JP2012510512A - 記憶を推進するためのｈｄａｃ２の阻害 - Google Patents

記憶を推進するためのｈｄａｃ２の阻害 Download PDF

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Abstract

本発明は、失われた記憶の回復を増強および改善のための方法および製品に関する。特に、本方法は、ＨＤＡＣ２を阻害することおよびまたはＨＤＡＣ１／２またはＨＤＡＣ１／２／３を選択的に阻害することにより達成される。

Description

連邦政府の支援を受ける研究
本発明は、ＮＩＨＮＳ０５１８７４の下で、政府の援助で為された発明である。したがって、政府は本発明においてある権利を有する。
関連出願
本出願は、３５ＵＳＣ§１１９の下に、２００８年１２月３日に出願された米国仮出願第６１／１１９，６９８に対して優先権を主張し、その全内容は参照により本明細書に組み込まれる。
発明の背景
脳萎縮は、通常の加齢を通して起こり、損傷した学習および記憶に関連する神経変性疾患の早期の特徴である。前脳における広範な神経変性疾患を有するマウスモデルが報告されたのはつい最近である（１〜３）。これらのモデルのうちの１つは、バイトランスジェニックＣＫ−ｐ２５Ｔｇマウスであり、これは、様々な神経変性疾患に関与するタンパク質である（４）ｐ２５の発現がＣａｍＫＩＩプロモーターの制御下にあり、ドキシサイクリン食（doxycycline diet）でオンまたはオフに切り替えることができる（３、５）。６週間のｐ２５発現の出産後誘導は、深刻なシナプスおよび神経脱落に付随する学習の損傷の原因となった。しかしながら、臨床前研究は未だ、実質的な神経脱落が起こった後の記憶喪失を回復するための戦略を十分探索していない。
記憶形成および貯蔵に関わる神経適応応答は、機能的および構造的なシナプス変化を伴い、それは遺伝子発現の変更を必要とする（West, A. E. et al. Proc Natl Acad Sci U S A 98 (20), 11024-11031 (2001)；Guan, Z. et al. Cell 111 (4), 483-493 (2002)）。このプロセスの根底にあるメカニズムは依然として不明瞭である。コンパクトなクロマチン構造を変更させ、ＤＮＡの制御性タンパク質へのアクセシビリティを変化させる、特にヒストン尾部のアセチル化を介したクロマチン再構築は、発生および成人期における遺伝子発現の制御についての基礎的なメカニズムとして明らかになってきた（Kurdistani, S. K. & Grunstein, M. Nat Rev Mol Cell Biol 4 (4), 276-284 (2003)；Goldberg, A. D., Allis, C. D., & Bernstein, E. Cell 128 (4), 635-638 (2007)）。
発明の概要
中枢神経系の神経変性疾患は、しばしば損傷した学習および記憶と関連し、最終的には認知症へと導かれる。臨床前研究において大々的には取り組まれてこなかった重要な側面は、長期記憶の喪失およびこれらの記憶へのアクセスを再構築する戦略の探索である。いくつかの態様において、本発明は、シナプスおよび神経脱落がすでに起こった後での長期記憶へのアクセスを回復する方法を提供する。環境強化（ＥＥ）は、すでに顕著な脳萎縮および神経脱落が起こった後に、学習反応を復帰させ、長期記憶へのアクセスを再構築することが示された。また本明細書において、ＥＥとエピジェネティックな変化との間の相関関係も示された。ＥＥは、ヒストン尾部のアセチル化を増大させ、メチル化のレベルを変化させる。アセチル化の増加およびメチル化のレベルの変化が、海馬および大脳皮質のヒストン３（Ｈ３）およびヒストン４（Ｈ４）で観察された。次に、上昇したヒストンＨ３およびＨ４のアセチル化が、神経ネットワークの再配線を始動させる。
いくつかの側面において、本発明は、対象における記憶の増強に有効な量で、対象にＨＤＡＣ２阻害剤を投与することにより、対象において記憶を増強するための方法である。該ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤であってよい。他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、非選択的であるがＨＤＡＣ１、ＨＤＡＣ５、ＨＤＡＣ６、ＨＤＡＣ７および／またはＨＤＡＣ１０ではない。さらに他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２選択的阻害剤またはＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３選択的阻害剤である。
いくつかの態様において、本発明は、長期記憶へのアクセスの低下を有する対象において長期記憶にアクセスするための方法であって、対象における長期記憶のアクセスを再構築するのに有効な量で、ヒストンアセチル化を増大させることを含む、前記方法を提供する。
本発明のいくつかの側面において、長期記憶が損傷している。いくつかの態様において、該損傷は、加齢によるものかまたは傷害によるものである。本発明のいくつかの態様において、対象におけるシナプスネットワークが再構築される。いくつかの態様においてシナプスネットワークの再構築は、活性脳シナプスの数の増大を含む。いくつかの態様において、シナプスネットワークの再構築は、神経脱落の好転を含む。いくつかの態様において、対象は、ＭＣＩ（軽度認識障害）、アルツハイマー病、記憶喪失、アルツハイマー病に関連する注意欠陥症状、アルツハイマー病に関連する神経変性、混合血管起源の認知症（dementia of mixed vascular origin）、変性起源の認知症、初老期認知症、老年性認知症、パーキンソン病に関連する認知症、血管性認知症、進行性核上性麻痺、または大脳皮質基底核変性症からなる群から選択される障害を有している
本方法は、任意に、追加の化合物の投与を伴う。例えば、いくつかの態様において、ＨＤＡＣ３阻害剤が投与される。他の態様において、ＨＤＡＣ１１阻害剤が投与される。さらに他の態様において、５−アザシチジン、５−アザ−２’デオキシシチジン、５，６−ジヒドロ−５−アザシチジン、５，６−ジヒドロ−５−アザ−２’デオキシシチジン、５−フルオロシチジン、５−フルオロ−２’デオキシシチジン、および５−アザ−２’デオキシシトシン、５，６−ジヒドロ−５−アザ−２’デオキシシトシン、および５−フルオロ−２’デオキシシトシンを含む短鎖オリゴヌクレオチド、およびプロカインアミド、ゼブラリン、および（−）−エピガロカテキン−３−ガレートなどのＤＮＡメチル化阻害剤が投与される。ARICEPTまたはドネペジル、COGNEXまたはタクリン、EXELONまたはリバスチグミン、REMINYLまたはガランタミン、抗アミロイドワクチン、Ａベータ低下治療、頭の体操、または精神的刺激などの追加の治療剤が投与されてもよい。
他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、ｄｓＲＮＡまたはリボザイムあるいはその変異体などの、ＨＤＡＣ２ ＲＮＡｉである。
ＨＤＡＣ２阻害剤は、経口、静脈内、皮膚、皮下、鼻内、筋肉内、腹腔内、頭蓋内、または脳室内投与されてよい。
本方法はまた、ＨＤＡＣ２阻害剤の投与の後に、対象の認識機能を評価するステップを含んでもよい。さらに本方法は、脳血流または脳血液関門機能を評価することにより処置をモニターすることを伴ってもよい。
本発明の他の側面により、アルツハイマー病を有する対象に、アルツハイマー病の処置に有効な量でＨＤＡＣ２阻害剤を投与することによって、アルツハイマー病を処置する方法が提供される。１つの態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤である。
いくつかの態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２阻害剤である。他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３阻害剤である。ある態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ１０阻害剤である。ある態様において、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ１０阻害剤は、ＢＲＤ−６９２９である。他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３／ＨＤＡＣ１０阻害剤である。
さらに他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、式（ＩＶ）
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈおよび−Ｃ（Ｏ）−Ｃ１〜６アルキルから独立して選択され；Ｒ３は、任意に置換されたアリール、任意に置換されたヘテロアリール、またはアリール−Ｃ１〜６アルキレンである、
の化合物である
いくつかの態様において、Ｒ１がＨであり；Ｒ１およびＲ２がＨであり、Ｒ１が−Ｃ（Ｏ）−Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１が−Ｃ（Ｏ）−メチルであり；Ｒ１が−Ｃ（Ｏ）−メチルおよびＲ２がＨであり；Ｒ３が任意に置換されたアリールであり；Ｒ３がトルイルであり；Ｒ３が任意に置換されたヘテロアリールであり；Ｒ３がチエニルであり；Ｒ３がアリール−Ｃ１〜６アルキレンであり；またはＲ３がフェニル−エチレンである。
他の態様において、式ＩＶは
である。
他の態様において、式ＩＶは
である。
他の態様において、式ＩＶは
である。
他の態様において、式ＩＶは
である。
他の態様におけるＨＤＡＣ２阻害剤は、式（ＶＩ）
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、ヘテロアリール、アリール、およびアリール−Ｃ１〜６アルキレンから独立して選択される、
の化合物である。
いくつかの態様において、Ｒ１がＨであり；Ｒ１およびＲ２がＨであり；Ｒ１がメチル、エチル、プロピルまたはブチルであり；Ｒ１がアリール−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１がフェニル−エチレンであり；またはＲ２がＨである。
他の態様において、式ＶＩは
である。
他の態様におけるＨＤＡＣ２阻害剤は、式（Ｉ）
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、Ｃ１〜６アルキレン、ヘテロアリール、ヘテロアリーレン、およびヘテロアリーレン−アルキレンから独立して選択され；およびＲ３は、アリールまたはヘテロアリールである、
の化合物である。
いくつかの態様において、Ｒ１が非置換の非環式Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１がメチル、エチル、プロピルおよびブチルからなる群から選択され；Ｒ１がヘテロアリーレン−アルキレンであり；Ｒ１がヘテロアリーレン−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１がピリジニル−エチレンであり；Ｒ２が水素であり；Ｒ３がヘテロアリールであり；またはＲ３がチエニルである。
さらに他の態様において、式Ｉは
である。
他の態様におけるＨＤＡＣ２阻害剤は、式（ＩＩ）
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、Ｃ１〜６アルキレン、ヘテロアリール、ヘテロアリーレン、ヘテロアリーレン−アルキレン、アリーレン−アルキレン；および任意に置換されたヘテロシクリル−アルキレンから独立して選択され；および
Ｒ３は、アリールまたはヘテロアリールである、
の化合物である。
いくつかの態様において、Ｒ１が非置換の非環式Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１がメチル、エチル、プロピルおよびブチルからなる群から選択され；Ｒ１がヘテロアリーレン−アルキレンであり；Ｒ１がヘテロアリーレン−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１がピリジニル−エチレンであり；Ｒ１がアリーレン−アルキレンであり；Ｒ１がアリーレン−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１がフェニル−エチレンであり；Ｒ１がヘテロシクリル−アルキレンであり；Ｒ１が非置換のヘテロシクリル−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１がピペラジン−エチレンであり；Ｒ１が置換ヘテロシクリル−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１が置換ピペラジン−エチレンであり；Ｒ１がＣ１〜６アルキレン置換ピペラジン−エチレンであり；Ｒ１がメチル置換ピペラジン−エチレンであり；Ｒ２が水素であり；Ｒ３がヘテロアリールであり；Ｒ３がチエニルであり；またはＲ３がピリジニルである。
他の態様において、式ＩＩは
である。
他の態様において、式ＩＩは
である。
他の態様において、式ＩＩは
である。
他の態様において、式ＩＩは
である。
他の態様において、式ＩＩは
である。
他の態様におけるＨＤＡＣ２阻害剤は、式（ＩＩＩ）
式中、Ｘは−Ｃ（Ｏ）−Ｎ（Ｒ１）（Ｒ２）、Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）；または−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）Ｒ２であり；Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；およびＲ３は、アルキニル、アリールまたはヘテロアリールである、
の化合物である。
いくつかの態様において、Ｘが−Ｃ（Ｏ）−Ｎ（Ｒ１）（Ｒ２）であり；Ｒ１およびＲ２がＨ、非置換、非分岐、非環式Ｃ１〜６アルキルから独立して選択され；Ｒ１およびＲ２がＨ、メチル、エチル、プロピルおよびブチルから独立して選択され；Ｒ１がＨであり；Ｒ１およびＲ２がＨであり；Ｘが−Ｃ（Ｏ）−ＮＨ２であり；ＸがＣ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｒ１）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）であり；Ｘが−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）Ｒ２であり；Ｒ１がＨであり；ＸがＣ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）であり；Ｘが−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）Ｒ２であり；Ｒ１がＨであり；Ｒ１が非置換の非環式のＣ１〜６アルキルであり；Ｒ１がメチル、エチル、プロピルおよびブチルからなる群から選択され；Ｒ２が非置換の非環式のＣ１〜６アルキルであり；Ｒ２がメチル、エチル、プロピルおよびブチルからなる群から選択され；Ｒ３がヘテロアリールであり；Ｒ３がチエニルであり；Ｒ３がアリールであり；Ｒ３がアルキニルであり；Ｒ３がＣ１〜６アルキニルであり；またはＲ３がエチニルである。
いくつかの態様において、式ＩＩＩは
である。
いくつかの態様において、式ＩＩＩは
である。
いくつかの態様において、式ＩＩＩは
である。
他の態様におけるＨＤＡＣ２阻害剤は、式（Ｖ）
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、および置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；およびＲ３は、アリールまたはヘテロアリールである、
の化合物である。
いくつかの態様において、Ｒ１がＨであり；Ｒ１およびＲ２がＨであり；Ｒ１がメチル、エチル、プロピルまたはブチルであり；Ｒ３がアリールであり；Ｒ３がヘテロアリールであり；またはＲ３がチエニルである。
他の態様において、式Ｖは
である。
いくつかの態様において、本方法は、式ＩＶの分子の使用を具体的に排除する。
脳組織への送達のための処方における、ＨＤＡＣ２阻害剤および薬学的に許容可能な担体の医薬組成物もまた提供される。いくつかの態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、血液脳関門を横断するように処方される。
他の側面において、本発明は、ＨＤＡＣ２阻害剤の組成物であって、該ＨＤＡＣ２阻害剤が式Ｉ、ＩＩおよびＩＩＩの化合物からなる群から選択される、前記組成物である。
本発明の各限定は、本発明の様々な態様を包含することができる。したがって、本発明の任意の一要素または要素の組み合わせを伴う各限定は本発明の各側面に含まれ得る。この発明は、その適用において、以下の記述または図面の描写にて説明されている構造の詳細および構成のアレンジメントに限定されない。本発明は他の構成を取り得、様々なやり方で実施され得、または実行され得る。また、本明細書において使用される用語および専門用語は記述の目的のためであって、限定と見なされるべきではない。
添付の図面は、縮尺通りに描くことを意図していない。図面において、様々な図で描かれている各同一のまたはほぼ同一の構成要素は同種の数字で表される。明確化の目的のため、全ての構成成分が全ての図面においてラベルされていない可能性がある。図面中において：
図１は、ＨＤＡＣ阻害剤がＨＤＡＣ２を通じた連想的学習を改善することを示している。ａ．恐怖条件付け文脈学習（１ｍＡの足へのショック）をさせたマウスの記憶テスト。ＨＤＡＣ２ＯＥマウス（ＳＡＨＡ群、ｎ＝１２；生理食塩水群、ｎ＝１２）およびＷＴ同腹子（ＳＡＨＡ群、ｎ＝１２；生理食塩水群、ｎ＝１５）を、記憶テストの前に１０日間、生理食塩水およびＳＡＨＡ（２５ｍｇ／ｋｇ、腹腔内）で処置した。ｂ．慢性的なＳＡＨＡ処置または生理食塩水処置を受け、免疫染色を通して観察された、ＷＴおよびＨＤＡＣ２ＯＥマウスからのＣＡ１領域（錐体ニューロン層、放射状層（ｓ．ｒ．））。アセチルリジンの平均光学的シグナルを錐体ニューロン層上で計測し、ＳＶＰシグナルをｓ．ｒ．から計測した。
ｃ．海馬のＣＡ１領域からのゴルジ染色像。ＷＴ、未処置について、ｎ＝２３、ＷＴ、ＳＡＨＡについて、ｎ＝４１、ＨＤＡＣ２ＯＥ、未処置について、ｎ＝２１、ＨＤＡＣ２ＯＥ、ＳＡＨＡについて、ｎ＝３２。スケールバーは１０μｍ。ｄ．１０日間のＳＡＨＡ注射後の恐怖条件付け文脈学習（０．５ｍＡの足へのショック）を行ったマウスについての記憶テスト。ＷＴマウス（ＳＡＨＡ、ｎ＝１０、生理食塩水、ｎ＝１０）およびＨＤＡＣ２ＫＯマウス（ＳＡＨＡ、ｎ＝８、生理食塩水、ｎ＝８）。
ｅ．慢性的なＳＡＨＡ処置または生理食塩水処置を受け、免疫染色を通して観察された、ＨＤＡＣ２ＫＯマウスからのＣＡ１領域。ＳＶＰ−シグナルはｓ．ｒ．内で定量した。生理食塩水、ｎ＝１５、ＳＡＨＡ、ｎ＝２２、スケールバー＝５０μｍ。ｆ．ＨＤＡＣ２ＫＯマウスからの海馬のＣＡ１領域のゴルジ染色像。ＨＤＡＣ２ＫＯ、ＳＡＨＡ、ｎ＝２４、ＨＤＡＣ２ＫＯ、未処置、ｎ＝２７。＊、ｐ＜０．０５、＊＊、ｐ＜０．００５、＊＊＊、ｐ＜０．００１、対応のないｓｔｕｄｅｎｔ ｔ−ｔｅｓｔ、エラーバーはｓ．ｅ．ｍを示す。
図２ ＨＤＡＣ６阻害によって増大したα−チューブリン（Ｋ４０）のアセチル化は、マウスにおいて、連想的学習を促進しない。ａ．ＷＴ−１６１の構造を示す。ｂ．全アセチル化リジン（Ａｃ−ｌｙｓｉｎｅ）に対するアセチル化α−チューブリン（Ｋ４０）の増大についてのＷＴ−１６１（２μＭ）の選択性を、１６時間処置し、定量的免疫蛍光イメージングを用いて過アセチル化ヒストンおよび／またはα−チューブリン（Ｋ４０）について評価したヒトＭＭ１．Ｓ細胞において計測した。提示したデータは、デアセチラーゼ機能でバイアスされた化合物のライブラリーのプライマリースクリーニング由来のものである。
ｃ．ＷＴ−１６１またはＳＡＨＡ（どちらも２５ｍｇ／ｋｇに調整、腹腔内、１０日間）または生理食塩水で処置したマウスからの海馬のＣＡ１エリアにおけるアセチル化α−チューブリン（Ｋ４０）の免疫染色を示す。ＣＡ１エリアにおけるアセチル化α−チューブリン（Ｋ４０）の免疫反応強度シグナルを定量した（各群について、ｎ＝９）。＊＊、ｐ＜０．００５。ｄ．ＳＡＨＡ（２５ｍｇ／ｋｇ）またはＷＴ−１６１（２５ｍｇ／ｋｇ）を１０日間注射したＷＴマウスの記憶テスト。マウスは、テストの２４時間前に恐怖条件付け文脈学習に供した（ＷＴ、ｎ＝２０、ＳＡＨＡ、ｎ＝２０、ＷＴ−１６１、ｎ＝１０、＊＊＊、ｐ＜０．０００５、ｓｔｕｄｅｎｔ ｔ−ｔｅｓｔ）。
図３ ＨＤＡＣ１ＯＥおよびＨＤＡＣ２ＯＥマウス脳におけるＨＤＡＣ１およびＨＤＡＣ２の発現および分布。ａ．ＷＴおよびＨＤＡＣ１ＯＥマウス脳におけるＨＤＡＣ１の発現を示す代表的な免疫染色像を提供する。ＷＴ脳において、ＨＤＡＣ１発現レベルは、脳の他の部位よりも歯状回において相対的に高い。ＨＤＡＣ１ＯＥ脳において、海馬においてだけでなく、大脳皮質、扁桃体（点線で示された部分）、および前脳基底部においても増大したＨＤＡＣ１シグナルが検出される。ｂ．ＷＴおよびＨＤＡＣ２ＯＥマウス脳におけるＨＤＡＣ２の発現を示す代表的な免疫染色像を提示する。スケールバー、４００μｍ。挿入図についてのスケールバー、１００μｍ。
図４ ＨＤＡＣ２ＫＯマウスは、行動タスクにおいて、増強された記憶を呈する。ａ．可視踏み台付き水迷路試験（visible platform water maze test）におけるＷＴ、ＨＤＡＣ１ＯＥおよびＨＤＡＣ２ＯＥマウスの逃避潜時。マウスは、可視踏み台付きのスイミングプールで、１訓練日ごとに２回の試行で、３日間訓練を受けた。踏み台に到達するまでの潜時を定量化した（各群につきｎ＝８）。３群全てのマウスは、初日は、類似の逃避潜時で踏み台に到達した。訓練の３日間で、３群間において逃避潜時における顕著な差異は検出されなかった。ｂ．水迷路プールにおける水泳速度（各群についてｎ＝８）を示す。ｃ−ｄ．ＷＴ、ＨＤＡＣ１ＯＥおよびＨＤＡＣ２ＯＥマウスについて、文脈依存的および音刺激依存的恐怖条件付けパラダイムにおいて短期記憶が試験された（ＷＴ、ｎ＝９；ＨＤＡＣ２ＯＥ、ｎ＝９；ＨＤＡＣ１ＯＥ、ｎ＝８）。ＷＴ群とＨＤＡＣ１／２ＯＥマウスとの間に顕著な差異は検出されなかった。
ｅ−ｆ．ＨＤＡＣ２ＫＯマウスについて、文脈依存的および音刺激依存的恐怖条件付けパラダイムにおいて短期記憶が試験された（ＷＴ、ｎ＝８；ＨＤＡＣ２ＫＯ、ｎ＝９）。ＨＤＡＣ２ＫＯマウスは、文脈的恐怖条件付けにおいては顕著に増大したすくみ（freezing）を示した（ｐ＝０．０１００、ＷＴ同腹子と比較）が、音刺激依存的恐怖条件付けにおいては示さなかった（ｐ＝０．１４３９）。
ＷＴ（ｎ＝８）およびＨＤＡＣ２ＫＯ（ｎ＝１０）マウスについての、高架式Ｔ字迷路上での空間的場所非見本合わせ試験（spatial non-matching to place testing）の間の正しい応答の平均パーセントを示す。ＨＤＡＣ２ＫＯマウスは、訓練期間の間顕著に高い正確性を示した（ブロック２、ｐ＝０．０４４、ブロック３、ｐ＝０．００８７、ｓｔｕｄｅｎｔ ｔ−テスト；遺伝子型間、ｐ＝０．０２５２、双方向ＡＮＯＶＡ）。ｈ．ＷＴ（ｎ＝８）、ＨＤＡＣ１ＯＥ（ｎ＝７）およびＨＤＡＣ２ＯＥ（ｎ＝９）マウスについての、高架式Ｔ字迷路上での空間的場所非見本合わせ試験の間の正しい応答の平均パーセントを示す。ＨＤＡＣ２ＯＥマウスは、訓練トレイルブロック２の間、正確性において顕著な欠陥を示した（ｐ＝０．０４５２、ｓｔｕｄｅｎｔ ｔ−テスト）。
図５ ＨＤＡＣ２ＫＯマウスの特徴付け。ａ．マウスＨｄａｃ２ゲノム遺伝視座の略図を示す。グレーに塗りつぶされたボックスはエクソンを示す。黒の矢印はｌｏｘＰの位置を示す。Ｐ１４Ｆ、Ｐ１５ＲおよびＰ２は、遺伝子型決定（genotyping）に用いるオリゴＤＮＡプライマーを示す。ｂ．ベクター（Ｖ）またはＣｒｅ−リコンビナーゼ発現レトロウィルスのいずれかに感染させた、野生型、Ｈｄａｃ２Ｌ／＋およびＨｄａｃ２Ｌ／ＬのＭＥＦｓから得られたタンパク質溶解物のウェスタンブロット解析を実施した。Ｃｄｋ４をローディングコントロールとして供した。ｃ．Ｈｄａｃ２＋／−の多重交雑から得られる野生型、Ｈｄａｃ２＋／−およびＨｄａｃ２−／−マウスの、観察されたおよび期待される数および頻度。
ｄ．Ｈｄａｃ２−／−マウスおよびＷＴ同腹子からの脳溶解物中の、ＨＤＡＣ１およびＨＤＡＣ２発現レベルのウェスタンブロット解析を実施した。ＨＤＡＣ１発現レベルはＨｄａｃ２−／−マウスにおいて増大していた。
図６ ＳＡＨＡ処置はＷＴにおいてＬＴＰを促進するが、ＨＤＡＣ２ＫＯ海馬では促進しない。ａ−ｂ．１月齢のＨＤＡＣ２ＫＯマウスおよびそのＷＴ同腹子に、ＳＡＨＡ（２５ｍｇ／ｋｇ、ｉ．ｐ．）または生理食塩水を１０日間注射した。追加の注射をサクリファイスの３０分前に導入した。長期増強（ＬＴＰ）が、シェファー側枝の一つのＨＦＳ刺激（１×１００Ｈｚ、１ｓ）により誘導された。ａ．生理食塩水群と比較した時、ＬＴＰの強さの顕著な増大が、ＳＡＨＡ処置ＷＴマウスにおいて観察された。ｂ．ＳＡＨＡ処置ＨＤＡＣ２ＫＯマウスと生理食塩水処置ＨＤＡＣ２ＫＯマウスとの間で、ＬＴＰの強さにおいて顕著な差異は検出されなかった（＊＊、ｐ＜０．００５、双方向ＡＮＯＶＡ）。
図７はｐ２５に誘導される毒性についての、ＨＤＡＣ過剰発現の保護効果を試験したin vitroアッセイの結果を描写した棒グラフである。ニューロンをＥ１５．５の大脳皮質および海馬から分離し、ｐ２５−ＧＦＰおよびＦｌａｇ−ＨＤＡＣをコードするプラスミドで、ＤＩＶ４にトランスフェクトした。トランスフェクションの２４時間後ニューロンを固定し、ＩＨＣのために加工した。全てのｐ２５陽性ニューロンを計数し、ほとんどのニューロンがｐ２５およびＨＤＡＣの療法でトランスフェクとされたものであると推測された。
図８は、多重ＨＤＡＣ阻害剤の、複数の既知のＨＤＡＣアイソフォームに対する酵素阻害活性を示す表である。 図９は、ＨｅＬａ細胞溶解物におけるヒストンアセチル化マークにおけるＨＤＡＣ阻害剤の効果を示す。一連の化合物は全ＨＥＫ２９３細胞とともに１０μＭで６時間の期間インキュベートした。ＤＭＳＯコントロールに対して増大したアセチル化のレベルを示す、抗アセチル化Ｈ４Ｋ１２抗体および西洋わさびペルオキシダーゼ抱合二次抗体をルミノールベースの基質とともに用いる、ウェスタンブロット。これは、これらのアナログの細胞性ＨＤＡＣ活性およびＨ４Ｋ１２のアセチル化による特異的マークの増大を実証する。
図１０は、図９に示された生のウェスタンデータの定量化である。ＤＭＳＯコントロールに関連して、多重選択性プロファイルはＨ４Ｋ１２アセチル化レベルの増大に有効である。これは、ＨＤＡＣ１、２およびＨＤＡＣ１、２、３選択的阻害剤は、細胞全体において特定のヒストン遺伝子座（Ｈ４Ｋ１２）上での強固なＨＤＡＣ活性を有することを実証する。ＢＲＤ−９８５３はこのセルライン中で最小の活性を示す。ＢＲＤ−４０９７はネガティブコントロールである。これは最小のＨＤＡＣ阻害活性を有するベンズアミドである。
図１１は、ＨｅＬａ細胞溶解物におけるヒストンアセチル化マークについてのＨＤＡＣ阻害剤の効果を計測するのに用いる生のウェスタンブロットの定量化である。ＤＭＳＯコントロールに関連して、アセチル化の程度に変化がある。ヒストグラムは、ＨＤＡＣ１、２およびＨＤＡＣ１、２、３選択的化合物が、Ｈ４Ｋ１２遺伝子座のアセチル化の増大に有効であることを表している。
図１２は、マウス初代線状体細胞におけるＨ４Ｋ１２アセチル化の増大を示す。Ａ．ＨＤＡＣ阻害剤で処置したマウス脳から単離した初代線状体細胞のウェスタンブロット。３つの独立したサンプル／セットによるデータの２つのセット。Ｂ．パネルＡに示されたウェスタンブロットの定量化を表すヒストグラム。
図１３は、ＢＲＤ−６９２９およびＢＲＤ−５２９８による神経細胞の処置は、in vitroにおいてＨ４およびＨ２Ｂヒストンアセチル化を増強することを示す。 図１４は、マウス初代神経培養における増大したＨ４Ｋ１２−アセチル化の核強度を実証する。Ａ．１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９が、脳領域特異的初代培養（大脳皮質および線状体）における、６時間のインキュベーション後の全細胞数の増大または減少の原因とならないことを実証するコントロール。Ｂ．１０μＭのＢＲＤ−６９２９が、脳領域特異的初代培養（線状体）における、６時間のインキュベーション後のＨ４Ｋ１２アセチル化の数の増大の原因となることを示すヒストグラム。したがって、ＨＤＡＣ１、２選択的化合物は、培養線状体神経細胞における特定のヒストン遺伝子座（Ｈ４Ｋ１２）のアセチル化の増大に有効である。
図１５は、ＨＤＡＣ１、２選択的化合物が、特定の脳領域から単離され、免疫蛍光を用いて分析された、神経細胞における記憶および学習に関連するアセチル化マークを顕著に増大することができることを実証する。Ａ．１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９が、脳領域特異的初代培養（線状体）における、６時間のインキュベーション後の全細胞数の増大または減少の原因とならないことを実証するコントロール。Ｂ．１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９が、脳領域特異的初代培養（線状体）における、６時間のインキュベーション後のＨ２Ｂテトラ−アセチル化における２〜３倍の増大の原因となることを示すヒストグラム。この効果は、全ての場合においてＤＭＳＯコントロールと比べて顕著である。
