JP2016019543A - 幹細胞の分化のための方法および組成物 - Google Patents

Abstract

【課題】幹細胞の分化のための方法および組成物を提供すること。【解決手段】ヒト多能性幹細胞をＣＤ３４＋前駆細胞に分化させる方法であって：ａ）フィーダー細胞を含まないか、またはフィーダー細胞を本質的に含まず、マトリックス成分、ならびにＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む培養培地で多能性幹細胞を培養する工程；およびｂ）前記細胞を５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で前記ＣＤ３４＋前駆細胞を得るための期間分化させる工程を含む方法が提供される。【選択図】なし

Description

（発明の背景）
本出願は、２００９年２月２０日に出願された米国仮特許出願番号６１／１５４，２１０に対する優先権を主張し、上記米国仮特許出願は、参照によって本明細書に援用される。

（発明の分野）
本発明は全般的に分子生物学および医学の分野に関する。より詳細には、本明細書は、胚性幹細胞から造血前駆細胞および内皮前駆細胞などの前駆細胞を作製するための方法および組成物に関する。本発明はさらに、前駆細胞を作製するためのキット、および多能性幹細胞の分化を促進する物質をスクリーニングする方法に関する。

（関連技術の説明）
ヒト胚性幹細胞は、インビトロで無限に培養増殖することができるため、少なくとも原理的には、問題または障害のあるヒト組織に代わる細胞および組織を供給することができる。造血幹細胞および前駆細胞は医療において大きな可能性があることから、胚性幹細胞からの造血前駆細胞の分化の方法を改良しようとする多くの研究がなされてきた。ヒト成人の場合、造血幹細胞の少数は主に骨髄に存在し、活発に分裂する造血前駆細胞（ＣＤ３４＋）の不均一な集団を形成しており、これが血液系のすべての細胞に分化する。ＣＤ３４は他の細胞型、特に内皮細胞（血管）にも発現するため、ＣＤ３４＋マーカーは造血細胞の十分なマーカーとは言えない。このため、造血前駆細胞を同定しやすくするため、ＣＤ４３マーカーなど他のマーカーも使用してもよい（たとえば、非特許文献１；非特許文献２）。成人ヒトの造血前駆体は増殖および分化して１日に数千億個の成熟血液細胞を産生する。造血前駆細胞は臍帯血にも存在する。

胚性幹細胞からは、造血細胞だけでなく内皮前駆細胞、さらに最終的に内皮細胞を分化させることも有用である。内皮細胞は血管の管壁を構成する細胞であり、体内の様々なプロセスにとって重要である。たとえば、内皮細胞は血管形成、血圧の制御、血液凝固、炎症および濾過に役割を果たしている。内皮細胞は不均一な細胞群であり、血管径、個々の臓器に対する特異性、および形態に依存して様々な特徴を持つ場合がある。内皮細胞のいくつかの特徴として、ＣＤ３１、ＣＤ１０５（エンドグリン）およびＷｉｌｌｅｂｒａｎｄ因子（第ＶＩＩＩ因子とも呼ばれる）の発現のほか、アセチル化低密度リポタンパク質（ａｃ−ＬＤＬ）の取り込み能が挙げられる。

多能性幹細胞（ＰＳＣ：ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）の分化を促進するこれまでの方法は、胚様体を形成したり（たとえば、非特許文献３）、あるいはマウス胎仔線維芽細胞などのマウスフィーダー細胞を使用したり（たとえば、非特許文献４）する必要があった。残念ながら、これらのアプローチには、臨床的可能性を制限し得るいくつかの問題がある。

分化を誘導するために「胚様体」（ＥＢ：ｅｍｂｒｙｏｉｄ ｂｏｄｙ）、すなわち増殖細胞のクラスターを形成するには、一般にインビトロでヒト多能性幹細胞をＥＢへと凝集させ、ヒト多能性幹細胞を自発的かつ不規則に内胚葉起源、外胚葉起源および中胚葉起源を示す複数の組織型に分化させる。これらの三次元ＥＢは、造血細胞および内皮細胞の生成に使用し得る前駆細胞の一部を含む。残念ながら、ＥＢを形成する方法は、多くの場合、非効率的かつ面倒なもので、ＥＢの形成および分離に関する複数のステップが複雑であるため、自動化の利用をより困難なものにし得る。たとえば、ＥＢの形成プロセスは造血前駆細胞のコロニー全体を必要とするのが通常であり、非効率的である。さらに、ＥＢを利用するには、自動化または大規模な自動化に大きな問題がある胚様体の分離など複雑な方法が必要とされる。

マウス線維芽細胞などのフィーダー細胞株を使用してヒト多能性細胞を培養することは、以前の共培養における種間の接触に関連する、予想外の変換が起こるリスクがある。ヒト多能性幹細胞培養の目的の１つは最終的に人体に移植できる組織を作製することにあるため、幹細胞は、別の種の細胞、または別の種の細胞の培養に使用した培地と接触しないことが非常に望ましい。したがって、ヒト多能性幹細胞からヒト造血前駆細胞または内皮前駆細胞を作製する技法の継続的な開発に際しては、いかなる共培養ステップも使用せずにヒト多能性幹細胞を造血細胞系統または内皮細胞系統へと分化できる培養条件を明らかにすることに大きな関心が向けられている。

また、分化培地における血清の使用もいくつかの欠点および問題となる可能性がある。たとえば、非特許文献３で使用されたように、血清は、増殖細胞への栄養素の供給に使用できる動物生成物である。しかしながら、様々なバッチにおける個々の血清の組成ははっきりとしたものではなく、これはある血清のバッチに、同型の血清の異なるバッチと比較して異なる増殖因子、または異なる濃度の増殖因子が含まれ得ることを意味する。こうした不確実性は、同一条件下で行われた実験で作製された造血細胞の収率のばらつきを助長する恐れがある。加えて、血清の使用により臨床開発において大きな規制上の問題が発生し、商品化を一層困難にする可能性もある。

Ｋａｄａｊａ−Ｓａａｒｅｐｕｕ ｅｔ ａｌ． Ｏｎｃｏｇｅｎｅ， ２００８， ２７（１２）：１７０５−１７１５ Ｖｏｄｙａｎｉｋ ｅｔ ａｌ．， Ｂｌｏｏｄ， ２００６， １０８（６）：２０９５−２１０５ Ｃｈａｄｗｉｃｋ ｅｔ ａｌ．．， Ｂｌｏｏｄ， ２００３， １０２（３）：９０６−９１５ Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ．， ２００７， ２５（３）：３１７−３１８

現在、多能性幹細胞を別の動物種由来の材料に接触させることも、あるいは胚様体を形成することもせずに、造血前駆細胞または内皮前駆細胞に分化させる効率的な方法が明確に求められている。さらに、規定された分化培地、および追加の分化ステップを可能にし、再現性のある結果を与え、血清またはフィーダー細胞を加える必要がない条件も求められている。

（発明の概要）
本発明は、間質フィーダー細胞を使用したり、または胚様体を形成したりせずに多能性幹細胞から造血細胞および内皮細胞を作製し、再現性よく分化する方法および組成物を提供することにより従来技術の限界を克服するものである。さらに、本発明の方法は、たとえば規定された分化培地および特定の大気条件を使用することにより多能性幹細胞の分化を改善する。本明細書で使用する場合、「規定された条件」、「規定された培地」および「規定された分化」という用語は、培地の全成分が既知量であり、かつ明らかでない成分、血清またはフィーダー細胞（たとえば、マウス胎仔線維芽細胞）を使用しない培養条件をいう。「明らかでない成分」とは、未知の構成要素を含むか、あるいは既知の構成要素を未知の量で含む成分である。規定された条件は、たとえば、分化させた細胞をヒト患者などの被験体に治療投与する場合がある用途で特に有用であり得る。「血清」という用語は、本明細書で使用する場合、増殖細胞に栄養素を与えるために培地に加えてもよいヒト以外の動物の生成物をいう。

いくつかの実施形態では、培地は非ヒト動物のタンパク質、非ヒト動物の核酸、あるいはそのどちらをも本質的に含まない。他の実施形態では、培地は非ヒト哺乳動物のタンパク質、非ヒト哺乳動物の核酸、あるいはそのどちらをも本質的に含まない。

ある種の実施形態では、本発明は、ヒト多能性幹細胞をＣＤ３４＋、ＣＤ３１＋またはＣＤ４３＋前駆細胞に分化させる方法を提供する。この方法は、フィーダー細胞を含まないか、あるいはフィーダー細胞を本質的に含まず、マトリックス成分、およびＢＭＰ−４、ＶＥＧＦまたはｂＦＧＦなどの少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む培地で多能性幹細胞を培養するか、あるいは分化させるステップを含んでもよい。多能性幹細胞は、約５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下でＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞を得るための期間分化させてもよい。

本明細書で使用する場合、「多能性細胞」または「多能性幹細胞」は、本質的にどのような胎児または成人細胞型にも分化する能力を持つ細胞である。多能性幹細胞の例示的な種類として、胚性幹細胞および誘導多能性幹細胞（すなわちｉＰＳ細胞）が挙げられるが、これに限定されるものではない。こうした多能性幹細胞は哺乳動物の多能性幹細胞であってもよい。ある種の実施形態では、多能性幹細胞はヒト多能性幹細胞である。

ある態様では、本発明は、多能性幹細胞を前駆細胞に分化させる方法および組成物を提供する。本明細書で使用する場合、「前駆細胞」とは、多能性幹細胞に由来し、細胞系統が決定された（lineage-committed）細胞をいう。したがって、前駆細胞は多能性幹細胞
より分化しているとはいえ、依然として２種以上の細胞に分化する能力を持つ。たとえば、造血前駆細胞は多能性幹細胞より分化しているが、造血前駆細胞はなお、たとえば赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ）、マクロファージ、顆粒球、巨核球、樹状細胞またはマスト細胞に分化する能力を持つ。本発明のいくつかの実施形態では、前駆細胞は造血前駆細胞である。他の実施形態では、前駆細胞は内皮前駆細胞である。なお他の実施形態では、前駆細胞は、造血細胞または内皮細胞に分化できる血液内皮(hematoendothelial)（また
は血管芽細胞）前駆細胞である。

本明細書に開示された方法のいくつかの実施形態は、特異的表面マーカーを発現する細胞に関する。たとえば、いくつかの方法は、ＣＤ３４を発現する前駆細胞などの細胞を対象とする。ＣＤ３４＋前駆細胞の例として、造血前駆細胞、内皮前駆細胞および血液内皮前駆細胞があるが、これに限定されるものではない。他の実施形態はＣＤ３１＋前駆細胞に関し、内皮前駆細胞および血液内皮前駆細胞を挙げることができるが、これに限定されるものではない。本発明のいくつかの態様は、ＣＤ４３＋細胞に関し、造血前駆細胞を挙げることができるが、これに限定されるものではない。

本発明のある種の実施形態は、少なくとも１種のマトリックス成分および少なくとも１種の組換え型増殖因子を含むが、フィーダー細胞を含まないか、あるいはフィーダー細胞を本質的に含まない分化培地で多能性幹細胞を増殖させることを含む、多能性幹細胞を前駆細胞に分化させる方法に関する。本発明の方法および組成物に有用なマトリックス成分として、フィブロネクチン、コラーゲンまたはＲＧＤペプチドを挙げることができるが、これに限定されるものではない。特定の実施形態では、培地は１種または複数種の組換え型増殖因子を含み、これは増殖因子を組換えＤＮＡ技術を使用して作製することを意味する。本発明の方法および組成物に有用な増殖因子として、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦまたはｂＦＧＦがあるが、これに限定されるものではない。本発明の培養培地は、２種以上の組換え型増殖因子を含んでもよい。ある種の実施形態では、培養培地は、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦを含む。

いくつかの態様では、本発明は、多能性幹細胞を分化させる方法であって、培養培地がフィーダー細胞を含まないか、あるいはフィーダー細胞を本質的に含まない方法を対象とする。他の態様では、本発明は、多能性幹細胞を分化させる方法であって、培養培地が血清を含まないか、あるいは血清を本質的に含まない方法を対象とする。本発明に有用な培養培地はフィーダー細胞を含まなくてもよいし、血清を含まなくてもよく、あるいは、特定の実施形態では、培養培地はフィーダー細胞および血清をどちらも含まない。本発明は、特定の態様では、明らかでない成分、非ヒト動物血清またはフィーダー細胞を含まないか、あるいは明らかでない成分、非ヒト動物血清またはフィーダー細胞を本質的に含まない規定された分化培地を提供する。血清またはフィーダー細胞を含まない培地とは、検出可能な血清またはフィーダー細胞を含まない培地である。血清を本質的に含まない培地は、血清を約１％未満、０．５％未満、０．１％未満、０．０５％未満、０．０１％未満、０．００１％未満または任意の中間の百分率で含む。フィーダー細胞を本質的に含まない培地は、フィーダー細胞を培養面１平方センチメートル当たり約５００個未満、２５０個未満、１００個未満、５０個未満、１０個未満、５個未満、１個未満または任意の中間の数で含む。

他の実施形態では、培養培地は、Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まなくても、またはＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まなくてもよい。Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭは、マウス腫瘍細胞が分泌する、明らかでないゼラチン状のタンパク質混合物で、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ，ＵＳＡ）から市販されている。Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭは、未知の構成要素および未知量の構成要素を含むため、明らかでない成分と見なされる。Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まない培地は、検出可能なＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まない。Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まない培地は、Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを約０．２ｍｇ／ｃｍ^２未満、０．１ｍｇ／ｃｍ^２未満、０．０５ｍｇ／ｃｍ^２未満、０．０１ｍｇ／ｃｍ^２未満、０．００５ｍｇ／ｃｍ^２未満、０．０００１ｍｇ／ｃｍ^２未満または任意の中間の濃度で含む。

