JP2009142269A - ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬 - Google Patents

Abstract

【課題】操作が簡便で、かつ測定精度、特異性、再現性に優れたヒトＩｇＧの測定試薬を提供すること。
【解決手段】被験試料中のヒトＩｇＧを測定する試薬において、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成成分とし、前記モノクローナル抗体のうち、一方の抗体が標識抗体であり、他方の抗体が固相抗体であることを特徴とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬が提供される。当該ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬としては、寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体及び寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体を構成成分とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬が好適である。
【選択図】なし

Description

本発明はヒトイムノグロブリンＧ（ＩｇＧ）のＦｃを認識するモノクローナル抗体を使用する、高感度の被験試料中のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬に関する。

血清蛋白のグロブリンの１つであるγ−グロブリンは免疫に関与していることから免疫グロブリン（Ｉｇ）と呼ばれ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥの５つが知られている。ＩｇＧは活性化Ｂリンパ球より分化した形質細胞より産生され、各種の免疫抗体、感染性を失わせる中和抗体、また細菌を捕捉するオプソニン抗体として作用し、リンパ節、脾、骨髄、胸腺、小腸粘膜、気道粘膜などで産生される胎盤通過性の血漿蛋白である。ＩｇＧは細菌、ウイルス、薬物、組織抗原などの刺激に対する生体反応を示す。血中のＩｇＧを測定することにより、抗原刺激に対する生体反応の亢進、ＩｇＧ産生部位の異常などを知ることができる。ＩｇＧ高値を示す病態・疾患としては多クローン性高γ−グロブリン血症、膠原病、無症候性Ｍ蛋白血症、慢性感染症、骨髄腫、ＩｇＧ型多発性骨髄腫などが知られている。またＩｇＧ低値を示す病態・疾患としては無・低γ−グロブリン血症、重症免疫不全症、ネフローゼ症候群などが知られている。

近年、被験試料中のＩｇＧを測定する目的でＩｇＧを特異的に認識する試薬が開発され、ＩｇＧに対するポリクローナル抗体を構成成分とするエンザイムイムノアッセイ（ＥＩＡ）試薬が市販されている（Ｂｅｔｙｌ社製品：ＺＥＰＴＯＭＥＴＲＩＸ社製品：ＩＭＭＵＮＯ−ＴＥＫ Ｈｕｍａｎ ＩｇＧ Ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ）。また、特許文献１は、ヒトＩｇＧの異なる領域を認識する４種類の遊離したモノクローナル抗体を使用して、ヒトＩｇＧ抗原を凝集法で測定している。しかしながら、この測定方法は感度が低く、大量の抗ＩｇＧ抗原分子を必要とする。また当該4種のモノクローナル抗体のヒトＩｇＧ各サブクラスへの結合性は不明である。

特表昭５７−５０１１４７号公報

しかしながらポリクローナル抗体を用いてエンザイムイムノアッセイを行う場合は、ポリクローナル抗体中に夾雑抗原に対する抗体が含まれる可能性があり特異性の面で課題がある。また、抗原吸収法により抗体の交差反応性を除去して測定試薬が調製されることから、一定品質の試薬を安定して製造し、供給する面でも課題があった。
そこで、本発明の課題は、操作が簡便で、かつ測定精度、特異性、再現性に優れたヒトＩｇＧの部位特異的な高感度測定試薬を提供することにある。

本発明者らは鋭意努力を重ね、従来入手されていなかったヒトＩｇＧのＦｃを特異的、高感度に認識する２種の抗ヒトＩｇＧモノクローナル抗体の創成に成功し、当該２種のモノクローナル抗体を使用することにより、従来の課題が解決されること、当該モノクローナル抗体を使用すれば、ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質のモニタリングにも有用であることを見出し本発明を完成させた。

本発明の第１の発明は、被験試料中のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質を測定する試薬において、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成成分とし、前記モノクローナル抗体のうち、一方の抗体が標識抗体であり、他方の抗体が固相抗体であることを特徴とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬に関する。

本発明の第１の発明において、モノクローナル抗体が寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ及びモノクローナル抗体が寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｄであってもよく、測定方法としてエンザイムノアッセイを用いてもよい。さらに、被験試料が、血漿、血清又は細胞培養物から選択されてもよい。

本発明の第２の発明は、本発明の第１の発明のタンパク質の測定試薬を使用することを特徴とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定方法に関する。

本発明の第３の発明は、寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ及び寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈから選択される、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体に関する。

本発明の第４の発明は、寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞及び寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞から選択される、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞に関する。

さらに、本発明の第５の発明は、
（Ａ）所望の抗原と被検試料を接触させる工程；および
（Ｂ）さらにヒトＩｇＧのＦｃを認識する標識化モノクローナル抗体を接触させる工程、を包含する、所望の抗原を認識するヒトＩｇＧを測定する方法に関する。