図１６は、ＨＤＡＣ１、２選択的化合物が、特定のヒストン遺伝子座Ｈ２Ｂのアセチル化の増大に有効であることを実証する。Ａ．ＤＭＳＯまたは１０μＭのＢＲＤ−５２９８、ＨＤＡＣ１、２選択的阻害剤、での処置後、６時間のインキュベーション後の初代神経細胞における増大した蛍光を示す顕微鏡写真。増大した赤紫色の蛍光は、Ｈ２Ｂアセチル化の増大したレベルに対応する。Ｂ．１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９およびＢＲＤ−５２９８（ＨＤＡＣ１、２選択的阻害剤）が、初代神経細胞培養物における、６時間のインキュベーション後の全細胞数の増大または減少の原因とならないことを実証するコントロール。Ｃ．１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９およびＢＲＤ−５２９８が、初代神経細胞培養物における、６時間のインキュベーション後のＨ２Ｂアセチル化における顕著な増大の原因となることを示すヒストグラム。
図１７は、マウスへの４５ｍｇ／ｋｇのｉ．ｐ．での単一投与後の、血漿および脳中のＢＲＤ−６９２９の濃度時間曲線である。 図１８は、ＢＲＤ−６９２９での急性処置のための実験プロトコルおよびオスの成体Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスの脳特異的領域におけるヒストンアセチル化への対応する効果である。
図１９は、ＢＲＤ−６９２９での急性処置が、オスの成体Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスの大脳皮質において、増大したＨ２Ｂ（テトラ）ヒストンアセチル化の原因となることを示す。左にあるヒストグラムは、右にあるウェスタンゲルデータの定量化である。データはヒストンＨ３レベルのレベルに正規化した。ＢＲＤ−６９２９は、このマークについて大脳皮質における１．５〜２倍の増大の原因となる。このことは、ＢＲＤ−６９２９が、全身的に単一投与された後、大脳皮質においてＨＤＡＣの機能的阻害剤であることを実証する。
図２０は、ＢＲＤ−６９２９での急性処置が、オスの成体Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスの大脳皮質において、増大したＨ２ＢＫ５ヒストンアセチル化の原因となることを示す。１時間後の大脳皮質において、ＢＲＤ−６９２９は、Ｈ２ＢＫ５のアセチル化レベルにおける１．５〜２倍の増大の原因となる。このアセチル化マークは増大した学習および記憶に関連する。 図２１は、ＢＲＤ−６９２９の慢性的な投与後の全脳におけるアセチル化マークの増大を実証する。 図２２は、ＢＲＤ−６９２９が、ＷＴ Ｃ５７／ＢＬ６マウスにおける連想的学習および記憶を増大したことを実証する。
発明の詳細な説明
ヒストンデアセチラーゼの阻害剤（ＨＤＡＣｉｓ）により誘導された、増大したヒストン尾部アセチル化は、野生型のマウスにおいてだけでなく、神経変性のマウスモデルにおいても同様に、学習および記憶を促進する。ＨＤＡＣｉｓの治療能力を役立てるには、認識増強とつながりがある特定のＨＤＡＣファミリーメンバーの知識が求められる。ＨＤＡＣ１ではなくＨＤＡＣ２のニューロン特異的な過剰発現が、樹状突起棘密度、シナプス数、シナプス可塑性および記憶形成を減少させたことが、本発明の側面にしたがって示されている。反対に、マウスにおける慢性的なＨＤＡＣ阻害剤処置と同様、ＨＤＡＣ２の欠損がシナプス数および記憶促進の増大の結果となった。とりわけ、ＨＤＡＣ２過剰発現マウスの減少したシナプス数および学習損傷が、慢性ＨＤＡＣｉ処置によって完全によくなった。それに応じて、ＨＤＡＣｉ処置は、ＨＤＡＣｉ欠損マウスにおける記憶形成のさらなる促進はしなかった。さらに、プロモーター占有分析は、シナプス可塑性および記憶形成に関与する遺伝子のプロモーターとＨＤＡＣ２が関連することを明らかにした。我々の結果は、ＨＤＡＣ２が、長期持続的なシナプスの変化の調節、次に学習および記憶のネガティブな制御において役割を果たすことを示している。
本発明は、いくつかの側面において、記憶を増強するおよび／または挽回する、ならびに学習および記憶を推進するための治療に関する。本明細書で用いられる場合、「記憶」とは、過去の出来事や知識についての情報を再生する能力を言う。記憶は、短期記憶（作業または近時記憶ともいう）および長期記憶を含む。短期記憶は近時の出来事に関係し、一方長期記憶はより遠い過去の出来事の想起に関する。記憶の増強または挽回は、学習とは区別される。しかしながら、当該分野のいくつかの場合において、学習は記憶と呼ばれる。本発明は、学習および記憶を区別し、記憶の増強に焦点を当てている。記憶増強とは異なり、学習は、以前には存在しなかった新たな記憶を創造する能力を言う。いくつかの場合において、本発明はまた、学習を増強する方法に関する。したがって、対象の古い記憶を想起するよりむしろ学習する能力に変化を生じる治療剤の能力を試験するため、治療剤は記憶が創造される前またはそれと同時に投与される。以前に創造された記憶の想起に変化を生じる治療剤の能力を試験するため、治療剤は記憶が創造された後および好ましくは記憶が喪失した後に投与される。
いくつかの場合において、本発明は、対象における記憶を取り戻す方法に関する。記憶を取り戻すため、記憶は失われている。失われた記憶は、本発明の治療など、補助無しには対象によって挽回することができない。言い換えると、対象は記憶を想起することができない。本明細書で用いる場合、「取り戻す」という語は、対象が以前は想起することができなかった記憶を、対象が想起する能力をいう。記憶喪失を有する対象は、１または２以上の記憶を想起することができない対象である。記憶は短期記憶または長期記憶であってよい。記憶を想起する能力を評価する方法は当業者に知られており、ありふれた認知テストを含んでよい。
他の場合において、本発明は、長期記憶への減退したアクセスを有する対象における、長期記憶にアクセスする方法に関する。記憶への減退したアクセスを有する対象は、１または２以上の長期記憶の衰退を経験した対象である。長期記憶の衰退は、断続的または連続的であってよい。したがって、長期記憶への減退したアクセスを有する対象はこれに限定するものではないが、長期記憶に関して、記憶喪失を有する対象を含む。
いくつかの場合において、「減退したアクセスを有する対象」の長期記憶は損傷している。損傷した長期記憶は、対象の生理学的状態が長期記憶の喪失に関連するものである。長期記憶の損失に関連する状態は、これに限定するものではないが、年齢に関係した記憶喪失および傷害に関係した記憶喪失を含む。
本明細書で用いる場合、「年齢に関係した記憶喪失」は、本明細書にさらに定義されたようにおよび／またはAmerican Psychiatric AssociationのDiagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders：第４版（DSM-IV、１９９４）によって定義されるように、認知症のレベルまでは上昇していない神経学的機能の劣化に特徴付けられる、任意の状態の連続体をいう。この語は特に、アルツハイマー病やパーキンソン病などの年齢に関係した認知症およびダウン症などの精神遅滞の状態を除く。年齢に関係した記憶喪失は、彼または彼女のより若い年代と比較してより老いた対象における客観的な記憶の喪失があるが、認識テストのパフォーマンスは対象の年齢について正常なリミット内にあることに特徴付けられる。年齢に関係した記憶喪失対象は、DSM-IVに記載されているような、認知症の標準的な診断テストにおいて正常な範囲内の得点を出す。さらに、DSM-IVは、年齢に関係した認知低下と名付けられる状態についての分離した診断的基準を提供する。本発明の文脈において、ならびに「年齢に関連した記憶損失」および「年齢と一致する記憶の低下」は、年齢に関係した記憶喪失と同義であると理解される。年齢に関係した記憶喪失は、減少した脳重量、脳回萎縮（gyral atrophy）、脳室拡張、および異なる脳領域内でのニューロンの選択的喪失を含んでよい。
本発明のいくつかの態様の目的のため、より進行性の形態の記憶喪失もまた、年齢に関係した記憶障害の定義の下に含まれる。したがって、その年齢で正常な記憶喪失および認識損傷よりも大きなものを有するが、露骨な認知症についての診断的閾値よりも低い得点を出す人は、穏やかな神経認知障害、穏やかな認識損傷、高齢期健忘症、良性の老年性健忘症、初期認知症、一時的認知症などを有すると言い得る。かかる対象は、後生の顕著な認知症の発症についてわずかにより感受性であり得る（参照として組み込まれる、米国特許出願２００６／００８５１７も参照）。年齢に関係する記憶喪失に関連する症状は、これに限定するものではないが、ＩＬ−１ベータ、ＩＦＮ−ガンマ、ｐ−ＪＮＫ、ｐ−ＥＲＫなどの老齢脳に関連する生化学マーカーの変化、長期増強における低減により明らかな、シナプス可塑性などのシナプス活性または機能の低減、記憶の縮小および認知の低減を含む。
本明細書で用いられる場合、「傷害に関係する記憶喪失」は、脳で起こり、神経学的なダメージとなり得るダメージをいう。脳傷害の源は、震盪性傷害または貫通性頭部創傷などの外傷性脳傷害、脳腫瘍、アルコール依存症、アルツハイマー病、卒中、心臓発作および脳から酸素を奪う他の状態、髄膜炎、ＡＩＤＳ、ウィルス性脳炎、および水頭症を含む。
対象は、これに限定するものではないが、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、七面鳥、ニワトリおよびサルなどの霊長類を含む、ヒトまたは脊椎動物または哺乳動物を意味するものとする。対象は、その他の点で（otherwise）ＨＤＡＣ阻害剤を必要としないものである。アルツハイマー病を有する対象が明確に指定されている場合を除き、対象からは特定的にアルツハイマー病を有する対象が除外される。
本発明の方法は、一般的に記憶を増強する方法に関する。記憶を増強する方法には、記憶へのアクセスの再構築ならびに記憶を取り戻すことが含まれる。本明細書で用いられるアクセスの再構築という語は、記憶の挽回を増大することをいう。出願人らは、作用機序に縛られるものではないが、本発明の化合物は、シナプスネットワークを再構築することにより、記憶の挽回を増大するのに効果的であると信じられている。シナプスネットワークを再構築するプロセスは、活性脳シナプスの数の増大および／または神経脱落の好転を含んでよい。
本明細書で用いる場合、記憶喪失または記憶衰退を含む障害に関して用いる場合、長期記憶へのアクセスを再構築するという語は、対象の記憶を想起する能力を増大する処置をいう。いくつかの場合において、本発明の治療剤は、記憶が失われるかまたは想起することができなくなる発生率および／または頻度を減少させる。
記憶の増強が必要な対象は、記憶喪失または記憶衰退を有するものである。記憶喪失は、年齢に関係してもよいし、または認識損傷と関連する傷害もしくは障害に関連してもよいなど、任意のメカニズムによって起こり得る。認識損傷と関連する障害は、例えばＭＣＩ（軽度認識障害）、アルツハイマー病、記憶喪失、アルツハイマー病に関連する注意欠陥症状、アルツハイマー病に関連する神経変性、混合血管起源の認知症、変性起源の認知症、初老期認知症、老年性認知症、パーキンソン病に関連する認知症、血管性認知症、進行性核上性麻痺、または大脳皮質基底核変性症を含む。
アルツハイマー病は、認知性および非認知性の精神神経性症状に特徴づけられる変性脳障害であり、６５歳以上の患者についての全認知症のケースの約６０％を占める。アルツハイマー病において、記憶をコントロールする認知システムがダメージを受ける。しばしば長期記憶は保持される一方、短期記憶が失われる；逆に言えば、記憶が混乱をきたし得、その結果馴染みであるべき人または場所を認識することにおいて失敗をする。アルツハイマー病において精神医学的症状は共通しており、多くの患者において精神病（幻覚および妄想）が存在する。アルツハイマー病の精神医学的症状が、ドーパミンまたはアセチルコリンの濃度のシフトを伴うことは可能であり、それはドーパミンの／コリンのバランスを増やし得、それにより精神病的行動の結果となる。例えば、増大したドーパミン放出は、統合失調症の陽性の症状の原因となり得ることが提案されている。これは、ドーパミンの／コリンのバランスのポジティブな崩壊をもたらし得る。確かに、統合失調症の精神病を和らげるのに用いられる抗精神疾患剤は、アルツハイマーの患者における精神病を緩和するのにも有用であり、本発明の方法において用いられる本明細書に記載の組成物と組み合わせることができる。
ＨＤＡＣ阻害剤を投与することによりアルツハイマー病を有する対象における記憶を取り戻す方法もまた、本発明に従って提供される。かかる方法は任意に阻害剤を投与し、対象をモニターして、以前に失われた記憶を取り戻したことを同定する。対象は、当該技術分野に知られたありふれた試験によってモニターしてよい。例えば、いくつかは上記DSMなどの本または医学的な文献に記載されている。
血管性認知症（「多発梗塞性認知症」とも言われる）は全て脳における血管病変の結果となる、様々なメカニズムに起因する症候群をいう。血管性認知症の主なサブタイプは、例えば、血管性軽度認知障害、多発梗塞性認知症、重要領域単一梗塞（strategic single infarct）（視床、前大脳動脈、頭頂葉または帯状回に発症する）に起因する血管性認知症、易出血性病変、小血管疾患に起因する血管性認知症（例えばラクナ病変およびビンスワンガー病に起因する血管性認知症を含む）、および血管性認知症との混合型アルツハイマー病である。
ＨＤＡＣは、他のクロマチン修飾酵素および共制御因子と相互作用し、後生的風景（epigenetic landscape）の形成において鍵となる役割を果たす（Goldberg, A. D., Allis, C. D. & Bernstein, E., Cell 128 (4), 635-638 (2007)）。哺乳動物のゲノムには全部で１８のＨＤＡＣ酵素があり、通常クラスＩ、ＩＩ、ＩＩＩおよびＩＶを含む４つのクラスに分けられる。これらの酵素はヒストンおよび非ヒストン両方の基質を有することが知られている。最近抗抑鬱作用（Tsankova, N. M. et al., Nat. Neurosci. 9 (4), 519-525 (2006)）および慢性的な感情刺激（Renthal, W. et al., Neuron 56 (3), 517-529 (2007)）の両方の応答に関与するとされたクラスＩＩのＨＤＡＣ５を除き、脳におけるＨＤＡＣの機能についてはほとんど知られていない。
ＨＤＡＣの中でも、クラスＩ、ＩＩおよびＩＶのＨＤＡＣは亜鉛依存的加水分解酵素である。クラスＩのＨＤＡＣは１、２、３および８を含み、これらはヒストン基質および非ヒストン基質上でデアセチラーゼ活性を発揮することが十分に立証されている。これらのファミリーメンバーは全て、非選択的ＨＤＡＣ阻害剤である酪酸ナトリウムで阻害される。クラスＩＩのＨＤＡＣは、ＨＤＡＣ４、５、７および９を含むクラスＩＩａメンバーと、ＨＤＡＣ６および１０を含むクラスＩＩｂメンバーに分けることができる。ＨＤＡＣ５の場合、脳内での役割は、抗抑鬱作用および慢性的感情刺激への応答において同定されている。しかしながら、クラスＩＩａのＨＤＡＣそれ自身が、共精製されるクラスＩのＨＤＡＣが貢献する活性よりも、機能的ヒストン（または他の非ヒストン）デアセチラーゼ活性を有するため、未だに不明である。クラスＩＩｂファミリーメンバーであるＨＤＡＣ６および１０は、主に細胞質に局在している。ＨＤＡＣ６は、２つのデアセチラーゼドメインの所持という点で、ファミリーにおいてユニークである。ＨＤＡＣ６はα−チューブリン（Ｋ４０）デアセチラーゼとして機能することおよびプロテアソームによるユビキチン依存性タンパク質分解を制御することが示されてきた。対照的に、クラスＩＩＩのＨＤＡＣ（サーチュイン；ＳＩＲＴ１〜７）は非古典的な、ＮＡＤ（＋）依存性酵素であり、ＳＢを含む亜鉛依存性ＨＤＡＣの阻害剤のほとんどの構造的クラスと重複しない感受性を呈する。後者の発見は、サーチュインが、ＨＤＡＣｉに誘導される記憶増強の関連するターゲットではないことを示している。
本発明において有用な化合物はＨＤＡＣ２阻害剤である。本明細書で用いられる場合、ＨＤＡＣ２阻害剤は、ＨＤＡＣ２活性および／または発現を低減する、タンパク質、小分子および核酸を含む、任意の化合物である。ＨＤＡＣ２阻害剤は、いくつかの態様において、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤であってよい。選択的ＨＤＡＣ２阻害剤は、ＨＤＡＣ２の活性または発現を阻害するが、少なくとも２つの他のＨＤＡＣ酵素、ＨＤＡＣ１、ＨＤＡＣ３、ＨＤＡＣ４、ＨＤＡＣ５、ＨＤＡＣ６、ＨＤＡＣ７、ＨＤＡＣ８、ＨＤＡＣ９、ＨＤＡＣ１０、ＨＤＡＣ１１、ＨＤＡＣ１２、ＨＤＡＣ１３、ＨＤＡＣ１４、ＨＤＡＣ１５、ＨＤＡＣ１６、ＨＤＡＣ１７、またはＨＤＡＣ１８など、の活性または発現を顕著に阻害しない化合物である。
いくつかの態様において、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤は、ＨＤＡＣ２の活性または発現を阻害するが、その他のＨＤＡＣ酵素の活性または発現を顕著に阻害しない化合物である。他の態様において、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤は、他のクラスＩのＨＤＡＣ酵素の活性または発現を顕著に阻害しない。ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２選択的阻害剤は、ＨＤＡＣ１およびＨＤＡＣ２の活性または発現を阻害するが、少なくとも１のクラスＩでないＨＤＡＣ酵素の活性または発現を顕著に阻害しない化合物である。いくつかの態様において、ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２選択的阻害剤は、他のクラスＩでないＨＤＡＣ酵素の活性または発現を顕著に阻害しない。ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３選択的阻害剤は、ＨＤＡＣ１およびＨＤＡＣ２およびＨＤＡＣ３の活性または発現を阻害するが、少なくとも１つのクラスＩでないＨＤＡＣ酵素の活性または発現を顕著に阻害しない化合物である。いくつかの態様において、ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３選択的阻害剤は、クラスＩでないＨＤＡＣ酵素の活性または発現を顕著に阻害しない。
顕著に阻害するとは、in vivoなど、細胞内におけるＨＤＡＣの活性を検出可能に変化する量をいう。いくつかの態様において、非選択的ＨＤＡＣ２阻害剤は、部分的に選択的であってよい。例えば、全部ではないが、ＨＤＡＣ１〜ＨＤＡＣ１８のうち１または２以上の他の酵素の阻害剤として作用し得る。好ましくは、ＨＤＡＣ阻害剤はＨＤＡＣ１、ＨＤＡＣ５、ＨＤＡＣ６、ＨＤＡＣ７およびＨＤＡＣ１０の阻害剤としては作用しない。いくつかの態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ１０阻害剤である。いくつかの態様において、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ１０阻害剤は、ＢＲＤ−６９２９である。他の態様において、ＨＤＡＣ２阻害剤は、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３／ＨＤＡＣ１０阻害剤である。
ＨＤＡＣ２阻害剤は、ヒストンデアセチラーゼと特異的に反応する、抗体、好ましくはモノクローナル抗体、抗体断片、ｓｃＦｖなどの結合ペプチド、小分子阻害剤（しばしば古典的にはＨＤＡＣ阻害剤と言われる）およびアンチセンスおよびｓｉＲＮＡなどの発現阻害剤を含む。
以下の実施例に記載された研究はまた、１１のヒストンデアセチラーゼのいずれが観察された機能に関与するのかを決定し、記憶を増強するための選択的ＨＤＡＣ阻害剤を同定するために取り組まれた。ＨＤＡＣ１Ｔｇマウスが、コントロールマウスと比較して、学習行動において何の違いも示さなかったのに対し、ＨＤＡＣ２Ｔｇマウスは、パブロフの恐怖条件付けおよびモリスの水迷路試験で評価されたように、損傷した学習を有することが発見された。注目すべきは、ＨＤＡＣ２ニューロン特異的ノックアウトマウス（機能喪失）は増強された学習を示したことである。対照的に、クラスＩのＨＤＡＣ阻害剤（ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ３特異的）であるＭＳ−２７５は、マウスにおける連想的学習を促進せず、ＭＤ−２７５処置マウスは、生理食塩水処置群と比較して、恐怖条件付け訓練の後により少ない数のｃ−ｆｏｓ陽性細胞を示した。
追加データもまた、ＨＤＡＣ５、ＨＤＡＣ６、ＨＤＡＣ７およびＨＤＡＣ１０は記憶の増強に有用でないことを実証している。これらの観察は、ＨＤＡＣ２が学習および記憶に関与し、一般的なＨＤＡＣ阻害剤による阻害のターゲットとなりがちであることを示している。より驚くべきことに、ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２およびＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３選択的阻害剤もまた学習および記憶の増強に有用であることが見出された。本発明者らの何人かによる以前の研究は、ＨＤＡＣ１アクチベータが神経新生を推進することを実証した。したがって、ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２阻害剤が記憶の増強に有用であることは予想外であった。
ＨＤＡＣ阻害剤は、これに限定するものではないが、以下の化合物、その機能的アナログおよび塩を含む：トリコスタチンＡ（ＴＳＡ）、トリコスタチンＢ、トリコスタチンＣ、トラポキシンＡ、トラポキシンＢ、クラミドシン、酪酸のナトリウム塩、酪酸、フェニル酪酸のナトリウム塩、フェニル酪酸、スクリプタイド、ＦＲ９０１２２８、デプデシン、オキサムフラチン、ピロキサミド、アピシジンＢ、アピシジンＣ、ヘルミントスポリウム、カルボナムトキシン、２−アミノ−８−オキソ−９，１０−エポキシ−デカノイル、３−（４−アロイル−１Ｈ−ピロール−２−イル）−Ｎ−ヒドロキシ−２−プロペンアミド、スベロイルアニリドヒドロキサム酸（ＳＡＨＡ）、バルプロ酸、ＦＫ２２８またはｍ−カルボキシ桂皮酸ビスヒドロキサミド。好ましい態様において、ＨＤＡＣ阻害剤は、酪酸ナトリウム、ＳＡＨＡまたはＴＳＡなどのＨＤＡＣ２阻害剤である。増大した薬理学的半減期を示す阻害剤の誘導体もまた本発明に有用である（Brettman and Chaturvedi, J. Cli. Pharmacol. 36 (1996), 617-622）。
汎（pan）または普遍（universal）ＨＤＡＣ阻害剤はＳＡＨＡである。本明細書で用いられる場合、「ＳＡＨＡ」はスベロイルアニリドヒドロキサム酸、アナログ、誘導体および多形体をいう。ＳＡＨＡの多形体は米国特許公開公報第２００４０１２２１０１に記載されており、参照として組み込まれる。
ＨＤＡＣ２選択的阻害剤、ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２選択的阻害剤およびＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３選択的阻害剤を含む本発明のＨＤＡＣ２選択的阻害剤は、小分子ならびにアンチセンスおよびｓｉＲＮＡなどの阻害性核酸を含む。小分子ＨＤＡＣ２阻害剤は、例えば以下の式の化合物を含む：
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、Ｃ１〜６アルキレン、ヘテロアリール、ヘテロアリーレン、およびヘテロアリーレン−アルキレンから独立して選択され；およびＲ３は、アリールまたはヘテロアリールである。いくつかの態様において、Ｒ１は非置換の非環式Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１はメチル、エチル、プロピルおよびブチルからなる群から選択され；Ｒ１はヘテロアリーレン−アルキレンであり；Ｒ１はヘテロアリーレン−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１はピリジニル−エチレンであり；Ｒ２は水素であり；Ｒ３はヘテロアリールであり；またはＲ３はチエニルである。
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、Ｃ１〜６アルキレン、ヘテロアリール、ヘテロアリーレン、ヘテロアリーレン−アルキレン、アリーレン−アルキレン；および任意に置換されたヘテロシクリル−アルキレンから独立して選択され；およびＲ３は、アリールまたはヘテロアリールである。いくつかの態様において、Ｒ１は非置換の非環式Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１はメチル、エチル、プロピル、およびブチルからなる群から選択され；Ｒ１はヘテロアリーレン−アルキレンであり；Ｒ１はヘテロアリーレン−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１はピリジニル−エチレンであり；Ｒ１はヘテロシクリル−アルキレンであり；Ｒ１は非置換のヘテロシクリル−Ｃ１〜６−アルキレンであり；Ｒ１はピペラジン−エチレンであり；Ｒ１は置換ヘテロシクリル−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１は置換ピペラジン−エチレンであり；Ｒ１はＣ１〜６置換ピペラジン−エチレンであり；Ｒ１はメチル置換ピペラジン−エチレンであり；Ｒ２は水素であり；Ｒ３はヘテロアリールであり；またはＲ３はチエニルであり；Ｒ３はピリジニルである。
式中、Ｘは−Ｃ（Ｏ）−Ｎ（Ｒ１）（Ｒ２）、Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）；または−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）Ｒ２であり、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；およびＲ３は、アルキニル、アリールまたはヘテロアリールである。いくつかの態様において、Ｘは−Ｃ（Ｏ）−Ｎ（Ｒ１）（Ｒ２）であり；Ｒ１およびＲ２はＨ、非置換、非分岐、非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；Ｒ１およびＲ２はＨ、メチル、エチル、プロピルおよびブチルから独立して選択され；Ｒ１はＨであり；Ｒ１およびＲ２はＨであり；Ｘは−Ｃ（Ｏ）−ＮＨ２であり；ＸはＣ１〜６アルキレンＮ（Ｒ１）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）であり；Ｒ１はＨであり；Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）であり；Ｘは−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）Ｒ２であり；Ｒ１はＨであり；Ｒ１は非置換の非環式Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１はメチル、エチル、プロピル、およびブチルからなる群から選択され；Ｒ２は非置換の非環式Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ２はメチル、エチル、プロピル、およびブチルからなる群から選択され；Ｒ３はヘテロアリールであり；Ｒ３はチエニルであり；Ｒ３はアリールであり；Ｒ３はアルキニルであり；Ｒ３はＣ１〜６アルキニルであり；またはＲ３はエチニルである。
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈおよび−Ｃ（Ｏ）−Ｃ１〜６アルキルから独立して選択され；Ｒ３は、任意に置換されたアリール、任意に置換されたヘテロアリール、またはアリール−Ｃ１〜６アルキレンである。いくつかの態様において、Ｒ１はＨであり；Ｒ１およびＲ２はＨであり；Ｒ１は−Ｃ（Ｏ）−Ｃ１〜６アルキルであり；Ｒ１は−Ｃ（Ｏ）−メチルであり；Ｒ１は−Ｃ（Ｏ）−メチルおよびＲ２はＨであり；Ｒ３は任意に置換されたアリールであり；Ｒ３はトリルであり；Ｒ３は任意に置換されたヘテロアリールであり；Ｒ３はチエニルであり；Ｒ３はアリール−Ｃ１〜６アルキレンであり；またはＲ３はフェニルエチレンである。
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；および
Ｒ３は、アリールまたはヘテロアリールである。いくつかの態様において、Ｒ１はＨであり；Ｒ１およびＲ２はＨであり；Ｒ１はメチル、エチル、プロピルまたはブチルであり；Ｒ３はアリールであり；Ｒ３はへテロアリールであり；Ｒ３はチエニルである。
