JPH10295382A - インターフェロンτ改変体 - Google Patents
インターフェロンτ改変体Info
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- JPH10295382A JPH10295382A JP9106941A JP10694197A JPH10295382A JP H10295382 A JPH10295382 A JP H10295382A JP 9106941 A JP9106941 A JP 9106941A JP 10694197 A JP10694197 A JP 10694197A JP H10295382 A JPH10295382 A JP H10295382A
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Abstract
(57)【要約】
【課題】 抗ウイルス剤、抗腫瘍剤および自己免疫疾患
治療剤として有用な、活性の高いインターフェロンτ改
変体およびその製造方法を提供する。 【解決手段】 遺伝子操作によって得られ、配列表の配
列番号２のアミノ酸番号１〜１７２で示されるアミノ酸
配列を含むことからなるポリペプチド。
治療剤として有用な、活性の高いインターフェロンτ改
変体およびその製造方法を提供する。 【解決手段】 遺伝子操作によって得られ、配列表の配
列番号２のアミノ酸番号１〜１７２で示されるアミノ酸
配列を含むことからなるポリペプチド。
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】 本発明は、ウイルス感染、
腫瘍および自己免疫疾患の治療に有効な、細胞毒性の少
ないインターフェロン改変体、およびその遺伝子操作に
よる製造方法に関する。
腫瘍および自己免疫疾患の治療に有効な、細胞毒性の少
ないインターフェロン改変体、およびその遺伝子操作に
よる製造方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】 インターフェロンは、生体内でリンパ
球や線維芽細胞などさまざまな細胞が産生する生理活性
蛋白質で、抗ウイルス作用や抗ガン作用を有する。イン
ターフェロンにはさまざまなサブタイプが存在するが、
そのうちＩ型インターフェロンとして分類されるものと
しては、インターフェロンα、インターフェロンβおよ
びインターフェロンωがよく知られている。特にインタ
ーフェロンαおよびβは抗ウイルス剤として利用されて
おり、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）による慢性肝炎に対
して、長期大量投与（１０6 ＩＵ／個体、週３回、６ヶ
月間）により、２０〜４０％の患者において有効性が示
されている［Davis, G. L., et. al.,（1989）N. Engl.
J. Med. 321, 1501およびDiBisceglie, A. M., etal.,
（1989）N. Engl. J. Med. 321, 1506参照］。
球や線維芽細胞などさまざまな細胞が産生する生理活性
蛋白質で、抗ウイルス作用や抗ガン作用を有する。イン
ターフェロンにはさまざまなサブタイプが存在するが、
そのうちＩ型インターフェロンとして分類されるものと
しては、インターフェロンα、インターフェロンβおよ
びインターフェロンωがよく知られている。特にインタ
ーフェロンαおよびβは抗ウイルス剤として利用されて
おり、Ｃ型肝炎ウイルス（ＨＣＶ）による慢性肝炎に対
して、長期大量投与（１０6 ＩＵ／個体、週３回、６ヶ
月間）により、２０〜４０％の患者において有効性が示
されている［Davis, G. L., et. al.,（1989）N. Engl.
J. Med. 321, 1501およびDiBisceglie, A. M., etal.,
（1989）N. Engl. J. Med. 321, 1506参照］。
【０００３】しかしながら、このインターフェロンαま
たはβの大量投与による治療には、発熱等の副作用発現
が問題となっている。この副作用による患者の精神的・
肉体的負担が大きいため、より大量のインターフェロン
αまたはβの投与により有効性を高められ得る可能性が
考えられるにもかかわらず、副作用がこの投与限界を決
める要因となっている。
たはβの大量投与による治療には、発熱等の副作用発現
が問題となっている。この副作用による患者の精神的・
肉体的負担が大きいため、より大量のインターフェロン
αまたはβの投与により有効性を高められ得る可能性が
考えられるにもかかわらず、副作用がこの投与限界を決
める要因となっている。
【０００４】一方、インターフェロンτは、当初、妊娠
後１０日から２１日にかけてヒツジ受胎産物（conceptu
s ）より分泌される蛋白質（ヒツジトロフォブラストプ
ロテイン−１（ＯＴＰ−１）として同定された［Wilso
n, et al. (1979) Biology ofReproduction 20 (Supp.
1): 101A 、およびBazer, F. W., et al. (1986) J. Re
porduction and Fertility 76, 841 参照］。ＯＴＰ−
１は排卵誘発作用を有するプロスタグランジンＦ２αの
子宮内への分泌を抑制する作用を有していたため［Baze
r, F. W., et al. (1986) Biology of Reproduction 7
6, 841 参照］、妊娠の成立に関与する機能を有するも
のと考えられた。後に、ＯＴＰ−１が種々の動物のイン
ターフェロンαとの間に高い（５０〜７０％）アミノ酸
配列相同性を有しており［Imakawa, K., et. al. (198
7) Nature 330, 377 参照］、またＩ型インターフェロ
ンレセプターに結合する性質を有していることが明らか
となり［Stewart, H. J., et al. (1987) J. Endocrino
l. 115, R13 参照］、国際インターフェロン協会によ
り、新たなＩ型インターフェロンファミリーに属する活
性蛋白質として認められた。
後１０日から２１日にかけてヒツジ受胎産物（conceptu
s ）より分泌される蛋白質（ヒツジトロフォブラストプ
ロテイン−１（ＯＴＰ−１）として同定された［Wilso
n, et al. (1979) Biology ofReproduction 20 (Supp.
1): 101A 、およびBazer, F. W., et al. (1986) J. Re
porduction and Fertility 76, 841 参照］。ＯＴＰ−
１は排卵誘発作用を有するプロスタグランジンＦ２αの
子宮内への分泌を抑制する作用を有していたため［Baze
r, F. W., et al. (1986) Biology of Reproduction 7
6, 841 参照］、妊娠の成立に関与する機能を有するも
のと考えられた。後に、ＯＴＰ−１が種々の動物のイン
ターフェロンαとの間に高い（５０〜７０％）アミノ酸
配列相同性を有しており［Imakawa, K., et. al. (198
7) Nature 330, 377 参照］、またＩ型インターフェロ
ンレセプターに結合する性質を有していることが明らか
となり［Stewart, H. J., et al. (1987) J. Endocrino
l. 115, R13 参照］、国際インターフェロン協会によ
り、新たなＩ型インターフェロンファミリーに属する活
性蛋白質として認められた。
【０００５】その後、ヒツジインターフェロンτ（ｏＩ
ＦＮτ）をコードする遺伝子を大腸菌中で発現後、リフ
ォールディングにより活性化された組換え体が、抗ウイ
ルス活性［Stewart, H. J., et al. (1987) J. Endocri
nol. 115, R13 および Pontzer, C. H., et al. (1988)
Biochem. Biophys. Res. Commun. 152, 801参照］、抗
腫瘍性活性［Pontzer, C. H. et al. (1991) Cancer Re
s. 51, 5304 参照］、自己免疫抑制活性［Soos, J. M.
and Johnson, H. M. (1995) J. IFN. CytokineRes. 15,
39参照］を有することが示された。さらに、インター
フェロンαおよびβに比してその細胞毒性が低く［Subr
amaniam, P. S., et al. (1995) Proc.Natl. Acad. Sc
i. USA 92, 12270-12274参照］、生体における副作用発
現も低い可能性が示唆されている。
ＦＮτ）をコードする遺伝子を大腸菌中で発現後、リフ
ォールディングにより活性化された組換え体が、抗ウイ
ルス活性［Stewart, H. J., et al. (1987) J. Endocri
nol. 115, R13 および Pontzer, C. H., et al. (1988)
Biochem. Biophys. Res. Commun. 152, 801参照］、抗
腫瘍性活性［Pontzer, C. H. et al. (1991) Cancer Re
s. 51, 5304 参照］、自己免疫抑制活性［Soos, J. M.
and Johnson, H. M. (1995) J. IFN. CytokineRes. 15,
39参照］を有することが示された。さらに、インター
フェロンαおよびβに比してその細胞毒性が低く［Subr
amaniam, P. S., et al. (1995) Proc.Natl. Acad. Sc
i. USA 92, 12270-12274参照］、生体における副作用発
現も低い可能性が示唆されている。
【０００６】ヒト型インターフェロンτをコードするＤ
ＮＡは、今川らによってヒト胎盤由来のｃＤＮＡライブ
ラリーよりヒトインターフェロンω配列由来のプローブ
を用いてクローニングされている［Imakawa, K., et a
l. (1994) J. Biol. Chem. 269, 10864参照］。さら
に、ＷＯ９６／３５７８９にはヒト型インターフェロン
τ１乃至τ７と命名された変異遺伝子が記載されてい
る。
ＮＡは、今川らによってヒト胎盤由来のｃＤＮＡライブ
ラリーよりヒトインターフェロンω配列由来のプローブ
を用いてクローニングされている［Imakawa, K., et a
l. (1994) J. Biol. Chem. 269, 10864参照］。さら
に、ＷＯ９６／３５７８９にはヒト型インターフェロン
τ１乃至τ７と命名された変異遺伝子が記載されてい
る。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】 本発明は、より高い
抗ウイルス活性を有するヒトインターフェロンτ改変
体、該改変体をコードするＤＮＡ、該改変体の製造方法
および該改変体を含むことからなる医薬を提供すること
を目的とする。
抗ウイルス活性を有するヒトインターフェロンτ改変
体、該改変体をコードするＤＮＡ、該改変体の製造方法
および該改変体を含むことからなる医薬を提供すること
を目的とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】 本発明は、（１） 遺
伝子操作によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ
酸番号１〜１７２で示されるアミノ酸配列を含むことか
らなるポリペプチド、（２） 遺伝子操作によって得ら
れ、配列表の配列番号４のアミノ酸番号１〜１７２で示
されるアミノ酸配列を含むことからなるポリペプチド、
（３） （１）または（２）に記載のポリペプチドをコ
ードするＤＮＡ、（４） 配列表の配列番号１のヌクレ
オチド番号４〜５１９で示されるヌクレオチド配列を含
むことからなる、（３）記載のＤＮＡ、（５） 配列表
の配列番号３のヌクレオチド番号４〜５１９で示される
ヌクレオチド配列を含むことからなる、（３）記載のＤ
ＮＡ、（６） （３）乃至（５）のいずれか１つに記載
のＤＮＡを含むことからなる組換えＤＮＡベクター、
（７） （６）記載の組換えＤＮＡベクターで形質転換
された宿主細胞、（８） （７）記載の宿主細胞をイン
ターフェロン活性を有するポリペプチドの産生が可能な
条件下で培養し、次いで該培養物からインターフェロン
活性を有するポリペプチドを回収することを特徴とす
る、インターフェロン活性を有するポリペプチドの製造
方法、（９） （１）または（２）に記載のポリペプチ
ドを含むことからなる医薬、（１０） （１）または
（２）に記載のポリペプチドを含むことからなる抗ウイ
ルス剤、（１１） （１）または（２）に記載のポリペ
プチドを含むことからなる抗腫瘍剤、（１２） （１）
または（２）に記載のポリペプチドを含むことからなる
自己免疫疾患治療剤、に関するものである。
伝子操作によって得られ、配列表の配列番号２のアミノ
酸番号１〜１７２で示されるアミノ酸配列を含むことか
らなるポリペプチド、（２） 遺伝子操作によって得ら
れ、配列表の配列番号４のアミノ酸番号１〜１７２で示
されるアミノ酸配列を含むことからなるポリペプチド、
（３） （１）または（２）に記載のポリペプチドをコ
ードするＤＮＡ、（４） 配列表の配列番号１のヌクレ
オチド番号４〜５１９で示されるヌクレオチド配列を含
むことからなる、（３）記載のＤＮＡ、（５） 配列表
の配列番号３のヌクレオチド番号４〜５１９で示される
ヌクレオチド配列を含むことからなる、（３）記載のＤ
ＮＡ、（６） （３）乃至（５）のいずれか１つに記載
のＤＮＡを含むことからなる組換えＤＮＡベクター、
（７） （６）記載の組換えＤＮＡベクターで形質転換
された宿主細胞、（８） （７）記載の宿主細胞をイン
ターフェロン活性を有するポリペプチドの産生が可能な
条件下で培養し、次いで該培養物からインターフェロン
活性を有するポリペプチドを回収することを特徴とす
る、インターフェロン活性を有するポリペプチドの製造
方法、（９） （１）または（２）に記載のポリペプチ
ドを含むことからなる医薬、（１０） （１）または
（２）に記載のポリペプチドを含むことからなる抗ウイ
ルス剤、（１１） （１）または（２）に記載のポリペ
プチドを含むことからなる抗腫瘍剤、（１２） （１）
または（２）に記載のポリペプチドを含むことからなる
自己免疫疾患治療剤、に関するものである。
【０００９】本発明者らは、ヒトインターフェロンτ
（以下「ｈＩＦＮτ」という）のアミノ酸配列に置換を
施すべく該アミノ酸配列をコードする遺伝子に変異を導
入し、該変異遺伝子を含むプラスミドで大腸菌を形質転
換して該変異遺伝子を発現させた結果、強力な抗ウイル
ス活性を有する改変体を作出することに成功し、本発明
を完成させた。
（以下「ｈＩＦＮτ」という）のアミノ酸配列に置換を
施すべく該アミノ酸配列をコードする遺伝子に変異を導
入し、該変異遺伝子を含むプラスミドで大腸菌を形質転
換して該変異遺伝子を発現させた結果、強力な抗ウイル
ス活性を有する改変体を作出することに成功し、本発明
を完成させた。
【００１０】本発明において「インターフェロン活性を
有する」とは、既知の他のＩ型インターフェロン同様、
抗ウイルス作用、抗腫瘍作用および自己免疫反応抑制作
用を有することをいう。
有する」とは、既知の他のＩ型インターフェロン同様、
抗ウイルス作用、抗腫瘍作用および自己免疫反応抑制作
用を有することをいう。
【００１１】
【発明の実施の形態】 本発明のＤＮＡは、ｈＩＦＮτ
として知られているアミノ酸配列［Imakawa, K., et a
l. (1994) J. Biol. Chem. 269, 10864参照］（配列表
の配列番号６のアミノ酸番号２〜１７２；以下「ｈＩＦ
Ｎτ配列」という）を基に、その複数の部位においてア
ミノ酸残基が置換された配列をコードするように、既知
のアミノ酸配列をコードするＤＮＡを遺伝子操作により
改変するか、あるいは所望の改変体をコードするＤＮＡ
を全合成することにより得ることができる。
として知られているアミノ酸配列［Imakawa, K., et a
l. (1994) J. Biol. Chem. 269, 10864参照］（配列表
の配列番号６のアミノ酸番号２〜１７２；以下「ｈＩＦ
Ｎτ配列」という）を基に、その複数の部位においてア
ミノ酸残基が置換された配列をコードするように、既知
のアミノ酸配列をコードするＤＮＡを遺伝子操作により
改変するか、あるいは所望の改変体をコードするＤＮＡ
を全合成することにより得ることができる。
【００１２】ｈＩＦＮτ配列をコードするＤＮＡは、文
献に記載された方法に従って、ＩＦＮτを産生するヒト
組織または細胞株から作製されたｃＤＮＡライブラリー
からクローニングすることにより得られる［前記Imakaw
a, K., et al. 参照］。
献に記載された方法に従って、ＩＦＮτを産生するヒト
組織または細胞株から作製されたｃＤＮＡライブラリー
からクローニングすることにより得られる［前記Imakaw
a, K., et al. 参照］。
【００１３】また、例えば大腸菌で組換えタンパク質を
生産する目的で、大腸菌での使用頻度の高いコドンでｈ
ＩＦＮτ配列をコードするヌクレオチド配列を有するＤ
ＮＡを人工的に調製することもできる。この場合、シグ
ナルペプチド部分は不要であるから、成熟型タンパク質
のＮ末端に開始メチオニンコドンが付加されたものをコ
ードするＤＮＡを調製することができる。なお、本発明
の好適な実施態様においては、通常、組換えＩＦＮτの
Ｎ末端メチオニンは、天然型、改変型を問わず、大腸菌
で発現後、精製に至るまでの過程で自動的に除去され
る。
生産する目的で、大腸菌での使用頻度の高いコドンでｈ
ＩＦＮτ配列をコードするヌクレオチド配列を有するＤ
ＮＡを人工的に調製することもできる。この場合、シグ
ナルペプチド部分は不要であるから、成熟型タンパク質
のＮ末端に開始メチオニンコドンが付加されたものをコ
ードするＤＮＡを調製することができる。なお、本発明
の好適な実施態様においては、通常、組換えＩＦＮτの
Ｎ末端メチオニンは、天然型、改変型を問わず、大腸菌
で発現後、精製に至るまでの過程で自動的に除去され
る。
【００１４】ｈＩＦＮτ配列をコードするＤＮＡに所望
の改変を加える方法としては、該改変部位をコードする
部分を含む合成オリゴＤＮＡを用いて部位特異的変異を
導入する方法（インビトロ・ミュータジェネシス）［Ma
rk, D. F., et al. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. US
A 81, 5662-5666 参照］、またポリメラーゼ連鎖反応
（以下「ＰＣＲ」という）［Saiki, R. K., et al (198
8) Science 239, 487-491 参照］を利用して該アミノ酸
をコードするＤＮＡ部分を付け加える方法などを利用す
ることができる。
の改変を加える方法としては、該改変部位をコードする
部分を含む合成オリゴＤＮＡを用いて部位特異的変異を
導入する方法（インビトロ・ミュータジェネシス）［Ma
rk, D. F., et al. (1984) Proc. Natl. Acad. Sci. US
A 81, 5662-5666 参照］、またポリメラーゼ連鎖反応
（以下「ＰＣＲ」という）［Saiki, R. K., et al (198
8) Science 239, 487-491 参照］を利用して該アミノ酸
をコードするＤＮＡ部分を付け加える方法などを利用す
ることができる。
【００１５】なお、本発明のＤＮＡの調製のための中間
体として使用することができるＤＮＡを保持する発現ベ
クターで形質転換された大腸菌株Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＴ７
ＩＦＮτｄ１、Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ２およ
びＥ．ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ３が、平成８年７月
２３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に国際
寄託され、それぞれ受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０
２、ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０３およびＦＥＲＭ ＢＰ−
５６０４が付されている。これらの菌株よりプラスミド
を単離し、上記に例示した方法で改変を加えることによ
り、本発明のＤＮＡを調製することができる。
体として使用することができるＤＮＡを保持する発現ベ
クターで形質転換された大腸菌株Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＴ７
ＩＦＮτｄ１、Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ２およ
びＥ．ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ３が、平成８年７月
２３日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に国際
寄託され、それぞれ受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０
２、ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０３およびＦＥＲＭ ＢＰ−
