JP2015065946A - 細胞培養担体および細胞培養容器 - Google Patents
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Abstract
【課題】細胞の生存率を大きく向上することができる細胞培養担体および細胞培養容器を提供する。【解決手段】表面から裏面まで厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体であって、複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａと、裏面側開口部の平均開口径Ｂとが、互いに異なる値であり、複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が漸増または漸減する形状を有する細胞培養担体。【選択図】図１
Description
本発明は、細胞培養担体および細胞培養容器に関し、特に、複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜を用いた細胞培養担体および細胞培養容器に関する。
近年、細胞培養技術の発展に伴い、細胞の増殖を促進するための様々な細胞培養担体が開発されている。一般的に、細胞培養担体は、細胞培養容器において細胞培養液を収容する培養室内に備えられ、その表面上に付着した細胞の増殖を促進するためのものであり、細胞の生存率を高く保つことができる。
このような細胞培養担体としては、厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜から構成されたものがあり、例えば、特許文献１には、「アルミニウムの陽極酸化皮膜の表面および／または細孔（マイクロポア）の内部に無機材料を有する細胞培養用メンブレン（細胞培養担体）。」が開示されている（請求項１）。
本発明者は、特許文献１に記載された細胞培養担体を用いて細胞培養を行ったところ、細胞の生存率に改善の余地があることを明らかとした。
そこで、本発明は、細胞の生存率を大きく向上することができる細胞培養担体および細胞培養容器を提供することを課題とする。
本発明者は、上記課題を達成すべく鋭意検討した結果、細胞培養担体を貫通する複数のマイクロポアを所定の形状とすることにより、細胞の生存率が大きく向上することを見出し、本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、以下の構成の細胞培養担体および細胞培養容器を提供する。
すなわち、本発明は、以下の構成の細胞培養担体および細胞培養容器を提供する。
（１）表面から裏面まで厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体であって、
複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａと、裏面側開口部の平均開口径Ｂとが、互いに異なる値であり、
複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状を有する細胞培養担体。
複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａと、裏面側開口部の平均開口径Ｂとが、互いに異なる値であり、
複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状を有する細胞培養担体。
（２）複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が漸増または漸減する形状を有する（１）に記載の細胞培養担体。
（３）複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が段階的に増加または段階的に減少する形状を有する（１）に記載の細胞培養担体。
（４）平均開口径Ａおよび平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径の値が、小さい平均開口径の値の１．０５倍以上１０．０倍以下である（１）〜（３）に記載の細胞培養担体。
（５）平均開口径Ａおよび平均開口径Ｂのうち、小さい平均開口径が、４０ｎｍ以上８０ｎｍ以下である（１）〜（４）に記載の細胞培養担体。
（６）平均開口径Ａおよび平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径が、６５ｎｍ以上１００ｎｍ以下である（１）〜（５）のいずれかに記載の細胞培養担体。
（７）表面および裏面を合わせた両面の平均開口率が、２０％以上である（１）〜（６）のいずれかに記載の細胞培養担体。
（８）表面および裏面を合わせた両面の平均開口率が、５１％以上である（７）に記載の細胞培養担体。
（９）厚みが１０μｍ以上３００μｍ以下である（１）〜（８）のいずれかに記載の細胞培養担体。
（１０）細胞培養液を収容する培養室を有する少なくとも１つの培養ウェルと、
細胞が付着する表面が培養室内に位置し且つ表面から裏面まで細胞培養液で満たされるように配置される（１）〜（９）のいずれかに記載の細胞培養担体と、を備える細胞培養容器。
細胞が付着する表面が培養室内に位置し且つ表面から裏面まで細胞培養液で満たされるように配置される（１）〜（９）のいずれかに記載の細胞培養担体と、を備える細胞培養容器。
（１１）細胞培養担体が、表面および裏面が培養室内に位置するように配置される（１０）に記載の細胞培養容器。
（１２）培養室より多くの細胞培養液を収容する収容室を有する受容部をさらに備え、
細胞培養担体が、培養ウェルの底板部の少なくとも一部を構成し、
培養ウェルが、底板部が収容室内に位置するように配置され、培養室が複数のマイクロポアを介して収容室に連通する（１０）に記載の細胞培養容器。
細胞培養担体が、培養ウェルの底板部の少なくとも一部を構成し、
培養ウェルが、底板部が収容室内に位置するように配置され、培養室が複数のマイクロポアを介して収容室に連通する（１０）に記載の細胞培養容器。
（１３）培養ウェルが、底板部の側部から受容部の側部に向かって平板状に延びる拡張部を有し、
受容部が、側部に拡張部を支持する支持部を有する（１２）に記載の細胞培養容器。
受容部が、側部に拡張部を支持する支持部を有する（１２）に記載の細胞培養容器。
（１４）拡張部が、厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなり、細胞培養担体と一体に設けられる（１３）に記載の細胞培養容器。
本発明によれば、細胞の生存率を大きく向上することができる細胞培養担体および細胞培養容器を提供することができる。
以下に、本発明の細胞培養担体および細胞培養容器を詳細に説明する。
本発明の細胞培養担体は、表面から裏面まで厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体であって、複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａと、裏面側開口部の平均開口径Ｂとが、互いに異なる値であり、複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状を有する細胞培養担体である。
次に、本発明の細胞培養担体について、図１を用いて説明する。
本発明の細胞培養担体は、表面から裏面まで厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体であって、複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａと、裏面側開口部の平均開口径Ｂとが、互いに異なる値であり、複数のマイクロポアは、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状を有する細胞培養担体である。
次に、本発明の細胞培養担体について、図１を用いて説明する。
図１は、本発明の細胞培養担体の好適な実施態様の一例を示す簡略図であり、図１（Ａ）は正面図、図１（Ｂ）は図１（Ａ）の切断面線Ｉｂ−Ｉｂからみた断面図である。
本発明の細胞培養担体１は、表面２から裏面３まで厚み方向Ｚに貫通する複数のマイクロポア４を有する。この複数のマイクロポア４は、表面側開口部５および裏面側開口部６を有し、表面側開口部５の平均開口径Ａの値が裏面側開口部６の平均開口径Ｂの値より小さくなるように形成されている。また、表面側開口部５と裏面側開口部６は、裏面側開口部６に向かって拡径するように滑らかに傾斜する細胞培養担体１の内周面７により互いに接続されている。これにより、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増する形状を有する。
本発明の細胞培養担体１は、表面２から裏面３まで厚み方向Ｚに貫通する複数のマイクロポア４を有する。この複数のマイクロポア４は、表面側開口部５および裏面側開口部６を有し、表面側開口部５の平均開口径Ａの値が裏面側開口部６の平均開口径Ｂの値より小さくなるように形成されている。また、表面側開口部５と裏面側開口部６は、裏面側開口部６に向かって拡径するように滑らかに傾斜する細胞培養担体１の内周面７により互いに接続されている。これにより、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増する形状を有する。
また、本発明の細胞培養担体１は、図２に示すように、複数のマイクロポア４の表面側開口部５の平均開口径Ａの値が裏面側開口部６の平均開口径Ｂの値より大きくなるように形成することもできる。表面側開口部５と裏面側開口部６は、裏面側開口部６に向かって縮径するように滑らかに傾斜する細胞培養担体１の内周面７により互いに接続されている。これにより、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸減するように形成される。
