JP3523879B2 - 輸送タンパク質用クロストリジウム属細菌毒素の修飾 - Google Patents

Description

【発明の詳細な説明】 発明の分野 本発明は、標的レセプターに生化学物質を運ぶシステ
ムに広く関連する。さらに詳しくは、本発明は、毒素レ
セプターをもつ細胞へ化学物質を運ぶ伝達体として修飾
されたポリペプチド毒素を用いることに関する。

発明の背景 テタヌストキシン（TeTx、破傷風毒素）とボツリヌス
毒素は影響力のある神経毒素であり、神経伝達物質の放
出の阻害を含む機構により麻痺を引き起こす。これらの
クロストリジウム属細菌神経毒素（Clostridial neurot
oxin）は、最初は約150kDaの単鎖タンパク質として生産
される。それから、タンパク質分解による分裂により約
100kDaの重（Ｈ）鎖と約50kDaの軽（Ｌ）鎖とが生じ、
これらは鎖間が１つのジスルフィド結合で連結される。
Ｈ鎖はドメインを有しており、（このドメインは）神経
細胞の表面のレセプターに毒素を結合させる働きをし、
Ｌ鎖を細胞に輸送するのを促進する。Ｌ鎖は神経伝達物
質放出を妨げる働きをする。

毒素活動の機構が最近明らかにされた。TeTx−Ｌ鎖
は、シナプトブレビン（synaptobrevin）または小胞会
合膜タンパク質（VAMP）と呼ばれる小胞会合タンパク質
に対して特異性を有する亜鉛依存プロテアーゼである。
TeTx−Ｌ鎖によるVAMPの開裂は、伝達物質を含む小胞と
前シナプス膜のドッキング／融合を妨げることにより神
経伝達物質の放出を阻害する。

TeTxのただ１つのイソ型はクロストリジウム テタニ
（Clostridium tetani）により生産される一方、BoTNは
７つの血清学的に別個なイソ型がクロストリディア ボ
ツリニウムによって生産される。これら７種のボツリヌ
ス毒素はBoNT/A−Ｇとして示される。ボツリヌスＢ型神
経毒素は、テタヌストキシンのように亜鉛依存プロテア
ーゼである。ENBO J.12:4821（1993）の中で、Blasiら
は、ボツリヌス神経毒素の血清型は一般的なプロテアー
ゼの活動を保っている一方で全く異なる基質特異性を発
達させたことを提示している。ボツリヌス毒素Ｂ、Ｄ、
ＦおよびＧもまたVAMPを開裂させるか、あるいはイソ型
と密接な関連がある。対照的に、BoNT/AおよびBoNT/E
は、分子量24kDaのタンパク質が会合されたシナプトソ
ームを開裂する。最終的にはBoNT/Aはシンタキシン（sy
ntaxin）を開裂することが明らかにされた。これらの標
的タンパク質に加えて、TeTxおよびBoNT/Bはセルブレビ
ン（Cellubrevin）を開裂することが報告されている。
このように、クロストリジウム属細菌毒素の神経内標的
は一般に神経伝達物質の放出に関連している。

クロストリジウム属細菌神経毒素は全て、明らかに異
なる細胞表面レセプターに結合し、神経伝達物質の放出
に必要な細胞構成成分をタンパク質分解する。TeTxは抑
制神経細胞（inhibitory neurons）の活動を低減させる
ことにより脊髄や脳幹下部においてその効果を発揮す
る。BoNTの７つのイソ型は全て弛緩性麻痺を生じさせ
る。機構的には、ボツリヌス毒素は主に神経筋細胞の連
結部に見られる末梢コリン性神経末端を選択的に抑制す
る。

ある亜鉛依存性エンドプロテアーゼはアミノ酸の保存
配列HExxHを含んでいる。サーモリシンでは、亜鉛結合
がGlu¹⁶⁶とこのモチーフ内のHis¹⁴²とHis¹⁴⁶によって成
されている。なお、４番目のリガンドは水である。テタ
ヌスＬ鎖をサーモリシンや他の亜鉛エンドプロテアーゼ
と比べると、同じ共通モチーフの存在が明らかとなっ
た。考えられるところでは、TeTx−Ｌ鎖のGlu²³⁴は、サ
ーモリシン中の臨界Glu¹⁴⁵残基に対応するものであると
思われる。

TeTxのＬ鎖内のこのモチーフに含まれているGlu²³⁴の
役割は、セルブレビン（cellubrevin）のタンパク質分
解に対する特定部位の変異誘発やインビトロアッセイを
使って研究されてきた。Nature 364:346（1993）の中
でMcMahonらは、変異Ｌ鎖（Glu²³⁴がGlnに置換）および
セルブレビンDNA構成物を伴ってCOS細胞がコトランスフ
ェクションされた時にはセルブレビン（cellubrevin）
は開裂しないことを証明している。

発明の概要 本発明の１つの態様は、神経細胞に関する障害を治療
するための化学物質結合体に関する。この結合体は、標
的神経細胞に対して特異性のある活性もしくは不活性の
ボツリヌス毒素またはテタヌストキシンを含む。この毒
素は、その毒素の標的神経細胞へ侵入する能力に影響を
与えることなく、医薬または他の生物活性分子と結合さ
れる。このように、本発明の１つの態様は、神経細胞に
関連する障害を治療するための化学物質結合体に関する
ものである。化学物質結合体は、標的神経細胞に対して
特異性のある不活性なクロストリジウム属細菌神経毒素
と、該神経細胞に結合した医薬若しくは生物活性分子と
を含む。神経毒素は、標的神経細胞に侵入するその能力
を維持している。クロストリジウム属細菌神経毒素であ
ればいずれの種類の毒素であっても用いることができ、
テタヌストキシン、ボツリヌス毒素Ａ、ボツリヌスＢ、
ボツリヌス毒素Ｃ、ボツリヌス毒素Ｄ、ボツリヌス毒素
Ｅ、ボツリヌス毒素Ｆ、ボツリヌス毒素Ｇが含まれる。
クロストリジウム属細菌毒素の不活性化はその軽鎖中の
アミノ酸を変更させることにより達せられる。このよう
に、例えば不活性化したクロストリジウム属細菌神経毒
素としては、Glu²³⁴の修飾を有するテタヌストキシン、
His²²⁷および／またはGlu²²⁴に修飾を有するボツリヌス
毒素Ａまたはボツリヌス毒素ＡのHis²²⁷および／または
Glu²²⁴に対応する部位に修飾を有するボツリヌス毒素Ａ
以外のボツリヌス毒素が挙げられる。

本発明の他の態様としては、制御不能な筋痙攣のよう
な哺乳動物の神経筋機能障害の治療に使用される上記の
化学物質結合体に関する。

本発明は、上記化学物質結合体を制御不能な筋痙攣の
ような哺乳動物の神経筋機能障害の治療用薬剤の調製に
使用することを含む。

本発明の具体的な態様では、化学物質結合体中の医薬
がボツリヌス中毒または破傷風の治療に対する有効成分
である。本発明のこの態様は、哺乳類のボツリヌス中毒
または破傷風の治療に使用することができ、またこのよ
うな治療のための薬剤の調製に使用することができる。

本発明の他の態様としては、ボツリヌス毒素中毒の治
療用薬剤の調製に不活性クロストリジウム属細菌神経毒
素を使用することに関する。この態様では、不活性クロ
ストリジウム属細菌神経毒素は他の医薬を複合させるこ
となく単独で用いることができる。

さらに本発明の態様としては、活性クロストリジウム
属細菌神経毒素と医薬とを含む化学物質結合体の使用に
関する。このような結合体は、限局性ジストニー（foca
l dystonias）、ストローク（stroke）若しくは外傷性
脳損傷若しくは脊椎損傷による痙直（spasticities due
to stroke or traumatic brain or spinal cord injur
y）、眼瞼痙攣（blepharospasm）、斜視（strabismu
s）、脳性小児麻痺（cerebral palsy）、筋痙攣による
背痛（back due to muscle spasms）の治療用薬剤の調
製に用いられる。

さらに本発明の他の態様では、哺乳類の神経筋機能障
害の治療方法に関する。この方法は、医薬に連結させた
クロストリジウム属細菌神経毒素を含む医薬的に活性の
ある溶液を調製する段階と、効果を生じる量の医薬的に
活性のある溶液を哺乳類に導入する段階とを含む。神経
毒素はこのようないずれの種類の毒素であっても用いる
ことができ、テタヌストキシン、ボツリヌス毒素Ａ、ボ
ツリヌス毒素Ｂ、ボツリヌス毒素Ｃ、ボツリヌス毒素
Ｄ、ボツリヌス毒素Ｅ、ボツリヌス毒素Ｆおよびボツリ
ヌス毒素Ｇが含まれる。神経毒素はその軽鎖中のアミノ
酸を変えることにより不活性化することができる。１つ
の実施態様では、医薬が神経伝達物質の放出を抑制し、
他の実施態様では医薬がシナプトブレビン（synaptobre
vin）の活性を抑制する。

好ましくは、本方法は、制御不能な筋痙攣に関連する
神経筋機能障害を治療するのに使われる。

以下に続く詳細な説明を参照することにより当業者は
さらに本発明の実施態様を見いだすであろう。

図面の簡単な説明 図１は、TeTxおよびMBP−Ｌ鎖融合タンパク質を発現
するのに使われるDNA構築物（pMAL−LC）の図式表示で
ある。最初の図中の−文字コードは、精製された組換え
体Ｌ鎖およびAla²³⁴−Ｌ鎖の、Ｎ末端マイクロシーケン
シングにより決定された最初の数残基のアミノ酸配列を
表している。図の次の部分は、Ｈ鎖がＬ鎖とジスルフィ
ド結合していることを示している。亜鉛結合ドメインの
位置もまた図示している。

図２は、天然、組換え又は変異Ｌ鎖により開裂したHV
62ペプチド（ヒトVAMPの合成断片）の割合を経時的に示
したグラフである。種々の記号は、33（○）、100
（□）、250nM（▲）の天然Ｌ鎖；または250nM組換えＬ
鎖（△）；または2.5μM Ala²³⁴−Ｌ鎖（■）を表す。
挿入図は、天然Ｌ鎖によるHV62基質の見かけ上の加水分
解を低減するAla²³⁴−Ｌ鎖の能力を示している。中白の
棒はAla²³⁴−Ｌ鎖の存在下で天然Ｌ鎖により加水分解さ
れた基質の割合を示し、一方、斜線の入った棒はAla²³⁴
−Ｌ鎖が存在しない条件下で加水分解された基質の割合
を示す。

図３は、経時的な神経筋伝達の検定として筋緊張（初
期値の％として）を示すグラフである。種々の記号は、
10nM TeTx（○）、10nM再構成天然Ｈ鎖およびＬ鎖
（□）、10nM天然Ｈ鎖と会合させた組換え再構成Ｌ鎖
（△）、100nM H鎖と共に再生したAla²³⁴−Ｌ鎖（■）
を示す。数値は３検体から得られた平均値（±SD）であ
る。挿入図は、20nM再構成天然Ｈ鎖およびＬ鎖（□）並
びに40nM再構成天然Ｈ鎖および組換えＬ鎖（△）で得ら
れた結果を表す。ただし、再構成サンプルの定められた
濃度には微量の非共有結合した鎖は含んでいない。

図４は、輸送タンパク質と医薬分子を結合するのに使
われる化学合成機構の図解を示す。

図５は、組換えBoNT/A軽鎖発現構築物pCALの図解を示
す。これはpMAL−c2ベクターのポリリンカーにおけるBa
mH IとSal I制限部位との間にＬ鎖遺伝子を挿入して作
製される。ベクターは、malE−LacZa遺伝子融合体を転
写させる位置にある誘導性（inducible）P_tacプロモー
ターを含む。lac1^q遺伝子は、イソプロピルβ−Ｄ−チ
オガラクトシド（IPTG）による誘導まで、P_tacからの転
写を抑制するlacリプレッサーをコードする。rrnBター
ミネーターは、転写がプラスミドの複製に干渉するのを
妨げる。Amp^rは、アンピシリン耐性のためのβ−ラクタ
マーゼをコードする。M13−oriおよびpBR322oriはDNA複
製の開始点を示す。ファクターX^a開裂部位およびＬ鎖起
点は矢印で指し示している。

図６は、BoNT/Aに対する組換えSNAP−25基質およびウ
エスタンブロットによる開裂検定の結果を示す図であ
る。図解（Ａ）は、BoNT/A開裂部位を含むSNAP−25のＣ
−末端断片であって、これに対するポリクローナル抗体
を生じさせた。グラフ（Ｂ）は、ウエスタンブロットの
デンシトメトリックスキャン（densitometric scannin
g）により得られた数値である。還元型天然BoNT/A
（●）および組換え野生型Ｌ鎖（○）は、効果的にSNAP
−25を開裂する一方、Tyr²²⁷変異体はタンパク質分解活
性に欠けた（▽）。

図7Aおよび7Bは、組換えＬ鎖またはその融合タンパク
質が、透過性クロマフィン細胞からのカテコールアミン
放出を阻害することを表す線グラフである。図7Aはファ
クターX_a開裂前であり、図7BはファクターX_a開裂後であ
る。細胞は、20μＭジギトニンを含むKGEPバッファー
（139mM K⁺グルタミン酸、5mMエチレングリコールビス
［β−アミノエチルエーテル］N,N,N',N'−テトラアセ
チックアシッド［EGTA］、2mM ATP、2mM MgCl₂、20mMピ
ペラジン−N,N'−ビス［２−エタンサルフォニックアシ
ッド］［PIPES］pH6.5）に、表示された濃度の天然BoNT
/A（○；△）または組換えＬ鎖融合タンパク質をファク
ターX_aに伴う開裂の前（●）若しくは後（▲）に配合し
たもので、15分間インキュベートすることにより透過性
を有するようになった。続いてKGEPで軽くすすぎ、20μ
Ｍ遊離Ca²⁺を含むかまたは除いたKGEPで15分間インキュ
ベートした。それから、それぞれのウエルからアリコー
ト（aliquot）を取り出し、カテコールアミンの含有量
を蛍光法（fluorometric method）によって検定した。
細胞内に残存しているカテコールアミンはTx−100可溶
化した後に算出し、分泌物は全細胞含有量（＝残存＋放
出）の割合として算出した。Ca²⁺を含まない緩衝液中の
カテコールアミンを、20μM Ca²⁺を含む緩衝液で分泌さ
れたカテコールアミンから除いて、誘発放出を算出し
た。

図８は、BoNTの天然Ｈ鎖で再構成した後の、運動終板
で神経誘発性神経筋伝達における、精製された天然、組
換え野生型および変異Ｌ鎖の効果を示す線グラフであ
る。マウスの半横隔膜の横隔神経（phrenic nerve−hem
idiaphrams）に投与すると、組換えＬ鎖と再構成したBo
NT/A H鎖（1.6nM;○）は、天然Ｌ鎖とＨ鎖を再構成した
もの（2.0nM;▽）とほぼ同じ程度に神経筋伝達をブロッ
クした。対照的に、Ｌ鎖のTyr²²⁷変異体を含む２本鎖で
は量を多くしても神経誘発性単収縮に対して効果はなか
った。再構成物質の濃度は、SDS−PAGEおよびデンシト
メトリックスキャニングにより150kDa2本鎖物質を定量
した後に計算して求めた。組織をクレブス−リンガー培
地に浸し、95％O₂および５％CO₂でエアレーションしな
がら24℃に保った。示されたすべてのポイントは、少な
くとも３つの別検体の平均±SDである。

