JP2010223833A - 動物用血球測定装置 - Google Patents

Abstract

【課題】凝集型の網状赤血球を計数することが可能な動物用血球測定装置を提供する。
【解決手段】蛍光強度と前方散乱光強度とを座標軸とするスキャッタグラムから赤血球と網状赤血球とを含む第１の座標領域を分画し、この第１の座標領域内のプロットデータに基づいて蛍光強度に対する血球数の分布を求め、求めた分布から血球数がピークとなる蛍光強度Ｘと前記分布の分散σとを取得する。取得した蛍光強度Ｘおよび分散σと、凝集型の網状赤血球の測定に適用される係数αとをもとに、Ｔｈｒ＝Ｘ＋α・σの演算を行って、蛍光強度の閾値Ｔｈｒを求め、この閾値Ｔｈｒをもとに凝集型の網状赤血球を含む第２の座標領域を分画し、第２の座標領域内のプロット数を計数して凝集型の網状赤血球数を取得する。ここで、係数αは、凝集型の網状赤血球を含まないイヌ等の網状赤血球数を計数する場合の２倍程度の大きさに設定される。
【選択図】図１３

Description

本発明は、動物用の血球測定装置に関する。

動物の診断において、網状赤血球を計数することは、例えば貧血の診断に有用である。現在、動物病院では、赤血球や白血球の計数は分析装置により自動化されている場合もあるが、網状赤血球は目視にて計数することが一般的である。

また、動物の網状赤血球を自動的に計数する分析装置も知られている（例えば、特許文献１）。上記特許文献１記載の分析装置は、分析対象の動物種の選択を受け付け、受け付けられた動物種に対応する分析条件を用いて血球を計数する。計数される血球には、赤血球および白血球等に加え、網状赤血球も含まれる。

ここで、網状赤血球は、単一のタイプから構成されている動物種もあるが、例えばネコの場合には、点状型と凝集型とを含む複数のタイプから構成されている。このように網状赤血球が複数のタイプから構成されている動物種について貧血を診断する場合には、凝集型を計数することが有用である。例えば、ネコの場合、点状型の数は急性失血後１０〜２０日目にピークとなり、その後約４週間かけて消失する。一方、凝集型の数は、４〜７日目にピークとなる。したがって、例えば、貧血からの回復状況（すなわち、投薬の効果）を判断するには、早期にピークに到達する凝集型を計数するのが有用である。

特開２００６−１７６３７号公報

上記のとおり、網状赤血球を自動的に計数する分析装置が知られているが、上記特許文献１には、複数のタイプから構成されている網状赤血球のうち、凝集型のみを計数することについては記載がない。従って、上記特許文献１に記載の分析装置を用いたとしても、凝集型の網状赤血球については、目視に頼らざるを得ず、獣医、検査技師等の負担が大きいという問題があった。

本発明は、凝集型の網状赤血球を計数することが可能な動物用血球測定装置を提供することを目的とする。

本発明の主たる態様に係る動物用血球測定装置は、動物の血液から測定試料を調製する試料調製部と、前記試料調製部によって調製された前記測定試料から、前記測定試料の特徴を表す特徴情報を取得する特徴情報取得部と、前記特徴情報取得部によって取得された前記特徴情報に基づいて、前記血液に含まれる凝集型の網状赤血球を他の血球から分類する凝集型分類手段と、前記凝集型分類手段によって分類された前記凝集型の網状赤血球の数に関する情報を出力する出力部とを備える。

本態様に係る動物用血球測定装置によれば、凝集型の網状赤血球を目視に頼らずに計数可能となるため、獣医、検査技師等の負担を軽減することができる。

本態様に係る動物用血球測定装置は、前記凝集型分類手段による分類結果に基づいて、前記凝集型の網状赤血球の数を取得する血球数取得手段をさらに備え得る。この場合、前記出力手段は、前記血球数取得手段によって取得された前記凝集型の網状赤血球の数を、前記凝集型の網状赤血球の数に関する情報として出力するよう構成され得る。

本態様に係る動物用血球測定装置において、前記試料調製部は、前記血液と網状赤血球の核酸を染色する染色液とから前記測定試料を調製する構成とされ得る。また、前記特徴情報取得部は、前記測定試料に光を照射する光源を備え、前記光源から前記測定試料に光が照射されることにより生じる蛍光を受光し、受光強度に応じた蛍光強度情報を前記特徴情報として取得し、前記凝集型分類手段は、前記蛍光強度情報に基づいて、前記血液に含まれる凝集型の網状赤血球を他の血球から分類する構成とされ得る。

この場合、前記特徴情報取得部は、より好ましくは、前記光源から前記測定試料に光が照射されることにより生じる散乱光を受光し、受光強度に応じた散乱光強度情報を前記特徴情報としてさらに取得し、前記凝集型分類手段は、前記蛍光強度情報および前記散乱光強度情報に基づいて、前記血液に含まれる凝集型の網状赤血球を他の血球から分類する構成とされ得る。

このように構成すれば、蛍光強度と散乱光強度とをそれぞれ座標軸とするスキャッタグラムを分画することにより、凝集型の網状赤血球の座標領域を特定することができる。よって、この座標領域に含まれるプロットデータをもとに、凝集型の網状赤血球の数を取得することができる。

なお、本態様に係る動物用血球測定装置は、ネコの血球測定に用いて好ましいものであるが、ネコに限らず、血液中に凝集型の網状赤血球を含み得る動物であれば、他の動物の血球測定にも用い得るものである。

また、本態様に係る動物用血球測定装置は、測定対象となる動物の種類を少なくとも第１の動物種および第２の動物種から選択する選択手段と、前記特徴情報取得部によって取得された前記特徴情報に基づいて、前記血液に含まれる全ての型を含む網状赤血球を他の血球から分類する網状赤血球分類手段とをさらに備える構成とすることができる。そして、前記第１の動物種が選択された場合には、前記凝集型分類手段によって凝集型の網状赤血球を他の血球から分類し、前記第２の動物種が選択された場合には、前記網状赤血球分類手段によって全ての型を含む網状赤血球を他の血球から分類する構成することができる。

このように構成すれば、測定対象とされる動物種を適宜切り替えることにより、第１の動物種から凝集型の網状赤血球の数に関する情報を出力できる他、第２の動物種から、網状赤血球の総数に関する情報をも出力することができる。

この場合、前記第１の動物種の典型例はネコであり、前記第２の動物種の典型例はイヌとされ得る。選択手段によってネコが選択されると、凝集型の網状赤血球の個数に関する情報が出力され、イヌが選択されると、網状赤血球の総数に関する情報が出力される。こうして、獣医、検査技師等は、選択手段により選択するだけで、ネコまたはイヌの診断に有用な網状赤血球の個数に関する情報を取得することができ、診断時の負担を軽減することができる。

