HU211927A9 - Modified tcf - Google Patents

Modified tcf Download PDF

Info

Publication number
HU211927A9
HU211927A9 HU95P/P00200P HU9500200P HU211927A9 HU 211927 A9 HU211927 A9 HU 211927A9 HU 9500200 P HU9500200 P HU 9500200P HU 211927 A9 HU211927 A9 HU 211927A9
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
tcf
gly
leu
lys
pro
Prior art date
Application number
HU95P/P00200P
Other languages
English (en)
Inventor
Kanji Higashio
Kyoji Yamaguchi
Nobuyuki Shima
Akihiko Murakami
Masaaki Goto
Eisuke Tsuda
Hiroaki Masunaga
Reiko Takahira
Fumiko Oogaki
Masatsugu Ueda
Original Assignee
Snow Brand Milk Products Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Snow Brand Milk Products Co Ltd filed Critical Snow Brand Milk Products Co Ltd
Publication of HU211927A9 publication Critical patent/HU211927A9/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/4753Hepatocyte growth factor; Scatter factor; Tumor cytotoxic factor II
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
  • Addition Polymer Or Copolymer, Post-Treatments, Or Chemical Modifications (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Description

1. A találmány területe
A találmány géntechnológiával módosított olyan TCFekre vonatkozik, amelyek - összehasonlítva a vad típusú TCF-fel - különböző számú, nitrogénen keresztül kapcsolódó oligoszacharid láncokat és új aminosavszekvenciákat tartalmaznak. Ezeknek a találmány szerint kapott TCF-eknek a felezési ideje a szérumban hosszabb, a hepatocitákra növekedést stimuláló hatást fejtenek ki és a tumor sejtekkel szemben citotoxikus aktivitással rendelkeznek. Ezért a módosított TCF-ek májbetegségek esetén gyógyszerekként, továbbá rákellenes szerekként is használhatók.
2. A találmány háttere
A humán fibroblaszt eredetű tumor citotoxikus faktor. a TCF-II. egy olyan új anti-tumor protein, amely minden más eddig közölt proteintől különbözik. Sikerrel járt e protein cDNS klónozása, levezettük teljes aminosav szekvenciáját és bizonyítottuk a hasznosságát. Ezen új anti-tumor proteint és a megfelelő cDNS-t tárgyalja a WO 90/10 651 számon közzétett nemzetközi szabadalmi bejelentés. Ezt TCF-Il-vel jelöltük. Ebben a leírásban azt a glükoproteinl, amelynek az aminosav szekvenciája a WO 90/10 651 számon közzétett nemzetközi szabadalmi bejelentésben szerepel, TCFnek nevezzük. ATCF tehát az az anyag, amelyet előzőleg TCF-II-nek neveztünk.
A TCF erős citotoxikus aktivitással rendelkezik tumor sejtekkel szemben és növekedést stimuláló hatást fejt ki normál sejtekre. Megállapítottuk, hogy a TCF egy olyan család tagja, amelyhez a HGF, a hepatocita növekedési faktor is tartozik. A TCF molekulatömege 78 000±2000 dalton és/vagy 74 000+2000 dalton SDS poliakrilamid-gél elektroforézissel meghatározva. Redukáló körülmények között egy A láncnak nevezett polipeptid sáv jelenik meg, amelynek molekulatömege 52 000+2000 dalton és két további polipeptid sáv, nevük B lánc és/vagy C lánc, amelyeknek a molekulatömege 30 00±2000 dalton, illetve 26 000±2000 dalton.
Minthogy a TCF hepatocita növekedési faktor, hepatektómia után megvizsgáltuk máj regenerálásra történő alkalmazását. Minthogy a TCF biológiai felezési ideje nagyon rövid, megkíséreltük hatásosabb, meghosszabbított biológiai felezési idejű módosított TCF-ek előállítását.
Bizonyos glükoproteinek esetén - beleértve az eritroproteint is - tanulmányozták az oligoszacharid láncok és a szérum felezési idők közötti összefüggést. A vizsgálatok kimutatták, hogy ugyanabból a génből különböző számú oligoszacharid láncokat tartalmazó és különböző biológiai aktivitású glükoproteinek szintetizálhatók. Ismeretes volt, hogy a glükolizált eritroproteinnek mások a biológiai tulajdonságai, mint a nem glükolizáltnak. Azonban a TCF oligoszacharid láncai és biológiai aktivitásai közölt fennálló összefüggésről keveset tudtunk.
3. Λ találmány leírása
A jelen feltalálók megállapították a TCF használhatóságát és tanulmányozták a TCF alkalmazását tumorok vagy májbetegségek kezelésére, valamint betegségek esetén diagnosztikumként való felhasználását. A TCF-nek nagyon rövid a felezési ideje, körülbelül 2 perc. Azért, hogy meghosszabbított felezési idejű, módosított proteinekhez jussunk, a feltalálók számos, genetikailag manipulált TCF-et szerkesztettek a polipeptid részben végrehajtott mutációk révén és analizálták ezeket. Kitűnt azonban, hogy a legtöbb módosított protein elvesztette biológiai aktivitását. Ezután, hogy meghosszabbítsák a biológiai felezési időt anélkül, hogy a biológiai aktivitás elveszne, a feltalálók figyelmüket a TCF-hez nitrogénen keresztül kapcsolódó négy oligoszacharid lánc felé fordították és megkíséreltek olyan új, módosított TCF-eket szerkeszteni, amelyekből egy vagy több oligoszacharid láncot töröltek.
A találmány célja, hogy új, módosított TCF-eket nyújtson, amelyeknek a vad típusú TCF-hez képest eltérő aminosav szekvenciái vannak, kevesebb a nitrogénen keresztül kapcsolt oligoszacharid láncok száma és amelyeknek hosszabb a biológiai felezési ideje, mint a vad típusú TCF-é. Ezeket a módosított TCF-eket úgy állíthatjuk elő, hogy az N-glükozileződésért felelős aminosavcsoportokat kódoló TCF cDNS nukleotid szekvenciáját megváltoztatjuk és a genetikailag mutagenizált TCF cDNS-t kifejezzük. A találmány szerinti módosított TCF-ekből a vad típusú TCF-ben lévő, nitrogénen keresztül kapcsolt négy oligoszacharid lánc közül egyet vagy többet toriunk. Ezek az első olyan módosított, meghosszabbított felezési idejű TCF-ek, amelyek biológiai aktivitásukból semmit nem vesztettek és amelyeket a vad típusú TCF aminosavcsoportjainak a megváltoztatása révén állítottunk elő.
Az 1. ábrán a vad típusú TCF teljes aminosav szekvenciája látható, amelyet cDNS szekvenciájából vezettünk le (1. sz. szekvenciavázlat). Az N-glükozileződésért felelős aminosavcsoportokat aláhúztuk. Feltételeztük, hogy a szignál szekvencia eltávolított és hogy a 32. helyzetben lévő glutamincsoport a TCF N-terminális aminosava. Négy oligoszacharid lánc kapcsolódik nitrogénen keresztül az N-terminális aminosavtól számított 258., 366., 530. és 617. helyzetű aszparaginhoz. Ezek az aszparagincsoportok az 1. ábrán látható 289., 397.. 561. és 648. helyzetű aszparagin-csoportoknak felelnek meg.
A 2. ábra az aminosavszekvenciát kódoló cDNS szekvenciát mutatja be. A kódoló szakasz az ATG kodonnál kezdődik, amelyet az ábrán bekarikáztunk.
N-glükozileződésért felelős aminosavcsoport az Asn-X-Thr vagy az Asn-X-Ser (az aminosavcsoportokat hárombetűs kóddal jelöljük és az X bármilyen aminosavcsoportot jelenthet). Specifikus oligoszacharid lánc(ok) nélküli módosított TCF-et úgy állíthatunk elő, hogy a nukleotid szekvenciát, amelyben az Asn, Ser vagy Thr kodon deletált, vagy ezeket egy másik aminosav helyettesíti, eukarióta sejtekben, előnyösen emlős sejtekben fejezzük ki. Specifikus oligoszacharid láncok nélküli módosított TCF-et úgy kaphatunk, hogy az Asn kodonokat más aminosavakat meghatározó kodonra, például Gin kodonra, cseréljük ki, ez a szubsztitúció a TCF konformációját kevéssé érinti. A Gin a legelőnyö2
HU 211 927 A9 sebb olyan aminosav, amely az Asn-t szubsztituálja. Az Asp, Glu, His, Ser vagy Thr szintén elfogadható. Specifikus oligoszacharid lánc(ok) nélküli módosított TCF-et előállíthatunk úgy is, hogy a Ser kodonokat más aminosavakat meghatározó kodonra, ilyen például az Alá kodon, cseréljük ki, ez a szubsztitúció is csekély hatással van a TCF konformációjára. Az Alá a legelőnyösebb aminosav, amely helyettesíti a Ser-t. A Pro, Gly vagy Asn szintén elfogadható. Olyan módosított TCF-et, amelyből hiányzik (hiányoznak) a specifikus oligoszacharid lánc(ok), úgy állíthatunk elő, hogy ha a Thr kodonokat kiejtjük vagy más aminosav kodonokkal helyettesítjük. Az Alá a legelőnyösebb olyan aminosav, amely a Thr-t helyettesíti. A Val, His vagy Asn szintén elfogadható.
A 3. ábrán bemutatjuk a TCF sematikus szerkezetét, amelyben megjelöltük az N-glükozileződés helyeit. Az N-glükozileződés helyeit az N-terminális végtől 1-es, 2-es, 3-as és 4-es számmal számoztuk. Ezek a számok határozzák meg az N-glükozileződési helyek pozícióját.
Annak érdekében, hogy az N-glükozileződésért felelős aminosavszekvenciákat olyanokra változtassuk, amelyek nem glükozileződnek, a cDNS-t PCR-rel (polymerase chain reaction = polimeráz láncreakció) hely-specifikusan mutagenizáljuk. A reakcióban templátként használjuk a vad típusú TCF cDNS-t és primerekként szintetikus oligo-nukleotidokat használunk. A primerek szekvenciáit úgy tervezzük meg, hogy deletálják vagy szubsztituálják a DNS szekvenciát, amint azt a fentiekben leírtuk. Más módszerek is alkalmasak mutagenezis céljára.
Módosított TCF-eket termelő sejtvonalakat úgy készíthetünk. hogy az ilyen mutáns cDNS-eket tartalmazó expressziós vektorokkal transzformálunk gazdasejteket. A transzformált sejtvonalak levestenyészetéből izolálhatjuk a módosított TCF-eket.
Például a 289. helyen (1. ábra) lévő Asn - ez az 1-es oligoszacharid lánc kötési helye - szubsztitúciója céljából a cDNS-t in vitro mutagenizáltuk. Ezekhez a mutagenizáló reakciókhoz a WO 90/10 651 számon közzétett nemzetközi bejelentésben ismertetett, vad típusú TCF-et kódoló cDNS-t használtuk templátként és a TCF-1R 5'-TCAGTGTCCTGCATAGTAT-3' oligonukleotidot használtuk primer gyanánt. Amutagenizált cDNS-t tartalmazó expressziós vektorral eukarióta sejtvonalakat - beleértve emlős sejtvonalakat is - transzficiálhatunk. A módosított TCF-eket a transzficiált sejttenyészetek felülúszóiból izolálhatjuk,
A módosított TCF-ek expressziőjához az eukarióta sejtek számára megfelelő bármilyen típusú gazda-vektor rendszer alkalmas. A legkedvezőbb a citomegalovírus és a Namalwa sejtek kombinációja, amely a WO 92/1053 számon közzétett nemzetközi bejelentésben szerepel. Az általánosan használt rendszerek közül megemlítjük azt a génsokszorozási rendszert, amely az SV40 promoterből, DHFR génből és a CHO sejtvonalból álló kombinációt használja, vagy olyan expressziós rendszert, amely a bovin papilloma vírus replikációs origó és az egér C127 sejtvonal kombinációját használja.
A módosított TCF-ek tisztítására bármelyik, a biológiailag aktív proteinek tisztítására általánosan használt módszert használhatjuk, például a szerves oldószeres kicsapást, a kisózást, a gél-kizárásos kromatográfiát, a monoklonális antitest használatával végzett affinitáskromográfiát vagy az elektroforézist. A 3-177 236 számú japán szabadalmi bejelentésben szereplő vad típusú TCF-fel szembeni monoklonális antitesteket fel lehet használni a módosított TCF affinitás kromatográfiájához.
A módosított TCF-ek liofilizált vagy fagyasztott állapotban tárolhatók.
Tizenöt módosított TCF-et kaphatunk az oligoszacharid láncok eltávolításának kombinációival. Amódosított TCF-eket az eltávolított láncok számával azonosíthatjuk. Például: azt a módosított TCF-et, amelyből az 1-es oligoszacharid lánc hiányzik, TCF-l-nek nevezzük, azt a TCF-et, amelyből mind a négy oligoszacharid lánc hiányzik TCF-1234-nek nevezzük és annak a TCF-nek a neve, amelyből a 2-es és a 3-as oligoszacharid lánc hiányzik, TCF-23. A 4. ábra sematikusan ábrázolja a módosított TCF-hez nitrogénen keresztül kapcsolódó oligoszacharidokat. Mindegyik módosított TCF-nek más a molekulatömege, az eltávolított oligoszacharid láncoknak megfelelően.
4. Az ábrák rövid leírása
Az 1. ábra a vad típusú TCF cDNS szekvenciájából levezetett teljes aminosavaszekvenciát mutatja be. A nitrogénen keresztül kapcsolódó oligoszacharid láncok kötéséért felelős aminosavcsoportokat aláhúztuk.
A 2. ábrán a vad típusú TCF cDNS szekvenciája látható. A találmány szerint szubsztituált kodonokat aláhúztuk. A kódoló szekvencia a bekarikázott ATG kodonnál kezdődik.
A 3. ábrán sematikusan ábrázoljuk a vad típusú TCF primer szerkezetét. A körök az N-glükozilező helyeket mutatják és a nyilak az A lánc és a B lánc közötti hasítási helyet.
A 4. ábrán a TCF-hez kapcsolódó oligoszacharid láncok és a módosított TCF semaúkus rajza látható.
Az 5. ábra a módosított TCF-eket meghatározó, plazmid tartalmú cDNS-ek szerkesztését mutatja be.
A 6. ábra a TCF-et és a módosított TCF-et kifejező expressziós vektorok szerkesztését mutatja be.
A 7. ábra egy jellegzetes módosított TCF SDS políakrilamid-gél-elektroforézissel végzett analízisét mutatja be.
A 8. ábra a módosított TCF-nek a hepatociták növekedésére kifejtett stimuláló hatását ábrázolja. Az ábrák az alábbi módosított TCF-ek aktivitását mutatják:
(1) TCF, TCF-1, TCF-2, TCF-3 és TCF-4 (2) TCF-12, TCF-13, TCF-14, TCF-23, TCF-24 és TCF-34
HU 211 927 A9 (3) TCF-123, TCF-124, TCF-1234. TCF-134 és TCF-234.
A 9. ábra a módosított TCF tumor citotoxikus aktivitását mutatja be.
A 10. ábra a módosított TCF plazma koncentrációit mutatja azokban a patkányokban, amelyekbe az említett TCF-eket intravénásán injiciáltuk.
Az új, módosított TCF-eket a találmány felhasználásával állítjuk elő. A találmány szerinti TCF-ek előállítását úgy végezzük, hogy kifejezzük az olyan cDNSeket, amelyekben az N-glükozileződésért felelős aminosavcsoportokat meghatározó kodonokat vagy más aminosavakat meghatározó kodonokkal szubsztituáljuk vagy deletáljuk. A módosított TCF-ek felezési ideje hosszabb, ami annak köszönhető, hogy a nitrogénen keresztül kapcsolt oligoszacharid láncok kötési helyeinek számát megszabjuk.
5. A találmány legjobb megvalósítási módja
A találmányt az alábbi példákkal részletesebben szemléltetjük
1. példa
Módosított TCF-ek előállítása
A módosított TCF-ek előállítása céljából a DNSeket lényegében a .Molecular Cloning; A Laboratory Manual” (2. kiadás; J. Sambrook, E. F. Fritsch, T. Maniatis. Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, 1989) című kiadványban leírtak szerint manipuláltuk, mint alább leírjuk.
11) A TCF cDNS klónozása
Az alábbi leírás szerint hely-specifikus mutációkat vezettünk be a TCF cDNS-be egy 6.3 kb méretű expressziós plazmid, a pcDTCF II plazmid révén, amelyet a WO 92/01053 számon közzétett nemzetközi bejelentésben ismertetett módszer szerint állítottunk elő. A pcDTCF Il-t tartalmazó E. coli törzset letétbe helyeztük a National Institute of Bioscience and Humán Technology intézményben FERM BP-3479 számon.
(2) Hely-specifikus mutációk bevezetésére szolgáló módszerek
l. !. Módszer íj A TCF cDNS klónozása Ml3mpl8-ban
A pcDTCF II (6,3 kb) úgy állítjuk elő, hogy a humán TCF cDNS teljes kódoló szakaszát bevisszük a BamHI és Sphí enzimekkel (Takara Co.) emésztett pcDNS I plazmidba (Invitrogen Co.) (Minden restrikciós enzimet és módosító enzimet a Takara Co. cégtől szereztünk be.) A pcDTCF ΙΙ-t BamHI-gyel és Sphlgyel emésztjük 1 órán ál 37 C-on, etanollal kicsapjuk, majd 1%-os agaróz gélben elektroforetizáljuk. A 2,3 kb méretű TCF cDNS fragmentumot a gélből tisztítjuk Gene Clean (Bio 101 Co.) segítségével.
Emellett az M13mpl8 (Takara Co.) fág DNS replikatív formáját BamHI-gyel és SphI-gyel emésztjük, etanollal csapjuk ki és vízben feloldjuk. így kapjuk a vektor-DNS oldatát. A vektor-DNS oldatot összekeverjük a TCF cDNS-sel, majd DNA Ligation Kit (Takara Co.) segítségével ligáljuk. A ligációs keverék egy részét használjuk az E. coli DH5 α sejtek transzformálására. A transzformált sejteket E. coli MN522 indikátor törzs (Invitrogen Co.) sejtjeivel keverjük össze és LB lágy agar lemezekre öntjük ki, hogy plakkokat kapjunk. Az LB táptalaj 1% Bacto Tryptone-t, 0,5% Bacto élesztő kivonatot, 1% nátrium-kloridot és 1% IPTG-t (izopropil-P-D-tiogalaktozid; Takara Co.), továbbá 1% Xgal-t (5-bróm-4-klór-3-indolil-|3-D-galaktozid; Takara Co.) tartalmaz. A kétszálú fág DNS-t egy tiszta plakkból izoláltuk, és elkészítettük az egyszálú DNS-t, amelyet templátként használtunk a hely-specifikus mutációk bevezetéséhez.
ii) Hely-specifikus mutációk bevezetése
Egy, az N-glükozilezésre elfogadott Asn-X-Thr aminosavszekvenciában, a 289. aminosavat meghatározó Asn kodont Gin kodonnal cseréltünk ki, ez nem képez N-glükozilezéshez alkalmas aminosavszekvenciát.
Az aminosavak számozásának alapja a vad típusú TCF N-terminális végén lévő Met. mint első aminosav. A TCF-1R oligonukleotidot - 5'-TCAGTGTCCTGCATAGTAT-3' - DNS szintetizátorban (Applied Biosystems Co.) szintetizáltuk. Minden oligonukleotidot szintetizátor használatával szintetizáltunk, hacsak másként nem jelezzük.
A hely-specifikus mutációt oligonukleotidra-irányuló in vitro mutagenezis rendszerrel (Amersham Co.) végeztük, a gyártó cég előirata szerint. Az NM522 E. coli sejteket a reakcióeleggyel transzformáltuk és TCF-1 printerrel, plakk hibridizációs technikával szűrtük.
Az egyszálú DNS-t egy pozitív plakkból izoláltuk és a szekvenciát a Sanger által leírt didezoxi lánctemninációs módszerrel határoztuk meg abból a célból, hogy meggyőződjünk arról, hogy a 289. helyen az Asn aminosavat meghatározó AAT kodon kicserélődött-e a Gln-t meghatározó CAG kodonra. Az 1,4 kb méretű Pstl-HindlII DNS fragmentumot, amelyet a pozitív klón kétszálú DNS-éből készítettünk, a Pstl-HindlIImal emésztett pBluescript SK+ (Stratagene Co.) plazmiddal ligáltuk, s így kaptuk a pSKTCFPH-1 plazmidot.
2. 2. módszer
A 399., 563. és 650. aminosavakat meghatározó kodonokba lényegében az R. Higuchi (R. Higuchi, PCR Protocols, 177-183. old., Academic Press, 1990.) által leírtak szerint vittük be a hely-specifikus mutációkat, polimeráz láncreakció (PCR) segítségével. Az Nglükozilezésre általánosan elfogadott Asn-X-Ser aminosav szekvenciában a Ser-t meghatározó kodont Alá kodonnal cseréltük ki minden mutagenizálásnál.
A 399. helyen lévő Ser kodon mutagenizálásához 25 PCR ciklust végeztünk. A reakcióban egy mutáns prímért, a TCF-2R-t - 5'-CCAGATCTTGTTTGAGCTAAGTTGCCC-3' - és egy vad tí4
HU 2)1 927 A9 pusú prímért, a TCF701F-et - 5'-GCTGGGATCATCAGACACCAC-3' - használtunk, továbbá az AmliTaq polimerázt (Takara Co.) és templátként a pcDTCF II plazmidból 4 ng-ot. A PCR termékeket Centricon 100 készülékben (Amicon Co.) tisztítottuk a primerek eltávolítása végett. A kapott termékeket BglII és EcoRI restrikciós enzimekkel (Takara Co.) emésztettük és a BglII-EcoRI-gyel emésztett pSKCFPH plazmid 4,1 kb méretű DNS fragmentumához ligáltuk. A pSKTCFPH plazmidhoz úgy jutottunk, hogy a Pstl-HindlII-mal emésztett pBluescript SK+plazmidot és a Pstl-HindlIImal emésztett pcDTCF ΙΙ-t előzőleg ligáltuk. A ligációs elegy egy részével E. coli DH5 sejteket transzformáltunk. A plazmid DNS-eket ampicillin rezisztens transzformáit sejtekből izoláltuk, majd meghatároztuk a DNS szekvenciákat. Kiszűrtük a pSKTCFPH-12 plazmidot, amelyben a TCC Ser kodont a 399. helyen a GCT Alá kodon helyettesítette. A pSKTCFPH-12 plazmid úgy készült, hogy a PCR termékeket a BglII-EcoRI-gyel emésztett pSKTCFPH-Ι plazmid 4,1 kb méretű fragmentumához ligáltuk, hasonló módon. A PCR termékekből származó DNS részletek DNS szekvenciáit minden plazmidban meghatároztuk, szekvenciáik igazolása végett. Az ampicillint a Sigma Co.-tól szereztük be.
Az 563. helyen lévő Ser-t meghatározó kodon mulagenizálását PCR-rel végeztük, 25 ciklusban, A reakcióban egy mutáns prímért, a TCF-3R-t - 5'ATACCAGCTGGGCAACATTGAGAAC-3' - és a TCF1202F vad típusú prímért - 5'-GGCAACTTATCCCAAACAAGATCTGG-3 - használtuk, továbbá AmpliTaq polimerázt (Takara Co.) és templátként a pcDTCF II plazmidból 4 ng-ot. A PCR termékeket Centricon 100 készülékben (Amicon Co.) tisztítottuk, hogy eltávolítsuk a primereket. A tisztított termékeket Xhol és Pvull restrikciós enzimekkel (Takara Co.) emésztettük. A pcDTCF ΙΙ-t Xhol-gyel emésztettük, majd ligáltuk. így jutottunk a pcDTCF AXho plazmidhoz, amelyből hiányzik az 1,1 kb méretű Xhol DNS fragmentum. A pcDTCF AXho plazmidot SphI-gyel és PvuII-vel emésztettük. A kapott 4,8 kb méretű XholSphl DNS fragmentumot és a 0,5 kb méretű PvuIISphl fragmentumot tisztítottuk és az XhoI-PvuII-vel emésztett, fent leírt PCR termékekhez ligáltuk DNA Ligation Kit segítségével. A ligációs keverék egy részével MC1061/P3 E. coli sejteket (Invitrogen Co.) transzformáltunk.
A plazmid DNS-eket ampicillin és tetracíklin rezisztens transzformált sejtekből izoláltuk és hasonló módon szelektáltuk a pcDTCF AXhoI-3 plazmidot, amelyben az 563. helyen lévő Ser-t meghatározó kodont a GCC Alá kodon helyettesíti. A tetraciklint a Sigma Co.-tól szereztük be.
Két PCR menetben mutagenizáltuk a 650. helyen lévő Ser-t meghatározó kodont. Az első PCR-eket egymástól függetlenül valósítottuk meg, AmpliTaq polimerázzal (Takara Co.) és a 4 ng pcDTCF II plazmiddal mint templáttal és a TCF-4F 5'-ACTCTGAATGAGGCTGAAATATGTG-3' mutáns primer és a TCF2203R 5'GGCATGCACAGTTGTATTGGTGGGTGCTTCAG-3' vad típusú primer párral vagy a TCF-4R 5'-CACATATTTCAGCCTCATTCAG-AGT-3' mutáns primer és a TCF1685F 5'-AACAGGTTCTCAATGTTTCCCAG3' vad típusú primer párral. A PCR termékeket DE81 papírral (Whatman Co.) tisztítottuk és ezek egytizedét használtuk a második PCR-hez a TCF2203R és TCF1685F primerek mellett. A PCR termékeket agaróz gélben választottuk el, DE81 papíron tisztítottuk és BglII-vei és SphI-gyel emésztettük. Másrészt a pcDTCF AXhoI-et és a pcDTCF ΔΧΗΙ-3-at szintén Bglll-vel és SphI-gyel emésztettük, majd a 4,9 kb méretű fragmentumokat tisztítottuk, amelyeket a fent leírt BglII-Sphl-gyel emésztett PCR fragmentumhoz ligáltunk DNA Ligation Kit segítségével. A ligációs elegy egytizedét használtuk az MC1061/P3 E. coli sejtek transzformálására. A plazmid DNS-eket az ampicillin- és tetraciklin-rezisztens transzformáit sejtekből izoláltuk, majd hasonló módon szelektáltuk a pcDTCF AXhoI-4 plazmidot, amelyben a 650. helyen lévő Ser-t meghatározó TCT kodon az Alá GCT kodonjára cserélődött és a pcDTCF AXhoI-34 plazmidot, amelyben az 563. helyen és a 650. helyen lévő Ser kodonokat az Alá kodonok helyettesítették.
(3) Expressziós vektorok szerkesztése
1. Vektorok szerkesztése tranziens expresszióhoz
A pSKTCFPH, pSKTCFPH-Ι, pSKTCFPH-2 és pSKTCFPH-12 plazmidokat Xhol-gyel emésztettük és az 1,1 kb méretű DNS fragmentumokat tisztítottuk. A pcDTCF ÁXhoI, pcDTCF ÁXhoI-3, pcDTCF ÁXhoI34 plazmidokat Xhol-gyel emésztettük és négyféle fent leírt 1,1 kb méretű DNS fragmentumhoz ligáltuk. Tizenöt ligációs elegyet - kivéve a pSKTCFPH 1,1 kb és pcDTCF ÁXhoI kombinációt - használtunk MC1O61/P3 E. coli sejtek transzformálásához. Tizenöt expressziós vektort szelektáltunk: pcDTCF-1, pcDTCF-2, pcDTCF-3, pcDTCF-4, pcDTCF-12, pcDTCF-13, pcDTCF-14, pcDTCF-23, pcDTCF-24, pcDTCF-34, pcDTCF-123, pcDTCF-124. pcDTCF134, pcDTCF-234 és pcDTCF-1234. Restrikciós enzimes analízissel igazoltuk e vektorok szerkezetét. Ha ezekkel a plazmidokkal emlős sejteket transzfíciálunk, például COS sejteket, a TCF-et és a módosított TCF-et meghatározó gének a citomegalovírus (CMV) promoter szabályozása alatt kifejeződnek. Ezeknek a plazmidoknak a szerkezetét az 5. ábrán mutatjuk be.
2. Vektorok szerkesztése stabil expresszióhoz
A pHSG396 plazmidot (Takara Co.) HindlII-mal emésztettük, tompa végeket alakítottunk ki a DNA Blunting Kit (Takara Co.) segítségével, Gene Cleannel tisztítottuk és a 8mer 5'-GCGGCCGC-3' Notl linkerhez (Takara Co.) ligáltuk. Ezzel transzformáltunk DH5a E. coli sejteket. A plazmid DNS-eket kloramfenikol rezisztens transzformált sejtekből izoláltuk, majd szelektáltuk a pHSG Notl plazmidot, amely HindlII helyet nem, de Notl helyet tartalmazott. A pHSG-Notl plazmidot Sall-gyel és SphI-gyel emésztettük és a S all gyei és SphI-gyel emésztett 2,3 kb méretű teljes hoszszúságú TCF cDNS-hez ligáltuk. így kaptuk a pHSG N-TCF plazmidot. A pHSG N-TCF plazmidból deletál5
HU 211 927 A9 tűk az 1,1 kb méretű Xhol-Xhol fragmentumot, így kaptuk a pHSG N-TCFII ΔΧ plazmidot. A pHXG NTCFII ΔΧ plazmidot BstPI-gyel és SPhI-gyel emésztettük és a 2,3 kb méretű DNS fragmentumot tisztítottuk, majd DNA Ligation Kit segítségével a BstPI-gyel és SphI-gyel emésztett alábbi 15 plazmidhoz ligáltuk pcDTCF-1, pcDTCF-2, pcDTCF-3, pcDTCF-4, pcDTCF-12, pcDTCF-13, pcDTCF-14, pcDTCF-23, pcDTCF-24, pcDTCF-34, pcDTCF-123, pcDTCF124, pcDTCF-134. pcDTCF-234 és pcDTCF-1234, valamint a vad típusú TCF cDNS-t tartalmazó BstPISphl-gyel emésztett pcDTCF-hez ligáltuk. Ezekkel a plazmidokkal E. coli DH5a sejteket transzformáltunk. A plazmid DNS-eket kloramfenikol rezisztens transzformáit sejtekből preparáltuk és 16 olyan plazmidot szelektáltunk, amelyek a 2,3 kb méretű vad típusú TCF cDNS-t vagy a pHSG NotI plazmidban lévő egyes mutáns TCF cDNS-eket tartalmazták.
Ezeket a plazmidokat a következőképpen neveztük el: pHSGN-TCF, pHSGN-TCF-1, pHSGN-TCF2, pHSGN-TCF-3, pHSGN-TCF-4, pHSGN-TCF12. pHSGN-TCF-13, pHSGN-TCF-14, pHSGNTCF-23, pHSGN-TCF-24, pHSGN-TCF-34, pHSGN-TCF-123. pHSGN-TCF-124, pHSGNTCF- 134, pHSGN-TCF-234 és pHSGN-TCF-1234. Ezt a 16 plazmidot Sall-gyel és Notl-gyel emésztettük. az XhoI-Notl-gyel emésztett BCMGSneo expressziós vektorba ligáltuk és DH5a E. coli sejtek transzformálására használtuk. A BCMGSneo egy olyan plazmid, amely tartalmazza a bovin papillóma vírus (BPV) replikációs origót és a citomegalovírus promotert, továbbá képes E. coliban replikálódni. A BCMGSneo plazmidot dr. H. Karasuyama (Basel Immunological Institute) bocsátotta rendelkezésünkre, leírását az Idenshikohgaku című kézikönyv (297299. old.. Yohdo Co., 1991.) tartalmazza. A plazmid DNS-eket ampicillin rezisztens transzformált sejtekből izoláltuk és 16 olyan expressziós vektort szelektáltunk. amelyek a BCMGSneo-ban a 2.3 kb méretű vad típusú TCF cDNS-t vagy az egyes mutáns TCF cDNS-eket tartalmazták. Ezeket a plazmidokat a következőképpen jelöltük: pBPV-TCF, pBPV-TCF-1, pBPV-TCF-2, pBPV-TCF-3, pBPV-TCF-4, pBPVTCF-12, pBPV-TCF-13, pBPV-TCF-14, pBPVTCF-23, pBPV-TCF-24, pBPV-TCF-34, pBPVTCF-123, pBPV-TCF-124, pBPV-TCF-134, pBPVTCF-234, pBPV-TCF-1234. Az antibiotikumokat, így a kloramfenikolt a Sigma Co.-tól szereztük be. A pBPV-TCF-3 vagy pBPV-TCF-13 plazmidot tartalmazó E. coli törzsekei a National Institute of Bioscience and Humán Technology intézménynél helyeztük letétbe FERM BP-4454 és FERM BP-4455 számon.
(4) A TCF- és módosítón TCF-expressziós plazmidok izolálása és tisztítása
A 16. E. coli törzset, amelyek a pBPV-TCF-1, pBPV-TCF-2, pBPV-TCF-3, pBPV-TCF-4, pBPVTCF-12, pBPV-TCF-13, pBPV-TCF-14, pBPVTCF-23, pBPV-TCF-24, pBPV-TCF-34, pBPVTCF-123, pBPV-TCF-124, pBPV-TCF-134, pBPVTCF-234 és pBPV-TCF-1234 expressziós vektorokat tartalmazták, 50 pg/ml ampicillint tartalmazó 400 ml táptalajban tenyésztettük 37 C-on. Ha a tenyészlevek 600 nm-en mért abszorpciója elérte a 0,8 értéket, a levestenyészelekhez annyi kloramfenikolt adtunk, hogy 170 pg/ml legyen a végső koncentrációja, majd egy éjszakán át tovább tenyésztettünk. Ezt a 16 plazmidot alkáli-SDS módszerrel preparáltuk és céziumklorid sűrűség grádiens ultracentrifugálással tisztítottuk Maniatis és munkatársai leírása szerint (Molecular Cloning, 2. kiadás).
(5) TCF- és módosított TCF-expressziós plazmidok transzfekciója állati sejtvonal tenyészetekbe A C127 egér sejtvonalat a 16 expressziós plazmiddal TRANSFECTAM készítménnyel (IBF Co., Maryland, USA) - amely tenyésztett emlős sejtvonalakhoz alkalmas DNS transzfekciós reagens - transzferáltunk, az alább leírtak szerint. A transzfekciót megelőző napon körülbelül 104 * 6 Cl27 egér sejtet szuszpendálunk 10% fetális borjú szérumot tartalmazó DME táptalajban (Gibco Co.). A sejteket 37 “C-on inkubáljuk szén-dioxid inkubátorban (5-7% széndioxidot tartalmazó nedves atmoszférájú inkubátor), 25 cm2-es tenyésztő palackokban (Sumitomo Bakelité: adherens sejtek számára). (A sejteket 37 °C-on, 5-7% szén-dioxid tartalmú nedves atmoszférájú inkubátorban tenyésztjük, hacsak másként nem jelezzük.) Transzfekció előtt a sejteket kétszer mossuk Opti. MÉM táptalajjal (Gibco Co.). Miután az egysejtréteghez 2 ml Opti. MÉM tápoldatot adtunk, a transzfekciót 10 pg plazmid DNS-sel végezzük a gyártó cég előirata szerint. Hat órás inkubálás után 7,5 ml DME táptalajt adunk minden palackhoz. Ezután a sejteket további 2 napig inkubáljuk 37 ”C-on. Az első nap a táptalajt friss DME táptalajjal cseréljük le. A sejteket tripszinnel kezeljük, egyszer mossuk DME táptalajjal és 50 ml lOOpg/ml G418-at tartalmazó DMS táptalajban szuszpendáljuk. A szuszpenzióból lOOpl-t mérünk 96 tartályos (lapos fenekű) lemezek minden tartályába, a lemezeket 37 ‘C-on inkubáljuk. Egy héttel később 100 pg/ml G418-at tartalmazó DME táptalajból 100 pl-t adunk minden tartályhoz, majd a lemezeket 37 “C-on inkubáljuk. Egy hét múlva a TCF vagy a módosított TCF-ek expresszióját úgy mutaljuk ki, hogy a tenyészlé 100 pl-ében mérjük a TCF vagy a módosított TCF-ek koncentrációját enzim-immunassay segítségével, anti-TCF monoklonális antitestek [N. Shima et al., Gastroenterologia Japonica, 26, 477/482 (1990)] alkalmazásával. A TCF-et vagy módosított TCF-eket kifejező sejtvonalakat 37 ”C-on tenyésztjük vagy )2-tartályos szövettenyésztő lemezen vagy 25 cm2-es palackban, a sejtszámnak megfelelően. Olyan setjvonalakat kaptunk, amelyek módosított TCF-eket fejeztek ki (az összesen 15 módosított TCF-et a következőképpen jelöltük: TCF-1, TCF-2, TCF-3, TCF-4, TCF-12, TCF13, TCF-14, TCF-23, TCF-24, TCF-34, TCF-123, TCF-124, TCF-134, TCF-234 és TCF-1234).
HU 211 927 A9 (6) A TCF-et vagy a módosított TCF-eket termelő sejtvonalak nagybani tenyésztése A 75 cm2-es szövettenyésztő palackokban a TCFet vagy a módosított TCF-eket termelő sejtvonalak összefolyt sejtjeit tripszines kezeléssel arattuk le, majd a sejtekkel három 225 cm2-es szövettenyésztő palackot oltottunk be. Minden palackhoz 100 ml DME táptalajt adtunk és a tenyészeteket 37 “C-on inkubáltuk. Négy nap múlva az összefolyt sejteket tripszineztük és DME táptalajban szuszpendáltuk. A sejt szuszpenziót tízszeresére hígítottuk DME táptalajjal (az összmennyiség 3 liter). A hígított sejtszuszpenzióból 100 ml-rel újabb 225 cm2-es szövettenyésztő palackot oltottunk be. Harminc 225 cm2-es szövettenyésztő palackban 5 napig 37 ”C-on tenyésztettük a sejteket. A tenyészetek felülúszóját (összesen 3 liter) összegyűjtöttük. A sejteket 6 palackból arattuk le. s a sejtekkel ezután hatvan 225 cm2-es szövettenyésztő palackot oltottunk be. Minden palackhoz 100 ml táptalajt adtunk, és a palackokat 5 napig 37 ’C-on inkubáltuk. A tenyészetek felülúszóját (összesen 6 liter) összegyűjtöttük. Ilyen módon 9 liter olyan felülúszót kaptunk, amely a TCF-et és a módosított TCF-eket tartalmazta.
(7j A TCF és a módosított TCF-ek tisztítása
Egy háromlépéses tisztítási módszert alkalmaztunk az alábbiak szerint
/. Heparm-Sepharose CL-bB
A 9 liter tenyészet-felülúszót. amely az összes módosított TCF-et tartalmazta, 6000 ford./perc mellett 30 percig centrifugáltuk az oldhatatlan anyagok eltávolítása céljából. A felülúszót körülbelül 200 ml/óra átfolyási sebességgel egy olyan heparin Sepharose CL-6B oszlopra (2,5x12 cm) (Pharmacia Co. i vittük fel, amelyet előzőleg 300 ml kiegyensúlyozó pufferrel (0.5 M nátriumklorid. 0,01% Tween 20 tartalmú 10 mM trisz.HCl puffer: pH = 7,5) hoztunk egyensúlyba. Az oszlopot ezután körülbelül 700 ml kiegyensúlyozó pufferrel mostuk. A TCF-et vagy a módosított TCF-eket 2 M nátrium-klorid és 0,01% Tween 20 tartalmú trisz.HCl pufferrel (pH = 7,5) eluáltuk és 3 ml-es frakciókat szedtünk. A frakciókat a 280 nm-en mért abszorpció révén figyeltük. A TCF vagy a módosított TCF tartalmú frakciókat (körülbelül 100 ml) összegyűjtöttük.
2. Mono-S-FPLC
A TFC-el vagy a módosított TCF-eket tartalmazó eluátumot 0,15 M nátrium-kloridot tartalmazó 10 nM foszfát pufferrel (pH = 6,5) szemben dializáltuk, majd 12 000 ford./perc mellett 90 percig centrifugáltuk az oldhatatlan részek eltávolítása céljából. A felülúszót 1 ml/perc átfolyási sebességgel olyan MonoS oszlopra (0,5x5 cm: Pharmacia Co.: FPLC) vittük fel, amelyet előzőleg körülbelül 20 ml 0,15 M nátrium-kloridot és 0,01 % Tween 20-at tartalmazó 10 mM foszfát pufferrel (pH = 7,0) (A puffer) hoztunk egyensúlyba. Az oszlopot egyszer mostuk körülbelül 30 ml
A pufferrel. Ezután a TCF-et vagy a módosított TCFeket 0,5 ml/perc átfolyási sebesség mellett eluáltuk az oszlopról, nátrium-klorid lineáris grádiensében (1,0 M-ig) és 0,5 ml-es frakciókat szedtünk. A TCF vagy módosított TCF-eket tartalmazó frakciók (körülbelül 4 ml) 0,7-0.8 M nátrium-klorid mellett oldódtak le.
3. Heparin 5-PW-FPLC
Két térfogat (8 ml) 0,01% Tween 20-at tartalmazó 10 mM trisz.HCl puffért (pH = 7,5) adtunk a TCF-et vagy módosított TCF-eket tartalmazó eluátumhoz. A hígított oldatot 1 ml/perc átfolyási sebességgel olyan heparin 5-PW oszlopra (0,5x7,5 cm: TOSO Co., FPLC) vittük fel, melyet előzőleg körülbelül 20 ml 0,3 M nátrium-kloridot és 0,01% Tween 20-at tartalmazó 10 mM trisz.HCl pufferrel (pH = 7,5) (B puffer) hoztunk egyensúlyba. Az oszlopot körülbelül 30 ml B pufferrel mostuk. Ezután a TCF-et vagy a módosított TCF-eket 0,5 ml/perc átfolyási sebesség mellett, nátrium-klorid lineáris grádiensében (2,0 M-ig) eluáltuk és 0,5 ml-es frakciókat szedtünk. A TCF-et vagy a módosított TCF-eket tartalmazó frakciókat (amelyek körülbelül 1.3 M nátrium-klorid-nál oldódtak ki, összmenynyiségük 3 ml) összegyűjtöttük. Ezeket a frakciókat ionmentesített vízzel szemben dializáltuk. liofilizáltuk és 0,001% Tween 20 tartalmú foszfáttal pufferolt konyhasó oldatban (PBS) oldottuk fel. A tisztított végtermék TCF-ek kinyert mennyiségét és kihozatalál az 1. táblázat mutatja be, A kinyert mennyiségeket poliklonális EIA segítségével határoztuk meg. a következő fejezetben leírtak szerint.
1. táblázat
A végső, tisztított, módosított TCF-ek hozama és kitermelése
Név Kinyeri mennyiség tg! -, Kihozatal (%)
TCF 2760 31
TCF-1 872 17
TCF-2 920 40
TCF-3 253 16
TCF-4 560 16
TCF-12 688 33
TCF-13 1088 23
TCF-14 350 27
TCF-23 810 28
TCF-24 648 19
TCF-34 668 34
TCF-123 340 11
TCF-124 400 23
TCF-134 187 22
TCF-234 400 15
TCF-1234 155 8
HU 211 927 A9 (8) A tisztított módosított TCF-ek mennyiségi meghatározása
1. Poliklonális antitestek előállítása és az antitestek jelzése
Anti-TCF antiszérumot TCF-fel immunizált nyulakból nyertünk. Az anti-TCF IgG-t az antiszérumból tisztítottuk Affi-gel protein A Sepharose (BioRad Co.) használatával, a gyártó cég előirata szerint. A tisztított IgG-t egy éjszakán át dializáltuk PBS-sel szemben, majd 0,5 ml/perc átfolyási sebesség mellett TCF affinitás oszlopra vittük, amelyben a TCF-et Affi-gel 10-en (BioRad Co.) immobilizáltuk. Az immobilizált oszlopot PBS-sel mostuk és az anti-TCF IgG-t 0,1 M glicin.HCl pufferral (pH = 2,5) eluáltuk. Az eluátumot PBS-sel szemben dializáltuk és így tisztított anti-TCF poliklonális antitesteket kaptunk. Aperoxidázzal jelzett antitesteket Ishikawa és munkatársai [J. Immunoassay,
4. 209-237 (1983)] szerint készítettük.
2. A tisztított, módosított TCF-ek mennyiségi meghatározása
Anti-TCF antitesteket oldottunk 10 pg/ml koncentrációban, 0,1 M nátrium-hidrogén-karbonát oldatban. Az antitest oldatot 96 tartályos mikrotitráló lemezekre (NUNC Co.. 100 μΙ/tartály) vittük. A Snow Brand Milk Products Ltd. Co. Block Ace készítményét kétszeresére hígítottuk ionmentesített vízzel és hozzáadtuk az antitesttel fedett mikrotitráló lemezek tartályaihoz (2000 μΙ/ml). A lemezeket egy órán át szobahőmérsékleten tartottuk a tartályok blokkolása céljából. A lemezeket ezután háromszor mostuk 0,1% Tween 20 tartalmú PBS-sel (mosó puffer). A módosított TCF-et megfelelő mennyiségű első pufferrel (0,2 M Trisz.HCl. pH = 7,4. mely 40% Block Ace készítményt és 0,1% Tween 20-at tartalmaz) hígítottuk a módosított TCF minták elkészítése céljából. Standard TCF oldatot úgy kaptunk, hogy a 10 ng/ml koncentrációjú TCF oldatból sorozathígílást készítettünk. A módosított TCF mintákból 100 μΙ-t mértünk a tartályokba, a lemezeket 3 órán át 37 ’C-on tartottuk, majd háromszor mostuk a mosó pufferrel. A peroxidázzal konjugált antitest oldatot 400-szorosra hígítottuk a második pufferrel (0,1 M trisz.HCl, pH = 7,4, mely 20% Block Ace készítményt, 0,1% Tween 20-at és 0,5 mg/ml egér IgG-t tartalmaz). A hígított, peroxidázzal jelzett antitest oldatból 100 μΐ-ι mértünk a tartályokba, a lemezeket 2 óra hosszat 37 ‘C-on tartottuk, majd háromszor mostuk a mosó pufferrel. Ezután 100 μΐ szubsztrátum oldatot (0,4 mg/ml o-fenilén-diamin-dihidroklorid és 0,006% hidrogén-peroxid 0,1 M citrát-foszfát pufferben: pH = 4,5) adtunk a tartályokhoz és a lemezeket 30 percig 37 C-on sötét helyen inkubáltuk. Az enzimreakciót 50 μΙ 6 m kénsav bemérésével állítottuk le. Az abszorpciót 492 nm-en, Immuno Reader (Corona Co.) készülékkel mértük.
(9) A tisztított TCF vagy a módosított TCF-ek analízise SDS-poliakrilamid-gé!-e!ektroforézissei
A tisztított, módosított TCF-ekbő) 5 pg-ot vittünk
SDS-poliakrilamid gélre. A nagyobb felezési idejű módosított TCF-eket (TCF-3 és TCF-13) - lásd később és a vad típusú TCF-et SDS-poliakrilamid gélben elektroforetizáltuk. Az eredményeket a 7. ábra mutatja. Az elektroforézist β-merkapto-etanol jelenlétében (redukáló körülmények) is és β-merkapto-etanol nélkül (nem redukáló körülmények) is elvégeztük. A 7. ábrán látható, hogy a TCF két egymás mellett lévő sávot mutat, körülbelüli molekulatömegük 78 000, illetve 74 000, nem redukáló körülmények mellett. A TCF-3 két sávja gyorsabban vándorolt, mint a TCF sávok, és a TCF-13 gyorsabban vándorolt, mint a TCF-3 sávjai, nemredukáló körülmények mellett. Redukáló körülmények mellett a TCF esetében három protein sávot észleltünk, melyek molekulatömege 52 000, 30 000 és 26 000 volt. Ehhez hasonlóan a TCF-3-nál három, 52 000, 26 000 és 22 000 molekulatömegű sávot, a TCF-13-nál szintén három, 48 000, 6 000 és 22 000 molekulatömegű sávot észleltünk. E TCF-ek molekulatömegében mutatkozó csökkenés valószínűleg az oligoszacharid láncok eltávolításának tudható be. Az eredmények arra engednek következtetni, hogy a kívánt, módosított TCF-eket kaptuk meg. Más protein sávokat nem észleltünk, kivéve azokat, amelyek a két módosított protein szerkezetéből következtek.
2. példa
A TCF és a módosított TCF-ek biológiai aktivitása in vitro (1) Növekedést stimuláló hatás májsejtekre
A májsejtekre gyakorolt növekedési stimuláló hatást a következőképpen határoztuk meg. Wister patkányokból (testtömegük körülbelül 200 g) patkány hepatocitákat izoláltunk Seglen módszerével (Methods in Cell Biology, 13, kötet, 29. oldal., Academic Press, New York). A sejtlenyésztéshez Williams E alap-táptalajt (FLOW laboratories Co.) használtunk, amely 10% fetális borjú szérumot és 10 μΜ dexametazont tartalmazott. Egy 96 tartályos (lapos fenekű tartályok) lemez (Falcon Co.) minden tartályába 10 μ! LOxlO4 sejtet tartalmazó alaptáplalajt mértünk be és a lemezeket 37 ’C-on inkubáltuk. Huszonnégy órás inkubálás után a tartályokba 100 pl TCF-et vagy módosított TCF-eket mértünk be, majd 22 órán át 37 ‘C-on inkubáltuk a lemezeket. Minden tartályt 1 pCi 3H-timidinnel (Amersham Co.) egészítettünk ki és tovább inkubáltunk 2 óra hosszat 37 ’C-on. Ezután hideg PBS-sel háromszor mostuk a lemezeket, majd a sejteket 0,5%os tripszin oldattal kezeltük. Végül a sejteket sejtlearató készülék (cell harvester) segítségével üveg szűrőlemezre gyűjtöttük össze. Az egyes tartályokban lévő sejtek által felvett radioaktivitást Mátrix 96 készülékben (Packard Co.) számoltuk. A 8. ábrán látható, hogy mindegyik módosított TCF megtartotta növekedést stimuláló hatását a patkány hepatocitáknál.
(2) Tumor citotoxikus aktivitás
A TCF, TCF-3 és TCF-13 tumor citotoxikus aktivitását mértük. Meth A szarkóma sejteket használtunk
HU 211 927 A9 célsejtek gyanánt. A sejteket 10% FCS tartalmú RPMI táptalajban (Gibco Co.) szuszpendáltuk 2xl04 sejt/ml végső sejt sűrűségben. Ezután 96 tartályos (lapos fenekű tartályok) mikrotitráló lemezek tartályait a sejtszuszpenziők 50 μΐ-eivel oltottuk be. A tisztított TCF, TCF-3 és TCF-13 50 ng/ml koncentrációjú oldataiból sorozathígításokat készítettünk RPMI táptalajjal, majd minden hígításból 50 μΙ-t mértünk a tartályokba. A lemezeket 5 napig inkubáltuk 37 ’C-on, majd annyi MTT-t [tiazolil kék: 3-(4,5-dimetil-tiazol-2-il)-2,5-difenil-tetrazolium-bromid] adtunk a tartályokhoz, hogy végső koncentrációja 0,5 mg/ml legyen. Ezután a lemezeket 37 ’C-on inkubáltuk. Négy órával később 10% SDS és 0,01 M ammónium-klorid tartalmú oldatból minden tartályba 100 μΙ-t mértünk be és egy éjszakán át szobahőmérsékleten tartottuk a lemezeket. A következő nap minden tartályban 620 nm-en mértük az abszorpciót, mint az élő sejtszám paraméterét. A 9. ábra mutatja be a kísérlet eredményét. A TCF, TCF-3 és TCF-13 citotoxikus aktivitását dózis függő módon fejti ki a Meth A sejtekre.
3. példa
A TCF és a módosított TCF-ek biológiai felezési idejének mérése in vivő
Anti-TCF poliklonális antitest oldatot készítettünk 0.1 M nátrium-hidrogén-karbonát oldatban úgy. hogy végső koncentrációja 10 pg/ml legyen. Az antitest oldatból 100 μΙ-t mértünk a lemezeken lévő tartályokba és a lemezeket szobahőmérsékleten tartottuk egy éjszakán át. A tartályokat megtöltöttük Block Ace 50%-os vizes oldatával. 1 órán át szobahőmérsékleten inkubáltuk, majd háromszor mostuk mosó oldattal (0.1% Tween 20-at tartalmazó PBS). Patkányokból, amelyeket intravénásán oltottunk TCF-fel vagy módosított TCF-ekkcl időközönként plazma mintákat vettünk. A plazmákat normál patkány szérummal hígítottuk. ha ez szükséges volt. Normál patkány szérummal sorozat hígítást készítettünk a TCF oldatokból (10 ng/ml-től). s ezt használtuk standard TCF oldatként. Minden tartályhoz hozzáadtunk egy keveréket, mely 50 μ] minta oldatból és 50 μΐ első pufferből (50% Block Ace, 0,2 M nátrium-klorid, 0,1% Tween 20. 0,2% CHAPS, 20 mM benzamidin-hidroklorid és 10 mM EDTA tartalmú 0,2 M trisz.HCl, pH = 7,3) állt. A lemezeket 3 órán át 37 ’C-on tartottuk, majd háromszor mostuk a mosó pufferrel. A tartályokhoz hozzáadtunk 100 μΐ peroxidázzal konjugált anti-TCF oldatot, melyet 400-szorosára hígítottunk 10% Block Ace, 0,15 M nátrium-klorid, 0,1% Tween 20, 4% patkány szérum és 0,5% egér IgG tartalmú 0,1 M foszfát pufferrel (pH = 7,0). A lemezeket 2 órán át 37 ’C-on inkubáltuk, ezután háromszor mostuk mosó pufferrel. Ezután minden tartályba 100 μ] szubsztrátum oldatot (0,4 mg/ml o-fenilén-diamindihidroklorid és 0.006% hidrogén-peroxid 0,1 M citrátfoszfát pufferben: pH = 4,5) mértünk és a lemezeket sötét helyen 37 ’C-on 30 percig inkubáltuk. Az enzimreakciót 50 μΐ 6 n kénsav hozzáadásával állítottuk le. Az abszorpciót 492 nm-en mértük Immuno
Reader (Corona Co.) készülékben, fgy határoztuk meg a TCF vagy a módosított TCF-ek koncentrációját a patkány szérumokban.
A plazma szintek időben való változását EIA-val mértük patkányokban, egyetlen TCF vagy módosított TCF intravénás injekciója után. Körülbelül 200 g-os hím Wister patkányokat használtunk. A patkányokba intravénásán beoltott TCF plazma-szintje bioexponenciálisan csökken, melyet egy kétkompartmentumos modell jól leír. Ötven pg/kg TCF injekciója után a patkányok plazmájában a felezési idő a gyors fázisban és a lassú fázisban a következő volt: 2,4±2,5 perc (t'/2a), illetve 15,6±4,6 perc (t'/2a). A módosított TCF plazma szintek profilja hasonló volt a vad típusú TCFéhez, de ezeknél a plazma szintek lassabban csökkentek, mint a vad típusú TCF-nél, azonos dózisok intravénás injekciója után.
A 2. táblázat mutatja, hogy a TCF-3 és a TCF-13 plazma felezési ideje hosszabb és teljes klirenszük csökkent. A TCF-3 és a TCF-13 esetén szélesebb az AUC (the area under the plasma concentration - time curve = a plazma-koncentráció alatti terület - idő görbe), összehasonlítva a vad típusú TCF-fel.
2. táblázat
A módosított TCF-ek farmakokinetikai paraméterei
Minta t’/2a (perc) t'/2a (perc)
TCF 2,4±O,5 15.6±4,6
TCF-i 2,4±0,3 19.6+0.3
TCF-2 2,2±0.6 18,2+2,5
TCF-3 2,9+0,3 S4.2±8,3**
TCF-4 2.7+Ο.1 20.613.3
TCF-12 2,7±0.3 18.111,6
TCF-13 3.8+0.5** 24,9+3,1*
TCF-14 i,9±0,4 18,812,9
TCF-23 2.4+05 15.4+05
TCF-24 2.3+0.1 16.911.7
TCF-34 2,2±O,5 18,0+2,1
TCF-123 2,2±O,l 17,210,8
TCF-124 2,3+0,1 15,7+2,7
TCF-134 2,3+0,4 19,1+3,2
TCF-234 2,6+0.6 16,8+1,6
TCF-1234 2.9+0,1 * 24,2±5,5* 1
Középérték: ±SD
A vad típusú TCF-töl szignifikánsan különbözik (*P<0,05, ••P<0,01)
3. táblázat
A módosított TCF-ek farmakokinetikai paraméterei
Minta AUC (ng.perc/ml) ΓΙ '-^összes (ml/perc/kg)
TCF 1030,0+257.9 51,5113,9
TCF-1 811,6+158,3 63,2+12,2
TCF-2 1143,7+551,7 49,8118,9
HU 211 927 A9
Minta AUC (ng.perc/ml) CLösszes (ml/perc/kg)
TCF-3 2679,5±292,1** 18,8±2,1“
TCF-4 897,8+263,5 58,6±14,7
TCF-12 1246,4+290,8 41,7±10,6
TCF-13 8301,0+279,7*» 6,0±0,2‘*
TCF-14 972,5±162,2 52,5±9,5
TCF-23 1223,0+356,7 43,6+14,3
TCF-24 1017,8+210,0 51,0+8.3
TCF-34 983,0+61,0 51,0+3,2
TCF-123 963,8+66,2 52.0±3,5
TCF-124 1126,3±265,O 45,9±9,5
TCF-134 960.9+279,7 55,2±16,7
TCF-234 892.9+119,7 56,6±7,1
TCF-1234 1266,5±78,9 39,6+2,6
Középérték ±SD
A vad típusú TCF-től szignifikánsan különbözik (*P<0.05.
-PSO.OI)
Az eredmények azt mutatják, hogy a TCF-3 és a TCF-13 lassabban metabolizálódik, mint a vad típusú TCF és szélesebb a biológiai hozzáférhetősége. 25 mint a vad típusú TCF-é. A TCF-3 aminosavszekvenciáját a 2. sz. szekvenciavázlal tartalmazza és a TCF-13 szekvenciáját a 3. sz. szekvenciavázlat tartalmazza
A találmány szerinti módosított TCF-ek biológiai 30 felezési ideje hosszabb, amellett megtartották növekedést stimuláló aktivitásukat a hepatocitákra és citotoxikus aktivitásukat a tumor sejtekkel szemben. Ennélfogva májbetegségeknél mint gyógyszerek, továbbá mint rákellenes szerek használhatók.
Letétbe helyezett mikroorganizmusok (1) pcTCF(S)MCl 061/P3 Letét helye:
National Institute of Bioscience and Humán Technology,
Agency of Industrial Science and Technology, Ministry of International Trade and Industry Címe:
1-3, Higashi 1 chome, Tsukuba-shi, Ibaraki-ken, Japán
Letéti szám: FERM BP-3479 (2) pBVP-TCF-3 20 Letét helye:
National Institute of Bioscience and Humán Technology.
Agency of Industrial Science and Technology, Ministry of International Trade and Industry Letéti szám: FERM BP-4454
Szekvenciák
1. sz. szekvenciavázlal A szekvencia hossza: 723 aminosav A szekvencia típusa: aminosavszekvencia Molekula típus: protein
Met Trp Val Thr Lys Leu Leu Pro Alá Leu Leu Leu Gin His Val Leu
1 5 10 15
Leu His Leu Leu Leu Leu Pro Ile Alá Ile Pro Tyr Alá Glu Gly Gin
20 25 30
Ara Lys Arg Arg Asn Thr Ile His Glu Phe Lys Lys Ser Alá Lys Thr
35 40 45
Thr Leu Ile Lys Ile Asp Pro Alá Leu Lys Ile Lys Thr Lys Lys Val
50 55 60
Asn Thr Alá Asp Gin Cys Alá Asn Arg Cys Thr Arg Asn Lys Gly Leu
65 70 75 80
Pro Phe Thr Cys Lys Alá Phe Val Phe Asp Lys Alá Arg Lys Gin Cys
85 90 95
Leu Trp Phe Pro Phe Asn Ser Met Ser Ser Gly Val Lys Lys Glu Phe
100 105 110
Gly His Glu Phe Asp Leu Tyr Glu Asn Lys Asp Tyr Ile Arg Asn Cys
115 120 125
Ile Ile Gly Lys Gly Arg Ser Tyr Lys Gly Thr Val Ser Ile Thr Lys
130 135 140
Ser Gly Ile Lys Cys Gin Pro Trp Ser Ser Met Ile Pro His Glu His
145 150 155 160
Ser Tyr Arg Gly Lys Asp Leu Gin Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Arg
165 170 175
Gly Glu Glu Gly Gly Pro Trp Cys Phe Thr Ser Asn Pro Glu Val Arg
180 1B5 190
Tyr Glu Val Cys Asp Ile Pro Gin Cys Ser Glu Val Glu Cys Met Thr
195 200 205
Cys Asn Gly Glu Ser Tyr Arg Gly Leu Met Asp His Thr Glu Ser Gly
210 215 220
HU 211 927 A9
Lys íle Cys Gin Arg Trp Asp His Gin Thr Pro His Arg His Lys Phe
225 230 235 240
Leu Pro Glu Arg Tyr Pro Asp Lys Gly Phe Asp Asp Asn Tyr Cys Arg
245 250 255
Asn Pro Asp Gly Gin Pro Arg Pro Trp Cys Tyr Thr Leu Asp Pro His
260 265 270
Thr Arg Trp Glu Tyr Cys Ala íle Lys Thr Cys Ala Asp Asn Thr Met
275 280 285
Asn Asp Thr Asp Val Pro Leu Glu Thr Thr Glu Cys íle Gin Gly Gin
290 295 300
Gly Glu Gly Tyr Arg Gly Thr Val Asn Thr He Trp Asn Gly íle Pro
305 310 315 320
Cys Gin Arg Trp Asp Ser Gin Tyr Pro His Glu His Asp Met Thr Pro
325 330 335
Glu Asn Phe Lys Cys Lys Asp Leu Arg Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro
340 345 350
Asp Gly Ser Glu Ser Pro Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Asn íle Arg
355 360 365
Val Gly Tyr Cys Ser Gin He Pro Asn Cys Asp Met Ser His Gly Gin
370 375 380
Asp Cys Tyr Arg Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Met Gly Asn Leu Ser Gin
3 85 390 395 400
Thr Arg Ser Gly Leu Thr Cys Ser Met Trp Asp Lys Asn Met Glu Asp
405 41C 415
Leu His Arg His íle Phe Trp Glu Pro Asp Ala Ser Lys Leu Asn Glu
420 425 430
Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asp Asp Ala His Gly Pro Trp Cys Tyr
435 440 445
Thr Gly Asn Pro Leu He Pro Trp Asp Tyr Cys Pro He Ser Arg Cys
450 455 460
Glu Gly Asp Thr Thr Pro Thr He Val Asn Leu Asp His Pro Val íle
155 470 475 480
Ser Cys Ala Lys Thr Lys Gin Leu Arg Val Val Asn Gly íle Pro Thr
485 490' 495
Arg Thr Asn íle Gly Trp Met Val Ser Leu Arg Tyr Arg Asn Lys His
500 505 510
íle Cys Gly Gly Ser Leu íle Lys Glu Ser Trp Val Leu Thr Ala Arg
515 520 525
Gin Cys Phe Pro Ser Arg Asp Leu Lys Asp Tyr Glu Ala Trp Leu Gly
530 535 540
íle His Asp Val His Gly Arg Gly Asp Glu Lys Cys Lys Gin Val Leu
545 550 555 560
Asn Val Ser Gin Leu Val Tyr Gly Pro Glu Gly Ser Asp Leu Val Leu
565 570 575
Met Lys Leu Ala Arg Pro Ala Val Leu Asp Asp Phe Val Ser Thr íle
580 585 590
Asp Leu Pro Asn Tyr Gly Cys Thr íle Pro Glu Lys Thr Ser Cys Ser
595 600 605
Val Tyr Gly Trp Gly Tyr Thr Gly Leu íle Asn Tyr Asp Gly Leu Leu
610 615 620
Arg Val Ala His Leu Tyr íle Met Gly Asn Glu Lys Cys Ser Gin His
625 630 635 640
His Arg Gly Lys Val Thr Leu Asn Glu Ser Glu íle Cys Ala Gly Ala
645 650 655
Glu Lys He Gly Ser Gly Pro Cys Glu Gly Asp Tyr Gly Gly Pro Leu
660 665 670
Val Cys Glu Gin His Lys Met Arg Met Val Leu Gly Val íle Val Pro
675 680 685
Gly Arg Gly Cys Ala íle Pro Asn Arg Pro Gly íle Phe Val Arg Val
690 695 700
HU 211 927 A9
Alá Tyr Tyr Alá Lys Trp Ile His Lys Ile Ile Leu Thr Tyr Lys Val 705 710 715 720
Pro Gin Ser
2. sz. szekvenciavázlat A szekvencia hossza: 723 aminosav A szekvencia típusa: aminosavszekvencia
Molekula típus: protein
Met Trp Val Thr Lys Leu Leu Pro Alá Leu Leu Leu Gin His Val Leu
1 5 10 15
Leu His Leu Leu Leu Leu Pro Ile Alá Ile Pro Tyr Alá Glu Gly Gin
20 25 30
Arg Lys Arg Arg Asn Thr Ile His Glu Phe Lys Lys Ser Alá Lys Thr
35 40 45
Thr Leu Ile Lys Ile Asp Pro Alá Leu Lys Ile Lys Thr Lys Lys Val
50 55 60
Asn Thr Alá Asp Gin Cys Alá Asn Arg Cys Thr Arg Asn Lys Gly Leu
65 70 75 80
Pro Phe Thr Cys Lys Alá Phe Val Phe Asp Lys Alá Arg Lys Gin Cys
85 90 95
Leu Trp Phe Prc Phe Asn Ser Met Ser Ser Gly Val Lys Lys Glu Phe
100 105 110
Gly His Glu Phe Asp Leu Tyr Glu Asn Lys Asp Tyr Ile Arg Asn Cys
115 120 125
Ile Ile Gly Lys Gly Arg Ser Tyr Lys Gly Thr Val Ser Ile Thr Lys
130 135 140
Ser Gly Ile Lys Cys Gin Pro Trp Ser Ser Met Ile Pro His Glu His
145 15C 155 16C
Ser Tyr Arg Gly Lys Asp Leu Gin Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Arg
165 170 175
Gly Glu Glu Gly Gly Pro Trp Cys Phe Thr Ser Asn Pro Glu Val Arg
180 185 190
Tyr Glu Val Cys Asp Ile Pro Gin Cys Ser Glu Val Glu Cys Met Thr
195 200 205
Cys Asr. Gly Glu Ser Tyr Arg Gly Leu Met Asp His Thr Glu Ser Gly
210 215 220
Lys Ile Cys Gin Arg Trp Asp His Gin Thr Pro His Arg His Lys Phe
225 230 235 240
Leu Pro Glu Arg Tyr Pro Asp Lys Gly Phe Asp Asp Asn Tyr Cys Arg
245 250 255
Asn Pro Asp Gly Gin Pro Arg Pro Trp Cys Tyr Thr Leu Asp Pro His
260 265 270
Thr Arg Trp Glu Tyr Cys Alá Ile Lys Thr Cys Alá Asp Asn Thr Met
275 280 285
Asn Asp Thr Asp Val Pro Leu Glu Thr Thr Glu Cys Ile Gin Gly Gin
290 295 300
Gly Glu Gly Tyr Arg Gly Thr Val Asn Thr Ile Trp Asn Gly Ile Pro
305 310 315 320
Cys Gin Arg Trp Asp Ser Gin Tyr Pro His Glu His Asp Met Thr Pro
325 330 335
Glu Asn Phe Lys Cys Lys Asp Leu Arg Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro
340 345 350
Asp Gly Ser Glu Ser Pro Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Asn Ile Arg
355 360 365
Val Gly Tyr Cys Ser Gin Ile Pro Asn Cys Asp Met Ser His Gly Gin
370 375 380
Asp Cys Tyr Arg Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Met Gly Asn Leu Ser Gin
385 390 395 400
Thr Arg Ser Gly Leu Thr Cys Ser Met Trp Asp Lys Asn Met Glu Asp
405 410 415
Leu His Arg His Ile Phe Trp Glu Pro Asp Alá Ser Lys Leu Asn Glu
HU 211 927 A9
420 425 430
Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asp Asp Alá His Gly Pro Trp Cys Tyr
435 440 445
Thr Gly Asn Pro Leu Ile Pro Trp Asp Tyr Cys Pro Ile Ser Arg Cys
450 455 460
Glu Gly Asp Thr Thr Pro Thr Ile Val Asn Leu Asp His Pro Val Ile
465 470 475 480
Ser Cys Alá Lys Thr Lys Gin Leu Arg Val Val Asn Gly Ile Pro Thr
485 490 495
Arg Thr Asn Ile Gly Trp Met Val Ser Leu Arg Tyr Arg Asn Lys His
500 505 510
Ile Cys Gly Gly Ser Leu Ile Lys Glu Ser Trp Val Leu Thr Alá Arg
515 520 525
Gin Cys Phe Pro Ser Arg Asp Leu Lys Asp Tyr Glu Alá Trp Leu Gly
530 535 540
Ile His Asp Val His Gly Arg Gly Asp Glu Lys Cys Lys Gin Val Leu
545 550 555 560
Asn Val Alá Gin Leu Val Tyr Gly Pro Glu Gly Ser Asp Leu Val Leu
565 570 575
Met Lys Leu Alá Arg Pro Alá Val Leu Asp Asp Phe Val Ser Thr Ile
580 585 590
Asp Leu Pro Asn Tyr Gly Cys Thr Ile Pro Glu Lys Thr Ser Cys Ser
595 600 605
Val Tyr Gly Trp Gly Tyr Thr Gly Leu Ile Asn Tyr Asp Gly Leu Leu
610 615 620
Arg Val Alá His Leu Tyr Ile Met Gly Asn Glu Lys Cys Ser Gin His
625 630 635 640
His Arg Gly Lys Val Thr Leu Asn Glu Ser Glu Ile Cys Alá Gly Alá
645 650 655
Glu Lys Ile Gly Ser Gly Pro Cys Glu Gly Asp Tyr Gly Gly Pro Leu
660 665 670
Val Cys Glu Gin His Lys Met Arg Met Val Leu Gly Val Ile Val Pro
675 680 685
Gly Arg Gly Cys Alá Ile Pro Asn Arg Pro Gly Ile Phe Val Arg Val
690 695 700
Alá Tyr Tyr Alá Lys Trp Ile His Lys Ile Ile Leu Thr Tyr Lys Val
^05 710 715 720
Pro Gin Ser
3. sz. szckvenciavázlat A szekvencia hossza: 723 aminosav
A szekvencia típusa: aminosavszekvencia Molekula típus: protein
Met Trp Val Thr Lys Leu Leu Pro Alá Leu Leu Leu Gin His Val Leu
1 5 10 15
Leu His Leu Leu Leu Leu Pro Ile Alá Ile Pro Tyr Alá Glu Gly Gin
20 25 30
Arg Lys Arg Arg Asn Thr Ile His Glu Phe Lys Lys Ser Alá Lys Thr
35 40 45
Thr Leu Ile Lys Ile Asp Pro Alá Leu Lys Ile Lys Thr Lys Lys Val
50 55 60
Asn Thr Alá Asp Gin Cys Alá Asn Arg Cys Thr Arg Asn Lys Gly Leu
65 70 75 80
Pro Phe Thr Cys Lys Alá Phe Val Phe Asp Lys Alá Arg Lys Gin Cys
85 90 95
Leu Trp Phe Pro Phe Asn Ser Met Ser Ser Gly Val Lys Lys Glu Phe
100 105 110
Gly His Glu Phe Asp Leu Tyr Glu Asn Lys Asp Tyr Ile Arg Asn Cys
115 120 125
Ile Ile Gly Lys Gly Arg Ser Tyr Lys Gly Thr Val Ser Ile Thr Lys
130 135 140
HU 211 927 A9
Ser Gly Ile Lys Cys Gin Pro Trp Ser Ser Met Ile Pro His Glu His
145 150 155 160
Ser Tyr Arg Gly Lys Asp Leu Gin Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Arg
165 170 175
Gly Glu Glu Gly Gly Pro Trp Cys Phe Thr Ser Asn Pro Glu Val Arg
180 185 190
Tyr Glu Val Cys Asp Ile Pro Gin Cys Ser Glu Val Glu Cys Met Thr
195 200 205
Cys Asn Gly Glu Ser Tyr Arg Gly Leu Met Asp His Thr Glu Ser Gly
210 215 220
Lys Ile Cys Gin Arg Trp Asp His Gin Thr Pro His Arg His Lys Phe
225 230 235 240
Leu Pro Glu Arg Tyr Pro Asp Lys Gly Phe Asp Asp Asn Tyr Cys Arg
245 250 255
Asn Pro Asp Gly Gin Pro Arg Pro Trp Cys Tyr Thr Leu Asp Pro His
260 265 270
Thr Arg Trp Glu Tyr Cys Alá Ile Lys Thr Cys Alá Asp Asn Thr Met
275 280 285
Gin Asp Thr Asp Val Pro Leu Glu Thr Thr Glu Cys Ile Gin Gly Gin
290 295 300
Gly Glu Gly Tyr Arg Gly Thr Val Asn Thr Ile Trp Asn Gly Ile Pro 305 310 315 320
Cys Gin Arg Trp Asp 325 Ser Gin Tyr Pro His 330 Glu His Asp Met Thr 335 Pro
Glu Asn Phe Lys Cys Lys Asp Leu Arg Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro
340 345 350
Asp Gly Ser Glu Ser Pro Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Asn Ile Arg
355 360 365
Val Gly Tyr Cys Ser Gin Ile Pro Asn Cys Asp Met Ser His Gly Gin
370 375 380
Asp Cys Tyr Arg Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Met Gly Asn Leu Ser Gin
385 390 395 400
Thr Arg Ser Gly Leu Thr Cys Ser Met Trp Asp Lys Asn Met Glu Asp
405 410 415
Leu His Arg His Ile Phe Trp Glu Pro Asp Alá Ser Lys Leu Asn Glu
420 425 430
Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asp Asp Alá His Gly Pro Trp Cys Tyr
435 440 445
Thr Gly Asn Pro Leu Ile Pro Trp Asp Tyr Cys Pro Ile Ser Arg Cys
450 455 460
Glu Gly Asp Thr Thr Pro Thr Ile Val Asn Leu Asp His Pro Val Ile
465 470 475 480
Ser Cys Alá Lys Thr Lys Gin Leu Arg Val Val Asn Gly Ile Pro Thr
485 490 495
Arg Thr Asn Ile Gly Trp Met Val Ser Leu Arg Tyr Arg Asn Lys His
500 505 510
Ile Cys Gly Gly Ser Leu Ile Lys Glu Ser Trp Val Leu Thr Alá Arg
515 520 525
Gin Cys Phe Pro Ser Arg Asp Leu Lys Asp Tyr Glu Alá Trp Leu Gly
530 535 540
Ile His Asp Val His Gly Arg Gly Asp Glu Lys Cys Lys Gin Val Leu
545 550 555 560
Asn Val Alá Gin Leu Val Tyr Gly Pro Glu Gly Ser Asp Leu Val Leu
565 570 575
Met Lys Leu Alá Arg Pro Alá Val Leu Asp Asp Phe Val Ser Thr Ile
580 585 590
Asp Leu Pro Asn Tyr Gly Cys Thr Ile Pro Glu Lys Thr Ser Cys Ser
595 600 605
Val Tyr Gly Trp Gly Tyr Thr Gly Leu Ile Asn Tyr Asp Gly Leu Leu
610 615 620
HU 211 927 A9
Arg Val Ala His Leu Tyr íle Met Gly Asn Glu Lys Cys Ser Gin His
625 630 635 640
His Arg Gly Lys Val Thr Leu Asn Glu Ser Glu He Cys Ala Gly Ala
645 650 655
Glu Lys íle Gly Ser Gly Pro Cys Glu Gly Asp Tyr Gly Gly Pro Leu
660 665 670
Val Cys Glu Gin His Lys Met Arg Met Val Leu Gly Val íle Val Pro
675 680 685
Gly Arg Gly Cys Ala íle Pro Asn Arg Pro Gly íle Phe Val Arg Val
690 695 700
Ala Tyr Tyr Ala Lys Trp íle His Lys íle íle Leu Thr Tyr Lys Val
705 710 715 720
Pro Gin Ser
SZABADALMI IGÉNYPONTOK

Claims (6)

1. Módosított TCF, azzal jellemezve, hogy a vad típusú TCF-ben jelenlévő és a nitrogénen keresztül kapcsoló- 20 dó oligoszacharid láncok vad típusú TCF-en való megkötéséért felelős aminosavcsoporlok közül legalább egy úgy van módosítva, hogy legalább egy ilyen, nitrogénen keresztül kapcsolódó oligoszacharid lánc TCF-hez való kötődése meg van gátolva. 25
2. Az 1. igénypont szerinü módosított TCF, azzal jellemezve. hogy az 1. sz. szekvenciavázlat szerinti aminosavszekvencia N-terminális végétől számított 289., 397., 561. és/vagy 648. helyen lévő Asn csoport egy másik aminosavcsoporttal van szubsztituálva oly módon, hogy a legalább 30 egy. nitrogénen keresztül kapcsolódó oligoszacharid lánc meg van gátolva abban, hogy a TCF-hez kötődjön.
3. Az 1, igénypont szerinti módosított TCF, azzal jellemezve, hogy az 1. sz. szekvenciavázlat szerinti aminosavszekvencia N-terminális végétől számított 563. helyen lévő Ser csoport Ala csoporttal van szubsztituálva oly módon, hogy legalább egy oligoszacharid lánc meg van gátolva abban, hogy a TCF-hez kötődjön.
4. A 2. és 3. igénypont szerinti módosított TCF, azzal jellemezve, hogy a 289. helyen lévő Asn csoport Gin csoporttal és az 563. helyen lévő Ser csoport Ala csoporttal van szubsztituálva.
5. Módosított TCF, azzal jellemezve, hogy a 2. sz. szekvenciavázlat szerinti aminosavszekvenciája van.
6. Módosított TCF. azzal jellemezve, hogy a 3. sz. szekvenciavázlat szerinti aminosavszekvenciája van.
HU95P/P00200P 1992-12-28 1995-06-14 Modified tcf HU211927A9 (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP35974792 1992-12-28

Publications (1)

Publication Number Publication Date
HU211927A9 true HU211927A9 (en) 1996-01-29

Family

ID=18466096

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9402417A HUT68170A (en) 1992-12-28 1993-12-27 Modified tumor cytotoxic factor /tcf/
HU95P/P00200P HU211927A9 (en) 1992-12-28 1995-06-14 Modified tcf

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9402417A HUT68170A (en) 1992-12-28 1993-12-27 Modified tumor cytotoxic factor /tcf/

Country Status (10)

Country Link
US (1) US5648233A (hu)
EP (1) EP0628055A1 (hu)
JP (1) JPH07507328A (hu)
KR (1) KR950700330A (hu)
AU (1) AU5716594A (hu)
CA (1) CA2130561A1 (hu)
FI (1) FI943880A (hu)
HU (2) HUT68170A (hu)
NO (1) NO943167L (hu)
WO (1) WO1994014845A1 (hu)

Families Citing this family (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5821223A (en) * 1990-09-14 1998-10-13 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Method of stimulating cell growth with a novel broad spectrum human lung fibroblast-derived mitogen
DE69330960T2 (de) * 1992-07-16 2002-04-11 Snow Brand Milk Products Co Ltd Normalisierer der blutkoagulation enthaltend tcf-ii als aktiven bestandteil
US5648233A (en) * 1992-12-28 1997-07-15 Snow Brand Milk Products Co., Ltd. Modified tumor cytotoxic factor (TCF) and DNA encoding such
ZA9510982B (en) * 1994-12-27 1996-08-22 Snow Brand Milk Products Co Ltd TCF mutant
JP4006058B2 (ja) 1997-03-11 2007-11-14 第一三共株式会社 多臓器不全予防及び/又は治療剤
US20020041863A1 (en) 1997-03-14 2002-04-11 Masamichi Kojiro Preventive and/or therapeutic agent for cachexia
WO2000071716A2 (en) * 1999-05-20 2000-11-30 Scios Inc. Vascular endothelial growth factor dimers
CA2373822A1 (en) * 1999-05-20 2000-11-30 Scios Inc. Vascular endothelial growth factor variants
US7629317B2 (en) 2001-03-29 2009-12-08 The University Of Chicago Control of growth and repair of gastro-intestinal tissues by gastrokines and inhibitors
JP4728807B2 (ja) * 2003-09-03 2011-07-20 敏一 中村 ヒト組換えhgfを含有する皮膚潰瘍予防治癒剤
CN102351952B (zh) * 2011-10-19 2015-07-01 中国医学科学院基础医学研究所 一种低糖化突变体干扰素-λ1、其表达、纯化方法及其应用

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NZ232813A (en) * 1989-03-10 1992-08-26 Snow Brand Milk Products Co Ltd Human fibroblast glycoprotein, cell differentiation, blood vessel endothelial cell growth factor, cellular immunology inforcing factor of 78 or 74 thousand daltons plus or minus two thousand daltons
DE69130494T2 (de) * 1990-06-11 1999-07-08 Toshikazu Nakamura Rekombinanter menschlicher Hepatozytwachstumsfaktor und Verfahren zu seiner Herstellung
US5648233A (en) * 1992-12-28 1997-07-15 Snow Brand Milk Products Co., Ltd. Modified tumor cytotoxic factor (TCF) and DNA encoding such

Also Published As

Publication number Publication date
JPH07507328A (ja) 1995-08-10
US5648233A (en) 1997-07-15
NO943167D0 (no) 1994-08-26
EP0628055A1 (en) 1994-12-14
FI943880A (fi) 1994-10-18
FI943880A0 (fi) 1994-08-24
AU5716594A (en) 1994-07-19
CA2130561A1 (en) 1994-07-07
HUT68170A (en) 1995-03-21
NO943167L (no) 1994-10-24
HU9402417D0 (en) 1994-10-28
WO1994014845A1 (en) 1994-07-07
KR950700330A (ko) 1995-01-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7217689B1 (en) Glycosylation analogs of erythropoietin
JP3115318B2 (ja) Gm―csf及びil―3を含む融合タンパク質
JP2708099B2 (ja) エリスロポエチン類縁体
JP3705732B2 (ja) 新規なポリペプチド、その製造方法、そのポリペプチドをコードするdna、そのdnaからなるベクター、そのベクターで形質転換された宿主細胞
JP2682858B2 (ja) 白血病抑制性因子
EP0640619B1 (en) Erythropoietin analogs with additional glycosylation sites
CA2311681A1 (en) Human interferon-epsilon: a type i interferon
HU211927A9 (en) Modified tcf
EP0337799B1 (en) 14-Beta-gal mammalian lectins
NO893452L (no) Rekombinant naturlig dreper-celleaktivator.
JPH03503524A (ja) ミュレル管阻害物質様ポリペプチドの開裂二量体
US6399744B1 (en) TCF mutant
JP3287869B2 (ja) ヒト神経成長因子2の製造法
EP0511816B1 (en) Neurotrophic peptide derivative
US5759991A (en) Neurotrophic peptide derivatives
JP2763026B2 (ja) ヒトb細胞分化因子をコードする遺伝子系
JP3580836B2 (ja) 好中球減少症治療剤
CA2123251A1 (en) Polypeptide and dnas encoding it
CA2123252A1 (en) Polypeptide and dnas encoding it
JPH1146777A (ja) ヒトb細胞分化因子の製造方法
EP0619371A1 (en) Polypeptide derived from a glioblastoma cell line, its use and DNAs encoding it
CA2123250A1 (en) Polypeptide and dnas encoding it
JPH10295382A (ja) インターフェロンτ改変体
JPH07145199A (ja) 新規なポリペプチド、その製造方法、そのポリペプチドをコードするdna、そのdnaからなるベクター、そのベクターで形質転換された宿主細胞、そのポリペプチドの抗体、およびそのポリペプチドまたは抗体を含有する薬学的組成物
JPH06340697A (ja) 新規なポリペプチド、その製造方法、そのポリペプチドをコードするdna、そのdnaからなるベクター、そのベクターで形質転換された宿主細胞、そのポリペプチドの抗体、およびそのポリペプチドまたは抗体を含有する薬学的組成物