JP2017500033A - トロンビンを利用した幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法 - Google Patents

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Abstract

本発明はトロンビンを利用した幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法に関するものである。本発明に係る方法は幹細胞由来のエキソソームの生成を促進させる優秀な効果を有しており、これを通じて従来の公知の方法に比べて効率的にエキソソームを収得することができ、関連研究に有用に利用することができる。

Description

本発明はトロンビンを利用した幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法に関するものである。
エキソソーム(exosome)は色々な種類の細胞から分泌される膜構造の小さい小胞である。エキソソームの直径は概略30−100nmであると報告されている。エキソソームは電子顕微鏡を通した研究によって、原形質膜から直接離れて行くのではなく、多胞体(multivesicular bodies、MVBs)と呼ばれる細胞内特定区画に始まり細胞外に放出、分泌されるものと観察された。すなわち、多胞体と原形質膜の融合が起きると、小胞は細胞外環境に放出されるが、これをエキソソームと呼ぶ。このようなエキソソームがどのような分子的メカニズムによって作られるのかは確実に明らかになっていないが、赤血球細胞だけでなく、B−リンパ球、T−リンパ球、樹枝状細胞、血小板、大食細胞などを含む多様な種類の免疫細胞と腫瘍細胞、幹細胞なども、生きている状態でエキソソームを生産して分泌すると知られている。特に、幹細胞から由来したエキソソームは受容体および蛋白質だけでなく核成分を含有しており、細胞間コミュニケーションに重要な役割をするものとして知られている。また、エキソソームは幹細胞に比べて動物血清を相対的に少なく含有しており、動物血清感染による症状(zoonosis)の危険性も排除できる。このようなエキソソームの特性を考慮する時、エキソソームを利用した細胞治療法は既存の幹細胞治療法の限界を克服し得る新しいパラダイムになるものと期待される。
そこで、本発明者らは前記のように利用可能性が優秀なエキソソームの生産効率を上げるための方法に対する研究を継続した結果、トロンビンを利用する場合、幹細胞由来のエキソソームの生成が促進されることを確認することによって本発明を完成した。
したがって、本発明の目的はトロンビンを利用した幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法を提供することである。
本発明の他の目的はトロンビンを含む幹細胞由来のエキソソームの生成促進用培地組成物を提供することである。
本発明のさらに他の目的はトロンビンを利用した幹細胞由来のエキソソーム内成長因子発現増進方法を提供することである。
前記目的を達成するために、本発明は幹細胞をトロンビンを含む培地で培養する段階を含む幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法を提供する。
また、本発明はトロンビンを含む幹細胞由来のエキソソームの生成促進用培地組成物を提供する。
また、本発明は幹細胞をトロンビンを含む培地で培養する段階を含む幹細胞由来のエキソソーム内成長因子発現増進方法を提供する。
本発明に係る方法は、幹細胞由来のエキソソームの生成を促進させる優秀な効果を有しており、これを通じて従来の公知の方法に比べて効率的にエキソソームを収得することができ、関連研究に有用に利用することができる。
本発明に係る方法を利用して収得した幹細胞由来のエキソソームの形態をSEMイメージを通じて観察した結果を示した図面。 本発明に係る方法を利用して収得した幹細胞由来のエキソソームでエキソソームマーカーであるCD63およびCD9の発現を確認した結果を示した図面。 本発明に係る方法を利用して収得した幹細胞由来のエキソソームで成長因子であるVEGFおよびHGFの発現を確認した結果を示した図面。 トロンビン処理濃度による幹細胞由来のエキソソームの生成程度を示した図面。 LPS、Hまたはトロンビンの処理濃度による幹細胞由来のエキソソームの生成程度を示した図面。 トロンビン処理による幹細胞内小胞体の形成程度を観察した結果を示した図面。 トロンビン処理によるエキソソーム内成長因子の発現を確認した結果を示した図面。
以下、本発明について詳細に説明する。