血清またはフィーダー細胞またはＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まないか、または血清またはフィーダー細胞またはＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まない培養条件を得るには、単純にこうした成分を培地に加えないようにするだけでよい。さらに、血清またはフィーダー細胞を誤って加えることを避けるには、分化培地に添加する構成要素に血清、フィーダー細胞または明らかでない構成要素が含まれていないことを確認すればよい。あるいは、目的のフィーダー細胞に特異的な抗体を使用して、分化培地が動物系のフィーダー細胞を含まないか、あるいは動物系のフィーダー細胞を本質的に含まないようにしてもよい。たとえば、分化培地が、マウス系のフィーダー細胞であるマウス胎仔線維芽細胞を含まないか、またはマウス胎仔線維芽細胞を実質的に含まないようにするには、マウスＣＤ２９に対する抗体を使用してもよい。規定された培養培地では、フィーダー細胞、血清または明らかでない成分を培地に加えない。

本発明は、ある態様では、前駆細胞を得るのに十分な時間、約５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で多能性幹細胞の分化を行う。こうした実施形態では、低酸素雰囲気は、酸素ガスを約０．５％〜約５．３％含んでもよい。いくつかの実施形態では、低酸素雰囲気は酸素ガスを約１．５％〜約５．３％含んでもよく、低酸素雰囲気は、約５％酸素ガスを含んでもよい。特定の実施形態では、低酸素雰囲気は、約５％酸素ガス、約５％二酸化炭素ガスおよび約９０％窒素ガスを含む。種々の実施形態では、２つ以上の分化ステップを含むか、および／または２種以上の培地を使用する。そうした実施形態では、こうした１つまたは複数のステップは、低酸素雰囲気条件を含んでもよい。

いくつかの実施形態では、本方法は、前駆細胞を収集するステップを含む。特定の実施形態では、前駆細胞を培養から４日から１６日後に収集する。たとえば、造血前駆細胞は、培養から８日から１２日後に収集しても、または培養から６日から９日後に収集してもよい。内皮前駆細胞は、たとえば培養から６日から１４日後に収集してもよい。

本発明の方法では、分化培地は、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦまたはｂＦＧＦを約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬ含んでもよい。他の実施形態では、分化培地は、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦまたはｂＦＧＦを約２５ｎｇ／ｍＬ〜約７５ｎｇ／ｍＬ含んでもよい。特定の実施形態では、分化培地は、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦまたはｂＦＧＦを約５０ｎｇ／ｍＬ含んでもよい。他の特定の実施形態では、培養培地は、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦを約５０ｎｇ／ｍＬを含む。

本発明に有用な分化培地は、１種または複数種のアミノ酸、抗生物質、ビタミン、塩、ミネラルまたは脂質をさらに含んでもよい。いくつかの実施形態では、培地は、以下の１種または複数種を含む：ＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、モノチオグリセロール、ペニシリンまたはストレプトマイシン。また、培地が上述の成分をすべて含み得ることも意図しており、さらに培地は上述の成分の１種または複数種を含む一方、上述の成分の１種または複数種を特に除外してもよいことも意図している。特定の実施形態では、培養培地は、約２０％ＢＩＴ９５００、約５０ｎｇ／ｍＬのＢＭＰ４、約５０ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦ、約５０ｎｇ／ｍＬのｂＦＧＦ、約２ｍＭのＬ−グルタミン、約０．１ｍＭの非必須アミノ酸、約４５０μＭのモノチオグリセロール、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含む。培養培地は、ＴｅＳＲ１、ＴｅＳＲ２またはｍＴｅＳＲなどのＴｅＳＲ培地を含んでもよく、すなわち培地は、ＴｅＳＲ培地中に存在する１種または複数種の成分を含んでもよい。

本発明に有用な分化培地は、生存因子を含んでもよい。生存因子は、たとえば、ＨＡ１００またはＨ１１５２などのＲｈｏ関連キナーゼ（ＲＯＣＫ：Ｒｈｏ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｋｉｎａｓｅ）のインヒビターでも、またはブレビスタチンなどのミオシンＩＩのインヒビターでもよい。

いくつかの態様では、本発明の方法は、２つ以上の分化ステップを含む。こうした態様では、２つ以上の分化培地を使用してもよい。たとえば、第１の分化培地を使用して多能性幹細胞の前駆細胞への分化を惹起し、その後第２の分化培地を使用して前駆細胞を増殖および維持するか、あるいは前駆細胞をさらに分化させるステップを行ってもよい。

こうした第２の分化培地は以下の１種または複数種を含んでもよい：ＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、モノチオグリセロール、ペニシリン、ストレプトマイシン、Ｌ−グルタミン＋β−メルカプトエタノール（β−ＭＥ）、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３（ＦＬＴ−３）、幹細胞因子（ＳＣＦ：ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ ｆａｃｔｏｒ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ：ｔｈｒｏｍｂｏｐｏｉｅｔｉｎ）、インターロイキン３（ＩＬ（ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ）−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）またはヘパリン。いくつかの実施形態では、第２の分化培地は、ＢＩＴ９５００、非必須アミノ酸、Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、ＦＬＴ−３、ＳＣＦ、ＴＰＯ、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびヘパリンを含む。しかし、第２の分化培地はこれらの成分の１種または複数種を含む一方、これらの成分の１種または複数種を特に除外してもよいことも意図している。いくつかの実施形態では、第２の分化培地は、以下の１種または複数種を含む：アミノ酸、抗生物質、ビタミン、塩、ミネラル、脂質、ＴｅＳＲ培地、またはＴｅＳＲ培地の１種または複数種の成分。いくつかの実施形態では、第２の分化培地は、約２０％ＢＩＴ９５００、約１％非必須アミノ酸、約１％Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、約２５ｎｇ／ｍＬのＦＬＴ−３、約２５ｎｇ／ｍＬのＳＣＦ、約２５ｎｇ／ｍＬのＴＰＯ、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−３、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−６および約５Ｕ／ｍＬのヘパリンを含んでもよい。こうした培地は、造血前駆細胞の維持または増殖に、あるいは造血前駆細胞をさらに分化させるのに有用である場合がある。特定の実施形態では、この第２の分化培地は造血前駆細胞を分化させるのに有用である。

複数の分化ステップまたは培地を使用する実施形態では、１つの分化ステップまたは分化培地を任意に特に除外してもよいことを意図している。さらに、本発明に有用な分化培地では、本発明の分化培地の構成要素となり得るものとして本明細書に開示された成分の１種または複数種を培地から特に除外してもよい。

いくつかの態様では、多能性幹細胞は、分化培地で培養する前に未分化状態で培養しても、または維持してもよい。たとえば、多能性幹細胞は、分化培地で培養する前にＴｅＳＲ培地で培養しても、または維持してもよい。ある種の実施形態では、未分化状態の幹細胞の維持に使用する培養培地は、ＴｅＳＲ培地およびＲＯＣＫのインヒビターを含む。他の実施形態では、未分化状態の幹細胞の維持に使用する培養培地は、ＴｅＳＲ培地およびミオシンＩＩのインヒビターを含む。ある態様では、未分化のステップで幹細胞の維持に使用する培養用培地は、コラーゲン、フィブロネクチンまたはＲＧＤペプチドなどのマトリックス成分を含む。

本明細書に開示された方法により作製される前駆細胞は、たとえば磁気活性化細胞ソーター（ＭＡＣＳ：ｍａｇｎｅｔｉｃ ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｅｒ）で精製しても、フローサイトメトリーで精製しても、または蛍光活性化細胞ソーティング（ＦＡＣＳ：ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ）で精製してもよい。特定の実施形態では、ＣＤ３４、ＣＤ４３、ＣＤ３１、ＣＤ１０５または第ＶＩＩＩ因子などの細胞マーカーの発現に基づき、前駆細胞を同定または精製する。たとえば造血前駆細胞または内皮前駆細胞は、ＣＤ３４マーカーの発現に基づき精製してもよく、いくつかの実施形態では、内皮前駆細胞は、ＣＤ３１マーカーの発現に基づき精製してもよい。ある種の実施形態では、造血前駆細胞をＣＤ３４マーカーおよびＣＤ４３マーカーの発現に基づき精製する。

本発明のいくつかの方法は、多能性幹細胞コロニーまたはクローン細胞群を分散させ、分散した本質的に個別の細胞を形成するステップ、および分散させた細胞を、生存因子を含んでいてもよい培地に播種するステップを含む。たとえば、細胞は、培養面１平方センチメートル当たり約１０，０００幹細胞から培養面１平方センチメートル当たり約７０，０００幹細胞の密度で播種してもよい。ある種の実施形態では、培養面１平方センチメートル当たり約１０，０００幹細胞から培養面１平方センチメートル当たり約５０，０００幹細胞の密度で、または培養面１平方センチメートル当たり約２０，０００幹細胞から培養面１平方センチメートル当たり約７０，０００幹細胞の密度で細胞を播種してもよい。ある種の実施形態では、細胞は機械的手段により分散させても、または酵素的手段により分散させてもよい。たとえば、細胞は、トリプシンもしくはｔｒｙｐＬＥまたはＡｃｃｕｔａｓｅ（登録商標）のような酵素の混合物など、有効量の１種または複数種の酵素で処理して分散させてもよい。

ある態様では、本発明の方法は、マトリックス成分および／または生存因子を含んでもよい培養用培地に多能性幹細胞を播種して培地を形成するステップ；フィーダー細胞を含まないか、あるいはフィーダー細胞を本質的に含まず、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む分化培地を培地に加えるステップ；約５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で前駆細胞を得るのに十分な時間、細胞を分化させるステップを含んでもよい。ある種の実施形態では、これらのステップの１つまたは複数を使用して、ＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞、ＣＤ４３＋前駆細胞またはＣＤ３４＋ＣＤ４３＋前駆細胞を作製すればよい。次いで前駆細胞は収集してもよく、さらに分取してもよい。この時点で、前駆細胞は維持しても、増殖させても、あるいはさらに分化させてもよい。たとえば、本発明は、ＣＤ３４＋前駆細胞を、たとえば赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓ）、マクロファージ、顆粒球、巨核球、樹状細胞、マスト細胞または内皮細胞にさらに分化させる方法を提供する。本発明はまた、ＣＤ３１＋前駆細胞を内皮細胞または間葉系細胞にさらに分化させる方法も提供する。

ある種の実施形態では、本発明は、ヒト多能性幹細胞を前駆細胞に分化させる方法であって、ロボットを使用して本方法の少なくとも一部を自動化することを含む、方法を提供する。たとえば、複数のヒト胚性幹細胞はバイオリアクターを使用して培養してもよい。

いくつかの態様では、本発明は、フィーダー細胞、血清またはその両方を含まなくても、またはフィーダー細胞、血清またはその両方を本質的に含まなくてもよい分化培地を提供する。いくつかの実施形態では、分化培地はＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まないか、あるいはＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まない。他の実施形態では、分化培地は、明らかでない成分（たとえば、Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭなど）、血清およびフィーダー細胞を含まないか、あるいは明らかでない成分（たとえば、Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭなど）、血清およびフィーダー細胞を本質的に含まない、規定された分化培地である。なお他の態様では、分化培地は非ヒト動物増殖因子を含まなくても、または非ヒト動物増殖因子を本質的に含まなくてもよい。分化培地は、ある種の実施形態では、非ヒト動物のタンパク質を含まなくても、または非ヒト動物のタンパク質を本質的に含まなくてもよい。特定の実施形態では、分化培地はフィーダー細胞、血清およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まない。

本発明の分化培地は、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦの１種または複数種を含んでもよい。本発明の分化培地は、ＢＭＰ−４を約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬ、または約５０ｎｇ／ｍＬの量で含んでもよい。分化培地は、ＶＥＧＦを約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬ、または約５０ｎｇ／ｍＬの量で含んでもよい。分化培地は、ｂＦＧＦを約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬ、または約５０ｎｇ／ｍＬの量で含んでもよい。ある種の実施形態では、分化培地は、１種または複数種のアミノ酸、抗生物質、ビタミン、塩、ミネラルまたは脂質を含む。他の実施形態では、分化培地は、フィブロネクチン、コラーゲンまたはＲＧＤペプチドなどのマトリックス成分を含む。分化培地はさらに、ＲＯＣＫのインヒビターまたはミオシンＩＩのインヒビターなどの生存因子を含んでもよい。

いくつかの実施形態では、本発明の分化培地は、ＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、モノチオグリセロール、ペニシリンまたはストレプトマイシンを含む。分化培地がこれらの成分をすべて含んでもよいし、あるいは分化培地がこれらの成分の１種または複数種を含む一方、特にこれらの成分の１つまたは複数を除外してもよいことを明確に意図している。一部の実施形態では、分化培地は約２０％ＢＩＴ９５００、約５０ｎｇ／ｍＬのＢＭＰ４、約５０ｎｇ／ｍＬのＶＥＧＦ、約５０ｎｇ／ｍＬのｂＦＧＦ、約２ｍＭのＬ−グルタミン、約０．１ｍＭの非必須アミノ酸、約４５０μＭのモノチオグリセロール、約１００Ｉ．Ｕ．のペニシリンおよび約０．１ｍｇのストレプトマイシンを含んでもよい。分化培地は、塩、ミネラル、脂質、アミノ酸、ビタミン、またはＴｅＳＲ１培地、ＴｅＳＲ２培地もしくはｍＴｅＳＲ１培地の他の構成要素の１種または複数種をさらに含んでもよい。

ある態様では、本発明の分化培地は、以下の１種または複数種を含む：β−メルカプトエタノール（β−ＭＥ）、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３（ＦＬＴ−３）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）またはヘパリン。いくつかの態様では、分化培地は、ＢＩＴ９５００、非必須アミノ酸、Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、ＦＬＴ−３、ＳＣＦ、ＴＰＯ、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびヘパリンの１種または複数種を含む。他の実施形態では、分化培地は、ＢＩＴ９５００、非必須アミノ酸、Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、ＦＬＴ−３、ＳＣＦ、ＴＰＯ、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびヘパリンを含んでもよい。しかしながら、分化培地はこれらの成分の１種または複数種を含む一方、特にこれらの成分の１種または複数種を除外してもよいことを明確に意図している。ある種の実施形態では、分化培地は、約２０％ＢＩＴ９５００、約１％非必須アミノ酸、約１％Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、約２５ｎｇ／ｍＬのＦＬＴ−３、約２５ｎｇ／ｍＬのＳＣＦ、約２５ｎｇ／ｍＬのＴＰＯ、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−３、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−６および約５Ｕ／ｍＬのヘパリンを含む。

