JP2005308697A - 糖鎖分離方法、検体分析方法、液体クロマトグラフィー装置、並びに糖鎖分析方法及び糖鎖分析装置 - Google Patents
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Abstract
【課題】 短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分離する。
【解決手段】 糖鎖を保持し得る耐アルカリ性の充填剤を充填したカラムに糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液し、カラムにヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液して、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する。
【選択図】 なし
【解決手段】 糖鎖を保持し得る耐アルカリ性の充填剤を充填したカラムに糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液し、カラムにヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液して、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する。
【選択図】 なし
Description
本発明は、疾患診断などにおける糖タンパク質の分析に用いる糖鎖の分離方法、順相及び逆相の液体クロマトグラフィーを利用した検体の分析方法、及びこれに用いる液体クロマトグラフィー装置、並びに、糖鎖の分析方法及び分析装置に関するものである。
糖タンパク質の糖鎖は、診断分野、特に癌診断において重要な役割を担う。すでにシアリルルイスエックス、シアリルＴｎ、ＣＡ５０、ＣＡ１５−３といった糖鎖は癌化に伴い血中濃度が増加することが明らかになっており、これらと特異的に結合する抗体によってその存在の有無を調べることができる。
しかし抗体は必ずしも目的糖鎖のみを認識するとは限らず、抗体によっては目的以外の糖鎖を認識することもあり、近年は選択性の高い分析化学的手法による糖鎖解析が注目されている。
しかし抗体は必ずしも目的糖鎖のみを認識するとは限らず、抗体によっては目的以外の糖鎖を認識することもあり、近年は選択性の高い分析化学的手法による糖鎖解析が注目されている。
糖タンパク質の糖鎖の分析方法としては、糖鎖を糖タンパク質から切り出した後に蛍光化合物で標識し、それを順相液体クロマトグラフィー（以下、適宜「順相ＨＰＬＣ」という）および逆相液体クロマトグラフィー（以下、適宜「逆相ＨＰＬＣ」という）で分離する分析方法が一般的である（非特許文献１）。
糖タンパク質から糖鎖を切り出す方法は、糖鎖切断酵素を利用する方法（非特許文献２）、および無水ヒドラジンを利用する方法（非特許文献３）がある。しかし、酵素を用いる方法はタンパク質内に深く取り込まれた糖鎖を完全に切り出せない、という欠点がある。したがって、多くの場合は無水ヒドラジンによる化学的手法が利用されている。
また、多くの天然糖鎖にはその構成糖としてアセチル化糖（具体的にはＮ−アセチルグルコサミン、Ｎ−アセチルガラクトサミン、Ｎ−アセチルノイラミン酸など）が含まれるが、これら糖鎖のアセチル基はヒドラジン分解時に脱離してしまう。このため、ヒドラジン分解後にアセチル化を行なう必要がある。そこで、従来はヒドラジン留去後に飽和炭酸水溶液および無水酢酸を加えてアセチル化する方法が一般的であった。
さらに、順相ＨＰＬＣ及び逆相ＨＰＬＣで分離する過程においては、順相ＨＰＬＣと逆相ＨＰＬＣとが異なる分離能を有するため、糖鎖の種類によっては、順相ＨＰＬＣで分離が困難なものであっても、逆相ＨＰＬＣでは容易に分離できることが多い。そのため、従来はこれら順相ＨＰＬＣと逆相ＨＰＬＣの組み合わせにより、数十、数百種類の糖鎖を最終的に単一の糖鎖にまで分離する方法が用いられていた。
ところで、省力化、高速化を目的として、液体クロマトグラフィーに用いる装置（以下、適宜「ＨＰＬＣ装置」という）を複数自動バルブスイッチを介してオンラインで結合する例は多数報告されている。例えばＷｏｌｔｅｒｓらはイオン交換カラムと逆相カラムを接続し、生体内の多数のタンパク質断片（ペプチド）を分離することに成功している（非特許文献４）。
Ｈａｓｅ Ｓ．， Ｉｋｅｎａｋａ Ｔ．， Ｍａｔｓｕｓｈｉｍａ Ｙ．； Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，９０，４０７−４１４（１９８１）
Ｓ．Ｔａｋａｓａｋｉ，Ｔ．Ｍｉｚｕｏｃｈｉ，Ａ．Ｋｏｂａｔａ，"Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ "，ｅｄ．ｂｙ Ｖ．Ｇｉｎｓｂｕｒｇ， Ｖｏｌ．８３， ｐ．２６３， Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ， Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ（１９８２）
Ｔａｋａｈａｓｈｉ Ｎ．， Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ， ７６， １１９４−１２００（１９７７）
Ｗｏｌｔｅｒｓ Ｄ．Ａ．， Ｗａｓｈｂｕｒｎ Ｍ．Ｐ．，ＹａｔｅｓＪ．Ｒ．； Ａｎａｌ．Ｃｈｅｍ．，７３（２３） ５６８３−５６９０（２００１）
しかしながら、従来のように無水ヒドラジンを利用する方法により糖タンパク質から糖鎖を得る場合、（１）高沸点のヒドラジンを除去するのに時間がかかる、（２）一度に多量のヒドラジンを蒸発させる場合に取り扱いが難しくなる、などの課題があり、多数の検体を処理する場合には多くの時間を費やした。つまり、従来の無水ヒドラジンにより糖タンパク質から糖鎖を得る方法には、処理時間や取り扱いに課題あった。
また、無水ヒドラジンを利用する方法により切り出した糖鎖のアセチル基脱離部位を再度アセチル化する場合、ヒドラジン留去後に飽和炭酸水溶液および無水酢酸を加えてアセチル化するという従来の方法では、アセチル化反応に時間がかかる他、系内に残る多量の塩を脱塩するために多くの時間を必要としていた。つまり、構成糖としてアセチル化糖を含む糖鎖については、ヒドラジン除去後の糖鎖のアセチル化、脱塩といった一連の処理においてもそれぞれ長い処理時間を必要とすることから、短時間で糖鎖を得ることは困難であった。
さらに、順相ＨＰＬＣと逆相ＨＰＬＣとを組み合わせて分析を行なう場合には、順相ＨＰＬＣの溶出液を、装置間を接続して直接オンラインで逆相ＨＰＬＣに導くことはできなかった。なぜならば、順相ＨＰＬＣの溶離液は、逆相ＨＰＬＣにとって非常に強い溶出効果を持っており、例えば、直接順相ＨＰＬＣから逆相ＨＰＬＣに導いた場合には糖鎖がまったく逆相カラムに保持されないからである。逆相ＨＰＬＣから順相ＨＰＬＣに導いた場合も同様である。これに対応するため、従来は、順相ＨＰＬＣによる分析の後、逆相ＨＰＬＣを行なう前に溶媒置換を行なっていた。溶媒置換は、具体的には、順相ＨＰＬＣからの溶出液を一度試験管に分取し、それを濃縮乾燥機またはエバポレータで溶媒を留去し、その後で水に再溶解する、という工程を行なうものである。しかし、この方法は多大な労力を要するとともに、多数の検体を分析するときには多くの時間を必要としていた。つまり、順相ＨＰＬＣと逆相ＨＰＬＣとは直接オンラインで接続することが出来なかったため、順層ＨＰＬＣ及び逆相ＨＰＬＣに用いる装置相互の間で、一旦溶出液を分取し、溶媒の留去、再溶解するという、溶媒置換の工程が必要であった。即ち、分析に多大な労力を要するとともに、多数の検体を分析するときには時間がかかるという課題があった。
また、非特許文献４のような例は、いずれも一方の溶出条件が他方の保持条件となる場合のみ組み合わせが可能であり、順相ＨＰＬＣと逆相ＨＰＬＣのような、一方の溶出条件が他方の溶出条件ともなってしまうような、いわゆる溶媒置換が必要となる組み合わせをオンラインで接続する報告はこれまでになかった。
本発明は上記の課題に鑑みて創案されたもので、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分離すること、並びに、分離された糖鎖に代表される各種の検体を短時間で効率的に分析することを目的とする。
本発明者らは、上記課題を解決すべく検討した結果、耐アルカリ性の充填剤を充填したカラムに糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液し、更に、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液することにより、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離することができることを見出した。また、順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの一方により分離した後の検体を含む第１溶出液をイオン交換カラムに通液させて検体を吸着させた後、イオン交換カラムから検体を溶出させて順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの他方により分離することにより検体を短時間で効率的に分析することができることを見出し、本発明を完成させた。
即ち、本発明の要旨は、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、糖鎖を保持し得る耐アルカリ性の充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程とを備えたことを特徴とする、糖鎖分離方法に存する（請求項１）。この糖鎖分離方法により、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分離することができる。
また、本発明の別の要旨は、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程と、前記カラムに、アセチル化反応剤を通液するアセチル化工程と、前記カラムに、アセチル化反応剤を溶出させる脱塩剤を通液する反応剤洗浄工程とを備えたことを特徴とする、糖鎖分離方法に存する（請求項２）。この糖鎖分離方法により、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分離することができ、また、糖タンパク質の糖鎖が本来アセチル基を有している場合、ヒドラジン分解液中で脱離していたアセチル基を短時間に付加することができる。
また、本発明の更に別の要旨は、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程と、前記カラムに、糖鎖を溶出させうるアセチル化反応剤を通液するアセチル化溶出工程とを備えたことを特徴とする、糖鎖分離方法に存する（請求項３）。この糖鎖分離方法によっても、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分離することができ、また、糖タンパク質の糖鎖が本来アセチル基を有している場合、ヒドラジン分解液中で脱離していたアセチル基を短時間に付加することができる。
さらに、前記充填剤は、耐アルカリ性であることが好ましい（請求項４）。これにより、アルカリによって分解した充填剤がカラムから溶出し糖鎖と混合することを防止でき、また、充填剤がアルカリで分解して糖鎖の保持力が低下することを防止できる。
また、本発明の更に別の要旨は、検体を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの一方により分離する第１分離工程と、該第１分離工程において分離された検体を含む第１溶出液をイオン交換カラムに通液させて検体を吸着させる検体吸着工程と、前記イオン交換カラムから検体を溶出させ、得られた検体を含む第２溶出液を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの他方により分離する第２分離工程とを備えたことを特徴とする、検体分析方法に存する（請求項５）。この検体分析方法により、順相及び逆相クロマトグラフィーを用いて、各種の検体を短時間で効率的に分析することができる。
このとき、前記イオン交換カラムはカチオン交換カラムであることが好ましい（請求項６）。さらに、前記検体は、糖タンパク質の糖鎖であることが好ましい（請求項７）。これにより、糖鎖を確実にイオン交換カラムに吸着させることが可能となり、安定した分析を行なうことが可能となる。
また、本発明の更に別の要旨は、順相液体クロマトグラフィーによる分離を行なう順相液体クロマトグラフィー部と、逆相液体クロマトグラフィーによる分離を行なう逆相液体クロマトグラフィー部と、イオン交換カラムとを備え、該イオン交換カラムは、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの一方から流出した第１溶出液が該イオン交換カラムに流入し、該イオン交換カラムから流出した第２溶出液が該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの他方に流入するよう、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部の間に接続されることを特徴とする、液体クロマトグラフィー装置に存する（請求項８）。この液体クロマトグラフィー装置により、順相及び逆相クロマトグラフィーを用いて、各種の検体を短時間で効率的に分析することができる。