なお、前記特徴情報取得部によって、前記蛍光強度の他、前記散乱光強度が取得される場合、前記凝集型分類手段は、前記蛍光強度と前記散乱光強度とをそれぞれ座標軸とするスキャッタグラムから前記凝集型の網状赤血球を含む凝集型座標領域を分画し、前記血球数取得手段は、前記凝集型座標領域に含まれるプロットデータの数に基づいて、前記凝集型の網状赤血球の数を取得する構成とされ得る。

より詳細には、前記凝集型分類手段は、前記スキャッタグラムから赤血球と網状赤血球とを含む赤血球系座標領域を分画し、前記赤血球系座標領域内のプロットデータに基づいて前記凝集型座標領域を分画する構成とされ得る。

この場合、前記凝集型分類手段は、前記赤血球系座標領域内のプロットデータに基づいて前記蛍光強度に対する血球数の分布を求め、前記分布から前記血球数がピークとなる前記蛍光強度Ｘと前記分布の分散σとを取得し、取得した前記蛍光強度Ｘおよび前記分散σと、前記動物の前記凝集型の網状赤血球の測定に適用される係数αとをもとに、Ｔｈｒ＝Ｘ＋α・σの演算を行うことにより、前記凝集型座標領域を分画する際の前記蛍光強度の閾値Ｔｈｒを求める構成とされ得る。

なお、前記係数αは、凝集型の網状赤血球を含まない動物種の血液における前記スキャッタグラムから網状赤血球の座標領域を分画する際に適用される前記係数αよりも所定の大きさだけ大きく設定される。ここで、前記係数αは、凝集型の網状赤血球を含まない動物種の血液における前記スキャッタグラムから網状赤血球の座標領域を分画する際に適用される前記係数αの２倍程度の大きさに設定され得る。

こうすると、凝集型の網状赤血球を含む座標領域を適正に特定することができる。

なお、本態様に係る動物用血球測定装置の効果は、以下の実施の形態における検証において、より明確となろう。

以上のとおり、本発明によれば、凝集型の網状赤血球を計数することが可能な動物用血球測定装置を提供することができる。

本発明の効果ないし意義は、以下に示す実施の形態の説明により更に明らかとなろう。ただし、以下に示す実施の形態は、あくまでも、本発明を実施化する際の一つの例示であって、本発明は、以下の実施の形態に記載されたものに何ら制限されるものではない。

実施の形態に係る血球測定装置の概略構成を示す正面図である。 実施の形態に係る測定ユニットの外観を示す斜視図である。 実施の形態に係る測定ユニットの内部構造を示す斜視図である。 実施の形態に係る測定ユニットの内部構造を示す側面図である。 実施の形態に係る測定ユニットの構成を示すブロック図である。 実施の形態に係る測定ユニットの試料調製部の流体回路図である。 実施の形態に係るフローセルの構成を模式的に示す斜視図である。 実施の形態に係るフローサイトメータの構成を模式的に示す図である。 実施の形態に係るデータ処理ユニットの構成を示すブロック図である。 実施の形態に係る網状赤血球計測時の処理フローチャートである。 実施の形態に係る解析処理のサブルーチンを示すフローチャートである。 実施の形態に係る解析処理を説明するためのスキャッタグラムである。 実施の形態に係るスキャッタグラムの分画過程を示す図である。 実施の形態に係るスキャッタグラムの分画状態を示す図である。 実施の形態に係る閾値Ｔｈｒの設定方法を模式的に示す図である。 ネコの血液を撮影した顕微鏡写真を模式的に示す図である。 実施の形態に係る血球測定装置の検証例を示す図である。 実施の形態に係る分析ルーチンの変更例を示すフローチャートである。

以下、本発明の実施の形態に係る動物用の血球測定装置について、図面を参照して説明する。以下では、動物用の血球測定装置に係る構成のうち、主として、網状赤血球の計数に関する構成を説明し、白血球の測定に関する構成等については、説明を省略する。

図１は、実施の形態に係る動物用の血球測定装置の概略構成を示す正面図である。図１に示すように、本実施の形態に係る血球測定装置１は、測定ユニット２と、データ処理ユニット３とにより主として構成されている。測定ユニット２は、血液検体中に含まれる成分について所定の測定を行い、測定データをデータ処理ユニット３に送信する。データ処理ユニット３は、この測定データをもとに分析処理を行い、分析結果をモニタ上に表示する。かかる血球測定装置１は、例えば、動物病院に設置されている。

測定ユニット２とデータ処理ユニット３とは、互いにデータ通信が可能なように、データ伝送ケーブル３ａによって接続されている。なお、データ伝送ケーブル３ａで測定ユニット２とデータ処理ユニット３とを直接接続する構成に限らず、例えば、電話回線を使用した専用回線、ＬＡＮ、またはインターネット等の通信ネットワークを介して測定ユニット２とデータ処理ユニット３とが接続されていてもよい。

図２は、測定ユニット２の外観を示す斜視図である。図２に示すように、測定ユニット２の正面の右下部分には、血液試料を収容した採血管２０をセット可能な採血管セット部２ａが設けられている。この採血管セット部２ａは、その近傍に設けられたボタンスイッチ２ｂをユーザが押すことにより前方へ開いて迫り出すようになっており、この状態でユーザが採血管２０をセットすることが可能となっている。採血管２０がセットされた後、ユーザが再度前記ボタンスイッチ２ｂを押すことによって、採血管セット部２ａが後方へ移動して閉止する。また、測定ユニット２の正面には、検体の測定を開始させるためのスタートボタン２ｃが設けられている。

図３は、測定ユニット２の内部構造を示す斜視図であり、図４は、その側面図である。

採血管２０がセットされた採血管セット部２ａは、前述のように測定ユニット２の内部に収容される。これにより、採血管２０が所定の吸引位置に位置決めされる。測定ユニット２の内部には、試料を吸引するピペット２１、血液と試薬とを混合するためのチャンバ２２、２３等を有する試料調製部４が設けられている。

ピペット２１は、上下方向に延びた管状に形成されており、その先端は鋭く尖っている。また、ピペット２１は、図示しないシリンジポンプに連結されており、このシリンジポンプの動作によって液体を所定量だけ吸引し、また吐出することが可能である。さらに、ピペット２１は、移動機構に接続されており、上下方向および前後方向にそれぞれ移動可能となっている。

採血管２０はゴム製のキャップ２０ａによって密閉されている。このキャップを、ピペット２１の鋭利な先端によって穿刺することで、採血管２０に収容された血液試料が、ピペット２１によって所定量吸引される。図４に示すように、採血管セット部２ａの後方にはチャンバ２２、２３が設けられている。血液試料を吸引した状態のピペット２１を前記移動機構により移動させて、チャンバ２２、２３の中に血液試料が吐出されることにより、チャンバ２２、２３に血液試料が供給される。