本発明により、操作が簡便で、測定精度が高く、特異性、再現性にも優れたヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬が安定して提供される。
本発明の試薬の態様としては、ヒトＩｇＧの各種サブクラスのＦｃに共通に反応し、１．血中ＩｇＧ抗体価の絶対量の変化を調べることができる、２．ヒトＩｇＧのＦｃを含有するヒト型モノクローナル抗体のモニタリングや、製造工程での品質管理、定量の測定手法として用いることができる、３．ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質（Ｆｃ融合タンパク質）を発現・精製過程で簡易定量することができる等の顕著な効果を有している。

以下、本発明を具体的に説明する。
本発明で「ヒトＩｇＧ」とは、ヒト血中に存在するＩｇＧ（免疫グロブリンＧ）を意味する。天然のＩｇＧ分子はＨ_γ鎖２本とＬ鎖２本の４本のポリペプチド鎖からなり、分子量１５万、１〜３％の糖鎖を含むタンパク質である。Ｈ_γ鎖には４種類のサブクラス、γ_１、γ_２、γ_３、γ_４があり、それぞれの鎖を含むＩｇＧはＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３、ＩｇＧ４と呼ばれ、エフェクター機能に違いがある。前記のヒトＩｇＧは、ヒト血中に存在する天然のＩｇＧ、Ｂ細胞やＢ細胞とミエローマ細胞とのハイブリドーマなどのヒトＩｇＧを産生しうる細胞を人為的に培養した培養上清中に遊離されるＩｇＧ、更にＢ細胞のｍＲＮＡやそのｃＤＮＡ等を用いて遺伝子工学的に作製したリコンビナントのＩｇＧも含まれる。

本発明で「Ｆｃ」とは、Ｉｇをタンパク質分解酵素のパパインで消化して得られるフラグメントのうち、Ｈ鎖のＣ末端側が含まれるフラグメントを意味する。免疫グロブリンのＨ鎖は、Ｎ末端から可変領域Ｖ_Ｈ、定常領域Ｃ_Ｈ１、Ｃ_Ｈ２、Ｃ_Ｈ３ドメインが並んでいるが、ＦｃにはＣ_Ｈ２及びＣ_Ｈ３ドメインが含まれる。

本発明で「ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質」とは、ヒトＩｇＧのＦｃを共有結合又は水素結合、疎水結合、静電結合などの非共有結合により含有するタンパク質を意味する。

本発明で「モノクローナル抗体」とは、単一クローンの抗体生産細胞が分泌する抗体を意味し、単クローン（性）抗体ともいう。特定の抗原決定基を認識する抗体であり、アミノ酸配列の一次構造が均一である。本発明のモノクローナル抗体は、細胞融合法により調製されるハイブリドーマが産生する抗体に加えて、抗体産生細胞のｍＲＮＡ等を用いて遺伝子工学的に作製された抗体も含まれる。

本発明で「所望の抗原」とは、本発明の抗体が認識するヒトＩｇＧによって特異的に認識される物質を意味する。所望の抗原は、目的に応じて適宜選択されるもので、タンパク質、多糖類、核酸、脂質、これらの複合体などの天然抗原、ハプテンなどの人工抗原が含まれる。

（１）ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質測定試薬
すなわち本発明を概説すれば本発明は、被験試料中のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質を測定する試薬において、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成要素とし、前記モノクローナル抗体のうち、一方の抗体は標識抗体で、他方の抗体は固相抗体であることを特徴とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬に関する。以下に前記モノクローナル抗体について説明する。本発明で用いる抗体は、前述のヒトＩｇＧのＦｃを抗原として認識し、かつ当該Ｆｃを高感度で検出できるモノクローナル抗体であればいかなるものでも良い。また、ヒトＩｇＧのＦｃを抗原として認識し得る本発明の抗体にペプシン、パパイン等のタンパク質分解酵素を作用させ、抗体のＦｃ部分を除去して得られる、Ｆ（ａｂ’）_２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ等のフラグメントも本発明で使用する抗体に含まれる。

さらに、得られたモノクローナル抗体をもとに、遺伝子工学的に製造される組換え抗体や、定常領域を他の抗体の定常領域に置換したキメラ抗体であっても良い。このような抗体は、二重特異性抗体（二価抗体）、ｓｃＦｖ、Ｆａｂ_３、Ｄｉａｂｏｄｙ、Ｔｒｉａｂｏｄｙ、Ｔｅｔｒａｂｏｄｙ、Ｍｉｎｉｂｏｄｙ、Ｂｉｓ−ｓｃＦｖ、（ｓｃＦｖ）_２−Ｆｃ、ｉｎｔａｃｔ−ＩｇＧが例示され、Ｈｏｌｌｉｇｅｒら、Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ、第２３巻、第９号、ｐ．１１２６−３６（２００５）に詳述される。

本発明に使用される２種のモノクローナル抗体は、ヒトＩｇＧのＦｃの異なる部位を認識する。これらの認識部位はＦｃであれば特に限定はされないが、２種の抗体が互いに干渉しない部位であることが好ましい。上述のとおり、ヒトＩｇＧのＨ鎖には、４つのサブクラスがあるが、これらのサブクラスを共通して認識するモノクローナル抗体が好適である。ヒト血清に含まれるＩｇＧは、おおよそＩｇＧ１が６５％、ＩｇＧ２が２５％、ＩｇＧ３が６％、ＩｇＧ４が４％であり、ＩｇＧ１及びＩｇＧ２を共通認識するモノクローナル抗体は、実質的にヒトＩｇＧを共通認識する抗体と言え、本発明に使用される２種のモノクローナル抗体は、特にＩｇＧ１及びＩｇＧ２を共通して強く認識する抗体が好適である。

