JP2008044947A - 独特の髄膜炎菌性ｂエピトープを規定するモノクローナル抗体およびワクチン組成物の調製におけるそれらの使用 - Google Patents

Abstract

【課題】哺乳動物被験体において、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂを予防するための方法、および／または、哺乳動物被験体において、Ｅ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を予防するための方法を提供すること。
【解決手段】ＭｅｎＢ ＰＳの独特のエピトープ分子模倣物を単離するための方法であって、この方法を使用して同定される分子模倣物に関するもので、（１）ＭｅｎＢ ＰＳ独特のエピトープの推定分子模倣物を含む分子の集団を提供する工程、（２）上記分子模倣物が存在する場合は、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体に対するモノクローナル抗体と、上記分子模倣物との間の免疫学的結合を可能にする条件下で上記分子の集団とその抗体と接触させて、複合体を提供する工程、そしてこれらのモノクローナル抗体を産出するハイブリドーマを捉えつつ、（３）非結合分子から上記複合体を分離する工程を包括する。
【選択図】なし

Description

技術分野
本発明は、一般に、細菌病原体に関する。特に、本発明は、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂに対する機能活性を誘発し、また自己免疫活性を欠失する抗体、これを得る方法および使用する方法、ならびにこの抗体を使用して同定される分子模倣物に関する。

発明の背景
Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓは、細菌性髄膜炎および敗血症の原因物質である。髄膜炎菌は、莢膜および細胞壁の抗原の免疫学的特徴に基づいて血清学的群に分けられる。現在認識されている血清型には、Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｗ−１３５、Ｘ、Ｙ、Ｚ、および２９Ｅが含まれる。血清型特異性を担うポリサッカライドは、いくつかのこれらの群（Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｗ−１３５、およびＹを含む）から精製されている。

Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（「ＭｅｎＢ」）は、合衆国およびヨーロッパに居住する幼児および小児における細菌性髄膜炎の約５０パーセントを占める。この生物はまた、若年成人に致死的な敗血症を引き起こす。青年において、外膜タンパク質（ＯＭＰ）粒子からなる実験的ＭｅｎＢワクチンが、約５０％防御的であることが見出されている。しかし、防御は、ワクチン接種された幼児および小児（疾患の最も大きな危険にある年齢群）において観察されていない。さらに、ＯＭＰワクチンは、血清型特異的かつサブタイプ特異的であり、そして優勢なＭｅｎＢ株は、地理的および時間的変化の両方に供され、このようなワクチンの有用性を制限する。

莢膜ポリサッカライドに基づく有効なワクチンは、血清型Ａ、Ｃ、Ｙ、およびＷ１３５によって引き起こされる髄膜炎菌性疾患に対して開発されている。しかし、ＭｅｎＢポリサッカライドワクチンを開発する類似の試みは、莢膜ＭｅｎＢポリサッカライド（本明細書中で、「ＭｅｎＢ ＰＳ」と呼ばれる）の乏しい免疫原性に起因して失敗している。ＭｅｎＢ ＰＳは、（Ｎ−アセチル（α２→８）ノイラミン酸のホモポリマーである。Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ Ｋ１は、同一の莢膜ポリサッカライドを有する。ＭｅｎＢ ＰＳによって惹起される抗体は、宿主のポリシアル酸（ＰＳＡ）と交差反応する。ＰＳＡは、胎児および新生児組織において豊富に、特に脳組織中に見出される神経細胞接着分子（「ＮＣＡＭ」）上で発現される。ＰＳＡはまた、腎臓、心臓、および臭神経を含む成人組織においてより低い程度にまで見出される。従って、ほとんどの抗ＭｅｎＢ ＰＳ抗体もまた、自己抗体である。それゆえ、このような抗体は、胎児発達に有害に影響を与えるか、または自己免疫疾患を導く能力を有する。

ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、ＭｅｎＢ ＰＳの不良な免疫原性を回避するための試みにおいて調製されている。例えば、Ｃ_３〜Ｃ_８ Ｎ−アシル置換ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体が記載されている。Ｊｅｎｎｉｎｇｓらに対するＥＰ公開第５０４，２０２Ｂを参照のこと。同様に、Ｊｅｎｎｉｎｇｓらに対する米国特許第４，７２７，１３６号は、Ｎ−プロピオニル化ＭｅｎＢ ＰＳ分子（本明細書中で「ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ」と呼ばれる）を記載する。ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ複合糖質で免疫したマウスは、ＩｇＧ抗体の高力価を誘発すると報告された。Ｊｅｎｎｉｎｇｓら（１９８６）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３７：１７０８。ウサギにおいて、抗体の２つの異なる集団（２つの異なるエピトープに結合し、１つは天然のＭｅｎＢ ＰＳにより共有されていて、１つは共有されていないと報告されている）が、誘導体を用いて産生された。殺菌活性が、ＭｅｎＢ ＰＳと交差反応しなかった抗体集団において見出された。Ｊｅｎｎｉｎｇｓら（１９８７）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．１６５：１２０７。この結合体によって惹起された防御的抗体と反応する細菌表面のエピトープの同一性は、未知のままである。

ペプチドは、ポリサッカライド特異的抗体、および他のポリサッカライド結合タンパク質に結合することによってポリサッカライドの模倣物として作用し得る。例えば、コンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）（これは、末端α連結マンノースまたはグルコース残基を有するオリゴサッカライドに結合する）は、ｐＩＩＩコートタンパク質のアミノ末端に短いペプチド配列を有する細菌性ファージのランダムライブラリー由来のペプチド模倣物を選択するために使用されている。Ｏｌｄｅｎｂｅｒｇら（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９：５３９３；Ｓｃｏｔｔら（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９：５３９８。同様に、モノクローナル抗体は、ファージライブラリー由来の腺ガン細胞の表面上に存在する炭水化物のペプチド模倣物を同定した。Ｈｏｅｓｓら（１９９３）Ｇｅｎｅ １２８：４３。

ペプチドは、ポリサッカライド特異的抗体もまた惹起し得る。例えば、Ｗｅｓｔｅｒｉｎｋら（１９８８）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．５６：１１２０は、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｃ（「ＭｅｎＣ」）莢膜ポリサッカライドに対するモノクローナル抗体を、抗イディオタイプ抗体を惹起するために使用した。抗イディオタイプ抗体で免疫したマウスは、致死的用量のＭｅｎＣ細菌での感染から防御された。これらの実験者らは、引き続き、ＭｅｎＣ抗イディオタイプ抗体のペプチドフラグメントが血清抗ＭｅｎＣ抗体を誘発し、そして動物をＭｅｎＣ細菌での致死的抗原投与後の菌血症および死から防御することを示した。Ｗｅｓｔｅｒｉｎｋら（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２：４０２１。

しかし、現在までに、このようなアプローチはＭｅｎＢワクチンの開発に関して採用されていない。ＭｅｎＢに対する安全でかつ効果的なワクチンの産生が特に望ましいことは、容易に明らかである。

発明の要旨
本発明は、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体に対する機能的に活性な抗体の発見に基づいている。ここで、この抗体は、本明細書中で記載されるアッセイを使用して決定した場合、宿主組織と交差反応しないか、または最小限に交差反応する。それゆえ、これらの抗体は、自己免疫疾患を誘発する最小の危険を提示し、そして本明細書中で「非自己反応性」と呼ばれる。本明細書中で自己反応性を決定するために使用されるアッセイには、細胞表面上に長鎖ポリシアル酸残基を発現する神経芽細胞腫細胞株に対する結合アッセイが含まれる。詳細には、これらのアッセイにおいてネガティブな抗体は、自己反応性を欠失すると考えられる。非自己反応性抗体は、ワクチン組成物中で使用され得る独特のＭｅｎＢ ＰＳエピトープの分子模倣物を同定するために特に有用である。さらに、抗体、抗体のヒト化バージョン、それらのフラグメントおよび機能的等価体もまた、ＭｅｎＢおよびＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患に対する、および／またはそのための治療に対する補助物として、受動免疫において使用される。このような分子は、本明細書中に記載される自己反応性アッセイで決定した場合、宿主組織中のポリシアル酸に結合しないので、ＭｅｎＢおよびＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患の処置および／または予防のための安全なそして効率的な方法を提供する。

従って、１つの実施態様において、本発明は、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体に対する抗体に関する。ここで、この抗体は、宿主組織と自己反応性ではない。このような抗体は、ＭｅｎＢ細菌に対する機能活性を誘発し得るとしてさらに特徴づけられる。このような抗体の１つの特定の群はまた、ＥＬＩＳＡにおいてＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ莢膜ポリサッカライド（ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳ）と非交差反応性であるとして特徴づけられる。しかし、これらの抗体は、それらがＢ群莢膜細菌の細胞表面に結合し得るが、莢膜欠損変異体には結合し得ない点で抗莢膜性である。

本発明の別の実施態様は、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体に対するモノクローナル抗体、およびこれらのモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマに関する。

本発明の他の実施態様は、本発明の抗体分子によって結合され得る独特のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂエピトープに関する。

本発明のなおさらなる実施態様は、ＭｅｎＢ ＰＳの独特のエピトープの分子模倣物を単離するための方法、およびこの方法を使用して同定される分子模倣物に関する。この方法は、以下を包含する：
（ａ）ＭｅｎＢ ＰＳの独特のエピトープの推定分子模倣物を含む分子の集団を提供する工程；
（ｂ）上記分子模倣物が存在する場合には、上記抗体と上記分子模倣物との間の免疫学的結合を可能にする条件下で、上記分子の集団をその抗体と接触させて複合体を提供する工程；そして
（ｃ）非結合分子から上記複合体を分離する工程。

別の実施態様において、本発明は、ＭｅｎＢの独特のエピトープを、薬学的に受容可能な賦形剤と組み合わせて含むワクチン組成物に関する。

なお別の実施態様において、本発明は、ＭｅｎＢの独特のエピトープの分子模倣物を、薬学的に受容可能な賦形剤と組み合わせて含むワクチン組成物に関する。

なおさらなる実施態様において、本発明は、ＭｅｎＢの独特のエピトープの抗イディオタイプ抗体分子模倣物を、薬学的に受容可能な賦形剤と組み合わせて含むワクチン組成物に関する。

なおさらなる実施態様において、本発明は、上記の抗体を含む薬学的組成物に関する。

別の実施態様において、本発明は、上記の薬学的組成物の有効量を被験体に投与する工程を包含する、哺乳動物被験体においてＭｅｎＢおよび／またはＥ．ｃｏｌｉ．Ｋ１疾患を処置または予防するための方法に関する。

本発明のこれらおよび他の実施態様は、本明細書中の開示を考慮することにより、当業者に容易に想到される。

本発明はさらに、以下を提供する：
・項目１．Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ莢膜ポリサッカライド誘導体に対する単離された抗体であって、自己反応性ではない、抗体。
・項目２．上記抗体が、ＥＬＩＳＡにおいてＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ莢膜ポリサッカライド（ＭｅｎＢ ＰＳ）と交差反応しない、項目１に記載の抗体。
・項目３．上記抗体が、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ生物に対する機能活性を示す、項目１に記載の抗体。
・項目４．上記抗体が、モノクローナル抗体である、項目１に記載の抗体。
・項目５．項目１に記載の抗体によって結合され得る、独特のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂエピトープ。
・項目６．項目２に記載の抗体によって結合され得る、独特のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂエピトープ。
・項目７．項目３に記載の抗体によって結合され得る、独特のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂエピトープ。
・項目８．項目４に記載の抗体によって結合され得る、独特のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂエピトープ。
・項目９．項目４に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。
・項目１０．ＳＥＡＭ−２（ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ−１２３８０）、ＳＥＡＭ−３（ＡＴＣＣ番号ＨＢ−１２１７０）、ＳＥＡＭ−１２（ＡＴＣＣ番号ＣＲＬ−１２３８１）、およびＳＥＡＭ−１８（ＡＴＣＣ番号ＨＢ−１２１６９）からなる群から選択されるハイブリドーマ細胞株を同定する特徴を有する、項目９に記載のハイブリドーマ。
・項目１１．Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（ＭｅｎＢ）の独特のエピトープの分子模倣物を単離するための方法であって、以下：
（ａ）ＭｅｎＢの独特のエピトープの推定分子模倣物を含む分子の集団を提供する工程；
（ｂ）上記分子模倣物が存在する場合には、項目１に記載の抗体と上記分子模倣物との間の免疫学的結合を可能にする条件下で、上記分子の集団を上記抗体と接触させて複合体を提供する工程；および
（ｃ）非結合分子から上記複合体を分離する工程、
を包含する、方法。
・項目・項目１２．上記分子の集団が、ペプトイドライブラリーを含む、項目１１に記載の方法。
・項目１３．上記分子の集団が、ペプチドライブラリーを含む、項目１１に記載の方法。
・項目１４．上記分子の集団が、ファージディスプレイライブラリーを含む、項目１１に記載の方法。
・項目１５．項目１１に記載の方法を用いて単離される、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（ＭｅｎＢ）の独特のエピトープの分子模倣物。
・項目１６．項目１に記載の抗体分子を用いて産生される抗イディオタイプ抗体分子から構成される、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（ＭｅｎＢ）の独特のエピトープの分子模倣物。
・項目１７．Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（ＭｅｎＢ）の独特のエピトープの分子模倣物であって、配列番号１〜６６、および配列番号６７からなる群から選択される配列に実質的に相同であるアミノ酸配列を有するペプチドから構成される、分子模倣物。
・項目１８．上記模倣物が、配列番号８に実質的に相同であるアミノ酸配列を有するペプチドから構成される、項目１７に記載の模倣物。
・項目１９．Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（ＭｅｎＢ）の独特のエピトープを、薬学的に受容可能な賦形剤と組み合わせて含む、ワクチン組成物。
・項目２０．Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂ（ＭｅｎＢ）の独特のエピトープの分子模倣物を、薬学的に受容可能な賦形剤と組み合わせて含む、ワクチン組成物。
・項目２１．上記分子模倣物が、抗イディオタイプ抗体分子を含む、項目２０に記載のワクチン組成物。
・項目２２．上記分子模倣物が、核酸分子を含む、項目２０に記載のワクチン組成物。
・項目２３．上記分子模倣物が、ペプチド分子を含む、項目２０に記載のワクチン組成物。
・項目２４．上記ペプチド分子が、配列番号１〜６６、および配列番号６７からなる群から選択される配列に実質的に相同であるアミノ酸配列を有する、項目２３に記載のワクチン組成物。
・項目２５．上記エピトープが、キャリア分子に共有結合している、項目１９に記載のワクチン組成物。
・項目２６．上記分子模倣物が、キャリア分子に共有結合している、項目２０に記載のワクチン組成物。
・項目２７．上記ペプチド分子が、キャリア分子に共有結合している、項目２３に記載のワクチン組成物。
・項目２８．アジュバントをさらに含む、項目１９に記載のワクチン組成物。
・項目２９．アジュバントをさらに含む、項目２０に記載のワクチン組成物。
・項目３０．哺乳動物被験体において、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂおよび／またはＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を予防するための方法であって、上記被験体に項目１９に記載のワクチンの有効量を投与する工程を包含する、方法。
・項目３１．哺乳動物被験体において、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂおよび／またはＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を予防するための方法であって、上記被験体に項目２０に記載のワクチンの有効量を投与する工程を包含する、方法。
・項目３２．哺乳動物被験体において、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂおよび／またはＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を予防するための方法であって、上記被験体に項目２３に記載のワクチンの有効量を投与する工程を包含する、方法。
・項目３３．項目１に記載の抗体を、薬学的に受容可能なビヒクルと組み合わせて含む、薬学的組成物。
・項目３４．哺乳動物被験体において、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂおよび／またはＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を処置または予防するための方法であって、上記被験体に項目３３に記載の薬学的組成物の有効量を投与する工程を包含する、方法。

発明の詳細な説明
本発明の実施は、他に示さなければ、当該分野の技術内の免疫学、微生物学、分子生物学、および組換えＤＮＡ技術の従来の方法を用いる。このような技術は、文献において十分に説明される。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋら Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ（第２版、１９８９）；ＤＮＡ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ａｐｐｒｏａｃｈ 第Ｉ巻＆第ＩＩ巻（Ｄ．Ｇｌｏｖｅｒ編）；Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｎ．Ｇａｉｔ編、１９８４）；Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｈａｍｅｓ＆Ｓ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編、１９８５）；Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒａｎｓｌａｔｉｏｎ（Ｂ．Ｈａｍｅｓ ＆ Ｓ．Ｈｉｇｇｉｎｓ編、１９８４）；Ａｎｉｍａｌ Ｃｅｌｌ Ｃｕｌｔｕｒｅ（Ｒ．Ｆｒｅｓｈｎｅｙ編、１９８６）；Ｐｅｒｂａｌ、Ａ Ｐｒａｃｔｉｃａｌ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ（１９８４）；およびＨａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ、Ｉ〜ＩＶ巻（Ｄ．Ｍ．ＷｅｉｒおよびＣ．Ｃ．Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ編、１９８６、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎ）を参照のこと。

本明細書および添付の請求の範囲で使用される場合、単数形態「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」は、他に内容が明確に指示しなければ、複数の参照を含む。

Ｉ．定義
本発明を記載するにおいて、以下の用語が用いられ、そして以下に示すように定義されることが意図される。

本明細書中で使用される場合「ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体」は、ＭｅｎＢの天然の莢膜ポリサッカライドの化学的改変によって得られた分子をいう。このようなＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、適切なアシル基（例えば、Ｃ_３〜Ｃ_８およびより高級なアシル基（ここで用語「アシル基」は任意のアシル化された直鎖状分子、分枝状分子、脂肪族分子、または芳香族分子を含む））との、天然の分子のシアル酸残基Ｎ−アセチル基の置換によって改変されているＭｅｎＢ ＰＳ分子を含むが、これらに限定されない。本明細書中での使用に対して特に好ましいＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、天然のＭｅｎＢ ＰＳのＮ−アセチル基についてのＮ−プロピオニル基での置換を含む（本明細書中で「ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ」と呼称）。Ｎ−アシル置換ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体（ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む）を合成するための方法は、当該分野で公知であり、そして例えば、Ｊｅｎｎｉｎｇｓらへの米国特許第４，７２７，１３６号およびさらにＪｅｎｎｉｎｇｓらへのＥＰ公開番号第５０４，２０２ Ｂ号に記載される。

ＭｅｎＢ ＰＳまたはＭｅｎＢ ＰＳ誘導体の「分子模倣物」は、ＭｅｎＢ細菌上に発現される少なくとも１つの「独特の」エピトープを機能的に模倣する分子である。「独特のエピトープ」は、宿主組織のポリシアル酸と交差反応しない（それゆえ自己免疫活性を欠く）か、または最少に交差反応するかのいずれかである機能的に活性な（例えば、オプソニ媒介性殺菌および／または補体媒介性殺菌）抗ＭｅｎＢ抗体の形成を惹起し得るエピトープである。このような分子模倣物は、ワクチン組成物において有用であり、そして以下でさらに記載される診断的な適用または治療的適用のための抗体の惹起において有用である。分子模倣物には、小有機化合物；核酸および核酸誘導体；サッカライドまたはオリゴサッカライド；ペプチド、タンパク質、およびそれらの誘導体（例えば、非ペプチド有機部分、アミノ酸および／またはペプチド結合を含んでもよいし、含まなくてもよいが、ペプチドリガンドの構造的特徴および機能的特徴を保持する合成ペプチド、ならびにＮ−置換グリシンを含む分子であるペプトイドおよびオリゴペプトイド（例えば、Ｓｉｍｏｎら（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９：９３６７に記載されるペプトイドおよびオリゴペプトイド））を含むペプチド模倣物；ならびに抗体（これは、抗イディオタイプ抗体を含む）が挙げられるが、これらに限定されない。分子模倣物の同定および生成のための方法は、以下により十分に記載される。

用語「抗体」は、ポリクローナル抗体調製物およびモノクローナル抗体調製物ならびにハイブリッド抗体、変化された抗体、Ｆ（ａｂ’）_２フラグメント、Ｆ（ａｂ）分子、Ｆｖフラグメント、単一ドメイン抗体、キメラ抗体、およびもとの抗体分子の免疫学的結合特性を示すそれらの機能的なフラグメントを含む調製物を含む。

本明細書中で使用される用語「モノクローナル抗体」は、同質な抗体集団を有する抗体組成物をいう。この用語は、それが作製される様式によって限定されない。この用語は、全免疫グロブリン分子ならびにＦａｂ分子、Ｆ（ａｂ’）_２フラグメント、Ｆｖフラグメント、およびもとのモノクローナル抗体分子の免疫学的結合特性を示す他の分子を含む。ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体を作製する方法は当該分野で公知であり、そして以下でより十分に記載される。

「抗原」は抗体分子によって特異的に結合され得る任意の基質を含むように本明細書中で定義される。「免疫原」は、抗原特異的免疫応答を生じるリンパ球活性化を開始し得る抗原である。