このとき、該液体クロマトグラフィー装置は、該イオン交換カラムの移動相を、該イオン交換カラムに吸着した検体を溶出させる移動相と溶出させない移動相との間で切り替える移動相切替部を備えることが好ましい（請求項９）。これにより、上記の分析の操作を簡単にすることができる。
また、本発明の更に別の要旨は、糖タンパク質をヒドラジンにより分解して糖タンパク質のヒドラジン分解液を調製する分解工程と、該分解工程で調製した前記ヒドラジン分解液を、糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程と、前記カラムに、アセチル化反応剤を通液するアセチル化工程と、前記カラムに、前記アセチル化反応剤を溶出させる脱塩剤を通液する反応剤洗浄工程と、前記カラムから糖鎖を溶出させ、得られた糖鎖を含む検体液を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの一方により分離する第１分離工程と、該第１分離工程において分離された糖鎖を含む第１溶出液をイオン交換カラムに通液させて糖鎖を吸着させる糖鎖吸着工程と、前記イオン交換カラムから糖鎖を溶出させ、得られた糖鎖を含む第２溶出液を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの他方により分離する第２分離工程とを備えたことを特徴とする、糖鎖分析方法に存する（請求項１０）。この分析方法により、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分析することが可能となる。
また、本発明の更に別の要旨は、上記の糖鎖分析方法に用いる糖鎖分析装置であって、糖鎖を保持し得る充填剤が充填されたカラムと、順相液体クロマトグラフィーにより糖鎖の分離を行なう順相液体クロマトグラフィー部と、逆相液体クロマトグラフィーにより糖鎖の分離を行なう逆相液体クロマトグラフィー部と、イオン交換カラムとを備え、該カラムは、該カラムから流出した検出液が該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部の一方に流入するように接続されるとともに、該イオン交換カラムは、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの一方から流出した第１溶出液が該イオン交換カラムに流入し、該イオン交換カラムから流出した第２溶出液が該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの他方に流入するよう、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部の間に接続されることを特徴とする、糖鎖分析装置に存する（請求項１１）。この分析装置を用いることにより、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分析することが可能となる。
本発明の糖鎖分離方法によれば、短時間で効率的に糖タンパク質の糖鎖を分離することができる。
また、本発明の分析方法または液体クロマトグラフィー装置によれば、糖鎖その他の検体を短時間で効率的に分析することができる。
さらに、本発明の糖鎖分析方法または糖鎖分析装置によれば、糖鎖を短時間で効率的に分析することができる。
また、本発明の分析方法または液体クロマトグラフィー装置によれば、糖鎖その他の検体を短時間で効率的に分析することができる。
さらに、本発明の糖鎖分析方法または糖鎖分析装置によれば、糖鎖を短時間で効率的に分析することができる。
以下、図を用いて本発明の実施形態について説明するが、本発明は以下の実施形態に限定されるものではなく、その要旨を逸脱しない範囲において任意に変形して実施することができる。
Ｉ．糖タンパク質の糖鎖の分離
まず、糖タンパク質から糖鎖を分離する方法について説明する。
本実施形態では、まず、糖タンパク質のヒドラジン分解液を調製する分解工程を行なって糖タンパク質から糖鎖を切り出し、次に、本発明の糖鎖分離方法によってヒドラジン分解液から糖鎖を分離する。ここで、本発明の糖鎖分離方法は、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程とを有する。さらに、糖タンパク質の糖鎖が、ヒドラジンによる糖鎖の切り出し前にアセチル基を有している場合には、洗浄工程後、カラムにアセチル化反応剤を通液するアセチル化工程と、カラムにアセチル化反応剤を溶出させる脱塩剤を通液する反応剤洗浄工程とを行なう。
まず、糖タンパク質から糖鎖を分離する方法について説明する。
本実施形態では、まず、糖タンパク質のヒドラジン分解液を調製する分解工程を行なって糖タンパク質から糖鎖を切り出し、次に、本発明の糖鎖分離方法によってヒドラジン分解液から糖鎖を分離する。ここで、本発明の糖鎖分離方法は、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程とを有する。さらに、糖タンパク質の糖鎖が、ヒドラジンによる糖鎖の切り出し前にアセチル基を有している場合には、洗浄工程後、カラムにアセチル化反応剤を通液するアセチル化工程と、カラムにアセチル化反応剤を溶出させる脱塩剤を通液する反応剤洗浄工程とを行なう。
以下、詳細に説明する。
［１］分解工程
分解工程では糖タンパク質をヒドラジンにより分解して、糖タンパク質のヒドラジン分解液を調製する。
ヒドラジン分解液の調製方法に特に制限は無く、公知の任意の方法により調製することができる。ただし、通常は、分析の対象となる試料（臓器、組織、糖タンパク質等）にヒドラジンを加え、加熱することにより調製する。これにより、ヒドラジン分解液中でタンパク質はほぼ完全に分解し、タンパク質に結合していた糖鎖はタンパク質から遊離する。なお、上記の方法によりヒドラジン分解液を調製する場合、加熱する温度は通常６０℃以上、好ましくは９０℃以上、また、通常１５０℃以下、好ましくは１１０℃以下である。
［１］分解工程
分解工程では糖タンパク質をヒドラジンにより分解して、糖タンパク質のヒドラジン分解液を調製する。
ヒドラジン分解液の調製方法に特に制限は無く、公知の任意の方法により調製することができる。ただし、通常は、分析の対象となる試料（臓器、組織、糖タンパク質等）にヒドラジンを加え、加熱することにより調製する。これにより、ヒドラジン分解液中でタンパク質はほぼ完全に分解し、タンパク質に結合していた糖鎖はタンパク質から遊離する。なお、上記の方法によりヒドラジン分解液を調製する場合、加熱する温度は通常６０℃以上、好ましくは９０℃以上、また、通常１５０℃以下、好ましくは１１０℃以下である。
この際、試料中の糖鎖がアセチル基を有するものである場合には、ヒドラジンにより糖鎖からアセチル基が脱離し、ヒドラジン分解液中の糖鎖はアセチル基を有さない糖鎖になる。このように、糖タンパク質に結合した状態ではアセチル基を有していた糖鎖がヒドラジン分解によってそのアセチル基を失ったものを、以下適宜「アセチル基脱離糖鎖」と呼ぶ。また、本明細書においては糖鎖とは、アセチル基を有しているものと有していないものとを区別せずに広く指す語として用いる。また、ここでいう糖鎖とは、グルコース、ガラクトース、マンノース、フコース、Ｎ−アセチルグルコサミン、Ｎ−アセチルガラクトサミン、シアル酸などを構成糖とするもので、これらが複数グリコシド結合でつながったもの、または単糖も含まれる。
［２］糖鎖保持工程
糖鎖保持工程では、分解工程において調製したヒドラジン分解液をカラム（以下適宜、「糖鎖保持カラム」という）に通液する。
糖鎖保持カラムの充填剤は、糖鎖を保持しうる性能をもつ充填剤であれば他に制限は無く、任意の物質を用いることができる。具体例を挙げると、通常、オクタデシルシラン、オクチルシラン、シクロヘキシルシラン、フェニルシラン、シアノプロピルシラン、シリカゲルなどのシリカ系充填剤；フロリジルなどのケイ酸マグネシウム系充填剤；スチレンジビニルベンゼンなどのポリスチレン系充填剤；アミノ、アミドなどの順相系充填剤；グラファイトカーボンなどのカーボン系充填剤；セルロース、セファデクスなどの高分子糖系充填剤等が挙げられる。ただし、ヒドラジン溶解液はアルカリ性であるので、充填剤の加水分解による劣化、及び残骸流出防止の観点より、耐アルカリ性の物質が好ましく、具体的には、グラファイトカーボン、スチレンジビニルベンゼン等が好ましい。ここで耐アルカリ性とは、ｐＨ＝７以上の溶液と接した場合、分解または変性しないことをいう。なお、これら充填剤は、１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
さらに、上記充填剤の充填密度は任意であるが、通常０．２ｇ／ｃｍ2以上、好ましくは０．３ｇ／ｃｍ2以上、また、通常１．０ｇ／ｃｍ2以下、好ましくは０．８ｇ／ｃｍ2以下である。
糖鎖保持工程では、分解工程において調製したヒドラジン分解液をカラム（以下適宜、「糖鎖保持カラム」という）に通液する。
糖鎖保持カラムの充填剤は、糖鎖を保持しうる性能をもつ充填剤であれば他に制限は無く、任意の物質を用いることができる。具体例を挙げると、通常、オクタデシルシラン、オクチルシラン、シクロヘキシルシラン、フェニルシラン、シアノプロピルシラン、シリカゲルなどのシリカ系充填剤；フロリジルなどのケイ酸マグネシウム系充填剤；スチレンジビニルベンゼンなどのポリスチレン系充填剤；アミノ、アミドなどの順相系充填剤；グラファイトカーボンなどのカーボン系充填剤；セルロース、セファデクスなどの高分子糖系充填剤等が挙げられる。ただし、ヒドラジン溶解液はアルカリ性であるので、充填剤の加水分解による劣化、及び残骸流出防止の観点より、耐アルカリ性の物質が好ましく、具体的には、グラファイトカーボン、スチレンジビニルベンゼン等が好ましい。ここで耐アルカリ性とは、ｐＨ＝７以上の溶液と接した場合、分解または変性しないことをいう。なお、これら充填剤は、１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
さらに、上記充填剤の充填密度は任意であるが、通常０．２ｇ／ｃｍ2以上、好ましくは０．３ｇ／ｃｍ2以上、また、通常１．０ｇ／ｃｍ2以下、好ましくは０．８ｇ／ｃｍ2以下である。
糖鎖保持カラムにヒドラジン分解液を通液することにより、ヒドラジン分解液中の糖鎖はカラムの充填剤に保持される。
ヒドラジン分解液の通液速度は任意であるが、糖タンパク質などの試料の量、及び、使用するカラムの体積などに応じて設定することが好ましい。例えば、通常０．１ｍＬ／ｍｉｎ以上、好ましくは０．５ｍＬ／ｍｉｎ以上、また、通常１００ｍＬ／ｍｉｎ以下、好ましくは５ｍＬ／ｍｉｎ以下が望ましい。
ヒドラジン分解液の通液速度は任意であるが、糖タンパク質などの試料の量、及び、使用するカラムの体積などに応じて設定することが好ましい。例えば、通常０．１ｍＬ／ｍｉｎ以上、好ましくは０．５ｍＬ／ｍｉｎ以上、また、通常１００ｍＬ／ｍｉｎ以下、好ましくは５ｍＬ／ｍｉｎ以下が望ましい。
［３］洗浄工程
洗浄工程では、糖鎖保持工程でヒドラジン分解液を通液した糖鎖保持カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する。糖鎖保持カラムに洗浄溶媒を通液することにより、糖鎖を糖鎖保持カラムの充填剤に保持したままヒドラジンを完全に除去することができる。
洗浄工程では、糖鎖保持工程でヒドラジン分解液を通液した糖鎖保持カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する。糖鎖保持カラムに洗浄溶媒を通液することにより、糖鎖を糖鎖保持カラムの充填剤に保持したままヒドラジンを完全に除去することができる。
ここで、洗浄溶液とは、糖鎖を糖鎖保持カラムに保持させた状態のままヒドラジンを溶出させる性質を備えたものであれば任意の液体を用いることができる。したがって、使用する洗浄溶液の具体的な種類は、使用する糖鎖保持カラムに応じて選択することができる。
例えば、糖鎖保持カラムの充填剤がグラファイトカーボン等のカーボン系充填剤やスチレンジビニルベンゼン等のポリスチレン系充填剤などである逆相系カラムに対しては、洗浄用液として水や、酢酸塩水溶液、ギ酸アンモニウム水溶液、酢酸トリエチルアミン水溶液、酢酸ナトリウム水溶液、リン酸ナトリウム水溶液などの水溶液等を用いることが好ましく、水、酢酸アンモニウム水溶液、ギ酸アンモニウム水溶液などを用いることがより好ましく、中でも酢酸アンモニウム水溶液が特に好ましい。
また、充填剤がセルロースなどである順相系カラムに対しては、メタノール、エタノール、ブタノール、アセトニトリル、アセトン、クロロホルムなどの有機溶媒を用いることが好ましく、中でもブタノール、エタノール、若しくはそれらの混合溶媒を用いることがより好ましい。
なお、上記の洗浄溶液は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
