JP2010233571A - 哺乳動物インターロイキン−12p40およびインターロイキンb30、その組成物、抗体、薬学的組成物における使用 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】哺乳動物由来のサイトカインをコードする精製された遺伝子、精製されたタンパク質、特異的抗体を含むこの遺伝子に関連する試薬、およびこの分子をコードする核酸が提供される。これらの試薬を使用する方法および診断キットもまた提供される。本発明は、特に、インターロイキン−B30(IL−B30)とのIL−12p40サブユニトの組み合わせを含む組成物およびそれらの生物学的活性に関し、ポリペプチドまたは融合タンパク質の両方の核酸コードならびにそれらの産生および使用の方法を含む。
【選択図】なし
Description
本発明は、哺乳動物細胞(例えば、哺乳動物免疫系の細胞)の生物学および生理機能を制御することにおいて機能するタンパク質に関連する、組成物および方法に関する。特に、本発明は、例えば、種々の細胞型(造血系細胞を含む)の、活性化、発生、分化および機能を調節するのに有用な、精製された遺伝子、タンパク質、抗体、関連試薬、および方法を提供する。
組換えDNA技術とは、一般に、ドナー供給源からの遺伝情報を、例えば、宿主への導入を介して、その後のプロセシングのためにベクター中に組み込み、それによって移入された遺伝情報が、新規な環境においてコピーおよび/または発現される、技術をいう。一般に、遺伝情報は、所望のタンパク質産物をコードするメッセンジャーRNA(mRNA)に由来する相補的DNA(cDNA)の形態において存在する。キャリアは、しばしば、宿主において後の複製のためにcDNAを組み込む能力、および、いくつかの場合において、cDNAの発現を実際に制御し、それによって宿主においてコードされる産物の合成を指向する能力を有するプラスミドである。
(項目1) 以下を含む、組成物:
a)以下の両方:
i)IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントを含む、実質的に純粋なポリペプチド;および
ii)IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントを含む、実質的に純粋なポリペプチド;
b)以下の両方:
i)IL−12 p40由来の少なくとも11連続するアミノ酸を含む、実質的に純粋なポリペプチド;および
ii)IL−B30由来の少なくとも11連続するアミノ酸を含む、実質的に純粋なポリペプチド;
c)以下の両方を含む実質的に純粋なポリペプチド:
i)IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメント;および
ii)IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメント;または
d)以下の両方を含む実質的に純粋なポリペプチド:
i)IL−12 p40由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメント;および
ii)IL−B30由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメント。
(項目2) 項目1に記載の組成物であって、
a)ここで、前記IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントおよび前記IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントが、少なくとも9連続するアミノ酸の1つのセグメントを含むか;
b)ここで、前記IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントおよび前記IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントが、両方とも、少なくとも9連続するアミノ酸であるか;
c)ここで、前記IL−12 p40由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメントが、少なくとも15連続するアミノ酸であるか;
d)ここで、前記IL−B30由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメントが、少なくとも15連続するアミノ酸であるか;
e)水、生理食塩水、および/または緩衝液を含む水性化合物より選択されるキャリアをさらに含むか;
f)経口投与、直腸投与、経鼻投与、局所投与、または非経口投与のために処方されるか;あるいは
g)滅菌されている、
組成物。
(項目3) 項目1に記載の組成物であって、
a)ここで、少なくとも1つの前記ポリペプチドが以下:
i)検出可能に標識されるか;
ii)組換え的に産生されるか;
iii)グリコシル化されていないか;
iv)変性されるか;
v)固体基材に結合されるか;または
vi)別の化学的部分に結合体化されるか
であるか;
b)以下:
i)実質的に純粋なIL−12 p40ポリペプチド;および
ii)実質的に純粋なIL−B30ポリペプチド
の両方を含むか;
c)IL−B30に融合されたIL−12 p40を含む、実質的に純粋なポリペプチド
を含むか;あるいは
d)IL−18、IL−12、放射線もしくは化学療法剤、免疫アジュバント、または抗ウイルス剤と組み合わされる、
組成物。
(項目4) 項目1に記載の組成物および以下:
a)前記ポリペプチドを含む区画;または
b)キット中の試薬の使用もしくは処分についての説明書、
を含む、キット。
(項目5) 以下をコードする、単離された核酸または組換え核酸:
a)以下の両方:
i)IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントを含む、実質的に純粋なポリペプチド;および