「エピトープ」によって、特異的Ｂ細胞およびＴ細胞が応答する抗原上の部位が意味される。この用語はまた、「抗原決定基」または「抗原決定部位」と交換可能に使用される。ペプチドエピトープは、エピトープに独特な空間的コンフォメーション中に３つ以上のアミノ酸を含み得る。一般に、エピトープは、少なくとも５つのこのようなアミノ酸からなり、より通常には少なくとも８〜１０のこのようなアミノ酸からなる。アミノ酸の空間的コンフォメーションを決定する方法は当該分野で公知であり、そして例えば、Ｘ線結晶学、および２次元核磁気共鳴分光法を含む。さらに、所定のタンパク質におけるエピトープの同定は、当該分野で周知の技術を使用して容易に達成される。例えば、Ｇｅｙｓｅｎら（１９８４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８１：３９９８（所定の抗原における免疫原性エピトープの位置を決定するために迅速にペプチドを合成する一般的な方法）；米国特許第４，７０８，８７１号（抗原のエピトープを同定し、そして化学的に合成するための手順）；およびＧｅｙｓｅｎら（１９８６）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ ２３：７０９（所定の抗体に対して高い親和性を有するペプチドを同定するための技術）を参照のこと。同じエピトープを認識する抗体が、単純な免疫アッセイにおいて同定され得る。これは標的抗原に対する別の抗体の結合をブロックする一方の抗体の能力を示す
「独特のＭｅｎＢエピトープ」は、ＭｅｎＢ細菌上に存在するエピトープとして本明細書中で定義される。ここで、エピトープを指向する抗体はＭｅｎＢに特異的に結合し得、そして宿主組織の表面上に存在するシアル酸残基と交差反応しないか、または最少に交差反応する。従って、１つ以上の「独特のＭｅｎＢエピトープ」を含むか、または模倣する免疫原は、ＭｅｎＢ疾患の予防のためのワクチンにおいて有用であり、そして自己免疫応答を惹起しないか、または自己免疫応答を惹起する最少の危険与える。

本明細書中に記載されるアッセイを使用して決定される、ＭｅｎＢに対する補体媒介性殺菌活性および／またはオプソニン活性を抗体分子が示す場合、抗体はＭｅｎＢ生物に対する「機能的な活性」を示す。

本明細書中に記載される結合アッセイを使用して決定される、宿主組織中のポリシアル酸との交差反応性免疫学的結合特性を本抗体が示さない場合、「独特の」ＭｅｎＢエピトープに対して特異的な抗体は、「自己免疫活性を欠く」、および／または「自己反応性ではない」。

本明細書中で記載される結合アッセイにおいてポジティブであるとみなされる公知の交差反応性自己抗体と比較して、宿主組織のポリシアル酸への結合を示すのに約１０倍高い抗体濃度を本抗体が必要とする場合、「独特の」ＭｅｎＢエピトープに対して特異的な抗体は、「自己反応性ではない」。（例えば、図６におけるＳＥＡＭ−１２の結合をＳＥＡｍ−３５の結合と比較のこと）。従って、この用語は、本明細書中で記載される結合アッセイにおいて自己反応性でないか、または最少に自己反応性であるそれらの抗体を含む。

本明細書中で使用される用語「免疫学的結合」および「免疫学的結合特性」は、免疫グロブリン分子と免疫グロブリンが特異的である抗原との間に生じる非共有結合的な相互作用の型をいう。

用語「精製された」および「単離された」により、ポリペプチド、抗体、および核酸配列を言及する場合、示された分子が、実質的に他の同型の生物学的巨大分子の非存在下で存在することを意味する。本明細書中で使用される用語「精製された」および「単離された」は、好ましくは少なくとも７５重量％、より好ましくは少なくとも８５重量％、よりさらに好ましくは少なくとも９５重量％、そして最も好ましくは少なくとも９８重量％の、同型の生物学的巨大分子が存在することを意味する。同様に、「単離された」抗体は、抗体の混合集団から分離された抗体（例えば、目的の分子に対して惹起された抗血清）である。

「相同性」とは、２つのポリヌクレオチド部分またはポリペプチド部分間の同一性の割合をいう。２つ以上の配列間の対応は当該分野で公知の技術により決定され得る。例えば、相同性は、２つのポリペプチド分子間の配列情報の直接比較により決定され得る。２つのペプチド配列は、少なくとも約６０％（好ましくは少なくとも約８０％、そして最も好ましくは少なくとも約９０％）のアミノ酸が一致する場合に、「実質的に相同」である。

ＩＩ．発明を実施する態様
本発明は、ＭｅｎＢに対する新規の機能性抗体の発見に基づく。抗体は、本明細書中に記載されるアッセイを用いて決定される場合、宿主中のポリシアル酸と交差反応しないか、または最小限に交差反応性であり、それゆえ、この抗体は、宿主組織と高度に交差反応性である抗体よりも自己免疫活性を惹起する危険性が低い。この抗体を使用して、ＭｅｎＢの表面に見い出される独特なエピトープの分子模倣物を同定し得る。抗体および／または模倣物を、ＭｅｎＢおよびＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を処置および／または予防するためにワクチン組成物において、ならびにＭｅｎＢおよびＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１細菌の同定のための診断組成物において使用し得る。

上記で説明されるように、ＭｅｎＢの天然の莢膜ポリサッカライド（本明細書中で「ＭｅｎＢ ＰＳ」という）は、ヒトおよび他の哺乳動物被験体において不充分に免疫原性である。さらに、天然のＭｅｎＢ ＰＳは、自己抗体の産生を惹起し、それゆえ、ワクチン組成物における使用には不適切であり得る。従って、本発明は、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体に対して調製される抗体を使用する。これらの抗体は、ＭｅｎＢ細菌に対する機能活性（ここで、この機能活性はＭｅｎＢ疾患に対する防御を付与することにおいて重要である）を示すそれらの能力に基づいて選択される。抗体はまた、最小限または検出不可能な自己免疫活性を示すことを基礎に選択される。

より詳細には、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、本発明の抗体分子を得る際の使用のために調製された。誘導体は、一般に、天然の分子のシアル酸残基Ｎ−アセチル基のＣ_３〜Ｃ_８アシル置換基を含む。特に好ましいＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、天然ＭｅｎＢ ＰＳのＮ−アセチル基についてのＮ−プロピオニル基の置換を含み、これは、本明細書中で「ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ」という。同一物を合成するためのこのような誘導体および方法は、例えば、米国特許第４，７２７，１３６号およびＥＰ公報第５０４，２０２ Ｂ号（両者ともＪｅｎｎｅｉｎｇｓら）に記載される。

Ｃ_３〜Ｃ_８アシル誘導体は、まず天然のＭｅｎＢ（例えば、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｎｔｉｄｉｓ培養物から得られる）を強塩基の存在下で処置して定量的にＮ−アセチル基を除去し、そして分子のシアル酸残基部分内の反応性アミン基を提供することにより作製され得る。次いで、脱アシル化ＭｅｎＢ ＰＳフラグメントはＮ−アセチル化される。例えば、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳの場合、脱アシル化分子は、米国特許第４，７２７，１３６号（Ｊｅｎｎｉｎｇｓら）に記載されるように、無水プロピオン酸または塩化プロピオニルのようなプロピオニル基の供給源を用いてＮ−プロピオニル化される。Ｎ−アセチル化の程度は、例えば、ＮＭＲ分光学を用いて決定され得る。一般に、反応条件は、Ｎ−アセチル化の程度が少なくとも８０％であるように、選択される。

ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体の免疫原性を増大させるために、誘導体を適切なキャリア分子に結合させて複合糖質を提供し得る。詳細には、十分に定義されそして制御される構造の立体配置を有するＮ−アセチル化ＭｅｎＢ ＰＳ複合糖質調製物は、以下に記載のように、中間サイズのＮ−アセチル化ＭｅｎＢオリゴサッカライドから形成され得る。

従って、Ｎ−アセチル化ＭｅｎＢ ＰＳ複合糖質の一群（その一例は、本明細書中で「ＣＯＮＪ−２」といわれる）は、以下のように調製され得る。例えば、ＮＭＲ分析により決定される場合、実質的に１００％のＮ−アセチル化シアル酸残基を有するＮ−アセチル化ＭｅｎＢ ＰＳ調製物は、緩和な酸性条件下で断片化され、種々の大きさのオリゴサッカライド分子の集団を提供し得る。断片化産物は、例えば、標準的なイオン交換クロマトグラフィー技術を、例えば段階的塩濃度勾配と組合せて使用してサイズ分画され、同質のサイズのＮ−アセチル化ＭｅｎＢ分子の画分を提供する。中間サイズのオリゴサッカライドを含む画分（例えば、約５〜約２２、好ましくは１０〜約２０、そしてより好ましくは約１２〜約１８の平均Ｄｐを有する）は、非還元末端において化学的に末端活性化され、そして還元的アミノ化技術によりタンパク質キャリアに結合され、ＣＯＮＪ−２複合糖質を提供する。首尾良い複合体化は、例えば、ゲル濾過により決定され得、そして最終のサッカライドのタンパク質に対する比率（ｗ／ｗ）は、呈色アッセイにより評価され得る。

次いで、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体（例えば、ＣＯＮＪ−２）から形成される複合糖質を、本明細書中で使用して免疫化宿主における抗サッカライド抗体の形成を惹起する。このような抗体のサブセットは、本明細書中に記載される結合アッセイを用いて決定される場合、ＭｅｎＢ細菌に結合しないはずであるか、宿主組織シアル酸残基と交差反応しないはずであるか、または最小限に交差反応性であるはずである。抗体は、アイソタイプ、精緻な抗原特異性、機能活性、および宿主組織との交差反応性に関して十分に特徴づけられ得る。

例えば、哺乳動物被験体（簡便には、齧歯類およびウサギのような標準的な実験動物）は、複合糖質を含む組成物を、適切なアジュバントと共に免疫してポリクローナル血清の産生を惹起し得る。動物の群は、一般に、免疫化され、そして組成物で何回か追加免疫される。免疫化された動物由来の抗血清が得られ得、そして宿主組織と交差反応しないポリクローナル血清はインサイチュ吸収または従来のアフィニティークロマトグラフィー技術を用いて得られ得る。首尾良い複合糖質抗原は、Ｔ細胞依存性抗原の特徴である、実質的にＩｇＧ抗ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体−抗体応答を惹起するそれらの能力により同定され得る。高度に免疫原性であり、そして主にＩｇＧ抗体を産生することが見い出されている複合体は、本発明の方法における使用について特に好ましい。

細菌性抗血清の形成を惹起し得るＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、モノクローナル抗体の産生における使用に適している。より詳細には、種々のＭｅｎＢ ＰＳ誘導体結合体を提供するために使用されるプロセスは、ＭｅｎＢ生物の表面に見い出されるエピトープを模倣し、そして宿主において最小限に発現される独特のサッカライド関連エピトープを提示する優れた免疫原を産生するために設計される。従って、本明細書中に記載されるＭｅｎＢ ＰＳ誘導体は、防御的または治療的薬学的調製物において直接使用され得る、好ましくは、抗ＭｅｎＢワクチンについての独特のエピトープを提供するＭｅｎＢポリサッカライド抗原の模倣物について検索するのに使用され得るＭｅｎＢ特異的な抗体の産生を惹起し得る。

従って、本発明の１つの実施態様において、選択されたＭｅｎＢ誘導体を使用して、モノクローナル抗体およびその機能的等価物を提供する。本明細書中において使用される、特定のモノクローナル抗体に関する用語「機能的等価物」は、以下である分子を意味する：（ａ）例示的なモノクローナル抗体を架橋ブロックする；（ｂ）問題のＭｅｎＢ ＰＳ誘導体または複合糖質に選択的に結合する；（ｃ）本明細書中に記載される結合アッセイを用いて決定される場合、宿主ＰＳＡ（および、必要に応じて、以下に記載される標準的なアッセイにより決定される場合、ＭｅｎＢ細菌性細胞に対する活性（例えば、補体媒介性殺菌活性および／またはオプソニン活性））とは交差反応しないか、または最小限に交差反応する。さらに、本発明のハイブリドーマを産生する特定のモノクローナル抗体に関して本明細書中において使用されるように、用語「子孫」は、世代または核型に係わらず、親により産生されるモノクローナル抗体を産生する、親のハイブリドーマのすべての誘導体、子孫（ｉｓｓｕｅ）、子孫（ｏｆｆｓｐｒｉｎｇ）を含むことが意図される。

モノクローナル抗体は、当該分野で周知の標準的な技術（例えば、ＫｏｈｌｅｒおよびＭｉｌｓｔｅｉｎ， Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６：４９５）またはその改変（例えば、Ｂｕｃｋら（１９８２）Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ １８：３７７により記載される））を使用して調製される。代表的には、マウスまたはラットを、タンパク質キャリアに結合しているＭｅｎＢ ＰＳ誘導体で免疫化し、追加免疫し、そして脾臓（および必要に応じていくつかの大きなリンパ節）を取り出し、そして単一細胞を解離する。所望であれば、脾臓細胞は、細胞懸濁液を抗原でコートされたプレートまたはウェルに適用することにより、スクリーニングされ得る（非特異的接着細胞の除去後）。抗原に特異的な膜結合型イムノグロブリンを発現するＢ細胞がプレートに結合し、そして懸濁液の残渣でもリンス除去されない。次いで、得られたＢ細胞、すなわちすべての剥離した脾臓細胞を、ハイブリドーマを形成するために誘導させてミエローマ細胞と融合させる。ハイブリドーマ形成（ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）における使用のための代表的なマウスミエローマ株は、アメリカンタイプカルチャーコレクション（ＡＴＣＣ）から入手可能なミエローマ株を含む。

より詳細には、体細胞ハイブリッドは、Ｂｕｃｋら（前出）の方法により、アザグアニン耐性非分泌マウスミエローマ細胞株Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８．６５３（ＡＴＣＣから入手可能）を用いて調製され得る。ハイブリドーマ細胞株は、一般に限界希釈法によりクローン化され、そして免疫化免疫原に特異的に結合し、そして無関連の抗原に結合しない抗体の産生についてアッセイされる。次いで、選択されたモノクローナル抗体分泌ハイブリドーマは、インビトロ（例えば、組織培養瓶または中空繊維反応器）、またはインビボ（例えば、マウスの腹水）のいずれでも培養される。

ハイブリドーマ上清は、例えば、免疫化ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体または天然のＭｅｎＢ ＰＳ（ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳ）を用いる固体相ＥＬＩＳＡまたは間接免疫蛍光アッセイのいずれかを用いて、抗ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体反応性抗体についてアッセイされ得る。ハイブリドーマにより分泌されるモノクローナル抗体の選択性は、競合的特異的結合アッセイ（例えば、阻害ＥＬＩＳＡなど）を用いて評価され得る。例えば、緩衝液か、または可溶性ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体もしくはＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む緩衝液中に希釈されている抗体分子は、結合したＭｅｎＢ ＰＳ誘導体の存在下ＥＬＩＳＡ容器中で反応される。洗浄後、結合抗体は、二次抗体としての標識抗Ｉｇ（抗ＩｇＭ、ＩｇＧおよびＩｇＡ）により検出される。可溶性ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体により阻害される抗体は、特異的であると考慮され、従ってさらなる研究（アイソタイプ決定および交差反応性、機能活性および自己反応性についてのさらなるスクリーニングを含む）のために選択される。

特に、部分精製したモノクローナル抗体分子は、それらの細胞表面上にポリシアル酸残基を発現する宿主細胞に結合するその能力について個々に評価され得る。このような細胞は、自己免疫活性を示す抗体の検出についての代理標的を代表する。１つの標的は、ヒト神経芽腫細胞株ＣＨＰ−１３４（これは、Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎら（１９８８）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６３：９４４３に記載されるように、長鎖α２−８ポリシアル酸（ＮＣＡＭ）をその細胞表面上に発現する。）を含む。他の適切な細胞は、以下を含むがそれらに限定されない：新生児脳細胞、例えば腎臓、心臓および嗅覚神経由来の組織、培養伏在静脈内皮細胞、細胞傷害性Ｔリンパ球およびナチュラルキラー細胞（ＮＫ）細胞。例えば、Ｂｒａｎｄｏｎら（１９９３）、Ｉｎｔｌ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ ６：７７を参照のこと。ハイブリドーマから得られるモノクローナル抗体分子は、培養物中の適切な試験細胞集団に添加され得、そしてモノクローナルの細胞標的に対する潜在的結合が、標識モノクローナルを用いて直接、または各々のモノクローナル抗体と特異的に反応する適切な標識二次試薬（例えば、ＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓプロテインＡおよびＧならびに抗マウス抗体分子）を用いて間接的に、検出および定量され得る。試験宿主組織ＰＳＡと交差反応しないか、または最小限の反応性を示す抗体は、本発明の目的のための自己反応性とは考慮されない。従って、これらの抗体は、さらなる使用に適切である。さらに、試験組織との結合（この結合は試験細胞のノイラミニダーゼでの前処理によっては影響されない）を示すいくつかの抗体もまた、さらなる使用に適切であり得る。このような抗体の自己反応性は、本明細書中で「不定な」と呼ぶ。

機能活性は、補体媒介性殺菌活性および／またはオプソニン活性を評価することにより測定され得る。詳細には、抗体の補体媒介性殺菌活性は、Ｇｏｌｄら（１９７０）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．１：４７９、Ｗｅｓｔｅｒｉｎｋら（１９８８）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．５６：１１２０、Ｍａｎｄｒｅｌｌら（１９９５）Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１７２：１２７９、およびＧｒａｎｏｆｆら（１９９５）Ｃｌｉｎ．Ｄｉａｇｎ．Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｉｍｍｕｎｏｌ．２：５７４により記載されるような標準的なアッセイを使用して評価され得る。これらのアッセイにおいて、Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓを、補体供給源とともに、および試験される抗体とともに反応させる。細菌計数を、種々の試料採取時間で行う。補体媒介性殺菌活性を実証するこれらの抗体は、０時間でのコロニー数と比較した場合、抗体および補体との６０分間のインキュベーションの後に測定される生存細菌細胞数において最小５０％の減少により実証されるように、本発明の目的上、細菌活性を示すことが考えられ、そしてさらなる使用に適切である。

補体媒介性溶菌は、浸潤性の髄膜炎菌性疾患に対する宿主保護を担う主要な機構であると考えられる。しかし、証拠は、オプソニン作用の重要な保護役割もまた支持する（例えば、Ｂｊｅｒｋｎｅｓら（１９９５）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．６３：１６０を参照のこと）。従って、本明細書中で産生される抗体のオプソニン活性は、機能活性を評価するための第二の手段として、または別の手段として、評価され得る。オプソニンアッセイからの結果は、殺菌性データを補充するために、および保護を与え得る抗体の選択を助けるために、使用され得る。オプソニン活性の評価はまた、本明細書中で、ＩｇＧ１イソタイプを有する本発明のマウスモノクローナル抗体の評価のために特に有用である。マウスＩｇＧ１は（ヒトＩｇＧ１と比較して）、補体の活性化に効果がない。従って、マウスＩｇＧ１抗体は、上記のアッセイにおいて、ＭｅｎＢの補体媒介性溶菌を活性化しない。しかし、ＩｇＧ１抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体の機能活性は、補体の非存在下でのオプソニン作用により評価され得る。

種々のオプソニンアッセイ方法が、当該分野で公知であり、そして本発明のモノクローナル抗体の機能活性を評価するために使用され得る。このような標準的なアッセイには、Ｓｊｕｒｓｅｎら（１９８７）Ａｃｔａ Ｐａｔｈ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｓｃａｎｄ．，Ｃ節 ９５：２８３、Ｈａｌｓｔｅｎｓｅｎら（１９８９）Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．２１：２６７、Ｌｅｈｍａｎｎら（１９９１）ＡＰＭＩＳ ９９：７６９、Ｈａｌｓｔｅｎｓｅｎら（１９９１）ＮＩＰＨ Ａｎｎａｌｓ １４：１５７、Ｆｒｅｄｌｕｎｄら（１９９２）ＡＰＭＩＳ １００：４４９、Ｇｕｔｔｏｒｍｓｅｎら（１９９２）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．６０：２７７７、Ｇｕｔｔｏｒｍｓｅｎら（１９９３）Ｊ．Ｉｎｆｅｃ．Ｄｉｓ．１６７：１３１４、Ｂｊｅｒｋｎｅｓら（１９９５）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．６３：１６０、Ｈａｙｒｉｎｅｎら（１９９５）Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１７１：１４８１、ｄｅ Ｖｅｌａｓｃｏら（１９９５）Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１７２：２６２、およびＶｅｒｈｅｕｌ， Ａ．Ｆ．Ｍ．（１９９１）「Ｍｅｎｉｎｇｏｃｏｃｃａｌ ＬＰＳ Ｄｅｒｉｖｅｄ Ｏｋｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ−Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｖａｃｃｉｎｅｓ，Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃａｌ Ａｓｐｅｃｔｓ」，Ｔｈｅｓｉｓ，Ｕｔｒｅｃｈｔ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ， １１２−１３５頁、によって記載されるものが含まれる。