図５は、測定ユニット２の構成を示すブロック図であり、図６は、試料調製部４の構成を示す流体回路図である。図５に示すように、測定ユニット２は、試料調製部４と、ＲＥＴ検出部５と、ＲＢＣ検出部６と、ＨＧＢ検出部７と、制御部８と、通信部９とを備えている。

制御部８は、ＣＰＵ、ＲＯＭ、ＲＡＭ等から構成されており、測定ユニット２の各種構成要素の動作制御を行う。通信部９は、例えばRS-232Cインタフェース、USBインタフェース、Ethernet（登録商標）インタフェースであり、データ処理ユニット３との間でデータの送受信を行う。

図６に示すように、試料調製部４は、チャンバ、複数の電磁弁、ダイヤフラムポンプ等を備えた流体ユニットである。チャンバ２２は、赤血球、血小板の測定、およびヘモグロビンの測定に供される試料の調製に使用される。また、チャンバ２３は、網状赤血球の測定に供される試料の調製に使用される。なお、図６では、説明を簡単にするためにチャンバ２３の周辺の流体回路の構成のみを示している。

チャンバ２３は、希釈液を収容する試薬容器ＲＣ１と、染色液を収容する試薬容器ＲＣ２とにチューブ等の流体通流路Ｐ１、Ｐ２を介して接続されている。チャンバ２３と試薬容器ＲＣ１とを繋ぐ流体通流路Ｐ１の途中には、電磁弁ＳＶ１９、ＳＶ２０が設けられており、また電磁弁ＳＶ１９、ＳＶ２０の間には、ダイヤフラムポンプＤＰ４が設けられている。ダイヤフラムポンプＤＰ４は、陽圧源および陰圧源が接続されており、ダイヤフラムポンプＤＰ４を陽圧駆動および陰圧駆動することができるようになっている。また、チャンバ２３と試薬容器ＲＣ２とを繋ぐ流体通流路Ｐ２の途中には、電磁弁ＳＶ４０、ＳＶ４１が設けられており、また電磁弁ＳＶ４０、ＳＶ４１の間には、ダイヤフラムポンプＤＰ５が設けられている。

これら電磁弁ＳＶ１９、ＳＶ２０、ＳＶ４０、ＳＶ４１およびダイヤフラムポンプＤＰ４、ＤＰ５を制御部８が次のように制御して、溶血剤および染色液がチャンバ２３に供給される。

まず、ダイヤフラムポンプＤＰ４よりも試薬容器ＲＣ１側に配されている電磁弁ＳＶ１９を開放し、ダイヤフラムポンプＤＰ４よりもチャンバ２３側に配されている電磁弁ＳＶ２０を閉止した状態で、ダイヤフラムポンプＤＰ４を陰圧駆動することにより、試薬容器ＲＣ１から溶血剤が定量分取される。その後、電磁弁ＳＶ１９を閉止し、電磁弁ＳＶ２０を開放させ、ダイヤフラムポンプＤＰ４を陽圧駆動することにより、定量された溶血剤がチャンバ２３に供給される。

同様に、ダイヤフラムポンプＤＰ５よりも試薬容器ＲＣ２側に配されている電磁弁ＳＶ４０を開放し、ダイヤフラムポンプＤＰ５よりもチャンバ２３側に配されている電磁弁ＳＶ４１を閉止した状態で、ダイヤフラムポンプＤＰ５を陰圧駆動することにより、試薬容器ＲＣ２から染色液が定量分取される。その後、電磁弁ＳＶ４０を閉止し、電磁弁ＳＶ４１を開放させ、ダイヤフラムポンプＤＰ５を陽圧駆動することにより、定量された染色液がチャンバ２３に供給される。このようにして、血液試料と試薬（溶血剤、染色液）が混合され、網状赤血球測定用の試料が調製される。

また、チャンバ２３は、チューブおよび電磁弁ＳＶ４を含む流体通流路Ｐ３を介してフローサイトメータであるＲＥＴ検出部５に接続されている。この流体通流路Ｐ３は途中で分岐しており、その分岐先に電磁弁ＳＶ１、ＳＶ３が直列接続されている。また、電磁弁ＳＶ１、ＳＶ３の間には、シリンジポンプＳＰ２が設けられている。シリンジポンプＳＰ２にはステッピングモータＭ２が接続されており、このステッピングモータＭ２の動作によってシリンジポンプＳＰ２が駆動される。

また、チャンバ２３とＲＥＴ検出部５とを繋ぐ流体通流路Ｐ３は、更に分岐しており、この分岐先には電磁弁ＳＶ２９およびダイヤフラムポンプＤＰ６が接続されている。ＲＥＴ検出部５により網状赤血球を測定する場合には、電磁弁ＳＶ４、ＳＶ２９を開放した状態でダイヤフラムポンプＤＰ６を陰圧駆動して、チャンバ２３から試料を吸引することにより、流体通流路Ｐ３に当該試料がチャージングされる。試料のチャージングが終了すると、電磁弁ＳＶ４、ＳＶ２９が閉止される。その後、電磁弁ＳＶ３を開放し、シリンジポンプＳＰ２を駆動することにより、チャージングした試料がＲＥＴ検出部５へと供給される。

図６に示すように、試料調製部４にはシース液チャンバ２４が設けられており、このシース液チャンバ２４がＲＥＴ検出部５に流体通流路Ｐ４を介して接続されている。この流体通流路Ｐ４には、電磁弁ＳＶ３１が設けられている。かかるシース液チャンバ２４は、ＲＥＴ検出部５に供給されるシース液を貯留するためのチャンバであり、チューブ、電磁弁ＳＶ３３を含む流体通流路Ｐ５を介して、シース液が収容されたシース液容器ＥＰＫに接続されている。なお、試薬容器ＲＣ１に収容されている希釈液をシース液として用いることも可能である。

網状赤血球の測定の開始前には、電磁弁ＳＶ３３が開放されてシース液がシース液チャンバ２４に供給され、予めシース液チャンバ２４にシース液が貯留される。そして、網状赤血球の測定が開始されるときには、前述したＲＥＴ検出部５への試料の供給と同期して、電磁弁ＳＶ３１が開放され、シース液チャンバ２４に貯留されたシース液がＲＥＴ検出部５へ供給される。

ＲＥＴ検出部５は、光学式のフローサイトメータであり、網状赤血球を半導体レーザによるフローサイトメトリー法により測定することが可能である。かかるＲＥＴ検出部５は、試料の液流を形成するフローセル５１を備えている。

図７は、フローセル５１の構成を模式的に示す斜視図である。フローセル５１は、透光性を有する石英、ガラス、合成樹脂等の材料によって管状に構成されており、その内部が試料およびシース液が通流する流路となっている。フローセル５１には、内部空間が他の部分よりも細く絞り込まれたオリフィス５１ａが設けられている。フローセル５１の当該オリフィス５１ａの入口付近は二重管構造となっており、その内側管部分が試料ノズル５１ｂとなっている。この試料ノズル５１ｂは、試料調製部４の流体通流路Ｐ３に接続されており、この試料ノズル５１ｂからオリフィス５１ａに向かって試料が吐出される。

