JP2006507797A - Ｌ２ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス１６ｌ１タンパク質、それから調製したウイルス様粒子および該粒子の調製方法 - Google Patents

Ｌ２ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス１６ｌ１タンパク質、それから調製したウイルス様粒子および該粒子の調製方法 Download PDF

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Abstract

本発明は、異種ペプチド、詳細にはＨＰＶ Ｌ２ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチドを作製する方法を記載する。当該方法には、異種ペプチドをコードするＤＮＡ配列を、Ｌ１ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に導入し；該Ｌ１ポリペプチドおよび異種ペプチドの配列を含むＤＮＡ配列を、中で該ＤＮＡ配列を発現し得る宿主細胞に導入し；該ＤＮＡ配列を発現させ；ついで、該異種ペプチドを含む得られたキメラＬ１ポリペプチドを回収する工程が含まれる。典型的には、異種ペプチドをコードするヌクレオチドで、挿入の点におけるＬ１ポリペプチドのヌクレオチドを置換する。また、本発明は、該方法に用いるベクター、該ベクターを含む宿主細胞、および該方法に従って作製したキメラＨＰＶ Ｌ１ポリペプチドを含むワクチンも記載する。

Description

発明の詳細な説明
発明の背景
本発明は、ヒト・パピローマウイルスのポリペプチド、詳細にはウイルス様粒子（ＶＬＰ）またはキャプソメアを調製する方法に関する。
パピローマウイルスは、ヒトを含む種々の高等脊椎動物にイボおよび他の障害を誘導する一群の小さなＤＮＡウイルスである。
パピローマウイルス（ＰＶ）は、パポーバウイルス科、パピローマウイルス属のメンバーであり、７,９００塩基対の典型的サイズを有する二本鎖環状ＤＮＡゲノムを含む（Seedorfら, 1985)。すべてのＰＶは同様のゲノム組織を有し、それにはＤＮＡ複製および細胞トランスフォーメーションに関与するタンパク質をコードする初期遺伝子領域、およびウイルスキャプシドタンパク質をコードする後期領域が含まれる（図１）。long control region（ＬＣＲ）として知られている非コード領域には、転写および複製に関する制御エレメントが含まれる。
パピローマウイルスは２のウイルス構造タンパク質、Ｌ１およびＬ２をコードしている。ビリオンには７２のキャプソメアとして並んだ３６０のＬ１分子が含まれており、その各キャプソメアは５のＬ１分子からなるペンタマーである（Bakerら, 1991)。Ｌ２分子に対するＬ１分子の比率は、ほぼ３０：１と概算されており（Doobarら, 1987）、これは各ビリオンがほぼ１２のＬ２分子を含むことを示唆している。ビリオン当たりのＬ１分子の数が増えるほど、Ｌ１を"多い方の"キャプシドタンパク質といい、Ｌ２を"少ない方の"キャプシドタンパク質ということになる。
ＨＰＶ−１６ Ｌ１は１.５１８ｋｂの遺伝子によってコードされ、５０４のアミノ酸のタンパク質を生じる。Ｌ１は５５ないし５８ｋＤの分子量を有する（Browneら, 1988）。Ｌ１のドメインは細胞結合を仲介するようであり、また、ウイルスに対する抗体およびＴ細胞免疫応答を仲介する抗原決定基を含むようである。
生殖器ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）の中には、通常は退行するかまたは悪性腫瘍には進行しない生殖器のイボおよび子宮頸部病変を引き起こす低リスクＨＰＶ（例えば、ＨＰＶ６およびＨＰＶ１１）、ならびに高い等級の子宮頸部病変およびガンと関連する高リスク（または発ガン性）遺伝子型（例えば、ＨＰＶ１６およびＨＰＶ１８）が存在する。ＨＰＶは幾つかの他の肛門性器（anogenital)ガンおよび上部気道消化管ガン（upper aerodigestive tract cancer）における病因因子として関連付けられてもいる（Breitburdら, 1999）。臨床的、分子的、実験的および疫学的事実の抵抗しがたい集合は、ある種のＨＰＶ型が子宮頸ガンの主要因であることを確立している（Lowyら, 1994; IARC, 1995）。
