精製タグを切除されているが、依然として分解促進ドメイン（ＡＤＤ）を有している。
さらに別の実施形態によれば、プロペプチド融合体は、ＲＳＰによってＮ末端のＡＰＴを除去した後に、ＡＤＤの上流のＮ末端アミノ酸が、リジン（Ｋ）のような塩基性アミノ酸または任意の他の正に荷電したアミノ酸になり、それによって融合タンパク質及び融合タンパク質が結合する任意の抗原の分解をさらに促進するように設計される。これを図７Ａ及び図７Ｂに示し、以下の実施例に記載する。図７Ａ及び図７Ｂ（または１つ以上のＲＳＰを含む本明細書に記載の任意の他のプロペプチド融合体）におけるＲＳＰ１及びＲＳＰ２は、同じ認識配列であってもなくてもよい。プロペプチド融合体中の任意の１つ以上のＲＳＰは、随伴的または連続的であってもよい。
一実施形態によれば、検出タグ（ＤＴ）は、神経細胞の細胞質への一本鎖抗体の送達を検出することができる。適切な検出タグとして、ｃ‐ｍｙｃ、ＯＬＬＡＳタグ、ＨＡタグ、Ｅタグ、Ｈｉｓタグ、及びＳｔｒｅｐタグが挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。検出タグはまた、検出手段を提供するとともに、スペーサー配列を創出することによって、二重の目的を果たし得る。同様に、本明細書に記載のスペーサー配列（ＳＳ）もまた、検出タグとして機能し得る。別の実施形態では、検出タグ（ＤＴ）はオプションであるか、または非常に小さい（すなわち、配列が短い）。例えば、検出タグ（ＤＴ）がリジン残基または他の正に荷電したアミノ酸とＡＤＤ部位とを分離する場合、ＡＤＤが適切に機能するためには、短い検出タグ（ＤＴ）を有することが望ましい場合がある。
一実施形態によれば、アフィニティー精製タグ（ＡＰＴ）は、非切断型の組換え発現タンパク質の効率的なアフィニティー精製を可能にする。適切なアフィニティー精製タグとして、Ｈｉｓタグ、Ｓｔｒｅｐタグ、及び上記のものが挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。
一実施形態では、制限特異性プロテアーゼ（ＲＳＰ）部位は、例えば、エンテロキナーゼ切断部位、ＴＥＶ認識配列、またはＷＥＬＱｕｔプロテアーゼ認識配列（これらの全ては上に記載されている）から選択される。しかしながら、これらの配列、及びプロペプチド融合体を成熟させるために使用する特異的プロテアーゼは、必ずしもプロペプチド融合体におけるすべての意図する切断部位に対して同一である必要はない。
その全体を参照として本明細書に援用するＩｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許第８，８６５，１８６号に記載されているように、本明細書に記載のプロペプチド融合体に、必要に応じてシグナルペプチドを導入し、分泌及び回収をできるようにしてもよい。一実施形態では、シグナルペプチドは、図９Ａ〜Ｌ、１１Ａ〜Ｌ、及び１７Ａ〜Ｌに示すように、ＡＰＴの上流に配置される。特定の一実施形態によれば、シグナルペプチドは、ｇｐ６４シグナルペプチド及びヘキサヒスチジン・アフィニティータグ：
Figure 2017538414
をコードするＤＮＡ配列である。
本明細書に記載のプロペプチド融合体は、積荷の部位特異的付着を可能にする積荷付着ペプチド配列（すなわち、積荷付着ペプチド配列または積荷付着ペプチド）をさらに有してもよい。積荷（例えば、治療用原薬、脂質部分、マーカー分子、標的化剤など）は、本明細書に記載の融合タンパク質に結合し得る。そのような付着は、例えば、Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許出願公開第２０１１／０２０６６１６号に記載されており、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する。
一実施形態によれば、積荷付着ペプチドは軽鎖領域の上流（一本鎖抗体の下流または上流のいずれか）に位置し、アミノ酸スペーサー配列によって軽鎖領域のＮ末端（または一本鎖抗体のＮ末端）から分けられる。本明細書に記載するこの及び他のアミノ酸スペーサー（またはリンカー）配列は、少なくとも２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１〜２５、２６〜３０、３１〜３５、または３６〜４０個またはそれ以上のアミノ酸残基を含んでもよい。アミノ酸スペーサー（またはリンカー）配列は、積荷付着ペプチド及び／または融合タンパク質の構造的独立性を保存及び保護し、抗体活性を妨害しないように機能し得る。アミノ酸スペーサー（またはリンカー）配列の一例は、７残基のアミノ酸スペーサーＡＲＧＧＡＳＧ（配列番号６３）である。リンカーの適切な配列を検討する際に、発現系に新たな制限部位または他の不安定性を生じさせないことが望ましい場合がある。適切なリンカーはまた、一本鎖抗体部分をポリペプチド構造の残りの部分とは独立に保ち、抗原結合が可能となるように設計してもよい。いくつかの様々な特異的スペーサー（またはリンカー）を図に示す。
適切な積荷付着ペプチドの一例は、Ｓ６配列、すなわち
Figure 2017538414
である。Ｓ６配列は、基質としてＳ６配列のＳ３アミノ酸を標的とする枯草菌（Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ）由来のＳｆｐホスホパンテテイニルトランスフェラーゼを用いて、積荷が部位特異的に付着できるようにする（Ｚｈｏｕ ｅｔ ａｌ．，“Ｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ Ｅｎｃｏｄｅｄ Ｓｈｏｒｔ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｔａｇｓ ｆｏｒ Ｏｒｔｈｏｇｏｎａｌ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｌａｂｅｌｉｎｇ ｂｙ Ｓｆｐ ａｎｄ ＡｃｐＳ Ｐｈｏｓｐｈｏｐａｎｔｅｔｈｅｉｎｙｌ Ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅｓ，”ＡＣＳ Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．２（５）：３３７‐３４６（２００７）、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する）。他の適切な積荷付着ペプチドは公知であり、またそれらを使用することもできる。
一実施形態では、本明細書に記載のプロペプチド融合体は、上記で論じたように、切断されていない軽鎖及び重鎖を有する。
本発明の別の態様は、本明細書に記載のプロペプチド融合体をコードする単離核酸分子に関する。
野生型ＢｏＮＴ／Ａ核酸分子は、下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＥＦ５０６５７３．１（配列番号６５）に記載のヌクレオチド配列を有する：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
。
一実施形態では、本発明の単離核酸分子は、この野生型ＢｏＮＴ／Ａ核酸分子をもとにして、遺伝子コードに従って本明細書に記載のプロペプチド融合体をコードするように改変する。そのような改変の非限定的な例として、ポリペプチドの産生に使用する宿主のコドン使用バイアスに関する最適化、転写及び翻訳に影響を及ぼす望ましくない遺伝的特徴の排除、及び制限部位の導入または除去が挙げられる。したがって、本発明の核酸分子は、少なくともクロストリジウム神経毒軽鎖領域及びクロストリジウム神経毒重鎖領域に関して、野生型ＢｏＮＴ／Ａ核酸分子と極めて相同性の高い核酸配列を有し得る。例えば、クロストリジウム神経毒軽鎖領域とクロストリジウム神経毒重鎖領域との組み合わせは、
下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ７１３４３．１（配列番号６６）のＢｏＮＴ／Ｂ：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＡＢ７４５６５８．１のＢｏＮＴ／Ｃ（配列番号６７）：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ５４２５４．１のＢｏＮＴ／Ｄ（配列番号６８）：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号ＧＱ２４４３１４．１のＢｏＮＴ／Ｅ（配列番号６９）：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ８１７１４．１のＢｏＮＴ／Ｆ（配列番号７０）：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
下記のＧｅｎＢａｎｋ登録番号Ｘ７４１６２．１のＢｏＮＴ／Ｇ（配列番号７１）：
Figure 2017538414
Figure 2017538414
Figure 2017538414
を含む、配列番号６５の核酸分子または任意の他のクロストリジウム神経毒分子と少なくとも約８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、またはそれ以上同一である。
クロストリジウム神経毒の無毒性誘導体をコードし、本明細書に記載のプロペプチド融合体をコードするようにさらに改変し得る単離核酸分子は、Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許第７，７８５，６０６号に記載されており、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する。ＢｏＮＴ／Ｃの無毒性誘導体（検出タグ及びアフィニティー精製タグを有する）をコードし、本発明のプロペプチド融合体をコードするようにさらに改変し得る核酸分子の１つの具体例を、図１７Ａ〜Ｌに示す。
核酸分子は、宿主におけるコドン最適化、制限部位の容易な配置、及び構築物中の他の場所に不明瞭な部位が存在しないことを考慮に入れた他の改変、ならびにそれらが発現及び精製中における何らかの内部不安定性を確実に生じないようにするために設計した制限特異性プロテアーゼ部位を有してもよい。他の改変として、コードするプロペプチドに低特異性タンパク質分解への耐性を付与する突然変異、推定上の内部ＤＮＡ調節エレメントを不活性化する１つ以上のサイレント突然変異、及び／または１つ以上のユニークな制限部位を挙げ得るが、必ずしもこれらに限定するものではない。成熟神経毒の安定性及び収率を、プロペプチドの中間領域内の残基のアミノ酸置換によって最適化し、それによって、成熟神経毒の発現に使用する宿主生物の非特異的タンパク質分解及び中毒に対する感受性を低減してもよい。また、選択した発現系において、プロペプチド融合体のＲＮＡ転写または発現に影響し得るサイレント突然変異をＤＮＡ調節エレメントに導入する。
一実施形態では、核酸分子は、クロストリジウム神経毒（ＢｏＮＴ／Ａ）の軽鎖領域に、以下の突然変異の１つ以上をコードする：Ｅ２２４＞Ａ、Ｙ３６６＞Ａ、Ｋ４３８＞Ｈ、Ｋ４４０＞Ｑ、Ｋ４４４＞Ｑ、Ｋ８７１＞Ｎ、Ｑ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、Ｌ３２２＞Ｅ、Ｑ１６３＞Ｅ、Ｅ２６３＞Ｌ、及びＬ３２３＞Ｉ。
別の実施形態では、核酸分子は、クロストリジウム神経毒（ＢｏＮＴ／Ｃ、図１７Ａ〜Ｌに示すアミノ酸番号を有する）の軽鎖領域に、以下の突然変異の１つ以上をコードする：Ｅ４４６＞Ａ、Ｈ４４９＞Ｇ、Ｙ５９１＞Ａ。
ボツリヌス神経毒の発現レベルは、ＶＨＨ、ＲＳＰ、ＤＴ、ＡＰＴ、タグ、リンカー、もしくはスペーサーの、数、タイプもしくは間隔を含むが必ずしもこれらに限定されない特定の構築物の長さ及び／または組成に影響を受ける場合がある。具体例として、構築物がＶＨＨドメインをコードする配列を２つ以上含む場合、ＶＨＨドメインをコードする配列の間のリンカーの長さは発現レベルに影響を与え得る。
さらに別の実施形態では、モジュラー型ＤＮＡ構築物を設計して、多様かつ幅広い種類のタンパク質融合体を作製しやすくする。これらのモジュラー型ＤＮＡ構築物は、ＤＮＡ構築物内に特定の制限酵素部位認識配列（「ＲＳ」）を含ませることにより、クローニングによって容易に交換可能な要素または領域の組み合わせを含む。したがって、本実施形態によれば、モジュラー型ＤＮＡ構築物は、「アクセプター」構築物及び「ドナー」構築物の両方として作製される。アクセプター構築物は、ドナー構築物を「受容」し、アクセプター構築物がコードする融合タンパク質の活性／機能を改変する。一実施形態では、それは、本明細書においてユニークな制限酵素部位（「ＵＲＳ」）と呼ぶ、ＤＮＡ構築物がもともと保有していなかった特異的制限酵素部位の組み込み、使用、または配置によって行う。これらの制限酵素部位は、コードされた融合タンパク質の機能的または構造的エレメントをコードするＤＮＡ配列の間（例えば、ＢｏＮＴ ＬＣとタグとの間）の接合部またはその近傍にあってもよい。制限酵素消化、及びドナー構築物とレシピエント構築物との間の相補的な一本鎖突出末端配列のライゲーションを用いて、これらの構築物のエレメントを、構築物内のＵＲＳの位置に応じて全体的または部分的に交換してもよい（例えば、アクセプター構築物はドナー構築物を受け取ってもよい）。
モジュラー型ＤＮＡ構築物が、ＢｏＮＴ ＬＣ及びＢｏＮＴ ＨＣを含むが、必ずしもこれらに限定されないＢｏＮＴ配列に相同な領域を含む場合、配列は、任意のＢｏＮＴ血清型またはその混合物に由来してもよく、及び配列番号６５の分子または他の任意のクロストリジウム神経毒分子に対し、少なくとも約８０％、８１％、８２％、８３％、８４％、８５％、８６％、８７％、８８％、８９％、９０％、９１％、９２％、９３％、９４％、９５％、またはそれ以上の相同性を有する。
構築物がコードする融合タンパク質内のエレメントまたは領域をコードするＤＮＡ配列の接合部の近くにＵＲＳを配置してもよいが、配列内のＲＳの正確な位置は、エレメントまたは領域をコードする配列内で様々に異なっていてもよく、さらにこれを用いて、前記エレメントもしくは領域をコードする配列を、機能を失わせずに交換するか、または機能を失わせずにレシピエントエレメントもしくは領域をコードするＤＮＡ配列の一部を、ドナーエレメントもしくは領域をコードする配列と置換してもよい。
融合タンパク質をコードするヌクレオチド構築物のモジュラー構築の一実施形態において、構築物は、ＢｏＮＴ ＬＣとＢｏＮＴ ＨＣとの間及びその隣接部にＲＳＰ部位を含む。この構築物は、必要に応じてタグ配列及びスペーサー配列も含む。タグ配列として、ＡＰＴ、ＤＴ、リンカー、及びスペーサーが挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。構築物は、多数のユニークな制限酵素部位（ＵＲＳ）を含んでもよく、これを用いて構築物を断片化し、分子クローニングを介して融合タンパク質のエレメントをコードする新規配列を容易に組み込むことができる。この実施形態を図３２に示す。この実施形態の具体例は、図３３（ＢｏＮＴ／Ａ）及び図３４（ＢｏＮＴ／Ｃ）を含み、これを模式的に図３２に示す。
図３６Ａ〜Ｆ及び図３７Ａ〜Ｅに示す特定の実施形態によれば、ＲＳＰは、ＷＥＬＱｕｔ（黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）由来のＳｐｌＢプロテアーゼ）などのプロテアーゼ切断部位であり、プロペプチドのタンパク質分解活性化の後に、正に荷電したアミノ酸（リジン、アルギニン、またはヒスチジンなどであり、図３５においてＸ＋で示す）がＮ末端に位置することを可能にする。この特定の構造は利点を有し得る。特に、図３９Ａ〜Ｏ及び図３７Ａ〜Ｅに示す特定の実施形態のＡＤＤコード配列は、ＶＨＨの上流に温度感受性デグロンを生成する。温度感受性デグロンは、昆虫細胞の細胞質において３３℃で安定であるが、哺乳動物の神経細胞の温度（３７℃）では、不安定化Ｎ末端残基（例えば、正に荷電したアミノ酸アルギニン）は、神経細胞のプロテアソーム機構によるユビキチン化と分解の増強を引き起こし、タンパク質のｉｎ ｖｉｖｏでの半減期は劇的に減少する（図３６Ａ〜Ｆ、図３７Ａ〜Ｅ）。
