FR2819718A1 - Produit cosmetique - Google Patents
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Abstract
Produit cosmétiquedestiné à combattre le vieillissement de la peau, comprenantdes extraits lipidiques de plantes appartenant aux familles des apiacées, des cistacées, des astéracées ou des lamiacées.
Description
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L'invention concerne un produit cosmétique ou pharmaceutique contenant des extraits lipidiques de plantes agissant sur la division et la différenciation des cellules de l'épiderme humain. L'invention concerne également un additif alimentaire contenant de tels extraits.
L'épiderme est une structure dynamique de la peau humaine. Il est essentiellement constitué d'une famille cellulaire : les kératinocytes. Ceux-ci, produits par une couche de cellules souches à la base de l'épiderme, se différencient dans l'épaisseur de l'épiderme : initialement quasi-cubiques, ils deviennent polyédriques puis s'aplatissent et aboutissent en surface à la production d'une couche cornée, plus ou moins épaisse. L'épiderme est donc à la fois le siège d'une multiplication cellulaire (couche basale) et une zone de différenciation cellulaire (couche intermédiaire) qui conduit à la formation d'une structure protectrice bien différenciée (couche cornée).
La division des cellules souches est régulée par des cytokines et des facteurs de croissance, comme le facteur de croissance épidermique ou EGF (Epidermal Growth Factor). On sait que, contrairement aux hormones stéroïdes et aux vitamines d'origine lipidique qui peuvent traverser la membrane plasmatique pour se fixer sur des récepteurs nucléaires, les cytokines et les facteurs de croissance agissent via des récepteurs membranaires.
Parmi les substances thérapeutiques susceptibles de réguler la prolifération et la différenciation des kératinocytes, l'acide rétinoïque (AR) et ses dérivés (rétinoïdes) sont utilisés depuis plusieurs années. Ils ont cependant le désavantage d'être tératogènes et de présenter une intolérance cutanée. L'application d'acide rétinoïque sur la peau diminue l'expression de protéines habituellement exprimées au cours de la différenciation des cellules épidermiques, notamment la cytokératine 1 (CK1), la transglutaminase 1 (TGMl) et les desmoplakines (DP). L'acide rétinoïque exerce son activité via des récepteurs nucléaires (RAR, RXR), mais aussi via des protéines cytoplasmiques. En effet, il a été détecté, dans le cytoplasme des cellules sensibles à l'acide rétinoïque, des protéines dénommées CRABP-I et CRABP-II, liant spécifiquement l'acide rétinoïque cellulaire (cellular retinoic acid binding proteins 1
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and II). La protéine CRABP-I1 est le produit d'un gène qui est exprimé principalement au cours de l'embryogénèse, particulièrement dans le développement du système nerveux et du visage, mais qui continue à être exprimé chez l'adulte notamment dans les cellules de la peau. L'expression des ARN messagers de CRABP-II est spécifiquement induite par l'acide rétinoïque et elle est régulée par des cytokines connues pour jouer un rôle dans le différenciation épidermique comme l'interleukine-l. Les protéines CRABP-II régulent la concentration intracellulaire en acide rétinoïque mais aussi le transport et le métabolisme de celui-ci. En effet, la protéine CRABP-II modifie l'expression des gènes sensibles à l'acide rétinoïque qui régulent la prolifération et la différenciation.
Le problème à la base de l'invention est de proposer une substance régulant la prolifération et la différenciation des kératinocytes et qui ne présente pas les effets indésirables de l'acide rétinoïque.
Le problème est résolu par la découverte de propriétés analogues à celles de l'acide rétinoïque et du facteur de croissance EGF dans des extraits lipidiques de certaines familles de plantes dites de bord de mer comme le Crithmum maritimum
encore appelée Criste marine, le Cistus monspeliensis, lhelichrysum italicum et le Lavandula stoechas.
encore appelée Criste marine, le Cistus monspeliensis, lhelichrysum italicum et le Lavandula stoechas.
De manière étonnante, on a notamment pu montrer que certains extraits de ces plantes, bien que ne contenant pas de pro-Vitamine A (un rétinoïde végétal), pouvaient avoir un effet de régulation similaire à celui de l'acide rétinoïque sans
engendrer d'effets inflammatoires.
engendrer d'effets inflammatoires.
Pour chacune des plantes Crithmum maritimum, Cistus monspeliensis, Helichrysum italicum et Lavandula stoechas, un extrait a été obtenu par coextraction au CO2 supercritique en présence d'un solvant composé de triglycérides d'origine végétale (C8-CIO TG). Le C02 supercritique et le co-solvant végétal présentent l'avantage de stabiliser l'extrait sans le dégrader. On peut néanmoins envisager d'autres types de solvants pour l'extraction.