ＨＰＶ１６は子宮頸ガン症例の大部分の症例に存在し、ほぼさらなる３０％の症例においてはさらなる３の型（ＨＰＶ１８、３１および４５）が存在する（IARC, 1999）。
子宮頸ガンの発病率は合衆国においては低下しているが、それは、各年に約５００,０００の新たな症例が診断される途上国の女性の最も一般的な悪性腫瘍である。
伝統的に大部分の予防的なワクチンは、生、弱毒ウイルスまたはホルマリン不活化ウイルスからなる。パピローマウイルスのビリオンは免疫原性が非常に高く、全身的に注射した場合は高い力価（＞１０,０００）の中和抗体を誘導する（Doretzkyら, 1980; Kimbauerら, 1991, 1992）。しかしながら、大量のこれらの伝統的なワクチンを作り出すことに含まれる困難および危険性に起因して、ウイルスタンパク質サブユニットまたはウイルス様粒子（ＶＬＰ）ワクチンを開発することが非常に強調されている。
ＨＰＶに対する予防ワクチン用の最良の候補タンパク質は、ＶＬＰに自己会合する多い方のキャプシドタンパク質Ｌ１である（SchillerおよびLowy, 2001）。これらのＶＬＰは非常によく特徴付けられており、全ビリオンと区別し得ないように形態上見える（Chenら, 2001; Roseら, 1993）。実験動物にＶＬＰを注射すると、中和抗体を誘導し（Roseら, 1998）；接種したＶＬＰワクチンの予備的なヒト試験も、これらはよく耐性であり非常に免疫原性が高く、前者の症例においては刺激された強いＢおよびＴ細胞応答も示された（Evansら, 2001; Harroら, 2001）。
発ガン型の粘膜親和性（mucotropic）ＨＰＶに対する有効で安価な予防ワクチンは、世界のガンの負担、特にＨＰＶ１６に対する負担に対して潜在的にインパクトを有し得るであろう。
ＨＰＶ６型および１６型に共通の中和エピトープは、ＨＰＶ１６の少ない方のキャプシドタンパク質、Ｌ２の領域（ａａ）１０８−１２０に見出されている（Kawanaら, 1998, 1999）。エピトープに対応する合成ペプチドで鼻腔免疫化したＢａｌｂ／ｃマウスは、ＨＰＶ６、１６および１８のＬ１／Ｌ２キャプシドと交差反応するＩｇＡおよびＩｇＧ抗体を生じる免疫応答を誘起した（Kawanaら, 2001）。ウサギ口腔パピローマウイルス（ＲＯＰＶ）またはウサギ乳頭腫パピローマウイルス（ＣＲＰＶ）のいずれかからのＬ２配列領域９４−１２２由来の２の重複するペプチドのいずれかでウサギを免疫化すると、精製した同族のＬ２、特に感染細胞中で認識されたＬ２に反応した血清を生じ、これはイン・ビトロ(in vitro)でウイルスを中和した。ＣＲＰＶペプチドで免疫化したウサギは、ＣＲＰＶ攻撃に対して免疫性であった（Embersら, 2002）。
かくして、本発明者らは、その自身の権利におけるワクチンとして、および他の免疫原性ペプチド配列の提示のためのモデルとして、キメラＬ１ ＶＬＰ上のこのＬ２エピトープの提示をさらに調べることを決心した。
発明の概要
本発明の第１の形態によれば、
ＨＰＶ Ｌ２ペプチドをコードするＤＮＡ配列を、Ｌ１ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に導入し；
Ｌ１ポリペプチドおよびＬ２ペプチドの配列を含むＤＮＡ配列を、中で該ＤＮＡ配列を発現し得る宿主細胞に導入し；
該ＤＮＡ配列を発現させ；ついで
Ｌ２ペプチドを含む得られたキメラＬ１ポリペプチドを回収する
工程を含む、ＨＰＶ Ｌ２ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチドを作製する方法を提供する。
ＨＰＶ Ｌ１ポリペプチドおよび／またはＨＰＶ Ｌ２ペプチドは、ＨＰＶ−１６のポリペプチドまたはペプチドとし得る。
ＨＰＶ Ｌ２ペプチドは、以下のアミノ酸配列：
ＬＶＥＥＴＳＦＩＤＡＧＡＰ（配列番号：１）、またはその修飾体もしくは誘導体である配列を有し得、但し、その修飾配列または誘導配列は、配列番号：１の配列に少なくとも８０％相同性を有し、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起するペプチドをコードする配列である。