目的の選択されたモノクローナル抗体は、日常的な組織培養方法を用いてインビトロで、または哺乳動物被験体を用いてインビボで拡大され得る。例えば、プリスタン初回刺激マウスは、対数期ハイブリドーマ細胞をＰＢＳ中で、腹水生成のために播種され得る。腹水液は、さらなる精製の前に、−７０℃で貯蔵され得る。

特に、抗体が予防的または治療的な薬学的調製物（例えば、ＭｅｎＢに対する受動的保護を提供するための）において、ならびにＭｅｎＢ診断的調製物において使用される場合、キメラ抗体を提供することが所望であり得る。ヒトおよび非ヒトアミノ酸配列から構成されるキメラ抗体は、ヒトにおいてそれらの免疫原性を減少するようにマウスモノクローナル抗体分子から形成され得る（Ｗｉｎｔｅｒら（１９９１）Ｎａｔｕｒｅ ３４９：２９３；Ｌｏｂｕｇｌｉｏら（１９８９）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８６：４２２０；Ｓｈａｗら（１９８７）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１３８：４５３４；およびＢｒｏｗｎら（１９８７）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．４７：３５７７；Ｒｉｅｃｈｍａｎｎら（１９８８）Ｎａｔｕｒｅ ３３２：３２３；Ｖｅｒｈｏｅｙｅｎら（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３９：１５３４；およびＪｏｎｅｓら（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２１：５２２；欧州公開第５１９，５９６号、１９９２年１２月２３日公開；および英国特許公開第ＧＢ２，２７６，１６９号、１９９４年９月２１日公開）。

親のモノクローナル抗体分子の免疫学的結合特性を示し得る抗体分子フラグメント（例えば、Ｆ（ａｂ’）_２、Ｆｖ、およびｓＦｖ分子）は、公知の技術を使用して生成され得る。Ｉｎｂａｒら（１９７２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ６９：２６５９；Ｈｏｃｈｍａｎら（１９７６）Ｂｉｏｃｈｅｍ １５：２７０６；Ｅｈｒｌｉｃｈら（１９８０）Ｂｉｏｃｈｅｍ １９：４０９１；Ｈｕｓｔｏｎら（１９８８）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８５（１６）：５８７９；ならびにＨｕｓｔｏｎら、米国特許第５，０９１，５１３号および第５，１３２，４０５号；ならびにＬａｄｎｅｒら、第４，９４６，７７８号。

あるいは、インビトロでモノクローナル抗体分子集団を拡大するために、ファージ表示系が使用され得る。Ｓａｉｋｉら（１９８６）Ｎａｔｕｒｅ ３２４：１６３；Ｓｃｈａｒｆら（１９８６）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２３３：１０７６；米国特許第４，６８３，１９５号および第４，６８３，２０２号；Ｙａｎｇら（１９９５）Ｊ Ｍｏｌ Ｂｉｏｌ ２５４：３９２；Ｂａｒｂａｓ，ＩＩＩら（１９９５）Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ｃｏｍｐ．Ｍｅｔｈ Ｅｎｚｙｍｏｌ ８：９４；Ｂａｒｂａｓ，ＩＩＩら（１９９１）Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ８８：７９７８。

一旦生成すると、ファージ表示ライブラリーは、公知の技術を使用して、Ｆａｂ分子の免疫学的結合親和性を改良するために使用され得る。例えば、Ｆｉｇｉｎｉら（１９９４）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２３９：６８を参照のこと。

ファージ表示ライブラリーから選択されたＦａｂ分子の重鎖および軽鎖部分のコード配列は、単離または合成され得、そして発現のために任意の適切なベクターまたはレプリコンにクローン化され得る。例えば、細菌、酵母、昆虫、両生類、および哺乳動物系を含む任意の適切な発現系が使用され得る。細菌における発現系は、Ｃｈａｎｇら（１９７８）Ｎａｔｕｒｅ ２７５：６１５、Ｇｏｅｄｄｅｌら（１９７９）Ｎａｔｕｒｅ ２８１：５４４、Ｇｏｅｄｄｅｌら（１９８０）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．８：４０５７、欧州出願第ＥＰ ３６，７７６号、米国特許第４，５５１，４３３号、ｄｅＢｏｅｒら（１９８３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８０：２１−２５、およびＳｉｅｂｅｎｌｉｓｔら（１９８０）Ｃｅｌｌ ２０：２６９に記載されるものを含む。

酵母における発現系は、以下に記載されるものを含む：

昆虫における異種遺伝子の発現は、以下に記載されるように達成され得る：

多数のバキュロウイルス株および変異体、ならびに宿主からの対応する許容昆虫宿主細胞は、以下に記載される：

哺乳動物発現は、以下に記載されるように達成され得る：

哺乳動物発現の他の機能は、以下に記載されるように容易に行われ得る：

任意の上記の抗体分子は、抗ＭｅｎＢの治療的または予防的な薬剤を提供するために、本明細書中で使用され得る。さらに、本発明のマウスモノクローナル抗体由来の抗原結合部位を含む「ヒト化」抗体分子は、上記の技術を使用して生成され得る。

上記の本発明の抗ＭｅｎＢ抗体は、ＭｅｎＢからの独特のエピトープの分子模倣物を同定するために、多様な分子ライブラリーをスクリーニングするためのレセプターとして簡便に使用される。分子ライブラリーの模倣物を同定するための方法には、一般に１つ以上の以下の手順の使用が含まれる：（１）固定化標的レセプターでのアフィニティー精製；（２）可溶性レセプターの繋留リガンドへの結合；および（３）溶解性化合物を、抗原競合アッセイにおいて直接的に試験する工程、または生物学的活性について試験する工程。分子模倣物についてスクリーニングされた分子には、小さな有機化合物、有機化合物の組合せライブラリー、核酸、核酸誘導体、糖類またはオリゴ糖、ペプチド、溶解性ペプチド、固相上に繋留されたペプチド、細菌性ファージ表面タンパク質上に提示されるペプチド、細菌性表面タンパク質または抗体、および／または非ペプチド有機部分を含むペプチドが含まれるが、これらの限定されない。

例えば、多様な分子種のライブラリーは、組合せ有機合成を用いて作製され得る。例えば、Ｇｏｒｄｏｎら（１９９４）Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３７：１３３５を参照のこと。例えば、オリゴカルバメート（Ｃｈｏら（１９９３）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２６１：１３０３）；Ｎ−置換グリシンポリマーのようなペプトイド（Ｓｉｍｏｎら（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９：９３６７）；およびビニログのポリペプチド（Ｈａｇｉｈａｒａら（１９９２）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１４：６５６８）が含まれるが、これらに限定されない。

当該分野で公知の種々のアプローチが、合成の間にビルディングブロックが加えられる際に、ビルディングブロックを探知するために使用され得、その結果個々のライブラリーメンバーの動作記録が測定され得る。これらのアプローチには、写真平板チップ上の所在確認可能な部位（オリゴカルバメート）、逆重畳積分ストラテジー（ここで、「ヒット」は、部分的な合成ライブラリー（ペプトイド、ペプチド）へのモノマーの再帰性付加を介して同定される）、およびヌクレオチド（Ｎｉｅｌｓｅｎら（１９９３）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１５：９８１２）または他の有機部分（「タグ」）（Ｏｈｌｍｅｙｅｒら（１９９３）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９０：１０９２２）の別々の合成によりコードされた組合せライブラリーが含まれる。次いで、各ライブラリーメンバーと結合したコード化タグは、模倣物が選択された後に解読され得る。例えば、核酸タグは、ＤＮＡ配列決定により解読され得る。

ペプトイド組合せライブラリーは、独特なＭｅｎＢエピトープの分子模倣物を同定するために特に有用である。ペプトイドは、Ｎ−置換グリシンのオリゴマーであり（Ｓｉｍｏｎら（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９：９３６７）、そして新規の分子の化学的に多様なライブラリーを作製するために使用され得る。モノマーは、ｔ−ブチル−ベース側鎖および９−フルオレニルメトキシ−カルボニルα−アミン保護を組み込み得る。ペプトイドオリゴマーへのモノマーの集合は、例えば、Ｚｕｃｋｅｒｍａｎｎら（１９９１）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１４：１０６４６の「サブモノマー法」を用いて、固相上で行われ得る。この方法において、合成は、Ｒｉｎｋアミドポリスチレン樹脂を用いて行われる（Ｒｉｎｋら（１９８７）Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ．２８：３７８７）。樹脂結合アミンは、ジイソプロピルカルボジイミドでのブロモ酢酸のインサイチュ活性化によってブロモアセチル化される。続いて、樹脂結合ブロモアセトアミドはアミンの付加により置換される。アミンは、さらなる反応基のｔ−ブチルベース保護を組み込み得る。この２工程サイクルは、所望の数のモノマーが付加されるまで、繰り返される。次いで、オリゴペプチドは、９５％トリフルオロ酢酸／５％水での処理により樹脂から遊離される。好ましくは、合成は、ロボットの合成機を用いて行われる。例えば、Ｚｕｃｋｅｒｍａｎｎら（１９９２）Ｐｅｐｔ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｒｅｓ．４０：４９８を参照のこと。代替において、ペプトイドモノマーのオリゴマー化は、ベンゾトリアゾール−１−イルオキシトリス（ピロリジノ）ホスホニウムヘキサフルオルホスフェートまたはブロモトリス（ピロリジノ）ホスホニウムヘキサフルオロホスフェートのいずれかにより、インサイチュ活性化によって行われ得る。この代替方法において、他の工程は、α−（９−フルオレニルメトキシカルボニル）アミノ酸を用いる従来のペプチド合成と同一である（例えば、Ｓｉｍｏｎら（１９９２）前出、を参照のこと）。

一旦ペプトイドライブラリーが作製されると、それらは、例えば、本発明のモノクローナル抗体を、組み合わせペプトイドの種々のプールとともに、ＭｅｎＢ ＰＳ誘導体またはＭｅｎＢ細菌（単独または複合糖質としてのいずれか）でコートしたマイクロタイタープレートのウェルに添加することによってスクリーニングされ得る。インキュベーション期間および非結合抗体を除去するための洗浄の後に、結合抗体の存在は、標準的なＥＬＩＳＡアッセイによって決定される。例えば、ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ， Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ： Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ （１９８８）， Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ， ＮＹ， ５５３を参照のこと。結合抗体を含まないウェルは、抗体に結合するペプトイド模倣物の存在を示す。プール中のペプトイド模倣物の特定の詳細な正体は、モノマーユニットを部分的に合成されたライブラリーのメンバーに再帰的に添加することによって決定される。Ｚｕｃｋｅｒｍａｎｎら、（１９９４）Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３７：２６７８。

ペプチドライブラリーはまた、本発明の抗ＭｅｎＢ抗体を用いて、ＭｅｎＢの独特のエピトープの分子模倣物についてスクリーニングするために使用され得る。このようなライブラリーは、可溶性である合成ペプチド（Ｈｏｕｇｈｔｅｎ （１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：５１３１）または固相支持体に結合された合成ペプチド（Ｇｅｙｓｅｎら、（１９８７）Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １０２：２５９；米国特許第４，７０８，８７１号）および融合タンパク質として生物学的に発現されるペプチド（Ｓｃｏｔｔら、（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：３８６）のようなペプチドに基づくが、これらに限定されない。ペプチド組み合わせライブラリーの総説については、例えば、Ｇａｌｌｏｐら、（１９９４）Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３７：１２３３を参照のこと。

例えば、既知の配列を有するランダム可溶性ペプチドは、個々に標識されたポリプロピレンバッグ中での反復性のカップリング／脱保護サイクルの間に、固相支持体および互いに分離されたライブラリーのメンバー上で合成され得る（Ｈｏｕｇｈｔｅｎ （１９８５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８２：５１３１）。合成の後、ペプチドは、固相支持体から切断され、そしてポリプロピレンバッグ上の標識によって同定される。この方法を用いて産生された合成ペプチドライブラリーは、マイクロタイタープレートウェルに個々のペプチドを吸着させ、そして標準的なＥＬＩＳＡアッセイを用いて抗体結合を決定することによって、所望の特性を有する抗体への結合についてスクリーニングされ得る。

潜在的なペプチド模倣物の大きなライブラリーはまた、Ｇｅｙｓｅｎの米国特許第４，７０８，８７１号に記載されるようなオーバーラッピングペプチドの同時合成によって構築され得る。合成ペプチドは、合成のために使用された支持体に付着している間にＥＬＩＳＡによって抗体との相互作用について試験され得る。固相支持体は、一般に、キャリア上に重合体鎖を産生するための少なくとも１つの官能基を含有するビニルモノマーを接ぎ木重合されるポリエチレンまたはポリプロピレンのロッドである。この官能基は、反応して一級または二級アミン基を提供する。これは、次いで固相ペプチド化学の従来法を使用して、適切な順番で連続してアミノ酸残基と反応して所望の合成ペプチドを構築する。例えば、ペプチド配列は、Ｇｅｙｓｅｎら、（１９８７）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ １０２：２５９に記載されるような、マイクロタイタープレート中で配列されたポリアクリル酸−接ぎ木ポリエチレンのピンにおけるパラレル合成によって作製され得る。このようなライブラリーは、例えば、ペプチド−ピンを含むウェルに抗体を添加することによってスクリーニングされ得る。ウェルからの非結合抗体の洗浄の後、結合抗体の存在は、ＥＬＩＳＡアッセイを用いて検出され得る。

本発明の抗体と相互作用するペプチド模倣物はまた、生物学的発現系を用いて同定され得る。例えば、Ｃｈｒｉｓｔｉａｎら、（１９９２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２２７：７１１；Ｄｅｖｌｉｎら、（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９： ４０４；Ｃｗｉｒｌａら、（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８７：６３７８；Ｇａｌｌｏｐら、（１９９４）Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３７：１２３３を参照のこと。このような系を用いて、ランダムペプチド配列の大きなライブラリーは、本発明の抗体に結合する分子についてスクリーニングされ得る。このアプローチはまた、同定された模倣物の単純な分子特徴付けを可能にする。なぜなら、このペプチドをコードするＤＮＡが容易に配列決定され得るからである。さらに、希な模倣物は、選択／増幅のいくつかのラウンドによって増幅され得る。

例えば、ファージディスプレイライブラリーは、ランダムペプチド配列をコードする合成ＤＮＡピースを、糸状バクテリアファージｍ１３、ｆｄ、またはｆ１のｐＩＩＩまたはｐＶＩＩＩタンパク質をコードする遺伝子の５’末端付近に挿入することによって産生され得る（Ｐａｒｍｌｅｙら、（１９８８）Ｇｅｎｅ ７３：３０５；Ｓｍｉｔｈら、（１９９３）Ｍｅｔｈ．Ｅｎｚｙｍｏｌ．２１７：２２８）。次いで、この遺伝子および無作為化した伸長を含むファージ、ファージミド、またはプラスミドＤＮＡは、Ｅ．ｃｏｌｉまたはヘルパーファージとともに同時感染したＥ．ｃｏｌｉのような適切な宿主を形質転換するために使用される。この培養物から単離されたファージは、アミノ末端から伸長する無作為化ペプチド配列を有するｐＩＩＩ（１〜５コピー）またはｐＶＩＩＩ（約４０００コピー）表面タンパク質を保有する。ファージは、例えば、本発明のレセプター抗体をビオチン標識すること、ファージをビオチン標識レセプターとともにインキュベートすること、およびストレプトアビジンコートプレート上でファージを反応させることによるアフィニティー精製によって精製され得る。結合ファージは、溶出され、アガー培地上の適切な宿主を感染させることによって増幅され、そしてアフィニティー精製のさらなる回に曝される。アフィニティー精製のより後の回からのファージは、クローン化され、そして増殖され、それらのＤＮＡが配列決定されて発現されるペプチドのアミノ酸配列が決定され、そしてＭｅｎＢ抗体へのそれらの結合が、ＥＬＩＳＡまたは当該分野で周知の種々の他のスクリーニング手順によって評価され得る。

ヒトＦａｂ抗体の組み合わせライブラリーはまた、ファージ表面タンパク質上にディスプレイされて、本明細書中での使用に有用な分子模倣物が選択され得る。このようなライブラリーの調製は本明細書の上記に記載されている。このような技術の総説については、例えば、Ｂｕｒｔｏｎら、（１９９４）Ａｄｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．５７：１９１を参照のこと。

ＭｅｎＢユニークエピトープの分子模倣物はまた、Ｃｕｌｌら、（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８９：１８６５に記載される方法において本発明の抗ＭｅｎＢ抗体を用いて同定され得る。Ｃｕｌｌの技術は、ＤＮＡ結合タンパク質、ＬａｃＩを利用して、ペプチドとそのコードＤＮＡ配列との間に連結を形成する。この方法において、無作為化ペプチドをコードするＤＮＡは、プラスミド上に存在するＬａｃＩ遺伝子の３’末端に付加される。このプラスミドはまた、ＬａｃＩ、ｌａｃＯのＤＮＡ結合部位を含む。ＬａｃＩは、適切な宿主（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ）中のプラスミドから発現される場合、ｌａｃＯに密接に結合する。従って、細胞が溶解される場合、そのカルボキシル末端で無作為化ペプチドをディスプレイするＬａｃＩの各々のコピーは、それをコードするＤＮＡと会合する。これらの「プラスミド上のペプチド」ライブラリーをスクリーニング、増幅、および配列決定する方法は、上記のようなファージディスプレイに使用される方法と同じである。

分子模倣物は、抗ＭｅｎＢ抗体を用いて、インビトロ細胞非含有系（例えば、Ｍａｔｔｈｅａｋｉｓら、（１９９４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：９０２２に記載される系）において同定され得る。このアプローチにおいて、新生ペプチドはポリソーム複合体においてディスプレイされ、そしてライブラリーの構築、ペプチドの発現、およびスクリーニングは、細胞非含有系で行われる。ポリソーム上にディスプレイされたペプチドは、例えば、アフィニティー精製／増幅スクリーニング手順を用いてスクリーニングされ得る。ここで、ＭｅｎＢ特異的抗体／レセプターは、例えば、プラスチックプレート上に固定化される。

上記のライブラリーに使用される分子は、より安定なコンフォメーションを形成し、従って有用な分子模倣物の同定を増強するために操作され得る。例えば、システイン残基は、無作為化配列中に取り込まれて、ジスルフィドループを形成し得（Ｏ’Ｎｅａｌら、（１９９２）Ｐｒｏｔｅｉｎｓ １４：５０９）、そしてタンパク質足場は、内部ループセグメント中の無作為化ペプチドをディスプレイするために使用され得る（Ｆｒｅｉｍｕｔｈら、（１９９０）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：８９６；Ｓｏｌｌａｚｚｏら、（１９９０）Ｐｒｏｔ．Ｅｎｇｉｎ．４：２１５）。

抗イディオタイプ抗体はまた、ＭｅｎＢの独特のエピトープの分子模倣物としての使用のために本発明の抗ＭｅｎＢ抗体を用いて産生され得る。抗イディオタイプ抗体の総説については、例えば、Ｋｉｅｂｅｒ−Ｅｍｍｏｎｓら、（１９８６）Ｉｎｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１：１を参照のこと。この点に関して、抗体の重鎖および軽鎖によって形成されるポケットまたは割れ目は、しばしば抗原結合に親密に関与する。この領域は、パラトープと呼ばれ、抗体によって結合される抗原表面の「内部イメージ」である。パラトープに指向する抗体は、いくつかの潜在的な抗イディオタイプ抗体の１つであり、抗原の模倣物であり得る。重鎖および軽鎖の無作為化ペプチドループは、抗体多様性の発生の一部として天然に生じる。

本発明の抗ＭｅｎＢモノクローナル抗体は、例えば、Ｗｅｓｔｅｒｉｎｋら、（１９８８）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．５６：１１２０に記載される技術を使用して、抗イディオタイプ抗体産生を誘発するために、そして抗原の「イメージ」保有抗イディオタイプを選択するために使用され得る。

１つの実施態様において、上記のようなファージディスプレイ抗体の組み合わせライブラリーは、模倣物抗体（すなわち、ファージディスプレイＦａｂ抗イディオタイプ抗体）を同定するために本発明の抗ＭｅｎＢモノクローナル抗体を使用してスクリーニングされる。

産生される抗イディオタイプ抗体は、標準的な実験室動物モデルにおいて抗ＭｅｎＢ抗体産生を誘発する能力について容易に試験され得る。抗イディオタイプ抗体の可変性遺伝子は、ペプチドワクチン候補物を同定するために配列決定され得る。