ii)IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントを含む、実質的に純粋なポリペプチド;
b)以下の両方:
i)IL−12 p40由来の少なくとも11連続するアミノ酸を含む、実質的に純粋なポリペプチド;および
ii)IL−B30由来の少なくとも11連続するアミノ酸を含む、実質的に純粋なポリペプチド;
c)以下の両方を含む実質的に純粋なポリペプチド:
i)IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメント;および
ii)IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメント;または
d)以下の両方を含む実質的に純粋なポリペプチド:
i)IL−12 p40由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメント;および
ii)IL−B30由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメント。
(項目6) 項目5に記載の単離された核酸または組換え核酸であって、
a)ここで、前記IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントおよび前記IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントが、少なくとも9連続するアミノ酸の1つのセグメントを含むか;
b)ここで、前記IL−12 p40由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントおよび前記IL−B30由来の少なくとも7連続するアミノ酸の複数の別個のセグメントが、両方とも、少なくとも9連続するアミノ酸であるか;
c)ここで、前記IL−12 p40由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメントが、少なくとも15連続するアミノ酸であるか;
d)ここで、前記IL−B30由来の少なくとも11連続するアミノ酸のセグメントが、少なくとも15連続するアミノ酸であるか;
e)該IL−12 p40が霊長類由来であるか;
f)該IL−B30が霊長類由来であるか;
g)発現ベクターであるか;
h)複製起点をさらに含むか;
i)検出可能な標識を含むか;
j)合成ヌクレオチド配列を含むか;
k)6kb未満、好ましくは3kb未満であるか;または
l)霊長類由来である、
核酸。
(項目7) 項目6に記載の単離された核酸または組換え核酸を含む、細胞。
(項目8) 項目7に記載の細胞であって、該細胞は以下:
a)原核生物細胞;
b)真核生物細胞;
c)細菌細胞;
d)酵母細胞;
e)昆虫細胞;
f)哺乳動物細胞;
g)マウス細胞;
h)霊長類細胞;または
i)ヒト細胞、
である、細胞。
(項目9) 項目6に記載の単離された核酸または組換え核酸および以下:
a)該単離された核酸または組換え核酸を含む区画;
b)霊長類IL−12 p40ポリペプチドをさらに含む区画;もしくは
c)霊長類IL−B30ポリペプチドをさらに含む区画;または
d)キット中の試薬の使用もしくは処理についての説明書、
を含む、キット。
(項目10) a)霊長類IL−12 p40の天然の成熟コード部分に、50℃で30分間および1M未満の塩の洗浄条件下で;ならびに
b)霊長類IL−B30の天然の成熟コード部分に、50℃で30分間および1M未満の塩の洗浄条件下で、
ハイブリダイズする、核酸。
(項目11) 項目10に記載の核酸であって、ここで:
a)IL−12 p40についての前記洗浄条件が、60℃および400mM未満の塩である;
b)IL−B30についての前記洗浄条件が、60℃および400mM未満の塩である;c)該核酸が、霊長類IL−12 p40をコードする配列に、少なくとも50ヌクレオチドのストレッチにわたる同一性を示す;ならびに/または
d)該核酸が、霊長類IL−B30をコードする配列に、少なくとも50ヌクレオチドのストレッチにわたる同一性を示す、
核酸。
(項目12) 項目10に記載の核酸であって、ここで:
a)IL−12 p40についての前記洗浄条件が、65℃および150mM未満の塩である;
b)IL−B30についての前記洗浄条件が、65℃および150mM未満の塩である;c)該核酸が、霊長類IL−12 p40をコードする配列に、少なくとも90ヌクレオチドのストレッチにわたる同一性を示す;ならびに/または
d)該核酸が、霊長類IL−B30をコードする配列に、少なくとも90ヌクレオチドのストレッチにわたる同一性を示す、
核酸。
(項目13) 以下:
a)TNFαアンタゴニスト;
b)IL−12アンタゴニスト;
c)IL−10;または
d)ステロイド、
と組み合わされた、IL−12 p40/IL−B30のアンタゴニスト。
(項目14) 抗体由来の抗原結合部分を含む結合組成物であって、項目1に記載の組成物に特異的に結合するが、IL−12 p40ポリペプチド単独またはIL−B30ポリペプチド単独には結合しない、
結合組成物。
(項目15) 項目14に記載の結合組成物であって、ここで:
a)該結合組成物が容器中であるか;
b)該結合組成物がFvフラグメント、Fabフラグメント、もしくはFab2フラグメントであるか;
c)該結合組成物が別の化学的部分に結合体化されるか;または
d)前記抗体が以下:
i)項目1に記載の組成物に対して惹起されるか;
ii)免疫選択されるか;
iii)ポリクローナル抗体であるか;
iv)抗原に対して少なくとも30mMのKdを示すか;
v)ビーズまたはプラスチック膜を含む固体基材に付着されるか;
vi)滅菌した組成物中であるか;もしくは
vii)放射活性標識または蛍光標識を含む標識で、検出可能に標識されるか、
である、結合組成物。