一実施形態では、モジュラー型構築物は、ＢｏＮＴ ＬＣコード配列の上流にＲＳＰ及びＡＤＤをコードする配列を含み、必要に応じて、ＡＰＴ及びＤＴまたはヌクレオチドリンカー及び／またはスペーサーを含むが必ずしもこれらに限定されないタグコード配列を含む。構築物は、多数のユニークな制限酵素部位（ＵＲＳ）を含み、これらの制限酵素部位を用いて構築物を断片化するとともに、分子クローニングを介して融合タンパク質のエレメントをコードするドナー構築物を容易に組み込む（または受け入れる）ことができる。そのような実施形態を図３５に示す。本実施形態の特定の非限定的な例は、図３６Ａ〜Ｆ（ＢｏＮＴ／Ａ）及び図３７Ａ〜Ｅ（ＢｏＮＴ／Ｃ）を含み、これを模式的に図３５に示す。
図３６Ａ〜Ｆ及び図３７Ａ〜Ｅに示す特定の実施形態によれば、ＲＳＰは、ＷＥＬＱｕｔ（黄色ブドウ球菌由来のＳｐｌＢプロテアーゼ）などのプロテアーゼ切断部位であり、正に荷電したアミノ酸（リジン、アルギニン、またはヒスチジンなどであり、図３５においてＸ＋で示す）がＮ末端に位置することを可能にする。この特定の構造は利点を有し得る。特に、図３９Ａ〜Ｏ及び図３７Ａ〜Ｅに示す特定の実施形態のＡＤＤコード配列は、温度感受性デグロンである。温度感受性デグロンは、ユビキチン、アルギニン、及びジヒドロ葉酸レダクターゼ（ＤＨＦＲ）の融合タンパク質であって、チミジンの合成において機能する熱不安定性のマウス由来酵素であり、不安定化Ｎ末端残基（例えば、正に荷電したアミノ酸であるアルギニン）を有する。３７℃において、プロテアソームによって温度感受性デグロンの分解が促進され、タンパク質のｉｎ ｖｉｖｏでの半減期が劇的に減少する（図３６Ａ〜Ｆ、図３７Ａ〜Ｅ）。
特異的ＶＨＨが標的とするタンパク質の分解によって治療的有用性が生じる場合、ヒトの体温下において分解が促進されると、プロペプチド融合体のｉｎ ｖｉｖｏでの治療的有用性は高まると考えられる。
図３６Ａ〜Ｆ及び図３７Ａ〜Ｅに示す特定の実施形態は、ＢｏＮＴ ＬＣコード配列のＮ末端領域の近くに位置する２つの異なるＵＲＳを含む。図３５（図３６Ａ〜Ｆ、図３７Ａ〜Ｅ）の構築物を図３２（図３３Ａ〜Ｎ、図３４Ａ〜Ｎ）の構築物にクローニングすることができ、ここで、（ｉ）図３８Ａに記載のレシピエント構築物は、ＵＲＳを有し、これは構築物を消化する場合に、（ｉｉ）図３８Ｂに記載のドナー構築物を、対応するＵＲＳ（点線、図３８Ａ〜３８Ｂ）において消化することによって生成する末端領域に相補的な一本鎖「粘着性」突出末端領域を生成し、（ｉｉｉ）ＢｏＮＴ ＬＣコード配列の上流にＲＳＰ及びＡＤＤコード配列、ＢｏＮＴ ＬＣコード配列とＢｏＮＴ ＨＣコード配列との間にＲＳＰ、ＢｏＮＴ ＨＣコード配列の下流にＲＳＰ、ならびに任意のタグ及びスペーサー配列を有する構築物が生じる。図３８Ｃに示す実施形態の特定の非限定的な例は、図３９Ａ〜Ｏ（ＢｏＮＴ／Ａ）及び図４０Ａ〜Ｏ（ＢｏＮＴ／Ｃ）を含む。
ＶＨＨコード配列、またはＢｏＮＴ ＬＣコード配列の上流に複数のＶＨＨコード配列を含むさらなる構築物を作製してもよい（図４１）。本実施形態によれば、１つ以上のＶＨＨドメイン（複数可）コード配列を、必要に応じてヌクレオチドリンカーもしくはスペーサー、またはタグのコード配列と共に、構築物に含めてもよい。そのような構築物の特定の非限定的な実施形態を図４２Ａ〜Ｂ、図４３、図４４Ａ〜Ｂ、及び図４５Ａ〜Ｂに示す。これらの特定の非限定的な実施形態では、ＶＨＨコード配列（複数可）の上流にＲＳＰエレメントを含め、さらに必要に応じてＲＳＰコード配列とＶＨＨコード配列との間に、タグコード配列及びヌクレオチドスペーサーまたはリンカーを含めてもよい。
図３５に示す構築物の１つの特定の実施形態では、構築物は、ＲＳＰコード配列とＶＨＨコード配列との間のタグコード配列またはヌクレオチドスペーサー配列内にＵＲＳを含む。このＵＲＳを使用して、追加のＶＨＨドメインコード配列（複数可）を含む追加的なエレメントを、分子クローニングによるモジュラー構築を介して容易に導入することができる。
図４１に示す一般的な構築物の構造を有する特定の構築物（すなわち、図４２Ａ〜Ｂ、図４３Ａ〜Ｂ、図４４Ａ〜Ｂ、及び図４５Ａ〜Ｂ）は、図３８Ｃの構築物（図３９Ａ〜Ｏ、図４０Ａ〜Ｏ）にクローニングすることができ、ここで、（ｉ）図４６Ａに記載のレシピエント構築物は、ＵＲＳを有し、これは構築物を消化する場合に、（ｉｉ）図４６Ｂに記載のドナー構築物の消化によって産生するものに相補的な一本鎖「粘着性」突出末端を、対応するＵＲＳ（点線、図３８Ａ〜３８Ｂ）上で産生し、（ｉｉｉ）ＶＨＨドメイン（複数可）コード配列（複数可）でＮ末端ＲＳＰコード配列及びＡＤＤコード配列を置換した構築物（図４６Ｃ）を生じる。
別の実施形態では、図４６Ａ〜Ｃに記載の構築物の異なるＵＲＳは、ＶＨＨドメイン（複数可）をＡＤＤの下流及びＢｏＮＴ ＬＣの上流に挿入した融合タンパク質をコードする構築物を分子クローニングにおいて作製することを目的とする（図４７Ａ〜Ｃ）。
ＲＳＰ切断活性は、特定の構築物の長さ及び／または組成、切断環境、またはそれらの組み合わせから影響を受ける場合がある。具体例として、ＴＥＶプロテアーゼを用いた切断には還元的（または少なくとも非酸化的）環境が必要である。しかしながら、組換えＢｏＮＴ誘導体の生理学的活性に必須となるジスルフィド結合は、還元的環境下では不安定であり、それゆえに迅速かつ完全なタンパク質分解性の活性化を果たすうえで必ずしも最適とはいえないやり方で、ＴＥＶタンパク質分解工程の間の酸化還元環境を改変する必要がある。したがって、ＴＥＶタンパク質分解に用いる条件は、グルタチオンとグルタチオンジスルフィドを併用することにより、ＴＥＶ作用に必要な還元環境と、組換えＢｏＮＴ誘導体中の必須のジスルフィド結合の維持に必要な非還元環境との間の妥協点を提供する。別の具体例は、ＲＳＰ部位におけるリンカー長の改変を含む。ＲＳＰ部位でのリンカーの長さを延ばすと、立体障害が減少し、プロテアーゼへの露出は増大すると考えられる。非酸化条件下でのＲＳＰ部位でのリンカー長の改変に起因する切断活性への影響は、他の環境における影響よりもいくぶん顕著である場合がある。切断活性は、任意の量で向上可能である。一実施形態では、切断は約５０％向上する。他の実施形態では、切断は約１０％、約２０％、約３０％または約４０％向上する。このような切断活性は、還元及び非還元条件下でのゲル電気泳動及びウェスタンブロッティングを用いた切断の時間経過を評価することによって測定してもよい。
本明細書に記載の構築物中に不安定化残基が存在する場合があり、いくつかの特定の実施形態では、これらの不安定化残基（正電荷アミノ酸など）を除去または置換することが有益である場合がある。例えば、正に荷電したアミノ酸を有するＶＨＨコード配列に関連するリンカーは、治療的積荷の切断をもたらす場合があり、そのような正に荷電したアミノ酸を排除することは有益であり得る。逆に、ＬＣをその治療用積荷から分離するために、ＶＨＨとＬＣとの間の領域が、正に荷電したアミノ酸を含むことが望ましい状況があり得る。
図４６Ｃ及び図４７Ｃに例示する構築物は、プロペプチド融合体を作製するための基礎を提供し、これを用いて抗体を送達する一方で、排除のためにこれを用いてタンパク質を標識することができる。したがって、これらの構築物は、抗体及び場合によっては抗体に結合した任意のタンパク質の、送達及び排除の制御の両方のために重要である。
本発明のさらなる態様は、異種ベクター中の核酸分子を含む発現系及び宿主細胞に関する。本発明は、本明細書に記載の組換え融合タンパク質の発現方法にも関する。本方法は、本明細書に記載の核酸分子、核酸分子に機能的に連結した異種プロモーター、及び核酸分子に機能的に連結した３′調節領域を含む核酸構築物を提供することを含む。核酸構築物を、融合タンパク質を発現させるのに効果的な条件下で宿主細胞に導入する。
融合タンパク質を発現させるための適切な発現系及び宿主細胞は、Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許第７，７８５，６０６号に記載されており、その全体を参照として本明細書に援用する。
一実施形態では、中間領域での切断に影響を与えるのに有効な条件下で、発現させた神経毒を、高特異性プロテアーゼと接触させる。好ましくは、プロペプチド融合体の中間領域は、発現系または宿主細胞の内在性プロテアーゼによって切断されない。
本明細書に記載の融合タンパク質の発現は、従来の組換え技術を用いて選択した発現系に本明細書に記載の核酸分子を導入することによって行うことができる。一般的に、これは、分子が異種である（すなわち、通常は存在しない）発現系に核酸分子を挿入することを含む。哺乳類宿主への特定の外来遺伝子または天然遺伝子の導入は、その遺伝子配列を最初に適切な核酸ベクターに導入することによって行いやすくなる。「ベクター」は、本明細書中では、プラスミド、ファージ、トランスポゾン、コスミド、染色体、ウイルス、ビリオンなどの任意の遺伝子エレメントを意味しており、これは適切な制御エレメントと関連づけた場合に複製することができ、かつ細胞間で遺伝子配列を伝達することができる。したがって、この用語は、クローニングベクター及び発現ベクター、ならびにウイルスベクターを含む。適切なセンス（５′→３′）配向及び正しいリーディングフレームで、発現系またはベクターに異種核酸分子を挿入する。ベクターは、挿入するプロペプチド融合体コード配列の転写及び翻訳に必要なエレメントを保有している。
Ｃｏｈｅｎ及びＢｏｙｅｒの米国特許第４，２３７，２２４号（その全体を参照として本明細書に援用する）は、制限酵素切断及びＤＮＡリガーゼによるライゲーションを用いた組換えプラスミド形態の発現系の構築を記載する。次いで、これらの組換えプラスミドを形質転換によって導入し、原核生物及び組織培養で増殖させた真核細胞を含む単細胞培養物中で複製する。
組換え遺伝子を、ワクシニアウイルス、アデノウイルス、及び例えばレンチウイルスなどのレトロウイルスをはじめとするウイルスに導入してもよい。組換えウイルスは、ウイルスに感染した細胞へプラスミドを遺伝子移入することによって生成することができる。
適切なベクターとして、以下のようなウイルスベクター、例えばラムダベクター系ｇｔ１１、ｇｔ ＷＥＳ．ｔＢ、Ｃｈａｒｏｎ ４など、及び以下のようなプラスミドベクター、例えばｐＢＲ３２２、ｐＢＲ３２５、ｐＡＣＹＣ１７７、ｐＡＣＹＣ１８４、ｐＵＣ８、ｐＵＣ９、ｐＵＣ１８、ｐＵＣ１９、ｐＬＧ３３９、ｐＲ２９０、ｐＫＣ３７、ｐＫＣ１０１、ＳＶ４０、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＳＫ ＋／−またはＫＳ＋／−（“Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ Ｃｌｏｎｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍｓ”Ｃａｔａｌｏｇ（１９９３） ｆｒｏｍ Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ，Ｌａ Ｊｏｌｌａ，ＣＡ参照、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）、ｐＱＥ、ｐＩＨ８２１、ｐＧＥＸ、ｐＦａｓｔＢａｃシリーズ（インビトロジェン社）、ｐＥＴシリーズ（Ｓｔｕｄｉｅｒ ｅｔ．ａｌ．，“Ｕｓｅ ｏｆ Ｔ７ ＲＮＡ Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｔｏ Ｄｉｒｅｃｔ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ Ｃｌｏｎｅｄ Ｇｅｎｅｓ，”Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｖｏｌ．１８５（１９９０）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）、ならびにそれらの任意の誘導体が挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。組換え分子は、形質転換、特に形質導入、接合、可動化、または電気穿孔法によって細胞に導入することができる。Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８９）に記載され、その全体を参照として本明細書に援用する、当該技術分野の標準的なクローニング手順を用いて、ＤＮＡ配列をベクターにクローニングする。
様々な宿主‐ベクター系を利用して、細胞内でプロペプチド融合体コード配列を発現させることができる。第一に、ベクター系は使用する宿主細胞に適合している必要がある。宿主‐ベクター系として：バクテリオファージＤＮＡ、プラスミドＤＮＡ、またはコスミドＤＮＡで形質転換した細菌；酵母ベクターを保有する酵母などの微生物；ウイルス（例えば、ワクシニアウイルス、アデノウイルスなど）に感染した哺乳類細胞系；ウイルス（例えば、バキュロウイルス）に感染した昆虫細胞系；細菌に感染した植物細胞が挙げられる。これらのベクターの発現エレメントは、その強度及び特異性が様々に異なる。使用する宿主‐ベクター系に応じて、多数の適切な転写及び翻訳エレメントのうちの任意の１つを使用することができる。
異なる遺伝子シグナル及びプロセシング事象が、遺伝子発現の多くの段階（例えば、ＤＮＡ転写及びメッセンジャーＲＮＡ（「ｍＲＮＡ」）の翻訳）を制御する。
ＤＮＡ転写は、ＲＮＡポリメラーゼの結合を指示し、それによってｍＲＮＡ合成を促進するＤＮＡ配列であるプロモーターの存在に依存する。真核生物プロモーターのＤＮＡ配列は、原核生物プロモーターのＤＮＡ配列とは異なる。さらに、真核生物のプロモーター及び付随する遺伝子シグナルは、原核生物系においては認識されないか、または機能しない可能性があり、さらに、原核生物プロモーターは、真核細胞においては認識されず、機能することもない。
同様に、原核生物におけるｍＲＮＡの翻訳は、真核生物のそれとは異なる適切な原核生物シグナルの存在に依存する。原核生物におけるｍＲＮＡの効率的な翻訳には、ｍＲＮＡ上のシャイン・ダルガーノ（「ＳＤ」）配列と呼ばれるリボソーム結合部位が必要である。この配列は、タンパク質のＮ末端メチオニンをコードする、通常はＡＵＧである開始コドンの前に位置するｍＲＮＡの短いヌクレオチド配列である。ＳＤ配列は、１６Ｓ ｒＲＮＡ（リボソームＲＮＡ）の３′末端に相補的であり、おそらくはｒＲＮＡとの二重鎖形成によってリボソームへのｍＲＮＡの結合を促進し、リボソームの正しい位置付けを可能にする。遺伝子発現の最大化に関する総説については、Ｒｏｂｅｒｔｓ ａｎｄ Ｌａｕｅｒ，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ６８：４７３（１９７９）を参照されたく、前記文献は、その全体を参照として本明細書に援用する。
プロモーターは、その「強さ」（すなわち、転写を促進するそれらの能力）が異なる。クローニングした遺伝子を発現するうえで、強力なプロモーターを使用して、高レベルの転写、したがって高レベルの遺伝子発現を得ることが望ましい。利用する宿主細胞系に応じて、多数の適切なプロモーターのうちの任意の１つを用いてもよい。例えば、大腸菌、そのバクテリオファージ、またはプラスミド中にクローニングする場合、ＰＨプロモーター、Ｔ７ファージプロモーター、ｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｒｅｃＡプロモーター、リボソームＲＮＡプロモーター、大腸菌ファージλのＰＲ及びＰＬプロモーター、ならびにｌａｃＵＶ５、ｏｍｐＦ、ｂｌａ、ｌｐｐなどを含むが必ずしもこれらに限定されない他のプロモーターを使用して、隣接するＤＮＡセグメントの高レベルの転写を指示してもよい。さらに、組換えＤＮＡ技術または他の合成ＤＮＡ技術によって産生したハイブリッドｔｒｐ‐ｌａｃＵＶ５（ｔａｃ）プロモーターまたは他の大腸菌プロモーターを用いて、挿入した遺伝子の転写を提供してもよい。