さらに、オリゴヌクレオチド（ＤＮＡ、ＲＮＡ、および修飾ヌクレオチド）の組み合わせライブラリーは、本発明の非自己反応性、抗ＭｅｎＢ抗体に結合する分子模倣物を探索するためにスクリーニングされ得る。このようなライブラリーの産生および使用のための技術は、例えば、Ｇｏｌｄら、（１９９５）Ａｎｎｕ．Ｒｅｖ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．６４：７６３に総説される。ＳＥＬＥＸ（Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｇａｎｄｓ ｂｙ Ｅｘｐｏｎｅｎｔｉａｌ ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ）として知られるシステムが、抗ＭｅｎＢ抗体に向かう所望の結合親和性および特異性を有する特異的配列の非常に大きな数のオリゴヌクレオチドを迅速にスクリーニングするために使用され得る。（Ｔｕｅｒｋら、（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：５０５）。例えば、固定化された非自己反応性ＭｅｎＢモノクローナル抗体は、組み合わせライブラリーから特異的な結合オリゴヌクレオチドをアフィニティー精製するために使用され得る。結合オリゴヌクレオチドは、競合リガンドを添加することまたはｐＨを低下することによって固定化抗体から放出される。放出されたオリゴヌクレオチドは、ポリメラーゼ連鎖反応を用いて直接増幅されるか、または逆転写酵素を用いて二本鎖ＤＮＡに変換される（Ｔｕｅｒｋら、１９９０、前出）。続いて、所望の模倣物が得られるまで選択および増幅のさらなる回が行われる。オリゴヌクレオチド模倣物の配列は、ＤＮＡ配列決定によって決定される。

一旦、推定分子模倣物が同定されると、それらは、上記のように、自己反応性を欠失しているか、または最小の自己反応性しか有さない機能的に活性（例えば、殺菌および／またはオプソニン）な抗体を誘発する能力について試験される。これらの特性を有する分子模倣物は、さらなる使用（例えば、ワクチン組成物）のために適切である。

抗ＭｅｎＢモノクローナル抗体はまた、異なる特異性の抗体の殺菌および／またはオプソニン機能を調査するために、ならびに宿主ＰＳＡと交差反応しないＭｅｎ細菌表面上の独特のエピトープの分子特性を同定するために使用され得る。さらに、抗ＭｅｎＢ抗体は、ＭｅｎＢ細菌またはＭｅｎＢ ＰＳ誘導体のフラクションを単離するために使用され得る。一旦単離されると、抗ＭｅｎＢ抗体と反応性である重要なエピトープは、特徴付けられ、そしてオリゴサッカライドタンパク質結合ワクチンに直接使用されるか、またはワクチンにおける使用のためのモデル合成サッカライドもしくは模倣物に使用され得る。

本発明の機能的に活性な抗ＭｅｎＢ抗体を用いて同定された分子模倣物は、診断アッセイにおける使用のための抗体試薬を産生するために使用され得る。例えば、分子模倣物と反応性である抗体は、免疫診断技術（例えば、競合、直接反応、またはサンドイッチタイプのアッセイ）を用いて、生物学的サンプル中の細菌抗原を検出するために使用され得る。このようなアッセイとしては、ウエスタンブロット；凝集試験；酵素標識および媒介イムノアッセイ（例えば、ＥＬＩＳＡ）；ビオチン／アビジンタイプアッセイ；ラジオイムノアッセイ；イムノ電気泳動；免疫沈降などが挙げられる。

さらに、分子模倣物および抗ｉｄモノクローナル抗体を用いて同定された分子模倣物、ユニーク（例えば、非自己反応性）ＭｅｎＢエピトープは、ワクチン接種した被験体におけるＭｅｎＢ疾患の防止のためのワクチン組成物において本明細書中で使用され得る。

ワクチン組成物は、ＭｅｎＢの抗ｉｄモノクローナル抗体、分子模倣物、または非自己免疫エピトープの１つ以上を含み得る。ワクチンはまた、他の抗原および免疫調節剤（例えば、免疫グロブリン、サイトカイン、リンホカイン、およびケモカイン：これらは、ＩＬ−２、改変ＩＬ−２（ｃｙｓ１２５→ｓｅｒ１２５）、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−１２、γ−インターフェロン、ＩＰ−１０、ＭＩＰ１β、およびＲＡＮＴＥＳを含むがこれらに限定されない）と共に投与され得る。

ワクチンは、一般に、１つ以上の「薬学的に受容可能な賦形剤またはビヒクル」（例えば、水、生理食塩水、グリセロール、エタノールなど）を含む。さらに、補助物質（例えば、湿潤剤または乳化剤、ｐＨ緩衝物質など）がこのようなビヒクル中に存在し得る。

アジュバントもまた、ワクチンの有効性を増強するために用いられ得る。アジュバントは、ワクチン組成物に直接添加され得るか、または別に（ワクチン投与と同時または直後のいずれかで）投与され得る。このようなアジュバントとしては、以下が挙げられるが、これらに限定されない：（１）アルミニウム塩（ミョウバン）（例えば、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、硫酸アルミニウムなど）；（２）水中油型エマルジョン処方物（他の特定の免疫刺激剤（例えば、ムラミルペプチド（下述）または細菌細胞壁成分）を有するまたは有さない）：例えば、（ａ）ＭＦ５９（国際公開第ＷＯ ９０／１４８３７号）：５％スクワレン、０．５％Ｔｗｅｅｎ ８０、および０．５％Ｓｐａｎ ８５を含む（必要に応じて、種々の量のＭＴＰ−ＰＥ（下述）を含むが、必要とされるわけではない）、微小流動機（ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｚｅｒ）（例えば、Ｍｏｄｅｌ １１０Ｙ ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｚｅｒ（Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ、Ｎｅｗｔｏｎ、ＭＡ）を用いてサブミクロン粒子に処方された、（ｂ）ＳＡＦ：１０％スクワレン、０．４％Ｔｗｅｅｎ ８０、０．５％プルロニックブロックポリマーＬ１２１、およびｔｈｒ−ＭＤＰ（下述）を含む、サブミクロン粒子に微小流動されるか、またはより大きな粒子サイズエマルジョンを生成するようにボルテックスされるかのいずれかである、（ｃ）Ｒｉｂｉ^ＴＭアジュバントシステム（ＲＡＳ）（Ｒｉｂｉ Ｉｍｍｕｎｏｃｈｅｍ、Ｈａｍｉｌｔｏｎ、ＭＴ）：２％スクワレン、０．２％Ｔｗｅｅｎ ８０、および１つ以上の細菌細胞壁成分（モノホスホリルリピドＡ（ＭＰＬ）、トレハロースジミコレート（ＴＤＭ）、および細胞壁骨格（ＣＷＳ）からなる群より、好ましくは、ＭＰＬ＋ＣＷＳ（Ｄｅｔｏｘ^ＴＭ））を含む；（３）サポニンアジュバント（例えば、Ｓｔｉｍｕｌｏｎ^ＴＭ（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ、Ｗｏｒｃｅｓｔｅｒ、ＭＡ）が用いられ得るか、またはそれから生成された粒子であり得る（例えば、ＩＳＣＯＭ（免疫刺激複合体））；（４）フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ）およびフロイント不完全アジュバント（ＦＩＣＡ）；（５）サイトカイン（例えば、インターロイキン（ＩＬ−１、ＩＬ−２など）、マクロファージコロニー刺激因子（Ｍ−ＣＳＦ）、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）など；ならびに（６）免疫刺激剤として作用して組成物の有効性を増強し得る他の物質。

ムラミルペプチドとしては、Ｎ−アセチル−ムラミル−Ｌ−スレオニル−Ｄ−イソグルタミン（ｔｈｒ−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチル−ノルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−イソグルタミン（ｎｏｒ−ＭＤＰ）、Ｎ−アセチルムラミル−Ｌ−アラニル−Ｄ−イソグルタミニル−Ｌ−アラニン−２−（１’−２’−ジパルミトイル−ｓｎ−グリセロ−３−ヒドロキシホスホリルオキシ）−エチルアミン（ＭＴＰ−ＰＥ）などが挙げられるが、これらに限定されない。

分子模倣物から形成されたワクチン組成物の有効性を増強するために、模倣物をキャリア分子に結合体化させることが必要であり得る。このようなキャリア分子は、それ自身、有害な抗体の産生を誘導しない。適切なキャリアは、代表的には、大きい、ゆっくりと代謝される巨大分子（例えば、タンパク質、ポリサッカライド、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリマー性アミノ酸、アミノ酸コポリマー、脂質集合体（例えば、油滴またはリポソーム）、不活性ウイルス粒子、ＣＲＭ_１９７（無毒変異ジフテリア毒素）など）である。このようなキャリアは、当業者に周知である。模倣物結合体は、ＭｅｎＢ細菌細胞の表面に見られるものに密接に類似するエピトープを発現するそれらの能力について選択される。従って、適切な結合体は、細菌に対して機能活性を有する抗体の形成を惹起し、かつ本明細書中に記載の結合アッセイを用いて決定されるように宿主組織においてポリシアル酸と交差反応しないか、または最小限で交差反応性である。

代表的には、ワクチン組成物は、注射用（液体溶液または懸濁液のいずれか）として調製される；注射前に液体ビヒクルに入れて溶液または懸濁液とするのに適切な固体形態もまた、調製され得る。調製物はまた、上述のように、アジュバント効果の増強のために、リポソーム中に乳化またはカプセル化され得るか、あるいは粒子に吸着され得る。

ワクチンは、抗ｉｄモノクローナル抗体；タンパク質の分子模倣物、ペプチド分子模倣物、もしくは複合体；またはそれらをコードするヌクレオチド配列を有効量で、および必要に応じて他の上述の成分を含む。「有効量」とは、投与される個体において免疫応答を誘導し、かつ個体において自己免疫応答を刺激する危険性を最小限にとどめる分子の量を意味する。一般に、このような応答は、被験体において、ワクチンに対して分泌性、細胞性、および／または抗体媒介性免疫応答の発達を生じる。通常、このような応答は、以下の効果の１つ以上を含むがこれらに限定されない：免疫クラス（例えば、免疫グロブリンＡ、Ｄ、Ｅ、ＧまたはＭ）のいずれかからの抗体の産生；Ｂリンパ球およびＴリンパ球の増殖；免疫細胞への活性化、成長、および分化シグナルの供給；ヘルパーＴ細胞、サプレッサーＴ細胞、ならびに／または細胞傷害性Ｔ細胞および／もしくはγδＴ細胞集団の拡大。

一旦処方されると、ワクチンは、非経口（例えば、注射により、皮下、または筋内のいずれか）に従来通りに投与される。他の投与様式に適切なさらなる処方物としては、経口処方物および肺処方物、坐剤、および経皮適用剤が挙げられる。投与処置は、単回用量スケジュールまたは多回用量スケジュールであり得る。

ＭｅｎＢ ＰＳのＤＮＡまたはＲＮＡ模倣物をコードするポリヌクレオチドもまた、核酸免疫化のためのワクチンにおいて用いられ得る。代替的に、ペプチド模倣物をコードするポリヌクレオチドは、核酸免疫化において用いられ得る。一般に、このような方法は、核酸分子またはタンパク質のインビボ発現のために、１つ以上の所望の分子をコードするポリヌクレオチドの宿主細胞への導入を含む。ポリヌクレオチドは、レシピエント被験体に直接導入され得る（例えば、注射、吸入など）か、または宿主から取り出された細胞にエキソビボで導入され得る。後者の場合、形質転換細胞は、ポリヌクレオチドによりコードされた分子に対して免疫応答が高められ得る被験体に再導入される。核酸免疫化の方法は当該分野で公知であり、例えば、国際公開第ＷＯ ９３／１４７７８号（１９９３年８月５日公開）；国際公開第ＷＯ ９０／１１０９２号（１９９０年１０月４日公開）；Ｗａｎｇら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ （１９９３）９０：４１５６；Ｔａｎｇら、Ｎａｔｕｒｅ （１９９２）３５６：１５２；およびＵｌｍｅｒら、Ｓｃｉｅｎｃｅ （１９９３）２５９：１７４５に開示されている。一般に、ポリヌクレオチドは、リポソーム中にカプセル化されたベクターとして投与され、そして上述のようなワクチン組成物に処方される。

本発明の抗ＭｅｎＢモノクローナル抗体、およびそれらの機能的等価物は、哺乳動物においてＭｅｎＢおよびＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を処置および／または予防するために薬学的組成物中で用いられ得る。このような疾患としては、幼児、小児、および成人における細菌性髄膜炎および敗血症が挙げられる。この点について、非常に活性な抗ＭｅｎＢモノクローナル抗体調製物を、感染の危険性のある被験体または最近因子に曝露された個体に投与することにより、個体に即時的な受動免疫が提供される。このような受動免疫化は、正常被験体および免疫無防備状態被験体の両方において好結果であると期待される。さらに、このようなモノクローナル抗体組成物の投与は、単独または既知の抗ＭｅｎＢ治療薬と組み合わせて、哺乳動物被験体においてＭｅｎＢに対する抗体価を提供するために用いられ得る。

一般に、本発明の薬学的組成物は、上記の抗ＭｅｎＢモノクローナル抗体（Ｆａｂ分子、Ｆｖフラグメント、ｓＦｖ分子、およびそれらの組み合わせを含む）の１つ以上の混合物を含む。組成物は、ＭｅｎＢ疾患を予防するか、またはＭｅｎＢ感染後の個体を処置するために用いられ得る。

薬学的組成物の治療用途は、感染個体からのＭｅｎＢ感染因子の減少および／または除去、ならびに循環ＭｅｎＢ因子および疾患の蔓延可能性の減少および／または除去を包含する。

本発明のワクチン組成物に関して上述したように、薬学的組成物は、補助的な免疫調節剤（例えば、ＩＬ−２、改変ＩＬ−２（ｃｙｓ１２５→ｓｅｒ１２５）、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−１２、γ−インターフェロン、ＩＰ−１０、ＭＩＰ１β、およびＲＡＮＴＥＳ）と共に投与され得る。

１つ以上の抗体、抗体フラグメント、ｓＦｖ分子またはそれらの組み合わせを活性成分として含む薬学的組成物の調製は、一般に当業者に公知である。一旦処方されると、組成物は、非経口（例えば、注射により、皮下、静脈内、または筋内のいずれか）に従来通りに投与される。他の投与様式に適切なさらなる処方物としては、経口処方物および肺処方物、坐剤、および経皮適用剤が挙げられる。

薬学的組成物は、投与処方と適合するように、かつ予防的および／または治療的に有効である量で、処置されるべき被験体に投与される。送達される組成物の量は、一般に、一投与当たり約５０〜約１０，０００μｇの活性剤の範囲内にあり、処置されるべき被験体、それ自身の免疫応答を高める被験体の免疫系の能力、および所望される保護の程度に依存する。必要な正確な量は、とりわけ処置されるべき個体の年齢および一般状態、処置される状態の重度、ならびに投与様式に依存して変動する。適当な有効量は、当業者により容易に決定され得る。従って、薬学的組成物の「有効量」は、ＭｅｎＢ疾患症状の処置または予防をもたらすのに充分であり、そして日常的な試行により決定され得る比較的広範な範囲にある。

さらに、薬学的組成物は、単回用量スケジュールで投与され得るか、あるいは好ましくは多回用量スケジュールで投与され得る。多回用量スケジュールは、主要な投与経過が１〜１０の個別用量、続いて、組成物の作用を維持または強化するのに必要とされる続く時間間隔で与える他の用量を伴うものである。従って、投与レジメはまた、少なくとも部分的には、処置される被験体の特定の必要性に基づいて決定され、当業者の判断に依存する。

ＩＩＩ．実験
以下に、本発明を実施するための特定の実施態様の例を挙げる。本実施例は、例示の目的にのみ提供され、本発明の範囲をいかなるようにも限定することを意図しない。

用いた数字（例えば、量、温度など）に関して正確に記載するよう試みたが、幾分かの実験誤差および偏差はもちろん許容されるべきである。

実施例１
「サイズ化」複合糖質の調製
例示のＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴサッカライド破傷風トキソイド複合ワクチン（本明細書中、以後ＣＯＮＪ−２と称する）を以下のように調製した。ＭｅｎＢ ＢポリサッカライドのＮ−アセチル基を、ポリサッカライドをＮａＢＨ_４の存在下で２Ｍ ＮａＯＨ中で６時間、１１０℃に加熱することにより除去した。脱アセチル化ポリサッカライドを飽和炭酸水素ナトリウム緩衝液中で十分に透析し、次いで過剰のプロピオン酸無水物と共に、室温で１２時間、撹拌した。溶液を水中で十分に透析し、Ｎ−プロピオニル化髄膜炎菌Ｂ（ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ）ポリサッカライドを凍結乾燥により回収した。

複合ワクチンの調製のために、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ポリサッカライドを、１０ｍＭ酢酸ナトリウム中でｐＨ５．５で５０℃で２時間、部分的に加水分解した。得られたオリゴサッカライド混合物をＱ−セファロース上で分画した。２〜６の平均重合度（Ｄｐ）を有するオリゴサッカライドを１００ｍＭ ＮａＣｌを用いてまず溶出し、廃棄した。中間サイズのオリゴサッカライドを５００ｍＭ ＮａＣｌを用いて溶出した。続いて、Ｍｏｎｏ Ｑカラムを用いる分析イオン交換クロマトグラフィーにより、中間サイズのオリゴサッカライドがＤｐ １３〜２０の大きさの範囲であることを決定した（平均＝Ｄｐ １３）。

末端アルデヒド基を、暗所において室温で１５〜３０分間、これらを１００ｍＭ 過ヨウ素酸ナトリウムと反応させることにより、中間サイズのオリゴサッカライドの非還元末端で生成した。過剰のエチレングリコールを用いて酸化反応を停止させ、そして生成物をＳｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−２５カラム上で脱塩した。オリゴサッカライド−タンパク質結合体を、４０ｍｇ／ｍｌのシアノホウ素化水素ナトリウムを有する０．７５Ｍリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ ９．０）中で末端アルデヒド含有ＮＰｒ−ＭｅｎＢ オリゴサッカライドの破傷風トキソイドとの混合物（それぞれモル比２００：１）を、４０℃で１日および室温で２日撹拌することにより調製した。得られたＮＰｒ−ＭｅｎＢ オリゴサッカライド−破傷風トキソイド結合体（ＣＯＮＪ−２）を、溶出緩衝液として５０ｍＭ リン酸ナトリウム（ｐＨ ７．０）、１５０ｍＭ 塩化ナトリウムを用いてＳｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−１００におけるゲル濾過クロマトグラフィーにより最終的に精製した。複合ワクチンのシアル酸組成およびタンパク質組成をそれぞれ、Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍレゾルシノール反応（Ｓｖｅｎｎｅｒｈｏｌｍ， Ｌ．（１９５７）Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ．２４：６０４）およびＬｏｗｒｙアッセイにより測定した。重量基準で、ＣＯＮＪ−２結合体の最終的な糖対タンパク質比は、０．１０〜０．２５の範囲であった。

実施例２
複合糖質の特徴付け
ＣＯＮＪ−２複合糖質を以下のように特徴付けた。共有原子価（例えば、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＯＳとタンパク質キャリアとの間の共有結合を確立する）を示すために、以下を含む多くの物理化学的技術を使用し得る：ＳＤＳ−ＰＡＧＥ；ウェスタンブロット；Ｓｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−１００ゲル濾過；など。本研究の目的のために、ＳＤＳ−ＰＡＧＥを使用して、キャリアタンパク質バンド自体と比較した場合、複合体バンドについてより高い分子量へのシフトを示すことによって、ＮＰＲ−ＭｅｎＢ ＯＳ／ＴＴ ＣＯＮＪ−２複合糖質の共有結合を確立した。ＣＯＮＪ−２複合糖質のウェスタンブロット分析は、ＴＴおよびＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳについてのポジティブ免疫反応性シグナルの、特異的な抗ＴＴおよび抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ抗血清との一致によって共有原子価を示した。

立体因子に基づいて、ＣＯＮＪ−２複合糖質の調製における大きな分子量のポリサッカライドの代わりのオリゴサッカライドの使用は、タンパク質キャリア分子上へのサッカライド抗原のより高いカップリング効率を可能にする。これらのＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴサッカライドに基づく複合体の最終的なサッカライド対タンパク質比は、タンパク質キャリア当たり共有結合する約３〜５のＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴサッカライド鎖に対応する約０．１０〜０．２５に及ぶ。毎重量に基づいて、ＣＯＮＪ−２複合糖質は、以前に報告されたＮＰｒ−ＭｅｎＢポリサッカライドに基づく複合体（米国特許第４，７２７，１３６号）（ここで、ＣＯＮＪ−２は平均して約７．５〜１８．８倍多いサッカライドを含む）より高いサッカライドローディングを有するようである（ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳの分子量として１０，０００ダルトンを用いる）。