Après remontée à la température ambiante et évaporation du CO2, l'extrait est solidifié sous forme de cire, par ajout d'une huile d'origine végétale (CI6-C18 TG),
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solide à température ambiante. La cire obtenue présente l'avantage d'être stable à l'oxydation.
Comme on le verra plus loin, on a pu mettre en évidence que ces cires favorisent l'expression de gènes codant pour des protéines habituellement stimulées par l'acide rétinoïque et ses dérivés.
Ainsi, un traitement par les cires de Criste marine, de Cistus monspeliensis et
d'Hélichrysum italicum augmente l'expression du gène CRABP-II codant pour la protéine cellulaire liant l'acide rétinoïque (cellular c awding protein II ou CRABP-11) et favorise la différenciation cellulaire. En outre, comme l'acide rétinoïque et ses dérivés, les cires obtenues favorisent J'expression des gènes codant respectivement pour le facteur de croissance endothélial (vascular end othe liai growth factor ou VEGF) et pour son récepteur (VEGFRl), ce qui permet une régulation positive de la division des cellules basales.
d'Hélichrysum italicum augmente l'expression du gène CRABP-II codant pour la protéine cellulaire liant l'acide rétinoïque (cellular c awding protein II ou CRABP-11) et favorise la différenciation cellulaire. En outre, comme l'acide rétinoïque et ses dérivés, les cires obtenues favorisent J'expression des gènes codant respectivement pour le facteur de croissance endothélial (vascular end othe liai growth factor ou VEGF) et pour son récepteur (VEGFRl), ce qui permet une régulation positive de la division des cellules basales.
Parallèlement, on a pu mettre en évidence que les cires obtenues inhibent l'expression de gènes codant pour des protéines habituellement exprimées au cours de la différenciation épidermique. Cette action de répression est également une propriété de l'acide rétinoïque et de ses dérivés.
Par exemple, un traitement par les cires de Criste marine, de Cistus
monspeliensis, d'Hélichrysum italicum et de Lavandula stoechas diminue l'expression des gènes codant pour des protéines de cohésion intracellulaire telles que la desmoplakine 1, la cytokératine 1, la cytokératine 6 ou des protéines enzymatiques telles que la transglutaminase 1.
monspeliensis, d'Hélichrysum italicum et de Lavandula stoechas diminue l'expression des gènes codant pour des protéines de cohésion intracellulaire telles que la desmoplakine 1, la cytokératine 1, la cytokératine 6 ou des protéines enzymatiques telles que la transglutaminase 1.
Les cires de Crisse marine, de Cistus monspeliensis, d 7élichrysum ita/icum et de Lavandula sioechas ont donc des effets similaires aux rétinoïdes en ce qui concerne la régulation positive ou négative des gènes intervenant dans la différenciation des kératinocytes.
En revanche, on a montré de manière significative, que contrairement à l'acide rétinoïque, les cires n'induisent pas de réaction de type inflammatoire, car les gènes codant les cytokines inflammatoires que sont l'interleukine-1 alpha (IL-lA) et béta (IL-lB) ne sont pas stimulés. Au contraire, une tendance à augmenter l'expression du
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gène codant l'antagoniste du récepteur à l'IL-l alpha (IL-IRA) a même été observée pour les cires de Criste marine, de Cistus monspeliensis et de Lavandula stoechas, ce qui plaide en faveur d'une action anti-inflammatoire.
On a pu également mettre en évidence que les cires obtenues à partir de Criste marine, de Cistes monspeliensis et de Lavandula stoechas augmentent l'expression du gène codant pour un facteur de réponse à l'EGF (EGF response factor 1 ou ERFl).
De plus, il a été observé que la cire obtenue à partir de Cistus mompeliensis favorise l'expression des gènes codant pour le récepteur au facteur de croissance épidermique (epidermal growthfactor receptor ou EGFR).
Enfin, on a noté que les cires de Criste marine, d'Hélichrysm italicum et de Lavandula stoechas augmentent sensiblement l'expression du gène codant pour un facteur de croissance, de type EGF, liant l'héparine (heparin-binding EG7'-like growth factor ou HB-EGF). Ce gène est d'ailleurs également stimulé par l'acide rétinoïque.
En conclusion, les cires des plantes précitées agissent donc tant sur la différenciation épidermique (effets inhibiteurs et stimulants similaires à ceux de rétinoïdes) que sur la division des kératinocytes (effet stimulant similaire à celui du facteur EGF).