また、充填剤がセルロースなどである順相系カラムに対しては、メタノール、エタノール、ブタノール、アセトニトリル、アセトン、クロロホルムなどの有機溶媒を用いることが好ましく、中でもブタノール、エタノール、若しくはそれらの混合溶媒を用いることがより好ましい。
なお、上記の洗浄溶液は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
洗浄溶液の通液量及び通液速度は、糖タンパク質などの試料の量、及び、使用する糖鎖保持カラムの体積などに応じて設定することが好ましい。例えば、通液量は任意であるが、カラム体積の通常１倍以上、好ましくは３倍以上、また、通常５０倍以下、好ましくは２０倍以下が望ましい。また、通液速度も任意であるが、通常０．１ｍＬ／ｍｉｎ以上、好ましくは１．０ｍＬ／ｍｉｎ以上、また、通常１００ｍＬ／ｍｉｎ以下、好ましくは１０ｍＬ／ｍｉｎ以下が望ましい。
以上のように、糖鎖保持工程及び洗浄工程を行なうことにより、ヒドラジン分解液中の糖鎖を分離し、糖鎖保持カラムの充填剤に保持された糖鎖として得ることができる。
以上のように、糖鎖保持工程及び洗浄工程を行なうことにより、ヒドラジン分解液中の糖鎖を分離し、糖鎖保持カラムの充填剤に保持された糖鎖として得ることができる。
［４］アセチル化工程
次に、アセチル化工程を行なう。糖鎖が本来糖タンパク質中でアセチル基を有しているものである場合には、洗浄工程の直後では目的とする糖鎖を得ることができない。即ち、このような場合にはヒドラジン分解液中では糖鎖からアセチル基が脱離するため、洗浄工程直後には、目的とする糖鎖からアセチル基が脱離したアセチル基脱離糖鎖が得られる。したがって、アセチル基を有する糖鎖を得るためには、アセチル基脱離糖鎖のアセチル基が脱離した部分をアセチル化することが必要となる。
次に、アセチル化工程を行なう。糖鎖が本来糖タンパク質中でアセチル基を有しているものである場合には、洗浄工程の直後では目的とする糖鎖を得ることができない。即ち、このような場合にはヒドラジン分解液中では糖鎖からアセチル基が脱離するため、洗浄工程直後には、目的とする糖鎖からアセチル基が脱離したアセチル基脱離糖鎖が得られる。したがって、アセチル基を有する糖鎖を得るためには、アセチル基脱離糖鎖のアセチル基が脱離した部分をアセチル化することが必要となる。
アセチル化工程では、洗浄工程でヒドラジンを除去した後の糖鎖保持カラムに、アセチル化反応剤を通液する。糖鎖保持カラムにアセチル化反応剤を通液することにより、充填剤に保持されたアセチル基脱離糖鎖をアセチル化して、目的とする糖鎖にすることができる。
アセチル化反応剤は、アセチル基脱離糖鎖をアセチル化することができる流体であれば他に制限は無い。ただし、通常は、アセチル化試薬を水またはバッファーに溶解したものを用いる。
アセチル化反応剤は、アセチル基脱離糖鎖をアセチル化することができる流体であれば他に制限は無い。ただし、通常は、アセチル化試薬を水またはバッファーに溶解したものを用いる。
アセチル化試薬は、アルコール、アミンをそれぞれエステル、アミドに変換しうるものをいい、公知のものを任意に用いることができる。具体例を挙げると、無水酢酸、アセチルブロマイド、アセチルクロライド、アセチルイミダゾールなどが挙げられる。中でも無水酢酸が好ましい。なお、アセチル化試薬は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
また、アセチル化試薬を溶解するバッファーや溶媒としても、任意の液体を用いることができる。具体例としては、充填剤としてグラファイトカーボン等のカーボン系充填剤やスチレンジビニルベンゼン等のポリスチレン系充填剤などを用いた逆相系カラムに対しては、酢酸アンモニウム水溶液、ギ酸アンモニウム水溶液、酢酸ナトリウム水溶液、トリスヒドロキシメチルアミノメタン水溶液、酢酸トリメチルアミン水溶液などが用いられ、中でもトリスヒドロキシメチルアミノメタン水溶液が望ましい。なお特に、バッファーや溶媒として上記のような水溶液を用いる場合、その水溶液の濃度は、その水溶液の通液によって糖鎖がカラムから流出せず、且つ、アセチル化反応によるｐＨ変動を抑制することができれば任意である。通常０．１Ｍ以上、好ましくは０．５Ｍ以上、また、通常２．０Ｍ以下、好ましくは１．０Ｍ以下が望ましい。この濃度が薄すぎるとアセチル化反応により生じる酸によってｐＨが低下し反応が停止する虞があり、また、この高度が高すぎると糖鎖がカラムから流出する虞がある。
また、充填剤がセルロースなどである順相系カラムに対しては、エタノール、ブタノールなどのアルコール類；アセトン、アセトニトリルなどの水溶性溶媒などを挙げることができる。なお、これらは１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
また、充填剤がセルロースなどである順相系カラムに対しては、エタノール、ブタノールなどのアルコール類；アセトン、アセトニトリルなどの水溶性溶媒などを挙げることができる。なお、これらは１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
アセチル化試薬の濃度も任意であるが、通常は、使用する糖鎖保持カラムの充填剤に応じて設定する。例えば、糖鎖保持カラムの充填剤としてグラファイトカーボン等のカーボン系充填剤やスチレンジビニルベンゼン等のポリスチレン系充填剤を用いた場合、アセチル化試薬の濃度は通常０．１重量％以上、好ましくは０．５重量％以上、また、通常１０重量％以下、好ましくは３重量％以下である。また、例えば、充填剤としてセルロースを用いた場合、アセチル化試薬の濃度は通常０．１重量％以上、好ましくは１重量％以上、また、通常８０重量％以下、好ましくは１０重量％以下である。
さらに、アセチル化反応剤には適宜、緩衝剤を混合してｐＨを調整することが望ましい。例えば、糖鎖保持カラムの充填剤としてグラファイトカーボン等のカーボン系充填剤やスチレンジビニルベンゼン等のポリスチレン系充填剤などを用いた場合には、緩衝剤によりアセチル化試薬のｐＨを、通常４以上、好ましくは５以上、また、通常１０以下、好ましくは８以下とする。ｐＨが高すぎるとアセチル化試薬が加水分解する虞があり、また、ｐＨが低すぎるとアセチル化が進行しない可能性がある。
また、アセチル化反応剤の通液量は、糖タンパク質などの試料の量、及び、使用する糖鎖保持カラムの体積などに応じて設定することが好ましい。通液量は、通常０．１ｍＬ／ｍｉｎ以上、好ましくは０．２ｍＬ／ｍｉｎ以上、より好ましくは０．５ｍＬ／ｍｉｎ以上、また、通常１０ｍＬ／ｍｉｎ以下、好ましくは５ｍＬ／ｍｉｎ以下、より好ましくは２ｍＬ／ｍｉｎ以下が望ましいが、特にこれに限定されるものではない。
［５］反応剤洗浄工程
反応剤洗浄工程では、アセチル化工程でアセチル化反応剤を通液した後の糖鎖保持カラムに、脱塩剤（反応剤洗浄剤）を通液する。糖鎖保持カラムに脱塩剤を通液することにより、糖鎖保持カラム内のアセチル化反応剤を除去し、目的とする糖鎖を得ることができる。
脱塩剤は糖鎖をカラムに保持し、且つアセチル化反応剤（バッファー中に緩衝剤としての塩が存在している場合は、その塩を含む）を溶出させることができるものであれば特に制限は無く、任意のものを用いることができる。具体例としては、上記洗浄工程で用いた洗浄溶液と同様のものを用いることができる。また、脱塩材は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
また、通液する脱塩剤の量は、使用する糖鎖保持カラムの体積に対して、通常１倍以上、好ましくは２倍以上、より好ましくは３倍以上、また、通常１０倍以下、好ましく８倍以下、より好ましくは６倍以下である。
反応剤洗浄工程では、アセチル化工程でアセチル化反応剤を通液した後の糖鎖保持カラムに、脱塩剤（反応剤洗浄剤）を通液する。糖鎖保持カラムに脱塩剤を通液することにより、糖鎖保持カラム内のアセチル化反応剤を除去し、目的とする糖鎖を得ることができる。
脱塩剤は糖鎖をカラムに保持し、且つアセチル化反応剤（バッファー中に緩衝剤としての塩が存在している場合は、その塩を含む）を溶出させることができるものであれば特に制限は無く、任意のものを用いることができる。具体例としては、上記洗浄工程で用いた洗浄溶液と同様のものを用いることができる。また、脱塩材は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
また、通液する脱塩剤の量は、使用する糖鎖保持カラムの体積に対して、通常１倍以上、好ましくは２倍以上、より好ましくは３倍以上、また、通常１０倍以下、好ましく８倍以下、より好ましくは６倍以下である。
以上のように、反応剤洗浄工程を行なうことにより、目的とする糖鎖を得ることができる。ただし、上記アセチル化工程及び反応剤洗浄工程は省略しても良い。即ち、糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、糖鎖を保持し得る耐アルカリ性の充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程とを行なうことでも、目的とする糖鎖を得ることができる。具体的には、糖鎖が糖タンパク質に結合した状態においてもアセチル基を有さない種類の糖鎖である場合などがこれに当たる。
［６］その他
糖鎖は、充填剤に保持された状態で得ることができる。この糖鎖は、充填剤に保持された状態のまま用いても良いが、通常は、糖鎖保持カラムに溶出溶剤を通液し、充填剤に保持された糖鎖を溶出溶剤中に溶出させる。糖鎖を溶出させる工程を、溶出工程と呼ぶ。
溶出溶媒は充填剤に保持された糖鎖を溶出させることができれば他に制限はないが、通常は、糖鎖保持カラムの充填剤に応じて選択することが望ましい。具体例としては、糖鎖保持カラムの充填剤としてグラファイトカーボン等のカーボン系充填剤やスチレンジビニルベンゼン等のポリスチレン系充填剤などを用いた場合は、メタノール、エタノール、プロパノール等のアルコール類や、アセトン、アセトニトリル等の水溶性溶媒などが挙げられる。さらに、これらの溶出溶媒は、水または緩衝液との混合液等、他の液体中に溶出溶媒を含む溶液として通液しても良い。また、充填剤としてセルロースを用いた場合は、緩衝液、または緩衝液／エタノール混合液など緩衝液を含む溶液が挙げられる。なお、これらは１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
糖鎖は、充填剤に保持された状態で得ることができる。この糖鎖は、充填剤に保持された状態のまま用いても良いが、通常は、糖鎖保持カラムに溶出溶剤を通液し、充填剤に保持された糖鎖を溶出溶剤中に溶出させる。糖鎖を溶出させる工程を、溶出工程と呼ぶ。
溶出溶媒は充填剤に保持された糖鎖を溶出させることができれば他に制限はないが、通常は、糖鎖保持カラムの充填剤に応じて選択することが望ましい。具体例としては、糖鎖保持カラムの充填剤としてグラファイトカーボン等のカーボン系充填剤やスチレンジビニルベンゼン等のポリスチレン系充填剤などを用いた場合は、メタノール、エタノール、プロパノール等のアルコール類や、アセトン、アセトニトリル等の水溶性溶媒などが挙げられる。さらに、これらの溶出溶媒は、水または緩衝液との混合液等、他の液体中に溶出溶媒を含む溶液として通液しても良い。また、充填剤としてセルロースを用いた場合は、緩衝液、または緩衝液／エタノール混合液など緩衝液を含む溶液が挙げられる。なお、これらは１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用しても良い。
さらに、溶出溶媒の通液量は、糖鎖保持カラムの体積の通常１倍以上、好ましくは２倍以上、より好ましくは３倍以上、また、通常２０倍以下、好ましくは１０倍以下、より好ましくは５倍以下である。
なお、ここで溶出溶媒に無水酢酸を加えるとさらにアセチル化の効果を上げることができる。加える無水酢酸の量は、溶出溶媒に対して、通常０．１体積％以上、好ましくは０．５体積％以上、より好ましくは１．０体積％以上、また、通常５０体積％以下、好ましくは１０体積％以下、より好ましくは５体積％以下である。
溶出した液（検体液）は、例えばエバポレータもしくは濃縮遠心器にて溶媒を留去し、糖タンパク質の糖鎖を得ることができる。
なお、ここで溶出溶媒に無水酢酸を加えるとさらにアセチル化の効果を上げることができる。加える無水酢酸の量は、溶出溶媒に対して、通常０．１体積％以上、好ましくは０．５体積％以上、より好ましくは１．０体積％以上、また、通常５０体積％以下、好ましくは１０体積％以下、より好ましくは５体積％以下である。
溶出した液（検体液）は、例えばエバポレータもしくは濃縮遠心器にて溶媒を留去し、糖タンパク質の糖鎖を得ることができる。
また、上述したアセチル化工程に代えて、糖鎖保持カラムに、糖鎖を溶出させうるアセチル化反応剤を通液するアセチル化溶出工程を行なってもよい。即ち、［１］分離工程、［２］糖鎖保持工程、［３］洗浄工程を行なった後、［４′］アセチル化溶出工程を行なうようにしてもよい。これにより、アセチル基脱離糖鎖をアセチル化することと、糖鎖保持カラムから糖鎖を溶出させることとを、一つの工程で行なうことができる。
アセチル化溶出工程で用いるアセチル化反応剤は、アセチル基脱離糖鎖をアセチル化することができ、且つ、糖鎖保持カラムに保持された糖鎖を溶出させることができるものであれば他に制限は無い。具体例としては、上述したアセチル化試薬を酢酸トリエチルアミン水溶液やアセトニトリルなどの溶出溶媒に溶解したものが挙げられる。