Ｌ１ ＤＮＡ配列の１またはそれを超えるヌクレオチドはＬ２ ＤＮＡ配列の導入の点において欠失していてもよく、典型的には、Ｌ１配列から欠失したヌクレオチドの数は挿入したＬ２ヌクレオチドの数と対応するであろう。
タンパク質の発現は、原核生物または真核生物の発現システムのいずれかにおいてとし得る。
キメラ・ポリペプチドは、図６、８、１０、１２および１４のいずれか１に記載のアミノ酸配列（配列番号：５、７、９、１１および１３）、または配列番号：５、７、９、１１および１３に記載の配列のいずれか１に少なくとも８０％相同であって、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができる配列を有し得る。キメラ・ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列は、図５、７、９、１１および１３のいずれか１に記載のＤＮＡ配列（配列番号：４、６、８、１０および１２）、またはこれらの配列のいずれか１に少なくとも８０％相同性を有し、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができるポリペプチドをコードする配列を有し得る。
キメラＬ１ポリペプチドは、ウイルス様粒子および／またはキャプソメアに会合し得る。ウイルス様粒子またはキャプソメアは免疫原性であってもよい。
本発明の第２の形態によれば、前記ＨＰＶ Ｌ２ペプチドをコードするＤＮＡ配列が挿入されたキメラＨＰＶ Ｌ１ ＤＮＡ配列を提供し、ここに該得られたＨＰＶ Ｌ１配列はＨＰＶ Ｌ２ペプチドを発現することができる。
Ｌ２ ＤＮＡ配列の導入の点におけるＬ１ ＤＮＡ配列の１またはそれを超えるヌクレオチドは欠失していてもよく、典型的には、Ｌ１配列から欠失したヌクレオチドの数は挿入されたＬ２ヌクレオチドの数に対応するであろう。
キメラ核酸配列は、図５、７、９、１１および１３のいずれか１に記載の配列、またはその修飾体もしくは誘導体であるＤＮＡ配列とし得、但し、その修飾ＤＮＡ配列または誘導ＤＮＡ配列は、配列番号：４、６、８、１０および１２のいずれか１の配列に少なくとも８０％相同性を有し、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができるキメラＬ１ペプチドをコードする。
本発明の第３の形態によれば、前記した核酸配列を含むベクターを提供する。
本発明の第４の形態によれば、前記したベクターを含む宿主細胞を提供する。
本発明のいまださらなる形態によれば、前記ＨＰＶ Ｌ２ペプチド（配列番号：１）を含むキメラＨＰＶ Ｌ１ポリペプチドを提供する。
該キメラ・ポリペプチドは、キメラＨＰＶ Ｌ１ウイルス様粒子またはキャプソメアとし得る。
本発明のさらなる形態によれば、図６、８、１０、１２および１４のいずれか１に記載のアミノ酸配列（配列番号：５、７、９、１１および１３）、またはその修飾体または誘導体である配列を有し、その修飾体または誘導体は、配列番号：５、７、９、１１および１３に記載の配列のいずれか１に少なくとも８０％相同であって、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができる配列であるＨＰＶポリペプチドを提供する。
本発明のもう１の形態によれば、
異種ペプチドをコードするＤＮＡ配列を、Ｌ１ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に導入し；
Ｌ１ポリペプチドおよび異種ペプチドの配列を含むＤＮＡ配列を、該ＤＮＡ配列を発現し得る宿主細胞に導入し；
該ＤＮＡ配列を発現させ；ついで
異種ペプチドを含む得られたキメラＬ１ポリペプチドを回収する
工程を含む、異種ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチドを作製する方法を提供する。
異種ペプチド配列は、いずれか他のＨＰＶ配列とすることができ、あるいはＢ−細胞またはＴ−細胞特異的ないずれかの抗原エピトープ由来のものとし得る。