特異的に誘導する場合を除いてはプロモーターの働きを阻害する細菌宿主細胞株及び発現ベクターを選択してもよい。特定のオペロンでは、挿入したＤＮＡを効率的に転写するために、特異的誘導物質の添加が必要となる。例えば、ｌａｃオペロンは、ラクトースまたはＩＰＴＧ（イソプロピルチオ‐β‐Ｄ‐ガラクトシド）の添加によって誘導される。ｔｒｐ、ｐｒｏなどの様々な他のオペロンは、別種の制御下にある。
原核細胞における効率的な遺伝子転写及び翻訳のためには、特異的開始シグナルもまた必要である。これらの転写及び翻訳開始シグナルは、遺伝子特異的メッセンジャーＲＮＡ及び合成されたタンパク質それぞれの量によって測定される「強度」の点において様々に異なる場合がある。プロモーターを保有するＤＮＡ発現ベクターはまた、「強力な」転写及び／または翻訳開始シグナルを任意の様々な組み合わせで有してもよい。例えば、大腸菌での効率的な翻訳には、リボソーム結合部位を提供するために、開始コドン（ＡＴＧ）の５′側約７〜９塩基のシャイン・ダルガーノ（ＳＤ）配列が必要である。したがって、宿主細胞リボソームが利用可能な任意のＳＤとＡＴＧとの組合せを用いてもよい。このような組合せとして、大腸菌ファージλのｃｒｏ遺伝子もしくはＮ遺伝子由来、または大腸菌トリプトファンＥ、Ｄ、Ｃ、Ｂ、もしくはＡ遺伝子由来のＳＤとＡＴＧとの組合せが挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。さらに、組換えＤＮＡまたは合成ヌクレオチドの取込みを含む他の技術によって産生する任意のＳＤとＡＴＧとの組合せを用いてもよい。
利用するベクター系及び宿主に応じて、構成的、誘導性、及び抑制性プロモーター、ならびに最小５′プロモーターエレメントを含む任意の数の適切な転写及び／または翻訳エレメントを用いてもよい。
その全体を参照として本明細書に援用するＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｔｈｉｒｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ：Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（２００１）に記載されるようなプロペプチド融合体コード核酸、選択したプロモーター分子、適切な３′調節領域、及び必要に応じてレポーター遺伝子を、当該技術分野で公知の標準的なクローニング手順を用いて、選択したベクター発現系に組み込み、核酸構築物を調製する。
プロペプチド融合体をコードする核酸分子を、センス（すなわち、５′→３′）方向でベクターに挿入し、それによって、コードするプロペプチド融合体の、選択したプロモーター制御下での発現に対し、オープンリーディングフレームを適切に配向する。このようにして、適切なプロモーターの制御下で、単一または複数の核酸を適切なベクターに連結して、核酸構築物を調製してもよい。
プロペプチド融合体をコードする単離核酸分子を発現ベクターに挿入すると、宿主細胞に組み込む準備が整う。組換え分子は、形質転換、特に形質導入、接合、リポフェクション、プロトプラスト融合、可動化、微粒子銃、または電気穿孔法によって細胞に導入することができる。その全体を参照として本明細書に援用するＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇｓ Ｈａｒｂｏｒ，Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８９）に記載されているように、当該技術分野で公知の標準的なクローニング手順を用いてＤＮＡ配列を宿主細胞に組み込む。適切な宿主として、細菌、ウイルス、酵母、真菌、哺乳類細胞、昆虫細胞、植物細胞などが挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。一実施形態では、本発明の宿主細胞として、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）、昆虫細胞、及びピキア・パストリス（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）細胞が挙げられるが、必ずしもこれらに限定するものではない。
一般的には、形質転換した細胞のみを選択的に増殖するのに有用な抗生物質または他の化合物を、培地への添加物として加える。使用する化合物は、宿主細胞を形質転換するプラスミド中に存在する選択用マーカーエレメントによって規定される。適切な遺伝子は、ゲンタマイシン、Ｇ４１８、ハイグロマイシン、ピューロマイシン、ストレプトマイシン、スペクチノマイシン、テトラサイクリン、クロラムフェニコールなどへの耐性を付与する遺伝子である。同様に、識別可能な化合物を産生する酵素をコードする「レポーター遺伝子」、または遺伝子送達の結果に関する関連情報を示す他のマーカーも適している。例えば、様々な発光または燐光性レポーター遺伝子も好適であり、これによって異種遺伝子の存在を視覚的に確認してもよい。
一実施形態では、発現するプロペプチド融合体を、プロペプチド融合体の中間領域での切断を可能にするのに有効な条件下で、高特異性プロテアーゼ（例えば、エンテロキナーゼ、ＴＥＶ配列、またはＷＥＬＱｕｔプロテアーゼ）と接触させる。この手段により、中間領域は、宿主細胞の内在性プロテアーゼによって切断されることがない。発現するプロペプチド融合体は、１つ以上のジスルフィド架橋を有する。
本発明の別の態様は、本明細書に記載のプロペプチド融合体を、軽鎖領域と重鎖領域がジスルフィド結合によって連結している高特異性プロテアーゼ切断部位において切断することによって産生する融合タンパク質に関する。
以下の実施例は、本発明の実施形態を例示するために提供するが、いかなる意味においてもその範囲を限定することを意図するものではない。
実施例１ ― 神経細胞の細胞質ゾルに一本鎖抗体を送達するためのＳＮＡＰ‐２５活性を有さない無毒性誘導体
材料及び方法
ボツリヌス神経毒Ａ無毒性誘導体の発現
以下に述べるＢｏＮＴ／Ａの全長単一形態をバイオエンジニアリングし、発現させ、精製し、その後、前述したようにＴＥＶプロテアーゼによる処理により二本鎖に変換した（Ｉｃｈｔｃｈｅｎｋｏ及びＢａｎｄの米国特許第８，９８０，２８４号、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
Ｅ１９ラット海馬神経細胞の調製及び維持
同期妊娠ＳＤ（Sprague-Dawley）系ラット（タコニック社）を用いて、胎生期１９日目（「Ｅ１９」）の海馬神経細胞を単離した。Ｖｉｃａｒｉｏ‐Ａｂｅｊｏｎ（Ｖｉｃａｒｉｏ‐Ａｂｅｊｏｎ，“Ｌｏｎｇ‐ｔｅｒｍ Ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ Ｈｉｐｐｏｃａｍｐａｌ Ｎｅｕｒｏｎｓ，”Ｃｕｒｒ．Ｐｒｏｔｏｃ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｃｈａｐｔｅｒ ３：Ｕｎｉｔ ３２（２００４）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）のプロトコールに従って、海馬からＥ１９ラット海馬神経細胞を調製した。両側海馬を胎児脳から切り出し、解剖用緩衝液（１５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．２（カタログ番号１５６３００８０、ライフテクノロジーズ社）、Ｃａ２＋及びＭｇ２＋フリーの０．５％グルコース／ＤＰＢＳ（カタログ番号１４１９０‐２５０、ライフテクノロジーズ社））に浸漬し、１×トリプシン／ＥＤＴＡ（１０×トリプシン／ＥＤＴＡは０．５％トリプシン／０．２％ＥＤＴＡである（カタログ番号１５４０００５４、ライフテクノロジーズ社））を添加した解剖用緩衝液１０ｍＬ中での、３７℃、１５分間のインキュベーションにより解離させた。先端熱加工パスツールガラスピペットを用いて組織を磨砕し、細胞数を計測した。単一細胞懸濁液を、播種用培地（１×最小必須培地‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）（１×ＭＥＭ‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）、カタログ番号４１０９００３６、ライフテクノロジーズ社）、１０％ＦＢＳ（ウシ胎仔血清；カタログ番号１６００００４４、ライフテクノロジーズ社）、１×ピルビン酸ナトリウム（１００ｍＭピルビン酸ナトリウム；カタログ番号１１３６０‐０７０、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（１００×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐは１０，０００Ｕ／ｍＬのペニシリン、１０ｍｇ／ｍＬストレプトマイシンである；カタログ番号１５２４００６２、ライフテクノロジーズ社））中、ポリ‐Ｌ‐リジン臭化水素酸塩被覆プレートまたはカバースリップ上にプレーティングした。２時間後、播種用培地を維持培地（１×Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地（カタログ番号２１１０３０４９、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｂ２７サプリメント（カタログ番号１７５０４０４４、ライフテクノロジーズ社）、及び１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で置き換えた。プレーティングの３日後、２μｇ／ｍＬのシトシンβ‐Ｄ‐アラビノフラノシド（ＡｒａＣ、カタログ番号Ｃ１７６８、シグマ社）を維持培地に添加して、グリアの増殖を防止した。３日ごとに培地の半量を新鮮な維持培地に交換した。
ウェスタンブロットによるタンパク質定量に関連する実験では、１００ｍｍプレート上に、１〜４×１０６個／１０ｍＬ培地で細胞を播種した。免疫細胞化学的研究では、６×３５ｍｍ／ウェルのプレートに挿入したカバースリップ上に、１０，０００〜１５０，０００個の細胞を３ｍＬ培地／ウェルで播種した。
ウェスタンブロット分析
ＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ）を、図の説明文及び／または結果に示す時間の間、神経細胞とともにインキュベートした。神経細胞を採取し、氷上で２７ゲージのニードルに試料を数回通過させることによって、プロテアーゼ阻害剤を含有する３００μＬの溶解緩衝液（０．５％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ‐１００、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．５、１０ｍＭ ６‐アミノカプロン酸、２ｍＭベンズアミジン、５ｍＭ ４‐（２‐アミノエチル）ベンゼンスルホニルフルオリド塩酸塩（ＡＥＢＳＦ）、２．５ｍＭ ＥＤＴＡ、３２５μＭベスタチン、３５μＭ Ｅ‐６４、２．５μＭロイペプチン、０．７５μＭアプロチニン）に溶解した。可溶性タンパク質溶解物を、１８，０００ｇで４℃、３０分間遠心分離することによってペレットから分離した。溶解後、各試料中の総タンパク質濃度を測定し、溶解緩衝液で各試料の体積を調整し、プロテアーゼ阻害剤を補充して濃度を等しくした。可溶化試料中の全タンパク質濃度は、Ｍｉｃｒｏ ＢＣＡキット（カタログ番号２３２３５、サーモサイエンティフィック社）を用い、製造元の取扱説明書に従って測定した。各レーンにおよそ等量（１５μｇ）の総タンパク質を添加し、還元ＳＤＳ ＰＡＧＥで分離し、０．２μｍニトロセルロース膜（バイオラッド社）に転写した。転写後、ＴＢＳＴ（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭトリス塩酸 ｐＨ８．０、０．１％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）中の１０％無脂肪乳＋５％ＮＧＳ（ヤギ正常血清、カタログ番号１００００Ｃ、ライフテクノロジーズ社）を用いて、室温、１時間、膜をブロッキングした。一次及び二次抗体を、３％ＮＧＳを含有するＴＢＳＴで希釈した。ブロット膜を一次抗体の存在下、４℃で一晩インキュベートし、次いで二次抗体の存在下、室温で４５分間インキュベートした。インキュベーション後、ブロット膜をＴＢＳＴで５分間×３回洗浄した。Ｓｕｐｅｒ Ｓｉｇｎａｌ Ｗｅｓｔ Ｐｉｃｏ化学発光基質（カタログ番号３４０８０、サーモサイエンティフィック社）を用いて、オートラジオグラフィーによる可視化を行った。ウェスタンブロットのオートラジオグラフを、エプソン社のＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎ １６８０スキャナー上で、Ｓｉｌｖｅｒ Ｆａｓｔ ＡＩ ｖ．６．４．４ｒ７ａソフトウェアを用いてフィルター変更を避けて３００ｄｐｉでスキャンした。既知のＬＣ‐ａｄ含量（ｎｇ／レーン）で還元ＳＤＳ ＰＡＧＥにロードしたＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体試料を用いて標準曲線を作成した。
免疫蛍光分析
ＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ）を神経細胞と共に１６時間インキュベートした。インキュベーションの直後に、細胞を氷冷ＤＰＢＳで３回洗浄し、４％ホルムアルデヒドで１５分間固定し、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ（商標）Ｘ‐１００で５分間透過処理した。固定後、透過性にした細胞をＤＰＢＳで３回洗浄し、室温で１時間、ＤＰＢＳ中の１０％ＢＳＡでブロッキングし、抗ＳＮＡＰ‐２５（カタログ番号１１１０１１、シナプティックシステムズ社、最終濃度０．１ｎｇ／ｍＬ）、抗ＶＡＭＰ‐２（カタログ番号１０４２１１、シナプティックシステムズ社、最終濃度０．１ｎｇ／ｍＬ）、または抗ＥＥＡ１（カタログ番号６１０４５７、ＢＤバイオサイエンス社、最終濃度１０ｎｇ／ｍＬ）で４℃、一晩インキュベートした。一次抗体をＤＰＢＳ‐３％ＮＧＳで希釈した。細胞をＤＰＢＳ‐３％ＮＧＳで３回洗浄し、ＤＰＢＳ‐３％ＮＧＳで希釈した適切な二次抗体の存在下、室温で４５分間インキュベートした。細胞をＤＰＢＳで３回洗浄し、封入剤を用いてスライド上にカバースリップを封入した。画像スキャンは、４８８及び５６８ｎｍの励起線を生成するアルゴン及びＨｅＮｅレーザーを備えたニコンＬＳＭ５１０共焦点顕微鏡で行い、画像は、Ｚｅｉｓｓ ＬＳＭ共焦点顕微鏡ソフトウェア（ｖ．４．２）を用いて分析した。
結果
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄの産生
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄに認められるＳＮＡＰ‐２５に対する残存活性（Ｖａｓｑｕｅｚ‐Ｃｉｎｔｒｏｎらの米国特許出願公開第２０１４／０２１２４５６号におけるＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０に関する議論参照、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）を排除するために、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄの軽鎖の触媒ドメインに追加の４つのアミノ酸置換（Ｑ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、Ｌ３２２＞Ｅ）を作成して、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１を構築した。これらの置換は、ＢｏＮＴ／Ａの３次元結晶構造のコンピュータモデルを用いて設計した。ボツリヌス神経毒の第２世代の無毒性誘導体である本例を、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１と命名した。一実施形態によれば、図１Ａ〜Ｂは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１完全長一本鎖発現産物（すなわち、プロペプチド、図１Ａ）、ならびにアフィニティー精製及び制限特異性プロテアーゼによるプロセシング後に得られるジスルフィド結合ヘテロダイマー（すなわち、成熟神経毒、図１Ｂ）を示す。アフィニティー精製用に全長構築物に組み込むタグ（ＡＰＴＮ及びＡＰＴＣ）に加えて、検出タグ（ＤＴ１及びＤＴ２）を、実験室評価時の検出用に、構築物の成熟重鎖及び軽鎖領域にそれぞれ組み込む。