いくつかの実施形態では、本発明は、ヒト多能性幹細胞をＣＤ３１＋前駆細胞、ＣＤ３４＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞に分化させる方法に関する。こうした方法に使用する培養培地は、マトリックス成分、ならびにＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含んでもよい。培地は、非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まなくても、または非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まなくてもよい。ある種の実施形態では、培地は非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まなくてもよい。特定の実施形態では、培地は、非ヒト動物のタンパク質を含まなくても、または非ヒト動物のタンパク質を本質的に含まなくてもよい。いくつかのこうした方法では、多能性幹細胞を規定された分化培地で培養する。

本発明の分化培地は、ある種の実施形態では、約０．５％酸素ガスから約５．３％酸素ガスの低酸素雰囲気下で維持してもよい。分化培地は、多能性幹細胞、前駆細胞、造血前駆細胞、内皮前駆細胞、ＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞などの細胞をさらに含んでもよい。

本発明は、いくつかの態様では、１つまたは複数の密封バイアルに分化培養培地を含むキットを対象とする。たとえば、キットは、約０．５％酸素ガスから約５．３％酸素ガスの低酸素雰囲気下で維持された分化培地を含んでいてもよい。キットは、多能性幹細胞、前駆細胞、造血前駆細胞または内皮前駆細胞などの細胞をさらに含んでもよい。

本発明はさらに、多能性細胞のＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞への分化に影響を与える能力について候補物質をスクリーニングする方法も意図している。たとえば、多能性幹細胞は、フィーダー細胞を含まないか、あるいはフィーダー細胞を本質的に含まず、マトリックス成分、少なくとも１種の組換え型増殖因子（ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦなど）および候補物質を含む培養培地で培養してもよい。次いで多能性幹細胞は、前駆細胞を得るための期間、５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で分化させてもよい。その後、多能性幹細胞の所望の前駆細胞への分化を評価してもよい。いくつかの実施形態では、こうした方法を用いて分化を促進する候補物質をスクリーニングする。ある態様では、評価のステップは、候補物質の存在下での多能性幹細胞の分化と、候補物質を使用しない同様の細胞培地での多能性幹細胞の分化とを比較することを含む。たとえば、評価は、１種または複数種の分化マーカーの評価を含んでもよいし、または細胞形態の評価を含んでもよい。いくつかの実施形態では、候補物質は、小分子、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、抗体、抗体フラグメントまたは核酸を含んでもよい。

さらなる態様では、本発明は、本明細書に開示された方法により得られた薬学的有効量の前駆細胞、造血細胞または内皮細胞を被験体に投与することにより疾患、障害または傷害を処置する方法を提供する。ある態様では、提供される処置は、赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓ）、マクロファージ、顆粒球、巨核球、樹状細胞、マスト細胞または内皮細胞を含んでもよい。たとえば、疾患は心血管の疾患であってもよく、処置は内皮細胞を含んでもよい。

さらなる実施形態では、本発明は、クローン細胞集団であって、共通の祖先（多能性幹細胞など）に由来し、前駆細胞（ＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞など）を含み、規定された培地中に存在する、クローン細胞集団を提供する。いくつかの実施形態では、細胞集団は、フィーダー細胞、血清またはその両方を含まないか、あるいはフィーダー細胞、血清またはその両方を本質的に含まない培地中に存在する。この集団はＣＤ３４＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞を５％、１０％、１５％、２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、１００％または任意の中間の百分率で含んでもよい。この集団は、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ３４＋前駆細胞を２０％、２５％、３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、１００％または任意の中間の百分率で含んでもよい。特定の実施形態では、この集団は、ＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞などの前駆細胞を約１０^６個、１０^７個、１０^７個、１０^８個、１０^９個、１０^１０個、１０^１１個、１０^１２個、１０^１３個、１０^１４個、１０^１５個、１０^１６個、１０^１７個、１０^１８個、１０^１９個またはそれ以上を含む。なお他の実施形態では、本発明は、本明細書に開示された方法により作製されるＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ３１＋前駆細胞またはＣＤ４３＋前駆細胞などの前駆細胞の集団を提供する。

本発明の方法では、任意の１つのステップを除去してもよく、あるいは開示された組成物の構成要素のいずれか１つを除去してもよいことを意図している。本発明の分化培地では、開示された成分のいずれか１つを除去してもよいことを意図している。

本特許請求の範囲および／または本明細書において「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」という用語と共に「ａ」または「ａｎ」という語を使用する場合、「１つの」を意味し得るが、「１つまたは複数の」、「少なくとも１つの」および「１つまたは２つ以上の」を意味することもある。

本明細書で検討される任意の実施形態は、本発明の任意の方法または組成物について実行することができ、その逆も同様であることを意図している。さらに、本発明の組成物を用いて本発明の方法を実行することもできる。

本出願では、「約」という用語は、値に、その値の決定に使用する装置、方法に固有の誤差変動、または試験対象に存在するばらつきが含まれることを示すために使用する。

特許請求の範囲において「または」という用語を使用する場合、代替物に限る、あるいは代替物は相互に排他的なものであるとの明確な記載がない限り「および／または」という意味で使用する。ただし本開示では、定義が、代替物のみと「および／または」とを指すことを支持する。

本明細書および特許請求の範囲（単数または複数）に使用される「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」（ならびに「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅ）」および「を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」など、を含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）の任意の形）、「を持つ（ｈａｖｉｎｇ）」（ならびに「を持つ（ｈａｖｅ）」および「を持つ（ｈａｓ）」など、を持つ（ｈａｖｉｎｇ）の任意の形）、「を含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）」（ならびに「を含む（ｉｎｃｌｕｄｅｓ）」および「を含む（ｉｎｃｌｕｄｅ）」など、を含む（ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ）の任意の形）、または「を含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）」（ならびに「を含む（ｃｏｎｔａｉｎｓ）」および「を含む（ｃｏｎｔａｉｎ）」など、を含む（ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ）の任意の形）は包括的、すなわち幅広い解釈ができるものであり、記載されていない他の構成要素または方法のステップを排除するものではない。

本発明の他の目的、特徴および利点は、以下の詳細な説明により明らかになる。しかし、詳細な説明および個々の例については、本発明の具体的な実施形態を示すものではあるが、この詳細な説明から本発明の精神および範囲内で様々な変更および修正が当業者には明らかになるため、例示のみを目的としたものであることを理解すべきである。
本発明の好ましい実施形態では、例えば以下が提供される：
（項目１）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ３４＋前駆細胞に分化させる方法であって：
ａ）フィーダー細胞を含まないか、またはフィーダー細胞を本質的に含まず、マトリックス成分、ならびにＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む培養培地で多能性幹細胞を培養する工程；および
ｂ）前記細胞を５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で前記ＣＤ３４＋前駆細胞を得るための期間分化させる工程
を含む、方法。
（項目２）
前記多能性幹細胞は胚性幹細胞または誘導胚性幹細胞である、項目１に記載の方法。
（項目３）
前記低酸素雰囲気は約０．５％酸素ガスから約５．５％酸素ガスを含む、項目１に記載の方法。
（項目４）
前記低酸素雰囲気は約１．５％酸素ガスから約５．３％酸素ガスを含む、項目１に記載の方法。
（項目５）
前記マトリックス成分はフィブロネクチン、コラーゲンまたはＲＧＤペプチドを含む、項目１に記載の方法。
（項目６）
前記ＣＤ３４＋前駆細胞またはその子孫を培養から８日から１２日で収集する工程をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目７）
前記ＣＤ３４＋前駆細胞またはその子孫を培養から６日から９日で収集する工程をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目８）
前記培養培地はＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦを含む、項目１に記載の方法。
（項目９）
前記培養培地はＢＭＰ−４を約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬの量で含む、項目１に記載の方法。
（項目１０）
前記培養培地はＶＥＧＦを約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬの量で含む、項目１に記載の方法。
（項目１１）
前記培養培地はｂＦＧＦを約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬの量で含む、項目１に記載の方法。
（項目１２）
前記培養培地は生存因子をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目１３）
前記生存因子はＲｈｏ関連キナーゼ（ＲＯＣＫ）のインヒビターまたはミオシンＩＩのインヒビターである、項目１２に記載の方法。
（項目１４）
前記培養培地は血清またはフィーダー細胞を含まないか、あるいは血清またはフィーダー細胞を本質的に含まない、項目１に記載の方法。
（項目１５）
分化の前にＴｅＳＲを含む第１の培地で前記多能性幹細胞を培養または維持する工程をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目１６）
前記第１の培地はＴｅＳＲ培地および生存因子を含む、項目１５に記載の方法。
（項目１７）
前記生存因子はＲｈｏ関連キナーゼ（ＲＯＣＫ）のインヒビターまたはミオシンＩＩのインヒビターである、項目１６に記載の方法。
（項目１８）
前記ＣＤ３４＋前駆細胞を赤血球、マクロファージ、顆粒球、巨核球、樹状細胞、マスト細胞または内皮細胞からなる群の１つまたは複数に分化させる工程をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目１９）
前記さらなる分化はＦＭＳ様チロシンキナーゼ３（ＦＬＴ−３）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）およびヘパリンからなる群の１つまたは複数を含む培養培地で起こる、項目１８に記載の方法。
（項目２０）
前記さらなる分化はＦＭＳ様チロシンキナーゼ３（ＦＬＴ−３）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）およびヘパリンを含む培養培地で起こる、項目１８に記載の方法。
（項目２１）
前記培養培地は１種または複数種のアミノ酸、抗生物質、ビタミン、塩、ミネラルまたは脂質を含む、項目１に記載の方法。
（項目２２）
前記培養培地はＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、モノチオグリセロール、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含む、項目１に記載の方法。
（項目２３）
前記培養培地はＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される２種以上の組換え型増殖因子を含む、項目１に記載の方法。
（項目２４）
少なくとも一部を自動化するためロボットを使用することを含む、項目１に記載の方法。
（項目２５）
複数の前記多能性幹細胞はバイオリアクターを使用して培養される、項目１に記載の方法。
（項目２６）
磁気活性化細胞ソーティング（ＭＡＣＳ）、フローサイトメトリーまたは蛍光活性化細胞ソーティング（ＦＡＣＳ）を使用して前記ＣＤ３４＋前駆細胞を分取する工程をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目２７）
ＣＤ３４、ＣＤ４３およびＣＤ３１からなる群の１つまたは複数の発現に基づき前記ＣＤ３４＋前駆細胞を分取する工程をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目２８）
ａ）多能性幹細胞コロニーまたはクローン細胞群を分散させ、分散した本質的に個別の細胞を形成する工程、および
ｂ）前記分散させた細胞を培養面１平方センチメートル当たり約１０，０００幹細胞から培養面１平方センチメートル当たり約７０，０００幹細胞の密度で培養培地に播種する工程
をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目２９）
前記細胞は生存因子を含む培養培地に分散される、項目２８に記載の方法。
（項目３０）
前記分散された細胞は培養面に１平方センチメートル当たり約１０，０００幹細胞から培養面に１平方センチメートル当たり約５０，０００幹細胞の密度で播種される、項目２８に記載の方法。
（項目３１）
前記多能性幹細胞は有効量の１種または複数種の酵素による処理により分散される、項目２８に記載の方法。
（項目３２）
前記酵素の少なくとも１種はトリプシンまたはｔｒｙｐＬＥである、項目３１に記載の方法。
（項目３３）
前記分化培地は規定された分化培地である、項目１に記載の方法。
（項目３４）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ４３＋前駆細胞に分化させる方法であって：
ａ）多能性幹細胞を、フィーダー細胞を含まないか、またはフィーダー細胞を本質的に含まず、マトリックス成分、ならびにＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む培養培地で培養する工程；および
ｂ）前記細胞を５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で前記ＣＤ４３＋前駆細胞を得るための期間分化させる工程
を含む、方法。
（項目３５）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ３１＋前駆細胞に分化させる方法であって：
ａ）多能性幹細胞を、フィーダー細胞を含まないか、またはフィーダー細胞を本質的に含まず、マトリックス成分、ならびにＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む培養培地で培養する工程；および
ｂ）前記細胞を５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で前記ＣＤ３１＋前駆細胞を得るための期間分化させる工程
を含む、方法。
（項目３６）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ３１＋前駆細胞に分化させる方法であって：
ａ）マトリックス成分；および
ｂ）ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む分化培地
を含む培地で多能性幹細胞を増殖させる工程を含み、
前記培地は非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まないか、または非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まない、
方法。
（項目３７）
前記培地は非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まない、項目３６に記載の方法。
（項目３８）
前記培地は非ヒト動物のタンパク質を含まないか、または非ヒト動物のタンパク質を本質的に含まない、項目３６に記載の方法。
（項目３９）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ３４＋前駆細胞に分化させる方法であって：
ａ）マトリックス成分；および
ｂ）ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子を含む分化培地
を含む培地で多能性幹細胞を増殖させる工程を含み、
前記培地は非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まないか、または非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まない、
方法。
（項目４０）
前記培地は非ヒト動物血清、フィーダー細胞およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まない、項目３９に記載の方法。
（項目４１）
前記培地は非ヒト動物のタンパク質を含まないか、または非ヒト動物のタンパク質を本質的に含まない、項目３９に記載の方法。
（項目４２）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ３１＋前駆細胞に分化させる方法であって、多能性幹細胞を規定された分化培地で培養する工程を含む、方法。
（項目４３）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ３４＋前駆細胞に分化させる方法であって、多能性幹細胞を規定された分化培地で培養する工程を含む、方法。
（項目４４）
ヒト多能性幹細胞をＣＤ４３＋前駆細胞に分化させる方法であって、多能性幹細胞を規定された分化培地で培養する工程を含む、方法。
（項目４５）
ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦおよびマトリックス成分を含む分化培養培地であって、前記培地はフィーダー細胞、血清およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まないか、またはフィーダー細胞、血清およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを本質的に含まない、分化培養培地。
（項目４６）
さらに非ヒト動物増殖因子を含まないか、または非ヒト動物増殖因子を本質的に含まない、項目４５に記載の分化培地。
（項目４７）
さらに非ヒト動物のタンパク質を含まないか、または非ヒト動物のタンパク質を本質的に含まない、項目４５に記載の分化培地。
（項目４８）
フィーダー細胞、血清およびＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを含まない、項目４５に記載の分化培地。
（項目４９）
前記マトリックス成分はフィブロネクチン、コラーゲンまたはＲＧＤペプチドを含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５０）
約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬの量のＢＭＰ−４を含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５１）
約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬの量のＶＥＧＦを含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５２）
約５ｎｇ／ｍＬ〜約２００ｎｇ／ｍＬの量のｂＦＧＦを含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５３）
ＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、モノチオグリセロール、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５４）
１種または複数種のアミノ酸、抗生物質、ビタミン、塩、ミネラルまたは脂質をさらに含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５５）
多能性幹細胞、前駆細胞、ＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ４３＋前駆細胞およびＣＤ３１＋前駆細胞からなる群より選択される１種または複数種の細胞をさらに含む、項目４５に記載の分化培地。
（項目５６）
規定された培地である、項目４５に記載の分化培地。
（項目５７）
１つまたは複数の密封バイアルに項目４５に記載の分化培養培地を含む、キット。
（項目５８）
細胞をさらに含む、項目５７に記載のキット。
（項目５９）
前記細胞は多能性細胞、前駆細胞、ＣＤ３４＋前駆細胞、ＣＤ４３＋前駆細胞またはＣＤ３１＋前駆細胞である、項目５７に記載のキット。
（項目６０）
多能性細胞のＣＤ３４＋前駆細胞への分化を促進する能力について候補物質をスクリーニングする方法であって：
ａ）フィーダー細胞を含まないか、またはフィーダー細胞を本質的に含まない培養培地であって、マトリックス成分と、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦからなる群より選択される少なくとも１種の組換え型増殖因子と、候補物質とを含む、培地で多能性幹細胞を培養する工程；
ｂ）前記細胞を５．５％未満酸素の低酸素雰囲気下で前記ＣＤ３４＋前駆細胞を得るための期間分化させる工程；および
ｃ）ＣＤ３４＋前駆細胞への分化について前記多能性細胞を評価する工程
を含む、方法。
（項目６１）
評価する工程は前記候補物質の存在下での前記多能性幹細胞の分化と、前記候補物質を使用しない同様の細胞培地での前記多能性幹細胞の分化とを比較する工程を含む、項目６０に記載の方法。
（項目６２）
前記候補物質は小分子、ペプチド、ポリペプチド、タンパク質、抗体、抗体フラグメントまたは核酸である、項目６０に記載の方法。
（項目６３）
前記分化培地はＳＣＦ、ＴＰＯ、ＦＬＴ−３、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびヘパリンからなる群の１つまたは複数をさらに含む、項目１に記載の方法。
（項目６４）
ＣＤ３４＋前駆細胞を含むクローン細胞集団であって、前記細胞の少なくとも５％はＣＤ３４＋またはＣＤ４３＋前駆細胞であり、前記細胞集団は血清およびフィーダー細胞を含まないか、または血清およびフィーダー細胞を本質的に含まない規定された培地中に存在する、クローン細胞集団。
（項目６５）
約１０^６〜約１０^１５個のＣＤ３４＋またはＣＤ４３＋前駆細胞を含む、項目６４に記載の細胞集団。
（項目６６）
ＣＤ３１＋前駆細胞を含むクローン細胞集団であって、前記細胞の少なくとも２０％はＣＤ３１＋またはＣＤ３４＋前駆細胞であり、前記細胞集団は血清およびフィーダー細胞を含まないか、または血清およびフィーダー細胞を本質的に含まない規定された培地中に存在する、クローン細胞集団。
（項目６７）
約１０^６〜約１０^１５個のＣＤ３１＋またはＣＤ３４＋前駆細胞を含む、項目６６に記載の細胞集団。