また、本発明の細胞培養担体は、複数のマイクロポアが表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が段階的に増加または段階的に減少する形状を有することもできる。
例えば、図３に示すように、表面側開口部５の平均開口径Ａの値が裏面側開口部６の平均開口径Ｂの値より小さくなるように形成し、裏面側開口部６に向かって段階的に拡径する細胞培養担体１の内周面７により、表面側開口部５と裏面側開口部６を互いに接続することができる。これにより、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が段階的に増加するように形成される。
例えば、図３に示すように、表面側開口部５の平均開口径Ａの値が裏面側開口部６の平均開口径Ｂの値より小さくなるように形成し、裏面側開口部６に向かって段階的に拡径する細胞培養担体１の内周面７により、表面側開口部５と裏面側開口部６を互いに接続することができる。これにより、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が段階的に増加するように形成される。
本発明の細胞培養担体１においては、上述したように、細胞の生存率を大きく向上させるために、複数のマイクロポア４が、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が増加または減少する形状を有する。すなわち、細胞培養担体１が後述する細胞培養容器に配置された際に、複数のマイクロポア４を介して表面２側と裏面３側との間でスムーズに細胞培養液を流通させることができ、表面２上で培養される細胞の周囲において細胞培養液を循環して入れ換えることで、細胞の生存率を大きく向上させることができる。
また、本発明の細胞培養担体は、表面上に付着して培養される細胞に対して、細胞培養液を上側からだけでなく下側からも接触させるため、多くの細胞培養液を供給することができ、細胞の生存率を向上させることができる。
また、本発明の細胞培養担体は、表面上に付着して培養される細胞に対して、細胞培養液を上側からだけでなく下側からも接触させるため、多くの細胞培養液を供給することができ、細胞の生存率を向上させることができる。
なお、細胞培養液をよりスムーズに流通させる理由から、図１および２に示すように、複数のマイクロポアは、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増または漸減する形状とすることが好ましい。
また、表面２上で培養される細胞の増殖の妨げとならない理由から、図１に示すように、複数のマイクロポア４を表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増する形状として、表面開口部５の平均開口径Ａをより小さく形成することが好ましい。
また、表面２上で培養される細胞の増殖の妨げとならない理由から、図１に示すように、複数のマイクロポア４を表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増する形状として、表面開口部５の平均開口径Ａをより小さく形成することが好ましい。
次に、本発明の細胞培養担体について、材料、寸法、形成等を詳細に説明する。
本発明においては、上記複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａおよび裏面側開口部の平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径の値が小さい平均開口径の値の１．０５倍以上１０．０倍以下であるのが好ましく、１．１倍以上４．５倍以下であるのがより好ましく、１．１５倍以上３．０倍以下であるのがさらに好ましい。
平均開口径Ａの値と平均開口径Ｂの値の比率を上記の範囲とすることで、細胞培養担体の表面側と裏面側との間で複数のマイクロポアを介して細胞培養液をよりスムーズに流通させることができ、細胞の生存率をさらに向上させることができる。
平均開口径Ａの値と平均開口径Ｂの値の比率を上記の範囲とすることで、細胞培養担体の表面側と裏面側との間で複数のマイクロポアを介して細胞培養液をよりスムーズに流通させることができ、細胞の生存率をさらに向上させることができる。
また、上記複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａおよび裏面側開口部の平均開口径Ｂのうち、小さい平均開口径が４０ｎｍ以上８０ｎｍ以下であることが好ましい。
また、上記複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａおよび裏面側開口部の平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径が６５ｎｍ以上１００ｎｍ以下であることが好ましい。
平均開口径の値を上記の範囲とすることで、細胞培養担体の表面側と裏面側との間で複数のマイクロポアを介して細胞培養液をよりスムーズに流通させ、細胞の生存率をさらに向上させることができる。また、平均開口径の値を上記の範囲とすることで、細胞培養担体の表面上で培養される細胞の増殖が妨げられるのを抑制することができる。
ここで、平均開口径とは、ＦＥ−ＳＥＭにより細胞培養担体の５箇所について表面写真（倍率２００００倍）を撮影し、それぞれの表面写真において１μｍ×１μｍの視野に存在する各マイクロポアの開口径を測定して、５箇所の表面写真から得られたマイクロポアの開口径について平均値を算出した値である。
また、上記複数のマイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａおよび裏面側開口部の平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径が６５ｎｍ以上１００ｎｍ以下であることが好ましい。
平均開口径の値を上記の範囲とすることで、細胞培養担体の表面側と裏面側との間で複数のマイクロポアを介して細胞培養液をよりスムーズに流通させ、細胞の生存率をさらに向上させることができる。また、平均開口径の値を上記の範囲とすることで、細胞培養担体の表面上で培養される細胞の増殖が妨げられるのを抑制することができる。
ここで、平均開口径とは、ＦＥ−ＳＥＭにより細胞培養担体の５箇所について表面写真（倍率２００００倍）を撮影し、それぞれの表面写真において１μｍ×１μｍの視野に存在する各マイクロポアの開口径を測定して、５箇所の表面写真から得られたマイクロポアの開口径について平均値を算出した値である。
また、細胞培養担体の表面および裏面のうち、小さい平均開口径を示す面の開口率が、２０％以上であることが好ましく、４０％以上であることがより好ましく、５１％以上であることがさらに好ましい。また、細胞培養担体の表面および裏面のうち、大きい平均開口径を示す面の開口率が、３０％以上であることが好ましく、４０％以上であることがより好ましく、６０％以上であることがさらに好ましく、７０％以上であることがさらに好ましい。なお、細胞培養担体の表面および裏面の開口率は、９０％以下であることが好ましい。さらに、細胞培養担体の表面および裏面を合わせた両面の平均開口率は、３０％以上であることが好ましく、４０％以上であることがより好ましく、５１％以上であることがさらに好ましく、５８％以上であることがさらに好ましい。
細胞培養担体の開口率を上記のように設定することにより、細胞培養担体の表面側と裏面側との間で細胞培養液を複数のマイクロポアを介してよりスムーズに流通させ、細胞の生存率をさらに向上させることができる。特に、両面の平均開口率が５１％以上であると、細胞培養液の流通がさらに促進され、細胞の生存率を格段に向上させることができる。
細胞培養担体の開口率を上記のように設定することにより、細胞培養担体の表面側と裏面側との間で細胞培養液を複数のマイクロポアを介してよりスムーズに流通させ、細胞の生存率をさらに向上させることができる。特に、両面の平均開口率が５１％以上であると、細胞培養液の流通がさらに促進され、細胞の生存率を格段に向上させることができる。
ここで、表面の開口率は、表面開口部の面積／表面の面積で表され、裏面の開口率は、裏面開口部の面積／裏面の面積で表されるものである。また、両面の平均開口率は、（表面の開口率＋裏面の開口率）／２で表すことができる。開口部の面積は、細胞培養担体の表面および裏面をＦＥ−ＳＥＭで撮影し、得られた写真の１μｍ×１μｍの視野について、画像解析ソフト等で２値化してマイクロポア部分と非マイクロポア部分を観察し、マイクロポア部分の等価円直径を算出する方法から求められる幾何学的面積、即ち、２次元的な平面であると仮定した面積を求めた。なお、表面および裏面をそれぞれ５箇所ずつ撮影した写真について上記の開口部の面積を求め、これらの値から算出された開口率の平均値を表面の開口率および裏面の開口率とした。
また、複数のマイクロポアの平均密度は、細胞培養液の流通をより向上させる理由から、１個／μｍ2以上１５０００個／μｍ2以下であることが好ましく、２個／μｍ2以上１０００個／μｍ2以下であることが好ましく、３個／μｍ2以上３００個／μｍ2以下であることがさらに好ましい。
ここで、平均密度は、表面写真（倍率２００００倍）をＦＥ−ＳＥＭにより撮影し、その１μｍ×１μｍの視野に存在するマイクロポアの個数を数え、これにより求められる密度について１μｍ×１μｍの視野の５箇所分の平均値を算出した値である。
ここで、平均密度は、表面写真（倍率２００００倍）をＦＥ−ＳＥＭにより撮影し、その１μｍ×１μｍの視野に存在するマイクロポアの個数を数え、これにより求められる密度について１μｍ×１μｍの視野の５箇所分の平均値を算出した値である。
