JP2017210452A - 蛋白質糖化反応阻害剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】上記課題を解決するために、黒ガリンガル(Kaempheria parviflora)抽出物を有効成分として含有する蛋白質糖化反応素材剤を提供する。また、上記の蛋白質糖化反応素材剤を含有する食品、食品添加物、医薬品、医薬部外品及び化粧品を提供する。
【選択図】図3
Description
<実施形態1>
<試験>
真空ポンプを用いずに40℃未満の真空状態にて乾燥(低温真空乾燥)させ粉末化して得た黒ガリンガル乾燥粉末2gと、高温状態で乾燥(高温乾燥)させ粉末化して得た黒ガリンガル乾燥粉末2gのそれぞれを、80mLの熱水で1時間抽出し、常温まで冷却後、濾紙を用いて濾過後、試料溶液とした。以降の測定には本抽出液を使用した。各試料溶液の固形分濃度は、各試料溶液5mLをアルミトレイに入れ、110℃に設定したインキュベーター内で4時間乾燥させた後の残重量を測定して算出した。低温真空乾燥による固形分濃度(mg/ mL)は7.87±0.18であり、高温乾燥による固形分濃度は7.63±0.15であり、両サンプルともほぼ同様であった。
AGEs(糖化最終生成物)は糖化反応における最終生成物の総称であり、その特徴の一つとして蛍光性を有する。蛍光性を有するAGEsにはペントシジン、クロスリン、ピロピリジンなどがある。
in vitro 糖化反応
0.1 mol/L NaH2PO4-Na2HPO4リン酸緩衝液(pH7.4)、8 mg/mLヒト血清アルブミン(HSA)、0.2moL/Lグルコース糖化反応液中に、調製した各濃度のサンプルを1/10濃度になるように添加し、60℃で40時間インキュベートした。コントロールとしてはサンプルの代わりに蒸留水を添加したものを用いた。
糖化反応終了後、反応液中に生成した蛍光性AGEsをマイクロプレートリーダーで測定した(励起波長370nm/蛍光波長440nm)。
糖化反応終了後、反応液中に生成した3DG、GO、MGOを2.3-diaminonaphthalen(DAN)プレラベル化逆相HPLC法により定量した。
反応液中に生成したCMLはELISA法(CircuLex CML/Nε-(carboxymethyl)lysine), サイクレックス)で測定した。
AGEsの生成阻害率(%)は、in vitro糖化反応系においてサンプルを添加した反応液(A)、グルコース水溶液の代わりに蒸留水を添加したもの(B)、サンプルを添加しない溶液のみを添加してインキュベーションしたもの(C)、ブランクとしてグルコースの代わりに蒸留水を添加したもの(D)として下記の式に従って算出した。
AGEs生成阻害率(%) = {1-(A -B)/(C -D)} ×100
抗AGEs活性はIC50(50%生成阻害濃度)を算出し、有効数字3桁で表示した。
IC50は値が小さいほど活性が強いことを示している。
図1及び図2は、測定結果を表として示すものである。また、図3及び図4は、測定結果をグラフで示すものである。MGO及びペントシジンについては拡大したグラフも併せて示す。図示するように、低温真空乾燥粉末と高温乾燥粉末の各熱水抽出液にはAGEs生成抑制作用がみられた。その作用は蛍光性AGEs、3DG、GO、ペントシジンにおいて低温真空乾燥粉末が強かった。MGOの生成阻害作用は両サンプルともにアミノグアニジンと同等以上に強かった。CMLの生成阻害作用は高温乾燥粉末が約2倍強かった。
<効果>
<実施形態2>
<試験>
以下の試験ではαジケトン構造を有する1-フェニル-1,2-プロパンジオン(1-phenyl-1,2-propanedione: PPD)をモデル基質とした反応系を使用して、AGEs架橋切断作用を評価する。ポジティブコントロールとしてはPTBを使用した。
試験サンプルには各熱水抽出液(サンプル溶液)を使用した。架橋切断作用のポジティブコントロールとしてはPTBを使用した。
反応液は20℃、3,000×gで10分間遠心分離し、上清中の安息香酸量を逆相HPLCで分析した。反応液中の安息香酸量は、別途測定したサンプル中の安息香酸量を差し引いて求めた。1molのPPDは1molの安息香酸を生成することから、以下の式で架橋切断率を算出した。架橋切断の相対値はPTBの架橋切断率を100としたときの値を求めた。
架橋切断率(%)= {(A -B)/C} ×100
A:反応液中の安息香酸量
B:サンプル中の安息香酸量
C:反応に供したPPD量(基質量)
図6は、測定結果を表として示すものである。また、図7は、測定結果をグラフとして示すものである。低温真空乾燥粉末と高温乾燥粉末の各熱水抽出液にはAGEs架橋切断作用がみられた。その作用は低温真空乾燥粉末が強かった。
<効果>
<実施形態3>
<試験>
本測定ではOPHとその反応基質であるN-acetyl-L-alanine p-nitro-anilide(AAPA)との反応系に試料溶液を添加し、OPHの酵素反応への影響を評価した。なお、サンプルについては実施形態1の試験と同様に調製した。
OPHとしてacylamino-acid releasing enzyme (AARE)、OPHの反応基質としてN-acetyl-L-alaninep-nitroanilide(AAPA) 溶液を使用した。測定にはOPHを0.01 U/mL、0.005 U/mL、0.001 U/mLに調製して使用した。96ウェルマイクロプレートの各wellにOPH、AAPA、試料溶液を混合添加し、37°Cに設定したインキュベーター内で4時間反応させた反応液の405nmにおける吸光度をマイクロプレートリーダーで測定した。OPHの酵素活性は1時間当たりの吸光度変化量(反応速度)を求めた。同時にreference(Ref)として試料無添加時の反応速度を求め、下式に従ってRefの反応速度を100%とした時の活性増強作用を算出した。OPH活性増強作用ネガティブコントロールにはエピガロカテキンガレート(EGCg)を使用した。
図8(a)に測定結果を示す。図8(b)はグラフで示したものである。図示するように、黒ガリンガル抽出液はOPH活性を試料無添加時(Ref)よりも約2倍増強させる作用がみられた。
<効果>
Claims (18)
- 黒ガリンガル(Kaempheria parviflora)抽出物を有効成分として含有する蛋白質糖化反応阻害剤。
- 請求項1に記載の蛋白質糖化反応阻害剤を含有する医薬品。
- 請求項1に記載の蛋白質糖化反応阻害剤を含有する食品。
- 請求項1に記載の蛋白質糖化反応阻害剤を含有する医薬部外品。
- 請求項1に記載の蛋白質糖化反応阻害剤を含有する食品添加物。
- 請求項1に記載の蛋白質糖化反応阻害剤を含有する化粧品。
- 黒ガリンガル(Kaempheria parviflora)抽出物を有効成分として含有するAGEs架橋切断剤。
- 請求項7に記載のAGEs架橋切断剤を含有する医薬品。
- 請求項7に記載のAGEs架橋切断剤を含有する食品。
- 請求項7に記載のAGEs架橋切断剤を含有する医薬部外品。
- 請求項7に記載のAGEs架橋切断剤を含有する食品添加物。
- 請求項7に記載のAGEs架橋切断剤を含有する化粧品。
- 黒ガリンガル(Kaempheria parviflora)抽出物を有効成分として含有するOPH活性増強剤。
- 請求項13に記載のOPH活性増強剤を含有する医薬品。
- 請求項13に記載のOPH活性増強剤を含有する食品。
- 請求項13に記載のOPH活性増強剤を含有する医薬部外品。
- 請求項13に記載のOPH活性増強剤を含有する食品添加物。
- 請求項13に記載のOPH活性増強剤を含有する化粧品。
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