本発明に使用されるモノクローナル抗体は、ヒトＩｇＧのＦｃを含有する分子を認識することができる。このような分子には、天然のヒトＩｇＧ、ヒトＩｇＧのＦｃを含有するキメラ抗体が例示される。またリンパ液中、血中など体内での目的タンパク質の安定化のさために、当該タンパク質とヒトＩｇＧのＦｃとを融合して調製したヒトＩｇＧのＦｃと目的タンパク質の融合タンパク質が例示される。

本発明に使用されるモノクローナル抗体は、いわゆる細胞融合法によって作製されたハイブリドーマを使用して製造される。前記ハイブリドーマは、抗体産生細胞の集団と骨髄腫細胞と融合ハイブリドーマを形成させ、該ハイブリドーマをクローン化し、ヒトＩｇＧのＦｃを認識する抗体を産生するクローンを取捨選択し、さらに本発明の目的に好適なクローンを選別することによって樹立される。
抗体産生細胞には、例えばヒトＩｇＧ、そのＦｃ又はそれらの一部によって免疫された動物の脾細胞、リンパ節細胞、Ｂリンパ球等が利用できる。免疫させる動物としては、マウス、ラット、ウマ、ヤギ、ウサギ等が挙げられる。抗原としてはヒトＩｇＧやその断片が利用可能であり、例えば次のようにして製造され、免疫に使用される。例えば免疫原として用いるヒトＩｇＧを天然から得る場合は、ＩｇＧを含むヒト血清画分あるいは血漿画分から塩析、透析やアフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー等各種クロマトグラフィーを用いて精製することが可能である。かくして得られたヒトＩｇＧを直接、もしくはパパインやペプシンなどによる酵素消化後、Ｆｃを分取して、ＫＬＨ（Ｋｅｙｈｏｌｅ Ｌｉｍｐｅｔ Ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ）に代表されるキャリアタンパク質と結合後、又はＰＶＰ（ポリビニルピロリドン）と混合後、フロイントのアジユバントと混合して、動物の免疫に使用する。またはヒトＩｇＧやその断片を直接フロイントのアジユバントと混合し、動物の免疫に使用する。免疫は動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に１回に２０〜２００μｇの抗原−アジュバント混合物を、２〜３週間に１回、３〜７回投与することにより行われる。最終免疫より約３〜５日後、免疫動物から抗体産生細胞を分取する。

骨髄腫細胞としてはマウス、ラット、ヒト等由来のものが使用される。細胞融合は例えばＧ．ケラー（Ｇ．Ｋｏｈｌｅｒ）「ネーチャー（Ｎａｔｕｒｅ）第２５６巻、第４９５頁（１９７５）」に記載の方法、又はこれに準ずる方法により行われる。この際、３０〜５０％ポリエチレングリコール（分子量１０００〜６０００）を用い、抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを３０〜４０℃の温度下、約１〜３分間程度反応させる。細胞融合により得られたハイブリドーマはスクリーニングに付される。例えば、抗原としてヒトＩｇＧを用いた酵素抗体法等により前記ＩｇＧを認識する抗体を生産するハイブリドーマのスクリーニングが行われる。得られた抗体産生ハイブリドーマは、例えば限界希釈法によりクローン化される。得られたクローンは、次いで目的とする高感度、高特異性のモノクローナル抗体を産生するクローンを選択するため、例えば酵素抗体法等によるスクリーニングに供される。
こうして選ばれたクローンは、例えばあらかじめプリスタン（２，６，１０，１４−テトラメチルペンタデカン）を投与したＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内へ移植し、１０〜１４日後にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を採取する。この腹水からのモノクローナル抗体の回収は、イムノグロブリンの精製法として従来既知の硫安分画法、ポリエチレングリコール分画法、イオン交換クロマトグラフ法、ゲルクロマトグラフ法、アフイニテイークロマトグラフ法等を応用することで達成される。

本発明に使用されるヒトＩｇＧのＦｃに特異的なモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマのＥＬＩＳＡ法による選抜に、二次抗体としてポリクローナル抗体を用いると、抗原がＩｇＧであることから二次抗体が直接抗原に反応してしまうため、有効なモノクローナル抗体を検出することが困難である。しかしながら、ラットで作製した抗マウスＩｇＧラットモノクローナル抗体カクテル（３種のモノクローナル抗体の混合抗体）−ペルオキシダーゼ標識抗体がこの選抜に大いに威力を発揮する。このカクテルに使用するモノクローナル抗体は、それぞれサブクラスがマウスＩｇＧ（Ｇ１、２ａ、２ｂ、Ｇ３）クラス特異的であり、特異性の高いＩｇＧクラスのマウスＩｇＧ産生ハイブリドーマの選別を行うことができる。本発明の抗体を産生するハイブリドーマはこの手法を駆使することによってはじめて単離することが可能になった。

