JP2015125051A - 血中フィラリア幼虫の検出方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラム - Google Patents

Abstract

【課題】従来に比して作業者の負担が少ない血中フィラリア幼虫の検出方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラムを提供する。
【解決手段】
血液分析装置１は、試料調製部２３において、溶血剤及び染色試薬と血液検体とを混合して測定試料を調製し、測定試料を検出部２４によって測定し、特徴パラメータである蛍光強度、前方散乱光強度、前方散乱光パルス幅、側方散乱光強度を得る。得られた特徴パラメータに基づいて、白血球を分類すると共に、白血球と区別してミクロフィラリアを検出し、ミクロフィラリア数を計数する。情報処理ユニット５が、ミクロフィラリアの計数値を含む分析結果画面を出力する。
【選択図】図１

Description

本発明は、イヌ等の動物の血液からフィラリア幼虫を検出する方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラムに関する。

寄生虫であるフィラリアが寄生することによる疾患はフィラリア症と呼ばれる。フィラリア症は特にイヌに多い疾患であり、主として蚊を媒介して感染する感染症である。感染した動物の体内には、フィラリアの成虫と幼虫が存在する。幼虫の一種であるミクロフィラリアは感染した動物の血液中に存在しており、蚊の吸血時に蚊の体内に移動し、蚊の体内で感染能力を有する感染幼虫となる。蚊が別の動物を吸血するときに、感染幼虫が当該動物の体内に移動することで、感染する。感染幼虫は血流に載って心臓に移動し、心臓及び肺動脈に寄生して発育し、成虫となる。

従来、フィラリア症の検査には、血液検体を顕微鏡で目視観察する直接鏡検法（特許文献１参照）と、フィラリア感染検体に特有の抗原を検出する免疫検査キットによる検査法（特許文献２参照）とが用いられてきた。

米国特許第４０２５３０６号明細書 特表平１１−５０３６０９号公報

しかしながら、上述した直接鏡検法によるフィラリア症の検査では、獣医師等の検査者が血液検体中のミクロフィラリアを目視で観察する必要があり、手間と時間がかかり、検査者の負担が大きいという問題があった。免疫検査キットによる検査では試薬に抗体を使用しているため、一般的に試薬が高価であり、コストがかかる。

本発明は斯かる事情に鑑みてなされたものであり、その主たる目的は、従来に比して作業者の負担が少なく、低コストで迅速に血中フィラリア幼虫を検出する方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラムを提供することにある。

上述した課題を解決するために、本発明の一の態様の血中フィラリア幼虫の検出方法は、動物から採取された血液検体から測定試料を調製するステップと、調製された測定試料をフローセルに流すステップと、前記フローセルを流れる測定試料に光を照射するステップと、光が照射された測定試料から発せられる光を検出するステップと、検出された光の特徴パラメータに基づいて、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップと、を有する。

これにより、フィラリア幼虫を直接目視で観察したり、高価な免疫検査キットを使用したりする必要がなく、検査者の負担を低減しつつ低コストで迅速にフィラリア幼虫を検出することが可能となる。

この態様において、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、前記特徴パラメータに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出してもよい。これにより、高精度にフィラリア幼虫を検出することが可能となる。

また、上記態様において、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、少なくとも２種類の特徴パラメータに基づいて、測定試料中の粒子を血球とフィラリア幼虫とに分類し、分類された血球及びフィラリア幼虫のそれぞれを個別に計数してもよい。これにより、フィラリア幼虫だけでなく、血液検体に含まれる血球も検出することができる。また、血球及びフィラリア幼虫を定量的に測定することができる。

また、上記態様において、前記血球は白血球であり、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、測定試料中の白血球を複数種類に分類し、分類された各種類の白血球を種類毎に計数してもよい。これにより、血液検体の１回の測定で、フィラリア幼虫の検出だけでなく、白血球の分類も行うことができる。

また、上記態様において、前記少なくとも２種類の特徴パラメータそれぞれの座標軸を有し、前記座標軸で規定される座標空間におけるフィラリア幼虫の分布を示す分布図と、フィラリア幼虫の計数結果とを含む画面を出力するステップをさらに有してもよい。これにより、検査者は、フィラリア幼虫がどのような分布により出現しているかを視覚的に確認することができ、また、検出されたフィラリア幼虫の数を把握することができる。

また、上記態様において、光を検出するステップでは、光が照射された測定試料から発せられた散乱光を検出し、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、検出された散乱光の特徴パラメータに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出してもよい。

また、上記態様において、前記特徴パラメータは、検出された散乱光信号の幅であってもよい。

また、上記態様において、測定試料を調製するステップでは、血中の粒子を染色する染色試薬を血液検体に混和して測定試料を調製し、光を検出するステップでは、光が照射された測定試料から発せられた散乱光及び蛍光を検出し、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、散乱光に関する特徴パラメータと蛍光に関する特徴パラメータとに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出してもよい。

また、上記態様において、前記散乱光に関する特徴パラメータは散乱光強度であり、前記蛍光に関する特徴パラメータは蛍光強度であってもよい。

また、上記態様において、光を検出するステップでは、光が照射された測定試料から互いに異なる方向に発せられた第１散乱光及び第２散乱光を検出し、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、第１散乱光に関する特徴パラメータと第２散乱光に関する特徴パラメータとに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出してもよい。

また、上記態様において、前記第１散乱光に関する特徴パラメータは第１散乱光強度であり、前記第２散乱光に関する特徴パラメータは第２散乱光強度であってもよい。

また、上記態様において、測定試料を調製するステップでは、血液検体に溶血剤を混和して測定試料を調製してもよい。

また、上記態様において、前記血液検体は、イヌから採取されたものであってもよい。

また、上記態様において、自動血球分析装置を用いて、上記各ステップを自動的に実行するようにしてもよい。

また、上記態様において、測定試料を調製するステップでは、免疫学的手法を用いることなく測定試料を調製してもよい。

また、本発明の一の態様の血液分析装置は、動物から採取された血液検体から測定試料を調製する試料調製部と、前記試料調製部によって調製された測定試料が供給されることにより、試料流を形成するフローセルと、前記フローセルに形成された試料流に光を照射する光源と、前記光源によって光が照射された測定試料から発せられる光を受け、受光量に応じた信号を出力する光検出部と、前記光検出部からの出力信号に含まれる特徴パラメータに基づいて、測定試料中のフィラリア幼虫を検出する制御部と、を備える。

また、本発明の一の態様のコンピュータプログラムは、動物から採取された血液検体から調製された測定試料をフローセルに流し、前記フローセルを流れる測定試料に光を照射し、光が照射された測定試料から発せられる光を光検出部によって検出したときに、コンピュータに、血中のフィラリア幼虫を検出させるためのコンピュータプログラムであって、前記光検出部により検出された光の特徴パラメータを含む測定データを取得するステップと、取得された前記測定データに含まれる前記特徴パラメータに基づいて、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップと、を前記コンピュータに実行させる。