(項目16) 項目15に記載の結合組成物および以下:
a)該結合組成物を含む区画;または
b)キット中の試薬の使用または処分についての説明書、
を含む、キット。
(項目17) 抗原:抗体複合体を産生する方法であって、適切な条件下で霊長類IL−12 p40/IL−B30組成物を項目14に記載の抗体と接触させ、これによって該複合体を形成させる工程を包含する、方法。
(項目18) 項目17に記載の方法であって、ここで:
a)前記複合体が、他のサイトカインから精製されるか;
b)該複合体が、他の抗体から精製されるか;
c)前記接触工程が、サイトカインを含むサンプルと行われるか;
d)該接触工程が、前記抗原の定量的検出を可能にするか;
e)該接触工程が、該抗体を含むサンプルと行われるか;または
f)該接触工程が、該抗体の定量的検出を可能にする、
方法。
(項目19) a)滅菌した項目14に記載の結合組成物;あるいは
b)項目14に記載の結合組成物およびキャリアであって、ここで該キャリアは:
i)水、生理食塩水、および/もしくは緩衝液を含む水性化合物である;ならびに/または
ii)経口投与、直腸投与、経鼻投与、局所投与、または非経口投与のために処方される、
キャリア、
を含む、組成物。
(項目20) 細胞または組織の生理機能または発達を調節するための医薬の製造における、項目1に記載の組成物または項目14に記載の結合組成物の使用。
(項目21) 細胞の生理機能または発達を調節するための医薬の製造における、項目1に記載の組成物の使用。
(項目22) 項目21に記載の組成物の使用であって、ここで、前記細胞は、宿主生物体にあって、そして該生物体は増強されたTh1応答を示す、使用。
(項目23) 項目22に記載の組成物の使用であって、ここで、前記Th1応答は以下:
a)抗腫瘍効果;
b)アジュバント効果;
c)抗ウイルス性効果;または
d)拮抗するアレルギー効果、
より選択される、使用。
(項目24) 宿主生物体中の細胞の生理機能または発達を調節するための医薬の製造における、項目1に記載の組成物の使用であって、該調節が、以下:
a)抗腫瘍効果;
b)アジュバント効果;
c)抗ウイルス性効果;または
d)拮抗するアレルギー効果、
を生じる、使用。
(項目25) 項目24に記載の組成物の使用であって、ここで、前記医薬が以下:a)IL−18;
b)IL−12;
c)放射線療法または化学療法;
d)免疫アジュバント;または
e)抗ウイルス性治療、
と組み合わせて使用される、使用。
(項目26) 項目20に記載の結合組成物の使用であって、ここで、前記結合組成物がIL−12レセプターサブユニットβ1に対する抗体である、使用。
(項目27) 項目20に記載の結合組成物の使用であって、ここで、前記調節が前記結合組成物を用いて行われ、そして該調節がIFNγの産生における相対的減少を生じる、使用。
(項目28) 宿主生物体中の細胞の生理機能あるいは発達を調節するための医薬の製造における結合組成物の使用であって、ここで、前記調節は以下:a)自己免疫状態;または
b)慢性炎症状態、
の回復を生じる、使用。
(項目29) a)IL−12 p40を含む霊長類IL−B30を発現する工程を包含する、該IL−B30の分泌を増加させる、方法;または
b)IL−B30を含む霊長類IL−12 p40を発現する工程を包含する、該IL−12 p40の分泌を増加させる、方法。
(項目30) 項目29に記載の方法であって、ここで:
a)前記増加が少なくとも3倍であるか;または
b)前記発現する工程が、IL−B30およびIL−12 p40をコードする組換え核酸を発現する工程である、
方法。
(項目31) 項目3に記載の組成物を結合するレセプターについてスクリーニングする方法であって、該方法は、該組成物が該レセプターに結合し得る条件下で、該レセプターを発現する細胞に該組成物を接触させ、それにより検出可能な相互作用を形成させる工程を包含する、方法。
(項目32) 項目31に記載の方法であって、ここで、前記相互作用が前記細胞中に生理学的応答を生じる、方法。
(項目33) 動物における炎症応答を調節するための医薬の製造における、以下:a)項目1に記載の組成物;または
b)項目14に記載の結合組成物、
の使用。
(項目34) 項目33に記載の使用であって、ここで:
a)項目1に記載の組成物もしくは項目14に記載の結合組成物が霊長類タンパク質であるか;
b)該項目14に記載の結合組成物が抗体であるか;または
c)該項目14に記載の結合組成物が該項目1に記載の組成物によって媒介されるシグナル伝達をブロックする抗体である、
使用。
(項目35) 項目33に記載の使用であって、ここで、前記動物が急性期の炎症応答の徴候または症状を示す、使用。
(項目36) 項目33に記載の使用であって、ここで、前記徴候または症状が皮膚組織;肺組織;胃腸組織;または肝組織に見出される、使用。
(項目37) 項目35に記載の使用であって、ここで、前記徴候または症状が皮膚組織;肺組織;胃腸組織;または肝組織に見出される、使用。
(項目38) 項目33に記載の使用であって、ここで、前記調節が好中球の血小板への成熟を加速する、使用。
(項目39) 項目33に記載の使用であって、ここで、前記調節がIgAに対する効果を有する、使用。
(項目40) 項目33に記載の使用であって、ここで、前記調節がIgGに対する効果を有する、使用。
(項目41) 項目38に記載の使用であって、前記調節が前記項目1に記載の組成物を用いる、使用。
(項目42) 項目39に記載の使用であって、前記調節が前記項目1に記載の組成物を用いる、使用。
(項目43) 項目40に記載の使用であって、前記調節が前記項目1に記載の組成物を用いる、使用。
(項目44) 項目41に記載の使用であって、ここで:
a)前記項目1に記載の組成物が哺乳動物由来であるか;または
b)前記動物が炎症状態の徴候または症状を体験する、
使用。
(項目45) 項目42に記載の使用であって、ここで:
a)前記項目1に記載の組成物が哺乳動物由来であるか;または
b)前記動物が炎症状態の徴候または症状を体験する、
使用。
(項目46) 項目43に記載の使用であって、ここで:
a)前記項目1に記載の組成物が哺乳動物由来であるか;または
b)前記動物が炎症状態の徴候または症状を体験する、
使用。
(項目47) 項目44に記載の使用であって、ここで、前記医薬が以下:
a)抗炎症性サイトカインアゴニストもしくはアンタゴニスト;
b)鎮痛薬;
c)抗炎症剤;または
d)ステロイド、
との組み合わせである、使用。
(項目48) 項目45に記載の使用であって、ここで、前記医薬が以下:
a)抗炎症性サイトカインアゴニストもしくはアンタゴニスト;
b)鎮痛薬;
c)抗炎症剤;または
d)ステロイド、
との組み合わせである、使用。
(項目49) 項目46に記載の使用であって、ここで、前記医薬が以下:
a)抗炎症性サイトカインアゴニストもしくはアンタゴニスト;
b)鎮痛薬;
c)抗炎症剤;または
d)ステロイド、
との組み合わせである、使用。
(項目50) 記憶T細胞の増殖を誘導するための医薬の製造における、項目1に記載の組成物の使用。
(発明の要旨)
本発明は、部分的に、IL−B30(これはまた、本明細書中でIL−B30タンパク質といわれる)の生理学的役割、ならびに免疫応答における役割、の発見に基づく。特に、IL−B30の役割は、炎症、感染性疾患、造血の発達、およびウイルス感染に関係する経路において、説明されている。本発明は、特に、インターロイキン−B30(IL−B30)とのIL−12 p40サブユニトの組み合わせを含む組成物およびそれらの生物学的活性に関する。これは、ポリペプチドまたは融合タンパク質の両方をコードする核酸ならびにそれらの産生および使用の方法を含む。本発明の核酸は、部分的に、本明細書中に開示される相補的DNA(cDNA)配列に対する相同性により、および/または機能的アッセイにより特徴付けられる。また、ポリペプチド、抗体、およびそれらの使用の方法(核酸発現方法を使用することを含む)も提供される。増殖因子依存性生理機能または免疫応答の制御における調節または干渉の方法が、提供される。
本明細書中に引用される全ての参考文献は、各々、個々の刊行物または特許出願が具体的にかつ個々に参考として援用されることを示したのと同程度まで、本明細書中に参考として援用される。
(I.一般)
(II.IL−12 p40/IL−B30複合体の精製)
(A.物理的特性)
(B.生物学的特性)
(III.物理的改変体)
(A.配列改変体、フラグメント)
(B.翻訳後改変体)
(1.グリコシル化)
(2.その他)
(IV.機能的改変体)
(A.アナログ、フラグメント)
(1.アゴニスト)
(2.アンタゴニスト)
(B.模倣物)
(1.タンパク質)
(2.化学物質)
(C.種改変体)
(V.抗体)
(A.ポリクローナル抗体)
(B.モノクローナル抗体)
(C.フラグメント、結合組成物)
(VI.核酸)
(A.天然の単離物;方法)
(B.合成遺伝子)
(C.単離方法)
(VII.p40/IL−B30複合体、模倣物の作製)
(A.組換え方法)
(B.合成方法)
(C.天然物の精製)
(VIII.使用)
(A.診断)
(B.治療)
(IX.キット)
(A.核酸試薬)
(B.タンパク質試薬)
(C.抗体試薬)
(X.p40/IL−B30複合体についてのレセプターの単離)。
本発明は、可溶性サイトカイン(例えば、免疫細胞または他の細胞間でシグナルを媒介し得る分泌分子)を作製するための哺乳動物タンパク質の対形成の記載および教示を提供する。例えば、Paul(1998)Fundamental Immunology(第4版)Raven Press,N.Y.を参照のこと。特定の可溶性因子は、ヘテロダイマーポリペプチド(例えば、IL−6およびIL−12)から作製される。このダイマー形態(これは、生理学的形態であるようである)およびフラグメント、またはアンタゴニストは、例えば、レセプターを発現する細胞の生理学的調節において有用である。p40/IL−B30複合体を含む機能的サイトカインは、造血細胞(例えば、T細胞、B細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、マクロファージ、樹状細胞、造血前駆体などのようなリンパ球を含む)に対して刺激効果または阻害効果のいずれかを有するようである。このタンパク質はまた、タンパク質上の種々のエピトープ(直鎖状エピトープまたは立体配置的エピトープの両方)に対する抗体を惹起するための抗原(例えば、免疫原)として有用である。
ヒトIL−B30アミノ酸配列は、配列番号2の中の1つの実施形態として示される。このタンパク質をコードする他の天然に存在する核酸は、提供された配列を用いて標準的な手順(例えば、PCR技術、すなわち、ハイブリダイゼーションにより)により単離され得る。これらのアミノ酸配列(アミノからカルボキシまで提供される)は、このタンパク質抗原を他のタンパク質から区別し、そして多くの改変体を例示することを可能にするサイトカインサブユニットについての配列情報を提供することにおいて重要である。さらに、このペプチド配列は、セグメントを認識する抗体を生成するためのペプチドの調製を可能にし、そしてヌクレオチド配列は、オリゴヌクレオチドプローブの調製を可能にする。これらの両方は、このような配列をコードする遺伝子の検出または単離(例えば、クローニング)のためのストラテジーである。
本発明はまた、IL−12 p40/IL−B30抗原のアミノ酸配列と実質的なアミノ酸配列同一性を有するタンパク質またはペプチドを含む複合体を包含する。改変体としては、種改変体、多型性改変体、または対立遺伝子改変体が挙げられる。
IL−12 p40/IL−B30複合体に対する生理学的応答のブロックは、リガンドのそのレセプターへの結合の競合的阻害から生じ得る。レセプターの1つのサブユニットの同定は、記載されるようなさらなる特徴付け、およびこの複合体との結合および/またはシグナル伝達をブロックするサブユニットへの抗体の使用を可能にする。