図９は、MBP−BoNT/A−Ｌ鎖２重変異体（"1"）および
MBP−TeTx切断（truncated）Ｌ鎖−BoNT/A−Ｌ鎖２重変
異体（"2"）を生成するための構築物を図解したもので
ある。

発明の詳細な説明 本発明は、連結された薬学的化合物を運ぶための輸送
体として、２本鎖形態の、修飾されたクロストリジウム
属細菌神経毒素を利用することに関する。毒素輸送体に
結合させることができる化合物の中には、蛍光物質を保
持する視覚化試薬および治療価値のある医薬がある。天
然毒素の酵素的な特性はこのような適用には不利であっ
たが、本発明者らは、この限界を克服する手段を見いだ
した。毒素輸送体による標的と予定される細胞集団には
同種の毒素レセプターを有する（express）ものも含ま
れる。

本発明者らは、有効な医薬の輸送薬（delivery agen
t）は、クロストリジウム属細菌神経毒素のＬ鎖中のア
ミノ酸の１つまたはそれ以上を変異させ、そのプロテア
ーゼ活性を不活性化し、さらに医薬をその不活性化され
た神経毒素に結合させることにより調製することができ
ることを見いだした。この酵素活性の失活にもかかわら
ず、変異した毒素は、都合の良いことに、その同種の細
胞表面レセプターに結合する能力は維持している。さら
に、本発明者らは、弱毒化したクロストリジウム属細菌
神経毒素について他の予期しがたい特性を見いだした。

意義深いことに本発明者らは、クロストリジウム属細
菌神経毒素の重鎖およびＬ鎖の両方が最適なレセプター
−リガンド相互作用のために要求されることを見いだし
た。この知見から毒素輸送体は、２本の鎖分子を両方と
も含んでいることが有利であると考えられる。Ｌ鎖分子
に関連している毒素の特性は、輸送体に共有結合した医
薬の医療効果を妨げるため、本発明者らは、天然Ｈ鎖と
再構成した弱毒化したＬ鎖分子を作製したところ、得ら
れた２本鎖分子は、同種のレセプターに結合し、インタ
ーナリゼイション（internalization）される能力を維
持していた。これは、１つまたはそれ以上のアミノ酸位
置の変異により、Ｌ鎖タンパク質の折り畳み構造に対し
て最小限の損傷で達成することができることを見いだし
た。

したがって、医薬に共有結合し得る、媒介手段として
不活性化したクロストリジウム属細菌神経毒素を用いる
ことを探求した。再構成された毒素、すなわち不活性化
されたＬ鎖が天然のＨ鎖にジスルフィド結合された毒素
は、標的レセプターに特異的に相互作用し、かつ、結合
された分子を伴い細胞質ゾルに輸送される能力を維持し
ていた。したがって、不活性化され、かつ化学的に修飾
された毒素結合体（modified toxin complex）は、結合
された化学物質を、毒素に対する細胞表面レセプターを
有している神経細胞の細胞質ゾルに輸送するシステムと
して用いることができる。

本発明では、TeTx−Ｌ鎖をコードしている遺伝子に、
マルトースバインディングドメイン（maltose−bending
domain）をコードするDNA配列を5'未満に加えることに
より修飾した。それゆえ、このドメインはTeTx−Ｌ鎖タ
ンパク質のＮ−末端部位につけ加えられた。E.coli内で
の発現のあと、組換え体融合タンパク質（「MBP−Ｌ
鎖」という）は、アフィニティークロトマトグラフィー
により精製された。ファクターX_aによるタンパク質分解
によれば、融合タンパク質のＬ鎖とMBPドメインを分離
することができた。次に、精製したＬ鎖は、２本鎖を生
成するためにC.tetani−由来TeTxから分離、精製したＨ
鎖と結合させた。この再構成TeTx分子は天然毒素の活性
特性を示す。また、天然BoNT/A−Ｈ鎖タンパク質と再会
合させた組換えBoNT/A−Ｌ鎖タンパク質を用いても同様
の知見が得られた。

他の実験では、TeTx−Ｌ鎖中のGlu²³⁴をAlaにする修
飾により、VAMPまたはTeTx−Ｌ鎖が認識する開裂部位を
含む合成基質を開裂するその能力は失われた。優れたこ
とは、修飾された毒素はそのレセプターに結合する能力
を維持していたが、変異Ｌ鎖と野生型Ｈ鎖とで形成され
た複合体の神経毒性もまた失われた。似たような実験と
して、分離BoNT/A−Ｌ鎖分子のHis²²⁷若しくはGlu²²⁴の
いずれかを、またはその両方を修飾した。BoNT/A−Ｌ鎖
中でのこのような修飾は、細胞の標的基質に対するタン
パク質分解活性を消失させた。

テタヌストキシンに対しては多くのヒトが免疫されて
いるので、循環抗体による中和が最低限になるように、
TeTx分子を更に修飾するほうが有利であると考えられ
る。TeTx分子への修飾は、その細胞結合およびインター
ナリゼーション能力を維持し、しかし免疫システムによ
る探知は制限することが好ましい。

ここに説明する方法によれば、変異クロストリジウム
属細菌神経毒素を合成することができ、それは効果的に
細胞質ゾルにインターナリゼーションされ、輸送される
能力を有している。これらの毒素は、関連するタンパク
質分解活性はなくとも、神経に結合する能力を維持して
いて有利である。このような弱毒化された毒素は化学薬
を標的神経に特異的に輸送するための新規なシステムを
つくるのに有用である。

ここで述べられる、変異を誘発し酵素的に不活性な２
本鎖クロストリジウム属細菌神経毒素は、毒素に対する
細胞表面レセプターを有する神経細胞に化学物質を輸送
するための神経薬理学的な薬として優れたものを提供し
ている。輸送体タンパク質に化学薬を結合することは、
本発明を実施するために必須である。このような化学薬
としては薬理学的な薬、化学療法的な薬または電磁気放
射の光若しくは他の形態の電磁気放射線により検知可能
な視覚化試薬を用いることができる。

似たようなものはたくさんあるが、当業者は、少なく
とも１つ重要な点において、テタヌストキシンおよびボ
ツリヌス毒素が機能的に区別されることを認識するであ
ろう。テタヌストキシンは運動ニューロンによって取り
込まれ、脊髄へと運ばれて痙攣による痙直を引き起こ
す。このようにして、筋肉を起点として脊髄へさかのぼ
る道筋を通って、TeTxは脊髄中の標的細胞へと到達する
ことができる。逆に、種々の血清型BoNT（BoNT serotyp
es）では全て、神経毒性は、コリン作動性神経末端、実
質的には注射部位に局部的に限定して作用する。

TeTxが脊髄へ移動して毒素活性を示す能力とBoNTの局
部限定的な毒素活性の能力とのこのような違いは、修飾
された毒素輸送体を用いる治療プロトコールにおいて活
用することができる。特に、TeTxに基づく修飾された毒
素は、脊髄と注射された筋肉とをつなぐ神経の道筋に沿
って、結合された医薬を脊髄に運ぶと考えられる。逆
に、血清型ボツリヌス毒素のうちのひとつを基礎にして
修飾された毒素は、注射した部位に局部的に限定される
と考えられる。ゆえに、以下に続く本発明の修飾された
毒素輸送体に基づく治療薬を使う臨床家は、TeTxに基づ
く治療薬（therapeutic agent）を適当な筋肉に注射す
ることによって、選択的に脊髄の領域へ医薬を運ぶこと
ができる。その一方、BoNTに基づく治療薬の筋肉への投
与は、作用活性が注射部位の運動ニューロンに限られ
る。

不活性なテタヌストキシン輸送体は、主に、腕、脚若
しくは体の一部分のように全般的な範囲で痙直や過剰運
動を制御するために、標的となる組織に医薬を運ぶのに
用いられる。医薬および輸送体は、脊髄標的に起源のあ
るひとつまたはそれ以上の筋群内に筋内投与することが
できる。

治療による効果があると考えられる病気としては、痙
性斜頸（spasmodic torticollis）、ポストストローク
（post stroke）若しくは外傷性脳損傷（traumatic bra
in injury）により誘発される痙直（spsticity）、およ
び大きな筋群（large muscle groups,）のジストニー
（dystonia）が挙げられるが、これらに限定されるもの
ではない。

不活性なボツリヌス毒素輸送体は、主に、末梢運動神
経末端を標的として医薬を運ぶのに用いられる。それゆ
え、限定された筋群に影響のある病気には、BoNT/Aに基
づく輸送体を使って治療するのが最適である。他の血清
型ボツリヌス毒素に基づいた輸送体もまたこのような目
的に有効であると考えられる。

治療による効果があると考えられる病気としては、晩
発性運動障害（tardive dyskinesia）、痙性結腸炎（sp
astic colitis）、本態性振せん（essential tremo
r）、胃平滑筋（gastric smooth muscle）、アカラシア
（食道の異常収縮）、局所性痙直（localized spastici
ty）、背中若しくはその他の筋群に限定された筋痙攣痛
（painful muscle spasms）、一時的下顎障害（tempora
l mandibular disorder）、痙性発声困難（声帯過剰反
応overactive vocal chords）、嚥下障害（swallowing
disorder）、緊張性頭痛（tension headaches）、痙性
斜頸（spasmodic torticollis）、ポストストローク（p
ost stroke）若しくは外傷性脳損傷（traumatic brain
injury）により誘発される痙直（spasticity）、大きな
筋群（large muscle groups）、心血管平滑筋（cardiov
ascular smooth muscle）（例えば、細動脈）、および
様々な器官（胆嚢、膀胱、直腸など）に見られる括約平
滑筋（sphincter smooth muscle）のジストニーが挙げ
られるが、これらに限定されるものではない。

表１には、本発明に関連し得る治療の概要を示す。こ
の表には、テタヌストキシンまたはボツリヌス毒素の分
子に連結させることができる具体的な医薬の種類が記載
されている。表１に示すように、修飾されたテタヌスト
キシンは治療薬を脊椎および他の神経細胞部位に運ぶこ
とができる。修飾されたボツリヌス毒素は、化学薬を局
所に運ぶための媒介手段として用いることができる。

ここにいう輸送体は主に、不活性な２本鎖テタヌスト
キシンおよびボツリヌス毒素Ａ型タンパク質であるが、
他の全ての血清型のボツリヌス毒素（Ｂ−Ｇ）も同様に
用いることができる。異なる血清型のボツリヌス毒素
は、異なる前シナプスのレセプターに対して用いること
ができる。すなわち、異なる血清型の毒素は、医薬輸送
を特異的に行うことに好ましく用いることができる輸送
体として使用されよう。このことは、仮にある組織がひ
とつのレセプターを他のレセプターよりも選択的に有し
ている場合には、特に有効である。あるいは、２つの輸
送体を用いて異なる治療薬を体内の同じ標的域に運ぶこ
とに用いることもできる。この後者のアプローチは、レ
セプター部位の、異なる毒素リガンド間での競合を減ら
すのに有効である。

さらに、クロストリジウム属細菌神経毒素タンパク質
の天然のものと組換え野生型の双方に化学物質を結合さ
せて輸送体として用いることは、本発明の範囲に含まれ
る。このような態様では、医薬輸送体のＬ鎖部分の有す
る酵素活性により、その神経毒素特性の効能による治療
上の利点を得られる。例えば、神経機能を阻害する医薬
を野生型ボツリヌス毒素分子に結合させて２つの作用を
有する結合体とすることができる。医薬はその標的部位
で作用する一方、ボツリヌス毒素はその神経阻害効果を
及ぼす。

医薬分子に結合される活性毒素を用いた治療対象とな
る神経筋疾患の例としては、限局性ジストニー、ストロ
ーク若しくは外傷性脳損傷若しくは脊椎損傷による痙
直、眼瞼痙攣、斜視、脳性小児麻痺、筋痙攣による背痛
が含まれる。

以下に示すように、本発明で用いられることが予期さ
れるいくつかの医薬は、他の医薬が細胞外部で作用する
のに対し、細胞内部で作用する。ここで明らかにするよ
うに、細胞内部作用医薬は、クロストリジウム属細菌神
経毒素輸送体に結合させることができ、効果的にインタ
ーナリゼーションされる。しかし、細胞外部作用性医薬
もまた、本発明で用いることができる。還元されたアル
キル化ボツリヌス毒素は細胞の外部に結合するが、イン
ターナリゼーションはされない（de Pavia et al.,J.Bi
ol.Chem.268:20838（1993））。このようにして、還元
されたアルキル化分子は、細胞外部作用医薬と結合され
て、標的細胞の表面へと運ばれる。いったん細胞の表面
に結合すると、エステラーゼのような酵素が毒素輸送体
から医薬を引き離すので、標的細胞にきわめて接近して
医薬を放つことになる。

以下に、代表的な医薬の種類とこれに結合される輸送
体の形態の種々の実施態様の概要を示す。

不活性クロストリジウム属細菌神経毒素と化学薬とを
共有結合する方法は、当業者に知られている通常の方法
による。ただし、不活性な毒素に対応する複合薬のドメ
インは、標的細胞上の同種のクロストリジウム属細菌神
経毒素レセプターと特異的に相互作用する能力を維持し
ていることが条件である。

精製されたボツリヌス毒素Ａ型は、神経毒素薬として
医療的に用いられてきた。この化合物は、アレルガン社
（アーバイン、カリフォルニア）により製造されてお
り、BOTOX（登録商標）という商品名で販売されてい
る。この薬は、治療上、局所的、化学的な除神経筋肉麻
痺を生じさせるために用いられる。この様にして化学的
除神経を施すと、影響を受けた筋肉は萎縮し、ジャンク
ション外（extrajunctional）アセチルコリンレセプタ
ーを発達させ得る。影響を受けた神経細胞は、発芽新生
を生じ、筋組織を再び神経支配できるので、BOTOXの麻
痺活性は可逆的であると考えられる。

上記の方法に従って製造される修飾されたクロストリ
ジウム属細菌神経毒素は、減圧化で凍結乾燥した状態で
容器に入れ保存できる。凍結乾燥に先立って、修飾され
た毒素は、当業者に知られているアルブミンや他の適当
な薬品のような、製薬的に許容される賦形剤と混合でき
る。製薬的な調製については、ニュージャージーのMedi
cal Economics Data of Oradellにより毎年出版される
「Physicians Desk Reference」にさらに記載がある。
凍結乾燥剤は、筋内注射の前に、無菌の非保存性生理食
塩水を使って再調製する。この溶液は、上述の種々の神
経筋障害の治療に使いかってがよい。

軽鎖タンパク質に化学物質を結合させる方法 多種多様な化学物質を毒素輸送体分子に結合させて用
いることができると考えられるが、これらの代表的物質
は神経薬学的薬または医薬であろう。したがって、以下
の説明では、輸送体タンパク質と医薬との結合方法を詳
説する。しかしながら、当業者であれば、より一般的な
用語「化学物質（Chemical compound）」を「医薬（dru
g）」という用語に置き換えたにすぎないことは認識で
きるであろう。

タンパク質のアミノ酸鎖に化学物質を結合する方法は
数多く知られている。本発明者らは、Ｌ鎖ペプチドから
医薬を離すためにリンカー分子を用いる。上記のよう
に、本発明者らは、その本質的な機能に影響を及ぼすこ
となく、TeTxのＮ末端に11アミノ酸を結合することがで
きることを見いだした。このため、化合物の結合部分と
して、ボツリヌス毒素またはテタヌストキシンのＬ鎖の
Ｎ末端部位を用いることができる。