式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、ヘテロアリール、アリール、およびアリール−Ｃ１〜６アルキレンから独立して選択される。いくつかの態様において、Ｒ１はＨであり；Ｒ１およびＲ２はＨであり；Ｒ１はメチル、エチル、プロピル、またはブチルであり；Ｒ１はアリール−Ｃ１〜６アルキレンであり；Ｒ１はフェニル−エチレンであり；またはＲ２はＨである。
「アルキル」は一般的に、１から約１０の炭素原子およびそのすべての組み合わせおよび副次的組み合わせの範囲を鎖中に有する直鎖、分枝鎖または環状であってよい脂肪族炭化水素基をいう。「アルキル」という語は、「非置換アルキル」および「置換アルキル」の両方を含み、後者は、骨格の１または２以上の炭素上の水素を置き換える置換基を有するアルキル部分をいう。好ましい態様において、直鎖または分枝鎖アルキルは１２またはそれ未満の炭素原子をその骨格に有し（例えば直鎖についてＣ１〜Ｃ１２、分枝鎖についてＣ３〜Ｃ１２）、より好ましくは６またはそれ未満であり、さらにより好ましくは４またはそれ未満である。同様に、好ましいシクロアルキルは、３〜１０の炭素原子をその環構造中に有し、より好ましくは５、６または７の炭素原子を環構造中に有する。
炭素の数が他に特定されない限り、本明細書で用いられる場合、「低級アルキル」は、上記で定義されるアルキル基だが、１から１０の炭素、より好ましくは１から６の炭素原子をその骨格構造中に有し、さらにより好ましくは１から４の炭素原子をその骨格構造中に有するものを意味する。同様に、「低級アルケニル」および「低級アルキニル」も同様の鎖長を有する。好ましいアルキル基は低級アルキルである。好ましい態様において、アルキルとして指定された置換基は低級アルキルである。アルキル基は、これに限定するものではないが、メチル、エチル、ｎ−プロピル、イソプロピル、ｎ−ブチル、イソブチル、ｔ−ブチル、ｎ−ペンチル、シクロペンチル、イソペンチル、ネオペンチル、ｎ−ヘキシル、イソヘキシル、シクロヘキシル、シクロオクチル、アダマンチル、３−メチルペンチル、２，２−ジメチルブチル、および２，３−ジメチルブチルを含む。アルキル置換基は、例えばアルケニル、アルキニル、ハロゲン、ヒドロキシル、アルキルカルボニルオキシ、アリールカルボニルオキシ、アルコキシカルボニルオキシ、アリールオキシカルボニルオキシ、カルボキシレート、アルキルカルボニル、アリールカルボニル、アルコキシカルボニル、アミノカルボニル、アルキルアミノカルボニル、ジアルキルアミノカルボニル、アルキルチオカルボニル、アルコキシル、ホスフェート、ホスホナト、ホスフィナト、シアノ、アミノ（アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、アリールアミノ、ジアリールアミノ、およびアルキルアリールアミノを含む）、アシルアミノ（アルキルカルボニルアミノ、アリールカルボニルアミノ、カルバモイルおよびウレイドを含む）、アミジノ、イミノ、スルフヒドリル、アルキルチオ、アリールチオ、チオカルボキシレート、スルフェート、アルキルスルフィニル、スルホナト、スルファモイル、スルホンアミド、ニトロ、トリフルオロメチル、シアノ、アジド、ヘテロシクリル、アルキルアリール、または芳香族もしくはヘテロ芳香族部分を含むことができる。
「アルケニル」という語は、上記のアルキルと長さおよび可能な置換において相似であるが、少なくとも１つの二重結合を含有する不飽和脂肪族基をいう。
本明細書で用いられる場合、「ハロゲン」という語は−Ｆ、−Ｃｌ、−Ｂｒまたは−Ｉを指定し；「スルフヒドリル」という語は−ＳＨを意味し；およひ「ヒドロキシル」という語は−ＯＨを意味する。
単独または組み合わせた「アリール」という語は、１、２または３環を含む炭素環式芳香族系を意味し、かかる環は互いに張り出した形で付着していてもよいし、または縮合していてもよい。「アリール」という語は、フェニル、ナフチル、テトラヒドロナフチル、インダンおよびビフェニルなどの芳香族基を包含し、炭素環式アリール、ヘテロ環式アリールおよびビアリール基を含み、これらの全ては任意に置換されていてよい。本明細書で用いられる場合、「アリール」という語は、０から４つのヘテロ原子を含んでもよい、５、６および７員の単環式芳香族基、例えばベンゼン、ピロール、フラン、チオフェン、イミダゾール、オキサゾール、チアゾール、トリアゾール、ピラゾール、ピリジン、ピラジン、ピリダジンおよびピリミジンなど、を含む。
これらの環構造中にヘテロ原子を有するアリール基は、「アリールヘテロ環」または「ヘテロ芳香族」とも言われ得る。芳香族環は、１または２以上の環位置において上述したような置換基、例えばハロゲン、アジド、アルキル、アラルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、ヒドロキシル、アルコキシル、アミノ、ニトロ、スルフヒドリル、イミノ、アミド、ホスホネート、ホスフィネート、カルボニル、カルボキシル、シリル、エーテル、アルキルチオ、スルホニル、スルホンアミド、ケトン、アルデヒド、エステル、ヘテロシクリル、芳香族またはヘテロ芳香族部分、−ＣＦ３、−ＣＮなど、で置換されていることができる。「アリール」という語はまた、２または３以上の炭素が２つの隣接する環（環は「縮合環」である）に共通する２または３以上の環式環を有する多環式環系も含み、ここで少なくとも１つの環は芳香族性であり、例えば他の環式環はシクロアルキル、シクロアルケニル、シクロアルキニル、アリールおよび／またはヘテロシクリルであることができる。
「ビアリール」という語は、縮合環系および他のアリール基で置換されたアリール基の両方を含む、１より多い芳香族環を含む５〜１４の原子を有するアリール基を表す。かかる基は任意に置換されていてもよい。好適なビアリール基はナフチルおよびビフェニルを含む。「炭素環式」という語は、全ての環員が炭素原子である環式化合物をいう。かかる環は任意に置換されていてもよい。化合物は単環またはビアリール環であることができる。「シクロアルキル」という語は、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、シクロへプチルおよびノルボリルなど、３から１０の炭素原子を有する基を包含する。かかる基は置換されていてよい。
「ヘテロ環式」アリールまたは「ヘテロアリール」基は、芳香族環中１〜４のヘテロ原子が環原子であり、残りの環原子が炭素原子である、５〜１４の環原子を有する基である。好適なヘテロ原子は、酸素、硫黄、および窒素を含む。好適なヘテロアリール基は、フラニル、チエニル、ピリジル、ピロリル、Ｎ−低級アルキルピロリル、ピリジル−Ｎ−オキシド、ピリミジル、ピラジニル、イミダゾリル、インドリルなどであり、全て任意に置換されている。「ヘテロ環式」という語は、少なくとも２つの異なる要素の環員原子を有する環式化合物をいう。化合物は単環またはビアリールであることができる。ヘテロ環式基は、例えば、チオフェン、ベンゾチオフェン、チアントレン、フラン、ピラン、イソベンゾフラン、クロメン、キサントレン、フェノキサチイン、ピロール、イミダゾール、ピラゾール、イソチアゾール、イソキサゾール、ピリジン、ピラジン、ピリミジン、ピリダジン、インドリジン、イソインドール、インドール、インダゾール、プリン、キノリジン、イソキノリン、キノリン、フタラジン、ナフチリデン、シンノリン、プテリジン、カルバゾール、カルボリン、フェナントリジン、アクリジン、ピリミジン、フェナントロリン、フェナジン、フェナルサジン、フェノチアジン、フラザン、フェノキサジン、ピロリジン、オキソラン、チオラン、オキサゾール、ピペリジン、ピペラジン、モルフォリン、ラクトン、アゼチジノンおよびピロリジノンなどのラクタム、スルタム、スルトンなどを含む。ヘテロ環式環は、上記のような置換基、例えばハロゲン、アルキル、アラルキル、アルケニル、アルキニル、シクロアルキル、ヒドロキシル、アミノ、ニトロ、スルフヒドリル、イミノ、アミド、ホスホネート、ホスフィネート、カルボニル、カルボキシル、シリル、エーテル、アルキルチオ、スルホニル、ケトン、アルデヒド、エステル、ヘテロシクリル、芳香族またはヘテロ芳香族部分、−ＣＦ３、−ＣＮなどで、１または２以上の位置で置換されることができる。
「置換」または「置換される」は、かかる置換が置換原子および置換基に許される価数に従ってなされ、置換により例えば転移、環化、脱離などにより自然に変更が起こらない安定化合物となる、という暗黙の条件を含む。
本明細書で用いられる場合、「置換された」という語は、全ての許諾可能な有機化合物の置換基を含むと考慮される。広い側面において、許諾可能な置換基は、非環式および環式、分枝または非分枝、炭素環式およびヘテロ環式、芳香族および非芳香族の有機化合物の置換基を含む。実例の置換基は、例えば上記されたものを含む。許諾可能な置換基は、適切な有機化合物のため、１または２以上であることおよび同一または異なることができる。本発明の目的のため、窒素などのヘテロ原子は水素置換基および／またはヘテロ原子の価数を満たす、本明細書に記載された任意の許諾可能な有機化合物の置換基を有してよい。本発明は、許諾可能な有機化合物の置換基によって、いかなるやり方で限定されるものではない。
本発明の方法に有用なＨＤＡＣ２阻害剤の非限定的な例は、
である。
本発明の化合物は、任意に、ＤＮＡメチル化阻害剤などの他の化合物とともに投与されてよい。ＤＮＡメチル化阻害剤は、直接的または間接的に核酸分子のメチル化のレベルを低減させる原因となる剤である。ＤＮＡメチル化阻害剤は、当該分野において周知であり、ありふれて利用されており、これに限定するものではないが、メチラーゼおよびメチルトランスフェラーゼなどのメチル化酵素の阻害剤を含む。ＤＮＡメチル化阻害剤の非限定的な例は、５−アザシチジン、５−アザ−２’デオキシシチジン（ヨーロッパにおいてはデシタビンとしても知られている）、５，６−ジヒドロ−５−アザシチジン、５，６−ジヒドロ−５−アザ−２’デオキシシチジン、５−フルオロシチジン、５−フルオロ−２’デオキシシチジン、および５−アザ−２’デオキシシチジン、５，６−ジヒドロ−５−アザ−２’デオキシシチジン、および５−フルオロ−２’デオキシシチジンを含む短鎖オリゴヌクレオチド、並びにプロカインアミド、ゼブラリンおよび（−）−エガロカテキン−３−ガレートを含む。
上記の古典的な小分子ＨＤＡＣ阻害剤に加え、ＨＤＡＣ２はまた、アンチセンスおよびＲＮＡｉなどの核酸ベースまたは発現阻害剤によって阻害され得る。したがって、本発明は、ＨＤＡＣ２をコードする核酸分子に、このタンパク質の発現および活性を減少させるために、選択的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチドなどの阻害性核酸を包含する。
本明細書で用いられる場合、「アンチセンスオリゴヌクレオチド」または「アンチセンス」という語は、生理学的条件下で特定の遺伝子を含むＤＮＡまたはその遺伝子のｍＲＮＡ転写物とハイブリダイズし、それによりその遺伝子の転写および／またはそのｍＲＮＡの翻訳を阻害するオリゴリボヌクレオチド、オリゴデオキシリボヌクレオチド、修飾オリゴリボヌクレオチドまたは修飾オリゴデオキシリボヌクレオチドであるオリゴヌクレオチドを表す。アンチセンス分子は、標的遺伝子または転写物とのハイブリダイゼーションにより、標的遺伝子の転写または翻訳を妨げるように設計される。ヒストンデアセチラーゼをコードする核酸分子に選択的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチドが特に好ましい。当業者は、アンチセンスオリゴヌクレオチドの正確な長さおよびその標的との相補性の程度は、標的の配列およびその配列を含む特定の塩基を含む、選択された特定の標的に依存することを認識するだろう。
アンチセンスオリゴヌクレオチドは、生理学的条件下で標的に選択的に結合するように、すなわち、生理学的条件下で、標的細胞中でその他の配列より標的配列により顕著にハイブリダイズするように、構築および配置されるのが好ましい。ヒストンデアセチラーゼをコードする核酸分子（例えばGenBank Accession番号NP_848512、NP_848510、NP_478057、NP_478056、NP_055522）の核酸配列、あるいはアレルのまたは相同なゲノムおよび／またはｃＤＮＡ配列に基づき、当業者は、本発明にしたがって使用するための任意の多数の適切なアンチセンス分子を容易に選び合成することができる。阻害の十分な選択性および効き目のため、ある場合においては７塩基の長さの修飾オリゴヌクレオチドがアンチセンスオリゴヌクレオチドとして成功裏に用いられるけれども、かかるアンチセンスオリゴヌクレオチドは、少なくとも約１０およびより好ましくは少なくとも約１５の、標的に対して相補的な連続した塩基を含むべきである。Wagner et al., Nat. Med. 1(11):1116-1118, 1995参照。最も好ましくは、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、２０〜３０塩基の相補的な配列を含む。オリゴヌクレオチドは、遺伝子またはｍＲＮＡ転写物の任意の領域のアンチセンスから選ばれてもよいが、好ましい態様において、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、翻訳開始部位、転写開始部位またはプロモーター部位など、Ｎ−末端または５’上流部位に対応する。加えて、３’−非翻訳領域がアンチセンスオリゴヌクレオチドによってターゲットにされてよい。ｍＲＮＡスプライシング部位のターゲッティングもまた当該分野において用いられるが、選択的ｍＲＮＡスプライシングが起こる場合には好ましくはないだろう。加えて、アンチセンスは好ましくは、ｍＲＮＡ二次構造が期待されず（例えばSainio et al., Cell Mol. Neurobiol. 14(5):439 457, 1994参照）、タンパク質が結合することが期待されない部位をターゲットする。
１セットの態様において、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、「天然の」デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチドまたはそれらの任意の組み合わせからなってよい。つまり、１つの自然のヌクレオチドの５’末端および別の自然のヌクレオチドの３’末端が、自然のシステムにおいては、ホスホジエステルヌクレオシド間結合を介して共有的に結合することができる。これらのオリゴヌクレオチドは、技術分野に認識された方法により調製され得、これらの方法は手動で行われても自動化された合成機で行われてもよい。これらはまたベクターによって組み換え的に産生されてもよい。
しかしながら、好ましい態様において、本発明のアンチセンスオリゴヌクレオチドは、「修飾」オリゴヌクレオチドもまた含み得る。つまり、オリゴヌクレオチドは、それらが標的にハイブリダイズするのを妨げないが、それらの安定性もしくはターゲティングを増強するかまたは他のそれらの治療的有効性を増強する多数の方法で修飾されていてよい。
本明細書で用いられる「修飾オリゴヌクレオチド」という語は、（１）少なくとも２つのそのヌクレオチドが合成ヌクレオシド間結合（すなわち、１つのヌクレオチドの５’末端と、別のヌクレオチドの３’末端との間のホスホジエステル結合以外の結合）を介して共有結合的に連結している、および／または、（２）核酸分子と通常は関連しない化学基が共有結合的にオリゴヌクレオチドに取り付けられているオリゴヌクレオチドを表す。好ましい合成ヌクレオシド間結合はホスホロチオエート、アルキルホスホナート、ホスホロジチオエート、リン酸エステル、アルキルホスホロチオエート、ホスホラミダイト、カルバメート、カルボネート、リン酸トリエステル、アセトアミダイト、カルボキシメチルエステルおよびペプチドである。
「修飾オリゴヌクレオチド」という語は、共有結合的に修飾された塩基および／または糖を有するオリゴヌクレオチドも包含する。例えば修飾オリゴヌクレオチドは、３’位に水酸基以外および５’位にリン酸基以外の低分子量有機基が共有結合的に取り付けられた骨格糖を有するオリゴヌクレオチドを含む。したがって修飾オリゴヌクレオチドは２’−Ｏ−アルキル化リボース基を含み得る。加えて、修飾オリゴヌクレオチドはリボースの代わりにアラビノースなどの糖を含み得る。
本発明はしたがって、ヒストンデアセチラーゼをコードする核酸と相補的であり、生理学的条件下でハイブリダイズできる修飾アンチセンス分子を薬学的に許容可能な担体とともに含む医薬製剤を企図している。アンチセンスオリゴヌクレオチドは、医薬組成物の一部として投与される。この後者の態様において、ゆっくりした静脈内注射を用いるのが好ましいだろう。かかる医薬組成物は、当該技術分野において知られた、任意の標準的な生理学的および／または薬学的に許容可能な担体と組み合わせて、アンチセンスオリゴヌクレオチドを含み得る。組成物は滅菌されるべきであり、対象に投与するのに好適な重量または体積の単位中にアンチセンスオリゴヌクレオチドの治療的有効量を含むべきである。
本発明の方法はまた、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）として知られたプロセスを通じたヒストンデアセチラーゼｍＲＮＡの配列特異的分解に向けられた、単離された短鎖ＲＮＡの使用を包含する。このプロセスは、哺乳動物および他の脊椎動物の胚を含む、広範で様々な生物において起こることが知られている。ｄｓＲＮＡが２１〜２３ヌクレオチド長（ｎｔ）のＲＮＡセグメントにプロセシングされること、さらに、それらがより長いｄｓＲＮＡの非存在下でＲＮＡ干渉を媒介することが実証されている。したがって、これら２１〜２３ｎｔ断片は、ＲＮＡ分解の配列特異的メディエータであり、本明細書においてｓｉＲＮＡまたはＲＮＡｉと言われる。本発明の方法は、本明細書において論じられている治療用途に有用な、哺乳動物細胞における分解のためのヒストンデアセチラーゼｍＲＮＡのターゲティングを可能にするための、これらの断片（または形質転換的に産生されたまたは化学的に合成された、同様または類似の性質のオリゴヌクレオチド）の使用を包含する。
ＨＤＡＣ２のヌクレオチド配列は、当該分野において周知であり、当業者は、当該分野に認識された技術と、適切なｓｉＲＮＡ分子を産生するために以下に説明されたガイダンスとを組み合わせて用いることができる。かかる方法は以下により詳細に記載されている。
１つの態様において、本発明は、標的ＨＤＡＣ２ＲＮＡ（例えばコードまたは非コードＲＮＡ）に対してＲＮＡｉ活性を有するｓｉＮＡ分子を特色としており、ここでｓｉＮＡ分子は、homo sapiensについてのHDAC2 GenBank Accession No: mRNA NM_001527を有する配列など、任意のＨＤＡＣ２ＲＮＡ配列と相補的な配列を含む。本発明の任意のｓｉＮＡ構築物に対して化学的修飾を適用することができる。GenBank Accession No: mRNA NM_001527に示されているように、ＨＤＡＣ２のタンパク質配列は：
である。
核酸配列は：
である。
したがって、本発明は、例えばマイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、小干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）、二本鎖ＲＮＡ（ｄｓＲＮＡ）、および短鎖ヘアピンＲＮＡ（ｓｈＲＮＡ）を含む、小干渉核酸（ｓｉＮＡ）と言われる小核酸分子の使用を特色とする。本発明のｓｉＮＡは、修飾されていないかまたは化学的に修飾されていてもよい。本発明のｓｉＲＮＡは、本明細書で論じているように、化学的に合成することができ、ベクターから発現させることができ、酵素的に合成することができる。本発明はまた、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）によって細胞中の遺伝子発現または活性を調節することができる、様々な化学的に修飾された合成小干渉核酸（ｓｉＮＡ）分子を特色とする。化学的に修飾されたｓｉＮＡの使用は、例えばin vivoのヌクレアーゼ分解に対する増大した耐性を通じておよび／または改善された細胞取り込みを通じて、天然のｓｉＮＡ分子の様々な特性を改善する。さらに、複数の化学的修飾を有するｓｉＮＡは、そのＲＮＡｉ活性を維持し得る。本発明のｓｉＮＡ分子は、様々な治療的適用についての有用な試薬および方法を提供する。
血清リボヌクレアーゼによる分解を妨げる修飾（塩基、糖およびリン酸）を有する化学的に合成された核酸分子は、その効能を増大させることができる（例えばEckstein et al.、国際出願公開第ＷＯ９２／０７０６５号明細書；Perrault et al 1990 Nature 344, 565；Pieken et al., 1991, Science 253, 314；Usman and Cedergren, 1992, Trends in Biochem. Sci. 17, 334；Usman et al.、国際出願公開第ＷＯ９３／１５１８７号明細書；およびRossi et al.、国際出願公開第ＷＯ９１／０３１６２号明細書；Sproat、米国特許第５，３３４，７１１号；および上記Burgin et al.；これら全ては、本明細書の核酸分子の塩基、リン酸および／または糖部分に対して施すことができる様々な化学修飾を記載する）。細胞における効能を増大させる修飾、およびオリゴヌクレオチド合成時間を短くし、化学的必要条件を低減させる核酸分子からの塩基の除去が所望される。（これらの出版物は本明細書に参照として組み込まれる）。
核酸分子に導入し、そのヌクレアーゼ安定性および効力を顕著に増強することができる糖、塩基およびリン酸修飾を記載した例が、当該分野においていくつかある。例えばオリゴヌクレオチドは、例えば２’アミノ、２’−Ｃ−アリル、２’−フルオロ、２’−Ｏ−メチル、２’−Ｈ、ヌクレオチド塩基修飾（総説として、Usman and Cedergren, 1992, TIBS. 17, 34；Usman et al., 1994, Nucleic Acids Symp. Ser. 31, 163；Burgin et al., 1996, Biochemistry, 35, 14090参照）などのヌクレアーゼ耐性基で修飾されて、安定性を増強しおよび／または生物学的活性を増強する。核酸分子の糖修飾は、当該分野において広く記載されている（Eckstein et al., 国際出願公開第ＷＯ９２／０７０６５号；Perrault et al. Nature, 1990, 344, 565 568；Pieken et al. Science, 1991, 253, 314317; Usman and Cedergren, Trends in Biochem. Sci., 1992, 17, 334 339；Usman et al.国際公開公報第ＷＯ ９３／１５１８７号; Sproat,米国特許番号第5,334,711 and Beigelman et al., 1995, J. Biol. Chem., 270, 25702; Beigelman et al.,国際出願公開第ＷＯ９７／２６２７０号；Beigelman et al., 米国特許番号第5,716,824；Usman et al.参照、分子は１または２以上の化学的修飾を含む）。
１つの態様において、二本鎖ｓｉＮＡ分子の１つの鎖は、標的ＲＮＡまたはその一部分の核酸配列と相補的な核酸配列を含み、二本鎖ｓｉＮＡ分子の２番目の鎖は、標的ＲＮＡの核酸配列またはその一部分と相同な配列を含む。別の態様において、二本鎖ｓｉＮＡ分子の１つの鎖は、標的ＲＮＡまたはその一部分の核酸配列と実質的に相補的な核酸配列を含み、二本鎖ｓｉＮＡ分子の２番目の鎖は、標的ＲＮＡの核酸配列またはその一部分と実質的に類似の配列を含む。別の態様において、ｓｉＮＡ分子のそれぞれの鎖は約１９から約２３ヌクレオチドを含み、それぞれの鎖は少なくとも約１９ヌクレオチドの、もう一方の鎖と相補的なヌクレオチドを含む。
いくつかの態様において、ｓｉＮＡは、遺伝学的に組み込まれた導入遺伝子またはプラスミドベースの発現ベクターによってコードされおよび発現される、ｓｈＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ−ｍｉｒまたはマイクロＲＮＡ分子である。したがって、いくつかの態様において、ｍＲＮＡ発現またはマイクロＲＮＡ活性を阻害することができる分子は、小干渉核酸をコードする導入遺伝子またはプラスミドベースの発現ベクターである。かかる導入遺伝子および発現ベクターは、これらのｓｈＲＮＡの発現を駆動し、細胞中で機能的なｓｉＲＮＡを生じさせるのに、ポリメラーゼＩＩまたはポリメラーゼＩＩＩプロモーターを採用することができる。前者のポリメラーゼは、誘導性および組織特異的発現システムを含む、古典的なタンパク質発現戦略を用いることができる。いくつかの態様において導入遺伝子および発現ベクターは、テトラサイクリン誘導性発現システムなど、組織特異的プロモーターにコントロールされる。
いくつかの態様において、本発明の小干渉核酸は、哺乳動物の発現ベクターを用いて、哺乳動物細胞中で発現される。形質転換哺乳動物発現ベクターは、特定の細胞型において核酸を優先的に発現する（例えば組織特異的制御要素を用いて核酸を発現する）ことに向けることができてよい。組織特異的制御要素は、当該分野において知られている。好適な組織特異的プロモーターの非限定的な例は、ミオシン重鎖プロモーター、アルブミンプロモーター、リンパ系特異的プロモーター、ニューロン特異的プロモーター、膵臓特異的プロモーターおよび乳腺特異的プロモーターを含む。例えばネズミｈｏｘプロモーターおよびα−フェトタンパク質プロモーターなど、発生的に制御されたプロモーターもまた包含される。
用いることができる他の阻害剤分子は、リボザイム、ペプチド、ＤＮＡザイム、ペプチド核酸三重らせん形成オリゴヌクレオチド、抗体、およびアプタマー、並びに遺伝子、ＲＮＡ転写物またはタンパク質における配列に向けられたそれらの修飾形態を含む。アンチセンスおよびリボザイム抑制戦略は、遺伝子生成物の発現を低減させることおよび変異体転写物を変異部位で開裂することにより、腫瘍フェノタイプの好転を導く（Carter and Lemoine Br. J. Cancer. 67(5):869-76, 1993；Lange et al., Leukemia. 6(11):1786-94, 1993；Valera et al., J. Biol. Chem. 269(46):28543-6, 1994；Dosaka-Akita et al., Am. J. Clin. Pathol. 102(5):660-4, 1994；Feng et al., Cancer Res. 55(10):2024-8, 1995；Quattrone et al., Cancer Res. 55(1):90-5, 1995；Lewin et al., Nat Med. 4(8):967-71, 1998）。例えば、新生物への転換（neoplastic reversion）は、膀胱癌細胞におけるＨ−Ｒａｓ変異を標的としたリボザイムを用いて獲得することができる（Feng et al., Cancer Res. 55(10):2024-8, 1995）。リボザイムはまた、変異遺伝子の遺伝子発現を阻害することおよび標的化トランススプライシングにより変異を正すことが提案されている（Sullenger and Cech Nature 371(6498):619-22, 1994；Jones et al., Nat. Med. 2(6):643-8, 1996）。リボザイム活性は、例えば非特異的核酸結合タンパク質または促進剤オリゴヌクレオチドの使用により増やされてよい（Herschlag et al., Embo J. 13(12):2913-24, 1994；Jankowsky and Schwenzer Nucleic Acids Res. 24(3):423-9,1996）。複数標的リボザイム（連結型またはショットガン型）は、遺伝子抑制についてのリボザイムの効力を改善する手段として提示されている（Ohkawa et al., Nucleic Acids Symp Ser. (29):121-2, 1993）。
三重らせんアプローチもまた、配列特異的遺伝子抑制について調査されている。三重らせん形成オリゴヌクレオチドは、いくつかの場合において配列特異的なやり方で結合することが見出されている（Postel et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88(18):8227-31, 1991；Duval-Valentin et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89(2):504-8, 1992；Hardenbol and Van Dyke Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 93(7):2811-6, 1996；Porumb et al., Cancer Res. 56(3):515-22, 1996）。同様に、ペプチド核酸も遺伝子発現を抑制することが示されている（Hanvey et al., Antisense Res. Dev. 1(4):307-17, 1991；Knudsen and Nielson Nucleic Acids Res. 24(3):494-500, 1996；Taylor et al., Arch. Surg. 132(11):1177-83, 1997）。副溝結合ポリアミドは、配列特異的なやり方でＤＮＡ標的に結合することができ、ゆえに将来的なＤＮＡレベルでの抑制についての有用な小分子となり得る（Trauger et al., Chem. Biol. 3(5):369-77, 1996）。加えて、ドミナントネガティブ変異体ペプチドおよび抗体を用いて、タンパク質レベルで妨げることにより、抑制を獲得することができる（Herskowitz Nature 329(6136):219-22, 1987；Rimsky et al., Nature 341(6241):453-6, 1989; Wright et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 86(9):3199-203, 1989）。いくつかの場合において、抑制戦略は、タンパク質レベルでの付随する低減を伴わないＲＮＡレベルでの低減を導き、一方他では、ＲＮＡにおける低減がタンパク質における低減に酷似する。