また、細胞培養担体の厚み（図１（Ｂ）においては符号８で表される）は、細胞培養液の流通をより向上させる理由から、３００μｍ以下であることが好ましく、２００μｍ以下であることがより好ましく、１５０μｍ以下であることがさらに好ましい。
また、複数のマイクロポアのアスペクト比（平均長さ／平均開口径）は、細胞培養液の流通をより向上させる理由から、５０００以下であることが好ましく、３０００以下であることがより好ましく、２０００以下であることがさらに好ましい。
また、複数のマイクロポアのアスペクト比（平均長さ／平均開口径）は、細胞培養液の流通をより向上させる理由から、５０００以下であることが好ましく、３０００以下であることがより好ましく、２０００以下であることがさらに好ましい。
また、隣接する各マイクロポアの中心間距離（図１においては符号９で表される部分。以下、「ピッチ」ともいう。）は、１０ｎｍ以上５００ｎｍ以下が好ましく、３０ｎｍ以上４００ｎｍ以下がより好ましく、５０ｎｍ以上３００ｎｍ以下がさらに好ましい。ピッチを上記の範囲とすることにより、複数のマイクロポアをバランスよく配置することができ、細胞培養液を均等に供給して細胞の生存率をより向上させることができる。
ここで、中心間距離とは、ＦＥ−ＳＥＭにより細胞培養担体の５箇所について表面写真（倍率２００００倍）を撮影し、それぞれの表面写真において１μｍ×１μｍの視野に存在する各マイクロポアの中心間の距離を測定して、５箇所の表面写真から得られたマイクロポアの中心間の距離について平均値を算出した値である。
ここで、中心間距離とは、ＦＥ−ＳＥＭにより細胞培養担体の５箇所について表面写真（倍率２００００倍）を撮影し、それぞれの表面写真において１μｍ×１μｍの視野に存在する各マイクロポアの中心間の距離を測定して、５箇所の表面写真から得られたマイクロポアの中心間の距離について平均値を算出した値である。
次に、本発明の細胞培養担体について、その製造方法を詳細に説明する。
本発明の細胞培養担体の製造方法は特に限定されないが、例えば、少なくとも、アルミニウム基板を陽極酸化してマイクロポアを有する酸化膜を形成する陽極酸化処理（以下、「陽極酸化処理（Ａ）」ともいう。）と、上記陽極酸化処理後にアルミニウム基板を除去し、上記酸化膜をアルミニウム基板から分離する分離処理（以下、「分離処理（Ｂ）」ともいう。）と、上記分離処理により分離された酸化膜のマイクロポアを貫通させる貫通化処理（以下、「貫通化処理（Ｃ）」ともいう。）と、上記貫通化処理により貫通化されたマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を拡大させる開口拡大処理（以下、「開口拡大処理（Ｄ）」ともいう。）とをこの順に施すことにより細胞培養担体を形成する方法；上記陽極酸化処理（Ａ）と上記分離処理（Ｂ）を施した後に、上記分離処理により分離された酸化膜のマイクロポアを貫通化させると同時にマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を拡大させる開口形成拡大処理（以下、「開口形成拡大処理（Ｅ）」ともいう。）を施すことにより細胞培養担体を形成する方法；などが挙げられる。
［アルミニウム基板］
後述する各処理を施すアルミニウム基板については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００１０］〜［００１２］段落に記載されたものを用いることができる。また、熱処理、脱脂処理、鏡面仕上げ処理についても、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００１３］〜［００２３］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
後述する各処理を施すアルミニウム基板については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００１０］〜［００１２］段落に記載されたものを用いることができる。また、熱処理、脱脂処理、鏡面仕上げ処理についても、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００１３］〜［００２３］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
［陽極酸化処理（Ａ）］
陽極酸化処理（Ａ）は、アルミニウム基板を陽極酸化することにより、アルミニウム基板の表面にマイクロポアを有する酸化膜を形成する処理である。陽極酸化処理としては、従来公知の方法を用いることができるが、マイクロポアを高い規則性で配列させる観点から、自己規則化法や定電圧処理を用いるのが好ましい。
ここで、陽極酸化処理については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００２４］〜［００７１］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
陽極酸化処理（Ａ）は、アルミニウム基板を陽極酸化することにより、アルミニウム基板の表面にマイクロポアを有する酸化膜を形成する処理である。陽極酸化処理としては、従来公知の方法を用いることができるが、マイクロポアを高い規則性で配列させる観点から、自己規則化法や定電圧処理を用いるのが好ましい。
ここで、陽極酸化処理については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００２４］〜［００７１］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
［分離処理（Ｂ）］
分離処理（Ｂ）は、上記陽極酸化処理（Ａ）後にアルミニウム基板を除去し、陽極酸化膜をアルミニウム基板から分離する処理である。アルミニウム基板の除去には、例えば、アルミナは溶解せず、アルミニウムを溶解する処理液に、上記陽極酸化処理されたアルミニウム基板を接触させることにより、アルミニウム基板を除去した陽極酸化膜を得ることができる。
ここで、分離処理については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００７２］〜［００７６］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
分離処理（Ｂ）は、上記陽極酸化処理（Ａ）後にアルミニウム基板を除去し、陽極酸化膜をアルミニウム基板から分離する処理である。アルミニウム基板の除去には、例えば、アルミナは溶解せず、アルミニウムを溶解する処理液に、上記陽極酸化処理されたアルミニウム基板を接触させることにより、アルミニウム基板を除去した陽極酸化膜を得ることができる。
ここで、分離処理については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００７２］〜［００７６］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
［貫通化処理（Ｃ）］
貫通化処理（Ｃ）は、上記分離処理（Ｂ）により分離された陽極酸化膜のマイクロポアを貫通させる処理である。
貫通化処理（Ｃ）では、陽極酸化膜を酸水溶液またはアルカリ水溶液に浸せきさせることにより、陽極酸化膜を部分的に溶解させる。これにより、マイクロポア底部の陽極酸化膜が除去され、マイクロポアが貫通して、表面開口部から裏面開口部まで一様な直径のマイクロポアが形成される。
ここで、貫通化処理については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００７７］〜［００８１］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
貫通化処理（Ｃ）は、上記分離処理（Ｂ）により分離された陽極酸化膜のマイクロポアを貫通させる処理である。
貫通化処理（Ｃ）では、陽極酸化膜を酸水溶液またはアルカリ水溶液に浸せきさせることにより、陽極酸化膜を部分的に溶解させる。これにより、マイクロポア底部の陽極酸化膜が除去され、マイクロポアが貫通して、表面開口部から裏面開口部まで一様な直径のマイクロポアが形成される。
ここで、貫通化処理については、特許文献１（特開２０１０−２２６９７５号公報）の［００７７］〜［００８１］段落に記載された各処理と同様の処理を施すことができる。
［開口拡大処理（Ｄ）］
開口拡大処理（Ｄ）は、上記貫通化処理（Ｃ）により貫通化されたマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を拡大させる処理である。この開口拡大処理により、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状のマイクロポアを得ることができる。
開口拡大処理（Ｄ）は、上記貫通化処理（Ｃ）により貫通化されたマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を拡大させる処理である。この開口拡大処理により、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状のマイクロポアを得ることができる。
開口拡大処理は、上記貫通化処理により得られた陽極酸化膜の表面部分または裏面部分を、酸水溶液またはアルカリ水溶液に接触させることにより行う。接触させる方法は、特に限定されず、例えば、浸せき法、スプレー法が挙げられる。中でも、浸せき法が好ましい。
開口拡大処理に酸水溶液を用いる場合は、硫酸、リン酸、硝酸、塩酸等の無機酸またはこれらの混合物の水溶液を用いることが好ましい。酸水溶液の濃度は０．１〜１質量％であるのが好ましい。酸水溶液の温度は、１５〜３０℃であるのが好ましい。