ほとんどの医薬で立体障害に対して敏感ではない位置
があることは知られている。また、連結工程により医薬
分子にキラリティが生じるわけではない。さらに、リン
カーと医薬とは共有結合により結合される。Ｌ鎖と医薬
との距離はスペーサー分子を挿入して調節する事ができ
る。スペーサーとしては、リンカー、医薬及びＬ鎖に結
合し、またそれらを結びつけることができる官能基を有
するものを用いることができる。

好ましいスペーサーとしては、： １）HOOC−（CH₂）_ｎ−COOH、ｎ＝１−12、ペプチドの
アミノ末端に挿入して、そのアミノ末端を医薬上のリン
カーに連結するのに好適である。

２）HO−（CH₂）_ｎ−COOH、ｎ＞10、ペプチドのアミノ
末端に結合させ、Ｌ鎖を医薬分子上のリンカーをＬ鎖に
結合するのに適している。

３）（C₆H₆）_ｎ、ｎ＞２、医薬分子上のリンカーとＬ鎖
を結合するアタッチメントとして好適である。ベンゼン
環は医薬とＬ鎖との間の剛性のあるスペーサーとなる。
もちろん、適当な官能基、例えば下記にＸ基として特定
されるようなものが、医薬とＬ鎖を連結するベンゼン環
についていることもある。

二つの異なる結合タイプが見られる。最初のタイプ
は、医薬−リンカー−Ｌ鎖分子が細胞中に導入された後
にもインタクト（無傷）のまま維持される。二つめのタ
イプは、医薬−リンカー−Ｌ鎖分子が細胞に導入された
後に代謝されて医薬を分離する。

導入後もインタクトのまま維持されるリンカー ひとつの方法としては、システイン残基がＬ鎖分子の
末端に従来の技術を用いて結合される。例えば、Ｌ鎖分
子をコードする遺伝子構築物を、タンパク質のＮ−末端
部位にシステイン残基が含まれるように変異させること
ができる。マレイミドリンカーは既知の手法によりシス
テイン残基に結合される。

二つめの方法としては、リンカーを直接医薬に結合す
る。医薬−Ｘ成分は、ＸがOH、SH、NH₂、CONH、CONH₂で
あるものであってもよい。もちろん、好ましい基は、活
性部位にはなく、また立体的に障害とならない。以下の
反応により、医薬−Ｘをリンカー分子に連結する。

一旦医薬がリンカーに結合されると、医薬を毒素に連結
するために以下の反応を行うことができる。この反応に
おいては、毒素は医薬に対する結合部分となる接触可能
なリシン基を有する。上記の通り、リシンなどの追加ア
ミノ酸は、Ｌ鎖遺伝子のＮ−末端部位に容易に結合で
き、医薬に対する結合部位として用いられる。以下の反
応では、水素化シアノホウ素ナトリウム（sodium cyano
borohydride）が、Ｌ鎖分子上のリシン基にリンカーを
結合するために用いられる。

本発明に用いられるものとして挙げられている医薬は、
フリー−XH基を有し、神経抑制剤（neuroinhibitor）と
して作用し得る医薬である。これらの神経抑制剤は、神
経がファイアリング（firing）するのを阻害されている
ような医学的徴候において神経伝達物質の過剰生産を妨
げることができる。好ましい−XH基を有する医薬として
は、アコニチン（Aconitine）、アデノシン アゴニス
ト／アンタゴニスト（adenosine agonists/antagonist
s）、アドレナリン作用薬（adrenergics）、アナトキシ
ンＡ（anatoxin A）、抗てんかん薬（antiepileptic
s）、バクロフェン（baclofen）、バチアコトキシン（b
actiachotoxin）、ブレフェルヂンＡ（brefeldin A）、
ブレベトキシン（brevetoxin）、カプトプリル（captor
il）、クラーレ（curare）、ダントロレン（dantrolen
e）、ドキソルビン（doxorubin）、ジアゼパン（diazep
an）、グライアノトキシン（grayanotoxin）、リドレイ
ン（lidoraine）、メトカルバモール（methocarbamo
l）、メチルリカコニチン（methyllycaconitine）、ネ
オサキシトキシン（neosaxitoxin）、フィソスツチジミ
ン（physostigmine）、プシコシン（psychosine）、TH
A、テトロドトキシン（tetrodotoxin）、ベサミコル（v
asamicol）およびバイガバタム（vigabatum） 導入後開裂するリンカー 医薬の作用の様式によっては、導入後にＬ鎖から医薬
が分離されることが重要となることがある。この方法で
は、医薬はリンカーとともに合成のための活性部位とな
るフリー−XH基を有する。−XH基はアルコール、フェノ
ール、アミン、カルボン酸またはチオールでもよい。導
入後代謝されるように医薬を毒素に連結する際の一般式
は以下の通りである。

Ｘとしては、Ｏ、N/NH、CO₂、Ｓ、CONHが挙げられる。

リンカーとしては以下に示すＡ）またはＢ）が挙げられ
る。

リボザイムを毒素輸送体に連結する手法では、リンカ
ーの結合のためにアデノシンおよびグアノシン塩基上の
フリーアミノ官能基を用いる。とりわけ、我々のアプロ
ーチでは、フリーアミノ部位が修飾された修飾アデノシ
ンまたはグアノシン残基を、スクシニミド（succinimid
e）の窒素部位に結合されるリンカーと結合させる。

これらの修飾ヌクレオシドの構造は次のように図式化で
きる： 糖−塩基−NH−リンカー−スクシニミド リボザイムは通常の方法に従って、定められた順序でヌ
クレオシドを逐次連結して調製される。連結反応は、個
々の化学ユニットの糖部分の間に生じる。上記したよう
に、リボザイムの3'または5'末端のいずれかでの修飾ヌ
クレオシドの結合は、前述の機構によって毒素輸送体に
共有結合で連結するための手段を提供するであろう。こ
こに述べた物質や方法の他のものも本発明の実施または
試験に用いることができるが、好ましい方法および物質
は今述べた通りである。ここに述べられている種々のPC
Rおよびクローニング手順を行うために用いることがで
きる方法についての一般的参考文献として、Molecular
Cloning:A Laboratory Mannual（Sambrook et al.eds.C
old Spring Harbor Lab Publ.1989）およびCurrent Pro
tocols in Molecular Biology（Ausubel et al.eds.,Gr
eene Publishing Associates and Wiley−Interscience
1987）がある。

不活性TeTx構成物を作成する最初の段階は、野生型お
よび変異型Ｌ鎖構造遺伝子をプラスミド発現ベクターに
サブクローニングすることを含む。この目的のために用
いられるベクターは、マルトースバインディングタンパ
ク質ドメイン（maltose binding protein domain）のＮ
末端を、Ｌ鎖のＣ末端に連結する融合タンパク質を発現
するように設計される。ベクターにコードされたファク
ターX_aの共有結合開裂部位は、MBPとＬ鎖挿入配列との
間に挿入される。Ｌ鎖DNAの部位特異的変異誘発を用い
てGlu²³⁴をAlaに代える。

実施例１では、野生型および変異型テタヌストキシン
Ｌ鎖のマルトースバインディング融合タンパク質をコー
ドした組換えプラスミドを作成する方法を説明する。

実施例１ マルトース−バインディング−タンパク質−TeTx−Ｌ鎖
構築物 E.Coli K−12 TG1菌株を、以下に説明する全てのプラ
スミド構築物の増殖用のホストとして用いた。pMAL−LC
プラスミド（野生型Ｌ鎖遺伝子）は、FairweatherらがF
EBSLett.323:218（1993）で示したpTet87プラスミドか
らのＬ鎖をコードする1417−bp断片のポリメラーゼチェ
ーンリアクション（PCR）増幅により構築した。このPCR
増幅で用いられるａおよびｄという２つのポリヌクレオ
チドプライマーは、それぞれ配列5'−GAGATGGTCGACATGC
CAATAACCATTAAATAAT−3'（配列番号１）、5'−ACGCGAAG
CTTTTATCATGCAGTTCTATTATA−3'（配列番号２）を有して
いた。この反応の増幅産物をSal IおよびHind III（Pro
mega）で消化し、それから野生型TeTx配列を保有するpM
AL−LCプラスミドを作製するために同じ酵素で消化した
pMAL−c2ベクター（New England BioLabs）（図1A）に
連結した。部位特異的変異誘発用には、配列5'−TAGTAC
ATGTATAAGTGCGTGCATTAATAG−3'（配列番号３）および5'
−TTATACATGTACTACATGGT−3'（配列番号４）をそれぞれ
有するｂとｃというさらに２つのプライマーを用いた。
それぞれのプライマーは、TeTx−Ｌ鎖の234アミノ酸位
置のGluコドンをAlaコドンに変異させる際に利用するAf
l III開裂部位を有する。pTet87のPCR増幅は、プライマ
ーa/bおよびc/dの組合せを別々に用いて行った。a/bの
組合せから得られた増幅産物は、Sal IおよびAfl IIIで
消化し、c/dの組合せから得られたものはAfl IIIおよび
Hind IIIで消化した。マジックDNAクリーンアップシス
テム（Promega）で精製した後、変異TeTx配列を保有す
るpMAL−LC−Ala²³⁴プラスミドを作製するために試料を
Sal IおよびHind IIIで開裂したpMAL−c2に連結した。

サブクローニングの後、プラスミドDNAをアンピシリ
ン耐性形質転換体の培養物から精製して、構築物の構造
を制限酵素マッピングおよび挿入したDNAの配列決定に
より確認した。

Sal IおよびHind IIIによる消化により、アガロース
ゲル電気泳動により推定される長さが1417bpである断片
を収集した。DNA配列決定により、Ｌ鎖遺伝子の5'−末
端の接続部のヌクレオチド配列、多重クローニング部位
（MCS）、ファクターX_a開裂部位、Ｌ鎖およびMBPコドン
配列がすべて正しいリーディングフレームになっている
ことを確認した（図1A）。

上記プラスミド構築物の利用により、組換え野生型お
よび変異Ｌ鎖融合タンパク質の作製が可能となった。特
に、pMAL−LCまたはpMAL−LC−Ala²³⁴プラスミドを保有
するバクテリアローンの培養は、組換え体融合タンパク
質の高レベル合成を刺激するイソプロピルβ−Ｄ−チオ
ガラクトシド（IPTG）により誘導される。アミロースア
フィニティー樹脂によるバクテリア抽出物のアフィニテ
ィークロマトグラフィーによって、２つの融合タンパク
質のラージスケール精製を行った。

実施例２では、上記の実施例で説明したプラスミド構
築物によってコードされた組換えＬ鎖融合タンパク質の
生成と精製の手法を説明する。

実施例２ TeTx融合タンパク質の発現並びに野生型およびAla²³⁴−
Ｌ鎖変異タンパク質の精製 pMAL−LCまたはpMAL−LC−Ala²³⁴プラスミドを保有す
るE.Coliクローンを、アンピシリンを100μg/mlおよび
グルコースを2mg/mlにしたＬ−ブロース（broth）中に3
7℃の条件で、およそ２×10⁸cell/ml（A⁶⁰⁰〜0.5）の密
度になるまで増殖させた。最終濃度0.3mMまでIPTGを添
加して誘導を開始した。２時間後に6000×ｇ、30分間遠
心分離を行い、細胞を収集した。得られたペレットを、
1mMフェニルメタンスルホニルフルオリド（PMSF）を含
むカラム緩衝液［10mMトリス−HCl、200mM NaCl、1mMエ
チレングリコールビス（β−アミノエチルエーテル）−
N,N,N',N'−テトラ酢酸、および1mMジチオトレイトール
（DTT）（pH7.4）］に再懸濁し、超音波処理により溶菌
させた。遠心分離の後、粗抽出物をアミロースアフェニ
ティーカラム（2.5×10cm、40mlの樹脂）にアプライし
た。結合しなかったタンパク質を緩衝液で洗って除去
し、続いて、MainaらがGene74:365（1988）に記載した
手順にしたがって、結合したMBP−LC融合タンパク質を1
0mMマルトースを含む緩衝液で溶離した。分離された融
合タンパク質は、アミコン セントリコン（Amicon CEN
TRICON）を用いた0.5−1mg/mlに濃縮した。それからタ
ンパク質試料を、ソジウムドデシルサルフェイトポリア
クリルアミドゲル電気泳動（SDS−PAGE）および抗−MBP
ポリクローナル抗体と抗−Ｌ鎖モノクローナル抗体を用
いたウエスタンブロッティングにより分析した。双方の
細胞抽出物のSDS−PAGEは、非誘導培養のクーマシー染
色パターンにはない、誘導タンパク質バンド（M_r〜90,0
00）の存在を示した。タンパク質バンドの分子量は、MB
PとＬ鎖の融合から予測されるもの（それぞれM_r〜40,00
0および50,000）に一致した。pMAL−c2ベクターシステ
ムを使って組換えＬ鎖およびAla²³⁴変異体を発現させる
ための定められた最適条件は、IPTGで37℃、２時間の誘
導であった。それ以上の時間誘導してもプロテアーゼ阻
害剤を混合させても生成物の収量は増えなかった。どち
らの融合タンパク質も緩衝水溶液（0.5mg/mlまで）に溶
解し、また−20℃で保存して８カ月安定していた。

この最初の精製段階の後、双方のMBP−Ｌ鎖調製物
を、ファクターX_aによって、酵素：タンパク質の割合を
0.5−1:100（w/w）として、23℃、24時間で開裂した。
この開裂により、SDS−PAGEにより確認された通り、MBP
が遊離して野生型−Ｌ鎖およびAla²³⁴−Ｌ鎖それぞれへ
の融合タンパク質の転換が達成された。カラム緩衝液に
対し十分に透析してマルトースを除いた後、Ｌ鎖または
Al²³⁴−Ｌ鎖を新たなアフィニティーカラムに再吸着さ
せてさらに精製した。この精製段階の所望の生成物はカ
ラム洗浄画分中に見いだされる。カラム洗浄の画分は、
A_280nmでモニターし、SDS−PAGEおよびウエスタンブロ
ッティングにより再確認した。

アミノ酸配列決定のために、野生型または変異型Ｌ鎖
をSDS−PAGEにかけ、TousらがAnal.Biochem.179:50（19
89）で記載したようにポリ（ビニリデンジフルオライ
ド）膜に移し、モデル4000タンパク質シンケンサー（Ch
elsea Istrumetns,London）を用いて、自動エドマン分
解を行った。２つの生成物をマイクロシーケンシングし
たところ、図1Aに示されるように、ベクターの多重クロ
ーニング部位によりコードされる11アミノ酸の後に位置
する４つの残基が、天然Ｌ鎖のＮ−末端のそれと全く同
じであることが明かとなった。所望の構造を有する組換
えＬ鎖タンパク質を精製することに成功したので、我々
は次にこれらの化合物の酵素活性を試験した。

天然Ｌ鎖タンパク質の亜鉛依存プロテアーゼ活性の試
験を、組換えＬ鎖タンパク質の活性についての検定とし
て行った。この検定では、２つの異なるタンパク質基質
を用いた。最初に、ウシ小シナプス小胞（SSVs）を用い
た。クーマシー染色およびタンパク質ゲルのウエスタン
ブロッティングに基づいて基質のタンパク質分解開裂を
検定した。