本発明に係る血中フィラリア幼虫の検出方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラムによれば、従来に比して検査者の負担を低減することが可能となる。

実施の形態に係る血液分析装置の構成を示す模式図。 光学検出器の概要構成を示す図。 前方散乱光に関する特徴パラメータを模式的に説明するためのパルス信号のグラフ。 血液分析装置の白血球分類及びミクロフィラリア検出測定における動作手順を示すフローチャート。 測定データにおける前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のスキャッタグラム。 測定データにおける側方散乱光強度及び蛍光強度のスキャッタグラム。 分析結果画面の一例を示す図。 フィラリア症感染動物から採取された検体及び正常検体をＸＮ−１０００のＷＤＦチャンネルで分析した結果のスキャッタグラム。 フィラリア症感染動物から採取された検体及び正常検体をＸＮ−１０００のＷＮＲチャンネルで分析した結果のスキャッタグラム。 フィラリア症感染動物から採取された３つの検体について、ＸＮ−１０００のＷＤＦチャンネル、ＷＮＲチャンネル、及び目視によるミクロフィラリアの各測定値を比較したグラフ。 前方散乱光に関する他の特徴パラメータの例を模式的に説明するためのパルス信号のグラフ。

以下、本発明の好ましい実施の形態を、図面を参照しながら説明する。本実施形態の方法は、フローサイトメータを搭載した自動血液分析装置を用いて、動物から採取された血液に含まれるフィラリア幼虫の一種であるミクロフィラリアを検出する方法である。

［血液分析装置の構成］
図１は、本実施の形態に係る血液分析装置の構成を示す模式図である。本実施の形態に係る血液分析装置１は、動物から採取された全血検体に含まれる血球を種類毎に検出し、各血球を計数する、動物用多項目血球分析装置である。血液分析装置１は、イヌ、ネコ、ウサギなどの種々の動物種の中から一の動物種の指定を受け付けることで、指定された動物種に応じた測定モードで動作する多動物種対応型の血液分析装置である。図１に示すように、血液分析装置１は、測定ユニット２と、測定ユニット２を制御可能な情報処理ユニット５とを備えている。

動物（例えば、イヌ）から採取された末梢血である全血検体は、検体容器（採血管）Ｔに収容される。この検体容器Ｔに収容された全血検体が、測定ユニット２によって測定される。なお、本実施形態の血液分析装置は、イヌ、ネコ、ウサギ等の飼育用及び家畜用の動物を主な検査対象としている。本明細書において動物という用語を用いる場合は、ヒトも含まれる。

＜測定ユニットの構成＞
測定ユニットの構成について説明する。図１に示すように、測定ユニット２は、検体容器Ｔを測定ユニット２の筐体内に取り込む検体容器設置部２１と、血液検体を検体容器Ｔから吸引する検体吸引部２２と、検体吸引部２２により吸引した血液から測定に用いられる測定試料を調製する試料調製部２３と、試料調製部２３により調製された測定試料から血球を検出する検出部２４と、ＣＰＵ及びメモリ等からなる制御部２５とを有している。

検体容器設置部２１は、検体容器Ｔを挿入可能な穴部２１ａを有しており、検体容器Ｔをこの穴部２１ａに挿入することで設置可能である。また、検体容器設置部２１は、測定ユニット２の筐体の内外を移動可能である。検体容器Ｔが設置された検体容器設置部２１が測定ユニット２の外側から内側へと移動することで、検体容器Ｔが測定ユニット２に取り込まれる。また、検体容器Ｔを測定ユニット２から排出する場合には、検体容器Ｔが設置された検体容器設置部２１が測定ユニット２の内側から外側へと移動する。

検体容器設置部２１は、測定ユニット２の内部の吸引位置２１ｂへ移動可能である。検体容器設置部２１が吸引位置２１ｂへ移動したときには、検体吸引部２２により、検体容器Ｔから血液検体が吸引される。

検体吸引部２２は、吸引管２２１を有している。また、検体吸引部２２はシリンジポンプ（図示せず）を備えている。吸引管２２１は、鉛直方向に移動可能であり、下方に移動されることにより、吸引位置２１ｂまで搬送された検体容器Ｔ内の血液検体を吸引するように構成されている。

試料調製部２３は、図示しない混合チャンバを備えている。吸引管２２１は、シリンジポンプによって検体容器Ｔから所定量の全血検体を吸引し、吸引された検体は、混合チャンバの位置へ移送され、前記シリンジポンプによって、混合チャンバへ所定量の全血検体を供給する。また、試料調製部２３は、混合チャンバを加温するためのヒータを備えている。

試料調製部２３には、試薬容器２３ａがチューブを介して接続されている。詳細には、溶血剤を収容する試薬容器、染色試薬を収容する試薬容器、及びシース液（希釈液）を収容する試薬容器等が試料調製部２３に接続されている。上記の溶血剤及び染色試薬は、後述するような白血球分類及びミクロフィラリア測定用の試薬である。これら溶血剤および染色試薬は、いずれも免疫学的手法を用いることなくミクロフィラリアを検出できる試薬である。「免疫学的手法を用いることなく」とは、ミクロフィラリアの細胞表面抗原を認識して結合可能な抗体を用いないことをいう。試料調製部２３の混合チャンバには、かかる試薬容器２３ａから試薬が供給されるようになっている。

検出部２４は、白血球分類及びミクロフィラリア測定を行うことができる光学検出器Ｄを有している。白血球分類及びミクロフィラリア測定では、血液検体中に存在する白血球がＬＹＭＰＨ（リンパ球）、ＥＯ（好酸球）、ＮＥＵＴ（好中球）、ＢＡＳＯ（好塩基球）、及びＭＯＮＯ（単球）の５つのサブクラスに分類される。また、白血球分類及びミクロフィラリア測定では、上記の白血球の５分類と共に、血液検体中のミクロフィラリアが検出される。

かかる白血球分類及びミクロフィラリア測定においては、全血検体、上記の溶血剤、及び上記の染色試薬が混合された測定試料が試料調製部２３によって調製され、調製された測定試料が光学検出器Ｄに供給され、このときに光学検出器Ｄによって特徴パラメータ（蛍光強度、前方散乱光強度、前方散乱光パルス幅、及び側方散乱光強度）が検出される。測定によって得られた特徴パラメータは測定データとして制御部２５を介して情報処理ユニット３に供給され、情報処理ユニット３が測定データを解析することによって全血検体中の白血球の検出及び分類、並びにミクロフィラリアの検出が行われる。