（発明の詳細な説明）
本発明は、間質細胞または胚様体を必要とすることなくヒト多能性幹細胞から造血細胞または内皮細胞を作製する方法および組成物を提供する。いくつかの方法は規定された分化培地を使用するものであり、低酸素雰囲気条件を含んでもよい。こうした方法を使用してヒト造血前駆細胞を作製し、これをさらに赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ）、マクロファージ、顆粒球および／または巨核球などの細胞系統へ分化させてもよい。さらに、本方法を使用してヒト内皮前駆細胞を作製し、これをさらに内皮細胞に分化させてもよい。本発明の分化培地は、増殖因子（たとえば、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ）を含んでもよく、フィブロネクチンなどのマトリックス成分と一緒に使用してもよい。

（Ｉ．分化培地）
従来の多能性幹細胞の培養方法は、血清製品およびマウスフィーダー層に依存して多能性幹細胞を様々な細胞型に分化させてきた。これらの手順は、分化を行える規模を制限し、生物学的ばらつきおよびコンタミネーションの可能性を増大させ、そうでなければ有用であるはずのトランスレーショナル治療において多能性幹細胞の使用を著しく妨げている。

したがって、本発明は、分化培地を提供する。分化培地は、フィーダー細胞を含まなくても、またはフィーダー細胞を本質的に含まなくてもよいし、血清を含まなくても、または血清を本質的に含まなくてもよいし、あるいはフィーダー細胞および血清を含まなくても、またはフィーダー細胞および血清を本質的に含まなくてもよい。ある種の実施形態では、分化培地は、非ヒト動物血清またはフィーダー細胞を含まないか、あるいは非ヒト動物血清またはフィーダー細胞を本質的に含まない規定された培地である。

ある種の実施形態では、分化培地は増殖因子（たとえば、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦ）を含む。分化培地は、フィブロネクチンまたはコラーゲンなどのマトリックス成分と一緒に使用してもよい。分化培地は追加の栄養素、アミノ酸、抗生物質、緩衝剤および同種のものをさらに含んでもよい。

分化培地は、イスコフ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ：Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍとも呼ばれる）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）を含んでもよい。ある種の実施形態では、分化培地は、ＩＭＤＭおよび下記表１に記載の１種または複数種の成分を含む。また、分化培地は、表１に記載の成分の１つまたは複数を含む一方、表１に記載の成分の１種または複数種を特に除外することも明確に意図している。他の実施形態では、分化培地は、表１に記載の成分をすべて含む。好ましい実施形態では、分化培地は、表１に記載の構成要素をほぼ表記の好ましい濃度で含む。

いくつかの実施形態では、表１に記載の１種または複数種の構成要素を含む分化培地など１つの培地で多能性幹細胞を分化させ、次いで前駆細胞を維持するか、増殖させるか、またはさらに分化させることを目的に第２の分化培地で培養する。こうした第２の分化培地は、表１に記載の１種または複数種の成分のほか、以下の１種または複数種を含んでもよい：β−メルカプトエタノール（β−ＭＥ）、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３（ＦＬＴ−３）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）またはヘパリン。いくつかの態様では、第２の分化培地は、表１に記載の１種または複数種の成分のほか、ＩＭＤＭ、β−ＭＥ、ＦＬＴ−３、ＳＣＦ、ＴＰＯ、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびヘパリンを含む。いくつかの実施形態では 第２の分化培地は、ＩＭＤＭ、ＢＩＴ９５００、非必須アミノ酸、Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、ＦＬＴ−３、ＳＣＦ、ＴＰＯ、ＩＬ−３、ＩＬ−６およびヘパリンを含む。しかし、第２の分化培地はこれらの成分の１種または複数種を含む一方、これらの成分の１種または複数種を特に除外することも明確に意図している。好ましい実施形態では、第２の培地はＩＭＤＭを含み、さらに約２０％ＢＩＴ９５００、約１％非必須アミノ酸、約１％Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、約２５ｎｇ／ｍＬのＦＬＴ−３、約２５ｎｇ／ｍＬのＳＣＦ、約２５ｎｇ／ｍＬのＴＰＯ、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−３、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−６および約５Ｕ／ｍＬのヘパリンを含む。特定の実施形態では、第２の分化培地は造血前駆細胞の維持および増殖に使用する。

細胞は、本発明の分化培地で培養後収集してもよい。たとえば、細胞は、培養から１日後、２日後、３日後、４日後、５日後、６日後、７日後、８日後、９日後、１０日後、１１日後、１２日後、１３日後、１４日後、１５日後、１６日後、１７日後、１８日後、１９日後または２０日後に収集してもよい。いくつかの実施形態では、細胞は培養から４〜１４日後に収集する。好ましい実施形態では、多能性幹細胞は、培養から８日間から１２日間、６日間から９日間または６日間から１０間分化させてもよい。

（Ａ．増殖因子）
当該技術分野においては様々な増殖因子が公知であり、本発明と共に使用してもよい。ある種の実施形態では、本発明の分化培地は、たとえば、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦおよびｂＦＧＦなど１種、２種またはそれ以上の増殖因子を含んでもよい。マウス胎仔線維芽細胞培養系を使用してこれらの増殖因子を用いれば、ヒト胚性幹細胞を造血細胞および内皮細胞に分化させることができる（Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．，２００７）。

本発明の分化培地を構成し得る増殖因子として、ＢＭＰ−４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、幹細胞因子（ＳＣＦ）、ｆｌｔ−３リガンド、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）、インターロイキン９（ＩＬ−９）、インターロイキン１１（ＩＬ−１１）、インスリン関連増殖因子１（ＩＦＧ（ｉｎｓｕｌｉｎ ｒｅｌａｔｅｄ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）１）、インスリン関連増殖因子２（ＩＧＦＩＩ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ：ｅｒｙｔｈｒｏｐｏｉｅｔｉｎ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）および顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）があるが、これに限定されるものではない。本発明の分化培地は、これらの因子の１種、２種、３種またはそれ以上を含んでもよく、たとえば、細胞の増殖を増強したり、または細胞の分化状態を調節したりするため、規定された培地に他の増殖因子を含めてもよい。細胞応答を刺激するため、これらの因子を様々な量で使用してもよい（たとえば、Ｙａｍａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ．，２００７；Ｆａｄｉｌａｈ ｅｔ ａｌ．，２００７；Ｂａｓｈｅｙ ｅｔ ａｌ．，２００７に記載された量）。

（１．ＢＭＰ−４）
骨形成タンパク質−４（ＢＭＰ−４）は骨形態形成タンパク質群のメンバーで、腹側中胚葉誘導因子である。ＢＭＰは成人ヒト骨髄（ＢＭ）に発現し、骨のリモデリングおよび成長に重要である。ある種の実施形態では、ＢＭＰ４を加える必要があるのは、培養の最初の２〜３日間だけであり、その後は分化に有害な影響を与えずに系から除去し得る。

ＢＭＰ−４は、造血前駆細胞の増殖および分化能力を調節するうえで重要である（Ｂｈａｒｄｗａｊ ｅｔ ａｌ．，２００１；Ｂｈａｔｉａ ｅｔ ａｌ．，１９９９；Ｃｈａｄｗｉｃｋ ２００３）。さらに、ＢＭＰ−４は、ヒト胎児、新生児および成人の造血前駆細胞における造血細胞の初期発生を調節することもできる（Ｄａｖｉｄｓｏｎ ａｎｄ Ｚｏｎ，２０００；Ｈｕｂｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９９８；Ｍａｒｓｈａｌｌ ｅｔ
ａｌ．，２０００）。たとえば、ＢＭＰ−４は、成人および新生児由来の高度に精製された原始ヒト造血細胞の増殖および分化を調節することができ（Ｂｈａｔｉａ ｅｔ ａｌ．，１９９９）、ＢＭＰ−４はヒト胚性幹細胞の造血分化を促進することもできる（Ｃｈａｄｗｉｃｋ，２００３）。ＢＭＰ−４はさらに、内皮前駆細胞からの内皮細胞の分化を促進することもできる（Ｗａｎｇ ｅｔ ａｌ．，２００７）。

ある種の実施形態では、ＢＭＰ−４を本発明の分化培地に約２．５〜約５００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約５００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約２００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約１００ｎｇ／ｍＬ、約２５〜約２００ｎｇ／ｍＬ、約２５〜約７５ｎｇ／ｍＬまたはこれらから導き出せる任意の範囲の濃度で加える。ある種の実施形態では、ＢＭＰ−４を分化培地に約２．５ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは約１００ｎｇ／ｍＬの濃度で加える。

（２．ＶＥＧＦ）
内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）は、胎児の循環系の形成および血管形成に関与する重要なシグナル伝達タンパク質である。ＶＥＧＦは、内皮および他の細胞型（たとえば、ニューロン、がん細胞、腎上皮細胞）など様々な細胞型に影響を与え得る。ＶＥＧＦはインビトロで内皮細胞の分裂および遊走を刺激し得る。またＶＥＧＦの機能は、がん、糖尿病、自己免疫疾患および眼血管疾患など様々な病状において重要であることも明らかになっている。

ある種の実施形態では、ＶＥＧＦを本発明の分化培地に約２．５〜約５００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約５００ｎｇ／ｍＬ、約１０〜約２００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約１００ｎｇ／ｍＬ、約２５〜約２００ｎｇ／ｍＬ、約２５〜約７５ｎｇ／ｍＬまたはこれらから導き出せる任意の範囲の濃度で加える。ある種の実施形態では、ＶＥＧＦを分化培地に約２．５ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは約１００ｎｇ／ｍＬの濃度で加える。