異種ＤＮＡ配列の導入の点におけるＬ１ ＤＮＡ配列の１またはそれを超えるヌクレオチドは欠失していてもよく、典型的には、Ｌ１配列から欠失したヌクレオチドの数は挿入された異種ヌクレオチドの数に対応するであろう。
本発明のいまださらなる形態によれば、前記したものと実質的に同じである、キメラＨＰＶ Ｌ１ポリペプチドまたは該ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列を含むワクチンを提供する。該ワクチンは、ＨＰＶ感染症、詳細にはＨＰＶ６、１６および１８の感染症の予防的または治療的処理用とし得る。
好ましくは、ワクチンは、ＨＰＶに対するおよび好適な宿主中の導入されたペプチドに対する免疫原性応答を誘導することができるであろう。
ワクチンは、さらに、医薬上の賦形剤および／または補助剤を含み得る。
発明の形態の詳細な説明
キメラ構築物の設計
ＨＰＶの少ない方のキャプシドタンパク質、Ｌ２の領域（ａａ）１０８−１２０のＨＰＶ６および１６に対する共通の中和エピトープであるペプチド：
ＬＶＥＥＴＳＦＩＤＡＧＡＰ（配列番号：１）
をコードするプライマーを合成した。
Chenら（2000）によって発表されたＨＰＶ１６ Ｌ１のモノマー構造（図２）によれば、種々の表面ループおよび領域がペンタマーおよび高次構造が形成された場合に曝露される。
Ｖ５抗体（Ｌ１に対して作り出された中和抗体）のエピトープマッピングに基づき、Ｌ１ ＶＬＰのＶ５抗体結合領域を維持するように、Ｌ２ペプチドを挿入するための種々の領域／ループを選択した。
Ｌ１分子の多い方の抗原領域（Ｖ５結合領域）は、アミノ酸残基Ａ２６６（表面残基Ｖ２７１の下方に位置するＦ５０と共に）およびＳ２８２でマッピングされている（Rodenら, 1996、Whiteら, 1999)。これらの残基に基づいて、本発明者らは、分子のＢループを変化させないことを決定した。これは抗原領域を変化させ、おそらく活性を有するＬ１エピトープを破壊するであろうからである。
したがって、以下のＬ１領域を、Ｌ２ペプチドを挿入するために選択した：
Ａ： Ｅ−Ｆループ（配列番号：４および５）
Ｃ： Ｄ−Ｅループ（配列番号：６および７）
Ｅ： Ｌ１のｈ４へリックスとＪ領域との間の領域（配列番号：８および９）
Ｆ： ｈ４へリックス（配列番号：１０および１１）
Ｈ： 内部Ｃ−Ｄループ（配列番号：１２および１３）
キメラ構築物の合成
キメラ構築物は、Ｌ２ペプチドをコードする３'末端を用いて設計したプライマーを用いるＰＣＲによって調製した。ｐＳＫプラスミドベクターにクローン化したＨＰＶ １６ＳＡ−ｏｐｔＬ１遺伝子（配列番号：３および４）をテンプレートとして用いた。以下のＤＮＡ配列：
５'−ＴＴＡＧＴＧＧＡＡＧＡＡＡＣＴＡＧＴＴＴＴＡＴＴＧＡＴＧＣ
ＴＧＧＴＧＣＡＣＣＡ−３'（配列番号：１４）
を用いてＬ２ペプチドをコードした。
表１に示す領域を置換することによって、Ｌ２ペプチドを遺伝子に挿入した。存在するヌクレオチドを置換するこの方法は、いずれの置換もせずにＬ２ヌクレオチドをＬ１配列に単に挿入するよりも、三次構造の乱れが最小限に維持され、かつ、余分なペプチド"ループ"に起因する近くの配列の立体効果の可能性またはそれに結合する抗体との干渉の可能性が最小限化される点で有利である。
挿入したＬ２エピトープの位置は、キメラ構築物について各々図１５〜１９に図示する。
配列決定したｐＳＫ構築物からのキメラ遺伝子を、ｐＦａｓｔｂａｃ１ベクター（ＳａｌＩ／ＸｂａＩサイト）にクローン化した。ｐＦａｓｔｂａｃ１クローンからのＤＮＡを用いてＤＨ１０ｂａｃ細胞をトランスフェクトし、ｂａｃｍｉｄクローンを調製した。
Ｂａｃ−ｔｏ−Ｂａｃ（登録商標）バキュロウイルス発現システム（Life Technologies社）を用いて、昆虫細胞中でキメラ構築物を発現した。
Figure 2006507797
ｂａｃｍｉｄ ＤＮＡを、セルフェクチンを用いてｓｆ２１（スポドプテラ・フルギペルダ（Spodoptera frugiperda）昆虫細胞にトランスフェクトした。基本的なＢａｃ−ｔｏ−Ｂａｃ（登録商標）プロトコールに従って、組換えウイルスを増幅し、キメラＶＬＰを発現させるためのｓｆ２１昆虫細胞に感染させた。