図２は、光学検出器Ｄの概要構成を示す図である。この光学検出器Ｄは、フローセル２３１に測定試料及びシース液を送り込み、フローセル２３１中に液流を発生させ、フローセル２３１内を通過する液流に含まれる粒子にレーザ光を照射して測定するものであり、シースフロー系２３２、ビームスポット形成系２３３、前方散乱光受光系２３４、側方散乱光受光系２３５、蛍光受光系２３６を有している。

シースフロー系２３２は、測定試料中の粒子がシース液に包まれた状態で流れるように、測定試料とシース液をフローセル２３１内に流すよう構成されている。ビームスポット形成系２３３は、レーザ光源２３７から照射された光が、コリメータレンズ２３８とコンデンサレンズ２３９とを通って、フローセル２３１に照射されるよう構成されている。また、ビームスポット形成系２３３は、ビームストッパ２４０も備えている。

前方散乱光受光系２３４は、前方への散乱光を前方集光レンズ２４１によって集光し、ピンホール２４２を通った光を前方散乱光受光部２４３で受光するように構成されている。前方散乱光受光部２４３は、受光した前方散乱光の強度に応じたパルス信号を出力する。図３は、前方散乱光受光部２４３により出力されるパルス信号を模式的に示すグラフである。この図に示すように、所定の閾値を超えたパルスのピークの高さが前方散乱光信号強度にあたり、所定の閾値を超えたパルスの幅が前方散乱光パルス幅にあたる。前方散乱光受光部２４３としては、フォトダイオード又はフォトマルチプライヤチューブが用いられる。

側方散乱光受光系２３５は、側方への散乱光を側方集光レンズ２４４にて集光するとともに、一部の光をダイクロイックミラー２４５で反射させ、側方散乱光受光部２４６で受光するよう構成されている。側方散乱光受光部２４６は、受光した側方散乱光の強度に応じたパルス信号を出力する。図３の説明と同様に、所定の閾値を超えたパルスのピークの高さが側方散乱光強度にあたり、所定の閾値を超えたパルスの幅が側方散乱光パルス幅にあたる。側方散乱光受光部２４３としては、フォトダイオード又はフォトマルチプライヤチューブが用いられる。

光散乱は、粒子が光の進行方向に障害物として存在すると、光がその進行方向を変えることによって生じる現象である。この散乱光を検出することによって、粒子の大きさ及び成分に関する情報を得ることができる。前方散乱光強度は、粒子の表面積及び大きさを反映する。側方散乱光強度は、粒子内部の複雑さ（核の形状、核の大きさ、密度及び顆粒の量）を反映する。前方散乱光パルス幅は、粒子がビームスポットを通過するのに要した時間、つまり粒子の全長を反映する。

ミクロフィラリアは、糸状に細長い形状を有しており、白血球その他の血球よりも全長が長い。このため、ミクロフィラリアがシースフローセル２３１中を通過するときの前方散乱光パルス幅は、白血球を含む他の血球がシースフローセル２３１中を通過するときの前方散乱光パルス幅よりも大きい。したがって、前方散乱光パルス幅は、ミクロフィラリアの検出に特に好適に利用することができる。側方散乱光パルス幅も前方散乱光パルス幅とほぼ同様の粒子性状を反映するため、前方散乱光パルス幅に代えて側方散乱光パルス幅をミクロフィラリアの検出に用いてもよい。

蛍光受光系２３６は、ダイクロイックミラー２４５を透過した光をさらに分光フィルタ２４７に通し、蛍光受光部２４８で受光するよう構成されている。蛍光受光部２４８は、受光した側方散乱光の強度に応じたパルス信号を出力する。図３の説明と同様に、所定の閾値を超えたパルスのピーク高さが蛍光強度にあたり、所定の閾値を超えたパルスの幅が蛍光パルス幅にあたる。蛍光受光部２４８としては、フォトダイオード、アバランシェフォトダイオード、又はフォトマルチプライヤチューブが用いられる。

全血検体と溶血剤と染色試薬とが混合されると、染色試薬に含まれる蛍光物質により、血球の核が染色され、また、ミクロフィラリアの表面に蛍光物質が付着する。一般的には、血球の核の方が、ミクロフィラリアよりも強く染色される。蛍光物質により染色された粒子（血球又はミクロフィラリア）に光を照射すると、照射した光の波長より長い波長の光を発する。蛍光の強度はよく染色されていれば強くなり、この蛍光強度を測定することによって粒子の染色度合いに関する情報を得ることができる。したがって、蛍光強度の差は、白血球の分類及びミクロフィラリアの検出に利用することができる。

検出部２４は、光学検出部Ｄの各受光部２４３、２４６、２４８が出力したアナログのパルス信号をデジタル信号に変換して制御部２５に与える。

制御部２５は、ＣＰＵ及びメモリ等から構成されており、制御プログラムを実行することにより、測定ユニット２の各部の制御を行うようになっている。また、制御部２５は、図示しない通信部を備えており、情報処理ユニット３とのデータ通信が可能となっている。検出部２４によってＡ／Ｄ変換されたパルス信号は制御部２５に与えられ、当該制御部２５がそれを波形解析することにより、図３を参照して説明したように、各粒子の特徴パラメータを求めて測定データを生成し、この測定データを情報処理ユニット３へ送信する。特徴パラメータは、各粒子について、蛍光強度、蛍光パルス幅、前方散乱光強度、前方散乱光パルス幅、側方散乱光強度、側方散乱光パルス幅を含む。

＜情報処理ユニットの構成＞
次に、情報処理ユニット５の構成について説明する。情報処理ユニット５は、コンピュータにより構成されている。図１に示すように、コンピュータ５は、ＣＰＵ５１ａ、ＲＯＭ５１ｂ、ＲＡＭ５１ｃ、ハードディスク５１ｄ、読出装置５１ｅ、入出力インタフェース５１ｆ、通信インタフェース５１ｇ、及び画像出力インタフェース５１ｈを備えており、ＣＰＵ５１ａ、ＲＯＭ５１ｂ、ＲＡＭ５１ｃ、ハードディスク５１ｄ、読出装置５１ｅ、入出力インタフェース５１ｆ、通信インタフェース５１ｇ、及び画像出力インタフェース５１ｈは、バス５１ｊによって接続されている。