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１軽鎖はＳＮＡＰ‐２５切断を誘導しない
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１の取込みは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣの受容体への結合とそれに続く細胞質への移送を含む細胞表面受容体媒介プロセスである（Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ Ａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３：１‐８（１９９４）；Ｍａｈｒｈｏｌｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｈｅ Ｓｙｎａｐｔｉｃ Ｖｅｓｉｃｌｅ Ｐｒｏｔｅｉｎ ２Ｃ Ｍｅｄｉａｔｅｓ ｔｈｅ Ｕｐｔａｋｅ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ ｉｎｔｏ Ｐｈｒｅｎｉｃ Ｎｅｒｖｅｓ，”ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．５８０：２０１１‐２０１４（２００６）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。神経細胞培養物を、５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１で、３７℃、１、２４、及び４８時間処理した（図２）。次いで、細胞を、プロテアーゼ阻害剤を補充した氷冷ＤＰＢＳで洗浄し、可溶化し、溶解緩衝液で抽出した。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＨＣドメインのＣ末端に融合したヘマグルチニン・エピトープタグ（ＨＡタグ）、及びＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣのＮ末端に融合した大腸菌 ＯｍｐＦリンカー及びマウスランゲリン融合配列タグ（ＯＬＬＡＳタグ）（それぞれ、ＤＴ２及びＤＴ１）に対する抗体を用いてＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１の重鎖及び軽鎖を同定した。
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣの蓄積を定量するために、精製した還元ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１の標準曲線を作成し、ウェスタンブロットによって分析した。図２は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＨＣ及びＬＣが、培養後の神経細胞において内部移行し、Ｔｒｉｔｏｎ（商標）Ｘ‐１００で抽出して生成した神経細胞培養物の抽出物中において、ＤＴ１及びＤＴ２を用いて検出されることを示す。ＶＡＭＰ‐２に対する抗体を内部対照として含ませ、細胞内ＳＮＡＲＥタンパク質がインタクトであることを決定した。ＳＮＡＰ‐２５に対する抗体は、ＳＮＡＰ‐２５切断の欠失を示す。
ＳＮＡＰ‐２５及びＶＡＭＰ‐２は、シナプス小胞エキソサイトーシスのための分子機構の必須成分であり、神経細胞の細胞質区画に露出するＳＮＡＲＥタンパク質である。ＶＡＭＰ‐２は、小型シナプス小胞と独占的に構造的に会合している。ＳＮＡＰ‐２５は、野生型ＢｏＮＴ／ＡのＬＣプロテアーゼの分子標的である（Ｂｌａｓｉ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅｌｙ Ｃｌｅａｖｅｓ ｔｈｅ Ｓｙｎａｐｔｉｃ Ｐｒｏｔｅｉｎ ＳＮＡＰ‐２５，”Ｎａｔｕｒｅ ３６５：１６０‐１６３（１９９３）、その全体を参照として本明細書に援用する）。内部移行したＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣが、ＳＮＡＰ‐２５切断がなくても同様にＳＮＡＲＥタンパク質を標的化するかどうかを判定するために、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１処理細胞の免疫細胞化学分析を行い、その結果を図３Ａ〜Ｃに示す。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣは、ＳＮＡＰ‐２５（図３Ａ）及びＶＡＭＰ‐２（図３Ｂ）と特異的に共局在化した。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１のいくつかのＬＣ画分がエンドソームマーカーと共局在していたかどうかを判定するために、初期エンドソーム抗原１（「ＥＥＡ１」）を用いて共免疫染色を行った。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣと共局在化したＥＥＡ１のスポットはほとんどなかった（図３Ｃ）。これらの実験から、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣが実際に細胞内区画に局在することを確認した。
一本鎖抗体の送達のためのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１
積荷送達の第二の例は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１のＮ末端に挿入したスペーサードメインの上流に挿入した非中和型抗ＬＣ‐ＢｏＮＴ／Ｂ ＶＨＨ（Ｂ‐１０ ＶＨＨ）ドメインを有するプロトタイプのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１融合タンパク質である。ＶＨＨドメインのＮ末端にはｃ‐ｍｙｃが隣接し、神経細胞の細胞質へのＶＨＨ‐ＬＣ融合タンパク質の送達を検出する。Ｈｉｓタグ及びＳｔｒｅｐタグはそれぞれ、全長発現構築物のＮ末端（ＡＰＴＮ）及びＣ末端（ＡＰＴＣ）に位置し、両方ともＴＥＶプロテアーゼ切断部位（ＲＳＰ）に隣接する。これらの工程により、全長一本鎖発現産物のアフィニティー精製、及び任意の切断型発現変異体の排除が可能になる。図４Ａ〜Ｂに概して示すように、一本鎖発現産物のプロセシング中にＴＥＶプロテアーゼで処理することにより後者のタグを除去し、医薬用途に適した活性ジスルフィド結合ヘテロ二量体を形成する。「ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨ」と呼ぶこの構築物のヌクレオチド配列（配列番号１）及びアミノ酸配列（配列番号２）の一実施形態を、図９Ａ〜Ｌに示す。図５Ａ〜Ｂは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣのＮ末端に融合したＶＨＨドメインが海馬神経細胞に内部移行し、ＳＮＡＰ‐２５（図５Ａ）ならびにシナプスサイクル機構の別の構成要素であるＶＡＭＰ‐２（図５Ｂ）と共局在することを示す。
プロテアソーム分解を介して神経細胞から迅速に排除するためのＶＨＨ標的化抗原を標識する分解促進ドメイン（ＡＤＤ）の使用
図４Ａ〜Ｂに概して示し、図５Ａ〜Ｂ（すなわち、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨ）において評価するように、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１媒体に融合した抗ＬＣ‐ＢｏＮＴ／Ｂ Ｂ‐１０ ＶＨＨは、非中和抗体である。すなわち、Ｂ‐１０ ＶＨＨは、野生型ＢｏＮＴ／ＢのＬＣに高い親和性で結合するが、野生型ＢｏＮＴ／Ｂがその基質であるＶＡＭＰ‐２を切断することを妨げることはない。高親和性のメタロプロテアーゼ中和抗体を使用したとしても、ＶＨＨと野生型ＬＣとの間の複合体の時間的運命が、適時に野生型毒素の細胞内活性を完全に排除することを保証するものではない。したがって、このＶＨＨ‐ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１融合タンパク質が神経細胞の細胞質から野生型ＢｏＮＴ／ＬＣを除去する（すなわち、内部移行後の解毒剤として機能する）ためには、さらなる特異的配列が必要である場合がある。これは、図６Ａ〜Ｂに示すように、ＶＨＨフラグメントのＮ末端に分解促進ドメイン（ＡＤＤ）を配置する（必要に応じてスペーサー配列または検出タグをその間に含んで）ことによって達成される。「ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨデグロン‐１」と呼ぶ、この構築物のヌクレオチド配列（配列番号５）及びアミノ酸配列（配列番号６）の一実施形態を図１１Ａ〜Ｌに記載する。
図６Ａ〜Ｂは、抗体‐抗原複合体をプロテアソーム分解へと導くＡＤＤの実施例としてデグロン‐１配列を用いた、得られる融合タンパク質の一般的な模式図を示す。この原理は一般的であり、プロテアソーム分解シグナル伝達ドメインの操作によって一本鎖ＶＨＨに結合した所望の抗原を排除するように設計することができる。
アフィニティー精製に使用するＮ末端アフィニティータグの除去のための代替プロテアーゼの使用
プロテアソーム経路による排除を最適化するために、リジン残基のような正に荷電した側鎖を有するＮ末端アミノ酸を最終融合タンパク質産物に含めて、ユビキチン化のためのＶＨＨ‐抗原複合体の標的化、及びその結果として生じるプロテオソームの経路を介した分解を増強することができる。しかしながら、アルギニンまたはリジンなどのＮ末端正電荷アミノ酸を有するネイティブに発現するタンパク質は、本質的に不安定である。これらのタンパク質の安定性に関する問題を克服するために、安定に発現するタンパク質前駆体（ＢｏＮＴ誘導体）を、精製後に、ＷＥＬＱｕｔプロテアーゼ（黄色ブドウ球菌由来のＳｐｌＢプロテアーゼ）のような高特異性組換えプロテアーゼを用いて、あらかじめ組み込んでおいた認識配列で切断した。高特異性認識配列ＷＥＬＱにより、このプロテアーゼは、切断産物のＮ末端（この配列に続く）を解放することが可能であり、この場合では、分解の加速を目的として、Ｎ末端にリジン残基が位置する融合タンパク質となるであろう。
Ｎ末端にリジン残基を有するタンパク質はプロテアソームによってより迅速に分解されることから、ＷＥＬＱｕｔプロテアーゼ系によってプロタンパク質が成熟し、その結果としてＮ末端にリジン残基を含む成熟ヘテロ二量体が生成するように、無毒性プロペプチドを設計する。
考察
本明細書に提示するデータは、天然のクロストリジウム神経毒の輸送機構（複数可）を介して薬物（治療剤）を神経細胞の細胞質に送達するための組換えクロストリジウム神経毒を改変するための継続的な努力の一部である。すべてのＢｏＮＴ血清型は、それらのＬＣプロテアーゼを神経細胞の細胞質及び標的、具体的にはＳＮＡＲＥタンパク質に送達する。本アプローチは、天然の毒素の構造及び輸送特性を保持しているが、それを現代の分子生物学のツールを用いて望ましい方法で改変可能なＢｏＮＴの組換え誘導体の発現及び精製方法の開発を想定している。
本実施例では、プロトタイプの媒体ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１の神経細胞への内部移行及び細胞内輸送を記載する。アイデアは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１を「トロイの木馬」として利用し、治療用積荷、特に単一ドメイン抗体を提供することである。このアイデアを、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨ及びＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨデグロン‐１という２つの融合タンパク質を用いて例示する。これらの２つの誘導体は、細胞内エピトープを標的とする単一ドメイン抗体を首尾よく送達する。
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣ及びＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＶＨＨは、いずれも細胞質ゾルタンパク質及びＳＮＡＲＥ複合体のメンバーであるＳＮＡＰ‐２５及びＶＡＭＰ‐２と広範に共局在化していた。ＬＣとエンドソームマーカーとの共局在がほとんどなかったことは特筆に値する点であり、このことは、エンドソーム区画がＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１誘導体を用いる目的地ではなく内部移行の一時的な段階に過ぎないことを示唆している（Ｍｏｎｔｅｃｕｃｃｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ ｏｆ Ａｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｔｅｔａｎｕｓ ａｎｄ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ，”Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１３：１‐８（１９９４）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。これは、エンドソーム局在化を示し、シナプス小胞マーカーとほとんど共局在しないクロストリジウム毒素の改変誘導体に基づく送達媒体を記載する他の研究室からの報告とは対照的である（Ｈｏ ｅｔ ａｌ．，“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ‐ｂａｓｅｄ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｖｅｈｉｃｌｅｓ ｆｏｒ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｃｅｌｌ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．Ｄｅｓ．Ｓｅｌ．２４：２４７‐２５３（２０１１）；Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．，“Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ ａｓ ａ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｖｅｈｉｃｌｅ Ｔａｒｇｅｔｉｎｇ Ｎｅｒｖｏｕｓ Ｓｙｓｔｅｍ，”Ｂｉｏｃｈｉｍｉｅ ９２：１２５２‐１２５９（２０１０）；Ｚｈａｎｇ ｅｔ ａｌ．，“Ａｎ Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｖｅｈｉｃｌｅ ｆｏｒ Ｂｏｔｕｌｉｓｍ Ｃｏｕｎｔｅｒｍｅａｓｕｒｅ，”ＢＭＣ Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．９：１２（２００９）；Ｂｒｕｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，“Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ Ｂｅｌｔ ａｓ ａｎ Ｉｎｔｒａｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｈａｐｅｒｏｎｅ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ，”ＰＬｏＳ Ｐａｔｈｏｇ．３：１１９１‐１１９４（２００７）；Ｋｏｒｉａｚｏｖａ ｅｔ ａｌ．，“Ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｌｉｇｈｔ Ｃｈａｉｎ Ｐｒｏｔｅａｓｅ ｔｈｒｏｕｇｈ ｔｈｅ Ｈｅａｖｙ Ｃｈａｉｎ Ｃｈａｎｎｅｌ，”Ｎａｔ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏｌ．１０：１３‐１８（２００３）、これらの文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