さらに、十分に規定された中間体の鎖長（例えば、平均１０〜２０ Ｄｐ）の実質的に均一なサイズのサッカライド部分を有するＣＯＮＪ−２複合糖質を構築することは、より一貫した免疫学的挙動を呈する複合糖質を生じることが予期される。さらに、Ｑ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅクロマトグラフィー精製ＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴサッカライドの選択的末端活性化（例えば、非還元性末端でのアルデヒド基の選択的導入）は、両方の末端で誘導される「活性な」アルデヒド基を有するＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ分子の使用から生じ得る架橋不均一構造の可能性を回避する。この点において、両末端活性化ＰＳ（両方の末端にアルデヒド基を有する）を、Ｎ−脱アセチル化手順の間に、予めＮａＢＨ_４に曝露されたＮ−アセチル化ＭｅｎＢ ＰＳの過ヨウ素酸酸化から誘導し得る。

実施例３
モノクローナル抗体の調製
４〜６週齢の雌ＣＤ１マウスを、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＯＳ／ＴＴ （ＣＯＮＪ−２）複合糖質抗原および（最後の追加免疫注射を除いて）ＦＣＡを含む組成物を用いて、腹腔内注射によってワクチン接種した。ワクチン接種を、１ヶ月間隔で総量２または３投薬量で投与した（追加免疫を含む）。融合の３日前、初回刺激した動物を、アジュバントの非存在下でＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＯＳ／ＴＴ （ＣＯＮＪ−２）複合糖質抗原で追加免疫した。各用量の最終容量は０．１ｍｌであり、これは２．５μｇのシアル酸を含んだ。追加免疫注射後、動物を脾臓摘出し、そして脾臓細胞をミエローマ細胞との融合用に調製した。

融合の約１週間前、非分泌マウスＰ３Ｘ６３−Ａｇ８．６５３ミエローマ細胞（ＡＴＣＣ受託番号第ＡＴＣＣ−１５８０−ＣＲＬ号から入手可能）を、２５ｍＭのＨＥＰＥＳ緩衝液およびＬ−グルタミンを有する完全なＲＰＭＩ−１６４０培地（ＧＩＢＣＯ ＢＲＬ ０４１−０２４００）で拡大した。細胞培養物を、細胞増殖、細胞数をモニターするため、およびコンタミネーションをスクリーニングするために定期的に評価した。

融合の１日目、脾臓細胞、およびパートナーのＰ３Ｘ６３−Ａｇ８．６５３ミエローマ細胞（Ａｇ８細胞）を洗浄し、収集し、そして５：１（脾臓細胞：ミエローマ細胞）の比で混合した。細胞融合を、５０％ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の存在下で３７℃にて実施した。生じた細胞ペレットを収集し、そして９６ウェル平底細胞培養プレート（ＣＯＳＴＡＲ ３５９６）中に置き、そして適切な条件下で（例えば、５％ＣＯ_２中３７℃にて）インキュベートした。インキュベーションの１日後、ヒポキサンチン、アミノプテリン、およびチミジン（ＨＡＴ）を含む選択培地を、各ウェルに添加した。

増殖している細胞を含み、そして約１０〜２５％のコンフルエンスを示すウェルからのハイブリドーマを、ＨＡＴ選択培地中でのインキュベーションの約２週間後にスクリーニングのために選択した。選択したハイブリドーマ上清を、固相アビジン−ビオチン化ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳに基づくＥＬＩＳＡアッセイを用いてスクリーニングした。上清における抗体結合の特異性を、インヒビターとして可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを用いて決定した。ネガティブコントロールは、ＲＰＭＩ培地、Ａｇ８ミエローマ上清、および非関連モノクローナル抗体調製物を含んだ。ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＯＳ／ＴＴ （ＣＯＮＪ−２）複合糖質で免疫したマウス由来のプールしたポリクローナル血清を、ポジティブコントロールとして使用した。上清との一晩のインキュベーション後、反応ウェルを洗浄し、そして結合した免疫グロブリンを、アルカリホスファターゼ標識多価抗マウス免疫グロブリン（ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ）を用いて検出した。

候補ハイブリドーマを、上記のＥＬＩＳＡアッセイにおけるＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳについてのそれらの示された結合親和性に基づいて同定した。高度に反応性の抗体分子を分泌するハイブリドーマを、限定濾過によってクローニングした。詳細には、候補ハイブリドーマ細胞株を、２０μｌのクローニング／拡大培地（ＩＬ６を有するＣｏｍｐｌｅｔｅ ＲＰＭＩ−１６４０）中に、Ｔｅｒａｓａｋｉプレート（ＮＵＮＣ）中０．３、１．０、および３．０細胞／ウェルでプレートした。２週間後、培養物を増殖について視覚的に検査した。頻度分析を、Ｌｅｆｋｏｖｉｔｓら（１９８４）Ｉｍｍｕｎ．Ｔｏｄａｙ ５ （９）： ２６５によって記載される最小二乗法を用いて実施した。マスターウェル中の反応性上清を同定するために使用されるＥＬＩＳＡアッセイを繰り返し、７および１４日目の抗体活性を評価した。次いで、選択したクローンを、組織培養および腹水生成におけるその後の使用のために拡大および凍結した。このようにして、３９のハイブリドーマのパネルを生成し、そしてそれから得た分泌したモノクローナル抗体分子（「ＳＥＡＭモノクローナル抗体」、詳細にはモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−１〜ＳＥＡＭ−２４、ＳＥＡＭ−２６、ＳＥＡＭ−２８〜ＳＥＡＭ−３１、ＳＥＡＭ−３３〜ＳＥＡＭ−３６、ＳＥＡＭ−３８〜ＳＥＡＭ−４２、およびＳＥＡＭ−４８と命名した）を、さらなる評価のために調製した。

より詳細には、選択したモノクローナル抗体を、組織培養においてか、または腹水液においてのいずれかで、Ｐｒｉｓｔａｎｅで初回刺激した７〜８週齢の雄Ｂａｌｂ／ｃマウスを用いて生成した。各動物被験体を、ハイブリドーマ細胞での接種の１週間前に、０．５ｍｌのＰｒｉｓｔａｎｅでの腹腔内注射によって初回刺激した。接種前、ハイブリドーマ細胞濃度を、滅菌したＰＢＳを用いて、２．５×１０^６〜３×１０^６細胞／ｍｌに調整した。初回刺激した動物を、１ｍｌのハイブリドーマ細胞で腹腔内に注射した。ここで、各クローン細胞株を３匹の異なるマウス中に接種した。接種の１〜２週間後、腹水液の回収を開始し、約１週間継続した。回収した液体を、２７００ｒｐｍ（１５００×ｇ）にて室温で１０分間遠心分離した。上清を収集し、そしてペレットを廃棄した。単離した腹水液を、回収の過程にわたって４℃にて貯蔵し、そして異なる日に回収した液体をプールし、一定分量に分け、そして−７０℃にて凍結した。

実施例４
モノクローナル抗体の特徴付け
未精製のモノクローナル抗体の濃度を、ＥＬＩＳＡ捕捉アッセイおよび放射状免疫拡散アッセイを用いて決定した。詳細には、捕捉ＥＬＩＳＡ手順を用いて、各抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体の濃度を決定した。１０ｍＭ ＰＢＳ（ｐＨ７．４）において１μｇ／ｍｌに希釈した１００μＬ／ウェルのアフィニティー精製ウサギ抗マウスＩｇＧ、ＩｇＭ、およびＩｇＡ（ＨおよびＬ、Ｚｙｍｅｄ）を含むマイクロタイタープレート（Ｉｍｍｕｌｏｎ ２、Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ， Ｉｎｃ．から入手可能）を、４℃で一晩インキュベートした。ウェルを、ＰＢＳで３回洗浄後、２５０μＬのブロッキング緩衝液（１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）および０．１％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳ、ｐＨ７．４）で満たし、そして室温にて３０〜６０分間インキュベートし、非特異的結合部位をブロックした。プレートを、洗浄緩衝液（０．１％ Ｔｗｅｅｎ ２０および０．１％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳ、ｐＨ７．４）で３回洗浄した。試験するべき抗体を、希釈緩衝液 （１％ ＢＳＡ、０．１％ Ｔｗｅｅｎ ２０、および０．１％アジ化ナトリウムを含むＰＢＳ、ｐＨ７．４）に希釈し、次いで各ウェル当たり１００μｌで添加した。プレートを覆い、そして４℃で一晩インキュベートした。マウスＩｇＧ１、ＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ３、およびＩｇＭ免疫グロブリン標準（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓから入手可能）を、５００ｎｇ／ｍｌ〜４ｎｇ／ｍｌに及ぶ濃度で使用し、抗体濃度を定量するための標準曲線を構築した。

一晩のインキュベーション後、ウェルを冷洗浄緩衝液で５回洗浄し、そして希釈緩衝液において１：２０００希釈した１００μｌ／ウェルのアルカリホスファターゼ結合抗マウスＩｇＧ、ＩｇＭ、およびＩｇＡポリクローナル抗体（ＨおよびＬ、Ｚｙｍｅｄ）とともに、４℃で３時間インキュベートした。次いで、プレートを冷洗浄緩衝液で洗浄し、そして基質緩衝液 （１．０Ｍ ジエタノールアミン、０．５ｍＭ ＭｇＣｌ_２、ｐＨ９．８）で１ｍｇ／ｍｌに希釈した１００μｌの新しく調製した基質（ｐ−ニトロフェニルリン酸、Ｓｉｇｍａ）を各ウェルに添加した。約３０分後に４０５ｎｍでの吸光度値を測定した。モノクローナル抗体調製物の免疫グロブリン濃度を、標準曲線から算出した。

放射状免疫拡散アッセイを以下のように実施した。放射状免疫拡散プレートおよび試薬を、Ｔｈｅ Ｂｉｎｄｉｎｇ Ｓｉｔｅ Ｌｉｍｉｔｅｄ （Ｂｉｒｍｉｎｇｈａｍ， Ｅｎｇｌａｎｄ）から入手した。次いで、アッセイプロトコルは、ＲＩＤキットとともに供給された製造業者の明確な説明書に基づいた。簡単には、キットに供給されたキャリブレーター抗体を、適切な量の蒸留水を用いて再構成した。１：２および１：１０希釈のキャリブレーター抗体を調製した。必要ならば、試験サンプルを１％ ＢＳＡに希釈し得る。キャリブレーター抗体（適切な、１：２および１：１０希釈）について１０μｌのアリコート（ＩｇＡおよびＩｇＧ２ａサブクラス抗体について２０μｌ）および試験サンプルを、プレート上の分離したウェルに適用し、そして室温にて１２０時間インキュベートした。抗体の濃度を、沈殿物の環の直径を測定し、そしてこれらの値をＲＩＤキットに含まれる参考の表と比較することによって決定した。

次いで、組織培養物または腹水液由来のモノクローナル抗体を、以下のように部分的に精製した。モノクローナルを含む組織培養上清または腹水（２００ｍｌまたは指示された容量）を、溶液を穏やかに撹拌しながら、等量の冷１００％飽和硫酸アンモニウム（ＳＩＧＭＡ， Ｓａｉｎｔ Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）にゆっくりと添加した。モノクローナル抗体および硫酸アンモニウム混合物を、４℃で一晩インキュベートした。翌朝に、混合物を、均質化のために穏やかに撹拌し、そしてＳｏｒｖａｌｌ ＳＳ３４ローターにおいて５０００ｒｐｍで、４℃にて３０分間遠心分離した。上清をデカントした後、等容量の５０％硫酸アンモニウム溶液（すなわち、１００％飽和硫酸アンモニウムと同じ容量）を使用して、ペレットを洗浄し、そして再懸濁した。得られた混合物を、Ｓｏｒｖａｌｌ ＳＳ３４ローターにおいて５０００ｒｐｍで、４℃にて３０分間遠心分離した。次いで、上清をデカントし、そして排出した。

腹水について、ペレットをＰＢＳ 緩衝液（５０ｍＭのリン酸ナトリウム、１５０ｍＭの塩化ナトリウム、ｐＨ７．４）において、０．３〜０．５容量の開始容量に再構成した。組織培養上清について、ペレットを、ＰＢＳ 緩衝液の０．１容量の開始容量に再構成した。再構成したモノクローナル抗体および硫酸アンモニウム混合物を透析チューブ（分子量カットオフ１０，０００〜１２，０００）に入れ、そして４ＬのＰＢＳ中で一晩透析させた。ＰＢＳ溶液を、後の２日間にわたって３〜４回交換した。透析チューブからのモノクローナル抗体分子をシリンジ中に移し、そして０．２μｍメンブレンフィルターを通して濾過滅菌し、次いで−２０℃にて貯蔵した。

次いで、部分精製したモノクローナル抗体調製物を（ａ）免疫グロブリンアイソタイプ、（ｂ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの濃度依存性結合、（ｃ）種々のＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴマーの、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの結合を阻害する能力、（ｄ）天然のＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性、（ｅ）ＭｅｎＢの病原性株との交差反応性、（ｆ）補体媒介性殺菌活性、（ｇ）オプソニン活性、および（ｈ）細胞表面にて長鎖α２−８連結ポリシアル酸を発現する神経芽細胞腫細胞株への結合によって示されるような自己反応性について特徴付けした。これらの実験において、モノクローナル抗体の濃度を、捕捉ＥＬＩＳＡおよび上記のＲＩＤアッセイによって測定した。

（ａ）抗体のアイソタイプ分類：
モノクローナル抗体（重鎖および軽鎖）のアイソタイプを、二次アルカリホスファターゼ結合抗体がＩｇＧサブクラス、ＩｇＭ、ＩｇＡ、ならびにκ軽鎖およびλ軽鎖に特異的であるという唯一の差異を有する、上記の抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ ＥＬＩＳＡについてのプロトコルを用いて、ＥＬＩＳＡによって決定した。また、キットを使用して、抗体分子をアイソタイプ分類した。キットは、異なる型の免疫グロブリンペプチド鎖について特異的なヤギ抗体でコートした分類固着基質からなった。キットは、基質に対するヤギ抗体に結合するマウスモノクローナル抗体を検出するための、抗マウス免疫グロブリンに特異的なペルオキシダーゼ標識種を提供する。

以下で表１に記載するように、３９のモノクローナル抗体中のアイソタイプの分布が、１つのＩｇＭ、および３８のＩｇＧ（８つのＩｇＧ１、５つのＩｇＧ２ａ、１６のＩｇＧ２ｂ、および９つのＩｇＧ３）からなることを見出した。さらに、すべての抗体分子は、κ軽鎖を有した。

（ｂ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの濃度依存的結合：
固相ＥＬＩＳＡ手順を用いて、緩衝液のみまたは２５μｇ／ｍｌの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳインヒビターの存在下での抗体分子のＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの濃度依存的結合を評価した。ビオチン化ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ−ＡＤＨを、Ｓｕｔｔｏｎら（１９８５）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ８２：２１５の方法を用いて調製した。１０ｍＭ ＰＢＳ（ｐＨ ７．４）中の１００μｌ／ウェルのアビジン（４μｇ／ｍｌ Ｅｘｔｒ Ａｖｉｄｉｎ， Ｓｉｇｍａ）を含むマイクロタイタープレート（Ｉｍｍｕｌｏｎ ２， Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ， Ｉｎｃ．より入手可能）を、４℃で一晩インキュベートした。ＰＢＳでの３回の洗浄後、ＰＢＳ中の１００μｌのビオチン化ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを各ウェルに添加し、そして３７℃で２時間インキュベートした。プレートをＰＢＳで３回洗浄し、そしてウェルを２５０μｌのブロッキング緩衝液で満たし、そして室温で３０〜６０分間インキュベートして非特異的結合部位をブロックした。

ブロッキング後、プレートを洗浄緩衝液で３回洗浄した。モノクローナルの種々の希釈の５０μｌアリコートを、５０μｌの希釈緩衝液、または１ｍｌあたり５０μｇの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む（２５μｇ／ｍｌの最終インヒビター濃度として）５０μｌの希釈緩衝液のいずれかで含む複製プレートのウェルへ添加した。次いで、プレートを覆い、そして４℃で一晩インキュベートした。翌日、ウェルを冷洗浄緩衝液で５回洗浄し、次いで希釈緩衝液において１：２０００に希釈された１００μｌ／ウェルのアルカリホスファターゼ結合抗マウスＩｇＧ、ＩｇＭ、およびＩｇＡポリクローナル抗体（Ｚｙｍｅｄ）を用いて４℃で３時間インキュベートした。次いで、プレートを冷洗浄緩衝液で洗浄し、そして基質緩衝液において１ｍｇ／ｍｌに希釈された１００μｌの新しく調製した基質（ｐ−ニトロフェニルリン酸， Ｓｉｇｍａ）を各ウェルへ添加した。４０５ｎｍでの吸光値を約３０分後に測定した。

図１Ａ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡによって決定された固相ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳに対する４つの代表的抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の用量反応結合活性を示す。データは緩衝液において（●）、または２５μｇ／ｍｌの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む緩衝液において（○）希釈された抗体について示す。データ中でＸ軸に対する異なる範囲を使用する（ここで、モノクローナル抗体ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８は、０．０００１〜１μｇ／ｍｌで示し、およびモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−５は０．１〜１００μｇ／ｍｌで示す）。基質とのインキュベーション後に０．５のＯＤをもたらすに十分な抗体の濃度は、（ＳＥＡＭ−５の結合をＳＥＡＭ−１８の結合と比較して）かなり変化した。

表１は、３９のＳＥＡＭモノクローナル抗体の各々に対してＥＬＩＳＡにおいて０．５のＯＤをもたらすに必要な抗体のそれぞれの濃度範囲を要約する。示される値における大きな不均一性に対する最も可能性の高い説明は、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの抗体の結合活性の相違である。

（ｃ）オリゴマーによるＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの抗体結合の阻害：
競合固相ＥＬＩＳＡ手順を用いて、固相ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳに対するモノクローナル抗体分子の結合を阻害するためのＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴマーインヒビターの能力を評価した。アッセイを、モノクローナル抗体を、０．５〜１のＯＤをもたらす濃度まで予め希釈したことを除いては、抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ ＥＬＩＳＡについて上記のように実施した。モノクローナル抗体を、複製プレートのウェル（各々は、２５μｇ／ｍｌの最終インヒビター濃度をもたらす以下の可溶性インヒビターの１つを含む：高分子量（ＨＭＷ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ；または低分子量（ＬＭＷ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＯＳ（３．８の平均Ｄｐを有する））へ添加した。

プレートを覆い、そして４℃で一晩インキュベートした。翌日、ウェルを冷洗浄緩衝液で５回洗浄し、次いで希釈緩衝液において１：２０００に希釈された１００μｌ／ウェルのアルカリホスファターゼ結合抗マウスＩｇＧ、ＩｇＭ、およびＩｇＡポリクローナル抗体（Ｚｙｍｅｄ）を用いて４℃で３時間インキュベートした。次いで、プレートを冷洗浄緩衝液で洗浄し、そして基質緩衝液において１ｍｇ／ｍｌに希釈された１００μｌの新しく調製した基質（ｐ−ニトロフェニルリン酸， Ｓｉｇｍａ）を各ウェルへ添加した。４０５ｎｍでの吸光値を約３０分後に測定した。阻害パーセントを、インヒビターの非存在下での結合と比較して計算した。

図２は、４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−２、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の、２５μｇ／ｍｌの可溶性高分子量（ＨＭＷ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳインヒビター（■）、または２５μｇ／ｍｌの低分子量（ＬＭＷ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴサッカライド（３．８の平均Ｄｐ）インヒビター（□）のいずれかによる固相ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへの結合の阻害を示す。

ＨＭＷ ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳインヒビターは、試験された全てのモノクローナル抗体において、約７５％〜９５％の阻害を与えた。モノクローナル抗体における詳細な抗原特異性の差異は、試験されたＬＭＷインヒビターとのそれぞれの阻害パターンの差異から明白である。例えば、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳへのＳＥＡＭ−３およびＳＥＡＭ−８の結合は、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳの可溶性ＬＭＷインヒビターによって完全に阻害される。対照的に、ＳＥＡＭ−２およびＳＥＡＭ−１６は、オリゴマーによって顕著に阻害されない（２０％未満）。全てのモノクローナル抗体についてのＬＭＷ ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＯＳ阻害の結果を表１に示す。さらに、以下に記載のように、モノクローナルの詳細な抗原特異性における他の差異は、ＥＬＩＳＡにおけるＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳへの交差反応性において観察された差異、および宿主のポリシアル酸への結合における差異によって明白である。

（ｄ）ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性：
モノクローナル抗体を、固相ＥＬＩＳＡ形式において、ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳの直接的結合によって示されたように、 ＮＡｃ−ＭｅｎＢポリサッカライドへとの交差反応するそれらの能力について評価した。使用された方法は、固相抗原としてビオチン化ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳの代わりに、ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳ−ＡＤＨを使用したこと以外は、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ ＥＬＩＳＡについての上記の方法と類似した。