En stimulant la division des cellules souches et en régulant la différenciation des cellules kératinocytaires, les cires de plantes favorisent l'épaississement de l'épiderme et sa maturation. Elles peuvent être utilisées comme principe actif dans un produit cosmétique notamment pour combattre les effets du vieillissement des cellules de la peau. Elles peuvent également être utilisées en dermatologie, comme principe actif d'un produit pharmaceutique pour traiter les troubles de la différenciation des kératinocytes, notamment comme anti-psoriasiques. Un traitement prophylactique est également envisageable. En outre, grâce à leur action de stimulation de la division cellulaire, similaire à celui de l'EGF, les cires de plantes peuvent encore être utilisées comme principe actif d'un produit pharmaceutique destiné à accélérer la cicatrisation. Le produit cosmétique ou pharmaceutique à base
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de cires de plantes peut être destiné à une application externe topique ou à une ingestion par voie orale
Une autre application des cires végétales est leur incorporation dans des produits alimentaires afin d'obtenir l'effet cosmétique susmentionné.
Une autre application des cires végétales est leur incorporation dans des produits alimentaires afin d'obtenir l'effet cosmétique susmentionné.
De manière générale, les cires végétales seront obtenues à partir de plantes de : - la famille des apiacées (Apiaceae), notamment-dû genre Crithmum, par exemple de Crithmum maritimum ;
- la famille des cistacées (Cistaceae), notamment du genre Cistus, par exemple de Cistus mompeliensis ; - la famille des astéracées (Asteraceae), notamment du genre Helichrysum, par exemple de Helichrysum italicum, - la famille des lamiacées (Lamiaceae), notamment du genre Lavandula, par exemple de Lavandula stoechas.
- la famille des cistacées (Cistaceae), notamment du genre Cistus, par exemple de Cistus mompeliensis ; - la famille des astéracées (Asteraceae), notamment du genre Helichrysum, par exemple de Helichrysum italicum, - la famille des lamiacées (Lamiaceae), notamment du genre Lavandula, par exemple de Lavandula stoechas.
Protocole expérimental :
Les cires obtenues à partir de Crithmum maritimum, Cistus monspeliensis, Helichrysum italicum et Laiandula stoechas ont été diluées à 1 % dans le solvant utilisé pour l'extraction, puis appliquées à la surface d'épidermes humains reconstitués (en duplicata) et étalées à l'aide de petits pinceaux stériles. Les épidermes ont été incubés pendant 24 heures à 37 C. Les tissus ont été ensuite dissociés de leurs nacelles, immédiatement placés dans des tubes stériles (RNAsefree) et congelés à -80 C.
Les cires obtenues à partir de Crithmum maritimum, Cistus monspeliensis, Helichrysum italicum et Laiandula stoechas ont été diluées à 1 % dans le solvant utilisé pour l'extraction, puis appliquées à la surface d'épidermes humains reconstitués (en duplicata) et étalées à l'aide de petits pinceaux stériles. Les épidermes ont été incubés pendant 24 heures à 37 C. Les tissus ont été ensuite dissociés de leurs nacelles, immédiatement placés dans des tubes stériles (RNAsefree) et congelés à -80 C.
L'action des cires précitées sur l'expression des gènes a été étudiée à partir d'une analyse des acides ribonucléiques messagers (ARNm).
Les acides ribonucléiques ont d'abord été extraits et purifiés par des méthodes classiques puis analysés par hybridation spécifique avec des sondes fixées sur une membrane (méthode dite des microarrays ).
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Plus précisément, l'ADN a d'abord été éliminé des échantillons par incubation en présence de Dnase 1. L'absence d'ADN résiduel a été vérifiée par électrophorèse sur gel d'agarose.
ZD c
Les ARN messagers (ARNm) ont été ensuite purifiés par une étape d'hybridation des queues poly (A) des ARNm à des amorces oligo (dT) biotinylées suivie d'une étape de capture sélective sur billes de streptavidine.
Les ARN messagers (ARNm) ont été ensuite purifiés par une étape d'hybridation des queues poly (A) des ARNm à des amorces oligo (dT) biotinylées suivie d'une étape de capture sélective sur billes de streptavidine.
Des sondes ADN multiple marquées au 32p ont été réalisées par réversetranscription des ARNm liés sur billes de poly (dT), à l'aide d'un pool d'amorces ARN (primers) spécifiques des séquences immobilisées sur les arrays , en présence de [a32P]-dATP.
Des cDNAs immobilisés sur chaque membrane ont été hybridés (pendant une nuit à 68 C) aux sondes marquées correspondantes. Les filtres ont ensuite été lavés en conditions stringentes (à 68 C) et placés dans des sacs plastiques individuels pour analyse L'analyse a eu lieu par quantification directe de la radioactivité des spots.
