JP2014122203A - 抗真菌剤およびコーティング剤 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明に係る抗真菌剤は、ポリ−γ−グルタミン酸とカチオン性殺菌剤から形成されるPGAイオンコンプレックスを含有することを特徴とする。
【選択図】なし
Description
ポリ−γ−グルタミン酸とカチオン性殺菌剤から形成されるPGAイオンコンプレックスを含有することを特徴とする抗真菌剤。
カチオン性殺菌剤が第四級アンモニウムである、項1に記載の抗真菌剤。
カチオン性殺菌剤がビグアニド系殺菌剤である、項1に記載の抗真菌剤。
カチオン性殺菌剤が、セチルピリジニウム、ベンゼトニウム、クロルヘキシジン、ベンザルコニウムおよびラウリルピリジニウムからなる群より選択される1種以上である、項1に記載の抗真菌剤。
ポリ−γ−グルタミン酸を構成するグルタミン酸のうち、L−グルタミン酸の占める割合が90%以上である、項1〜4のいずれかに記載の抗真菌剤。
ポリ−γ−グルタミン酸を構成するグルタミン酸がL−グルタミン酸からなる、項5に記載の抗真菌剤。
項1〜6の何れかに記載の抗真菌剤を含むことを特徴とするコーティング剤。
超好塩古細菌ナトリアルバ・エジプチアキア(N.aegyptiaca)由来の平均分子量1000kDのポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩(40g)を精製水に溶解し、2w/v%の溶液とした。当該溶液へ60℃に保温した塩化セチルピリジニウム(CPC)の0.2M水溶液(1551g)を加えた。原料であるポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩の水溶液から、CPC添加直後に水不溶性材料が形成されることを確認した後、さらに60℃で4時間保温した。得られた水不溶性材料を濾別回収した後、1000mLの精製水で計3回洗浄した。さらにアセトンで洗浄することにより脱水した後、真空乾燥し、粉末としてイオンコンプレックス(93g)を回収した。得られたイオンコンプレックスの1H−NMRの結果から、L−PGAとセチルピリジニウムが100:100のモル比で結合していることが確認された。
超好塩古細菌ナトリアルバ・エジプチアキア(N.aegyptiaca)由来の平均分子量1000kDのポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩(80g)を精製水に溶解し、2w/v%の溶液とした。当該溶液へ、2.0Mの塩酸(80g)を加え、pH4に調整した後、塩化セチルピリジニウム(CPC)の0.2M水溶液(668g)を加えた。原料であるポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩の水溶液から、CPC添加直後に水不溶性材料が形成されることを確認した後、60℃で4時間攪拌した。得られた水不溶性材料を濾別回収した後、600mLの精製水で計3回洗浄した。洗浄後、湿体の水不溶性材料を真空乾燥し、粉末としてイオンコンプレックス(67g)を回収した。得られたイオンコンプレックスの1H−NMRの結果から、L−PGAとセチルピリジニウムが100:60のモル比で結合していることが確認された。
超好塩古細菌ナトリアルバ・エジプチアキア(N.aegyptiaca)由来の平均分子量1000kDのポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩(1g)を精製水に溶解し、2w/v%の溶液とした。当該溶液へ塩化ベンザルコニウム(BAC)の0.3M水溶液(26g)を加えた。原料であるポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩の水溶液から、BAC添加直後に水不溶性材料が形成されることを確認した後、さらに25℃で2時間攪拌した。得られた水不溶性材料を濾別回収した後、30mLの精製水で計3回洗浄した。真空乾燥し、イオンコンプレックス(3g)を回収した。得られたイオンコンプレックスの1H−NMRの結果から、L−PGAとベンザルコニウムが100:100のモル比で結合していることが確認された。
超好塩古細菌ナトリアルバ・エジプチアキア(N.aegyptiaca)由来の平均分子量1000kDのポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩(2g)を精製水に溶解し、18w/v%の溶液とした。当該溶液へ塩化ラウリルピリジニウム(LPC)の0.6M水溶液(28g)を加えた。原料であるポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩の水溶液から、LPC添加直後に水不溶性材料が形成されることを確認した後、さらに25℃で2時間攪拌した。得られた水不溶性材料を濾別回収した後、30mLの精製水で計2回洗浄した。真空乾燥し、イオンコンプレックス(4g)を回収した。得られたイオンコンプレックスの1H−NMRの結果から、L−PGAとラウリルピリジニウムが100:100のモル比で結合していることが確認された。