５６０４が付されている。これらの菌株よりプラスミド
を単離し、上記に例示した方法で改変を加えることによ
り、本発明のＤＮＡを調製することができる。
【００１６】また、本発明の改変体をコードするＤＮＡ
を全合成することもできる［Hunkapiller, M., et al
(1984) Nature 310, 105-111 参照］。例えば、両端が
オーバーラップするように、センスおよびアンチセンス
部分配列を合成し、ＰＣＲ等のＤＮＡポリメラーゼ反応
を利用してそれら部分配列が連結された全配列を構築す
ることが可能である。
を全合成することもできる［Hunkapiller, M., et al
(1984) Nature 310, 105-111 参照］。例えば、両端が
オーバーラップするように、センスおよびアンチセンス
部分配列を合成し、ＰＣＲ等のＤＮＡポリメラーゼ反応
を利用してそれら部分配列が連結された全配列を構築す
ることが可能である。
【００１７】なお、所望のアミノ酸に対するコドンはそ
れ自体公知であり、その選択も任意でよく、例えば利用
する宿主のコドン使用頻度を考慮して常法に従い決定で
きる［Grantham, R., et al. (1981) Nucleic Acids Re
s. 9, r43-r74 参照］。さらに、これらヌクレオチド配
列のコドンの一部改変は、前述の部位特異的変異導入法
等に従うことができる。
れ自体公知であり、その選択も任意でよく、例えば利用
する宿主のコドン使用頻度を考慮して常法に従い決定で
きる［Grantham, R., et al. (1981) Nucleic Acids Re
s. 9, r43-r74 参照］。さらに、これらヌクレオチド配
列のコドンの一部改変は、前述の部位特異的変異導入法
等に従うことができる。
【００１８】また、あるＤＮＡが上記（４）または
（５）記載のＤＮＡとハイブリダイズするか否かは、以
下のようにして調べることができる。すなわち、まず被
検検体のＤＮＡを必要に応じてアガロースゲル電気泳動
した後、ニトロセルロースまたはナイロン等の膜にブロ
ットし、吸着したＤＮＡを熱処理や紫外線照射等により
膜に固定する。（４）または（５）記載のＤＮＡを、ラ
ンダムプライマー法［Feinberg, A. P., et al. (1983)
Anal. Biochem., 132, 6-13参照］、ニックトランスレ
ーション法［Maniatis, T., et al. (1982) "Molecular
Cloning: A Laboratory Manual" Cold Spring Harbor
Laboratory, New York参照］等に従って、32Ｐ等の放射
性同位元素、ビオチン、ジゴキシゲニンまたは酵素等で
標識したプローブを作製する。該プローブを含むハイブ
リダイゼーション溶液中に膜を浸して、所定の温度でイ
ンキュベーションした後、膜を洗浄し、それぞれの標識
に即した方法によりプローブを検出する。ハイブリダイ
ゼーション溶液中に含まれるＳＳＣ（salined-sodium c
itrate：「クエン酸ナトリウム−生理食塩水液」；１×
ＳＳＣは０．１５Ｍの塩化ナトリウム、１５ｍＭのクエ
ン酸ナトリウムを含む）の濃度は好適には４ないし８×
ＳＳＣ、さらに好適には６×ＳＳＣである。また、イン
キュベーション温度は好適には３０ないし７０℃、さら
に好適には６０℃である。
（５）記載のＤＮＡとハイブリダイズするか否かは、以
下のようにして調べることができる。すなわち、まず被
検検体のＤＮＡを必要に応じてアガロースゲル電気泳動
した後、ニトロセルロースまたはナイロン等の膜にブロ
ットし、吸着したＤＮＡを熱処理や紫外線照射等により
膜に固定する。（４）または（５）記載のＤＮＡを、ラ
ンダムプライマー法［Feinberg, A. P., et al. (1983)
Anal. Biochem., 132, 6-13参照］、ニックトランスレ
ーション法［Maniatis, T., et al. (1982) "Molecular
Cloning: A Laboratory Manual" Cold Spring Harbor
Laboratory, New York参照］等に従って、32Ｐ等の放射
性同位元素、ビオチン、ジゴキシゲニンまたは酵素等で
標識したプローブを作製する。該プローブを含むハイブ
リダイゼーション溶液中に膜を浸して、所定の温度でイ
ンキュベーションした後、膜を洗浄し、それぞれの標識
に即した方法によりプローブを検出する。ハイブリダイ
ゼーション溶液中に含まれるＳＳＣ（salined-sodium c
itrate：「クエン酸ナトリウム−生理食塩水液」；１×
ＳＳＣは０．１５Ｍの塩化ナトリウム、１５ｍＭのクエ
ン酸ナトリウムを含む）の濃度は好適には４ないし８×
ＳＳＣ、さらに好適には６×ＳＳＣである。また、イン
キュベーション温度は好適には３０ないし７０℃、さら
に好適には６０℃である。
【００１９】上記の方法を利用することにより、（４）
または（５）記載のＤＮＡとハイブリダイズするＤＮＡ
を、種々のｃＤＮＡライブラリーまたはゲノムライブラ
リーからクローニングすることができる。
または（５）記載のＤＮＡとハイブリダイズするＤＮＡ
を、種々のｃＤＮＡライブラリーまたはゲノムライブラ
リーからクローニングすることができる。
【００２０】このようにして得られた本発明のＩＦＮτ
改変体をコードするＤＮＡを好適なベクターＤＮＡに組
込むことにより、原核生物または真核生物の宿主細胞を
形質転換させることができる。さらに、これらのベクタ
ーに適当なプロモーターおよび形質転換にかかわる配列
を導入することにより、それぞれの宿主細胞において遺
伝子を発現させることが可能である。
改変体をコードするＤＮＡを好適なベクターＤＮＡに組
込むことにより、原核生物または真核生物の宿主細胞を
形質転換させることができる。さらに、これらのベクタ
ーに適当なプロモーターおよび形質転換にかかわる配列
を導入することにより、それぞれの宿主細胞において遺
伝子を発現させることが可能である。
【００２１】原核細胞の宿主としては、例えば大腸菌
（Escherichia coli）や枯草菌（Bacillus subtilis ）
等が挙げられる。目的の遺伝子をこれらの宿主細胞内で
形質発現させるには、宿主と適合し得る種由来のレプリ
コン、すなわち複製起点および調節配列を含んでいるプ
ラスミドベクターで宿主細胞を形質転換させればよい。
またベクターは形質転換細胞に表現形質（表現型）の選
択性を付与することができる配列を持つものが望まし
い。
（Escherichia coli）や枯草菌（Bacillus subtilis ）
等が挙げられる。目的の遺伝子をこれらの宿主細胞内で
形質発現させるには、宿主と適合し得る種由来のレプリ
コン、すなわち複製起点および調節配列を含んでいるプ
ラスミドベクターで宿主細胞を形質転換させればよい。
またベクターは形質転換細胞に表現形質（表現型）の選
択性を付与することができる配列を持つものが望まし
い。
【００２２】例えば大腸菌としてはＥ．ｃｏｌｉ Ｋ１
２株等がよく用いられ、ベクターとしては一般にｐＢＲ
３２２やｐＵＣ形のプラスミドがよく用いられるが、こ
れに限定されず、公知の各種の菌株及びベクターがいず
れも利用できる。
２株等がよく用いられ、ベクターとしては一般にｐＢＲ
３２２やｐＵＣ形のプラスミドがよく用いられるが、こ
れに限定されず、公知の各種の菌株及びベクターがいず
れも利用できる。
【００２３】プロモーターとしては、大腸菌においては
トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター、ラクトース
（ｌａｃ）プロモーター、トリプトファン・ラクトース
（ｔａｃ）プロモーター、リポプロテイン（ｌｐｐ）プ
ロモーター、バクテリオファージ由来のラムダ（λ）Ｐ
Ｌ プロモーター、ポリペプチド鎖伸長因子Ｔｕ（ｔｕ
ｆＢ）プロモーター等が挙げられ、どのプロモーターも
本発明のポリペプチドの産生に使用することができる。
トリプトファン（ｔｒｐ）プロモーター、ラクトース
（ｌａｃ）プロモーター、トリプトファン・ラクトース
（ｔａｃ）プロモーター、リポプロテイン（ｌｐｐ）プ
ロモーター、バクテリオファージ由来のラムダ（λ）Ｐ
Ｌ プロモーター、ポリペプチド鎖伸長因子Ｔｕ（ｔｕ
ｆＢ）プロモーター等が挙げられ、どのプロモーターも
本発明のポリペプチドの産生に使用することができる。
【００２４】枯草菌としては、例えば２０７−２５株が
好ましく、ベクターとしてはｐＴＵＢ２２８［Ohmura,
K., et al. (1984) J. Biochem. 95, 87-93 参照］等が
用いられるが、これに限定されるものではない。枯草菌
用プロモーターとしては、枯草菌のα−アミラーゼ遺伝
子の調節配列がよく用いられ、さらに必要によりα−ア
ミラーゼのシグナルペプチド配列をコードするＤＮＡ配
列を連結することにより、菌体外での分泌発現も可能と
なる。
好ましく、ベクターとしてはｐＴＵＢ２２８［Ohmura,
K., et al. (1984) J. Biochem. 95, 87-93 参照］等が
用いられるが、これに限定されるものではない。枯草菌
用プロモーターとしては、枯草菌のα−アミラーゼ遺伝
子の調節配列がよく用いられ、さらに必要によりα−ア
ミラーゼのシグナルペプチド配列をコードするＤＮＡ配
列を連結することにより、菌体外での分泌発現も可能と
なる。
【００２５】宿主細胞として大腸菌を用いる場合を例に
挙げると、発現ベクターとしては、ｐＢＲ３２２複製起
点を有し、大腸菌において自律増殖が可能であり、さら
に転写プロモーター、翻訳開始シグナルを備えたものを
用いることができる。該発現ベクターはカルシウム−ク
ロライド法［Mandel, M. and Higa, A. (1970) J. Mol.
Biol. 53, 154参照］、ハナハンの方法［Hanahan, D.
and Meselson, M. (1980) Gene 10, 63 参照］および電
気パルス穿孔法［Neumann, E., et al. (1982)EMBO J.
1, 841-845 参照］等により大腸菌に取り込ませること
ができ、かくして所望のベクターがトランスフェクトさ
れた細胞を得ることができる。
挙げると、発現ベクターとしては、ｐＢＲ３２２複製起
点を有し、大腸菌において自律増殖が可能であり、さら
に転写プロモーター、翻訳開始シグナルを備えたものを
用いることができる。該発現ベクターはカルシウム−ク
ロライド法［Mandel, M. and Higa, A. (1970) J. Mol.
Biol. 53, 154参照］、ハナハンの方法［Hanahan, D.
and Meselson, M. (1980) Gene 10, 63 参照］および電
気パルス穿孔法［Neumann, E., et al. (1982)EMBO J.
1, 841-845 参照］等により大腸菌に取り込ませること
ができ、かくして所望のベクターがトランスフェクトさ
れた細胞を得ることができる。
【００２６】真核生物の宿主細胞には、脊椎動物、昆
虫、酵母等の細胞が含まれ、脊椎動物細胞としては、例
えばサルの細胞であるＣＯＳ細胞［Gluzman, Y. (1981)
Cell23, 175-182 参照］やチャイニーズハムスター卵
巣細胞（ＣＨＯ）のジヒドロ葉酸レダクターゼ欠損株
［Urlaub, G. and Chasin, L. A. (1980) Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 77, 4216-4220参照］、ヒトナマルバ細
胞、ハムスターＢＨＫ細胞等がよく用いられるが、これ
らに限定されない。
虫、酵母等の細胞が含まれ、脊椎動物細胞としては、例
えばサルの細胞であるＣＯＳ細胞［Gluzman, Y. (1981)
Cell23, 175-182 参照］やチャイニーズハムスター卵
巣細胞（ＣＨＯ）のジヒドロ葉酸レダクターゼ欠損株
［Urlaub, G. and Chasin, L. A. (1980) Proc. Natl.
Acad. Sci. USA 77, 4216-4220参照］、ヒトナマルバ細
胞、ハムスターＢＨＫ細胞等がよく用いられるが、これ
らに限定されない。
【００２７】脊椎動物細胞の発現ベクターとしては、通
常発現させようとする遺伝子の上流に位置するプロモー
ター、ＲＮＡのスプライス部位、ポリアデニル化部位お
よび転写終結配列等を有するものを使用でき、これはさ
らに必要により複製起点を有してもよい。該発現ベクタ
ーの例としては、ＳＶ４０の初期プロモーターを有する
ｐＳＶ２ｄｈｆｒ［Subramani, S., et al. (1981) Mo
l. Cell. Biol. 1, 854-864参照］等を例示できるが、
これに限定されない。
常発現させようとする遺伝子の上流に位置するプロモー
ター、ＲＮＡのスプライス部位、ポリアデニル化部位お
よび転写終結配列等を有するものを使用でき、これはさ
らに必要により複製起点を有してもよい。該発現ベクタ
ーの例としては、ＳＶ４０の初期プロモーターを有する
ｐＳＶ２ｄｈｆｒ［Subramani, S., et al. (1981) Mo
l. Cell. Biol. 1, 854-864参照］等を例示できるが、
これに限定されない。
【００２８】また真核微生物としては酵母が一般によく
用いれられており、その中でもサッカロミセス属酵母、
例えばサッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces ce
revisiae）が好ましい。該酵母等の真核生物の発現ベク
ターとしては、例えばアルコール脱水素酵素遺伝子のプ
ロモーター［Bennetzen, J. L. and Hall, B. D. (198
2) J. Biol. Chem. 257, 3018-3025 参照］や酸性ホス
ファターゼ遺伝子のプロモーター［Miyanohara, A., et
al. (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80, 1-5参
照］等を好ましく利用できる。
用いれられており、その中でもサッカロミセス属酵母、
例えばサッカロミセス・セレビシエ（Saccharomyces ce
revisiae）が好ましい。該酵母等の真核生物の発現ベク
ターとしては、例えばアルコール脱水素酵素遺伝子のプ
ロモーター［Bennetzen, J. L. and Hall, B. D. (198
2) J. Biol. Chem. 257, 3018-3025 参照］や酸性ホス
ファターゼ遺伝子のプロモーター［Miyanohara, A., et
al. (1983) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80, 1-5参
照］等を好ましく利用できる。
【００２９】宿主細胞として、ＣＯＳ細胞を用いる場合
を例に挙げると、発現ベクターとしては、ＳＶ４０複製
起点を有し、ＣＯＳ細胞において自立増殖が可能であ
り、さらに転写プロモーター、転写集結シグナルおよび
ＲＮＡスプライス部位を備えたものを用いることができ
る。該発現ベクターはＤＥＡＥ−デキストラン法［Luth
man, H. and Magnusson, G. (1983) Nucleic Acids Re
s. 11, 1295-1308 参照］、リン酸カルシウム−ＤＮＡ
共沈澱法［Graham, F. L. and van der Ed, A. J.(197
3) Virology 52, 456-457 参照］および電気パルス穿孔
法［Neumann, E., et al. (1982) EMBO J. 1, 841-845
参照］等によりＣＯＳ細胞に取り込ませることができ、
かくして所望の形質転換細胞を得ることができる。ま
た、宿主細胞としてＣＨＯ細胞を用いる場合には、発現
ベクターと共にＧ４１８耐性マーカーとして機能するｎ
ｅｏ遺伝子を発現し得るベクター、例えばｐＲＳＶｎｅ
ｏ［Sambrook, J., et al. (1989) "Molecular Clonin
g: A Laboratory Manual" Cold Spring Harbor Laborat
ory, NY参照］やｐＳＶ２ｎｅｏ［Southern, P. J. and
Berg, P. (1982) J. Mol. Appl. Genet. 1, 327-341
参照］等をコ・トランスフェクトし、Ｇ４１８耐性のコ
ロニーを選択することにより本発明のポリペプチドを安
定に産生する形質転換細胞を得ることができる。
を例に挙げると、発現ベクターとしては、ＳＶ４０複製
起点を有し、ＣＯＳ細胞において自立増殖が可能であ
り、さらに転写プロモーター、転写集結シグナルおよび
ＲＮＡスプライス部位を備えたものを用いることができ
る。該発現ベクターはＤＥＡＥ−デキストラン法［Luth
man, H. and Magnusson, G. (1983) Nucleic Acids Re
s. 11, 1295-1308 参照］、リン酸カルシウム−ＤＮＡ
共沈澱法［Graham, F. L. and van der Ed, A. J.(197
3) Virology 52, 456-457 参照］および電気パルス穿孔
法［Neumann, E., et al. (1982) EMBO J. 1, 841-845
参照］等によりＣＯＳ細胞に取り込ませることができ、
かくして所望の形質転換細胞を得ることができる。ま
た、宿主細胞としてＣＨＯ細胞を用いる場合には、発現
ベクターと共にＧ４１８耐性マーカーとして機能するｎ
ｅｏ遺伝子を発現し得るベクター、例えばｐＲＳＶｎｅ
ｏ［Sambrook, J., et al. (1989) "Molecular Clonin
g: A Laboratory Manual" Cold Spring Harbor Laborat
ory, NY参照］やｐＳＶ２ｎｅｏ［Southern, P. J. and
Berg, P. (1982) J. Mol. Appl. Genet. 1, 327-341
参照］等をコ・トランスフェクトし、Ｇ４１８耐性のコ
ロニーを選択することにより本発明のポリペプチドを安
定に産生する形質転換細胞を得ることができる。
【００３０】上記で得られる所望の形質転換体は、常法
に従い培養することができ、該培養により細胞内または
細胞外に本発明のポリペプチドが生産される。該培養に
用いられる培地としては、採用した宿主細胞に応じて慣
用される各種のものを適宜選択でき、例えば、大腸菌で
あればトリプトン−イースト培地（バクトトリプトン
１．６％、イーストエキストラクト１．０％、塩化ナト
リウム ０．５％（ｐＨ７．０））やペプトン培地（デ
ィフコ社製）等を使用できる。また、上記ＣＯＳ細胞で
あればＲＰＭＩ−１６４０培地やダルベッコ修正イーグ
ル最小必須培地（ＤＭＥＭ）等の培地に必要に応じウシ
胎児血清（ＦＢＳ）等の血清成分を添加したものを使用
できる。
に従い培養することができ、該培養により細胞内または
細胞外に本発明のポリペプチドが生産される。該培養に
用いられる培地としては、採用した宿主細胞に応じて慣
用される各種のものを適宜選択でき、例えば、大腸菌で
あればトリプトン−イースト培地（バクトトリプトン
１．６％、イーストエキストラクト１．０％、塩化ナト
リウム ０．５％（ｐＨ７．０））やペプトン培地（デ
ィフコ社製）等を使用できる。また、上記ＣＯＳ細胞で
あればＲＰＭＩ−１６４０培地やダルベッコ修正イーグ
ル最小必須培地（ＤＭＥＭ）等の培地に必要に応じウシ
胎児血清（ＦＢＳ）等の血清成分を添加したものを使用
できる。
【００３１】上記により、形質転換体の細胞内または細
胞外に生産される本発明のＩＦＮτ改変体は、該蛋白質
の物理的性質や化学的性質等を利用した各種の公知の分
離操作法により、分離・精製することができる。かかる
方法としては、具体的には例えば通常の蛋白質沈澱剤に
よる処理、限外ろ過、分子ふるいクロマトグラフィー
（ゲルろ過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換ク
ロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィ
ー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）等の各種
クロマトグラフィー、透析法、これらの組合せ等を例示
できる。
胞外に生産される本発明のＩＦＮτ改変体は、該蛋白質
の物理的性質や化学的性質等を利用した各種の公知の分
離操作法により、分離・精製することができる。かかる
方法としては、具体的には例えば通常の蛋白質沈澱剤に
よる処理、限外ろ過、分子ふるいクロマトグラフィー
（ゲルろ過）、吸着クロマトグラフィー、イオン交換ク
ロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィ
ー、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）等の各種
クロマトグラフィー、透析法、これらの組合せ等を例示
できる。
【００３２】外来遺伝子を大腸菌等に導入して大量発現
させた場合、産生されたポリペプチドが、封入体と呼ば
れる水に不溶の集塊を形成することがある。そのような
場合、グアニジンイソチオシアネート等の強力な変性剤
を用いて該ポリペプチドを変性させることにより該ポリ
ペプチドを可溶化することができるが、変性したポリペ
プチドは、本来の高次構造を形成していないため活性を