特に、アセチル化試薬として無水酢酸を用いる場合には、［４′］アセチル化溶出工程を行なう利点が顕著である。即ち、上記［４］アセチル化工程を行なうときには、無水酢酸のようにｐＨの変化によって加水分解するものをアセチル化試薬として用いる場合、アセチル化反応液中に緩衝剤を共存させてｐＨをコントロールすることが望ましくなる。しかし、［４′］アセチル化溶出工程では、糖鎖の溶出と同じ工程でアセチル化を行なうため、アセチル化試薬を溶出溶媒（アセトニトリル）に溶解させることができる。無水酢酸はアセトニトリル中で安定なので、例えばアセチル化反応によって酢酸が生成してｐＨが変化しても、無水酢酸は容易には加水分解されない。したがって、無水酢酸を用いた場合に緩衝剤を用いなくてもアセチル化を確実に行なうことができるとともに、反応剤洗浄工程が不要となり、アセチル基脱離糖鎖のアセチル化することと、糖鎖保持カラムからの糖鎖を溶出させることとを、一つの工程で行なうことができる。
以上のように、本発明の糖鎖分離方法によれば、加熱に要する時間が不要となり、従来よりも短時間で糖鎖を得ることができる。また、糖鎖保持カラムを用いてヒドラジン分解液から糖鎖を分離するため、操作が容易になり、効率的に糖鎖の分離を行なうことができる。
また、単一の糖鎖保持カラムを用いて、一連の流れの中でアセチル基脱離糖鎖のアセチル化を行なうため、従来よりも操作を簡単にすることができ、また、アセチル化に要する時間を短縮することができる。さらに、アセチル化反応剤を除去する反応剤洗浄工程も従来よりも短時間で行なうことが可能となる。
また、単一の糖鎖保持カラムを用いて、一連の流れの中でアセチル基脱離糖鎖のアセチル化を行なうため、従来よりも操作を簡単にすることができ、また、アセチル化に要する時間を短縮することができる。さらに、アセチル化反応剤を除去する反応剤洗浄工程も従来よりも短時間で行なうことが可能となる。
II．液体クロマトグラフィーによる分析
次に、本発明の検体分析方法（糖鎖分析方法）を用いた検体の分析について説明する。ここでは、検体として上記分離方法にて取得した糖タンパク質の糖鎖を分析する場合を例として説明するが、検体について制限は無く、任意の単体及び化合物を検体とすることができる。
また、検体は通常、適当な溶媒中に溶解または分散した検体液とされて分析される。ここで、検体を溶解または分散させる溶媒に制限は無く、検体の種類等に応じて任意の溶媒を用いることができるが、検体が糖鎖である場合には、水、緩衝液などが挙げられる。本実施形態では、溶媒として水を用いることとし、したがって、検体液として糖鎖の水溶液を用いることとして説明する。また、検体は使用する検出器１２，１６等に応じて標識されていてもよい。
次に、本発明の検体分析方法（糖鎖分析方法）を用いた検体の分析について説明する。ここでは、検体として上記分離方法にて取得した糖タンパク質の糖鎖を分析する場合を例として説明するが、検体について制限は無く、任意の単体及び化合物を検体とすることができる。
また、検体は通常、適当な溶媒中に溶解または分散した検体液とされて分析される。ここで、検体を溶解または分散させる溶媒に制限は無く、検体の種類等に応じて任意の溶媒を用いることができるが、検体が糖鎖である場合には、水、緩衝液などが挙げられる。本実施形態では、溶媒として水を用いることとし、したがって、検体液として糖鎖の水溶液を用いることとして説明する。また、検体は使用する検出器１２，１６等に応じて標識されていてもよい。
１．分析装置
図１は、本発明の一実施形態としての検体分析方法に用いる分析装置（液体クロマトグラフィー装置）の要部を示すブロック図である。このクロマトグラフィー装置は、順相液体クロマトグラフィー部（以下適宜、「順相ＨＰＬＣ部」という）１、逆相液体クロマトグラフィー部（以下適宜、「逆相ＨＰＬＣ部」という）２、イオン交換カラム３、再生液供給部４、置換液供給部５、溶出液供給部６、バルブスイッチング（移動相切替部）７、バルブスイッチング８、及び制御部１００を備えている。
図１は、本発明の一実施形態としての検体分析方法に用いる分析装置（液体クロマトグラフィー装置）の要部を示すブロック図である。このクロマトグラフィー装置は、順相液体クロマトグラフィー部（以下適宜、「順相ＨＰＬＣ部」という）１、逆相液体クロマトグラフィー部（以下適宜、「逆相ＨＰＬＣ部」という）２、イオン交換カラム３、再生液供給部４、置換液供給部５、溶出液供給部６、バルブスイッチング（移動相切替部）７、バルブスイッチング８、及び制御部１００を備えている。
順相ＨＰＬＣ部１は、順相ＨＰＬＣにより検体の分離を行なうように構成されており、移動相供給部９、オートインジェクタ１０、順相カラム１１、及び、検出器１２を備えている。
移動相供給部９は、順相カラム１１に向けて移動相を供給する部分であり、複数（ここでは２個）の移動相貯蔵部９Ａと、それぞれの移動相貯蔵部９Ａに接続されたグラジエントポンプ９Ｂとを備えている。
移動相供給部９は、順相カラム１１に向けて移動相を供給する部分であり、複数（ここでは２個）の移動相貯蔵部９Ａと、それぞれの移動相貯蔵部９Ａに接続されたグラジエントポンプ９Ｂとを備えている。
移動相貯蔵部９Ａには、順相ＨＰＬＣの移動相となる液体（以下適宜、「順相溶離液」という）が貯蔵されていて、各移動相貯蔵部９Ａに貯蔵された順相溶離液の極性は異なるようになっている。ここで、順相溶離液の種類に特に制限は無く、公知のものを任意に使用することができる。具体例としては、アセトニトリル、アセトン、クロロホルム、トルエン、ベンゼン、ヘキサンなどが挙げられる。なお、順相溶離液は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。さらに、各移動相貯蔵部９Ａ内の順相溶離液は、例えば水溶液として用いるなど、任意の液体と混合又は溶解して用いてもよい。ここでは、順相溶離液として、それぞれ濃度の異なるアセトニトリル水溶液を用いるものとして説明する。
グラジエントポンプ９Ｂは移動相貯蔵部９Ａ内の順相溶離液を順相カラム１１に向けて送出するものであり、移動相貯蔵部９Ａそれぞれの下流に接続されている。さらに、各グラジエントポンプ９Ｂは制御部１００により稼動を制御されるようになっている。なお、図１において、グラジエントポンプ９Ｂと制御部１００との接続は途中を省略し、符号ｃで示す鎖線矢印はすべて制御部１００による制御を表わすものとする。また、図１において、他の構成要素に対する制御部１００の制御も同様に符号ｃで示す鎖線矢印で示すものとする。
上記のように、グラジエントポンプ９Ｂは、制御部１００の制御にしたがって順相溶離液の送出量を変化させるように構成されている。したがって、移動相供給部９では、移動相貯蔵部９Ａに貯蔵された、それぞれ異なる極性を有する順相溶離液の送出割合を、グラジエントポンプ９Ｂそれぞれの送出量を変化させることで調整し、順相カラム１１を通液する順相溶離液の極性を制御するようになっている。
なお、グラジエントポンプ９Ｂ、及び、後述するグラジエントポンプ１３Ｂは、高圧、低圧いずれのタイプも用いられるが、高圧グラジエントポンプは効果的に溶媒を混合できる面で優れるため好ましい。
なお、グラジエントポンプ９Ｂ、及び、後述するグラジエントポンプ１３Ｂは、高圧、低圧いずれのタイプも用いられるが、高圧グラジエントポンプは効果的に溶媒を混合できる面で優れるため好ましい。
オートインジェクタ１０は、順相カラム１１に検体液を自動的に注入する機器であり、移動相供給部９の下流側、且つ、順相カラム１１の上流側に設置されている。したがって、オートインジェクタ１０から注入された検体液は、順相カラム１１の上流側で、移動相供給部９から送出された順相溶離液と混合されて順相カラム１１に流入するようになっている。さらに、オートインジェクタ１０は制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。
順相カラム１１は、流入した検体液中の検体を順相ＨＰＬＣにより分離するためのカラムであり、移動相供給部９から送出された順相溶離液と、オートインジェクタ１０により注入される検体液とが流入するよう、オートインジェクタ１０の下流側に接続されている。なお、以下の説明において、順相カラム１１から流出する液体、即ち、順相カラム１１内で順相ＨＰＬＣにより分離された後の検体を含む溶出液を、第１溶出液と呼ぶ。
順相カラム１１に充填される充填剤は、通常は移動相である順相溶離液よりも高い極性を有する充填剤であり、その具体的な種類は分析の目的に応じて適宜選択することができる。順相カラム１１の例としては、アミノ基カラム、シアノ基カラム、ジオール基カラム、アミド基カラム等が挙げられる。特に、糖鎖を検体とした分析を行なう際には、糖鎖分離能の観点から、アミド基カラムが好ましい。具体的な順相カラムとしては、例えば東ソー製Ａｍｉｄｅ−８０カラムや昭和電工製Ｓｈｏｄｅｘ Ａｓａｈｉｐａｋ ＮＨ２Ｐ−５０が挙げられる。
検出器１２は、任意の手法によって順相カラム１１から流出する第１溶出液中の検体を検出する機器であり、順相カラム１１の下流に接続されている。その種類に特に制限は無いが、順相ＨＰＬＣに好適な具体例としては、紫外線吸収検出器、蛍光検出器、示差屈折率検出器糖が用いられる。なかでも、糖鎖を感度よく検出するためには、蛍光検出器が好ましい。なお、本実施形態では蛍光検出器を検出器１２として用いるものとする。
次に、逆相ＨＰＬＣ部２について説明する。逆相ＨＰＬＣ部２は逆相ＨＰＬＣにより検体の分離を行なうように構成されており、イオン交換カラム３の下流に接続されている。さらに、逆相ＨＰＬＣ部２は移動相供給部１３、バルブスイッチング１４、逆相カラム１５、及び検出器１６を備えている。
移動相供給部１３は、移動相供給部９と同様に、極性を変えながら逆相カラム１５に向けて移動相を供給する部分であり、複数（ここでは２個）の移動相貯蔵部１３Ａと、それぞれの移動相貯蔵部１３Ａに接続されたグラジエントポンプ１３Ｂとを備えている。
移動相貯蔵部１３Ａには、逆相ＨＰＬＣの移動相となる液体（以下適宜、「逆相溶離液」という）が貯蔵されていて、各移動相貯蔵部１３Ａに貯蔵された逆相溶離液の極性は異なるようになっている。ここで、逆相溶離液の種類に特に制限は無く、公知のものを任意に使用することができる。具体例としては、酢酸アンモニウム水溶液、酢酸ナトリウム水溶液、リン酸ナトリウム水溶液などの緩衝液と、メタノール、エタノール、プロパノール、ブタノール、アセトニトリルなどとの混合液が挙げられる。なお、逆相溶離液は１種を単独で用いてもよく、２種以上を任意の組み合わせ及び比率で併用してもよい。さらに、各移動相貯蔵部１３Ａ内の順相溶離液は、任意の液体と混合又は溶解して用いてもよい。ここでは、逆相溶離液として、アンモニウムアセテート及びブタノールの水溶液を用いるものとして説明する。
グラジエントポンプ１３Ｂは移動相貯蔵部１３Ａ内の逆相溶離液を逆相カラム１５に向けて送出するものであり、移動相貯蔵部１３Ａそれぞれの下流に接続されている。さらに、各グラジエントポンプ１３Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。
上記のように、グラジエントポンプ１３Ｂは、制御部１００の制御にしたがって逆相溶離液の送出量を変化させるように構成されている。したがって、移動相供給部１３では、それぞれ異なる極性を有する逆相溶離液の送出割合を、グラジエントポンプ１３Ｂそれぞれの送出量を変化させることで調整し、逆相カラム１５を通液する移動相の極性を制御するようになっている。
バルブスイッチング１４は、イオン交換カラム３の下流、且つ、移動相供給部１３の下流に接続された送液経路の切替器である。また、バルブスイッチング１４は、制御部１００に接続され、制御部１００の制御に応じて流入した液体の流出先を切り替えるように構成されている。さらに、バルブスイッチング１４の流出側は逆相カラム１５と、装置外部へ通じる図示しない廃液排出口とに接続されている。したがって、バルブスイッチング１４は、制御部１００の制御に従って、イオン交換カラム３から流入する液体と、移動相供給部１３から流入する逆相溶離液とを、装置外部と逆相カラム１５とのいずれかに送出するという切り替えを行なうように構成されている。
なお、バルブスイッチング１４及び、バルブスイッチング７，８はそれぞれ溶媒、溶出液、洗浄液の送液経路を切り替える装置であれば特に制限はなく任意のものを用いることができるが、本実施形態のように、コンピューター制御により自動的に送液経路が切り替えられるものが、省力化、高速化を目的とする上では好ましい。
逆相カラム１５は、イオン交換カラム３から流出する検体を含んだ溶出液（以下適宜、「第２溶出液」という）中の検体を逆相ＨＰＬＣにより分離するためのカラムであり、バルブスイッチング１４を経てイオン交換カラム３から送出された第２溶出液が流入するように、バルブスイッチング１４の下流に接続されている。
逆相カラム１５に充填される充填剤は、通常は移動相である逆相溶離液よりも低い極性を有する充填剤であり、その具体的な種類は分析の目的に応じて適宜選択することができる。逆相カラム１５の例としては、オクタデシル基カラム、オクチル基カラム、ブチル基カラム、フェニル基カラム、Ｃ30カラム等が挙げられる。特に、糖鎖を検体とした分析を行なう際には、糖鎖分離能の観点から、オクタデシル基カラム、Ｃ30カラムが好ましい。逆相カラムの具体例としては、例えば島津製作所製Ｓｈｉｍ−ｐａｃｋ ＣＬＣ−ＯＤＳやナカライテスク製Ｃｏｓｍｏｓｉｌ ５Ｃ１８−Ｐが挙げられる。