開口拡大処理にアルカリ水溶液を用いる場合は、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムおよび水酸化リチウムからなる群から選ばれる少なくとも一つのアルカリの水溶液を用いることが好ましい。アルカリ水溶液の濃度は０．０１〜１質量％であるのが好ましい。アルカリ水溶液の温度は、１５〜３０℃であるのが好ましい。
酸水溶液またはアルカリ水溶液への浸せき時間は、０．５〜３０分であるのが好ましく、１〜２５分であるのがより好ましく、３〜２０分であるのが更に好ましい。
酸水溶液またはアルカリ水溶液への浸せき時間は、０．５〜３０分であるのが好ましく、１〜２５分であるのがより好ましく、３〜２０分であるのが更に好ましい。
［開口形成拡大処理（Ｅ）］
開口形成拡大処理（Ｅ）は、上記分離処理（Ｂ）により分離された陽極酸化膜のマイクロポアを貫通化させると同時にマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を拡大させる処理である。この開口形成拡大処理により、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状のマイクロポアを得ることができる。
開口形成拡大処理（Ｅ）は、上記分離処理（Ｂ）により分離された陽極酸化膜のマイクロポアを貫通化させると同時にマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を拡大させる処理である。この開口形成拡大処理により、表面側開口部から裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状のマイクロポアを得ることができる。
開口形成拡大処理は、上記分離処理により得られた陽極酸化膜を、酸水溶液またはアルカリ水溶液に接触させることにより、陽極酸化膜を部分的に溶解させる。
ここで、開口径形成拡大処理は、上述した貫通化処理（Ｃ）および開口拡大処理（Ｄ）に代えて施す処理であるため、貫通化処理（Ｃ）と比べて高温の酸水溶液またはアルカリ水溶液を用いるのが好ましい。これにより、マイクロポア底部の陽極酸化膜を除去してマイクロポアを貫通させると同時にマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を確実に拡大させることができる。
ここで、開口径形成拡大処理は、上述した貫通化処理（Ｃ）および開口拡大処理（Ｄ）に代えて施す処理であるため、貫通化処理（Ｃ）と比べて高温の酸水溶液またはアルカリ水溶液を用いるのが好ましい。これにより、マイクロポア底部の陽極酸化膜を除去してマイクロポアを貫通させると同時にマイクロポアの表面側開口部または裏面側開口部の開口径を確実に拡大させることができる。
開口形成拡大処理に酸水溶液を用いる場合は、硫酸、リン酸、硝酸、塩酸等の無機酸またはこれらの混合物の水溶液を用いることが好ましい。酸水溶液の濃度は１〜１０質量％であるのが好ましい。酸水溶液の温度は、４１〜５０℃であるのが好ましい。
開口形成拡大処理にアルカリ水溶液を用いる場合は、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムおよび水酸化リチウムからなる群から選ばれる少なくとも一つのアルカリの水溶液を用いることが好ましい。アルカリ水溶液の濃度は０．１〜５質量％であるのが好ましい。アルカリ水溶液の温度は、３６〜４５℃であるのが好ましい。
具体的には、例えば、５０ｇ／Ｌ、４５℃のリン酸水溶液、０．５ｇ／Ｌ、４２℃の水酸化ナトリウム水溶液または０．５ｇ／Ｌ、４２℃の水酸化カリウム水溶液が好適に用いられる。
酸水溶液またはアルカリ水溶液への浸せき時間は、１５〜１７５秒であるのが好ましく、２０〜１６０秒であるのがより好ましく、３０〜１５０秒であるのが更に好ましい。
開口形成拡大処理にアルカリ水溶液を用いる場合は、水酸化ナトリウム、水酸化カリウムおよび水酸化リチウムからなる群から選ばれる少なくとも一つのアルカリの水溶液を用いることが好ましい。アルカリ水溶液の濃度は０．１〜５質量％であるのが好ましい。アルカリ水溶液の温度は、３６〜４５℃であるのが好ましい。
具体的には、例えば、５０ｇ／Ｌ、４５℃のリン酸水溶液、０．５ｇ／Ｌ、４２℃の水酸化ナトリウム水溶液または０．５ｇ／Ｌ、４２℃の水酸化カリウム水溶液が好適に用いられる。
酸水溶液またはアルカリ水溶液への浸せき時間は、１５〜１７５秒であるのが好ましく、２０〜１６０秒であるのがより好ましく、３０〜１５０秒であるのが更に好ましい。
開口形成拡大処理後、陽極酸化膜を水洗処理する。水和によるマイクロポアの開口径の変化を抑制するため、水洗処理は３０℃以下で実施することが好ましい。
また、上記分離処理の後であって上記開口形成拡大処理の前、または、上記開口形成拡大処理の後任意に、上記陽極酸化処理により形成した酸化皮膜を５０℃以上の温度で少なくとも１０分間加熱する加熱処理を施すこともできる。
また、上記分離処理の後であって上記開口形成拡大処理の前、または、上記開口形成拡大処理の後任意に、上記陽極酸化処理により形成した酸化皮膜を５０℃以上の温度で少なくとも１０分間加熱する加熱処理を施すこともできる。
以下に、本発明の細胞培養容器について詳細に説明する。
[細胞培養容器]
本発明の細胞培養容器は、細胞培養液を収容する培養室を有する少なくとも１つの培養ウェルと、細胞が付着する表面が培養室内に位置し且つ表面から裏面まで細胞培養液で満たされるように配置される上述した細胞培養担体とを備える細胞培養容器である。
本発明の細胞培養容器は、細胞培養液を収容する培養室を有する少なくとも１つの培養ウェルと、細胞が付着する表面が培養室内に位置し且つ表面から裏面まで細胞培養液で満たされるように配置される上述した細胞培養担体とを備える細胞培養容器である。
図４は、本発明の細胞培養容器２１の好適な実施態様の一例を示す模式的な断面図である。
細胞培養容器２１は、上端部が開放された円筒形状を有し、その内部に細胞培養液Ｍを収容する培養室２２を有する培養ウェル２３と、表面２および裏面３が培養室２２内に位置するように配置された細胞培養担体１とを備える。培養室２２内には、円筒形状の支持部２４が配置されており、この支持部２４が細胞培養担体１を下側から支持することにより、細胞培養担体１の裏面３と培養室２２の底板部２５との間に細胞培養液Ｍで満たされた隙間２６が生じる。
細胞培養容器２１は、上端部が開放された円筒形状を有し、その内部に細胞培養液Ｍを収容する培養室２２を有する培養ウェル２３と、表面２および裏面３が培養室２２内に位置するように配置された細胞培養担体１とを備える。培養室２２内には、円筒形状の支持部２４が配置されており、この支持部２４が細胞培養担体１を下側から支持することにより、細胞培養担体１の裏面３と培養室２２の底板部２５との間に細胞培養液Ｍで満たされた隙間２６が生じる。
このように、細胞培養担体１が複数のマイクロポア４を有することにより、細胞培養担体１の表面２上に付着して培養される細胞Ｃに対して、細胞培養液Ｍを上側からだけでなく、下側からも接触させることができ、細胞の増殖を促進させることができる。また、上述したように、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増または漸減する形状を有するため、表面２側と裏面３側との間で細胞培養液Ｍを効率よく流通させることができ、細胞の生存率を大きく向上させることができる。
また、本発明の細胞培養容器は、培養室より多くの細胞培養液を収容する収容室を有する受容部をさらに備え、細胞培養担体は、培養ウェルの底板部の少なくとも一部を構成し、培養ウェルは、底板部が収容室内に位置するように配置され、培養室が複数のマイクロポアを介して収容室に連通するように構成することもできる。
例えば、図５に示すように、上端部が開放された円筒形状を有し、底板部が上述した細胞培養担体１で構成され、その内部に細胞培養液Ｍを収容する培養室２２を有する培養ウェル２３と、上端部が開放された円筒形状を有し、その内部に培養ウェル２３の培養室２２より多くの細胞培養液Ｍを収容する収容室２７を有する受容部２８とを備え、この受容部２８の収容室２７内に培養ウェル２３を配置することができる。培養ウェル２３は、細胞培養担体１の側縁部２９から受容部２８の側部３０に向かって円盤状に延びる拡張部３１を有する。また、受容部２８は、拡張部３１を下側から支持する支持部３２を収容室２７内に有し、これにより受容部２８の底面と細胞培養担体１の裏面３との間に隙間３３が生じ、この隙間３３を収容室２７に収容された細胞培養液Ｍで満たすことができる。培養ウェル２３の培養室２２は、複数のマイクロポア４を介して受容部２８の収容室２７と連通されており、培養室２２に収容された細胞培養液Ｍと収容室２７に収容された細胞培養液Ｍを複数のマイクロポア４を介して互いに流通させることができる。
なお、図６に示すように、拡張部３１は、厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなり、細胞培養担体１と一体に設けることが好ましい。すなわち、培養ウェル２３の底板部２５と拡張部３１を上述した細胞培養担体１で構成することが好ましい。
上述したように、複数のマイクロポア４は、表面側開口部５から裏面側開口部６に向かって平均直径が漸増または漸減する形状を有するため、培養室２２側と収容室２７側との間で細胞培養液Ｍを効率よく流通させることができる。一般的に、細胞培養では、培養される細胞Ｃが乳酸などを生成することで細胞培養液Ｍが劣化し、これが細胞Ｃの生存率の低下を招くことが知られている。本発明の細胞培養容器２１では、培養室２２側と収容室２７側との間で細胞培養液Ｍが効率よく流通して、細胞培養担体１の表面２上で培養される細胞Ｃの周囲において細胞培養液Ｍが順次入れ換えられるため、細胞Ｃの生存率を大きく向上させることができる。