有していないことが多い。また、封入体を形成しない場
合でも、産生されたポリペプチドが、正しい高次構造を
形成しないままの状態であったり、精製中に変性したり
することにより、不活性型として得られることもある。
そのような場合には、ポリペプチドに正しい高次構造を
形成させて活性型の蛋白質を得る目的で、当業者に周知
のリフォールディング技術［例えば、Klemann, S. W.,
et al. (1990) Molecular Endocrinology 4, 1506-1514
および Ymamada, K., et al. (1990) Biotechnology 8,
1036-1040参照］を用いることができる。
させた場合、産生されたポリペプチドが、封入体と呼ば
れる水に不溶の集塊を形成することがある。そのような
場合、グアニジンイソチオシアネート等の強力な変性剤
を用いて該ポリペプチドを変性させることにより該ポリ
ペプチドを可溶化することができるが、変性したポリペ
プチドは、本来の高次構造を形成していないため活性を
有していないことが多い。また、封入体を形成しない場
合でも、産生されたポリペプチドが、正しい高次構造を
形成しないままの状態であったり、精製中に変性したり
することにより、不活性型として得られることもある。
そのような場合には、ポリペプチドに正しい高次構造を
形成させて活性型の蛋白質を得る目的で、当業者に周知
のリフォールディング技術［例えば、Klemann, S. W.,
et al. (1990) Molecular Endocrinology 4, 1506-1514
および Ymamada, K., et al. (1990) Biotechnology 8,
1036-1040参照］を用いることができる。
【００３３】上記のごとくして得られた本発明のＩＦＮ
τ改変体がインターフェロン活性を有するか否かは、例
えば以下に記載するような方法により調べることができ
る。 〔１〕抗ウイルス活性［Pestka, S. (1981) Methods in
Enzymology vol.78,386 参照］：９６穴細胞培養プレ
ート中で、ウシ腎由来の細胞株ＭＤＢＫ（ATCCNo. CCL2
2）を、被検検体を含む培地で培養後、水疱性口内炎ウ
イルス（Vesicular Stomatitis Virus：例えば、ATCC N
o. VR-159 ）を添加し感染させる。一定時間培養した
後、各ウェルの細胞をホルマリン固定し、クリスタルバ
イオレットで染色する。各ウェルの５５０ｎｍの吸光度
を測定することにより、細胞変性作用の抑制活性として
抗ウイルス活性を調べることができる。
τ改変体がインターフェロン活性を有するか否かは、例
えば以下に記載するような方法により調べることができ
る。 〔１〕抗ウイルス活性［Pestka, S. (1981) Methods in
Enzymology vol.78,386 参照］：９６穴細胞培養プレ
ート中で、ウシ腎由来の細胞株ＭＤＢＫ（ATCCNo. CCL2
2）を、被検検体を含む培地で培養後、水疱性口内炎ウ
イルス（Vesicular Stomatitis Virus：例えば、ATCC N
o. VR-159 ）を添加し感染させる。一定時間培養した
後、各ウェルの細胞をホルマリン固定し、クリスタルバ
イオレットで染色する。各ウェルの５５０ｎｍの吸光度
を測定することにより、細胞変性作用の抑制活性として
抗ウイルス活性を調べることができる。
【００３４】〔２〕抗腫瘍活性［Pontzer, C. H., et a
l. (1991) Cancer Res. 51, 5304-5307 参照］：２４穴
細胞培養プレート中で、ヒト羊膜細胞株ＷＩＳＨ（ATCC
No.CCL25）を、被検検体を含む培地で培養する。８日
間培養後、各ウェルの細胞をホルマリン固定し、クリス
タルバイオレットで染色して、顕微鏡下で形成コロニー
数をカウントする。被検検体が抗腫瘍活性を有する場合
は、形成コロニー数が抑制される。
l. (1991) Cancer Res. 51, 5304-5307 参照］：２４穴
細胞培養プレート中で、ヒト羊膜細胞株ＷＩＳＨ（ATCC
No.CCL25）を、被検検体を含む培地で培養する。８日
間培養後、各ウェルの細胞をホルマリン固定し、クリス
タルバイオレットで染色して、顕微鏡下で形成コロニー
数をカウントする。被検検体が抗腫瘍活性を有する場合
は、形成コロニー数が抑制される。
【００３５】〔３〕自己免疫疾患に対する効果［Soos,
J. M., et al. (1995) J. Immunol.155, 2747-2753 参
照］：ＮＺＷマウスをウシミエリンベーシックプロテイ
ンで免疫し、さらに百日咳毒素（pertussis toxin ）を
投与することにより、実験的アレルギー性脳脊髄炎を発
症させる。このマウスをしばらく飼育すると症状が消失
するが、ブドウ球菌外毒素Ｂ（Staphylococcul enterot
oxin B；以下「ＳＥＢ」という）を投与することにより
症状が再発する。このＳＥＢ投与の前に被検検体を投与
して、症状再発の抑制効果を検討する。
J. M., et al. (1995) J. Immunol.155, 2747-2753 参
照］：ＮＺＷマウスをウシミエリンベーシックプロテイ
ンで免疫し、さらに百日咳毒素（pertussis toxin ）を
投与することにより、実験的アレルギー性脳脊髄炎を発
症させる。このマウスをしばらく飼育すると症状が消失
するが、ブドウ球菌外毒素Ｂ（Staphylococcul enterot
oxin B；以下「ＳＥＢ」という）を投与することにより
症状が再発する。このＳＥＢ投与の前に被検検体を投与
して、症状再発の抑制効果を検討する。
【００３６】なお、インターフェロン活性の測定方法は
これらに限定されず、当業者に周知の他の測定方法も用
いられ得る。
これらに限定されず、当業者に周知の他の測定方法も用
いられ得る。
【００３７】本発明のポリペプチドは、ウイルスによる
感染症、腫瘍、自己免疫疾患ならびにそれらに付随して
生ずる各種疾患の処置において、単独または他の治療薬
との併用投与で用いられる。
感染症、腫瘍、自己免疫疾患ならびにそれらに付随して
生ずる各種疾患の処置において、単独または他の治療薬
との併用投与で用いられる。
【００３８】上記の症状を処置するために用いる本発明
の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤または自己免疫疾患治療剤組
成物は、医学的に許容される担体と治療上有効な量の本
発明のポリペプチドとの混合物からなる。本組成物は、
種々の形態で投与することができ、それらの投与形態と
しては、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、シロップ剤
等による経口投与、または、注射剤、点滴剤、坐薬など
による非経口投与をあげることができる。
の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤または自己免疫疾患治療剤組
成物は、医学的に許容される担体と治療上有効な量の本
発明のポリペプチドとの混合物からなる。本組成物は、
種々の形態で投与することができ、それらの投与形態と
しては、錠剤、カプセル剤、顆粒剤、散剤、シロップ剤
等による経口投与、または、注射剤、点滴剤、坐薬など
による非経口投与をあげることができる。
【００３９】注射剤または点滴剤として投与される場
合、本発明の治療組成物は発熱物質を含まず、非経口的
に許容可能な水溶液の態様である。ｐＨ、等張性、およ
び安定性を考慮して調製される上記の非経口的に許容さ
れうるタンパク質溶液の調剤は、当業者に周知の技術に
より実施できる。
合、本発明の治療組成物は発熱物質を含まず、非経口的
に許容可能な水溶液の態様である。ｐＨ、等張性、およ
び安定性を考慮して調製される上記の非経口的に許容さ
れうるタンパク質溶液の調剤は、当業者に周知の技術に
より実施できる。
【００４０】上記症状の処置における投与量および投与
法は、本薬剤の作用に影響を及ぼし得る要因、例えば、
患者の症状、体重、性、年令、食餌、何らかの感染の重
度、投与の時間およびその他の臨床上影響を与える要因
を考慮して診察する医師によって決定されうる。通常、
経口投与では成人に対して１日約１ｎｇないし１００ｍ
ｇであり、これらを１回または数回に分けて投与するこ
とができる。また、非経口投与では、１回約１ｎｇない
し１００ｍｇを皮下注射、筋肉注射、または静脈注射に
よって投与することができる。
法は、本薬剤の作用に影響を及ぼし得る要因、例えば、
患者の症状、体重、性、年令、食餌、何らかの感染の重
度、投与の時間およびその他の臨床上影響を与える要因
を考慮して診察する医師によって決定されうる。通常、
経口投与では成人に対して１日約１ｎｇないし１００ｍ
ｇであり、これらを１回または数回に分けて投与するこ
とができる。また、非経口投与では、１回約１ｎｇない
し１００ｍｇを皮下注射、筋肉注射、または静脈注射に
よって投与することができる。
【００４１】本発明の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤または自
己免疫疾患治療剤組成物は、他の適当な抗ウイルス剤、
抗腫瘍剤または自己免疫疾患治療剤と併用して用いられ
得る。この場合、他の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤または自
己免疫疾患治療剤は本発明の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤ま
たは自己免疫疾患治療剤組成物中の一成分として加えて
用いることができるが、別々の組成物として同じ患者に
投与することもできる。上記の併用は、他の抗ウイルス
剤、抗腫瘍剤または自己免疫疾患治療剤単独での処置の
活性または効果を増進しうる。
己免疫疾患治療剤組成物は、他の適当な抗ウイルス剤、
抗腫瘍剤または自己免疫疾患治療剤と併用して用いられ
得る。この場合、他の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤または自
己免疫疾患治療剤は本発明の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤ま
たは自己免疫疾患治療剤組成物中の一成分として加えて
用いることができるが、別々の組成物として同じ患者に
投与することもできる。上記の併用は、他の抗ウイルス
剤、抗腫瘍剤または自己免疫疾患治療剤単独での処置の
活性または効果を増進しうる。
【００４２】本発明の抗ウイルス剤、抗腫瘍剤または自
己免疫疾患治療剤は、前述のＩＦＮτ改変体を主成分と
して含有する。他の成分としては、一般的な医薬添加物
が選ばれる。添加物がなくとも本発明の目的は達成され
るが、一般的には主として安定化のために添加物が加え
られる。そのような医薬添加物としては、局方に記載さ
れた、医薬添加物として使用できる蛋白質または糖類の
中から選ばれる。特に好適にはヒト血清アルブミン、ゼ
ラチン、マンニトール、ソルビトール、ラクトースなど
の中から適宜あるいは組み合わせて選ばれるが、これら
に限定するものではない。
己免疫疾患治療剤は、前述のＩＦＮτ改変体を主成分と
して含有する。他の成分としては、一般的な医薬添加物
が選ばれる。添加物がなくとも本発明の目的は達成され
るが、一般的には主として安定化のために添加物が加え
られる。そのような医薬添加物としては、局方に記載さ
れた、医薬添加物として使用できる蛋白質または糖類の
中から選ばれる。特に好適にはヒト血清アルブミン、ゼ
ラチン、マンニトール、ソルビトール、ラクトースなど
の中から適宜あるいは組み合わせて選ばれるが、これら
に限定するものではない。
【００４３】
【実施例】 以下に参考例および実施例を挙げて本発明
をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定され
ない。
をさらに詳細に説明するが、本発明はこれらに限定され
ない。
【００４４】参考例１． ｈＩＦＮτをコードするＤＮ
Ａの調製 １）ＤＮＡの調製 ｈＩＦＮτの全アミノ酸配列をコードするＤＮＡを大腸
菌で発現させるため、大腸菌のコドン使用頻度（E. col
i codon usage ）［Watson, J. D., et al. "Molecular
Biology of the Gene 4th Edition, 440, Garland Pub
lishing 参照］を参考にして、配列表の配列番号５に示
すＤＮＡを調製した。まず、以下に記載するオリゴヌク
レオチド： 5'- ATGTGCGACC TGTCTCAGAA CCACGTTCTG GTTGGTCGTA AAAACCTGCG TCTGCTGGAC GAAATGC -3' （Ａ−１：配列表の配列番号７）； 5'- CGGTCCTGCA GGCAGAAGTG CGGAGACAGA CGACGCATTT CGTCCAGCAG ACGCA -3' （Ａ−２：配列表の配列番号８）； 5'- TCTGCCTGCA GGACCGTAAG GACTTCGCTC TGCCGCAGGA AATGGTTGAA GGCGGCCAGC TGCAG -3' （Ａ−３：配列表の配列番号９）； 5'- GAAGGACTGC TGCAGCATTT CGTGCAGAAC GGAGATAGCC TGAGCTTCCT GCAGCTGGCC GCCTTCAAC -3' （Ａ−４：配列表の配列番号１０）； 5'- AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTGTTCC ACACTGAACA CTCCTCTGCT GCTTGGGACA CT -3' （Ａ−５：配列表の配列番号１１）； 5'- CAGCTGCTGG TGCAGGCCAG TACGGCACGG TTCCAGCAGA GTAGTGTCCC AAGCAGCAGA GGA -3' （Ａ−６：配列表の配列番号１２）； 5'- ACTGGTCTGC ACCAGCAGCT GGACAACCTG GACGCTTGCC TAGGTCAGGT TATGGGCGAA GAAGAC -3' （Ａ−７：配列表の配列番号１３）； 5'- CAGAGTCGGA CCAGTACGAC CCAGAGCAGA GTCTTCTTCG CCCATAACCT GACC -3' （Ａ−８：配列表の配列番号１４）； 5'- CGTACTGGTC CGACTCTGGC TCTGAAACGT TACTTCCAAG GCATCCACGT TTACCTGAAG GAA -3' （Ａ−９：配列表の配列番号１５）； 5'- TTCCAGACGA ACAGTTTCCC AAGCGCAGTC GCTGTAGCCC TTTTCCTTCA GGTAAACGTG GAT -3' （Ａ−１０：配列表の配列番号１６）； 5'- TGGGAAACTG TTCGTCTGGA AATCATGCGT TCCTTCTCCT CTCTGATCAG CCTGCAG -3' （Ａ−１１：配列表の配列番号１７）； 5'- TCACGGAGAA GACAGGTCAC CGTCCATCAT ACGCAGACGT TCCTGCAGGC TGATCAGAGA GG -3' （Ａ−１２：配列表の配列番号１８）； をＤＮＡ合成機（モデル３９２；アプライド・バイオシ
ステムズ社製）にて合成した。
Ａの調製 １）ＤＮＡの調製 ｈＩＦＮτの全アミノ酸配列をコードするＤＮＡを大腸
菌で発現させるため、大腸菌のコドン使用頻度（E. col
i codon usage ）［Watson, J. D., et al. "Molecular
Biology of the Gene 4th Edition, 440, Garland Pub
lishing 参照］を参考にして、配列表の配列番号５に示
すＤＮＡを調製した。まず、以下に記載するオリゴヌク
レオチド： 5'- ATGTGCGACC TGTCTCAGAA CCACGTTCTG GTTGGTCGTA AAAACCTGCG TCTGCTGGAC GAAATGC -3' （Ａ−１：配列表の配列番号７）； 5'- CGGTCCTGCA GGCAGAAGTG CGGAGACAGA CGACGCATTT CGTCCAGCAG ACGCA -3' （Ａ−２：配列表の配列番号８）； 5'- TCTGCCTGCA GGACCGTAAG GACTTCGCTC TGCCGCAGGA AATGGTTGAA GGCGGCCAGC TGCAG -3' （Ａ−３：配列表の配列番号９）； 5'- GAAGGACTGC TGCAGCATTT CGTGCAGAAC GGAGATAGCC TGAGCTTCCT GCAGCTGGCC GCCTTCAAC -3' （Ａ−４：配列表の配列番号１０）； 5'- AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTGTTCC ACACTGAACA CTCCTCTGCT GCTTGGGACA CT -3' （Ａ−５：配列表の配列番号１１）； 5'- CAGCTGCTGG TGCAGGCCAG TACGGCACGG TTCCAGCAGA GTAGTGTCCC AAGCAGCAGA GGA -3' （Ａ−６：配列表の配列番号１２）； 5'- ACTGGTCTGC ACCAGCAGCT GGACAACCTG GACGCTTGCC TAGGTCAGGT TATGGGCGAA GAAGAC -3' （Ａ−７：配列表の配列番号１３）； 5'- CAGAGTCGGA CCAGTACGAC CCAGAGCAGA GTCTTCTTCG CCCATAACCT GACC -3' （Ａ−８：配列表の配列番号１４）； 5'- CGTACTGGTC CGACTCTGGC TCTGAAACGT TACTTCCAAG GCATCCACGT TTACCTGAAG GAA -3' （Ａ−９：配列表の配列番号１５）； 5'- TTCCAGACGA ACAGTTTCCC AAGCGCAGTC GCTGTAGCCC TTTTCCTTCA GGTAAACGTG GAT -3' （Ａ−１０：配列表の配列番号１６）； 5'- TGGGAAACTG TTCGTCTGGA AATCATGCGT TCCTTCTCCT CTCTGATCAG CCTGCAG -3' （Ａ−１１：配列表の配列番号１７）； 5'- TCACGGAGAA GACAGGTCAC CGTCCATCAT ACGCAGACGT TCCTGCAGGC TGATCAGAGA GG -3' （Ａ−１２：配列表の配列番号１８）； をＤＮＡ合成機（モデル３９２；アプライド・バイオシ
ステムズ社製）にて合成した。
【００４５】次いで、Ａ−１とＡ−２、Ａ−３とＡ−
４、Ａ−５とＡ−６、Ａ−７とＡ−８、Ａ−９とＡ−１
０およびＡ−１１とＡ−１２の各組み合わせで、各約
０．１ｎｍｏｌのオリゴヌクレオチドを２種類づつ混合
し、それぞれ１サイクルあたり９６℃で３０秒、５４℃
で１分、７２℃で１分の条件にてＰＣＲを４サイクル実
施した。なお、以下に記載する参考例および実施例中の
全てのＰＣＲにおいて、ＬＡ ＰＣＲキット・バージョ
ン２（宝酒造（株）社製）を使用した。鋳型ＤＮＡ以外
の反応液組成は以下に記載する通りであった： １０倍濃度 ＬＡ ＰＣＲ緩衝液（Ｍｇ2+）（キットに添付） ５μｌ ｄＮＴＰ 混合液（キットに添付） ８μｌ プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．５μｌ ＬＡ Ｔａｑポリメラーゼ（５単位／μｌ，キットに添付） ０．５μｌ 滅菌蒸留水で全量５０μｌとする。ただし、上記の例の
ように、複数の鋳型を混合して相補鎖をアニーリングさ
せることにより、互いに一方の鋳型が他方の鋳型のプラ
イマーとなるような条件の反応においては、プライマー
は添加されない場合がある。
４、Ａ−５とＡ−６、Ａ−７とＡ−８、Ａ−９とＡ−１
０およびＡ−１１とＡ−１２の各組み合わせで、各約
０．１ｎｍｏｌのオリゴヌクレオチドを２種類づつ混合
し、それぞれ１サイクルあたり９６℃で３０秒、５４℃
で１分、７２℃で１分の条件にてＰＣＲを４サイクル実
施した。なお、以下に記載する参考例および実施例中の
全てのＰＣＲにおいて、ＬＡ ＰＣＲキット・バージョ
ン２（宝酒造（株）社製）を使用した。鋳型ＤＮＡ以外
の反応液組成は以下に記載する通りであった： １０倍濃度 ＬＡ ＰＣＲ緩衝液（Ｍｇ2+）（キットに添付） ５μｌ ｄＮＴＰ 混合液（キットに添付） ８μｌ プライマー（２０ｐｍｏｌ／μｌ） 各０．５μｌ ＬＡ Ｔａｑポリメラーゼ（５単位／μｌ，キットに添付） ０．５μｌ 滅菌蒸留水で全量５０μｌとする。ただし、上記の例の
ように、複数の鋳型を混合して相補鎖をアニーリングさ
せることにより、互いに一方の鋳型が他方の鋳型のプラ
イマーとなるような条件の反応においては、プライマー
は添加されない場合がある。
【００４６】上記の各組合わせのオリゴヌクレオチド
は、いずれも３’末端側に互いに相補的な配列を有して
いる。ＰＣＲにおいて、まずこれら相補鎖がアニーリン
グし、次いで残りの一本鎖部分にポリメラーゼ反応によ
る相補鎖が生成されるので、結果として元のヌクレオチ
ドの鎖長の合計から重複部分を除いた鎖長の二本鎖ＤＮ
Ａが得られる。各反応生成物をポリアクリルアミドゲル
電気泳動し、目的の鎖長に相当するバンド部分のゲルを
切り出して、それぞれの反応で増幅されたＤＮＡ断片
（「Ａ−（１＋２）」、「Ａ−（３＋４）」、「Ａ−
（５＋６）」、「Ａ−（７＋８）」、「Ａ−（９＋１
０）」および「Ａ−（１１＋１２）」という）を抽出精
製した。
は、いずれも３’末端側に互いに相補的な配列を有して
いる。ＰＣＲにおいて、まずこれら相補鎖がアニーリン
グし、次いで残りの一本鎖部分にポリメラーゼ反応によ
る相補鎖が生成されるので、結果として元のヌクレオチ
ドの鎖長の合計から重複部分を除いた鎖長の二本鎖ＤＮ
Ａが得られる。各反応生成物をポリアクリルアミドゲル
電気泳動し、目的の鎖長に相当するバンド部分のゲルを
切り出して、それぞれの反応で増幅されたＤＮＡ断片
（「Ａ−（１＋２）」、「Ａ−（３＋４）」、「Ａ−
（５＋６）」、「Ａ−（７＋８）」、「Ａ−（９＋１
０）」および「Ａ−（１１＋１２）」という）を抽出精
製した。
【００４７】次に、以下に記載するオリゴヌクレオチド
プライマー： 5'- ATACGGATCC CATATGTGCG ACCTGTCTCA GAACCACGTT CT
G -3' （Ａ−１Ｐｒ：配列表の配列番号１９）； 5'- GAAGGACTGC TGCAGCATTT CCACC -3' （Ａ−４Ｐｒ：配列表の配列番号２０）； 5'- AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTG -3' （Ａ−５Ｐｒ：配列表の配列番号２１）； 5'- CAGAGTCGGA CCAGTACGAC CCAG -3' （Ａ−８Ｐｒ：配列表の配列番号２２）； 5'- CGTACTGGTC CGACTCTGGC TCTG -3' （Ａ−９Ｐｒ：配列表の配列番号２３）； 5'- TTAAGGATCC TCACGGAGAA GACAGGTCAC CGTCC -3' （Ａ−１２Ｐｒ：配列表の配列番号２４） を合成し、表１に記載する組み合わせでＰＣＲを実施し
た。
プライマー： 5'- ATACGGATCC CATATGTGCG ACCTGTCTCA GAACCACGTT CT
G -3' （Ａ−１Ｐｒ：配列表の配列番号１９）； 5'- GAAGGACTGC TGCAGCATTT CCACC -3' （Ａ−４Ｐｒ：配列表の配列番号２０）； 5'- AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTG -3' （Ａ−５Ｐｒ：配列表の配列番号２１）； 5'- CAGAGTCGGA CCAGTACGAC CCAG -3' （Ａ−８Ｐｒ：配列表の配列番号２２）； 5'- CGTACTGGTC CGACTCTGGC TCTG -3' （Ａ−９Ｐｒ：配列表の配列番号２３）； 5'- TTAAGGATCC TCACGGAGAA GACAGGTCAC CGTCC -3' （Ａ−１２Ｐｒ：配列表の配列番号２４） を合成し、表１に記載する組み合わせでＰＣＲを実施し
た。
【００４８】
【表１】 ────────────────────────────────── 鋳型（２種類を混合） プライマー ────────────────────────────────── Ａ−（１＋２），Ａ−（３＋４） Ａ−１Ｐｒ，Ａ−４Ｐｒ Ａ−（５＋６），Ａ−（７＋８） Ａ−５Ｐｒ，Ａ−８Ｐｒ Ａ−（９＋１０），Ａ−（１１＋１２） Ａ−９Ｐｒ，Ａ−１２Ｐｒ ────────────────────────────────── ＰＣＲはいずれの場合も１サイクルあたり９８℃で３０
秒、５４℃で１分、７２℃で１分の条件で２０サイクル
実施した。各反応液中の２種類の鋳型は、３’末端側に
互いに相補的な配列を有するので、ＰＣＲによりこれら
の相補鎖で連結したＤＮＡが生成される。各反応生成物
をポリアクリルアミドゲル電気泳動し、目的の鎖長に相
当するバンドを切り出して、それぞれの反応で増幅され
たＤＮＡ断片（「Ａ−（１〜４）」、「Ａ−（５〜
８）」および「Ａ−（９〜１２）」という）を抽出精製
した。
秒、５４℃で１分、７２℃で１分の条件で２０サイクル
実施した。各反応液中の２種類の鋳型は、３’末端側に
互いに相補的な配列を有するので、ＰＣＲによりこれら
の相補鎖で連結したＤＮＡが生成される。各反応生成物
をポリアクリルアミドゲル電気泳動し、目的の鎖長に相
当するバンドを切り出して、それぞれの反応で増幅され
たＤＮＡ断片（「Ａ−（１〜４）」、「Ａ−（５〜
８）」および「Ａ−（９〜１２）」という）を抽出精製
した。
【００４９】さらに、同様にして、Ａ−（１〜４）とＡ
−（５〜８）を鋳型とし、Ａ−１ＰｒとＡ−８Ｐｒをプ
ライマーとするＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１
分、５４℃で２分、７２℃で２分；２０サイクル）を実
施してＡ−（１〜４）とＡ−（５〜８）が接続されたＤ
ＮＡ（「Ａ−（１〜８）」という）を調製した。次い
で、Ａ−（１〜８）とＡ−（９〜１２）を鋳型とし、Ａ
−１ＰｒとＡ−１２ＰｒをプライマーとしたＰＣＲを実
施して、配列表の配列番号５に示されるヌクレオチド配
列を含むＤＮＡを得た。該ヌクレオチド配列は、ｈＩＦ
Ｎτのアミノ酸配列をコードするＤＮＡの５’末端に、
翻訳開始のためのメチオニンコドンが付加されているも
のである。
−（５〜８）を鋳型とし、Ａ−１ＰｒとＡ−８Ｐｒをプ
ライマーとするＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１
分、５４℃で２分、７２℃で２分；２０サイクル）を実
施してＡ−（１〜４）とＡ−（５〜８）が接続されたＤ
ＮＡ（「Ａ−（１〜８）」という）を調製した。次い
で、Ａ−（１〜８）とＡ−（９〜１２）を鋳型とし、Ａ
−１ＰｒとＡ−１２ＰｒをプライマーとしたＰＣＲを実
施して、配列表の配列番号５に示されるヌクレオチド配
列を含むＤＮＡを得た。該ヌクレオチド配列は、ｈＩＦ
Ｎτのアミノ酸配列をコードするＤＮＡの５’末端に、
翻訳開始のためのメチオニンコドンが付加されているも
のである。
【００５０】２）組換えベクターの構築 以下に記載するオリゴヌクレオチド： 5'- TCAAGGGCAT CGGTCGACGC TCTCC -3' （Ｓ１Ｐｒ：配列表の配列番号２５）； 5'- CTGAGACAGG TCGCACATAT GTATATCTCC TTC -3' （Ｓ２Ｐｒ：配列表の配列番号２６） を合成した。次に、ｐＡＲ３０４０ベクター［Rosenber
g, A. H., et al. (1987) Gene 56, 125-135参照］を鋳
型とし、上記Ｓ１ＰｒおよびＳ２Ｐｒをプライマーとし
てＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１分、５４℃で２
分、７２℃で４分；２０サイクル）を実施して、該ベク
ター中に存在するＴ７プロモーターを含む領域（Ｓａｌ
Ｉ切断部位〜ＮｄｅＩ切断部位）と上記１）で得られた
ｈＩＦＮτをコードするＤＮＡの５’末端の１８ヌクレ
オチドが連結したＤＮＡ（配列表の配列番号２７：以下
「Ｔ７プロモーター含有断片」という）を増幅した。次
いで、上記１）で得られたｈＩＦＮτをコードするＤＮ
Ａを制限酵素ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩで消化してか
ら、０．１乃至０．３ｐｍｏｌ となるように１ｍＭエ
チレンジアミン四酢酸（以下「ＥＤＴＡ」という」）を
含む１０ｍＭ トリス−塩酸緩衝液（ｐＨ８：以下「Ｔ
Ｅ」という）に溶解した。このものとＴ７プロモーター
含有断片とを鋳型とし、Ｓ１ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプラ
イマーとしてＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１分、
５４℃で２分、７２℃で４分；２０サイクル）を実施す
ることにより鋳型どうしを接続した後、クローニングキ
ット（ｐＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）クローニング
キット；ストラタジーン社製）を添付された説明書に記
載の方法で使用することによりプラスミドベクター ｐ
ＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）に導入した。上記１）
で得られたｈＩＦＮτをコードするＤＮＡのヌクレオチ
ド配列はジデオキシ法［Sanger, F. (1981) Science 21
4, 1205 参照］によるＤＮＡシークエンシングにより確
認した。
g, A. H., et al. (1987) Gene 56, 125-135参照］を鋳
型とし、上記Ｓ１ＰｒおよびＳ２Ｐｒをプライマーとし
てＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１分、５４℃で２
分、７２℃で４分；２０サイクル）を実施して、該ベク
ター中に存在するＴ７プロモーターを含む領域（Ｓａｌ
Ｉ切断部位〜ＮｄｅＩ切断部位）と上記１）で得られた
ｈＩＦＮτをコードするＤＮＡの５’末端の１８ヌクレ
オチドが連結したＤＮＡ（配列表の配列番号２７：以下
「Ｔ７プロモーター含有断片」という）を増幅した。次
いで、上記１）で得られたｈＩＦＮτをコードするＤＮ
Ａを制限酵素ＮｄｅＩおよびＢａｍＨＩで消化してか
ら、０．１乃至０．３ｐｍｏｌ となるように１ｍＭエ
チレンジアミン四酢酸（以下「ＥＤＴＡ」という」）を
含む１０ｍＭ トリス−塩酸緩衝液（ｐＨ８：以下「Ｔ
Ｅ」という）に溶解した。このものとＴ７プロモーター
含有断片とを鋳型とし、Ｓ１ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプラ
イマーとしてＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１分、
５４℃で２分、７２℃で４分；２０サイクル）を実施す
ることにより鋳型どうしを接続した後、クローニングキ
ット（ｐＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）クローニング
キット；ストラタジーン社製）を添付された説明書に記
載の方法で使用することによりプラスミドベクター ｐ
ＣＲ−Ｓｃｒｉｐｔ ＳＫ（＋）に導入した。上記１）
で得られたｈＩＦＮτをコードするＤＮＡのヌクレオチ
ド配列はジデオキシ法［Sanger, F. (1981) Science 21
4, 1205 参照］によるＤＮＡシークエンシングにより確
認した。
【００５１】参考例２． ｈＩＦＮτ１をコードするＤ
ＮＡの調製および発現 １）ＤＮＡの調製 まず以下に記載するオリゴヌクレオチド： 5'- CGGAGACAGA CGACGCATTT CGTC -3' （τ１−１Ｐｒ：配列表の配列番号２８）； 5' GACGAAATGC GTCGTCTGTC TCCGCGTTTC TGCCTGCAGG ACC
GTAAGGA C -3' （τ１−２Ｐｒ：配列表の配列番号２９）； 5'- TTCCAGCAGA GTAGTGTCCC AAGC -3' （τ１−３Ｐｒ：配列表の配列番号３０）； 5'- GCTTGGGACA CTACTCTGCT GGAACAGCTG CGTACTGGTC TG
CACCAGCA GCTG -3' （τ１−４Ｐｒ：配列表の配列番号３１） を合成した。
ＮＡの調製および発現 １）ＤＮＡの調製 まず以下に記載するオリゴヌクレオチド： 5'- CGGAGACAGA CGACGCATTT CGTC -3' （τ１−１Ｐｒ：配列表の配列番号２８）； 5' GACGAAATGC GTCGTCTGTC TCCGCGTTTC TGCCTGCAGG ACC
GTAAGGA C -3' （τ１−２Ｐｒ：配列表の配列番号２９）； 5'- TTCCAGCAGA GTAGTGTCCC AAGC -3' （τ１−３Ｐｒ：配列表の配列番号３０）； 5'- GCTTGGGACA CTACTCTGCT GGAACAGCTG CGTACTGGTC TG
CACCAGCA GCTG -3' （τ１−４Ｐｒ：配列表の配列番号３１） を合成した。
【００５２】次に参考例１で作製されたｈＩＦＮτ組換
えベクターＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで
消化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当
するＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、Ａ−１Ｐｒとτ１−１Ｐｒ、τ１−２Ｐｒとτ１−
３Ｐｒ、およびτ１−４ＰｒとＡ−１２Ｐｒを各々プラ
イマーとして、２０サイクルのＰＣＲを実施し（１サイ
クルにつき９６℃で１分、３７℃で１分、７２℃で３
分）、それぞれ増幅されたＤＮＡ断片を回収した。得ら
れた三つのＤＮＡ断片を混合して鋳型とし、プライマー
なしの条件でＰＣＲを２サイクル（１サイクルにつき９
６℃で１分、３７℃で１分、７２℃で３分）実施した
後、プライマー Ａ−１ＰｒとＡ−１２Ｐｒを添加し、
さらに２０サイクル（１サイクルにつき９６℃で１分、
３７℃で１分、７２℃で３分）のＰＣＲを実施すること
により、ｈＩＦＮτ１（配列表の配列番号３３）をコー
ドするヌクレオチド配列（配列表の配列番号３２）を含
むＤＮＡを得た。
えベクターＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで
消化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当
するＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、Ａ−１Ｐｒとτ１−１Ｐｒ、τ１−２Ｐｒとτ１−
３Ｐｒ、およびτ１−４ＰｒとＡ−１２Ｐｒを各々プラ
イマーとして、２０サイクルのＰＣＲを実施し（１サイ
クルにつき９６℃で１分、３７℃で１分、７２℃で３
分）、それぞれ増幅されたＤＮＡ断片を回収した。得ら
れた三つのＤＮＡ断片を混合して鋳型とし、プライマー
なしの条件でＰＣＲを２サイクル（１サイクルにつき９
６℃で１分、３７℃で１分、７２℃で３分）実施した
後、プライマー Ａ−１ＰｒとＡ−１２Ｐｒを添加し、
さらに２０サイクル（１サイクルにつき９６℃で１分、
３７℃で１分、７２℃で３分）のＰＣＲを実施すること
により、ｈＩＦＮτ１（配列表の配列番号３３）をコー
ドするヌクレオチド配列（配列表の配列番号３２）を含
むＤＮＡを得た。
【００５３】２）発現ベクターの構築 上記１）で得られたＤＮＡを、制限酵素ＢａｍＨＩおよ
びＮｄｅＩで消化し、ＴＥに溶解した。一方、プラスミ
ドｐＡＲ３０４０も同様にＢａｍＨＩおよびＮｄｅＩで
消化し、ＴＥに溶解した。これらのＢａｍＨＩ−Ｎｄｅ
Ｉ消化されたＤＮＡを０．１ないし０．３ｐｍｏｌ相当
分ずつ混合し、ＤＮＡライゲーションキット・バージョ
ン１（宝酒造（株）社製）を使用して連結することによ
り、ｐＡＲ３０４０のＴ７プロモーターの直後にｈＩＦ
Ｎτ１（配列表の配列番号３３）をコードするＤＮＡが
挿入された組換えベクターを構築した。
びＮｄｅＩで消化し、ＴＥに溶解した。一方、プラスミ
ドｐＡＲ３０４０も同様にＢａｍＨＩおよびＮｄｅＩで
消化し、ＴＥに溶解した。これらのＢａｍＨＩ−Ｎｄｅ
Ｉ消化されたＤＮＡを０．１ないし０．３ｐｍｏｌ相当
分ずつ混合し、ＤＮＡライゲーションキット・バージョ
ン１（宝酒造（株）社製）を使用して連結することによ
り、ｐＡＲ３０４０のＴ７プロモーターの直後にｈＩＦ
Ｎτ１（配列表の配列番号３３）をコードするＤＮＡが
挿入された組換えベクターを構築した。
【００５４】３）大腸菌における発現 上記２）で構築したｈＩＦＮτ１発現ベクターＤＮＡを
アルカリ法［Birnboim, H. C. and Doly, J. (1979) Nu
c. Acids Res. 7, 1518 参照］により大量調製した。１
乃至１０ｎｇ相当のｈＩＦＮτ１発現ベクターＤＮＡ
を、ハナハン法［Hanahan, D. (1983) J. Mol. Biol. 1
66, 557-580 参照］により調製された大腸菌ＢＬ−２１
（ＤＥ３）株（ストラタジーン社製）のコンピテント細
胞 ５０μｌに加え、２０分間氷冷した後、３７℃で２
分間保温してから直ちに氷冷した。このものに５００μ
ｌのＳＯＣ培地（ギブコ・ビーアールエル社製) を加
え、３７℃で４０分間振盪培養した。この培養液を１０
０μｇ／ｍｌ アンピシリンを含むＬ−ブロス寒天培地
プレート上に塗り広げ、３７℃で一晩培養した。出現し
たアンピシリン耐性コロニーを単離してＭ９ＣＡ培地に
接種し、培養液の６００ｎｍにおける吸光度（ＯＤ６０
０ｎｍ）が０．４から０．８に達するまで２４〜２６℃
で振盪培養した後、等量のＬ培地およびイソプロピルβ
−Ｄ−チオガラクトピラノシド（最終濃度１ｍＭ）を加
え、３７℃にてさらに４時間振盪培養した。ここで使用
された培地の組成は以下に記載する通りであった： Ｍ９ＣＡ培地： リン酸二ナトリウム１２水和物 １５ｇ リン酸一カリウム ３ｇ 塩化ナトリウム ０．５ｇ 塩化アンモニウム １ｇ カザミノ酸 ２ｇ １Ｍ 硫酸マグネシウム ２００μｌ ２０％ グルコース １ｍｌ １Ｍ 塩化カルシウム １０μｌ 水 １リットル Ｌ培地： バクト・トリプトン（ディフコ社製） １０ｇ バクト・イーストエキストラクト（ディフコ社製） ５ｇ 塩化ナトリウム ５ｇ 水 １リットル Ｌ−ブロス寒天培地： バクト・トリプトン １２．５ｇ バクト・イーストエキストラクト ３．７５ｇ バクト・アガー（ディフコ社製） ７．５ｇ 水 ５００ｍｌ。
アルカリ法［Birnboim, H. C. and Doly, J. (1979) Nu
c. Acids Res. 7, 1518 参照］により大量調製した。１
乃至１０ｎｇ相当のｈＩＦＮτ１発現ベクターＤＮＡ
を、ハナハン法［Hanahan, D. (1983) J. Mol. Biol. 1
66, 557-580 参照］により調製された大腸菌ＢＬ−２１
（ＤＥ３）株（ストラタジーン社製）のコンピテント細
胞 ５０μｌに加え、２０分間氷冷した後、３７℃で２
分間保温してから直ちに氷冷した。このものに５００μ
ｌのＳＯＣ培地（ギブコ・ビーアールエル社製) を加
え、３７℃で４０分間振盪培養した。この培養液を１０
０μｇ／ｍｌ アンピシリンを含むＬ−ブロス寒天培地
プレート上に塗り広げ、３７℃で一晩培養した。出現し
たアンピシリン耐性コロニーを単離してＭ９ＣＡ培地に
接種し、培養液の６００ｎｍにおける吸光度（ＯＤ６０
０ｎｍ）が０．４から０．８に達するまで２４〜２６℃
で振盪培養した後、等量のＬ培地およびイソプロピルβ
−Ｄ−チオガラクトピラノシド（最終濃度１ｍＭ）を加
え、３７℃にてさらに４時間振盪培養した。ここで使用
された培地の組成は以下に記載する通りであった： Ｍ９ＣＡ培地： リン酸二ナトリウム１２水和物 １５ｇ リン酸一カリウム ３ｇ 塩化ナトリウム ０．５ｇ 塩化アンモニウム １ｇ カザミノ酸 ２ｇ １Ｍ 硫酸マグネシウム ２００μｌ ２０％ グルコース １ｍｌ １Ｍ 塩化カルシウム １０μｌ 水 １リットル Ｌ培地： バクト・トリプトン（ディフコ社製） １０ｇ バクト・イーストエキストラクト（ディフコ社製） ５ｇ 塩化ナトリウム ５ｇ 水 １リットル Ｌ−ブロス寒天培地： バクト・トリプトン １２．５ｇ バクト・イーストエキストラクト ３．７５ｇ バクト・アガー（ディフコ社製） ７．５ｇ 水 ５００ｍｌ。
【００５５】４）粗精製 上記３）の培養後の培養液を遠心分離して上清を除いた
後、沈澱した大腸菌体をフレンチプレスにて破砕した。
このものを２５００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、未破
砕細胞および細胞破片を沈澱させてから、上清を１２０
００ｒｐｍで２５分間遠心分離し、沈澱を回収した。こ
の沈澱を１％ トリトンＸ−１００を含む緩衝液（１０
０ｍＭ 塩化ナトリウム、５０ｍＭ トリス−塩酸（ｐ
Ｈ７．５））にて２回洗浄し、１ｍＭ フッ化フェニル
メチルスルホニル（ＰＭＳＦ）を含むＴＥで１回洗浄
後、６Ｍ グアニジンイソチオシアネートおよび０．２
５％２−メルカプトエタノールを含む０．０１ｍＭ ト
リス−塩酸（ｐＨ８）溶液に蛋白質濃度が１ｍｇ／ｍｌ
となるよう溶解し、その後０．２５％ ２−メルカプト
エタノールを含む０．０１ｍＭ トリス−塩酸（ｐＨ
８）溶液を徐々に滴下して１０倍に希釈した。希釈後の
溶液を０．０２ｍＭ トリス−塩酸緩衝液（ｐＨ８）に
対して４℃で透析した（透析チューブの分画分子量１０
００；３時間毎に膜外液を交換し、計１２時間実施し
た）後、透析チューブ内液を遠心分離（４６５０×ｇ、
１５分）することにより析出物を沈澱させた。得られた
上清を、限外濾過膜（ビバポア、排出限界分子量７５０
０；ビバサイエンス社製）を用いて１０倍濃縮したもの
を、粗精製ＩＦＮτ１試料とした。
後、沈澱した大腸菌体をフレンチプレスにて破砕した。
このものを２５００ｒｐｍで１０分間遠心分離し、未破
砕細胞および細胞破片を沈澱させてから、上清を１２０
００ｒｐｍで２５分間遠心分離し、沈澱を回収した。こ
の沈澱を１％ トリトンＸ−１００を含む緩衝液（１０
０ｍＭ 塩化ナトリウム、５０ｍＭ トリス−塩酸（ｐ
Ｈ７．５））にて２回洗浄し、１ｍＭ フッ化フェニル
メチルスルホニル（ＰＭＳＦ）を含むＴＥで１回洗浄
後、６Ｍ グアニジンイソチオシアネートおよび０．２
５％２−メルカプトエタノールを含む０．０１ｍＭ ト
リス−塩酸（ｐＨ８）溶液に蛋白質濃度が１ｍｇ／ｍｌ
となるよう溶解し、その後０．２５％ ２−メルカプト
エタノールを含む０．０１ｍＭ トリス−塩酸（ｐＨ
８）溶液を徐々に滴下して１０倍に希釈した。希釈後の
溶液を０．０２ｍＭ トリス−塩酸緩衝液（ｐＨ８）に
対して４℃で透析した（透析チューブの分画分子量１０
００；３時間毎に膜外液を交換し、計１２時間実施し
た）後、透析チューブ内液を遠心分離（４６５０×ｇ、
１５分）することにより析出物を沈澱させた。得られた
上清を、限外濾過膜（ビバポア、排出限界分子量７５０
０；ビバサイエンス社製）を用いて１０倍濃縮したもの
を、粗精製ＩＦＮτ１試料とした。
【００５６】参考例３． 改変体（ｈＩＦＮτｄ１） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- TCCAGCAGAG TAGTGTCCCA AGCAGC -3' （τｄ１−１Ｐｒ：配列表の配列番号３４）； 5'- GCTGCTTGGG ACACTACTCT GCTGGACCAG CTGTGCACTG GT
CTGCAC -3' （τｄ１−２Ｐｒ：配列表の配列番号３５）； を合成した。次に参考例１で作製されたｈＩＦＮτ発現
ベクターＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消
化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当す
るＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、Ａ−１Ｐｒとτｄ１−１Ｐｒ、またτｄ１−２Ｐｒ
とＡ−１２Ｐｒを各々プライマーとして、ＰＣＲ（１サ
イクルにつき９４℃で１分、３７℃で１分、７２℃で３
分；２５サイクル）を実施し、それぞれ増幅されたＤＮ
Ａ断片を回収した。得られた二つのＤＮＡ断片を混合し
て鋳型とし、Ａ−１ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーと
して再度ＰＣＲ（１サイクルにつき９４℃で１分、３７
℃で１分、７２℃で３分；２５サイクル）を実施し、参
考例１の２）に記載した方法により改変体ｈＩＦＮτｄ
１（配列表の配列番号３７）をコードするヌクレオチド
配列（配列表の配列番号３６）を含むＤＮＡを大腸菌で
発現させるプラスミドｐＴ７ＩＦＮτｄ１を調製した。
なお、ｐＴ７ＩＦＮτｄ１で形質転換された大腸菌Ｅ．
ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ１は、平成８年７月２３日
付で工業技術院生命工学工業技術研究所に国際寄託さ
れ、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０２が付された。
CTGCAC -3' （τｄ１−２Ｐｒ：配列表の配列番号３５）； を合成した。次に参考例１で作製されたｈＩＦＮτ発現
ベクターＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消
化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当す
るＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、Ａ−１Ｐｒとτｄ１−１Ｐｒ、またτｄ１−２Ｐｒ
とＡ−１２Ｐｒを各々プライマーとして、ＰＣＲ（１サ
イクルにつき９４℃で１分、３７℃で１分、７２℃で３
分；２５サイクル）を実施し、それぞれ増幅されたＤＮ
Ａ断片を回収した。得られた二つのＤＮＡ断片を混合し
て鋳型とし、Ａ−１ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーと
して再度ＰＣＲ（１サイクルにつき９４℃で１分、３７
℃で１分、７２℃で３分；２５サイクル）を実施し、参
考例１の２）に記載した方法により改変体ｈＩＦＮτｄ
１（配列表の配列番号３７）をコードするヌクレオチド
配列（配列表の配列番号３６）を含むＤＮＡを大腸菌で
発現させるプラスミドｐＴ７ＩＦＮτｄ１を調製した。
なお、ｐＴ７ＩＦＮτｄ１で形質転換された大腸菌Ｅ．
ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ１は、平成８年７月２３日
付で工業技術院生命工学工業技術研究所に国際寄託さ
れ、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０２が付された。
【００５７】参考例４． 改変体（ｈＩＦＮτｄ２） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- ATACGGATCC CATATGTGCG ACCTGTCTCA GTACCACGTT CT
G -3' （τｄ２−１Ｐｒ：配列表の配列番号３８） を合成した。次に参考例１で作製されたｈＩＦＮτ発現
ベクターＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消
化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当す
るＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、τｄ２−１Ｐｒとτｄ１−１Ｐｒ、またはτｄ１−
２ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーとして、ＰＣＲ（１
サイクルにつき９８℃で１分、５４℃で２分、７２℃で
２分；２０サイクル）を実施した。さらにそれぞれの増
幅断片を混合したものを鋳型とし、τｄ２−１ＰｒとＡ
−１２ＰｒをプライマーとしてＰＣＲ（１サイクルにつ
き９８℃で１分、５４℃で２分、７２℃で２分；２０サ
イクル）を実施することにより、改変体ｈＩＦＮτｄ２
（配列表の配列番号４０）をコードするヌクレオチド配
列（配列表の配列番号３９）を含むＤＮＡを得た。以
下、参考例１の２）に記載した方法でｈＩＦＮτｄ２を
コードするＤＮＡを大腸菌で発現させるプラスミドｐＴ
７ＩＦＮτｄ２を調製した。ただし、参考例１の２）に
相当する工程において、以下に記載する合成ヌクレオチ
ド： 5'- ACTGAGACAG GTCGCACATA TGTATATCTC CTTC -3' （Ｓ３Ｐｒ；配列表の配列番号４１） をＳ２Ｐｒの代わりにプライマーとして使用した。な
お、ｐＴ７ＩＦＮτｄ２で形質転換された大腸菌Ｅ．ｃ
ｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ２は、平成８年７月２３日付
で工業技術院生命工学工業技術研究所に国際寄託され、
受託番号ＦＥＲＭＢＰ−５６０３が付された。
G -3' （τｄ２−１Ｐｒ：配列表の配列番号３８） を合成した。次に参考例１で作製されたｈＩＦＮτ発現
ベクターＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消
化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当す
るＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、τｄ２−１Ｐｒとτｄ１−１Ｐｒ、またはτｄ１−
２ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーとして、ＰＣＲ（１
サイクルにつき９８℃で１分、５４℃で２分、７２℃で
２分；２０サイクル）を実施した。さらにそれぞれの増
幅断片を混合したものを鋳型とし、τｄ２−１ＰｒとＡ
−１２ＰｒをプライマーとしてＰＣＲ（１サイクルにつ
き９８℃で１分、５４℃で２分、７２℃で２分；２０サ
イクル）を実施することにより、改変体ｈＩＦＮτｄ２
（配列表の配列番号４０）をコードするヌクレオチド配
列（配列表の配列番号３９）を含むＤＮＡを得た。以
下、参考例１の２）に記載した方法でｈＩＦＮτｄ２を
コードするＤＮＡを大腸菌で発現させるプラスミドｐＴ
７ＩＦＮτｄ２を調製した。ただし、参考例１の２）に
相当する工程において、以下に記載する合成ヌクレオチ
ド： 5'- ACTGAGACAG GTCGCACATA TGTATATCTC CTTC -3' （Ｓ３Ｐｒ；配列表の配列番号４１） をＳ２Ｐｒの代わりにプライマーとして使用した。な
お、ｐＴ７ＩＦＮτｄ２で形質転換された大腸菌Ｅ．ｃ
ｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ２は、平成８年７月２３日付
で工業技術院生命工学工業技術研究所に国際寄託され、
受託番号ＦＥＲＭＢＰ−５６０３が付された。
【００５８】参考例５． 改変体（ｈＩＦＮτｄ３） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- GCTGCTTGGG ACACTACTCT GCTGGAACAG CTGTGCACTG GT
CTGCAC -3' （τｄ３−１Ｐｒ；配列表の配列番号４２） を合成した。さらに、参考例３で作製されたｈＩＦＮτ
ｄ１をコードするＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａ
ｃＩで消化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐ
に相当するＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を
鋳型とし、Ａ−１Ｐｒとτｄ１−１Ｐｒ、そしてτｄ３
−１ＰｒとＡ−１２Ｐｒをそれぞれプライマーとして、
２０サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１
分、５４℃で２分、７２℃で２分）を実施して、それぞ
れ増幅された２つのＤＮＡ断片を回収した。これらのＤ
ＮＡ断片を混合して鋳型とし、Ａ−１ＰｒとＡ−１２Ｐ
ｒをプライマーとして２０サイクルのＰＣＲ（１サイク
ルにつき９８℃で１分、５４℃で２分、７２℃で２分）
を実施することにより、改変体ｈＩＦＮτｄ３（配列表
の配列番号４４）をコードするヌクレオチド配列（配列
表の配列番号４３）を含むＤＮＡを得た。以下、参考例
１の２）に記載した方法でｈＩＦＮτｄ３をコードする
ＤＮＡを大腸菌で発現させるプラスミドｐＴ７ＩＦＮτ
ｄ３を調製した。なお、ｐＴ７ＩＦＮτｄ３で形質転換
された大腸菌Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ３は、平
成８年７月２３日付で工業技術院生命工学工業技術研究
所に国際寄託され、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０４
が付された。
CTGCAC -3' （τｄ３−１Ｐｒ；配列表の配列番号４２） を合成した。さらに、参考例３で作製されたｈＩＦＮτ
ｄ１をコードするＤＮＡを制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａ
ｃＩで消化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐ
に相当するＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を
鋳型とし、Ａ−１Ｐｒとτｄ１−１Ｐｒ、そしてτｄ３
−１ＰｒとＡ−１２Ｐｒをそれぞれプライマーとして、
２０サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９８℃で１
分、５４℃で２分、７２℃で２分）を実施して、それぞ
れ増幅された２つのＤＮＡ断片を回収した。これらのＤ
ＮＡ断片を混合して鋳型とし、Ａ−１ＰｒとＡ−１２Ｐ
ｒをプライマーとして２０サイクルのＰＣＲ（１サイク
ルにつき９８℃で１分、５４℃で２分、７２℃で２分）
を実施することにより、改変体ｈＩＦＮτｄ３（配列表
の配列番号４４）をコードするヌクレオチド配列（配列
表の配列番号４３）を含むＤＮＡを得た。以下、参考例
１の２）に記載した方法でｈＩＦＮτｄ３をコードする
ＤＮＡを大腸菌で発現させるプラスミドｐＴ７ＩＦＮτ
ｄ３を調製した。なお、ｐＴ７ＩＦＮτｄ３で形質転換
された大腸菌Ｅ．ｃｏｌｉ ｐＴ７ＩＦＮτｄ３は、平
成８年７月２３日付で工業技術院生命工学工業技術研究
所に国際寄託され、受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−５６０４
が付された。
【００５９】実施例１． 改変体（ｏｈ−ＩＦＮτｄ
２） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- GGCCCGGGAT CCCATATGTG CGACCTGTCT CAGAACCTGG TT
CTG -3' （ＯＨ２−１Ｐｒ：配列表の配列番号４５）； 5'- ACGGTTCATA CGGTCCAGCA GACG -3' （ＯＨ２−２Ｐｒ：配列表の配列番号４６）； 5'- CGTCTGCTGG ACCGTATGAA CCGTCTGTCT CCG -3' （ＯＨ２−３Ｐｒ：配列表の配列番号４７） を合成した。
２） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- GGCCCGGGAT CCCATATGTG CGACCTGTCT CAGAACCTGG TT
CTG -3' （ＯＨ２−１Ｐｒ：配列表の配列番号４５）； 5'- ACGGTTCATA CGGTCCAGCA GACG -3' （ＯＨ２−２Ｐｒ：配列表の配列番号４６）； 5'- CGTCTGCTGG ACCGTATGAA CCGTCTGTCT CCG -3' （ＯＨ２−３Ｐｒ：配列表の配列番号４７） を合成した。
【００６０】参考例４で得られたプラスミドｐＴ７ＩＦ
Ｎτｄ２を制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消化し、
アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当するＤＮ
Ａ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型とし、ＯＨ
２−１ＰｒとＯＨ２−２Ｐｒ、ならびにＯＨ２−３Ｐｒ
とＡ−１２Ｐｒをプライマーとして、１サイクルあたり
９６℃で１分、５４℃で１分、７２℃で３分の条件にて
ＰＣＲを２０サイクル実施した。それぞれのＰＣＲで増
幅されたＤＮＡ断片（配列表の配列番号４８および配列
表の配列番号４９）を混合して鋳型とし、ＯＨ２−１Ｐ
ｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーとして再度２０サイクル
のＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１分、５４℃で１
分、７２℃で３分）を実施した。増幅されたＤＮＡ断片
を参考例２の２）に記載した方法でｐＡＲ３０４０に組
込むことにより、改変体ｏｈ−ＩＦＮτｄ２（配列表の
配列番号２）をコードするヌクレオチド配列（配列表の
配列番号１）を含むＤＮＡを大腸菌で発現させるプラス
ミドｐＴ７ｏｈＩＦＮτｄ２（図１）を調製した。以
下、参考例２の３）〜４）に記載した方法で該プラスミ
ドで形質転換された大腸菌を培養することにより、ｏｈ
−ＩＦＮτｄ２ポリペプチド粗精製試料を調製した。た
だし、６Ｍ グアニジンイソチオシアネートおよび０．
２５％ ２−メルカプトエタノールを含む０．０１ｍＭ
トリス−塩酸（ｐＨ８）溶液に沈澱を溶解する工程に
おける蛋白質濃度を０．５ｍｇ／ｍｌとなるようにし
た。
Ｎτｄ２を制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消化し、
アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当するＤＮ
Ａ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型とし、ＯＨ
２−１ＰｒとＯＨ２−２Ｐｒ、ならびにＯＨ２−３Ｐｒ
とＡ−１２Ｐｒをプライマーとして、１サイクルあたり
９６℃で１分、５４℃で１分、７２℃で３分の条件にて
ＰＣＲを２０サイクル実施した。それぞれのＰＣＲで増
幅されたＤＮＡ断片（配列表の配列番号４８および配列
表の配列番号４９）を混合して鋳型とし、ＯＨ２−１Ｐ
ｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーとして再度２０サイクル
のＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１分、５４℃で１
分、７２℃で３分）を実施した。増幅されたＤＮＡ断片
を参考例２の２）に記載した方法でｐＡＲ３０４０に組
込むことにより、改変体ｏｈ−ＩＦＮτｄ２（配列表の
配列番号２）をコードするヌクレオチド配列（配列表の
配列番号１）を含むＤＮＡを大腸菌で発現させるプラス
ミドｐＴ７ｏｈＩＦＮτｄ２（図１）を調製した。以
下、参考例２の３）〜４）に記載した方法で該プラスミ
ドで形質転換された大腸菌を培養することにより、ｏｈ
−ＩＦＮτｄ２ポリペプチド粗精製試料を調製した。た
だし、６Ｍ グアニジンイソチオシアネートおよび０．
２５％ ２−メルカプトエタノールを含む０．０１ｍＭ
トリス−塩酸（ｐＨ８）溶液に沈澱を溶解する工程に
おける蛋白質濃度を０．５ｍｇ／ｍｌとなるようにし
た。
【００６１】実施例２． 改変体（ｏｈ−ＩＦＮτｄ
３） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- ATGTGCTACC TGTCTGAACG TCTGATGCTG GACGCTCGTG AA
AACCTGAA ACTG -3' （ＦＯＨ３−１：配列表の配列番号５０）； 5'- AGAGTGCGGA GACAGACGGT TCATACGGTC CAGCAGTTTC AG
GTTTTCAC GAGCGTC -3' （ＦＯＨ３−２：配列表の配列番号５１）； 5'- GGCCCGGGAT CCCATATGTG CTACCTGTCT GAACGTCTGA TG
C -3' （ＯＨ３−１Ｐｒ：配列表の配列番号５２）； 5'- GTCCTTACGG TCCTGCAGGC AAGAGTGCGG AGACAGACGG TT
C -3' （ＯＨ３−２Ｐｒ：配列表の配列番号５３）； 5'- TGCCTGCAGG ACCGTAAGGA CTTCGCTCTG CCGCAGGAAA TG
G -3' （ＯＨ３−３Ｐｒ：配列表の配列番号５４） を合成した。
３） 以下に記載するヌクレオチド： 5'- ATGTGCTACC TGTCTGAACG TCTGATGCTG GACGCTCGTG AA
AACCTGAA ACTG -3' （ＦＯＨ３−１：配列表の配列番号５０）； 5'- AGAGTGCGGA GACAGACGGT TCATACGGTC CAGCAGTTTC AG
GTTTTCAC GAGCGTC -3' （ＦＯＨ３−２：配列表の配列番号５１）； 5'- GGCCCGGGAT CCCATATGTG CTACCTGTCT GAACGTCTGA TG
C -3' （ＯＨ３−１Ｐｒ：配列表の配列番号５２）； 5'- GTCCTTACGG TCCTGCAGGC AAGAGTGCGG AGACAGACGG TT
C -3' （ＯＨ３−２Ｐｒ：配列表の配列番号５３）； 5'- TGCCTGCAGG ACCGTAAGGA CTTCGCTCTG CCGCAGGAAA TG
G -3' （ＯＨ３−３Ｐｒ：配列表の配列番号５４） を合成した。
【００６２】ＦＯＨ３−１とＦＯＨ３−２を０．１ｎｍ
ｏｌづつ混合して鋳型とし、プライマーなしの条件で２
サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１分、３
７℃で１分、７２℃で３分）を行い、次いでＯＨ３−１
ＰｒとＯＨ３−２Ｐｒをプライマーとして添加してさら
に２０サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１
分、３７℃で１分、７２℃で３分）を実施した。上記の
２つの鋳型は、３’末端側に互いに相補的な配列を有す
るので、ＰＣＲによりこれらの相補鎖で連結したＤＮＡ
が生成される。反応生成物をポリアクリルアミドゲル電
気泳動し、増幅されたＤＮＡ断片（配列表の配列番号５
５）を回収した。
ｏｌづつ混合して鋳型とし、プライマーなしの条件で２
サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１分、３
７℃で１分、７２℃で３分）を行い、次いでＯＨ３−１
ＰｒとＯＨ３−２Ｐｒをプライマーとして添加してさら
に２０サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１
分、３７℃で１分、７２℃で３分）を実施した。上記の
２つの鋳型は、３’末端側に互いに相補的な配列を有す
るので、ＰＣＲによりこれらの相補鎖で連結したＤＮＡ
が生成される。反応生成物をポリアクリルアミドゲル電
気泳動し、増幅されたＤＮＡ断片（配列表の配列番号５
５）を回収した。
【００６３】一方、参考例５で得られたプラスミドｐＴ
７ＩＦＮτｄ３を制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消
化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当す
るＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、ＯＨ３−３ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーとする
２０サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１
分、３７℃で１分、７２℃で３分）を実施して、増幅さ
れたＤＮＡ断片を回収した。
７ＩＦＮτｄ３を制限酵素ＫｐｎＩおよびＳａｃＩで消