検出器１６は、任意の手法によって逆相カラム１５から流出する液体（以下適宜、「第３溶出液」という）中の検体を検出する機器であり、逆相カラム１５の下流に接続されている。その種類に特に制限は無いが、逆相ＨＰＬＣに好適な具体例としては、紫外線吸収検出器、蛍光検出器、示差屈折率検出器、質量分析装置等が用いられる。なかでも、糖鎖を感度よく検出するためには、蛍光検出器、質量分析装置が好ましい。なお、本実施形態では蛍光検出器を検出器１６として用いるものとする。
また、検出器１６の下流側は、図示しない廃液排出口に接続されている。
また、検出器１６の下流側は、図示しない廃液排出口に接続されている。
イオン交換カラム３は、第１溶出液を通液させて、それに含まれる検体を吸着させるものである。即ち、イオン交換カラム３にとって、第１溶出液の溶媒である順相溶離液は、イオン交換カラム３に吸着した検体を溶出させない移動相であり、したがって、第１溶出液をイオン交換カラム３に通液させると、検体は吸着されるが、順相溶離液はそのままイオン交換カラム３の外に流出するようになっている。
また、イオン交換カラム３は、順相ＨＰＬＣ部１から送出された第１溶出液が流入するように設置されている。具体的には、順相ＨＰＬＣ部１よりも下流側、即ち、検出器１２よりも下流側に、後述するバルブスイッチング７を介して接続されている。さらに、イオン交換カラム３の下流側には、逆相ＨＰＬＣ部２のバルブスイッチング１４が接続されていて、イオン交換カラム３から流出した第２溶出液が逆相ＨＰＬＣ部２に流入するように構成されている。なお、イオン交換カラム３は、分析効率を高めるため、ここでは並列に複数本（本実施形態では、５本）設けられている。なお、イオン交換カラム３は１本のみで形成してもよく、また、複数本を直列につないでも良い。
イオン交換カラム３はアニオン交換カラム及びカチオン交換カラムの何れであっても良いが、検体の種類や分析の目的などに応じて選択することが望ましい。また、イオン交換カラム３に用いるイオン交換樹脂に制限は無く任意のイオン交換樹脂を用いることができる。例えば、アニオン交換カラムに用いるイオン交換樹脂としては、４級アンモニウム基等を有する強塩基性アニオン交換樹脂、ジエチルアミノエチル基等を有する弱塩基性アニオン交換樹脂などが挙げられる。また、例えば、カチオン交換カラムにイオン交換樹脂としては、スルホプロピル基等を有する強酸性カチオン交換樹脂、カルボキシメチル基等を有する弱酸性カチオン交換樹脂などが挙げられる。このうち、検体として糖鎖を分析する場合には、強酸性カチオン交換樹脂を使用することが好ましい。本実施形態では、イオン交換カラム３として、カチオン交換カラムを用いるものとして説明する。
また、検体として糖鎖を分析する場合、イオン交換樹脂の交換容量は、通常０．１ｍｅｑ／ｇ（即ち、０．１×１０-3当量／ｇ）以上のものが好ましい。
また、検体として糖鎖を分析する場合、イオン交換樹脂の交換容量は、通常０．１ｍｅｑ／ｇ（即ち、０．１×１０-3当量／ｇ）以上のものが好ましい。
バルブスイッチング７はイオン交換カラム３に通液する流体（本実施形態では、第１溶出液、再生液、置換液、吸着検体溶出液）を切り替える移動相切替部として機能する送出経路の切替器であり、上記のように、順相ＨＰＬＣ部１の下流側、且つ、イオン交換カラム３の上流側に接続されている。また、バルブスイッチング７は制御部１００に接続されて、制御部１００の制御に応じて流入した液体の流出先を切り替えるように構成されている。
バルブスイッチング７の流入側には、順相ＨＰＬＣ部１（詳しくは、検出器１２）に加え、後述するバルブスイッチング８が接続されている。なお、バルブスイッチング８の上流には再生液供給部４、置換液供給部５、及び溶出液供給部６が接続されている。
また、バルブスイッチング７の流出側はイオン交換カラム３に加え、装置外部へ通じる図示しない廃液排出口に接続されている。したがって、バルブスイッチング７は、制御部１００の制御に従って、順相ＨＰＬＣ部１から流入する第１溶出液、並びに、バルブスイッチング８を経て流入する再生液供給部４からの再生液、置換液供給部５からの置換液、及び溶出液供給部６からの吸着検体溶出液を、装置外部とイオン交換カラム３とのいずれかに送出する切り替えを行なうように構成されている。
また、バルブスイッチング７の流出側はイオン交換カラム３に加え、装置外部へ通じる図示しない廃液排出口に接続されている。したがって、バルブスイッチング７は、制御部１００の制御に従って、順相ＨＰＬＣ部１から流入する第１溶出液、並びに、バルブスイッチング８を経て流入する再生液供給部４からの再生液、置換液供給部５からの置換液、及び溶出液供給部６からの吸着検体溶出液を、装置外部とイオン交換カラム３とのいずれかに送出する切り替えを行なうように構成されている。
具体的には、順相ＨＰＣＬ部１からの第１溶出液、即ち、順相溶離液を含む第１溶出液と、再生液供給部４からの再生液と、置換液供給部５からの置換液と、溶出液供給部６からの吸着検体溶出液とを切り替える。ここで、第１溶出液中の順相溶離液は、イオン交換カラム３にとって、吸着した検体を溶出させない移動相である。また、溶出液供給部６からの吸着検体溶出液は、イオン交換カラム３にとって、吸着した検体を溶離させる移動相である。したがって、バルブスイッチング７は、イオン交換カラム３の移動相を、イオン交換カラム３に吸着した検体を溶出させる移動相と溶出させない移動相との間で切り替える移動相切替部として機能する。
バルブスイッチング８は、上記のように、再生液供給部４、置換液供給部５、及び溶出液供給部６の下流側、且つ、バルブスイッチング７の上流側に接続された送液経路の切替器である。また、バルブスイッチング８は、制御部１００に接続されて制御部１００の制御に応じて流出させる液体の切り替えを行なうように構成されている。したがって、バルブスイッチング８は、制御部１００の制御に従って、再生液供給部４、置換液供給部５、及び溶出液供給部６から流入する再生液、置換液、及び吸着検体溶出液のうちのいずれかをバルブスイッチング７に送り出すよう、送液経路切り替えを行なうように構成されている。
再生液供給部４は、イオン交換カラム３内のイオン交換樹脂を再生させる再生液を供給する部分であり、再生液貯蔵部４Ａと、ポンプ４Ｂとを備えている。再生液はイオン交換カラム３に応じて任意のものを用いることができる。例えば、酢酸水溶液、ギ酸水溶液、弱塩酸水溶液などを用いることができる。ここでは再生液として、酢酸水溶液を用いるとして説明する。
再生液貯蔵部４Ａには、再生液である酢酸水溶液が貯蔵されている。
また、ポンプ４Ｂは再生液貯蔵部４Ａ内の酢酸水溶液をバルブスイッチング８に送出するように形成されていて、再生液貯蔵部４Ａの下流に接続されている。さらに、ポンプ４Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。なお、ポンプ４Ｂ、及び、後述するポンプ５Ｂ，６Ｂとしては、ダブルブランジャータイプやシングルブランジャータイプ等が用いられるが、ダブルブランジャータイプは安定した流速を得る面で優れるため好ましい。
また、ポンプ４Ｂは再生液貯蔵部４Ａ内の酢酸水溶液をバルブスイッチング８に送出するように形成されていて、再生液貯蔵部４Ａの下流に接続されている。さらに、ポンプ４Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。なお、ポンプ４Ｂ、及び、後述するポンプ５Ｂ，６Ｂとしては、ダブルブランジャータイプやシングルブランジャータイプ等が用いられるが、ダブルブランジャータイプは安定した流速を得る面で優れるため好ましい。
置換液供給部５は、イオン交換カラム３内のイオン交換樹脂を再生させた後や、イオン交換カラム３に第１溶出液を通液した後に、イオン交換カラム３内に残留した再生液や順相溶離液を除去する置換液を供給するものとして形成されており、置換液貯蔵部５Ａと、ポンプ５Ｂとを備えている。置換液はイオン交換カラム３に応じて任意のものを用いることができる。例えば、脱塩水、純水、蒸留水などが挙げられ、検体として糖鎖を用いる場合には、不純物混合防止の観点から、純水、蒸留水が好ましい。ここでは置換液として、水を用いるとして説明する。
置換液貯蔵部５Ａには、置換液である水が貯蔵されている。
また、ポンプ５Ｂは置換液貯蔵部５Ａ内の水をバルブスイッチング８に送出するものであり、置換液貯蔵部５Ａの下流に接続されている。さらに、ポンプ５Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。
また、ポンプ５Ｂは置換液貯蔵部５Ａ内の水をバルブスイッチング８に送出するものであり、置換液貯蔵部５Ａの下流に接続されている。さらに、ポンプ５Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。
溶出液供給部６は、後述するようにイオン交換カラム３内に吸着された検体を溶出させる溶出液である吸着検体溶出液を供給する部分であり、溶出液貯蔵部６Ａと、ポンプ６Ｂとを備えている。吸着検体溶出液はイオン交換カラム３や検体等に応じて任意のものを用いることができる。検体が糖鎖である場合の吸着検体溶出液としては、例えば、高濃度塩溶媒を用いることができる。なお、高濃度塩溶媒は、糖鎖を溶出させることができるものであれば公知のものを任意に用いることができる。また、この高濃度塩溶媒に溶解している塩の具体例としては、酢酸アンモニウム塩、酢酸トリエチルアミン塩、酢酸ナトリウム塩、リン酸ナトリウム塩、リン酸水素ナトリウム塩、リン酸アンモニウム塩、リン酸水素アンモニウム塩等が挙げられる。さらに、高濃度塩溶媒の濃度は、通常０．００１Ｍ以上、好ましくは０．１Ｍ以上、また、通常１Ｍ以下、好ましくは０．５Ｍ以下である。本実施形態では、吸着検体溶出液として酢酸アンモニウム水溶液を用いるものとして説明する。
溶出液貯蔵部６Ａには、吸着検体溶出液である酢酸アンモニウム水溶液が貯蔵されている。
また、ポンプ６Ｂは溶出液貯蔵部６Ａ内の酢酸アンモニウム水溶液をバルブスイッチング８に送出するものであり、溶出液貯蔵部６Ａの下流に接続されている。さらに、ポンプ６Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。
また、ポンプ６Ｂは溶出液貯蔵部６Ａ内の酢酸アンモニウム水溶液をバルブスイッチング８に送出するものであり、溶出液貯蔵部６Ａの下流に接続されている。さらに、ポンプ６Ｂは制御部１００と接続され、制御部１００により稼動を制御されるようになっている。
２．分析方法
次に、上述した分析装置を用いた分析方法を説明する。なお、次に説明する前処理工程以外の各工程は、制御部１００の制御によって自動的に行なわれる。さらに、以下の説明においては各工程は順次行なうように説明するが、各工程は適宜、連続的に行なうようにしてもよい。
次に、上述した分析装置を用いた分析方法を説明する。なお、次に説明する前処理工程以外の各工程は、制御部１００の制御によって自動的に行なわれる。さらに、以下の説明においては各工程は順次行なうように説明するが、各工程は適宜、連続的に行なうようにしてもよい。
＜前処理工程＞
まず、必要に応じて検体液中の検体を標識する。本実施形態では糖タンパク質の糖鎖を検体としており、また、検出器１２，１６として蛍光検出器を用いているので、蛍光用の標識試薬で標識を行なう。用いる試薬に特に制限は無いが、例えば、２−アミノピリジン、２−アミノベンズアミド、３−アミノキノン、４−アミノ安息香酸ブチル、４−トリメチルアンモニウムアニリン、１−フェニル−３−メチル−５−ピラゾロン等の誘導体化試薬を蛍光用の標識試薬として用いることができる。
まず、必要に応じて検体液中の検体を標識する。本実施形態では糖タンパク質の糖鎖を検体としており、また、検出器１２，１６として蛍光検出器を用いているので、蛍光用の標識試薬で標識を行なう。用いる試薬に特に制限は無いが、例えば、２−アミノピリジン、２−アミノベンズアミド、３−アミノキノン、４−アミノ安息香酸ブチル、４−トリメチルアンモニウムアニリン、１−フェニル−３−メチル−５−ピラゾロン等の誘導体化試薬を蛍光用の標識試薬として用いることができる。
標識の具体的手法の一例を挙げると、標識試薬として２−アミノピリジンを用いた場合、２−アミノピリジンと酢酸との混合溶液を検体である糖鎖に対し過剰量加え、９０℃で１時間加熱する。その後、還元剤を酢酸・水溶液を糖鎖に対して過剰量加え、さらに８０℃で３０分加熱して反応させる。この際用いる還元剤はジメチルアミンボロン、シアノトリヒドロホウ酸ナトリウム等が好ましいが、特に限定しない。反応後にはフェノール／クロロホルム（１：１）混合液及び水を加え、よく攪拌後、水相をとりだして乾固し、標識糖鎖を得る。
＜ＨＰＬＣ準備工程＞
続いて、イオン交換カラム３の再生を行なう。
まず、制御部１００はバルブスイッチング７，８を切り替え、再生液供給部４とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、再生液供給部４内のポンプ４Ｂを稼動させる。これにより、再生液供給部４Ａから各イオン交換カラム３に酢酸水溶液が送られる。イオン交換カラム３に酢酸水溶液が通液すると、イオン交換カラム３は水素型に変換される。