また、一般的に、細胞培養では、細胞培養液Ｍが著しく劣化して細胞の生存率が大きく低下しないように、定期的に培養室２２内の細胞培養液Ｍを交換する必要がある。本発明の細胞培養容器２１では、培養室２２側と収容室２７側との間で細胞培養液Ｍを効率よく流通させることにより培養室２２内に収容された細胞培養液Ｍの劣化を抑制しているため、細胞培養液Ｍを交換する回数を減らすことができる。さらに、後述する細胞培養液の交換方法で示すように、細胞Ｃへの負荷を低減して細胞培養液Ｍを交換することができ、細胞の生存率の低下をさらに抑制することができる。
また、一般的に、細胞培養では、細胞培養液Ｍが著しく劣化して細胞の生存率が大きく低下しないように、定期的に培養室２２内の細胞培養液Ｍを交換する必要がある。本発明の細胞培養容器２１では、培養室２２側と収容室２７側との間で細胞培養液Ｍを効率よく流通させることにより培養室２２内に収容された細胞培養液Ｍの劣化を抑制しているため、細胞培養液Ｍを交換する回数を減らすことができる。さらに、後述する細胞培養液の交換方法で示すように、細胞Ｃへの負荷を低減して細胞培養液Ｍを交換することができ、細胞の生存率の低下をさらに抑制することができる。
なお、本発明の細胞培養容器で培養される細胞としては、特に限定されるものではないが、例えば、間葉系細胞、肝細胞、繊維芽細胞、内皮細胞、神経細胞、心筋細胞、グリア細胞、角膜上皮細胞、軟骨細胞、骨芽細胞、脂肪細胞等の正常な細胞を用いることができ、癌由来細胞株（例えば、ＨｅｐＧ２、ＨｕＨ−７）、イモータライズ（不死化）された細胞（例えば、ＨＨＹ４１、ＮＫＮＴ−３、Ｆａ２Ｎ−４株等）、および染色体異常を有する細胞等の異常な細胞を用いることもできる。また、ｉＰＳ細胞およびＥＳ細胞等を用いることもできる。
また、本発明の細胞培養容器で用いられる細胞培養液としては、培養される細胞の種別に応じて適宜調製されたものを使用することができる。
また、本発明の細胞培養容器で用いられる細胞培養液としては、培養される細胞の種別に応じて適宜調製されたものを使用することができる。
以下に、図６に示す本発明の細胞培養容器について、細胞培養液の交換方法を詳細に説明する。
まず、図６に示す状態で細胞Ｃが培養されて細胞培養液Ｍが劣化すると、図７（Ａ）に示すように、受容部２８の収容室２７内から培養ウェル２３が取り出される。この時、培養室２２内の細胞培養液Ｍは、培養ウェル２３の底板部を構成する細胞培養担体１の複数のマイクロポア４を介して収容室２７内に流出する。すなわち、細胞培養容器２１内の全ての細胞培養液Ｍが収容室２７に収容されることになる。
続いて、図７（Ｂ）に示すように、収容室２７内に収容された細胞培養液Ｍが、除かれた後、新しい細胞培養液Ｍが収容室２７内に供給される。そして、図７（Ｃ）に示すように、培養ウェル２３が受容部２８の収容室２７内に収容される。この時、培養ウェル２３が収容室２７の細胞培養液Ｍ中に沈められていくのに従って、細胞培養担体１の複数のマイクロポア４を介して収容室２７から培養室２２に細胞培養液Ｍが流入し、培養ウェル２３が支持部３２に当接したところで培養室２２内が細胞培養液Ｍで満たされることになる。
一般的に、培養室２２内の細胞培養液Ｍの交換をピペットなどの器具を用いて行うと、ピペットから細胞培養液Ｍが強い勢いで供給され、または、ピペットの先端が直接接触するなどして、細胞Ｃが損傷して細胞Ｃの生存率の低下を招くことが知られている。図６に示す本発明の細胞培養容器では、上述したように、培養室２２内の細胞培養液Ｍの交換をピペットなどの器具を用いずに穏やかに行うことができ、細胞Ｃの生存率の低下を抑制することができる。同様にして、図５に示す細胞培養容器についても、細胞培養溶液Ｍの交換をすることができ、細胞Ｃの生存率の低下を抑制することができる。
なお、図８に示すように、培養ウェル２３の拡張部を構成する細胞培養担体１の一部に、ピペットＰを挿入するための挿入孔３４を形成し、この挿入孔３４を介して収容室２７内に収容された細胞培養液Ｍを交換すると同時に、培養室２２内に収容された細胞培養液Ｍを交換することができる。
このように、培養室２２内にピペットＰを直接挿入しないため、細胞培養液Ｍを穏やかに交換することができる。
このように、培養室２２内にピペットＰを直接挿入しないため、細胞培養液Ｍを穏やかに交換することができる。
以下に実施例を示して本発明を具体的に説明する。ただし、本発明はこれらに限定されない。
（実施例１）
（１）電解研磨処理
高純度アルミニウム基板（住友軽金属株式会社製、純度９９．９９９質量％、厚さ０．４ｍｍ）を、１０ｃｍ四方の面積でカットし、以下の組成の電解研磨液を用いて、電圧１０Ｖ、液温度６５℃の条件で電解研磨処理を行った。陰極はカーボン電極とし、電源は、ＧＰ−２５０−３０Ｒ（株式会社高砂製作所社製）を用いた。
（１）電解研磨処理
高純度アルミニウム基板（住友軽金属株式会社製、純度９９．９９９質量％、厚さ０．４ｍｍ）を、１０ｃｍ四方の面積でカットし、以下の組成の電解研磨液を用いて、電圧１０Ｖ、液温度６５℃の条件で電解研磨処理を行った。陰極はカーボン電極とし、電源は、ＧＰ−２５０−３０Ｒ（株式会社高砂製作所社製）を用いた。
（電解研磨液組成）
・８５質量％リン酸（和光純薬工業株式会社製試薬） １３２０ｍＬ
・純水 ８０ｍＬ
・硫酸 ６００ｍＬ
・８５質量％リン酸（和光純薬工業株式会社製試薬） １３２０ｍＬ
・純水 ８０ｍＬ
・硫酸 ６００ｍＬ
（２）陽極酸化処理
上記で得られた電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２１分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
上記で得られた電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２１分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
なお、陽極酸化処理および再陽極酸化処理ともに、陰極はステンレス電極とし、電源は、ＧＰ０１１０−３０Ｒ（株式会社高砂製作所社製）を用いた。また、冷却装置としては、ＮｅｏＣｏｏｌ ＢＤ３６（ヤマト科学株式会社製）を用い、かくはん加温装置として、ペアスターラー ＰＳ−１００（ＥＹＥＬＡ東京理化器械株式会社製）を用いた。
（３）分離処理
上記で得られた陽極酸化処理後のサンプルを、２０質量％塩酸、および、０．１ｍｏｌ／Ｌ塩化第二銅の混合水溶液を用いて、１０℃、２０分間浸漬させることにより、アルミニウム基板を溶解して除去し、マイクロポアを有する陽極酸化膜からなる微細構造体を
作製した。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、３０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。
上記で得られた陽極酸化処理後のサンプルを、２０質量％塩酸、および、０．１ｍｏｌ／Ｌ塩化第二銅の混合水溶液を用いて、１０℃、２０分間浸漬させることにより、アルミニウム基板を溶解して除去し、マイクロポアを有する陽極酸化膜からなる微細構造体を
作製した。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、３０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。
＜細胞培養担体の形状解析＞
得られた開口形成拡大処理後の細胞培養担体についてそれぞれ５箇所の表面写真、裏面写真および断面写真（倍率２００００倍）をＦＥ−ＳＥＭにより撮影した。
平均開口径Ａは、５箇所の表面写真について１μｍ×１μｍの視野に存在する全てのマイクロポアの径を測定して、これらの平均値を算出することにより得られた。
平均開口径Ｂは、５箇所の裏面写真について１μｍ×１μｍの視野に存在する全てのマイクロポアの径を測定して、これらの平均値を算出することにより得られた。
中心間距離は、５箇所の表面写真および５箇所の裏面写真について１μｍ×１μｍの視野に存在する全てのマイクロポアの中心間距離を測定して、これらの平均値を算出することにより得られた。
なお、表面は開口形成拡大処理が施されていない面、裏面は開口形成拡大処理が施されて裏面開口径が拡大された面を指す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：５０ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：６８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（５）滅菌処理
上記で得られた細胞培養担体をエタノールで５ｍｉｎ超音波洗浄した後、オーブンで乾燥させ、滅菌処理を行った。
（６）細胞培養工程
滅菌後、室温に戻した細胞培養担体を用いて細胞の培養を行った。
(a)使用細胞：ＢＡＥ（ウシ大動脈血管内皮細胞）
(b)使用培養液：Ｅａｇｌｅ最小培地、１０%牛胎児血清
(c)前処理：高さ１０ｍｍ、内径３５ｍｍのシャーレを準備し、厚み１ｍｍ、外径３５ｍｍ、高さ５ｍｍのポリスチレンで構成された円筒型の支持部をシャーレ内に設置した。その後、細胞培養液をシャーレ内に高さ８ｍｍまで満たした後、細胞培養液中に細胞培養担体を沈めて支持部に設置した。さらに、細胞培養担体の表面上に、厚み１ｍｍ、外径１０ｍｍ、高さ５ｍｍのポリスチレンで構成された培養ウェル２３の側部を設置した。
(d)細胞の播種：予め培養しておいた細胞をトリプシン処理で回収し、細胞濃度を４００００ｃｅｌｌ／ｍＬに調製した。培養ウェルの培養室内の培地を捨てた後、細胞数が７０００ｃｅｌｌ／ｃｍ２となるように先程調整した細胞液を培養室内に播種した。