その後に、基本的なＨＰＶ１６ Ｌ１ ＶＬＰ精製プロトコールを行った。感染した昆虫細胞を３,０００ｒｐｍで沈殿させ、０.５ＭのＮａＣｌを含むリン酸緩衝化生理食塩水（ＰＢＳ）中に再懸濁した。その懸濁液を５秒間隔で４回、超音波処理した。ついで、これを、４０％スクロース・クッション上にオーバーレイし、１００,０００×ｇにて３時間ペレット化した。このペレットをＣｓＣｌ緩衝液（０.４ｇ／ｍｌのＣｓＣｌを含むＰＢＳ）に再懸濁し、１８および２６ゲージ注射針を通して吸引して再懸濁して超音波の前に粘度を低下させた（５秒間隔で４回）。その懸濁液を１０℃、１００,０００×ｇにて２４時間遠心した。
ＣｓＣｌグラジエント中に明瞭なバンドは観察されなかった。したがって、５００μｌ画分を収集し、コンフォメーション特異的Ｖ５およびＤ９（線状エピトープ）モノクローナル抗体を用いるＥＬＩＳＡによって解析した。Ｖ５および／またはＤ９抗体と反応することが判明した画分を保存し、ＰＢＳに対して４℃にて一晩透析した。
結果
ウェスタンブロットは、ウサギにおいてペプチドに対して作らせたポリクローナルＬ２抗体（The Jake Gittlen Cancer Research Institute, The Milton S. Hershey Medical Centre, Hersey Pennsylvania, USAのNeil Christensen博士から得た）がキメラＬ１粒子（５５ｋＤ）に結合することを示し、これはＬ２エピトープがキメラ構築物によって発現されていることを示している。
精製したＶＬＰの抗体特徴付けを、Neil Christensen博士によって提供された一連の抗体を用いたＥＬＩＳＡによって行った（Christensenら, 1996, 2001）。表２はかかるデータを要約している。
Figure 2006507797
抗体およびそれらの結合領域の簡単な説明を以下の表３に示す。
Figure 2006507797
キメラ粒子の電子顕微鏡観察
電子顕微鏡観察の結果は、キメラ構築物から形成された粒子が野生型ＨＰＶ Ｌ１遺伝子によって生成されたものと同一でないことを示した。形成された粒子は主として部分的に分解されているかまたは部分的にバラバラになった状態であり、一般的に互いに凝集しているように見える。
キメラ抗原を用いた動物実験
６セットの５匹のＢａｌｂ／ｃマウスを動物実験に用いて、キメラＶＬＰの接種が免疫応答を誘起するかを判定した。５のキメラ構築物から生成したキメラＶＬＰおよび非キメラＨＰＶ１６ Ｌ１（ＳＡ−ｏｐｔ）から生成したキメラＶＬＰを１００μｇの濃度で２の皮下部位に注射した。０、２および４週目に動物に接種した。血液試料および膣洗液を種々の期間に採取した。
各群からのマウス血清を保存し、組換えバキュロウイルスによって昆虫細胞中に生成したＶＬＰを用いるＥＬＩＳＡによって解析した。各群のマウスのエンドポイント力価測定を行って、応答の程度を決定し、応答のより良好な反映を得た（図２０ないし２６）。
結果は、高い免疫応答が達成されたことを示している。
参考資料
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図１はＨＰＶ１６のゲノム構成の概略図を示す。 図２はＨＰＶ１６ Ｌ１のモノマー構造を示す。 図３は中にＬ２エピトープが挿入されて図５ないし１４のキメラ構築物を生成するＨＰＶ１６ Ｌ１遺伝子の天然配列のヌクレオチド配列（配列番号：２）を示す。 図４は図３のアミノ酸配列（配列番号：３）を示す。 図５はキメラ構築物Ａのヌクレオチド配列（配列番号：４）を示す。 図６はキメラ構築物Ａのアミノ酸配列（配列番号：５）を示す。 図７はキメラ構築物Ｃのヌクレオチド配列（配列番号：６）を示す。 図８はキメラ構築物Ｃのアミノ酸配列（配列番号：７）を示す。 図９はキメラ構築物Ｅのヌクレオチド配列（配列番号：８）を示す。 図１０はキメラ構築物Ｅのアミノ酸配列（配列番号：９）を示す。 図１１はキメラ構築物Ｆのヌクレオチド配列（配列番号：１０）を示す。 図１２はキメラ構築物Ｆのアミノ酸配列（配列番号：１１）を示す。 図１３はキメラ構築物Ｈのヌクレオチド配列（配列番号：１２）を示す。 図１４はキメラ構築物Ｈのアミノ酸配列（配列番号：１３）を示す。 図１５はキメラ構築物Ａの概略図を示す。 図１６はキメラ構築物Ｃの概略図を示す。 図１７はキメラ構築物Ｅの概略図を示す。 図１８はキメラ構築物Ｆの概略図を示す。 