ハードディスク５１ｄは、オペレーティングシステム及びアプリケーションプログラム等、ＣＰＵ５１ａに実行させるための種々のコンピュータプログラム及び当該コンピュータプログラムの実行に用いられるデータがインストールされている。後述する測定データ解析用のコンピュータプログラム５４ａも、このハードディスク５１ｄにインストールされている。ハードディスク５１ｄに格納されたアプリケーションプログラムは、イヌ、ネコ、ウサギなどの複数の動物種に対応して複数の測定モードを持っている。より詳細には、アプリケーションプログラムが起動され、オペレータによって複数の動物種の中から一の動物種が選択されると、その動物種に対応する測定モードが設定される。ハードディスク５１ｄには、各測定モード用の測定シーケンス及び解析アルゴリズムに基づくプログラムコードが格納されており、ＣＰＵ５１ａは、設定された測定モードに応じたプログラムコードを読み出し、それに基づいて測定ユニット２の制御と、測定ユニット２から得られた測定データの解析を行う。本実施の形態に係るコンピュータプログラム５４ａは、ハードディスク５１ｄに格納されたオペレーティングシステム上で動作する。

読出装置５１ｅは、フレキシブルディスクドライブ、ＣＤ−ＲＯＭドライブ、またはＤＶＤ−ＲＯＭドライブ等によって構成されている。読出装置５１ｅは、コンピュータを情報処理ユニット５として機能させるためのコンピュータプログラム５４ａが格納されたＣＤ又はＤＶＤ等の可搬型記録媒体から、前記コンピュータプログラム５４ａを読み出し、コンピュータプログラム５４ａをハードディスク５１ｄにインストールすることが可能である。

入出力インタフェース５１ｆには、キーボード、マウス、タッチパネル等からなる入力部５３が接続されており、オペレータが当該入力部５３を使用することにより、コンピュータ５ａにデータを入力することが可能である。上述した動物種の入力は、オペレータが入力部５３を操作することにより、ＣＰＵ５１ａに与えられる。

通信インタフェース５１ｇはＬＡＮを介して測定ユニット２の制御部２５に接続されている。これにより、情報処理ユニット５は、測定ユニット２に対して、動作指示データを送信し、また測定データを受信することが可能である。

画像出力インタフェース５１ｈは、ＬＣＤまたはＣＲＴ等で構成された表示部５２に接続されており、ＣＰＵ５１ａから与えられた画像データに応じた映像信号を表示部５２に出力するようになっている。表示部５２は、入力された映像信号にしたがって、画像を表示する。

［血液分析装置の測定動作］
以下、本実施の形態に係る血液分析装置１の動作について説明する。

図４は、血液分析装置１の白血球分類及びミクロフィラリア検出測定における動作手順を示すフローチャートである。まず、情報処理ユニット５のＣＰＵ５１ａは、表示部５２に動物種の選択画面を表示させ、オペレータからの動物種の入力を受け付ける（ステップＳ１）。動物種が入力されると、ＣＰＵ５１ａは入力された動物種に応じた測定モードを設定する（ステップＳ２）。つぎに、測定ユニット２の制御部２５は、測定開始の指示を待機する（ステップＳ３）。測定開始の指示は、測定ユニット２に設けられた、図示しない測定開始スイッチを押下することにより与えられる。制御部２５は、測定開始スイッチの押下がない場合には（ステップＳ３においてＮＯ）、ステップＳ３の処理を繰り返す。

オペレータが、イヌ等の動物から採取された全血検体を収容する検体容器Ｔを、測定ユニット２の外側に出ている検体容器設置部２１の穴部２１ａに挿入し、測定開始スイッチを押下する（ステップＳ３においてＹＥＳ）。これにより、検体の測定動作が開始される。

検体の測定動作が開始されると、検体容器設置部２１が測定ユニット２の内部に後退し、検体容器Ｔが測定ユニット２に取り込まれる。検体容器設置部２１が吸引位置２１ｂまで移動されると、吸引管２２１が検体容器Ｔの内部に挿入され、全血検体が吸引される（ステップＳ４）。

次に、測定ユニット２では、制御部２５の制御によって、測定試料が調製される（ステップＳ５）。この処理では、検体吸引部２２によって吸引された全血検体が試料調製部２３の混合チャンバに所定量供給され、また溶血剤及び染色試薬が試薬容器２３ａから混合チャンバに供給され、混合チャンバ内で血液検体と溶血剤と染色試薬とが混合撹拌されて、測定試料が調製される。

次に、調製された測定試料を対象に光学検出器Ｄにて光学測定が行われる（ステップＳ６）。ステップＳ６の処理においては、具体的には、レーザ光源２３７がフローセル２３１にレーザ光を照射している状態で測定試料とシース液とが同時に光学検出器Ｄのフローセル２３１に供給され、そのときに生じる前方散乱光が前方散乱光受光部２４３で受光され、側方散乱光が側方散乱光受光部２４６で受光され、蛍光が蛍光受光部２４８で受光される。このような光学検出器Ｄの各受光素子により出力される出力信号（アナログ信号）は検出部２４が備えるＡ／Ｄ変換器によりデジタル信号に変換され、検出部２４が備える信号処理回路により所定の信号処理が施されてデジタル信号として制御部２５に与えられる。制御部２５は、かかるデジタル信号から、各粒子に対応する前方散乱光強度、前方散乱光パルス幅、側方散乱光強度、及び蛍光強度を含む各種の特徴パラメータを抽出し、特徴パラメータを含む測定データを生成する。そして、制御部２５が、測定データを情報処理ユニット５へ送信する（ステップＳ７）。

血液分析装置１の情報処理ユニット５は、測定ユニット２から測定データを受信する（ステップＳ８）。

ステップＳ９において、ＣＰＵ５１ａは、測定データを用いて白血球を５つのサブクラスに分類し、各サブクラスに属する血球の数を計数する。また、ステップＳ９の処理では、ミクロフィラリアが他の血球とは区別されて検出され、検出されたミクロフィラリアの数が計数される。

ステップＳ９の処理について詳しく説明する。図５は、前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度を軸にしたスキャッタグラムにおけるクラスターの出現領域を模式的に示した図である。図５に示すスキャッタグラムでは、ミクロフィラリアのクラスターと、白血球のクラスターとが互いに異なる位置に現れる。上述したとおり、ミクロフィラリアは白血球に比べて全長が長いため、白血球に比べて前方散乱光パルス幅において高値の領域に現れる。前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のスキャッタグラムにおいてミクロフィラリアが出現する位置は決まっている。このため、本実施の形態では、ミクロフィラリア検出用のゲート（検出領域）Ｇが予め設定されている。ミクロフィラリア検出用のゲートＧを定義する数値範囲が、ハードディスク５１ｄに記憶されている。ステップＳ９の処理では、ＣＰＵ５１ａは、前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のそれぞれの値が、ミクロフィラリア検出用のゲートＧとして定義された数値範囲内に属する粒子を、ミクロフィラリアとして検出する。また、ステップＳ９の処理では、このようにして検出されたミクロフィラリアの数がＣＰＵ５１ａによって計数される。