採用することができる多彩な抑制戦略は、例えばＨＤＡＣ２等の標的に対して選択的であることができるＤＮＡおよび／またはＲＮＡアプタマーの使用を含む。アプタマーベースの抑制に対して不応性または一部不応性の修飾置き換え遺伝子およびコードされるタンパク質を抑制するための、アプタマーを用いた抑制および置き換えを、本発明において用いることができる。
ＲＮＡｉを媒介するＲＮＡの設計方法および該ＲＮＡを細胞および動物にトランスフェクトする方法は当該分野によく知られており、すぐに商業的に入手可能である（Verma N.K. et al, J. Clin. Pharm. Ther., 28(5):395-404(2004), Mello C.C. et al. Nature, 431(7006)338-42 (2004), Dykxhoorn D.M. et al., Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 4(6):457-67 (2003) Proligo (Hamburg, Germany), Dharmacon Research (Lafayette, CO, USA), Pierce Chemical (part of Perbio Science, Rockford, IL , USA), Glen Research (Sterling, VA, USA), ChemGenes (Ashland, MA, USA), and Cruachem (Glasgow, UK)）。ＲＮＡは好ましくは、適切に保護されたリボヌクレオシドホスホロアミダイトおよび慣習的なＤＮＡ／ＲＮＡシンセサイザーを用いて化学的に合成される。最も便利には、ｓｉＲＮＡは、本明細書に挙げられた商業的ＲＮＡオリゴ合成サプライヤーから獲得する。一般的に、ＲＮＡは合成がそれほど難しくはなく、ＲＮＡｉに好適な質ですぐに供給される。典型的に０．２μｍｏｌスケールのＲＮＡ合成は、約１ミリグラムのＲＮＡを供給し、これは２４ウェル組織培養プレートフォーマットを用いた１０００回のトランスフェクション実験に十分な量である。
ヒストンデアセチラーゼｃＤＮＡ特異的ｓｉＲＮＡは、好ましくは開始コドンおよび終止コドンから５０〜１００ｂｐの範囲内ではなく、イントロンを避け、ＡＡＡＡ、ＣＣＣＣなどの４またはそれ以上の連続体を避け、ＧＣ含量が＜３０％または＞６０％の領域を避け、繰り返しおよび低複雑性配列を避け、および一塩基多型の配列を避けるように配列を選択して設計する。ヒストンデアセチラーゼのｓｉＲＮＡは、２３ｎｔの配列モチーフＡＡ（Ｎ１９）を捜索し、て設計されてよい。好適な配列が見出せなかった場合、２３ｎｔ配列モチーフＮＡ（Ｎ２１）を、センスｓｉＲＮＡの３’末端をＴＴに変更して用いてよい。代替的に、ヒストンデアセチラーゼｓｉＲＮＡは、ＮＡＲ（Ｎ１７）ＹＮＮの捜索により設計することもできる。標的配列は５０％付近のＧＣ含量を有していてよい。ｓｉＲＮＡターゲット配列は、他の遺伝子または配列に対するオフターゲット効果を避けるため、さらにＢＬＡＳＴホモロジー検索を用いて評価されてよい。ネガティブコントロールは、標的ｓｉＲＮＡ配列をスクランブルすることにより設計する。コントロールＲＮＡは好ましくはｓｉＲＮＡと同一の長さおよびヌクレオチド組成を有するが、少なくともｓｉＲＮＡと４〜５塩基のミスマッチを有する。本発明のＲＮＡ分子は、３’ヒドロキシル基を有することができる。ＲＮＡ分子は一本鎖または二本鎖であり得；かかる分子は平滑末端であることができまたは約１〜約６のヌクレオチド長（例えばピリミジンヌクレオチド、プリンヌクレオチド）のオーバーハング末端（例えば５’、３’）を含んでいることもできる。本発明のＲＮＡの安定性をさらに増強するため、３’オーバーハングを分解に対して安定化することができる。ＲＮＡは、アデノシンまたはグアノシンヌクレオチドなどのプリンヌクレオチドを含めることにより安定化することができる。代替的に、例えば２’−デオキシチミジンによるウリジン２ヌクレオチド３’オーバーハングの置換など、修飾アナログによるピリミジンヌクレオチドの置換が許容され、ＲＮＡｉの効力に影響しない。２’ヒドロキシルの不存在は、組織培養培地におけるオーバーハングのヌクレアーゼ耐性を顕著に増強する。
本発明の方法に用いられるＲＮＡ分子は、当業者に知られた多くの技術を用いて獲得することができる。例えば、ＲＮＡは、当該分野に知られた方法を用いて、化学的に合成または形質転換的に産生することができる。かかる方法は米国特許公開公報ＵＳ２００２−００８６３５６Ａ１およびＵＳ２００３−０２０６８８４Ａ１に記載されており、これらはその全体が本明細書に参照により組み込まれる。
ＲＮＡｉを媒介するためにＨＤＡＣ２遺伝子と十分なホモロジーを有すれば、任意のＲＮＡを本発明の方法に用いることができる。本発明に用いられるＲＮＡは全ＨＤＡＣ２遺伝子またはその一部分に対応していることができる。利用できるＲＮＡの長さに上限はない。例えば、ＲＮＡは、遺伝子の約２１塩基対（ｂｐ）から遺伝子の全長またはそれ以上の範囲であってよい。ある態様において、本発明のＲＮＡの好ましい長さは２１〜２３ヌクレオチドである。
さらに、ヒストンデアセチラーゼＤＮＡメチル化酵素もまた、抗体などの結合ペプチドによって阻害することができる。数々のヒストンデアセチラーゼ抗体が、Sigma、Vinci Biochem、Cell Signaling Technologiesなどの給源から商業的に入手可能である。かかる抗体を修飾して、抗体断片またはヒト化バージョンを産生できる。代替的に、ＨＤＡＣが利用可能であるから、治療的に有用な抗体を当業者に知られた技術を用いて産生することができる。
本発明の治療化合物は、対象に直接投与されてもよいし、送達デバイスまたはビヒクルを併用して投与されてもよい。治療化合物を表面に送達するための送達ビヒクルまたは送達デバイスが記載されている。本発明の治療化合物は単独で（例えば生理食塩水中またはバッファ中で）または当該分野に知られた任意の送達ビヒクルを用いて投与されてよい。例えば、以下の送達ビヒクルが記載されている：コチリエート（Cochleates）；エマルソーム（Emulsomes）、ISCOM；リポソーム；生菌ベクター（例えばサルモネラ，大腸菌、Bacillus calmatte-guerin、赤痢菌、乳酸菌）；生きたウィルスのベクター（例えばワクシニア、アデノウィルス、単純ヘルペス）；ミクロスフェア；核酸ワクチン；ポリマー；ポリマー環；プロテオソーム；フッ化ナトリウム；形質転換植物；ビロソーム；ウィルス様粒子。他の送達ビヒクルは当該分野で知られており、いくつかの追加の例が以下に提供されている。
本発明の治療化合物の有効量という語は、望まれた生物学的効果を現実化するのに必要または十分な量をいう。たとえば、上で論じたように、本発明の治療化合物の有効量とは、記憶へのアクセスを再構築するのに十分な量である。本明細書に提供されている教示と組み合わせて、様々な活性化合物の中から選択することおよび効力、相対的バイオアベイラビリティ、患者体重、副作用の重篤度および投与の好ましいモードなどの因子に重み付けすることにより、有効な予防的または治療的処置レジメンを計画することができ、実質的な毒性の原因とならず、さらに特定の対象を治療するのに全体として有効である。任意の特定の用途についての有効量は、処置すべき疾患または状態、特定の治療的化合物が投与される対象のサイズ、または疾患もしくは状態の重篤度にしたがってかかる因子に依存して変化できる。当業者は、本発明の特定の治療化合物の有効量を、過度の実験を必要とせずに、経験的に決定できる。本発明の組成物は、本明細書に記載された化合物またはその薬学的に許容可能な塩もしくは水和物を含む。
本明細書に記載の化合物の、送達のための対象投与量は、典型的には投与ごとに０．１μｇ〜１０ｍｇであり、投与が毎日、週毎または月毎に行われるか、およびこれらの間の任意の他の時間量であるかに依存する。これらの目的のための投与量は投与毎に約１０μｇ〜５ｍｇの範囲であってよく、最も典型的には、約１００μｇ〜１ｍｇを、数日または数週間の間を空けて２〜４回の投与で行う。いくつかの態様において、しかしながら、これらの目的のための非経口的な投与量は、上記の典型的な投与量よりも５〜１００００倍高い範囲で用いてもよい。
１つの態様において、組成物は１日１回、約２００〜６００ｍｇの投与量で投与される。別の態様において、組成物は１日２回、約２００〜４００ｍｇの投与量で投与される。別の態様において、組成物は１日２回、約２００〜４００ｍｇの投与量で、例えば週毎に３、４または５日など、断続的に投与される。別の態様において、組成物は１日３回、約１００〜２５０ｍｇの投与量で投与される。１つの態様において、１日の投与量は２００ｍｇであり、１日に１回、２回または３回投与できる。１つの態様において、１日の投与量は３００ｍｇであり、１日１回または２回投与できる。１つの態様において、１日の投与量は４００ｍｇであり、１日１回または２回投与できる。ＨＤＡＣ阻害剤は、１日の総投与量が８００ｍｇまで投与でき、１日に１回、２回または３回、連続的（すなわち毎日）または断続的（たとえば週に３〜５日）に投与できる。
本明細書に記載の任意の化合物について、治療的有効量は最初に動物モデルから決定することができる。治療的有効量はまた、ヒトにおいて試験されてきた（例えば、癌の処置について）ＨＤＡＣ阻害剤についての、および同様の薬理学的活性を呈示することが知られている化合物についてのヒトのデータから決定することもできる。高投与量は、非経口投与が求められ得る。適用される投与量は、投与される化合物の相対的バイオアベイラビリティおよび効力に基づいて加減することができる。上記の方法および当該分野において周知の他の方法に基づいて、最大の効能を達成するために投与量を加減することは、十分に当業者の能力の範囲内である。
予防的および／または治療的プロトコルの毒性および効能は、細胞培養または実験動物における標準的な薬理学的手順、例えばＬＤ５０（集団の５０％に致命的な投与量）およびＥＤ５０（集団の５０％において治療的に有効な投与量）を決定することなど、により決定できる。毒性および治療的効果の間の投与量比は治療指数であり、これはＬＤ５０／ＥＤ５０の比として表現することができる。大きな治療指数を呈示する予防および／または治療剤が好ましい。毒性の副作用を呈示する予防および／または治療剤を用いることができるが、非罹患細胞への潜在的ダメージを最小限にし、それにより副作用を低減させるための、かかる剤を罹患組織の部位へとターゲティングさせる送達システムの設計には注意を払うべきである。
細胞培養アッセイおよび動物研究から得られたデータは、ヒトに使用する予防および／または治療剤投与量の範囲を策定するのに使用することができる。かかる剤の投与量は、好ましくは毒性がほとんどまたは全くないＥＤ５０を含む循環濃度の範囲内にある。投与量は、採用される投与形態および利用できる投与ルートに依存して、この範囲内で変化してよい。本発明に用いられる任意の剤について、治療的に有効な投与量はまず細胞培養アッセイから見積もることができる。細胞培養において決定したように、投与量は、ＩＣ５０（すなわち、症状の最大阻害量の半分を達成する試験化合物の濃度）を含む循環血漿濃度範囲を達成するために、動物モデルにおいて策定し得る。かかる情報は、ヒトにおいて有用な投与量をより正確に決定するのに用いることができる。血漿におけるレベルは、例えば高速液体クロマトグラフィによって計測してよい。
ある態様において、医薬組成物は、例えば少なくとも約０．１％の活性化合物を含んでよい。他の態様において、活性化合物は、例えば、ユニットの約２％〜約７５％の間の重量、または約２５％〜約６０％で含まれてよく、およびそのうちの送達可能な任意の範囲で含まれてよい。
本発明の分子の多重投与もまた考慮される。いくつかの場合において、本発明の分子が他の治療薬とともに投与される時、いずれかの剤の治療下（sub-therapeutic）投与量、または両方の剤の治療下投与量、が用いられる。本明細書で用いられる「治療下投与量」は、他の剤の非存在下において投与された場合、対象において治療的結果を産生するであろう投与量より少ない投与量をいう。したがって、例えば、抗アルツハイマー剤の治療下投与量は、本発明の化合物の投与無しでは対象において所望の治療的結果を産生しないであろうものである。
本発明の製剤は、薬学的に許容可能な溶液で投与され、それは通常薬学的に許容可能な濃度の塩、バッファ剤、保存料、混合可能な担体および任意に他の治療的有効成分を含んでよい。
治療における使用について、本発明の治療化合物の有効量を、例えば粘膜、全身など、所望の表面に治療剤または化合物を送達する任意のモードで対象に投与することができる。本発明の医薬組成物の投与は、当業者に知られた任意の方法で成し遂げられ得る。好ましい投与のルートは、これに限定するものではないが、経口、非経口、筋肉内、鼻腔内、舌下、気管内、吸入、眼内、膣内、直腸内および脳室内を含む。
経口投与について、本発明の治療化合物は、活性化合物と、当該分野で知られた薬理学的に許容可能な担体とを組み合わせることで、容易に製剤化可能である。かかる担体は、処置される対象による経口摂取のために、本発明の化合物の錠剤、丸薬、糖衣錠、カプセル、液剤、ゲル剤、シロップ剤、スラリー、懸濁液などとしての製剤化を可能にする。経口使用のための医薬製剤は、固体賦形剤として獲得することができ、任意に得られた混合物を粉砕し、所望により好適な助剤を添加した後、混合物の顆粒を加工し、錠剤または糖衣錠のコアを獲得する。好適な賦形剤は、特に、ラクトース、スクロース、マンニトールまたはソルビトールを含む糖などの充填剤；例えば、トウモロコシデンプン、小麦デンプン、米デンプン、ジャガイモデンプン、ゼラチン、ガムトラガカント、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウムおよび／またはポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）などのセルロース製剤である。所望により、架橋ポリビニルピロリドン、寒天、またはアルギン酸ナトリウムなどのアルギン酸またはその塩などの崩壊剤を添加してよい。任意に、経口製剤はまた、生理食塩水またはバッファ（すなわち内的な酸条件を中和するためのＥＤＴＡなど）中で製剤化されてもよく、任意の担体なしで投与されてもよい。
また特に考慮されるのは、上記構成の経口投与形態である。構成は、送達物が経口送達で効力を発揮するために、化学的に修飾されていてよい。一般的に、考慮される化学修飾は、少なくとも１の部分の構成分子そのものへの取り付けであり、かかる部分は（ａ）タンパク質分解の阻害；および（ｂ）胃または腸からの血流への取り込みが可能である。また、望ましいのは、構成の全体的な安定性の増大および体内での循環時間の増大である。かかる部分の例は：ポリエチレングリコール、エチレングリコールのコポリマーおよびプロピレングリコール、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドンおよびポリプロリンを含む。Abuchowski and Davis, 1981, Enzymes as Drugs 中の"Soluble Polymer-Enzyme Adducts", Hocenberg and Roberts, eds., Wiley-Interscience, New York, NY, pp. 367-383；Newmark, et al., 1982, J. Appl. Biochem. 4:185-189。利用できる他のポリマーは、ポリ−１，３−ジオキソランおよびポリ−１，３，６−チオキソカン(tioxocane)である。上記のような薬学的な使用に好ましいのは、ポリエチレングリコール部分である。
放出の場所は、胃、小腸（十二指腸、空腸または回腸）、または大腸であり得る。当業者は、胃で溶解せず、物質を十二指腸または小腸の他の場所で放出するであろう、利用可能な製剤を有している。好ましくは放出は、治療剤の保護によりまたは、小腸においてなど、胃を超えて生物学的活性物質を放出することにより胃環境の有害効果を回避するだろう。
完全な胃に対する抵抗性を確保するため、少なくともｐＨ５．０で不透性であるコーティングが重要である。腸コーティングとして用いることができるより共通の不活性成分は、セルロースアセテートトリメリテート（ＣＡＴ）、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート（ＨＰＭＣＰ）、HPMCP 50、HPMCP 55、ポリビニルアセテートフタレート（ＰＶＡＰ）、Eudragit L30D、Aquateric、セルロースアセテートフタレート（ＣＡＰ）、Eudragit L、Eudragit S、およびShellacである。これらのコーティングは混合フィルムとして用いてもよい。
コーティングまたはコーティング混合物はまた、錠剤にも用いることができ、これは胃から保護する意図ではない。これは糖コーティングまたは錠剤を嚥下しやすくさせるものを含むことができる。カプセルは、乾燥した治療剤（つまり粉末）の送達のための固い殻（ゼラチンなど）からなってよく、液体について、柔らかいゼラチンの殻が用いられてもよい。カシェーの殻の材料は、厚いデンプンまたは他の可食性の紙であり得る。丸薬、トローチ剤、成型錠剤または粉末錠剤について、モイスト・マッシング法（moist massing techniques）を用いることができる。
治療剤は、粒子サイズ約１ｍｍの顆粒またはペレットの形態で、多重粒子の微粒子として製剤中に含まれ得る。カプセル投与のための製剤の材料はまた、粉末、軽く圧縮したプラグまたは錠剤でさえあり得る。治療剤は、圧縮によって調製されてもよい。
着色剤およびフレーバー剤もまた含んでよい。冷蔵飲料が着色剤およびフレーバー剤を含むように、例えば、治療剤は製剤化（リポソームまたはマイクロスフェア封入などにより）されてよく、そこでさらに可食性製品の中に含ませてよい。
当業者は、不活性材料により、治療剤を希釈またはその体積を増大させてよい。これらの希釈剤は、炭化水素、特にマンニトール、α−ラクトース、無水ラクトース、セルロース、スクロース、修飾デキストランおよびデンプンを含み得る。三リン酸カルシウム、炭酸マグネシウム、および塩化ナトリウムを含む、ある無機塩もまた充填剤として用いられてよい。いくつかの商業的に入手可能な希釈剤は、Fast-Flo、Emdex、STA-Rx 1500、EmcompressおよびAvicellである。
崩壊剤は、固形剤形に治療剤の製剤に含まれてよい。崩壊剤として使用される材料としては、これに限定するものではないが、デンプンに基づく市販の崩壊剤であるExplotabを含む、デンプンを含む。デンプングリコール酸ナトリウム、アンバーライト、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ウルトラミロペクチン（ultramylopectin）、アルギン酸ナトリウム、ゼラチン、オレンジピール、酸カルボキシメチルセルロース、海綿およびベントナイトはすべて使用してよい。崩壊剤の別の形態は、不溶性のカチオン交換樹脂である。粉末ゴムは、崩壊剤として、結合剤として使用することができ、寒天、カラヤまたはトラガカントなどは粉末ゴムを含むことができる。アルギン酸およびそのナトリウム塩もまた、崩壊剤として有用である。
結合剤は、固い錠剤を形成するために、一緒に治療剤を保持するために使用されてよく、アカシア、トラガカント、デンプンやゼラチンなどの天然物からの材料を含んでよい。他は、メチルセルロース（ＭＣ）、エチルセルロース（ＥＣ）とカルボキシメチルセルロース（ＣＭＣ）を含む。ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ）とヒドロキシプロピルメチルセルロース（ＨＰＭＣ）の両方は、治療剤を粒形化するアルコール溶液に使用することができる。
抗摩擦剤は、製剤工程中に付着を防ぐために治療剤に含まれていてもよい。潤滑剤は、治療とダイ壁との間の層として用いることができる、そしてこれに限定するものではないが、そのマグネシウムおよびカルシウム塩を含むステアリン酸、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）、流動パラフィン、植物油およびワックスを含み得る。可溶性潤滑剤は、ラウリル硫酸ナトリウム、ラウリル硫酸マグネシウム、様々な分子量のポリエチレングリコール、Carbowax 4000および6000なども使用してよい。
製剤中の薬物の流動特性を改善し、圧縮時の再配置を援助し得る流動促進剤が添加されてよい。流動促進剤としては、デンプン、タルク、焼成シリカ、ケイアルミン酸ナトリウム水和物を含んでよい。
水性の環境への治療剤の溶解を援助するため、界面活性剤を湿潤剤として添加してよい。界面活性剤はラウリル硫酸ナトリウム、スルホコハク酸ジオクチルナトリウムおよびジオクチルスルホン酸ナトリウム等のアニオン性デタージェントを含んでよい。カチオン性デタージェントを使用してもよく、これは塩化ベンザルコニウムまたは塩化ベンゼトニウムを含むことができる。界面活性剤として製剤に含むことができる潜在的な非イオン性デタージェントのリストは、ラウロマクロゴール４００、ステアリン酸ポリオキシル４０、ポリオキシエチレン水添ヒマシ油１０、５０および６０、グリセロールモノステアレート、ポリソルベート４０、６０、６５および８０、ショ糖脂肪酸エステル、メチルセルロースおよびカルボキシメチルセルロースである。これらの界面活性剤は治療剤の製剤中に単独で、または異なる比率の混合物として存在し得る。
経口で使用することができる医薬製剤は、ゼラチンで作られた押し込み式カプセルだけでなく、ゼラチンと例えばグリセロールまたはソルビトールのような可塑剤から作られた、柔らかく、密封されたカプセルを含む。押し込み式カプセルは、活性成分を、ラクトースなどの充填剤、デンプン等の結合剤、および／またはタルクまたはステアリン酸マグネシウムなどの潤滑剤、任意に安定剤との混合物中に含み得る。ソフトカプセルにおいて、活性化合物を、脂肪油、流動パラフィン、または液体ポリエチレングリコールなどの好適な液体中に溶解または懸濁させてよい。さらに、安定剤を添加してよい。経口投与用に製剤化したマイクロスフェアもまた使用してよい。かかるマイクロスフェアは、当該技術分野においてよく定義されている。経口投与用のすべての製剤は、かかる投与に適した投与量にすべきである。
頬側投与について、組成物は、従来の方法で製剤化した錠剤またはトローチ剤の形態をとってよい。
吸入による投与について、本発明の使用のための化合物は、例えば、ジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタン、二酸化炭素または他の適切なガスなどの好適な噴射剤を使用して、加圧パックまたは噴霧器からエアロゾルスプレーのプレゼンテーションの形態で都合よく送達されてよい。加圧エアロゾルの場合、投与単位は、計量された量を送達するためのバルブを提供することによって決定してよい。吸入器または注入器で使用するためのカプセルと例えばゼラチンのカートリッジは、化合物とラクトースまたはデンプンなどの好適な粉末基剤の粉末混合物を含有して製剤化してよい。
本発明の治療化合物の経肺投与もまた、本明細書において考慮される。治療剤は、吸い込むと哺乳動物の肺に送達され、肺上皮層を横断して血流に至る。吸入分子の他の報告はAdjei et al., 1990, Pharmaceutical Research, 7:565 569；Adjei et al., 1990, International Journal of Pharmaceutics, 63:135 144（酢酸ロイプロリド）；Braquet et al., 1989, Journal of Cardiovascular Pharmacology, 13(suppl. 5):143 146（エンドセリン−１）；Hubbard et al., 1989, Annals of Internal Medicine, Vol. III, pp. 206 212（α１−抗トリプシン）；Smith et al., 1989, J. Clin. Invest. 84:1145-1146（α１−プロテイナーゼ）；Oswein et al., 1990, "Aerosolization of Proteins", Proceedings of Symposium on Respiratory Drug Delivery II, Keystone, Colorado, March,（組換えヒト成長ホルモン）；Debs et al., 1988, J. Immunol. 140:3482 3488（インターフェロンγおよび腫瘍壊死因子α）およびPlatz et al., U.S. Patent No. 5,284,656（顆粒球コロニー刺激因子）を含む。全身的な効果のための薬物の経肺投与のための方法および組成物は、米国特許番号５，４５１，５６９、１９９５年９月１９日Wong et al.に発行、に記載されている。
治療薬の肺送達のために設計された広範な機械デバイスが本発明の実施における使用のために考慮され、これに限定するものではないが、噴霧器、定量吸入器および粉末吸入器が含まれ、当業者はこれら全てに精通している。
本発明の実施において好適な、商業的に利用可能なデバイスのいくつかの特定の例は、the Ultravent nebulizer、Mallinckrodt, Inc., St. Louis, Missouri製；the Acorn II nebulizer、Marquest Medical Products, Englewood, Colorado製；the Ventolin metered dose inhaler、Glaxo Inc., Research Triangle Park, North Carolina製；およびthe Spinhaler powder inhaler、Fisons Corp., Bedford, Massachusetts製である。
すべてのかかるデバイスは、治療薬の投薬に好適な製剤の使用を求められる。典型的には、各製剤は採用するデバイスタイプに特異的であり、通常の希釈剤、および／または治療に有用な担体に加え、適切な噴射剤の材料の使用を伴ってよい。また、リポソーム、マイクロカプセルまたはマイクロスフェア、包接複合体、またはキャリアの他のタイプの使用が意図されている。化学的に修飾された治療薬は、化学修飾や使用デバイスの種類の種類に応じて異なる製剤に調製することができる。
噴霧器（ジェットまたは超音波のいずれか）での使用に適した製剤は、典型的には、溶液１ｍｌあたりに生物学的に活性な化合物を約０．１〜２５ｍｇの濃度で水に溶解した治療剤を含むことになる。製剤はまた、バッファと単糖（例えば、安定化と浸透圧の調節のため）を含んでよい。噴霧器製剤はまた、エアロゾルの形成における溶液の噴霧化による化合物の表面誘導凝集を低減または防止するために、界面活性剤が含まれていてよい。
定量吸入器デバイスで使用するための製剤は、一般的に、治療剤を含む微粉化した粉末を、界面活性剤の援助で噴射剤に懸濁したものを含むことになる。噴射剤は、トリクロロフルオロメタン、ジクロロジフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタノール、および１，１，１，２テトラフルオロエタンを含む、クロロフルオロカーボン、ハイドロクロロフルオロカーボン、ハイドロフルオロカーボン、または炭化水素、あるいはそれらの組み合わせなど、この目的のために採用される任意の従来の材料であってよい。好適な界面活性剤は、ソルビタントリオレアートおよび大豆レシチンを含む。オレイン酸もまた、界面活性剤として有用である。
粉末吸入器デバイスから投薬するための製剤は、治療剤を含む微粉化された乾燥粉末を含み、また、デバイスからの粉体の分散を促進する量、例えば製剤の５０?９０重量％、のラクトース、ソルビトール、スクロース、またはマンニトールなどの増量剤を含んでよい。治療薬は、末梢気道へ最も効果的に送達するために、平均粒径が１０ｍｍ未満（またはミクロン）、最も好ましくは０．５〜５ｍｍの間の粒子の形で、最も有利に調製すべきである。
本発明の医薬組成物の経鼻送達もまた考慮される。経鼻送達は、肺で製品が沈着する必要なしに、鼻に治療製品を投与後、直接血流への本発明の医薬組成物の通過を可能とする。経鼻送達のための製剤は、デキストランまたはシクロデキストランを有するものを含む。