図１９はキメラ構築物Ｈの概略図を示す。 図２０は構築物Ａから得たキメラＶＬＰを接種したマウスのエンドポイント力価測定から得たデータを示す。 図２１は構築物Ｃから得たキメラＶＬＰを接種したマウスのエンドポイント力価測定から得たデータを示す。 図２２は構築物Ｅから得たキメラＶＬＰを接種したマウスのエンドポイント力価測定から得たデータを示す。 図２３は構築物Ｆから得たキメラＶＬＰを接種したマウスのエンドポイント力価測定から得たデータを示す。 図２４は構築物Ｈから得たキメラＶＬＰを接種したマウスのエンドポイント力価測定から得たデータを示す。 図２５は非キメラＨＰＶ１６ Ｌ１（ＳＡ−ｏｐｔ）から得たＶＬＰを接種したマウスのエンドポイント力価測定から得たデータを示す。 図２６は最初の免疫化の後の追加免疫に対するマウスの応答を示す。 図２７はＬ１配列に挿入したＬ２ペプチドのヌクレオチド配列（配列番号：１４）を示す。 図２８はＬ１配列に挿入したＬ２ペプチドのアミノ酸配列（配列番号：１）を示す。

Claims (29)

  1. ＨＰＶ Ｌ２ペプチドをコードするＤＮＡ配列を、Ｌ１ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に導入し；
    Ｌ１ポリペプチドおよびＬ２ペプチドの配列を含むＤＮＡ配列を、中で該ＤＮＡ配列を発現することができる宿主細胞に導入し；
    該ＤＮＡ配列を発現させ；ついで
    Ｌ２ペプチドを含む得られたキメラＬ１ポリペプチドを回収する
    工程を含む、ＨＰＶ Ｌ２ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチドを作製する方法。
  2. 該ＨＰＶ Ｌ１ポリペプチドおよび／または該ＨＰＶ Ｌ２ペプチドが、ＨＰＶ−１６のポリペプチドまたはペプチドである請求項１記載の方法。
  3. 該ＨＰＶ Ｌ２ペプチドが、以下のアミノ酸配列：
    ＬＶＥＥＴＳＦＩＤＡＧＡＰ（配列番号：１）またはその修飾体もしくは誘導体である配列を有し、但し、その修飾配列または誘導配列は、配列番号：１の配列に対して少なくとも８０％相同性を有し、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができるペプチドをコードする請求項１または２記載の方法。
  4. 該Ｌ１ ＤＮＡ配列の１またはそれを超えるヌクレオチドが、Ｌ２ ＤＮＡ配列の導入の点において欠失している、請求項１ないし３いずれか１項記載の方法。
  5. 該Ｌ１ ＤＮＡ配列から欠失したヌクレオチドの数が、挿入したＬ２ヌクレオチドの数に対応する請求項４記載の方法。
  6. 該ポリペプチドの発現が、原核生物または真核生物の発現システムのいずれかにおいてである請求項１ないし５いずれか１項記載の方法。
  7. 該キメラ・ポリペプチドが、図６、８、１０、１２および１４のいずれか１に記載のアミノ酸配列（配列番号：５、７、９、１１および１３）、または配列番号：５、７、９、１１および１３に記載の配列のいずれか１に少なくとも８０％相同であって、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができる配列を有する請求項１ないし６いずれか１項記載の方法。
  8. 該キメラ・ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列が、図５、７、９、１１および１３のいずれか１に記載のＤＮＡ配列（配列番号：４、６、８、１０および１２）、またはこれらの配列のいずれか１に少なくとも８０％相同性を有し、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができるポリペプチドをコードする配列を有する請求項１ないし６いずれか１項記載の方法。
  9. 該キメラＬ１ポリペプチドが、ウイルス様粒子および／またはキャプソメアに会合することができる請求項１ないし８いずれか１項記載の方法。
  10. 該ウイルス様粒子またはキャプソメアが免疫原性である請求項９記載の方法。
  11. 中にＨＰＶ Ｌ２ペプチドをコードするＤＮＡ配列（配列番号：１）が挿入されており、かつ、該ＨＰＶ Ｌ２ペプチドを発現することができるキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ ＤＮＡ配列。