抗体は、それらの天然に存在する形態およびそれらの組換え形態の両方の、種々のp40/IL−B30タンパク質のエピトープ(種改変体、多型改変体もしくは対立遺伝子改変体を含む)およびそれらのフラグメントに対して惹起され得る。さらに、抗体は、それらの活性化形態または不活性化形態(ネイティブバージョンまたは変性バージョン)のいずれかのIL−B30に対して惹起され得る。抗イディオタイプ抗体もまた意図される。
記載されるペプチド配列および関連試薬は、IL−12p40およびIL−B30の両方をコードするDNAクローン(例えば、天然の供給源由来)を検出、単離、または同定するのに有用である。代表的には、哺乳動物由来の遺伝子を単離するのに有用であり、そして類似の手順は、他の種(例えば、鳥および哺乳動物のような、温血動物)から遺伝子を単離するために適用される。交叉ハイブリダイゼーションは、同じ種(例えば、多型改変体)または他の種からのIL−12p40またはIL−B30の単離を可能にする。多数の異なるアプローチが、適切な核酸クローンを首尾良く単離するために利用可能である。このような遺伝子は、同時発現構築物または融合構築物の構築を可能にする。
IL−12 p40もしくはIL−B30またはそのフラグメントをコードするDNAは、化学合成、cDNAライブラリーのスクリーニング、または広範な種々の細胞株もしくは組織サンプルから調製されたゲノムライブラリーのスクリーニングによって獲得され得る。例えば、OkayamaおよびBerg(1982)Mol.Cell.Biol.2:161−170;GublerおよびHoffman(1983)Gene 25:263−269;ならびにGlover(1984年編)DNA Cloning:A Practical Approach,IRL Press,Oxfordを参照のこと。あるいは、本明細書中で提供される配列は、有用なPCRプライマーを提供するかまたはIL−12 p40もしくはIL−B30をコードする適切な遺伝子の合成かもしくは他の調製を可能にし;天然に存在する形態を含む。
本発明は、本明細書中の他で記載されるような診断適用における使用を見出し得る試薬を提供する(例えば、IL−12 p40/IL−B30複合体媒介条件においてかまたは診断のためのキットの以下の記載において)。遺伝子は、法医科学において有用であり得る(例えば、ヒトとげっ歯類を区別するためかまたは差次的な発現または改変パターンを示す異なった細胞間で区別するためのマーカーとして)。提供された組成物は、例えば、インビトロアッセイ、科学的研究、および核酸、ポリペプチド、もしくは抗体の合成または製造において、有用な試薬である。
本発明はまた、別のp40/IL−B30または結合パートナーの存在を検出するための種々の診断キットおよび方法における、p40/IL−B30タンパク質、そのフラグメント、ペプチド、およびそれらの融合産物の使用を意図する。代表的には、キットは、規定のp40、p40/IL−B30、またはIL−B30のペプチドまたは遺伝子セグメント、あるいは一方もしくは他方を認識する試薬のいずれか(例えば、p40/IL−B30融合フラグメントまたは抗体)を含む区画を有する。
特異的なリガンド−レセプター相互作用のリガンドが単離された場合、レセプターを単離するための方法が存在する。Gearingら(1989)EMBO J.8:3667−3676を参照のこと。例えば、レセプターへの結合を妨害することなくIL−B30サイトカインを標識するための手段が、決定され得る。例えば、アフィニティー標識が、リガンドのアミノ末端またはカルボキシ末端のいずれかに融合され得る。このような標識は、FLAGエピトープタグまたは例えば、IgもしくはFcドメインであり得る。発現ライブラリーは、細胞分類によってか、またはこのような結合成分を発現する亜集団を検出するための他のスクリーニングによって、サイトカインの特異的結合に関してスクリーニングされ得る。例えば、Hoら(1993)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90:11267−11271;およびLiuら(1994)J.Immunol.152:1821−29を参照のこと。あるいは、パニング方法が使用され得る。例えば、SeedおよびAruffo(1987)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 84:3365−3369を参照のこと。
以下の多くの標準的な方法が、記載されるかまたは参照される:例えば、Maniatisら(1982)Molecular Cloning,A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,Cold Spring Harbor Press,NY;Sambrookら(1989)Molecular Cloning:A Laboratory Manual,(第二版),1−3巻、CSH Press,NY;Ausubelら,Biology,Greene Publishing Associates,Brooklyn,NY;Ausubelら(1987および増刊)Current Protocols in Molecular Biology,Wiley/Greene,New York;Innisら編(1990)PCR Protocols:A Guide to Methods and Applications Academic Press,NY;Bonifacinoら、Current Protocols in Cell Biology Wiley,NY;ならびにDoyleら、Cell and Tissue Culture:Laboratory Protocols Wiley,NY。