かくして得られた抗ＩｇＧ−Ｆｃモノクローナル抗体について、それぞれ多数の組み合わせをさらにスクリーニングすることにより、高感度で再現性よくヒトＩｇＧ−Ｆｃを測定できるモノクローナル抗体の組み合わせが決定される。

本発明の測定試薬は、上記のようにして得た２種のモノクローナル抗体を構成成分とする。本発明の測定試薬は、１０ｎｇ／ｍＬの濃度で存在する、ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質を検出することが可能である。本発明の一態様として、これらのモノクローナル抗体は、ハイブリドーマ細胞ｈＩｇＧ ４−１０Ｄにより産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ及びハイブリドーマ細胞ｈＩｇＧ １３−９Ｈにより産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈである。ハイブリドーマ細胞ｈＩｇＧ ４−１０Ｄは、平成１９年９月１９日（原寄託日）より独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６（郵便番号３０５−８５６６））にＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７として寄託されている。ハイブリドーマ細胞ｈＩｇＧ １３−９Ｈは、平成１９年９月１９日（原寄託日）より独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６（郵便番号３０５−８５６６））にＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６として寄託されている。これら２種の抗体を含有するヒトＩｇＧのＦｃ測定試薬は、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２両サブクラスのＦｃを強く認識することから、広くヒトＩｇＧのＦｃの測定に適用することができる。
前記の抗体、すなわちモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ及びモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈ、ならびにこれらの抗体を産生するハイブリドーマハイブリドーマ細胞ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ、ｈＩｇＧ １３−９Ｈは、いずれも本発明に包含される。

本発明の測定試薬は、測定方法として二抗体サンドイッチ法などの固相酵素免疫検定法（ＥＬＩＳＡ）を含むエンザイムイムノアッセイに用いることができる、ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬である。一態様として、被験試料はヒト血漿、血清などの体液又は細胞培養物等が挙げられる。また、本発明の測定試薬は、ヒト血清成分の混入追跡、ヒト抗体又はヒト化抗体の品質検定モニタリングに有用であり、Ｆｃ融合タンパク質の発現検出に使用できる。

本発明の測定試薬は、上記のようにして得た２種のモノクローナル抗体を構成成分とするが、これらの抗体のうち、一方は固相抗体、他方は標識抗体として使用する。ここで、固相抗体とは適切な不溶性担体に固定化された抗体を意味し、標識抗体とは適切な標識物質により標識化された抗体を意味する。固相抗体はＦｃとの抗原抗体反応によって対象試料中の被検物質であるヒトＩｇＧ（又はヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質）をトラップするために使用され、トラップされた前記の被験物質を検出するために標識抗体が使用される。本発明に使用される標識モノクローナル抗体は、特に限定されるものではないが、放射性同位元素、酵素、蛍光物質、発光物質、タンパク質などを用いて標識化される。放射性同位元素としては、特に限定されるものではないが、例えば［^１２５Ｉ］、［^１３１Ｉ］、［^３Ｈ］、［^１４Ｃ］などが好ましい。酵素としては、特に限定されるものではないが、安定で比活性の大きなものが好ましく、例えばβ−ガラクトシダーゼ、β−グルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、パーオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素などが挙げられる。蛍光物質としては、特に限定されるものではないが、例えばフルオレスカミン、フルオレッセインイソチオシアネートなどが挙げられる。発光物質としては、特に限定されるものではないが、例えばルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニンなどが挙げられる。さらに、ビオチンのような化合物を用いることができる。本発明の測定試薬において、標識抗体は溶液又は凍結乾燥等の各種形態で提供することができる。

固相抗体は、ビーズ、マイクロタイタープレート、試験管、ニトロセルロース膜、ナイロン膜等の担体表面に、当業者には公知の方法によって、ヒトＩｇＧのＦｃの少なくとも一部を認識する本発明の抗体を結合させることによって調製される。また、固相抗体を調製するための抗体、担体及び固相化に必要な試薬を、固定化する前の段階で提供しても良い。前記目的に使用される抗体も、本発明の固相抗体に含まれる。

本発明の測定試薬は、ヒトＩｇＧのＦｃを認識する２種のモノクローナル抗体に加えて、様々な試薬、材料、器具等を適宜含有させることができる。例えば、下記（３）の方法に使用する、所望の抗原を吸着させるための吸着プレートを含んでいてもよい。また、標識した抗体を検出するための試薬、使用する際にコントロールとなる試薬を含んでいてもよい。