超好塩古細菌ナトリアルバ・エジプチアキア(N.aegyptiaca)由来の平均分子量1000kDのポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩(1g)を精製水に溶解し、18w/v%の溶液とした。塩化ベンゼトニウム(BTC)の0.2M水溶液(32g)を加えた。原料であるポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩の水溶液から、LPC添加直後に水不溶性材料が形成されることを確認した後、さらに25℃で2時間攪拌した。得られた水不溶性材料を濾別回収した後、30mLの精製水で計2回洗浄した。真空乾燥し、イオンコンプレックス(3g)を回収した。得られたイオンコンプレックスの1H−NMRの結果から、L−PGAとベンゼトニウムが100:100のモル比で結合していることが確認された。
超好塩古細菌ナトリアルバ・エジプチアキア(N.aegyptiaca)由来の平均分子量1000kDのポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩(40g)を精製水に溶解し、2w/v%の溶液とした。当該溶液へ60℃に保温したヘキサデシルピリジウムアンモニウムブロマイド(HDPB)の0.2M水溶液(1551g)を加えた。原料であるポリ−γ−L−グルタミン酸ナトリウム塩の水溶液から、HDPB添加直後に水不溶性材料が形成されることを確認した後、さらに60℃で4時間保温した。得られた水不溶性材料を濾別回収した後、1000mLの精製水で計3回洗浄した。さらにアセトンで洗浄することにより脱水した後、真空乾燥し、粉末としてイオンコンプレックス(93g)を回収した。得られたイオンコンプレックスの1H−NMRの結果から、L−PGAとヘキサデシルピリジウムアンモニウムが100:100のモル比で結合していることが確認された。
実施例6で得られたイオンコンプレックス(20g)をエタノールに溶解し、30wt%の溶液とした。得られたエタノール溶液をアプリケータにてPETフィルム上に塗布し、溶剤乾燥させることで、厚さ50μmのPGAICコーティングフィルムを作製した。
実施例6で作製したPGAIC(L−PGA/HDPB)熱可塑成形フィルムの真菌に対する静菌作用を評価した。具体的には、YPD液体培地に真菌であるSaccharomyces cerevisiae(S.cerevisiae)の菌液を接種した後、実施例6の直径1.3mm円形のフィルムを浸し、30℃にて48時間培養した。また、細菌であるEscherichia coli(E.coli)およびSalmonella.typhimurium(S.typhimurium)についても、培地をLuria−Bertani(LB)液体培地とし、37℃にて24時間同様に培養した。さらに対照として、フィルムを浸していない培地でも菌を培養した。培養開始から、培養液の濁度(A600)を経時的に測定した。真菌であるS.cerevisiaeの結果を図1に、また、細菌であるE.coliとS.typhimuriumの結果をそれぞれ図2と図3に示す。
JIS L 1902に準拠し、実施例7で作製したPGAICコーティングフィルムの真菌に対する静菌作用を評価した。供試菌として、Aspergillus niger(A.niger)およびCandida albicans(C.albicans)を懸濁した寒天培地の表面に実施例7の円形フィルム(直径6mm)を3枚静置し、37℃で24時間静置培養後、フィルム周辺に形成されたハローの幅を測定した。試験サンプルの対照として、未処理のPETフィルムを用いた。その結果、PGAICコーティングフィルムには、これらの真菌類に対する静菌作用が認められた(表1)。
JIS L 1902に従い、実施例7で作製したPGAICコーティングフィルムの抗細菌性を評価した。供試菌として、Escherichia coli(E.coli)、Staphylococcus aureus(S.aureus)およびPseudomonas aeruginosa(P.aeruginosa)を懸濁した普通寒天培地の表面に実施例7の円形フィルム(直径6mm)を3枚静置し、37℃で24時間静置培養後、フィルム周辺に形成されたハローの幅を測定した。試験サンプルの対照例として、未処理のPETフィルムを用いた。その結果、PGAICコーティングフィルムには、これらの細菌類に対する静菌作用が認められた(表2)。