モノクローナルの種々の希釈の５０μｌアリコートを、５０μｌの希釈緩衝液、または１ｍｌあたり５０μｇの可溶性ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む（２５μｇ／ｍｌの最終インヒビター濃度として）５０μｌの希釈緩衝液のいずれかを含む複製プレートのウェルへ添加した。次いで、プレートを覆い、そして４℃で一晩インキュベートした。翌日、ウェルを冷洗浄緩衝液で５回洗浄し、次いで希釈緩衝液において１：２０００に希釈された１００μｌ／ウェルのアルカリホスファターゼ結合抗マウスＩｇＧ、ＩｇＭ、およびＩｇＡポリクローナル抗体（Ｚｙｍｅｄ）を用いて、４℃で３時間インキュベートした。次いで、プレートを冷洗浄緩衝液で洗浄し、そして基質緩衝液において１ｍｇ／ｍｌに希釈された１００μｌの新しく調製した基質（ｐ−ニトロフェニルリン酸， Ｓｉｇｍａ）を、各ウェルへ添加した。４０５ｎｍでの吸光値を、約３０分後に測定した。

図３は、５つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−１２、ＳＥＡＭ−１６、ＳＥＡＭ−１８、ＳＥＡＭ−２、およびＳＥＡＭ−３）の、固相ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳへの結合を示す。見られ得るように、３つの抗体（ＳＥＡＭ−１２、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）は、０．５μｇ／ｍｌおよび／または５μｇ／ｍｌの抗体で試験された場合、顕著な結合を示した。以前にスクリーニングアッセイにおいてネガティブであることが示された２つの他の抗体（ＳＥＡＭ−２およびＳＥＡＭ−３）は、５倍高い濃度（２５μｇ／ｍｌの抗体）で試験された場合、ネガティブであることが確認された。３９のモノクローナル抗体のそれぞれのＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性を、高い交差反応性（＋＋＋）から交差反応性でない（０）範囲にわたって得点づけした。結果を表１に示す。見られ得るように、１６のモノクローナル抗体が、ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳと交差反応し、そして４つが最小で交差反応した（±）（図１）。これらの２０のポジティブまたは弱いポジティブなモノクローナル調製物の交差反応性の特異性を、可溶性ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳを用いた結合の阻害によって確認した。２６の非交差反応性モノクローナル抗体は、２５μｇ／ｍｌまでの抗体濃度で試験した場合、固相ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳへの顕著な結合は示さなかった。

（ｅ）細菌結合アッセイ
抗Ｎ−Ｐｒ髄膜炎菌Ｂポリサッカライド抗体の、病原性細胞株Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ族Ｂの表面上へ結合する能力を、間接的免疫蛍光アッセイのフローサイトメトリー検出を用いて決定した。２つの完全に莢膜化された髄膜炎菌Ｂ試験生物（８０４７株（殺菌活性の測定のために使用した株）およびＮｍＢ株）を使用した。ＮｍＢのトランスポゾン含有変異体である第３の非莢膜化株、Ｍ７（Ｓｔｅｐｈｅｎｓら （１９９１）Ｉｎｆｅｃｔ．＆ Ｉｍｍｕｎ．５９：４０９７−４１０２）を、莢膜ポリサッカライドへの抗体結合の特異性についてのネガティブコントロールとして使用した。Ｍｕｅｌｌｅｒ−Ｈｉｎｔｏｎ培地および０．２５％グルコース中において対数増殖中期へ増殖された細菌細胞を回収し、そして１ｍｌあたり約１０^８細胞の密度でブロッキング緩衝液において再懸濁した。次いで、モノクローナル抗体（１０または１００μｇ／ｍｌの濃度）を添加し、そして氷上で２時間細胞へ結合させた。ブロッキング緩衝液での２回の洗浄後、細胞を、ＦＩＴＣ結合Ｆ（ａｂ’）_２フラグメントヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ， ＰＡ）とインキュベートし、ＰＢＳ緩衝液中の０．２５％ホルムアルデヒドで固定し、そしてフローサイトメトリーによって分析した。

ポジティブコントロール抗体は、髄膜炎菌特異的血清型決定およびサブタイプ決定モノクローナル抗体（ＭＮ２Ｃ３Ｂ、ＭＮ１６Ｃ１３Ｆ４、ＲＩＶＭ、Ｂｉｌｔｈｏｖｅｎ、ｔｈｅ Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）を含んだ。ネガティブコントロールは、関連しない特異性を有するマウスＩｇＧモノクローナル抗体からなった。

図４Ａ〜４Ｇは、代表的な実験からの結果を示す。モノクローナル抗体ＳＥＡＭ−３およびＳＥＡＭ−１８は、この間接的蛍光フローサイトメトリーアッセイにおいて、莢膜化された両方の試験株に対する強い莢膜特異的結合を示す（それぞれ、図４Ｃおよび４Ｄ）。対照的に、モノクローナル抗体ＳＥＡＭ−９およびＳＥＡＭ−１０は、このアッセイにおいてネガティブであった（図４Ｅおよび４Ｆ）。表１に要約されるように、２４の抗Ｎ−Ｐｒ髄膜炎菌Ｂポリサッカライド抗体は、１００μｇ／ｍｌで試験した場合、細菌結合の証拠を示した。２つのさらなる抗体は、莢膜化株および非莢膜化変異株の両方に最小の結合の証拠を示した。これらの抗体の細菌結合を、不定（ｉ）として得点づけした。例えば、図４Ｇに示されるＳＥＡＭ−７の結合を参照のこと。

（ｆ）補体媒介性殺菌活性：
殺菌アッセイを、Ｍａｎｄｒｅｌｌら（１９９５）Ｊ．Ｉｎｆｅｃ．Ｄｉｓ．１７２：１２７９に記載される方法を使用して、以下の改変を用いて行った：生物を０．２５％グルコース；およびバルビトール緩衝液の代わりにＧｅｙ緩衝液からなる血清希釈緩衝液を含有するＭｕｅｌｌｅｒ−Ｈｉｎｔｏｎ培地で増殖させた。いくつかの実験では、補体の異なる供給源を使用した：これらは２つの異なるウサギの乳仔の血清プール（Ｒａｂ Ｃ ＩおよびＲａｂ Ｃ ＩＩと呼ばれる）ならびにヒト無ガンマグロブリン血症血清（Ｈｕ Ｃと呼ばれる）を含んだ。

異なる濃度の抗体および２０％の補体と共にインキュベートした場合のＮ．ｍｅｎｉｎｇｉｄｉｔｉｓ ８０４７株のパーセント生存率を、４つの代表的なモノクローナル抗体について示す（図５Ａ〜５Ｄ）。示した各抗体を、以下の３つの異なる補体供給源を用いて試験した：ウサギの乳仔の血清プールＩ（▲）、ウサギの乳仔の血清プールＩＩ（●）、およびヒト無ガンマグロブリン血症（○）。ＳＥＡＭ−５およびＳＥＡＭ−１２について、各抗体に対する類似の用量応答が、３つの補体供給源のそれぞれについて観察された。対照的に、ＳＥＡＭ−１８は、ウサギの補体のいずれの供給源で必要とされるよりも、ヒト補体の存在下で細菌の死滅を誘発するためにより高い抗体濃度を必要とした。ＳＥＡＭ−３は、２つのウサギ補体供給源を用いて試験した場合、効率的な死滅を示し、そしてヒト補体供給源を用いて試験した場合、活性を示さなかった。補体媒介性細菌溶解を活性化する各モノクローナル抗体の能力を、表１に報告する。ＥＬＩＳＡによるＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳと交差反応性である殺菌性抗体の例（例えば、ＳＥＡＭ−１８、ＳＥＡＭ−３０、およびＳＥＡＭ−３５）が挙げられる。ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性を示さない殺菌性抗体の例（例えば、ＳＥＡＭ−２、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−７、およびＳＥＡＭ−８）もまた挙げられる。

（ｇ）オプソニン活性
モノクローナル抗体のオプソニン活性を、種々の確立された方法によって測定し得る。Ｓｊｕｒｓｅｎら（１９８７）Ａｃｔａ Ｐａｔｈ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｓｃａｎｄ．， Ｓｅｃ．Ｃ ９５：２８３， Ｈａｌｓｔｅｎｓｅｎら（１９８９）Ｓｃａｎｄ．Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．２１：２６７， Ｌｅｈｍａｎｎら（１９９１）ＡＰＭＩＳ ９９：７６９， Ｈａｌｓｔｅｎｓｅｎら（１９９１）ＮＩＰＨ Ａｎｎａｌｓ １４：１５７， Ｆｒｅｄｌｕｎｄら（１９９２）ＡＰＭＩＳ １００：４４９， Ｇｕｔｔｏｒｍｓｅｎら（１９９２）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．６０：２７７７、Ｇｕｔｔｏｒｍｓｅｎら（１９９３）Ｊ．Ｉｎｆｅｃ．Ｄｉｓ．１６７：１３１４、Ｂｊｅｒｋｎｅｓら（１９９５）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．６３：１６０、およびＨａｙｒｉｎｅｎら（１９９５）Ｊ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．１７１：１４８１。

１つのオプソニン作用のアッセイにおいて、ＧＮ寒天プレート（Ｇｒｅｉｎｅｒ Ｌａｂｏｒｔｅｃｈｎｉｅｋ， Ｇｒｅｉｎｅｒ ＢＶ， Ａｌｐｈｅｎ ａ／ｄ Ｒｉｊｎ， Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）上で３７℃で新たに増殖させたＮ．ｍｅｎｉｇｉｔｉｄｉｓを使用して、０．１の初期ＯＤを得るように８ｍｌのＭｕｅｌｌｅｒ Ｈｉｎｔｏｎ培地 （Ｄｉｆｃｏ， Ｄｅｔｒｏｉｔ， ＭＩ）に接種した。細菌を、激しく振盪しながら対数期（０．７５〜０．８５の６６０ｎｍでの吸光度）まで増殖させた。細胞を、蓋付きの滅菌のプラスチックチューブに移し、そして１０分間３５００ｒｐｍで遠心分離した。

細胞を、４ｍｌの７０％エタノールを添加し、そして４℃で少なくとも１時間インキュベートすることによって固定した。固定した細胞を、３５００ｒｐｍで１０分間の遠心分離によって再度ペレット化し、そして滅菌のリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）中に１．０のＯＤになるように再懸濁した。細胞懸濁物（１．３５ｍｌ）をエッペンドルフチューブに添加し、そして５分間１０，０００ｒｐｍで遠心分離した。上清を廃棄し、そして別の１．３５ｍｌを同じチューブに添加し、続いて遠心分離して１チューブあたり１×１０^９細胞を得た。フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）を含有するＰＢＳ（Ｓｉｇｍａ， Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）の１．０ｍｇ／ｍｌの溶液を調製し、そして５分間超音波処理し、次いで５分間１０，０００ｒｐｍで遠心分離した。ＦＩＴＣ−ＰＢＳ溶液（５０μｌ）を各チューブの細菌に添加し、次いで軽度に攪拌しながら３７℃にて１時間インキュベートした。ＰＢＳ（９５０μｌ）を各チューブに添加し、そして２分間１０，０００ｒｐｍで遠心分離した。ペレットを１ｍｌのＰＢＳで１回、そして１ｍｌのＢＳＡ−Ｈａｎｋｓ平衡化塩溶液（ＢＳＡ−ＨＢＢＳ）で１回洗浄した。ＦＩＴＣ標識した髄膜炎菌を１％のＢＳＡ−ＨＢＢＳ中で再構成し、そして１００μｌのアリコートに分けた。これを、アッセイでの使用まで−２０℃で保存した。

ヒト多型性核細胞（ＰＭＮ）をヘパリン含有チューブ中の健常な成体の末梢血から単離した（Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ， Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ， ＣＡ）。１０ｍｌの容量の血液を、等量のリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ；ｐＨ ７．４）で希釈し、そして１２ｍｌのｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ（密度１．１１９、Ｓｉｇｍａ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ， Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）の上部の１０ｍｌのＦｉｃｏｌｌ Ｐａｑｕｅ^ＴＭ （Ｐｈａｒｍａｃｉａ， Ｕｐｐｓａｉｌａ， Ｓｗｅｄｅｎ）からなるＦｉｃｏｌｌ ｈｉｓｔｏｐａｑｕｅ勾配に載せた。室温で４００×ｇで２０分間の遠心分離後、ＰＭＮをｈｉｓｔｏｐａｑｕｅの上部から回収し、そして１％のゼラチンを含有する氷冷ＲＰＭＩ培地（Ｒｏｓｗｅｌｌ Ｐａｒｋ Ｍｅｍｏｒｉａｌ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ， ＮＹ）を添加した。細胞を２５０×ｇで遠心分離し、そして残りの赤血球を９ｍｌの氷冷した滅菌水中に細胞を再懸濁することによって溶解させた。１分後、濃縮したＰＢＳおよびＲＰＭＩ−ゼラチンを添加して細胞懸濁物を等張化した。ＰＭＮを遠心分離し、そしてＲＰＭＩ培地に１×１０^７／ｍｌの密度に再懸濁した。ＰＭＮの純度および生存性は９５％以上であった。

マイクロタイタープレートに、試験されるべきモノクローナル抗体の適切な希釈物（ＢＳＡ−ＨＢＢＳ中で希釈した）、５μｌの１０％ヒト補体（ＢＳＡ−ＨＢＢＳ中）、および２５μｌのＦＩＴＣ標識した細菌懸濁物を添加して、５０μｌの全容量にした。選択した抗体を、補体を含まずに、そして３つまでの異なる補体供給源：正常なプールしたヒト血清；無ガンマグロブリン血症血清；およびウサギ胎児血清を用いて、１〜１０％までで補体濃度を変化させて試験した。各アッセイはポジティブおよびネガティブ抗体コントロール、ならびに補体、非オプソニン作用、および細胞のみのコントロールを含んだ。オプソニン作用反応を、３０分間３７℃にて振盪機上で反応させ、その後、氷上にマイクロタイタープレートに置くことによって反応を停止した。

食細胞懸濁物（５０μｌ）を５×１０^６細胞／ｍｌの最終濃度で添加した。これによって１０：１の細菌：食細胞の比が得られる。食細胞活動を、振盪機上で３７℃で３０分間反応させ、その後、それを氷上に置いた。冷ＢＳＡ−ＨＢＢＳ（１００μｌ）を各ウェルに添加した。プレートを１０分間１１００ｒｐｍで遠心分離した。上清をウェルから吸引し、そして細胞を２回以上１５０μｌの冷ＢＳＡ−ＨＢＢＳで洗浄した。次いで、冷ＢＳＡ−ＨＢＢＳ（１５０μｌ）を添加し、そして得られた細胞懸濁物を滅菌チューブに移した。２％のパラホルムアルデヒドを含有するＰＢＳの溶液（Ｐｏｌｙｓｃｉｅｎｃｅｓ， Ｉｎｃ．， Ｗａｒｒｉｎｇｔｏｎ， ＰＡ）を添加して細胞を固定した。次いでサンプルを、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって分析した。

１６の代表的なＳＥＡＭモノクローナル抗体についてのオプソニン作用実験の結果を、表１に報告する。オプソニンであることが見出されている全ての抗体は、少なくとも１つの補体供給源を使用する上記のアッセイにおいてもまた殺菌性であった。しかし、表１に見られ得るように、殺菌性であるがオプソニン性ではない抗体の例（例えば、ＳＥＡＭ−２、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−７、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−４１を参照のこと）が挙げられる。

（ｈ）自己反応性の評価：
３９ ＳＥＡＭモノクローナル抗体を含有する部分精製された組織培養上清を、宿主のポリシアル酸に対する自己反応性について評価した。１つのアッセイにおいて、モノクローナル抗体を、ヒト神経芽細胞腫細胞株ＣＨＰ−１３４（Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎら、（１９８８）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６３：９４４３）と交差反応するその能力について、間接的免疫蛍光のフローサイトメトリー検出を用いて評価した。このアッセイにおいて、その表面の神経細胞接着分子（ＮＣＡＭ）に結合した長鎖ポリシアル酸（ＰＳＡ）を発現するＣＨＰ−１３４細胞は、ヒトＰＳＡ抗原についての細胞性マーカーとして作用する。コントロール実験において、ほぼコンフルエントな細胞培養物を５０ｍｌの遠心管に回収し、そして１０００×ｇで遠心分離した。上清をデカントした後、５ｍｌのブロッキング緩衝液を、再懸濁した細胞に添加した。次いで、細胞を血球計で計数し、そして２つの等しいアリコートに分けた。１方のアリコートを、エキソノイラミニダーゼ（１０ユニット／１０^８細胞、ＳＩＧＭＡ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏ．， Ｓａｉｎｔ Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）とともに室温で２時間インキュベートした；他方のアリコートを、同様に、しかし酵素なしで処理した。インキュベーションの後、各アリコートからの細胞を、個々の反応管に、各管が１０^６個の細胞を含むよう分配した。細胞を洗浄するために、２ｍｌのブロッキング緩衝液を各反応管に添加し、その管をＳｏｒｖａｌｌ ＲＴ−６００Ｂ中で、２０℃、１０００ｒｐｍで、６分間遠心分離し、そして上清を吸引除去した。洗浄した細胞を、総容量２００μｌで、抗体を含まずに、または示された濃度（通常１０または１００μｇ／ｍｌ）の試験抗体（すなわち、ＳＥＡＭ ＭＡｂ）とともにのいずれかで、氷上で２時間インキュベートした。

アッセイにおけるコントロール抗体は、以下を含んでいた：（１）関連しない特異性のＩｇＧモノクローナル抗体（ネガティブコントロールとしての、ＶＩＩＧ１０）；（２）ＩｇＭ抗ポリシアル酸モノクローナル抗体（ポジティブコントロールとしての、２−１Ｂ）；および（３）ＮＣＡＭのタンパク質骨格に特異的な抗ＣＤ５６モノクローナル抗体（Ｉｍｍｕｎｏｔｅｃｈ， Ｍａｒｓｅｉｌｌｅ， Ｆｒａｎｃｅ）。ブロッキング緩衝液（２ｍｌ）を、各反応管に添加し、そして管をＳｏｒｖａｌｌ ＲＴ−６００Ｂ中で、２０℃、１０００ｒｐｍで、６分間遠心分離した。遠心分離の後に、上清を吸引除去し、そして細胞を室温で１時間、１５０μｌのフルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）−結合体化Ｆ（ａｂ’）_２フラグメントヤギ抗マウスＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（４μｇ／ｍｌに希釈）（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｉｍｍｕｎｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ， Ｗｅｓｔ Ｇｒｏｖｅ， ＰＡ）とともにインキュベートした。ブロッキング緩衝液で洗浄した後、ＰＢＳ緩衝液（５０ｍＭリン酸ナトリウム、ｐＨ ７．０、１５０ｍＭ塩化ナトリウム）中の４００μｌの０．２５％ホルムアミドを細胞に添加し、そして細胞をＦＡＣＳＣＡＮ^ＴＭ細胞ソーター（Ｂｅｃｔｏｎ−Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ， Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ， ＣＡ）を使用して、フローサイトメトリーによって分析した。

全ての抗体を、二連の最終濃度１０および１００μｇ／ｍｌの抗体で、未処理細胞、およびノイラミニダーゼで前処理した細胞を使用して試験した。この処理によって、表面ポリシアル酸が切断され、そしてポリシアル酸への抗体結合の特異性についてのアッセイにおけるコントロールを提供する。代表的な実験において（図６Ａ〜６Ｉ）、一次抗体なしで、または関連しない抗原特異性を有するコントロールモノクローナル抗体とともにインキュベートした細胞は、非常に小さい蛍光を示す（約９８％の細胞が＜１０ユニットの蛍光を有する、図６Ａ）。対照的に、抗ＮＡｃ ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体である２−１Ｂで処理された実質的に全ての細胞が、強く蛍光を発する（図６Ｂ、左）。この蛍光は、抗体がノイラミニダーゼで前処理された細胞とともにインキュベートされる場合、コントロールレベルまで減少する（図６Ｂ、右）。同様に、抗ＣＤ５６で処理した細胞は、強く蛍光を発する（図６Ｃ）。この抗体を用いて、蛍光は、細胞をノイラミニダーゼで前処理することによって影響を受けない。なぜなら、ＣＤ５６決定基は、ＮＣＡＭのタンパク質骨格に位置し、そしてノイラミニダーゼによるポリシアル酸の除去によって影響を受けないからである。