図６は、側方散乱光強度及び蛍光強度を軸にしたスキャッタグラムにおけるクラスターの出現領域を模式的に示した図である。図６に示すスキャッタグラムでは、好酸球のクラスター、好中球のクラスター、好塩基球のクラスター、リンパ球のクラスター、単球のクラスター、及びミクロフィラリアのクラスターが現れる。ＣＰＵ５１ａは、図６のスキャッタグラムに示されるように、白血球をミクロフィラリアから区別して、好酸球、好中球、好塩基球、リンパ球、及び単球に分類する。また、ステップＳ９の処理では、このようにして分類された各サブクラスの白血球の数がＣＰＵ５１ａによって計数される。ミクロフィラリアのクラスターは、白血球サブクラスのクラスターと重複していないため、白血球の分類に影響を及ぼすことがない。

次にステップＳ１０において、ＣＰＵ５１ａは、計数したミクロフィラリアの数に基づいて、当該検体の採取元の被検動物が、フィラリア症に罹患している疑いがあるかないかを判別する（ステップＳ１０）。この処理では、計数したミクロフィラリアの数ＣＮが、所定の基準値Ｔ以上であるか否かが判定される。ミクロフィラリア数ＣＮが基準値Ｔ以上である場合には、フィラリア症に罹患している疑いがあると判断され、ミクロフィラリア数ＣＮが基準値Ｔ未満である場合には、フィラリア症に罹患している疑いはないと判断される。

次に、ステップＳ１１において、ＣＰＵ５１ａは、上述のようにして得た分析結果をハードディスク５１ｄに格納する（ステップＳ１１）。さらにＣＰＵ５１ａは、ハードディスク５１ｄに記憶した分析結果を示す分析結果画面を表示部５２に表示させ（ステップＳ１２）、処理を終了する。

分析結果画面には、上記のようにして得られた粒子（血球及びミクロフィラリア）の数及び割合等の数値データ、並びに粒子の分布図が表示される。数値データには、リンパ球、好酸球、好中球、好塩基球、単球、及びミクロフィラリアの各計数値と、リンパ球、好酸球、好中球、好塩基球、単球のそれぞれについての白血球全体の総数に対する割合が含まれる。また、分布図には、側方散乱光強度及び蛍光強度のスキャッタグラム、側方散乱光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラム、並びに前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のスキャッタグラムが含まれる。

図７は、分析結果画面の一例を示す図である。図７に示すように、分析結果画面Ｒには、検体に付与された検体ＩＤ及び被検動物の種類（イヌ、ネコ等）の表示領域Ａ１が、上部に設けられている。また、表示領域Ａ１の下方には、数値データを表示するための表示領域Ａ２と、メッセージを表示するための表示領域Ａ３と、分布図を表示するための表示領域Ａ４とが設けられている。

表示領域Ａ２には、白血球、赤血球、血小板、好中球、リンパ球、単球、好酸球、好塩基球等の各計数値（ＷＢＣ、ＲＢＣ、ＰＬＴ、ＮＥＵＴ＃、ＬＹＭＰ＃、ＭＯＮＯ＃、ＥＯＳＩ＃、ＢＡＳＯ＃）、及び好中球、リンパ球、単球、好酸球、好塩基球それぞれについての白血球総数に対する割合（ＮＥＵＴ％、ＬＹＭＰ％、ＭＯＮＯ％、ＥＯＳＩ％、ＢＡＳＯ％）等の数値データが示される。ミクロフィラリアの計数値は、Ｍ−ＦＩＬＡの項目名で表示されている。

表示領域Ａ３には、上述したステップＳ１０において、被検動物がフィラリア症に罹患している疑いがあると判断された場合に、この旨を示すメッセージ「ｆｉｌａｒｉａｓｉｓ？」が示される。

表示領域Ａ４には、ミクロフィラリアの検出に利用されたスキャッタグラム、つまり、前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のスキャッタグラムＳが示される。

上記のような分析結果画面Ｒが示されることにより、検査者は、表示領域Ａ３に「ｆｉｌａｒｉａｓｉｓ？」のメッセージが表示されていれば、被検動物がフィラリア症に罹患している疑いがあることを把握することができる。また、検査者は表示領域Ａ２のミクロフィラリアの計数値又は表示領域Ａ４のスキャッタグラムＳを確認することで、上記の判断が正しいかどうかを検証することもできる。

また、検査者は、白血球サブクラスの測定結果を確認することで、ミクロフィラリアによる白血球の計数値への影響がないかどうかを判断することもできる。あるいは、白血球サブクラスの計数値を確認することで、フィラリア症に罹患しているとした装置の判断の検証をすることもできる。フィラリア症に感染すると好酸球が増加する傾向にあるため、好酸球の計数値及び比率を基にして分析結果を検証することも可能である。

上記した白血球分類は、健康診断においてほぼ必須の項目とされている血液検査の項目の一つであり、異常が疑われる検体と正常な検体とを弁別する、いわゆるスクリーニング検査の一部として行われる。本実施形態によれば白血球分類と同時にフィラリア症の罹患の有無を検査することが可能になるため、直接検鏡又は専用の検査キットを使用する従来のフィラリア検査を別途行うことなく、一般の健康診断でフィラリア症検体をスクリーニングすることができる。したがって、健康診断を契機にフィラリア症の罹患が疑われる検体をスクリーニングでき、従来は見逃されていたフィラリア感染検体を見つけ、精密検査に付すことができる。また、フィラリア症の早期発見も期待できる。さらに、本実施形態では血液分析装置によって測定試料の調製、ミクロフィラリアの検出、フィラリア症の疑いの判定までを自動化できるため、直接検鏡法又は検査キットを用いる従来法に比べて、検査者の負担を減らすことができる。本実施の形態に係る血液分析装置では、免疫学的な手法を用いることなく測定試料を調製するためコストを抑えることができ、しかもフローサイトメトリー法により迅速な検査が可能である。

さらに本法は定量性の点においても従来のフィラリア検査法より優れている。直接検鏡法又は専用の検査キットを用いる従来のフィラリア検査は、いずれも感染の有無を確認することを目的とする半定量的又は定性的な検査であり、血中ミクロフィラリア数を定量できる検査法はこれまで存在しなかった。従来のフィラリア症の治療は、末梢血中の半定量的なミクロフィラリア指数又は動物の症状から投薬量及び薬剤の種類を判断していたが、ミクロフィラリアの定量的な検査が可能となれば、投薬量及び薬剤の種類といった治療方針を適切に決定できるようになる。本実施形態によるフィラリア検査法によれば、全血検体に含まれるミクロフィラリア数を定量することができ、よって従来のフィラリア検査よりも適切な治療方針の決定に貢献できる。