また、試料ノズル５１ｂの外側の空間はシース液が通流する流路５１ｃであり、この流路５１ｃは前述の流体通流路Ｐ４に接続されている。シース液チャンバ２４から供給されたシース液は、流体通流路Ｐ４を介して流路５１ｃを通流し、オリフィス５ １ａへ導入される。こうして、フローセル５１に供給されたシース液は、試料ノズル５１ｂから吐出された試料を取り囲むように流れることとなる。そして、オリフィス５１ａによって試料の流れが細く絞り込まれ、試料に含まれる網状赤血球、赤血球等の粒子がシース液に取り囲まれて一つずつオリフィス５１ａを通過する。

図８は、ＲＥＴ検出部５の構成を模式的に示す概略平面図である。ＲＥＴ検出部５には、半導体レーザ光源５２が、フローセル５１のオリフィス５１ａへ向けてレーザ光を出射するように配置されている。半導体レーザ光源５２とフローセル５１との間には、複数のレンズからなる照射レンズ系５３が配されている。この照射レンズ系５３によって、半導体レーザ光源から出射された平行ビームがビームスポットに集束されるようになっている。

また、半導体レーザ光源５２から直線的に延びた光軸上には、フローセル５１を挟んで照射レンズ系５３に対向するように、ビームストッパ５４ａが設けられている。半導体レーザ光源５２からのビームのうちフローセル５１内で散乱されずに直進するビーム（以下、直接光という）は、ビームストッパ５４ａによって遮光される。また、ビームストッパ５４ａの更に光軸下流側には、フォトダイオード５４が配されている。

フローセル５１に試料が流れると、レーザ光により散乱光および蛍光の光信号が発生する。このうち前方の信号光（散乱光）が前記フォトダイオード５４へ向けて照射される。半導体レーザ光源５２から直線的に延びた光軸に沿って進行する光のうち、半導体レーザ光源５２の直接光は、ビームストッパ５４ａによって遮断され、フォトダイオード５４には概ね前記光軸方向に沿って進行する散乱光（以下、前方散乱光という）のみが入射する。

フローセル５１から発せられた前方散乱光は、フォトダイオード５４で光電変換され、これによって生じた電気信号（以下、前方散乱光信号という）がアンプ５４ｂによって増幅されて、制御部８に出力される。かかる前方散乱光信号は、血球の大きさを反映しており、制御部８により信号処理された後、通信部９を介してデータ処理ユニット３に出力される。

また、フローセル５１の側方であって、半導体レーザ光源５２からフォトダイオード５４へ直線的に延びる光軸に対して直交する方向には、側方集光レンズ５５が配されている。フローセル５１内を通過する血球に半導体レーザを照射したときに発生する側方光（前記光軸に対して交差する方向へ出射される光）がこの側方集光レンズ５５で集められるようになっている。側方集光レンズ５５の下流側にはダイクロイックミラー５６が設けられており、側方集光レンズ５５から送られた信号光は、ダイクロイックミラー５６で散乱光成分と蛍光成分とに分けられる。

ダイクロイックミラー５６の側方（側方集光レンズ５５とダイクロイックミラー５６とを結ぶ光軸方向に交差する方向）には、側方散乱光受光用のフォトダイオード５７が設けられている。また、ダイクロイックミラー５６の前記光軸下流側には、光学フィルタ５８ａおよびアバランシェフォトダイオード５８が設けられている。

ダイクロイックミラー５６により反射された側方散乱光成分は、フォトダイオード５７で光電変換される。かかる光電変換によって生じた電気信号（以下、側方散乱光信号という）がアンプ５７ａによって増幅され、制御部８に出力される。この側方散乱光信号は、血球の内部情報（核の大きさ等）を反映しており、制御部８により信号処理された後、通信部９を介してデータ処理ユニット３に出力される。

また、ダイクロイックミラー５６を透過した側方蛍光成分は光学フィルタ５８ａによって波長選択された後、アバランシェフォトダイオード５８で光電変換される。かかる光電変換によって生じた電気信号（側方蛍光信号）がアンプ５８ｂによって増幅され、制御部８に出力される。この側方蛍光信号は、血球の染色度合いに関する情報を反映しており、制御部８により信号処理された後、通信部９を介してデータ処理ユニット３に出力される。

ＲＢＣ検出部６は、赤血球数および血小板数を、シースフローＤＣ検出法により測定することが可能である。このＲＢＣ検出部６は、電気抵抗方式の検出器を有しており、この検出器に上述したチャンバ２２から試料が供給されるようになっている。赤血球および血小板の測定を行う場合には、チャンバ２２において、血液に希釈液を混合した試料が調製される。かかる試料がシース液とともに試料調製部４から検出器に供給され、検出器中では、上記と同様、シース液によって試料が取り囲まれた液流が形成される。

かかる検出器中の流路の途中には、電極を有するアパーチャが設けられている。試料中の血球が一つずつ当該アパーチャを通過するときのアパーチャにおける直流抵抗が検出され、この電気信号が制御部８へ出力される。前記直流抵抗は、アパーチャを血球が通過するときに増大するため、この電気信号はアパーチャの血球の通過情報を反映している。この電気信号は、制御部８により信号処理され、通信部９を介してデータ処理ユニット３に送信される。データ処理ユニット３は、受信したデータを解析し、赤血球および血小板を計数する。

ＨＧＢ検出部７は、血色素量を、ＳＬＳヘモグロビン法によって測定することが可能である。ＨＧＢ検出部７には、希釈試料を収容するセルが設けられており、このセルにチャンバ２２から試料が供給されるようになっている。ヘモグロビンの測定を行う場合には、チャンバ２２において血液に希釈液と溶血剤とを混合した試料が調製される。この溶血剤は、血液中のヘモグロビンをＳＬＳ−ヘモグロビンへと転化する性質を有している。また、セルを間に挟んで発光ダイオードとフォトダイオードとが対向配置されており、発光ダイオードからの光がフォトダイオードで受けられる。

発光ダイオードは、ＳＬＳ−ヘモグロビンによる吸光率が高い波長の光を発するようになっており、また、セルは透光性の高いプラスチック材料で構成されている。これにより、フォトダイオードでは、発光ダイオードの発光が概ね希釈試料によってのみ吸光された透過光が受光されることとなる。フォトダイオードは、受光量（吸光度）に応じた電気信号を制御部８へと出力する。制御部８は、この吸光度と予め測定された希釈液のみの吸光度とを信号処理し、通信部９を介してデータ処理ユニット３に送信される。データ処理ユニット３は、上記２つの吸光度を比較して、ヘモグロビン値を算出する。