ＳＥＡＭ−５抗体は、１００μｇ／ｍｌで試験される場合（図６Ｄ）、検出可能な結合を与えず、このアッセイではネガティブであると考えられる。ＳＥＡＭ−３５抗体は、１０または１００μｇ／ｍｌで試験した場合（図６Ｅおよび６Ｆ）、強力なポリシアル酸特異的結合を示し、ポジティブであると考えられる。少数個の抗ＮＰｒ ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体が、１００μｇ／ｍｌで試験された場合、結合を示すが、１０μｇ／ｍｌで試験された場合、ネガティブであるようである（例えば、図６Ｇおよび６ＨのＳＥＡＭ−１２を参照のこと）。このような抗体は、本出願の目的については、最小限に自己反応性であると考えられる。細胞のノイラミニダーゼによる前処理によって影響を受けなかった神経芽細胞株との弱い反応性を有する抗体は、希少のようである（ＳＥＡＭ−７、図６Ｉを参照のこと）。このような抗体のポリシアル酸との自己反応性は、アッセイにおいて中程度として得点され、そしてこれらの抗体はまた、本出願の目的について、宿主ＰＳＡに対して最小の自己反応性を有すると考えられる。

表１は、この間接的蛍光フローサイトメトリーアッセイにおいて決定した場合の、各抗体の自己抗体活性を要約する。ＣＨＰ−１３４細胞において発現したポリシアル酸抗原との交差反応性は、ＥＬＩＳＡアッセイにおいて抗体のＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性と密接に相関した。表１に示すように、ＥＬＩＳＡにおいてＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳと交差反応しなかったモノクローナル抗体は、ＣＨＰ−１３４細胞にも結合しなかったが、ＥＬＩＳＡにおいてＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳと交差反応した抗体の全てが、ＰＳＡともまた交差反応した。２つのアッセイ間のこの相関は、予想されなかった。なぜなら、ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳおよび宿主ＰＳＡのポリサッカライド共有結合構造は、同一であると報告されているからである。

実施例５
ＳＥＡＭモノクローナル抗体組成物を用いた受動免疫
上記で特徴づけられたＳＥＡＭモノクローナル抗体の能力を評価して、細菌性抗原投与に対する受動防御を提供するために、以下の免疫化研究を行った。

動物：非近交系の乳仔ＳＰＦ（特異的病原体を含まない）白色種Ｗｉｓｔａｒラットを、ヘルシンキ大学動物センター（Ｈｅｌｓｉｎｋｉ， Ｆｉｎｌａｎｄ）から入手した。

細菌株：ＭｅｎＢ：１５：ｐ１．７、１６表現型を有するヒト患者単離株であるＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｒｉｎｇｉｔｉｄｉｓＢ群の株ＩＨ ５３４１、および１〜２のさらなる他のＢ群細菌株（例えば、Ｍ３５５；Ｂ：１５：Ｐ１．１５）を用いた。全ての細菌株を、ラットで５回継代し、そしてスキムミルク中で−７０℃にて保存した。各実験について、新鮮な接種物をストックから採取し、そしてＩｓｏＶｉｔａｌｅｘ、Ｌ−トリプトファン、およびヘモグロビンを補充した淋菌（ＧＣ）培地塩基（ＧＣ寒天ＩＩ Ｂａｓｅ， Ｂｅｃｔｏｎ Ｄｉｃｋｉｎｓｏｎ， Ｍｏｕｎｔａｉｎ Ｖｉｅｗ， ＣＡ）上で培養した。５％ ＣＯ_２中で３７℃で一晩のインキュベーション後、いくつかのコロニーを、２０ｍｌの脳−心臓注入ブロスを含有する培養フラスコ中に接種し、そして回転シェーカー中で１５０ｒｐｍで３７℃にて、光学密度（Ｋｌｅｔｔ ９０）が１０^８ ｃｆｕ／ｍｌに対応するまでインキュベートした。次いで、培養物を、使用のために１０^６ ｃｆｕ／ｍｌに対応するリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）中に希釈した。抗原投与用量中の生存細菌の実際数を、ＰＢＳ中への懸濁物の系列希釈の後にｃｆｕを計数し、そしてプロテオースペプトン寒天上にプレートすることにより決定した。

免疫：各実験では、４〜６日齢の乳仔ラットの３〜４匹の同腹子をランダムに選択し、そして各６匹の動物の実験群に分け、そしてＳＥＡＭモノクローナル抗体組成物（０．９％生理食塩水中）、生理食塩水溶液（０．９％）、またはコントロール抗体のいずれかを腹腔内注射した。各群で３匹の動物に、ＳＥＡＭ抗体（それぞれ、０．４μｇ、２μｇ、および１０μｇの用量）を接種し、２匹の動物をネガティブコントロール（一方は生理食塩水単独の注射を受け、そして他方は関連しない特異性のモノクローナル抗体の注射を受けた）として用い、そしてポジティブな動物は、抗Ｍｅｎ Ｂポリサッカライド抗体の注射を受けた。

細菌抗原投与：最初の注射の１〜２時間後、乳仔ラットは、最終容量１００μｌ中の１０^５個のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ Ｂ群細菌の株ＩＨ ５３４（ラットで５回継代した）の細菌抗原投与の腹腔内注射を受けた。細菌接種の６時間後、菌血症および髄膜炎の発達を、乳仔ラットから採取した血液および脳脊髄サンプルを培養することにより評価した。

６回の代表的なＳＥＡＭモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−７、ＳＥＡＭ−８、ＳＥＡＭ−１０、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−１８）についての研究（Ｎ．ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ菌血症からの防御）の結果を、以下の表４に示す。見られ得るように、ＳＥＡＭ−１２抗体およびＳＥＡＭ−１８抗体は強力に防御性であり、ＳＥＡＭ−７抗体およびＳＥＡＭ−８抗体は部分的に防御性であり、ＳＥＡＭ−５抗体およびＳＥＡＭ−１０抗体は１０μｇ／ｐｕｐの用量まで防御を全く提供しない。

実施例６
ＳＥＡＭモノクローナル抗体を用いるＭｅｎＢ抗原のペプチド模倣物の同定
以下の手順を、本発明のＳＥＡＭモノクローナル抗体と相互作用するペプチド模倣物を同定するために実施した。ファージディスプレイペプチドライブラリーを、Ｍ１３ベクター中に、当業者に公知の技術を用いて構築した。Ａｄｅｙら （１９９６）「Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｒａｎｄｏｍ Ｐｅｐｔｉｄｅ Ｌｉｂｒａｒｉｅｓ ｉｎ Ｂａｃｔｅｒｉｏｐｈａｇｅ Ｍ１３」， Ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙ ｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ， Ｋａｙら編， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ， ＣＡ。特に、直鎖状８マー（Ｌ８）、環状６マー（Ｃ６）、および単一Ｃ（Ｃ１）ペプチドを、ｐＩＩＩバクテリオファージタンパク質のＮ末端伸長物として提示した。ライブラリーの特徴を、以下の表３に示す。

^ａペプチドは、Ｍ１３ファージタンパク質ｐＩＩＩとの融合物として提示される。
^ｂＸは、ランダムなアミノ酸を示し、他の全ては標準的な一文字コードである。
^ｃ（Ｐ）_４または（Ｐ）_６は、それぞれ、４または６個のプロリン残基のいずれかをいう。

ライブラリーのパニングを、抗体がマイクロタイタープレートに直接吸収されたこと以外は、Ｓｍｉｔｈら （１９９３）Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ ２１７：２２８に記載される技術を用いて実施した。代表的なモノクローナル抗体（１μｇ／ｍｌのＳＥＡＭ−２、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−７、ＳＥＡＭ−１２、ＳＥＡＭ−１６、ＳＥＡＭ−１８、およびＳＥＡＭ−２８）、または対応する濃度のコントロール抗体（マウス抗ＭｅｎＢ ＰＳ特異的モノクローナル（２−１Ｂ）、ヒト抗Ｈｉｂ ＰＳモノクローナル（ＥＤ８）、および関連しない特異性のマウスモノクローナル（Ｌａｚ２）））を含有する１００μｌ溶液を、マイクロタイタープレート（Ｉｍｍｕｎｏｌｏｎ ＩＩ）中で４℃にて一晩インキュベートした。ウェルをＰＢＳで洗浄した後、ブロッキング溶液（ＰＢＳ中の５％（ｗ／ｖ）脱脂粉乳、０．２％（ｗ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ−２０、０．０２％（ｗ／ｖ）アジ化ナトリウム）を、ウェルを完全に満たすように添加し、次いでプレートを室温にて３時間インキュベートした。ブロックしたプレートを、ＰＢＳで６回洗浄した。

約１０^１０ｐｆｕのファージを、１ウェルあたり１００μｌの総容量で三連のウェルに添加した。プレートを、ファージとともに４０℃にて一晩インキュベートした。次いで、各ウェルを、ＰＢＳで９回洗浄し、そして各ウェルに１００μｌの０．２Ｍグリシン、ＨＣｌ（ｐＨ２．２）緩衝液を添加し、そして室温にて１時間インキュベートすることにより結合したファージを放出させた。それぞれの三連ウェルからの緩衝溶液を合わせ、そして溶液１００μｌあたり２０μｌ １．５Ｍ Ｔｒｉｓ （ｐＨ８．８）緩衝液の添加によりｐＨを８に調整した。０．２％（ｗ／ｖ）マルトースおよび１２μｇ／ｍｌテトラサイクリンを含有するＬＢ培地（ＬＢ−ｍａｌ，ｔｅｔ培地）中でＯＤ_{５５０ｎｍ}＝０．４〜０．６の密度のＥ．ｃｏｌｉ（ＸＬ１−Ｂｌｕｅ）の新鮮に増殖させた培養物（２ｍｌ）を、放出されたファージの合わせた溶液に添加した。細胞およびファージを、３７℃にて２０分間インキュベートし、その後２０ｍｌの培地を添加した。細胞を３７℃にて一晩増殖させ、次いで遠心分離（５０００×ｇにて１０分間）によりペレット化した。上清を０．２μｍメンブレンを通して濾過し、そして０．１５容量の２０％（ｗ／ｖ）ポリエチレングリコール８０００、４Ｍ ＮａＣｌを添加し、そして混合物を４℃にて一晩静置することによりファージを沈澱させた。沈澱したファージを、遠心分離（１０，０００×ｇにて１０分間）により回収し、次いで２０ｍｌ ＰＢＳ中に再懸濁した（約１０^１２ｐｆｕ／ｍｌ）。

各パニングを、各スクリーニングについて３または４回繰り返した。最後に、最後のパニングから放出されたファージを用いてＸＬ１−Ｂｌｕｅ細胞を感染させ、そしていくつかの系列希釈物をＬＢ寒天プレート上に直接プレートした。個々のプラークを選択し、そしてＸＬ１−Ｂｌｕｅの５ｍｌ培養物（ＬＢ−ｍａｌ，ｔｅｔ培地）中で増幅させた。ファージからのＤＮＡを、ＱＩＡ８−Ｐｒｅｐ^ＴＭカラム（Ｑｕｉａｇｅｎ）を用いて調製し、そしてＳｅｑｕｅｎａｓｅ^ＴＭキット（Ａｍｅｒｓｈａｍ）を製造者の指示に従って用いて配列決定した。

計６７個の独特のペプチド配列（ペプチドＰｅｐ １〜Ｐｅｐ６７）を、ＳＥＡＭモノクローナル抗体により選択した。これらのペプチド配列を、図７において配列番号１〜６７として示す。これらの配列のうち、１３個は、偶然を越えて同定された（表４）。１つの例外はあるが、コントロール抗体により選択された配列（２−１Ｂ、ＥＤ８、よびＬａｚ２）はいずれも、ＳＥＡＭモノクローナル抗体により選択された配列に対して同一でも有意に相同でもなかった。１つの例外（配列番号９）は、ＳＥＡＭ−３およびＬａｚ２コントロール抗体の両方により選択された。しかし、この結果は、おそらく、試薬間の相互コンタミネーションに起因する。なぜなら、両方の実験を同時に行なったからである。

実施例７
ペプチド模倣物の特徴付け
合成ペプチドへの抗体結合の特徴付けのために、部分的に精製されたモノクローナル抗体を、ＢＩＯＣＡＤ（登録商標）灌流クロマトグラフィーワークステーションでＰｏｒｏｓ Ｇ／ＭプロテインＧカラム（４．６ｍｍ×１００ｍｍ）を用いて１．７ｍｌ（ＰｅｒＳｅｐｔｉｖｅ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ， Ｆｒａｍｉｎｇｈａｍ， ＭＡ）のカラム容量でさらに精製した。プロテインＧカラムを、１０カラム容量のＰＢＳ緩衝液で平衡化した。腹水またはＰＢＳ中に再懸濁した組織培養物のいずれかからのモノクローナル抗体調製物（２ｍｌ）を、プロテインＧカラムに注射した。５カラム容量のＰＢＳ緩衝液で洗浄した後、モノクローナル抗体を、０．２Ｍグリシン−ＨＣｌ、１５０ｍＭ塩化ナトリウム（ｐＨ２．５）緩衝液を用いてプロテインＧカラムから溶出した。溶出した抗体を、内部に備えられた分光光度学的検出器で２２０ｎｍおよび２８０ｎｍの両方でモニタリングし、そして溶出ピークを収集し、そして４℃にて保存した。収集してすぐに１００μｌの１．５Ｍ Ｔｒｉｓ（ｐＨ８．８）を添加することにより、各１ｍｌ画分のｐＨを８．０に上昇させた。精製したモノクローナル抗体の濃度を、分光光度計で、２８０ｎｍの吸光度で、０．７１ｍｇ^−１ｍｌ ｃｍ^−１の吸光係数を用いて決定した。

ＥＬＩＳＡを用いて、抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ抗体が、表４に同定した選択されたペプチド模倣配列に対応する合成ペプチドを認識する能力を決定した。合成ペプチドを、Ｂｉｏｓｙｎｔｈｅｓｉｓ（Ｌｅｗｉｓｖｉｌｌｅ， ＴＸ）から購入した。ＥＬＩＳＡプレートへの吸収を促進するために、疎水性テイルのアミノ末端（ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ）での付加によりペプチドを改変した。さらに、ペプチドは、カルボキシル末端アミドであった。合成ペプチド（１ｍｇ）を、１００μｌのジメチルスルホキシド（Ｓｉｇｍａ， Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）中に再懸濁し、次いでアリコートを、５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ（Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ， Ｐｉｔｔｓｂｕｒｇｈ， ＰＡ）ｐＨ８．０、 １５０ｍＭ ＮａＣｌ（Ｓｉｇｍａ， Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）、および０．０２％アジ化ナトリウム（Ｓｉｇｍａ， Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）中で１０μｇ／ｍｌのペプチド濃度までさらに希釈した。５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ緩衝液中に１００μｌ／ウェルの１０μｇ／ｍｌペプチド溶液を含有するマイクロタイタープレート（Ｉｍｍｕｌｏｎ ２（登録商標）；Ｄｙｎａｔｅｃｈ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ Ｉｎｃ．， Ｃｈａｎｔｉｌｌｙ， Ｖａ．）を、４℃にて一晩インキュベートした。プレートをリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）で３回洗浄した後、ウェルを、２００μｌのブロッキング緩衝液で満たし、そして１〜２時間室温でインキュベートして非特異的結合部位をブロックした。次いで、プレートを、洗浄緩衝液で５回洗浄した。

ペプチド結合について試験されるべきＳＥＡＭモノクローナル抗体の種々の希釈物（５０μｌ）を、５０μｌの希釈緩衝液、または１ｍｌあたり５０μｇの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳ（２５μｇ／ｍｌの最終インヒビター濃度）を含有する５０μｌの希釈緩衝液のいずれかを含む二連のプレートに添加した。次いでプレートを覆い、そして４℃にて一晩インキュベートした。翌日、プレートを、洗浄緩衝液で５回洗浄し、次いで希釈緩衝液中に１：２０００に希釈したアルカリホスファターゼ結合抗マウスポリクローナル抗体、ＩｇＡ＋ＩｇＧ＋ＩｇＭ（Ｚｙｍｅｄ， Ｓｏｕｔｈ Ｓａｎ Ｆｒａｎｃｉｓｃｏ， ＣＡ）１００μｌ／ウェルとともに、４℃にて３時間インキュベートした。次いで、プレートを洗浄緩衝液で５回洗浄し、そして基質緩衝液中に１ｍｇ／ｍｌまで希釈した新鮮に調製した基質（ｐ−ニトロフェニルリン酸， Ｓｉｇｍａ， Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ， ＭＯ）１００μｌを各ウェルに添加した。吸光度の値を、３０分後に４０５ｎｍで測定した。

繋留されたＰｅｐ ４およびＰｅｐ ８に対する代表的な結合データを、それぞれ図８−Ａおよび図８−Ｂに示す。いくつかのＳＥＡＭ抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体は、これらの２つのペプチドを認識する。対照的に、同じアイソタイプの関連しないマウスモノクローナル抗体は、このアッセイにおいて結合を示さない（データは示さず）。いくつかのＳＥＡＭ抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体については、２５μｇ／ｍｌでのＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳの添加は、ペプチド（例えば、ＳＥＡＭ−３）に対する抗体の結合を完全に阻害した。他の抗体については、結合の部分的な阻害が存在する（例えば、ＳＥＡＭ−１６およびＳＥＡＭ−１８）かまたは阻害が存在しない（ＳＥＡＭ−５）かのいずれかである。表５にまとめるように、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳに対するＳＥＡＭ抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体の濃度依存性結合と、特定の合成ペプチドへのそれぞれの結合との間に密接な対応が存在する。例えば、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳおよびＰｅｐ ８に対する抗体ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−７、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８の相対結合を参照のこと。

実施例８
ペプチド模倣ワクチン組成物の調製
上記のペプチド模倣配列に相当する合成ペプチドを含むワクチン組成物を以下のように調製した。

ＯＭＰ粒子の調製。 ＯＭＰ粒子を、Ｌｏｗｅｌｌら（１９８８）Ｊ．Ｅｘｐｔ．Ｍｅｄ．１６７：６５８−６６３、およびＺｏｌｌｉｎｇｅｒら（１９７９）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．６３：８３６−８４８により記載された技術の組合せを用いて、Ｂ群のＮｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓの莢膜欠損変異体株（Ｍ７株）から調製した。簡単に述べれば、３７℃でインキュベートされたチョコレート寒天平板上の一晩培養からの、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ Ｍ７株（ＮｍＢ由来の非莢膜変異体）を、殺菌Ｆｒａｎｔｚ培地（１Ｌの水中に、１０．３ｇのＮａ_２ＨＰＯ_４、１０ｇのカザミノ酸（Ｄｉｆｃｏ、Ｄｅｔｒｏｉｔ、ＭＩ）、０．３６ｇのＫＣｌ、０．０１２ｇのシステイン−ＨＣｌ（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、および２５ｍｌの４０％グルコース−４０ｍＭ ＭｇＳＯ_４ （Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）、ｐＨ７．４）を含む２つの５００ｍｌフラスコに接種するために用いた。細菌を、初期の０．１〜０．２のＯＤから対数期まで（０．７５〜０．８５のＯＤ）、シェーカー上１８０ｒｐｍで６〜８時間増殖させた。この細菌を、０．５％フェノール溶液を用いて室温で１時間不活性化した。細胞を、３０００×ｇで３０分間の遠心分離により回収した。デカンテーションにより上清液を流し出し、そして細胞をＰＢＳで２回洗浄した。得られたペレットを−２０℃で貯蔵した。

次いで、細菌を、０．０５ＭのＴｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１５ＭのＮａＣｌおよび０．０１ＭのＥＤＴＡ（ｐＨ７．４）を含む１５ｍｌの緩衝液中に再懸濁し、それから３０分間５６℃まで暖めた。室温まで冷却した後、この懸濁液を、Ｐｏｌｙｔｒｏｎ（Ｋｉｎｅｍａｔｉｃａ ＧｍｂＨ．， Ｌｕｚｅｒｎ， Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）中で、３分間フルスピードでせん断し、それから１６０００×ｇで１５分間遠心分離した。得られたペレットを、１０ｍｌの緩衝液（５００ｍＭ塩化ナトリウム、５０ｍＭリン酸ナトリウム）を用いて再懸濁し、そして５ｍｌのデタージェント溶液（１０％デオキシコール酸ナトリウム（ＤＯＣ）（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）、０．１５Ｍグリシン（Ｂｉｏｒａｄ、Ｈｅｒｃｕｌｅｓ、ＣＡ）、および３０ｍＭエチレンジアミンテトラ酢酸（ＥＤＴＡ）（ＳＩＧＭＡ、Ｓａｉｎｔ Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ））で処理した。懸濁液を１６，０００×ｇで１５分間遠心分離した。次いで上清液を集め、そして１００，０００×ｇで２時間遠心分離した。外膜タンパク質調製物を含むペレットを、１０ｍｌの水に再懸濁し、そして４℃で貯蔵した。