実施例３では、SSVsを基質として用いて野生型および
変異型組換えＬ鎖タンパク質のタンパク質分解活性を検
定する方法について説明する。

実施例３ インビトロ基質のTeTx−Ｌ鎖依存タンパク質分解測定 天然、組換え野生型またはAla²³⁴L鎖を、ウシ小シナ
プス小胞（0.5mg/ml）とともに、50mM HEPES、400mM Na
cl、5mM DDT、２μM ZnSO₄（pH7.4）中、37℃で、90分
間インキュベートした。反応は、SDS−PAGE試料緩衝液
を添加し３−５分間煮沸して停止させた。それから試料
をSDS−PAGEにかけ、ShoneらがEur.J.Biochem.217:965
（1993）に示したヒトVAMP2の33−94残基に対応する62
−アミノ酸合成ポリペプチドに対して産生させたアフィ
ニティー精製抗−HV62抗体を用いたウエスタンブロッテ
ィングにより検出した。抗−HV62抗体の調製方法は、実
質的にPaivaらがJ.Neurochem.61:2338（1993）の中で示
している方法と同じである。SDS−PAGE後の消化物の抗
−VAMP抗体プローブによるウエスタンブロッティングま
たはタンパク質染色による半定量検定をしたところ、ウ
シSSVsとともに組換え（100nM）または基準（50nM）Ｌ
鎖タンパク質をインキュベートすることによってVAMPの
タンパク質分解開裂が生じた。Ala²³⁴−Ｌ鎖は、濃度2.
3μＭであってもプロテアーゼとして不活性であること
が判明した。この結果はGlu²³⁴がTeTx−Ｌ鎖の酵素活性
にとって必須であることを裏付けた。

天然および組換えＬ鎖の相対活性をより正確に定量す
るために、ヒトVAMP−２の33−94残基に対応する合成62
−残基ポリペプチド、HV62、の開裂の測定にRP−HPLCを
用いた。

実施例４では、HV62ペプチド基質を用いて天然および
組換えＬ鎖のインビトロ活性を定量するための手順を説
明する。

実施例４ 天然および組換えTeTx−Ｌ鎖タンパク質のタンパク質分
解活性の定量 5mM DDTを含む20mM HEPES、200mM NaCl（pH7.4）のHV
62ペプチドのストック溶液（最終濃度40μＭ、最終容量
60μｌ）を調製Ｌ鎖（最終濃度100nM）とともに37℃で
インキュベートした。所定時間間隔で、5mMエチレンジ
アミン−四酢酸（EDTA）60μｌおよび１％（v/v）トリ
フルオロ酢酸（TFA）（pH2）を添加して反応を停止し、
続いて遠心分離を行った。試料は分析にかけるまで−20
℃で保存した。HV62加水分解の進行度を、０−60％アセ
トニトリル勾配を用い、0.05％TFA中で平衡化したマイ
クロパックス（Micropax）C₁₈カラム上で逆相高圧液体
クロマトグラフィーによりA_220nmをモニターしながら測
定した。SchiavoらがEMBO J.11:3577（1992）に発表し
た知見と同じく、Glu⁷⁶およびPhe⁷⁷の間のただ１つのタ
ンパク質分解部位が開裂生成物のＮ末端配列決定によっ
て確認された。HV62加水分解の割合を77−94残基に対応
した分解生成物のピーク高さから算出した。生成物の既
知量をピーク高さに関連付けた直線標準曲線を、定量の
ために用いた。

分離した開裂生成物（77−94残基）の定量、すなわち
天然Ｌ鎖によるポリペプチドの時間および濃度依存加水
分解、は図２に示す通りである。組換えＬ鎖（250nM）
によるHV62基質（40μＭ）の開裂はそのタンパク質分解
活性により確認した。しかしながら、基準Ｌ鎖タンパク
質で観察されるのと同じレベルの加水分解（ｎ＝４）を
生じさせるには、2.5倍高濃度の組換えＬ鎖が必要とな
る。この特定の条件下では、100nM天然および組換えＬ
鎖の37℃での基質開裂の初速度は、それぞれ45.6±3.6
および21.6±2.4pmol/minであった。さらに重要なこと
には、Ala²³⁴−Ｌ鎖を2.5μＭで３時間インキュベート
したときには、ポリペプチド（40μＭ）のタンパク質分
解は検知されなかった。この後者の発見は、Glu²³⁴がTe
Tx−Ｌ鎖の酵素活性に必須であることを裏付けた。

Ala²³⁴−Ｌ鎖変異体を特徴づけるタンパク質分解活性
の欠落は、Ｌ鎖が基質に結合できないか、あるいはペプ
チド結合（Glu、Phe）を開裂することができないかのい
ずれかに起因する。２つの可能性を区別するために、Al
a²³⁴L鎖の、天然Ｌ鎖によるHV62基質の開裂を減じる能
力について調べた。これは、天然Ｌ鎖を添加する前に、
前もってHV62とAla²³⁴L鎖をインキュベートするという
単純な試験により行った。この試験を行うために、反応
緩衝液中で９μM HV62を、4.5μM Ala²³⁴−Ｌ鎖ととも
に、150nM天然Ｌ鎖を添加する前に前もって37℃で１時
間インキュベートした。反応を止めたところで、上記し
たように試料中の基質開裂を分析した。この試験の結果
から、Ala²³⁴−Ｌ鎖変異タンパク質が存在すると、天然
Ｌ鎖の活性が50％以上も減少することが判明した（図
２、挿入部）。この結果から、変異Ｌ鎖はペプチドに結
合する能力は維持しており、それゆえ天然Ｌ鎖のタンパ
ク質分解活性を阻害していることが判明した。

Ala²³⁴−Ｌ鎖が検知し得るタンパク質活性を有してい
ないことが証明されたので、我々は、天然Ｈ鎖および不
活性Ｌ鎖成分を会合した２本鎖分子の特性を調べた。毒
素タンパク質Ｈ鎖は細胞表面レセプターに結合するのに
大きく貢献するので、基質をタンパク質分解する能力を
喪失した２本鎖毒素はおそらく細胞表面に結合する能力
を維持しており、またインターナリゼションされると我
々は推論した。このような２本鎖種は、神経細胞にさま
ざまな化合物類（chemical species）を運ぶ輸送体とし
て用いることに容易に応用し得る。

実施例５では、天然Ｌ鎖、組換え野生型Ｌ鎖またはAl
a²³⁴−Ｌ鎖のいずれかを合体させた２本鎖TeTxを調製す
る方法について説明する。

実施例５ 天然Ｈ鎖と組換えＬ鎖からのTeTxの再会合 WellerらがEur.J.Biochem 182:649（1989）で詳述し
たようにTeTxより精製した天然Ｈ鎖を、等モル量の天然
Ｌ鎖、組換え野生型Ｌ鎖またはAla²³⁴L鎖のいずれかに
結合させた。2M尿素、20mM DDT、1M NaClおよびトリス
−HCl（pH8.4）に対して攪拌しながら18時間その混合物
を透析し、さらに50mMトリス−HClおよび600mMグリシン
（pH8.4）に対して攪拌せずに72時間透析した。１アリ
コート（300μｇ）を25mMトリス−HCl緩衝液（pH8.4）
の入ったHPLC DEAEカラムにかけ、NaCl勾配（０−1M）
を有する同じ緩衝液で溶離した。共有結合再構成（cova
lent reconstitution）の程度は、非還元SDS−PAGEおよ
び銀染色法により確認した。

２本鎖種（dichain species）の再会合は、天然TeTx
と同様に泳動した高M_rタンパク質染色バンドの存在によ
り確認した。組換え野生および変異Ｌ鎖について、銀染
色ゲルのデンシトメトリックスキャンにより確認したと
ころ、２本鎖種（dichain species）の相対量は55.1お
よび56.8％であった。天然Ｈ鎖およびＬ鎖は同等レベル
の再構成を示した。後者は、DTTによる還元で毒素がフ
リーＨ鎖およびＬ鎖にもどったので鎖間ジスルフィド結
合を有していた。

２本鎖毒素分子の再会合ができたので、組換えＬ鎖を
含有した２本鎖の生物活性を調べた。SDS−PAGE分析に
よれば、２本鎖種は再会合していたが、これのみでは、
再構成タンパク質は適切に折りたたまれ、あるいは適切
に鎖間または鎖内ジスルフィド結合が形成されて活性毒
素を生成しているとはいいきれない。そこで、毒素活性
について作用検定を行う必要があった。

実施例６では、再会合した２本鎖毒素の生物活性を検
定する方法を説明する。

実施例６ 再会合TeTx2本鎖毒素のバイオアッセイ FairweatherらがInfect.Immunol 58:1323（1990）で
示したようにして、２本鎖毒素または他の試料をマウス
（20g）の首の背側部分に皮下注射（200μ／匹）し、Ma
iseyらがEur.J.Biochem.177:683（1988）に示したよう
にして、LD₅₀値を決めた。この実験の結果を表２に示
す。

表２から明らかなように、Ala²³⁴−Ｌ鎖および天然Ｈ
鎖から再構成された２本鎖種は、Ｈ鎖のみよりも毒素活
性がなかった。天然Ｈ鎖と組換えＬ鎖による再構成２本
鎖は毒性を示すことから、この活性の欠如は再会合のプ
ロセスに起因するものではない。

HabermannらがNaunyn−Schmiedeberg's Arch.Phamaco
l.311:33（1980）に示している神経筋の伝達物質をブロ
ックするTeTxの局所的な作用を、インタクトな毒素に対
する再構成試料の活性の評価に使用した。

実施例７は、再構成２本鎖の神経筋伝達に対する影響
を評価する方法について説明する。

実施例７ 再構成されたＨ鎖および組換えTeTx−Ｌ鎖またはAla²³⁴
−Ｌ鎖の神経筋伝達に対する影響 マウスの左横隔膜神経半横隔膜調製物からの再構成２
本鎖によるアセチルコリン放出の抑制を、de Paivaらが
FEBS Lett.277:171（1990）に示したようにして、神経
誘発性筋緊張（muscle tension）として測定した。完全
麻痺に至るまでの時間として、毒素を加えてから、筋緊
張が元の最大反応の10％まで低下したときのポイントま
でを記録した。試験手順は、PaivaらがJ.Neurochem.61:
2338（1993）に概略を示しているような方法を採った。
この試験の結果を図３に示す。

天然Ｈ鎖とＬ鎖から生じる毒素では完全麻痺に至るま
でに240秒要するところ、TeTxは150秒以内に神経誘発性
筋緊張を失わせた。この結果は、TeTxおよびBoNT/Aの天
然毒素に関して、WellerらがEur.J.Biochem.182:649（1
989）で明らかにした、TeTXとBoNT/Aから再構成した鎖
の下部神経筋ブロッキング活性についての報告と一致す
るものである。組換えTeTxL鎖を天然Ｈ鎖と再構成する
と、得られた２本鎖は、予想されたよりも1.5倍の効能
を示した。40nMの組換え２本鎖は、完全麻痺に至らせる
までに、20nM再構成天然２本鎖（図３、挿入部）と同じ
だけの時間を要しており、上記した発現Ｌ鎖（expresse
d L chain）の減少した酵素活性と一致する。マウスバ
イオアッセイにより、TeTxもまた、再構成天然鎖（図
２）よりもより毒性がある（15倍）であることが判明し
た。さらに、再構成に組換え野生型Ｌ鎖を用いると、Fa
irweatherらがFEBS Lett.323:218に報告したレベルの近
くまでさらに致死量（lethality）が低下した。

最も意義深いのは、Ala²³⁴−Ｌ鎖と天然Ｈ鎖を使って
再構成した２本鎖は、100nMで、６時間以上神経筋伝達
に対し不活性であることが判明したことである。

実施例８では、クロストリジウム属細菌神経毒素Ｌ鎖
タンパク質に化学物質を共有結合により連結させる方法
について説明する。この実施例では、細胞質からシナプ
ス小胞へのアセチルコリンの取込みをブロックする医薬
を、フリーSH基を用いて輸送体に連結する。この工程で
の合成工程の概要を図４に示す。

実施例８ 輸送体タンパク質とベサミコール（Vesamicol）との化
学結合 最初に、THF、DMSO、DMFまたはアセトニトリルなどの
溶媒中の、それぞれ等モル濃度の塩基性触媒溶液（ピリ
ジン、2,6−ジメチルピリジン、トリエチルグアニジン
など）を用いて、ベサミコール（vesamicol）をリンカ
ーである１−クロロプロピル12−クロロ−ドデカン酸
（dodecanoate）に結合する。反応は、０から100℃の間
の温度で、１〜48時間行う。次に、上記したのと同じ溶
媒中にヨウ化ナトリウム（触媒として用いた）の存在
下、上記と同様の時間と温度で、得られたベサミコール
−リンカー生成物を等モル量のマレイミドのカリウム塩
と反応させる。

組換え不活性Ｌ鎖と天然Ｈ鎖とを、およそ150kDa_rの
２本鎖分子に復元する。復元は、等モル量のＬ鎖とＨ鎖
タンパク質を尿素とDTTの存在下で混合して行う。混合
液は、実施例５で用いた透析緩衝液と同じ組成の緩衝液
を用いて４℃で透析する。復元プロセス中は好ましくは
緩衝液を酸素化するとよい。緩衝液は24時間で５回取り
替える。尿素とDTTを除去するとＬ鎖とＨ鎖のジスルフ
ィド結合が生じる。二本鎖のそれぞれは、医薬を結合す
ることができるいくつかのフリーのスルフィドリル基を
有する。

輸送体を含む上記のトリス−NaClに５倍モル以上のベ
サミコールリンカーを混合し、暗所に４℃で１〜24時間
の条件で、ベサミコールリンカーを、インタクト輸送体
分子に存在するフリースルフィドリル基に結合させる。
次に輸送体−ベサミコール試料はトリス−NaClに対して
一晩透析し、ベサミコール輸送体から余分なベサミコー
ル−リンカー−マレイミドを除去する。

医薬−輸送体物質は、治療上有効量を無菌注射として
投与するのに利用できる。

上記の修飾され、不活性化されたTeTx神経毒素輸送体
は多数の臨床用の適用があるであろう。例えば、これら
の修飾された毒素は、人体の全身領域（general area）
での痙直に影響を及ぼす神経筋障害の治療に有用であろ
うと考えられる。この機能障害には、痙性斜頸、ポスト
ストロークまたは外傷性脳損傷により誘発される痙直が
含まれるが、これらに限定はされない。

実施例９では、上記の化学的に修飾され、不活性化さ
れたTeTx輸送体を、毒素レセプターをもつ神経単位に化
学物質を運ぶための治療用医薬として用いる方法につい
て説明する。

実施例９ 修飾された毒素の治療適用：痙性斜頸（頸部のジストニ
ー） 首筋系の痙性または緊張性収縮で、頭、顎のステレオ
タイプ異常偏向（deviations）を生じて、片方に回旋
し、また肩が回旋した頭の脇まで持ち上がっているよう
な症状が現れている痙性斜頸を患う45歳の女性に、当業
者が知っている適切な医薬を、不活性なテタヌストキシ
ン輸送体に結合させて、症状のでている筋肉へ治療有効
量を直接処置する。

３−７日後には症状はかなり緩和し、例えば、患者は
自分の頭と肩を正常な位置に保つことができ、あるいは
痛みや不快感が著しく軽減される。

実施例10では、上記不活性なTeTx輸送体を、毒素レセ
プターをもつ神経単位に化学物質を運ぶための治療用医
薬として用いる方法についてさらに説明する。

実施例10 修飾された毒素の治療適用：ポストストロークまたは外
傷性脳損傷により誘発される痙直 外傷性脳損傷を患う24歳の青年男性は、動きを制限
し、またリハビリテーションや衛生（hygiene）の妨げ
となるほど上肢および下肢痙直が進行している。症状に
は、患者や付添人が衛生の困難をもつほどの重度の手の
クロージング（closing）、腰のカーリング（curling）
および脚のクロージング（closing）も含まれる。さら
に、肢の痙性は理学的リハビリテーションの妨げとな
り、また筋肉の痙攣や関節の不動化を引き起こす。当業
者が知っている適切な医薬を不活性なテタヌストキシン
輸送体に結合させ、治療上有効な量の無菌注射液を、症
状のでている筋肉へ直接投与する。これらの症状の軽減
が７−21日中に現れ、下肢はリラックスして患者や付添
人が通常の衛生を保てるようになる。