本発明は幹細胞をトロンビンを含む培地で培養する段階を含む幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法を提供する。
前記トロンビンは培地内に1〜1000U/mlの濃度で含むことができ、好ましくは10〜200U/mlの濃度で含むことができる。
前記培養時間は、エキソソームが生成できる時間であれば制限はなく、好ましくは12時間〜48時間の間遂行され得る。
本発明において、「幹細胞」とは、未分化な細胞であって、自己複製能力を有しつつ二つ以上の互いに異なる種類の細胞に分化する能力を有する細胞である。
本発明の幹細胞は自家または同種由来の幹細胞であり得、ヒトおよびヒト以外の哺乳類を含む任意の類型の動物由来であり得、前記幹細胞が成体から由来したものであれ胎芽から由来したものであれ、これに限定されない。本発明の幹細胞は胚性幹細胞または成体幹細胞を含み、好ましくは成体幹細胞である。前記成体幹細胞は間葉系幹細胞、ヒト組織由来の間葉系間質細胞(mesenchymal stromal cell)、ヒト組織由来の間葉系幹細胞、多分化能幹細胞または羊膜上皮細胞であり得、好ましくは間葉系幹細胞であるが、これに限定されない。前記間葉系幹細胞は臍帯、臍帯血、骨髄、脂肪、筋肉、神経、皮膚、羊膜または胎盤などから由来した間葉系幹細胞であり得るが、これに限定されない。
本発明で「培地」とは、生体外(in vitro)で細胞の成長と増殖に必要な必須成分を含む組成物を意味するもので、当該分野で通常的に使われる幹細胞培養用培地をすべて含み、例えば、DMEM (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)、MEM (Minimal Essential Medium)、BME (Basal Medium Eagle)、RPMI 1640、DMEM/F−10(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium:Nutrient Mixture F−10)、DMEM/F−12 (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium:Nutrient Mixture F−12)、α−MEM(α−Minimal essential Medium)、G−MEM(Glasgow’s Minimal Essential Medium)、IMDM(Isocove’s Modified Dulbecco’s Medium)、KnockOut DMEMなどの商業的に製造された培地または人為的に合成した培地を利用することができるが、これに限定されない。本発明の培地は一般的に炭素源、窒素源および微量元素成分を含み、アミノ酸、抗生剤などをさらに含むことができる。
本発明の具体的な一実施例では、間葉系幹細胞に10〜100U/mlのトロンビンを含む血清フリー培養培地(MEM alpha media)を処理した後、24時間の間培養して幹細胞由来のエキソソームの生成を促進し、超高速遠心分離を通じてこれを分離した。
本発明に係る方法は、幹細胞由来のエキソソームの生成を促進させる優秀な効果を有しており、これを通じて従来の公知の方法に比べて効率的にエキソソームを収得することができる。
また、本発明はトロンビンを含む幹細胞由来のエキソソームの生成促進用培地組成物を提供する。
前記トロンビンは、培地内に1〜1000U/mlの濃度で含むことができ、好ましくは10〜200U/mlの濃度で含むことができる。
本発明の培地組成物はトロンビンの他に公知のエキソソーム生成促進物質を1種以上さらに含むことができるが、これに限定されない。
また、本発明は幹細胞をトロンビンを含む培地で培養する段階を含む幹細胞由来のエキソソーム内成長因子発現増進方法を提供する。
本発明で「成長因子」とは、細胞分裂や生長、分化を促進する蛋白質性の生理活性物質を意味するもので、例えば、脳由来の神経成長因子(brain−derived neurotropic factor、BDNF)、繊維芽細胞成長因子(fibroblast growth factor、FGF)、肝細胞成長因子(hepatocyte growth factor、HGF)、神経成長因子(nerve growth factor、NGF)、血管上皮成長因子(vascular endothelial growth factor、VEGF)、類似インスリン成長因子(insulin−like growth factor、IGF)、形質転換成長因子(transforming growth factor、TGF)、血小板由来成長因子(platelet−derived growth factor、PDGF)、骨由来成長因子(bone−derived growth factor、BDF)、コロニー刺激因子(colony stimulation factor、CSF)、表皮成長因子(epidermal growth factor、EGF)、角質細胞成長因子(Keratinocyte growth factor、KGF)などを含む。