図９に示す如く、データ処理ユニット３は、ＣＰＵ１０１、ＲＯＭ１０２、ＲＡＭ１０３、ハードディスクドライブ（ＨＤドライブ）１０４、通信インタフェース１０５、キーボードおよびマウス等の入力インタフェース１０６、および、モニタ、スピーカ等の出力インタフェース１０７を備えるコンピュータシステムによって構成されている。

通信インタフェース１０５は、例えば、RS-232Cインタフェース、USBインタフェース、Ethernet（登録商標）インタフェースであり、測定ユニット２との間でデータの送受信を行うことが可能である。ＨＤドライブ１０４内のハードディスクには、オペレーティングシステムと、測定ユニット２から受信した測定データを分析処理するためのアプリケーションプログラムがインストールされている。

このアプリケーションプログラムをＣＰＵ１０１が実行することにより、測定ユニット２からの測定データが分析処理され、赤血球数（ＲＢＣ）、血色素量（ＨＧＢ）、ヘマトクリット値（ＨＣＴ）、平均赤血球容積（ＭＣＶ）、平均赤血球血色素量（ＭＣＨ）、平均赤血球血色素濃度（ＭＣＨＣ）、血小板数（ＰＬＴ）が算出される。また、前方散乱光信号と側方蛍光信号を用いてスキャッタグラムが作成され、網状赤血球数（ＲＥＴ）が計数される。

図１０は、本実施の形態に係る血球測定装置の網状赤血球測定時の処理フローを示す図である。なお、同図中、データ処理ユニット３側の処理フローは、データ処理ユニット３内のＣＰＵ１０１が、ＨＤドライブ１０４内のアプリケーションプログラムを実行することによって行われるものである。

網状赤血球の測定モードが開始されると、データ処理ユニット３のモニタ上に動物種の選択を受け付ける受付画面が表示される（Ｓ１０１）。かかる受付画面には、選択候補の動物種（ネコ、イヌ、等）を示すアイコンが含まれている。

表示された動物種の中からマウスを用いてユーザが所望の動物種を選択すると（Ｓ１０１：ＹＥＳ）、スタートボタン２ｃを有効化するための信号が測定ユニット２に送信される（Ｓ１０２）。ＣＰＵ１０１は、その後、測定ユニット２からのデータ送信を待つ（Ｓ１０３）。

測定ユニット２は、スタートボタン２ｃが押下されると（Ｓ２０１：ＹＥＳ）、スタートボタン２ｃが有効化されているか否かが判断され(ステップＳ２０２)、有効化されていれば（ステップＳ２０２：ＹＥＳ）、上記のとおり、チャンバ２３による試料の調製を行う。さらに、測定ユニット２は、調製された試料を用いてＲＥＴ検出部５による測定を行って、上記前方散乱光信号と側方蛍光信号を取得し（Ｓ２０３）、取得した前方散乱光信号と側方蛍光信号を信号処理したデータをデータ処理ユニット３に送信する（Ｓ２０４）。

こうして、前方散乱光信号と側方蛍光信号に関するデータを受信すると（Ｓ１０３：ＹＥＳ）、ＣＰＵ１０１は、これらデータを、ステップＳ１０１にて選択された動物種に応じた方法で解析して試料中に含まれる網状赤血球数を取得し（Ｓ１０４）、取得した網状赤血球数に関する情報をモニタ上に表示する（Ｓ１０５）。こうして、ユーザ所望の動物種における網状赤血球の測定と表示が行われると、その後、システムがシャットダウンされなければ（Ｓ１０６：ＮＯ、Ｓ２０５：ＮＯ）、ステップＳ１０１、Ｓ２０１に戻って、ユーザによる次の測定指示が待たれる。

図１１は、ステップＳ１０４における解析処理の処理ルーチンを示す図、図１２ないし図１４は、当該処理ルーチンにおけるスキャッタグラムの分画方法を示す図である。なお、図１２ないし図１４（ａ）には、ネコの血液を測定する場合のスキャッタグラムが例示されている。図１４（ｂ）は、イヌの血液を測定する場合のスキャッタグラムが例示されている。スキャッタグラムとは、２次元でも３次元でもよく、例えば２次元であれば、縦軸として設定されたパラメータおよび横軸として設定されたパラメータの大きさに応じて血球を示すプロットデータを所定の座標に割り当てた分布図である。各座標には、割り当てられたプロットデータの数が対応付けられる。

上記のように、ステップＳ１０４における解析処理は、ステップＳ１０１にて選択された動物種に応じて行われる。したがって、ステップＳ１０１にて動物種が選択されると、選択された動物種に対応する分画条件（分画のための各種パラメータ値）が設定され、この分画条件に従ってスキャッタグラムの分画が行われて網状赤血球の計数が行われる。

測定ユニット２から前方散乱光信号と側方蛍光信号に関するデータを受信すると、ＣＰＵ１０１は、まず、ステップＳ３０１において、前方散乱光の強度と側方蛍光の強度をそれぞれ縦軸と横軸とするスキャッタグラムを生成する（図１２（ａ）参照）。次に、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０２において、当該スキャッタグラムから、血小板（ＰＬＴ）の座標領域を分画し（図１２（ｂ）参照）、さらに、白血球（ＷＢＣ）の座標領域を分画する（図１３（ａ）参照）。ここで、白血球（ＷＢＣ）の座標領域の分画は、以下のようにして行われる。

まず、赤血球（ＲＢＣ）の分布重心を通る軸Ｏがスキャッタグラムに設定される（図１３（ａ）参照）。ここで、分布重心は、赤血球（ＲＢＣ）の座標領域の側近に予め設定された固定領域Ｒ内のプロットデータに基づいて設定される。すなわち、固定領域Ｒ内のプロットデータについて、縦軸方向のヒストグラムを求め、求めたヒストグラムの縦軸方向の平均位置が求められる。この平均位置が、赤血球（ＲＢＣ）の分布重心として設定され、この分布重心を通り、かつ、横軸に平行な軸Ｏが設定される。こうして設定された軸Ｏと、側方蛍光強度の最大値の境界線との交点からβだけ縦軸方向にシフトした点から傾きγの直線を引き、この直線と、前記境界線から固定幅Ｗの直線とに囲まれた領域が、白血球（ＷＢＣ）の座標領域とされる。

このようして、血小板（ＰＬＴ）と白血球（ＷＢＣ）の座標領域を分画した後、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０４において、これらの座標領域を除いたスキャッタグラムから、側方蛍光の強度に対するプロットデータの頻度分布１５０を求める（図１３（ｂ）参照）。