脳血管卒中（cerebral vascular event（stroke））
を患う70歳の女性は下肢痙直が進行して、衛生を保つた
めに多大な努力を要する。患者の両肢に、当業者が知っ
ている適切な医薬を、不活性なテタヌストキシン輸送体
に結合させて、患者の両肢に治療上有効な量を直接注射
する。注射は、症状のでている筋肉へ直接行う。これら
の症状の軽減が７−21日中に現れ、下肢はリラックスし
て患者や付添人が通常の衛生を保てるようになる。

以上の説明での結果および結論は、主に修飾されたTe
Tx輸送体の生成、性質決定、使用に関連しているが、修
飾されたBoNT/A輸送体に関しても同様な結果が得られて
いる。我々がBoNT/Aについてまず行ったのは、Ｌ鎖タン
パク質をコードしている配列のサブクローニングであっ
た。

BoNT/A−Ｌ鎖をコードしているDNA断片を、BoNT/A−
Ｌ鎖遺伝子の5'および3'末端にアニールされるセンスお
よびアンチセンスプライマーを用いたPCRにより増幅し
た。増幅生成物をpBluescript II SK⁺ベクターに結合し
てプラスミド、pSALを作製した。

以下の実施例に説明するように、２本鎖プラスミドの
配列決定によって、クローン化されたＬ鎖遺伝子のヌク
レオチド配列は基準となるBoNT/A−Ｌ鎖のものと同一で
あることが確かめられた。

実施例11では、BoNT/A−Ｌ鎖をコードするポリヌクレ
オチド配列をクローン化するための方法について説明す
る。

実施例11 BoNT/A−Ｌ鎖遺伝子のサブクローニング BoNT/A−Ｌ鎖をコードしているDNA配列を、5'−AAAGG
CCTTTTGTTAATAAACAA−3'（配列番号５）および5'−GGAA
TTCTTACTTATTGTATCCTTTA−3'（配列番号６）という配列
を有する合成オリゴヌクレオチドを用いたPCRプロトコ
ールによって増幅した。これらのプライマーを使えば、
Stu IとEcoR I制限部位を、BoNT/A−Ｌ鎖遺伝子断片の
5'末端と３末端にそれぞれ導入することができる。これ
らの制限部位は、後で増幅生成物の単一方向（unidirec
tional）サブクローニングに用いる。さらに、これらの
プライマーは、Ｌ鎖をコードしている配列のＣ−末端に
停止コドンを導入する。C.botulinum（63A菌株）からの
染色体DNAは増幅反応でのテンプレートとして用いられ
る。

PCR増幅は、10mMトリス−HCl（pH8.3）、50mM KCl、
1.5mM MgCl₂、デオキシヌクレオチドトリリン酸（dNP
T）をそれぞれ0.2mM、プライマーをそれぞれ50pmol、ゲ
ノムDNAを200ngおよびTaq−ポリメラーゼ（Promega）を
含む100μｌ容量中で行った。反応溶液は、変性（94
℃、１分）、アニーリング（37℃、２分）、重合（72
℃、２分）を35回繰り返す条件にかけた。最後にさらに
72℃で５分間、反応を延長した。

PCR増幅生成物は、Stu IおよびEcoR Iで消化し、アガ
ロース電気泳動で精製し、Stu IおよびEcoR Iで消化し
たpBluescript II SK⁺に結合させてプラスミド、pSALを
得た。このプラスミドを保有するバクテリアの形質転換
体は、通常の方法によって分離する。クローン化された
Ｌ鎖ポリヌクレオチドの同定は、SEQUENASE（United St
ates Biochemicals）を用い、製造業者の取扱説明書に
したがって２本鎖プラスミドの配列決定を行うことによ
り確認した。

合成オリゴヌクレオチドの配列決定プライマーは、オ
ーバーラップ配列決定を実行するのに十分なように用意
した。クローン化された配列は、BinzらがJ.Bio.Chem.2
65:9153（1990）で、またThompsonらがEur.J.Biochem.1
89:73（1990）で明らかにした配列と一致することがわ
かった。

BoNT/A−Ｌ鎖の酵素活性が落ちるように設定された部
位特異的変異体もまた作成した。

実施例12では、変異BoNT/A−Ｌ鎖をコードしているポ
リヌクレオチドを構築するために用いられる方法につい
て説明する。

実施例12 BoNT/A−Ｌ鎖ポリヌクレオチドの変異誘発 HiguchiらがPCRプロトコール、Innis、Gelfand、Snin
skyおよびWhite編、Academic Press,Inc.（1990）に示
した方法の変法に従って鋳型としてクローン化されたＬ
鎖ポリヌクレオチドを用い、PCRを介して、BoNT/A Glu
²²⁴をGlnに、またはHis²²⁷をTyrに変異誘発させた。

Gln²²⁴変異体を作成するためのセンスおよびアンチセ
ンスオリゴヌクレオチドプライマーとしては、配列5'−
GCACATCAACTTATACAT−3'（配列番号７）および5'−ATGT
ATAAGTTGATGTGC−3'（配列番号８）を有するものを用い
た。Tyr²²⁷変異体を作製するためのセンスおよびアンチ
センスオリゴヌクレオチドプライマーとしては、配列5'
−AACTTATATATGCTGGAC−3'（配列番号９）および5'−GT
CCAGCATATATAAGTT−3'（配列番号10）を有するものを用
いた。２回目のPCRでは、プライマーとして配列番号５
および配列番号６の配列を用いて、完全な変異遺伝子を
増幅した。Gln²²⁴変異を有する増幅したポリヌクレオチ
ドは、Stu IおよびEcoR Iで消化し、Sma IおよびEcoR I
で二重消化したpBluescript II SK⁺ベクターに結合し
て、プラスミド、sSAL−Gln²²⁴を作成した。Tyr²²⁷変異
変異を有する増幅したポリヌクレオチドは、Stu Iおよ
びEcoR Iで消化し、Sam IおよびEcoR Iで二重消化したp
Bluescript II SK⁺ベクターに結合して、プラスミド、p
SAL−Tyr²²⁷を作成した。組換えＬ鎖をコードするポリ
ヌクレオチドは、それぞれのプラスミドから開裂し、バ
クテリア中での融合タンパク質生成を促進するために、
原核生物発現ベクターに結合した。マルトースバインデ
ィング融合タンパク質の発現を高レベルにする能力のあ
る発現ベクターを作成するために、pMAL−c2ベクターを
用いた。

実施例21（後記参照）に開示したとおり、グルタチオン
Ｓ−トランスフェラーゼ（GST）融合タンパク質の生成
に、pGEX−2Tベクター（Phmacia）を同様に用い、同じ
く良好な結果を得た。我々は、GST融合タンパク質を生
成し試験したが、都合のよいことに、マルトースバイン
ディングドメインを結合した融合タンパク質は、極めて
容易に精製することができることを見いだした。ここで
説明した発現構築物のすべてのＬ鎖タンパク質コーディ
ング配列は、ベクターが有するIPTG−誘導P_taqプロモー
ターの転写調節下にあった。

実施例13では、バクテリアのホスト細胞中で、BoNT/A
野生型および変異Ｌ鎖を発現するプラスミドを構築する
ために用いる方法を説明する。

実施例13 組換えBoTN/A−Ｌ鎖発現プラスミドの構築 pSAL、pSAL−Gln²²⁴およびpSAL−Tyr²²⁷プラスミドに
よって担持される、BoNT/A野生型および変異型Ｌ鎖ポリ
ヌクレオチドは、BamH IおよびSal Iで消化した切除
し、プラスミドpCAL、pCAL−Gln²²⁴およびpCAL−Tyr²²⁷
を生成するために、pMAL−c2発現ベクター（New Englan
d BioLabs）のBam IおよびSal I部位の間に結合した。p
CALプラスミドを図５に示す。pCAL、pCAL−Gln²²⁴およ
びpCAL−Tyr²²⁷プラスミドは、上記で明らかなように、
１コドンの変異を除いては同一である。pMAL−c2ベクタ
ーは、IPTG−誘導P_tacプロモーターの転写調節下でマル
トースバインディングタンパク質（MBP）をコードするM
alE遺伝子を保有する。

このプラスミド内の多重クローニング部位（MCS）に
よって、MalEをコードしている配列の3'末端で、Ｌ鎖を
コードしている配列のサブクローニングをすることがで
きる。重要なのは、ファクターX_aプロテアーゼ開裂配列
が融合タンパク質のMalEとＬ鎖配列との間に存在するこ
とである。発現プラスミドを保有する形質転換E.coli T
G1は通常の方法により分離した。

pCAL、pCAL−Gln²²⁴およびpCAL−Tyr²²⁷プラスミドの
構造は、制限酵素消化およびアガロースゲル電気泳動に
より確かめた。DNA配列分析により、これらのプラスミ
ド中に存在する挿入片（inserts）は、基準（authenti
c）Ｌ鎖遺伝子の翻訳リーディングフレイムについて正
しい方向にあることが確認された。また配列分析によ
り、予想どおり、Ｌ鎖遺伝子の5'末端は、MCSとファク
ターX_aの開裂部位に７つのアミノ酸をコードする短い配
列を介して融合されたことが確認された。さらに、DNA
配列決定の結果は、Ｌ鎖配列と連結されたMalE配列は同
じ翻訳リーディングフレームにあることを示した。組換
えＬ鎖をコードしている発現プラスミドを保有するバク
テリアのクローンを利用することで、野生型および変異
BoNT/A−Ｌ鎖タンパク質双方の有用量を生成することが
可能となった。野生型および変異Ｌ鎖融合タンパク質の
生成および精製には同様の手法が採られた。

以下に続く実施例では野生型およびTry²²⁷変異融合タ
ンパク質を用いる手法を説明するが、同一の方法をGln
²²⁴変異を有する融合タンパク質の生成にも適用するこ
とができた。

実施例14では、pCALおよびpCAL−Tyr²²⁷プラスミドを
保有するバクテリア内での野生型および変異Ｌ鎖の発現
を確かめるために用いる方法について説明する。

実施例14 BoNT/A−Ｌ鎖融合プロテインの発現 pCALまたはpCAL−Tyr²²⁷のいずれかを保有するバクテ
リアのコロニーを充分に分離して、100μg/mlアンピシ
リンと２％（w/v）グルコースとを含むＬ−ブロースに
接種し、30℃で１晩振盪培養した。１晩培養した培養物
を、100μg/mlのアンピシリンを含む新鮮なＬ−ブロー
スで1:10に希釈し、２時間インキュベートした。最終濃
度が0.1mMとなるようにIPTGを添加することにより、融
合タンパク質発現を誘導した。さらに30℃で４時間イン
キュベートした後、6000×ｇで10分間遠心分離を行うこ
とによりバクテリアを収集した。スモールスケールSDS
−PAGE分析により、IPTG−誘導バクテリア由来の試料中
に90kDaのタンパク質が存在することが確認された。こ
のM_rは、MBP（〜40kDa）およびBoNT/A−Ｌ鎖（〜50kD
a）という成分を有する融合タンパク質の予期されたサ
イズに一致した。さらに、コントロール培養物と比較し
たところ、IPTG−誘導クローンは融合タンパク質をより
多量に含んでいた。

またIPTG−誘導バクテリアの抽出物中に所望の融合タ
ンパク質が存在することは、また、Cenci di Belloら
がEur.J.Biochem.219:161（1993）に示したポリクロー
ナル抗−Ｌ鎖プローブを用いるウエスタンブロッティン
グにより確認した。PVDF膜（Pharmacia;Milton Keynes,
UK）上の反応バンドは、ホースラディッシュペルオキシ
ダーゼに結合した抗−ウサギ免疫グロブリン（Bio−Ra
d;Hemel Hempstead,UK）とECL検知システム（Amersham,
UK）を用いて視覚化した。ウエスタンブロッティングの
結果、フルサイズの融合タンパク質よりもM_rの低いタン
パク質に対応するいくつかのかすかなバンドと共に優勢
融合タンパク質の存在が確認された。この観察により、
バクテリア中でまたは分離過程中に融合タンパク質の限
定分解が生じたことを示唆された。分離過程中に1mMま
たは10mMのベンズアミジン（Sigma;Poole,UK）を用いて
も、このタンパク質分解は避けられなかった。

上記過程により分離したインタクト融合タンパク質の
収率は、ここで説明したすべての過程で適切に保たれ
た。染色SDS−PAGEゲルによる見積もりでは、IPTGを用
いて誘導したバクテリアクローンから、培養物のリッタ
ーあたり５−10mgのMBP−野生型または変異Ｌ鎖融合タ
ンパク質が得られた。ここに示したBoTN/A−Ｌ鎖融合タ
ンパク質の生成方法は、限定タンパク質分解が生じると
はいえ極めて効果的である。pCALおよびpCAL−Tyr²²⁷発
現プラスミドによりコードされたMBT−Ｌ鎖融合タンパ
ク質は、アミロースアフィニティークロマトグラフィー
によりバクテリアから精製された。組換え野生型または
変異Ｌ鎖は、ファクターX_aを用いた部位特異開裂により
融合タンパク質の糖バインディングドメインから分離し
た。この開裂過程により、フリーMBP、フリーＬ鎖およ
び少量の開裂してない融合タンパク質が得られる。この
ような混合物中に得られたＬ鎖が所望の作用を有するこ
とが明らかとなったが、我々はさらに精製を行った。す
なわち、開裂した生成物の混合物をMBTと開裂してない
融合タンパク質の両方を結合する２回目のアミロースア
フィニティーカラムを行った。フリーＬ鎖は、アフィニ
ティーカラムにはとどまらず、以下に説明する実験に用
いるために分離された。

実施例15では、バクテリアのクローンから、野生型お
よびTyr²²⁷変異組換えBoNT軽鎖を生成および精製するた
めに用いられる方法を説明する。

実施例15 融合タンパク質の精製および組換えBoNT/A−Ｌ鎖の単離 野生型または変異BoNT/A−Ｌ鎖タンパク質のいずれか
を発現しているバクテリアの培養物１リッターからのペ
レットを、1mMフェニルメタンスルホニルフルオライド
（PMSF）を含むカラム緩衝液［10mMトリス−HCl（pH8.
0）、200mM NaCl、1mM EGTA、1mM DTT］に再懸濁し、超
音波処理により溶菌させた。溶菌液は、15000×ｇ、４
℃で15分間遠心分離して清澄化した。上澄みをアミロー
スアフィニティーカラム［２×10cm、30ml樹脂］（New
England BioLabs;Hitchin、UK）にかけた。結合しなか
ったタンパク質を、280nmの吸光度の安定により判断し
て、タンパク質が溶出しなくなるまでカラム緩衝液で樹
脂を洗浄した。その後、結合したMBP−Ｌ鎖融合タンパ
ク質を10mMマルトースを含むカラム緩衝液で溶離した。
融合タンパク質を含む画分をプールし、150mM NaCl、2m
M CaCl₂および1mM DTTを配合した20mMトリス−HCl（pH
8.0）に対して、４℃で72時間透析した。