経鼻投与について、有用なデバイスは、定量吸入スプレーが取り付けられている小さな、固いボトルである。１つの態様において、計量された用量は、定義された体積のチャンバーに、本発明の溶液の医薬組成物を引き込むことにより送達され、かかるチャンバーは、エアロゾル製剤を、チャンバー内の液体が圧縮されるときにスプレーを形成することによりエアロゾル化する寸法の開口部を有する。チャンバーは、本発明の医薬組成物を投与するために圧縮されている。特定の態様において、チャンバーはピストン配置である。かかるデバイスは、商業的に利用可能である。
代替的に、両側から押されたときにスプレーを形成することにより、エアロゾル製剤をエアロゾル化するような寸法の開口部または開放部を有するプラスチックスクイーズボトルが用いられる。開放部は通常、ボトルの上部に見出され、上部は一般的に、エアロゾル製剤の効率的な投与のために、部分的に鼻腔に収まるようにテーパーである。好ましくは、鼻吸入器は、薬剤の計測された用量の投与のために、計量された量のエアロゾル製剤を提供する。
化合物は、それらを全身的に送達することが望ましい場合、注射による、例えばボーラス注射または連続注入による、非経口投与用に製剤化することができる。注射用製剤は、保存料を添加して、例えばアンプルなどの単位投与形態または複数用量容器で存在してよい。組成物は、油性または水性ビヒクル中の懸濁液、溶液またはエマルジョンなどの形態をとることができ、懸濁剤、安定剤および／または分散剤のような製剤化剤（formulatory agent）を含んでよい。
非経口投与用医薬製剤は、水可溶性形態の活性化合物の水溶液を含む。さらに、活性化合物の懸濁液は、適切な油性注射用懸濁液として調製することができる。好適な親油性溶媒またはビヒクルは、ゴマ油などの脂肪油、またはオレイン酸エチルもしくはトリグリセリドのような合成脂肪酸エステル、またはリポソームを含む。水性注射懸濁液は、カルボキシメチルセルロースナトリウム、ソルビトール、またはデキストランなどの懸濁液の粘度を増加させる物質が含まれていてよい。任意に、懸濁液はまた、高濃度の溶液の調製を可能にするために、好適な安定化剤や化合物の溶解度を増加させる剤が含まれていてよい。
代替的に、活性化合物は、使用の前に好適なビヒクル、例えば、無菌の発熱物質フリーの水で構成するための粉末形態であってもよい。
化合物はまた、坐剤または停留浣腸、例えば、カカオバターまたは他のグリセリドなどの従来の坐剤基剤を含むもの、などの直腸または膣用組成物に処方することができる。
前述の製剤に加えて、化合物はまた、デポー製剤として製剤化することもできる。かかる長時間作用型の製剤は、好適なポリマーまたは疎水性材料（例えば、許容可能な油中のエマルジョンとして）またはイオン交換樹脂として、または難溶性誘導体として、例えば難溶性塩として、処方してよい。
医薬組成物はまた、好適な固相もしくはゲル相の担体または賦形剤を含み得る。かかる担体または賦形剤の例としては、これに限定するものではないが、炭酸カルシウム、リン酸カルシウム、様々な糖、デンプン、セルロース誘導体、ゼラチン、およびポリエチレングリコールなどのポリマーを含む。
好適な液体または固体の医薬製剤の形態は、例えば、吸入用の水性または生理食塩水溶液、マイクロカプセル化物、コチリエート化物（encochleated）、金の微小粒子上にコートされたもの、リポソームに含まれるもの、噴霧化物、エアロゾル、皮膚に埋め込むためのペレット、または鋭利なものの上に乾燥させて皮膚をひっかくものなどである。医薬組成物はまた、顆粒剤、粉末剤、錠剤、コート錠剤、（マイクロ）カプセル、坐剤、シロップ剤、エマルジョン、懸濁液、クリーム、ドロップまたは活性化合物を持続的に放出する調製物を含み、これら調製物において、崩壊剤、結合剤、コーティング剤、膨潤剤、潤滑剤、香料、甘味料または可溶化剤などの賦形剤および添加剤および／または助剤は、上記のように習慣的に使用される。該医薬組成物は、様々な薬物送達システムでの使用に好適である。薬物送達のための方法の簡単な概説については、Langer, Science 249:1527-1533, 1990を参照し、これは参照により本明細書に組み込まれる。
本発明の治療化合物および任意に他の治療薬はそれ自体（ニート）、または薬学的に許容可能な塩の形態で投与されてよい。医薬として使用される場合、塩は薬学的に許容されるべきであるが、薬理学的に許容されない塩を、その薬学的に許容可能な塩を調製するために利便的に用いてよい。かかる塩としては、これに限定するものではないが、以下の酸から調製される：塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸、マレイン酸、酢酸、サリチル酸、ｐ−トルエンスルホン酸、酒石酸、クエン酸、メタンスルホン酸、ギ酸、マロン酸、コハク酸、ナフタレン−２−スルホン酸、およびベンゼンスルホン酸。また、かかる塩は、ナトリウム、カリウムまたはカルシウムなどのアルカリ金属またはアルカリ土類金属のカルボン酸基の塩として調製することができる。
好適なバッファ剤は：酢酸および塩（１〜２％ｗ／ｖ）；クエン酸および塩（１〜３％ｗ／ｖ）；ホウ酸および塩（０．５〜２．５％ｗ／ｖ）；ならびにリン酸および塩（０．８〜２％ｗ／ｖ）を含む。好適な保存料は、塩化ベンザルコニウム（０．００３〜０．０３％ｗ／ｖ）；クロロブタノール（０．３〜０．９％ｗ／ｖ）；パラベン（０．０１〜０．２５％ｗ／ｖ）およびチメロサール（０．００４〜０．０２％ｗ／ｖ）を含む。
本発明の医薬組成物は、任意に薬学的に許容される担体に含まれる、本発明の治療化合物の有効量を含む。薬学的に許容可能な担体という語は、ヒトまたは他の脊椎動物への投与に好適な１または２以上の混合可能な固体または液体の充填剤、希釈剤またはカプセル化物質を意味する。担体という語は、活性成分が適用を促進するために組み合わせられている、有機または無機の、天然または合成の成分を表す。本医薬組成物の構成物はまた、互いに実質的に所望の薬学的効能を損傷する相互作用が存在しないような方法で、本発明の化合物と混蔵可能である。
治療薬は、血液脳関門を越えて治療薬を送達することができる製剤を使用して、脳に送達されてよい。脳へ治療薬を送達する１つの障害は、脳の生理学と構造である。血液脳関門は、単層の内皮細胞が並ぶ特殊な毛細血管で構成されている。細胞間領域は密着結合で密閉されているため、内皮細胞を通してのみ血液から脳へアクセスできる。バリアは、親油性分子などの特定の物質のみを通すことを可能にし、他の有害な化合物および病原体を締め出す。したがって、親油性の担体は、脳に非親油性化合物を送達するのに有用である。例えば、ヒトの脳に発生する天然の脂肪酸であるＤＨＡは、それに共有結合で取り付けられた薬剤を脳へ送達するために有用であることが見出されている（米国特許６４０７１３７などに記載されているように）。米国特許５，５２５，７２７は、脳への薬物種の特異的かつ持続的な送達のための、ジヒドロピリジンピリジニウム塩の担体酸化還元システムについて記載している。米国特許５，６１８，８０３は、ホスホネート誘導体による標的薬物送達を記載している。米国特許７１１９０７４は、血液脳関門を横断して化合物を送達するための、ＰＥＧオリゴマー／ポリマーと抱合した治療用化合物の両親媒性プロドラッグを記載している。本明細書に記載される化合物は、親油性担体に共有結合的に取り付けられること、または親油性担体と共製剤化されることによって修飾され得る。その他は、当業者に知られている。
本発明の治療薬は、記憶喪失に関連する記憶の挽回の増強または他の障害の症状や原因を治療するため、他の治療薬とともに送達されてよい。例えば、記憶の増強のために、環境強化（environmental enrichment：ＥＥ）が用いられている。ＥＥは、対象を取り巻く刺激的な環境の創造を伴う。他の治療剤をまた、基礎疾患を治療したり、記憶の想起を増強するために組み合わせることができる。
単位用量またはキット形態のいずれかにおける、本発明の化合物と他の薬剤との組合せの例は：抗アルツハイマー病剤、ベータ−セクレターゼ阻害剤、ガンマ−セクレターゼ阻害剤、ＨＭＧ−ＣｏＡレダクターゼ阻害剤、イブプロフェンを含むＮＳＡＩＤ、メマンチンなどのＮ−メチル−Ｄ−アスパラギン酸（ＮＭＤＡ）受容体アゴニスト、ガランタミン、リバスチグミン、ドネペジル、およびタクリンなどのコリンエステラーゼ阻害剤、ビタミンＥ、ＣＢ−１受容体アンタゴニストまたはＣＢ−１受容体逆アゴニスト、ドキシサイクリンおよびリファンピンなどの抗生物質、抗アミロイド抗体、あるいは本発明の化合物の効力、安全性、利便性を向上させるか、または望まない副作用や毒性を低減するかのいずれかである受容体や酵素に影響を与える他の薬剤との組み合わせが含まれる。本発明の化合物はまた、多数のＨＤＡＣ阻害剤のカクテルとして送達されてもよい。上記組み合わせのリストは例示のみであり、いかなる方法で限定されることも意図しない。
本発明はまた、任意の１つまたは１群の構成を参照する物品を含む。いくつかの態様において、物品はキットである。物品は、１つまたは複数の容器中の、薬学的または診断的グレードの本発明の化合物を含む。物品は、本発明の化合物の使用を推進するかまたは記述する、指示またはラベルを含んでよい。
本明細書中で使用される場合、「推進する」という語は、アルツハイマー病などの認知障害の処置に関する本発明の組成物に関連する、教育、病院や他の臨床指導、医薬品の販売を含む製薬業界の活動の方法、および任意の形式の書面、口頭および電子通信を含む任意の広告や他の推進的活動を含む、ビジネスを行うすべての方法を含む。
「指示」は推進の構成と定義することができ、典型的には本発明の組成物の包装上または包装に関連する書面の指示を伴う。指示はまた、任意の方法で提供される任意の口頭または電子指示を含み得る。
したがって、本明細書中に記載の剤は、いくつかの態様において、医薬、診断または研究への適用での使用を促進するための医薬または診断または研究キットに組み立てることができる。キットは、本発明の構成要素および使用説明書を収納する１または２以上の容器を含んでよい。特に、かかるキットは、本明細書に記載の１または２以上の剤を、意図した治療への適用およびこれらの薬剤の適した投与について記述する指示書とともに、含んでよい。ある態様において、キットの剤は、薬剤の特定の適用および投与方法に好適な医薬製剤および投与量であってよい。
本キットは、医師による本明細書に記載された使用を促進するために設計されてよく、様々な形態を取ることができる。キットの各組成物は、該当するものは、液体形態（例えば、溶液中）、または固体の形態（例えば、乾燥粉末）で提供されてよい。ある場合において、組成物の一部は、例えば、キットと共に提供されていてもされていなくてもよい好適な溶媒または他の種（例えば、水または細胞培養培地）を添加することにより、構成可能であるかまたは（例えば、活性型に）処理可能であってもよい。本明細書で使用する場合、「指示」は指示および／または推進の構成と定義され、典型的には本発明の包装上または包装に関連する書面の指示を伴う。指示はまた、使用者が指示はキットに関連付けられていることを明確に認識するであろう任意の方法、例えば、視聴覚的方法（例えば、ビデオテープ、ＤＶＤ、等）、インターネット、および／またはＷｅｂベースの通信など、で提供される、任意の口頭または電子指示を含み得る。書面の指示は、医薬品または生物学的製品の製造、使用または販売を制御する政府機関によって規定された形態であってもよく、ここで指示はまた該機関によるヒトへの投与についての製造、使用または販売の承認を反映することができる。
このキットは、１または２以上の容器に本明細書に記載した任意の構成の１または２以上を含めてよい。例として、１つの態様において、キットは、１つまたは２以上のキットの構成を混合しおよび／または単離してサンプルを混合し、対象に適用する指示を含んでよい。このキットは、本明細書に記載の剤を収容した容器を含みうる。剤は、無菌的に調製し、シリンジ内に包装し、冷蔵出荷してよい。代替的に、貯蔵用のバイアルまたは他の容器に収容されてよい。第二の容器は、無菌的に調製された他の剤を含んでよい。代替的に、キットは、シリンジ、バイアル、チューブ、または他の容器内であらかじめ混合して出荷された活性剤が含まれてよい。
キットには、ブリスターポーチ、縮小包装ポーチ、真空シール可能なポーチ、シール可能な熱成形トレイ、または類似のポーチやトレイのフォーム、パウチ内に緩くパックされたアクセサリー、１つまたは２つ以上のチューブ、容器、箱または袋と共になど、様々な形態を有していてよい。キットはアクセサリーを追加した後に滅菌されてよく、それによって容器内の個々のアクセサリーが別に包装しないようにできる。キットは、放射線滅菌、熱滅菌、または当該分野で公知の他の滅菌方法など、任意の適切な滅菌技術を使用して滅菌することができる。キットはまた、特定の適用に依存して、例えば、容器、細胞培地、塩、バッファ、試薬、シリンジ、針、消毒剤を適用または除去するためのガーゼなどの布、使い捨て手袋、投与前の剤のサポートなど、他の構成を含めてよい。
キットの組成物は、例えば、液体溶液として、または乾燥粉末としてなど、任意の好適な形態として提供することができる。提供される組成物が乾燥粉末の場合、粉末は、それもまた提供されてもよい、好適な溶媒を添加することによって再構成されてよい。組成物の液体の形態が使用される態様において、液体の形態は、濃縮されていてもすぐに使用できてもよい。溶媒は、化合物および使用または投与のモードに依存する。剤組成物の好適な溶媒はよく知られており、文献で利用可能である。溶媒は、化合物および使用または投与のモードに依存する。
キットは、１セットの態様において、厳密な閉じ込めの中で受け取るように区分されていることを意味する担体、バイアル、チューブなどを意味する１つまたは２以上の容器を含んでよく、それぞれの容器が本方法で用いられる１つの分離した要素を含むことを意味する。例えば、容器の１つは、アッセイのポジティブコントロールを含んでよい。さらに、本キットは、例えばアッセイに有用なバッファなど、他の構成用の容器を含んでよい。
本発明はまた、完成したパッケージとラベルされた医薬品を包含する。この製造品は、ガラスバイアルまたは密閉的に封印された他のコンテナのような適切な器または容器内の適切な単位投与形態を含む。非経口投与に適した剤形のケースにおいて、有効成分は、無菌で微粒子フリーな溶液として投与に好適である。言い換えれば、本発明は、非経口溶液と凍結乾燥粉末の両方を包含し、それぞれは滅菌され、後者は注射前に再構成されるのに好適である。代替的に、単位投与形態は経口、経皮、局所または経粘膜投与に好適な固体であってよい。
好ましい態様において、単位投与形態は、静脈内、筋肉内または皮下送達に好適である。従って、本発明は、各送達経路に好適な、好ましくは無菌な溶液を包含する。
別の好ましい態様において、本発明の組成物は、これに限定するものではないが、レシチン、タウロコール酸、およびコレステロールを含む生体適合性デタージェントと共に、またはこれに限定するものではないが、ガンマグロブリンと血清アルブミンを含む他のタンパク質と共に容器中に保存される。より好ましくは、本発明の組成物は、ヒトへの使用についてヒト血清アルブミンと共に貯蔵され、獣医学用途についてウシ血清アルブミンと共に貯蔵される。
任意の医薬品と同様に、包装材料及び容器は、貯蔵および輸送中に製品の安定性を保護するために設計される。さらに、本発明の製品は医師、技術者や患者に、問題の疾患または障害をどのように適切に予防または治療するか助言するための使用説明書またはその他の情報材料が含まれる。言い換えれば、製造品は、これに限定するものではないが、実際の投与量、モニタリング手順およびその他のモニタリング情報を含む投与レジメンを示唆または提案することを意味する指示を含む。
より具体的には、本発明は、箱、ボトル、チューブ、バイアル、容器、噴霧器、吸入器、静脈内（ｉ．ｖ．）バッグ、封筒などの包装材、および前記包装材料の内に含まれる薬剤の少なくとも１つの単位投与形態を含む製造品を提供する。本発明はまた、箱、ボトル、チューブ、バイアル、容器、噴霧器、吸入器、静脈内（ｉ．ｖ．）バッグ、封筒などの包装材、および前記包装材料の内に含まれる各薬剤の少なくとも１つの単位投与形態を含む製造品を提供する。本発明はさらに、箱、ボトル、チューブ、バイアル、容器、噴霧器、吸入器、静脈内（ｉ．ｖ．）バッグ、封筒などの包装材、および前記包装材料の内に含まれる薬剤の少なくとも１つの単位投与形態を含む製造品を提供する。本発明はさらに、製剤の注射のための、好ましくは無菌の形態の、針またはシリンジおよび／またはパッケージ化されたアルコールパッドを含む製造品を提供する。
特定の態様において、製造物は、包装材ならびにその中に含まれている薬剤および指示を含み、該薬剤は、ＨＤＡＣ２阻害剤および薬学的に許容可能な担体であり、前記指示が、アルツハイマー病などの認知障害を有する対象を予防、処置または管理する投与レジメンを示唆する。
治療モニタリング：例えば投与量、スケジュール、アジュバントの選択など、選択された処置パラメータの妥当性は、記憶をモニタリングする従来の方法によって決定される。加えて、患者の臨床的状態を、例えば認知機能における増大など所望の効果のためにモニターすることができる。不十分な効果が達成されている場合、患者をさらなる処置で強化することができ、本発明の組成物および／または他の活性剤の量を増大させることにより、あるいは投与経路を変化させることにより、処置パラメータを修飾することができる。
本発明は、以下の例によってさらに描写されるが、これはいかなる方法でもさらに限定するものとして解釈されるべきではない。両方とも発明者が重複している米国特許出願１１／９９８，８３４および米国仮出願６１／１１９，６９８の例、データおよび図は、本明細書に参照として組み込まれる。
例
方法
環境強化：4匹までのマウスを連続的に、自発的なランニングのための２つの車輪と、トンネルを作製するための様々なおもちゃ（Petcoから入手）およびよじ登りデバイスを含むケージに収容した。食料と水は自由摂取であった。食べ物は、睡眠中は隠していた。おもちゃと実行中の車輪は毎日変更した。
カニューレ挿入と注入：マイクロカニューレは側脳室に挿入した。 酪酸ナトリウム（Sigma; St. Louis, MO）は人工脳脊髄液（ａＣＳＦ）に溶解した。ＴＳＡ（Sigma）のストック溶液をＤＭＳＯに溶解し、注入前にａＣＳＦで希釈した。
ＨＤＡＣ過剰発現動物の生成：マウスＨＤＡＣ１またはＨＤＡＣ２コーディング配列は、Ｔａｕ遺伝子のエクソン１に置き、内因性の開始コドンのインフレームで、それによりＴａｕの最初の３１アミノ酸を含む融合タンパク質を作製した。ＨＤＡＣ２ＫＯはＲ．Ａ．Ｄ．の実験室で産生され、Ｃｒｅを介した組換えがＨＤＡＣタンパク質の鍵となる触媒コアをコードするエクソン５および６を削除するように、ｌｏｘＰ組換え部位を含むように遺伝子操作された。
化学送達：酪酸ナトリウム（sigma）は、生理食塩水に溶解した。ＨＤＡＣ阻害剤は、５０ｍｇ／ｍｌでＤＭＳＯに溶解し、注射（１００μｌ〜１５０μｌ、ｉｐ）する直前に、生理食塩水で希釈した。
イムノブロッティングおよび染色：イムノブロッティングのための溶解物を本明細書に記載したように調製した（Fischer, A. et al. Recovery of learning and memory is associated with chromatin remodeling. Nature 447 (7141), 178-182 (2007)も参照）。簡潔には、ヒストンを単離するために、脳組織は、ＴＸ−バッファ（５０ｍＭのトリスＨＣｌ、１５０ｍＭのＮａＣｌ、２ｍＭのＥＤＴＡ、１％のTriton-100）中でホモジナイズし、４℃で１５分間インキュベートした後、２０００ｒｐｍ（４００ｇ）で１０分間遠心分離した。ＴＸ−バッファでの洗浄ステップの後、ペレットを、０．２ＭのＨＣｌを含むＴＸ−バッファに溶解し、氷上で３０分間インキュベートし、１００００ｒｐｍ（９３００ｇ）で１０分間の二回目の遠心分離をした。上清をイムノブロッティングに使用した。イムノブロットのデータは、ＮＩＨのイメージングソフトウェアとUN-SCAN-itゲルデジタル化ソフトウェア（Silk Scientific）を使用して、バンドの強度を測定することにより定量化した。免疫染色は、LSMeta10ソフトウェアと共焦点顕微鏡（Zeiss）を使用して、本明細書に記載のように行った（Fischer, A. et al. Recovery of learning and memory is associated with chromatin remodeling. Nature 447 (7141), 178-182 (2007)も参照）。
ＨＤＡＣ１の過剰発現（ＯＥ）マウス用遺伝子ターゲティング構築物：〜１２００ｎｔの長さのマウスＨＤＡＣ１ ｃＤＮＡを脳ｃＤＮＡライブラリーから増幅し、シークエンシングにより確認した。次にｃＤＮＡを、ＳｐｅＩの平滑末端ライゲーションでｐＣ８Ｎ２のポリアデニル化（ｐＡ）シグナルの上流にクローニングし、続いてＨＤＡＣ１−ＰＡをｐＢＳＫ（Stratagene）にクローニングした。ｐＧＫｎｅｏＬｏｘＰの配列は、ｐＢＳＫのＨＤＡＣ１−ｐＡの下流であるＸｈｏＩ−Ｋｐｎ１部位に、方向性をもって挿入した。ＨＤＡＣ１−ｐＡ−ｎｅｏをＸｍａＩ−Ａｃｃ６５で放出し、Ｔａｕ遺伝子のエクソン１にインフレームでクローニングした。Ｔａｕターゲッティングアームは、ｐＴａｕＫＲから取得し、独自のＮｃｏＩサイトにＸｍａＩとＢｓｉＷＩリンカーを挿入することによって修飾した。Ｔａｕのエクソン１とＨＤＡＣ１コード配列のインフレーム融合を含む得られたターゲティングベクター（ｐＴＨ１）はシークエンシングにより確認した。３〜６カ月齢のマウスを行動テストとさらなる分析のために用いた。
ＨＤＡＣ２の過剰発現（ＯＥ）マウス用遺伝子ターゲティング構築物： マウスＨＤＡＣ２ ｃＤＮＡは、マウスの脳組織からＲＴ−ＰＣＲを用いて得た。それをシークエンシングし、ＴＯＰＯ−ＴＡベクター（Invitrogen）のＸｈｏＩ−ＥｃｏＲ１サイトにサブクローニングした。 ｐＴＨ１ターゲティングベクター（上記）をＳｍａＩ−ＳａｌＩで切断し、ＨＤＡＣ１を放出した。ＨＤＡＣ２のｃＤＮＡをＥｃｏＲＩ−ＸｈｏＩでＴＯＰＯ−ＴＡから切り出し、ｐＴＨ１のＳｍａＩ−ＳａｌＩ部位にクローニングし、ｐＴＨ２ターゲティングベクターを作製した。Ｔａｕのエクソン１へのＨＤＡＣ２のインフレーム融合は、ｐＴＨ２のシークエンシングにより確認した。
ターゲティングベクターｐＴＨ１とｐＴＨ２をＳａｃＩで直鎖状にし、Ｖ６．５（１２９ＸＣ５７ＢＬ／ ６）Ｆ１胚性幹（ＥＳ）細胞株にエレクトロポレーションした。我々は９６のネオマイシン耐性クローンを選び、そのうち４６をサザンブロットで分析した。我々は、ＢａｍＨＩ部位（左）およびＥｃｏＲＩ（右）で消化後、３’外部プローブのみを使用した。野生型クローンは８．８〜ｋｂのバンドを呈示した。標的対立遺伝子は、正しいターゲットイベントで１３ｋｂまでのバンドシフトの結果となり、５個のクローンが正しく標的としていた。２つのクローンを使用して、（ＤＢＡ／２ＸＣ５７ＢＬ／６）Ｆ１の胚盤胞に注入してキメラを生成した。キメラは、雌のＣ５７ＢＬ／６と交配し、子孫が生殖系伝達について分析した。ヘテロ接合性ノックイン株を混合バックグラウンドで維持し、それらを交配してホモ接合性動物を得た。３〜６カ月齢マウスを行動テストとさらなる分析のために使用した。
ＨＤＡＣ２ＫＯマウスの作製：ＨＤＡＣ２のｌｏｘＰ導入（floxed）対立遺伝子を、Ｃｒｅリコンビナーゼ媒介性の削除後にタンパク質のＨＤＡＣ触媒コアの削除を保証する、ｌｏｘＰ組換え部位とエクソン５とエクソン６に隣接することによって生成した。ＥＳ細胞へのターゲティングの成功と、その後のキメラマウス誘導の成功により、我々は、ＨＤＡＣ２のｌｏｘＰ導入対立遺伝子（Ｈｄａｃ２Ｌ）（ＦＶＢ）を担持するマウス系統を確立した。のＣｒｅ−リコンビナーゼを発現するレトロウィルスによるマウス胚線維芽細胞の感染は、ＨＤＡＣ２ｌｏｘＰ導入対立遺伝子を担持する２つのＭＥＦでのみＨＤＡＣ２の完全切除をもたらした。これはｌｏｘＰ導入ＨＤＡＣ２対立遺伝子が機能しており、Ｃｒｅ−リコンビナーゼの発現によりＨＤＡＣ２ヌル遺伝子型が得られたことを示す。ＥＩＩａ−Ｃｒｅまたはネスチン−Ｃｒｅトランスジェニックマウスを用いた生殖系列におけるＨＤＡＣ２の削除は、１年齢まで明らかな組織学的異常を有さない生存可能で繁殖性のＨＤＡＣ２＋／−マウスとなった。ＨＤＡＣ２＋／−マウスの交雑は生存可能なＨＤＡＣ２欠損マウスをもたらしたが、これらのマウスは通常のメンデル比率から予想されるより２倍も低い頻度（７９の同腹のマウスのうち９のＨＤＡＣ２−／−マウス、期待値は７９のうち２０）で生まれた。ＨＤＡＣ２−／−マウスは生存可能であり、子孫を産生することができるものの、その繁殖性は損なわれている（データは示さず）。ＨＤＡＣ２−／−マウス（雄と雌）は、野生型およびヘテロ接合体同腹子と比較して約２５％小さかった（データは示さず）。行動テストに使用される動物はＦＶＢｘＣ５７／ＢＬ６バックグラウンドにあり、相互に交配してホモ接合動物を得た。３〜６カ月齢のマウスを行動テストとさらなる分析のために使用した。雄と雌とのの間で行動テストに違いはなかった。
恐怖条件付けテスト：文脈依存的恐怖条件付け。訓練は、条件付けボックス（文脈）にマウスを３分曝露し、続いてフットショック（２秒、０．５／０．８／１．０ｍＡの定電流）を与えることで構成されていた。記憶テストは、２４時間後に、条件付けの文脈に３分間マウスを再曝露することにより行われた。うずくまり姿勢に関連する心拍と呼吸以外の運動の欠如として定義されるすくみは、２人の訓練を受けた観察者（１人は実験条件の知らされていない）により１０秒ごとに３分間（１８サンプリング間隔の合計）記録された。両方のオブザーバーからの平均として得られるすくみを示す観測値の数を観測値の総数の割合として表した。
短時間記憶テストでは、記憶テストは、フットショックの訓練後３時間で実施された。
音刺激依存的恐怖条件付け。訓練は、訓練は、条件付けボックス（文脈）にマウスを３分曝露し、続いて音刺激［３０秒、２０ｋＨｚ、７５ｄＢの音圧レベル（ＳＰＬ）］およびフットショック（２秒、０．８ｍＡの定電流）で構成された。記憶テストは、新たな文脈に続いて、さらに音刺激（１０ｋＨｚ、７５ｄＢのＳＰＬ）への３分の曝露することにより、２４時間後に行われた。すくみは、上記のように、２人の偏りのない観察者によって１０秒ごとに記録された。
モリスの水迷路試験：水迷路のパラダイムは、不透明な水で満たされた円形のタンク（直径１．８ｍ）で行われた。プラットフォーム（１１×１１ｃｍ）を標的象限の中央の水面下に沈めた。マウスの水泳経路は、ビデオカメラで記録し、Videomot2ソフトウェア（TSE）により分析した。各トレーニングセッションについて、マウスはタンクの４つのランダムな点から継続的に迷路に置かれた。マウスは６０秒間プラットフォームを探すことができた。マウスが６０秒以内にプラットフォームを見つけられなかった場合、穏やかにそこに導かれた。マウスは１５秒間プラットフォーム上にいることができた。毎日２つのトレーニングの試験が行われ、各試験の潜時が分析のために記録された。記憶テスト（プローブテスト）の間、プラットフォームをタンクから除去し、マウスは６０秒間迷路の中で泳がせた
高架式Ｔ字迷路上の空間的作業記憶：マウスは、自由摂食時重量の８５%に制限した給餌スケジュールで維持した。空間的作業記憶は、最初の上昇プラスチックＴ字迷路で評価した。これは、スタートアーム（４７×１０センチ）と２つの同一の目標アーム（３５×１０ｃｍ）から成り、１０センチの高さの壁に囲まれていた。プラスチック製の食餌ウェルはそれぞれのゴールのアームの端から３ｃｍに位置していた。迷路は、様々な顕著な遠位の迷路外手がかりが含まれている十分明るい研究室の床面上１メートルに位置していた。空間的場所非見本合わせ試験の前に数日間にわたって、マウスを迷路に慣らし、甘いコンデンスミルクを飲ませた。
各試験は、サンプル試行と選択試行で構成された。サンプル試行において、マウス擬似ランダムシーケンス（セッションあたりの左と右の順番が等しい数となり、２回を越えて連続して同じ方向はない）にしたがって、プラスチックのブロックの存在によって左右どちらかを余儀なくされた。０．０７ミリリットルの甘いコンデンスミルク（水で５０分の５０に希釈）からなる報酬は、アームの端の食餌ウェル利用可能であった。ブロックを除去し、マウスをスタートアームの端に、実験者に向かって置き、どちらかのアームの自由な選択を許された。サンプル試行と選択試行の間の時間間隔は約１５秒であった。動物は、前回未訪問であったアーム（すなわち二者択一のため）を選択する方に報酬が与えられた。マウスは、約１０分の試験間間隔（ＩＴＩ）で一度に１つの試験を試行した。それぞれの毎日のセッションは、４試験で構成され、そしてマウスは、合計で２４の試験を受けた。
化学物質投与：ＷＯ９３／０７１４８、ＰＣＴ／ＵＳ９２／０８４５４で前述したように、スベロイルアニリドヒドロキサム酸（ＳＡＨＡ）を合成した。酪酸ナトリウムはSigma（cat.B5887）から購入した。ＳＡＨＡとＷＴ−１６１は、ストック溶液としてＤＭＳＯに溶解し、注射の直前に生理食塩水で希釈した。酪酸ナトリウムは、生理食塩水で調製した。マウスは、１０日または２１日間の毎日、ＳＡＨＡまたは生理食塩水のいずれかの腹腔内注射を受けた。
ゴルジ含浸：ゴルジ−Ｃｏｘ染色した脳をビブラトームで２００μｍ厚の横断面にカットし、Zeiss 200 Axiovert顕微鏡とOpenlabソフトウェアを用いて分析した。海馬のＣＡ１錐体ニューロンにおいて突端棘突起および基底棘突起の数を、遺伝子型を隠して計数した。各実験群について、スライスごとに最小で１０細胞（動物の数ｎ＝３）の値を分析した。−１．４ｍｍ〜−１．６ミリメートル（ブレグマからの相対位置）までの領域内のＣＡ１海馬ニューロンを分析のために含めた。