化し、アガロースゲル電気泳動後、約１ｋｂｐに相当す
るＤＮＡ断片を切り出した。このＤＮＡ断片を鋳型と
し、ＯＨ３−３ＰｒとＡ−１２Ｐｒをプライマーとする
２０サイクルのＰＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１
分、３７℃で１分、７２℃で３分）を実施して、増幅さ
れたＤＮＡ断片を回収した。
【００６４】上記の２つの増幅ＤＮＡ断片を混合して鋳
型とし、プライマーなしの条件で２サイクルのＰＣＲ
（１サイクルにつき９６℃で１分、３７℃で１分、７２
℃で３分）を行い、次いでＯＨ３−１ＰｒとＡ−１２Ｐ
ｒをプライマーとして添加してさらに２０サイクルのＰ
ＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１分、３７℃で１分、
７２℃で３分）を実施した。増幅されたＤＮＡ断片を参
考例２の２）に記載した方法でｐＡＲ３０４０に組込む
ことによりｏｈ−ＩＦＮτｄ３（配列表の配列番号４）
をコードするヌクレオチド配列（配列表の配列番号３）
を含むＤＮＡを大腸菌で発現させるプラスミドｐＴ７ｏ
ｈＩＦＮτｄ３（図２）を調製した。以下、参考例２の
３）〜４）に記載した方法で該ＤＮＡを大腸菌で発現さ
せることにより、ｏｈ−ＩＦＮτｄ３ポリペプチド粗精
製試料を調製した。
型とし、プライマーなしの条件で２サイクルのＰＣＲ
（１サイクルにつき９６℃で１分、３７℃で１分、７２
℃で３分）を行い、次いでＯＨ３−１ＰｒとＡ−１２Ｐ
ｒをプライマーとして添加してさらに２０サイクルのＰ
ＣＲ（１サイクルにつき９６℃で１分、３７℃で１分、
７２℃で３分）を実施した。増幅されたＤＮＡ断片を参
考例２の２）に記載した方法でｐＡＲ３０４０に組込む
ことによりｏｈ−ＩＦＮτｄ３（配列表の配列番号４）
をコードするヌクレオチド配列（配列表の配列番号３）
を含むＤＮＡを大腸菌で発現させるプラスミドｐＴ７ｏ
ｈＩＦＮτｄ３（図２）を調製した。以下、参考例２の
３）〜４）に記載した方法で該ＤＮＡを大腸菌で発現さ
せることにより、ｏｈ−ＩＦＮτｄ３ポリペプチド粗精
製試料を調製した。
【００６５】試験例．ＭＤＢＫ細胞（ATCC No. CCL22）
を用い、水疱性口内炎ウイルス（VesicularStomatitis
Virus）ニュージャージー（New Jersey）株（以下「Ｖ
ＳＶ」という）による細胞変性を抑制する活性として抗
ウイルス活性を測定する、インターフェロン力価測定の
常法［Pestka, S. (1981) Methods in Enzymology vol.
78, 386 参照］に従い、以下に記載する方法で抗ウイル
ス活性を測定した。
を用い、水疱性口内炎ウイルス（VesicularStomatitis
Virus）ニュージャージー（New Jersey）株（以下「Ｖ
ＳＶ」という）による細胞変性を抑制する活性として抗
ウイルス活性を測定する、インターフェロン力価測定の
常法［Pestka, S. (1981) Methods in Enzymology vol.
78, 386 参照］に従い、以下に記載する方法で抗ウイル
ス活性を測定した。
【００６６】まず、ＭＤＢＫ細胞を、１０％ウシ胎児血
清を含むダルベッコ変法イーグル培地（以下「ＤＭＥ
Ｍ」という）に３×１０5 細胞／ｍｌとなるように懸濁
してから、この細胞懸濁液を９６穴の細胞培養用プレー
トの各ウェルに１００μｌずつ分注し、３７℃、５％炭
酸ガス下で培養した。細胞がウェル底に付着した後に、
参考例２、実施例１または２で得られた試料をＤＭＥＭ
で段階希釈したものを１００μｌ／ウェル加え、３７
℃、５％炭酸ガス下で１時間静置培養した。次いで、
１．２５×１０5 プラーク形成単位（Plaque Forming U
nit ：ＰＦＵ）／ｍｌの感染価のＶＳＶを含むＤＭＥＭ
を５０μｌ／ウェル加え、３７℃、５％炭酸ガス下で２
０時間静置培養した。
清を含むダルベッコ変法イーグル培地（以下「ＤＭＥ
Ｍ」という）に３×１０5 細胞／ｍｌとなるように懸濁
してから、この細胞懸濁液を９６穴の細胞培養用プレー
トの各ウェルに１００μｌずつ分注し、３７℃、５％炭
酸ガス下で培養した。細胞がウェル底に付着した後に、
参考例２、実施例１または２で得られた試料をＤＭＥＭ
で段階希釈したものを１００μｌ／ウェル加え、３７
℃、５％炭酸ガス下で１時間静置培養した。次いで、
１．２５×１０5 プラーク形成単位（Plaque Forming U
nit ：ＰＦＵ）／ｍｌの感染価のＶＳＶを含むＤＭＥＭ
を５０μｌ／ウェル加え、３７℃、５％炭酸ガス下で２
０時間静置培養した。
【００６７】培養終了後、各ウェルの細胞をホルマリン
固定してから、０．１％のクリスタルバイオレット溶液
にて染色し、洗浄後、５０％エタノール（１００μｌ／
ウェル）を加えて細胞に残存した色素を溶解させた。こ
のプレートの各ウェルについて、５５０ｎｍの吸光度を
測定した。ＶＳＶを添加しなかったウェルの吸光度を１
００％、ＶＳＶを添加し試料を添加しなかったウェルの
吸光度を０％として、吸光度が５０％となるような試料
濃度をＩＣ50とした。また、力価定量のための対照とし
て、リコンビナントヒトインターフェロンα（３×１０
6 ＩＵ／ｍｌ：コラボレイティブ・バイオメディカル・
プロダクツ社製）を段階希釈したものについて上記と同
様に抗ウイルス活性を測定した。このインターフェロン
αのＩＣ50値を基準として、各試料の相対的な抗ウイル
ス活性を求めた。
固定してから、０．１％のクリスタルバイオレット溶液
にて染色し、洗浄後、５０％エタノール（１００μｌ／
ウェル）を加えて細胞に残存した色素を溶解させた。こ
のプレートの各ウェルについて、５５０ｎｍの吸光度を
測定した。ＶＳＶを添加しなかったウェルの吸光度を１
００％、ＶＳＶを添加し試料を添加しなかったウェルの
吸光度を０％として、吸光度が５０％となるような試料
濃度をＩＣ50とした。また、力価定量のための対照とし
て、リコンビナントヒトインターフェロンα（３×１０
6 ＩＵ／ｍｌ：コラボレイティブ・バイオメディカル・
プロダクツ社製）を段階希釈したものについて上記と同
様に抗ウイルス活性を測定した。このインターフェロン
αのＩＣ50値を基準として、各試料の相対的な抗ウイル
ス活性を求めた。
【００６８】参考例２、実施例１および２で調製された
各粗精製試料の抗ウイルス活性は表２に示す通りであっ
た。
各粗精製試料の抗ウイルス活性は表２に示す通りであっ
た。
【００６９】
【表２】 ────────────────────────── 試料 抗ウイルス活性（ＩＵ／ｍｇ） ────────────────────────── ｈＩＦＮτ１ ＜１×１０3 ｏｈ−ＩＦＮτｄ２ ＞４×１０6 ｏｈ−ＩＦＮτｄ３ ＞４×１０6 ────────────────────────── 製剤例 ．本発明のインターフェロンτ改変体は、水また
はそれ以外の薬理学的に許容し得る溶液に溶解した無菌
性溶液または懸濁液のアンプルとして使用に供される。
また、無菌粉末製剤（インターフェロンτ改変体を凍結
乾燥するのが好ましい）をアンプルに充填しておき、使
用時に薬理学的に許容し得る溶液で希釈してもよい。
はそれ以外の薬理学的に許容し得る溶液に溶解した無菌
性溶液または懸濁液のアンプルとして使用に供される。
また、無菌粉末製剤（インターフェロンτ改変体を凍結
乾燥するのが好ましい）をアンプルに充填しておき、使
用時に薬理学的に許容し得る溶液で希釈してもよい。
【００７０】
【発明の効果】以上のごとく、本発明のインターフェロ
ンτ改変体は、高い抗ウイルス活性を有し、また細胞毒
性が低いことから、優れた抗ウイルス剤、抗腫瘍剤また
は自己免疫疾患治療剤として使用できる。
ンτ改変体は、高い抗ウイルス活性を有し、また細胞毒
性が低いことから、優れた抗ウイルス剤、抗腫瘍剤また
は自己免疫疾患治療剤として使用できる。
【図１】 ｏｈ−ＩＦＮτｄ２をコードするＤＮＡを大
腸菌で発現させるためのプラスミドベクター ｐＴ７ｏ
ｈＩＦＮτｄ２。
腸菌で発現させるためのプラスミドベクター ｐＴ７ｏ
ｈＩＦＮτｄ２。
【図２】 ｏｈ−ＩＦＮτｄ３をコードするＤＮＡを大
腸菌で発現させるためのプラスミドベクター ｐＴ７ｏ
ｈＩＦＮτｄ３。
腸菌で発現させるためのプラスミドベクター ｐＴ７ｏ
ｈＩＦＮτｄ３。
配列番号：１ 配列の長さ：５１９ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：4..519 配列 ATG TGC GAC CTG TCT CAG AAC CTG GTT CTG GTT GGT CGT AAA AAC CTG 48 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn Leu Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 CGT CTG CTG GAC CGT ATG AAC CGT CTG TCT CCG CAC TTC TGC CTG CAG 96 Arg Leu Leu Asp Arg Met Asn Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT GAA GGC GGT CAG 144 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA ATG CTG CAG CAG 192 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT GCT TGG GAC ACT 240 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 ACT CTG CTG GAC CAG CTG TGC ACT GGT CTG CAC CAG CAG CTG GAC AAC 288 Thr Leu Leu Asp Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 CTG GAC GCT TGC CTG GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA GAC TCT GCT CTG 336 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC TTC CAA GGC ATC 384 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC GCT TGG GAA ACT 432 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG ATC AGC CTG CAG 480 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT CCG 519 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：２ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn Leu Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Arg Met Asn Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Asp Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：３ 配列の長さ：519 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：4..519 配列 ATG TGC TAC CTG TCT GAA CGT CTG ATG CTG GAC GCT CGT GAA AAC CTG 48 Met Cys Tyr Leu Ser Glu Arg Leu Met Leu Asp Ala Arg Glu Asn Leu -1 1 5 10 15 AAA CTG CTG GAC CGT ATG AAC CGT CTG TCT CCG CAC TCT TGC CTG CAG 96 Lys Leu Leu Asp Arg Met Asn Arg Leu Ser Pro His Ser Cys Leu Gln 20 25 30 GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT GAA GGC GGT CAG 144 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA ATG CTG CAG CAG 192 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT GCT TGG GAC ACT 240 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 ACT CTG CTG GAA CAG CTG TGC ACT GGT CTG CAC CAG CAG CTG GAC AAC 288 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 CTG GAC GCT TGC CTG GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA GAC TCT GCT CTG 336 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC TTC CAA GGC ATC 384 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC GCT TGG GAA ACT 432 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG ATC AGC CTG CAG 480 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT CCG TGA 522 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Tyr Leu Ser Glu Arg Leu Met Leu Asp Ala Arg Glu Asn Leu -1 1 5 10 15 Lys Leu Leu Asp Arg Met Asn Arg Leu Ser Pro His Ser Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：５ 配列の長さ：519 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：4..519 配列 ATG TGC GAC CTG TCT CAG AAC CAC GTT CTG GTT GGT CGT AAA AAC CTG 48 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 CGT CTG CTG GAC GAA ATG CGT CGT CTG TCT CCG CAC TTC TGC CTG CAG 96 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT GAA GGC GGT CAG 144 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA ATG CTG CAG CAG 192 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT GCT TGG GAC ACT 240 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 ACT CTG CTG GAA CCG TGC CGT ACT GGT CTG CAC CAG CAG CTG GAC AAC 288 Thr Leu Leu Glu Pro Cys Arg Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 CTG GAC GCT TGC CTA GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA GAC TCT GCT CTG 336 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC TTC CAA GGC ATC 384 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC GCT TGG GAA ACT 432 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG ATC AGC CTG CAG 480 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT CCG 519 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：６ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Glu Pro Cys Arg Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：７ 配列の長さ：６７ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 ATGTGCGACC TGTCTCAGAA CCACGTTCTG GTTGGTCGTA AAAACCTGCG TCTGCTGGAC 60 GAAATGC 67 配列番号：８ 配列の長さ：５５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 CGGTCCTGCA GGCAGAAGTG CGGAGACAGA CGACGCATTT CGTCCAGCAG ACGCA 55 配列番号：９ 配列の長さ：６５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 TCTGCCTGCA GGACCGTAAG GACTTCGCTC TGCCGCAGGA AATGGTTGAA GGCGGCCAGC 60 TGCAG 65 配列番号：１０ 配列の長さ：６９ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 GAAGGACTGC TGCAGCATTT CGTGCAGAAC GGAGATAGCC TGAGCTTCCT GCAGCTGGCC 60 GCCTTCAAC 69 配列番号：１１ 配列の長さ：６２ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTGTTCC ACACTGAACA CTCCTCTGCT GCTTGGGACA 60 CT 62 配列番号：１２ 配列の長さ：６３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：Ｎｏ アンチセンス：Yes 配列 CAGCTGCTGG TGCAGGCCAG TACGGCACGG TTCCAGCAGA GTAGTGTCCC AAGCAGCAGA 60 GGA 63 配列番号：１３ 配列の長さ：６６ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 ACTGGTCTGC ACCAGCAGCT GGACAACCTG GACGCTTGCC TAGGTCAGGT TATGGGCGAA 60 GAAGAC 66 配列番号：１４ 配列の長さ：５４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 CAGAGTCGGA CCAGTACGAC CCAGAGCAGA GTCTTCTTCG CCCATAACCT GACC 54 配列番号：１５ 配列の長さ：６３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 CGTACTGGTC CGACTCTGGC TCTGAAACGT TACTTCCAAG GCATCCACGT TTACCTGAAG 60 GAA 63 配列番号：１６ 配列の長さ：６３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 TTCCAGACGA ACAGTTTCCC AAGCGCAGTC GCTGTAGCCC TTTTCCTTCA GGTAAACGTG 60 GAT 63 配列番号：１７ 配列の長さ：５７ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 TGGGAAACTG TTCGTCTGGA AATCATGCGT TCCTTCTCCT CTCTGATCAG CCTGCAG 57 配列番号：１８ 配列の長さ：６２ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 TCACGGAGAA GACAGGTCAC CGTCCATCAT ACGCAGACGT TCCTGCAGGC TGATCAGAGA 60 GG 62 配列番号：１９ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 ATACGGATCC CATATGTGCG ACCTGTCTCA GAACCACGTT CTG 43 配列番号：２０ 