JP2003510078A - Macacafascicularis由来のP−糖タンパク質およびその使用 - Google Patents
Macacafascicularis由来のP−糖タンパク質およびその使用Info
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Abstract
Description
caca fascicularis)のP−糖タンパク質に関する。
知)は、ABCトランスポータースーパーファミリーのメンバーであり、そして
ヒトの腸、肝臓および他の組織で発現される。この酵素は、細胞膜を渡って低分
子を輸出する流出ポンプとしてはたらく。数年間、高レベルのPGP発現が癌化
学療法に対する腫瘍耐性に関する機構であることが知られている。PGPの腸発
現は、このトランスポーターの基質である薬物分子の経口バイオアベイラビリテ
ィに影響を及ぼし得る。PGPは、流出薬物を効率的に腸管腔へ戻し得、このよ
うにして循環へ侵入する薬物の量を減少する。
リティを示す理由のより良い理解を提供し得る。PGPとの相互作用は、極性が
与えられた細胞系における薬物輸送の直接的アッセイまたは薬物刺激ATPas
e活性および蛍光基質輸送の阻害のような間接的アッセイのいずれかを用いて研
究され得る。
チド(好ましくは、これは、ヒトPGPに密接に関連する)に関する必要性があ
る。
質をコードする核酸が、ここで、同定され、単離され、クローン化され、そして
配列決定された。このPGPは、ヒトPGPと非常に関連している(高い割合の
同一性を有する)。本発明は、単離された核酸分子、これらの分子の特有のフラ
グメント、上記のものを含む発現ベクター、およびこれらの分子を用いてトラン
スフェクトされた宿主細胞を提供する。本発明はまた、単離されたポリペプチド
ならびに薬物輸送を減少する上記の核酸およびポリペプチドのインヒビターを提
供する。このPGPの核酸およびポリペプチドは、薬物のバイオアベイラビリテ
ィを評価するためのアッセイ、ならびにこの薬物の最適化または発見のためのア
ッセイにおいて有用である。さらに、上記のものは、PGP活性によって特徴付
けられる状態の診断または処置において使用され得、そしてPGP活性を増加ま
たは減少するための治療的に有用である方法に使用され得る。
配列をコードする核酸分子、(b)(a)の対立遺伝子改変体、および(c)(
a)または(b)の相補体からなる群より選択される単離された核酸分子が提供
される。特定の実施形態において、単離された核酸分子は、配列番号2または配
列番号4をコードする。他の実施形態において、単離された核酸分子は、配列番
号2または配列番号4のヌクレオチド配列を含む。
78、86、89、90、91、92、95、97、99、102、103、1
04、185、324、363、518、635、650、656、659、6
77、730、738、742、745、761、765、835、851、9
21、967、1003、1027、1038、1048、1103、1128
、1168および1277ならびに配列番号4のアミノ酸93、94および95
からなる群より選択されるカニクイザルP−糖タンパク質の少なくとも1つのア
ミノ酸を含む、単離されたP−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラグメン
ト(ここで、P−糖タンパク質は、カニクイザルP−糖タンパク質の少なくとも
1つのアミノ酸以外はヒトP−糖タンパク質に同一である)が提供される。特定
の実施形態において、ヒトP−糖タンパク質は、配列番号5および配列番号6の
群から選択される。
13、17、19、20、21、26、30、36、38、48、52、56、
64、74、78、84、85、86、87、88、89、90、91、92、
93、94、95、96、98、100、101、102、103、104、1
05、106、110、113、145、190、197、210、231、3
19、324、327、345、363、395、451、455、456、4
68、473、494、518、530、631、641、642、648、6
50、655、656、664、665、672、673、674、675、6
83、687、689、691、692、694、701、705、715、7
29、730、734、742、743、745、754、757、765、8
35、912、918、921、940、941、944、966、967、9
68、970、972、981、1008、1015、1023、1024、1
048、1093、1096、1103、1128、1142、1146、11
47、1156、1160、1163、1166、1250および1271なら
びに配列番号4のアミノ酸93および94からなる群より選択されるカニクイザ
ルP−糖タンパク質の少なくとも1つのアミノ酸を含む、単離されたP−糖タン
パク質ポリペプチドまたはそのフラグメント(ここで、P−糖タンパク質は、カ
ニクイザルP−糖タンパク質の少なくとも1つのアミノ酸以外はイヌP−糖タン
パク質に同一である)が提供される。いくつかの実施形態において、イヌP−糖
タンパク質は、配列番号7および配列番号8の群から選択される。
そのフラグメントは、配列番号2、配列番号2のフラグメント、配列番号4およ
び配列番号4のフラグメントからなる群より選択されるアミノ酸配列を含む。さ
らに他のポリペプチドとしては、上記のイヌPGPポリペプチド、ヒトPGPポ
リペプチドおよびカニクイザルPGPポリペプチドの組み合わせが挙げられる。
リペプチドまたはそのフラグメントをコードする単離された核酸分子が提供され
る。さらに、プロモーターに作動可能に連結された上記の単離された核酸分子を
含む発現ベクター、ならびにこの発現ベクターを用いて形質転換されたかまたは
トランスフェクトされた宿主細胞が含まれる。
る因子が、提供される。好ましくは、この因子は、本明細書中に提供されるもの
以外はヒトP−糖タンパク質またはイヌP−糖タンパク質に結合しない。特定の
実施形態において、この因子は、ポリペプチド、好ましくはモノクローナル抗体
、ポリクローナル抗体、Fab抗体フラグメント、F(ab)2抗体フラグメン
トおよびCDR3領域を含む抗体フラグメントからなる群より選択されるもので
ある。上記の単離された核酸分子に選択的に結合する因子、好ましくは単離され
た核酸分子に選択的に結合するアンチセンス核酸分子がまた提供される。
の方法が提供される。この方法は、第1のP−糖タンパク質による試験化合物の
膜貫通輸送を測定する工程、この第1のP−糖タンパク質および第2のP−糖タ
ンパク質によるこの試験化合物の膜貫通輸送を比較し、この試験化合物のバイオ
アベイラビリティを予測する工程であって、ここで、第1のP−糖タンパク質お
よび第2のP−糖タンパク質による相対的な輸送量または輸送速度が、この試験
化合物のバイオアベイラビリティの予測である工程、を包含する。特定の実施形
態において、第1のP−糖タンパク質は、イヌP−糖タンパク質および霊長類P
−糖タンパク質からなる群より選択され、好ましくは上記のポリペプチドのうち
の1つである。他の実施形態において、この第2のP−糖タンパク質は、ヒトP
−糖タンパク質である。
ランスポーター活性を阻害するための方法が、提供される。この方法は、哺乳動
物細胞を、この哺乳動物細胞におけるP−糖タンパク質トランスポーター活性を
阻害するのに効果的な量の上記因子のうちの1つと接触させる工程を包含する。
明に含まれる。この方法は、そのような処置が必要な被験体に、薬物のバイオア
ベイラビリティを増加するのに有効な量で上記因子のうちの1つを投与する工程
を包含する。このインヒビターは、この薬物を投与する前またはこの薬物と同時
に投与され得る。
、提供される。この方法は、この細胞を、上記核酸分子からなる群より選択され
る分子とこの細胞におけるP−糖タンパク質トランスポーター活性を増加するに
有効な量で接触させる工程を包含する。この細胞は、P−糖タンパク質が発現さ
れる条件下で接触され得る。
連する疾患の処置において有用な薬理学的因子に関するリード化合物を同定する
ための方法が提供される。この方法は、本明細書中に提供されるようなP−糖タ
ンパク質を含む、細胞または他の膜包囲空間を提供する工程;この細胞または他
の膜包囲空間を、候補薬理学的因子の非存在下でP−糖タンパク質トランスポー
ター活性の第1の量をもたらす条件下で、この候補薬理学的因子と接触させる工
程;および、P−糖タンパク質トランスポーター活性に対する該薬理学的因子の
効果の尺度として、P−糖タンパク質トランスポーター活性の第2の量を決定す
る工程であって、ここで、第1の量よりも少ないP−糖タンパク質トランスポー
ター活性の第2の量は、候補薬理学的因子がP−糖タンパク質トランスポーター
活性を減少する薬理学的因子に関するリード化合物であることを示し、そしてこ
こで、第1の量よりも多いP−糖タンパク質トランスポーター活性の第2の量は
、候補薬理学的因子がP−糖タンパク質トランスポーター活性を増加するする薬
理学的因子に関するリード化合物であることを示す工程、を包含する。この方法
は、検出可能な化合物でこの細胞または他の膜包囲空間を充填する工程であって
、ここで、この化合物は、P−糖タンパク質トランスポーター活性の尺度として
検出される工程をさらに包含し得る。
まれる。この方法は、本明細書中に提供されるP−糖タンパク質を化合物と接触
させる工程、およびこの化合物のP−糖タンパク質への結合を決定する工程を包
含する。この方法は、このP−糖タンパク質のP−糖タンパク質トランスポータ
ー活性に対する化合物の効果を決定する工程、またはこのP−糖タンパク質のA
TPase活性に対する化合物の効果を決定する工程をさらに包含し得る。
活性を決定するための方法を含む。この方法は、上記に提供されるような宿主細
胞またはその膜画分を、試験薬物と接触させる工程、およびこのP−糖タンパク
質のATPase活性を測定する工程を包含する。特定の実施形態において、こ
のATPase活性を測定する工程は、異なる時間に少なくとも2回実施される
。P−糖タンパク質による化合物の膜貫通輸送を決定するための方法がまた、提
供される。この方法は、上記に提供される宿主細胞またはその膜画分を、試験薬
物と接触させる工程、および頂端側(apical)から側底側(basola
teral)の方向および側底側から頂端側の方向からなる群より選択される少
なくとも1つの輸送方向の傾斜条件下において、試験薬物の輸送を測定する工程
を包含する。特定の実施形態において、この試験薬物の輸送を測定する工程は、
異なる時間に少なくとも2回実施される。
である。
質のアミノ酸配列である。
ルP−糖タンパク質対立遺伝子のヌクレオチド配列である。
質対立遺伝子のアミノ酸配列であり、3アミノ酸挿入を有する。
パク質のアミノ酸配列である。
927を有するヒトP−糖タンパク質のアミノ酸配列である。
タンパク質のアミノ酸配列である。
タンパク質のアミノ酸配列である。
ド配列である。
チド配列である。
チド配列である。
ヌクレオチド配列である。
ヌクレオチド配列である。
クレオチド配列である。
プライマーのヌクレオチド配列である。
プライマーのヌクレオチド配列である。
ヌクレオチド配列である。
ヌクレオチド配列である。
中でカニクイザルPGPという)をコードするcDNAの同定を含む。カニクイ
ザルPGPのヌクレオチド配列は、配列番号1および配列番号3として示され、
そしてカニクイザルPGPのアミノ酸配列は、配列番号2および配列番号4とし
て示される。カニクイザルPGPの対立遺伝子改変体のヌクレオチド配列および
アミノ酸配列(配列番号3および配列番号4)は、それぞれ9ヌクレオチドおよ
び3アミノ酸の挿入を有するが、さもなければ配列番号1および配列番号2と同
一である。密接に関連したヒトPGPは、GenBankにアクセッション番号
M14758として寄託された。本明細書中に示されるポリペプチドのほとんど
がヒトPGPに同一であるが、カニクイザルPGPは、いくつかの単一のアミノ
酸差異およびヒトPGPに約36〜58%同一である約19〜34アミノ酸のN
末端ドメインを有する。上記(配列番号3および4)でいわれる対立遺伝子改変
体に存在する挿入物は、このカニクイザル特異的ドメインの末端付近に位置され
る。驚くことに、ヒトアミノ酸配列とは異なるカニクイザルPGPのN末端ドメ
インは、カニクイザルアミノ酸配列およびヒトアミノ酸配列がさもなくば100
%同一である分子の一部に位置される。P−糖タンパク質の非常に高度に保存さ
れたタンパク質ドメインにおける、種でのこの差異は、全く予想されない。
、ならびにこれらが関する治療を含む。本発明はまた、前述の核酸およびポリペ
プチド;前述の核酸の相補体;および前述の核酸およびポリペプチドに選択的に
結合する分子の、単離された機能的に等価な改変体、有用なアナログおよびフラ
グメントを含む。
中で核酸に関して使用される場合、用語「単離された(される)」は:(i)例
えば、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によってインビトロで増幅された(され
る);(ii)クローニングによって組換え的に産生された(される);(ii
i)切断およびゲル分離によるように精製された(される);または(iv)例
えば、化学合成によって合成された(される)、ことを意味する。単離された核
酸は、当該分野において周知の組換えDNA技術によって容易に操作可能である
ものである。従って、5’制限部位および3’制限部位が公知であるベクターま
たはポリメラーゼ連鎖反応(PCR)プライマー配列が開示されたベクターに含
まれるヌクレオチド配列は、単離されたと認識されるが、その天然の宿主中にそ
のネイティブな状態で存在する核酸配列は、単離されたと認識されない。単離さ
れた核酸は、実質的に精製され得るが、実質的に精製される必要はない。例えば
、クローニングベクターまたは発現ベクター内に単離された核酸は、その核酸の
存在する細胞中にその物質のほんの少しのパーセントを含み得るという点で純粋
ではない。しかし、この用語が本明細書中で使用される場合、このような核酸は
、単離された(される)である。なぜなら、当業者に公知の標準技術によって容
易に操作可能であるからである。本明細書中で使用される場合、単離された核酸
は、天然に存在する染色体ではない。
」は、そのネイティブの環境から分離され、そしてその同定または使用を可能に
するに十分な量で存在することを意味する。タンパク質またはポリペプチドに関
していわれる場合、単離された(される)は、例えば:(i)発現クローニング
によって選択的に産生された(される)、または(ii)クロマトグラフィーま
たは電気泳動によるように精製された(される)、ことを意味する。単離された
タンパク質またはポリペプチドは、実質的に純粋であり得るが、実質的に純粋で
ある必要はない。用語「実質的に純粋」は、タンパク質またはポリペプチドが、
その意図された使用に実用的および適切である範囲で、天然にかまたはインビボ
の系で見出され得る他の物質が本質的にないことを意味する。実質的に純粋なポ
リペプチドは、当該分野において周知の技術によって産生され得る。単離された
タンパク質は薬学的調製物中に薬学的に受容可能なキャリアと混合され得るので
、タンパク質は、調製物の少ない重量%のみを含み得る。にもかかわらず、タン
パク質は、生存系において関与し得る物質から分離された(すなわち、他のタン
パク質から単離された)という点で、単離された(される)である。
子をいう。これは、カニクイザルPGPポリペプチドをコードする。このような
核酸分子は、配列番号2および配列番号4ならびにこれらのフラグメントの配列
を含む、カニクイザルPGPポリペプチドをコードする。核酸分子は、配列番号
1および配列番号3の核酸配列、ならびに、遺伝コードの縮重に起因するコドン
配列において配列番号1および配列番号3の配列とは異なる核酸配列を含む。本
発明のカニクイザルPGP核酸はまた、前述の核酸および前述の核酸のフラグメ
ントの対立遺伝子を含む。このようなフラグメントは、例えば、ハイブリダイゼ
ーションアッセイにおけるプローブとして、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に
おけるプライマーとして、使用され得る。好ましいカニクイザルPGP核酸は、
配列番号1または配列番号3の核酸配列を含む。前述の核酸の相補体はまた、本
発明によって含まれる。
って低分子を運び出すPGPポリペプチドの能力をいう。カニクイザルPGP活
性を阻害する分子(アンタゴニスト)は、PGPを介して低分子の運び出しを阻
害するものであり、そしてカニクイザルPGP活性を増加する分子(アゴニスト
)は、PGPを介して低分子の運び出しを増加するものである。カニクイザルP
GP活性における変化は、細胞からの蛍光化合物の流出を含む、本明細書中に記
載されるようなアッセイによって測定され得る。
され得る。例えば、カニクイザルPGPの対立遺伝子は、cDNAライブラリー
とストリンジェントな条件下で、配列番号1または配列番号3のフラグメントを
少なくとも含むプローブをハイブリダイズすること、および陽性クローンを選択
することによって単離され得る。従って、本発明の1つの局面は、カニクイザル
PGPポリペプチドをコードする核酸配列およびストリンジェントな条件下で配
列番号1または配列番号3からなる核酸分子にハイブリダイズする核酸配列であ
る。本明細書中で使用される場合、用語「ストリンジェントな条件」は、当業者
が精通するパラメーターをいう。核酸ハイブリダイゼーションパラメーターは、
このような方法を編集する参考文献中(例えば、Molecular Clon
ing:A Laboratory Manual,J.Sambrookら編
、第2版、Cold Spring Harbor Laboratory P
ress,Cold Spring Harbor,New York,198
9、または、Current Protocols in Molecular
Biology,F.M.Ausubelら編、John Wiley&So
ns,Inc,New York)に見出され得る。より特定には、本明細書中
で使用される場合、ストリンジェントな条件は、例えば、ハイブリダイゼーショ
ン緩衝液(3.5×SSC、0.02% Ficoll、0.02% ポリビニ
ルピロリドン、0.02% ウシ血清アルブミン、2.5mM NaH2PO4(
pH7)、0.5% SDS、2mM EDTA)中で65℃でのハイブリダイ
ゼーションをいう。SSCは、0.15M 塩化ナトリウム/0.15M クエ
ン酸ナトリウム(pH7)であり;SDSは、ドデシル硫酸ナトリウムであり;
およびEDTAは、エチレンジアミン3酢酸である。ハイブリダイゼーション後
、その上にDNAが転写される膜は、2×SSCで室温にて洗浄され、次いで、
室温〜68℃までの0.1〜0.5×SSC/0.1×SDSで洗浄される。
存在する。当業者は、このような条件に精通しており、従って、本明細書中で示
されない。しかし、当業者が、これらの条件を、本発明のカニクイザルPGP核
酸の対立遺伝子の明瞭な同定を可能にする様式で操作し得ることは明白である。
当業者はまた、このような分子の発現のための細胞およびライブラリーのスクリ
ーニング、次いで慣用的な単離、引き続く適切な核酸分子の単離および配列決定
についての方法論に精通している。
は、放射活性なプローブとともに前述のストリンジェントな条件を使用して実施
され得る。DNAが最終的に転写された膜の洗浄後に、この膜は、放射活性なシ
グナルを検出するためにX線フィルムに対して置かれ得る。
に対して代替的なコドンを含む縮重核酸を含む。例えば、セリン残基は、コドン
TCA、AGT、TCC、TCG、TCTおよびAGCによってコードされる。
これら6つのコドンの各々は、セリン残基をコードする目的について等価である
。従って、セリンをコードする核酸トリプレット(triplet)のいずれも
が、伸長するカニクイザルPGPポリペプチドにセリン残基を組み込むための、
インビトロまたはインビボでタンパク質合成装置を指向するために使用され得る
。同様に、他のアミノ酸残基をコードする核酸トリプレットとして、以下が挙げ
られるがこれらに限定されない:CCA、CCC、CCGおよびCCT(プロリ
ンコドン)、CGA、CGC、CGG、CGT、AGAおよびAGG(アルギニ
ンコドン)、ACA、ACC、ACGおよびACT(スレオニンコドン)、AA
CおよびAAT(アルギニンコドン);ならびにATA、ATCおよびATT(
イソロイシンコドン)。他のアミノ酸残基は、多様なヌクレオチド配列によって
同様にコードされ得る。従って、本発明は、遺伝コードの縮重に起因するコドン
配列において、生物学的に単離された核酸とは異なる縮重核酸を含む。
チドの付加、置換および欠失を含む。好ましい実施形態において、これらの改変
されなかった核酸分子および/またはこれら核酸分子がコードするポリペプチド
は、改変された核酸分子および/またはポリペプチドの少なくとも1つの活性ま
たは機能(例えば、トランスポーター活性など)を保持する。特定の実施形態に
おいて、改変された核酸分子は、改変されたポリペプチド、好ましくは、本明細
書中の他の場所で記載されるような保存的アミノ酸置換を有するポリペプチドを
コードする。改変された核酸分子は、改変されない核酸分子に構造的に関し、好
ましい実施形態において、改変されない核酸分子に十分に構造的に関し、その結
果、改変された核酸分子および改変されない核酸分子は、当業者に公知のストリ
ンジェントな条件下でハイブリダイズする。
酸分子は、調製され得る。これらの核酸分子の各々は、本明細書中で記載される
ような遺伝コードの縮重に対応するヌクレオチド変化を除いて、1、2または3
ヌクレオチド置換を有し得る。同様に、2アミノ酸変化を有するポリペプチドを
コードする改変された核酸分子は、例えば2〜6ヌクレオチド変化を有して調製
され得る。これらのような多数改変された核酸分子は、当業者によって容易に想
像され得、例えば、アミノ酸2および3、2および4、2および5、2および6
などをコードするコドン中のヌクレオチド置換を含む。前述の実施例において、
2アミノ酸の各組合せは、改変された核酸分子ならびにアミノ酸置換をコードす
るヌクレオチド置換のセット中に含まれる。さらなる置換(すなわち、3以上)
、付加、または欠失(例えば、停止コドンもしくはスプライシング部位の導入に
よって)を有するポリペプチドをコードするさらなる核酸分子はまた、調製され
得、そして当業者によって容易に想像されるように本発明によって含まれる。前
述の核酸またはポリペプチドのいずれもが、本明細書中に開示される核酸および
/またはポリペプチドに対する構造的な関係または活性の保持について慣用的な
実験によって試験され得る。
する。これらのフラグメントは、このような核酸を同定するためのサザンブロッ
ト分析におけるプローブとして使用され得るか、またはこれらを利用するPCR
のような増幅アッセイにおいて使用され得る。より小さいフラグメントは、12
、13、14、15、16、17、18、20、22、25、30、40、50
または75およびこれらの間の全ての整数のヌクレオチドを含むフラグメントで
あり、例えば、核酸増幅手順についてのプライマーとして有用である。当業者に
公知であるように、200、250、300、400以上のヌクレオチドのよう
な大きいプローブは、サザンブロットのような特定の使用に好ましいが、小さい
フラグメントは、PCRのような使用に好ましい。フラグメントはまた、抗体を
作製するかまたはポリペプチドフラグメントの結合を決定するための融合タンパ
ク質を産生するために使用され得る。同様に、フラグメントは、例えば、抗体の
調製、免疫アッセイなどにおいて有用なカニクイザルPGPポリペプチドの融合
されないフラグメントを産生するために利用され得る。前述の核酸フラグメント
はさらに、カニクイザルPGP核酸およびポリペプチドの発現を阻害するための
アンチセンス分子として、以下により詳細に記載されるように、特に治療目的に
使用され得る。
カニクイザルPGPの1以上の機能的な特性を残す改変体核酸およびポリペプチ
ドを含む。好ましくは、このような改変体は、カニクイザル特異的N末端ドメイ
ン(例えば、配列番号2のアミノ酸86〜104または配列番号4のアミノ酸8
6〜101)を含む。例えば、改変体は、分子を輸送する能力を保持するカニク
イザルPGPの細胞外ドメインおよび膜貫通ドメインを含む融合タンパク質を含
む。なお他の機能的に等価な改変体は、配列番号2または配列番号4の配列に対
するアミノ酸の短縮、欠失、点変異または付加を含み、これらは、配列番号2ま
たは配列番号4の機能を保持する。機能的に等価な改変体はまた、除去されたか
または別のP−糖タンパク質からの同様のドメインによって置換されたN末端の
一部を有するカニクイザルPGP(例えば、「ドメイン交換(swapping
)」改変体)を含む。他の機能的に等価な改変体は、このような改変体を調製す
る方法と同様に、当業者に公知である。機能的に等価な改変体の活性は、本明細
書中および他の種のP−糖タンパク質を使用するアッセイを記載した参考文献中
に提供される方法を使用して決定され得る。このような改変体は、カニクイザル
PGPの輸送機能を結合および/または調節する化合物の同定についてのアッセ
イにおいて、薬物のバイオアベイラビリティを評価するために、そして輸送活性
が要求されるカニクイザルPGPの部分を決定するためにとりわけ有用である。
変体は、例えば、トランスポーター活性を試験する実験におけるネガティブコン
トロールとして有用である。
核生物細胞内にカニクイザルPGP核酸の発現を指向する遺伝子発現配列に作動
可能に連結される。「遺伝子発現配列」は、任意の調節核酸配列(例えば、プロ
モーター配列またはプロモーター−エンハンサー組合わせ(これは、作動可能に
連結されるカニクイザルPGP核酸の効果的な転写および翻訳を容易にする))
である。遺伝子発現配列は、例えば、哺乳動物またはウイルスのプロモーター(
例えば、構成的プロモーターまたは誘導性プロモーター)であり得る。構成的哺
乳動物プロモーターとしては、以下の遺伝子についてのプロモーターが挙げられ
るがこれらに限定されない:ヒポキサンチンホスホリボシルトランスフェラーゼ
(HPTR)、アデノシンデアミナーゼ、ピルビン酸キナーゼ、β−アクチンプ
ロモーターおよび他の構成的プロモーター。真核生物細胞に構成的に機能するウ
イルスプロモーターの例示としては、以下が挙げられる:例えば、シミアンウイ
ルス、パピローマウイルス、アデノウイルス、ヒト免疫不全ウイルス(HIV)
、ラウス肉腫ウイルス、サイトメガロウイルス、モロニーマウス白血病ウイルス
および他のレトロウイルスの長末端反復(LTR)由来のプロモーター、単純ヘ
ルペスウイルスのチミジンキナーゼプロモーター。他の構成的プロモーターは、
当業者に公知である。本発明の遺伝子発現配列として有用なプロモーターはまた
、誘導性プロモーターを含む。誘導性プロモーターは、誘導剤の存在下で発現さ
れる。例えば、メタロチオネインプロモーターは、特定の金属イオンの存在下で
転写および翻訳を促進するように誘導される。他の誘導性プロモーターは、当業
者に公知である。
開始に関与する、5’非転写配列および5’非翻訳配列(例えば、TATAボッ
クス、キャッピング配列、CAAT配列など)を含む。特に、このような5’非
転写配列は、作動可能に連結されたカニクイザルPGP核酸の転写制御について
のプロモーター配列を含むプロモーター領域を含む。遺伝子発現配列は、必要な
らば、所望される場合エンハンサー配列または上流のアクチベーター配列を含む
。
てこの遺伝子発現配列の影響下または制御下でカニクイザルPGPコード配列を
転写および/または翻訳する方向に置かれる場合、「作動可能に連結される(さ
れた)」といわれる。カニクイザルPGP配列が機能的タンパク質に翻訳される
ことが所望される場合、2つのDNA配列は、5’遺伝子発現配列中のプロモー
ターの誘導がカニクイザルPGP配列の転写を生じる場合、および2つのDNA
配列の間の連結の特性が以下ではない場合、作動可能に連結されるといわれる:
(1)フレームシフト変異の導入を生じる、(2)カニクイザルPGP配列の転
写を指向するプロモーター領域の能力を緩衝する、または(3)対応するRNA
転写物がタンパク質中に翻訳される能力を緩衝する。従って、遺伝子発現配列が
カニクイザルPGP核酸配列の転写を影響し得その結果生じる転写物が所望のタ
ンパク質またはポリペプチドに翻訳され得る場合、遺伝子発現配列は、カニクイ
ザルPGP核酸配列に作動可能に連結される。
(以下に記載されるカニクイザルPGPインヒビターを含む)は、真核生物細胞
または原核生物細胞に単独でかまたはベクターと組合わせて送達され得る。その
最も広い意味において、「ベクター」は、以下を容易にし得る任意のビヒクルで
ある:(1)標的細胞へのカニクイザルPGP核酸またはポリペプチドの送達、
(2)標的細胞によるカニクイザルPGP核酸またはポリペプチドの取り込み、
または(3)標的細胞でのカニクイザルPGP核酸またはポリペプチドの発現。
好ましくは、減少した分解を伴う、カニクイザルPGP核酸分子もしくはポリペ
プチドの標的細胞へのベクター輸送は、ベクターの非存在を生じる分解の範囲に
関する。必要ならば、「標的リガンド」は、ベクターに付着して、その標的リガ
ンドに対する同属のレセプター(例えば、レセプター、抗体によって認識される
抗原)をその表面上に発現する細胞に選択的にベクターを送達し得る。この様式
において、ベクター(カニクイザルPGP核酸またはカニクイザルPGPポリペ
プチドを含む)は、特定の細胞に選択的に送達され得る。一般には、本発明にお
いて有用なベクターは、2つのクラスに分けられる:生物学的ベクターおよび化
学的/物理的ベクター。生物学的ベクターは、標的細胞へのカニクイザルPGP
核酸の送達、標的細胞によるカニクイザルPGP核酸の取り込みについてより有
用である。化学的/物理的ベクターは、標的細胞へのカニクイザルPGP核酸ま
たはカニクイザルPGPタンパク質の送達、標的細胞によるカニクイザルPGP
核酸またはカニクイザルPGPタンパク質の取り込みについてより有用である。
スミド、ファージミド、ウイルス、本発明の核酸配列の挿入または組み込みによ
って操作されたウイルスまたは細菌の供給源由来の他のビヒクル、および本発明
の核酸配列に連結され得る遊離核酸フラグメント。ウイルスベクターは、生物学
的ベクターの好ましい型であり、以下のウイルス由来の核酸配列を含むがこれら
に限定されない:モロニーマウス白血病ウイルスのようなレトロウイルス;Ha
rveyマウス肉腫ウイルス;マウス哺乳動物腫瘍ウイルス;ラウス肉腫ウイル
ス;アデノウイルス;アデノ随伴ウイルス;SV40型ウイルス;ポリオーマウ
イルス;ポックスウイルス;レトロウイルス;エプスタイン−バーウイルス;パ
ピローマウイルス;ヘルペスウイルス;ワクシニアウイルス;およびポリオウイ
ルス。当該分野において名前はないが公知である他のベクターは、容易に利用さ
れ得る。
ている、非細胞傷害性真核生物ウイルスベースである。非細胞傷害性ウイルスは
、レトロウイルスを含み、このウイルスの生活環は、引き続くプロウイルスの宿
主細胞のDNAへの組み込みを有する、ゲノムウイルスRNAのDNAへの逆転
写を含む。一般には、レトロウイルスは、複製欠損(すなわち、所望のタンパク
質の合成を指向し得るが、感染性粒子を製造し得ない)である。このような遺伝
的に改変されたレトロウイルス発現ベクターは、インビボで高効率の遺伝子導入
について一般的な有用性を有する。複製欠損レトロウイルスを産生するための標
準的プロトコール(プラスミドへの外因性遺伝物質の組み込み工程、プラスミド
でのパッケージング細胞株のトランスフェクション工程、パッケージング細胞株
による組換えレトロウイルスの産生工程、組織培養培地からのウイルス粒子の回
収工程、およびウイルス粒子での標的細胞の感染工程を包含する)は、Krie
gler,M.,“Gene Transfer and Expressio
n, A Laboratory Manual,”W.H.Freeman
C.O.,New York(1990)およびMurry,E.J.編、“M
ethods in Molecular Biology,”第7巻、Hum
ana Press,Inc.,Clifton,New Jersey(19
91)に提供される。
アデノ随伴ウイルスである。アデノ随伴ウイルスは、複製欠損であるように操作
され得、そして広範な範囲の細胞型および種を感染し得る。これは、利点(例え
ば、熱安定性および脂質溶媒安定性;多様な系統の細胞における高頻度の形質転
換;および複数の一連の形質転換を可能にする重複感染阻害の欠失)をさらに有
する。すでに報告されるように、アデノ随伴ウイルスは、部位特異的様式でヒト
細胞性DNA中に組み込まれ得、これにより、挿入性変異の可能性および挿入さ
れた遺伝子の発現の可変性を最小化し得る。さらに、野生型アデノ随伴ウイルス
感染は、選択的圧力の非存在下で100パッセージを超える組織培養を継代した
。このことは、アデノ随伴ウイルスのゲノム組み込みは、比較的安定な事象であ
ることを意味する。アデノ随伴ウイルスはまた、染色体外様式で機能し得る。
当業者に公知である。例えば、Sambrookら、Molecular Cl
oning:A Laboratory Manual,第2版、Cold S
pring Harbor Laboratory Press,1989を参
照のこと。細胞は、一般的に、カニクイザルPGPポリペプチドまたはそのフラ
グメントもしくは改変体をコードする異種DNA(RNA)の細胞への形質導入
によって操作される。この異種DNA(RNA)は、転写要素の作動可能な制御
下に置かれ、宿主細胞での異種DNAの発現を可能にする。
(Invitrogen,Carsbad,CAから入手可能)のような系であ
る。pRc/CMVは、G418耐性を与える遺伝子のような選択マーカー(安
定にトランスフェクトされた細胞株の選択を容易にする)およびヒトサイトメガ
ロウイルス(CMV)エンハンサー−プロモーター配列を含む。さらに、pCE
P4ベクターは(Invitrogen)は、霊長類細胞株またはイヌ細胞株に
おける発現について適切である。これは、多コピーの染色体外要素としてプラス
ミドの維持を容易にする、エプスタインバーウイルス(EBV)複製起点を含む
。別の発現ベクターは、インビトロでの効率的な転写を刺激するポリペプチド延
長因子1αのプロモーターを含むpEF−BOSプラスミドである。このプラス
ミドは、MishizumaおよびNagata(Nuc.Acids Res
.18:5322,1990)に記載され、トランスフェクション実験における
その使用は、例えば、Demoulin(Mol.Cell.Biol.16:
4710−4716,1996)によって開示される。なお別の好ましい発現ベ
クターは、Stratford−Perricaudetによって記載されるア
デノウイルスであり、E1タンパク質およびE3タンパク質を欠損する(J.C
lin.Invest.90:626−630,1992)。
核酸またはポリペプチドを標的細胞に送達してそれにより取り込みを容易にする
ために使用され得る。本明細書中で使用される場合、「化学的/物理的ベクター
」は、単離されたカニクイザルPGP核酸またはポリペプチドを細胞に送達し得
る、細菌性供給源またはウイルス性供給源由来の分子以外の天然の分子または合
成分子をいう。
は、水中油乳濁液、ミセル、混合ミセル、およびリポソームを含む脂質ベースの
系を含む。本発明の好ましい膠様系は、リポソームである。リポソームは、イン
ビボまたはインビトロでの送達ベクターとして有用である人工膜ビヒクルである
。これは、サイズが0.2〜4.0μの範囲である巨大な多層状のビヒクル(L
UV)が巨大分子を包囲し得ることを示した。RNA、DNAおよびインタクト
なビリオンは、水性の内部に包囲され得、そして生物学的に活性な形態で細胞中
に送達され得る(Fraleyら、Trends Biochem.Sci.,
第6巻第77頁(1981))。リポソームが効果的な核酸輸送ベクターである
ためには、1以上の以下の特性が存在すべきである:(1)生物学的活性の保持
を有する、目的の核酸の高効率での包囲;(2)非標的細胞に比べて、標的細胞
に対する優先的および実質的な結合;(3)ビヒクルの水性内容物の標的細胞細
胞質への高効率での送達;ならびに(4)遺伝情報の正確かつ効果的な発現。
、またはタンパク質)へのリポソームの連結によって特定の組織に標的化され得
る。特定の細胞へリポソームを標的化するために有用であり得るリガンドは、特
定の細胞型または組織型に依存する。さらに、ベクターが核酸を包囲する場合、
ベクターは、カニクイザルPGP核酸を宿主細胞の核へ指向する核標的化ペプチ
ドと連結され得る。
ETMとしてGibco BRLから市販される。これらは、N−[1−(2,3 ジオレイルオキシ)−プロピル]−N,N,N−トリメチルアンモニウムクロ
リド(DOTMA)およびジメチルジオクタデシルアンモニウム臭化物(DDA
B)のようなカチオン性脂質で形成される。リポソームを作製するための方法は
、当該分野において公知であり、そして多くの刊行物に記載されている。
れ得る他の例示的組成物としては、リン酸カルシウムおよび細胞内輸送の他の化
学的メディエーター、マイクロインジェクション組成物、エレクトロポーレーシ
ョンならびに(例えば、カニクイザルPGP核酸を標的細胞染色体内の予め選択
された位置に組み込むための)相同組換え組成物が挙げられる。
クターを調製することを可能にする。このような発現キットは、以前議論された
コード配列の少なくとも別個の部分を含む。必要とされる、以前に述べられた配
列が含まれる限り、所望の場合、他の成分が添加され得る。
、ならびに宿主細胞および細胞株(これらは、原核(例えば、E.coli)、
または真核(例えば、COS細胞、酵母発現系および、昆虫細胞における組換え
バキュロウイルス発現)である)をトランスフェクトすることを包含する。哺乳
動物細胞(例えば、ヒト、ブタ、ヤギ、霊長類など)が、特に有用である。それ
らは、広範な種々な型であり得、そして始原細胞および細胞株を含む。特定の例
としては、腸細胞および肝細胞が挙げられる。この発現ベクターは、適切な配列
(すなわち、前記されるそれらの核酸)が、プロモーターに作動可能に連結され
ることを必要とする。
ラグメントを含む、単離されたカニクイザルのPGPポリペプチド(これは、上
記カニクイザルのPGP核酸によりコードされる)を提供する。カニクイザルの
PGPポリペプチドはまた、対立遺伝子、機能的に等価な改変体およびアナログ
(1、2、3、4、5、またはそれ以上のアミノ酸により、開示されたカニクイ
ザルのPGPポリペプチド由来のアミノ酸配列において変化するそれらの非対立
遺伝子ポリペプチド)を包含し、但し、このようなポリペプチドは、カニクイザ
ルのPGP活性を保持する。非機能的改変体もまた、本発明により包含され;こ
れらは、輸送体機能のアンタゴニストとして、アッセイにおけるネガティブコン
トロールとしてなどに有用である。このような対立遺伝子、改変体、アナログお
よびフラグメントは、アッセイの成分として含む種々の目的のための、例えば、
単独または融合タンパク質として有用である。
機能的能力、特に種々の分子の輸送体として保持するそれらのフラグメントであ
る。カニクイザルのPGPポリペプチドのフラグメントにおいて保持され得る他
の機能的能力としては、抗体との相互作用および他のポリペプチドとの相互作用
(例えば、タンパク質複合体において見出される)が挙げられる。当業者は、カ
ニクイザルのPGPの機能的能力を保持するフラグメントを選択するための方法
において十分に精通する。このフラグメントの機能的能力の確認は、標準的な方
法に従って、フラグメントの合成および能力を試験することにより行われ得る。
例えば、カニクイザルのPGPフラグメントの輸送体活性を試験するために、分
子輸送体が、測定され得る細胞において、フラグメントを挿入または発現する。
当該分野において標準的であるこのような方法が、本明細書中にさらに記載され
る。
明細書中に記載されるように、カニクイザルのPGPポリペプチドの「改変体」
は、カニクイザルのPGPポリペプチドの主なアミノ酸配列に対する1つ以上の
改変を含むポリペプチドである。カニクイザルのPGP改変体を作製する改変は
、種々の理由のためにカニクイザルのPGPポリペプチドに対して作製され得、
これは以下を含む:1)カニクイザルのPGPポリペプチドの活性(例えば、輸
送)を低減するかまたは除去すること;2)カニクイザルのPGPポリペプチド
の特性(例えば、発現系におけるタンパク質安定性またはタンパク質−タンパク
質結合の安定性)を増強すること;3)カニクイザルのPGPポリペプチドに対
する新規の活性または特性(例えば、抗原エピトープの添加または検出可能部分
の添加)を提供すること;または4)アミノ酸置換が分子輸送体活性に影響する
かまたはしないことを確立すること、を含む。カニクイザルのPGPポリペプチ
ドに対する改変は、カニクイザルのPGPポリペプチドをコードする核酸に対し
て代表的に作製され、そしてアミノ酸部分または非アミノ酸部分の欠失、点変異
、短縮、アミノ酸置換および付加が挙げられ得る。あるいは、改変は、例えば、
切断、リンカー分子の付加、検出可能部分の付加(例えば、ビオチン)、脂肪酸
の付加などにより、ポリペプチドに直接作製され得る。改変はまた、カニクイザ
ルのPGPアミノ酸配列の全てまたは1部を含む融合タンパク質を含む。当業者
は、タンパク質配列における変化のタンパク質構造に関する効果を予測するため