前記成長因子は、好ましくは脳由来神経成長因子(brain−derived neurotropic factor、BDNF)、繊維芽細胞成長因子(fibroblast growth factor、FGF)、肝細胞成長因子(hepatocyte growth factor、HGF)、神経成長因子(nerve growth factor、NGF)または血管上皮成長因子(vascular endothelial growth factor、VEGF)を含むが、これに限定されない。
以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかし、下記の実施例は本発明をより簡単に理解するために提供されるものに過ぎず、本発明の内容は実施例によって限定されるものではない。
実施例1.幹細胞由来のエキソソームの分離
幹細胞由来のエキソソームを分離するために、トロンビンおよび超遠心分離機(Ultracentrifuge)を利用した。より具体的に、1×10個の臍帯血(umbilical cord blood)由来間葉系幹細胞を60mm培養皿(orange scientific cat# 4450200)に分注した後、1週間の間培養した。培養皿に細胞がいっぱいに増殖したのを確認した後、濃度別(10、20、50、100U/ml)トロンビン(thrombin)が希釈されている血清フリー培養培地(MEM alpha media)に取り替え、さらに24時間の間培養した。その後、培養液を遠心分離チューブに分けて入れて4℃、10000rpmで30分間遠心分離し、上澄み液を新しいチューブに移して細胞破片(debris)を除去した。前記上澄み液を再び4℃、100、000rpmで2時間の間超遠心分離した後、上澄み液を除去してエキソソームを分離した(最終濃度:15μg/ml)。
実施例2.幹細胞由来のエキソソームの確認
前記実施例1の過程を通じて分離したエキソソームが従来の公知のエキソソーム固有の特性を有しているかを確認するために、下記のような実験を遂行した。まず、分離したエキソソームをSEMイメージを通じて観察し、ウェスタンブロットを利用して公知のエキソソームマーカーであるCD63およびCD9(System Bioscience、Mountain View、CA、USA)の発現を確認した。また、溶解緩衝液(lysis buffer)を利用してエキソソーム膜を溶解した後、エキソソーム内の蛋白質を分離し、Procarta immunoassay kit(affymatrix、Santa Clara、CA、USA)を利用してエキソソーム内成長因子であるHGFとVEGFの量を測定した。その結果をそれぞれ図1〜図3に示した。
図1に示した通り、前記実施例1と同じ方法を通じて分離したエキソソームは約100nm直径の球状を呈する正常な形態を示していることを確認した。
また、図2および図3に示した通り、前記実施例1と同じ方法を通じて分離したエキソソームは正常にエキソソームマーカーであるCD63およびCD9を発現しており、エキソソーム内に成長因子であるVEGFおよびHGFが存在することを確認した。
実施例3.トロンビン処理によるエキソソーム生成促進効果
3−1.トロンビン処理濃度によるエキソソーム生成程度検証
トロンビン処理濃度による幹細胞由来のエキソソームの生成程度を確認するために、幹細胞培養時にトロンビンの濃度を異ならせて前記実施例1と同じ方法でエキソソームを分離してこれを定量した。その結果を図4に示した。
図4に示した通り、トロンビンの処理濃度が高くなるにつれて、幹細胞由来のエキソソームの生成が有意義に促進されることを確認した。
3−2.トロンビンを利用したエキソソーム生成促進方法の効率性検証
トロンビンを利用したエキソソーム生成促進方法の効率性を検証するために、トロンビンの代わりに培養培地にLPSまたはHを処理したことを除いては前記実施例1と同じ方法でエキソソームを分離してこれを定量した。その結果を図5に示した。
図5に示した通り、幹細胞培養時にトロンビンを処理する場合、他の物質を処理した群に比べて幹細胞由来のエキソソームの生成が顕著に増加することを確認した。
3−3.トロンビン処理による幹細胞内小胞体形成観察
トロンビン処理が幹細胞内小胞体の形成に及ぼす影響を確認するために、臍帯血由来間葉系幹細胞を50U/mlのトロンビンが希釈されている血清フリー培養培地(MEM alpha media)で6時間の間培養した後、前記実施例1と同じ方法でエキソソームを分離してこれを電子顕微鏡で観察した。その結果を図6に示した。