配列の長さ：２５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 GAAGGACTGC TGCAGCATTT CCACC 25 配列番号：２１ 配列の長さ：２６ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTG 26 配列番号：２２ 配列の長さ：２４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 CAGAGTCGGA CCAGTACGAC CCAG 24 配列番号：２３ 配列の長さ：２４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 CGTACTGGTC CGACTCTGGC TCTG 24 配列番号：２４ 配列の長さ：３５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：Noアンチセンス :Yes 配列 TTAAGGATCC TCACGGAGAA GACAGGTCAC CGTCC 35 配列番号：２５ 配列の長さ：２５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 TCAAGGGCAT CGGTCGACGC TCTCC 25 配列番号：２６ 配列の長さ：３４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 CTGAGACAGG TCGCACATAT GTATATCTCC TTC 33 配列番号：２７ 配列の長さ：４１２ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：Genomic DNA ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 TCAAGGGCAT CGGTCGACGC TCTCCCTTAT GCGACTCCTG CATTAGGAAG CAGCCCAGTA 60 GTAGGTTGAG GCCGTTGAGC ACCGCCGCCG CAAGGAATGG TGCATGCAAG GAGATGGCGC 120 CCAACAGTCC CCCGGCCACG GGGCCTGCCA CCATACCCAC GCCGAAACAA GCGCTCATGA 180 GCCCGAAGTG GCGAGCCCGA TCTTCCCCAT CGGTGATGTC GGCGATATAG GCGCCAGCAA 240 CCGCACCTGT GGCGCCGGTG ATGCCGGCCA CGATGCGTCC GGCGTAGAGG ATCGAGATCT 300 CGATCCCGCG AAATTAATAC GACTCACTAT AGGGAGACCA CAACGGTTTC CCTCTAGAAA 360 TAATTTTGTT TAACTTTAAG AAGGAGATAT ACATATGTGC GACCTGTCTC AG 412 配列番号：２８ 配列の長さ：２４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 CGGAGACAGA CGACGCATTT CGTC 24 配列番号：２９ 配列の長さ：５１ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GACGAAATGC GTCGTCTGTC TCCGCGTTTC TGCCTGCAGG ACCGTAAGGA C 51 配列番号：３０ 配列の長さ：２４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 TTCCAGCAGA GTAGTGTCCC AAGC 24 配列番号：３１ 配列の長さ：５４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GCTTGGGACA CTACTCTGCT GGAACAGCTG CGTACTGGTC TGCACCAGCA GCTG 54 配列番号：３２ 配列の長さ：545 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：14..532 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：17..532 配列 ATACGGATCC CAT ATG TGC GAC CTG TCT CAG AAC CAC GTT CTG GTT GGT 49 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly -1 1 5 10 CGT AAA AAC CTG CGT CTG CTG GAC GAA ATG CGT CGT CTG TCT CCG CGT 97 Arg Lys Asn Leu Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro Arg 15 20 25 TTC TGC CTG CAG GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT 145 Phe Cys Leu Gln Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val 30 35 40 GAA GGC GGT CAG CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA 193 Glu Gly Gly Gln Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu 45 50 55 ATG CTG CAG CAG TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT 241 Met Leu Gln Gln Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala 60 65 70 75 GCT TGG GAC ACT ACT CTG CTG GAA CAG CTG CGT ACT GGT CTG CAC CAG 289 Ala Trp Asp Thr Thr Leu Leu Glu Gln Leu Arg Thr Gly Leu His Gln 80 85 90 CAG CTG GAC AAC CTG GAC GCT TGC CTG GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA 337 Gln Leu Asp Asn Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu 95 100 105 GAC TCT GCT CTG GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC 385 Asp Ser Ala Leu Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr 110 115 120 TTC CAA GGC ATC CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC 433 Phe Gln Gly Ile His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys 125 130 135 GCT TGG GAA ACT GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG 481 Ala Trp Glu Thr Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu 140 145 150 155 ATC AGC CTG CAG GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT 529 Ile Ser Leu Gln Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser 160 165 170 CCG TGAGGATCCT TAA 545 Pro 配列番号：３３ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro Arg Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Arg Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：３４ 配列の長さ：２６ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：Noアンチセンス :Yes 配列 TCCAGCAGAG TAGTGTCCCA AGCAGC 26 配列番号：３５ 配列の長さ：４８ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GCTGCTTGGG ACACTACTCT GCTGGACCAG CTGTGCACTG GTCTGCAC 48 配列番号：３６ 配列の長さ：519 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：4..519 配列 ATG TGC GAC CTG TCT CAG CAC CAC GTT CTG GTT GGT CGT AAA AAC CTG 48 Met Cys Asp Leu Ser Gln His His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 CGT CTG CTG GAC GAA ATG CGT CGT CTG TCT CCG CAC TTC TGC CTG CAG 96 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT GAA GGC GGT CAG 144 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA ATG CTG CAG CAG 192 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT GCT TGG GAC ACT 240 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 ACT CTG CTG GAC CAG CTG TGC ACT GGT CTG CAC CAG CAG CTG GAC AAC 288 Thr Leu Leu Asp Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 CTG GAC GCT TGC CTA GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA GAC TCT GCT CTG 336 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC TTC CAA GGC ATC 384 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC GCT TGG GAA ACT 432 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG ATC AGC CTG CAG 480 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT CCG 519 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：３７ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln His His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Asp Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：３８ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 ATACGGATCC CATATGTGCG ACCTGTCTCA GTACCACGTT CTG 43 配列番号：３９ 配列の長さ：519 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：４．．５１９ 配列 ＡＴＧ ＴＧＣ ＧＡＣ ＣＴＧ ＴＣＴ ＣＡＧ ＴＡＣ ＣＡＣ ＧＴＴ
ＣＴＧ ＧＴＴ ＧＧＴ ＣＧＴ ＡＡＡ ＡＡＣ ＣＴＧ ４８ Ｍｅｔ Ｃｙｓ Ａｓｐ Ｌｅｕ Ｓｅｒ Ｇｌｎ Ｔｙｒ Ｈｉｓ Ｖａｌ
Ｌｅｕ Ｖａｌ Ｇｌｙ Ａｒｇ Ｌｙｓ Ａｓｎ Ｌｅｕ −１ １ ５
１０ １５ ＣＧＴ ＣＴＧ ＣＴＧ ＧＡＣ ＧＡＡ ＡＴＧ ＣＧＴ ＣＧＴ ＣＴＧ
ＴＣＴ ＣＣＧ ＣＡＣ ＴＴＣ ＴＧＣ ＣＴＧ ＣＡＧ ９６ Ａｒｇ Ｌｅｕ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ｇｌｕ Ｍｅｔ Ａｒｇ Ａｒｇ Ｌｅｕ
Ｓｅｒ Ｐｒｏ Ｈｉｓ Ｐｈｅ Ｃｙｓ Ｌｅｕ Ｇｌｎ ２０
２５ ３０ ＧＡＣ ＣＧＴ ＡＡＧ ＧＡＣ ＴＴＣ ＧＣＴ ＣＴＧ ＣＣＧ ＣＡＧ
ＧＡＡ ＡＴＧ ＧＴＴ ＧＡＡ ＧＧＣ ＧＧＴ ＣＡＧ １４４ Ａｓｐ Ａｒｇ Ｌｙｓ Ａｓｐ Ｐｈｅ Ａｌａ Ｌｅｕ Ｐｒｏ Ｇｌｎ
Ｇｌｕ Ｍｅｔ Ｖａｌ Ｇｌｕ Ｇｌｙ Ｇｌｙ Ｇｌｎ ３５ ４０
４５ ＣＴＧ ＣＡＧ ＧＡＡ ＧＣＴ ＣＡＧ ＧＣＴ ＡＴＣ ＴＣＣ ＧＴＴ
ＣＴＧ ＣＡＣ ＧＡＡ ＡＴＧ ＣＴＧ ＣＡＧ ＣＡＧ １９２ Ｌｅｕ Ｇｌｎ Ｇｌｕ Ａｌａ Ｇｌｎ Ａｌａ Ｉｌｅ Ｓｅｒ Ｖａｌ
Ｌｅｕ Ｈｉｓ Ｇｌｕ Ｍｅｔ Ｌｅｕ Ｇｌｎ Ｇｌｎ ５０ ５５
６０ ＴＣＣ ＴＴＣ ＡＡＣ ＣＴＧ ＴＴＣ ＣＡＣ ＡＣＴ ＧＡＡ ＣＡＣ
ＴＣＣ ＴＣＴ ＧＣＴ ＧＣＴ ＴＧＧ ＧＡＣ ＡＣＴ ２４０ Ｓｅｒ Ｐｈｅ Ａｓｎ Ｌｅｕ Ｐｈｅ Ｈｉｓ Ｔｈｒ Ｇｌｕ Ｈｉｓ
Ｓｅｒ Ｓｅｒ Ａｌａ Ａｌａ Ｔｒｐ Ａｓｐ Ｔｈｒ ６５ ７０
７５ ＡＣＴ ＣＴＧ ＣＴＧ ＧＡＣ ＣＡＧ ＣＴＧ ＴＧＣ ＡＣＴ ＧＧＴ
ＣＴＧ ＣＡＣ ＣＡＧ ＣＡＧ ＣＴＧ ＧＡＣ ＡＡＣ ２８８ Ｔｈｒ Ｌｅｕ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ｇｌｎ Ｌｅｕ Ｃｙｓ Ｔｈｒ Ｇｌｙ
Ｌｅｕ Ｈｉｓ Ｇｌｎ Ｇｌｎ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ａｓｎ ８０ ８５
９０ ９５ ＣＴＧ ＧＡＣ ＧＣＴ ＴＧＣ ＣＴＡ ＧＧＴ ＣＡＧ ＧＴＴ ＡＴＧ
ＧＧＣ ＧＡＡ ＧＡＡ ＧＡＣ ＴＣＴ ＧＣＴ ＣＴＧ ３３６ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ａｌａ Ｃｙｓ Ｌｅｕ Ｇｌｙ Ｇｌｎ Ｖａｌ Ｍｅｔ
Ｇｌｙ Ｇｌｕ Ｇｌｕ Ａｓｐ Ｓｅｒ Ａｌａ Ｌｅｕ １００
１０５ １１０ ＧＧＴ ＣＧＴ ＡＣＴ ＧＧＴ ＣＣＧ ＡＣＴ ＣＴＧ ＧＣＴ ＣＴＧ
ＡＡＡ ＣＧＴ ＴＡＣ ＴＴＣ ＣＡＡ ＧＧＣ ＡＴＣ ３８４ Ｇｌｙ Ａｒｇ Ｔｈｒ Ｇｌｙ Ｐｒｏ Ｔｈｒ Ｌｅｕ Ａｌａ Ｌｅｕ
Ｌｙｓ Ａｒｇ Ｔｙｒ Ｐｈｅ Ｇｌｎ Ｇｌｙ Ｉｌｅ １１５ １２０
１２５ ＣＡＣ ＧＴＴ ＴＡＣ ＣＴＧ ＡＡＧ ＧＡＡ ＡＡＧ ＧＧＣ ＴＡＣ
ＡＧＣ ＧＡＣ ＴＧＣ ＧＣＴ ＴＧＧ ＧＡＡ ＡＣＴ ４３２ Ｈｉｓ Ｖａｌ Ｔｙｒ Ｌｅｕ Ｌｙｓ Ｇｌｕ Ｌｙｓ Ｇｌｙ Ｔｙｒ
Ｓｅｒ Ａｓｐ Ｃｙｓ Ａｌａ Ｔｒｐ Ｇｌｕ Ｔｈｒ １３０ １３５
１４０ ＧＴＴ ＣＧＴ ＣＴＧ ＧＡＡ ＡＴＣ ＡＴＧ ＣＧＴ ＴＣＣ ＴＴＣ
ＴＣＣ ＴＣＴ ＣＴＧ ＡＴＣ ＡＧＣ ＣＴＧ ＣＡＧ ４８０ Ｖａｌ Ａｒｇ Ｌｅｕ Ｇｌｕ Ｉｌｅ Ｍｅｔ Ａｒｇ Ｓｅｒ Ｐｈｅ
Ｓｅｒ Ｓｅｒ Ｌｅｕ Ｉｌｅ Ｓｅｒ Ｌｅｕ Ｇｌｎ １４５ １５０
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ＣＴＧ ＴＣＴ ＴＣＴ ＣＣＧ ５１９ Ｇｌｕ Ａｒｇ Ｌｅｕ Ａｒｇ Ｍｅｔ Ｍｅｔ Ａｓｐ Ｇｌｙ Ａｓｐ
Ｌｅｕ Ｓｅｒ Ｓｅｒ Ｐｒｏ １６０ １６５
１７０ 配列番号：４０ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Tyr His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Asp Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４１ 配列の長さ：３４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 ACTGAGACAG GTCGCACATA TGTATATCTC CTTC 34 配列番号：４２ 配列の長さ：４８ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状配列の種類：他の核酸（合成ＤＮ
Ａ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GCTGCTTGGG ACACTACTCT GCTGGAACAG CTGTGCACTG GTCTGCAC 48 配列番号：４３ 配列の長さ：519 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：4..519 配列 ATG TGC GAC CTG TCT CAG AAC CAC GTT CTG GTT GGT CGT AAA AAC CTG 48 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 CGT CTG CTG GAC GAA ATG CGT CGT CTG TCT CCG CAC TTC TGC CTG CAG 96 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT GAA GGC GGT CAG 144 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA ATG CTG CAG CAG 192 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT GCT TGG GAC ACT 240 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 ACT CTG CTG GAA CAG CTG TGC ACT GGT CTG CAC CAG CAG CTG GAC AAC 288 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 CTG GAC GCT TGC CTA GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA GAC TCT GCT CTG 336 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC TTC CAA GGC ATC 384 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC GCT TGG GAA ACT 432 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG ATC AGC CTG CAG 480 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT CCG 519 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４４ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４５ 配列の長さ：４５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GGCCCGGGAT CCCATATGTG CGACCTGTCT CAGAACCTGG TTCTG 45 配列番号：４６ 配列の長さ：４８ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 ACGGTTCATA CGGTCCAGCA GACG 24 配列番号：４７ 配列の長さ：３３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 CGTCTGCTGG ACCGTATGAA CCGTCTGTCT CCG 33 配列番号：４８ 配列の長さ：８７ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：Noアンチセンス :No 配列 GGCCCGGGAT CCCATATGTG CGACCTGTCT CAGAACCTGG TTCTGGTTGG TCGTAAAAAC 60 CTGCGTCTGC TGGACCGTAT GAACCGT 87 配列番号：４９ 配列の長さ：４８４ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 CGTCTGCTGG ACCGTATGAA CCGTCTGTCT CCGCACTTCT GCCTGCAGGA CCGTAAGGAC 60 TTCGCTCTGC CGCAGGAAAT GGTTGAAGGC GGTCAGCTGC AGGAAGCTCA GGCTATCTCC 120 GTTCTGCACG AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTGTTCC ACACTGAACA CTCCTCTGCT 180 GCTTGGGACA CTACTCTGCT GGACCAGCTG TGCACTGGTC TGCACCAGCA GCTGGACAAC 240 CTGGACGCTT GCCTGGGTCA GGTTATGGGC GAAGAAGACT CTGCTCTGGG TCGTACTGGT 300 CCGACTCTGG CTCTGAAACG TTACTTCCAA GGCATCCACG TTTACCTGAA GGAAAAGGGC 360 TACAGCGACT GCGCTTGGGA AACTGTTCGT CTGGAAATCA TGCGTTCCTT CTCCTCTCTG 420 ATCAGCCTGC AGGAACGTCT GCGTATGATG GACGGTGACC TGTCTTCTCC GTGAGGATCC 480 TTAA 484 配列番号：５０ 配列の長さ：５４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 ATGTGCTACC TGTCTGAACG TCTGATGCTG GACGCTCGTG AAAACCTGAA ACTG 54 配列番号：５１ 配列の長さ：５７ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 AGAGTGCGGA GACAGACGGT TCATACGGTC CAGCAGTTTC AGGTTTTCAC GAGCGTC 57 配列番号：５２ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GGCCCGGGAT CCCATATGTG CTACCTGTCT GAACGTCTGA TGC 43 配列番号：５３ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 GTCCTTACGG TCCTGCAGGC AAGAGTGCGG AGACAGACGG TTC 43 配列番号：５４ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 TGCCTGCAGG ACCGTAAGGA CTTCGCTCTG CCGCAGGAAA TGG 43 配列番号：５５ 配列の長さ：１２３ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Ｎｏ 配列 ＧＧＣＣＣＧＧＧＡＴ ＣＣＣＡＴＡＴＧＴＧ ＣＴＡＣＣＴＧＴＣＴ ＧＡＡ