の方法に精通し、従って、公知の方法に従って、改変体カニクイザルのPGPを
「設計」し得る。このような方法の1つの例は、DahiyatおよびMayo
、Science 278:82−87,1997に記載され、これにより、タ
ンパク質は、新規に設計され得る。方法は、ポリペプチド配列の1つの部分のみ
を変更するために公知のタンパク質に適用され得る。DahiyatおよびMa
yoの計算方法を適用することにより、カニクイザルのPGPポリペプチドの特
異的な改変体が提案され、そして改変体が所望の構造を保持するか否かを決定す
ることが試験される。
変更するために改変されるカニクイザルのPGPポリペプチドが挙げられる。例
えば、システイン残基は、所望しないジスルフィド結合を防ぐために置換され得
るかまたは欠失され得る。同様に、特定のアミノ酸は、発現系におけるプロテア
ーゼによるタンパク質分解を除去することにより、カニクイザルのPGPポリペ
プチドの発現を増強するために変化され得る(例えば、KEX2プロテアーゼ活
性が存在する酵母発現系における二塩基性アミノ酸残基)。
アミノ酸読み取り枠を好ましくは保存し、そして2次構造(例えば、ヘアピンま
たはループ)を形成するためにハイブリダイズしそうな核酸における領域(これ
は、改変体ポリペプチドの発現に対して有害であり得る)を好ましくは作製しな
い。
ードする核酸において選択される部位の無作為な変異誘発により作製され得る。
次いで、改変体ポリペプチドは、どの変異体が所望の特性を有する改変体ポリペ
プチドを提供するかを決定するために発現され、そして1つ以上の活性について
試験される。さらなる変異体が、ポリペプチドのアミノ酸配列に関してサイレン
トであるが、特定の宿主における翻訳のために好ましいコドンを提供する改変体
に対して(または、非改変体カニクイザルのPGPポリペプチド)に対して作製
され得る。例えば、E.coliにおける核酸の翻訳のために好ましいコドンが
、当業者に周知である。なお他の変異が、このポリペプチドの発現を増強するた
めにカニクイザルのPGP遺伝子またはcDNAクローンの非コード配列に対し
て作製され得る。
PGPポリペプチドをコードする遺伝子を、細菌または哺乳動物発現ベクターへ
クローニングし、適切な宿主細胞中にこのベクターを導入し、改変体カニクイザ
ルのPGPポリペプチドを発現し、そして本明細書中に開示されるようなカニク
イザルのPGPポリペプチドの機能的能力について試験することにより、試験さ
れ得る。例えば、改変体カニクイザルのPGPポリペプチドは、以下の例に示さ
れるように、分子輸送体(例えば、流出)を提供する能力について試験され得る
。他の改変体ポリペプチドの調製は、他の活性の試験に好まれ得、これは当業者
に公知である。
おいて、前述のポリペプチドの機能的に等価な改変体(すなわち、カニクイザル
のPGPポリペプチドの機能的能力を保持する改変体)を提供するために作製さ
れ得る。本明細書中で使用される場合、「保存的アミノ酸置換」は、アミノ酸置
換が作製されるポリペプチドに特徴的な、相対的な電荷または相対的なサイズを
変更しないアミノ酸置換をいう。改変体は、このような方法を集めた参考文献(
例えば、Molecular Cloning:A Laboartory M
anual,J.Sambrookら、編、第2版、Cold Spring
Harbor Laboratory Press,Cold Spring
Harbor,New York,1989、またはCurrent Prot
ocols in Molecular Biology,F.M.Ausub
elら、編、John Wiley & Sons,Inc.,New Yor
k)において見出されるような、当業者に公知のポリペプチド配列を変更するた
めの方法に従って、調製され得る。カニクイザルのPGPポリペプチドの例示的
な機能的に等価な改変体としては、配列番号2または配列番号4の保存的アミノ
酸置換が挙げられる。アミノ酸の保存的置換は、以下の群内のアミノ酸の中で作
製される置換を含む:(a)M、I、L、V;(b)F、Y、W;(c)K、R
、H;(d)A、G;(e)S、T;(f)Q、N;および(g)E、D。
のPGPポリペプチドのアミノ酸配列における保存的アミノ酸置換は、代表的に
、カニクイザルのPGPポリペプチドをコードする核酸配列(例えば、配列番号
1または3)の変更により作製される。このような置換は、当業者に公知の種々
の方法により作製され得る。例えば、アミノ酸置換は、Kunkelの方法(K
unkel、Proc.Nat.Acad.Sci.U.S.A.82:488
−492、1985)に従って、PCR指向性変異、部位指向性変異誘発により
、またはカニクイザルのPGPポリペプチドをコードする遺伝子の化学合成によ
り作製される。カニクイザルのPGPポリペプチドの機能的に等価なフラグメン
トの活性が、化合物の膜貫通輸送を媒介するために、変更されたカニクイザルの
PGPポリペプチドをコードする遺伝子を、細菌性発現ベクターまたは哺乳動物
発現ベクター中にクローニングし、このベクターを適切な宿主細胞中に導入し、
この変更されたカニクイザルのPGPポリペプチドを発現し、そしてカニクイザ
ルのPGPポリペプチドの能力を試験することにより、試験され得る。化学的に
合成されるペプチドが、機能について直接試験され得る。
ために利用され得る。ポリペプチドは、クロマトグラフィー手段または免疫学的
認識により、このポリペプチドを天然に産生する細胞から精製され得る。あるい
は、発現ベクターは、このポリペプチドの産生を引き起こすために細胞に導入さ
れ得る。別の手段において、mRNA転写物が、コードされたポリペプチドの産
生を引き起こすために、細胞に微小注入されてもよいし、またはその他の手段で
細胞導入されてもよい。無細胞系抽出物(例えば、網状赤血球溶解産物系)にお
けるmRNAの翻訳もまた、ポリペプチドを産生するために使用され得る。当業
者はまた、カニクイザルのPGPポリペプチドを単離するための公知の手段に容
易に従い得る。これらとしては、免疫クロマトグラフィー、HPLC、サイズ排
除クロマトグフィー、イオン交換クロマトグラフィーおよび免疫親和性クロマト
グラフィーが挙げられるがこれらに限定されない。
その他で本明細書中に記載される。例えば、本発明は、例えば、標準的なプロト
コールを使用して単離され得る多量のポリペプチドを産生するための組換え核酸
の発現により、カニクイザルのPGPポリペプチド分子の単離を可能にする。別
の例として、カニクイザルのPGP遺伝子の単離は、カニクイザルのPGPが、
分子輸送のアッセイのための方法(例えば、薬物のバイオアベイラビリティ研究
)において使用されることを可能にする。これらの方法は、この薬物のバイオア
ベイラビリティを決定または予測するための方法として、最初の種のPGP(例
えば、カニクイザルの、イヌ)による薬物の輸送を、他の種のPGP(例えば、
ヒト)による薬物の輸送に対する比較において、決定することを含む。従って、
薬物の代謝における動物研究全体の結果が、薬物のP糖タンパク質輸送の、相対
的速度または量の点で評価され得る。例えば、イヌに投与される薬物が、優れた
経口バイオアベイラビリティおよびイヌPGPによる低い輸送を有する場合、ヒ
トPGPによる輸送もまた低い場合に、ヒトにおける薬物の経口バイオアベイラ
ビリティは優れていることが予測され得る。逆に、ヒトPGPによる薬物の輸送
が高い場合、次いで、薬物のバイオアベイラビリティは、低いことが予測される
。
する因子ならびに本明細書中に記載されるようなポリペプチドおよび核酸の改変
体およびフラグメントに結合する因子を包含する。この因子は、カニクイザルの
PGP、およびアンチセンス核酸に結合するポリペプチドを含み、この両方が、
以下により詳細に記載される。この因子は、カニクイザルのPGP活性を阻害ま
たは増大し得る(それぞれ、アンタゴニストおよびアゴニスト)。
ターは、細胞膜を横切る分子のカニクイザルのPGP媒介輸送を阻害する因子で
ある。流出アッセイは、カニクイザルのPGPインヒビターが、カニクイザルの
PGP活性を阻害する能力を有するか否か、およびこの阻害が選択的であるか否
かを、スクリーニングおよび/または決定するために実施され得る。流出の例示
的アッセイは、実施例において、以下に記載される。
カニクイザルのPGP(または他の種のPGP)の発現を低減するために、カニ
クイザルのPGP核酸分子に選択的に結合するアンチセンスオリゴヌクレオチド
である。これは、実質的に任意の医学的条件において所望され、ここで、PGP
輸送活性の低減は、例えば、細胞における細胞傷害性因子の維持を増加するため
に所望される。
は「アンチセンス」は、生理学的条件下で、特定の遺伝子を含むDNAまたはそ
の遺伝子のmRNA転写物にハイブリダイズし、そしてそれにより、その遺伝子
の転写および/またはそのmRNAの翻訳を阻害する、オリゴヌクレオチド、オ
リゴデオキシリボヌクレオチド、改変されたオリゴヌクレオチド、または改変さ
れたオリゴデオキシリボヌクレオチドであるオリゴヌクレオチドを記載する。こ
のアンチセンス分子が設計され、その結果、標的遺伝子または転写物とのハイブ
リダイゼーションに関して、標的遺伝子の転写または翻訳を仲介する。当業者は
、そのアンチセンスオリゴヌクレオチドの正確な長さおよびその標的との相補性
のその程度は、選択された特定の標的に依存し、これは、この標的の配列および
その配列を含む特定の塩基を含む。アンチセンスオリゴヌクレオチドが、構築さ
れかつ配置され、その結果、生理学的条件下で、標的と選択的に結合する(すな
わち、生理学的条件下で、標的細胞における任意の他の配列に対してより多く、
標的配列に実質的にハイブリダイズする。配列番号1もしくは3、または対立遺
伝子もしくはホモログゲノム配列および/もしくはcDNA配列に基づいて、当
業者は、本発明に従って、使用のために多数の適切なアンチセンス分子のいずれ
かを容易に選択し、かつ合成し得る。阻害に関して、十分選択的であり、かつ強
力であるために、このようなアンチセンスオリゴヌクレオチドが、この標的に相
補的である、少なくとも10、およびより好ましくは、少なくとも15の保存的
塩基を含むべきであるが、特定の場合、7塩基長と同じくらい短い改変されたオ
リゴヌクレオチドが、アンチセンスオリゴヌクレオチドとして首尾よく使用され
た(Wagnerら、Nature Biotechnol.14:840−8
44、1996)。最も好ましくは、アンチセンスオリゴヌクレオチドは、20
〜30塩基の相補的な配列を含む。その遺伝子またはmRNA転写物の任意の領
域に対するアンチセンスであるオリゴヌクレオチドが選択され得るが、好ましい
実施形態において、このアンチセンスオリゴヌクレオチドは、N末端部位または
5’上流部位(例えば、翻訳開始部位、転写開始部位、またはプロモーター部位
)に対応する。さらに、3’上流領域が、標的化され得る。mRNAスプライシ
ングに対する標的化もまた、当該分野において使用されていたが、代替のmRN
Aスプライシングが生じる場合、あまり好まれ得ない。さらに、このアンチセン
スは、好ましくは、mRNA2次構造が期待されない部位(例えば、Saini
oら、Cell Mol.Neurobiol.14(5):439−457、
1994を参照のこと)およびポリペプチドが結合することが期待されない部位
に、好ましくは、標的化される。従って、本発明はまた、配列番号1または3を
含むカニクイザルのPGP核酸に対応する対立遺伝子または相同なcDNAおよ
びゲノムDNAに相補的であるアンチセンスオリゴヌクレオチドもまた提供する
。
「天然の」デオキシリボヌクレオチド、リボヌクレオチド、またはその任意の組
み合わせからなり得る。つまり、あるネイティブなヌクレオチドの5’末端およ
び別のネイティブなヌクレオチドの3’末端が、ホスホジエステルヌクレオシド
内連結を介して、天然の系として共有結合され得る。これらのオリゴヌクレオチ
ドは、手動または自動合成により実施され得る、当該分野で認識される方法によ
り、調製され得る。それらはまた、ベクターにより、組換え的に産生され得る。
ドはまた、「改変された」オリゴヌクレオチドを含み得る。つまり、このオリゴ
ヌクレオチドは、これらが、これらの標的にハイブリダイズすることを妨げない
が、それらの安定性または標的化を増強するか、またはその他に、それらの治療
的有効性を増強する多数の方法で改変され得る。
(1)そのヌクレオチドの少なくとも2つが、合成ヌクレオシド内連結(すなわ
ち、1つのヌクレオチドの5’末端と別のヌクレオチドの3’末端との間のホス
ホジエステル連結以外の連結)を介して共有結合され、そして/または(2)核
酸と通常会合しない化学基が、このオリゴヌクレオチドに共有結合されたオリゴ
ヌクレオチドを記載する。好ましい合成ヌクレオシド内連結は、ホスホロチオエ
ート、アルキルホスホネート、ホスホロジチオエート、ホスフェートエステル、
アルキルホスホロチオエート(alkylphosphonothioate)
、ホスホラミデート、カルバメート、カルボネート、ホスフェートトリエステル
、アセトアミデート、カルボキシメチルエステルおよびペプチドである。
基および/または糖を有するオリゴヌクレオチドを含む。例えば、改変されたオ
リゴヌクレオチドは、3’位置のヒドロキシル基以外および5’位置のリン酸基
以外の低分子量有機基に共有結合される骨格糖を有するオリゴヌクレオチドを含
む。従って、改変されたオリゴヌクレオチドが、2’−O−アルキル化リボース
基を含み得る。さらに、改変されたオリゴヌクレオチドは、リボースの代わりに
、アラビノースのような糖を含み得る。従って、本発明は、生理学的条件下で、
薬学的に受容可能なキャリアと一緒に、カニクイザルのPGPポリペプチドをコ
ードする核酸と相補的であり、そしてそれとハイブリダイズする改変されたアン
チセンス分子を含む薬学的調製物を、企図する。
イザルのPGPポリペプチドおよびカニクイザルのPGPポリペプチドを含む複
合体に結合する他の分子を含む。この結合分子がインヒビターである場合、この
分子は、カニクイザルのPGPに結合し、その活性を阻害する。カニクイザルの
PGP結合因子が、カニクイザルのPGPに結合するか否かを決定するために、
任意の公知の結合アッセイが使用され得る。例えば、この結合因子は、表面に固
定され得、次いで標識されたカニクイザルのPGPポリペプチドと接触され得る
。次いで、カニクイザルのPGP結合因子と相互作用するカニクイザルのPGP
の量またはカニクイザルのPGP結合因子に結合しない量は、カニクイザルのP
GP結合因子が、カニクイザルのPGPに結合するか否かを決定するために定量
され得る。
的または優先的に結合する多数のサイズおよび型の分子、ならびにカニクイザル
のPGPポリペプチドおよびそれらの結合パートナーの両方の複合体を含む。こ
れらの分子は、種々の供給源に由来し得る。例えば、カニクイザルのPGP結合
因子は、固定された形態において、またはファージディスプレイライブラリーと
して、溶液中で容易に調製され得る変性ペプチドライブラリーをスクリーニング
することにより提供され得る。1つ以上のアミノ酸を含むペプチドのコンビナト
リアルライブラリーもまた、合成され得る。ペプチド合成部分および非ペプチド
合成部分のライブラリーが、さらに合成され得る。
ことにおいて特に有効であり得る。簡潔には、ファージライブラリー(例えば、
m13、fd、またはλファージを使用する)を調製し、従来の方法を使用して
、4〜約80個のアミノ酸残基由来の挿入物をディスプレイする。この挿入物は
、例えば、完全に変性したか、または偏ったアレイを示し得る。次いで、カニク
イザルのPGPポリペプチドに結合するファージ保有挿入物を選択し得る。この
プロセスは、カニクイザルのPGPポリペプチドに結合するファージの再選択の
いくつかのサイクルを介して繰り返され得る。繰り返されるラウンドは、特定の
配列を保有しているファージの富化に導く。DNA配列分析は、発現されたポリ
ペプチドの配列を同定するために行われ得る。カニクイザルのPGPポリペプチ
ドに結合する配列の最小の線形部分が、決定され得る。1つ以上のさらなる変性
残基をその上流または下流に加えた最小の線形部分の一部または全てを含む挿入
物を含む偏ったライブラリーを使用して、この手順を繰り返し得る。酵母ツーハ
イブリッドスクリーニング法はまた、カニクイザルのPGPポリペプチドに結合
するポリペプチドを同定するために使用され得る。従って、本発明のカニクイザ
ルのPGPポリペプチドまたはそのフラグメントが、ペプチドライブラリー(フ
ァージディスプレイライブラリーを含む)をスクリーニングするために、本発明
のカニクイザルのPGPポリペプチドのペプチド結合パートナーを同定かつ選択
するために、使用され得る。このような分子は、記載されるように、スクリーニ
ングアッセイのために、精製プロトコールのために、カニクイザルのPGPの機
能と直接干渉するために、および当業者に明らかである他の目的のために使用さ
れ得る。
る状態の処置に有用である因子についてのリード化合物ならびにそこで同定され
る化合物および因子を同定する有効な方法を提供する。一般的に、スクリーニン
グ方法は、カニクイザルのPGPを介した分子の輸送を阻害または増強する化合
物についてのアッセイを包含する。このような方法は、化合物の、自動化された
ハイスループットスクリーニングに適合される。このような方法の例は、米国特
許第5,429,921号において記載される。
インビトロタンパク質結合アッセイ、検出可能な分子を使用した流出アッセイな
どが含まれる。例えば、タンパク質結合スクリーニングが、カニクイザルのPG
Pへの候補薬理学的因子の結合を迅速に調べるために使用される。この候補薬理
学的因子は、例えば、コンビナトリアルペプチドライブラリーに由来し得る。こ
のようなアッセイのための従来の試薬は、当該分野で公知である。流出の例示的
細胞ベースアッセイは、検出可能に標識された分子の流出が生じ得る条件下で、
候補薬理学的因子と、カニクイザルのPGPを有する細胞とを接触することを含
む。特定の条件は、当該分野で周知であり、そして例えば、Sharomら、B
iochem.Pharmacol.58:571−586、1999およびそ
こで引用される参考文献に記載される。候補薬理学的因子の存在における流出の
低減は、この候補薬理学的因子が、カニクイザルのPGPの流出活性を低減する
ことを示す。候補薬理学的因子の存在における流出の増加は、候補薬理学的因子
が、カニクイザルのPGPの流出活性を増大することを示す。
プチドとして(ここで候補薬理学的因子の結合が、測定されるべきである)、ま
たはカニクイザルのPGPポリペプチドを含む細胞または他の膜で包囲された空
間として、アッセイ混合物に添加され得る。後者のアッセイ構成において、細胞
または他の膜で包囲された空間は、予め装填されるポリペプチドとして、または
核酸としてカニクイザルのPGPを含み得る(例えば、カニクイザルのPGPを
含む発現ベクターでトランスフェクトされた細胞)。本明細書中に記載されたア
ッセイにおいて、カニクイザルのPGPポリペプチドが、組換え的に産生され得
るか、または生物学的抽出物から単離され得るが、好ましくは、インビトロで合
成される。カニクイザルのPGPポリペプチドは、別のポリペプチド(例えば、
タンパク質−タンパク質結合を提供もしくは増強するか、またはアッセイ条件下
で、カニクイザルのPGPポリペプチドの安定性を増強することが可能なポリペ
プチド)との、カニクイザルのPGPポリペプチドの融合物を含むキメラタンパ
ク質を含む。カニクイザルのPGPポリペプチドに融合されたポリペプチドまた
はそのフラグメントはまた、例えば、免疫学的認識によるか、または蛍光標識に
より、融合タンパク質を容易に検出する手段を提供し得る。
イ混合物が、種々の濃度に対して異なる応答を得るために、異なる因子の濃度と
平行して行われる。代表的に、これらの濃度の1つは、ネガティブコントロール
(すなわち、因子のゼロ濃度で、または、アッセイ検出の限度以下の因子の濃度
で)として働く。候補因子は、多数の化学クラスを含むが、代表的に、それらは
有機化合物である。好ましくは、候補薬理学的因子は、小さい有機化合物であり
、すなわち、それらは、50より大きいが、約2500未満の分子量を有する化
合物)である。候補因子は、ポリペプチドと構造的な相互作用に必要である官能
基の化学基を含み、そして代表的には、少なくとも1つのアミン基、カルボニル
基、ヒドロキシル基またはカルボキシル基、好ましくは少なくとも2つの官能基
の化学基およびより好ましくは少なくとも3つの官能基の化学基を含む。この候
補因子は、1つ以上の上記同定された官能基で置換された環状炭素または複素環
式構造および/または芳香族構造もしくは多芳香族構造を含み得る。候補因子は
また、生体分子(例えば、ペプチド、サッカリド、脂肪酸、ステロール、イソプ
レノイド、プリン、ピリミジン、上記の誘導体もしくは構造的アナログ、または
それらの組み合わせなど)であり得る。この因子が核酸である場合、この因子は
、代表的にはDNAまたはRNA分子であるが、非天然結合またはサブユニット
を有する改変された核酸もまた、企図される。
供給源から得られる。例えば、多数の手段が、広範な種々の有機化合物および生
体分子の無作為および指向された合成に利用可能であり、これは、無作為化され
たオリゴヌクレオチドの発現、合成有機コンビナトリアルライブラリー、無作為
ペプチドのファージディスプレイライブラリーなどを含む。あるいは、細菌抽出
物、真菌抽出物、植物抽出物および動物抽出物の形態における天然の化合物のラ
イブラリーが、利用可能であるかまたは容易に産生される。さらに、天然にそし
て合成的に産生されるライブラリーおよび化合物が、従来の化学的手段、物理学
的手段、および生化学的手段を通じて容易に改変され得る。さらに、既知の薬理
学的因子は、指向されるかまたは無作為の化学的改変(例えば、アシル化、アル
キル化、エステル化、アミド化(amidification)などに供され、
その因子の構造的アナログを産生し得る。
た分子のライブラリーであり、ここで、このインヒビターの供給源は、より多く
もしくはより少ない化学的部分または異なった化学的部分を保有するように、分
子の1以上の位置において変化している。アナログインヒビターのライブラリー
を作成する際に分子を作製するために行なわれる構造的変化は、方向付けられる
か、無作為であるか、あるいは、方向付けられるかまたは無作為の組み合わせの
置換であり得るかそして/または付加であり得る。組換えライブラリーの調製の
当業者は、既存のP−糖タンパク質インヒビターに基づいたこのようなライブラ
リーを容易に調製する。
、中性タンパク質(例えば、アルブミン)、界面活性剤などの試薬が挙げられ、
これらは、最適なタンパク質−タンパク質および/またはタンパク質−核酸結合
を容易にするために使用され得る。このような試薬はまた、反応物成分の非特異
的またはバックグラウンドの相互作用を低減し得る。プロテアーゼインヒビター
、ヌクレアーゼインヒビター、抗微生物剤などのようなアッセイの効率を改善す
る他の試薬もまた使用され得る。
PGPが、薬物としての化合物の制御量の流出を媒介する条件下でインキュベー
トされる。候補薬学的因子のカニクイザルPGPへの結合を決定するために、混
合物を結合を可能にする条件下でインキュベートする。成分の添加の順序、イン
キュベーション温度、インキュベーションの時間、およびアッセイの他のパラメ
ーターは、容易に決定され得る。このような実験法は単にアッセイパラメーター
の最適化を含むのではなく、アッセイの基本的な組成物をも含む。インキュベー
ション温度は、代表的には、約4℃と40℃の間である。インキュベーション時
間は、好ましくは、迅速な高度なスループットスクリーニングを容易にするため
に最小化され、そして代表的には、1分と10時間との間である。
ドと候補薬学的因子との間の特異的な結合のレベルを、使用者に利用可能な任意
の簡便な方法によって検出する。細胞遊離結合型アッセイについて、分離段階は
しばしば、非結合成分から結合成分を分離するために使用される。この分離段階
は、種々の方法によって達成され得る。簡便には、少なくとも1つの成分が固体
基板上に固定され、そこから非結合成分は簡単に分離され得る。固体基板は、広
範な種々の材料から作製され得、そして広範な種々の形状(例えば、マイクロタ
イタープレート、マイクロビーズ、ディップスティック、ビーズ粒子など)であ
り得る。この基板は、好ましくは、ノイズに対するシグナル率を最大にするため
に、主にバックグラウンド結合を最小化するため、ならびに、分離の緩和および
費用のために選択される。
とによって、マイクロタイタープレートウェルなどのリザーバを空にするかもし
くは希釈することによって、ビーズ、粒子、クロマトグラフィーカラムをリンス
することによって、または洗浄溶液または溶媒を使用してろ過することによって
、影響され得る。分離段階は、好ましくは、多数のリンスまたは洗浄を含む。例
えば、固体支持体がマイクロタイタープレートである場合、ウェルは洗浄溶液を
使用して数回洗浄され得、この洗浄溶液は、代表的には、塩、緩衝液、界面活性
剤、非特異的タンパク質などの特定の結合において沈殿しないインキュベーショ
ン混合物のこれらの成分を含む。固体基板が磁性ビーズである場合、このビーズ
は、洗浄液を使用して1回以上洗浄され得、そして磁石を使用して単離され得る
。
おいて、検出は影響され得る。直接的または間接的に検出可能な産物(例えば、
カルセイン(calcein)AMまたはローダミン123のような蛍光性分子
)の輸送が好ましい。細胞遊離結合アッセイについて、成分の1つは、通常、検
出可能な標識を含むかまたはこれに結合される。直接的検出(例えば、放射性活
性、ルミネセンス、光学または電子密度など)または間接的検出(例えば、FL
AGエピトープなどのエピトープタグ、西洋ワサビペルオキシダーゼなどの酵素
タグなど)を提供するような広範な種々の標識が使用され得る。この標識は、カ
ニクイザルPGPポリペプチドまたは候補薬学的因子に結合し得る。
イ成分に依存する。例えば、固体基板に結合される間かまたは固体基板から続い
て分離される間、標識は検出され得る。標識は、光学密度または電子密度、放射
性排出物、非放射性エネルギー伝達などを介して直接的に検出され得るかまたは
抗体結合体、ストレプトアビジン結合体などを使用して間切的に検出され得る。
これらの標識を検出する方法は、当該分野で周知である。
抗体フラグメントである。抗体は、免疫学の科学の当業者にとって周知である。
本明細書で使用される場合、用語「抗体」は、インタクトな抗体分子だけではな
く、カニクイザルPGP結合能力を保持する抗体分子のフラグメントも意味する
。このようなフラグメントはまた、当該分野で周知であり、インビトロおよびイ
ンビボの両方において調節的に使用される。特に、本明細書中で使用される場合
、用語「抗体」は、インタクトな免疫グロブリン分子だけでなく、周知の活性フ
ラグメントF(ab’)2、およびFabをも意味する。インタクトな抗体のF
cフラグメントを欠くF(ab’)2およびFabフラグメントは、循環からよ
り迅速にクリアーし、そして、インタクトな抗体のより非特異的でない組織結合
を有し得る(Wahlら、J.Nucl.Med.24:316−325(19
83))。
ントを利用して当該分野で公知の任意の方法を使用して作成され得る。あるいは
、抗体は、カニクイザルPGP活性を阻害するカニクイザルPGPに特異的なポ
リクローナル抗体であり得る。ポリクローナル抗体の調製および使用はまた、当
業者に公知である。
プに対する抗体の結合に有意に関与している(一般的には、Clark,W.R
.(1986)The Experimental Foundations
of Medern Immunology Wiley&Sons,Inc.