また、制御部１００はバルブスイッチング１４を切り替え、イオン交換カラム３と排出口とを連通させる。これにより、イオン交換カラム３から流出した酢酸水溶液は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
続いて、イオン交換カラム３の再生を行なう。
まず、制御部１００はバルブスイッチング７，８を切り替え、再生液供給部４とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、再生液供給部４内のポンプ４Ｂを稼動させる。これにより、再生液供給部４Ａから各イオン交換カラム３に酢酸水溶液が送られる。イオン交換カラム３に酢酸水溶液が通液すると、イオン交換カラム３は水素型に変換される。
また、制御部１００はバルブスイッチング１４を切り替え、イオン交換カラム３と排出口とを連通させる。これにより、イオン交換カラム３から流出した酢酸水溶液は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
次に、制御部１００はバルブスイッチング８を切り替え、置換液供給部５とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、置換液供給部５内のポンプ５Ｂを稼動させる。さらに、バルブスイッチング８の切り替えに伴い、ポンプ４Ｂは停止させる。
これにより、置換液供給部５Ａから各イオン交換カラム３に水が送られる。イオン交換カラム３に水が通液すると、イオン交換カラム３内は水によって置換され、イオン交換カラム３に残留していた酢酸水溶液はイオン交換カラム３から除去される。また、イオン交換カラム３から流出した酢酸水溶液及び水は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
再生が完了したら、制御部１００はポンプ５Ｂを停止させる。
これにより、置換液供給部５Ａから各イオン交換カラム３に水が送られる。イオン交換カラム３に水が通液すると、イオン交換カラム３内は水によって置換され、イオン交換カラム３に残留していた酢酸水溶液はイオン交換カラム３から除去される。また、イオン交換カラム３から流出した酢酸水溶液及び水は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
再生が完了したら、制御部１００はポンプ５Ｂを停止させる。
＜第１分離工程＞
次に、第１分離工程において、以下のようにして検体液を順相カラム１に通液させ、順相ＨＰＬＣにより糖鎖の分離を行ない、糖鎖の分析をする。
まず、制御部１００はバルブスイッチング７を切り替えて、順相ＨＰＬＣ部１と廃液排出口とを連通させる。次いで、オートインジェクタ１０を制御して、オートインジェクタ１０から検体液を注入する。注入された検体液は順相カラム１１に流入し、検体液内の糖鎖は順相カラム１１の入り口に留まる。検出液の溶媒である水は、バルブスイッチング７を経て排出口から排出される。
次に、第１分離工程において、以下のようにして検体液を順相カラム１に通液させ、順相ＨＰＬＣにより糖鎖の分離を行ない、糖鎖の分析をする。
まず、制御部１００はバルブスイッチング７を切り替えて、順相ＨＰＬＣ部１と廃液排出口とを連通させる。次いで、オートインジェクタ１０を制御して、オートインジェクタ１０から検体液を注入する。注入された検体液は順相カラム１１に流入し、検体液内の糖鎖は順相カラム１１の入り口に留まる。検出液の溶媒である水は、バルブスイッチング７を経て排出口から排出される。
検体液の注入後、所定時間が経過したら、制御部１００は、バルブスイッチング７を制御して順相ＨＰＬＣ部１とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、グラジエントポンプ９Ｂそれぞれを稼動させ、移動相供給部９から順相カラム１１への順相溶離液の送液を開始する。また、バルブスイッチング１４を制御してイオン交換カラム３と排出口とを連通させる。
これにより、順相カラム１１の入り口に留まっていた糖鎖は、順相溶離液とともに順相カラム１１内を通る。この際、制御部１００はグラジエントポンプ９Ｂそれぞれの送液量を調整して、順相溶離液の極性を所定の勾配で変化させながら、送液を行なう。
これにより、順相カラム１１の入り口に留まっていた糖鎖は、順相溶離液とともに順相カラム１１内を通る。この際、制御部１００はグラジエントポンプ９Ｂそれぞれの送液量を調整して、順相溶離液の極性を所定の勾配で変化させながら、送液を行なう。
糖鎖は順相カラム１１内で順相ＨＰＬＣにより分離され、その極性に応じて順相溶離液とともに順相カラム１１の出口から流出し、検出器１２を通液する。ここで、順相カラム１１から流出した、順相溶離液中に糖鎖を含む液体が第１溶出液である。
第１溶出液が検出器１２を通液する際、検出器１２は糖鎖を蛍光によって検出し、これにより、順相ＨＰＬＣによる分析が行なわれる。また、検出器１２による測定値は、例えば、検出器１６による測定値と合わせて２次元分析を行ない、予め構造を決定している標品糖鎖の液体クロマトグラフィー保持時間（ＬＣ保持時間）と比較して糖鎖を特定するのに用いられる。
検出器１２を通液後、第１溶出液はバルブスイッチング７を経てイオン交換カラム３に流入することになる。
第１溶出液が検出器１２を通液する際、検出器１２は糖鎖を蛍光によって検出し、これにより、順相ＨＰＬＣによる分析が行なわれる。また、検出器１２による測定値は、例えば、検出器１６による測定値と合わせて２次元分析を行ない、予め構造を決定している標品糖鎖の液体クロマトグラフィー保持時間（ＬＣ保持時間）と比較して糖鎖を特定するのに用いられる。
検出器１２を通液後、第１溶出液はバルブスイッチング７を経てイオン交換カラム３に流入することになる。
＜検体吸着工程＞
続いて、検体吸着工程を行なうが、通常、この検体吸着工程は上記第１分離工程と連続して行なわれる。
第１分離工程で分離された糖鎖を含む第１溶出液は、上述したように、イオン交換カラム３に流入する。一般に検体は、正に帯電している場合にはカチオン交換カラムに吸着し、負に帯電している場合にはアニオン交換カラムに吸着する。本実施形態のように糖鎖を２−アミノピリジンで標識した場合は糖鎖が正に帯電しているため、イオン交換カラム３に第１溶出液が流入すると、第１溶出液中の糖鎖はカチオン交換カラムであるイオン交換カラム３に吸着する。また、イオン交換カラム３に流入した第１溶出液の順相溶離液は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
続いて、検体吸着工程を行なうが、通常、この検体吸着工程は上記第１分離工程と連続して行なわれる。
第１分離工程で分離された糖鎖を含む第１溶出液は、上述したように、イオン交換カラム３に流入する。一般に検体は、正に帯電している場合にはカチオン交換カラムに吸着し、負に帯電している場合にはアニオン交換カラムに吸着する。本実施形態のように糖鎖を２−アミノピリジンで標識した場合は糖鎖が正に帯電しているため、イオン交換カラム３に第１溶出液が流入すると、第１溶出液中の糖鎖はカチオン交換カラムであるイオン交換カラム３に吸着する。また、イオン交換カラム３に流入した第１溶出液の順相溶離液は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
＜イオン交換カラム洗浄工程＞
次に、制御部１００はバルブスイッチング７，８を切り替え、置換液供給部５とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、ポンプ５Ｂを稼動させる。また、バルブスイッチング７の切り替えに伴い、制御部１００はグラジエントポンプ９Ｂを停止させる。
これにより、置換液供給部５Ａから各イオン交換カラム３に水が送られる。イオン交換カラム３に水が通液すると、イオン交換カラム３内は水によって置換され、イオン交換カラム３に残留していた順相溶離液はイオン交換カラム３から除去される。一方、糖鎖は、イオン交換カラム３に吸着した状態を維持する。
また、イオン交換カラム３から流出した酢酸水溶液及び水は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
次に、制御部１００はバルブスイッチング７，８を切り替え、置換液供給部５とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、ポンプ５Ｂを稼動させる。また、バルブスイッチング７の切り替えに伴い、制御部１００はグラジエントポンプ９Ｂを停止させる。
これにより、置換液供給部５Ａから各イオン交換カラム３に水が送られる。イオン交換カラム３に水が通液すると、イオン交換カラム３内は水によって置換され、イオン交換カラム３に残留していた順相溶離液はイオン交換カラム３から除去される。一方、糖鎖は、イオン交換カラム３に吸着した状態を維持する。
また、イオン交換カラム３から流出した酢酸水溶液及び水は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出される。
＜第２分離工程＞
次に、第２分離工程において、以下のようにしてイオン交換カラム３から糖鎖を溶出させ、得られた第２溶出液を逆相カラム１５に通液させ、逆相ＨＰＬＣにより糖鎖の分離を行ない、糖鎖の分析をする。
次に、第２分離工程において、以下のようにしてイオン交換カラム３から糖鎖を溶出させ、得られた第２溶出液を逆相カラム１５に通液させ、逆相ＨＰＬＣにより糖鎖の分離を行ない、糖鎖の分析をする。
まず、制御部１００はバルブスイッチング８を切り替えて溶出液供給部６とイオン交換カラム３とを連通させるとともに、バルブスイッチング１４を切り替えてイオン交換カラム３と逆相カラム１５とを連通させる。また、バルブスイッチング７の切り替えに伴い、ポンプ５Ｂを停止させる。次いで、制御部１００は、ポンプ６Ｂを制御して溶出液貯蔵部６Ａ内の酢酸アンモニウム水溶液をイオン交換カラム３に送出する。
これにより、イオン交換カラム３に吸着していた糖鎖は酢酸アンモニウム水溶液によって溶出される。この際、イオン交換カラム３から溶出した、酢酸アンモニウム水溶液中に糖鎖を含む液体が第２溶出液である。第２溶出液は、バルブスイッチング１４を経て逆相カラム１５に流入し、第２溶出液内の糖鎖は逆相カラム１５の入り口に留まり、溶媒である酢酸アンモニウム水溶液は廃液排出口から排出される。
次いで、制御部１００はバルブスイッチング１４を切り替えて、移動相供給部１３と逆相カラム１５とを連通させるとともに、グラジエントポンプ１３Ｂそれぞれを稼動させ、移動相供給部１３から逆相カラム１５への逆相溶離液の送液を開始する。また、バルブスイッチング１４の切り替えに伴い、ポンプ６Ｂを停止させる。
これにより、逆相カラム１５の入り口に留まっていた糖鎖は、逆相溶離液とともに逆相カラム１５内を通る。この際、制御部１００はグラジエントポンプ１３Ｂそれぞれの送液量を調整して、逆相溶離液の極性を所定の勾配で変化させながら、送液を行なう。
これにより、逆相カラム１５の入り口に留まっていた糖鎖は、逆相溶離液とともに逆相カラム１５内を通る。この際、制御部１００はグラジエントポンプ１３Ｂそれぞれの送液量を調整して、逆相溶離液の極性を所定の勾配で変化させながら、送液を行なう。
糖鎖は逆相カラム１５内で逆相ＨＰＬＣにより分離され、その極性に応じて逆相溶離液とともに逆相カラム１５の出口から流出し、検出器１６を通液する。このとき、逆相カラム１５から流出した、逆相溶離液中に糖鎖を含む液体を第３溶出液という。
第３溶出液が検出器１６を通液する際、検出器１６は糖鎖を蛍光によって検出し、これにより、逆相ＨＰＬＣによる分析が行なわれる。また、検出器１６による測定値は、第１分離工程で説明したように、検出器１２による測定値と合わせて２次元分析を行ない、予め構造を決定している標品糖鎖の液体クロマトグラフィー保持時間（ＬＣ保持時間）と比較して糖鎖を特定するのに用いられる。
なお、検出器１６を通液した第３溶出液は、廃液排出口から排出される。
第３溶出液が検出器１６を通液する際、検出器１６は糖鎖を蛍光によって検出し、これにより、逆相ＨＰＬＣによる分析が行なわれる。また、検出器１６による測定値は、第１分離工程で説明したように、検出器１２による測定値と合わせて２次元分析を行ない、予め構造を決定している標品糖鎖の液体クロマトグラフィー保持時間（ＬＣ保持時間）と比較して糖鎖を特定するのに用いられる。
なお、検出器１６を通液した第３溶出液は、廃液排出口から排出される。
以上、説明したように、本発明の検体分析方法及び液体クロマトグラフィー装置によれば、糖鎖その他の検体を短時間で効率的に分析することができる。即ち、検体を順相ＨＰＬＣ及び逆相ＨＰＬＣを用いて分離しようとすると、従来は順相ＨＰＬＣを行なった後で一度検体を第１溶出液から取り出してから逆相ＨＰＬＣを行なっていたため、分析操作に多くの手間を要していた。ところが、本発明によれば、検体を液体の流れの中で操作するため、短時間で簡単に分離をすることができる。
また、順相ＨＰＬＣ部１と逆相ＨＰＬＣ部２とをイオン交換カラム３を介してオンラインで接続したため、制御部１００を用いて分析に要する工程を自動化することができ、省力化、高速化が可能となる。
＜その他＞