融合プロテインを、150mM NaCl、2mM CaCl₂および1mM
DTTを配合した20mMトリス−HCl（pH8.0）緩衝液に対し
て透析すると同時に、ファクターX_a（Promega;Southamp
ton、UK）を用い、酵素：基質割合を1:100として切断し
た。透析は、４℃で24時間行った。切断により得られた
MBPと、野生型または変異Ｌ鎖のいずれかとの混合物を
カラム緩衝液で平衡化した10mlアミロースカラムにかけ
た。Ｌ鎖が含まれている試料を特定するため、SDS−PAG
E分析用に素通り画分のアリコートを調製した。素通り
画分の残りは−20℃で保存した。E.coliの総抽出物また
は精製タンパク質をSDS中で可溶化し、通常の方法に従
ってPAGEにかけた。この結果、組換え毒素断片が試料の
タンパク質含量のおよそ90％をしめることが示された。
上記結果は、ここで説明したMBP−Ｌ鎖融合プロテイン
を作成するアプローチは、野生型および変異組換えBoNT
/A−Ｌ鎖を生成するのに効果的なものとなり得ることを
示した。さらに、これらの結果は、組換えＬ鎖は、マル
トースバインディングドメインから分離しその後精製す
ることができることを証明した。これらの結果は組換え
Ｌ鎖のある構造的特性を直接的に扱ったものであるが、
これらのタンパク質の機能的特性について定めることが
残った。したがって、我々は、野生型および変異組換え
Ｌ鎖の酵素活性を調べることを行った。組換えＬ鎖生成
物とそれに対応する天然のものの酵素活性を比較するた
めに、感受性抗体ベースアッセイ（senstitve antibody
−based assay）を開発した。アッセイでは、BoNT/A開
裂部位に対応するインタクトなSNAP−25のＣ−末端部に
特異性を有する抗体を用いた。SNAP−25のBoNT/A開裂の
反応生成物のウエスタンブロッティングにより、抗体が
SNAP−25サブフラグメントに結合することができないこ
とが明らかとなった。このように、以下の実施例で用い
た抗体試薬は、インタクトSNAP−25のみを探知した。加
えたBoNT/A軽鎖またはその組換え体によるSNAP−25タン
パク質分解のインディケーターとして抗体結合の喪失は
役立った。

実施例16では、天然および組換えBoNT/A−Ｌ鎖がとも
にSNAP−25基質をタンパク質分解するが、Tyr²²⁷変異Ｌ
鎖はしないことを明らかにするために用いる方法につい
て説明する。なお、この実施例ではTyr²²⁷変異Ｌ鎖を用
いたが、Glu²²⁴変異Ｌ鎖もSNAP−25開裂アッセイにおい
て同じ結果を与えた。

実施例16 SNAP−25基質に対する組換えＬ鎖タンパク質分解の評価 野生型および変異BoNT/A−Ｌ鎖、ならびにそれらの組
換え類似体の能力を比較するために、SNAP−25基質を開
裂させる定量アッセイを行った。このアッセイのために
用いられた基質は、pGEX−2Tベクターを用いて発現さ
せ、グルタチオンアガロースのアフィニティークロマト
グラフィーで精製して、トロンビンで開裂する部位を含
むグルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（GST）−SNA
P−25融合タンパク質を調製して得た。トロンビンを用
い、150mM NaClおよび2.5mM CaCl₂を含む50mMトリス−H
Cl（pH7.5）（Smith et al.,Gene67:31（1988）中で、
酵素：基質割合を1:100として、SNAP−25を融合タンパ
ク質から切断した。切断されなかった融合タンパク質と
開裂したグルタチオン−バインディングドメインは、ゲ
ルに結合させた。組換えSNAPタンパク質は同緩衝液を用
いて溶離し、100mMヘペス（pH7.5）に対して、４℃で24
時間透析した。総タンパク質濃度は一般的な方法で測定
した。

SNAP−25のＣ−末端部に対して特異性のあるウサギポ
リクローナル抗体を、アミノ酸配列、CANQRATKMLGSG
（配列番号11）を有する合成ペプチドに対して生じさせ
た。このペプチドは、シナプス原形質膜タンパク質の19
5から206残基および天然SNAP−25には見られないＮ−末
端システイン残基に対応するものである。抗原性を改良
するために、マレイミドベンゾイル−Ｎ−ヒドロキシス
クシニミドエステル（MBS）をクロス−リンクキング試
薬（Sigma;Poole、UK）として、合成ペプチドをウシ血
清アルブミン（BSA）（Sigma;Poole、UK）結合させた
（Liu et al.,Biochemistry18:690（1979））。クロス
−リンカーとしてエチル−３−（３−ジメチルプロピ
ル）カルボジイミドを用いてヨード酢酸で活性化された
アミノアルキルアガロース樹脂にＮ−末端システイン残
基を介して結合された抗原ペプチドを有するカラム（Bi
o−Rad;Hemel Hempstead、UK）を用いて抗−ペプチド抗
体のアフィニティー精製を行った。25mMトリス−HCl（p
H7.4）および150mM NaClを含む緩衝液でカラムを連続洗
浄した後、ペプチド−特異性抗体を、100mMグリシン（p
H2.5）および200mM NaClの溶液を用いて溶離し、0.2ml
の1Mトリス−HCl（pH8.0）中和緩衝液の入ったチューブ
に収集した。

すべての野生型または変異型Ｌ鎖を含む組換え調製物
を、酵素活性を測定する前に、0.02％ルブロールと10μ
Ｍ酢酸亜鉛を含む100mM HEPES（pH7.5）、４℃で１晩透
析した。前もって、これらの透析された試料だけではな
く、20mM DTTを用いて37℃、30分間還元したBoNT/Aを、
1mMのDTTを加えた同ヘペス緩衝液で異なる濃度に希釈し
た。

５μｌの組換えSNAP−25基質（最終濃度8.5μＭ）を
含む反応混合物には、および20μｌ還元BoNT、組換え野
生型Ｌ鎖またはTyr²²⁷変異Ｌ鎖のいずれかが含まれた。
すべての試料を、２％トリフルオロ酢酸（TFA）と5mM E
DTAの水溶液25μｌで反応を停止させる（Foran et al.,
Biochemistry33:15365（1994））前に、37℃で１時間イ
ンキュベートした。それぞれのサンプルのアリコート
を、SDS−PAGE試料緩衝液を加えて煮沸することによ
り、SDS−PAGEおよびポリクローナルSNAP−25抗体を用
いたウエスタンブロッティング用に調製した。抗SNAP−
25抗体の反応性は、ECL検出システムでモニターし、デ
ンシトメトリックスキャンニングによって定量した。

図６に示されるように、ウエスタンブロッティングの
結果、精製した変異Ｌ鎖と、天然または組換え野生型Bo
NT/A−Ｌ鎖のいずれかとではタンパク質分解活性に明か
な違いが示された。組換え野生型Ｌ鎖は、反応中正の対
照として供される還元BoNT/A天然Ｌ鎖より効果がやや低
いが、明らかにSNAP−基質を開裂した。対照的に、Tyr
²²⁷変異体は検定において実質的にタンパク質分解活性
を示さなかった。このようにして、BoNT/A−Ｌ鎖の酵素
活性形態は組換え手段により生成、分離された。さら
に、Ｌ鎖タンパク質中のアミノ酸のひとつを置換する
と、シナプス末端タンパク質を分解する組換えタンパク
質の能力が失われた。後に示すが、我々はクロストリジ
ウム属細菌神経毒素内のアミノ酸の位置を１つ以上変異
させて、同じ効果を得られることも発見した。野生型組
換えBoNT/A−Ｌ鎖の生物活性の予備的な試験として、ジ
ギトニン−透過性ウシアドレノクロマフィン（adrenoch
romaffin）細胞からのCa²⁺−励起（evoked）カテコール
アミン放出を低減するMBL−Ｌ鎖融合タンパク質の能力
を試験した。インタクトまたはフリーMBPおよび組換え
Ｌ鎖を含む混合物を生成するためにファクターX_aで開裂
した野生型組換えＬ鎖融合タンパク質は、天然BoNT/Aに
よる抑制と同等のCa²⁺−刺激放出の用量依存性抑制を誘
発し、矛盾はなかった。

実施例17では、クロマフィン細胞（chromaffin cel
l）からのカテコールアミン放出を抑制するBoNT/A融合
タンパク質の能力を検定するために用いる方法を説明す
る。

実施例17 透過性クロマフィン細胞からのカテコールアミン放出を
抑制する組換えＬ鎖融合タンパク質の能力の検定 クロマフィン細胞を、LivettがPhysiol.Rev.64:1103
（1984）で示した方法を用いてプロテアーゼ灌流（prot
ease perfusion）によりウシの副腎から調製した。細胞
を、10％ウシ胎児血清、８μＭフルオロドキシウリン、
50μg/mlゲンタマイシン、10μＭシトシンアラビノフラ
ノシド、2.5μg/mlファンジゾーン（fungizone）、25国
際単位/mlペニシリン、25μg/mlストレプトマイシンお
よび2mMグルタミンを加えたダルベッコ修正イーグル培
地の入った24−ウエルプレートに、１×10⁶細胞／ウエ
ルとなるようにプレートした。試験は、プレート後３−
８日間行った。Ca²⁺励起カテコールアミン放出を蛍光光
度法により測定した。図７に示すようにこの予備試験の
結果は、組換え野生型BoNT/A−Ｌ鎖融合タンパク質と野
生型組換えＬ鎖のファクターX_a開裂生成物を含む混合物
の双方が、都合のよいことにこれらの天然BoNT/A毒素に
似た生物学的特性を示した。そこで、組換えＬ鎖に上記
のようなこれらの特性が欠けているかどうかを調べるこ
とに関心が生じた。

一点の変異が組換えＬ鎖のタンパク質分解活性を喪失
させることから、我々は、不活性なBoNT/A天然毒素を作
成する手段として、変異Ｌ鎖を合体した二本鎖分子の再
構成をさらに進めた。親融合タンパク質の糖バインディ
ングドメインが欠落している、精製組換え野生型および
Tyr²²⁷変異Ｌ鎖を、BoNT/Aから分離した天然Ｈ鎖と再構
成した。約150kDaのジスルフィド−連結２本鎖の形成
は、非還元条件下のSDS−PAGEにより確認された。定量
分析により、組換えＬ鎖は天然Ｈ鎖タンパク質と再会合
し、天然Ｌ鎖タンパク質よりは低い効率で２本鎖毒素を
形成したことが明かとなった。この違いは、組換えタン
パク質と天然タンパク質の折り畳み構造の違いを表して
いると考えられる。

実施例18では、ＨおよびＬ鎖を有する２本鎖毒素を再
会合するために用いられる方法を示す。天然、組換え野
生型または変異BoNT/A−Ｌ鎖のいずれかを合体させた２
本鎖は、この方法手順で再会合される。実施例ではTyr
²²⁷を用いているが、当業者であれば同じ手順で他の変
異Ｌ鎖を天然Ｈ鎖に会合することができるであろう。

実施例18 天然Ｌ鎖、組換え野生型またはTyr²²⁷変異Ｌ鎖と、精製
Ｈ鎖との再構成 BoNT/A（List Biological Inc.;Campbell,USA）から
天然Ｈ鎖とＬ鎖とを、2M尿素を用いて分離し、100mM DT
Tで還元し確立したクロマトグラフの手法（Kozaki et a
l.,Japan J.Med.Sci.Biol.34:61（1981）;Maisey et a
l.,Eur.J.Biochem.177:683（1988））に従って精製し
た。精製したＨ鎖を、等モル量の天然Ｌ鎖、組換え野生
型Ｌ鎖またはTyr²²⁷変異Ｌ鎖のうちのいずれかと結合し
た。再構成は、試料を25mMトリス（pH8.0）、50μＭ酢
酸亜鉛および150mM NaClからなる緩衝液に対して、４℃
で４日間透析して行った。透析に続き、ジスルフィド結
合した150kDa2本鎖を形成した組換えＬ鎖と天然Ｈ鎖の
結合をSDS−PAGEで検出し、デンシトメトリックスキャ
ンにより定量した。組換えＬ鎖を用いて形成された２本
鎖の割合は、天然Ｌ鎖をを用いて得られた場合よりも低
かった。実際のところ、組換え野生型または変異Ｌ鎖は
約30％が再構成されたのに対して、90％以上の天然Ｌ鎖
がＨ鎖と再会合した。このように再構成の効率は低い
が、組換えＬ鎖を合体させた物質は、以下の機能的な研
究用に容易に生成された。

変異Ｌ鎖を保有する二本鎖分子は、インビトロで生理
学的に検定すると、天然または野生型組換えＬ鎖のいず
れかを有する再会合２本鎖と比べて新規な特性を有して
いた。透析に続いて、本実施例で示した再構成物質を、
マウスの半横隔膜の横隔神経（phrenic nerve−hemidia
phragms）を浸した培地に投与した。いかに示すとお
り、天然または野生型組換えＬ鎖のいずれかを用いて再
構成した２本鎖は、この検定において効果的に神経筋伝
達をブロックした。対照的に、変異Ｌ鎖を用いて再構成
された２本鎖分子は、全く不活性であった。

実施例19では、組換えＬ鎖を合体させた再構成２本鎖
毒素の変更された機能的特性を明らかにするために用い
る方法について説明する。

実施例19 再構成毒素の神経筋伝達における効果の評価 マウスの半横隔膜の横隔神経（phrenic nerve−hemid
iaphragms）をBalb/Cマウス（20−25g）から切除し、Na
Cl、118.0;KCl,4.7;MgSO₄、1.2;CaCl₂、2.5;NaHCO₃、2
3.8;KH₂PO₄、1.2;グルコース、11.7、pH7.4（de Pavia
et al,Biol.Chem.268:20838（1993））（mM）からなる1
0mlのエアレーションしたクレブス−リンガー溶液の入
った閉鎖型循環式スーパーフュージョンシステム（supe
rfusion system）中に浸した。横隔神経の最大上刺激
（supramaximal simulation）によって単収縮が誘発さ
れ、フォース−ディスプレイスメント変換器（force−d
isplacement transducer）（Simpson J.Pharmacol.Exp.
Ther.212:16（1980））を用いて測定した。図８に示し
た結果は、野生型組換えＬ鎖を用いて再構成した２本鎖
毒素は、天然Ｌ鎖を用いて再構成した２本鎖とほぼ同様
に神経筋伝達をブロックすることを示した。これらの再
構成タンパク質による伝達の遮断は、BoNT/Aの毒に侵さ
れたシナプスの神経誘発筋緊張を一時的に回復させる電
圧ゲートK⁺チャンネルの遮断物である４−アミノピリジ
ン（Simpson J.Pharmacol.Exp.Ther.245:867（1988））
0.3mMを投与すると消える。この知見は、組換えＬ鎖を
含むサンプルによる阻害が、伝達物質放出のシナプス前
の遮断によって生じることを明らかにした。すなわち、
このアッセイでは、野生型組換えＬ鎖を含む２本鎖毒素
はBoNT/Aの活性を擬態した。

これに対してTyr²²⁷変異Ｌ鎖を合体させた２本鎖物質
は、たとえ高濃度で試験しても、神経誘発性単収縮（ne
rve−evoked muscle twitch）に何ら影響を及ぼさなか
った。変異Ｌ鎖を含む２本鎖分子を特徴づける、この活
性の欠落は、上記SNAP−25開裂アッセイの結果と全く一
致するものであった。重要なのは、半横隔膜−神経アッ
セイで得られた結果は、毒素の活性部位での、臨床的な
関連モデルについての活性の喪失に拡大解釈できること
である。

組換えＬ鎖を合体させた２本鎖分子の特性についてさ
らに明らかにするために、これらの薬がマウスにボツリ
ヌス中毒症状を引き起こす能力を試す実験を行った。

実施例20では、変異Ｌ鎖ではなく、天然または野生型
組換えＬ鎖が合体した組換え２本鎖が、インビトロで神
経毒素活性を有することを証明するための方法について
説明する。