（３．ｂＦＧＦ）
塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ、ＦＧＦ−２とも呼ばれる）は、四肢および神経系の発生、創傷治癒および腫瘍増殖など多様な生物学的プロセスに関係していると考えられている増殖因子である。これまでの研究から、ｂＦＧＦは、ヒト胚性幹細胞のフィーダー非依存性増殖を支持するために使用されてきたが（Ｌｕｄｗｉｇ ｅｔ ａｌ．，２００６ａ）、造血細胞の発生または生存に影響を与えないと考えられることが明らかになっている（Ｒａｔａｊｃｚａｋ ｅｔ ａｌ．，１９９６）。ある種の実施形態では、分化を誘導するのにｂＦＧＦを必要としない。このため、種々の実施形態では、ｂＦＧＦを本発明の培地に加えても、あるいは加えてなくてもよい。

ある種の実施形態では、ｂＦＧＦを本発明の分化培地に約２．５〜約５００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約５００ｎｇ／ｍＬ、約１０〜約２００ｎｇ／ｍＬ、約５〜約１００ｎｇ／ｍＬ、約２５〜約２００ｎｇ／ｍＬ、約２５〜約７５ｎｇ／ｍＬまたはこれらから導き出せる任意の範囲の濃度で加える。ある種の実施形態では、ｂＦＧＦを分化培地に約２．５ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは約１００ｎｇ／ｍＬの濃度で加える。ある種の実施形態では、たとえば、上述の濃度で酸性ＦＧＦ（ａＦＧＦ）、ＦＧＦ４、ＦＧＦ９、ＦＧＦ１７またはＦＧＦ１８など他の線維芽細胞増殖因子をｂＦＧＦの代わりに使用しても、またはｂＦＧＦと一緒に加えてもよいことを想定している。

（４．ＳＣＦ）
ＳＣＦ（ＳＣＦ、ｋｉｔリガンド、ＫＬまたはスティール因子とも呼ばれる）は造血、精子形成およびメラニン形成に関与するサイトカインである。本発明の方法では、ＳＣＦを培地に約２．５ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは約１００ｎｇ／ｍＬの濃度で加えてもよい。好ましい実施形態では、ＳＣＦを培地に約２５ｎｇ／ｍＬの濃度で加える。

（５．ＴＰＯ）
ＴＰＯも、造血前駆細胞を、たとえば、巨核球に分化させるのに関係している。本発明の方法では、ＴＰＯを培地に約２．５ｎｇ／ｍＬ、５ｎｇ／ｍＬ、１０ｎｇ／ｍＬ、１５ｎｇ／ｍＬ、２０ｎｇ／ｍＬ、２５ｎｇ／ｍＬ、３０ｎｇ／ｍＬ、３５ｎｇ／ｍＬ、４０ｎｇ／ｍＬ、４５ｎｇ／ｍＬ、５０ｎｇ／ｍＬ、５５ｎｇ／ｍＬ、６０ｎｇ／ｍＬ、６５ｎｇ／ｍＬ、７０ｎｇ／ｍＬ、７５ｎｇ／ｍＬ、８０ｎｇ／ｍＬ、８５ｎｇ／ｍＬ、９０ｎｇ／ｍＬ、９５ｎｇ／ｍＬまたは約１００ｎｇ／ｍＬの濃度で加えてもよい。好ましい実施形態では、ＴＰＯを培地に約２５ｎｇ／ｍＬの濃度で加える。

（Ｂ．生存因子）
一部の実施形態では、本発明の分化培地を使用して多能性幹細胞を播種しても、培養しても、維持しても、または分化させてもよく、本発明の分化培地は生存因子を含んでもよい。生存因子は、本発明の方法を使用して個別化した多能性幹細胞の生存および分化の効率を高めるために使用してもよい。いくつかの実施形態では、使用してもよい生存因子として、ミオシンＩＩのインヒビター、Ｒｈｏ非依存性キナーゼ（Ｒｈｏ−ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ ｋｉｎａｓｅ）（ＲＯＣＫ）のインヒビターおよびプロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）のインヒビターがあるが、これに限定されるものではない。ある種の実施形態では、ＴｅＳＲ１培地、ＴｅＳＲ２培地またはｍＴｅＳＲ培地を含む培養用培地に生存因子を加えてもよい。

本明細書に記載の方法に有用であり得る例示的な生存因子またはその細胞培養適合性の塩として、ブレビスタチンまたはピリダジニル化合物（米国特許出願公開第２００８／００２１０３５号）などのミオシンＩＩインヒビター；ＨＡ１００、Ｈ１１５２、（＋）−トランス−４−（１−アミノエチル）−１−（ピリジン−４−イルアミノカルボニル）シクロヘキサンジヒドロ−クロリド一水和物（国際公開第０００７８３５１号、国際公開第０００５７９１３号）、イミダゾピリジン誘導体（米国特許第７３４８３３９号）、置換ピリミジンおよびピリジン誘導体（米国特許第６９４３１７２号）または置換イソキノリン−スルホニル化合物（欧州特許第００１８７３７１号）などのＲＯＣＫインヒビター；またはＶ５ペプチド（米国特許第７４５９４２４号）、ポリミキシンＢ、カルフォスチンＣ、パルミトイル−ＤＬ−カルニチン、ステアロイルカルニチン、ヘキサデシルホスホコリン、スタウロスポリンおよびその誘導体、サンギバマイシンなどのＰＫＣインヒビター；サフィンゴール、Ｄ−エリスロ−スフィンゴシン；ケレリトリンクロリド、メリチン；デカリニウムクロリド；エラグ酸、ＨＢＤＤＥ、１−Ｏ−ヘキサデシル−２−Ｏ−メチル−ｒａｃ−グリセロール、ヒペルシン、Ｋ−２５２、ＮＧＩＣ−Ｊ、フロレチン、ピセタノール、クエン酸タモキシフェンまたは置換ピペラジンもしくはチアジン（米国特許第６８１５４５０号）があるが、これに限定されるものではない。

（Ｃ．他の構成要素）
本発明の分化培地は、栄養素、アミノ酸、抗生物質、緩衝剤および同種のものなど追加の構成要素をさらに含んでもよい。ある種の実施形態では、本発明の分化培地は、非必須アミノ酸、Ｌ−グルタミン、ペニシリン、ストレプトマイシンおよびモノチオグリセロールを含んでもよい。

本発明の分化培地にはさらにＢＩＴ９５００（ＳｔｅｍＣｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ Ｉｎｃ．，Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ，Ｃａｎａｄａ）を、たとえば、約１０％〜約３０％の量、または約２０％の量で加えてもよい。ＢＩＴ９５００は、Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ ＭＤＭ中に事前に試験されたウシ血清アルブミン、インスリンおよびトランスフェリン（ＢＩＴ）のバッチを含む。ＢＩＴ９５００は、５０ｍｇ／ｍＬのウシ血清アルブミン（ＮａＨＣＯ_３で緩衝処理）、５０μｇ／ｍＬのインスリン、１ｍｇ／ｍＬのヒトトランスフェリン（鉄飽和）を含む。ある種の実施形態では、ＢＩＴ９５００の代わりにＳｅｒｕｍ Ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔ ３（Ｓｉｇｍａ、カタログ番号Ｓ２６４０）を使用してもよい。他の実施形態では、規定された培地を必要としない実施形態では、ＢＩＴ９５００の代わりにＫＯＳＲを使用してもよい。ＫＯＳＲは、市販されている（たとえばＧｉｂｃｏ／Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、カタログ番号１０８２８）規定されていない培地であり、国際公開第９８／３０６７９号に以前記載された。

上記のようなＢＩＴを使用する代わりにＨＩＴを使用してもよい。ＨＩＴは、血清アルブミンなどの構成要素がヒト構成要素（たとえば、ヒト血清アルブミン）であることを除き、上述のＢＩＴの組成物を含む。たとえば、感染症の可能性などのリスクが特に懸念される実施形態ではＨＩＴを使用すると好ましい場合がある。

また、本発明の培地にはヘパリンを加えてもよい。たとえば、ヘパリンは、造血前駆細胞の分化をさらに促す分化培地で有用であり得る。ヘパリンは、約１Ｕ／ｍＬ、２Ｕ／ｍＬ、３Ｕ／ｍＬ、４Ｕ／ｍＬ、５Ｕ／ｍＬ、６Ｕ／ｍＬ、７Ｕ／ｍＬ、８Ｕ／ｍＬ、９Ｕ／ｍＬまたは１０Ｕ／ｍＬの濃度で加えてもよい。好ましい実施形態では、ヘパリンを培地に５Ｕ／ｍＬの濃度で加える。

種々の実施形態では、分化培地は、１種または複数種のビタミン、ミネラル、塩、脂質、アミノ酸または他の構成要素を含んでもよい。たとえば、本発明の規定された培地は、たとえば、以下に記載するＴｅＳＲ培地に含まれるのと同一または同程度の濃度でＴｅＳＲ培地に存在する１つまたは複数の構成要素を含んでもよい。

（ＩＩ．マトリックス成分）
本発明の分化培地は、好ましくはフィブロネクチン、コラーゲンまたはＲＧＤペプチドなど１種または複数種のマトリックス成分を用いて本明細書に記載の方法で使用する。どのような理論にも拘泥するわけではないが、マトリックス成分は、多能性幹細胞の増殖の固体支持体となり得る。好ましい実施形態では、マトリックス成分を培養面に適用し、培養培地および細胞と接触させる。

本発明では、コラーゲンＩＶなどのコラーゲン、ラミニン、ビトロネクチン、Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭ、ゼラチン、ポリリシン、トロンボスポンジン（たとえば、ＴＳＰ−１、−２、−３、−４および／または−５）および／またはＰｒｏＮｅｃｔｉｎ−Ｆ^ＴＭなど様々なマトリックス成分を使用してもよい。ある種の実施形態では、ＴｅＳＲを使用して既に培養しておいた細胞にＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭ、コラーゲンＩＶまたはラミニンのみを使用することは、細胞生存率に悪影響を及ぼす可能性があるため避けてもよい。しかしながら、これらの組成物は他のマトリックス成分と一緒に使用すると都合がよい場合もある。これらのマトリックス成分を組み合わせると、さらに細胞増殖および細胞生存率を高めるのに効果がある場合もある。ある種の実施形態では、細胞の培養および／または胚性幹細胞の造血前駆細胞への分化を行うには上記のマトリックス成分の１種、２種、３種、４種、５種、６種またはそれ以上を使用してもよい。

（１．フィブロネクチン）
本発明の規定された細胞培養培地のマトリックス成分として、フィブロネクチンを使用してもよい。どのような理論にも拘泥するわけではないが、フィブロネクチンは、フィーダー細胞または胚様体を使用せずに増殖および分化させるための、ヒト胚性幹細胞のマトリックスとなり得る。

フィブロネクチンは、約５％炭水化物を含む高分子量糖タンパク質である。フィブロネクチンは、インテグリン、ならびにコラーゲン、フィブリンおよびヘパラン硫酸などの細胞外マトリックス構成要素と結合することができる。フィブロネクチンは、創傷治癒およびがん発生などの機能に関係していると考えられており、さらに哺乳動物細胞における適切な神経堤形成にとっても重要である。

ある種の実施形態では、フィブロネクチンを本発明の分化培地に約１μｇ／ｃｍ^２〜約１０μｇ／ｃｍ^２または約３μｇ／ｃｍ^２〜約５μｇ／ｃｍ^２の濃度で加える。フィブロネクチンは分化培地に約２．５μｇ／ｃｍ^２、３μｇ／ｃｍ^２、３．５μｇ／ｃｍ^２、４μｇ／ｃｍ^２、４．５μｇ／ｃｍ^２または約５μｇ／ｃｍ^２の濃度で加えてもよい。

（２．コラーゲン）
本発明の細胞培養培地のマトリックス成分としてコラーゲンを使用してもよい。コラーゲンは、結合組織の主要なタンパク質構成要素であり、組織および細胞を支持する細胞外マトリックスの主な構成要素である。どのような理論にも拘泥するわけではないが、コラーゲンは、フィブロネクチンの場合と同様、フィーダー細胞または胚様体を使用せずに増殖および分化させるための、ヒト胚性幹細胞のマトリックスとなり得る。コラーゲンは、本発明の分化培地に、たとえば、約０．５μｇ／ｃｍ^２〜５μｇ／ｃｍ^２または約１．５μｇ／ｃｍ^２の濃度で加えてもよい。ある種の実施形態では、細胞を培養する表面をコーティングするためにコラーゲンを使用してもよい。ある態様では、開示された方法に有用なコラーゲンはコラーゲンＩＶである。

（３．ＲＧＤペプチド）
本発明の規定された細胞培養培地のマトリックス成分として、ＲＧＤペプチドを使用してもよい。ＲＧＤペプチドは、Ａｒｇ−Ｇｌｙ−Ａｓｐ（ＲＧＤ）配列を含む接着タンパク質であり、ある種のＲＧＤペプチドは、細胞の接着、遊走および増殖に重要な役割を果たし得る。どのような理論にも拘泥するわけではないが、ＲＧＤペプチドは、フィブロネクチンと同様、胚性幹細胞の分化および増殖を可能にする胚性幹細胞のマトリックス物質になり得る。ある種の実施形態では、合成ＲＧＤペプチドを本発明に使用してもよい。

ＲＧＤペプチドは本発明の分化培地に、たとえば、約０．０５〜０．２ｍｇ／ｍＬまたは約０．１ｍｇ／ｍＬの濃度で加えてもよい。ある種の実施形態では、細胞を培養する表面をコーティングするためにプロネクチンＦを使用してもよい。プロネクチンＦ（ＰｎＦ）は市販されているＲＧＤペプチドで、典型的には１３のアルギニン−グリシン−アスパラギン酸（ＲＧＤ）部位を含む。

（ＩＩＩ．低酸素および分化）
本明細書では当該技術分野の慣習に従い（Ｅｚａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，２００５）、周囲の酸素濃度を通常酸素濃度という。本明細書で使用する場合、「低酸素雰囲気」とは、約１５〜２５％酸素を含む周囲空気より酸素が少ない雰囲気をいう。好ましくは、低酸素雰囲気は、約５．５％未満酸素を含む。