要約すると、本明細書で報告するデータは、本技術プラットフォームにより、野生型ＢｏＮＴ／Ａの構造及び輸送特性を維持する組換えボツリヌス神経毒誘導体をバイオエンジニアリングして産生できることを示す以前の研究を追認するものである。本プラットフォームは、特定の用途に合わせたＢｏＮＴの生成手段を提供する。本実施例では、神経細胞の細胞質ゾルへの無毒性誘導体軽鎖の送達を例証し、このことは、この融合体を「トロイの木馬」として利用して、薬物を神経細胞の細胞質ゾルに送達できる可能性があることを示している。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１は、神経細胞を特異的に標的とし、高レベルのＬＣを神経細胞の細胞質に移行させる能力を保有しており、細胞質内でＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐１ ＬＣは、蓄積及び存続することができ、同時に、細胞毒性が存在する明白な形跡はない。神経細胞の細胞質から回収したＢｏＮＴ／Ａ ＬＣ‐Ｂ‐１０（Ｃｙｔｏ‐３０２）は、以下に記載の免疫沈降実験によって、及び図１８に示すように、ＬＣ／Ｂに結合する能力を依然として保持している。この新規技術は、すべてのＢｏＮＴ血清型に対して機能するように設計することができ、これを適用して、重要な神経疾患の原因となる広範囲の病原性タンパク質に結合し、及びその機能を中和することができる。
実施例２ ― 神経細胞の細胞質へ一本鎖抗体を送達する送達媒体としてのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０
序論
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０は、ｉｎ ｖｉｖｏ全身投与後の神経筋接合部におけるシナプス前領域に見出されることが従前に示されている。ｉｎ ｖｉｔｒｏで、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０は、神経細胞の細胞質ゾルにマイクロモル濃度で内部移行し、細胞質ゾル内でＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０軽鎖はシナプスタンパク質と共局在する。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０の局所筋肉内投与は、野生型ＢｏＮＴ／Ａの特徴である筋衰弱／麻痺をもたらし、このことは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０の神経調節物質としての薬理学的特性を示すものである。
本実施例では、残存ＳＮＡＰ‐２５触媒活性を有するボツリヌス神経毒無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０）を用いた一本鎖抗体の送達の達成に関する経験的実証を示す。ＳＮＡＰ‐２５に対するＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０軽鎖の触媒活性を、積荷物質の送達の達成度を定量化するための測定値として用い；本実施例においては、ａｄ‐０軽鎖に融合した重鎖抗体の可変ドメイン（ＶＨＨ）の、神経細胞の細胞質ゾルへの送達について示す。ＶＨＨまたは一本鎖抗体を用いることにより、神経細胞の細胞質に存在する病原性タンパク質の標的化、中和、及び排除が可能になり、これらを多数の神経症状の治療薬として役立てることができる。いくつかの状況では、残存ＳＮＡＰ‐２５切断活性は、抗体によって付与される治療活性と相乗作用し、両者の個別の活性よりも高い治療結果をもたらすことができる。
材料及び方法
ボツリヌス神経毒Ａ無毒性誘導体の発現
以下に述べるＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ）の全長一本鎖形態をバイオエンジニアリングし、発現させ、及び精製し、次いで、上記のようにＴＥＶプロテアーゼで処理することにより二本鎖に変換した（Ｂａｎｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｆｏｒ Ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ Ｓｔｕｄｉｅｓ ａｎｄ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐ．Ｐｕｒｉｆ．７１：６２‐７３（２０１０）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。
Ｅ１９ラット海馬神経細胞の調製及び維持
同期妊娠ＳＤ（Sprague-Dawley）系ラット（タコニック社）を用いて、胎生期１９日目（Ｅ１９）の海馬神経細胞を単離した。Ｖｉｃａｒｉｏ‐Ａｂｅｊｏｎ（Ｖｉｃａｒｉｏ‐Ａｂｅｊｏｎ，“Ｌｏｎｇ‐ｔｅｒｍ Ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ Ｈｉｐｐｏｃａｍｐａｌ Ｎｅｕｒｏｎｓ，”Ｃｕｒｒ．Ｐｒｏｔｏｃ．Ｎｅｕｒｏｓｃｉ． Ｃｈａｐｔｅｒ ３：Ｕｎｉｔ ３２（２００４）、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）のプロトコールに従って、海馬からＥ１９ラット海馬神経細胞を調製した。両側海馬を胎児脳から切り出し、解剖緩衝液（１５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．２（カタログ番号１５６３００８０、ライフテクノロジーズ社）、Ｃａ２＋及びＭｇ２＋フリーの０．５％グルコース／ＤＰＢＳ（カタログ番号１４１９０‐２５０、ライフテクノロジーズ社））中に浸漬し、１×トリプシン／ＥＤＴＡ（１０×トリプシン／ＥＤＴＡは０．５％トリプシン／０．２％ＥＤＴＡである、カタログ番号１５４０００５４、ライフテクノロジーズ社）を添加した解剖緩衝液１０ｍＬ中での３７℃、１５分間のインキュベーションにより解離させた。先端熱加工したパスツールガラスピペットを用いて組織を磨砕し、細胞数を計測した。単一細胞懸濁液を、播種用培地（１×最小必須培地‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）（１×ＭＥＭ‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）、カタログ番号４１０９００３６、ライフテクノロジーズ社）、１０％ＦＢＳ（ウシ胎仔血清；カタログ番号１６００００４４、ライフテクノロジーズ社）、１×ピルビン酸ナトリウム（１００ｍＭピルビン酸ナトリウム；カタログ番号１１３６０‐０７０、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（１００×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐは１０，０００Ｕ／ｍＬのペニシリン、１０ｍｇ／ｍＬストレプトマイシンである；カタログ番号１５２４００６２、ライフテクノロジーズ社））中、ポリ‐Ｌ‐リジン臭化水素酸塩被覆プレートまたはカバースリップ上にプレーティングした。２時間後、播種用培地を維持培地（１×Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地（カタログ番号２１１０３０４９、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｂ２７サプリメント（カタログ番号１７５０４０４４、ライフテクノロジーズ社）、及び１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で置き換えた。プレーティングの３日後、２μｇ／ｍＬのシトシンβ‐Ｄ‐アラビノフラノシド（ＡｒａＣ、カタログ番号Ｃ１７６８、シグマ社）を維持培地に添加して、グリアの増殖を防止した。３日ごとに培地の半量を新鮮な維持培地に交換した。
ウェスタンブロットによるタンパク質定量に関連する実験では、１００ｍｍプレート上に、１〜４×１０６個／１０ｍＬ培地で細胞を播種した。免疫細胞化学的研究では、６×３５ｍｍ／ウェルのプレートに挿入したカバースリップ上に、５０，０００〜１００，０００個の細胞を３ｍＬ培地／ウェルで播種した。
ウェスタンブロット研究
ＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ）を、図の説明文及び／または結果に示す時間の間、神経細胞とともにインキュベートした。神経細胞を採取し、氷上で２７ゲージのニードルに試料を数回通過させることによって、プロテアーゼ阻害剤を含有する３００μＬの溶解緩衝液（０．５％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ‐１００、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．５、１０ｍＭ ６‐アミノカプロン酸、２ｍＭベンズアミジン、５ｍＭ ４‐（２‐アミノエチル）ベンゼンスルホニルフルオリド塩酸塩（ＡＥＢＳＦ）、２．５ｍＭ ＥＤＴＡ、３２５μＭベスタチン、３５μＭ Ｅ‐６４、２．５μＭロイペプチン、０．７５μＭアプロチニン）に溶解した。可溶性タンパク質溶解物を、１８，０００ｇで４℃、３０分間遠心分離することによってペレットから分離した。溶解後、各試料中の総タンパク質濃度を測定し、溶解緩衝液で各試料の体積を調整し、プロテアーゼ阻害剤を補充して濃度を等しくした。可溶化試料中の全タンパク質濃度は、Ｍｉｃｒｏ ＢＣＡキット（カタログ番号２３２３５、サーモサイエンティフィック社）を用い、製造元の取扱説明書に従って測定した。各レーンにおよそ等量（１５μｇ）の総タンパク質を添加し、還元ＳＤＳ ＰＡＧＥで分離し、０．２μｍニトロセルロース膜（バイオラッド社）に転写した。転写後、ＴＢＳＴ（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭトリス塩酸 ｐＨ８．０、０．１％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）中の１０％無脂肪乳＋５％ＮＧＳ（ヤギ正常血清、カタログ番号１００００Ｃ、ライフテクノロジーズ社）を用いて、室温、１時間、膜をブロッキングした。一次及び二次抗体を、３％ＮＧＳを含有するＴＢＳＴで希釈した。ブロット膜を一次抗体の存在下、４℃で一晩インキュベートし、次いで二次抗体の存在下、室温で４５分間インキュベートした。インキュベーション後、ブロット膜をＴＢＳＴで５分間×３回洗浄した。Ｓｕｐｅｒ Ｓｉｇｎａｌ Ｗｅｓｔ Ｐｉｃｏ化学発光基質（カタログ番号３４０８０、サーモサイエンティフィック社）を用いて、オートラジオグラフィーによる可視化を行った。ウェスタンブロットのオートラジオグラフを、エプソン社のＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎ １６８０スキャナー上で、Ｓｉｌｖｅｒ Ｆａｓｔ ＡＩ ｖ．６．４．４ｒ７ａソフトウェアを用いてフィルター変更を避けて３００ｄｐｉでスキャンした。既知のＬＣ‐ａｄ含量（ｎｇ／レーン）で還元ＳＤＳ ＰＡＧＥにロードしたＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体試料を用いて標準曲線を作成した。
指外転アッセイ
参照としてその全体を本明細書に援用するＡｏｋｉ，“Ｐｒｅｃｌｉｎｉｃａｌ Ｕｐｄａｔｅ ｏｎ ＢＯＴＯＸ（登録商標）（Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ）‐Ｐｕｒｉｆｉｅｄ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｃｏｍｐｌｅｘ Ｒｅｌａｔｉｖｅ ｔｏ Ｏｔｈｅｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ，”Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ（１９９９）に記載されているように、古典的な指外転スコアリング（「ＤＡＳ」）アッセイを改変した方法を用いて、局所的な筋力低下効果の測定を行った。ＤＡＳアッセイでは、マウスを短時間吊るして特徴的な驚愕反応を誘発し、反応において動物は後肢を伸ばしてその後肢の指を外転させる。マウスＤＡＳアッセイは、筋力低下効果を比較するうえで特に有用である（Ａｏｋｉ，“Ｐｒｅｃｌｉｎｉｃａｌ Ｕｐｄａｔｅ ｏｎ ＢＯＴＯＸ（登録商標）（Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｔｏｘｉｎ Ｔｙｐｅ Ａ）‐Ｐｕｒｉｆｉｅｄ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｃｏｍｐｌｅｘ Ｒｅｌａｔｉｖｅ ｔｏ Ｏｔｈｅｒ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ，”Ｅｕｒｏｐｅａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｌｏｇｙ（１９９９）及びＡｏｋｉ，“Ａ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｓａｆｅｔｙ Ｍａｒｇｉｎｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ Ａ， Ｂ， ａｎｄ Ｆ Ｉｎ Ｍｉｃｅ，”Ｔｏｘｉｃｏｎ ３９：１８１５‐１８２０（２００１）、これらの文献は参照としてその全体を本明細書に援用する）。
指外転を評価するために、３１ゲージ／ポイントスタイルカスタムのＲＮ針を備えたハミルトン７０１ ＲＮシリンジを用いて、５匹のＣＤ‐１雌（８週齢）マウスの群に対し、その右腓腹筋にＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨを最終容量３μｌで注射した。参照としてその全体を本明細書に援用するＡｏｋｉ，“Ａ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｓａｆｅｔｙ Ｍａｒｇｉｎｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ Ａ， Ｂ， ａｎｄ Ｆ Ｉｎ Ｍｉｃｅ，”Ｔｏｘｉｃｏｎ ３９：１８１５‐１８２０（２００１）に記載のスコアリングシステムを用いて、指外転を採点することができる。マウスＤＡＳアッセイは、ボツリヌス神経毒産物の筋力低下効果を比較するために使用する最も一般的なアッセイである。参照としてその全体を本明細書に援用するＡｏｋｉ，“Ａ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｓａｆｅｔｙ Ｍａｒｇｉｎｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ Ａ， Ｂ， ａｎｄ Ｆ Ｉｎ Ｍｉｃｅ，”Ｔｏｘｉｃｏｎ ３９：１８１５‐１８２０（２００１）は、マウスＤＡＳアッセイを用いて、ＢｏＮＴ／Ａ製剤の用量応答効果の比較を行った。この試験を利用して、マウスにおけるＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨの薬理学的活性を定義した。４８時間における指外転を評価した。