,New York;Roitt,I.(1991)Essential Im
munology,第7版、Blackwell Scientific Pu
blications,Oxfordを参照のこと)。pFc’およびFc領域
は、例えば、相補体カスケードのエフェクターであるが、抗原結合に関与してい
ない。pFc’領域が酵素学的に切断されているかまたはpFc’領域なしで産
生された抗体、F(ab’)2フラグメントと命名される、は、インタクトな抗
体の抗原結合部位の両方を保持する。同様に、Fc領域が酵素学的に切断された
かまたはFc領域なしで産生された抗体、Fabフラグメントと命名される、は
、インタクトな抗体分子の抗原結合部位の1つを保持する。さらに進むと、Fa
bフラグメントは、共有結合した抗体軽鎖およびFdと示される抗体重鎖の一部
からなる。Fdフラグメントは、抗体特異性の主要な決定因子であり(単一のF
dフラグメントは、抗体特異性を変更することなく10までの異なった軽鎖と関
連し得る)そしてFdフラグメントは単離の際、エピトープ結合能力を保持する
。
R)が存在し、これは、抗原のエピトープおよび枠組み領域(FR)と直接的に
相互作用し、この枠組み領域は、パラトープの三次構造を維持する(一般的には
、Clark,1986;Roitt,1991を参照のこと)。IgG免疫グ
ロブリンの重鎖Fdフラグメントおよび軽鎖の両方において、3つの相補性決定
領域(CDR1からCDR3)によってそれぞれ分離された4つの枠組み領域が
存在する(FR1からFR4)。CDR、特にCDR3領域、より特定には重鎖
CDR3が、抗体特異性について責任がある。
われている。このFc領域は、相補体活性化に関与しており、そして、抗原結合
に関与していない。Fc’領域が酵素学的に切断されたかまたはFc’領域なし
で産生された抗体、「F(ab’)2」として命名される、は、インタクトな抗
体の抗原結合部位の両方を保持する。同様に、Fc領域が酵素学的に切断された
かまたはFc領域なしで産生された抗体、「Fab’」フラグメントとして命名
される、は、インタクトな抗体の抗原結合部位の1つを保持する。Fab’フラ
グメントは、共有結合した抗体軽鎖および抗体重鎖の一部からなり、「Fd」と
示される。Fdフラグメントは、抗体特異性の主要な決定因子である(単一のF
dフラグメントは、抗体特異性を変更することなく10までの異なった軽鎖と関
連し得る)。単離されたFdフラグメントは、抗原エピトープに特異的に結合す
る能力を保持する。
カニクイザルPGPモノクローナル抗体の抗原結合Fab’部分、ならびに関連
したFRおよびCDR領域の配列は、当該分野で慣例的なアミノ酸配列決定方法
を使用して決定され得る。哺乳動物抗体の非CDR領域は、元の抗体のエピトー
プ特異性を保持する限り、非特異的または異種特異的抗体の対応する領域と置換
され得ることが確立されている。非ヒトCDRがヒトFRおよび/またはFc/
pFc’領域に共有結合され機能的な抗体を産生する「ヒト化」抗体の開発およ
び使用のために、この技術は有用である。カニクイザルPGP活性を阻害する非
ヒト動物(例えば、マウス)抗体が同定される場合、抗体をヒト化する技術は特
に有用である。これらの非ヒト化動物抗体は、本発明に従う方法において、ヒト
被験体の処置における使用のためにヒト化され得る。マウス抗体をヒト化するた
めの方法の例は、米国特許第4,816,567号、同5,225,539号、
同5,585,089号、同5,693,762号および同5,859,205
号において提供される。他の抗体(抗原結合能力を有するインタクトな抗体のフ
ラグメントを含む)は、しばしば、「キメラ」抗体としていわれる。
クローナル抗体のF(ab’)2、およびFabフラグメント;抗カニクイザル
PGP抗体のFcおよび/またはFRおよび/またはCDR1および/またはC
DR2および/または軽鎖CDR3領域が相同なヒトまたは非ヒト配列によって
置換されたキメラ抗体;抗カニクイザルPGP抗体のFRおよび/またはCDR
1および/またはCDR2および/または軽鎖CDR3領域が、相同なヒトまた
は非ヒト配列によって置換されたキメラF(ab’)2フラグメント;ならびに
FRおよび/またはCDR1および/またはCDR2および/または軽鎖CDR
3領域が相同なヒトまたは非ヒト配列によって置換されたキメラFabフラグメ
ント抗体を提供する。
4由来の「ドミナントネガティブな」ポリペプチドを含む。ドミナントネガティ
ブなポリペプチドは、細胞性機構と相互作用することにより、活性ポリペプチド
が細胞性機構と相互作用することを妨げるかまたは活性ポリペプチドと競合する
、ポリペプチドの不活性な改変体であり、これによって、活性ポリペプチドの効
果を減少する。例えば、リガンドと結合するが、リガンドの結合に応答してシグ
ナルを伝達しないドミナントネガティブなレセプターは、リガンド発現の生物学
的効果を減少し得る。
おける発現の最終結果は、分子輸送のようなPGP活性の減少である。当業者は
、1つ以上のドミナントネガティブな改変体ポリペプチドを作製する標準的な変
異誘発技術を使用して、カニクイザルPGPポリペプチドのドミナントネガティ
ブ改変体の能力を評価し得る。例えば、カニクイザルPGPポリペプチドの本明
細書中に含まれる教示を考えれば、当業者は、部位特異的変異誘発、走査変異誘
発、部分的な遺伝子欠損または短縮などによって、カニクイザルPGPポリペプ
チドの配列を改変し得る。例えば、米国特許第5,580,723号およびSa
mbrookら、Molecular Cloning:A Laborato
ry Manual,Second Edition,Cold Spring
Harbor Laboratory Press,1989を参照のこと。
次いで、当業者は、変異誘発されたポリペプチドの集団を、カニクイザルPGP
活性における減少および/またはこのような活性の保持について試験し得る。カ
ニクイザルPGPポリペプチドのドミナントネガティブな改変体を作製および試
験するための方法は、当業者に明らかである。
えば、本発明のカニクイザルPGP核酸は、オリゴヌクレオチドプローブとして
有用である。このようなオリゴヌクレオチドプローブは、同一または実質的に類
似の核酸配列を有するゲノムライブラリークローンまたはcDNAライブラリー
クローンを同定するために、本明細書中で使用される。ストリンジェントなハイ
ブリダイゼーション条件下で所望の配列にハイブリダイズし得る、適切なオリゴ
ヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドのセット、そのようなオリゴヌクレオチ
ドまたはオリゴヌクレオチドのセットの改変体もしくはそのフラグメントあるい
はアンチセンス相補体は、当該分野で周知の手段によって合成され得(例えば、
Synthesis and Application of DNA and
RNA,S.A.Narang編、1987、Academic Press
,San Diego,CAを参照のこと)、そして当該分野で公知の技術によ
って、その所望の配列、その改変体またはフラグメントを同定および単離するた
めのプローブとして使用され得る。核酸ハイブリダイゼーションおよびクローン
同定の技術は、Sambrookら、Molecular Cloning、A
Laboratory Manual、第2版、Cold Spring H
arbor Laboratory Press,Plainview、NY(
1989)に開示される。所望の核酸配列、あるいはその改変体またはフラグメ
ントの検出を容易にするために(クローニング目的または配列の存在の単なる検
出のいずれの目的に関わらず)、上記のプローブは、検出可能な基で標識され得
る。このような検出可能な基は、検出可能な物理的または化学的特性を有する任
意の物質であり得る。このような物質は、核酸ハイブリダイゼーションの分野で
良く開発されており、一般に、このような方法において有用な多くの標識が、本
発明に適用され得る。特に有用なのは、放射性標識である。十分なシグナルを提
供しそして十分な半減期を有する任意の放射性標識が、使用され得る。一本鎖の
場合、オリゴヌクレオチドは、キナーゼ反応を使用して放射性標識され得る。あ
るいは、オリゴヌクレオチドはまた、ビオチン、酵素または蛍光基のような非放
射性マーカーで標識された場合にも、核酸ハイブリダイゼーションプローブとし
て有用である。例えば、Leary,J.J.ら、Proc.Natl.Aca
d.Sci.(USA)80:4045(1983);Renz,M.ら、Nu
cl.Acids Res.12:3435(1984);およびRenz,M
.EMBO J.6:817(1983)を参照のこと。
ドとして有用であり得る。例えば、これは、カニクイザルPGP「ノックアウト
」表現型を誘導するために、このアンチセンスオリゴヌクレオチドを動物に送達
することによる。遺伝子発現をブロックするためのアンチセンスRNAプローブ
の投与は、Lichtenstein,C.,Nature 333:801−
802(1988)に議論される。
物を作製するために使用され得る。「トランスジェニック動物」は、細胞内に人
工的に挿入されたDNAを含む細胞を有する動物であり、DNAは、その細胞か
ら発生する動物のゲノムの一部となる。好ましいトランスジェニック動物は、霊
長類、マウス、ラット、ウシ、ブタ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、イヌおよびネコであ
る。トランスジェニック実験に適切な動物は、Charles River(W
limington,MA)、Taconic(Germantown,NY)
、Harlan Sprague Dawley(Indianapolis,
IN)などの標準的な商業的供給源から入手され得る。特定の疾患に関連する特
定の特性を有するトランスジェニック動物は、それらの疾患に対する種々の薬物
および処置方法の影響を研究するために使用され得、従って、多くのヒト疾患の
研究の遺伝モデルとして機能し得る。従って、本発明は、細胞膜を通過する分子
の輸送に関与する障害の研究のためのモデルとしての、カニクイザルPGPノッ
クアウト動物およびトランスジェニック動物の使用を意図する。当業者に公知の
種々の方法が、本発明に関連するトランスジェニック動物の作製に利用可能であ
る。
組換え系によって達成され得る。PGP-/-ノックアウト表現型を有する、得ら
れたトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、カニクイザルPGPについてトラン
スジェニックにされ得、そしてカニクイザルPGPのモジュレーター(アゴニス
トまたはアンタゴニスト/インヒビター)としての化合物のスクリーニングのモ
デルとして使用され得る。この様式で、このような治療薬物が同定され得る。
し、カニクイザルPGPの正常または変異体形態を構成的または誘導的に発現す
るトランスジェニック動物を作製し得る。これらの動物は、細胞におけるカニク
イザルPGPの役割および機能を規定するための研究において有用である。
細胞においてカニクイザルPGP活性を阻害するための方法を包含する。本発明
はさらに、細胞におけるカニクイザルPGP活性を減少または増加するための方
法を提供する。1つの実施形態において、この方法は、哺乳動物細胞に、その哺
乳動物細胞の分子輸送を阻害するのに有効な量のカニクイザルPGPの核酸また
はポリペプチドを接触させる工程を包含する。このような方法は、例えば、薬物
耐性および薬物バイオアベイラビリティの減少に関与する機構を解明する目的の
ために、インビトロで有用である。
包含する。カニクイザルPGPの量は、細胞または被験体における膜貫通輸送を
増加するのに有効な量の本発明のPGP核酸またはPGPポリペプチドを、細胞
に接触させるかまたは被験体に投与することによって、このような細胞または被
験体において増加され得る。PGP活性の増加は、本明細書中に記載のアッセイ
(例えば、膜貫通輸送のアッセイ)によって測定され得る。
なる用量と共に、所望の応答を生成する薬学的調製物の量である。もちろん、こ
のような量は、処置される特定の状態、その状態の重篤度、個々の患者のパラメ
ーター(年齢、身体的条件、サイズおよび体重を含む)、処置の継続時間、併用
治療(もしあれば)の特性、特定の投与経路、およびこのような医療従事者の知
識および技術内の因子に依存する。最大用量(すなわち、正確な医学的判断に従
う、最も高い安全用量)が使用されることが、一般的に好ましい。しかし、患者
が、医学的理由、心理学的理由または実質的に任意の他の理由のために、より低
用量または許容可能な用量を要求し得ることは、当業者に理解される。
g/日である。50〜500mg/kgの範囲の用量が適切であり、そして1日
あたり1回または数回で投与される。より低い用量は、他の投与形態(例えば、
静脈内投与)から生じる。被験体における応答が適用した初回用量で不十分であ
る場合には、より高い用量(すなわち、異なるより局在化した送達経路による、
効果的なより高い用量)が、患者の耐性が許容する程度に使用され得る。1日あ
たり複数回の用量が、適切な全身の化合物レベルを達成するために意図されるが
、化合物が、徐放性医薬または持続放出医薬として調製される場合には、より少
数回の用量が与えられる。
的に受容可能な組成物において適用され得る。このような調製物は、塩、緩衝化
剤、保存剤、適合性のキャリア、および必要に応じて他の治療剤を、慣用的に含