(e)培養：ＣＯ２インキュベーターを用いて３７℃で３日間培養した。
得られた開口形成拡大処理後の細胞培養担体についてそれぞれ５箇所の表面写真、裏面写真および断面写真（倍率２００００倍）をＦＥ−ＳＥＭにより撮影した。
平均開口径Ａは、５箇所の表面写真について１μｍ×１μｍの視野に存在する全てのマイクロポアの径を測定して、これらの平均値を算出することにより得られた。
平均開口径Ｂは、５箇所の裏面写真について１μｍ×１μｍの視野に存在する全てのマイクロポアの径を測定して、これらの平均値を算出することにより得られた。
中心間距離は、５箇所の表面写真および５箇所の裏面写真について１μｍ×１μｍの視野に存在する全てのマイクロポアの中心間距離を測定して、これらの平均値を算出することにより得られた。
なお、表面は開口形成拡大処理が施されていない面、裏面は開口形成拡大処理が施されて裏面開口径が拡大された面を指す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：５０ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：６８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（５）滅菌処理
上記で得られた細胞培養担体をエタノールで５ｍｉｎ超音波洗浄した後、オーブンで乾燥させ、滅菌処理を行った。
（６）細胞培養工程
滅菌後、室温に戻した細胞培養担体を用いて細胞の培養を行った。
(a)使用細胞：ＢＡＥ（ウシ大動脈血管内皮細胞）
(b)使用培養液：Ｅａｇｌｅ最小培地、１０%牛胎児血清
(c)前処理：高さ１０ｍｍ、内径３５ｍｍのシャーレを準備し、厚み１ｍｍ、外径３５ｍｍ、高さ５ｍｍのポリスチレンで構成された円筒型の支持部をシャーレ内に設置した。その後、細胞培養液をシャーレ内に高さ８ｍｍまで満たした後、細胞培養液中に細胞培養担体を沈めて支持部に設置した。さらに、細胞培養担体の表面上に、厚み１ｍｍ、外径１０ｍｍ、高さ５ｍｍのポリスチレンで構成された培養ウェル２３の側部を設置した。
(d)細胞の播種：予め培養しておいた細胞をトリプシン処理で回収し、細胞濃度を４００００ｃｅｌｌ／ｍＬに調製した。培養ウェルの培養室内の培地を捨てた後、細胞数が７０００ｃｅｌｌ／ｃｍ２となるように先程調整した細胞液を培養室内に播種した。
(e)培養：ＣＯ２インキュベーターを用いて３７℃で３日間培養した。
（実施例２）
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２３分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、４０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：６０ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：７５ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２３分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、４０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：６０ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：７５ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（実施例３）
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２３分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、５０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：６８ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：８１ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２３分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、５０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：６８ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：８１ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（実施例４）
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、得られた細胞培養担体の表裏を実施例３とは反対にしてシャーレ内に設置して（６）細胞培養工程を行った以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：８１ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：６８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、得られた細胞培養担体の表裏を実施例３とは反対にしてシャーレ内に設置して（６）細胞培養工程を行った以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：８１ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：６８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（実施例５）
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２５分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、６０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：７８ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：９０ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２５分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、６０秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：７８ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：９０ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（実施例６）
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ラット肝細胞
（ｂ）使用培養液：ＤＭＥＭ培地
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ラット肝細胞
（ｂ）使用培養液：ＤＭＥＭ培地
（実施例７）
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ＨｅｐＧ２細胞（ヒト胚芽腫由来細胞）
（ｂ）使用培養液：ウィリアムズＥ培地、１０％牛胎児血清
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ＨｅｐＧ２細胞（ヒト胚芽腫由来細胞）
（ｂ）使用培養液：ウィリアムズＥ培地、１０％牛胎児血清
（実施例８）
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ＨｕＨ７細胞（ヒト肝ガン由来細胞）
（ｂ）使用培養液：ウィリアムズＥ培地、１０％牛胎児血清
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ＨｕＨ７細胞（ヒト肝ガン由来細胞）
（ｂ）使用培養液：ウィリアムズＥ培地、１０％牛胎児血清
（実施例９）
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ＲＩＮ−５Ｆ細胞（ラットランゲルハンス島由来細胞）
（ｂ）使用培地：ＲＰＭＩ−１６４０培地、１０％牛胎児血清
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：ＲＩＮ−５Ｆ細胞（ラットランゲルハンス島由来細胞）
（ｂ）使用培地：ＲＰＭＩ−１６４０培地、１０％牛胎児血清
（実施例１０）
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：１２９ＳＶ細胞（マウスＥＳ細胞）
（ｂ）使用培地：ＥＳ細胞用培地
実施例３と同様の方法により細胞培養担体を作製した。続いて、細胞培養工程における使用細胞と使用培養液を以下に示すように変更した以外は、実施例３と同様の方法により、細胞培養を行った。
（ａ）使用細胞：１２９ＳＶ細胞（マウスＥＳ細胞）
（ｂ）使用培地：ＥＳ細胞用培地
（実施例１１）
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２４分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、４５秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：７１ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：７８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