結果
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０のｉｎ ｖｉｔｒｏでの薬理学的活性
ＳＮＡＰ‐２５に対する残存活性を測定するために、Ｅ１９ラット海馬神経細胞を１４日間培養し、次いで異なる濃度のＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０に７２時間曝露した。ウェスタンブロット分析の結果は、濃度依存的なＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０誘導性ＳＮＡＰ‐２５切断を示している（図１４）。
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０はＶＨＨまたは一本鎖抗体を神経細胞の細胞質ゾルへ効果的に送達する
プロトタイプのＢｏＮＴ／Ａ無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ）を用いる積荷送達の第一の例は、野生型ＢｏＮＴ／Ｂの軽鎖に対して産生した重鎖抗体（ＶＨＨ）または一本鎖抗体の可変ドメインを送達するように設計した（ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨ）。アルパカ由来の一本鎖ＶＨＨは約１１ｋＤａの分子量を有し、高い親和性で特異的抗原に結合することができる。試験した特異的ＶＨＨは、非中和性抗ＬＣ‐ＢｏＮＴ／Ｂ ＶＨＨ（ＶＨＨ Ｂ‐１０）であって、そのアミノ酸配列は、チャールズ・シューメイカー博士（タフツ大学獣医学部）によって提供され、その後、これを本発明に準ずるように改変し、その発現を最適化した。ＶＨＨドメインの配置に関するいくつかのバリエーションを考案し、図１３Ａ〜Ｂに示す設計に到達し、これらの図は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０のＮ末端に挿入した非中和性抗ＬＣ‐ＢｏＮＴ／Ｂ ＶＨＨドメインを保有するＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０プロペプチド融合体及び成熟融合タンパク質の模式図を示す。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０は残存ＳＮＡＰ‐２５切断活性を保持しているため（図１４）、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０軽鎖の触媒活性を測定し、これを神経細胞の細胞質ゾルへの軽鎖及びＶＨＨの送達の成功に対する読み出し情報とすることができる。したがって、１４日間のｉｎ ｖｉｔｒｏ（１４‐ＤＩＶ）Ｅ１９ラット海馬神経細胞培養物を、異なる時点において５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨに曝露した。５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨで２４、４８、及び７２時間処理した細胞においてＳＮＡＰ‐２５切断が観察され（図１５）、これは、神経細胞の細胞質へのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０のＬＣ及びＶＨＨの移送の成功を示している。βアクチンを添加対照として使用し、各レーンに等量の総タンパク質を添加したことを示した（図１５）。
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０‐ＶＨＨは局所的筋麻痺を誘発し、神経細胞の細胞質ゾルへの積荷の輸送の成功を示す
ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０誘発性の筋力低下は、従前に、マウスにおけるＤＡＳアッセイを用いてｉｎ ｖｉｖｏにおいて測定された（ＰＣＴ公開ＷＯ２０１４／１１７１４８参照、前記文献はその全体を参照として本明細書に援用する）。神経細胞の細胞質ゾルへのＶＨＨ抗体の送達の成功をさらに検証するために、融合タンパク質の送達の成功に関するｉｎ ｖｉｖｏでの読み出し情報として、ＤＡＳアッセイを利用した。１μｇのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨを３μｌの生理食塩水に含ませて左腓腹筋に注入すると、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０に対する薬学的応答に匹敵する指外転反射の確定的な麻痺が生じ、このことは、図１６に認められるように、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０の軽鎖に融合したＶＨＨが運動神経細胞の細胞質ゾル区画にうまく送達されたことを示している。ＶＨＨを含まないＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０を注入したマウスを、対照として用いた。
図１８は、免疫沈降実験の結果を示しており、ここでは、上記及び図１９Ａ〜Ｌに記載の、非中和性抗ＬＣ‐ＢｏＮＴ／Ｂ ＶＨＨ（Ｂ‐１０ ＶＨＨ）を保有するプロトタイプのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０融合タンパク質を、プロセシング後のジスルフィド結合ヘテロ二量体の形態で用いて、海馬神経細胞培養物を処理している。図１８のレーン４と５の比較は、ＬＣ／Ｂに対してＢｏＮＴ融合ＶＨＨで処理した神経細胞由来の細胞質ゾル抽出物中で、ＬＣ／Ｂ抗原結合活性を回復させ、ｃ‐ｍｙｃタグを用いて融合タンパク質を免疫沈降することができることを示す。このことはまた、神経細胞への送達後に回収したプロトタイプのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０融合体がＬＣ／Ｂ抗原結合活性を保持していたということも示しており、これは、細胞の細胞質ゾル画分から回収したＶＨＨ、すなわち構築物をエンドソーム外へ移送した後のＶＨＨが、免疫沈降においてＬＣ／Ｂを特異的に沈降させる能力を依然として保持していることによるものである。
考察
本実施例において、神経細胞の細胞質ゾルに一本鎖抗体を送達するための分子媒体としてのＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０の使用を記載した。アイデアは、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０を「トロイの木馬」として用いて神経細胞の細胞質ゾルを標的とし、その一方で、ＳＮＡＰ‐２５に対するＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０軽鎖の触媒活性を治療用積荷送達の読み取り情報として利用することである。ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０とＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０ ＶＨＨとの間の効力（用量の使用）の相違は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０の軽鎖に融合したＶＨＨがＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０軽鎖の薬理学的特性を低下させることを示している。にもかかわらず、ｉｎ ｖｉｔｒｏでＳＮＡＰ‐２５切断が検出され、ｉｎ ｖｉｖｏで指外転が測定されるという事実は、ＢｏＮＴ／Ａ ａｄ‐０軽鎖に融合したＶＨＨが神経細胞の細胞質区画に到達しているという具体的な経験的証拠として役立つ。
実施例３ ― 神経細胞の細胞質への標的送達のための分子媒体としてのボツリヌス神経毒Ｃの無毒性誘導体（ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ）
序論
野生型（ｗｔ）ＢｏＮＴの構造及び輸送特性を保持する、ボツリヌス神経毒（ＢｏＮＴ）の組換え誘導体の容易な産生を可能にする方法を開発した。ｗｔのＢｏＮＴ／Ａの無毒性誘導体は、上記に記載した。本実施例では、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄと呼ぶ、軽鎖の触媒ドメインに３つのアミノ酸置換（Ｅ４４６＞Ａ；Ｈ４４９＞Ｇ；Ｙ５９１＞Ａ）を有するＢｏＮＴ／Ｃ１の無毒性誘導体を設計し、発現させ、精製し、及び評価する。
方法
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄのコード配列を、タンパク質ヘテロダイマー内の軽鎖／重鎖の相互作用の破壊を最小限に留めながら軽鎖プロテアーゼを不活性化するように設計した。組換えタンパク質を、可溶性プロペプチドとして培地中に分泌させた。このタンパク質を、ＢｏＮＴ／Ａの無毒性誘導体に対するＢａｎｄ ｅｔ ａｌ．，“Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ ｏｆ Ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ Ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎ Ａ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ ｆｏｒ Ｔｒａｆｆｉｃｋｉｎｇ Ｓｔｕｄｉｅｓ ａｎｄ Ｎｅｕｒｏｎａｌ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ，”Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｘｐ．Ｐｕｒｉｆ．７１：６２‐７３（２０１０）に記載の方法のように、タンデムアフィニティークロマトグラフィーにより均一に精製し、ＴＥＶプロテアーゼでプロセシングして、ジスルフィド結合ヘテロ二量体を形成させた（図２１Ａ〜Ｃ）。
Ｅ１９胚性ラット皮質ニューロンの初代培養物中で精製ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄについての検討を行い、ウェスタンブロット及び免疫細胞化学を用いて、酵素活性、神経細胞への内部移行、及び輸送パターンを評価した。ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄのマウス腹腔内ＬＤ５０（ＭＩＰＬＤ５０）を、マウス致死アッセイによって測定した。ｉｎ ｖｉｖｏでの神経筋接合部へのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの標的化は、マウス横隔膜におけるαブンガロトキシンとの共局在を評価することによって判定した。
Ｅ１９ラット皮質神経細胞の調製及び維持
同期妊娠ＳＤ（Sprague-Dawley）系ラット（タコニック社）を用いて、胎生期１９日目（Ｅ１９）の皮質神経細胞を単離した。両側皮質を胎児脳から切り出し、解剖緩衝液（１５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．２（カタログ番号１５６３００８０、ライフテクノロジーズ社）、Ｃａ２＋及びＭｇ２＋フリーの０．５％グルコース／ＤＰＢＳ（カタログ番号１４１９０‐２５０、ライフテクノロジーズ社）に浸漬し、１×トリプシン／ＥＤＴＡ（１０×トリプシン／ＥＤＴＡは０．５％トリプシン／０．２％ＥＤＴＡである、カタログ番号１５４０００５４、ライフテクノロジーズ社）を補充した１０ｍＬの解剖緩衝液中で、３７℃、１０分間のインキュベーションにより解離させた。先端熱加工したパスツールガラスピペットを用いて組織を磨砕し、細胞数を計測した。単一細胞懸濁液を、播種用培地（１×最小必須培地‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）（１×ＭＥＭ‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）、カタログ番号４１０９００３６、ライフテクノロジーズ社）、１０％ＦＢＳ（ウシ胎仔血清；カタログ番号１６００００４４、ライフテクノロジーズ社）、１×ピルビン酸ナトリウム（１００ｍＭピルビン酸ナトリウム；カタログ番号１１３６０‐０７０、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（１００×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐは１０，０００Ｕ／ｍＬのペニシリン、１０ｍｇ／ｍＬストレプトマイシンである；カタログ番号１５２４００６２、ライフテクノロジーズ社）中、ポリ‐Ｌ‐リジン臭化水素酸塩被覆プレートまたはカバースリップ上にプレーティングした。２時間後、播種用培地を維持培地（１×Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地（カタログ番号２１１０３０４９、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｂ２７サプリメント（カタログ番号１７５０４０４４、ライフテクノロジーズ社）、及び１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で置き換えた。プレーティングの３日後、２ｍｇ／ｍＬのシトシンｂ‐Ｄ‐アラビノフラノシド（ＡｒａＣ、カタログ番号Ｃ１７６８、シグマ社）を維持培地に添加して、グリアの増殖を防止した。３〜５日ごとに培地の半量を新鮮な維持培地に交換した。
ウェスタンブロット分析
神経細胞を採取し、氷上で２５ゲージのニードルに試料を数回通過させることによって、プロテアーゼ阻害剤を含有する２００ｍＬの溶解緩衝液（０．５％Ｔｒｉｔｏｎ （商標）Ｘ‐１００、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．５、１０ｍＭ ６‐アミノカプロン酸、２ｍＭベンズアミジン、５ｍＭ ４‐（２‐アミノエチル）ベンゼンスルホニルフルオリド塩酸塩（ＡＥＢＳＦ）、２．５ｍＭ ＥＤＴＡ、３２５ｍＭベスタチン、３５ｍＭ Ｅ‐６４、２．５ｍＭロイペプチン、０．７５ｍＭアプロチニン）に溶解した。可溶性タンパク質溶解物を、１８，０００ｇで４℃、２０分間遠心分離することによってペレットから分離した。溶解後、各試料中の総タンパク質濃度を測定し、溶解緩衝液で各試料の体積を調整し、プロテアーゼ阻害剤を補充して濃度を等しくした。各レーンにおよそ３０μｇの総タンパク質を添加し、還元ＳＤＳ ＰＡＧＥで分離し、０．２ｍｍニトロセルロース膜（バイオラッド社）に転写した。転写後、ＴＢＳＴ（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭトリス塩酸 ｐＨ８．０、０．１％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）中の１０％無脂肪乳＋５％ＮＧＳ（ヤギ正常血清、カタログ番号１００００Ｃ、ライフテクノロジーズ社）を用いて、室温、２時間、膜をブロッキングした。ブロット膜を一次抗体の存在下、４℃で一晩インキュベートし、次いで二次抗体の存在下、室温で４５分間インキュベートした。インキュベーション後、ブロット膜をＴＢＳＴで５分間×３回洗浄した。Ｓｕｐｅｒ Ｓｉｇｎａｌ Ｗｅｓｔ Ｐｉｃｏ化学発光基質（カタログ番号３４０８０、サーモサイエンティフィック社）を用いて、オートラジオグラフィーによる可視化を行った。
免疫細胞化学分析