また、白血球分類用の試薬を使用した１回の検体の測定で、白血球分類と共にミクロフィラリアの検出を行うことが可能であるので、ミクロフィラリアの検出のためだけに試薬を消費することがなく、試薬の消費量を抑制することが可能となる。このことは、試薬の製造量、廃液の処理量を抑制することにつながり、環境に与える負荷を抑制することが可能となる。また、従来の直接鏡検法で消費されていた染料又は検査キットの使用量の低減につながるため、環境に与える負荷を抑制することができる。また、本法は従来の免疫検査キットのような免疫学的手法を用いる方法ではないため、抗体を獲得するための実験動物も不要である。

なお、上述した実施形態では、ミクロフィラリアの検出に用いる特に好適な特徴パラメータの組み合わせとして、前方散乱光パルス幅と前方散乱光強度の組み合わせを例示し、また、蛍光強度と側方散乱光強度の組み合わせにより白血球分類を行う例を示した。このように、白血球分類とは異なる特徴パラメータの組み合わせ、特に前方散乱光パルス幅をミクロフィラリア検出に利用する利点は、ミクロフィラリアが他の血球と最も顕著に相違する粒子全長に着目してミクロフィラリアを検出できる点にある。仮にフィラリア症と他の疾病の合併症などによって血液に異常血球（たとえば幼若球や血小板凝集など）が含まれていたとしても、それら異常血球の全長がミクロフィラリアに比肩することはあり得ないため、ミクロフィラリア以外の異常血球を含む検体であっても信頼性の高いミクロフィラリア検出が可能である。

したがって、前方散乱光パルス幅を用いてミクロフィラリアを検出する形態が最も好ましいが、図６に示すように、前方散乱光信号のパルス幅以外の特徴パラメータであっても、ミクロフィラリアは他の血球と区別して検出することができるため、必ずしも上述の実施形態のように前方散乱光パルス幅を用いる必要はないし、ミクロフィラリア検出と白血球分類とで互いに異なる特徴パラメータを用いる必要もない。後述する図８のＳ１１のように蛍光強度と側方散乱光強度の組み合わせでミクロフィラリアを検出してもよいし、後述する図８のＳ１２のように前方散乱光強度と側方散乱光強度の組み合わせでミクロフィラリアを検出してもよい。

さらに、上述した実施形態では、白血球分類用に調製した測定試料からミクロフィラリアの検出と白血球分類とを行っているが、ミクロフィラリアの検出は白血球分類と同時にする必要はない。ミクロフィラリア検出のためだけに測定試料を調製してもよいし、後述する図９のＳ１４、Ｓ１５のように、白血球を分類することなく、総白血球数（ＷＢＣ）を測定するための測定試料を測定することによって得られた特徴パラメータからミクロフィラリアを検出してもよい。

［検証試験］
発明者らは、本実施の形態に係る血中ミクロフィラリアの検出方法（以下、「本方法」という）の性能を検証する試験を実施した。以下、検証試験について説明する。

シスメックス社製の多項目自動血球分析装置ＸＮ−１０００を改造（ミクロフィラリアを測定可能とするようにソフトウェアを変更）したものを使用して、フィラリア症の被検動物から採取した検体（検体１）と正常検体（検体２）とを分析した。これらの６つの検体のそれぞれについて、ＸＮ−１０００のＷＤＦチャンネル（白血球分類用のチャンネル）及びＷＮＲチャンネル（白血球及び網状赤血球測定用のチャンネル）の両方で測定を行った。ＷＤＦチャンネルでの測定では、ＸＮ−１０００専用の白血球分類用の試薬（溶血剤及び染色試薬）を使用し、ＷＮＲチャンネルでの測定では、ＸＮ−１０００専用の白血球及び網状赤血球測定用の試薬（溶血剤及び染色試薬）を使用した。

図８は、上記の検体１及び２をＷＤＦチャンネルで分析した結果のスキャッタグラムを示す図である。図８において、Ｓ１１は検体１の側方散乱光強度及び蛍光強度のスキャッタグラムであり、Ｓ１２は検体１の側方散乱光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラムであり、Ｓ１３は検体１の前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のスキャッタグラムである。また、Ｓ２１は検体２の側方散乱光強度及び蛍光強度のスキャッタグラムであり、Ｓ２２は検体２の側方散乱光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラムであり、Ｓ２３は検体２の前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度のスキャッタグラムである。

図８に示すように、スキャッタグラムＳ１１において、リンパ球のクラスター、単球のクラスター、好酸球のクラスター、好中球と好塩基球とによって構成された血球群のクラスター、及びミクロフィラリアのクラスターが、別々の位置に出現している。その一方で、スキャッタグラムＳ２１においては、リンパ球のクラスター、単球のクラスター、好酸球のクラスター、及び好中球と好塩基球とによって構成された血球群のクラスターは出現しているが、ミクロフィラリアのクラスターは出現していない。このため、ＷＤＦチャンネルでは、側方散乱光強度及び蛍光強度を使用すれば、リンパ球、単球、好酸球、好中球、及び好塩基球と区別して、ミクロフィラリアを検出可能であることが分かる。

また、スキャッタグラムＳ１２においては、白血球（リンパ球、単球、好酸球、好中球、及び好塩基球）のクラスターと、ミクロフィラリアのクラスターとが、別々の位置に出現している。その一方で、スキャッタグラムＳ２２においては、白血球のクラスターは出現しているが、ミクロフィラリアのクラスターは出現していない。このため、ＷＤＦチャンネルでは、側方散乱光強度及び前方散乱光強度を使用することによっても、白血球と区別して、ミクロフィラリアを検出可能であることが分かる。

また、スキャッタグラムＳ１３においては、白血球のクラスターと、ミクロフィラリアのクラスターとが、別々の位置に出現している。その一方で、スキャッタグラムＳ２３においては、白血球のクラスターは出現しているが、ミクロフィラリアのクラスターは出現していない。このため、ＷＤＦチャンネルでは、前方散乱光パルス幅及び前方散乱光強度を使用することによっても、白血球と区別して、ミクロフィラリアを検出可能であることが分かる。

さらに、スキャッタグラムＳ１３において、前方散乱光強度（縦軸）については白血球が概ね全体に亘って分布しており、白血球の出現領域とミクロフィラリアの出現領域とが重なっている。その一方で、前方散乱光幅（横軸）については、白血球は低レベルの領域に出現しており、ミクロフィラリアは白血球に比べて高レベルの領域に出現していて、両者の領域は重なっていない。このことから、ＷＤＦチャンネルでは、前方散乱光幅のみを使用することで、白血球と区別してミクロフィラリアを検出可能であることが分かる。

図９は、上記の検体１及び２をＷＮＲチャンネルで分析した結果のスキャッタグラムを示す図である。図９において、Ｓ１４は検体１の蛍光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラムであり、Ｓ１５は検体１の側方散乱光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラムである。また、Ｓ２４は検体２の蛍光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラムであり、Ｓ２５は検体２の側方散乱光強度及び前方散乱光強度のスキャッタグラムである。