なお、図１３（ｂ）に示す例では、スキャッタグラムの横軸を時計方向にθだけ回転させた軸にプロットデータを投影することによって、前記回転させた軸を側方蛍光強度とする頻度分布１５０が求められている。これは、図１３（ｂ）から分かるように、赤血球（ＲＢＣ）のプロットデータの集合領域が時計方向にやや回転した楕円状の領域となっているためである。かかる集合領域の回転角は、試料の調製に用いる試薬によって変り得るものである。また、用いる試薬によっては、赤血球（ＲＢＣ）のプロットデータの集合領域が回転せずに、縦軸方向に長細い楕円形状になることもある。よって、頻度分布を求める際には、用いる試薬に応じて側方蛍光強度の軸の回転角θが調整される。また、赤血球（ＲＢＣ）のプロットデータの集合領域が回転しない場合には、スキャッタグラムの横軸に対するプロットデータの頻度分布が求められる。

こうして、頻度分布が求められると、次に、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０５において、この頻度分布がピークとなるときの蛍光強度Ｘを取得し、さらに、この頻度分布の分散σを求める。そして、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０６において、図１０のステップＳ１０１においてユーザに設定された動物種が第１の動物種（例えば、“ネコ”）であるか否かが判断される。第１の動物種の場合（ステップＳ３０６：ＹＥＳ）、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０７において、蛍光強度Ｘおよび分散σと、第１の動物種（図１２〜１４の例示では“ネコ”）に対応する係数αとから、次式の演算を行って、凝集型の網状赤血球（ＲＥＴ）の境界となる閾値Ｔｈｒを求める。

Ｔｈｒ＝Ｘ＋α×σ …（１）

このようして閾値Ｔｈｒを求めた後、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０９において、スキャッタグラムの縦軸に対し角度θだけ傾き、かつ、閾値Ｔｈｒを通る直線Ｌ１と、この直線と上記軸Ｏとの交点から縦軸に平行に下ろした直線Ｌ２とによって、凝集型の網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域と赤血球（ＲＢＣ）の座標領域（点状型の網状赤血球（ＲＥＴ）も含まれる）を分画する（図１３（ｂ）参照）。こうして、凝集型の網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域が特定される（図１４（ａ）参照）。しかる後、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３１１において、凝集型の網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域内に含まれるプロットデータの個数（血球数）を計数する。

一方、ステップＳ１０１においてユーザに設定された動物種が第１の動物種ではない場合(ステップＳ３０６：ＮＯ)、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３０８において、第１の動物種以外の動物種に対応する係数αを用いて上記式（１）から閾値Ｔｈｒを求める。そして、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３１０において、スキャッタグラムの縦軸に対し角度θだけ傾き、かつ、閾値Ｔｈｒを通る直線Ｌ１と、この直線と上記軸Ｏとの交点から縦軸に平行に下ろした直線Ｌ２とによって、網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域（点状型も凝集型も含まれる）と赤血球（ＲＢＣ）の座標領域を分画する。こうして、網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域が特定される（図１４（ｂ）参照）。しかる後、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３１１において、網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域内に含まれるプロットデータの個数（血球数）を計数する。

なお、第１の動物種以外の動物種（例えば、“イヌ”）の場合、上記式（１）中の係数αは、ネコの場合の係数αの１／２に設定されている。回転角θ、シフト量β、傾きγ、固定幅Ｗは、ネコの場合とイヌの場合とで同じである。図１４（ａ）および（ｂ）を対比して分かるとおり、イヌの場合は、ネコの場合に比べ、赤血球（ＲＢＣ）の座標領域と網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域との境界が、スキャッタグラムの左方向にシフトしている。かかる境界の差により、ネコの場合は凝集型の網状赤血球の座標領域が分画され、イヌの場合は点状型、凝集型の区別なく全ての網状赤血球を含む座標領域が分画される。

上述のとおり、ステップＳ３０７およびＳ３０８にて用いられる上記式（１）の係数αは、動物種に応じて適宜変更されるものである。図１５（ａ）および（ｂ）は、それぞれ、図１１のステップＳ３０４にて求められた側方蛍光強度に対するプロットデータの頻度分布を、血球種別毎に区分したときの、各血球の分布領域を模式的に示す図である。同図（ａ）は、ネコの血液についての分布図であり、同図（ｂ）は、イヌの血液についての分布図である。

同図（ａ）に示す如く、ネコの血液の場合には、正規分布する赤血球（ＲＢＣ）に続いて点状型の網状赤血球（ＲＥＴ）が分布し、さらに、これに続いて凝集型の網状赤血球（ＲＥＴ）が分布する。このように網状赤血球が複数のタイプから構成されている動物種について貧血等を診断する場合には、凝集型の網状赤血球を計数することが有用であるとされている。よって、ネコの血液の場合には、点状型の網状赤血球と凝集型の網状赤血球の境界位置に閾値Ｔｈｒを設定して網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域を分画する必要がある。

これに対し、イヌの血液の場合には、同図（ｂ）に示す如く、網状赤血球に含まれる点状型と凝集型とを区別する必要はなく、正規分布する赤血球（ＲＢＣ）に続いて分布する網状赤血球（ＲＥＴ）の総数を計数する必要がある。よって、イヌの血液の場合には、赤血球（ＲＢＣ）と網状赤血球（ＲＥＴ）の境界位置に閾値Ｔｈｒを設定して網状赤血球（ＲＥＴ）の座標領域を分画する必要がある。

このように、ネコとイヌとでは、測定対象とされる網状赤血球の分布領域が異なっている。このため、上記式（１）における係数αは、ネコの血液の場合とイヌの血液の場合とで変えられる必要があり、少なくとも、ネコの血液における係数αはイヌの場合よりも所定の大きさだけ大きく設定する必要がある。具体的には、ネコの血液の場合には、イヌの血液の場合に比べて係数αが２倍程度大きな値に調整される。

ＲＥＴ領域内の血球が計数された後、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３１２において、ステップＳ３０９又はステップＳ３１０にて分画した赤血球（ＲＢＣ）の座標領域をもとに、赤血球（ＲＢＣ）の座標領域に含まれるプロットデータの個数を計数する。さらに、ＣＰＵ１０１は、ステップＳ３１３において、かかる赤血球（ＲＢＣ）の個数に対する網状赤血球の個数の割合ＲＥＴ％を求める。

これに並行して、ＣＰＵ１０１は、Ｓ３１４において、同じ血液についてＲＢＣ検出部６にて取得された赤血球（ＲＢＣ）の個数に関する情報を測定ユニット２から取得し、さらに、ステップＳ３１５において、当該赤血球（ＲＢＣ）の個数に割合ＲＥＴ％を乗じて網状赤血球の個数ＲＥＴ＃を取得する。

なお、ここでは、ＲＢＣ検出部６にて検出された赤血球の個数に割合ＲＥＴ％を乗じて網状赤血球の個数ＲＥＴ＃を取得したが、これに替えて、Ｓ３１１にて取得された網状赤血球（ＲＥＴ）の個数をそのまま網状赤血球の個数ＲＥＴ＃として用いることも可能である。