（２）ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定方法
本発明のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質測定方法は、前記（１）に記載のタンパク質測定試薬を使用することを特徴とする方法である。被検物質と固相抗体を接触させ、これに標識抗体をさらに接触させ、これらのモノクローナル抗体と被検物質の複合体を検出することにより、ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質を測定することができる。さらに、被検試料と接触させた後に固相抗体を洗浄する工程及び／又は被験物質と結合しなかった標識抗体を洗浄により除去する工程を含んでいてもよい。また、固相抗体及び標識抗体は、前記（１）に記載の通り固相化及び標識化の操作により調製される。本発明の一態様として、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ、ｈＩｇＧ １３−９Ｈの使用が好適であり、固相抗体としてモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ、標識抗体としてモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈの組み合わせの測定系が特に好適である。本発明の方法においては、定性的な測定と、定量的な測定が含まれる。

本発明の方法は、被験試料中に含まれる１０ｎｇ／ｍＬ以上の、ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質が検出可能である。本発明の方法は、ヒトＩｇＧのＦｃの異なる部位を認識する２種のモノクローナル抗体を使用することにより、高い特異性を有する識別が可能である。

（３）所望の抗原を認識するヒトＩｇＧ量を測定する方法
本発明の所望の抗原を認識するヒトＩｇＧを測定する方法は、以下の工程を包含すること特徴とするタンパク質測定方法である。
（Ａ）所望の抗原と被検試料を接触させる工程；
（Ｂ）さらにヒトＩｇＧのＦｃを認識する標識化モノクローナル抗体を接触させる工程。

本願発明の１つの態様として、所望の抗原を固相化してもよい。固相化する担体は、特に限定はされないが例えば、ビーズ、マイクロタイタープレート、試験管、ニトロセルロース膜、ナイロン膜等が挙げられる。これらの担体表面に、当業者には公知の方法によって、所望の抗原を固相化してもよく、使用者が固相化するための試薬類を用意しても良い。

所望の抗原と被検試料を接触させる工程は、所望の抗原と被検試料が接触するような処理であれば特に限定はなく、例えば両者を混合すればよい。さらに、接触させた結果生じる接触物に対して、所望の抗原と結合しない物質を除去する工程を加えても良い。さらに、所望の抗原と結合した物質（ＩｇＧ）を洗浄する工程を加えても良い。この場合、所望の抗原が固相化されていると、所望の抗原に結合しない物質を除去又は洗浄することが容易である。

上記所望の抗原と被検試料を接触させる工程により生じる接触物、すなわち所望の抗原と被検試料中のヒトＩｇＧとの複合体に対し、前記（１）に記載するヒトＩｇＧのＦｃを認識する本発明のモノクローナル抗体をさらに接触させる。さらに、前記のＩｇＧと結合しないモノクローナル抗体を除去する工程及び／又は前記のＩｇＧと結合したモノクローナル抗体を洗浄する工程があってもよい。そして、所望の抗原と被検試料中のヒトＩｇＧの複合体に結合したモノクローナル抗体を検出することにより、被検物質中に存在する所望の抗原を認識するヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質を検出することができる。本発明の一態様として、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈが好適に使用できる。これらの抗体を前記のとおり標識して使用することにより、容易、かつ高感度に所望の抗原を認識するヒトＩｇＧを測定することができる。

本発明の方法では、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体を使用することにより、高い特異性を有する識別が可能となる。すなわち、被験試料中に１０ｎｇ／ｍｌ以上含まれる、所望の抗原を認識するヒトＩｇＧが検出可能である。

（４）ヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の精製方法
本発明のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の精製方法は、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体を使用することを特徴とする方法である。本発明の精製方法においては、前記モノクローナル抗体が固相化されていてもよい。本発明の一態様として、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈが好適に使用できる。

本発明の精製方法では、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体を使用することにより、高い精製効果が得られる。例えば、ヒト血清から、ＩｇＧを７０％以上の回収率と９８％以上の純度で精製することが可能となる。

以下に、本発明を実施例により更に具体的に説明するが、本発明は以下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。

実施例１ 抗体の作製
（１）抗原免疫・細胞融合
ヒト血清由来ヒトＩｇＧ １ｍｇ／ｍＬ溶液を抗原とし、マウス４匹に５０μｇ／ｓｈｏｔ／ｂｏｄｙの投与量で、初回免疫は、フロイント完全アジュバントとエマルジョンを形成させてから腹腔投与し、２回目以降は、市販の水溶性アジュバント（ＲＩＢＩ Ａｄｊｕｖａｎｔ）と混合して、２週間隔合計４回の投与を行った。以上の免疫操作は、マウスを２匹ずつ２群に分け、２週間の時差をおいて実施した。先に免疫を開始した群のマウスについて、眼窩静脈血清中のヒトＩｇＧに対する抗体価の上昇を確認した上で、両個体に最終免疫を実施した。最終免疫３日後にこの２個体の免疫動物の脾臓を摘出し、無血清培地で分散・洗浄した後、細胞融合用ミエローマ（Ｐ３Ｕ１）と５：１（脾臓：ミエローマ）の割合で混合し遠心上清を除いた細胞ペレットとした。この細胞混合物に適温に保温した５０％ＰＥＧ溶液１ｍＬを一定速度で、軽い振とうを加えながら混合し、合計３ｍＬまで加え、そのあとは、無血清培地７ｍＬを同様に一定速度で加え、１０ｍＬにフィルアップし、この操作で細胞融合を実施した。残る２匹のマウスも同様の最終免疫をさらに１回追加して、３日後に採取した脾臓を細胞融合に供した。
２回のチャレンジで、多数の融合細胞を取得した。この幅広い母集団より抗原に特異的な抗体をスクリーニングした。