以上、本発明の一実施形態としての糖鎖分離方法並びに検体分析方法、糖鎖分析方法、及び液体クロマトグラフィー装置を説明したが、本発明は上記実施形態に限定されず、任意に変形して実施することができる。
例えば、上記順相ＨＰＬＣ部１と逆相ＨＰＬＣ部２との順を逆にしてもよい。即ち、検体が、逆相ＨＰＬＣ部２、イオン交換カラム３、順相ＨＰＬＣ部１という順に流れるように構成してもよい。即ち、まず検体液を逆相ＨＰＬＣ部２に通液して逆相ＨＰＬＣで検体を分離後、逆相ＨＰＬＣ部２で分離された検体を含む第１溶出液をイオン交換カラム３に通液させて吸着させ、イオン交換カラム３から検体を溶出させ、得られた検体を含む第２溶出液を順相ＨＰＬＣ部１に通液して順相ＨＰＬＣで分離させるようにしてもよい。これによっても、上記実施形態と同様の効果を得ることができる。
以上、本発明の一実施形態としての糖鎖分離方法並びに検体分析方法、糖鎖分析方法、及び液体クロマトグラフィー装置を説明したが、本発明は上記実施形態に限定されず、任意に変形して実施することができる。
例えば、上記順相ＨＰＬＣ部１と逆相ＨＰＬＣ部２との順を逆にしてもよい。即ち、検体が、逆相ＨＰＬＣ部２、イオン交換カラム３、順相ＨＰＬＣ部１という順に流れるように構成してもよい。即ち、まず検体液を逆相ＨＰＬＣ部２に通液して逆相ＨＰＬＣで検体を分離後、逆相ＨＰＬＣ部２で分離された検体を含む第１溶出液をイオン交換カラム３に通液させて吸着させ、イオン交換カラム３から検体を溶出させ、得られた検体を含む第２溶出液を順相ＨＰＬＣ部１に通液して順相ＨＰＬＣで分離させるようにしてもよい。これによっても、上記実施形態と同様の効果を得ることができる。
また、上記液体クロマトグラフィー装置及び検体分析方法によれば、糖鎖以外の検体を分離し、分析することも可能である。分析の対象となる検体は、順相及び逆相ＨＰＬＣにより分離でき、帯電性を有する単体及び化合物が該当する。検体自身がイオン性のものの例としては、シアル酸、アミノ糖などを含む糖鎖や、たんぱく質、ペプチド、アミノ酸等が挙げられる。
さらに、検体それ自体は帯電性を有していなくとも、上記実施形態の標識試薬のように、帯電しうる化合物と反応や相互作用して帯電性を有したものも検体として用いることができる。ここで、正に帯電しうる化合物としては、例えば２−アミノピリジン、２−アミノベンズアミド、３−アミノキノン、４−アミノ安息香酸ブチル、４−トリメチルアンモニウムアニリン、１−フェニル−３−メチル−５−ピラゾロンなどが挙げられる。また、負に帯電しうる化合物としては、例えば８−アミノナフタレン−１，３，６−トリスルホン酸、８−アミノピレン−１，３，６−トリスルフォン酸などが挙げられる。なかでも、検体として糖鎖を分析対象とする場合には、２−アミノピリジン、２−アミノベンズアミドにより誘導化された糖鎖に用いるのが好ましい。
また、バルブスイッチング７，８，１４は、それぞれ送液経路を振り分ける目的で、複数組み合わせて使用することもできる（図３のバルブスイッチング７，１７，１８参照）。
また、上記実施形態では分析対象である糖鎖を、本発明の糖鎖分離方法により取得したものを用いるとして説明したが、酵素処理法など、別の方法で糖鎖を取得するようにしてもよい。ただし、安全性、省力、高速等の観点より、本発明の糖鎖分離方法を用いて糖鎖を得るようにすることが好ましい。
また、上記実施形態では分析対象である糖鎖を、本発明の糖鎖分離方法により取得したものを用いるとして説明したが、酵素処理法など、別の方法で糖鎖を取得するようにしてもよい。ただし、安全性、省力、高速等の観点より、本発明の糖鎖分離方法を用いて糖鎖を得るようにすることが好ましい。
また、上述した糖鎖分析方法を行なうため、オートインジェクタ１０の上流に、「Ｉ．糖たんぱく質の糖鎖の分離」に用いる糖鎖保持カラムを接続してもよい。その場合に用いる糖鎖分析装置の要部構成を、図２にブロック図として示す。なお、図２において図１と同じ符号で示す部分は、同様のものを示す。
図２の構成では、オートインジェクタ１０の上流に、糖鎖を保持し得る充填剤を充填した糖鎖保持カラム２０と、糖鎖保持カラム２０とオートインジェクタ１０との間に設けられた標識部２１とが接続されているほかは、図１を用いて説明した分析装置と同様の構成となっている。
糖鎖保持カラム２０は、上記「Ｉ．糖たんぱく質の糖鎖の分離」で説明した糖鎖の分離を行なうためのカラムであり、下流側に図示しない切り替え弁付の排出口を有している。したがって、糖鎖保持カラム２０から溶出する糖鎖を含んだ検体液は標識部２１を経てオートインジェクタ１０に流入し、糖鎖保持カラム２０から流出する検体液以外の液体は図示しない排出口から排出されるように構成されている。なおここでは、検体液及び検体液以外の液体の切り替えは、上記切り替え弁で行なうものとする。
また、標識部２１は検体液中の検体の標識を行なう部分である。ここでは、蛍光用の標識試薬を検体液と混合する部分である。
また、標識部２１は検体液中の検体の標識を行なう部分である。ここでは、蛍光用の標識試薬を検体液と混合する部分である。
このような糖鎖分析装置を用いれば、糖鎖の分離及び分析を短時間で効率的に行なうことが可能となる。
さらに、糖鎖保持カラム２０の上流に、糖鎖保持工程においてヒドラジン分解液を糖鎖保持カラム２０に導入するヒドラジン分解液導入部、洗浄工程において洗浄溶媒を糖鎖保持カラム２０に導入する洗浄溶媒導入部、アセチル化工程においてアセチル化反応剤を糖鎖保持カラム２０に導入するアセチル化反応剤導入部、反応剤洗浄工程において脱塩剤を糖鎖保持カラム２０に導入する脱塩剤導入部、糖鎖保持カラム２０から溶出させる溶出溶媒を導入する溶出溶液導入部、アセチル化溶出工程において糖鎖を溶出させうるアセチル化反応剤を糖鎖保持カラム２０に導入するアセチル化溶出液導入部などを設け、「Ｉ．糖たんぱく質の糖鎖の分離」で説明した各工程をそれぞれ自動化してもよい。
さらに、糖鎖保持カラム２０の上流に、糖鎖保持工程においてヒドラジン分解液を糖鎖保持カラム２０に導入するヒドラジン分解液導入部、洗浄工程において洗浄溶媒を糖鎖保持カラム２０に導入する洗浄溶媒導入部、アセチル化工程においてアセチル化反応剤を糖鎖保持カラム２０に導入するアセチル化反応剤導入部、反応剤洗浄工程において脱塩剤を糖鎖保持カラム２０に導入する脱塩剤導入部、糖鎖保持カラム２０から溶出させる溶出溶媒を導入する溶出溶液導入部、アセチル化溶出工程において糖鎖を溶出させうるアセチル化反応剤を糖鎖保持カラム２０に導入するアセチル化溶出液導入部などを設け、「Ｉ．糖たんぱく質の糖鎖の分離」で説明した各工程をそれぞれ自動化してもよい。
次に、本発明を実施例により更に詳細に説明するが、本発明はその要旨を超えない限り以下の実施例に限定されるものではない。
Ｉ．糖タンパク質からの糖鎖の分離
［実施例１］
分解工程として、試料であるマウスの腎臓アセトン沈殿物２ｍｇに、ヒドラジン２００μＬを加え、９５℃、１０時間加熱し、糖タンパク質のヒドラジン分解液とした。
その後、糖鎖保持工程として、洗浄溶媒として５０ｍＭ酢酸アンモニウム水溶液（以下α液）を２ｍＬ添加してよく混合し、α液と混合したヒドラジン分解液をグラファイトカーボンカラム（ＧＬサイエンス製 ３００ｍｇ）に通液した。
さらに洗浄工程として、洗浄溶媒であるα液１０ｍＬをカラムに通液して、ヒドラジンをカラムから完全に溶出させた。
［実施例１］
分解工程として、試料であるマウスの腎臓アセトン沈殿物２ｍｇに、ヒドラジン２００μＬを加え、９５℃、１０時間加熱し、糖タンパク質のヒドラジン分解液とした。
その後、糖鎖保持工程として、洗浄溶媒として５０ｍＭ酢酸アンモニウム水溶液（以下α液）を２ｍＬ添加してよく混合し、α液と混合したヒドラジン分解液をグラファイトカーボンカラム（ＧＬサイエンス製 ３００ｍｇ）に通液した。
さらに洗浄工程として、洗浄溶媒であるα液１０ｍＬをカラムに通液して、ヒドラジンをカラムから完全に溶出させた。
次に、アセチル化工程として、アセチル化反応剤として無水酢酸を１体積％含む０．５Ｍトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン緩衝液（ｐＨ＝７）２０ｍＬをカラムに通液した。
その後、反応剤洗浄工程として、さらに洗浄溶媒であるα液５ｍＬをカラムに通液し、反応残液を溶出させた。
その後、反応剤洗浄工程として、さらに洗浄溶媒であるα液５ｍＬをカラムに通液し、反応残液を溶出させた。
続いて、アセトニトリル：α液（体積比６：４）混合液に１体積％の無水酢酸を加えた溶出溶液５ｍＬをカラムに通液し、未反応糖鎖を完全にアセチル化するとともに糖鎖をカラムから溶出させた。
次に、エバポレータで溶媒を留去したあと、２−アミノピリジン５５２ｍｇを酢酸２００μＬに溶解した溶液を２０μＬ加え、ヒートブロックにて９０℃６０分加熱した。次に、ジメチルアミンボラン２００ｍｇを酢酸８０μＬと水５０μＬとの混合液に溶解させた溶液７０μＬを加えて８０℃、３５分間加熱した。反応後に水１８０μＬ、水飽和フェノール／クロロホルム（重量比１／１）溶液９０μＬを加え、よく混合後下層を取り除いた。この操作を計３回繰り返した後、クロロホルムを９０μＬ加えて同様によく混合して下層を除いた。なお、この操作をピリジルアミノ化という。
上層は凍結乾燥後、水２５μＬ、０．５Ｍ酢酸アンモニウム水溶液（ｐＨ＝５）３μＬ、ノイラミニダーゼ水溶液２μＬ（ナカライ製）を加えて３７℃１時間反応させ、シアル酸を糖鎖より遊離させた。なお、この操作をシアリダーゼ処理という。
次に、カートリッジフィルターにてろ過した後、ろ液を順相液体クロマトグラフィーで１０フラクションに分取し、それぞれのフラクションを逆相クロマトグラフィーにて分析した。順相および逆相ＨＰＬＣの条件をそれぞれ表１，２に示す。なお、表１，２のＡ液及びＢ液は、それぞれ移動相を構成する液体であり、これらＡ液とＢ液とを混合して移動相の極性を調整するようになっていて、上記実施形態の移動相貯蔵部９Ａ，１３Ａに貯蔵された順相溶離液及び逆相溶離液に該当する。また、表１，２において、「Ｂ：ａ％（Ｔ1分）→Ｂ：ｂ％（Ｔ2分）」という記載は、Ｂ溶液の濃度を、（Ｔ2−Ｔ1）分間で、ａ％からｂ％まで変化させたことを意味する。ただし、Ｔ1，Ｔ2，ａ，ｂはそれぞれ実数を表わす。また、表１，２において％は体積を基準とした百分率を表わす。
１０検体を同時に実施したところヒドラジン分解後から糖鎖のアセチル化（溶出工程終了）までに要した時間は３０分だった。また本法による糖鎖のアセチル化率を表３に示す。
［実施例２］
実施例１と同様にして、分離工程及び洗浄工程を行なった。
続いて、アセチル化溶出工程として、アセトニトリル：β液（重量比６：４）混合液に２重量%の無水酢酸を加えた溶出溶液５ｍＬをカラムに通液し、糖鎖を完全にアセチル化するとともに糖鎖をカラムから溶出させた。ここでβ液とは、５０ｍＭの酢酸トリエチルアミン塩水溶液をいう。
実施例１と同様にして、分離工程及び洗浄工程を行なった。
続いて、アセチル化溶出工程として、アセトニトリル：β液（重量比６：４）混合液に２重量%の無水酢酸を加えた溶出溶液５ｍＬをカラムに通液し、糖鎖を完全にアセチル化するとともに糖鎖をカラムから溶出させた。ここでβ液とは、５０ｍＭの酢酸トリエチルアミン塩水溶液をいう。
次に、エバポレータで溶媒を留去した後、実施例１と同様にして、ピリジルアミノ化、シアリダーゼ処理、順相及び逆相ＨＰＬＣによる分析を行ない、糖鎖のアセチル化の反応率を測定した。
１０検体を同時に実施したところヒドラジン分解後から糖鎖のアセチル化（溶出工程終了）までに要した時間は２０分だった。また本法による糖鎖のアセチル化率を表３に示す。
１０検体を同時に実施したところヒドラジン分解後から糖鎖のアセチル化（溶出工程終了）までに要した時間は２０分だった。また本法による糖鎖のアセチル化率を表３に示す。
［比較例１］
実施例１の分解工程と同様にして、ヒドラジン分解液を調製した。
次いで、ヒドラジン分解液から真空ポンプでヒドラジンを留去し、さらに共沸効果の高いトルエンを加えてヒドラジンを完全に留去させた。
次に、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を２００μＬ、無水酢酸８μＬを加えて氷上５分間反応し、さらに飽和炭酸水素ナトリウム水溶液２００μＬ、無水酢酸８μＬを加えて氷上で３０分間反応させた。
実施例１の分解工程と同様にして、ヒドラジン分解液を調製した。
次いで、ヒドラジン分解液から真空ポンプでヒドラジンを留去し、さらに共沸効果の高いトルエンを加えてヒドラジンを完全に留去させた。
次に、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液を２００μＬ、無水酢酸８μＬを加えて氷上５分間反応し、さらに飽和炭酸水素ナトリウム水溶液２００μＬ、無水酢酸８μＬを加えて氷上で３０分間反応させた。
次にイオン交換樹脂（ダウエックスＸ８：プロトン活性化）を約２ｇ加え、よく撹はん後、グラスウールを詰めたパスツールピペットでろ過した。ろ液はエバポレータで水を留去した。実施例１と同様の方法でピリジルアミノ化を行ない、且つ、順相液体クロマトグラフィー、逆相液体クロマトグラフィーで分析した。
１０検体につき、ヒドラジン分解後からアセチル化糖鎖を得るまでに要した時間は１０時間だった。
１０検体につき、ヒドラジン分解後からアセチル化糖鎖を得るまでに要した時間は１０時間だった。