こうして測定された網状赤血球の割合ＲＥＴ％と個数ＲＥＴ＃が、図１０のＳ１０６において、モニタ上に表示される。

次に、本実施の形態に係る血球測定装置（試作機）によって凝集型の網状赤血球（ネコ）の測定を行ったので、その測定結果について説明する。

図１６は、ネコの血液の顕微鏡写真の模式図である。図中、内部に顆粒（ＲＮＡ）を２個以上有する血球が網状赤血球（ＲＥＴ）である。また、網状赤血球のうち、顆粒が凝集しているものが凝集型で、顆粒が点在しているものが点状型である。

本測定では、本実施の形態に係る血球測定装置（試作機）でネコの血液を測定したときの凝集型の網状赤血球の測定結果と、顕微鏡による目視により血球を測定したときの凝集型の網状赤血球の測定結果とを比較して、本実施の形態に係る血球測定装置の測定精度を検証した。各測定は４７個の検体について行った。目視による測定結果は、複数人で測定した測定結果の平均値とした。血球測定装置（試作機）による測定は、上記図１１〜図１４にて説明したプロセス処理に従うものであり、スキャッタグラムを分画する際のパラメータ値は、ネコ用のものに設定した。なお、上記式（１）における係数αは、α＝１０（ヒトやイヌの２倍）とした。

図１７は、測定結果を示す図である。同図（ａ）および（ｂ）には、縦軸を試作機による値、横軸を目視による値として、同じ検体に対する試作機と目視の測定結果が一つの点でプロットされている。また、全プロットを近似する直線を求め、試作機の測定結果と目視の測定結果との相関が求められている。

同図（ａ）には、赤血球の個数に対する凝集型網状赤血球の割合ＲＥＴ％が測定結果として示されており、同図（ｂ）には、凝集型網状赤血球の個数ＲＥＴ＃が測定結果として示されている。なお、ＲＥＴ＃は、上記と同様、電気抵抗値の変化をもとに求めた赤血球の個数（図５のＲＢＣ検出部６による計測結果）に、同図（ａ）で求めたＲＥＴ％を乗算することにより求めたものである。

同図（ａ）および（ｂ）の測定結果では、試作機の測定結果と目視の測定結果との相関ｒが、それぞれ、ｒ＝０．９２４およびｒ＝０．８９６となっており、両測定結果の間に極めて高い相関が得られた。この測定結果から、本実施の形態に係る血球測定装置（試作機）の測定精度は、ネコの血液の測定に用いて十分な程度に高いものであることが検証できた。

以上、本実施の形態によれば、凝集型の網状赤血球を精度よく計数することができる。よって、目視に頼らず凝集型の網状赤血球を計数可能となるため、獣医、検査技師等の負担を顕著に軽減することができる。

また、本実施の形態によれば、測定対象とされる動物種を適宜選択できるため、ネコ等の動物種から凝集型の網状赤血球を測定できる他、イヌ等の動物種から網状赤血球の総数を測定することもできる。すなわち、測定対象としてネコが選択されると、凝集型の網状赤血球の個数に関する情報（ＲＥＴ％、ＲＥＴ＃）が出力され、イヌが選択されると、網状赤血球の総数に関する情報（ＲＥＴ％、ＲＥＴ＃）が出力される。よって、獣医、検査技師等は、測定対象の動物を選択するだけで、その動物種の診断に有用な網状赤血球の個数に関する情報を取得することができ、診断時の負担が顕著に軽減され得る。

なお、上記実施の形態では、測定対象としてネコとイヌを例示したが、その他の動物種も勿論測定対象とされ得る。この場合、ネコ以外に凝集型の網状赤血球を含み得る動物種があれば、その動物種についても、式（１）の係数αが調整され、凝集型の網状赤血球の測定が行われる。凝集型の網状赤血球を含み得る動物種としては、例えば、ウサギ、フェレットが挙げられる。

また、上記実施の形態では、第１の動物種（ネコ）の場合は凝集型の網状赤血球を測定・表示するようにしたが、これに加えて、点状型の網状赤血球を測定・表示するようにしてもよく、あるいは、網状赤血球の総数を測定・表示するようにしても良い。また、第１の動物種（ネコ）において、凝集型の網状赤血球のみを測定・表示するか、さらに、点状型の網状赤血球あるいは網状赤血球の総数をも測定・表示するかを、ユーザが適宜選択できるようにしても良い。

図１８は、第１の動物種（ネコ、等）において、凝集型の網状赤血球の他に、点状型の網状赤血球と網状赤血球の総数を計測・表示する場合の処理フローを示す図である。この処理フローでは、上記実施の形態と同様、スキャッタグラムが生成され（Ｓ４０１）、上記式（１）の係数αが凝集型の網状赤血球を計測するための係数α１に設定される（Ｓ４０２）。そして、係数α１を用いて、上記実施の形態と同様に、凝集型網状赤血球の座標領域が分画され（Ｓ４０３）、凝集型網状赤血球の血球数Ｎ１が計数される（Ｓ４０４）。

ここで、ユーザが、マルチプル表示を選択していなければ（Ｓ４０５：ＮＯ）、上記実施の形態と同様、表示すべき網状赤血球の個数がステップＳ４０４にて計数された血球数Ｎ１とされ（Ｓ４１２）、この血球数に基づく表示出力が行われる（Ｓ４１３）。

一方、ユーザが、マルチプル表示を選択していれば（Ｓ４０５：ＹＥＳ）、上記式（１）の係数αが網状赤血球の総数（全ての型（例えば、点状型と凝集型の両方）を含む）を計測するための係数α２に設定される（Ｓ４０６）。そして、この係数α２を用いて、上記実施の形態と同様に、網状赤血球（全ての型（例えば、点状型と凝集型の両方）を含む）の座標領域が分画され（Ｓ４０７）、網状赤血球の総血球数Ｎ２が計数される（Ｓ４０８）。さらに、Ｎ２−Ｎ１の演算を行って、点状型の網状赤血球の個数Ｎ３が求められる。

こうして求めた個数Ｎ１、Ｎ２、Ｎ３が、それぞれ、凝集型の網状赤血球数、網状赤血球の総数、点状型の網状赤血球数に設定され（Ｓ４１０）、上記実施の形態と同様、各血球数に基づく表示出力（ＲＥＴ％、ＲＥＴ＃）が行われる（Ｓ４１１）。なお、ユーザが、凝集型の網状赤血球の計測結果の他に、網状赤血球の総数の表示のみを選択した場合は、凝集型の網状赤血球と網状赤血球の総数に関する表示が行われる。この場合、図１８のステップＳ４０９はスキップされる。また、ユーザが、凝集型と点状型の網状赤血球の計測結果の表示のみを選択した場合は、凝集型の網状赤血球と点状型の網状赤血球に関する表示が行われる。