（２）ＨＡＴ選択
融合細胞のスクリーニングには、クローニング培地（三光純薬社製）にＨＡＴ（Ｈ：ヒポキサンチン、Ａ：アミノプテリン、Ｔ：チミジン）を加えたものを用意し、融合日の翌日から３回の培地交換をこのＨＡＴ培地で行った。アミノプテリンは核酸のｄｅ ｎｏｖｏ合成を阻害するので、ヒポキサンチンとチミジンを用いたサルベージ経路を利用しない限り細胞の生育ができない。上記経路に必須なＨＧＰＲＴ（ヒポキサンチン・グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ）酵素を欠損しているミエローマ細胞はＨＡＴ培地中では生育できない。Ｂ細胞にはこの酵素があるので、融合したハイブリドーマのみがＨＡＴ培地中で生育できることになる。したがって、この培地交換操作で成長してきた細胞は、脾臓由来のｄｅ ｎｏｖｏ合成系を持ちかつ不死化した融合細胞と言えた。

（３）スクリーニング
免疫原と同様のヒトＩｇＧを、５μｇ／ｍＬ ＰＢＳ、５０μＬ／ｗｅｌｌで、イムノプレート（ナルジェヌンク社製）上に添加し、４℃で一晩放置してＩｇＧを物理吸着させた。ブランク用抗原として、ウシ血清より精製したポリクローナルウシＩｇＧを準備し、５μｇ／ｍＬ ＰＢＳ、５０μＬ／ｗｅｌｌで同様にコーティングした。上記の操作の後、抗原溶液を捨てて、５０％Ｂｌｏｃｋｅｒ Ｃａｓｅｉｎ（ピアス社製）を２００μＬ／ｗｅｌｌになるように加えて、室温（２０〜３０℃）で１時間放置してブロッキング操作を行った。その後、ブロッキング溶液を捨て、上記（２）で得られた融合細胞の培養上清（原液使用）を、ナンバリングした上で抗原プレートに投入し、一次反応を室温（２０〜３０℃）で１時間行った。ＰＢＳで反応終了後の各ウェルを３回洗浄し、ペーパータオルで充分に液を切った。検出にはマウスＩｇＧでラットを免疫し作製した抗マウスＩｇＧラットモノクローナル抗体カクテル−ペルオキシダーゼ標識抗体を使用した。前記抗体を１μｇ／ｍＬ、５０μＬ／ｗｅｌｌで添加し、室温（２０〜３０℃）で１時間反応を行った。その後、標識抗体液を捨て、ウェルをＰＢＳで４回洗浄した。ペーパータオルに打ち付けて、洗浄液を充分に除き、ペルオキシダーゼ基質であるＡＢＴＳ［２，２’−アジノビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸）］溶液（ピアス社製）を５０μＬ／ｗｅｌｌ投入し、室温で１５〜３０分発色させ、強弱ある陽性株を幅広く検出した。等量の１５０ｍＭ シュウ酸を加えて反応を停止させた後、肉眼及びプレートリーダーで陽性株を確認し、ブランク抗原に反応せず、目的のヒトＩｇＧ蛋白に反応する株、総数２０株を選抜した。

（４）陽性株選抜とクローニング・株樹立
二次スクリーニングとして、ブタ、ヒツジ、モルモット、ヤギやニワトリＩｇＧに対する交差反応がなく、かつヒトＩｇＧに強く反応する４種類のハイブリドーマ元株を選択し、直ちに限界希釈法によりクローニングを行った。クローニングされた４種類のハイブリドーマについて、それぞれクローンを各２種（本株・亜株）確保した。

（５）マウス腹水採取
上記の４種類のハイブリドーマクローンは、本株・亜株ともに凍結細胞としてマスター細胞を保管し、ほぼ並行しながら、本株をＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内で大量培養し、腹水として粗精製抗体を得た。腹水は、１個体あたりおよそ３〜５ｍＬであった。

（６）抗体精製
得られた腹水は、５０％飽和硫安塩析・透析を行い、その画分をＰｒｏｔｅｉｎ Ａカラムに供した。平衡化緩衝液は、３Ｍ ＮａＣｌ、１．５Ｍ ｇｌｙｃｉｎ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ８．９）の高塩濃度のものを調製し、どのサブクラスのＩｇＧであっても良好に結合する条件を採用した。平衡化緩衝液で２倍希釈した腹水硫安塩析画分を腹水液量とほぼ等量の容積のＰｒｏｔｅｉｎ Ａ樹脂にアプライし、溶出液の吸光度Ａ２８０がほぼゼロになるまで平衡化緩衝液でカラムを洗った。その後、クエン酸緩衝液（ｐＨ４．０）とクエン酸緩衝液（ｐＨ３．０）の２段階で溶出を行った。サブクラスＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａは主にｐＨ４．０で溶出され、ＩｇＧ２ｂは、ｐＨ３．０で溶出された。溶出画分は、ただちに１Ｍ Ｔｒｉｓ緩衝液（ｐＨ９．０）で中和し、硫安塩析濃縮を行った。最終抗体は、ＰＢＳで透析し、０．２２μｍフィルターろ過により無菌化した。抗体を１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（還元加熱条件）により分析し、Ｈ鎖とＬ鎖以外のものがない良好な純度の抗体であることを確認した。