タンパク質の精製方法には、硫酸アンモニウム沈殿、カラムクロマトグラフィー、電気泳動、遠心分離、結晶化等の方法が挙げられる。例えば、Ausubelら(1987および定期増刊);Deutscher(1990)「Guide to Protein Purification」Methods in Enzymology 第182巻およびこのシリーズの他の巻;Coliganら(1995および増刊)Current Protocols in Protein Science John Wiley and Sons,New York,NY;Matsudaira編(1993)A Practical Guide to Protein and Peptide Purification for Microsequencing,Academic Press,San Diego,CA;ならびにタンパク質精製製品の使用に関する製造業者の文献(例えば、Pharmacia,Piscataway,NJまたはBio−Rad,Richmond,CA)を参照。組換え技術を併用することにより、適切なセグメント(エピトープタグ)(例えば、プロテアーゼ除去配列により融合され得るFLAG配列または等価物)に融合させる。例えば、Hochuli(1990)「Purification of Recombinant Proteins with Metal Chelate Absorbent」Setlow(編)Genetic Engineering,Principle and Methods 12:87−98,Plenum Press,NY;およびCroweら(1992)OIAexpress:The High Level Expression & Protein Purification System QIAGEN,Inc.,Chatsworth,CAを参照。
このIL−12 p40配列は、上記の種々の配列データベースから利用可能である。IL−B30遺伝子の配列は、表1に提供されている。この配列は、ゲノムヒト配列から誘導される。
各遺伝子をコードするcDNAに対して特異的な適切なプローブまたはプライマーを調製する。代表的に、このプローブを、例えば、ランダムプライミングにより標識する。両方のサブユニットの協調発現が最も重要であり、ここで、p40/IL−B30複合体が興味深い。
複数のトランスフェクトされた細胞株を、他の細胞と比較して高いレベルで、サイトカインまたは複合体を発現するものについてスクリーニングする。あるいは、組換え構築物の組合せが作製され得る。種々の細胞株をスクリーニングし、そして取り扱いの際にそれらの都合の良い特性について選択した。その後、個々のサブユニットの個々の単離および組合せにより、いくつかのダイマー形成が得られ得る。天然のIL−B30を、天然源から、または適切な発現ベクターを使用する形質転換された細胞からの発現により単離され得る。アデノウイルス構築物をまた、産生/発現のために使用し得る。
合成ペプチドまたは精製タンパク質は、モノクローナル抗体またはポリクローナル抗体を産生するために免疫系に提示される。例えば、Coligan(1991)Current Protocols in immunology Wiley/Greene;およびHarlowおよびLane(1989)Antibodies:A Laboratory Manual Cold Spring Harbor Pressを参照のこと。免疫選択または除去方法は、得られた抗体が、個々の成分自体によって提示される抗体決定と異なる、ポリペプチドの複合体によって提示された抗原決定基に対して特異的であることを保証するように適用され得る。ポリクローナル血清、またはハイブリドーマが、調製され得る。適切な状況において、この結合剤は、上記(例えば、蛍光など)のように標識されるか、またはパニング法のために基質に固定されるかのいずれかである。免疫選択、免疫除去、および関連する技術は、例えば、2個のサブユニット間の複合体に対して所望される場合、選択薬剤を調製するために利用され得る。
マウスIL−12 p40−Ig融合構築物を、発現ベクターにおいて調製した。このIgドメインは、プロテインAに結合し、そしてこのポリペプチドを沈殿させ得る。IL−B30Etag(N末端のFLAGモチーフでタグ化されたエピトープ)構築物をまた調製した。このポリペプチドは、M2抗体で免疫沈降可能である。この発現構築物を、IL−12 p40−Ig構築物単独、IL−B30Etag構築物単独、または両方一緒のいずれかで293T細胞にトランスフェクトした。細胞を、35Sメチオニンを用いて標識した。IL−12 p40構築物単独を用いると、可溶性タンパク質は、プロテインAを使用する細胞上清中で検出されなかった。同様に、FLAG−IL−B30構築物を用いると、可溶性タンパク質は、M2抗体を使用する細胞上清中で検出されなかった。しかし、この2つの発現構築物の同時トランスフェクトを用いると、この細胞上清により、プロテインA薬剤またはM2抗体のいずれかと共に沈殿可能な可溶性複合体が産生された。この複合体のPEGE分析により、プロテインA沈殿複合体は、2つの予測されたポリペプチドIL−12 p40−Ig融合およびFLAG−IL−B30ポリペプチドに対応するポリペプチドから作製されたことが明らかとなった。対応して、M2抗体で沈殿した複合体は、FLAG−IL−B30ポリペプチドおよびIL−12 p40−Ig融合タンパク質から作製された。
IL−12レセプターは、IL−12レセプターサブユニットβ1およびβ2から作製される。p40/IL−B30の融合構築物は、レセプターサブユニットβ1を発現する細胞と結合する。