以上、本発明の実施の形態について説明したが、本発明は上記実施の形態に何ら制限されるものではなく、また、本発明の実施形態も上記の他に種々の変更が可能である。

たとえば、上記実施の形態では、前方散乱光強度と側方蛍光強度とをもとにスキャッタグラムを生成して凝集型の網状赤血球を計測するようにしたが、たとえば、側方散乱光と側方蛍光強度をもとに凝集型の網状赤血球を計測するようにしてもよく、また、特定波長のレーザ光を照射したときに生じる複数種類の蛍光をもとに凝集型の網状赤血球を計測するようにしても良い。

また、上記実施の形態にて参照した図１２ないし図１４には、凝集型の網状赤血球を含む第１の動物種としてネコを例示し、凝集型の網状赤血球を含まない第２の動物種としてイヌを例示したが、各動物種は、これらネコ、イヌの他にも他の動物を含み得るものであり、本発明は、これらネコ、イヌの他の動物の血球測定装置にも適宜採用可能なものである。

さらに、上記実施の形態では、ＲＥＴ％とＲＥＴ＃の両方を表示するようにしたが、これらのうち何れか一方のみを表示するようにしても良く、また、これら以外に、凝集型の網状赤血球の個数に基づく他の情報を表示するようにしても良い。

なお、上記実施の形態における測定例では、ネコの血液の測定における上記式（１）の係数αを、凝集型の網状赤血球を含まない動物種（ヒト、イヌ）の２倍に設定したが、この係数αは、必ずしも、ヒトやイヌの場合の２倍でなくとも良く、ヒトやイヌの場合の２倍の値を中心として適正な値に設定されれば良い。請求項１２に記載の“２倍”は、２倍を中心にやや前後する範囲を許容するものである。

この他、本発明の実施の形態は、特許請求の範囲に示された技術的思想の範囲内において、適宜、種々の変更が可能である。

１ … 血球測定装置（動物用血球測定装置）
２ … 測定ユニット
３ … データ処理ユニット
４ … 試料調整部
５ … ＲＥＴ検出部（特徴情報取得部）
２３ … チャンバ（試料調整部）
１０１ … ＣＰＵ（凝集型分離手段、血球数取得手段、網状赤血球分類手段）
１０６ … 入力インタフェース（選択手段）
１０７ … 出力インタフェース（出力部）

Claims (12)

1. 動物の血液から測定試料を調製する試料調製部と、
   前記試料調製部によって調製された前記測定試料から、前記測定試料の特徴を表す特徴情報を取得する特徴情報取得部と、
   前記特徴情報取得部によって取得された前記特徴情報に基づいて、前記血液に含まれる凝集型の網状赤血球を他の血球から分類する凝集型分類手段と、
   前記凝集型分類手段によって分類された前記凝集型の網状赤血球の数に関する情報を出力する出力部と、
   を備える動物用血球測定装置。
2. 前記凝集型分類手段による分類結果に基づいて、前記凝集型の網状赤血球の数を取得する血球数取得手段をさらに備え、
   前記出力手段は、前記血球数取得手段によって取得された前記凝集型の網状赤血球の数を、前記凝集型の網状赤血球の数に関する情報として出力する、
   請求項１記載の動物用血球測定装置。
3. 前記試料調製部は、前記血液と網状赤血球の核酸を染色する染色液とから前記測定試料を調製し、
   前記特徴情報取得部は、前記測定試料に光を照射する光源を備え、前記光源から前記測定試料に光が照射されることにより生じる蛍光を受光し、受光強度に応じた蛍光強度情報を前記特徴情報として取得し、
   前記凝集型分類手段は、前記蛍光強度情報に基づいて、前記血液に含まれる凝集型の網状赤血球を他の血球から分類する、
   請求項２に記載の動物用血球測定装置。
4. 前記特徴情報取得部は、前記光源から前記測定試料に光が照射されることにより生じる散乱光を受光し、受光強度に応じた散乱光強度情報を前記特徴情報としてさらに取得し、
   前記凝集型分類手段は、前記蛍光強度情報および前記散乱光強度情報に基づいて、前記血液に含まれる凝集型の網状赤血球を他の血球から分類する、
   請求項３記載の動物用血球測定装置。
5. 前記動物はネコである、
   請求項１〜４のいずれか一項に記載の動物用血球測定装置。
6. 測定対象となる動物の種類を少なくとも第１の動物種および第２の動物種から選択する選択手段と、
   前記特徴情報取得部によって取得された前記特徴情報に基づいて、前記血液に含まれる全ての型を含む網状赤血球を他の血球から分類する網状赤血球分類手段と、をさらに備え、
   前記第１の動物種が選択された場合には、前記凝集型分類手段によって凝集型の網状赤血球を他の血球から分類し、前記第２の動物種が選択された場合には、前記網状赤血球分類手段によって全ての型を含む網状赤血球を他の血球から分類する、
   請求項１〜５のいずれか一項に記載の動物用血球測定装置。
7. 前記第１の動物種はネコであり、前記第２の動物種はイヌである、
   請求項６記載の動物用血球測定装置。
8. 前記凝集型分類手段は、前記蛍光強度と前記散乱光強度とをそれぞれ座標軸とするスキャッタグラムから前記凝集型の網状赤血球を含む凝集型座標領域を分画し、
   前記血球数取得手段は、前記凝集型座標領域に含まれるプロットデータの数に基づいて、前記凝集型の網状赤血球の数を取得する、
   請求項４記載の動物用血球測定装置。
9. 前記凝集型分類手段は、前記スキャッタグラムから赤血球と網状赤血球とを含む赤血球系座標領域を分画し、前記赤血球系座標領域内のプロットデータに基づいて前記凝集型座標領域を分画する、
   請求項８記載の動物用血球測定装置。
10. 前記凝集型分類手段は、前記赤血球系座標領域内のプロットデータに基づいて前記蛍光強度に対する血球数の分布を求め、前記分布から前記血球数がピークとなる前記蛍光強度Ｘと前記分布の分散σとを取得し、取得した前記蛍光強度Ｘおよび前記分散σと、前記動物の前記凝集型の網状赤血球の測定に適用される係数αとをもとに、Ｔｈｒ＝Ｘ＋α・σの演算を行うことにより、前記凝集型座標領域を分画する際の前記蛍光強度の閾値Ｔｈｒを求める、
    請求項９記載の動物用血球測定装置。
11. 前記係数αは、凝集型の網状赤血球を含まない動物種の血液における前記スキャッタグラムから網状赤血球の座標領域を分画する際に適用される前記係数αよりも所定の大きさだけ大きく設定されている、
    請求項１０記載の動物用血球測定装置。
12. 前記係数αは、凝集型の網状赤血球を含まない動物種の血液における前記スキャッタグラムから網状赤血球の座標領域を分画する際に適用される前記係数αの２倍の大きさに設定されている、
    請求項１１記載の動物用血球測定装置。

Images