（７）抗体修飾
得られた精製抗体のうち、一定量（試験的に各抗体１ｍｇ）を用いて、過ヨウ素酸法によるペルオキシダーゼ標識を施した。過ヨウ素酸法は、ペルオキシダーゼの糖鎖ジオールを脱水素酸化させてシッフベースを形成させ、抗体側のアミノ基に結合させる方法である。４種類の抗体は、すべてペルオキシダーゼ標識体とした。ヒトＩｇＧのＦｃを有する融合タンパク質を固相化したプレート上で、これらの標識抗体の段階希釈物を反応させた後にペルオキシダーゼの検出反応に供した。その結果を表１に示す。

表１の結果から、抗原との結合活性を保持した状態で酵素標識体を作製できたこと、各抗体がヒトＩｇＧのＦｃを認識することが確認できた。

実施例２ 測定系の構築及び性能試験
（１）測定系構築
固相と標識とに実施例１で得られた４種類の抗体のそれぞれを用い、合計１６とおりの組み合わせで、ヒトＩｇＧを定量できる系をスクリーニングした。試験された抗ヒトＩｇＧモノクローナル抗体の種々の組み合わせの中にはヒトＩｇＧのサブクラス依存的な結合反応を示すものも多数存在した。本スクリーニングによって、ヒトＩｇＭに交差することなく高感度にヒトＩｇＧのサブクラスを網羅して測りこむことのできるＩｇＧのＦｃのサブクラス共通測定系をようやく１種類得ることに成功した。

（２）測定系の性能試験
実施例２−（１）でのスクリーニングから、固相抗体にモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ、標識抗体にモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈを用いる組み合わせの測定系が確立した。
その測定系を使用した測定方法を以下に示す。
（Ａ）イムノプレート器材（ナルジェヌンク製）に、ＰＢＳで１０μｇ／ｍｌに希釈したモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ溶液を１００μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃で一晩放置する。
翌日、抗体溶液を捨て、２５％ブロックエース＋０．３Ｍマルトース／ＰＢＳ溶液（ブロッキング溶液）を２００μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃一晩放置し、器材余剰部分をタンパク質ブロックする。
翌日、ブロッキング溶液を捨て、以下の測定に使用する。
（Ｂ）各濃度の検体を１００μＬずつマイクロピペットで各ｗｅｌｌに２連ずつ加え、室温（２０〜３０℃）で１時間反応させる。（第一反応）
反応液を捨て、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで３回洗浄後、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈ標識抗体液を１００μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、室温（２０〜３０℃）で一時間反応させる。（第二反応）
反応液を捨て、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで４回洗浄後、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）溶液（ＢｉｏＦＸ社製）を１００μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、室温（２０〜３０℃）で１５分反応させる。（第三反応）
１Ｎ 硫酸を１００μＬずつ、ＴＭＢＺ溶液を入れた順番に各ｗｅｌｌに加え、反応を停止させた後よく混和する。
蒸留水を対照としてマイクロプレートリーダーをブランク補正し、波長４５０ｎｍで吸光度を測定する。
標準曲線を作成し、検体の吸光度から対応するヒトＩｇＧ濃度を読み取る。

上記測定系により、ヒトＩｇＧ標準品（シグマ社製）を測定した結果を表２に示す。表２に示すように、この系では１０ｎｇ／ｍＬのヒトＩｇＧであっても検出可能であった。

（３）同時再現性試験
実施例２−（２）記載の測定系で同時再現性試験を行った。表３に結果を示すように、ＣＶ値は５％以下で良好な同時再現性を示した。

（４）日差再現性試験
実施例２−（２）記載の測定系で日差再現性試験を行った。表４に結果を示すように、良好な日差再現性を示した。

（５）添加回収試験
実施例２−（２）記載の測定系でヒトＩｇＧの添加回収試験を行った。各種濃度のヒト血清検体２種を等量に混合したサンプルを測定し、実測値からヒトＩｇＧ量の理論値との差（＝回収率）を求めた。表５及び表６に結果を示すように、添加回収率８０％から１３０％（平均値１０１．２７％）と良好な結果が得られた。

（６）ヒトＩｇＧのＦｃとの反応性
実施例２−（２）記載の測定系でヒトＩｇＧのＦｃとの反応性試験を行った。ヒトＩｇＧのＦｃとして、キメラ抗体（抗ＧＭＰ１４０ ＰＬ７−６Ｆ（ａｂ’）２とＨｕｍａｎ Ｆｃ ｒｅｇｉｏｎのキメラ抗体、特開平５−３０４９８２号公報）及びヒトＩｇＧのＦｃを含有する融合タンパク質を産生する細胞（Ｍ６０１−２）の培養上清を使用した。表７に結果を示すように、実施例２−（２）記載の測定系でヒトＩｇＧのＦｃを検出できることを確認した。