外膜タンパク質の１０ｍｌの懸濁液を、５ｍｌのデタージェント溶液で再処理し、つしで３０分間５６℃まで暖めた。冷却後、リポポリサッカライド（ＬＰＳ）を、外膜タンパク質から、第２のデタージェント溶液（１％ＤＯＣ、０．０５Ｍグリシン、および０．００５Ｍ ＥＤＴＡ、ｐＨ ８．８）中の２ｃｍ×２０ｃｍのＳｅｐｈａｄｅｘ Ｇ−１００カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｆｉｎｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ、Ｐｉｓｃａｔａｗａｙ、Ｎ．Ｊ．）を用いて、１度に２ｍｌのクロマトグラフィーにより取り出した。ピークのフラクションを集めて３０℃まで暖め、そして０．２μｍのメンブレンフィルターを通じて、４容量の冷フィルター滅菌濾過したエタノール中に直接滅菌濾過した。この混合液を４℃で一晩インキュベートした。得られた沈殿物を、１６，０００×ｇで１０分間の遠心分離により集め、そして１ｍｌの滅菌蒸留水中に再懸濁した。得られるＯＭＰ調製物は可溶性であったが、わずかに乳白色であり、そして−６０℃で貯蔵した。

ペプチド／ＯＭＰ粒子の調製
ワクチンを、ペプチドＰｅｐ５およびＰｅｐ８から、またはペプチドＰｅｐ１〜Ｐｅｐ９の混合物から調製した。ペプチドのＯＭＰ粒子への疎水的複合体化を容易にするために、各ペプチドを、ＥＬＩＳＡについて上記したように、アミノ末端における疎水性テイル（ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ）、およびカルボキシルアミドの付加により改変した。各ワクチンのために、５ｍｇのペプチドを、１００μｌのジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）（ＳＩＧＭＡ、Ｓａｉｎｔ Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）中に溶解した。得られる溶液を、５０ｍＭの４−（−２−ヒドロキシエチル）−１−ピペラジンエタンスルホン酸（Ｈｅｐｅｓ）、ｐＨ ８．０、および１Ｍのフェリシアン化カリウム（ＳＩＧＭＡ、Ｓａｉｎｔ Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）を含む緩衝液で７５０μｌまで希釈した。次いで、７．５μｇの両性イオン性デタージェント（Ｅｍｐｉｇｅｎ、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ、Ｌａ Ｊｏｌｌａ、ＣＡ）を、上記のペプチド溶液に添加した。室温で１時間インキュベーションした後、ペプチド溶液の各々を、１ｍｌの総容量について、２５０μｌの外膜タンパク質（ＯＭＰ）粒子（２０ｍｇ／ｍｌ）と合わせた。この溶液を７５℃まで２０分間加熱した。室温まで冷却した後、このＯＭＰ／ペプチド混合物を、分子量１０，０００カットオフのＳｌｉｄｅ−Ａ−Ｌｙｚｅｒ（Ｐｉｅｒｃｅ、Ｒｏｃｋｆｏｒｄ、ＩＬ）に添加し、そして１Ｌ ＰＢＳ中で一晩透析した。ＰＢＳ溶液（１Ｌ）は８時間にわたって２回交換した。

実施例９
ＯＭＰ−ペプチド模倣ワクチン組成物を用いた免疫
上記の実施例８で調製されたＯＭＰ−ペプチドワクチン組成物を評価するために、以下の研究を実施した。

動物：Ｂａｌｂ／ｃおよびＣＤ１マウス（Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｂａｒ Ｈａｒｂｏｒ、ＭＥ）を免疫原性研究のために使用した。マウスは２週間の間隔離して維持した。

ワクチン調製物：最初の注射には、ワクチン溶液（２ｍｇ／ｍｌ ＰＢＳ中の総ペプチド／タンパク質）を、同容量の完全フロイントアジュバント（Ｓｉｇｍａ、Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ、ＭＯ）と合わせ、１ｍｇ／ｍｌのペプチド／タンパク質最終濃度を調製した。次の注射には、不完全フロイントアジュバントを用いて類似のワクチン組成物を調製した。各組成物を、均一なエマルジョンを得るために、２つのシリンジを通して押し込みそして押し返した。このエマルジョンを次いで免疫に用いた。

免疫：各処置群は、４匹のＢａｌｂ／ｃマウスおよび４匹のＣＤ１マウスを含んでいた。免疫化しなかった４匹のＢａｌｂ／ｃマウスおよび４匹のＣＤ１マウスの対照群もまた存在した。個々の処置群は、５μｇまたは５０μｇのペプチドの用量、および５μｇまたは５０μｇのＯＭＰ粒子をそれぞれ受けた。このワクチン組成物は、５または５０μｌの総容量で腹腔内（ＩＰ）にそれぞれ投与された。免疫は、合計３回の免疫について３週間間隔で繰り返した。動物を、第３回目の免疫から１および４週間後に、尾静脈から放血させた。

ＯＭＰ粒子と複合体化したペプチドＰｅｐ８で免疫したＣＤ１およびＢａｌｂ／ｃマウスは、第３回目の免疫後４週間で得られた血清中に、ＥＬＩＳＡにより測定したとき、高い抗Ｐｅｐ８抗体応答を示す。ＣＤ１マウスの応答に対する代表的なデータを図９に示す。つなぎ止められたＰｅｐ８に対する抗体結合は、可溶性Ｐｅｐ８（アセチル−［Ｐｅｐ８］−アミド）により阻害されるが、可溶性の非関連ペプチド「Ｒ１」（アセチル−ＧＬＮ−ＴＲＰ−ＧＬＵ−ＡＲＧ−ＴＨＲ−ＴＹＲ−アミド）（配列番号６８）により阻害されない。抗−Ｐｅｐ８抗体はまた、９つのペプチドの組合せ（ペプチドＰｅｐ１−Ｐｅｐ９／ＯＭＰ）で免疫したマウスにおいて惹起されたが、Ｐｅｐ５／ＯＭＰ単独で免疫したマウスでは惹起されなかった。このことは、このＰｅｐ８特異的抗体がＰｅｐ８を含む免疫原により惹起されたことを示す。

図１０は、ＥＬＩＳＡアッセイにおける、ＣＤ１マウス免疫血清の、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳまたはＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性を要約する。３つの免疫原（Ｐｅｐ５／ＯＭＰ、Ｐｅｐ８／ＯＭＰ、およびペプチドＰｅｐ１−Ｐｅｐ９／ＯＭＰ）のすべてが、非免疫の対照マウスからの血清プール中で検出されなかった、ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳと交差反応する血清抗体を惹起するようである。しかし、この抗体結合の特異性は確認され得なかった。なぜなら、可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含むウェル中では有意な阻害が観察されかったからである（データは示さず）。固相ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳに対する抗Ｐｅｐ８血清プールの結合を阻害する可溶性Ｐｅｐ８（アセチル−［Ｐｅｐ８］−アミド）の能力もまた、確認され得なかった。なぜなら、このペプチドの存在は、可溶性の非関連ペプチド「Ｒ１」（アセチル−ＧＬＮ−ＴＲＰ−ＧＬＵ−ＡＲＧ−ＴＨＲ−ＴＹＲ−アミド）（配列番号６８）の存在下で検出されなかった抗体結合の有意な増加をもたらしたからである。

ＳＥＡＭモノクローナル抗体の大規模コレクションの特徴付けからのデータは、ＥＬＩＳＡにおける抗体のＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳに対する結合能力が、ＣＨＰ−１３４神経芽腫細胞により発現されるＰＳＡに対する結合により評価したときの自己抗体活性の存在と相関することを示す（表１を参照のこと）。図１１は、ＥＬＩＳＡアッセイにおける、ＣＤ１マウス免疫血清のＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性を要約する。ペプチドでワクチン化したマウスからプールされた血清のいずれもが、このアッセイではポジティブではなかった。対照的に、既知の自己抗体活性を持つＳＥＡＭ抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体は、２．０μｇ／ｍｌで試験したとき、このアッセイで強くポジティブであった。ＥＬＩＳＡによる抗Ｐｅｐ抗血清のＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳとの交差反応性の欠如は、これらの抗体がＰＳＡ特異的自己抗体活性を持たないことを示す。

５μｇまたは５０μｇいずれかのＰｅｐ８／ＯＭＰワクチンで免疫されたマウスからプールされたＣＤ１血清の補体仲介抗細菌活性を、図１２Ａおよび１２Ｂにそれぞれ示す。両方の用量で、このＰｅｐ８含有ワクチンは、ヒト補体の存在下でＭｅｎＢ株８０４７の細菌溶解を仲介し得た血清抗体を惹起した。この抗体の一部分は、アジュバントとして用いられたＯＭＰ粒子により惹起され得た。しかし、１００μｇ／ｍｌの最終血清濃度におけるラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−Ｐｅｐ８との反応の阻害により示されるように、１：１０００の血清希釈で、５０％またはそれ以上の抗細菌活性が抗Ｐｅｐ８抗体により仲介された。

従って、抗細菌ＭｅｎＢ抗体を惹起し得る、新規なＭｅｎＢ ＰＳ抗体、分子ペプチド模倣学、ならびにそれを得る方法および用いる方法が開示される。本発明の好適な実施態様がある程度詳細に記載されているが、添付の請求項により規定されるような本発明の思想および範囲から逸脱することなく、自明な改変がなされ得ることが理解される。

発明の実施に有用な株の寄託
以下のハイブリドーマ細胞株の生物学的純粋培養の寄託がＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ （ＡＴＣＣ）、１２３０１ Ｐａｒｋｌａｗｎ Ｄｒｉｖｅ、Ｒｏｃｋｖｉｌｌｅ、Ｍａｒｙｌａｎｄになされた。示された受託番号は、成功した生存試験、および必要な手数料の支払いの後に割り当てられた。この寄託は、特許手続上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約およびそれに基づく規則の条項（ブダペスト条約）の基でなされた。これは、寄託の日から３０年間の生存培養の維持を確実にする。生物は、ブダペスト条約の条項の基でＡＴＣＣにより利用可能となされ、そしてＣｈｉｒｏｎ ＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎとＡＴＣＣとの間の同意を受け、このことは、それに関して権利を持つと米国特許商標庁長官により決定された者に、合衆国法典第３５巻第１２２条およびそれに基づく長官規則（連邦法施行規則第３７巻１．１２条、特に８８６ ＯＧ ６３８を参照して）に従って、その子孫の永久的かつ制限されない利用可能性を確実にする。特許を許可するに際し、寄託された培養の公衆への利用可能性に関するすべての制限は、変更不能に取り除かれる。

これらの寄託は単に当業者への便宜として提供され、そして寄託が合衆国法典第３５巻第１１２条の下で必要とされることの認容ではない。これらのハイブリドーマの核酸配列、およびそれによってコードされる抗体分子のアミノ酸配列は、本明細書の記載となんらかの矛盾がある場合に管理されている。寄託された材料を作成、使用、または販売するためにライセンスが必要であり得、そして本明細書によってはこのようなライセンスは許可されない。

ハイブリドーマ 寄託日 ＡＴＣＣ番号
ＳＥＡＭ−３ １９９６年８月１６日 ＨＢ−１２１７０
ＳＥＡＭ−１８ １９９６年８月１６日 ＨＢ−１２１６９
ＳＥＡＭ−２ １９９７年７月３０日 ＣＲＬ−１２３８０
ＳＥＡＭ−１２ １９９７年７月３０日 ＣＲＬ−１２３８１

図１Ａ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡによって決定した、３つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の固相ＮＰｒーＭｅｎＢ ＰＳへの用量応答結合活性を示す。示すデータは、緩衝液で希釈した抗体（●）、または２５μｇ／ｍｌの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む緩衝液で希釈した抗体（○）についてである。データにおけるＸ軸について異なる範囲を使用する。ここでモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８を０．０００１μｇ／ｍｌ〜１μｇ／ｍｌで示し、そしてモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−５を０．１μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌで示す。 図１Ａ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡによって決定した、３つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の固相ＮＰｒーＭｅｎＢ ＰＳへの用量応答結合活性を示す。示すデータは、緩衝液で希釈した抗体（●）、または２５μｇ／ｍｌの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む緩衝液で希釈した抗体（○）についてである。データにおけるＸ軸について異なる範囲を使用する。ここでモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８を０．０００１μｇ／ｍｌ〜１μｇ／ｍｌで示し、そしてモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−５を０．１μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌで示す。 図１Ａ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡによって決定した、３つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の固相ＮＰｒーＭｅｎＢ ＰＳへの用量応答結合活性を示す。示すデータは、緩衝液で希釈した抗体（●）、または２５μｇ／ｍｌの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む緩衝液で希釈した抗体（○）についてである。データにおけるＸ軸について異なる範囲を使用する。ここでモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８を０．０００１μｇ／ｍｌ〜１μｇ／ｍｌで示し、そしてモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−５を０．１μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌで示す。 図１Ａ〜１Ｄは、ＥＬＩＳＡによって決定した、３つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の固相ＮＰｒーＭｅｎＢ ＰＳへの用量応答結合活性を示す。示すデータは、緩衝液で希釈した抗体（●）、または２５μｇ／ｍｌの可溶性ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む緩衝液で希釈した抗体（○）についてである。データにおけるＸ軸について異なる範囲を使用する。ここでモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８を０．０００１μｇ／ｍｌ〜１μｇ／ｍｌで示し、そしてモノクローナル抗体ＳＥＡＭ−５を０．１μｇ／ｍｌ〜１００μｇ／ｍｌで示す。 図２は、ＥＬＩＳＡによって決定した、可溶性高分子量（ＨＭＷ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳインヒビターの２５μｇ／ｍｌ（■）または３．８モノマーの平均重合度を有する低分子量（ＬＭＷ）ＮＰｒ−ＭｅｎＢオリゴサッカライドインヒビター（□）の２５μｇ／ｍｌのいずれかによって４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−２、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）の固相ＮＰｒーＭｅｎＢ ＰＳへの結合の阻害を示す。 図３は、ＥＬＩＳＡによって決定した、５つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−１２、ＳＥＡＭ−１６、ＳＥＡＭ−１８、ＳＥＡＭ−２、およびＳＥＡＭ−３）の固相ＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳへの結合を示す。０．５μｇ／ｍｌおよび／５μｇ／ｍｌの抗体で試験した場合、３つの抗体（ＳＥＡＭ−１２、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）は有意な結合を示した。２つの他の抗体（ＳＥＡＭ−２およびＳＥＡＭ−３）は、５倍高い濃度（２５μｇ／ｍｌの抗体）で試験した場合、ネガティブであった。 図４Ａ〜４Ｇは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、コントロール抗体ならびに代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−１８、ＳＥＡＭ−９、ＳＥＡＭ−１０、およびＳＥＡＭ−７）の莢膜化全ＭｅｎＢ細菌および非莢膜化全ＭｅｎＢ細菌との交差反応性を示す。莢膜はＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳを含む。 図５Ａ〜図５Ｄは、ＭｅｎＢ試験株８０４７に対して試験した場合、４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−１８）の補体媒介性殺菌活性を示す。３つの異なる補体供給源（乳仔ウサギの補体Ｉ（▲）；乳仔ウサギ補体ＩＩ（●）；およびヒト補体（○））を用いる実験からの結果を示す。 図５Ａ〜図５Ｄは、ＭｅｎＢ試験株８０４７に対して試験した場合、４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−１８）の補体媒介性殺菌活性を示す。３つの異なる補体供給源（乳仔ウサギの補体Ｉ（▲）；乳仔ウサギ補体ＩＩ（●）；およびヒト補体（○））を用いる実験からの結果を示す。 図５Ａ〜図５Ｄは、ＭｅｎＢ試験株８０４７に対して試験した場合、４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−１８）の補体媒介性殺菌活性を示す。３つの異なる補体供給源（乳仔ウサギの補体Ｉ（▲）；乳仔ウサギ補体ＩＩ（●）；およびヒト補体（○））を用いる実験からの結果を示す。 図５Ａ〜図５Ｄは、ＭｅｎＢ試験株８０４７に対して試験した場合、４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（それぞれ、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−１８）の補体媒介性殺菌活性を示す。３つの異なる補体供給源（乳仔ウサギの補体Ｉ（▲）；乳仔ウサギ補体ＩＩ（●）；およびヒト補体（○））を用いる実験からの結果を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図６Ａ〜６Ｉは、間接的な蛍光フローサイトメトリーによって決定した、ヒト神経芽細胞腫株ＣＨＰ−１３４の表面上に示されるポリシアル酸抗原との３つのコントロール抗体および４つの代表的な抗ＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−３５、ＳＥＡＭ−１２、およびＳＥＡＭ−７）の交差反応性を示す。 図７Ａおよび図７Ｂは、ファージディスプレイペプチドライブラリーからＳＥＡＭモノクローナル抗体によって選択した６７個の独特のペプチド模倣配列（配列番号１〜６７）のアミノ酸配列を示す。 図７Ａおよび図７Ｂは、ファージディスプレイペプチドライブラリーからＳＥＡＭモノクローナル抗体によって選択した６７個の独特のペプチド模倣配列（配列番号１〜６７）のアミノ酸配列を示す。 図８Ａおよび図８Ｂは、ＳＥＡＭモノクローナル抗体によって選択したペプチド模倣配列を含む２つのペプチドへの７つの代表的なＳＥＡＭモノクローナル抗体（ＳＥＡＭ−２、ＳＥＡＭ−３、ＳＥＡＭ−５、ＳＥＡＭ−７、ＳＥＡＭ−１２、ＳＥＡＭ−１６、およびＳＥＡＭ−１８）のＥＬＩＳＡ結合活性を示す。（図８Ａにおいて、「Ｐｅｐ４」は、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号４］−アミドであり、そして図８Ｂにおいて、「Ｐｅｐ８」は、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号８］−アミドである）。各ペプチドは、ペプチドのマイクロタイタープレートへの結合を促進するためにカルボキシル末端アミド、およびアミノ末端にラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹを含む。 図９は、固相抗原ペプチドとしてＰｅｐ８を用いるＥＬＩＳＡによって測定した、ＣＤ１マウス由来のプールした（１つのプール当たり４匹のマウス）免疫血清および非免疫（ＣＴＬ）血清の抗体結合活性を示す。免疫血清は、莢膜欠損Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ Ｍ７株外膜タンパク質粒子と複合体化した模倣ペプチドの５μｇまたは５０μｇで免疫化したマウス由来である。ペプチドは、Ｐｅｐ５（ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号５］−アミド）、Ｐｅｐ８（ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号８］−アミド）、またはＰｅｐ１〜Ｐｅｐ９の９つのペプチド（Ｐｅｐ１、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号１］−アミド；Ｐｅｐ２、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号２］−アミド；Ｐｅｐ３、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号３］−アミド；Ｐｅｐ４、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号４］−アミド；Ｐｅｐ５、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号５］−アミド；Ｐｅｐ６、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号６］−アミド；Ｐｅｐ７、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号７］−アミド；Ｐｅｐ８、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号８］−アミド；およびＰｅｐ９、ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号９］−アミド）の混合物を含んだ。緩衝液で希釈した血清（□）、可溶性Ｐｅｐ８（アセチル−［配列番号８］−アミド）を含む緩衝液（■）、または可溶性の非関連ペプチドＲ１（アセチル−ＧＬＮ−ＴＲＰ−ＧＬＵ−ＡＲＧ−ＴＨＲ−ＴＹＲ−アミド（配列番号６８）を含む緩衝液（網かけバー）との間の結合を比較する。 図１０は、固相抗原としてＮＰｒ−ＭｅｎＢ ＰＳを用いたＥＬＩＳＡによって測定した、ＣＤ１マウス由来のプールした（１つのプール当たり４匹のマウス）免疫血清および非免疫コントロール血清の抗体結合活性を示す。マウスを、上記の図９のようなペプチド免疫原で免疫した。 図１１は、固相抗原としてＮＡｃ−ＭｅｎＢ ＰＳを用いたＥＬＩＳＡによって測定した、ＣＤ１マウス由来のプールした（１つのプール当たり４匹のマウス）免疫血清および非免疫コントロール血清の抗体結合活性を示す。マウスを、上記の図９のようなペプチド免疫原で免疫した。公知の自己抗体活性を有するＳＥＡＭ−３０抗体はポジティブコントロールとして役立つ。 図１２Ａ〜１２Ｂは、種々の希釈の試験血清およびヒト補体とインキュベートした細菌のパーセント生存率を示す。示すデータは、莢膜欠損Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ Ｍ７株外膜タンパク質粒子と複合体化した模倣ペプチドＰｅｐ８（ラウリル−ＧＬＹ−ＧＬＹ−［配列番号８］−アミド）の５μｇ（図１１Ａ）または５０μｇ（図１１Ｂ）で免疫化したＣＤ１マウス由来の試験プール血清（１つのプール当たり４匹のマウス）由来である。血清は、緩衝液またはＰｅｐ８インヒビター（１００μｇ／ｍｌ）を含む緩衝液で希釈した。補体の供給源はヒト無ガンマグロブリン血症であり、そして細菌試験株は８０４７である。

Claims (1)

1. 本明細書中に記載されるような、哺乳動物被験体において、Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ血清型Ｂを予防するための方法、および／または哺乳動物被験体において、Ｅ．ｃｏｌｉ Ｋ１疾患を予防するための方法。

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