ＣＧＴＣＴＧＡ ＴＧＣＴＧＧＡＣＧＣ ＴＣＧＴＧＡＡＡＡＣ ６０ ＣＴＧＡＡＡＣＴＧＣ ＴＧＧＡＣＣＧＴＡＴ ＧＡＡＣＣＧＴＣＴＧ ＴＣＴ
ＣＣＧＣＡＣＴ ＣＴＴＧＣＣＴＧＣＡ ＧＧＡＣＣＧＴＡＡＧ １２０ ＧＡＣ
１２３
ＣＴＧ ＧＴＴ ＧＧＴ ＣＧＴ ＡＡＡ ＡＡＣ ＣＴＧ ４８ Ｍｅｔ Ｃｙｓ Ａｓｐ Ｌｅｕ Ｓｅｒ Ｇｌｎ Ｔｙｒ Ｈｉｓ Ｖａｌ
Ｌｅｕ Ｖａｌ Ｇｌｙ Ａｒｇ Ｌｙｓ Ａｓｎ Ｌｅｕ −１ １ ５
１０ １５ ＣＧＴ ＣＴＧ ＣＴＧ ＧＡＣ ＧＡＡ ＡＴＧ ＣＧＴ ＣＧＴ ＣＴＧ
ＴＣＴ ＣＣＧ ＣＡＣ ＴＴＣ ＴＧＣ ＣＴＧ ＣＡＧ ９６ Ａｒｇ Ｌｅｕ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ｇｌｕ Ｍｅｔ Ａｒｇ Ａｒｇ Ｌｅｕ
Ｓｅｒ Ｐｒｏ Ｈｉｓ Ｐｈｅ Ｃｙｓ Ｌｅｕ Ｇｌｎ ２０
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ＧＡＡ ＡＴＧ ＧＴＴ ＧＡＡ ＧＧＣ ＧＧＴ ＣＡＧ １４４ Ａｓｐ Ａｒｇ Ｌｙｓ Ａｓｐ Ｐｈｅ Ａｌａ Ｌｅｕ Ｐｒｏ Ｇｌｎ
Ｇｌｕ Ｍｅｔ Ｖａｌ Ｇｌｕ Ｇｌｙ Ｇｌｙ Ｇｌｎ ３５ ４０
４５ ＣＴＧ ＣＡＧ ＧＡＡ ＧＣＴ ＣＡＧ ＧＣＴ ＡＴＣ ＴＣＣ ＧＴＴ
ＣＴＧ ＣＡＣ ＧＡＡ ＡＴＧ ＣＴＧ ＣＡＧ ＣＡＧ １９２ Ｌｅｕ Ｇｌｎ Ｇｌｕ Ａｌａ Ｇｌｎ Ａｌａ Ｉｌｅ Ｓｅｒ Ｖａｌ
Ｌｅｕ Ｈｉｓ Ｇｌｕ Ｍｅｔ Ｌｅｕ Ｇｌｎ Ｇｌｎ ５０ ５５
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ＴＣＣ ＴＣＴ ＧＣＴ ＧＣＴ ＴＧＧ ＧＡＣ ＡＣＴ ２４０ Ｓｅｒ Ｐｈｅ Ａｓｎ Ｌｅｕ Ｐｈｅ Ｈｉｓ Ｔｈｒ Ｇｌｕ Ｈｉｓ
Ｓｅｒ Ｓｅｒ Ａｌａ Ａｌａ Ｔｒｐ Ａｓｐ Ｔｈｒ ６５ ７０
７５ ＡＣＴ ＣＴＧ ＣＴＧ ＧＡＣ ＣＡＧ ＣＴＧ ＴＧＣ ＡＣＴ ＧＧＴ
ＣＴＧ ＣＡＣ ＣＡＧ ＣＡＧ ＣＴＧ ＧＡＣ ＡＡＣ ２８８ Ｔｈｒ Ｌｅｕ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ｇｌｎ Ｌｅｕ Ｃｙｓ Ｔｈｒ Ｇｌｙ
Ｌｅｕ Ｈｉｓ Ｇｌｎ Ｇｌｎ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ａｓｎ ８０ ８５
９０ ９５ ＣＴＧ ＧＡＣ ＧＣＴ ＴＧＣ ＣＴＡ ＧＧＴ ＣＡＧ ＧＴＴ ＡＴＧ
ＧＧＣ ＧＡＡ ＧＡＡ ＧＡＣ ＴＣＴ ＧＣＴ ＣＴＧ ３３６ Ｌｅｕ Ａｓｐ Ａｌａ Ｃｙｓ Ｌｅｕ Ｇｌｙ Ｇｌｎ Ｖａｌ Ｍｅｔ
Ｇｌｙ Ｇｌｕ Ｇｌｕ Ａｓｐ Ｓｅｒ Ａｌａ Ｌｅｕ １００
１０５ １１０ ＧＧＴ ＣＧＴ ＡＣＴ ＧＧＴ ＣＣＧ ＡＣＴ ＣＴＧ ＧＣＴ ＣＴＧ
ＡＡＡ ＣＧＴ ＴＡＣ ＴＴＣ ＣＡＡ ＧＧＣ ＡＴＣ ３８４ Ｇｌｙ Ａｒｇ Ｔｈｒ Ｇｌｙ Ｐｒｏ Ｔｈｒ Ｌｅｕ Ａｌａ Ｌｅｕ
Ｌｙｓ Ａｒｇ Ｔｙｒ Ｐｈｅ Ｇｌｎ Ｇｌｙ Ｉｌｅ １１５ １２０
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ＡＧＣ ＧＡＣ ＴＧＣ ＧＣＴ ＴＧＧ ＧＡＡ ＡＣＴ ４３２ Ｈｉｓ Ｖａｌ Ｔｙｒ Ｌｅｕ Ｌｙｓ Ｇｌｕ Ｌｙｓ Ｇｌｙ Ｔｙｒ
Ｓｅｒ Ａｓｐ Ｃｙｓ Ａｌａ Ｔｒｐ Ｇｌｕ Ｔｈｒ １３０ １３５
１４０ ＧＴＴ ＣＧＴ ＣＴＧ ＧＡＡ ＡＴＣ ＡＴＧ ＣＧＴ ＴＣＣ ＴＴＣ
ＴＣＣ ＴＣＴ ＣＴＧ ＡＴＣ ＡＧＣ ＣＴＧ ＣＡＧ ４８０ Ｖａｌ Ａｒｇ Ｌｅｕ Ｇｌｕ Ｉｌｅ Ｍｅｔ Ａｒｇ Ｓｅｒ Ｐｈｅ
Ｓｅｒ Ｓｅｒ Ｌｅｕ Ｉｌｅ Ｓｅｒ Ｌｅｕ Ｇｌｎ １４５ １５０
１５５ ＧＡＡ ＣＧＴ ＣＴＧ ＣＧＴ ＡＴＧ ＡＴＧ ＧＡＣ ＧＧＴ ＧＡＣ
ＣＴＧ ＴＣＴ ＴＣＴ ＣＣＧ ５１９ Ｇｌｕ Ａｒｇ Ｌｅｕ Ａｒｇ Ｍｅｔ Ｍｅｔ Ａｓｐ Ｇｌｙ Ａｓｐ
Ｌｅｕ Ｓｅｒ Ｓｅｒ Ｐｒｏ １６０ １６５
１７０ 配列番号：４０ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Tyr His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Asp Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４１ 配列の長さ：３４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 ACTGAGACAG GTCGCACATA TGTATATCTC CTTC 34 配列番号：４２ 配列の長さ：４８ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状配列の種類：他の核酸（合成ＤＮ
Ａ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GCTGCTTGGG ACACTACTCT GCTGGAACAG CTGTGCACTG GTCTGCAC 48 配列番号：４３ 配列の長さ：519 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：cDNA to mRNA ハイポセティカル：NO アンチセンス：NO 配列の特徴 特徴を表す記号：CDS 存在位置：1..519 特徴を表す記号：mat_peptide 存在位置：4..519 配列 ATG TGC GAC CTG TCT CAG AAC CAC GTT CTG GTT GGT CGT AAA AAC CTG 48 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 CGT CTG CTG GAC GAA ATG CGT CGT CTG TCT CCG CAC TTC TGC CTG CAG 96 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 GAC CGT AAG GAC TTC GCT CTG CCG CAG GAA ATG GTT GAA GGC GGT CAG 144 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 CTG CAG GAA GCT CAG GCT ATC TCC GTT CTG CAC GAA ATG CTG CAG CAG 192 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 TCC TTC AAC CTG TTC CAC ACT GAA CAC TCC TCT GCT GCT TGG GAC ACT 240 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 ACT CTG CTG GAA CAG CTG TGC ACT GGT CTG CAC CAG CAG CTG GAC AAC 288 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 CTG GAC GCT TGC CTA GGT CAG GTT ATG GGC GAA GAA GAC TCT GCT CTG 336 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 GGT CGT ACT GGT CCG ACT CTG GCT CTG AAA CGT TAC TTC CAA GGC ATC 384 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 CAC GTT TAC CTG AAG GAA AAG GGC TAC AGC GAC TGC GCT TGG GAA ACT 432 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 GTT CGT CTG GAA ATC ATG CGT TCC TTC TCC TCT CTG ATC AGC CTG CAG 480 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 GAA CGT CTG CGT ATG ATG GAC GGT GAC CTG TCT TCT CCG 519 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４４ 配列の長さ：173 配列の型：アミノ酸 トポロジー：直鎖状 配列の種類：蛋白質 配列 Met Cys Asp Leu Ser Gln Asn His Val Leu Val Gly Arg Lys Asn Leu -1 1 5 10 15 Arg Leu Leu Asp Glu Met Arg Arg Leu Ser Pro His Phe Cys Leu Gln 20 25 30 Asp Arg Lys Asp Phe Ala Leu Pro Gln Glu Met Val Glu Gly Gly Gln 35 40 45 Leu Gln Glu Ala Gln Ala Ile Ser Val Leu His Glu Met Leu Gln Gln 50 55 60 Ser Phe Asn Leu Phe His Thr Glu His Ser Ser Ala Ala Trp Asp Thr 65 70 75 Thr Leu Leu Glu Gln Leu Cys Thr Gly Leu His Gln Gln Leu Asp Asn 80 85 90 95 Leu Asp Ala Cys Leu Gly Gln Val Met Gly Glu Glu Asp Ser Ala Leu 100 105 110 Gly Arg Thr Gly Pro Thr Leu Ala Leu Lys Arg Tyr Phe Gln Gly Ile 115 120 125 His Val Tyr Leu Lys Glu Lys Gly Tyr Ser Asp Cys Ala Trp Glu Thr 130 135 140 Val Arg Leu Glu Ile Met Arg Ser Phe Ser Ser Leu Ile Ser Leu Gln 145 150 155 Glu Arg Leu Arg Met Met Asp Gly Asp Leu Ser Ser Pro 160 165 170 配列番号：４５ 配列の長さ：４５ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GGCCCGGGAT CCCATATGTG CGACCTGTCT CAGAACCTGG TTCTG 45 配列番号：４６ 配列の長さ：４８ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 ACGGTTCATA CGGTCCAGCA GACG 24 配列番号：４７ 配列の長さ：３３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 CGTCTGCTGG ACCGTATGAA CCGTCTGTCT CCG 33 配列番号：４８ 配列の長さ：８７ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：Noアンチセンス :No 配列 GGCCCGGGAT CCCATATGTG CGACCTGTCT CAGAACCTGG TTCTGGTTGG TCGTAAAAAC 60 CTGCGTCTGC TGGACCGTAT GAACCGT 87 配列番号：４９ 配列の長さ：４８４ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 CGTCTGCTGG ACCGTATGAA CCGTCTGTCT CCGCACTTCT GCCTGCAGGA CCGTAAGGAC 60 TTCGCTCTGC CGCAGGAAAT GGTTGAAGGC GGTCAGCTGC AGGAAGCTCA GGCTATCTCC 120 GTTCTGCACG AAATGCTGCA GCAGTCCTTC AACCTGTTCC ACACTGAACA CTCCTCTGCT 180 GCTTGGGACA CTACTCTGCT GGACCAGCTG TGCACTGGTC TGCACCAGCA GCTGGACAAC 240 CTGGACGCTT GCCTGGGTCA GGTTATGGGC GAAGAAGACT CTGCTCTGGG TCGTACTGGT 300 CCGACTCTGG CTCTGAAACG TTACTTCCAA GGCATCCACG TTTACCTGAA GGAAAAGGGC 360 TACAGCGACT GCGCTTGGGA AACTGTTCGT CTGGAAATCA TGCGTTCCTT CTCCTCTCTG 420 ATCAGCCTGC AGGAACGTCT GCGTATGATG GACGGTGACC TGTCTTCTCC GTGAGGATCC 480 TTAA 484 配列番号：５０ 配列の長さ：５４ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 ATGTGCTACC TGTCTGAACG TCTGATGCTG GACGCTCGTG AAAACCTGAA ACTG 54 配列番号：５１ 配列の長さ：５７ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 AGAGTGCGGA GACAGACGGT TCATACGGTC CAGCAGTTTC AGGTTTTCAC GAGCGTC 57 配列番号：５２ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 GGCCCGGGAT CCCATATGTG CTACCTGTCT GAACGTCTGA TGC 43 配列番号：５３ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Yes 配列 GTCCTTACGG TCCTGCAGGC AAGAGTGCGG AGACAGACGG TTC 43 配列番号：５４ 配列の長さ：４３ 配列の型：核酸 鎖の数：一本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：No 配列 TGCCTGCAGG ACCGTAAGGA CTTCGCTCTG CCGCAGGAAA TGG 43 配列番号：５５ 配列の長さ：１２３ 配列の型：核酸 鎖の数：二本鎖 トポロジー：直鎖状 配列の種類：他の核酸（合成ＤＮＡ） ハイポセティカル：No アンチセンス：Ｎｏ 配列 ＧＧＣＣＣＧＧＧＡＴ ＣＣＣＡＴＡＴＧＴＧ ＣＴＡＣＣＴＧＴＣＴ ＧＡＡ
ＣＧＴＣＴＧＡ ＴＧＣＴＧＧＡＣＧＣ ＴＣＧＴＧＡＡＡＡＣ ６０ ＣＴＧＡＡＡＣＴＧＣ ＴＧＧＡＣＣＧＴＡＴ ＧＡＡＣＣＧＴＣＴＧ ＴＣＴ
ＣＣＧＣＡＣＴ ＣＴＴＧＣＣＴＧＣＡ ＧＧＡＣＣＧＴＡＡＧ １２０ ＧＡＣ
１２３
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 ＦＩ Ｃ０７Ｋ 14/555 Ａ６１Ｋ 37/66 ＡＢＣ Ｃ１２Ｎ 1/21 ＡＤＤ Ｃ１２Ｐ 21/02 ＡＤＵ //(Ｃ１２Ｎ 1/21 Ｃ１２Ｒ 1:19） (Ｃ１２Ｐ 21/02 Ｃ１２Ｒ 1:19）
Claims (12)
- 【請求項１】 遺伝子操作によって得られ、配列表の配
列番号２のアミノ酸番号１〜１７２で示されるアミノ酸
配列を含むことからなるポリペプチド。 - 【請求項２】 遺伝子操作によって得られ、配列表の配
列番号４のアミノ酸番号１〜１７２で示されるアミノ酸
配列を含むことからなるポリペプチド。 - 【請求項３】 請求項１または２に記載のポリペプチド
をコードするＤＮＡ。 - 【請求項４】 配列表の配列番号１のヌクレオチド番号
４〜５１９で示されるヌクレオチド配列を含むことから
なる、請求項３記載のＤＮＡ。 - 【請求項５】 配列表の配列番号３のヌクレオチド番号
４〜５１９で示されるヌクレオチド配列を含むことから
なる、請求項３記載のＤＮＡ。 - 【請求項６】 請求項３乃至５のいずれか１つに記載の
ＤＮＡを含むことからなる組換えＤＮＡベクター。 - 【請求項７】 請求項６記載の組換えＤＮＡベクターで
形質転換された宿主細胞。 - 【請求項８】 請求項７記載の宿主細胞をインターフェ
ロン活性を有するポリペプチドの産生が可能な条件下で
培養し、次いで該培養物からインターフェロン活性を有
するポリペプチドを回収することを特徴とする、インタ
ーフェロン活性を有するポリペプチドの製造方法。 - 【請求項９】 請求項１または２に記載のポリペプチド
を含むことからなる医薬。 - 【請求項１０】 請求項１または２に記載のポリペプチ
ドを含むことからなる抗ウイルス剤。 - 【請求項１１】 請求項１または２に記載のポリペプチ
ドを含むことからなる抗腫瘍剤。 - 【請求項１２】 請求項１または２に記載のポリペプチ
ドを含むことからなる自己免疫疾患治療剤。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9106941A JPH10295382A (ja) | 1997-04-24 | 1997-04-24 | インターフェロンτ改変体 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP9106941A JPH10295382A (ja) | 1997-04-24 | 1997-04-24 | インターフェロンτ改変体 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH10295382A true JPH10295382A (ja) | 1998-11-10 |
Family
ID=14446416
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP9106941A Pending JPH10295382A (ja) | 1997-04-24 | 1997-04-24 | インターフェロンτ改変体 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH10295382A (ja) |
-
1997
- 1997-04-24 JP JP9106941A patent/JPH10295382A/ja active Pending
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