上記の（２）陽極酸化処理と（４）開口形成拡大処理とを以下に示す方法で行った以外は、実施例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２４分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）開口形成拡大処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、水洗水で洗浄した。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、４２℃、４５秒間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、裏面開口径を拡大したマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：７１ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：７８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（比較例１）
特許文献１の段落［０１０４］に記載されたメンブレン２の作製方法および段落［０１２７］に記載された比較例１の作製方法を参考にして、以下に示すように細胞培養担体の作製を行った。
（１）電解研磨処理
純度９９．９９質量％の高純度アルミニウム基板を用いた以外は、実施例１と同様の方法により電解研磨処理を行った。
特許文献１の段落［０１０４］に記載されたメンブレン２の作製方法および段落［０１２７］に記載された比較例１の作製方法を参考にして、以下に示すように細胞培養担体の作製を行った。
（１）電解研磨処理
純度９９．９９質量％の高純度アルミニウム基板を用いた以外は、実施例１と同様の方法により電解研磨処理を行った。
（２）陽極酸化処理
上記で得られた電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２．５時間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１０時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
上記で得られた電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２．５時間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１０時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（３）分離処理
実施例１と同様の方法により分離処理を行った。
（４）貫通化処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、ｐＨ緩衝作用のあるＫＣｌ溶液に１０分間浸漬させ、細孔内部にＫＣｌ溶液を充分に浸透させた。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、表面側開口部から裏面側開口部まで一様な直径のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。
なお、特許文献１の段落［０１０４］には、（４）アルミ除去、貫通化処理工程において、「バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４５分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去する」ことが記載されているが、撮影により確認された微細構造体の形状を得る（貫通孔の平均開口径が３０ｎｍなど）ためには、その処理時間は長すぎると考えられる。実際に、分離処理後のサンプルを０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４５分間浸漬させた結果、そのほとんどが溶解されてしまった。このため、「０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４分間浸漬させる」などの誤記であると考えられる。
実施例１と同様の方法により分離処理を行った。
（４）貫通化処理
上記で得られた分離処理後のサンプルを、ｐＨ緩衝作用のあるＫＣｌ溶液に１０分間浸漬させ、細孔内部にＫＣｌ溶液を充分に浸透させた。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、表面側開口部から裏面側開口部まで一様な直径のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。
なお、特許文献１の段落［０１０４］には、（４）アルミ除去、貫通化処理工程において、「バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４５分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去する」ことが記載されているが、撮影により確認された微細構造体の形状を得る（貫通孔の平均開口径が３０ｎｍなど）ためには、その処理時間は長すぎると考えられる。実際に、分離処理後のサンプルを０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４５分間浸漬させた結果、そのほとんどが溶解されてしまった。このため、「０．１Ｍ−ＫＯＨに、３０℃、４分間浸漬させる」などの誤記であると考えられる。
以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １００μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１００μｍ
・表面の平均開口径Ａ：３０ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：３０ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
・細胞培養担体の厚さ： １００μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１００μｍ
・表面の平均開口径Ａ：３０ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：３０ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（６）細胞培養工程
実施例１と同様の方法により細胞培養を行った。
実施例１と同様の方法により細胞培養を行った。
（比較例２）
上記の（２）陽極酸化処理と（４）貫通化処理とを以下に示す方法で行った以外は、比較例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）貫通化処理
分離処理後のサンプルを、ｐＨ緩衝作用のあるＫＣｌ溶液に１０分間浸漬させ、細孔内部にＫＣｌ溶液を充分に浸透させた。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、２５℃、９分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、表面側開口部から裏面側開口部まで一様な直径のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：６８ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：６８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
上記の（２）陽極酸化処理と（４）貫通化処理とを以下に示す方法で行った以外は、比較例１と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（２）陽極酸化処理
電解研磨処理後のサンプルに、０．５０ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧を４０．０Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で２５分間陽極酸化処理を施した。更に陽極酸化処理後のサンプルに、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬して脱膜処理を施した。この処理を４回繰り返した。
さらに、再陽極酸化処理条件として、０．５ｍｏｌ／Ｌシュウ酸の電解液で、電圧４１．７Ｖ、液温度１５℃、液流速３．０ｍ／ｍｉｎの条件で１５時間陽極酸化処理を施した。更に、０．５ｍｏｌ／Ｌリン酸の混合水溶液を用いて４０℃の条件で２０分間浸漬させて脱膜処理を施すことにより、アルミニウム基板表面に、マイクロポアが直管状で且つハニカム状に配列された陽極酸化膜を形成させた。
（４）貫通化処理
分離処理後のサンプルを、ｐＨ緩衝作用のあるＫＣｌ溶液に１０分間浸漬させ、細孔内部にＫＣｌ溶液を充分に浸透させた。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、２５℃、９分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、表面側開口部から裏面側開口部まで一様な直径のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：６８ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：６８ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