み得る。医薬において使用される場合、塩は、薬学的に受容可能であるが、薬学
的に受容可能でない塩が、その薬学的に受容可能な塩を調製するために都合よく
使用され、そして本発明の範囲から排除されない。このような薬理学的かつ薬学
的に受容可能な塩としては、以下の酸から調製される塩が挙げられるが、これら
に限定されない:塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸、マレイン酸、酢酸、
サリチル酸、クエン酸、ギ酸、マロン酸、コハク酸など。また、薬学的に受容可
能な塩は、アルカリ金属塩またはアルカリ土類金属塩(例えば、ナトリウム塩、
カリウム塩またはカルシウム塩)として調製され得る。
Pの核酸およびポリペプチドは、必要に応じて、薬学的に受容可能なキャリアと
合わせられ得る。本明細書中で使用される場合、用語「薬学的に受容可能なキャ
リア」とは、ヒトへの投与に適切な、1以上の適合性の固体充填剤または液体充
填剤、希釈剤あるいは包囲物質を意味する。用語「キャリア」とは、適用を容易
にするために活性成分と合わせられる、有機成分または無機成分(天然性または
合成性)を示す。薬学的組成物の成分は、所望の薬学的効力を実質的に損なう相
互作用が存在しない様式で、本発明の分子と、および互いに、混合され得る。
クエン酸(塩);およびリン酸(塩)が挙げられる。
ル、パラベンおよびチメロサールのような、適切な保存剤を含み得る。
される特定の化合物、処置される状態の重篤度、および治療効力に必要とされる
投薬に依存する。一般的に言うと、本発明の方法は、医学的に受容可能な任意の
投与様式を使用して行われ、この様式は、臨床的に受容可能でない有害な効果を
引き起こすことなく効果的なレベルの活性化合物を生成する任意の様式を意味す
る。このような投与様式としては、経口経路、直腸経路、局所経路、鼻内経路、
経皮(interdermal)経路または非経口経路が挙げられる。用語「非
経口」とは、皮下、静脈内、髄腔内、筋内または注入が挙げられる。静脈内経路
または筋内経路が、特にではないが、長期の治療および予防に適切である。
任意の方法によって調製され得る。全ての方法は、活性因子を、1以上の補助的
成分を構成するキャリアと会合させる工程を包含する。一般に、組成物は、活性
化合物を、液体キャリア、細粒固体キャリアまたは両方と、均一かつ密接に会合
させ、次いで、必要に応じて、生成物を形付けることによって調製される。
ジ)として存在して、これらは各々、所定の量の活性化合物を含む。他の組成物
としては、水性の液体または非水性の液体(例えば、シロップ、エリキシルまた
はエマルジョン)中の懸濁液が挙げられる。
またはカニクイザルPGPの核酸およびポリペプチドの滅菌水性調製物を含み、
この調製物は、好ましくは、レシピエントの血液と等張性である。この水性調製
物は、適切な分散剤または湿潤剤、および懸濁剤を使用して、公知の方法に従っ
て処方され得る。滅菌注射用調製物はまた、非毒性の非経口的に受容可能な希釈
剤または溶媒中の滅菌の注射可能な溶液または懸濁液(例えば、1,3−ブタン
ジオール中の溶液)であり得る。使用され得る受容可能なビヒクルおよび溶媒と
しては、とりわけ、水、リンゲル溶液、および等張性の塩化ナトリウム溶液であ
る。さらに、滅菌の不揮発性油が、溶媒または懸濁媒体として都合よく使用され
る。この目的のために、任意の無菌の(bland)不揮発性油が使用され、こ
れには、合成のモノグリセリドまたはジグリセリドが挙げられる。さらに、オレ
イン酸のような脂肪酸が、注射剤の調製物に使用され得る。経口投与、皮下投与
、静脈内投与、髄腔内投与、筋内投与などに適切なキャリア処方物は、Remi
ngton’s Pharmaceutical Sciences,Mack Publishing Co.,Easton,Paに見い出され得る。
elayed release)または持続放出(sustained rel
ease)送達系(例えば、上記で議論される生物学的/化学的ベクター)が挙
げられ得る。このような系は、活性化合物の繰り返しの投与を回避し得、これが
、被験体および主治医に対する簡便性を増加する。多くの型の放出送達系が利用
可能であり、当業者に公知である。長期持続放出移植片の使用が所望され得る。
本明細書中で使用される長期放出とは、その移植片が、少なくとも30日間、そ
して好ましくは60日間、治療レベルの活性成分を送達するように構築および配
置されることを意味する。長記持続放出移植片は、当業者に周知であり、そして
これらには、上記の放出系のいくらかが含まれる。
実施例は、本発明の実施形態を例示するために単に意図され、本発明の範囲を限
定すると解釈されない。
acaca fascicularis)mRNAを使用して調製した。ヒトP
−糖タンパク質DNAプローブを用いて、P−糖タンパク質クローンについて、
このライブラリーをスクリーニングした。クローンを、標準的な手順に従って、
単離し、精製し、そして配列決定した。
Stratageneによって調製された。このテンプレートを用いて、クロー
ン72/73および79/77 1500を得た。
ーを、ヒトPGP(Genbank登録番号M14758)から設計した。プラ
イマーはまた、λZAP IIベクター配列に基づいた。後期のプライマーを、
サル配列またはサル/ヒト配列の組み合わせに基づいて設計した。使用されたす
べてのプライマーを以下に列挙する。
ーを使用して実施した。PCR産物を、アガロースゲルにおいて分析し、そして
有望なバンドを、製造業者の指示に従ってQiaquick Gel Extr
action Kit(Qiagen)を使用して精製した。これらのバンドを
、pCR2.1中に連結し、そして製造業者の指示に従ってInvitroge
nのTA Cloningプロトコールを使用してINVaFに形質転換した。
白色コロニーを拾い、そして制限消化によって分析した。製造業者の指示に従っ
てPromega Wizard Plus Miniprep DNA Pu
rification Systemを用いて、有望なクローンからDNAを調
製し、そしてABI 377シークエンサーで配列決定した。
トを、Klentaqを使用する38サイクルのPCR(94℃にて5分間;次
いで、94℃にて30秒間、63℃にて45秒間、72℃にて60秒間の38サ
イクル;72℃にて7分間で終了)後に得た。これを、m13Fおよびm13R
プライマーを使用して配列決定した。さらなる配列決定プライマーであるps0
74およびps075を、得られた配列に基づいて設計した。これにより、ヒト
PGP 1553〜3361に対応する、配列決定された合計約1.85kbが
生じた。
トを、Klentaqを使用する38サイクルのPCR(94℃にて5分間;次
いで、94℃にて30秒間、63℃にて45秒間、72℃にて60秒間の38サ
イクル;72℃にて7分間で終了)後に得た。これを、プライマーとしてm13
Fおよびm13Rを使用して配列決定した。さらなる配列決定プライマーである
ps080およびps081を、得られた配列に基づいて設計した。ヒトpgp 3102〜4525に対応する配列が得られた。この配列は、カニクイザルP
GP cDNAについての停止コドンを含んだ。
、製造業者に従って使用して、カニクイザル肝臓由来の総RNAを調製した。一
本鎖cDNAをこのRNAから、製造業者の指示に従ってGIBCO BRL
Life TechnologiesからのSuperscript Kitを
使用して調製した。これを、クローン70/78Cについてのテンプレートとし
て使用した。プライマーps070およびps078を用いて、約1.0kbの
フラグメントを肝臓cDNAから、Klentaqを使用する38サイクルのP
CR(94℃にて5分間;次いで、94℃にて30秒間、65℃にて45秒間、
72℃にて60秒間の38サイクル;72℃にて7分間で終了)後に得た。これ
を、プライマーとしてm13Fおよびm13Rを使用して配列決定した。ヒトp
gpに対応する配列が得られた。この配列は、ヒトpgp 670〜1638に
対応する。
、製造業者の指示に従って使用して、カニクイザル肝臓由来の総RNAを調製し
た。ClontechからのSMART Race cDNA Amplifi
cation Kitを使用して、このRNAから第一鎖cDNAを調製した。
このキットに提供されたUniversal Primerおよび遺伝子特異的
プライマー(ps088)をこのテンプレートと共に、Advantage 2 Taqを使用する40サイクルのTouchdown PCR(94℃にて5
分間:次いで、94℃にて30秒間、72℃にて120秒間、94℃にて30秒
間の5サイクル;94℃にて30秒間、70℃にて45秒間、72℃にて120
秒間の5サイクル;94℃にて30秒間、68℃にて45秒間、72℃にて12
0秒間の30サイクル;72℃にて7分間で終了)に用いた。750ヌクレオチ
ドのフラグメントが得られ、m13Fおよびm13Rプライマーで配列決定され
た。これは、開始コドンを含むcDNAの5’末端を表した。これは、ヒト配列
275〜775(ヒト配列についての開始コドンは、433位である)に対する
良好な相同性を示した。
チドのフラグメントを、ゲルにおいて単離し、そして製造業者の指示に従ってQ
iaquick Gel Extraction Kit(Qiagen)を使
用して精製した。クローン70/78Cを、SacI/EcoRIで消化し、9
16ヌクレオチドのフラグメントを、ゲルにおいて単離し、そして製造業者の指
示に従ってQiaquick Gel Extraction Kit(Qia
gen)を使用して精製した。これらを、pUC19 SmaI/EcoRI/
SAP中に一緒に連結した。
グメントを、ゲルにおいて単離し、そして製造業者の指示に従ってQiaqui
ck Gel Extraction Kit(Qiagen)を使用して精製
した。クローン79/77C1500を、KpnI/DraIで消化した。1.
1kbのフラグメントを、ゲルにおいて単離し、そして製造業者の指示に従って
Qiaquick Gel Extraction Kit(Qiagen)を
使用して精製した。これらを、pUC19 EcoRI/SmaI/SAP中に
連結した。
メントを、ゲルにおいて単離し、そして製造業者の指示に従ってQiaquic
k Gel Extraction Kit(Qiagen)を使用して精製し
た。
トを、ゲルにおいて単離し、そして製造業者の指示に従ってQiaquick
Gel Extraction Kit(Qiagen)を使用して精製した。
(Stratagene)中に形質転換した。有望なクローンを、制限消化によ
って同定した。最終的なクローンの正体を、配列決定によって確認した。
。このコード配列は、ヌクレオチド100〜3940からなり、1280アミノ
酸のポリペプチド(配列番号2)を生成する。
て、cDNA中における予想外の9塩基対挿入物を含む多型性の存在が示された
。この多型性は、同一個体のサル由来のゲノム配列中においても存在する。この
多型性は、アミノ酸92の後ろに3つのアミノ酸の挿入を生じた。この対立遺伝
子改変体のヌクレオチド配列を、配列番号3として表す。このコード配列は、ヌ
クレオチド100〜3949からなり、1283アミノ酸のポリペプチド(配列
番号4)を生成する。プラスミドpUC19中にクローン化されたカニクイザル
PGP cDNA(配列番号3)を、ATCCに寄託した(受託番号PTA−8
09)。
る耐性を付与するベクター中のLLC−PK1細胞のクローン化集団中に導入す
る。LLC−PK1細胞を、American Type Culture C
ollectionsから得て、そして7%胎仔ウシ血清を補充した培地199
中で増殖した。LLC−PK1細胞を、トランスフェクション前に再クローン化
して、細胞集団の均質性を確証する。簡潔には、カニクイザルPGP cDNA
を、p222CMVベクター中に組み込む。このベクターは、エプスタインバー
ウイルスについてのOriP配列およびEBNA−1遺伝子産物に基づいたp2
20.2エピソームベクター系に由来する(Sugdenら、Mol.Cell
Biol.5:410−413、1985;Yatesら、Nature(L
ond.)313:812−815、1985)。PGP cDNAを、サイト
メガロウイルス(CMV)極初期プロモーターの制御下におく。このベクターは
、ハイグロマイシンBに対する耐性を付与する。細胞(0.4mL中)およびD
NA(10〜20μg)を、2mmギャップ(gap)細胞、100V、250
0μFキャパシタンスおよび72ohm抵抗を使用して、BTX Electr
o cell manipulator model 600を用いるエレクト
ロポレーションによってトランスフェクトした。エレクトロポレーション後、細
胞を、10%コンフルエンスでマルチウェルプレート(48ウェル、Corni
ng Costar)にプレーティングした。トランスフェクションの1〜2日
後、ハイグロマイシンBを、最終濃度400〜600μg/mlで導入する。細
胞に、2〜4日おきに再給餌し、そして400〜600μg/mlハイグロマイ
シンB中で6〜8日間増殖させ、この時点で野生型細胞のバルクを剥離した。ハ
イグロマイシンBを、100μg/mlまで減少させ、そしてこの濃度のハイグ
ロマイシンB中で維持する。14〜18日後、このウェルを検査し、そして単一
コロニーを含むウェルをトリプシン処理し、そしてバルク培養物へとスケールア
ップする。PGPの発現を、TranswellsTM中のビンブラスチン(0.