図９に示すように、スキャッタグラムＳ１４において、リンパ球、単球、好酸球、及び好中球によって構成された血球群のクラスターと、ミクロフィラリアのクラスターとが、別々の位置に出現している。その一方で、スキャッタグラムＳ２４においては、リンパ球、単球、好酸球、及び好中球によって構成された血球群のクラスターは出現しているが、ミクロフィラリアのクラスターは出現していない。このため、ＷＮＲチャンネルでは、蛍光強度及び前方散乱光強度を使用すれば、リンパ球、単球、好酸球、及び好中球と区別して、ミクロフィラリアを検出可能であることが分かる。

また、スキャッタグラムＳ１５においては、白血球のクラスターと、ミクロフィラリアのクラスターとが、別々の位置に出現している。その一方で、スキャッタグラムＳ２５においては、白血球のクラスターは出現しているが、ミクロフィラリアのクラスターは出現していない。このため、ＷＮＲチャンネルでは、側方散乱光強度及び前方散乱光強度を使用することによっても、白血球と区別して、ミクロフィラリアを検出可能であることが分かる。

なお、発明者らは、ＷＮＲチャンネルにおいても、前方散乱光幅のみを使用することで、白血球と区別してミクロフィラリアを検出可能であることを確認している。

次に、ミクロフィラリアと白血球とを同一の測定試料から検出した場合の白血球の計数値の精度を検証した。ＸＮ−１０００のＷＤＦチャンネルにおける測定では、ミクロフィラリア数の計数と共に、好酸球数（ＥＯ＃）、好中球数（ＮＥＵＴ＃）、好塩基球数（ＢＡＳＯ＃）、リンパ球数（ＬＹＭＰＨ＃）、及び単球数（ＭＯＮＯ＃）の計数を行い、好酸球、好中球、好塩基球、リンパ球、及び単球のそれぞれについて白血球全体（ＷＢＣ）に対する割合（ＥＯ％、ＮＥＵＴ％、ＢＡＳＯ％、ＬＹＭＰＨ％、ＭＯＮＯ％）を算出した。ＸＮ−１０００のＷＮＲチャンネルにおける測定では、ミクロフィラリア数の計数と共に、白血球数（ＷＢＣ）の計数を行った。また、本方法の比較実験として、シスメックス社製のＸＴ−４０００ｉＶ及びアイデックスラボラトリーズ社製のＰｒｏｃｙｔｅ ＤＸによって検体１及び２を測定し、ＥＯ＃、ＮＥＵＴ＃、ＢＡＳＯ＃、ＬＹＭＰＨ＃、ＭＯＮＯ＃、ＥＯ％、ＮＥＵＴ％、ＢＡＳＯ％、ＬＹＭＰＨ％、ＭＯＮＯ％、及びＷＢＣを得た。これらの比較実験では、それぞれの装置の専用試薬を用いた。下表に、その比較結果を示す。

検体１についてみると、ＸＮ−１０００による白血球の計数値は、いずれもＸＴ−４０００ｉＶ及びＰｒｏｃｙｔｅ ＤＸによる計数値とほぼ同様の数値が得られている。つまり、本方法によれば、ミクロフィラリアと同時に計数される総白血球数及び白血球サブクラスについても、正確に測定されていることが分かる。

次に、３つのフィラリア感染検体（上述の検体１に加えて、検体３、４）を用意し、それぞれについてＸＮ−１０００による分析結果を比較した。図１０は、検体１、３、４について、ＸＮ−１０００のＷＤＦチャンネル、ＷＮＲチャンネル、及び目視によるミクロフィラリアの各測定値を比較したグラフである。

図１０に示すように、目視による検出方法（以下、「鏡検法」という）では、検体１μＬ中のミクロフィラリアの数が、検体１では５１．６、検体３では３５．２、検体４では１９．４であり、検体１、３、４の順番で少なくなっている。これに対して、ＷＤＦチャンネルでの本方法の検出結果は、検体１で６８．５、検体３で４９．４、検体４で３１．９であった。また、ＷＮＲチャンネルでの本方法の検出結果は、検体１で６４．７、検体３で４３．３、検体４で３０．９であった。つまり、本方法では、それぞれの数値が鏡検法の結果に比べて大きくなっているものの、ＷＤＦチャンネル及びＷＮＲチャンネルの何れの結果も、検体１、３、４の順番で少なくなっており、鏡検法による結果との相関が認められる。したがって、本方法が十分な定量精度を有していることが分かる。

（その他の実施の形態）
なお、上述した実施の形態においては、血中に存在するフィラリア幼虫としてミクロフィラリアを検出する例を示したが、血中に現れるフィラリア幼虫である限り、被鞘幼虫（広義のミクロフィラリア）を検出してもよいし、キャリアから体内に侵入した感染幼虫を検出してもよい。

また、上述した実施の形態においては、１つの測定試料から、ミクロフィラリアの検出と共に白血球分類を行う構成について述べたが、これに限定されるものではない。白血球分類用の測定試料とは別にミクロフィラリアの検出に用いる測定用試料を調製し、それぞれの測定試料の測定を個別に行う構成とすることもできる。

また、上述した実施の形態においては、ミクロフィラリア検出用の測定試料では、溶血剤を使用する構成について述べたが、これに限定されるものではない。溶血剤を使用せずにミクロフィラリアを検出することも可能である。この場合には、蛍光強度が低いレベルの領域に赤血球が出現することになるが、赤血球の出現領域はミクロフィラリアの出現領域とは異なるため、ミクロフィラリアを検出することが可能である。また、染色試薬を使用せずに検体を測定し、ミクロフィラリアを検出することも可能である。この場合には、前方散乱光幅を使用したり、側方散乱光強度及び前方散乱光強度を使用したりすることにより、ミクロフィラリアを検出することができる。

また、上述した実施の形態においては、前方散乱光パルス幅、前方散乱光強度、側方散乱光強度および蛍光強度を組み合わせてミクロフィラリアを検出する構成について述べたが、これに限定されるものではない。前方散乱光パルス幅に代えて側方散乱光パルス幅又は蛍光パルス幅を用いることもできる。また、散乱光及び蛍光のパルス幅に代えて、粒子の全長を反映する他の特徴パラメータを用いることもできる。図１１は、前方散乱光に関する他の特徴パラメータの例を模式的に説明するためのパルス信号のグラフである。例えば、図１１に示すように、所定の閾値を超えたパルスの曲線下面積を、ミクロフィラリアを検出するための特徴パラメータとして用いることもできる。