  12. 該Ｌ１ ＤＮＡ配列の１またはそれを超えるヌクレオチドが、Ｌ２ ＤＮＡ配列の導入の点で欠失している請求項１１記載のＨＰＶ Ｌ１ ＤＮＡ配列。
  13. Ｌ１配列から欠失したヌクレオチドの数が、挿入したＬ２ヌクレオチドの数に対応する請求項１２記載のＨＰＶ Ｌ１ ＤＮＡ配列。
  14. 図５、７、９、１１および１３のいずれか１に記載のＤＮＡ配列（配列番号：４、６、８、１０および１２）、またはその修飾体または誘導体であるＤＮＡ配列を有し、但し、その修飾ＤＮＡ配列または誘導ＤＮＡ配列は配列番号：４、６、８、１０および１２のいずれか１に少なくとも８０％相同性を有し、かつ、免疫原性ＨＰＶペプチド配列を提示するキメラＬ１ペプチドをコードし、ここに該キメラＬ１ペプチドはＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができるヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）核酸配列。
  15. 請求項１１ないし１４いずれか１項記載の核酸配列を含むベクター。
  16. 請求項１５記載のベクターを含む宿主細胞。
  17. アミノ酸配列：
    ＬＶＥＥＴＳＦＩＤＡＧＡＰ（配列番号：１）
    を有するペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチド。
  18. キメラＨＰＶ Ｌ１ウイルス様粒子またはキャプソメアである請求項１７記載のポリペプチド。
  19. 図６、８、１０、１２および１４のいずれか１に記載のアミノ酸配列（配列番号：５、７、９、１１および１３）、またはその修飾体または誘導体である配列を有し、但し、その修飾アミノ酸配列または誘導アミノ酸配列は配列番号：５、７、９、１１および１３に記載の配列のいずれか１に少なくとも８０％相同性を有し、かつ、ＨＰＶに対する免疫原性応答を誘起することができるヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）ポリペプチド。
  20. 異種ペプチドをコードするＤＮＡ配列を、Ｌ１ポリペプチドをコードするＤＮＡ配列に導入し；
    該Ｌ１ポリペプチドおよび異種ペプチドの配列を含むＤＮＡ配列を、該ＤＮＡ配列を発現することができる宿主細胞に導入し；
    該ＤＮＡ配列を発現させ；ついで
    異種ペプチドを含む得られたキメラＬ１ポリペプチドを回収する
    工程を含む、異種ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチドを作製する方法。
  21. 該異種ペプチド配列が、いずれか他のＨＰＶ配列またはＢ−細胞もしくはＴ−細胞特異的ないずれかの免疫原性エピトープに由来する請求項２０記載の方法。
  22. 該Ｌ１ ＤＮＡ配列の１またはそれを超えるヌクレオチドが、該異種ＤＮＡ配列の導入の点で欠失している請求項２０または２１記載の方法。
  23. 該Ｌ１配列から欠失したヌクレオチドの数が、挿入した異種ヌクレオチドの数に対応する請求項２２記載の方法。
  24. 請求項１７ないし１９のいずれか１に記載のキメラ・ヒト・パピローマウイルス（ＨＰＶ）Ｌ１ポリペプチドまたは請求項１１ないし１４いずれか１項記載のＤＮＡ配列を含むワクチン。
  25. ＨＰＶ感染症の予防的または治療的処置に使用するための請求項２４記載のワクチン。
  26. ＨＰＶ６、１６または１８の処置に使用するための請求項２５記載のワクチン。
  27. 好適な宿主中のＨＰＶおよび／または導入したペプチドに対する免疫原性応答を誘導することができる請求項２４ないし２６いずれか１項記載のワクチン。
  28. さらに、医薬上の賦形剤および／または補助剤を含む請求項２４ないし２７いずれか１項記載のワクチン。
  29. 実質的に本明細書中に記載し、図示した異種ペプチドを含むキメラ・ヒト・パピローマウイルスＬ１ポリペプチドを作製する新たな方法。
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