本発明のある種の実施形態では、低酸素雰囲気で細胞を培養することを含む、多能性幹細胞を分化させる方法を提供する。低酸素雰囲気は、当該技術分野において公知の方法に適合するガスの混合物を含んでもよく、具体的には大気ガス量全体の約５．５％未満の量の酸素ガス量を含んでもよい。いくつかの実施形態では、低酸素雰囲気は、約１％酸素ガスから約５．５％酸素ガスを含む。他の実施形態では、低酸素雰囲気は、５％酸素ガスを含む。好ましい実施形態では、低酸素雰囲気は、５％ＣＯ_２、５％Ｏ_２および９０％Ｎ_２を含む。本発明の方法に有用な大気条件は、細胞培養および圧縮ガス供給の技術分野において公知の任意の手段により得ればよい。

（ＩＶ．多能性幹細胞の調製および維持）
「多能性」という用語は、細胞が、胚形成中に発生する３つの胚葉、外胚葉、内胚葉および中胚葉から生じる細胞型のいずれかに分化する能力という意味で細胞生物学の技術分野において一般に使用される。本明細書の「多能性細胞」および「多能性幹細胞」という用語は、本質的に任意のヒト胎児または成人細胞型に分化する能力を持つ細胞を説明するために使用される。例示的な多能性幹細胞型として、胚性幹細胞および誘導多能性幹細胞（すなわちｉＰＳ細胞）を挙げることができるが、これに限定されるものではない。本明細書で使用する場合、「胚性幹細胞」または「多能性幹細胞」という用語は、胚盤胞に自然発生する細胞、または胚盤胞に由来する細胞だけでなく、多能性になるように、または幹細胞様の状態に戻るように誘導された細胞をいう場合がある（たとえば、Ｎａｋａｇａｗａ ｅｔ ａｌ．，２００７；Ｙｕ ｅｔ ａｌ．，２００７を参照されたい）。

本明細書で使用する場合、「前駆細胞」とは、多能性幹細胞に由来し、細胞系統が決定された細胞をいう。したがって、前駆細胞は多能性幹細胞より分化している。いくつかの実施形態では、前駆細胞は、造血前駆細胞、内皮前駆細胞または血液内皮前駆細胞である。

本発明に使用できる多能性幹細胞は、当業者に公知であるような様々な方法を用いて未分化状態で培養および維持してもよい。たとえば、ヒト多能性幹細胞の培養方法においては、未分化状態の幹細胞を維持するため、線維芽フィーダー細胞を使用しても、あるいは線維芽フィーダー細胞に接触させた培地を使用してもよい。好ましい実施形態では、本発明の方法に従い分化されるヒト多能性幹細胞を、最初に本明細書に記載のＴｅＳＲ１培地、ＴｅＳＲ２培地またはｍＴｅＳＲ培地などフィーダー非依存性培養系を使用して未分化状態で培養する。

本発明では、たとえば、規定された細胞培養培地を用いて造血前駆細胞または内皮前駆細胞に分化されるほぼすべてのヒト多能性幹細胞株を使用することができると予想される。たとえば、本発明では、ヒト胚性幹細胞株Ｈ１、Ｈ９、ｈＥＳ２、ｈＥＳ３、ｈＥＳ４、ｈＥＳ５、ｈＥＳ６、ＢＧ０１、ＢＧ０２、ＢＧ０３、ＨＳＦ１、ＨＳＦ６、Ｈ１、Ｈ７、Ｈ９、Ｈ１３Ｂおよび／またはＨ１４などを使用してもよい。さらに、本発明では、今後利用可能になる幹細胞株も使用し得ると予想される。本発明ではヒト多能性幹細胞を使用することが好ましいが、場合によっては、本発明の方法に哺乳動物、マウス、霊長類など他の多能性幹細胞を使用してもよい。

ある種の実施形態では、本発明に従い誘導多能性幹細胞（ｉＰＳ細胞）を培養し、および／または造血細胞または内皮細胞に分化させてもよい。誘導多能性幹細胞は、幹細胞多能性を示す再プログラム化体細胞であり、胚性マーカーを発現する（Ｔａｋａｈａｓｈｉ
ｅｔ ａｌ．，２００７；Ｔａｋａｈａｓｈｉ ｅｔ ａｌ．，２００７；Ｎａｋａｇａｗａ ｅｔ ａｌ．，２００７）。ｉＰＳ細胞の作製方法は、当該技術分野において公知であり、本質的に体細胞を再プログラムする任意の適切な方法を使用し、本明細書に開示された方法に使用できる多能性幹細胞を作製すればよい。ｉＰＳ細胞を作製する例示的な方法として、たとえば、どちらも参照によってその全体を本明細書に援用するＴｈｏｍｓｏｎ（米国特許出願公開第２００８／０２３３６１０号）およびＤａｌｅｙおよび共同研究者（米国特許出願公開第２００９／０００４１６３号）により開示された方法が挙げられる。

（Ａ．ＴｅＳＲ培地）
ＴｅＳＲ培地は、未分化ヒト多能性幹細胞の培養に使用してもよい規定された培地である。ＴｅＳＲは、ｂＦＧＦ、ＬｉＣｌ、γ−アミノ酪酸（ＧＡＢＡ）、ピペコリン酸およびＴＧＦβを含むもので、ＴｅＳＲを使用した様々な方法については、たとえば、参照によってその全体を本明細書に援用する米国特許出願公開第２００６／００８４１６８号およびＬｕｄｗｉｇ ｅｔ ａｌ．（２００６ａ；２００６ｂ）などに以前に記載されている。「ＴｅＳＲ培地」という用語は、本明細書で使用する場合、ＴｅＳＲ１培地、ＴｅＳＲ２培地またはｍＴｅＳＲ培地を包含する。ＴｅＳＲ２培地（Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ，ＢＣ，Ｃａｎａｄａ）は、ＴｅＳＲ１培地と本質的に同一であり、ＴｅＳＲ１と同様、ＴｅＳＲ２培地もヒト化されている。本明細書に開示された方法にはＴｅＳＲ１培地、ＴｅＳＲ２培地またはｍＴｅＳＲ培地を使用してもよい。

ＴｅＳＲ培地は典型的には、無機塩類、微量ミネラル、エネルギー基質、脂質、アミノ酸、ビタミン、増殖因子、タンパク質および他の構成要素を含む。ＴｅＳＲ１培地の完全な処方は、少なくともその全体を参照によって本明細書に援用する米国特許第７，４４２，５４８号に記載されている。

ＴｅＳＲ処方物のある種の構成要素は、たとえば、研究用に培地を使用しやすくするため、または費用を最小限に抑えるため置き換えてもよい。たとえば、本発明にはｍＴｅＳＲ１培地を使用してもよく、以下の点でＴｅＳＲ１と異なっても構わない：ヒト血清アルブミンの代わりにウシ血清アルブミン（ＢＳＡ：ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ ａｌｂｕｍｉｎ）を使用し、ヒトｂＦＧＦの代わりにゼブラフィッシュのクローン化塩基性線維芽細胞増殖因子（ｚｂＦＧＦ）を使用する。ＴｅＳＲ１については、たとえば、除外することなくその全体を本明細書に参照によって緩用するＬｕｄｗｉｇ ｅｔ ａｌ．（２００６）に詳述されている。

（Ｂ．マトリックス成分）
ヒト多能性幹細胞の培養および維持には様々なマトリックス成分を使用してもよい。参照によってその全体を援用するＬｕｄｗｉｇ ｅｔ ａｌ．（２００６）に記載されているように、多能性細胞増殖の固体支持体を与える手段として培養面をコーティングするには、たとえば、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニンまたはビトロネクチンの１種または複数種を使用してもよい。一実施形態では、コラーゲンはコラーゲンＩＶである。

ヒト多能性幹細胞の細胞培養および維持を行うためのマトリックスを与えるため、Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭを使用してもよい。Ｍａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭは、マウス腫瘍細胞から分泌され、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｎｅｗ Ｊｅｒｓｅｙ，ＵＳＡ）から市販されている明らかでないゼラチン状のタンパク質混合物である。この混合物は、多くの組織に見られる複雑な細胞外環境に似ており、細胞培養のマトリックスとして細胞生物学者に使用されている。ヒト多能性幹細胞の培養および維持の方法については、たとえば、その全体を本明細書に参照によって緩用するＬｕｄｗｉｇ ｅｔ ａｌ．（２００６）に記載されている。当然のことながら、本発明と共に、当業者に公知と考えられるヒト多能性幹細胞を培養および維持する別の方法を使用してもよい。

（Ｖ．多能性幹細胞の播種および分化）
本発明に使用してもよい多能性幹細胞は、細胞培養の技術分野において公知の任意の方法を用いて播種培地に播種してもよい。たとえば、多能性幹細胞は、播種培地に単一のコロニーとして播種しても、またはクローン群として播種してもよいし、あるいは多能性幹細胞は、本質的に個別の細胞として播種してもよい。いくつかの実施形態では、当該技術分野において公知の機械的または酵素的方法を用いて、多能性幹細胞を本質的に個別の細胞に分離する。非限定的な例として、多能性幹細胞は、細胞間、および細胞と培養面との間の結合を破壊するタンパク質分解酵素と接触させてもよい。分化のため多能性幹細胞を個別化するのに使用してもよい酵素として、様々な市販処方物としてのトリプシン、ｔｒｙｐＬＥ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡから市販されている安定なトリプシン様酵素）またはＡｃｃｕｔａｓｅ（登録商標）など酵素の混合物を挙げることができるが、これに限定されるものではない。

一部の実施形態では、多能性細胞は培養用培地に、本質的に個別の（または分散させた）細胞として加えても、または播種してもよい。細胞を播種する培養用培地は、本明細書に記載するようなＴｅＳＲ培地またはｍＴｅＳＲ培地および生存因子を含んでもよい。好ましくは、分散させた多能性細胞を培養用培地に培養面１平方センチメートル当たり７５，０００幹細胞未満の密度で播種する。いくつかの実施形態では、多能性細胞を培養面１平方センチメートル当たり約１０，０００幹細胞の密度から培養面１平方センチメートル当たり約７０，０００幹細胞の密度で播種する。こうした実施形態では、培養面は、本質的に当該技術分野の標準的な無菌細胞培養法に適合する任意の材料を含んでいてもよい。培養面はさらに、本明細書に記載するようなマトリックス成分を含んでもよい。好ましい実施形態では、マトリックス成分を培養面に適用してから、その面を細胞および培地と接触させもよい。

一態様では、本発明は、多能性細胞の分化方法であって、生存因子を使用して、あるいは使用せずに多能性細胞を培養用培地に播種し、１種または複数種の増殖因子を含む分化培地で培養し、低酸素雰囲気下で維持する分化方法を提供する。本明細書に記載の方法では、培養用培地および分化培地はそれぞれフィーダー細胞を含まなくても、またはフィーダー細胞を本質的に含まなくてもよく、この方法は、播種後４〜１４日間培養して分化させた細胞、すなわち、造血前駆細胞または内皮前駆細胞を収集することをさらに含んでもよい。好ましい実施形態では、播種後８日から１２日間、６日から９日間または６日から１０間培養して前駆細胞を分化させる。

（ＶＩ．造血前駆細胞および内皮細胞の分離）
胚性幹細胞からの造血幹細胞および内皮前駆細胞の調製後、造血前駆細胞または内皮前駆細胞を精製すると望ましい場合がある。不均一な細胞集団から造血前駆細胞または内皮前駆細胞などの細胞のサブセットを分離または実質的に精製するには、ＦＡＣＳまたはＭＡＣＳなどのフローサイトメトリーを使用した細胞の分離方法を用いてもよい。

（Ａ．磁気活性化細胞ソーティング（ＭＡＣＳ：Ｍａｇｎｅｔｉｃ Ａｃｔｉｖａｔｅｄ Ｃｅｌｌ Ｓｏｒｔｉｎｇ））
造血細胞を分離するには、分化させたヒト胚性幹細胞（ｈＥＳＣ：ｈｕｍａｎ ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌ）から磁気活性化細胞ソーター（ＭＡＣＳ）を用いてＣＤ３４＋またはＣＤ４３＋細胞を分離すればよい。ＭＡＣＳは典型的には、カラムにおいて細胞を分離する磁性ビーズと組み合わせて抗ＣＤ３４抗体などの抗体を使用する。ある種の実施形態では、ＭＡＣＳは、ＦＡＣＳに比べて細胞に対して穏やかであり、細胞の生存率および完全性に好ましい影響を与え得る。

内皮細胞の分離には、ＭＡＣＳを使用して分化させたｈＥＳＣからＣＤ３１＋細胞を分離してもよい。

ＭＡＣＳ ＭｉｃｒｏＢｅａｄｓ^ＴＭカラムまたはＡｕｔｏＭＡＣＳ^ＴＭ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ，ＣＡ，ＵＳＡ）など様々なＭＡＣＳ製品が市販されており、製造者の指示に従い使用すればよい。細胞分離の緩衝液としてＰＢＳ／０．５％ＢＳＡ＋２ｍＭのＥＤＴＡを使用してもよい。いくつかの実験では、Ｄｅａｄ Ｃｅｌｌ Ｒｅｍｏｖａｌ Ｋｉｔ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ Ｂｉｏｔｅｃ）を使用してＣＤ３４＋細胞を分離する前に死細胞を除去してもよい。必要に応じてＭＡＣＳカラムを繰り返し使用してもよい。

（Ｂ．蛍光活性化細胞ソーティング（ＦＡＣＳ））
ＣＤ３４＋造血細胞またはＣＤ３１＋内皮細胞の分離には、蛍光活性化細胞ソーティング（ＦＡＣＳ）を使用してもよい。当該技術分野において周知のように、ＦＡＣＳは、たとえば、細胞を分離するために結合された蛍光タグを含む抗ＣＤ３４抗体により細胞が示す程度または蛍光を利用する。こうして、ＦＡＣＳを使用して不均一な細胞集団からＣＤ３４＋造血細胞またはＣＤ３１＋内皮細胞を分離することができる。

（ＶＩＩ．造血前駆細胞の分化）
本発明では、造血前駆細胞を赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ）、顆粒球、マクロファージ、巨核球、樹状細胞およびマスト細胞などの細胞系統にさらに分化させるため、様々なアプローチを使用してもよい。これらのアプローチは、赤血球分化培地、メチルセルロース、および巨核球分化培地の使用を含んでもよい。ある種の実施形態では、造血前駆細胞を内皮細胞に分化させてもよいし、あるいは血管を作製するために使用してもよい。

これらの細胞系統は、様々な医学的処置および医学的用途に使用することができる。たとえば、輸血用の血液の作製には赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ）系統を使用してもよい。他の実施形態では、内皮細胞を使用して新しい血管を作製してもよく、これを局所虚血などの傷害の処置に使用してもよい。あるいは、ある種の実施形態では、鎌状赤血球貧血などの疾患の処置に、本発明に従い分化させた造血細胞を投与してもよい（Ｈａｎｎａ
ｅｔ ａｌ．，２００７）。

多分化能を持つ前駆体と、赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅ）、顆粒球、単球−マクロファージおよび巨核球骨髄系細胞系統の系統の限定を受けた前駆体とを定量するためのインビトロアッセイ系が開発されている。コロニー形成細胞（ＣＦＣ：ｃｏｌｏｎｙ−ｆｏｒｍｉｎｇ ｃｅｌｌ）については、コロニー内の造血系の細胞の１種または複数種の形態学的認識に基づき分類し、計数することができる。コロニーの評価および計数は、ｉｎ
ｓｉｔｕで光学顕微鏡法により行ってもよいし、またはコロニーを個別に採取してから細胞化学的方法および免疫細胞化学的方法により細胞を染色して行ってもよい。ＣＦＣアッセイには寒天、アガロース、メチルセルロース、コラーゲンおよびフィブリンの塊など様々なゲル化剤が使用されている。

いくつかの実施形態では、第２の分化培地でさらに分化を行う。こうした第２の培地は、表１に記載の１種または複数種の成分のほか、以下の１種または複数種を含んでもよい：β−メルカプトエタノール（β−ＭＥ）、ＦＭＳ様チロシンキナーゼ３（ＦＬＴ−３）、幹細胞因子（ＳＣＦ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）またはヘパリン。好ましい実施形態では、第２の培地は、ＩＭＤＭを含み、約２０％ＢＩＴ９５００、約１％非必須アミノ酸、約１％Ｌ−グルタミン＋β−ＭＥ、約２５ｎｇ／ｍＬのＦＬＴ−３、約２５ｎｇ／ｍＬのＳＣＦ、約２５ｎｇ／ｍＬのＴＰＯ、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−３、約１０ｎｇ／ｍＬのＩＬ−６および約５Ｕ／ｍＬのヘパリンをさらに含む。

（Ａ．赤血球分化培地）
造血前駆細胞は、たとえば、赤血球分化培地を用いて赤血球細胞に分化させてもよい。赤血球分化培地は、無血清培地でも、または規定された培地でもよく、培地はＳＣＦ、ＥＰＯ、インスリン、デキサメタゾンおよび／またはトランスフェリンを含んでもよい（Ｓｌｕｋｖｉｎ ｅｔ ａｌ．，２００７）。

（Ｂ．メチルセルロース）
造血前駆細胞から赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓ）、マクロファージおよび／または顆粒球を分化誘導するのにメチルセルロースを使用してもよい。メチルセルロースは、光学的透明度に優れた安定なゲルを形成する比較的不活性なポリマーである。メチルセルロースは一般に、ウシ胎仔血清（ＦＢＳ：ｆｅｔａｌ ｂｏｖｉｎｅ ｓｅｒｕｍ）、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、２−メルカプトエタノール、インスリン、トランスフェリン、組換えサイトカインなどの化合物を補充した培養培地、またはコロニー刺激因子の供給源であるコンディション培地において約０．９〜１．２％の最終濃度で使用される。メチルセルロースによる細胞分化に関する方法については、たとえば、Ｋａｕｆｍａｎ ｅｔ ａｌ．（２００１）に記載されている。

メチルセルロースを用いた培地を用いれば、他の種の半固形マトリックスより赤血球系統細胞を増殖させやすくなり、したがって同じ培地内で赤血球、顆粒球、単球および多分化能を持つＣＦＣのアッセイが可能になる。巨核球前駆体は、好適にはコラーゲンを補充した培地で培養し、免疫細胞化学的染色により特異的に同定する。

（Ｃ．巨核球分化培地）
巨核球の生成を誘導するには、巨核球分化培地を使用してもよい。巨核球の生成に関する様々な製品およびアプローチについては、たとえば国際公開第２００６／０５０３３０号に記載されており、これを本発明に使用してもよい。さらに、Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ，ＢＣ，Ｃａｎａｄａ）からＭｅｇａｃｕｌｔ^ＴＭが市販されており、巨核球の生成／分化に使用してもよい。種々の実施形態では、巨核球分化培地にトロンボポエチン（ｔｈｒｏｍｂｏｐｏｅｉｔｉｎ）（ＴＰＯ）、インターロイキン３（ＩＬ−３）、インターロイキン６（ＩＬ−６）、Ｆｌｔ−３リガンドおよび／または幹細胞因子を加えてもよい。細胞を巨核球分化する方法については、たとえば、Ｋａｕｆｍａｎ ｅｔ ａｌ．（２００１）に記載されている。

（Ｄ．内皮細胞の作製）
本明細書に記載の方法により得られたＣＤ３４＋集団は、血液内皮（または血管芽細胞）および内皮前駆体をさらに含んでもよい。内皮細胞は、たとえば、以下のプロトコルにより作製することができ、動物またはヒト被験体への移植に使用してもよい。ヒトＥＳ細胞由来のＣＤ３４＋細胞は、ＥＧＭ^ＴＭ−２培地（Ｌｏｎｚａ，Ｗａｌｋｅｒｓｖｉｌｌｅ，ＭＤ）、あるいは５０ｎｇ／ｍＬのｒｈＶＥＧＦおよび５ｎｇ／ｍＬのｒｈＦＧＦ−２を含む分化培地で７〜１０日間培養すればよい。内皮細胞は、４℃、２５ｍＭのＨｅｐｅｓ（Ｓｉｇｍａ）緩衝ＥＧＭ^ＴＭ培地中のラットテイルコラーゲン、タイプ１（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）などのコラーゲン（１．５ｍｇ／ｍＬ）およびヒト血漿フィブロネクチン（９０ｍｇ／ｍＬ）（Ｓｉｇｍａ）の約１ｍＬの溶液に懸濁してもよい。ｐＨは、１Ｎ ＮａＯＨ（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ，ＮＪ）を使用して７．４に調整すればよい。次いでこの細胞懸濁物を、１２ウェルプレート（Ｆａｌｃｏｎ）にピペットで移し、３０分間３７℃に加温し、コラーゲンを重合させてもよい。凝固させた各ゲル構造物は、加温した１ｍＬのＥＧＭ培地でカバーしてもよい。細胞は、５％ＣＯ_２で約１日間培養してもよい。ある種の実施形態では、細胞を厚いＭａｔｒｉｇｅｌ^ＴＭ層内で増殖させ、内皮表現型のマーカーとなる管状構造の形成を調査して細胞が本当に内皮細胞であることを確認してもよい。

（ＶＩＩＩ．内皮前駆細胞の分化）
本発明の方法は、胚性幹細胞から内皮細胞を分化させるために使用してもよい。いくつかの実施形態では、本方法は、胚性幹細胞を内皮前駆細胞に分化させる最初のステップ、続いて内皮前駆細胞を分取し、さらに内皮細胞に分化させる追加のステップを含む。たとえば、幹細胞（ｈＥＳＣまたはｉＰＳ細胞など）は、本明細書に記載するように播種し、増殖させてもよい。いくつかの実施形態では、フィブロネクチンまたはコラーゲンコートプレートなどのマトリックス成分を使用してｈＥＳＣまたはｉＰＳ細胞を播種する。ある種の実施形態では、少なくとも一部がマトリックス成分でコーティングされた固体支持層に細胞を播種する。細胞は、培養面１平方センチメートル当たり約１０，０００幹細胞から培養面１平方センチメートル当たり約８０，０００幹細胞で播種してもよい。特定の実施形態では、培養面１平方センチメートル当たり約２０，０００幹細胞から培養面１平方センチメートル当たり約７０，０００幹細胞の密度で細胞を播種する。細胞は、ブレビスタチンなどのミオシンＩＩインヒビターまたはＨ１１５２などのＲＯＣＫインヒビターを含んでもよいＴｅＳＲ培地で培養してもよい。

いくつかの実施形態では、約５．５％未満酸素の低酸素雰囲気など低酸素（ｌｏｗ ｏｘｙｇｅｎ）条件下で一晩細胞を増殖させる。次いでこの細胞を、表１に記載の１種または複数種の成分を含む培地で増殖させればよい。ある種の実施形態では、培地は、表１に記載の成分をすべて含む。

細胞を十分に増殖および分化させた後、内皮前駆細胞は、他の細胞から分離してもよい。たとえば、細胞は、細胞表面マーカーＣＤ３１の発現に基づき（ＭＡＣＳ技術を用いて）磁気的に分取してもよい。分取した内皮前駆細胞は、マトリックス成分、および表１に記載の１種または複数種の成分を含む培地を用いてさらに分化および増殖させてもよい。いくつかの実施形態では、この第２の分化培地は、表１に記載の成分をすべて含み、ある種の実施形態では、第２の分化培地は、表１に記載の成分を記載した好ましい濃度ですべて含む。特定の実施形態では、第２の分化培地は、表１に記載の成分をすべて含み、ｂＦＧＦ濃度が約１ｎｇ／ｍＬ〜約５０ｎｇ／ｍＬ、または約５ｎｇ／ｍｌである。その後細胞を増殖させ、機能性についてアッセイしてもよい。

（ＩＸ．バイオリアクターおよび自動化）
幹細胞の培養および／または多能性幹細胞からの造血前駆細胞および内皮前駆細胞の分化を行う１つまたは複数のステップは、自動化してもよい。ロボットまたは他の自動化によりプロセスを自動化すれば、細胞の作製、培養および分化の方法をより効率的かつ経済的なものにすることができる。たとえば、ロボットによる自動化は、その全体を参照によって本明細書に援用する米国特許出願公開第２００９／００２９４６２号に記載されているように利用してもよい。

さらに、本発明に従い細胞（たとえば、ヒト胚性幹細胞、ＣＤ３４＋細胞、ＣＤ３１＋細胞、造血細胞など）の培養、維持および／または分化を行うため、本発明と共にバイオリアクターを使用してもよい。バイオリアクターには、細胞量を増加させるプロセスを「スケールアップ」できるという利点がある。本発明では、バッチ式バイオリアクター、流加式バイオリアクター、連続式バイオリアクター（たとえば、連続撹拌槽型反応器モデル）および／またはケモスタットなどの様々なバイオリアクターを使用してもよい。

ある種の実施形態では、本発明にＴｅｃａｎ Ｃｅｌｌｅｒｉｔｙシステムを使用してもよい。ｈＥＳＣは、ＣＤ３４／４３＋細胞に分化誘導するためフラットプレートを使用してロボットで培養してもよい。細胞の分離が起きたら、大量の細胞を得るためスピナーフラスコまたはバイオリアクターを使用してもよい。

具体的に本発明への使用を想定したロボットによる自動化は、たとえば、Ｔｅｃａｎ（ＣＡ，ＵＳＡ）により行ってもよい。ロボット技術は、サンプル間のキャリーオーバーを最小限に抑えるために、キャップピアッシングプローブおよびディスポーザブルチップなどの液体ハンドリングツールを含んでもよい。種々の実施形態では、（たとえば、ｈＥＳＣの維持または増殖、ｈＥＳＣの造血細胞または内皮細胞への分化、または造血細胞の赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓ）などその後の系統への分化において）細胞培養を目的に、１つまたは複数のバイオリアクターと共にロボットを使用してもよい。

さらに、本発明のアプローチは、個別化された多能性細胞の生存率を高めるため、ＲＯＣＫインヒビターＨＡ１００およびＨ１１５２を培地に加えることにより、ロボットによる自動化を用いて、単一細胞アッセイに使用できる。種々の実施形態では、ロボットにおいて小分子ＨＡ１００またはＨ１１５２を培養系に加えると、多能性細胞の生存率を高めることができる。これらのまたは類似の小分子を加えないと、細胞を小集塊またはコロニーで継代しない限り、通常ＴｅＳＲ中の多能性細胞の生存率は低くなる。ＲＯＣＫインヒビターを用いると、個別化された多能性細胞は表面に付着して増殖できる。こうして、この方法が単一のＥＳ細胞で機能することで、たとえば多能性細胞の増殖からＣＤ３４＋分化に至る全プロセスを、規定された条件で完全に自動化することができる。

（Ｘ．キット）
本発明はさらに、本発明に従い使用されるキットも意図している。たとえば、キットは、１つまたは複数の密封バイアルに本明細書に記載の分化培地を含んでもよい。キットは、多能性幹細胞、前駆細胞、造血前駆細胞または内皮前駆細胞などの細胞を含んでもよい。

キットは、造血前駆細胞または内皮前駆細胞などの前駆細胞を作製するための説明書をさらに含んでもよい。あるいは、説明書は、造血細胞、内皮細胞、マスト細胞、樹状細胞、巨核球、顆粒球、マクロファージまたは赤血球（ｅｒｙｔｈｒｏｃｙｔｅｓ）の作製に関するものであってもよい。