p40/IL−B30複合体の生物学的活性を、例えば、IL−B30とIL−6とG−CSFとの間の配列および構造相同性に基づいて試験する。最初に、IL−6またはG−CSFの生物学的活性を示したアッセイについて試験した。アッセイは、組換え複合体または融合構築物のいずれかにおいて実施した。融合構築物は、IL−B30の成熟配列に融合した適切な長さのser/gly富化リンカー配列に融合した成熟IL−12 p40配列に融合したN末端FLAGエピトープに結合したIL−12 p40シグナル配列を有する構築物からなる。この構築物は、十分に発現し、分泌され、そしてエピトープタグは、精製および局在化の両方を可能にする。マウスおよびヒトの両方の配列形態が、産生された。個々のポリペプチドおよび融合タンパク質の両方のアデノウイルス発現構築物がまた、利用可能となる。
種々の細胞型の増殖の効果を、種々の濃度のサイトカインを用いて評価する。投薬応答分析を、関連するサイトカインIL−6、G−CSFなどと組合せて実施する。サイトセンサーマシン(cytosensor machine)が使用され得、これにより細胞の代謝および増殖を検出する(Molecular Devices,Sunnyvale,CA)。
ヒト臍帯血細胞を収集し、そしてネイティブCD4+T細胞を単離した。これらを、抗CD3および抗IL−2の存在下で、そしてCD32、CD58、およびCD80を発現する照射した線維芽細胞とともに例えば、2週間培養し、それによってT細胞を活性化し、かつ増殖した。T細胞培養物を、増殖または分化に対する種々のサイトカインの効果について評価した。個々の細胞を、FACS分析によってサイトカイン産生について評価した。p40/IL−B30融合タンパク質は、IFNγを産生し、IL−4を産生しない(Th1細胞に特徴的なサイトカイン発現プロフィール)T細胞の増殖および分化を支持した。
単球を、正常な健常なドナーの末梢血単核細胞からのネガティブ選択によって精製する。簡単には、3×108個のフィコール帯単核細胞(ficoll banded mononuclear cell)を、例えば、200μlのαCD2(Leu−5A)、200μlのαCD3(Leu−4)、100μlのαCD8(Leu2a)、100μlのαCD19(Leu−12)、100μlのαCD20(Leu−16)、100μlのαCD56(Leu−19)、100μlのαCD67(IOM 67;Immunotech,Westbrook,ME)、および抗グリコホリン抗体(10F7MN,ATCC,Rockvile,MD)からなるモノクローナル抗体(Becton−Dickinson;Mountain View,CA)のカクテルとともに氷上でインキュベートする。抗体結合細胞を洗浄し、次いでヒツジ抗マウスIgG結合体化磁気ビーズ(Dynal,Oslo,Norway)とともに(20:1のビーズ対細胞の比)、インキュベートする。抗体結合細胞を、磁場の適用によって単球から分離する。その後、ヒト単球を、IL−B30、IL−6,G−CSFまたは組み合わせの非存在下または存在下で1%ヒトAB血清を含むYssel培地(Gemini Bioproducts,Calabasas,CA)において培養する。
ヒト単球を記載のように単離し、そしてIL−B30(100倍希釈のバキュロウイルス発現物質)の非存在下または存在下で1%ヒトAB血清を含むYssel培地(Gemini Bioproducts,Calabasas,CA)において培養する。さらに、単球を、IL−B30の非存在下または存在下でLPS(E.coli 0127:B8 Difco)を用いて刺激し、そして細胞培養上清中のサイトカイン(IL−1β、IL−6、TNFα、GM−CSF、およびIL−10)の濃度をELISAによって決定する。
全PBMCを、正常な健常なドナーの軟膜から記載(Boyumら)のフィコール水溶性造影剤を通じる遠心分離によって単離する。PBMCを、IL−B30の非存在下または存在下で96ウェルプレート(Falcon,Becton−Dickinson,NJ)において1%ヒトAB血清を含む200μl Yssel培地(Gemini Bioproducts,Calabasas,CA)中で培養する。細胞を、培地単独か、または100U/ml IL−2(R&D Systems)と組み合わせた培地中で120時間培養する。3H−チミジン(0.1mCi)を培養の残り6時間添加し、そして3H−チミジン取り込みを、液体シンチレーション計測することによって決定した。
トランスジェニックマウスは、標準的な方法によって作製され得る。このような動物は、特定の組織か、または完全な生物全体における遺伝子の過剰発現の効果を決定するのに有用である。このようなことは、種々の段階における動物または特定の組織の発達に関する興味深い洞察を提供し得る。さらに、生物学的ストレスへの種々の応答に対する効果は、上昇し得る。例えば、Hoganら(1995)Manipulating the Mouse Embryo:A Laboratory Manual(第2版)Cold Spring Harbor Laboratory Pressを参照のこと。
RNAを、製造業者(TEL−TEST,Inc.Friendswood,TX)の詳説に従って、RNA STAT−60を用いて組織から抽出した。総RNA(20mg)を変性し、Biotrans membrane(ICN Biomedicals,Costa Mesa,CA)上にブロットした。導入遺伝子発現を、ハイブリダイゼーションによって評価し、L−30 cDNA(Stratagene,La Jolla,CA)を無作為に標識した。総RNAを、マウスヘモペキシン遺伝子、マウスα−1酸グリコタンパク質遺伝子、およびマウスハプトグロビン遺伝子の無作為に標識したPCRセグメントとハイブリダイズさせることによって急性期肝臓遺伝子発現を評価した。
大腿骨および脛骨は、筋肉を取り除き、そしてPBSでその骨を洗浄することによって骨髄を排出した。骨髄細胞を、一度洗浄し、そして致命的に照射した(1000RAD)レシピエントマウスにi.v.注射した。
IL−B30の生物学的機能を分析するために、この遺伝子を、トランスジェニックマウスにおいてNiwaら(1991)Gene 108:193−200によって記載されたCMVエンハンサー/アクチンプロモーターの制御下で発現させた。このエンハンサー/プロモーターカセットは、高レベルの導入遺伝子の発現を主に骨格筋および膵臓に指向するが、この導入遺伝子は、実質的に全ての生物および細胞において発現され得る。Liraら(1990)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 87:7215−7219を参照のこと。
IL−B30トランスジェニックマウスから収集された組織の顕微鏡試験によって、複数部位(肺、皮膚、食道、小腸および肝臓(胆管)、大腸、および膵臓を含む)における最少から中程度の炎症が、明らかになった。炎症性浸潤は、好中球、リンパ球、および/またはマクロファージからなった。皮膚における炎症は、数匹のマウスにおいて、表皮肥厚および/または潰瘍と関連した。肺において、気管支周囲の単核細胞浸潤は、ときどき顕著であり、肺胞壁は、増化した数の白血球を含み、そして内皮の内層気道は、過形成であった。最小の門脈周囲の単核細胞浸潤がまた、肝臓において一般的であった。リンパ節の皮質は、しばしば、散在した細胞性かつ欠損した小胞性の発達であった。
IL−B30トランスジェニックマウスに見出される全身性炎症がプロ炎症性サイトカインの変更された発現と関連するか否かを試験するために、本発明者らは、末梢血中のIL−1、TNFα、IL−6、およびIFNγの濃度を決定した。試験された全てのIL−B30トランスジェニックマウスにおいて、TNFαおよびIFNγのレベルが増加した。さらに、IL−1のレベルは、試験されたIL−B30トランスジェニックマウスの25%で増加した。IL−B30トランスジェニックマウス中で見出されたIL−1およびTNFαの濃度は、LPSによる急性炎症応答の誘導と関連したレベルに達した。驚くべきことに、IL−6の発現が炎症状態下で高度に誘導され(Reineckerら(1993)Clin.Exp.Immunology 94:174−181;Stevensら(1992)Dig.Dis.Sci.37:818−826)そしてTNFα、IL−1およびIFNγによって直接誘導され得る(Helleら(1988)Eur.J.Immunol.18:957−959)のにも関わらず、IL−6は、IL−B30トランスジェニックマウスの末梢血中に検出されなかった。
体は、肝臓における規定された血漿タンパク質の発現によって特徴付けられる急性期応答を伴って炎症に対して反応する。IL−B30トランスジェニックマウスが全身性炎症の表現型特徴を示すので、本発明者らは、IL−B30トランスジェニックマウスおよびコントロール同腹仔の肝臓における急性期遺伝子の発現を試験した。急性期肝臓遺伝子α−1酸グリコプロテイン、ハプトグロブリン、およびヘモペキシンは、試験された全てのIL−B30トランスジェニックマウスにおいて高度に発現し、一方、これらの遺伝子の発現は、コントロール同腹仔では検出されなかった。これは、急性期肝臓遺伝子が、IL−B30トランスジェニックマウスで構成的に発現されることを示す。
免疫応答の間に、いくつかのサイトカインは、B細胞分化および引き続く免疫グロブリン合成を誘導する。免疫グロブリン合成がIL−B30トランスジェニックマウスにおいて変化されたか否かを試験するために、末梢血中の免疫グロブリンアイソタイプの濃度を、決定した。7匹のIL−B30トランスジェニックマウスのうちの2匹において、IgAの濃度が、コントロール同腹仔と比較した場合、6〜9倍に増加した。さらに、IgG1、IgG2aおよびIgG2bの濃度は、コントロール同腹仔と比較した場合、試験された全てのIL−B30トランスジェニックマウスにおいて2.5〜6倍に増加した。対照的に、IgMまたはIgEの力価における有意な増加は、試験されたいずれのIL−B30トランスジェニックマウスにおいても検出され得なかった。事実、7匹のIL−B30トランスジェニックマウスのうちの4匹は、顕著に減少したレベルのIgM合成を示した。要約すると、IL−B30トランスジェニックマウスのサブセットは、免疫グロブリンアイソタイプIgAおよびIgGの濃度において6〜9倍の増加を示したが、免疫グロブリンアイソタイプIgMおよびIgEの濃度には、有意な増加は検出されなかった。
慢性炎症状態(KirschnerおよびSutton(1986)Gastroenterology 91:830−836;Laursenら(1995)Arch.Dis.Child.72:494−497)またはトランスジェニック動物におけるサイトカインの過剰発現(De Benedettiら(1994)J.Clin.Invest.93:2114−2119)は、インスリン様増殖因子−1(IGF−1)の減少と関連する増殖欠損を引き起こし得る。IL−B30トランスジェニックマウスの発育阻害された増殖がIGF−1の減少したレベルへさかのぼり得るか否かを試験するために、トランスジェニックマウスの血清サンプルを、IGF−1に関してアッセイした。試験された全てのIL−B30トランスジェニックマウスにおいて、血清中のIGF−1の量は、年齢の一致したコントロール同腹仔中で見出されるレベルの12〜14%であった。これは、IL−B30のトランスジェニック発現、ならびに生成される引き続く炎症性応答が、IL−B30トランスジェニックマウス中のIGF−1の減少を引き起こし、そして結果として成長障害および不妊症の原因となり得ることを示唆する(Gayら(1997)Endocrinology 137(7):2937−2947)。
サイトカインは、免疫系を局所的に調節するかまたは長期の効果を媒介する分泌タンパク質である。IL−B30がサイトカインとして機能するか否かおよび離れた多器官の炎症および急性期肝臓応答を誘導し得るか否かを試験するために、本発明者らは、IL−B30トランスジェニック骨髄を、致死的に照射された野生型レシピエントマウスに移した。
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