実施例20 再構成毒素のマウス致死量検定およびその神経伝達に対
する効果 再構成２本鎖がボツリヌス中毒を引き起こす能力を以
下のように実験用マウスの腹腔に注射して評価した。結
果は、４日以内での致死量をmgタンパク質（LD₅₀/mg）
で表した。（Maisey et al.,Eur.J.Biochem.177:683（1
988））。野生型組換えＬ鎖を含む２本鎖物質の毒性
（６×10⁷ LD₅₀/mg）は、天然Ｌ鎖を用いて再構成した
２本鎖の毒性（７×10⁷ LD₅₀/mg）と同等であった。Tyr
²²⁷変異体を用いて再構成した２本鎖を注射したマウス
には、４日以内ではボツリヌス中毒の症状が表れなかっ
た。すなわち、ここに明らかにしたすべてのインビトロ
およびインビボの検定では、Tyr²²⁷変異Ｌ鎖が活性を失
っているのに対して、E.coliで発現させた組換え野生型
Ｌ鎖は、対応する天然物の能力と同等であることにな
る。

ここに明らかにした方法に従って調製された組換えBo
NT/A−Ｌ鎖の一般的な利用性を説明するため、我々はタ
ンパク質分解活性を欠落した変異融合タンパク質の２つ
目のセットを作成した。より具体的には、我々は、Glu
²²⁴をGlnにする変異誘発が野生型BoNT/A−Ｌ鎖に伴う酵
素活性を取り除くことを実証した。さらに、この実証に
おいてGST融合タンパク質を用いることによって、我々
は、組換えBoNT/A−Ｌ鎖を生成する我々のアプローチの
普遍性を確認した。

実施例21では、GSTタンパク質とのGln₂₂₄変異BoNT/A
−Ｌ鎖融合体をコードするポリヌクレオチドを構築する
ために用いる方法について説明する。

実施例21 GSTとのBoNT/A−Ｌ鎖融合体の調製と発現 BoNT/A野生型、Gln²²⁴変異およびTyr²²⁷変異Ｌ鎖をコ
ードするポリヌクレオチドを実施例11および実施例12で
説明したそのとおりに調製した。増幅生成物はStu IとE
coR Iで消化し、アガロースゲル電気泳動で精製し、プ
ラスミドpTAL−野生型（GST）、pTAL−Gln²²⁴（GST）お
よびpTAL−Tyr²²⁷（GST）を生成するためにpGEX−2T発
現ベクター（Pharmacia）のSma IおよびEcoR I部位の間
に結合した。プラスミドを保有するE.coli XL−Blue形
質転換体を一般的な方法によって分離した。

発現構築物を含むE.coliの培養物は、実施例14で説明
したそのとおりにしてコードされた融合タンパク質を発
現するように誘導した。細胞を溶菌した後、当業者がよ
く用いる方法にしたがって、GST融合タンパク質をグル
タチオンアフィニティークロマトグラフィーにより精製
した。その後、インビトロアッセイでGST融合タンパク
質のタンパク質分解活性を試験した。

実施例22では、変異BoNT/A−Ｌ鎖GST融合タンパク質
のタンパク質分解活性を検定するのに用いる方法につい
て説明する。

実施例22 BoNT/A−Ｌ鎖GST融合タンパク質の特徴 分離したGST変異Ｌ鎖融合タンパク質のSNAP−25基質
に対するタンパク質分解活性を検定した。精製したＬ鎖
融合タンパク質および組換えGST−SNAP−25基質を50mM
トリス−HCl（pH8.0）中２時間または１晩22℃でインキ
ュベートし、生成物をSDS−PAGEにより分析した。分析
結果によれば、変異体はSNAP−25類似体に対して検知で
きるタンパク質分解活性を発揮しないことが示された。
対照的に、野生型組換えＬ鎖融合タンパク質は基質をタ
ンパク質分解した。すなわち、GST変異BoNT/A−Ｌ鎖融
合タンパク質は、MBP変異体融合タンパク質のように酵
素的に不活性であった。さらに、野生型BoNT/A−Ｌ鎖配
列を有するGST融合タンパク質は、SNAP−25基質に対し
て酵素的に活性であった。これらの結果は、BoNT/A−Ｌ
鎖の保存されたHExxHモチーフを形成しているアミノ酸
の重要性を確認するものであり、またMBP融合タンパク
質以外の融合タンパク質を、本発明を実施するのに用い
られる組換えタンパク質を生成するために用いることが
できることを実証するものであった。GST融合タンパク
質として形成されようがMBP融合タンパク質として形成
されようが、組換え変異BoNT/A−Ｌ鎖は、天然毒素ある
いは組換え野生型Ｌ鎖と合体した再構成２本鎖を特徴づ
ける活性が欠けていた。

前記実施例では、いかにしてクロストリジウム属細菌
神経毒素Ｌ鎖が組換え体において活性化または弱毒化さ
れた分子として発現するように設定され得るかを説明し
た。これらのＬ鎖は天然Ｈ鎖と再構成され、神経筋伝達
のレベルで生物活性を有した、あるいは喪失した２本鎖
分子が生成される。

以下の実施例では、連結分子を生体内で運搬するため
の媒介手段として、２本鎖輸送体分子を用いることがで
きる確かな証拠を提供する。

ハイブリッド"3重鎖”分子はこの例示をするために用
いられた。より具体的には、Gln²²⁴/Tyr²²⁷の二重変異
により不活性化されたBoNT/A−Ｌ鎖を、TeTx−Ｌ鎖の活
性部分に融合した。得られた組換えタンパク質は天然Bo
NT/A−Ｈ鎖と再構成して、"3重鎖”が生成された。３重
鎖複合体は標的神経に結合し、侵入する。２重変異BoNT
/A−Ｌ鎖は酵素活性に欠けるので、３重鎖に関連する神
経毒性は、必然的に活性TeTx成分の存在に帰することと
なる。以下の実施例で提供される結果から、輸送体が標
的細胞にインターナリゼーションされ、連結された分子
を細胞質ゾルに運ぶことができ、また輸送されたタンパ
ク質は細胞内で活性があったことを確認した。以下に示
す生化学的な試験では、BoNT/A−Ｌ鎖に関連するいかな
る神経毒素活性も排した。

実施例23では、不活性なクロストリジウム属細菌神経
毒素Ｌ鎖を含む輸送体が、末梢コリン作動性神経末端に
インターナリゼーションされ得ることを証明するために
用いる方法について説明する。さらに、以下に示された
結果は、このような輸送体が、細胞内で生物活性を維持
したまま、連結された分子を標的神経細胞の細胞質ゾル
に運ぶ能力を有していることを示した。

実施例23 生化学物質運搬用の媒介手段としてのクロストリジウム
属細菌神経毒素輸送体 ３重鎖のＬ鎖成分は図９に示される機構にしたがって
生成した。２重変異（Glu²²⁴をGln²²⁴およびHis²²⁷をTy
r²²⁷）をPCR変異誘発によってBoNT/A−Ｌ鎖に導入し
た。プライマーおよび２重変異を生じさせるために用い
た方法は、Gln²²⁴変異体を鋳型として用いた以外は、Ty
r²²⁷変異を生成するための方法と同じである。２重変異
（dm）Ｌ鎖は、pSALdmを形成するために、まずpBluescr
ipt SK⁺ IIにクローン化し、その後pCALdmを得るために
pMAL−c2にクローン化した。マルトースバインディング
ドメインおよび２重変異を持つBoNT/A−Ｌ鎖ドメインを
有する融合タンパク質（MBP−BoNT/A dm）を発現させる
ためにpCALdm構築物を用いた。pCALdm構築物は図９中で
は"1"として標識してある。TeTx−Ｌ鎖は、配列、5'−A
TTTCACCAATAACCATAAATAATTTTAG−3'（配列番号12）を有
するプライマーおよび5'−CGGGATCCTTCTGTATCATTGTAAAT
−3'（配列番号13）を有するプライマーと共に、クロー
ン化した野生型遺伝子配列を保有するポリヌクレオチド
を鋳型として用いて、PCRプロトコールにより端を切断
した。増幅生成物は、Ｎ−末端に加えられた２つのアミ
ノ酸をコードし、Gly³⁹⁹で切断された。通常、天然TeTx
ではＨ鎖にジスルフィド結合するところに対応するCys
⁴³⁹を含む、最後の58残基が切除された。BamH Iで開裂
した後、得られたDNA断片を、pCTL399を生成するために
Xmn IとBamH Iで消化したpMAL−c2にクローン化した。M
BA−切断TeTx−Ｌ鎖−BoNT/A−Ｌ鎖dm遺伝子融合体、pC
TLALdm、は、切り出したBoNT/A−Ｌ鎖dm遺伝子を、BamH
I−とSal I−とで消化したpCTL399に結合させて作成し
た。図９で"2"として標識したpCTLALdm構築物は、E.col
i中でMBP−TeTx切断Ｌ鎖−BoNT/A−Ｌ鎖dm融合タンパク
質を発現させるために用いた。

pCALdm構築物にコードされた、精製したMBP−BoNT/Ad
mのＬ鎖融合タンパク質は、実施例16の方法にしたがっ
て検定を行ったところ、組換えSNAP−25基質を開裂でき
なかった。すなわち、予想通り、BoNT/A−Ｌ鎖２重変異
融合タンパク質は酵素活性が欠落していた。ファクター
X_aで融合タンパク質を開裂した後、２本鎖分子を形成す
るために、精製BoNT/A−Ｌ鎖２重変異体を天然BoNT/A−
Ｈ鎖と再構成した。実施例19の方法により試験したとこ
ろ、これらの２本鎖は、マウス半横隔膜で神経筋伝達を
ブロックすることができなかった。すなわち、これも予
想通り、２重変異BoNT/A−Ｌ鎖が合体した２本鎖は、こ
のインビトロアッセイにおいて生物活性を欠いていた。
結局、実施例20の方法にしたがってマウスに注射して
も、２重変異BoNT/A−Ｌ鎖が合体した再構成２本鎖は、
毒性はなかった。２重変異BoNT/A−Ｌ鎖が合体した２本
鎖を、天然BoNT/AのLD₅₀投与量の200倍以上の量で注射
しても毒性はなかった。

これらの結果は、Gln²²⁴/Tyr²²⁷2重変異により、天然
BoNT/A分子に関連するあらゆる毒性が除去されることを
明らかにした。したがって、Ｌ鎖二重変異体が合体した
輸送体に関連するいかなる毒素活性も、輸送体そのもの
には毒素活性がないのであるから、不活性なBoNT/A−Ｌ
鎖に連結した分子に起因するはずである。したがって、
２重変異BoNT/A−Ｌ鎖が合体した組換え２本鎖が、理想
的なコリン作用性の輸送体として提供される。

pCTLALdmにコードされ、精製されたTeTx切断Ｌ鎖−Bo
NT/A−Ｌ鎖dm融合タンパク質は、BoNT/AではなくTeTxの
特性を有していた。より具体的には、pCTLALdmにコード
される融合タンパク質は、濃度に依存して、神経膜から
シナプトブレビンを開裂する能力を示した。この活性は
BoNT/A L鎖成分によるものではなく、融合体の切断TeTx
−Ｌ鎖成分によるエンドプロテアーゼ活性が保持されて
いることが強調される。想像どおり、pCTLALdmにコード
された融合タンパク質は組換えSNAP−25基質を開裂する
能力が欠如していた。このことは、融合体のBoNT/A−Ｌ
鎖成分に関連する酵素活性がうまく除去されていること
を確認するものである。pCTLALdmにコードされた融合タ
ンパク質をファクターX_aで開裂した後、分離したハイブ
リッド毒素を天然BoNT/A−Ｈ鎖と再構成して、３重鎖を
得た。

最も重要なのは、作成された３重鎖が、インビトロお
よびインビボ双方でのボツリヌス中毒の特徴的症状を示
すことである。３重鎖は2nM濃度で、24℃、161分間、マ
ウス半横隔膜の神経誘発単収縮をブロックし、また10⁷
LD₅₀/mg以上のマウスにおける毒性を与えた。しかしな
がら、"3重鎖”の存在量を正確に測定するのを妨げる再
構成試料中のフリーMBP、開裂しなかった融合タンパク
質およびいくらかの天然Ｈ鎖の存在により、このタンパ
ク質の効能についての正確な量的データを提供すること
はできなかったことは注意すべきである。重要なこと
は、半横隔膜試験で３重鎖で観察されたブロックが、Bo
NT/Aが誘発する神経筋伝達の抑制を消滅させるがTeTxに
よるものは消失させない電位ゲートK⁺チャンネルブロッ
カーである４−アミノピリジンにより消失しないという
ことである。さらに、観察された毒性についてのＨ鎖
（あるいは天然BoNT/Aにいくらか混ざっているＨ鎖）の
寄与は、神経筋麻痺活性の欠如がより多量のＨ鎖を再構
成に使用し、３重鎖物質についてと同一に扱っても観察
されなかったことから排除される。

これらの結果は、輸送体が運動神経末端を標的とし、
インターナリゼーションされて、TeTx−Ｌ鎖に連結した
ものを細胞質ゾルに輸送する媒介手段として作用するこ
とができることを明らかにした。さらに、TeTx−Ｌ鎖に
連結したものは、コリン作用性神経への運送の後もその
生物活性を維持した。このアセチルコリンを含む神経単
位に医薬を運ぶシステムとして新規な輸送体の利用は明
確に確立された。

上記で説明したＬ鎖を修飾する手法に加え、実施例８
に詳説した方法にしたがって、天然または組換えボツリ
ヌス毒素Ｌ鎖タンパク質を化学物質に共有結合させるこ
とができる。得られた輸送体は、治療有効量の無菌注射
剤として投与し得る。

修飾されたBoNT/A毒素輸送体は、神経臨床的に適用さ
れるであろう。例えば、BoNT/A−ベース輸送体は、治療
的に有用な医薬を末梢運動神経に運ぶために用いること
ができる。したがって、この様式でこれらの医薬は限ら
れた筋群を制御するために有用であろう。治療標的とし
て研究されるであろう疾病としては、晩発性運動障害
（tardive dyskinesia）、痙性結腸炎（spastic coliti
s）、本態性振せん（essential tremor）、平滑筋異常
（smooth muscle abnormalities）、局所性痙直（local
ized spasticity）、背中または他の筋群に限られた筋
痙攣痛（painful muscle spasms）、一時的下顎障害（t
emporal madibular disorder）、痙性発生困難（spasmo
dic dysphonia）、緊張性頭痛（tension headaches）が
挙げられる。

実施例24では、いかにして上記化学的に修飾された不
活性BoNT/A毒素輸送体を、毒素レセプターを発現する神
経に化学物質を運ぶ治療薬として用いることができるか
について説明する。

実施例24 修飾された毒素の治療適用：晩発性運動障害 トラジン（Thorazine）またはハルド（Haldo）などの
抗精神病薬による治療で晩発性運動障害を患う45歳の男
性患者に、当業者が知っている適当な医薬を、不活性な
ボツリヌス毒素輸送体に結合させて、治療有効量を顔面
筋に直接処置する。１−３日後、晩発性運動障害すなわ
ち、口顔運動障害（orofacial dyskinesia）、アテトー
シス（athetosis）、ジストニー、ヒョレア（chore
a）、習性攣縮（tics）、しかめ面（facial grimacin
g）などが顕著に低減する。

実施例25ではさらに、いかにして上記化学的に修飾さ
れた不活性な毒素を、毒素レセプターを有する神経単位
に化学物質を運ぶ治療用医薬として用いることができる
について説明する。