一般的なブロス希釈法に従い、前培養した真菌類から、胞子液、菌液をそれぞれ調製した。胞子液または菌液を、段階希釈した薬剤溶液を添加した寒天培地上に塗布し、28℃にて2〜5日間静置培養後、増殖の有無によりMIC値を決定した。供試菌として、Aspergillus niger(A.niger)とCandida albicans(C.albicans)を用いた。試験サンプルとしてPGAイオンコンプレックス(PGA/CPC)を用い、対照としてCPCを用いた。その結果、PGAIC100およびPGAIC60には、CPCと同様に、これらの真菌類に対する静菌作用が認められた(表3)。
一般的なブロス希釈法に従い、ニュートリエントブロスを用いて菌懸濁濃度1000000cell/mlに調整した定常期状態の菌液を、段階希釈した薬剤溶液を添加した寒天培地上に塗布し、37℃にて24時間静置培養後、増殖の有無により、MIC値を決定した。供試菌として、Escherichia coli(E.coli)、Staphylococcus aureus(S.aureus)およびPseudomonas aeruginosa(P.aeruginosa)を用いた。試験サンプルとして、PGAイオンコンプレックス(PGA/CPC)を用い、比較例としてCPCを用いた。その結果、PGAIC100およびPGAIC60には、CPCと同様に、これらの細菌類に対する静菌作用が認められた(表4)。
PGAイオンコンプレックスのPP不織布への接着性を評価するため、ハローテストを行った。L−PGA/CPC、L−PGA/BAC、L−PGA/LPCおよびL−PGA/BTCを50%エタノールにそれぞれ溶解した0.1%溶液をPGAIC試験液として調製した。対照として、CPC、BAC、LPCおよびBTCを50%エタノールにそれぞれ溶解した0.1%溶液を4級アンモニウム塩試験液として調製した。直径10mmの円形に切り抜いたPP不織布にこれらの試験液をスプレー瓶から噴霧した後、風乾し、噴霧後のサンプルとした。次に、噴霧後に乾燥したこれらのPP不織布を蒸留水に浸して洗浄し、風乾し、水洗浄後のサンプルとした。
PGAイオンコンプレックスのステンレスへの接着性を評価するため、ハローテストを行った。実施例13と同様に、10mm角、厚さ1mmのステンレス片(SUS304)にPGAIC試験液および4級アンモニウム試験液をスプレー瓶から噴霧した後、風乾し、噴霧後のサンプルとした。次に、噴霧後に乾燥したこれらのステンレス片を蒸留水に浸して洗浄し、風乾し、水洗浄後のサンプルとした。実施例13と同様に、Streptococcus aureus NBRC13276の菌体を含む固形培地を調製した。各試験液で処理したステンレス片を前記固形培地上に3枚置床し、37℃にて24時間培養した後、フィルム周辺に形成されたハローの幅を測定した。結果を表6に示す。
PGAイオンコンプレックスのステンレスへの接着性を評価するため、ハローテストを行った。実施例13と同様に、10mm角、厚さ1mmのタイル片(陶磁器)にPGAIC試験液および4級アンモニウム試験液をスプレー瓶から噴霧した後、風乾し、噴霧後のサンプルとした。次に、噴霧後に乾燥したこれらのタイル片を蒸留水に浸して洗浄し、風乾し、水洗浄後のサンプルとした。実施例13と同様に、Streptococcus aureus NBRC13276の菌体を含む固形培地を調製した。各試験液で処理したタイル片を前記固形培地上に3枚置床し、37℃にて24時間培養した後、フィルム周辺に形成されたハローの幅を測定した。結果を表7に示す。
Claims (7)
- ポリ−γ−グルタミン酸とカチオン性殺菌剤から形成されるPGAイオンコンプレックスを含有することを特徴とする抗真菌剤。
- カチオン性殺菌剤が第四級アンモニウムである、請求項1に記載の抗真菌剤。
- カチオン性殺菌剤がビグアニド系殺菌剤である、請求項1に記載の抗真菌剤。
- カチオン性殺菌剤が、セチルピリジニウム、ベンゼトニウム、クロルヘキシジン、ベンザルコニウムおよびラウリルピリジニウムからなる群より選択される1種以上である、請求項1に記載の抗真菌剤。
- ポリ−γ−グルタミン酸を構成するグルタミン酸のうち、L−グルタミン酸の占める割合が90%以上である、請求項1〜4のいずれかに記載の抗真菌剤。
- ポリ−γ−グルタミン酸を構成するグルタミン酸がL−グルタミン酸からなる、請求項5に記載の抗真菌剤。
- 請求項1〜6の何れかに記載の抗真菌剤を含むことを特徴とするコーティング剤。
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