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄまたはＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ Ｂ８（Ｂ８一本鎖抗体との融合タンパク質）を、図の説明に示すように異なる時間、神経細胞とともにインキュベートした。インキュベーションの直後に、細胞を氷冷ＤＰＢＳで３回洗浄し、４％ホルムアルデヒドで１５分間固定し、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ（商標）Ｘ‐１００で５分間透過処理した。固定後、透過性にした細胞をＤＰＢＳで３回洗浄し、１０％ＢＳＡ／ＤＰＢＳ中で室温、１時間ブロッキングし、一次抗体の存在下、４℃で一晩インキュベートした。一次抗体をＤＰＢＳ‐ＮＧＳで希釈した。一次抗体インキュベーション後、細胞をＤＰＢＳ‐ＮＧＳ（３％ＮＧＳを含む１×ＤＰＢＳ）で３回洗浄し、二次抗体（ＤＰＢＳ‐ＮＧＳ中）の存在下、室温で４５分間インキュベートした。二次抗体インキュベーション後、細胞をＤＰＢＳで３回洗浄し、封入剤を用いてスライド上にカバースリップを封入した。画像スキャンは、ニコンＬＳＭ５１０共焦点顕微鏡で行い、画像は、Ｚｅｉｓｓ ＬＳＭ共焦点顕微鏡ソフトウェアを用いて解析した。
細胞ベースのアッセイにおけるＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ触媒活性の検出
野生型ＢｏＮＴ／Ｃの天然基質シンタキシン‐１及びＳＮＡＰ‐２５に対してＢｏＮＴ／Ｃ ａｄが酵素活性を有するかどうかを検出するために、１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット皮質神経細胞を異なる濃度のＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに９６時間曝露した。インキュベーション時間後、細胞を洗浄し、ウェスタンブロット分析のために調製した（図２２Ａ）。細胞を、培地のみ（陰性対照）、０．５ｎＭ ＢｏＮＴ／Ｃ（陽性対照）、または５、２５、もしくは１００ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに９６時間曝露した。ウェスタンブロット分析をパーフロム（ｐｅｒｆｒｏｍ）し、シンタキシン‐１及びＶＡＭＰ‐２の検出を行い；この際、ＶＡＭＰ‐２は内部添加対照として用いた。図２２Ｂにおいて、細胞を１、５、２５、または１００ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに９６時間曝露した。ウェスタンブロット分析を行い、シンタキシン‐１、ＳＮＡＰ‐２５、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ ＬＣ、及びＶＡＭＰ‐２をそれぞれ検出した。ＶＡＭＰ‐２は、内部添加対照として機能する。
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの神経細胞への内部移行の検出
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの神経細胞への内部移行を検出するために、１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット海馬培養物を２５ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄに１６時間曝露した。インキュベーション後、ＶＡＭＰ‐２、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ ＬＣ、ＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣ、及びＥＥＡ‐１を検出するモノクローナル抗体を用いた免疫細胞化学のために細胞を調製し、共焦点顕微鏡法を用いて分析した。
ＢｏＮＴ／Ｃの神経筋接合部への輸送
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの輸送パターンを調べるために、６週齢のＣＤ‐１雌マウスに、０．４ｍｇ／ｋｇのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを腹腔内注射した。全身注入の２４時間後、マウスを安楽死させ、横隔膜を単離し、免疫染色のために調製した。片側横隔膜を、シンタキシン、ＢｏＮＴ／Ｃ ＨＣ、及びαブンガロトキシンに対するモノクローナル抗体で染色し、共焦点顕微鏡法で分析した。
マウスにおけるＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの毒性
マウスにおけるＢｏＮＴ／Ｃの毒性を測定するために、０．０４、０．２、０．４、２、または４ｍｇ／ｋｇのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを腹腔内注射した８週齢のＣＤ‐１雌マウスの生存率を測定した。ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを、０．０２％ゼラチンを補充したＤＰＢ‐Ｓで希釈した。０．２５０ｍｌの最終容量でマウス腹腔内に注射した。
結果
１Ｌ培養物からの精製タンパク質の最終収量はおよそ５０ｍｇであった。ＢｏＮＴ／Ｃがシナプスタンパク質ＳＮＡＰ‐２５及びＶＡＭＰ‐２と共局在することを見出した（図２３Ａ〜Ｂ）；初期／後期エンドソームマーカーとのわずかな共局在もまた観察された（図２４）。最大１００ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄを用いて神経細胞培養物を９６時間処理したが、ＳＮＡＲＥタンパク質の切断を検出することはできなかった（図２２Ａ〜Ｂ）。ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄのＭＩＰＬＤ５０は４ｍｇ／ｋｇを上回ると判定された（表１）。２ｍｇ／ｋｇ以上のＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ用量を注入したマウスは、ワスピー様の老廃物（ｗａｓｐｙ‐ｌｉｋｅ ｗａｓｔｅ）、全身の衰弱及び呼吸困難を含む有害な臨床症状を示した。動物に腹腔内注射した後、重鎖がマウス横隔膜上のαブンガロトキシンに局在化したことから、全身投与後にＢｏＮＴ／Ｃ ａｄが神経筋接合部へ輸送されることを実証した（図２５Ａ〜Ｂ）。
（表１）ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄマウス致死アッセイ
Figure 2017538414
結論
ＢｏＮＴ／Ｃは、全身投与後の神経‐筋肉接合部への輸送、及びシナプス前性タンパク質と共局在する能力によって示される天然構造を維持する。ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの極めて低い毒性、触媒活性の欠如、及びその神経細胞標的化特性は、神経細胞の細胞質への薬物送達のための分子媒体としてのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄの有用性を示している。
実施例４ ― 無毒性組換え神経毒媒体（ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ）を介して送達するボツリヌス神経毒に対する一本鎖抗体の曝露後の有効性
序論
ボツリヌス中毒に対する現在の治療は、抗毒素の投与に依存する。これらの抗毒素は抗体または抗体断片であり、ボツリヌス神経毒（ＢｏＮＴ）に対してのみ有効であり、その一方で毒素は循環器中に残る。ボツリヌス中毒患者においては、患者が診断されるまでに多くの毒素が神経細胞内に蓄積し、抗毒素治療が部分的にしか有効にならないため、死を防ぐために長期間の人工呼吸がしばしば必要となる。ＢｏＮＴを毒物投与した神経細胞のシナプス前区画に一本鎖抗体を直接送達するためのＢｏＮＴ／Ｃの組換え無毒性誘導体を開発した。一本鎖抗体は、ＢｏＮＴ／Ａの軽鎖をブロックすることによって、毒物投与された神経細胞内のボツリヌス中毒症状を打ち消す。本実施例では、Ｃ／Ｂ８と呼ぶ、無毒性ＢｏＮＴ／Ｃ１誘導体（ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ）を介して一本鎖ＶＨＨラクダ科動物抗体（Ｂ８）を送達することを含む細胞内治療法を記載し、この治療法は、毒素が神経細胞内に既に進入した後に有効であるように設計されている。
これらの研究の第一の目的は、ＢｏＮＴ／Ａによる中毒に関連する臨床的呼吸器症状から回復させるＣ／Ｂ８解毒剤の有効性を、特に標準的な抗体ベースの抗毒素と比較して評価することであった。ボツリヌス中毒のマウスモデルにおいて、マウスに、腹腔内（ｉｐ）注射により１．２または４ＭＩＰＬＤ５０ユニットのＢｏＮＴ／Ａ１でチャレンジを行い、その後、Ｃ／Ｂ８解毒剤または抗体ベースの抗毒素を、様々な回数で腹腔内投与することにより、処置した。
方法
Ｅ１９ラット皮質神経細胞の調製及び維持
同期妊娠ＳＤ（Sprague-Dawley）系ラット（タコニック社）を用いて、胎生期１９日目（Ｅ１９）の皮質神経細胞を単離した。両側皮質を胎児脳から切り出し、解剖緩衝液（１５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．２（カタログ番号１５６３００８０、ライフテクノロジーズ社）、Ｃａ２＋及びＭｇ２＋フリーの０．５％グルコース／ＤＰＢＳ（カタログ番号１４１９０‐２５０、ライフテクノロジーズ社）に浸漬し、１×トリプシン／ＥＤＴＡ（１０×トリプシン／ＥＤＴＡは０．５％トリプシン／０．２％ＥＤＴＡである、カタログ番号１５４０００５４、ライフテクノロジーズ社）を補充した１０ｍＬの解剖緩衝液中で、３７℃、１０分間のインキュベーションにより解離させた。先端熱加工したパスツールガラスピペットを用いて組織を磨砕し、細胞数を計測した。単一細胞懸濁液を、播種用培地（１×最小必須培地‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）（１×ＭＥＭ‐Ｇｌｕｔａｍａｘ（商標）、カタログ番号４１０９００３６、ライフテクノロジーズ社）、１０％ＦＢＳ（ウシ胎仔血清；カタログ番号１６００００４４、ライフテクノロジーズ社）、１×ピルビン酸ナトリウム（１００ｍＭピルビン酸ナトリウム；カタログ番号１１３６０‐０７０、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ（１００×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐは１０，０００Ｕ／ｍＬのペニシリン、１０ｍｇ／ｍＬストレプトマイシンである；カタログ番号１５２４００６２、ライフテクノロジーズ社）中、ポリ‐Ｌ‐リジン臭化水素酸塩被覆プレートまたはカバースリップ上にプレーティングした。２時間後、播種用培地を維持培地（１×Ｎｅｕｒｏｂａｓａｌ培地（カタログ番号２１１０３０４９、ライフテクノロジーズ社）、１×Ｂ２７サプリメント（カタログ番号１７５０４０４４、ライフテクノロジーズ社）、及び１×Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ）で置き換えた。プレーティングの３日後、２ｍｇ／ｍＬのシトシンｂ‐Ｄ‐アラビノフラノシド（ＡｒａＣ、カタログ番号Ｃ１７６８、シグマ社）を維持培地に添加して、グリアの増殖を防止した。３〜５日ごとに培地の半量を新鮮な維持培地に交換した。
ウェスタンブロット分析
神経細胞を採取し、氷上で２５ゲージのニードルに試料を数回通過させることによって、プロテアーゼ阻害剤を含有する２００ｍＬの溶解緩衝液（０．５％Ｔｒｉｔｏｎ （商標）Ｘ‐１００、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２５ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．５、１０ｍＭ ６‐アミノカプロン酸、２ｍＭベンズアミジン、５ｍＭ ４‐（２‐アミノエチル）ベンゼンスルホニルフルオリド塩酸塩（ＡＥＢＳＦ）、２．５ｍＭ ＥＤＴＡ、３２５ｍＭベスタチン、３５ｍＭ Ｅ‐６４、２．５ｍＭロイペプチン、０．７５ｍＭアプロチニン）に溶解した。可溶性タンパク質溶解物を、１８，０００ｇで４℃、２０分間遠心分離することによってペレットから分離した。溶解後、各試料中の総タンパク質濃度を測定し、溶解緩衝液で各試料の体積を調整し、プロテアーゼ阻害剤を補充して濃度を等しくした。各レーンにおよそ３０μｇの総タンパク質を添加し、還元ＳＤＳ ＰＡＧＥで分離し、０．２ｍｍニトロセルロース膜（バイオラッド社）に転写した。転写後、ＴＢＳＴ（１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭトリス塩酸 ｐＨ８．０、０．１％Ｔｗｅｅｎ（登録商標）２０）中の１０％無脂肪乳＋５％ＮＧＳ（ヤギ正常血清、カタログ番号１００００Ｃ、ライフテクノロジーズ社）を用いて、室温、２時間、膜をブロッキングした。ブロット膜を一次抗体の存在下、４℃で一晩インキュベートし、次いで二次抗体の存在下、室温で４５分間インキュベートした。インキュベーション後、ブロット膜をＴＢＳＴで５分間×３回洗浄した。Ｓｕｐｅｒ Ｓｉｇｎａｌ Ｗｅｓｔ Ｐｉｃｏ化学発光基質（カタログ番号３４０８０、サーモサイエンティフィック社）を用いて、オートラジオグラフィーによる可視化を行った。
免疫細胞化学分析
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄまたはＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ Ｂ８（Ｂ８一本鎖抗体との融合タンパク質）を、図の説明に示すように異なる時間、神経細胞とともにインキュベートした。インキュベーションの直後に、細胞を氷冷ＤＰＢＳで３回洗浄し、４％ホルムアルデヒドで１５分間固定し、０．１％Ｔｒｉｔｏｎ（商標）Ｘ‐１００で５分間透過処理した。固定後、透過性にした細胞をＤＰＢＳで３回洗浄し、１０％ＢＳＡ／ＤＰＢＳ中で室温、１時間ブロッキングし、一次抗体の存在下、４℃で一晩インキュベートした。一次抗体をＤＰＢＳ‐ＮＧＳで希釈した。一次抗体インキュベーション後、細胞をＤＰＢＳ‐ＮＧＳ（３％ＮＧＳを含む１×ＤＰＢＳ）で３回洗浄し、二次抗体（ＤＰＢＳ‐ＮＧＳ中）の存在下、室温で４５分間インキュベートした。二次抗体インキュベーション後、細胞をＤＰＢＳで３回洗浄し、封入剤を用いてスライド上にカバースリップを封入した。画像スキャンは、ニコンＬＳＭ５１０共焦点顕微鏡で行い、画像は、Ｚｅｉｓｓ ＬＳＭ共焦点顕微鏡ソフトウェアを用いて解析した。
Ｃ／Ｂ８とシナプスタンパク質との共局在
Ｃ／Ｂ８がシナプスタンパク質と共局在するかどうかを判定するために、１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット海馬培養物を２５ｎＭのＣ／Ｂ８で２４時間処理した。シナプシン‐１、ＶＡＭＰ‐２、及びＢｏＮＴ／Ｃ ＬＣを検出するモノクローナル抗体を用いた免疫細胞化学のために細胞を調製し、共焦点顕微鏡法を用いて分析した（図２６）。
毒物投与された神経細胞内のＢｏＮＴ／Ａ ＬＣ活性に対するＣ／Ｂ８の影響
ＢｏＮＴ／Ａ ＬＣ活性に対するＣ／Ｂ８の影響を調べるために、１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット皮質神経細胞を、５ｐＭのＢｏＮＴ／Ａ、及び５０ｎＭのＣ／Ｂ８、５０ｎＭのＢ８単独、５０ｎＭのＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ（分子媒体のみ）、５０ｎＭのＪＬＪＧ３単独（ＢｏＮＴ／Ｂに対するＶＨＨ）、または５０ｎＭのＪＬＪＧ３／Ｃ（ＪＬＪＧ３を有するＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ）のいずれかに対し、共曝露した。インキュベーション直後に、細胞を氷冷ＤＰＢＳで洗浄し、タンパク質を０．５％Ｔｒｉｔｏｎ（商標）Ｘ‐１００緩衝液で可溶化した。タンパク質を、ＳＮＡＰ‐２５及びβアクチンに対する抗体を用いたウェスタンブロット分析によって分析した（図２７）。