実施例25 修飾された毒素の治療適用：本態性振せん 頭部や手の筋肉のリズミカル振動（rhythmical oscil
lation）および姿勢や動きの持続刺激という症状の現れ
ている本態性振せんを患う45歳の男性に、有効な医薬
（出願書類中の前記表を参照）を不活性なボツリヌス毒
素輸送体に結合させて、治療有効量を症状のでている筋
肉に直接注射する。筋肉は筋電図検査（EMG）も使って
見極めればよい。１、２週間後には、症状、すなわち患
者の頭部や手の振動は、かなり軽減される。

実施例26ではさらに、いかにして上記化学的に修飾さ
れた不活性BoNT/A毒素輸送体を、毒素レセプターを有す
る神経に化学物質を運ぶ治療薬として用いることができ
るかについて説明する。

実施例26 修飾された毒素の治療適用：平滑筋異常 食道下部狭窄（病名アカラシアAchalasia）を患う30
歳の女性には、食物の経口摂取を妨げる症状が現れてい
る。食道下部狭窄により食物や流動物が蓄積し、ついに
は逆流してしまって、患者は適切に栄養を採ることが妨
げられる。医薬（出願書類中の前記表を参照）を不活性
なボツリヌス毒素輸送体に結合し、治療有効量を症状の
でている括約筋に直接投与する。普通、内視鏡を用い
て、または手術中に、２から４四分円（quardrants）に
注射する。約１−７日中には、逆流をなくすか抑制して
普通に固形物や液体を胃に送り込むことができるように
なる。

実施例27では、さらに、いかにして上記化学的に修飾
された不活性BoNT/A毒素輸送体を、毒素レセプターを有
する神経単位に化学物質を運ぶ治療薬として用いること
ができるかについて説明する。

実施例27 修飾された毒素の治療適用：痙性ジストニー（声帯過剰
反応） 声帯の痙直によりはっきりとしゃべることができない
45歳の男性に、当業者が知っている適当な医薬を、不活
性なボツリヌス毒素輸送体に結合させて、治療有効量の
注射を声帯に施す。１から７日後には、患者ははっきり
と話すことができる。

実施例27では、本発明の不活性なクロストリジウム属
細菌神経毒素のもう一つの使用法を示す。さらにはもう
一つの使用法では、不活性な毒素をボツリヌス中毒また
は破傷風の治療に用いることができる。このような治療
のために、不活性なクロストリジウム属細菌神経毒素
を、カプトプリルや他の亜鉛プロテアーゼ阻害剤のよう
なボツリヌス中毒または破傷風に対する治療活性成分に
結合する。ボツリヌス中毒または破傷風にかかった患者
は、筋肉内注射のように治療有効量を投与して治療する
ことができる。個々の輸送体／医薬結合体の適切な治療
有効量は、当業者が容易に知り得る技術を用い経験的に
決定することができる。

また、不活性な毒素のみでも、ボツリヌス中毒毒素の
症状を示す者に即効性解毒剤として用いることができ
る。この目的のために好ましくは、投与は少なくとも1m
gの不活性毒素を注射して行うとよい。高レベルの毒素
に侵されている者には、より多く投与する必要があるか
もしれない。この目的のためには、他の医薬を結合させ
ることなく、不活性毒素だけで用いることもできる。こ
の輸送体を用いれば、ボツリヌス毒素抗血清の投与のよ
うな従来技術よりもボツリヌス毒素の被毒に対して効果
的であると考えられる。

すなわち、我々は、有用な量のＬ鎖タンパク質を生成
するため組換えDNA技術を用い、TeTxおよびBoNT/A毒素
の作用についてさらなる識見を得た。PCRベースプロト
コールを利用して、Ｌ鎖をコードする遺伝子を増幅し、
その後発現ベクターににクローン化し、E.coli内で高レ
ベルに発現させた。細胞質ゾル画分からアミロースアフ
ィニティークロマトグラフィーを用いて精製した後、野
生型配列を発現した融合タンパク質が、BoNT/Aに対する
基質の組換え体で、シナプトソームに関するM_r 25kDaの
タンパク質（SNAP−25）をタンパク質分解することが見
いだされた。さらに、マルトースバインディングタンパ
ク質から一旦酵素的に開裂されると、組換えＬ鎖タンパ
ク質は、天然タンパク質の特性と同じような特性を示す
ことが明かとなった。また、発現されたＬ鎖を精製天然
Ｈ鎖と再構成して、神経誘発神経筋伝達をインビトロで
阻害しマウスにボツリヌス中毒症状を生じさせる、ジス
ルフィド結合２本鎖タンパク質を形成した。最も重要な
のは、我々は、Ｌ鎖タンパク質の配列中のひとつのアミ
ノ酸を置換することで、野生型タンパク質に通常伴うタ
ンパク質分解活性が阻害されることを見いだしたことで
ある。これにより、タンパク質分解が不活性なＬ鎖を合
体させて２本鎖毒素を弱毒化して形態とすることが可能
となる。

また我々は、弱毒化した毒素をバクテリア内で生成で
きるようにするために、適当な部位特異的変異を導入し
たひとつの遺伝子を、それぞれの神経毒素用に生成する
ことができることを予期している。このアプローチは、
構成成分から２本鎖を再構成する必要をなくすのに有効
であろう。得られた弱毒化された毒素は、共有結合され
た化学物質を毒素レセプターを有する神経細胞に運ぶた
めの有利な輸送体として提供される。

配列表 （１）一般情報 （ｉ）出願人：アレルガン，インコーポレイテッド （ii）発明の名称：輸送タンパク質用クロストリジウ
ム属細菌神経毒素の修飾 （iii）配列数:13 （iv）連絡先 （Ａ）宛名：クノビ、マーテンス、オルソン＆ベア （Ｂ）番地:620 ニューポートセンタードライブ
16階 （Ｃ）市：ニューポートビーチ （Ｄ）州:CA （Ｅ）国:U.S.A （Ｆ）ZIP:92660 （ｖ）コンピュータ読み取り可能形式 （Ａ）媒体：ディスケット （Ｂ）コンピュータ:IBM互換機 （Ｃ）操作システム:DOS （Ｄ）ソフトウエア:FastSEQ Version 1.5 （vi）現行出願データ （Ａ）出願番号 （Ｂ）出願日 （Ｃ）分類 （vii）先行技術データ （Ａ）出願番号:GB 9410870.1 （Ｂ）出願日:1994年５月31日 （Ａ）出願番号:GB 9410871.9 （Ｂ）出願日:1994年５月31日 （viii）代理人／事務所情報 （Ａ）名前：アルトマン，ダニエル E （Ｂ）登録番号:34,115 （Ｃ）整理番号:ALRGN.054QPC （iX）通信情報 （Ａ）電話番号:714−760−0404 （Ｂ）ファクシミリ番号:714−760−9502 （Ｃ）テレックス： （２）配列番号１の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:33 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:1: （２）配列番号２の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:32 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:YES （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:2: （２）配列番号３の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:30 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:YES （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:3: （２）配列番号４の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:20 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:4: （２）配列番号５の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:23 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:5: （２）配列番号６の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:26 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:YES （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:6: （２）配列番号７の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:18 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:7: （２）配列番号８の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:18 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:YES （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:8: （２）配列番号９の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:18 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:9: （２）配列番号10の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:18 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:YES （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:10: （２）配列番号11の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:13 amino acids （Ｂ）配列の型：アミノ酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類：ペプチド （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ:C−terminal （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:11: （２）配列番号12の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:29 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:NO （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:12: （２）配列番号13の情報： （ｉ）配列の特性： （Ａ）配列の長さ:26 base pairs （Ｂ）配列の型：核酸 （Ｃ）鎖の数:1本鎖 （Ｄ）トポロジー：直鎖状 （ii）配列の種類:cDNA （iii）ハイポセチカル:NO （iv）アンチセンス:YES （ｖ）フラグメントタイプ： （vi）起源： （xi）配列:SEQ ID NO:13:

フロントページの続き (72)発明者 ウィラー，ラリー，アレン アメリカ合衆国，92715 カリフォルニ ア，アーバイン，バリー ビュー 18番 地 (72)発明者 ガースト，マイケル，エルウッド アメリカ合衆国，92622 カリフォルニ ア，ニューポート ビーチ，ビスタ ホ ーガー 2433番地 (56)参考文献 米国特許4594336（ＵＳ，Ａ) 鈴木 郁生ら，第十二改正日本薬局方 解説書−縮刷版−，株式会社 廣川書 店，ｐｐ．Ｅ−62−Ｅ−65（1991) ＦＲＡＥＮＫＥＬ−ＣＯＮＲＡＴ, Ｈ．Ｌ．，Ａ ｓｉｎｇｌｅ ｍｕｔａ ｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｒｅｃｏｍｂ ｉｎａｎｔ ｌｉｇｈｔ ｃｈａｉｎ ｏｆ ｔｅｔａｎｕｓ ｔｏｘｉ ｎ．．．，Ｃｈｅｍｔｒａｃｔｓ：Ｂｉ ｏｃｈｅｍ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，５ （２），ｐｐ．176−177（1994) ＥＳＴＲＥＬＬＡ，Ｄ．，ｅｔ ａ ｌ．，Ａ ｆｕｒｔｈｅｒ ｓｔｕｄｙ ｏｆ ｔｈｅ ｎｅｕｒｏｍｕｓｃｕ ｌａｒ ｅｆｆｅｃｔｓ ｏｆ ｖａｓ ｍｉｃｏｌ（ＡＨ5183）ａｎｄ ｏｆ ｉｔｓ ｅｎａｎｔｉｏｍｅｒ ｓｐｅ ｃｉｆｉｃｉｔｙ，Ｂｒ．Ｊ．Ｐｈａｒ ｍａｃｏｌ．，93（４），ｐｐ．759− 768（1988) (58)調査した分野(Int.Cl.⁷，ＤＢ名) A61K 47/00 - 47/48 A61K 38/00 - 38/42 A61K 39/00 - 39/395 C07K 14/00 - 14/33 ＢＩＯＴＥＣＨＡＢＳ（ＳＴＮ) ＣＡ（ＳＴＮ) ＭＥＤＬＩＮＥ（ＳＴＮ) ＥＭＢＡＳＥ（ＳＴＮ) ＢＩＯＳＩＳ（ＳＴＮ)

Claims (19)

(57)【特許請求の範囲】
1. 【請求項１】１つまたはそれ以上のアミノ酸配列の変異
   を有する不活性な軽鎖を含み、標的神経細胞に対して特
   異性を有する不活性なクロストリジウム属細菌神経毒素
   と、神経細胞に関連する障害を治療するための前記神経
   毒素に結合した医薬または他の生物活性分子とを含み、
   前記神経毒素が前記標的神経細胞に侵入するその能力を
   維持している化学物質結合体。
2. 【請求項２】前記クロストリジウム属細菌神経毒素が破
   傷風毒素、ボツリヌス毒素Ａ、ボツリヌス毒素Ｂ、ボツ
   リヌス毒素Ｃ、ボツリヌス毒素Ｄ、ボツリヌス毒素Ｅ、
   ボツリヌス毒素Ｆおよびボツリヌス毒素Ｇからなる群よ
   り選ばれる請求項１に記載の化学物質結合体。
3. 【請求項３】前記クロストリジウム属細菌神経毒素が、
   その軽鎖中のアミノ酸の変更により不活性化されている
   請求項１に記載の化学物質結合体。
4. 【請求項４】前記不活性化されたクロストリジウム属細
   菌神経毒素が、Glu²³⁴の修飾を有する破傷風毒素、His
   ²²⁷および／またはGlu²²⁴に修飾を有するボツリヌス毒
   素Ａ、またはボツリヌス毒素ＡのHis²²⁷および／または
   Glu²²⁴に対応する部位に修飾を有するボツリヌス毒素Ａ
   以外のボツリヌス毒素である請求項３に記載の化学物質
   結合体。
5. 【請求項５】哺乳類の神経筋機能障害の治療に用いられ
   る請求項１〜４のいずれかに記載の化学物質結合体。
6. 【請求項６】制御不能な筋痙攣に関連する神経筋障害の
   治療に用いられる請求項５に記載の化学物質結合体。
7. 【請求項７】請求項１〜４のいずれかに記載の化学物質
   結合体を含む、哺乳類での神経筋機能障害の治療用薬学
   的組成物。
8. 【請求項８】前記神経筋機能障害が、制御不能な筋痙攣
   に関連する請求項７に記載の薬学的組成物。
9. 【請求項９】前記医薬が、神経伝達物質の放出を抑制す
   る請求項１に記載の化学物質結合体。
10. 【請求項１０】前記医薬が、シナプトブレビン（synapt
    obrevin）の活性を抑制する請求項９に記載の化学物質
    結合体。
11. 【請求項１１】請求項１記載の化学物質結合体であっ
    て、前記不活性なクロストリジウム属細菌神経毒素が、 ａ）クロストリジウム属細菌神経毒素重鎖の少なくとも
    一部と、 ｂ）生物活性分子とを含む（ここで、前記生物活性分子
    は、 １）タンパク質合成毒素の活性部分、 ２）プロテアーゼインヒビターの活性部分、 ３）神経成長因子の活性部分 ４）神経成長因子に対して活性な又は不活性な細胞表面
    レセプターをコードする核酸、 ５）神経成長因子のmRNAを標的とした配列特異的なリボ
    ヌクレアーゼ活性を有する核酸または核酸アナログ、 ６）神経成長因子に特異的な細胞表面レセプターを標的
    とした配列特異的リボヌクレアーゼ活性を有する核酸ま
    たは核酸アナログ、および、 ７）生理学的条件下、神経成長因子、神経成長因子に特
    異的な細胞表面レセプター、膜タンパク質に関連した小
    胞、SNAP−25または神経アグリンから成るグループから
    選択されるタンパク質の発現を阻害または減らすことが
    できるアンチセンス核酸または核酸アナログ、から成る
    グループから選択されたものである）、化学物質結合
    体。
12. 【請求項１２】前記生物活性分子の一部がリシンの活性
    部分を含む請求項11記載の化学物質結合体。
13. 【請求項１３】更に少なくともクロストリジウム属細菌
    毒素軽鎖の不活性部分を含む請求項１または11の何れか
    一方に記載の化学物質結合体。
14. 【請求項１４】前記生物活性分子が脂肪族スペーサー分
    子によって前記神経毒素に結合する請求項１または請求
    項11の何れか一方に記載の化学物質結合体。
15. 【請求項１５】前記スペーサー分子が化学式HOOC−（CH
    ₂）_ｎ−COOHを有する（ここで、ｎ＝１〜12）請求項12
    記載の化学物質結合体。
16. 【請求項１６】前記スペーサー分子が化学式HO−（C
    H₂）_ｎ−COOHを有する（ここで、ｎ＝１〜12）請求項12
    記載の化学物質結合体。
17. 【請求項１７】前記生物活性分子が、前記生物活性分子
    を前記不活性なクロストリジウム属細菌毒素を連結させ
    ることができる基で置換された少なくとも２個のリンク
    したアリル基を含むスペーサー分子によって前記神経毒
    素に結合する請求項１または請求項11の何れか一方に記
    載の化学物質結合体。
18. 【請求項１８】前記不活性なクロストリジウム属細菌神
    経毒素の少なくとも一部とともに、前記生物活性分子が
    融合ペプチド中に含まれる請求項１または請求項11の何
    れか一方に記載の化学物質結合体。
19. 【請求項１９】前記生物活性分子が、標的細胞内で結合
    体の導入後に切断することができるリンカーによって前
    記不活性なクロストリジウム属細菌神経毒素に結合する
    請求項１または請求項11の何れか一方に記載の化学物質
    結合体。