好適なキットは、チューブ、バイアルならびに収縮包装パッケージおよび吹込成形パッケージなど好適な容器およびパッケージ材料に、本発明に従い使用される様々な試薬を含む。

本発明によるキットに含めるのに好適な材料として、以下の１種または複数種があるが、これに限定されるものではない：マトリックス成分、フィブロネクチン、コラーゲン、ＲＧＤペプチド、ＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、Ｌ−グルタミン、非必須アミノ酸、モノチオグリセロール、ペニシリン、ストレプトマイシン、Ｒｈｏ関連キナーゼ（ＲＯＣＫ）のインヒビター、ミオシンＩＩのインヒビター、アミノ酸、ＴｅＳＲ培地、ＴｅＳＲ２培地、ｍＴｅＳＲ培地、酵素、トリプシン、ｔｒｙｐＬＥ、抗生物質、ビタミン、塩、ミネラルまたは脂質。

（ＸＩ．スクリーニングアッセイ）
本発明は、多能性幹細胞の前駆細胞への分化を促進する能力について候補物質を見分けるのに有用なスクリーニングアッセイなどスクリーニングアッセイを意図している。

本明細書で使用する場合、「候補物質」という用語は、多能性幹細胞の前駆細胞への分化に影響を与える任意の物質をいう。ある種の実施形態では、候補物質が、多能性幹細胞の前駆細胞への分化を促進する。候補物質は、天然由来の化合物のフラグメントまたは一部を含んでもよいし、またはそうでなければ不活性である公知の化合物の活性な組み合わせとしてのみ発見されたものであってもよい。一実施形態では、候補物質は小分子である。なお他の実施形態では、候補物質として、小分子、ペプチドまたはそのフラグメント、ペプチド様分子、核酸、ポリペプチド、ペプチド模倣物、炭水化物、脂質、タンパク質、酵素、塩、アミノ酸、ビタミン、マトリックス成分、インヒビター、抗生物質、抗体、抗体フラグメント、ミネラル、脂質または他の有機（炭素を含む）分子または無機分子を挙げることができるが、これに限定されるものではない。

（ＸＩＩ．治療薬）
本発明はさらに、本明細書に開示された方法により得られた薬学的有効量の前駆細胞、造血細胞または内皮細胞を被験体に投与することにより疾患、障害または傷害を処置する方法も意図している。本発明によるこれらの組成物の投与は、その経路により標的組織に利用可能になるのであれば、一般に使用されるどのような経路により行ってもよい。これには、静脈内注射、脊髄内注射または脳内、皮内、皮下、筋肉内または腹腔内の方法など全身性または非経口の方法による投与が含まれる。投与は、治療の性質に応じ経口手段、経鼻手段、頬粘膜手段、直腸手段、経膣手段または局所手段により行ってもよい。

本明細書に開示された方法により処置され得る疾患または障害として、血管疾患または障害、免疫学的疾患または障害、神経疾患または障害、血液疾患または障害、または傷害があるが、これに限定されるものではない。たとえば、開示された方法により作製された内皮細胞を使用して、局所虚血などの傷害の処置に使用し得る新しい血管を作製してもよい。さらに、本発明に従い作製された造血前駆細胞を、輸血に使用できる血液細胞に分化させてもよい。あるいは、ある種の実施形態では、本発明に従い分化させた造血細胞を、鎌状赤血球貧血などの疾患を処置するために投与してもよい（Ｈａｎｎａ ｅｔ ａｌ．，２００７）。

（ＸＩＩＩ．実施例）
以下の例は、本発明の好ましい実施形態を説明するために含まれる。以下の実施例に開示された技法は、本発明者により発見された技法であり、本発明の実施の際に非常に役立つものであり、したがって本発明を実施するための好ましい態様になると考えられることを当業者は理解されたい。しかしながら、本開示に照らして、開示される個々の実施形態において多くの変更が可能であり、依然として本発明の精神および範囲を逸脱せずに同様または類似の結果が得られることを当業者は理解されたい。

（実施例１）
（ヒト胚性幹細胞のＣＤ３４＋造血細胞への規定された分化）
継代４１代目のヒト胚性幹細胞をフィブロネクチンコートプレートに蒔き、ＴｅＳＲ培地で７日間培養した。７日目に、培地をＴｅＳＲ培地からＣＤ３４分化培地に交換した。ＣＤ３４分化培地は、表１にＩＭＤＭとして上述したものであり、ＢＩＴ９５００、ＢＭＰ４、ＶＥＧＦ、ｂＦＧＦ、非必須アミノ酸、Ｌ−グルタミン、Ｐｅｎ−ｓｔｒｅｐおよびモノチオグリセロールを含む。

この培地で合計１０日間細胞を維持し、培地の交換をほぼ１日おきに行った。この期間の終了時にＣＤ３４＋細胞を集団全体からＭＡＣＳ磁気ソーティング技術を用いて分離した。ＣＤ３４＋細胞は集団全体の１４％を占め、分取した細胞は９５％超純粋だった。

単にＣＤ３４＋状態にとどまらず成熟した（full-fledged）血液へと分化が確実に進行できるように、これらの細胞を赤血球分化培地に蒔いた。

１４日後、これらの細胞を、赤血球のマーカーであるグリコホリンＡの発現についてアッセイした。アッセイした細胞の約９０％はこの時点でグリコホリンＡを発現していたことから、この方法で赤血球の作製がうまくいったことが示された。

さらに試験を行い、より広範囲の血液細胞型を作製する本方法の能力を評価した。本発明者らの確立した分化プロトコルにより巨核球の作製に成功し、さらにＳｔｅｍ Ｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ｖａｎｃｏｕｖｅｒ，ＢＣ，Ｃａｎａｄａ）から入手可能でＫａｕｆｍａｎ ｅｔ ａｌ．（２００１）に記載されているメチルセルロース分化系を用いて顆粒球、マクロファージおよび赤血球のコロニーを作製した。

最も高率のＣＤ３４＋細胞を作製するのにかける期間を最適化するため、試験を行った。分化培地の細胞について、８日目から１４日目にかけて１日おきにＣＤ３４およびＣＤ４３の発現をアッセイした。ＣＤ３４およびＣＤ４３の発現はどちらも１０日目にピークに達した。

定義された明らかな系ではｈＥＳＣからのＣＤ３４＋細胞の作製における一貫性が向上し、複数の実験においてヒト胚性幹細胞から約１２〜１４％のＣＤ３４＋細胞が一貫して分化された。

このアプローチによって、この系において本質的にすべて、またはすべての非ヒト動物由来生成物（すなわち、血清、フィーダー細胞など）を除去できる。また、間質細胞、および胚体の形成に伴う複雑なステップが存在しないため、拡張性／自動化の可能性が高まる。

（実施例２）
（個別化された胚細胞のＣＤ３４＋造血細胞への規定された分化）
どのような分化方法を実施しても、投入されるＥＳのコロニーサイズおよびコロニー密度が変われば、成績に著しいばらつきが生じる可能性がある。したがって、分化を惹起する前にＥＳコロニーの個別の細胞への分散について調査した。培養したＥＳ細胞の集団を分散させるか、あるいはトリプシンまたはＴｒｙｐＬＥで個別化した。次いでＲＯＣＫインヒビター（Ｈ１１５２、１μＭ）を使用して、あるいは使用せずに、分散させたＥＳ細胞をＴｅＳＲ培地に播種した。個別化した培地を用いて本明細書に記載の分化手順を実施した。

（結果）
ＴｅＳＲ培地のフィブロネクチンコート表面に蒔いた、個別化したＥＳ細胞は、ＲＯＣＫインヒビター（たとえば、１ｕＭのＨ１１５２）などの生存因子を添加しなければ、接着せず、生存できない。さらに、播種密度が低すぎると（約１×１０^４細胞／ｃｍ^２未満）、細胞はＲＯＣＫインヒビターの存在下でも剥離し、生存能を失う。高すぎる細胞密度（５×１０^４細胞／ｃｍ^２超）で播種すると、細胞は接着した状態が続くが、血液内皮前駆体に分化できない。これらの上限と下限との間の最適な播種密度は、細胞増殖に使用する方法、継代数およびＥＳ細胞の全体的な状態によって異なる。

経時的研究により、ＥＳ細胞を個別化した細胞として蒔く培地と、ＥＳ細胞をコロニーとして蒔く培地との間では分化動態が異なり、血液内皮前駆細胞の生成ピークがそれぞれ６〜９日目と、８〜１２日目であることが明らかになった。

（実施例３）
（低酸素（ｌｏｗ ｏｘｙｇｅｎ）状態、すなわち低酸素状態でのＥＳ細胞からの造血分化誘導）
この分化方法の再現性および効率の改善を目的として、血液内皮前駆細胞の生成における低酸素状態を検討した。胚の増殖の非常に早い段階で低酸素がインビボで重要な役割を果たしていることは明らかになっている。心血管系が確立される前の哺乳動物の発生は、３％酸素環境で起こる。諸研究により、生理的低酸素状態が胚の血管形成および造血の重要な制御因子であり得ることが明らかになっている（Ｆｏｒｓｙｔｈｅ ｅｔ ａｌ．，１９９６；Ｒａｍｉｒｅｚ−Ｂｅｒｇｅｒｏｎ ｅｔ ａｌ．，２００４；Ｈａｒｒｉｓｏｎ ｅｔ ａｌ．，２００２；Ｃｉｐｏｌｌｅｓｃｈｉ ｅｔ ａｌ．，１９９３）。

様々な発生段階における造血前駆細胞に対する低酸素（ｌｏｗ ｏｘｙｇｅｎ）の制御作用を試験するため、多能性細胞からの造血分化プロトコルを、酸素レベルの低下を反映するように改変した。窒素ガスをインキュベーター環境に添加して細胞培地の酸素濃度を５％まで低下させた。その結果インキュベーター環境は５％ＣＯ_２、５％Ｏ_２、９０％Ｎ_２からなる。この低酸素雰囲気は、内皮および造血前駆体の分化の増加を促進する。低酸素では、分化誘導から６日後に分析した生存率の高い培地（生細胞率最大７０％）は、最大４０％の血液内皮前駆細胞（ＣＤ３１＋）および最大１４％造血前駆細胞（ＣＤ４３＋）を含み得る。低酸素（ｌｏｗ ｏｘｙｇｅｎ）濃度は、多能性細胞培養の維持に使用する方法と無関係に多能性細胞の造血分化を高める。このプロトコルは、マウス胎仔線維芽細胞をフィーダー細胞として使用するか、あるいはフィーダー非依存性培養系を使用して未分化状態で維持されたｈＥＳＣにおいて試験が行われている。

低酸素雰囲気は、血液内皮分化の最初の誘導にのみ必要であるものかもしれない。成人骨髄では低酸素雰囲気が自然に生じるため、酸素レベルの勾配で造血発生の様々な段階が起こり、造血前駆細胞は低酸素ニッチに存在し、増殖する前駆体は酸素勾配に沿って分布する。したがって、造血前駆細胞の段階を生成するのに低酸素雰囲気を使用し、続いてその後の分化ステップの環境には通常の環境中酸素レベルを使用することを想定することができる。

（実施例４）
（幹細胞の内皮細胞への規定された分化）
（材料および方法）
ｈＥＳＣまたはｉＰＳ細胞を２０，０００〜７０，０００細胞／ｃｍ^２の密度でフィブロネクチン（３〜５μｇ／ｃｍ２）またはコラーゲンコートプレートに播種した。この細胞を、ＲＯＣＫインヒビターＨ１１５２を含むＴｅＳＲ１培地で増殖させた。細胞は、低酸素（ｌｏｗ ｏｘｙｇｅｎ）インキュベーター（５％酸素）に一晩入れた。

細胞を分化させるため、翌日培地を、表１に開示した成分の組み合わせを含む培地に交換した。培養から３日後、培地を、表１に開示した成分の組み合わせを含む培地に交換し、ただし、培地にＢＭＰ４は加えなかった。

分化から６日後、細胞表面マーカーＣＤ３１の発現に基づき細胞を（ＭＡＣＳを用いて）磁気的に分取した。次いでＣＤ３１＋細胞を、表１に開示した成分を含む培地中のフィブロネクチンに蒔いた（約０．４μｇ／ｃｍ２〜５μｇ／ｃｍ２の濃度）。あるいは、ｂＦＧＦ濃度を５ｎｇ／ｍｌに低下させてもよい。次いで細胞を増殖させ、機能性についてアッセイした。

（結果）
この方法により得られた細胞は、内皮細胞の分子的および機能的特徴を示した。たとえば、この細胞はＣＤ３１を発現し、一生を通じてＣＤ３１を発現し続けた。また、細胞は、ＣＤ１０５（エンドグリン）およびｖｏｎ Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ因子（第ＶＩＩＩ因子とも呼ばれる）も発現した。さらに、細胞は、アセチル化ＬＤＬを取り込むこともできた。この細胞は機能的には、マトリゲルの厚い層に血管様チューブ構造を形成することができた。これらの結果から、使用した方法により内皮細胞が作製されることが示される。

本明細書に開示し、特許請求する組成物および方法はすべて、本開示に照らして過度の実験を行うことなく製造および実施することができる。好ましい実施形態によって本発明の組成物および方法を記載してきたが、本発明の概念、精神および範囲を逸脱することなく、本明細書に記載の組成物および方法、さらに方法のステップまたはステップの順序は変更されてもよいことが当業者には明らかになる。より具体的には、本明細書に記載の作用因子の代わりに化学的にも生理学的にも関係がある特定の作用物質を使用しても、同一または類似の結果が得られると考えられることが明らかである。当業者に明らかなこうした類似の代用および変更の全ては、添付の特許請求の範囲で規定される本発明の精神、範囲および概念の範囲内と見なされる。

（参考文献）
以下の参考文献については、本明細書の記載内容を補足する例示的な手順またはその他の詳細を提供する範囲で、参照によって個々に本明細書に援用する。

Claims (1)

1. 明細書に記載の発明。