ウィルス媒介性棘突起ラベリング：ＨＳＶ（０．５μｌ、Rachael Neve氏より寄贈）を発現するトマトは０．０５μｌ／ｍｉｎの速度でＣＡ１領域や海馬歯状回の両側にステレオ注入した。マウスは注射後４８時間にサクリファイスした。脳を４％ＰＦＡで固定し、ビブラトーム（５０μｍ、Leica）で切片化した。海馬切片は、共焦点顕微鏡で走査した。得られた画像の重ね合わせは、image Jを使用して再構築し分析した。
免疫組織化学：免疫組織化学的分析は、既述（Guan, J.S., et al., Cell, 2005. 122(4): p. 619-31）のように実施した。抗体は１：１０００の濃度で使用された。抗ＨＤＡＣ１、および抗ＨＤＡＣ２抗体は、Abcamから購入した。抗−Ａｃ−リジン、抗−Ａｃ−Ｈ４Ｋ５、抗−Ａｃ−Ｈ４Ｋ１２、抗−Ａｃ−Ｈ３Ｋ１６、抗ＣＲＥＢ、抗ＡＫＴおよび抗ＣａＭＫＩＩα抗体はCell Signalingから購入した。抗−Ａｃ−α−チューブリン（Ｋ４０）、抗アクチンおよび抗シナプトフィジン（ＳＶＰ−３８）抗体は、Sigmaから購入した。抗ＮＲ２Ａと抗ＮＲ２Ｂは、BD Biosciencesから購入した。抗β−カテニン、抗ＥＧＲ１、抗ｃ−ＦＯＳ、抗Ｂｒｎ１、抗ＴＬＥ４、抗ＣＤＰ、抗ＥＲ８１と抗ＧＡＰＤＨ抗体は、Santa Cruzから購入した。抗ＮｅｕＮ抗体はChemiconから購入した。共焦点画像（１μｍ）は、走査され、三次元再構成を行った。 LSMeta10ソフトウェア（Zeiss）は、平均シナプトフィジン強度を計算するために使用された。最も強い強度の脳切片を最初に走査した。分析に含まれる他の全ての画像を同じ設定を用いて走査した。染色はLSMeta10ソフトウェア（Zeiss）を用いて定量した。
タンパク質の抽出およびイムノブロッティング：海馬および前脳を回収し、ＲＩＰＡバッファ中で溶解した。溶解物を氷上で１５分間インキュベートし、１５，０００×ｇ、４℃で１５分間遠心分離した。上清を細胞質タンパク質抽出液として収集した。溶解液は、１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥで免疫ブロッティングを行った。
ヒストンタンパク質の抽出：海馬のサンプルを収集し、４００μｌのＴＸ−バッファ（５０ｍＭトリス−塩酸、ｐＨ８．５、５ｍＭの酪酸ナトリウム）中でホモジナイズした。ペレットを０．２Ｍ塩酸／ＴＸバッファに再懸濁し、３０分間氷上でインキュベートした。サンプルは１４０００ｒｐｍでスピンダウンし、ヒストンを含む上清をウェスタン分析に供した。
電気生理学的解析：３〜６ヶ月齢のＨＤＡＣ２ＯＥ、ＨＤＡＣ２ＫＯまたはその同腹子を頸椎脱臼によって殺処分し、海馬をすばやく氷冷酸素添加人工ＣＳＦ（ＡＣＳＦ）内で解体した。厚さ４００μｍの横方向海馬スライスは、チャンバー内に置き、継続的に酸素添加されたＡＣＳＦで灌流した。放線層に置かれた双極刺激電極（０．００２インチ径ニクロム線、A-M Systems）を、ＣＡ３軸索に活動電位を誘発するために用いた。０．５および３ＭΩとの間の抵抗値を有するＡＣＳＦで満たされたガラス管微小電極は、ＣＡ１の放線層領域に置かれ、フィールド興奮性シナプス後電位（ｆＥＰＳＰ）を記録するために用いた。データは、HEKA EPC10を使用して取得し、patchmaster（HEKA）により分析した。刺激からピークｆＥＰＳＰ振幅は少なくとも２ｍＶとする必要があり、刺激強度は最大反応の４０%を産生するように設定した。ベースライン応答を２０分間記録した。低頻度（毎分２回）でシェファー側枝を刺激することにより、ＣＡ１シナプスでｆＥＰＳＰを惹起し、安定したベースラインを確立した。高頻度刺激（ＨＦＳ、１００Ｈｚ、１秒）によるＬＴＰ誘導の直後、ＨＤＡＣ２ＯＥとコントロールマウスからのスライスはｆＥＰＳＰ勾配および振幅の増加を示し、全てのグループにおける短期増強（ＳＴＰ）を示唆した。ＨＤＡＣ２ＫＯとコントロールＷＴスライスの場合は、ＬＴＰは、１００Ｈｚ、１秒の１連の刺激を適用することによって誘導された。ＨＤＡＣ２ＯＥとそのコントロールＷＴスライスの場合は、１００Ｈｚ、１秒の２連の刺激を２０秒間の間隔で適用することによってＬＴＰが誘導された。
培養神経細胞のＥＧＲ−１発現アッセイに基づくイメージング： ＥＧＲ１−ＧＦＰ ＢＡＣトランスジェニックマウス（Genesat Project）の胚性皮質（embryonic cortici）（Ｅ１７）を標準的な手順で単離し、トリプシン／ＤＮＡｓｅ消化で粉砕した。皮質ニューロンをポリ−Ｄ−リジン（Costar）でコートした黒色／透明底プレートに１ウェルあたり１０，０００細胞の密度でneurobasal培地（１．６％Ｂ２７、２％グルタミン、１％ｐｅｎ／ｓｔｒｅｐおよび熱で不動化した５％のウシ胎児血清）中および２４時間後に血清のないneurobasal培地中に播種した。これらの培養条件下で、グリア細胞の割合は、５〜２５の範囲内と推定された。６日目に、ＨＤＡＣ阻害剤またはＤＭＳＯコントロールを、（三連または四連）を約３０時間培養物に加えた。ＢＤＮＦ、ＫＣｌまたはフォルスコリンは、７日目に８時間培養物に加えた。
細胞をＰＢＳ中４％ＰＦＡ／４％スクロースで固定した。固定液をＰＢＳで洗い流し（３回の洗浄サイクル）、ＥＧＲ１−ＧＦＰイメージングのために処理した。細胞（ウェルあたり３０００〜５０００）は、Cellomics ArrayScanの画像システムを用いて５倍の対物レンズでイメージングおよび分析をした。内蔵のTargetActivationアルゴリズムは、ヘキスト色素を使用して細胞をマークし、セル当たりの平均ＥＧＲ１−ＧＦＰ（ウェルあたり細胞あたりの平均蛍光強度）を計測するのに最適化された。データはコントロール（培地添加）に対して正規化した。
イメージング後、細胞を抗体染色のために処理した：細胞を０．２５％ＴｒｉｔｏｎＸ１００（１０〜１５分）で透過処理した。トリトンは３回のＰＢＳ洗浄サイクルによって洗い流し、細胞を１０％のヤギまたはウマ血清を含むＰＢＳでブロッキングした（１時間、３７℃）。細胞は、抗アセチルリジン−ヒストンＨ３またはＨ４抗体に曝露した。その後、ＰＢＳで５回洗浄し、Ａｌｅｘａ５９４に抱合した二次抗体、およびヘキスト（１時間、ＲＴ）で処理した。二次抗体をＰＢＳで５回洗浄し、Cellomics ArrayScan Image systemでアッセイした。
クロマチン免疫沈降（ＣｈＩＰ）：ＣｈＩＰは、４％ＰＦＡ液で固定され、使用前−８０℃で貯蔵されているマウス前脳を用いて行った。脳は、１０分の１量の新鮮な１１％のホルムアルデヒド溶液を室温で１５分間添加することにより化学的に架橋され、ホモジナイズし、再懸濁し、溶解バッファ中で溶解し、超音波処理して架橋ＤＮＡを可溶化およびせん断した。超音波処理の条件は、細胞、培養条件、架橋、および機器に依存して変化する。我々はMisonix Sonicator 3000を使用し、サンプルを氷浴に浸漬したまま、パワー７で、４℃、１０×３０秒パルス（パルス間で９０秒休止）で超音波処理した。得られた全細胞抽出液を、適切な抗体１０μｇとプレインキュベートした１００μｌのDynal Protein G磁気ビーズと４℃で一晩インキュベートした。ビーズをＲＩＰＡバッファで５回、５０ｍＭのＮａＣｌを含むＴＥで１回洗浄した。結合複合体を６５℃で加熱しながら時折ボルテックスしてビーズから溶出させ、６５℃で一晩インキュベーションすることにより架橋を逆転させた。全細胞抽出液のＤＮＡ（超音波処理のステップから確保）もまた、架橋の逆転処理をした。免疫沈降したＤＮＡと細胞全体の抽出ＤＮＡを、ＲＮａｓｅＡ、プロテイナーゼＫで処理し、複数のフェノール：クロロホルム：イソアミルアルコール抽出によって精製した。精製したＤＮＡサンプルは、正規化し、ＰＣＲ分析を行った。プルダウンに使用された抗体は：抗HDAC1（＃31263）、抗HDAC2（＃12169）、Abcamから；抗AcH4（＃06-866）、抗AcH3（＃06-599）Upstateから。ＩＰの後、回収されたクロマチンの断片は、マウスの遺伝子のプロモーター領域（第１エクソンに近い開始コドンの上流の領域、）に対応する１５０〜２５０ｂｐのセグメントに特異的なプライマーペアを用いて３２から４０サイクルの半定量的ＰＣＲまたはリアルタイムＰＣＲを行った。
リアルタイムＰＣＲ：リアルタイムＰＣＲは、CFX96 reat-time PCR Detection system（BioRad）を用いてSYBR-Greenベースの試薬（Invitrogen、express SYBR GreenER）で実施した。免疫沈降したＤＮＡ断片の相対量を、比較ＣＴ法を用いて算出した。結果を入力したＤＮＡの連続希釈によって生成された標準曲線と比較した。データは３つの独立した増幅から得た。エラーバーは標準偏差を表す。
ＰＣＲに用いたプライマー配列：
統計解析：データは対応のないステューデントｔ検定と、一方向ＡＮＯＶＡ（ANalysis Of VAriance）によって分析した。一方向ＡＮＯＶＡ後の事後のシェフェのテストを、いくつかのグループからの平均値を比較するために採用した。エラーバーはＳ．Ｅ．Ｍ．を表す。
結果
例１：ＳＡＨＡは、文脈的恐怖条件付けの訓練と記憶テストの前１０日間、２５ｍｇ／ｋｇで腹腔内（ｉｐ）注射によって毎日投与した。驚くべきことに、生理食塩水処置群ではなくＳＡＨＡ処置群が、顕著にＨＤＡＣ２ＯＥマウスのすくみ行動を増加させた（６６．７±５．１％、ｎ＝１２；２６．９±５．９、ｎ＝１２、ｐ＜０．０００１、ＳＡＨＡ群対生理食塩水群、図１Ａ）。同じトレーニングのパラダイムで、ＳＡＨＡ処置がＷＴコントロールマウスのすくみ行動を４４．８±４．７％（ｎ＝１５、生理食塩水コントロール）から６３．９±４．２％（ｎ＝１２、ＳＡＨＡ処置）に増加させたことに留意すべきである。したがって、ＳＡＨＡ処置後のＨＤＡＣ２ＯＥマウスのすくみレベルは生理食塩水処置ＨＤＡＣ２ＯＥマウスが低いすくみ行動を示すという事実にもかかわらず、ＳＡＨＡで処理したコントロールマウスのものと同等であった。それらと合致して、ＳＡＨＡ治療はＨＤＡＣ２ＯＥマウスにおける低減した樹状棘突起とシナプスの表現型を完全に廃止する（図１Ｂ、Ｃ）。
次に、我々はＨＤＡＣ２ＫＯマウスにおけるＳＡＨＡの影響を調べた。 ＨＤＡＣ２ＫＯマウスは、処置なしでＷＴ同腹子に比べて著しく増加したすくみ行動を示したので、我々の記憶テストであり得る天井効果を防ぐために、足へのショック強度を１．０ｍＡから０．５ｍＡに低下させることによって、アッセイの感度を高めた。このパラダイムを使用して、我々は、ＳＡＨＡ処置（ｎ＝１０）が、生理食塩水処置（ｎ＝１０）と比較して、ＷＴコントロールマウス（４５．０±６．９％対２５．０±５．８％、図１Ｄ）において顕著に高いすくみ行動（Ｐ＝０．０３８３）を誘導することを見出した。しかし、ＳＡＨＡ処置は生理食塩水処置と比較してＨＤＡＣ２ＫＯマウスのすくみ行動を変化させなかった（５２．１±９．８％対４９．３±８．４％、Ｐ＝０．８３２４、各群に対してｎ＝８）（図１Ｄ）。さらに、ＣＡ１ニューロンの樹状棘突起の密度とＨＤＡＣ２ＫＯマウスの放線層におけるシナプトフィジン染色がそれほど顕著にはＳＡＨＡ処置（図１Ｅ、Ｆ）によって影響されなかった。一貫して、ＳＡＨＡ処置により適度にＷＴ海馬でのＬＴＰが増加したものの、それはＨＤＡＣ２ＫＯの海馬（図６）におけるＬＴＰに対しては検出可能な効果を有していなかった。従って、ＨＤＡＣ２ＫＯマウスでは、シナプス形成、およびＳＡＨＡにより誘発されるシナプス可塑性と記憶形成の円滑化に抵抗性である。これらの結果は、ＨＤＡＣ２は、それが記憶増強の誘発におけるＳＡＨＡの唯一の標的ではない場合であっても、主要なものであることを強く示唆している。
ＳＡＨＡは、最初に汎ＨＤＡＣｉであると報告されたが、最近の研究は、組換えＨＤＡＣを使用し、適切なクラス固有の基質を用いたin vitro脱アセチル化酵素アッセイでＳＡＨＡはクラスＩのＨＤＡＣとＨＤＡＣ６のより強力な阻害剤であるが、ＨＤＡＣ４、５および７などのクラスＩＩａには非常に弱いか阻害性がないことが明らかになっている。ＳＢはin vitroでＨＤＡＣ６の活性を阻害しないが、直接的にクラスＩＩｂの潜在的な重要性に対処するため、我々は選択的に阻害するＨＤＡＣ６が記憶の形成に何らかの影響があるかどうかを、ＨＤＡＣｉ ＷＴ−１６１（図２Ａ、Ｂ）を使用して試験した。α−チューブリン（Ｋ４０）脱アセチル化は、これらの実験で特異性のコントロールとしての役割を果たすＨＤＡＣ６の既知の非ヒストン基質である。ＷＴ−１６１は、海馬錐体細胞（図２Ｃ）のα−チューブリン（Ｋ４０）のレベルを増加したが、記憶形成には相関の増加（図２Ｄ）はなかった。この結果および観察されたＳＢおよびＷＴ−１６１の細胞選択性は、ＳＡＨＡによるＨＤＡＣ６阻害がＨＤＡＣｉ誘導性の記憶の増強に関与していないであろうことを示唆している。これらの合意の上、プロテオーム全体でのＳＡＨＡベースのアフィニティプローブの研究により、主な細胞標的としてＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２を同定した。したがって、クラスＩのＨＤＡＣ、特にＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２は、ＨＤＡＣｉ誘導性の記憶の増強のための潜在的なターゲットになり得る。
直接的に脳におけるＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２の生理的役割を評価するため、我々は、ＨＤＡＣ１またはＨＤＡＣ２を神経細胞に過剰発現させた２つのマウス系統を生成した。マウスＨＤＡＣ１またはＨＤＡＣ２コード配列をＴａｕ遺伝子のエクソン１に置き、内因性開始コドンとインフレームにし、それによってＴａｕの最初の３１個のアミノ酸を含む融合タンパク質を作製する。以前、タウ変異体のホモ接合性動物は、記憶テストでの野生型の同腹子と表現型的に区別できないことが示された。ホモ接合体の動物の脳におけるＨＤＡＣ１またはＨＤＡＣ２タンパク質の発現がＷＴマウスに比べて２〜３倍増加していることが、海馬および脳の他の領域（図３）で観察された。一貫して、全体的なアセチル化リジンレベルは、特に海馬体の錐体細胞において、ホモ接合ＨＤＡＣ１（ＨＤＡＣ１ＯＥ）とＨＤＡＣ２過剰発現マウス（ＨＤＡＣ２ＯＥ）で減少していた。我々は、ＨＤＡＣ２ＯＥマウスの脳において、アセチル化Ｈ４Ｋ１２、Ｈ４Ｋ５の低減が見出されたが、Ｈ３Ｋ１４は低減しないことを見出した（データは示さず）。対照的に、アセチル化α−チューブリン（Ｋ４０）のレベルはＨＤＡＣ１ＯＥまたはＨＤＡＣ２ＯＥマウスにおいて変化しなかった。したがって、ＨＤＡＣ１／２を過剰発現する動物は、野生型（ＷＴ）同腹子のそれに比べて脳における増加したヒストン脱アセチル化を示した。重要なのは、ＨＤＡＣ１／２過剰発現マウスにおける全脳の解剖学または神経細胞の位置には識別可能な違いはなく、それは、ＨＤＡＣ１／２の増加が脳の発達やニューロンの生存に明確に有害ではないことを示唆する。
脳溶解物からのウェスタンブロットが実行され、ＨＤＡＣ１やＨＤＡＣ２ホモ接合過剰発現マウスは、それぞれＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２の上方制御を示した（データは示さず）。ＨＤＡＣ１ＯＥとＨＤＡＣ２ＯＥマウスの海馬で、ヒストンアセチル化の減少が観察された。海馬ヒストン調製物からのサンプルも、ＨＤＡＣ１ＯＥマウスとＨＤＡＣ２ＯＥマウスにおけるリジンアセチル化の減少を（〜１６ＫＤａで）示した。
興味深いことに、短期記憶のテストでは、ＨＤＡＣ１ＯＥ、ＨＤＡＣ２ＯＥおよびＷＴコントロールの間での顕著な相違は、文脈および音刺激依存的恐怖の両方において訓練後３時間の学習で検出されなかった（図４Ｂ）。これらの観察は、神経系におけるＨＤＡＣ１ではなくＨＤＡＣ２−機能獲得が、連想的学習の損傷の結果となることを示唆している。エスケープ潜時と水泳のスピードは、可視型プラットホームテストにおいては、各群間で差は認められず（図４Ａ＆Ｂ）、これは様々な系統間で運動能と視覚機能が比肩していることを示す。これらの結果は、ＨＤＡＣ２ＯＥマウスの空間学習の著しい減少を明らかにした。さらに、ＨＤＡＣ１ＯＥではなくＨＤＡＣ２ＯＥマウスが、Ｔ字迷路での場所非見本合わせタスクにおける空間作業記憶の障害を示した（図４Ｈ）。従って、ＨＤＡＣ１ではなくＨＤＡＣ２の機能獲得が、海馬依存性記憶形成を損傷する。
ＨＤＡＣ２遺伝子のノックアウトは、連想的学習を強化する。さらに連想的学習におけるＨＤＡＣ２の役割を調べるために、ＨＤＡＣ２欠損マウス（ＨＤＡＣ２ＫＯ）をネスチン−Ｃｒｅトランスジェニックマウスを用いたｌｏｘＰ導入ＨＤＡＣ２対立遺伝子を持つマウスを交配することによって生成した。１年齢の年（図５）に明らかな組織学的異常を持つまで、ＨＤＡＣ２の生殖系列の削除が生存可能で繁殖性のＨＤＡＣ２＋／−となった。ＨＤＡＣ２＋／−マウスの交配により、ＨＤＡＣ２発現が脳において無効にされた、生存可能なＨＤＡＣ２欠損マウスをもたらした。
ＨＤＡＣ２ノックアウト（ＫＯ）マウスと対照マウスのすくみ行動、文脈依存の記憶テスト中には（ＨＤＡＣ２ＫＯ、ｎ＝１０、コントロール、ｎ＝１０）で検討した。ＨＤＡＣ２ＫＯマウスでは、増強された恐怖条件付けを示した。
ＨＤＡＣ２の損失は、脳の解剖学や細胞の位置の検出可能な変化につながるものではない。Ｈ４Ｋ５、Ｈ４Ｋ１２およびＨ２Ｂのアセチル化がＨＤＡＣ２ＫＯマウスの海馬で顕著に増加した。しかし、ヒストン調製物中のリジン残基の全体的なアセチル化は、わずかに減少していることが、アセチル化リジン抗体を用いたウエスタンブロット分析によって明らかとなった。これはＨＤＡＣ２ＫＯマウスにおいてＨＤＡＣ１の代償的に増大した結果かもしれない（図５Ｄ）。注目すべきは、文脈と音刺激に依存する恐怖条件付けパラダイム（ｐ＝０．００３６、ｐ＝０．００４７、図１２Ａ）において評価したように、トレーニング後２４時間でＷＴ同腹子（ｎ＝１１）と比較したとき、ＨＤＡＣ２ＫＯマウス（ｎ＝９）が著しく増大したすくみ行動を示したことである。短期記憶のテストでは、ＨＤＡＣ２ＫＯのマウス（ｎ＝９）は、文脈依存的条件付けにおいて、ＷＴの同腹子（ｎ＝８）と比較して増大したすくみ行動（ｐ＝０．０１０、図４Ｅ）を示した。これらのマウスの二群間では、自発運動や痛みの感覚に差は検出されなかった。したがって、ＨＤＡＣ２の機能損失が連想的学習を強化した。さらに、ＨＤＡＣ２ＫＯのマウスは、Ｔ字迷路の場所非見本合わせ試験（ｐ＝０．０２５、双方向ＡＮＯＶＡ、図４Ｇ）で、大規模な空間的ワーキングメモリーの改善を示した。これらのデータは、機能獲得研究と組み合わさって、ＨＤＡＣ２はネガティブにマウスの記憶形成を調節することが示唆された。
例２：ｐ２５誘導毒性に対するＨＤＡＣの過剰発現の保護効果を試験するためにin vitroアッセイを使用した。神経細胞はＥ１５．５の大脳皮質および海馬から解離させた。これらをＤＩＶ４でＰ２５−ＧＦＰとＦｌａｇ−ＨＤＡＣをコードするプラスミドでトランスフェクションした。トランスフェクション後２４時間、神経細胞を固定して、ＩＨＣのために処理した。ＨＤＡＣ１、５，６、７、１０は保護を示した（図７）。
要約すると、マウス遺伝モデルを使用して、我々は、ＨＤＡＣ１およびＨＤＡＣ２などのＨＤＡＣ、クラスＩＨＤＡＣを含むＨＤＡＣアイソフォームの機能を詳説し、ＨＤＡＣ２は記憶形成を調節するのにネガティブな役割を果たしているという証拠を示した。特に、我々は、学習や記憶を促進するＨＤＡＣｉの主要なターゲットとしてＨＤＡＣ２を同定した。我々の観察は、ＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２が、活性を制御する遺伝子のサブセットまたは可塑性および記憶に関与する遺伝子を違った形で制御するという考えを支持している。これは、ＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２が機能的ヘテロダイマーを形成すると報告された(Grozinger, C. M. & Schreiber, S. L. Chem Biol 9 (1), 3-16 (2002))事実を考えれば、予想外である。ここに説明したように、これは脳内のＨＤＡＣ１およびＨＤＡＣ２の異なる分布に起因すること可能性がある。代替的に、神経性ＨＤＡＣ２およびＨＤＡＣ１は、転写性コリプレッサーと異なる複合体を形成し、したがってクロマチンの異なる領域に濃縮されている。さらに、ＨＤＡＣ２は、記憶の形成に関し得る追加の非ヒストンタンパク質を、異なる形でターゲティングしてもよい。転写後修飾の違いなどの他の可能性もまた、ＨＤＡＣ１とＨＤＡＣ２の間の生化学的／機能的解離に寄与し得る。それはマウスのＨＤＡＣ１欠損は有害であり、結果として胚性致死となることに留意すべきである。我々は、また、神経性ＨＤＡＣ１の機能損失は、ＤＮＡ損傷および細胞死を引き起こすことを発見した。対照的に、ＨＤＡＣ２欠損マウスは生存可能であり、増強された記憶の形成を示す。これらの結果は、ＨＤＡＣアイソフォームの重要な異なる機能だけでなく、そしてそれ故に、その標的遺伝子または非ヒストン基質を明らかにし、そのことはまた、ＨＤＡＣ２は記憶増強に適したターゲットであるという知見を支持している。
例３：in vitro酵素阻害アッセイのデータ
複数のＨＤＡＣ阻害剤の酵素阻害活性を、既知のＨＤＡＣのアイソフォームのいくつかに対して測定し、結果を図８に示す。ＳＡＨＡを、参照混合クラスＩ−クラスＩＩ阻害剤として含む。ＢＲＤ−６９２９は、このクラスの化合物は、ＨＤＡＣ８またはクラスＩＩのＨＤＡＣ酵素を阻害しないことを示す。ＢＲＤ番号の化合物のすべては、化合物のオルト−アニリドクラスから派生している。このクラスからの化合物すべてが、クラスＩＩのＨＤＡＣと結合することが期待されているわけではない。
例４：非神経細胞株のin vitro細胞データ
標準的なウェスタンブロッティング法を、ＨｅＬａ細胞溶解物中のヒストンのアセチル化のマークにＨＤＡＣ阻害剤の効果を測定するために用いた。一連の化合物は１０μＭで、６時間の間全ＨＥＫ２９３細胞とともにインキュベートされた。ウェスタンブロットは、抗アセチルＨ４Ｋ１２抗体と西洋ワサビペルオキシダーゼ標識二次抗体をルミノールベース基質（図９）と一緒に用いて、ＤＭＳＯコントロールに対して増大したアセチル化レベルを示した。これは、これらのアナログの細胞性ＨＤＡＣ活性および特定のマーク、Ｈ４Ｋ１２でのアセチル化における増大を実証する。生のウェスタンデータ（図１０）の定量は、ＤＭＳＯコントロールと比較して、複数選択的プロファイルはＨ４Ｋ１２アセチル化のレベル向上に効果的であり、そのＨＤＡＣ１，２とＨＤＡＣ１，２，３選択的阻害剤が全細胞において特定のヒストン遺伝子座（Ｈ４Ｋ１２）上に強いＨＤＡＣ活性を有することを証明した。
ＢＲＤ−９８５３は、この細胞株では最小の活性を示した。ＢＲＤ−４０９７がネガティブコントロールであった。これは、最小のＨＤＡＣ阻害活性を有するベンズアミドである。
標準的なウェスタンブロッティング法を、ＨｅＬａ細胞溶解物中のヒストンのアセチル化のマークにおけるＨＤＡＣ阻害剤の効果を測定するために使用した。ＨｅＬａ細胞におけるウェスタンブロットの定量かおよびＨ４Ｋ１２アセチル化のレベルに対する化合物処置の効果が図１１に示されている。ＤＭＳＯコントロールと比較して、アセチル化の様々な程度が観察された。ＨＤＡＣ１，２、ＨＤＡＣ１，２，３選択的化合物はＨ４Ｋ１２遺伝子座でのアセチル化を増加させるのに有効であることがわかった。
例５：ＢＲＤ−６９２９の細胞性ＨＤＡＣ活性の機能的測定
図１２は、ＨＤＡＣ阻害剤で処理したマウスの脳から分離された初代線条体細胞のウエスタンブロットを示している。３つの独立したサンプル／セットの２つのデータセットが提示されている。ウェスタンの定量化を表すヒストグラムもまた示されている。ＤＭＳＯコントロールと比較して、ＢＲＤ−６９２９は、ヒストン遺伝子座Ｈ４Ｋ１２のアセチル化のレベルに顕著な影響を与える。ＢＲＤ−６９２９処置は、１および１０μＭにおいて５〜１０倍の増大の結果となる。ＢＲＤ−６９２９は、ＨＤＡＣ１，２選択的な化合物であり、ＨＤＡＣ１，２対ＨＤＡＣ３において２００倍の選択性を有している。これはＨＤＡＣ１，２選択的化合物が効果的にＨＤＡＣ２を阻害し、記憶、Ｈ４Ｋ１２に関連付けられているアセチル化のマークを増加させることができることを示している。この場合、データはコントロールと比較した：ＳＡＨＡとＢＲＤ−３６９６（ＣＩ−９９４）。ＨＤＡＣ１，２選択的化合物は、ＨＤＡＣ１，２，３阻害剤と汎阻害剤（すなわちＳＡＨＡ）と同様にアセチル化を増加させる時に有効である。ＨＤＡＣ１、２の阻害は、このヒストン遺伝子座での増加したアセチル化に影響するのに十分である。
図１３は初代線条体細胞における追加のアセチル化のマークを調べるウェスタンゲル分析の定量化を表すヒストグラムを示している。ＣＩ−９９４（ＢＲＤ−３６９６）とＳＡＨＡを含む４種類の化合物を試験した。ＤＭＳＯコントロールと比較して、ＢＲＤ−６９２９とＢＲＤ−５２９８は、大幅にテトラアセチルＨ４を増加している。両方の化合物はまた、Ｈ２Ｂのテトラアセチル化を増加する傾向を示している。ＢＲＤ−６９２９およびＢＲＤ−５２９８処置は、１および１０μＭにおけるマークの両方において、２〜５倍の増大の結果となる。このデータは、ＨＤＡＣ１，２特異的化合物（ＢＲＤ−６９２９、５９２８）がＨＤＡＣ２の阻害および学習および記憶に関連する特定のアセチル化の増大に効果的であることを実証する。
例６：神経細胞株におけるＢＲＤ−６９２９のin vitroのデータ（免疫蛍光分析）
材料と方法：
１日目：
１）化合物を３８４ウェルプレート（Abgene）から１８５ｎｌピンツールを用いて、ノータッチボトムプロトコルを用いて、ピン転送した。
２日目：後〜２４時間の化合物処置−
１）培地は、プレートウォッシャー（Tecan）プロトコルを使用して、〜５μｌの残量を残し、プレートの底に触れることなく）吸引し、または代替的に、１２チャンネルアスピレーターワンドで、ウェルを穏やかに吸飲して培地を除去した。
２）マルチチャンネルピペットやの液体操作システム（例えばCombi、標準のチューブ、低速）を、７５μｌのホルムアルデヒド（ＰＢＳ中４％）を追加するために使用し、ウェルは室温で１０分間インキュベートした。
３）ホルムアルデヒドを吸引し、細胞を１００μｌのＰＢＳで３回洗浄した。
４）ＰＢＳを吸引し、１００μｌのブロッキング／透過化バッファ（ＰＢＳ中０．１％のＴｒｉｔｏｎ−Ｘ１００、２％ＢＳＡ）を加え、室温でウェルを１時間インキュベートした。
５）ブロッキングバッファを吸引し、ブロッキング緩衝液で１：５００に希釈した５０μｌの一次抗体を添加し、そしてウェルを４℃で一晩インキュベートした。
３日目：
１）一次抗体を吸引し、ウェルを１００μｌのブロッキング緩衝液で３回洗浄した
２）二次抗体５０μｌを、１：５００に希釈し、Hoeschst（１：１０００から１０ｍｇ／ｍＬの（１６ｍＭ）ストック）を加え、ウェルの光退色を防止するために箔で覆い、室温で１．５時間インキュベートした。
３）ウェルを１００μｌのＰＢＳで３回リンスし、そしてＰＢＳ１００μｌを追加し、プレートを密封した
４）その後、プレートをAcumen/IX Microで読取った
５）プレートを４℃で保存した。
結果：
１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９は、脳の領域特異的初代培養（大脳皮質および線条体）の６時間のインキュベーションの後、全体の細胞数の増加または減少の原因とならなかった。１０μＭのでＢＲＤ−６９２９は、脳の領域特異的初代培養で６時間のインキュベーション（線条体）（図１４）後のＨ４Ｋ１２アセチル化の増加を引き起こす。１および１０μＭのＢＲＤ−６９２９とＢＲＤ−５２９８（ＨＤＡＣ１、２選択的阻害剤）は、初代神経細胞培養（図１５、図１６）で６時間のインキュベーション後に、Ｈ２Ｂアセチル化の顕著な増加を引き起こす。これは、ＨＤＡＣ１，２選択的化合物が特定のヒストン遺伝子座Ｈ２Ｂでのアセチル化を増加させるのに有効であることを示している。このヒストン遺伝子座のアセチル化の増加は、ＨＤＡＣ２の阻害または調節および学習および記憶に関連付けられている。我々の知る限り、特定の細胞型において、これらの特異的マークを引き起こすＨＤＡＣ阻害的選択性を有する化合物の報告はない。
例７：血漿および脳内のＢＲＤ−６９２９の濃度−時間曲線
図１７は、４５ｍｇ／ｋｇの単回投与ＢＲＤ−６９２９を、腹膜内注射を介して全身的に投与した後の薬物動力学的データの概要を表す。５分〜２４時間における、Ｃ−５７マウスの血漿および脳におけるＢＲＤ−６９２９についての濃度−時間曲線が示されている。このデータは、ＢＲＤ−６９２９は血液脳関門を横断し、脳全体で、ＨＤＡＣ１および２のＩＣ５０を超える濃度を達成することを実証する。脳Ｃｍａｘ（０．８３μＭ）およびＡＵＣ（３．９μＭ）レベルは、酵素阻害に必要なin vitroの濃度でも上記の効果がある。
例８：マウスの急性投与後の、学習および記憶に関連する脳の特定領域におけるアセチル化のマークの増加
ＢＲＤ−６９２９での急性処置や成体のオスのＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスの脳の特定の領域におけるヒストンアセチル化の対応する効果のための実験プロトコルを図１８に示す。特定の脳切片のウェスタンブロット分析のための粗タンパク質溶解プロトコル。