（比較例３）
上記の（４）貫通化処理を以下に示す方法で行った以外は、比較例２と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（４）貫通化処理
分離処理後のサンプルを、ｐＨ緩衝作用のあるＫＣｌ溶液に１０分間浸漬させ、細孔内部にＫＣｌ溶液を充分に浸透させた。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、２５℃、１０分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、表面側開口部から裏面側開口部まで一様な直径のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：７５ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：７５ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
上記の（４）貫通化処理を以下に示す方法で行った以外は、比較例２と同様の方法により、細胞培養担体を作製して細胞培養を行った。
（４）貫通化処理
分離処理後のサンプルを、ｐＨ緩衝作用のあるＫＣｌ溶液に１０分間浸漬させ、細孔内部にＫＣｌ溶液を充分に浸透させた。その後、バリア層側のみを０．１Ｍ−ＫＯＨに、２５℃、１０分間浸漬させることにより陽極酸化膜の底部を除去し、表面側開口部から裏面側開口部まで一様な直径のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体を作製した。以下に、細胞培養担体の形状を確認した結果を示す。
・細胞培養担体の厚さ： １５０μｍ、 ・マイクロポアの深さ：１５０μｍ
・表面の平均開口径Ａ：７５ｎｍ、 ・裏面の平均開口径Ｂ：７５ｎｍ
・マイクロポアの中心間距離：１００ｎｍ
作製した細胞培養担体の開口径比率は、小さい平均開口径に対する大きい平均開口径の比率（大きい平均開口径の値／小さい平均開口径の値）を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
表面の開口率は、細胞培養担体の表面の５箇所をＦＥ−ＳＥＭで撮影し、得られたそれぞれの写真の１μｍ×１μｍの視野について、表面開口部の面積と視野範囲の面積を求めて開口率＝表面開口部の面積／視野範囲の面積を算出し、この５箇所の開口率について平均値を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
裏面の開口率は、細胞培養担体の裏面の５箇所をＦＥ−ＳＥＭで撮影し、得られたそれぞれの写真の１μｍ×１μｍの視野について、裏面開口部の面積と視野範囲の面積を求めて開口率＝裏面開口部の面積／視野範囲の面積を算出し、この５箇所の開口率について平均値を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
両面の平均開口率は、（表面の開口率＋裏面の開口率）／２を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
（評価方法）
細胞生存率は、光学顕微鏡を用いて、１００個の細胞を無作為に選択し、その選択された細胞の中で生存している細胞をカウントして算出した。細胞生存率が９５％以上をＡ、９０％以上９５％未満をＢ、９０％未満をＣとした。この結果を下記第１表に示す。
表面の開口率は、細胞培養担体の表面の５箇所をＦＥ−ＳＥＭで撮影し、得られたそれぞれの写真の１μｍ×１μｍの視野について、表面開口部の面積と視野範囲の面積を求めて開口率＝表面開口部の面積／視野範囲の面積を算出し、この５箇所の開口率について平均値を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
裏面の開口率は、細胞培養担体の裏面の５箇所をＦＥ−ＳＥＭで撮影し、得られたそれぞれの写真の１μｍ×１μｍの視野について、裏面開口部の面積と視野範囲の面積を求めて開口率＝裏面開口部の面積／視野範囲の面積を算出し、この５箇所の開口率について平均値を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
両面の平均開口率は、（表面の開口率＋裏面の開口率）／２を算出して得られた。この結果を下記第１表に示す。
（評価方法）
細胞生存率は、光学顕微鏡を用いて、１００個の細胞を無作為に選択し、その選択された細胞の中で生存している細胞をカウントして算出した。細胞生存率が９５％以上をＡ、９０％以上９５％未満をＢ、９０％未満をＣとした。この結果を下記第１表に示す。
第１表に示す結果から、マイクロポアの直径が表面側開口部から裏面側開口部に向かって漸増または漸減する実施例１〜１１は、複数のマイクロポアの直径が厚さ方向に一様な比較例１〜３と比較して、細胞生存率が大きく向上することがわかった。
また、平均開口径Ｂが平均開口径Ａの１．１５倍以上である実施例３は、平均開口径Ｂが平均開口径Ａの１．１５倍未満である実施例１１と比較して、両面の平均開口率が近い値にもかかわらず、細胞生存率が大きく向上することがわかった。
また、細胞培養担体の表面および裏面を合わせた両面の平均開口率が５１％以上である実施例３〜５は、両面の平均開口率が５１％未満である実施例１および２と比較して、細胞生存率がより向上することがわかった。
また、異なる細胞腫を培養した実施例６〜１０は、いずれも高い細胞生存率を示しており、細胞種によらずに細胞生存率を大きく向上できることがわかった。
また、細胞培養担体の表面および裏面を合わせた両面の平均開口率が５１％以上である実施例３〜５は、両面の平均開口率が５１％未満である実施例１および２と比較して、細胞生存率がより向上することがわかった。
また、異なる細胞腫を培養した実施例６〜１０は、いずれも高い細胞生存率を示しており、細胞種によらずに細胞生存率を大きく向上できることがわかった。
１ 細胞培養担体、２ 表面、３ 裏面、４ マイクロポア、５ 表面側開口部、６ 裏面側開口部、７ 細胞培養担体の内周面、８ 細胞培養担体の厚み、２１ 細胞培養容器、２２ 培養室、２３ 培養ウェル、２４ 支持部、２５ 底板部、２６ 隙間、２７ 収容室、２８ 受容部、２９ 側縁部、３０ 受容部の側部、３１ 拡張部、３２ 支持部、３３ 隙間、３４ 挿入孔、Ａ 表面側開口部の平均開口径、Ｂ 裏面側開口部の平均開口径、Ｃ 細胞、Ｍ 細胞培養液。
Claims (14)
- 表面から裏面まで厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなる細胞培養担体であって、
複数の前記マイクロポアの表面側開口部の平均開口径Ａと、裏面側開口部の平均開口径Ｂとが、互いに異なる値であり、
複数の前記マイクロポアは、前記表面側開口部から前記裏面側開口部に向かって平均直径が増加または減少する形状を有する細胞培養担体。 - 複数の前記マイクロポアは、前記表面側開口部から前記裏面側開口部に向かって平均直径が漸増または漸減する形状を有する請求項１に記載の細胞培養担体。
- 複数の前記マイクロポアは、前記表面側開口部から前記裏面側開口部に向かって平均直径が段階的に増加または段階的に減少する形状を有する請求項１に記載の細胞培養担体。
- 前記平均開口径Ａおよび前記平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径の値が、小さい平均開口径の値の１．０５倍以上１０．０倍以下である請求項１〜３のいずれか一項に記載の細胞培養担体。
- 前記平均開口径Ａおよび前記平均開口径Ｂのうち、小さい平均開口径が、４０ｎｍ以上８０ｎｍ以下である請求項１〜４のいずれか一項に記載の細胞培養担体。
- 前記平均開口径Ａおよび前記平均開口径Ｂのうち、大きい平均開口径が、６５ｎｍ以上１００ｎｍ以下である請求項１〜５のいずれか一項に記載の細胞培養担体。
- 前記表面および前記裏面のうち、小さい平均開口径を示す面の開口率が、２０％以上である請求項１〜６のいずれか一項に記載の細胞培養担体。
- 前記表面および前記裏面を合わせた両面の平均開口率が、５１％以上である請求項７に記載の細胞培養担体。
- 厚みが１０μｍ以上３００μｍ以下である請求項１〜８のいずれか一項に記載の細胞培養担体。
- 細胞培養液を収容する培養室を有する少なくとも１つの培養ウェルと、
細胞が付着する表面が前記培養室内に位置し且つ表面から裏面まで細胞培養液で満たされるように配置される請求項１〜９のいずれか一項に記載の細胞培養担体と、を備える細胞培養容器。 - 前記細胞培養担体が、表面および裏面が前記培養室内に位置するように配置される請求項１０に記載の細胞培養容器。
- 前記培養室より多くの細胞培養液を収容する収容室を有する受容部をさらに備え、
前記細胞培養担体が、前記培養ウェルの底板部の少なくとも一部を構成し、
前記培養ウェルが、前記底板部が前記収容室内に位置するように配置され、前記培養室が複数のマイクロポアを介して前記収容室に連通する請求項１０に記載の細胞培養容器。 - 前記培養ウェルが、前記底板部の側部から前記受容部の側部に向かって平板状に延びる拡張部を有し、
前記受容部が、前記側部に前記拡張部を支持する支持部を有する請求項１２に記載の細胞培養容器。 - 前記拡張部が、厚み方向に貫通する複数のマイクロポアを有する陽極酸化膜からなり、前記細胞培養担体と一体に設けられる請求項１３に記載の細胞培養容器。
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