1uM)輸送の分極(polarization)によって測定する。
answellsTMを、側底側空間に0.6mL培地を添加し、そして頂端側空
間に0.1mL培地を添加することによって調製する。細胞を、1挿入物あたり
4×104細胞で播種し(代表的に0.05mL〜0.15mL中)、2〜4日
おきに新鮮培地で再給餌し、そして播種後4〜8日目に輸送研究に使用する。輸
送アッセイを、10mM HEPESで緩衝化したハンクス平衡生理食塩水(H
BSS)中で実施する(pH7〜7.2)。細胞単層を、輸送アッセイにおいて
使用する前に、HBSSでリンスする。輸送を、頂端側から側底側(A→B)お
よび側底側から頂端側(B→A)の方向の両方の傾斜条件下で測定する。1回の
決定につき、少なくとも二連の単層を使用する。所望される時点で、サンプルを
、レシーバーチャンバー(頂端側チャンバーまたは側底側チャンバー)から回収
する。輸送された化合物の量の定量は、UVまたは質量分析検出での液体シンチ
レーション計数(ビンブラスチン)またはHPLCによる。
細胞中で発現させる。(Sarkadiら、J.Biol.Chem.267:
4854−4858、1992)の方法に従って、膜を調製し、そして使用まで
−80℃で保存する。ATPaseアッセイを、96ウェルマイクロタイタープ
レートにおいて実施する。アッセイを、(Sarkadiら、1992、および
Druekesら、Anal.Biochem.230:173−177、19
95)の方法の改変版を使用して実施する。
ジチオトレイトール、および5mMアジ化ナトリウムを含有する緩衝液中に40
μg膜、20μMベラパミル(ポジティブコントロール)または試験薬物、およ
び3〜5mM MgATPを含む0.06mlの反応混合物を、37℃で20分
間インキュベートする。100μMオルトバナジン酸ナトリウムを含む最初の反
応混合物を、並行してアッセイする。オルトバナジン酸塩は、ヌクレオチド結合
部位にMgADPを補足することによって、PGPを阻害する。従って、オルト
バナジン酸塩の存在下で測定されるATPase活性は、非PGP ATPas
e活性を表し、そしてオルトバナジン酸塩なしで生成された活性から差し引かれ
て、バナジン酸塩感受性ATPase活性を生成し得る。30μlの10%SD
S+消泡剤Aの添加によって、反応を停止する。2つのさらなる反応混合物(オ
ルトバナジン酸塩+および−)(しかし、MgATPを含まない)もまた調製し
、そして他のものと共にインキュベートし、次いで、SDSおよびMgATPを
補充して、時間=0分目の反応を表す。インキュベーションに次いで、15mM
酢酸亜鉛:10%アスコルビン酸(1:4)中の35mMモリブデン酸アンモニ
ウムを200μl添加し、そしてさらに20分間37℃にてインキュベートする
。無機ホスフェートの遊離を、800nmでのその吸光度によって検出し、そし
てホスフェートの検量線に対してこの吸光度を比較することによって、定量する
。
イを、Sharomら(Biochem.Pharmacol.58:571−
586、1999)によって記載されたように実施する。
定する。コントロール細胞は、代表的に、1と3との間のB→A/A→B比を示
す。PGPトランスフェクト細胞は、より高い比率を示す。cDNA由来のカニ
クイザルの発現は安定である。
度依存性の迅速な測定が提供される。遊離の無機ホスフェートを、マイクロタイ
タープレート形式で実施される単純な分光光度学的アッセイによって測定する。
複数の薬物濃度を試験することによって、PGPに対する薬物の親和性を推定す
ること、およびその応答の飽和が観察されたか否かを推定することが可能となる
。
活性と実際の輸送との間の一致を試験するために、薬物の輸送速度を、コントロ
ールLLC−PK1およびカニクイザルPGP細胞単層において測定する。各薬
物濃度について、4つの測定をなす: A:A→B コントロール細胞 B:B→A コントロール細胞 C:A→B PGP細胞 D:B→A PGP細胞。
いて算出する。PGPの内因的活性(IA)を、コントロール細胞と比較してP
GP細胞中でPGPがB→A輸送を容易にした量(D−B)と、コントロール細
胞と比較してPGP細胞中でPGPがA→B輸送を妨害した量(A−C)との合
計として算出する。PGPの内因的クリアランスを、非飽和条件下の線のスロー
プを算出することか、または飽和が観察された場合に算出された見かけ上のKm
およびVmax値からのいずれかによって、濃度依存性データのプロットから算
出する。内因的クリアランスを、mL/m2/分として表す。
合物についての見かけ上のKm値は、ATPaseと輸送系との間で良好な一致
する。しかし、他の薬物はATPase活性を活性化するが、PGPによる輸送
は検出可能ではない。少なくとも、ATPaseアッセイは、下回るとPGPに
よる輸送に対する応答が薬物濃度に対して線形となる濃度範囲を同定し得る。こ
れは、PGPの内因的クリアランスを測定するための実験設計の単純化を可能に
し、これは、大量の化合物を試験する場合に重要な考慮事項となる。
セイの1つ以上を実施することによって行う。異なるPGP型は、異なる種(例
えば、イヌおよびヒト、カニクイザルおよびヒト、イヌおよびカニクイザルなど
)により得るか、または同一種の異なる対立遺伝子であり得る。これらのアッセ
イの結果を比較して、異なる種の個体または異なるPGP対立遺伝子を発現する
個体における薬物のバイオアベイラビリティを決定または測定する。1つの決定
の結果はまた、過去の(historical)コントロールとして、例えば、
ATPaseまたは輸送に関して以前に決定された値に対して比較され得る。
して援用される。本発明を、特定の実施形態に関して記載してきたが、多くの改
変および変更が、本発明の意図から逸脱することなく当業者によってなされ得る
ことが理解されるべきである。このような改変、変更、および等価物は、以下の
特許請求の範囲の範囲内にあることが意図される。
Claims (36)
- 【請求項1】 単離された核酸分子であって、以下: (a)配列番号2または配列番号4のアミノ酸配列をコードする核酸分子、 (b)(a)の対立遺伝子改変体、および (c)(a)または(b)の相補体、 からなる群より選択される、単離された核酸分子。
- 【請求項2】 前記単離された核酸分子が配列番号2をコードする、請求項
1に記載の単離された核酸分子。 - 【請求項3】 前記単離された核酸分子が配列番号4をコードする、請求項
1に記載の単離された核酸分子。 - 【請求項4】 前記単離された核酸分子が配列番号1または配列番号3のヌ
クレオチド配列を含む、請求項1に記載の単離された核酸分子。 - 【請求項5】 単離されたP−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラグ
メントであって、配列番号2のアミノ酸12、24、30、74、78、86、
89、90、91、92、95、97、99、102、103、104、185
、324、363、518、635、650、656、659、677、730
、738、742、745、761、765、835、851、921、967
、1003、1027、1038、1048、1103、1128、1168お
よび1277ならびに配列番号4のアミノ酸93、94および95からなる群よ
り選択されるカニクイザルP−糖タンパク質の少なくとも1つのアミノ酸を含み
、ここで、該P−糖タンパク質は、カニクイザルP−糖タンパク質の少なくとも
1つのアミノ酸以外はヒトP−糖タンパク質に同一であり、そしてここで、該P
−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラグメントは、少なくとも10アミノ
酸長である、単離されたP−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラグメント
。 - 【請求項6】 前記ヒトP−糖タンパク質が、配列番号5および配列番号6
の群から選択される、請求項5に記載の単離されたP−糖タンパク質ポリペプチ
ドまたはそのフラグメント。 - 【請求項7】 単離されたP−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラグ
メントであって、配列番号2のアミノ酸3、6、8、10、13、17、19、
20、21、26、30、36、38、48、52、56、64、74、78、
84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、
96、98、100、101、102、103、104、105、106、11
0、113、145、190、197、210、231、319、324、32
7、345、363、395、451、455、456、468、473、49
4、518、530、631、641、642、648、650、655、65
6、664、665、672、673、674、675、683、687、68
9、691、692、694、701、705、715、729、730、73
4、742、743、745、754、757、765、835、912、91
8、921、940、941、944、966、967、968、970、97
2、981、1008、1015、1023、1024、1048、1093、
1096、1103、1128、1142、1146、1147、1156、1
160、1163、1166、1250および1271ならびに配列番号4のア
ミノ酸93および94からなる群より選択されるカニクイザルP−糖タンパク質
の少なくとも1つのアミノ酸を含み、ここで、該P−糖タンパク質は、カニクイ
ザルP−糖タンパク質の少なくとも1つのアミノ酸以外はイヌP−糖タンパク質
に同一であり、そしてここで、該P−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラ
グメントは、少なくとも10アミノ酸長である、単離されたP−糖タンパク質ポ
リペプチドまたはそのフラグメント。 - 【請求項8】 前記イヌP−糖タンパク質が、配列番号7および配列番号8
の群から選択される、請求項7に記載の単離されたP−糖タンパク質ポリペプチ
ドまたはそのフラグメント。 - 【請求項9】 請求項5または請求項7に記載の単離されたP−糖タンパク
質ポリペプチドまたはそのフラグメントであって、ここで、該ポリペプチドまた
はそのフラグメントのアミノ酸配列は、配列番号2、配列番号2のフラグメント
、配列番号4および配列番号4のフラグメントからなる群より選択されるアミノ
酸配列である、単離されたP−糖タンパク質ポリペプチドまたはそのフラグメン
ト。 - 【請求項10】 請求項5〜9のいずれかに記載の単離されたP−糖タンパ
ク質ポリペプチドまたはそのフラグメントをコードする、単離された核酸分子。 - 【請求項11】 プロモーターに作動可能に連結された、請求項1に記載の
単離された核酸分子を含む、発現ベクター。 - 【請求項12】 プロモーターに作動可能に連結された、請求項10に記載
の単離された核酸分子を含む、発現ベクター。 - 【請求項13】 請求項11に記載の発現ベクターを用いて形質転換された
かまたはトランスフェクトされた、宿主細胞。 - 【請求項14】 請求項12に記載の発現ベクターを用いて形質転換された
かまたはトランスフェクトされた、宿主細胞。 - 【請求項15】 ヒトP−糖タンパク質を結合セズ、請求項5に記載の単離
されたポリペプチドを選択的に結合する因子。 - 【請求項16】 前記因子がポリペプチドである、請求項15に記載の因子
。 - 【請求項17】 請求項16に記載の因子であって、ここで、前記ポリペプ
チドは、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、Fab抗体フラグメント、
F(ab)2抗体フラグメントおよびCDR3領域を含む抗体フラグメントから
なる群より選択される、因子。 - 【請求項18】 請求項1または請求項10に記載の単離された核酸分子を
選択的に結合する因子であって、ここで、該因子は、配列番号1のヌクレオチド
88〜111またはヌクレオチド100〜117からなる核酸分子を結合しない
、因子。 - 【請求項19】 化合物のバイオアベイラビリティを予測する方法であって
、該方法は、以下: 第1のP−糖タンパク質による試験化合物の膜貫通輸送を測定する工程、 該第1のP−糖タンパク質および第2のP−糖タンパク質による該試験化合物
の膜貫通輸送を比較し、該試験化合物のバイオアベイラビリティを予測する工程
であって、ここで、該第1のP−糖タンパク質および該第2のP−糖タンパク質
による相対的な輸送量または輸送速度は、該試験化合物のバイオアベイラビリテ
ィを予測する、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項20】 前記第1のP−糖タンパク質が、イヌP−糖タンパク質お
よび霊長類P−糖タンパク質からなる群より選択される、請求項19に記載の方
法。 - 【請求項21】 前記第1のP−糖タンパク質が、請求項5または請求項7
に記載のポリペプチドである、請求項19に記載の方法。 - 【請求項22】 前記第2のP−糖タンパク質が、ヒトP−糖タンパク質で
ある、請求項19に記載の方法。 - 【請求項23】 哺乳動物細胞中のP−糖タンパク質トランスポーター活性
を阻害するための方法であって、該方法は、該哺乳動物細胞を、該哺乳動物細胞
におけるP−糖タンパク質トランスポーター活性を阻害するに有効な量の請求項
18に記載の因子と接触させる工程を包含する、方法。 - 【請求項24】 被験体中の薬物のバイオアベイラビリティを増加するため
の方法であって、該方法は、このような処置が必要な被験体に、薬物のバイオア
ベイラビリティを増加するに有効な量で請求項18に記載の因子を投与する工程
を包含する、方法。 - 【請求項25】 インヒビターが前記薬物を投与する前に投与される、請求
項24に記載の方法。 - 【請求項26】 インヒビターが前記薬物と同時に投与される、請求項24
に記載の方法。 - 【請求項27】 細胞中のP−糖タンパク質トランスポーター活性を増加す
るための方法であって、該方法は、該細胞を、請求項1に記載の核酸分子および
請求項10に記載の核酸分子からなる群より選択される分子と、該細胞における
P−糖タンパク質トランスポーター活性を増加するに有効な量で接触させる工程
を包含する、方法。 - 【請求項28】 P−糖タンパク質トランスポーター活性と関連する疾患の
処置において有用な薬理学的因子に関するリード化合物を同定するための方法で
あって、該方法は、以下: 請求項5または請求項7に記載のP−糖タンパク質を含む、細胞または他の膜
包囲空間を提供する工程; 該細胞または他の膜包囲空間を、候補薬理学的因子の非存在下でP−糖タンパ
ク質トランスポーター活性の第1の量をもたらす条件下で、該候補薬理学的因子
と接触させる工程; 該P−糖タンパク質トランスポーター活性に対する該薬理学的因子の効果の尺
度として、P−糖タンパク質トランスポーター活性の第2の量を決定する工程で
あって、ここで、該第1の量よりも少ないP−糖タンパク質トランスポーター活
性の第2の量は、該候補薬理学的因子がP−糖タンパク質トランスポーター活性
を減少する薬理学的因子に関するリード化合物であることを示し、そしてここで
、該第1の量よりも多いP−糖タンパク質トランスポーター活性の第2の量は、
該候補薬理学的因子がP−糖タンパク質トランスポーター活性を増加する薬理学
的因子に関するリード化合物であることを示す、工程、 を包含する、方法。 - 【請求項29】 請求項28に記載の方法であって、該方法は、検出可能な
化合物で前記細胞または他の膜包囲空間を充填する工程であって、ここで、該化
合物は、前記P−糖タンパク質トランスポーター活性の尺度として検出される工
程をさらに包含する、方法。 - 【請求項30】 P−糖タンパク質を選択的に結合する化合物を同定するた
めの方法であって、 請求項5または請求項7に記載のP−糖タンパク質を化合物と接触させる工程
、 該化合物の該P−糖タンパク質への結合を決定する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項31】 前記P−糖タンパク質のP−糖タンパク質トランスポータ
ー活性に対する前記化合物の効果を決定する工程をさらに包含する、請求項30
に記載の方法。 - 【請求項32】 前記P−糖タンパク質のATPase活性に対する前記化
合物の効果を決定する工程をさらに包含する、請求項30に記載の方法。 - 【請求項33】 P−糖タンパク質のATPase活性を決定するための方
法であって、該方法は、以下: 請求項12もしくは請求項14に記載の宿主細胞、またはその膜画分を、試験
薬物と接触させる工程、および 該P−糖タンパク質のATPase活性を測定する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項34】 前記ATPase活性を測定する工程が、異なる時間に少
なくとも2回実施される、請求項33に記載の方法。 - 【請求項35】 P−糖タンパク質による化合物の膜貫通輸送を決定するた
めの方法であって、該方法は、以下: 請求項12または請求項14に記載の宿主細胞、またはその膜画分を、試験薬
物と接触させる工程、および 頂端側から側底側の方向および側底側から頂端側の方向からなる群より選択さ
れる少なくとも1つの輸送方向の傾斜条件下において、該試験薬物の輸送を測定
する工程、 を包含する、方法。 - 【請求項36】 前記試験薬物の輸送を測定する工程が、異なる時間に少な
くとも2回実施される、請求項35に記載の方法。
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