１．解剖のために、脳組織を凍結させる：
Ａ．氷上で凍結組織を解凍し、２５０μｌの氷冷した懸濁バッファ中で直ちに注意深くホモジナイズする。
（１００μｌは、約２〜３立方ミリメートルの組織のために使用され；必要に応じて調整）
１．５ｍｌの使い捨て乳棒（Fisher cat#03-392-100）
Ｂ．できるだけ早く、等量の２×ＳＤＳゲルローディングバッファを添加し、上下にピペッティングして混合する。
２．５分間９５℃にサンプルを置く。
３．スムーズに２３から２５ゲージの皮下注射針（２〜３倍）を介して、または簡単に超音波処理（Ａｌは、針の方法を使用して、問題なく動作した）して、粘性の染色体ＤＮＡをせん断する。気泡／発泡を避ける。
４．新しいチューブに上清を移す、室温で１０分間１０，０００ｇでサンプルを遠心する。
５．タンパク質濃度に基づいて、必要に応じて分注しサンプル。
懸濁バッファ：
０．１ＭのＮａＣｌ、０．０１ＭのＴｒｉｓＣｌ（ｐＨ７．６）、０．００１ＭのＥＤＴＡ（ｐＨ８．０）（ここまでのバッファは、室温で先に調製、貯蔵することができる）使用直前に、追加：１×ホスファターゼ／プロテアーゼ阻害剤カクテル（例：ThermoFisher"HALT"cat＃78440）
５ｍＭの酪酸ナトリウム（ＨＤＡＣ阻害剤）。
２×ＳＤＳゲルローディング緩衝液：
１００ｍＭのＴｒｉｓＣｌ（ｐＨ６．８）、４％ＳＤＳ、２０％グリセロール（ここまでのバッファーは室温で先に調製、貯蔵することができる）使用直前に、追加：２００ｍｍのジチオスレイトール（１Ｍストックから）５ｍＭの酪酸ナトリウム（ＨＤＡＣ阻害剤）。
結果：ＢＲＤ−６９２９は、マウスの皮質におけるテトラアセチル化Ｈ２Ｂのレベルの有意な増加を引き起こす（図１９）。これは、単回投与が全身的に与えられた後においても、ＢＲＤ−６９２９は大脳皮質におけるＨＤＡＣの機能的阻害剤であることを実証する。ＢＲＤ−６９２９はＨ２ＢＫ５のアセチル化レベルにおける１．５〜２倍の増加を引き起こす（図２０）。このアセチル化のマークの増加は、学習と記憶に関連付けられている。これらの実験は、ＢＲＤ−６９２９、ＨＤＡＣ１，２選択的阻害剤は、脳、および学習と記憶に関連する特定の脳領域にある細胞の核に入っていくことを示している。また、ＢＲＤ−６９２９はまた、学習と記憶の効果に関連付けられている特定のアセチル化のマークの増加を引き起こす。我々の知る限り、それはこのＨＤＡＣ１，２選択的阻害の高いレベルを持つ化合物が、脳内のアセチル化レベルの増加に有効であることは実証されていない。
例９：ＢＲＤ−６９２９の慢性投与後の全脳のアセチル化のマークの増加
ウェスタンのゲル分析は、ＢＲＤ−６９２９の毎日１０日間の慢性投与後であっても、ＢＲＤ−６９２９はマウスの脳におけるアセチル化のレベルに対して効果を発揮できることを示した。ウェスタンブロットは、ビヒクルコントロールと比較してテトラアセチル化Ｈ２Ｂの増加を示した（図２１）。これは、ＨＤＡＣ１，２選択的化合物が効果的に慢性投与後の脳内の特定のアセチル化のマークのアセチル化レベル（テトラアセチル化Ｈ２Ｂ）を増加させることができることを示している。
例１０：マウスの行動データ：改善された記憶と認知に対応する表現型
Ｃ５７／ＢＬ６ ＷＴマウスに１０日間ビヒクルまたはＢＲＤ−６９２９を注射した。１１日目に、マウスは文脈恐怖条件付けパラダイム（訓練は条件付けボックス（文脈、ＴＳＥ）へのマウスの３分の曝露および続くフットショック（２秒、０．８ｍＡの定電流）からなる）。訓練の１時間後、マウスにＢＲＤ−６９２９またはビヒクルを注入した。１２日目に、マウスは訓練ボックスに返され、すくみ行動を監視および記録された。
結果：１０日間毎日与えられたＢＲＤ−６９２９の４５ｍｇ／ｋｇ投与は、％すくみ時間で計測されたように、文脈的恐怖条件付けパラダイムにおけるマウスの記憶を改善した（図２２）。我々の知る限り、あらゆる条件下でも、ＨＤＡＣ１，２選択的化合物またはこのクラスの化合物におけるこの効果は以前には報告されていない。このＨＤＡＣ１，２選択的阻害剤が有効であることは全く予測不可能であった。
例１１：
（Ｅ）−３−（４−（（２−アセトアミドメチルアミノ）メチル）フェニル）−Ｎ−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）アクリルアミド（ＢＲＤ−９４６０）の合成
酢酸エチル（３．０グラム、３４．１ミリモル、１．０当量）およびエチレンジアミン（６．１４グラム、１０２ミリモル、３．０当量）の混合物を４日間室温で撹拌した。次いで、反応混合物を減圧下で濃縮した。生成物をフラッシュクロマトグラフィー（シリカゲル、１％アンモニア／４９パーセントＣＨ２Ｃｌ２／５０％ＭｅＯＨ）で精製して、黄色の油（２．０グラム、収率５７％）として、所望の生成物を得た。
４−ブロモベンズアルデヒド（９．２５グラム、５０．０ミリモル、１．０当量）、ｔｅｒｔ−ブチルアクリレート（８．０１グラム、６２．５ミリモル、１．２５当量）、トリエチルアミン（１０．１２グラム、１００ミリモル、２．０当量）、トリアセトキシパラジウム（０．１４グラム、０．５ミリモル、０．０１当量）およびトリ−ｏ−トリルホスフィンは、（０．６０９グラム、２．０ミリモル、０．０４当量）の混合物を窒素雰囲気下で２時間１００℃で加熱した。次に、反応混合物を水で希釈し、酢酸エチルで抽出した。水層をＨＣＬの１Ｍ水溶液でｐＨを約３に調整した。生成物を酢酸エチルで抽出した。混合有機層を濾過し、硫酸ナトリウム上で乾燥し、減圧で濃縮して、黄色固体（１０．３ｇ、８９％の収率）として所望の生成物を得た。
トリフルオロ酢酸（１００ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチルシンナメート（１０．３グラム、４４．３ミリモル）の混合物は、酸を室温で一晩攪拌した。溶媒を減圧下で蒸発によって除去した。得られた黄色の残渣を炭酸ナトリウムの飽和水溶液に溶解した。懸濁液を濾過し、濾液を白色の沈殿物を与えるためにＨＣｌの３Ｍ水溶液で処理した。沈殿物を濾別し、乾燥させて、白色固体（５．３グラム、収率６７％）として所望の生成物を得た。
ＤＭＦ（８００ｍＬ）中の４−ブロモ−２−ニトロアニリン（５０グラム、２３０．４ミリモル、１当量）の攪拌溶液に、ＤＭＦ（２００ｍｌ）中の６０％ＮａＨ（６．１グラム、２５３．４ミリモル、１．１当量）および（Ｂｏｃ）２Ｏ（６０．３グラム、２７６ミリモル、１．２当量）を０oＣで添加した。反応混合物を５時間室温で撹拌した。反応物を氷冷水に注ぎ、１時間攪拌した。得られた固体を濾過し、減圧下で乾燥させた。粗物質をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）により精製して、目的生成物を得た（４１．０グラム、収率５６％）。
ＤＭＥ（７ｍＬ）中の化合物ｔｅｒｔ−ブチル４−ブロモ−２−ニトロフェニルカルバメート（１グラム、３．１５ミリモル、１当量）の攪拌溶液に、チオフェン−２−イルボロン酸（０．４８グラム、３．７８ミリモル、１．２当量）、炭酸ナトリウム（１．０グラム、９．４６ミリモル、３．０当量）、テトラキス（トリフェニルホスフィン）パラジウム（０）（０．３６グラム、０．３１ミリモル、０．１当量）および水（３ｍＬ）を添加した。反応混合物を１８時間９０oＣで加熱した。反応物をＥｔＯＡｃおよび水で希釈した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。粗物質をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）により精製し、所望の生成物（０．５１ｇ、５０％の収率）を得た。
メタノール（２００ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−ニトロ−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（１２．０グラム、３７．５ミリモル、１当量）の溶液に、ヒドラジン一水和物（８０ｍＬ）および鉄（ＩＩＩ）塩化（０．３７グラム、２．２４ミリモル、０．０６当量）を添加した。反応物を１時間８０℃で攪拌した。次いで、反応物をセライト上で熱濾過し、減圧下で濃縮した。得られた残渣を水（５００ｍＬ）で希釈し、よく撹拌した。得られた固体濾過し、水、次いでヘキサンで洗浄し、乾燥した（１０．５グラム、収率９７％）。
ＴＨＦ中の（Ｅ）−３−（４−ホルミルフェニル）アクリル酸（１．０ｇ、５．６８ミリモル、１．０当量）、ｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（チオフェン−２−イル）フェニル（１．４８グラム、５．１１ミリモル、０．９当量）の混合物を、ＨＡＴＵ（２．２グラム、９．１３ミリモル、１．０当量）およびＤＩＰＥＡ（１．８グラム、２５．３ミリモル、４．４６当量）で処理した。得られた混合物を２０時間室温で撹拌した。溶媒を蒸発によって除去した。残渣を酢酸エチルで希釈し、水、次いで飽和食塩水で洗浄した。有機層を分離し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥し、減圧下で濃縮した。生成物を、カラムクロマトグラフィー（シリカゲル、５０％石油エーテル／５０％ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、黄色の固体（２．２ｇ、８６％の収率）として粗生成物を得た。
ジクロロエタン中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル２（３−（４−ホルミルフェニル）アクリルアミド）−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（０．１５グラム、０．３３ミリモル、１．０当量）およびＮ−（２−アミノエチル）アセトアミド（０．０７グラム、０．６７ミリモル、２．０当量）の混合物に、ＮａＢＨ（ＯＡｃ）３（０．４３グラム、２．０１ミリモル、６．０当量）を添加した。反応物を、２０時間室温で撹拌した。反応液を濃縮し、酢酸エチル（３０ｍＬ）を添加した。有機溶液を炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液（１０ｍＬ）、次いでブライン（１０ｍＬ）で洗浄し、有機層を減圧下で濃縮し、残渣をｐｒｅｐＴＬＣ（５％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）で精製し、白色の固体（０．０４グラム、２２％の収率）として所望の生成物を得た。
ジクロロメタン（４ｍＬ）中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−（３−（４−（（２−アセトアミドエチルアミノ）メチル）フェニル）アクリルアミド）−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカーバメート（０．０４グラム、０．０８ミリモル）の混合物を、トリフルオロ酢酸（１ｍＬ）で処理し、１時間室温で撹拌した。反応混合物を炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液でクエンチし、酢酸エチルで抽出した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。得られた黄色固体をＤＣＭ／ヘキサンで洗浄し、減圧下で乾燥した（０．０２グラム、５５．４％の収率）。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４３５（１００，Ｍ＋Ｈ），１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ９．４５（ｓ，１Ｈ），７．８７−７．７８（ｍ，１Ｈ），７．７０（ｓ，１Ｈ），７．６３−７．５２（ｍ，３Ｈ），７．４５−７．３２（ｍ，３Ｈ），７．２８−７．２０（ｍ，２Ｈ），７．０８−７．０２（ｍ，１Ｈ），６．８９（ｄ，Ｊ＝１５．５Ｈｚ，１Ｈ），６．７９（ｄ，Ｊ＝８Ｈｚ，１Ｈ），５．２２（ｓ，２Ｈ），３．７４（ｓ，２Ｈ），３．１４（ｄ，Ｊ＝６Ｈｚ，２Ｈ），２．６０−２．４２（ｍ，２Ｈ），１．７９（ｓ，３Ｈ）。
Ｎ１−（２−アミノ−５−（ピリジン−３−イル）フェニル）−Ｎ４−（２−（４−メチルピペラジン−１−イル）エチル）テレフタルアミド（ＢＲＤ−６５５１）の合成
ピリジン（５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（ピリジン−３−イル）フェニルカルバメート（０．５０グラム、１．７４ミリモル、１当量）［ｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメートと同様の方法で調製した］、４−（メトキシカルボニル）安息香酸（０．４７グラム、２．６２ミリモル、１．５当量）、およびＢＯＰ（１．４グラム、３．１６ミリモル、１．８当量）の混合物を、２０時間室温で撹拌した。溶媒を蒸発によって除去した。次いで、残渣を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液で希釈した。得られた固体を濾過した。粗生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、２％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の生成物を得た（０．６８グラム、８７％の収率）。
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中のメチル４−（２−（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニルアミノ）−５−（ピリジン−３−イル）フェニルカルバモイル）安息香酸（０．６８グラム、１．５２ミリモル、１当量）を、水（１０ｍＬ）中の水酸化リチウム（０．１８グラム、７．６０ミリモル、５．０当量）の溶液で処理した。反応物を室温で２時間攪拌した。反応物を濃縮し、次いで、水で希釈し、クエン酸でｐＨ約３に調整した。得られた固体を濾過して、次の反応で直接使用した（０．６１、９３％の粗収率）。
ＤＭＦ（４ｍＬ）中の４−（２−（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニルアミノ）−５−（ピリジン−３−イル）フェニルカルバモイル）安息香酸（０．２０グラム、０．４６ミリモル、１．０当量）、２−（４−メチルピペラジン−１−イル）エタンアミン（０．１３グラム、０．９２ミリモル、２．０当量）の混合物を、ＨＡＴＵ（０．３５グラム、０．９２ミリモル、２．０当量）およびＤＩＰＥＡ（０．２０ｍＬ、１．１５ミリモル、２．５当量）で処理した。反応物を２０時間室温で撹拌した。水を添加した。得られた固体を濾過し、乾燥させた。粗生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、３０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）により精製し、所望の生成物（０．１９グラム、収率７７％）を得た。
１，４−ジオキサン（２ｍＬ）中のＨＣｌの４Ｍ溶液を、メタノール（２ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−（４−（２−（４−メチルピペラジン−１−イル）エチルカルバモイル）ベンズアミド）−４−（ピリジン−３−イル）フェニルカルバメート（０．１０グラム、０．１８ミリモル、１当量）の攪拌溶液に０℃で添加した。次に反応物を室温まで加温し、２時間攪拌した。溶媒を蒸発により除去し、炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液を添加した。得られた固体を濾過し、真空下で乾燥させ、所望の化合物（０．０５グラム、収率６０％）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４５９（９６．６，Ｍ＋Ｈ），１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ９．８４（ｓ，１Ｈ），８．７９（ｄ，Ｊ＝１．５Ｈｚ，１Ｈ），８．５３（ｔ，Ｊ＝５．５Ｈｚ，１Ｈ），８．４４（ｄｄ，Ｊ＝４．０，１．５Ｈｚ，１Ｈ），８．０８（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，２Ｈ），７．９５（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，３Ｈ），７．５８（ｓ，１Ｈ），７．４２−７．３８（ｍ，２Ｈ），６．９０（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，１Ｈ），５．２３（ｂｓ，１Ｈ），３．４２−３．３６（ｍ，２Ｈ），２．５５−２．２０（ｍ，１０Ｈ），２．１５（ｓ，３Ｈ）．
当業者は、後述する他の化合物が、上記の手順と同様の方法で調製できることを認識するであろう。
Ｎ１−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）−Ｎ４−（２−（４−メチルピペラジン−１−イル）エチル）テレフタルアミド（ＢＲＤ−５２９８）を、ピリジン−３−イルボロン酸をチオフェン−２−イルボロン酸で置き換えることにより調製することができる。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４６４（９８．２７，Ｍ＋Ｈ）。
以下の４つの化合物は、２−（４−メチルピペラジン−１−イル）エタンアミンを２−フェニルエタンアミンで置き換えることおよび適切な安息香酸を活用することによって調製することができる。
Ｎ１−（２−アミノフェニル）−Ｎ４−フェネチルテレフタルアミド（ＢＲＤ−１７８３）、ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３５９（１００，Ｍ）。
Ｎ１−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）−Ｎ４−フェネチルテレフタルアミド（ＢＲＤ−８４５１）、ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４４２（９９．３４，Ｍ＋Ｈ）。
Ｎ１−（２−アミノ−５−（ピリジン−３−イル）フェニル）−Ｎ４−フェネチルテレフタルアミド（ＢＲＤ−０９８４）、ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４３７（９５．８５，Ｍ＋Ｈ）．
Ｎ１−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）−Ｎ４−（２−（ピリジン−４−イル）エチル）テレフタルアミド（ＢＲＤ−６５９７）は２−（４−メチル２−１−イル）エタンアミンを２−（ピリジン−４−イル）エタンアミンで置き換えることにより調製することができる。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４４３（９７．６８，Ｍ＋Ｈ）。
（Ｅ）−Ｎ−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）−４−（３−オキソ−３−（２−（ピリジン−２−イル）エチルアミノ）プロプ−１−エニル）ベンズアミド（ＢＲＤ−９８５３）の合成
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中の（Ｅ）−３−（４−（メトキシカルボニル）フェニル）アクリル酸（０．２５グラム、１．２１ミリモル、１．０当量）、２−（ピリジン−２−イル）エタンアミン（０．３０グラム、２．４２、２．０当量）、ＨＡＴＵ（０．４６グラム、１．９１、１．５７当量）、ＤＩＰＥＡ（０．３１グラム、４．３６ミリモル、３．６当量）の混合物を２０時間室温で撹拌した。反応物を濃縮し、酢酸エチル（３０ｍＬ）を添加した。有機層を水（２０ｍＬ）で洗浄し、硫酸マグネシウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１０％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の化合物（０．２０ｇ、５２％の収率）を提供した。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３１１（９８．７，Ｍ＋Ｈ）．
ＴＨＦ（３ｍＬ）中の（Ｅ）−メチル４−（３−オキソ−３−（２−（ピリジン−２−イル）エチルアミノ）プロプ−１−エニル）安息香酸（０．２０グラム、０．６４ミリモル、１．０当量）を、水（３ｍＬ）中のＬｉＯＨ溶液（０．０５グラム、１．９３ミリモル、３．０当量）を添加した。反応物を、２０時間室温で撹拌した。反応物を濃縮し、水（５ｍＬ）で希釈した。溶液を、塩酸の１Ｎ水溶液でｐＨ約２に酸性化した。形成した沈殿を濾過し、水（３ｍＬ）で洗浄し、白色固体（０．１５ｇ、７９％の粗収率）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）２９７（６３．８，Ｍ＋Ｈ）。
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中の（Ｅ）−４−（３−オキソ−３−（２−（ピリジン−２−イル）エチルアミノ）プロプ−１−エニル）安息香酸（０．１０グラム、０．３４ミリモル、１．０当量）、ｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（０．１９グラム、０．６８ミリモル、２．０当量）、ＨＡＴＵ（０．４６グラム、１．９１ミリモル、５．６当量）およびＤＩＰＥＡ（０．３１グラム、４．３６ミリモル、１２．９当量）の混合物を２０時間室温で撹拌した。反応物を濃縮し、酢酸エチル（３０ｍＬ）を添加した。溶液を水（２０ｍＬ）で洗浄した。混合有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、６％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、目的化合物（０．１１ｇ、５６％の収率）を提供した。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）５６９（９８．５，Ｍ＋Ｈ）．
ジクロロメタン（４ｍＬ）中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル２（４−（３−オキソ−３−（２−（ピリジン−２−イル）エチルアミノ）プロプ−１−エニル）ベンズアミド）−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（０．１１グラム、０．１９ミリモル、１．０当量）の溶液に、トリフルオロ酢酸（１．５ｍＬ）を加えた。反応物を１時間室温で撹拌し、濃縮した。残渣を酢酸エチル（２０ｍＬ）に溶解し、重炭酸ナトリウムの飽和水溶液（１０ｍＬ）、水（１０ｍＬ）で洗浄した。有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。残渣をエーテル（２ｍＬ）で洗浄し、黄色固体（０．０７グラム、収率７５％）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４６９（９７．９，Ｍ＋Ｈ），ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）４６９（９７．９，Ｍ＋Ｈ），１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ９．７９（ｓ，１Ｈ），８．５２（ｄ，Ｊ＝４Ｈｚ，１Ｈ），８．３０−８．２３（ｍ，１Ｈ），８．０３４（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ，２Ｈ），７．７５−７．６５（ｍ，３Ｈ），７．４８（ｄ，Ｊ＝１５Ｈｚ，２Ｈ），７．３６（ｄ，Ｊ＝５Ｈｚ，１Ｈ），７．３０（ｔ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，２Ｈ），７．２６−７．２０（ｍ，２Ｈ），７．０５（ｔ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，２Ｈ），６．８１（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，１Ｈ），６．７４（ｄ，Ｊ＝１５．５Ｈｚ，１Ｈ），５．１９（ｓ，２Ｈ），３．６０−３．５２（ｍ，２Ｈ），２．９５（ｔ，Ｊ＝７Ｈｚ，２Ｈ）．
（Ｅ）−３−（３−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニルアミノ）−３−オキソプロプ−１−エニル）ベンズアミド（ＢＲＤ−３６３６）の合成
メチル３−ブロモ安息香酸（１０．８グラム、５０．２ミリモル、１．０当量）、ｔ−ブチルアクリレート（８．０５グラム、６２．８ミリモル、１．２５当量）、トリエチルアミン（１０．１６、１００ミリモル、２．０当量）、トリアセトキシパラジウム（０．１４ｇ、０．５０ミリモル、０．０１当量）およびトリ−ｏ−トリルホスフィン（０．６１グラム、２．０ミリモル、０．０４当量）の混合物を、窒素雰囲気下で２時間１００℃で加熱した。反応混合物を水で希釈した。生成物を酢酸エチルで抽出した。有機相をＨＣｌの１Ｍ水溶液でｐＨを約３に調整した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、真空中で濃縮し、黄色固体（１１グラム、収率８４％）を得た。
ＴＦＡ（１００ｍＬ）中の（Ｅ）−メチル３−（３−ｔｅｒｔ−ブトキシ−３−オキソプロプ−１−エニル）安息香酸（１２．０グラム、４５．７ミリモル）混合物を２０時間室温で撹拌した。溶媒を減圧下で除去した。得られた残渣を酢酸エチルで洗浄し、白色固体（８．５ｇ、９０％の収率）を得た。
ＴＨＦ（８０ｍＬ）中の（Ｅ）−３−（３−（メトキシカルボニル）フェニル）アクリル酸（５．５６グラム、２７ミリモル、１．５当量）、ｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（５．２２グラム、１７．９８ミリモル、１．０当量）、ＨＡＴＵ（１０．３０、４２．７ミリモル、２．３７当量）およびＤＩＰＥＡ（６．９６グラム、９８ミリモル、５．４５当量）の混合物を２０時間室温で撹拌した。次いで、反応物を濃縮した。残渣を酢酸エチルで希釈し、水、次いで飽和食塩水で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、減圧下で濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、５０％ＰＥ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、黄色の固体（６．０グラム、６４．９パーセントの収率）を得た。
ＴＨＦ（６０ｍＬ）中の（Ｅ）−メチル３−（３−（２−（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニルアミノ）−５−（チオフェン−２−イル）フェニルアミノ）−３−オキソプロプ−１−エニル）安息香酸（５．５グラム、１１．４９モル、１．０当量）の溶液に、水（６０ｍＬ）中のＬｉＯＨ（０．６９グラム、２８．７ミリモル、２．５当量）溶液を添加した。反応物を２０時間室温で撹拌した。反応物を酢酸エチルで抽出した。水層を分離し、塩酸の１Ｎ水溶液でｐＨ約２に酸性化した。生成した沈殿物を濾過し、続いて水（２００ｍＬ）、次いで、メタノール（１００ｍＬ）でリンスし、白色固体（４．２ｇ、収率７９％）を得た。
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中のアンモニア塩酸塩（０．０２グラム、０．４３ミリモル、２．０当量）、（Ｅ）−３−（３−（２−（ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニルアミノ）−５−（チオフェン−２−イル）フェニルアミノ）−３−オキソプロプ−１−エニル）安息香酸（０．１０グラム、０．２１ミリモル、１．０当量）、ＨＡＴＵ（０．０８グラム、０．３２ミリモル、１．５当量）、ＨＯＢｔ（０．０４３グラム、０．３２ミリモル、１．５当量）およびＤＩＰＥＡ（０．１１グラム、０．８６ミリモル、４．０等量）の混合物を２０時間室温で撹拌した。次いで、反応物を濃縮した。残渣を酢酸エチルで希釈し、水、次いで飽和食塩水で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、減圧下で濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１０％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の生成物（０．０８グラム、収率８０％）を得た。