また、上述した実施の形態においては、ミクロフィラリアの検出用のゲートＧを固定で設け、このゲートＧの内部に存在する粒子をミクロフィラリアとして検出する構成について述べたが、これに限定されるものではない。米国特許第５５５５１９６号明細書に記載されている方法によって粒子のクラスタリングを行うことで、ミクロフィラリアを他の粒子と区別して検出する構成とすることも可能である。米国特許第５５５５１９６号は参照として本明細書に組み込まれる。

また、上述した実施の形態においては、ミクロフィラリア検出用のゲートＧが、動物種に関係なく固定で設けられている構成について述べたが、複数の動物種のそれぞれに対応したミクロフィラリア検出用ゲートＧを用いてもよい。この場合、ハードディスク５１ｄには、複数の動物種のそれぞれに対応づけてゲートを定義する数値範囲を格納しておき、オペレータによって指定された動物種に応じたゲートを読み出してミクロフィラリア検出の解析に適用するように構成することができる。また、図４のステップＳ１０で用いられる、フィラリア症の罹患の判別の基準値Ｔを、動物種によって異なる値に設定してもよい。

また、上述した実施の形態においては、制御部２５が測定ユニット２の各部の動作制御を行い、ＣＰＵ５１ａが測定データの解析処理を行う構成について述べたが、これに限定されるものではない。１つの制御部（ＣＰＵ）によって、測定ユニット２の各部の動作制御及び測定データの解析処理を実行する構成とすることも可能である。この場合、測定ユニット２と情報処理ユニット５とを別々に設ける構成ではなく、測定ユニット２と情報処理ユニット２の機能を一体化した１つの装置とすることも可能である。

また、上述した実施の形態においては、単一のコンピュータ５ａによりコンピュータプログラム５４ａの全ての処理を実行する構成について述べたが、これに限定されるものではなく、上述したコンピュータプログラム５４ａと同様の処理を、複数の装置（コンピュータ）により分散して実行する分散システムとすることも可能である。

本発明の血中フィラリア幼虫の検出方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラムは、イヌ等の動物の血液からフィラリア幼虫を検出する方法、血液分析装置、及びコンピュータプログラムとして有用である。

１ 血液分析装置
２ 測定ユニット
２２ 検体吸引部
２３ 試料調製部
２３１ 試薬容器
２４ 検出部
２３１ フローセル
２３７ レーザ光源
２４３ 前方散乱光受光部
２４６ 側方散乱光受光部
２４８ 蛍光受光部
２５ 制御部
５ 情報処理ユニット
５１ａ ＣＰＵ
５１ｄ ハードディスク
５２ 表示部
５４ａ コンピュータプログラム
Ｄ 光学検出器
Ｒ 分析結果画面

Claims (17)

1. 動物から採取された血液検体から測定試料を調製するステップと、
   調製された測定試料をフローセルに流すステップと、
   前記フローセルを流れる測定試料に光を照射するステップと、
   光が照射された測定試料から発せられる光を検出するステップと、
   検出された光の特徴パラメータに基づいて、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップと、
   を有する、
   血中フィラリア幼虫の検出方法。
2. 測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、前記特徴パラメータに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出する、
   請求項１に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
3. 測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、少なくとも２種類の特徴パラメータに基づいて、測定試料中の粒子を血球とフィラリア幼虫とに分類し、分類された血球及びフィラリア幼虫のそれぞれを個別に計数する、
   請求項２に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
4. 前記血球は白血球であり、
   測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、測定試料中の白血球を複数種類に分類し、分類された各種類の白血球を種類毎に計数する、
   請求項３に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
5. 前記少なくとも２種類の特徴パラメータそれぞれの座標軸を有し、前記座標軸で規定される座標空間におけるフィラリア幼虫の分布を示す分布図と、フィラリア幼虫の計数結果とを含む画面を出力するステップをさらに有する、
   請求項３又は４に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
6. 光を検出するステップでは、光が照射された測定試料から発せられた散乱光を検出し、
   測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、検出された散乱光の特徴パラメータに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出する、
   請求項２乃至５の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
7. 前記特徴パラメータは、散乱光信号の幅である、
   請求項６に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
8. 測定試料を調製するステップでは、血中の粒子を染色する染色試薬を血液検体に混和して測定試料を調製し、
   光を検出するステップでは、光が照射された測定試料から発せられた散乱光及び蛍光を検出し、
   測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、散乱光に関する特徴パラメータと蛍光に関する特徴パラメータとに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出する、
   請求項２乃至５の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
9. 前記散乱光に関する特徴パラメータは散乱光強度であり、前記蛍光に関する特徴パラメータは蛍光強度である、
   請求項８に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
10. 光を検出するステップでは、光が照射された測定試料から互いに異なる方向に発せられた第１散乱光及び第２散乱光を検出し、
    測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップでは、第１散乱光に関する特徴パラメータと第２散乱光に関する特徴パラメータとに基づいて、測定試料中の血球と区別して、フィラリア幼虫を検出する、
    請求項２乃至５の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
11. 前記第１散乱光に関する特徴パラメータは第１散乱光強度であり、前記第２散乱光に関する特徴パラメータは第２散乱光強度である、
    請求項１０に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
12. 測定試料を調製するステップでは、血液検体に溶血剤を混和して測定試料を調製する、
    請求項１乃至１１の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
13. 前記血液検体は、イヌから採取される、
    請求項１乃至１２の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
14. 自動血球分析装置を用いて、上記各ステップを自動的に実行する、
    請求項１乃至１３の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
15. 測定試料を調製するステップでは、免疫学的手法を用いることなく測定試料を調製する、
    請求項１乃至１４の何れか１項に記載の血中フィラリア幼虫の検出方法。
16. 動物から採取された血液検体から測定試料を調製する試料調製部と、
    前記試料調製部によって調製された測定試料が供給されることにより、試料流を形成するフローセルと、
    前記フローセルに形成された試料流に光を照射する光源と、
    前記光源によって光が照射された測定試料から発せられる光を受け、受光量に応じた信号を出力する光検出部と、
    前記光検出部からの出力信号に含まれる特徴パラメータに基づいて、測定試料中のフィラリア幼虫を検出する制御部と、
    を備える、
    血液分析装置。
17. 動物から採取された血液検体から調製された測定試料をフローセルに流し、前記フローセルを流れる測定試料に光を照射し、光が照射された測定試料から発せられる光を光検出部によって検出したときに、コンピュータに、血中のフィラリア幼虫を検出させるためのコンピュータプログラムであって、
    前記光検出部により検出された光の特徴パラメータを含む測定データを取得するステップと、
    取得された前記測定データに含まれる前記特徴パラメータに基づいて、測定試料中のフィラリア幼虫を検出するステップと、
    を前記コンピュータに実行させる、
    コンピュータプログラム。
    

Images