毒物への曝露後モデルにおけるＢｏＮＴ／Ａ ＬＣ活性へのＣ／Ｂ８の影響及びＳＮＡＰ‐２５回復
ｉｎ ｖｉｔｒｏでの曝露後モデルにおけるＢｏＮＴ／Ａ ＬＣ活性へのＣ／Ｂ８の影響を調べるために、１４‐ＤＩＶ Ｅ１９ラット皮質神経細胞を５ｐＭのＢｏＮＴ／Ａで９０分間毒物と接触させた。細胞を細胞培養培地で２回洗浄し、５０ｎＭ Ｃ／Ｂ８またはＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ（Ｃ‐ａｄ）の存在下で追跡した。処理後の異なる日にＳＮＡＰ‐２５のモノクローナル抗体を用いたウェスタンブロットにより試料を分析した（図２８）。
分子媒体と比較したＣ／Ｂ８のｉｎ ｖｉｖｏ効力
Ｃ／Ｂ８の効力を分子媒体（ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ）と比較するために、ｉｎ ｖｉｖｏでの有効性マウス試験を行った。この盲検試験では、マウスに対し、２ＭＩＰＬＤ５０でのチャレンジを行い、毒物投与の３時間後に、プラセボ、０．４ｍｇ／ｋｇ ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ、または０．４ｍｇ／ｋｇ Ｃ／Ｂ８で処置した（図２９）。
毒物投与後の異なる時点におけるＣ／Ｂ８及び抗毒素のｉｎ ｖｉｖｏ有効性
Ｃ／Ｂ８の有効性を判定するために、マウスに対し、１．２または４ＭＩＰＬＤ５０ユニットでのチャレンジを行い、毒物投与後の異なる時間に、プラセボ、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８、または１Ｕのヒツジポリクローナル血清（抗毒素）で処置した。
結果
初代神経細胞培養において、ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄ Ｂ８は、シナプスタンパク質、シナプシン‐１及びＶＡＭＰ‐２と共局在する。ｉｎ ｖｉｔｒｏでの有効性試験の結果は、前記Ｃ／Ｂ８によるＳＮＡＰ‐２５切断の部分的な阻害を示している。さらに、Ｃ／Ｂ８で処置した細胞は、非処置群（ｎ／ｔ）またはＢｏＮＴ／Ｃ ａｄと比較して、７日目までＳＮＡＰ‐２５の回収を示した（図２８）。
ｉｎ ｖｉｖｏでの有効性試験は、プラセボ及びＢｏＮＴ／Ｃ ａｄで処置した動物が３０時間以内に死亡したのに対し、Ｃ／Ｂ８で処置したマウスの８０％が回復し、１０日目までに無症状になったことを示している（群当たりｎ＝１０のマウス）。このことは、延命効果がＢｏＮＴ／Ｃ ａｄによって送達したＢ８ ＶＨＨに起因することを示している。
Ｃ／Ｂ８の有効性を、抗体ベースの抗毒素治療と直接比較した。マウスに対し、１．２ＭＩＰＬＤ５０ユニットを用いて腹腔内へのチャレンジを行い、毒物投与後４、１２、または２０時間において、プラセボ、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８、または１Ｕのヒツジポリクローナル血清（抗毒素）で処置した（群当たりｎ＝１０マウス）。毒物投与後４時間の治療群では、治療介入時にボツリヌス中毒の臨床症状は記録されなかった。毒物投与後１２時間の治療群では、マウスは、正常なマウスと比較して、遅い呼吸パターン、細い腰、及び運動性の低下を含むボツリヌス毒素血症の臨床徴候を示した。毒物投与後２０時間後の治療群では、立毛、呼吸雑音を伴う呼吸困難、四肢の衰弱、及び運動性の低下を含む、毒素血症の臨床徴候を示した。４時間治療群の生存率は、Ｃ／Ｂ８群で１００％、抗毒素群で７０％であった（図３０Ａ）。１２時間治療群の生存率は、Ｃ／Ｂ８については９０％、抗毒素については１０％であった（図３０Ｂ）。２０時間治療群の生存率は、Ｃ／Ｂ８群で８０％、抗毒素群で１０％であった（図３０Ｃ）。研究の１０日目までに、生存マウスは、ボツリヌス中毒の臨床症状がなくなり、体重の増加を記録した。各治療群において、Ｃ／Ｂ８で処置したマウスは、抗毒素で処置したマウスと比較して生存率が高かった。これは、すべての動物がボツリヌス中毒の重度の臨床症状を示した毒物投与後２０時間時点で処置した動物において最も顕著であった。
Ｃ／Ｂ８及び標準的抗毒素の有効性に対する中毒用量の効果
マウスに対し、４ＭＩＰＬＤ５０のＢｏＮＴ／Ａの腹腔内注射でチャレンジを行い、続いて毒物投与後６、８、または１０時間において、０．４ｍｇ／ｋｇのＣ／Ｂ８または１Ｕの抗毒素（ヒツジポリクローナル血清）を用いて介入を行った（群あたりｎ＝５）。毒物投与後６時間では、マウスは、呼吸変化及び細い腰を含む、ボツリヌス毒素血症の臨床徴候を示した。６時間治療群の１０日生存率は、Ｃ／Ｂ８群で４０％、抗毒素群で２０％であった（図３１Ａ）。毒物投与後８時間では、マウスは、呼吸困難、体の衰弱、及び細い腰を含む、ボツリヌス毒素血症の重度の臨床徴候を示した。８時間治療群の１０日生存率は、Ｃ／Ｂ８群で２０％、抗毒素群で０％であった（図３１Ｂ）。毒物投与後１０時間では、マウスは、呼吸困難、体の衰弱及び細い腰を含む、ボツリヌス毒素血症の重度の臨床徴候を示した。抗毒素群に比べてＣ／Ｂ８群では、致死に４日の遅延があるものの、研究の６日目以降の生存率は０であった（図３１Ｃ）。
結論
ＢｏＮＴ／Ｃ ａｄは、有用な分子媒体を提供し、ＢｏＮＴ／Ａに対する治療用一本鎖抗体を中毒状態の神経細胞へ送達し、これによって既にボツリヌス中毒の臨床徴候を示している動物を回復させることができる。
本明細書において、好ましい実施形態を詳細に記載したが、本発明の精神から逸脱することなく様々な修正、追加、置換などを行い得ることは当業者には明らかであり、したがってそれらは添付の特許請求の範囲に定義する本発明の範囲内にあるものとみなされる。

Claims (50)

  1. クロストリジウム神経毒の軽鎖領域；
    クロストリジウム神経毒の重鎖領域；及び
    抗原結合活性を有し、前記軽鎖領域の上流に位置する一本鎖抗体
    を含み、
    前記軽鎖及び重鎖領域がジスルフィド結合によって連結している、
    融合タンパク質。
  2. 前記クロストリジウム神経毒が、ボツリヌス菌（Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉｕｍ ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ）血清型Ｃ、ボツリヌス菌血清型Ａ、ボツリヌス菌血清型Ｅ、ボツリヌス菌血清型Ｄ、ボツリヌス菌血清型Ｂ、ボツリヌス菌血清型Ｆ、ボツリヌス菌血清型Ｇ、ボツリヌス菌血清型Ｈからなる群から選択される血清型のボツリヌス菌神経毒である、請求項１に記載の融合タンパク質。
  3. 前記ボツリヌス菌神経毒が血清型Ｃである、請求項２に記載の融合タンパク質。
  4. 前記軽鎖及び重鎖領域が切断されていない、請求項１に記載の融合タンパク質。
  5. 前記軽鎖領域と前記一本鎖抗体との間に位置するアミノ酸スペーサー配列をさらに含む、請求項１に記載の融合タンパク質。
  6. 前記クロストリジウム神経毒の前記軽鎖領域が無毒性である、請求項１に記載の融合タンパク質。
  7. 前記軽鎖領域がクロストリジウム神経毒ＢｏＮＴ／Ａに由来し、突然変異Ｅ２２４＞Ａ及びＹ３６６＞Ａをさらに含む、請求項６に記載の融合タンパク質。
  8. 前記軽鎖領域が、野生型クロストリジウム神経毒のＬＤ５０よりも少なくとも１，０００倍高いＬＤ５０を有する、請求項６に記載の融合タンパク質。
  9. 前記クロストリジウム神経毒の前記軽鎖領域が基質切断活性を失っている、請求項６に記載の融合タンパク質。
  10. 前記軽鎖領域がクロストリジウム神経毒ＢｏＮＴ／Ａに由来し、突然変異Ｑ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、及びＬ３２２＞Ｅ、または突然変異Ｑ１６３＞Ｅ、Ｅ２６３＞Ｌ、及びＬ３２３＞Ｉをさらに含む、請求項９に記載の融合タンパク質。
  11. 前記軽鎖領域がクロストリジウム神経毒ＢｏＮＴ／Ｃに由来し、突然変異Ｅ４４６＞Ａ；Ｈ４４９＞Ｇ；Ｙ５９１＞Ａをさらに含む、請求項９に記載の融合タンパク質。
  12. 前記クロストリジウム神経毒の前記軽鎖及び重鎖領域が、（ｉ）前記軽鎖及び重鎖の安定性、（ｉｉ）前記融合タンパク質による神経細胞の特異的標的化、及び（ｉｉｉ）神経細胞の細胞質への融合タンパク質の送達、に必要な立体構造を有する、請求項６に記載の融合タンパク質。
  13. 前記一本鎖抗体がＶＨＨドメインである、請求項１に記載の融合タンパク質。
  14. 請求項１〜１３のいずれか一項に記載の融合タンパク質、及び
    薬学的に許容可能な担体
    を含む、治療剤。
  15. クロストリジウム神経毒の毒性作用についての対象の治療方法であって：
    クロストリジウム神経毒の毒性作用について前記対象を治療するのに有効な条件下で、前記対象に請求項１４に記載の治療剤を投与する段階を含む、前記治療方法。
  16. 請求項１〜１３のいずれか一項に記載の融合タンパク質を、対象に治療を提供するのに有効な条件下で前記対象に投与する段階を含む、治療方法。
  17. 前記投与する段階の前に、治療を必要とする対象を選択する段階をさらに含む、請求項１６に記載の方法。
  18. 前記投与する段階を、吸入、非経口、皮下、静脈内、筋肉内、腹腔内、鼻腔内滴下、または粘膜への塗布によって行う、請求項１６に記載の方法。
  19. クロストリジウム神経毒の軽鎖領域；
    クロストリジウム神経毒の重鎖領域；
    高特異性プロテアーゼ切断部位を有し、前記軽鎖及び重鎖領域を連結する中間領域；ならびに
    抗原結合活性を有し、前記軽鎖領域の上流に位置する一本鎖抗体
    を含み、
    前記軽鎖及び重鎖領域がジスルフィド結合によって連結しており、
    前記高特異性プロテアーゼ切断部位が、前記高特異性プロテアーゼが認識して切断可能な３残基以上の特異的な隣接するアミノ酸残基を有する、
    プロペプチド融合体。
  20. 前記軽鎖領域の上流に位置する第一検出タグと、重鎖の下流に位置する第二検出タグとをさらに含む、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  21. 前記一本鎖抗体に隣接するＮ末端及びＣ末端検出タグをさらに含み、前記検出タグが、神経細胞の細胞質への前記一本鎖抗体の送達を検出することができる、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  22. 前記Ｎ末端検出タグの上流に位置する第一アフィニティー精製タグ；
    前記第一アフィニティー精製タグと前記Ｎ末端検出タグとの間に位置する高特異性プロテアーゼ切断部位；
    前記重鎖領域の下流に位置する第二アフィニティー精製タグ；及び、
    前記第二アフィニティー精製タグと前記重鎖領域との間に位置する高特異性プロテアーゼ切断部位
    をさらに含む、請求項２１に記載のプロペプチド融合体。
  23. 前記中間領域の前記高特異性プロテアーゼ切断部位、前記アフィニティー精製タグと前記Ｎ末端検出タグとの間に位置する前記高特異性プロテアーゼ切断部位、及び前記第二アフィニティー精製タグと前記重鎖領域との間に位置する前記高特異性プロテアーゼ切断部位がすべて、エンテロキナーゼ切断部位及びＴＥＶ認識配列から選択される同一の配列を有する、請求項２２に記載のプロペプチド融合体。
  24. 前記一本鎖抗体の上流に位置する分解促進ドメインをさらに含む、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  25. 前記一本鎖抗体が、野生型クロストリジウム神経毒の軽鎖に対して特異的である、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  26. 前記軽鎖及び重鎖領域が切断されていない、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  27. 前記クロストリジウム神経毒が、ボツリヌス菌血清型Ｃ、ボツリヌス菌血清型Ａ、ボツリヌス菌血清型Ｅ、ボツリヌス菌血清型Ｄ、ボツリヌス菌血清型Ｂ、ボツリヌス菌血清型Ｆ、ボツリヌス菌血清型Ｇ、ボツリヌス菌血清型Ｈからなる群から選択される血清型のボツリヌス菌神経毒である、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  28. ボツリヌス菌神経毒が血清型Ａである、請求項２７に記載のプロペプチド融合体。
  29. ボツリヌス菌神経毒が血清型Ｃである、請求項２７に記載のプロペプチド融合体。
  30. 前記軽鎖及び重鎖領域が切断されていない、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  31. 前記軽鎖領域と前記一本鎖抗体との間に位置するアミノ酸スペーサー配列をさらに含む、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  32. 前記軽鎖領域がクロストリジウム神経毒ＢｏＮＴ／Ａに由来し、突然変異Ｅ２２４＞Ａ及びＹ３６６＞Ａをさらに含む、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  33. 前記軽鎖領域がクロストリジウム神経毒ＢｏＮＴ／Ａに由来し、突然変異Ｑ１６２＞Ｙ、Ｌ２５６＞Ｙ、Ｒ２５７＞Ｅ、及びＬ３２２＞Ｅ、または突然変異Ｑ１６３＞Ｅ、Ｅ２６３＞Ｌ、及びＬ３２３＞Ｉをさらに含む、請求項３１に記載のプロペプチド融合体。
  34. 前記軽鎖領域がクロストリジウム神経毒ＢｏＮＴ／Ｃに由来し、突然変異Ｅ４４６＞Ａ；Ｈ４４９＞Ｇ；Ｙ５９１＞Ａをさらに含む、請求項３３に記載のプロペプチド融合体。
  35. 前記一本鎖抗体がＶＨＨドメインである、請求項１９に記載のプロペプチド融合体。
  36. 請求項１９〜３５のいずれか一項に記載のプロペプチド融合体をコードする、単離核酸分子。
  37. 請求項３６に記載の核酸分子を異種ベクターに含む、発現系。
  38. 前記核酸分子が、適切なセンス方向及び正しいリーディングフレームで前記ベクターに挿入されている、請求項３７に記載の発現系。
  39. 請求項３６に記載の核酸分子を含有する、宿主細胞。
  40. 前記核酸分子が異種発現系に挿入されている、請求項３９に記載の宿主細胞。
  41. 前記中間領域が、前記発現系または前記宿主細胞の内在性プロテアーゼによって切断されない、請求項３９に記載の宿主細胞。
  42. 植物細胞、哺乳類細胞、昆虫細胞、酵母細胞、及び細菌細胞からなる群から選択される、請求項３９に記載の宿主細胞。
  43. 昆虫細胞である、請求項４２に記載の宿主細胞。
  44. 融合タンパク質の発現方法であって：
    請求項３６に記載の核酸分子と；
    前記核酸分子に機能的に連結した異種プロモーターと；
    前記核酸分子に機能的に連結した３′調節領域と
    を含む核酸構築物を提供する段階、及び、
    前記融合タンパク質のプロペプチドを発現するのに有効な条件下で宿主細胞に前記核酸構築物を導入する段階
    を含む、前記発現方法。
  45. 前記中間領域が、前記宿主細胞の内在性プロテアーゼによって切断されない、請求項４４に記載の方法。
  46. 前記宿主細胞が昆虫細胞である、請求項４４に記載の方法。
  47. 前記中間領域で切断を引き起こすのに有効な条件下で、前記発現させた融合タンパク質のプロペプチドを高特異性プロテアーゼに接触させる段階
    をさらに含む、請求項４４に記載の方法。
  48. 前記融合タンパク質を約３０ｍｇ／Ｌの濃度で単離する段階をさらに含む、請求項４４に記載の方法。
  49. ２段階の非変性かつ高度選択的なアフィニティー精製を用いて、前記融合タンパク質を均質に精製する段階をさらに含む、請求項４４に記載の方法。
  50. 請求項１９〜３５のいずれか一項に記載のプロペプチド融合タンパク質を、高特異性プロテアーゼ切断部位で切断することによって産生する融合タンパク質であって、前記軽鎖領域及び重鎖領域がジスルフィド結合によって連結している、前記融合タンパク質。
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