また、比較例１の反応率を１００％としたときの実施例１，２のアセチル化の反応率を、表３に示す。表３によると、実施例１，２では比較例とほぼ同様の反応率でアセチル化糖鎖を極めて短時間で分離・取得することが出来ることが確認された。
II．糖タンパク質糖鎖の分析
本実施例で用いた分析装置の概要を、図３に示す。図３に示す分析装置では、イオン交換カラム３を５本ずつのグループ２つを用い、合計１０個のイオン交換カラムを用いた。また、イオン交換カラム３の上記５本ずつのグループそれぞれに対応して、上流側にバルブスイッチング１７を接続し、下流側にバルブスイッチング１８を接続した。バルブスイッチング１７，１８はそれぞれ制御部１００により制御されている。以上の構成のほかは、図３に示す分析装置は図１を用いて上述した分析装置と同様の構成となっている。なお、図３において図１と同様の符号を用いて示す部分は、同様のものを表わす。
本実施例で用いた分析装置の概要を、図３に示す。図３に示す分析装置では、イオン交換カラム３を５本ずつのグループ２つを用い、合計１０個のイオン交換カラムを用いた。また、イオン交換カラム３の上記５本ずつのグループそれぞれに対応して、上流側にバルブスイッチング１７を接続し、下流側にバルブスイッチング１８を接続した。バルブスイッチング１７，１８はそれぞれ制御部１００により制御されている。以上の構成のほかは、図３に示す分析装置は図１を用いて上述した分析装置と同様の構成となっている。なお、図３において図１と同様の符号を用いて示す部分は、同様のものを表わす。
即ち、本実施例で用いた分析装置は、順相ＨＰＬＣ部１（グラジエントポンプ９Ｂ、カラ１１・検出器１２）の下流に、バルブスイッチング７（Ｇｕｉｌｓｏｎ製 Ｖａｌｖｅｍａｔｅ）を接続し、さらにさらにバルブスイッチング１７に接続して、各バルブスイッチング１７にイオン交換カラム３（昭和電工製Ｓｈｏｄｅｘ ＩＥＣ ＳＰ−８２５ ８ｍｍＩＤ×７５ｍｍ）を５本ずつ並列に接続した。それぞれのイオン交換カラム３は再びバルブスイッチング１８に集約し、さらに逆相ＨＰＬＣ部２内のバルブスイッチング１４に集約させて、逆相カラム１５に導いた。ただし、再生液である酢酸水溶液の濃度は０．５Ｍ、吸着検体溶出液である酢酸アンモニウム水溶液の濃度は０．５Ｍのものを用いた。
まず、バルブスイッチング７，８を介して、ポンプ４Ｂにより、再生液貯蔵部４Ａ中の０．５Ｍ酢酸水溶液を全てのイオン交換カラム３に５ｍＬ（１ｍＬ／分×５分）通液して、イオン交換カラム３を水素型に変換した。また、バルブスイッチング１４，１８を切り替え、イオン交換カラム３を通液した液体は、バルブスイッチング１４を経て排出口から排出されるようにした。
その後、バルブスイッチング８を切り替えて、ポンプ５Ｂにより、置換液貯蔵部５Ａ中の水を５ｍＬ（１ｍＬ／分×５分）通液してカラム内の酢酸溶液を水に置換した。
その後、バルブスイッチング８を切り替えて、ポンプ５Ｂにより、置換液貯蔵部５Ａ中の水を５ｍＬ（１ｍＬ／分×５分）通液してカラム内の酢酸溶液を水に置換した。
次に、第１分離工程として、オートインジェクタ１０から検体液を順相カラム１１に注入し、検体を上記表１に示す条件によって順相ＨＰＬＣで分離し、検出器１２で検出した。それとともに、糖鎖吸着工程として、予め設定した時間によってバルブスイッチング７を切り替えて、順相ＨＰＬＣ部１から送出された第１溶出液を時間ごとに分けて１０本のイオン交換カラム３それぞれに通液させた。以下適宜、１０本のイオン交換カラム３について、第１溶出液を通液させた順に、１番目のイオン交換カラム、２番目のイオン交換カラム、・・・、１０番目のイオン交換カラムと呼ぶこととする。
その後、バルブスイッチング７，８を切り替えて、置換液供給部５からすべてのイオン交換カラム３に水を１ｍＬ／ｍｉｎの流速で５分間通液し、イオン交換カラム３内の順相溶離液を完全に水に置換した。
次に、第２分離工程として、バルブスイッチング８，１８，１４の切替えにより、１番目のイオン交換カラム３と逆相カラム１５とを接続した。また同時に、溶出液供給部６から０．５Ｍ酢酸アンモニウム水溶液を１番目のイオン交換カラム３に５分間通液した。イオン交換カラム３に吸着していた糖鎖は、この段階で酢酸アンモニウム水溶液によって溶出され、第２溶出液として逆相カラム１５に導かれた。続いてバルブスイッチング１４の切り替えにより逆相用グラジエントポンプ１３と逆相カラム１５を接続し、逆相用溶離液を逆相カラム１５に送液して、検体を分離した。
同様にして、２番目〜１０番目のイオン交換カラムについても、それぞれ逆相ＨＰＬＣによる分離を行なった。
次に、第２分離工程として、バルブスイッチング８，１８，１４の切替えにより、１番目のイオン交換カラム３と逆相カラム１５とを接続した。また同時に、溶出液供給部６から０．５Ｍ酢酸アンモニウム水溶液を１番目のイオン交換カラム３に５分間通液した。イオン交換カラム３に吸着していた糖鎖は、この段階で酢酸アンモニウム水溶液によって溶出され、第２溶出液として逆相カラム１５に導かれた。続いてバルブスイッチング１４の切り替えにより逆相用グラジエントポンプ１３と逆相カラム１５を接続し、逆相用溶離液を逆相カラム１５に送液して、検体を分離した。
同様にして、２番目〜１０番目のイオン交換カラムについても、それぞれ逆相ＨＰＬＣによる分離を行なった。
測定試料として、糖鎖であるピリジルアミノ化グルコースオリゴマー（タカラ製）を用いた結果、図４に示すように、順相ＨＰＬＣにより１０本のイオン交換カラム３それぞれに分取したグルコース鎖長６〜１５の各糖鎖は、逆相ＨＰＬＣで単一成分となって検出されることを確認した。なお、図４において、順相ＨＰＬＣの各ピークに付した数字は、糖鎖のグルコース鎖長を表わす。
また、ピーク面積（回収率）は９９%であった。
以上から、本発明の検体分析方法を用いれば、順相及び逆相ＨＰＬＣを用いて検体の分析を確実に行なえることが確認された。
また、ピーク面積（回収率）は９９%であった。
以上から、本発明の検体分析方法を用いれば、順相及び逆相ＨＰＬＣを用いて検体の分析を確実に行なえることが確認された。
本発明を用いることにより、順相液体クロマトグラフィーおよび逆相液体クロマトグラフィーを用いた２次元分析の省力化・高速化が見込まれ、糖タンパク質糖鎖の解析診断、癌、リュウマチ等の診断、バイオ医薬の品質管理、検査薬の探索等の分野において用いられる。
１ 順相ＨＰＬＣ部
２ 逆相ＨＰＬＣ部
３ イオン交換カラム
４ 再生液供給部
４Ａ 再生液貯蔵部
４Ｂ，５Ｂ，６Ｂ ポンプ
５ 置換液供給部
５Ａ 置換液貯蔵部
６ 溶出液供給部
６Ａ 溶出液貯蔵部
７ バルブスイッチング（流体切替部）
８，１４，１７，１８ バルブスイッチング
９，１３ 移動相供給部
９Ａ，１３Ａ 移動相貯蔵部
９Ｂ，１３Ｂ グラジエントポンプ
１０ オートインジェクタ
１１ 順相カラム
１２，１６ 検出器
１５ 逆相カラム
２０ 糖鎖保持カラム
２１ 標識部
１００ 制御部
２ 逆相ＨＰＬＣ部
３ イオン交換カラム
４ 再生液供給部
４Ａ 再生液貯蔵部
４Ｂ，５Ｂ，６Ｂ ポンプ
５ 置換液供給部
５Ａ 置換液貯蔵部
６ 溶出液供給部
６Ａ 溶出液貯蔵部
７ バルブスイッチング（流体切替部）
８，１４，１７，１８ バルブスイッチング
９，１３ 移動相供給部
９Ａ，１３Ａ 移動相貯蔵部
９Ｂ，１３Ｂ グラジエントポンプ
１０ オートインジェクタ
１１ 順相カラム
１２，１６ 検出器
１５ 逆相カラム
２０ 糖鎖保持カラム
２１ 標識部
１００ 制御部
Claims (11)
- 糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、
糖鎖を保持し得る耐アルカリ性の充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、
前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程とを備えた
ことを特徴とする、糖鎖分離方法。 - 糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、
糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、
前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程と、
前記カラムに、アセチル化反応剤を通液するアセチル化工程と、
前記カラムに、アセチル化反応剤を溶出させる脱塩剤を通液する反応剤洗浄工程とを備えた
ことを特徴とする、糖鎖分離方法。 - 糖タンパク質のヒドラジン分解液から糖鎖を分離する方法であって、
糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに、糖タンパク質のヒドラジン分解液を通液する糖鎖保持工程と、
前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程と、
前記カラムに、糖鎖を溶出させうるアセチル化反応剤を通液するアセチル化溶出工程とを備えた
ことを特徴とする、糖鎖分離方法。 - 前記充填剤が、耐アルカリ性である
ことを特徴とする、請求項２又は請求項３に記載の糖鎖分離方法。 - 検体を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの一方により分離する第１分離工程と、
該第１分離工程において分離された検体を含む第１溶出液をイオン交換カラムに通液させて検体を吸着させる検体吸着工程と、
前記イオン交換カラムから検体を溶出させ、得られた検体を含む第２溶出液を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの他方により分離する第２分離工程とを備えた
ことを特徴とする、検体分析方法。 - 前記イオン交換カラムがカチオン交換カラムである
ことを特徴とする、請求項５記載の検体分析方法。 - 前記検体が、糖タンパク質の糖鎖である
ことを特徴とする請求項５又は請求項６に記載の検体分析方法。 - 順相液体クロマトグラフィーによる分離を行なう順相液体クロマトグラフィー部と、
逆相液体クロマトグラフィーによる分離を行なう逆相液体クロマトグラフィー部と、
イオン交換カラムとを備え、
該イオン交換カラムは、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの一方から流出した第１溶出液が該イオン交換カラムに流入し、該イオン交換カラムから流出した第２溶出液が該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの他方に流入するよう、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部の間に接続される
ことを特徴とする、液体クロマトグラフィー装置。 - 該イオン交換カラムの移動相を、該イオン交換カラムに吸着した検体を溶出させる移動相と溶出させない移動相との間で切り替える移動相切替部を備える
ことを特徴とする、請求項８記載の液体クロマトグラフィー装置。 - 糖タンパク質をヒドラジンにより分解して糖タンパク質のヒドラジン分解液を調製する分解工程と、
該分解工程で調製した前記ヒドラジン分解液を、糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムに通液する糖鎖保持工程と、
前記カラムに、ヒドラジンを溶出させる洗浄溶媒を通液する洗浄工程と、
前記カラムに、アセチル化反応剤を通液するアセチル化工程と、
前記カラムに、前記アセチル化反応剤を溶出させる脱塩剤を通液する反応剤洗浄工程と、
前記カラムから糖鎖を溶出させ、得られた糖鎖を含む検体液を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの一方により分離する第１分離工程と、
該第１分離工程において分離された糖鎖を含む第１溶出液をイオン交換カラムに通液させて糖鎖を吸着させる糖鎖吸着工程と、
前記イオン交換カラムから糖鎖を溶出させ、得られた糖鎖を含む第２溶出液を順相液体クロマトグラフィー及び逆相液体クロマトグラフィーのうちの他方により分離する第２分離工程とを備えた
ことを特徴とする、糖鎖分析方法。 - 請求項１０記載の糖鎖分析方法に用いる糖鎖分析装置であって、
糖鎖を保持し得る充填剤を充填したカラムと、
順相液体クロマトグラフィーにより糖鎖の分離を行なう順相液体クロマトグラフィー部と、
逆相液体クロマトグラフィーにより糖鎖の分離を行なう逆相液体クロマトグラフィー部と、
イオン交換カラムとを備え、
該カラムは、該カラムから流出した検出液が該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部の一方に流入するように接続されるとともに、
該イオン交換カラムは、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの一方から流出した第１溶出液が該イオン交換カラムに流入し、該イオン交換カラムから流出した第２溶出液が該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部のうちの他方に流入するよう、該順相液体クロマトグラフィー部及び該逆相液体クロマトグラフィー部の間に接続される
ことを特徴とする、糖鎖分析装置。
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