図6に示した通り、トロンビン処理によって幹細胞内小胞体の形成が増加し、エキソソームの分泌が誘導されるたことを確認した。
3−4.トロンビン処理によるエキソソーム内成長因子発現観察
トロンビン処理がエキソソーム内成長因子の発現に及ぼす影響を確認するために、臍帯血由来間葉系幹細胞を50U/mlのトロンビンが希釈されている血清フリー培養培地(MEM alpha media)で6時間の間培養した後、前記実施例1と同じ方法でエキソソームを分離した。溶解緩衝液(lysis buffer)を利用してエキソソーム膜を溶解した後、エキソソーム内の蛋白質を分離し、Procarta immunoassay kit(affymatrix、Santa Clara、CA、USA)を利用してエキソソーム内成長因子であるBDNF、FGF、HGF、NGF、IL−6およびVEGFの量を測定した。その結果を図7に示した。
図7に示した通り、トロンビン処理によってエキソソーム内成長因子であるBDNF、FGF、HGF、NGF、IL−6およびVEGFの発現が増加したことを確認した。
以上の実験結果を通じて、トロンビンを利用して幹細胞由来のエキソソームの生成を促進させることができ、エキソソーム内成長因子の発現を増加させ得ることを確認した。
本発明に係る方法は、幹細胞由来のエキソソームの生成を促進させる優秀な効果を有しており、これを通じて従来の公知の方法に比べて効率的にエキソソームを収得することができ、関連研究に有用に利用することができる。

Claims (10)

  1. 幹細胞をトロンビンを含む培地で培養する段階を含む、幹細胞由来のエキソソームの生成促進方法。
  2. 前記幹細胞は胚性幹細胞または成体幹細胞であることを特徴とする、請求項1に記載の方法。
  3. 前記成体幹細胞は間葉系幹細胞、ヒト組織由来の間葉系基質細胞、ヒト組織由来の間葉系幹細胞、多分化能幹細胞および羊膜上皮細胞で構成された群から選択される1種以上の成体幹細胞であることを特徴とする、請求項2に記載の方法。
  4. 前記間葉系幹細胞は臍帯、臍帯血、骨髄、脂肪、筋肉、神経、皮膚、羊膜および胎盤で構成された群から選択される1種以上の組織から由来した間葉系幹細胞であることを特徴とする、請求項3に記載の方法。
  5. 前記培地はDMEM (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium)、MEM (Minimal Essential Medium)、BME (Basal Medium Eagle)、RPMI 1640、DMEM/F−10(Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium:Nutrient Mixture F−10)、DMEM/F−12 (Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium:Nutrient Mixture F−12)、α−MEM(α−Minimal essential Medium)、G−MEM(Glasgow’s Minimal Essential Medium)、IMDM(Isocove’s Modified Dulbecco’s Medium)、およびKnockOut DMEMからなる群から選択された1種以上の培地であることを特徴とする、請求項1に記載の方法。
  6. 前記トロンビンは培地内に1〜1000U/mlの濃度で含まれることを特徴とする、請求項1〜請求項5のいずれか一項に記載の方法。
  7. 前記培養は12時間〜48時間の間実行されることを特徴とする、請求項1〜請求項5のいずれか一項に記載の方法。
  8. トロンビンを含む、幹細胞由来のエキソソームの生成促進用培地組成物。
  9. 幹細胞をトロンビンを含む培地で培養する段階を含む、幹細胞由来のエキソソーム内成長因子発現増進方法。
  10. 前記成長因子は脳由来神経成長因子(brain−derived neurotropic factor、BDNF)、繊維芽細胞成長因子(fibroblast growth factor、FGF)、肝細胞成長因子(hepatocyte growth factor、HGF)、神経成長因子(nerve growth factor、NGF)および血管上皮成長因子(vascular endothelial growth factor、VEGF)からなる群から選択された1種以上であることを特徴とする、請求項9に記載の方法。
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