（７）ヒトＩｇＧ各サブクラスとの反応性
実施例２−（２）記載の測定系でヒトＩｇＧ各サブクラスとの反応性試験を行った。各サブクラスのヒトＩｇＧ（シグマ社製）は、１００μＬ／ｍＬに調製して使用した。表８に結果を示すように、実質的にヒト血清中のＩｇＧの各サブクラスを共通して検出できることが示された。

（８）交差反応性
実施例２−（２）記載の測定系で交差反応性試験を行った。Ｈｕｍａｎ Ｓｅｒｕｍはインフォームド・コンセントの得られたヒト健常人ドナーより採取し、各種の動物血清は、コスモバイオ社より入手し、１×１０^２、１×１０^５、２×１０^５に希釈して使用した。表９に結果を示す。表９に示すように、ヒト特異的に検出可能であることが示された。

実施例３ キットの応用例
以下、当該キットの応用例として、ヒト尿（随時尿）測定例を示す。
インフォームド・コンセントの得られたヒト健常人ドナーより１１回に渡り採尿を実施した。各サンプルを１０倍希釈したものを実施例２−（２）記載の測定系を用いて測定した。その結果を表１０に示す。

実施例４ インフルエンザウイルスを認識するヒトＩｇＧの検出
イムノプレート器材（ナルジェヌンク製）に、ＰＢＳで５０倍に希釈したインフルエンザＨＡワクチン（ビケンＨＡ、阪大微生物病研究会）を５０μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃で一晩放置した。
翌日、溶液を捨てＰＢＳで２回洗浄した後、５０％Ｂｌｏｃｋｅｒ Ｃａｓｅｉｎを含むＰＢＳ溶液（ブロッキング溶液）を２００μＬ／ｗｅｌｌでを投入し、室温で２時間放置し、器材余剰部分をタンパク質ブロックした。その後、ブロッキング溶液を捨て、以下の測定に使用した。
検出対象として、実施例２−（８）で使用したウシ血清、ブタ血清、ヒト血清、並びにネスコールＸＡ（アルフレッサファーマ社製）、ワコー血清（和光純薬工業社製）、コンセーラ（日水製薬社製）、ネスコール（異常域）（アルフレッサファーマ社製）を使用した。各検体を１０^３、１０^４、１０^５倍に希釈し、１００μＬずつマイクロピペットで各ｗｅｌｌに加え、２０℃で１時間反応させた（第一反応）。反応液を捨て、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで３回洗浄後、モノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ標識抗体液を１００μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、２０℃で一時間反応させた（第二反応）。反応液を捨て、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで４回洗浄後、ＴＭＢＺ溶液を１００μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、２０℃で１５分反応させた（第三反応）。
１Ｎ 硫酸を１００μＬずつ、ＴＭＢＺ溶液を入れた順番に各ｗｅｌｌに加え、反応を停止させた後よく混和した。
蒸留水を対照としてマイクロプレートリーダーをブランク補正し、波長４５０ｎｍで吸光度を測定し、標準曲線を作成し、検体の吸光度からインフルエンザウイルスを認識するヒトＩｇＧを測定した。
その結果を表１１に示す。表１１は各検体の吸光度の測定値から、吸光度２．０以上を４＋、同１．０以上を３＋、同０．５以上を２＋、同０．１以上を１＋、同０．０９以上を±、同０．０９未満を−と評価した。その結果、本発明のモノクローナル抗体は良好な反応性を示した。

本発明は、ヒトＩｇＧを測定することにおいて高感度な測定試薬を提供する。本発明の測定試薬を用いて、免疫系に関する各種疾患の病勢や薬剤による治療効果、及び予知、診断に有用な情報を提供することができる。

Claims (7)

1. 被験試料中のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質を測定する試薬において、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成成分とし、前記モノクローナル抗体のうち、一方の抗体が標識抗体であり、他方の抗体が固相抗体であることを特徴とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬。
2. モノクローナル抗体が寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ及びモノクローナル抗体が寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈである請求項１記載のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬。
3. 測定方法としてエンザイムイムノアッセイを用いる、請求項１又は２記載のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬。
4. 被験試料が、血漿、血清又は細胞培養物から選ばれる請求項１〜３いずれかに記載のヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定試薬。
5. 請求項１記載のタンパク質の測定試薬を使用することを特徴とするヒトＩｇＧのＦｃを含有するタンパク質の測定方法。
6. 寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ ４−１０Ｄ及び寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体ｈＩｇＧ １３−９Ｈから選択される、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体。
7. 寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６７で表されるハイブリドーマ細胞及び寄託番号ＦＥＲＭ Ｐ−２１３６６で表されるハイブリドーマ細胞から選択される、ヒトＩｇＧのＦｃを認識するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞。