JP2017160215A - アフィニティクロマトグラフィーのための、洗浄溶液および方法 - Google Patents

Abstract

【課題】非緩衝塩の存在なしで不純物を除去し、同時に、溶出液中の生成物濃度を増加させ、回収した生成物の高い収率百分率を維持するのに効果的である、アフィニティクロマトグラフィー（ＡＣ）のための洗浄方法の提供。【解決手段】ｐＨが８．０より高いアルギニン又はアルギニン誘導体を含む洗浄溶液でプロテインＡカラムを洗浄する、カラムの洗浄方法。目的の蛋白質を含む混合物をＡＣマトリックスへ添加し、８．０より高いｐＨのアルギニン又はアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用いて、ＡＣマトリックスを洗浄し、ＡＣマトリックスから目的の蛋白質を溶出することを含む、非緩衝塩無しで洗浄を行う方法。【選択図】なし

Description

発明の背景
アフィニティクロマトグラフィーの間に、宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）ならびに高分
子量種（ＨＭＷ）および低分子量種（ＬＭＷ）等の生成物関連不純物を含む不純物を効率
的に除去することは、タンパク質の下流処理中の重要な因子である。第一の精製工程（「
捕捉工程」）の後のタンパク質の純度は、特に、精製された生成物を生成するために必要
な後続の工程の種類および数に影響を与える。捕捉工程もまた、生成物を濃縮し、その後
の精製工程における、比例してより小さく、コストがより低くなるコストのカラムの使用
を可能にするため、重要である。したがって、第一のクロマトグラフィー工程の間に、不
純物の除去を最適化することが重要である。抗体精製の場合において、この第一の工程は
、典型的には、プロテインＡまたは誘導体に対する親和性に基づいている。

低ｐＨ条件（例えば、ｐＨ３〜４の間）は、アフィニティカラムから、結合した標的タ
ンパク質を溶出するために必要であるが、潜在的に凝集を誘導するという欠点を有する。
歴史的に、ｐＨ５〜５．５の間等のストリンジェンシーのより低い条件が、同時に標的−
プロテインＡ相互作用を維持しながら、カラムから非特異的に結合した不純物を洗浄する
ために使用されている。しかしながら、特に高添加密度で作業する場合、これらの条件下
では、標的タンパク質が部分的に溶出されるため、回収率が低下することが多い。

アミノ酸アルギニンは、ある種の沈殿タンパク質を可溶化し（M、Tsumoto K、Nitta S
、Adschiri T、Ejima D、Arakawa T、および Kumagai I、Biochem. Biophys. Res. Commu
n. 328、189-197(2005);Umetsu M、Tsumoto K、Hara M、Ashish K、Goda S、Adschiri T
、Kumagai I、J Biol Chem. 2003 Mar 14;278(11):8979-87）、凝集体の形成を減少させ
（Arakawa T、Tsumoto K、Biochem Biophys Res Commun. 2003 Apr 25;304(1):148-52)お
よびArakawa T、Biophys. Chem. 127 (2007)、pp. 1-8 (Review)）、表面へのタンパク質
の非特異的な吸着を減少させる（Ejima D、J Chromato A、05 およびSchneider CP、J. P
hys. Chem. B 113 (2009)、pp.2050-2058）ことが示されている。更に、塩酸グアニジウ
ムとは対照的に、アルギニンは、タンパク質をアンフォールディングしないことが示され
ていない（Arakawa T、Biochem. Biophys. Res. Commun. 304 (2003)、 pp. 148-152およ
び Nakakido M、Biophys. Chem. 137 (2008)、pp. 105-109）。

したがって、アルギニンは、アフィニティクロマトグラフィーカラムおよび他の種類の
精製カラムから、タンパク質を溶出するために使用されている。例えば、Ａｒａｋａｗａ
らは、ｐＨ４．１〜５．０の０．５〜２．０Ｍのアルギニンを含有する溶出緩衝液を用い
て、プロテインＡカラムから抗体を溶出する方法を記載している（Arakawaら(2004) Prot
ein Expression and Purification 36:244-248; Tsumoto,K.ら(2004) Biotechnol. Prog.
20:1301-1308; 米国特許出願公開第２００５０１７６１０９号）。更に、Ｅｊｉｍａら
による米国特許第７，５０１，４９５号は、塩酸アルギニンを含有する展開液により、ゲ
ル濾過カラムからタンパク質を溶出する方法を記載している。Ｇｈｏｓｅらは、溶出液と
してアルギニン勾配を用いて、誘導化されていないシリカから目的のタンパク質を溶出す
る方法を記載している（Ghose，S.ら(2004) Biotech. Bioeng. 87:413-423）。Ｃｏｆｆ
ｍａｎらによる米国特許出願公開第２００３００５０４５０号は、Ｆｃ含有分子とプロテ
インＡとの複合体から、Ｆｃ含有分子を解離する方法を記載しており、ここでは、Ｆｃ／
プロテインＡ複合体を疎水性相互作用カラム（ＨＩＣ）にかけ、アルギニン含有緩衝液を
用いてカラムを洗浄する。

Ｂａｒｒｏｎらは、ｐＨ５．０〜７．５のリン酸／酢酸塩緩衝液中に０．５から２．０
Ｍアルギニン（最適には、１Ｍアルギニン、ｐＨ５．０の０．１Ｍリン酸／酢酸塩緩衝液
）を含有するプロテインＡクロマトグラフィーのための中間の洗浄溶液を記載している。
このアルギニン洗浄工程は、ＨＣＰ汚染物質を除去することが報告されている。著者らは
また、ｐＨ５．０〜７．５で０．５〜２．０Ｍの塩化ナトリウムを含有する中間の洗浄溶
液を試験し、ＮａＣｌ洗浄がＨＣＰの有意な低下を示さないことを報告した（Barronら「
Improving Purity on Protein A Affinity Media Through Use of an Arginine Intermed
iate Wash Step」、 http://www.priorartdatabase.com/IPCOM/000127319）。更に、Ｂａ
ｒｒｏｎらは、実験に用いた条件下で、洗浄緩衝液のｐＨを低下させることは、有益な効
果を有することを報告した。

精製プロセスを強化し、生成物回収率を上昇させるための改良された技術に対して、長
年にわたるニーズが存在する。本開示は、このニーズに対応し、かつ、付加的な利益を提
供する。

発明の概要
本発明は、アフィニティクロマトグラフィーのための効率的かつロバストな洗浄溶液、
および、この溶液を用いる洗浄方法を提供する。この洗浄溶液は、溶出工程の前の洗浄工
程において適用され、その使用によって、マトリックスへ適用される出発物質から低分子
量種（ＬＭＷ）、高分子量種（ＨＭＷ）および宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）を効果的に
除去する一方、アフィニティマトリックスから溶出した目的のタンパク質の高収率をもた
らす。この洗浄溶液は、非緩衝塩が存在せず、高いｐＨ、即ち８．０より高いｐＨでアル
ギニンが存在することを特徴とする。高いｐＨでのアルギニン（またはアルギニン誘導体
）の組合せは、より低いｐＨのアルギニン含有洗浄溶液より、顕著に多くの不純物を除去
し、目的の回収されたタンパク質の高濃度と相関する、より鋭い溶出ピークをもたらす。

したがって、一実施形態において、本発明は、目的のタンパク質が結合するアフィニテ
ィクロマトグラフィー（ＡＣ）マトリックスを用いて、目的の精製されたタンパク質（例
えば、抗体、抗体断片、またはタンパク質）を生成する方法を提供し、その方法は、非緩
衝塩が存在することなく、８．０より高いｐＨのアルギニンまたはアルギニン誘導体を含
む洗浄溶液を用いて、ＡＣマトリックスを洗浄することを含む。好ましい実施形態におい
て、洗浄溶液のｐＨは、少なくとも８．１、より好ましくは少なくとも８．５、更により
好ましくは少なくとも８．９または９．０である。一実施形態において、洗浄溶液のｐＨ
は約８．５〜９．５である。別の実施形態において、洗浄溶液のｐＨは、約８．９〜９．
０である。

別の実施形態において、その方法は、更に、（ａ）目的のタンパク質を含む混合物をＡ
Ｃマトリックス上へ添加する（ｌｏａｄ）こと、（ｂ）８．０より高いｐＨのアルギニン
またはアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用いて、ＡＣマトリックスを洗浄すること、お
よび、（ｃ）ＡＣマトリックスから目的のタンパク質を溶出することを含み、洗浄は、非
緩衝塩の存在なしで行われる。

特定の実施形態において、ＡＣマトリックスはプロテインＡカラムである。様々な他の
実施形態において、ＡＣマトリックスは、プロテインＧカラム、プロテインＡ／Ｇカラム
、プロテインＬカラム、固定化金属イオンアフィニティクロマトグラフィー（ＩＭＡＣ）
カラム、カルモジュリン樹脂カラム、ＭＥＰ ＨｙｐｅｒＣｅｌ（商標）カラム、マルト
ース結合タンパク質（ＭＢＰ）に結合するカラム、グルタチオン−Ｓ−トランスフェラー
ゼ（ＧＳＴ）に結合するカラム、Ｓｔｒｅｐ−ＴａｇＩＩに結合するカラム、および色素
−アフィニティカラムから成る群から選択される。他の実施形態において、ＡＣマトリッ
クスは、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＧ−ＣＨ１、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ
ＩｇＧ−Ｆｃ（Ｈｕ）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＬＣ−ｋａｐｐａ（Ｈｕ）、Ｃａ
ｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＬＣ−ｌａｍｂｄａ（Ｈｕ）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ
ＩｇＧ４（Ｈｕ）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＧ１（Ｈｕ）、ＣａｐｔｕｒｅＳ
ｅｌｅｃｔ ＩｇＧ３（Ｈｕ）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＭおよびＣａｐｔｕ
ｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＡから成る群から選択される樹脂を含む。他の実施形態において
、ＡＣマトリックスは、ＩｇＳｅｌｅｃｔ、ＫａｐｐａＳｅｌｅｃｔ、ＬａｍｄａＦａｂ
Ｓｅｌｅｃｔ、およびＣａｐｔｏ Ｌから成る群から選択される樹脂を含む。

適切な目的のタンパク質は、抗体（および、Ｆｃ融合タンパク質等のＦｃ領域を含む他
のタンパク質）および抗体断片を含むがそれらに限定されず、本明細書に記載のアフィニ
ティマトリックスに結合する他のタンパク質も、本発明の方法に従う精製に適している。

別の態様において、本発明は、プロテインＡカラムを使用した、精製された抗体、抗体
断片、またはＦｃ領域を含むタンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質）を生成する方法
を提供し、その方法は、（ａ）抗体、抗体断片、またはタンパク質を含む混合物を、プロ
テインＡカラム上へ添加すること、（ｂ）（ｉ）８．０より高いｐＨ（例えば、約８．５
〜９．５または約８．９〜９．０）のアルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗浄溶液
を用いて、プロテインＡカラムを洗浄すること、および（ｃ）プロテインＡカラムから、
抗体、抗体断片、またはタンパク質を溶出することを含み、洗浄は、非緩衝塩の存在なし
で行われる。

更に別の態様において、その方法は、目的のタンパク質（例えば、抗体、抗体断片、ま
たは、Ｆｃ領域を含むタンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質））をプロテインＡカラ
ムに添加および／またはプロテインＡカラムから溶出する前に、プロテインＡカラムを任
意選択で平衡化することを含む。例えば、本発明は、精製した抗体、抗体断片、またはＦ
ｃ領域を含むタンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質）を、プロテインＡカラムを使用
して生成する方法を提供し、その方法は、（ａ）プロテインＡカラムを平衡化すること（
例えば、平衡緩衝液を使用して、ｐＨを調整し、任意の残留保存緩衝液を除去することに
より）、（ｂ）抗体、抗体断片、またはタンパク質を含む混合物をプロテインＡカラム上
に添加すること、（ｃ）プロテインＡカラムを、（ｉ）８．０より高いｐＨ（例えば、約
８．５〜９．５または約８．９〜９．０）のアルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗
浄溶液を用いて洗浄すること、および（ｄ）プロテインＡカラムから抗体、抗体断片、ま
たはタンパク質を溶出することを含み、洗浄は、非緩衝塩の存在なしで行われる。この方
法は、抗体、抗体断片、またはタンパク質を溶出する前に、プロテインＡカラムを平衡化
する工程を更に含むことができる。

特定の実施形態において、洗浄溶液は、アルギニンまたはアルギニン−ＨＣｌを、好ま
しくは、約０．１〜０．５Ｍの範囲の濃度で含む。別の特定の実施形態において、アルギ
ニンまたはアルギニン−ＨＣｌは、０．２５Ｍまたは約０．２５Ｍの濃度で存在する。更
に他の特定の実施形態において、洗浄溶液は、アセチルアルギニン、Ｎ−α−ブチロイル
−アルギニン、アグマチン、アルギン酸およびＮ−α−ピバロイルアルギニンから成る群
から選択される誘導体等のアルギニン誘導体を含む。

本発明の方法は、高分子量および低分子量（それぞれ、ＨＭＷおよびＬＭＷ）種ならび
に宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）を含む様々な不純物の除去に効果的である。特定の実施
形態において、洗浄溶液は更に、１つまたは複数の緩衝塩（例えば、酢酸ナトリウム、リ
ン酸ナトリウムまたはトリス）を含む。

詳細な説明
本発明は、プロテインＡクロマトグラフィー等のアフィニティクロマトグラフィーのた
めの改良された洗浄溶液を提供し、これを、不純物を除去するために、目的のタンパク質
の溶出の前に、カラムに適用する。改良された洗浄溶液は、非緩衝塩の存在なしで、８．
０より高いｐＨ（例えば、８．１より高いｐＨ、好ましくは８．５より高いｐＨ、例えば
、約８．５〜９．５または約８．９〜９．０の間）でアルギニンまたはアルギニン誘導体
を含む。典型的に、洗浄溶液は水溶液である。

高いｐＨでのアルギニンまたはアルギニン誘導体のこの独自の組合せは、回収率に影響
を与えることなく、一般的に使用される手順より顕著に多くの不純物を除去する。更に、
この洗浄条件は、溶出液中の目的のタンパク質の高い濃度に相関する、鋭い溶出ピークを
もたらし、これは、追加の下流の精製プロセスの性能を向上させるのに有利である。

宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）ならびに高分子量（ＨＭＷ）種および低分子量（ＬＭＷ
）種等の生成物関連不純物を含む不純物を効率的に除去することは、目的のタンパク質の
下流処理中の重要な因子である。アフィニティクロマトグラフィーは、多くの場合、目的
のタンパク質（例えば、抗体）の多段階精製プロセスの第一段階として使用され、アフィ
ニティクロマトグラフィー後の目的のタンパク質の純度は、特に、その後の精製工程の種
類および数に影響を与える。アフィニティクロマトグラフィーの別の重要な役割は、生成
物を濃縮することであり、これによって、その後の精製工程における、比例的に、より小
さくより低コストのカラムおよびリザーバー（バッグまたはスチールタンク）の使用が可
能になる。したがって、高い中間濃度を維持しながら、収率を損なうことなく、アフィニ
ティクロマトグラフィー工程の間の不純物除去を最適化することが、特に重要である。

マトリックスに応じて、典型的にはｐＨ３〜４の間の低いｐＨ条件は、アフィニティマ
トリックスから目的の結合したタンパク質を溶出するための要件であり、潜在的に凝集を
誘導するという欠点を有する。歴史的に、ｐＨ５〜５．５等のストリンジェンシーのより
低い条件が、目的のタンパク質とアフィニティマトリックスとの間の相互作用を維持しな
がら、カラムから非特異的に結合された不純物を洗浄するために使用されてきた。しかし
ながら、特に高添加密度で作業する場合に、これらの条件では、目的のタンパク質が部分
的に溶出するために、目的のタンパク質の回収率が低下することが多い。したがって、好
ましい実施形態において、本発明により提供される洗浄溶液は、８．０より高いｐＨ（例
えば、好ましくは、８．１より高いｐＨ、より好ましくは８．５より高いｐＨ、例えば、
約８．５〜９．５または約８．９〜９．０の間）で、有利に行われ、これは、不純物の除
去を可能にしながら、アフィニティマトリックスへの目的のタンパク質の結合を維持する
。

典型的に、アルギニン洗浄は、非緩衝塩を含む。しかしながら、本発明の一利点は、本
発明で用いる洗浄工程が、非緩衝塩の存在を必要としないことである。本明細書で使用す
る、用語「非緩衝塩」は、酸または塩基を加える際に、適用する条件（例えば、高いｐＨ
等）下で、実質的に、洗浄溶液のｐＨを保持するのに寄与しない種類および濃度である塩
を指す。非緩衝塩としては、イオン性塩、ＣｌまたはＢｒを含む塩を含むハロゲン塩、特
に、ナトリウム（Ｎａ）、カリウム（Ｋ）、カルシウム（Ｃａ）またはマグネシウム（Ｍ
ｇ）、ナトリウム（Ｎａ）またはカリウム（Ｋ）を含む、アルカリ金属またはアルカリ土
類金属（即ち、ＮａＣｌ、ＫＣｌ、ＣａＣｌ_２およびＭｇＣｌ_２）を含むハロゲン塩が挙
げられる。特定の実施形態において、洗浄は、ＮａＣｌの存在なしで行われる。

用語「非緩衝塩」は、酢酸ナトリウム、リン酸ナトリウムおよびトリス等の緩衝塩を含
まない（これらの塩は、適用された条件下での洗浄溶液（単数または複数）のｐＨの保持
に、実質的に寄与する）。したがって、そのような緩衝塩は、本発明の洗浄溶液に含まれ
得る。

共通の採取物または細胞抽出物中に存在する不純物の大きな生物物理学的多様性は、ク
ロマトグラフィー媒体および／または目的の結合したタンパク質の固相との相互作用の非
常に多様なモードをもたらす。多かれ少なかれ不純物を強く係留するのは、水素結合、静
電相互作用、疎水性およびファンデルワールス力またはこれらの種類の相互作用の組合せ
等の、２つの分子間の、非共有結合分子間相互作用の結果であり得る。したがって、いく
つかの異なるメカニズムの組合せ（即ち、８．０より高いｐＨと組み合わせた、アルギニ
ンまたはアルギニン誘導体）は、伝統的な技法より、不純物を除去するのにより効果的で
あることが見出された。

洗浄溶液中でアルギニンを用いる文脈において、アルギニンはある種の沈殿タンパク質
を可溶化し（Umetsu, M.ら(2005) Biochem. Biophys. Res. Commun. 328:189-197; Tsumo
to, K.ら(2003) Biochem. Biophys. Res. Commun. 312:1383-1386）、凝集体の形成を減
少させ（Arakawa,T.ら(2003) Biochem. Biophys. Res. Commun. 304:148-152）、表面へ
のタンパク質の非特異的吸着を減少させる（Ejima, D.ら (2005) J. Chromatogr. A. 109
4:49-55）能力を有することが報告されている。メカニズムにより限定されることを意図
するものではないが、タンパク質凝集の減少は、アルギニンと相互作用する、タンパク質
上の疎水性パッチのマスキングに由来し得る。この相互作用は、アルギニン上のグアニジ
ウム基とタンパク質上のトリプトファン基との間で生じ得るか、またはアルギニンのクラ
スタリングにより、疎水性パッチの形成を介して生じ得るか、またはそのような効果の組
合せであり得る。

本明細書で使用する、句「高いｐＨ」は、８．０より高いｐＨを指し、これは、従来の
洗浄方法に用いられる、低いまたは中性のｐＨ（例えば、約５．０〜７．０のｐＨ）での
アルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗浄と比較すると、不純物の有意な減少をもた
らす。例えば、一実施形態において、「高いｐＨ」の洗浄は、低いまたは、７．０の中性
ｐＨのアルギニン含有洗浄溶液と比較して、少なくとも約２〜３倍のＨＣＰの減少率、お
よび／または、少なくとも約３〜４倍のＬＭＷレベルの減少率、および／または、少なく
とも約３０〜５０％以上の全体的な凝集の減少をもたらす。

特定の実施形態において、洗浄溶液の「高い」ｐＨは、少なくとも約８．１、好ましく
は少なくとも約８．５、より好ましくは約８．５〜９．５または約８．９〜９．０である
。洗浄の例示的な「高い」ｐＨ条件は、例えば、８．１または約８．１、８．２または約
８．２、８．３または約８．３、８．４または約８．４、８．５または約８．５、８．６
または約８．６、８．７または約８．７、８．８または約８．８、８．９または約８．９
、９．０または約９．０、９．１または約９．１、９．２または約９．２、９．３または
約９．３、９．４または約９．４、９．５または約９．５、１０．０または約１０．０、
１０．１または約１０．１、１０．２または約１０．２、１０．３または約１０．３、１
０．４または約１０．４、および１０．５または約１０．５のｐＨ値を含む。洗浄溶液は
また、ｐＨを調整および／または維持するための１つまたは複数の緩衝剤（即ち、緩衝塩
）を含有し得る。洗浄溶液（単数または複数）中に含むことができる典型的な緩衝剤の非
限定的な例は、トリス（トリス（ヒドロキシメチル）メチルアミン）、ビス−トリス、ビ
ス−トリスプロパン、ヒスチジン、トリエタノールアミン、ジエタノールアミン、ギ酸塩
、酢酸塩、ＭＥＳ（２−（Ｎ−モルホリノ）エタンスルホン酸）、リン酸塩、ＨＥＰＥＳ
（４−２−ヒドロキシエチル−１−ピペラジンエタンスルホン酸）、クエン酸塩、ＭＯＰ
Ｓ（３−（Ｎ−モルホリノ）プロパンスルホン酸）、ＴＡＰＳ（３−｛［トリス（ヒドロ
キシメチル）メチル］アミノ｝プロパンスルホン酸）、ビシン（Ｎ，Ｎ−ビス（２−ヒド
ロキシエチル）グリシン）、トリシン（Ｎ−トリス（ヒドロキシメチル）メチルグリシン
）、ＴＥＳ（２−｛［トリス（ヒドロキシメチル）メチル］アミノ｝エタンスルホン酸）
、ＰＩＰＥＳ（ピペラジン−Ｎ，Ｎ’−ビス（２−エタンスルホン酸）、カコジル酸塩（
ジメチルアルシン酸）およびＳＳＣ（塩化ナトリウム、クエン酸ナトリウム）を含む。

本発明の精製方法は、高分子量および低分子量（それぞれ、ＨＭＷおよびＬＭＷ）種な
らびに宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）を含む、様々な不純物を除去するのに効果的である
。実施例において詳細に説明するように、その方法は、目的のタンパク質の高い収率百分
率および目的のタンパク質の高濃度を達成しながら、洗浄溶出液中のＨＭＷ種、ＬＭＷ種
およびＨＣＰを減すのに効果的である。例えば、様々な実施形態において、本明細書に記
載の方法は、９７％より高い、より好ましくは９８％より高い、最も好ましくは９９％よ
り高い、目的のタンパク質の収率百分率をもたらす。

他の実施形態において、本発明の方法は、少なくとも約２倍の減少率、より好ましくは
少なくとも約３倍の減少率、より好ましくは少なくとも約４倍の減少率、より好ましくは
少なくとも約５倍の減少率、更により好ましくは少なくとも約６倍の減少率である、溶出
液中のＨＭＷまたはＬＭＷ汚染物質の減少百分率をもたらす。更に他の実施形態において
、その方法は、少なくとも約１．１、または少なくとも約１．２、または少なくとも約１
．３、または少なくとも約１．４、または少なくとも約１．５、または少なくとも約１．
６、または少なくとも約１．７、または少なくとも約１．８、または少なくとも約１．９
、または少なくとも約２．０、または少なくとも約２．１、または少なくとも約２．２、
または少なくとも約２．３、または少なくとも約２．４、または少なくとも約２．５、ま
たは少なくとも約２．６、または少なくとも約２．７、または少なくとも約２．８、また
は少なくとも約２．９、または少なくとも約３．０の、溶出液中のＨＣＰの対数減少値（
ＬＲＶ）をもたらす。

メカニズムによって限定されることを意図するものではないが、高いｐＨは部分的にＨ
ＣＰおよびＨＭＷを変性させる可能性があり、一方、単量体の抗体を含む安定したタンパ
ク質は、これらの条件では影響されない。汚染物質タンパク質の変性は、構造のわずかな
変化として現れる可能性があり、これは、非特異的結合を弱めるのに十分であり得る。し
たがって、洗浄溶液の高いｐＨは、目的の結合タンパク質とのそれらの相互作用またはア
フィニティマトリックスの固体支持を不安定化させることにより、不純物の除去を増加さ
せるために有益であり得る。

したがって、一態様において、本発明は、目的のタンパク質が結合する、アフィニティ
クロマトグラフィー（ＡＣ）マトリックスを用いて、精製したタンパク質（例えば、抗体
、抗体断片、またはＦｃ領域を含むタンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質））を生成
する方法を提供し、その方法は、ＡＣマトリックスからの目的のタンパク質の溶出の前に
、非緩衝塩の存在なしに、８．０より高いｐＨ（例えば、好ましくは８．１より高いｐＨ
、より好ましくは８．５より高いｐＨ、例えば、約８．５〜９．５または約８．９〜９．
０の間）で、アルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用いて、ＡＣマトリッ
クスを洗浄することを含む。ＡＣマトリックスは、目的のタンパク質の添加前および／ま
たは目的のタンパク質の溶出前に、任意選択で平衡化することができる。

本明細書で使用する、用語「アフィニティクロマトグラフィーマトリックス」または「
ＡＣマトリックス」は、レセプターとリガンド、酵素と基質とのまたは、抗原と抗体との
間のような、目的のタンパク質とＡＣマトリックスとの間の非常に特異的な結合相互作用
に基づいて、生化学的混合物の分離を可能にする、典型的にゲルまたは樹脂である、固相
媒体を指すことを意図している。したがって、固相媒体は、緩衝液条件に応じて、目的の
タンパク質が可逆的に結合できる標的を含む。ＡＣマトリックスを含むことができる固定
化または固相媒体の非限定的な例として、アガロースビーズ（市販のＳｅｐｈａｒｏｓｅ
マトリックス等）等のゲルマトリックスおよび多孔質ガラスビーズ（市販のＰｒｏＳｅｐ
マトリックス等）等のガラスマトリックスが挙げられる。

ＡＣマトリックスへの目的のタンパク質の結合は、典型的に、カラムクロマトグラフィ
ーにより達成される。すなわち、ＡＣマトリックスをカラムへと形成し、目的のタンパク
質を含有する生化学的混合物をカラムを通して流し、その後、洗浄溶液をカラムを通して
流すことによりカラムを洗浄し、その後、溶出緩衝液をカラムを通して流すことにより、
カラムから目的のタンパク質を溶出する。

あるいは、ＡＣマトリックスへの目的のタンパク質の結合は、バッチ処理によって達成
することができ、目的のタンパク質を含有する生化学的混合物を容器中でＡＣマトリック
スと共にインキュベートして、ＡＣマトリックスに目的のタンパク質を結合させ、固相媒
体を容器から取り出し（例えば、遠心分離または真空ポンプを用いた濾過により）、固相
媒体を洗浄して、不純物を除去し、再び回収し（例えば、遠心分離または真空ポンプを用
いた濾過により）、目的のタンパク質を固相媒体から溶出する。

更に別の実施形態において、バッチ処理およびカラムクロマトグラフィーの組合せを使
用することができる。例えば、ＡＣマトリックスへの目的のタンパク質の初期の結合を、
バッチ処理により達成することができ、次に、固相媒体をカラム中へ充填し、その後、カ
ラムを洗浄し、目的のタンパク質をカラムから溶出することができる。

特定の固相マトリックスの性質、特に、固相へ結合される標的の結合特性により、固相
マトリックスを用いて精製することができるタンパク質（単数または複数）の種類（単数
または複数）が決定される。例えば、本発明の好ましい実施形態において、ＡＣマトリッ
クスはプロテインＡカラムであり、これは、固相へ結合した標的として、特定の免疫グロ
ブリンのＦｃ領域内のＣＨ２およびＣＨ３ドメインと特異的に結合する、細菌の細胞壁タ
ンパク質であるプロテインＡを含む。プロテインＡの結合特性は、当該技術分野において
良く確立されている。

したがって、本発明の好ましい実施形態において、（精製される）目的のタンパク質は
抗体、抗体断片、またはＦｃ領域を含むタンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質）であ
る。更に、プロテインＡクロマトグラフィーを用いて精製することができる追加のタンパ
ク質は、Ｆｃ含有タンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質）を含む。特異的にプロテイ
ンＡマトリックスへ結合することができる限り、任意のタンパク質を本発明の方法に従っ
て精製することができる。様々なプロテインＡ樹脂が当該技術分野で周知であり、本発明
における使用に適している。市販のプロテインＡ樹脂の非限定的な例は、ＭａｂＳｅｌｅ
ｃｔ、ＭａｂＳｅｌｅｃｔ Ｘｔｒａ、ＭａｂＳｅｌｅｃｔ Ｓｕｒｅ、ｒＰｒｏｔｅｉ
ｎ Ａ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ＦＦ、ｒｍｐＰｒｏｔｅｉｎ Ａ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ
ＦＦ、Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ＣＬ−４ＢおよびｎＰｒｏｔｅｉｎ
Ａ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ ４ ＦＦ（全てＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅから市販されてい
る）；ＰｒｏＳｅｐ Ａ、ＰｒｏＳｅｐ−ｖＡ Ｈｉｇｈ Ｃａｐａｃｉｔｙ、ＰｒｏＳ
ｅｐ−ｖＡ ＵｌｔｒａおよびＰｒｏＳｅｐ−Ｖａ Ｕｌｔｒａ Ｐｌｕｓ（全てＭｉｌ
ｌｉｐｏｒｅから市販されている）；Ｐｏｒｏｓ ＡおよびＭａｂｃａｐｔｕｒｅ Ａ（
両方ともにＰｏｒｏｓから市販されている）；ＩＰＡ−３００、ＩＰＡ−４００およびＩ
ＰＡ−５００（全てＲｅｐｌｉＧｅｎ Ｃｏｒｐ．から市販されている）；Ａｆｆｉｇｅ
ｌ ｐｒｏｔｅｉｎ ＡおよびＡｆｆｉｐｒｅｐ ｐｒｏｔｅｉｎ Ａ（両方ともにＢｉ
ｏ−Ｒａｄから市販されている）；Ｐｒｏｔｅｉｎ Ａ Ｃｅｒａｍｉｃ Ｈｙｐｅｒ
Ｄ Ｆ（Ｐａｌｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから市販されている）；Ｕｌｔｒａｌｉｎｋ
Ｉｍｍｏｂｉｌｉｚｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ＡおよびＡｇａｒｏｓｅ ｐｒｏｔｅｉｎ
Ａ（両方ともにＰＩＥＲＣＥから市販されている）；ならびにＰｒｏｔｅｉｎ Ａ Ｃ
ｅｌｌｔｈｒｕ ３００およびＰｒｏｔｅｉｎ Ａ Ｕｌｔｒａｆｌｏｗ（両方ともにＳ
ｔｅｒｏｇｅｎ Ｂｉｏｓｅｐａｒａｔｉｏｎｓから市販されている）を含む。

別の実施形態において、樹脂は、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＧ−ＣＨ１（ヒト
ＩｇＧおよび全てのＦａｂ断片の精製に適している）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ Ｉ
ｇＧ−Ｆｃ（Ｈｕ）（ヒトＩｇＧに特異的であり、４つの全てのサブクラスを認識する）
、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＬＣ−ｋａｐｐａ（Ｈｕ）（生成物を含有する全てのヒ
トκＩｇ軽鎖の精製に適している（以前は、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ Ｆａｂ ｋａ
ｐｐａとして知られていた））、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＬＣ−ｌａｍｂｄａ（Ｈ
ｕ）（生成物を含有する全てのヒトλＩｇ軽鎖の精製に適している（以前はＣａｐｔｕｒ
ｅＳｅｌｅｃｔ Ｆａｂ ｌａｍｂｄａとして知られていた））、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌ
ｅｃｔ ＩｇＧ４（Ｈｕ）（他のサブクラスまたは種に全くクロス結合せずにヒトＩｇＧ
４について非常に特異的である）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＧ１（Ｈｕ）（他
のサブクラスまたは種に全くクロス結合せずにヒトＩｇＧ１について非常に特異的である
）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＧ３（Ｈｕ）（他のサブクラスまたは種に全くク
ロス結合せずにヒトＩｇＧ３について非常に特異的である）、ＣａｐｔｕｒｅＳｅｌｅｃ
ｔ ＩｇＭ（ヒト、マウス、ラットＩｇＭについて適したＩｇＭ樹脂）、または、Ｃａｐ
ｔｕｒｅＳｅｌｅｃｔ ＩｇＡ（ヒトＩｇＡ、ＩｇＡ−ダイマーおよび分泌型ＩｇＡ（ｓ
ＩｇＡ）の精製に適している）であり、全てＢＡＣから市販されている。別の実施形態に
おいて、樹脂は、ＩｇＳｅｌｅｃｔ（ヒトＩｇＧの精製のためのアフィニティ媒体）、Ｋ
ａｐｐａＳｅｌｅｃｔ（Ｆａｂ（κ）断片の精製のためのアフィニティ媒体）、Ｌａｍｄ
ａＦａｂＳｅｌｅｃｔ（λＦａｂ断片の精製のためのアフィニティ媒体）、またはＣａｐ
ｔｏ Ｌ（抗体および抗体断片を捕捉するための樹脂）であり、全てＧＥ Ｈｅａｌｔｈ
ｃａｒｅ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅｓから市販されている。

本発明に用いることができる更なるアフィニティクロマトグラフィーシステムは、例え
ば、プロテインＧ、プロテインＡ／ＧおよびプロテインＬカラムを含み、これらのそれぞ
れはまた、当該技術分野で確立された結合特性を有する免疫グロブリン結合細菌性タンパ
ク質である。したがって、プロテインＧマトリックス、プロテインＡ／Ｇマトリックスま
たはプロテインＬマトリックスであるＡＣマトリックスを、抗体、抗体断片、またはＦｃ
領域を含むタンパク質（例えば、Ｆｃ融合タンパク質）を精製するために、使用すること
ができる。

ＡＣマトリックスの他の非限定的な例、およびそれらのＡＣマトリックスが精製するの
に効果的なタンパク質の種類は、以下を含む：固定化金属イオンアフィニティクロマトグ
ラフィー（ＩＭＡＣ）カラム（ヒスチジンタグ付きタンパク質等の、金属イオンについて
の親和性を有するタンパク質の精製のため）、カルモジュリン樹脂カラム（カルモジュリ
ン結合ペプチド（ＣＢＰ）でタグ付けされたタンパク質の精製のため）、ＭＥＰ Ｈｙｐ
ｅｒＣｅｌ（商標）カラム（選択的に免疫グロブリンに結合するセルロースマトリックス
）、マルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）に結合するカラム（ＭＢＰでタグ付けされたタ
ンパク質に選択的に結合する、Ｄｅｘｔｒｉｎ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（商標）樹脂等）、
グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）に結合するカラム（ＧＳＴでタグ付け
されたタンパク質に選択的に結合するＧｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（商
標）樹脂等）およびＳｔｒｅｐ−ＴａｇＩＩに結合するカラム（Ｓｔｒｅｐ−ＴａｇＩＩ
でタグ付けされたタンパク質に選択的に結合する、Ｓｔｒｅｐ−Ｔａｃｔｉｎ（商標）Ｓ
ｅｐｈａｒｏｓｅ樹脂等）。更に、固相に固定された抗体へ特異的に結合する目的の抗原
を精製するために、固相に固定された標的の抗体を含む、免疫親和性マトリックスを使用
することができる。

対象の発明は、特にプロテインＡクロマトグラフィーを用いる抗体の精製について本明
細書において記載しているが、任意のタンパク質（融合タンパク質を含む）が選択的に特
定のＡＣマトリックスへ結合することが当分野で知られている限りにおいては、タンパク
質は、本明細書に記載の洗浄方法を用いて、容易に精製される。

本明細書で使用する用語「抗体」は、完全な抗体および任意の抗原結合断片（即ち、「
抗原結合断片」（「抗原結合部分」としても知られている））またはその単鎖を含む。完
全な抗体は、ジスルフィド結合により相互に接続された、少なくとも２つの重（Ｈ）鎖お
よび２つの軽（Ｌ）鎖を含む糖タンパク質である。各重鎖は、重鎖可変領域（本明細書に
おいてＶ_Ｈと略す）および重鎖定常領域から構成される。重鎖定常領域は、３つのドメイ
ン、Ｃ_Ｈ１、Ｃ_Ｈ２およびＣ_Ｈ３から構成される。各軽鎖は、軽鎖可変領域（本明細書に
おいてＶ_Ｌと略す）および軽鎖定常領域から構成される。軽鎖定常領域は、１つのドメイ
ンＣ_Ｌから構成される。Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌ領域は、更に、相補性決定領域（ＣＤＲ）と呼ば
れる、超可変領域へ細分することができ、フレームワーク領域（ＦＲ）と呼ばれるより保
存されている領域が散在している。各Ｖ_ＨおよびＶ_Ｌは、ＦＲ１、ＣＤＲ１、ＦＲ２、Ｃ
ＤＲ２、ＦＲ３、ＣＤＲ３、ＦＲ４の順序で、アミノ末端からカルボキシ末端まで配置さ
れた、３つのＣＤＲおよび４つのＦＲから構成されている。重鎖および軽鎖の様々な領域
は、抗原と相互作用する結合ドメインを含む。抗体の定常領域は、免疫系の様々な細胞（
例えば、エフェクター細胞）および古典的な補体系の第一成分（Ｃｌｑ）を含む宿主組織
または因子への、免疫グロブリンの結合を媒介することができる。用語「抗体」はまた、
低分子化抗体（ｍｉｎｉｂｏｄｙ）、ビス−ｓｃＦｖ、二重特異性抗体、三重特異性抗体
（ｔｒｉａｂｏｄｙ）、四重特異性抗体（ｔｅｔｒａｂｏｄｙ）および化学的に共役であ
るＦａｂ’多量体を包含する。

本明細書で使用する用語「抗体断片」（「抗原結合断片」または「抗原結合部分」とも
呼ばれる）は、特異的に抗原に結合する能力を保持する抗体の１つまたは複数の断片を指
す。抗体の抗原結合機能は、完全長の抗体の断片により行うことができることが示されて
いる。抗体の、用語「抗原結合断片」内に包含される結合断片の例は、（ｉ）Ｆａｂ断片
、Ｖ_Ｌ、Ｖ_Ｈ、Ｃ_ＬおよびＣ_Ｈ１ドメインから成る一価断片、（ｉｉ）Ｆ（ａｂ’）_２断
片、本質的にヒンジ領域の一部を含むＦａｂである二価断片（FUNDAMENTAL IMMUNOLOGY (
Paul編、3.sup.rd ed. 1993)を参照）、（ｉｖ）Ｖ_ＨおよびＣ_Ｈ１ドメインから成るＦｄ
断片、（ｖ）抗体の単一アームのＶ_ＬおよびＶ_Ｈドメインから成るＦｖ断片、（ｖｉ）Ｖ
_Ｈドメインから成る、ｄＡｂ断片（Wardら(1989) Nature 341:544-546）（ｖｉｉ）単離
された相補性決定領域（ＣＤＲ）、および（ｖｉｉｉ）単一の可変ドメインおよび２つの
定常ドメインを含む重鎖可変領域である、ナノボディ（単一ドメイン抗体（ｓｄＡｂ）と
しても知られている）を含む。単一ドメイン抗体は、Ｖ_ＨＨ断片（ラクダ科動物で見つけ
られた重鎖抗体から設計された単一ドメイン抗体、および、軟骨性魚類のＶ_ＮＡＲ断片（
重鎖抗体から得られた単一ドメイン抗体（ＩｇＮＡＲ「免疫グロブリン新しい抗原受容体
」））を含む。

更に、Ｆｖ断片の２つのドメイン、Ｖ_ＬおよびＶ_Ｈは、別々の遺伝子によってコードさ
れているが、それらが一価分子を形成するためにＶ_ＬおよびＶ_Ｈ領域がペアになる単一タ
ンパク質鎖として作られることを可能にする、合成リンカーによって組換え法を用いて、
それらを連結することができる（単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）として知られている；Birdら (19
88) Science 242:423-426; およびHustonら(1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:5879
-5883を参照）。そのような単鎖抗体はまた、抗体の、用語「抗原結合断片」内に包含さ
れることが意図されている。これらの抗体断片は、当業者に公知の従来技術を用いて得ら
れ、断片は、完全な抗体である場合と同様の方法で、有用性についてスクリーニングされ
る。別のポリペプチドまたは分子に融合した、抗原結合ドメインまたは同等のものを含む
キメラ分子（または融合分子）もまた、本発明に包含される。

本発明の洗浄溶液は、アルギニンまたはアルギニン誘導体を含む。本発明で使用するこ
とができるアルギニンは、天然アミノ酸アルギニン（例えば、Ｌ−アルギニン）、Ｄ−ア
ルギニンまたはアルギニン誘導体であり得る。本明細書で使用する用語「アルギニン誘導
体」は、ＤまたはＬ−形態のいずれかであるアミノ酸アルギニンから、双性イオン性、両
性イオン性、または双極特性のアルギニン（例えば、樹脂骨格、プロテインＡリガンドま
たは結合した標的タンパク質に結合した不純物間の、非特異的な相互作用を壊し得る）の
いずれかを保持する、化学的または物理的プロセスにより誘導された分子を指す。

アルギニン誘導体の非限定的な例は、アセチルアルギニンおよびＮ−α−ブチロイルア
ルギニン等のアシル化アルギニン、アグマチン、アルギン酸およびＮ−α−ピバロイルア
ルギニンを含む。アルギニンまたはアルギニン誘導体を、酸付加塩の形態で使用すること
ができる。酸付加塩を形成することができる酸の例は、塩酸等を含む。他の誘導体は、３
−グアニジノプロピオン酸、４−グアニジノ酪酸、Ｌ−２−アミノ−３−グアニジノプロ
ピオン酸塩酸塩、Ｌ−２−アミノ−３−グアニジノプロピオン酸塩酸塩、Ｎ_ωニトロ−Ｌ
−アルギニンベンジルエステルｐ−トルエンスルホン酸塩およびホモアルギニンを含むが
それらに限定されない。

洗浄溶液中のアルギニンまたはアルギニン誘導体の濃度は、典型的に、０．０５から０
．８５Ｍの間（これは、２０℃の水中におけるアルギニンの溶解度の上限である）（例え
ば、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．１５Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．３５Ｍ
、０．４Ｍ、０．４５Ｍ、０．５Ｍ、０．５５Ｍ、０．６Ｍ、０．６５Ｍ、０．７Ｍ、０
．７５Ｍ、０．８Ｍまたは０．８５Ｍ）であり、最も好ましくは０．１から０．５Ｍの間
（例えば、０．１Ｍ、０．１５Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０．３Ｍ、０．３５Ｍ、０．
４Ｍ、０．４５Ｍまたは０．５Ｍ）である。様々な実施形態において、アルギニンまたは
アルギニン誘導体の濃度は、例えば、０．０５Ｍ、０．１Ｍ、０．２Ｍ、０．２５Ｍ、０
．３Ｍ、０．４Ｍ、０．５Ｍ、０．６Ｍ、０．７Ｍもしくは０．８Ｍ、または０．１Ｍか
ら０．５Ｍの間であり得る。特定の実施形態において、洗浄溶液中のアルギニンまたはア
ルギニン誘導体の濃度は、０．２５Ｍ以上である。特定の実施形態において、アルギニン
は、０．１Ｍもしくは約０．１Ｍ、０．２５Ｍもしくは約０．２５Ｍ、または０．５Ｍも
しくは約０．５Ｍの濃度で存在する。

本発明は、本明細書において、アフィニティクロマトグラフィーの間の洗浄工程につい
て記載されているが、アフィニティクロマトグラフィーマトリックスから目的のタンパク
質の精製を達成するために、洗浄工程の前および後の両方で、追加の工程が行われること
が、当業者に容易に理解されるであろう。例えば、洗浄および／または溶出工程の前に、
本発明の方法は、アフィニティクロマトグラフィーマトリックスを平衡化する平衡化工程
、および／または、目的のタンパク質を含有する生化学的混合物（例えば、細胞採取物）
を、ＡＣマトリックスへ適用する、添加または捕捉工程を含むことができる。

適切な平衡化緩衝液は、一般的に、沈殿を防止するために、添加液（約７．０＋／−０
．５）と一致するように、ほぼ中性のｐＨを有する。通常、塩（ＮａＣｌ）を含む必要は
ないが、緩衝するのに十分高い濃度（＞約２０ｍＭ）で、緩衝物質（このｐＨ範囲につい
てのリン酸塩）を有する必要がある。平衡化緩衝のための適切な条件は、ＡＣマトリック
スおよび精製される目的のタンパク質の性質によって異なり、当業者は、当該技術分野で
よく確立されている方法および情報を用いて、そのような条件を容易に決定することがで
きる。プロテインＡカラムを用いた、抗体の精製のための平衡化緩衝液の非限定的な例を
、実施例に示す。

更に、本発明の方法は、上述の洗浄工程の後に、マトリックスから目的のタンパク質を
溶出するために、溶出緩衝液をアフィニティクロマトグラフィーマトリックスへ適用する
、溶出工程を含むことができる。溶出緩衝液についての適切な条件は、ＡＣマトリックス
の性質および精製される目的のタンパク質により変化し、当業者は、当該技術分野でよく
確立されている方法および情報を用いて、そのような条件を容易に決定することができる
。典型的に、ＡＣマトリックスからの目的のタンパク質の溶出は、酸性ｐＨで行われる。
プロテインＡカラムを用いた抗体の精製のための溶出緩衝液の非限定的な例を、実施例に
示す。

別の態様において、本発明は、抗体または他のＦｃ含有タンパク質のプロテインＡ精製
の間に、抗体含有混合物から不純物を除去するための方法を提供する。したがって、本発
明は、プロテインＡカラムを用いた、精製された抗体、抗体断片、またはＦｃ領域を含む
タンパク質を生成する方法を提供し、この方法は、
（ａ）抗体、抗体断片またはタンパク質を含む混合物を、プロテインＡカラム上に添加
することと、
（ｂ）８．０より高いｐＨ（例えば、８．１より高いｐＨ、好ましくは８．５より高い
ｐＨ、より好ましくは約８．５〜９．５または約８．９〜９．０の間）のアルギニンまた
はアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用いて、プロテインＡカラムを洗浄することと、
（ｃ）プロテインＡカラムから、抗体、抗体断片、またはタンパク質を溶出することと
を含み、洗浄は、非緩衝塩の存在なしで行われる。必要に応じて、その方法は、プロテイ
ンＡカラムから抗体、または抗体断片を溶出する前に、平衡化緩衝液を用いて、プロテイ
ンＡカラムを洗浄することを更に含む。必要に応じて、その方法は、目的のタンパク質を
添加する前および／または目的のタンパク質を溶出する前に、プロテインＡカラムを平衡
化することを更に含む。

アルギニン（およびアルギニン誘導体）の好ましい濃度および濃度範囲は、上述の通り
である。例えば、一実施形態において、アルギニンは、約０．２５Ｍの濃度で、または０
．２５Ｍの濃度で存在する。別の実施形態において、アルギニンは、０．１〜０．５Ｍの
範囲の濃度で存在する。好ましいｐＨおよびｐＨ範囲はまた、上述の通りである。例えば
、ｐＨは、８．０より高いｐＨ（例えば、好ましくは、８．１より高いｐＨ、より好まし
くは８．５より高いｐＨ、例えば、約８．５〜９．５または約８．９〜９．０の間）であ
る。

本発明は、更に、以下の実施例によって例示され、これは更に限定すると解釈されるべ
きではない。特に、実施例は、本発明の好ましい実施形態に関する。本出願を通して引用
された全ての参考文献、特許および公開特許出願の内容は、その全体が参照により本明細
書に明白に組み込まれる。

実施例１：高いｐＨのみでは、生成物の純度を向上させない
本実施例において、アフィニティクロマトグラフィーの間の抗体含有溶液からの不純物
の除去に対するｐＨ単独の影響を評価する。具体的には、２つの洗浄溶液を比較する：１
つは、ｐＨ７．０で１ＭのＮａＣｌを含有し、１つはｐＨ９．０で１ＭのＮａＣｌを含有
する。

０．２から３．０ｇ／Ｌの間のモノクローナル抗体＃１を含有する、清澄化した哺乳動
物細胞培養上清を、デプス濾過（ｄｅｐｔｈ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）により採取し、以
下の表１に記載された条件に従って、ＡＬＣカラム、特にプロテインＡカラム（ＧＥ Ｈ
ｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて精製する。

表1：実施例1についてのプロテインAカラムのための操作条件

平衡化したカラムに清澄化採取物を添加し、最初に、以下の表２に記載するように、Ｗ
１−Ｎ７（ｐＨ７．０で１Ｍ ＮａＣｌ）またはＷ２−Ｎ９（ｐＨ９．０で１Ｍ ＮａＣ
ｌ）のいずれかを用いて洗浄する。

表2：試験した洗浄溶液のリスト

次に、カラムを表１に記載した平衡化緩衝液（即ち、２０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４／Ｎａ_２
ＨＰＯ_４、ｐＨ７．０）で洗浄し、次に、低いｐＨで溶出する。溶出液を、分析ＡＬＣに
よりその抗体濃度について分析し、分析サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）により
ＨＭＷ／ＬＭＷについて分析し、同じ細胞系で実施した酵素結合免疫吸着アッセイにより
ＨＣＰ含有量について分析する。

表２に示した２つの異なる洗浄溶液を用いたモノクローナル抗体＃１のプロテインＡ精
製についての収率百分率を以下の表３に示す。

表3：低いpHおよび高いpHのALC性能への影響の比較

表３に示すように、ｐＨを中性（ｐＨ７．０）から塩基性（ｐＨ９．０）まで変えるこ
とは、収率、溶出液プール濃度、ＨＭＷもしくはＬＭＷ種レベルまたはＨＣＰ濃度に対す
る影響は有していない。したがって、これらの結果は、高いｐＨのみでは、生成物の純度
の向上をもたらさないことを実証している。しかしながら、以下の実施例で実証したよう
に、アルギニンと組み合わせた高いｐＨは、生成物の純度に有意な効果を有している。

実施例２：アルギニン（高いｐＨと組み合わせて）は、極めて重要な添加剤である
この実施例において、アフィニティクロマトグラフィーの間に、どの洗浄およびｐＨが
、抗体含有溶液から不純物を除去するのに最も効果的であるかを決定するために、様々な
洗浄能力を比較する。具体的には、４つの洗浄溶液を比較する：１つは、ｐＨ７．０で１
ＭのＮａＣｌを含有、１つはｐＨ７．０で２５０ｍＭのアルギニンを含有、１つはｐＨ８
．９で２５０ｍＭのアルギニンを含有、１つはｐＨ８．９で５００ｍＭのトリスを含有す
る。トリスは、トリス単独で不純物の除去に影響を有するかどうかを判断するために含め
る。

０．２から２．５ｇ／Ｌの間のモノクローナル抗体＃３を含有する、清澄化した哺乳動
物細胞培養上清を、デプス濾過により採取し、以下の表４に記載された条件に従って、Ａ
ＬＣカラム、特にプロテインＡカラム（ＧＥ Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて精製する
。

表4：実施例2についてのプロテインAカラムのための操作条件

平衡化したカラムに清澄化した採取物を添加し、最初に、以下の表５に記載するように
、Ｗ１−Ｎ７、Ｗ３−Ａｒｇ７、Ｗ４−Ａｒｇ９またはＷ５−Ｔ９のいずれかを用いて洗
浄する。

表5：試験した洗浄溶液のリスト

カラムを次に、表４に記載した平衡化緩衝液（即ち、２０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４／Ｎａ_２
ＨＰＯ_４、ｐＨ７．０）で洗浄し、次に、低いｐＨで溶出する。溶出液を、分析ＡＬＣに
よりその抗体濃度について分析し、分析サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）により
ＨＭＷ／ＬＭＷについて分析し、同じ細胞系で実施した酵素結合免疫吸着アッセイにより
ＨＣＰ含有量について分析する。

表５に示された４つの異なる洗浄溶液を用いた、モノクローナル抗体＃３のプロテイン
Ａ精製についての収率百分率を、以下の表６に示す。

表6：異なるpH値でのアルギニンベース緩衝液、およびトリスベースの緩衝液に対する
、NaCl含有ALC洗浄緩衝液の比較

表６に示すように、アルギニンベースの緩衝液は、高塩ベースの洗浄より、ＨＭＷ、Ｌ
ＭＷおよびＨＣＰを除去するのに、より効率的であることが明らかである。更に、この効
果は、高ｐＨ条件で増幅される。具体的には、８．９の高いｐＨでアルギニン含有洗浄緩
衝液（Ｗ４−Ａｒｇ９）を使用すると、７．０のｐＨでのアルギニン含有洗浄緩衝液（Ｗ
３−Ａｒｇ７）と比較して、非緩衝塩の存在なしに、ＨＣＰの３倍の減少率、ＬＭＷレベ
ルの４倍の減少率、および２．３％から１．５％までの凝集レベルの減少をもたらす。同
等の収率にもかかわらず、より高いｐＨはまた、プール濃度を増加させる。

トリスは、アリギニン含有緩衝液のｐＨを調整するために使用され、８．９のｐＨを達
成するために約３００ｍＭに近いトリスが必要とされるため、高いｐＨで５００ｍＭのト
リスを含有する洗浄（即ち、Ｗ５−Ｔ９）を含める。しかしながら、表６に示すように、
Ｗ５−Ｔ９は、ＨＭＷまたはＬＭＷの除去には影響しない。実際に、ＨＣＰレベルは、Ｗ
５−Ｔ９については、ＮａＣｌ含有洗浄についてより更に高い。この洗浄は、トリスにつ
いての最良の場合の条件で行われる（例えば、他の緩衝液で使用される最高濃度に比べて
、トリスの濃度は約２倍であり、洗浄時間も２倍であることを意味する）ことを考えると
、その結果は、トリス単独では洗浄効果を有さないことを示唆している。更に、高いｐＨ
のみでは、所望の不純物除去をもたらさないことは明らかである。

実施例３：高いｐＨと組み合わせたアルギニン洗浄は、有意に不純物を減少する
本実施例において、３つのモノクローナル抗体の純度への３つの異なる洗浄緩衝液条件
の影響を評価する。具体的には、３つの洗浄溶液を比較する：（１）低いｐＨ（Ｗ６−Ａ
ｃｅ５）、（２）高い塩（Ｗ１−Ｎ７）、（３）および高いｐＨでのアルギニン（Ｗ７−
Ａｒｇ９）。

３つのモノクローナル抗体（＃１、＃２、および＃４）を、デプス濾過により採取し、
以下の表７に記載された条件に従って、ＡＬＣカラム、特にプロテインＡカラム（ＧＥ
Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）を用いて精製した。

表7：実施例4についてのプロテインAカラムのための操作条件

平衡化したカラムに、清澄化した採取物を添加し、最初に、以下の表８に記載するよう
に洗浄する。

表8：試験した洗浄溶液のリスト

カラムを次に、表７に記載した平衡化緩衝液（即ち、２０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４／Ｎａ_２
ＨＰＯ_４、ｐＨ７．０）で洗浄し、次に、低いｐＨで溶出する。溶出液を、分析ＡＬＣに
よりその抗体濃度について分析し、分析サイズ排除クロマトグラフィー（ＳＥＣ）により
ＨＭＷ／ＬＭＷについて分析し、同じ細胞系で実施した酵素結合免疫吸着アッセイにより
ＨＣＰ含有量について分析する。

表９は、抗体収率、溶出液プール濃度、ＨＣＰレベルおよびＨＭＷレベルにより評価し
た、異なるＡＬＣ洗浄緩衝液条件の、溶出液中の３つのモノクローナル抗体の純度への影
響をまとめる。

表9：3つのモノクローナル抗体(#1、#2、および#4)についての、低いpH(W6-Ace5)、高
い塩(W1-N7)または高いpHでのアルギニン(W7-Arg9)を用いた洗浄後の、ALC性能の比較の
まとめ

表９において上で示すように、低いｐＨでの洗浄（Ｗ６−Ａｃｅ５）は、８４．５％か
ら９４．８％の間（平均：９０．７％）の収率をもたらし、高い塩での洗浄（Ｗ１−Ｎ７
）は、９８．７％の平均収率（９７．６％から１００％の間）をもたらす。高いｐＨでの
アルギニンを用いた洗浄（Ｗ７−Ａｒｇ９）は、平均収率９７．２％（９４．１％から９
８．８％の間）で、３つの洗浄の中で最高の収率をもたらす。

溶出液濃度は、異なる抗体を用いたＡＬＣの間に適用された異なる洗浄緩衝液を比較し
た場合、明確な傾向を示していない。全体的には、同等の範囲が見出され、どちらの洗浄
も一貫して、最低または最高の濃度をもたらしていない。

不純物除去に関して、一般的な順序は、３つの洗浄緩衝液の間で確立することができる
。最低のＨＣＰ減少は、低いｐＨ洗浄（Ｗ６−Ａｃｅ５）を用いて、次に、高い塩洗浄（
Ｗ１−Ｎ７）を用いて、一貫して得られる。最高の不純物除去は、高いｐＨ９．０でのア
ルギニンを用いた洗浄（Ｗ７−Ａｒｇ９）により得られる。具体的には、除去の対数オー
ダーの観点から、１．３ログの平均値は、低いｐＨの洗浄（Ｗ６−Ａｃｅ５）を用いた洗
浄の後に得られ、１．６ログは高塩洗浄（Ｗ１−Ｎ７）を用いて洗浄した後に得られ、１
．９ログの最高除去は、高いｐＨ９．０でのアルギニン洗浄（Ｗ７−Ａｒｇ９）を用いて
洗浄した後に達成される。

ＨＭＷレベルについて、これらのレベルは、３つの異なるモノクローナル抗体について
不均一であり、ＨＭＷの除去は、モノクローナル抗体依存である。全体的に、低ｐＨ洗浄
（Ｗ６−Ａｃｅ５）は、ＨＭＷレベルの減少において、最も有効でない洗浄溶液である。
比較的良い結果が、高塩洗浄（Ｗ１−Ｎ７）により得られる。しかしながら、ＡＬＣ溶出
液の最低ＨＭＷ値は、一貫してアルギニンを用いた高ｐＨ９．０洗浄（Ｗ７−Ａｒｇ９）
について見出される。２つのモノクローナル抗体は、それぞれ、高ｐＨ９．０洗浄（Ｗ７
−Ａｒｇ９）と比較して、低ｐＨ洗浄（Ｗ６−Ａｃｅ５）から、ＨＭＷの３．１倍または
３．９倍の減少率に応答するのに対し、モノクローナル抗体＃２のみは、限界の減少を示
す。

要約すると、この実施例は、アルギニンと高いｐＨの新しい組合せが、収率、プール濃
度、ＨＣＰプール含有量およびＨＭＷプールレベルにより測定されるように、標準的な洗
浄緩衝液と比較して、顕著に抗体純度および濃度を改善することを示している。アルギニ
ンと高いｐＨの特定の組合せを用いた洗浄は、同時に生成物の損失を最小限に抑えながら
、高い生成物純度および高い溶出液濃度をもたらす。更に、ＨＣＰおよびＨＭＷレベルの
低下は、後続の下流の処理工程の負担を軽減し、品質および収益性の観点から、全体的な
プロセスのパフォーマンスを向上させる。更に、ＨＣＰまたはＨＭＷ種等の任意の汚染物
質が、更に生成物凝集の核としての役割を果たし得るため、捕捉工程中のそれらの減少は
、不純物に関連する凝集のプロセスを遅くする。

Claims (16)

1. 目的のタンパク質が結合するアフィニティクロマトグラフィー（ＡＣ）マトリックスを
   使用して、精製した目的のタンパク質を生成する方法であって、８．０より高いｐＨのア
   ルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用いて、ＡＣマトリックスを洗浄する
   ことを含み、洗浄を非緩衝塩の存在なしで行う、方法。
2. ａ）目的のタンパク質を含む混合物をＡＣマトリックスへ添加することと、
   ｂ）８．０より高いｐＨのアルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用いて
   、ＡＣマトリックスを洗浄することと、
   ｃ）ＡＣマトリックスから目的のタンパク質を溶出することと
   を含み、洗浄を非緩衝塩の存在なしで行う、請求項１に記載の方法。
3. 目的のタンパク質が、抗体、抗体断片、またはＦｃ融合タンパク質である、請求項１ま
   たは２に記載の方法。
4. ＡＣマトリックスがプロテインＡカラムである、請求項３に記載の方法。
5. プロテインＡカラムを用いて、精製した抗体、抗体断片、またはＦｃ融合タンパク質を
   生成する方法であって、
   ａ．抗体、抗体断片、またはＦｃ融合タンパク質を含む混合物をプロテインＡカラム
   上に添加することと、
   ｂ．８．０より高いｐＨのアルギニンまたはアルギニン誘導体を含む洗浄溶液を用い
   て、プロテインＡカラムを洗浄することと、
   ｃ．プロテインＡカラムから、抗体、抗体断片、またはＦｃ融合タンパク質を溶出す
   ることと
   を含み、洗浄を非緩衝塩の存在なしで行う、方法。
6. プロテインＡカラムに抗体、抗体断片、またはＦｃ融合タンパク質を添加する前、およ
   び／または、プロテインＡカラムから抗体、抗体断片、またはＦｃ融合タンパク質を溶出
   する前に、平衡緩衝液を用いて、プロテインＡカラムを平衡化することを更に含む、請求
   項５に記載の方法。
7. ｐＨが８．５より高い、請求項１から６のいずれか一項に記載の方法。
8. ｐＨが約８．５〜９．５である、請求項１から６のいずれか一項に記載の方法。
9. ｐＨが約８．９〜９．０である、請求項１から６のいずれか一項に記載の方法。
10. ｐＨが９．０または約９．０である、請求項１から６のいずれか一項に記載の方法。
11. アルギニン誘導体が、アセチルアルギニン、アグマチン、アルギン酸、Ｎ−α−ブチロ
    イル−Ｌ−アルギミン、およびＮ−α−ピバロイルアルギミンから成る群から選択される
    、請求項１から１０のいずれか一項に記載の方法。
12. アルギニンが、０．１〜０．５Ｍの範囲の濃度で存在する、請求項１から６のいずれか
    一項に記載の方法。
13. アルギニンが、または約０．２５Ｍの濃度で存在する、請求項１２に記載の方法。
14. 洗浄溶液が、アルギニン−ＨＣｌを含む、請求項１から１３のいずれか一項に記載の方
    法。
15. 洗浄溶液が、高分子量（ＨＭＷ）種、宿主細胞タンパク質（ＨＣＰ）、および低分子量
    （ＬＭＷ）種から成る群から選択される不純物を除去する、請求項１から１４のいずれか
    一項に記載の方法。
16. 洗浄溶液が、１つまたは複数の緩衝塩を含む、請求項１から１５のいずれか一項に記載
    の方法。