ＣＨ２Ｃｌ２中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−（３−（３−カルバモイルフェニル）アクリルアミド）−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（０．０８グラム、０．１７ミリモル、１．０当量）の溶液を、トリフルオロ酢酸（１ｍＬ）で処理した。溶液を１時間室温で撹拌した。次いで、反応物を濃縮した。残渣を酢酸エチル（２０ｍＬ）に溶解した。溶液を炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液（１０ｍＬ）、次いで水（１０ｍＬ）で洗浄した。混合有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物エーテル（２ｍＬ）で洗浄し、目的化合物（０．０５グラム、収率７３％）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３６４（９２．６３，Ｍ＋Ｈ），１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ９．４８（ｓ，１Ｈ），８．１８（ｓ，１Ｈ），８．０９（ｓ，１Ｈ），７．９０（ｄ，Ｊ＝８Ｈｚ，１Ｈ），７．８０−７．７０（ｍ，２Ｈ），７．６２（ｄ，Ｊ＝１６Ｈｚ，１Ｈ），７．５４（ｔ，Ｊ＝８Ｈｚ，１Ｈ），７．４９（ｓ，１Ｈ），７．３６（ｄ，Ｊ＝５Ｈｚ，１Ｈ），７．２９−７．１９（ｍ，２Ｈ），７．１０−６．５９（ｍ，２Ｈ），６．７９（ｄ，Ｊ＝８Ｈｚ，１Ｈ），５．２４（ｓ，２Ｈ）．
４−アセトアミド−Ｎ−（４−アミノ−２’−メチルビフェニル−３−イル）ベンズアミド（ＢＲＤ−４０２９）の合成
ＤＭＥ／Ｈ２Ｏ（２：１、５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル４−ブロモ−２−ニトロフェニルカルバメート（０．２０グラム、０．６２ミリモル）、ｏ−トリルボロン酸（０．１０グラム、０．７４ミリモル）、炭酸ナトリウム（０．２０グラム、０．９３ミリモル）およびＰｄ（ＰＰｈ３）４（５０ミリグラム、０．０４ミリモル）の混合物をアルゴン雰囲気下で１１０℃に加熱した。２０時間激しく攪拌した後、水を添加した。生成物を酢酸エチルで抽出した。混合有機層を水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。残渣をクロマトグラフィー（シリカゲル、１０％のＥｔＯＡｃ／ＰＥ）により精製し、黄色固体（０．１３ミリグラム、９５％の収率）として所望の生成物を得た。１ＨＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ＤＭＳＯ−ｄ６）：１．４６（ｓ，９Ｈ），２．２５（ｓ，３Ｈ），７．２６−７．３２（ｍ，４Ｈ），７．６６−７．７０（ｍ，２Ｈ），７．８５（ｄ，Ｊ＝１．６Ｈｚ，１Ｈ），９．６７（ｓ，１Ｈ）．
ＭｅＯＨ（５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２’−メチル−３−ニトロビフェニル−４−イルカルバメート（０．１３グラム、０．５８ミリモル）、Ｐｄ／Ｃ（１０％、０．０６ｇ）の溶液を水素雰囲気下で１６時間激しく攪拌した。反応物をセライトを通して濾過した。濾液を濃縮した。生成物を、カラムクロマトグラフィー（シリカゲル、２．５％のＥｔＯＡｃ／ＰＥ）により精製し、黄色の固体として所望の生成物を得た（０．１６１グラム、収率９２％）。１ＨＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：１．４７（ｓ，９Ｈ），２．２２（ｓ，３Ｈ），４．９０（ｓ，２Ｈ），６．４８（ｄｄ，Ｊ＝８．０，１．６Ｈｚ，１Ｈ），６．６４（ｄ，Ｊ＝１．６Ｈｚ，１Ｈ），７．１１−７．１３（ｍ，１Ｈ），７．１９−７．２５（ｍ，４Ｈ），８．３４（ｓ，１Ｈ）．
ＤＭＦ（５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル３−アミノ−２’−メチルビフェニル−４−イルカルバメート（０．１５グラム、０．５０８ミリモル、１．０当量）、４−アセトアミド安息香酸（０．５６グラム、３．０６ミリモル、６当量）、ＤＩＰＥＡ（０．７ｍＬを、４．０８ミリモル、８当量）およびＨＡＴＵ（０．３９グラム、１．１４ミリモル、２当量）の溶液をアルゴン雰囲気下で１６時間攪拌した。水を添加し、生成物をＥｔＯＡｃで抽出した。混合有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、１０％のＥｔＯＡｃ／ＰＥ）により精製し、黄色の固体として所望の生成物を得た（０．１０グラム、４２％の収率）。１ＨＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ１．４７（ｓ，９Ｈ），２．０８（ｓ，３Ｈ），２．２８（ｓ，３Ｈ），７．１６−７．３（ｍ，５Ｈ），７．５３（ｄ，Ｊ＝１．２Ｈｚ，１Ｈ），７．５７（ｄ，Ｊ＝８．４Ｈｚ，１Ｈ），７．７２（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，２Ｈ），７．９０−７．９２（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，１Ｈ），８．８０（ｓ，１Ｈ），９．８０（ｓ，１Ｈ），１０．２４（ｓ，１Ｈ）．
ＣＨ２Ｃｌ２（１．５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル３−（４−アセトアミドベンズアミド）−２’−メチルビフェニル−４−イルカルバメート（０．０６グラム、０．１２４ミリモル）溶液を、ＴＦＡ（０．７ｍＬ）で０℃で処理した。反応混合物を２時間０℃で攪拌した後、反応物を酢酸エチルで希釈し、炭酸水素ナトリウムの飽和溶液で洗浄した。混合有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮して、所望の生成物を得た（０．０３グラム、収率４７％）。１ＨＮＭＲ（４００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ２．０８（ｓ，３Ｈ），２．２７（ｓ，３Ｈ），５．００（ｓ，２Ｈ），６．８４（ｄ，Ｊ＝８．４Ｈｚ，１Ｈ），６．９６（ｄ，Ｊ＝８．０，２．０Ｈｚ，１Ｈ），７．１６−７．２５（ｍ，５Ｈ），７．６９（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，２Ｈ），７．９４（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ，２Ｈ），９．６０（ｓ，１Ｈ），１０．２０（ｓ，１Ｈ）．ＭＳ：ｍ／ｚ（３６０，［Ｍ＋Ｈ］＋；３８２，［Ｍ＋Ｎａ］＋）．
当業者は、後述する他の化合物が、上記の手順と同様の方法で調製できることを認識するであろう。
４−アセトアミド−Ｎ−（２−アミノ−５−（ピリジン−３−イル）フェニル）ベンズアミド（ＢＲＤ−９７７３）は、ｏ−トリルボロン酸をピリジン−３−イルボロン酸で置き換えることによって調製することができる。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３６９（９６．２，Ｍ＋Ｎａ）．
４−アセトアミド−Ｎ−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）ベンズアミド（ＢＲＤ−６９２９）は、Ｏ−トリルボロン酸をチオフェン−２−イルボロン酸で置き換えることによって調製することができる。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３８２（９６．２，Ｍ＋Ｎａ）．
Ｎ−（２−アミノ−５−（チオフェン−２−イル）フェニル）−４−スルファモイルベンズアミド（ＢＲＤ−７７２６）の合成
ＤＭＦ（５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（０．３０グラム、１．０３ミリモル、１当量）、４−スルファモイル安息香酸（０．４２グラム、２．０６ミリモル、２当量）、ＨＡＴＵ（７８０ｍｇ、２．０６ミリモル、２．０当量）、およびＤＩＰＥＡ（０．４５ｍＬ、２．５８ミリモル、２．５当量）の溶液を室温で１５時間攪拌した。反応物を、重炭酸ナトリウムの飽和溶液でクエンチした。得られた固体を濾過し、減圧下で乾燥した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、３％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の生成物（０．２５グラム、収率５１％）を得た。
ＣＨ２Ｃｌ２中（２ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−（４−スルファモイルベンズアミド）−４−（チオフェン−２−イル）フェニルカルバメート（０．１５グラム、０．３２ミリモル、１当量）の攪拌溶液に、ＴＦＡ（１ｍｌ）を０oＣで添加した。反応物を２時間室温で撹拌した。次いで、反応物を濃縮した。残渣をＥｔＯＡｃに溶解した。溶液は、重炭酸ナトリウムの飽和溶液で洗浄した。混合有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、３％メタノール／ＣＨ２Ｃｌ２中）により精製し、所望の生成物（０．０３グラム、２４．９％の収率）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３７４（９８．３２，Ｍ＋Ｈ），１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ，ｄ６−ＤＭＳＯ）：δ８．１５（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，２Ｈ），７．９４（ｄ，Ｊ＝８Ｈｚ，２Ｈ），７．４９（ｓ，１Ｈ），７．３６（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ，１Ｈ），７．３１（ｄｄ，Ｊ＝８．５，２Ｈｚ，１Ｈ），７．４４（ｄ，Ｊ＝２．５Ｈｚ，１Ｈ），７．０５（ｔ，Ｊ＝３．５Ｈｚ，１Ｈ），６．８１（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ，１Ｈ），５．２１（ｓ，２Ｈ）．
４−アセトアミド−Ｎ−（２−アミノ−５−フェネチルフェニル）ベンズアミド（ＢＲＤ−７０５０）の合成
５−ブロモ−２−ニトロアニリン（４．０グラム、１８．４３ミリモル、１．０当量）、４−アセトアミド安息香酸（４．９５グラム、２７．６ミリモル、１．５当量）およびＢＯＰ（１０．６０グラム、２３．９６ミリモル、１．３当量）の攪拌溶液に、水素化ナトリウム（２．９６グラム、１２３．０ミリモル、６．７当量）を０oＣで少しずつ添加した。反応混合物を室温まで温め、そして６０時間撹拌した。溶媒を減圧下で蒸発させた。残渣を重炭酸ナトリウムの飽和溶液で希釈した。得られた沈殿を濾過した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、２５％ＥｔＯＡｃ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の生成物（３．３１グラム、収率４０％）を得た。
ＤＭＥ／Ｈ２Ｏ（３０ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセトアミドベンズアミド）−４−ブロモフェニルカルバメート（０．５０グラム、１．１１ミリモル、１．０当量）、（Ｅ）−スチリルボロン酸（０．３３グラム、２．２３ミリモル、２．０当量）、炭酸カリウム（０．４６グラム、３．３３５ミリモル、３．０当量）、Ｐｄ（ＰＰｈ３）４（０．０９グラム、０．０８ミリモル、０．０７当量）およびトリトリルホスフィン（０．１０グラム、０．３３ミリモル、０．３当量）の混合物を２０時間加熱還流した。反応混合物を水で希釈した。得られた固体を濾過した。粗生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、２％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、純粋な生成物を得た（０．３０グラム、収率５７％）。
エタノール（１０ｍＬ）中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセトアミドベンズアミド）−４−スチリルフェニルカルバメート（０．１５グラム、０．３２ミリモル、１．０当量）の溶液に、炭素上のパラジウム（０．０２グラム、０．２３ミリモル、０．７当量）を添加した。反応混合物を２０時間Ｈ２雰囲気下で攪拌した。反応混合物をセライトを通して濾過し、固形物をメタノールで洗浄した。次いで、反応物をさらに減圧下で濃縮し、オフホワイトの固体（０．１４、９３％の粗収率）を得、これを次の工程でさらなる精製をすることなく使用した。
０oＣのＣＨ２Ｃｌ２（３ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−（４−アセトアミドベンズアミド）−４−フェネチルフェニルカルバメート（０．１４グラム、０．２９ミリモル）の溶液に、ＴＦＡ（２ｍＬ）を滴下した。反応混合物をゆっくり室温まで加温し、２時間攪拌した。溶媒を減圧下で蒸発させて除去した。粗残渣を水で希釈し、炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液でクエンチした。得られた固体を濾過し、水で洗浄し、真空下で乾燥させ、所望の生成物（０．０８グラム、６８％の収率）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３７４（９５．０，Ｍ＋Ｈ）．
（Ｅ）−３−（４−アセトアミドフェニル）−Ｎ−（２−アミノ−５−エチニルフェニル）アクリルアミド（ＢＲＤ−００６３）の合成
トリエチルアミン（３ｍＬ）中のＮ−（４−ブロモフェニル）アセトアミド（２．１４、１０ミリモル、１．０当量）、ｔｅｒｔ−ブチルアクリレート（１．６グラム、１３ミリモル、１．３当量）、ジアセトキシパラジウム（０．０５グラム、０．２ミリモル、０．０２当量）、Ｐ（ｏ−ｔｏｌ）３（０．１２グラム、０．４ミリモル、０．０４当量）の混合物を、窒素下で２時間１００℃に加熱した。反応物を室温まで冷却した。酢酸エチル（５０ｍＬ）を添加した。有機層を水（２×２０ｍＬ）で洗浄した。混合有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮し、黄色固体として所望の生成物（２．２ｇ、７６％の粗収率）を得た。
トリフルオロ酢酸（１０ｍＬ）中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル３−（４−アセトアミドフェニル）アクリル酸（２．２グラム、８．４２ミリモル）を室温で１０分間攪拌した。溶媒を蒸発によって除去した。残渣を炭酸ナトリウム水溶液（０．３Ｎ、３０ｍＬ）に溶解した。水層を酢酸エチル（２×２０ｍｌ）で洗浄し、塩酸塩酸の１Ｎ水溶液でｐＨ約３に酸性化した。生成物を酢酸エチル（５０ｍＬ）で抽出した。混合有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮し、所望の生成物（１．４グラム、７７％の粗収率）を得た。
Ｅｔ３Ｎ（３５ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル４−ブロモ−２−ニトロフェニルカルバメート（０．９７グラム、３．０８ミリモル、１．０当量）、エチニルトリメチルシラン（０．４５グラム、４．６２ミリモル、１．５当量）、ＰｄＣｌ２（ＰＰｈ３）２（０．１１グラム、０．１５ミリモル、０．０５当量）およびＣＵＩ（０．０４グラム、０．１８ミリモル、０．０６当量）の混合物を２時間１００℃で還流した。反応物を室温まで冷却し、溶媒を蒸発によって除去した。残渣を水（５０ｍＬ）と酢酸エチル（５０ｍＬ）に溶解した。有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮し、黄色の油状物として粗生成物を（１．２グラム、１１６％の粗収率）を得、これを次の工程においてさらなる精製をすることなく使用した。
エタノール（３０ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−ニトロ−４−（（トリメチルシリル）エチニル）フェニルカルバメート（１．２グラム、３．５９ミリモル、１．０当量）、ＳｎＣｌ２．２Ｈ２Ｏ（４．０５グラム、１７．９４ミリモル、５．０当量）およびＥｔ３Ｎ（１５ｍＬ）の混合物を１時間で７０℃に加熱した。次いで、この反応物を室温まで冷却した。溶媒を蒸発によって除去した。残渣を水（５０ｍＬ）と酢酸エチル（５０ｍＬ）に溶解した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。粗生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、２５％のＥｔＯＡｃ／ＰＥ）により精製し、黄色固体として所望の生成物（０．５８グラム、収率５３％）を得た。
メタノール（１０ｍＬ）中のｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−（（トリメチルシリル）エチニル）フェニルカルバメート（０．２０グラム、０．６５ミリモル、１．０当量）の溶液を、Ｋ２ＣＯ３（０．４５グラム、３．２８ミリモル、５．０当量）で処理した。反応物を３０分間室温で攪拌した。溶媒を留去し、残渣を水（２０ｍＬ）と酢酸エチル（３０ｍｌ）に溶解した。有機層を硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮し、所望の生成物（０．１４ｇ、８９％の収率）を得、これを次のステップでさらなる精製をすることなく使用した。
ＴＨＦ（１０ｍＬ）中の（Ｅ）−３−（４−アセトアミドフェニル）アクリル酸（０．１４グラム、０．７０ミリモル、１．２当量）、ｔｅｒｔ−ブチル２−アミノ−４−エチニルフェニルカルバメート（０．１３グラム、０．５８ミリモル、１．０当量）、ＨＡＴＵ（０．２６グラム、０．７０ミリモル、１．２当量）およびＤＩＰＥＡ（０．２３グラム、１．７５ミリモル、３．０当量）の混合物を２０時間室温で撹拌した。溶媒を減圧下で蒸発させた。残渣を水（２０ｍＬ）で希釈した。生成物を酢酸エチル（２０ｍＬ）で二度抽出した。混合有機層を飽和食塩水で洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、６％のＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の生成物を得た（０．１２グラム、４９％の収率）。
室温の１，４−ジオキサン（１ｍＬ）中の（Ｅ）−ｔｅｒｔ−ブチル２−（３−（４−アセトアミドフェニル）アクリルアミド）−４−エチニルフェニルカルバメート（０．０６グラム、０．１４ミリモル）溶液を１，４のジオキサン（１ｍＬ）中のＨ２ＳＯ４（０．１０グラム、７．１５ミリモル、５０当量）溶液で処理した。得られた混合物を２時間室温で撹拌した。反応混合物を炭酸水素ナトリウムの飽和水溶液でクエンチした。生成物を酢酸エチルで抽出した。混合有機層を、硫酸ナトリウムで乾燥し、濾過し、濃縮した。生成物をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル、６％ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２）により精製し、所望の生成物（０．０１グラム、２１％の収率）を得た。ＥＳＩ＋ＭＳ：ｍ／ｚ（相対強度）３１９（９４．１３，Ｍ＋Ｈ）．
本出願に記載されているすべての文献、特許および特許公報は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれている。
本発明の少なくとも１つの実施形態のいくつかの側面を上記のように説明したが、当業者にとって容易な様々な変更、修正、および改良が起こることを理解すべきである。かかる変更、修正、および改良はこの開示の一部であることが意図されており、発明の精神および範囲内であることが意図される。したがって、前述の説明および図面は例示にすぎない。

Claims (53)

  1. 対象における記憶を増強する方法であって、対象における記憶の増強に有効な量で、対象にＨＤＡＣ２阻害剤を投与することを含む、前記方法。
  2. ＨＤＡＣ２阻害剤が、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤である、請求項１に記載の方法。
  3. 記憶が、長期記憶である、請求項１または２に記載の方法。
  4. 対象が、長期記憶へのアクセスの低下を有する、請求項１または２に記載の方法。
  5. 長期記憶が、損傷している、請求項４に記載の方法。
  6. 長期記憶の損傷が、加齢によるものである、請求項５に記載の方法。
  7. 長期記憶の損傷が、傷害によるものである、請求項５に記載の方法。
  8. 対象におけるシナプスネットワークが再構築される、請求項１または２に記載の方法。
  9. ＨＤＡＣ２阻害剤が、ＨＤＡＣ１阻害剤ではない、請求項１に記載の方法。
  10. ＨＤＡＣ２阻害剤が、ＨＤＡＣ５、ＨＤＡＣ６、ＨＤＡＣ７またはＨＤＡＣ１０阻害剤ではない、請求項１に記載の方法。
  11. ＨＤＡＣ３阻害剤を投与することをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
  12. ＨＤＡＣ１１阻害剤を投与することをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
  13. 選択的ＨＤＡＣ２阻害剤が、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ、ｄｓＲＮＡまたはリボザイムなどのＨＤＡＣ２ ＲＮＡｉあるいはそれらの変異体である、請求項２に記載の方法。
  14. 記憶が、取り戻される、請求項１または２に記載の方法。
  15. ＤＮＡメチル化阻害剤を投与することをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
  16. ＤＮＡメチル化阻害剤が、５−アザシチジン、５−アザ−２’デオキシシチジン、５，６−ジヒドロ−５−アザシチジン、５，６−ジヒドロ−５−アザ−２’デオキシシチジン、５−フルオロシチジン、５−フルオロ−２’デオキシシチジン、および５−アザ−２’デオキシシトシン、５，６−ジヒドロ−５−アザ−２’デオキシシトシン、および５−フルオロ−２’デオキシシトシンを含む短鎖オリゴヌクレオチド、およびプロカインアミド、ゼブラリン、および（−）−エピガロカテキン−３−ガレートからなる群から選択される、請求項１５に記載の方法。
  17. ＨＤＡＣ２阻害剤が、経口、静脈内、皮膚、皮下、鼻内、筋肉内、腹腔内、頭蓋内、または脳室内投与される、請求項１または２に記載の方法。
  18. 対象が、ＡＭＣＩ（軽度認識障害）、アルツハイマー病、記憶喪失、アルツハイマー病に関連する注意欠陥症状、アルツハイマー病に関連する神経変性、混合血管起源の認知症、変性起源の認知症、初老期認知症、老年性認知症、パーキンソン病に関連する認知症、血管性認知症、進行性核上性麻痺、または大脳皮質基底核変性症からなる群から選択される障害を有している、請求項１または２に記載の方法。
  19. ＨＤＡＣ２阻害剤の投与の後に、対象の認識機能を評価することをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
  20. 脳血流または脳血液関門機能を評価することにより処置をモニターすることをさらに含む、請求項１８に記載の方法。
  21. 追加の治療剤を対象に投与することをさらに含む、請求項１８に記載の方法。
  22. 追加の治療剤が、ARICEPTまたはドネペジル、COGNEXまたはタクリン、EXELONまたはリバスチグミン、REMINYLまたはガランタミン、抗アミロイドワクチン、Ａベータ低下治療、頭の体操、または精神的刺激である、請求項２１に記載の方法。
  23. アルツハイマー病を処置するための方法であって、アルツハイマー病を有する対象に、アルツハイマー病の処置に有効な量でＨＤＡＣ２阻害剤を投与することを含む、前記方法。
  24. ＨＤＡＣ２阻害剤が、選択的ＨＤＡＣ２阻害剤である、請求項２３に記載の方法。
  25. ＨＤＡＣ２阻害剤が、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２阻害剤である、請求項１または２４に記載の方法。
  26. ＨＤＡＣ２阻害剤が、式（ＩＶ）
    式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈおよび−Ｃ（Ｏ）−Ｃ１〜６アルキルから独立して選択され；
    Ｒ３は、任意に置換されたアリール、任意に置換されたヘテロアリール、またはアリール−Ｃ１〜６アルキレンである、
    の化合物である、請求項２５に記載の方法。
  27. 式ＩＶが、
    である、請求項２６に記載の方法。
  28. 式ＩＶが、
    である、請求項２６に記載の方法。
  29. 式ＩＶが、
    である、請求項２６に記載の方法。
  30. 式ＩＶが、
    である、請求項２６に記載の方法。
  31. ＨＤＡＣ２阻害剤が、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３阻害剤である、請求項１または２４に記載の方法。
  32. ＨＤＡＣ２阻害剤が、式（ＶＩ）
    式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、ヘテロアリール、アリール、およびアリール−Ｃ１〜６アルキレンから独立して選択される、
    の化合物である、請求項３１に記載の方法。
  33. 式ＶＩが、
    である、請求項３２に記載の方法。
  34. ＨＤＡＣ２阻害剤が、式（Ｉ）
    式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、Ｃ１〜６アルキレン、ヘテロアリール、ヘテロアリーレン、およびヘテロアリーレン−アルキレンから独立して選択され；および
    Ｒ３は、アリールまたはヘテロアリールである、
    の化合物である、請求項１または２４に記載の方法。
  35. 式Ｉが、
    である、請求項３４に記載の方法。
  36. ＨＤＡＣ２阻害剤が、式（ＩＩ）
    式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキル、ヘテロシクリル、Ｃ１〜６アルキレン、ヘテロアリール、ヘテロアリーレン、ヘテロアリーレン−アルキレン、アリーレン−アルキレン；および任意に置換されたヘテロシクリル−アルキレンから独立して選択され；および
    Ｒ３は、アリールまたはヘテロアリールである、
    の化合物である、請求項１または２４に記載の方法。
  37. 式ＩＩが、
    である、請求項３６に記載の方法。
  38. 式ＩＩが、
    である、請求項３６に記載の方法。
  39. 式ＩＩが、
    である、請求項３６に記載の方法。
  40. 式ＩＩが、
    である、請求項３６に記載の方法。
  41. 式ＩＩが、
    である、請求項３６に記載の方法。
  42. ＨＤＡＣ２阻害剤が、式（ＩＩＩ）
    式中、Ｘは−Ｃ（Ｏ）−Ｎ（Ｒ１）（Ｒ２）、Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｈ）−Ｃ１〜６アルキレン−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）（Ｒ２）；または−Ｎ（Ｒ１）Ｃ（Ｏ）Ｒ２であり、
    Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；および
    Ｒ３は、アルキニル、アリールまたはヘテロアリールである、
    の化合物である、請求項１または２４に記載の方法。
  43. 式ＩＩＩが、
    である、請求項４２に記載の方法。
  44. 式ＩＩＩが、
    である、請求項４２に記載の方法。
  45. 式ＩＩＩが、
    である、請求項４２に記載の方法。
  46. ＨＤＡＣ２阻害剤が、式（Ｖ）
    式中、Ｒ１およびＲ２は、Ｈ、置換または非置換、分岐のまたは非分岐の、環式のまたは非環式のＣ１〜６アルキルから独立して選択され；および
    Ｒ３は、アリールまたはヘテロアリールである、
    の化合物である、請求項１または２４に記載の方法。
  47. 式Ｖが、
    である、請求項４６に記載の方法。
  48. ＨＤＡＣ２阻害剤および薬学的に許容可能な担体を含み、脳組織への送達のための処方である、医薬組成物。
  49. ＨＤＡＣ２阻害剤が血液脳関門を横断するように処方されている、請求項４８に記載の組成物。
  50. 対象における記憶を増強するために用いる組成物であって、対象における記憶を増強するのに有効な量のＨＤＡＣ２阻害剤を含む、前記組成物。
  51. 対象における記憶を増強するために有効な量での、ＨＤＡＣ２阻害剤の使用。
  52. ＨＤＡＣ２阻害剤が、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ１０阻害剤である、請求項１または２４に記載の方法。
  53. ＨＤＡＣ２阻害剤が、選択的ＨＤＡＣ１／ＨＤＡＣ２／ＨＤＡＣ３／ＨＤＡＣ１０阻害剤である、請求項１または２４に記載の方法。
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