Résultats :
Les résultats sont regroupés dans le Tableau I. La signification des différentes colonnes est donnée ci-après : T est un épiderme témoin traité par le solvant d'extraction (C8-CIO TG) utilisé pour diluer les cires de plantes ; CRIST est un épiderme traité par la cire de Criste marine diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-CIO TG) ; CISTE est un épiderme traité par la cire de Cistus monspeliensis diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-CIO TG) ; HELI est un épiderme traité par la cire d'Hélichrysum italicum diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-C10 TG) ; LAV est un épiderme traité par la cire de Lavandula stoechas diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-C10 TG) ;
Les résultats sont regroupés dans le Tableau I. La signification des différentes colonnes est donnée ci-après : T est un épiderme témoin traité par le solvant d'extraction (C8-CIO TG) utilisé pour diluer les cires de plantes ; CRIST est un épiderme traité par la cire de Criste marine diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-CIO TG) ; CISTE est un épiderme traité par la cire de Cistus monspeliensis diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-CIO TG) ; HELI est un épiderme traité par la cire d'Hélichrysum italicum diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-C10 TG) ; LAV est un épiderme traité par la cire de Lavandula stoechas diluée à 1 % dans le solvant d'extraction (C8-C10 TG) ;
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RA donne l'effet de l'acide rétinoïque sur l'expression du gène, tel que connu dans l'état de l'art
Les différentes lignes sont relatives à différents marqueurs ou, de manière équivalente, aux gènes correspondant à ces marqueurs.
Les différentes lignes sont relatives à différents marqueurs ou, de manière équivalente, aux gènes correspondant à ces marqueurs.
Les résultats sont exprimés (chiffres de gauche) en unités relatives (UR). Ils expriment la radioactivité moyenne des points du double spot correspondant à chaque gène, corrigée du bruit de fond et des différences d'intensité de marquage des sondes. Ils ont été également exprimés (chiffre de droite) en pourcentages du témoin non traité.
On a considéré qu'un gène était exprimé significativement lorsque son UR était supérieure ou égale à un seuil de 1. 5, c'est-à-dire lorsque le doublet était visible sur les images.
On a pris pour marqueurs de référence ( housekeeping ), l'ubiquitine et la glyceraldehyde 3-phosphate dehydrogenase (G3PDH). Comme le font apparaître les deux premières lignes du tableau, ces gènes ont été bien visualisés et l'on peut vérifier qu'aucune cire n'a d'effet significatif sur l'expression des gènes de référence. La moyenne des résultats de comptage des marqueurs housekeeping ? a été prise comme référence pour quantifier de façon relative l'expression des autres marqueurs. On s'affranchit ainsi des variations relatives d'intensité de marquage des différentes sondes utilisées. La correction a été réalisée à partir des intensités de marquage des gènes de référence pour les différentes sondes.
On a considéré qu'un produit avait un effet répresseur si le niveau obtenu était inférieur de plus de 50 % à celui du témoin (soit un ratio inférieur à 50 %) et était stimulant si le niveau obtenu était supérieur de-Plus de 50 % à celui du témoin (soit un ratio supérieur à 150 %).
En ce qui concerne la protéine cellulaire liant l'acide rétinoïque (CRABP-11), on constate une augmentation de l'expression du gène CRABP-II de + 113 %, + 86 % et + 183 % par rapport au témoin (ratios 213 %, 186 % et 283 % respectivement) pour les cires de Criste marine, de Cistus moospeliensis et
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d'7élichr! sim italic' ! < 7M. La cire de LavaH. stoechas a également une tendance à augmenter ce gène (+ 43 %).
Les cires de Criste marine, de Cistus monspeliensis, d'Hélichrysum italicum et de Lavandula stoechas diminuent l'expression des gènes codant pour des protéines exprimées lors de la différenciation épidermique : la desmoplakine 1 (-80 % et- 74 % pour les cires d'Hélichrysum italicum et de Lavandula stoechas), la desmoplakine 3 (-69 % et-59 % pour les cires de Cistus monspeliensis et d'Hélichrysum italicum), la cytokératine 1 (-90 % pour les quatre cires de plantes), la cytokératine 6 (-79 % pour la cire de Cistus monspeliensis), la transglutaminase 1 (- 65 % et-61 % pour les cires de Criste marine et d'Hélichrysum italicum).
Enfin, les quatre cires de plantes augmentent l'expression des gènes codant pour les facteurs de croissance : VEGF (+ 99 % et + 58 % pour la Criste marine et Cistus monspeliensis) et VEGFR1 (de + 55 % à + 186 %).
Les cires ne stimulent en revanche pas la production de cytokines inflammatoires : l'interleukine-1 alpha (IL-lA) ou béta (IL-1B). A contrario, les cires de Criste marine, de Cistus monspeliensis et de Lavandula stoechas ont tendance à stimuler l'expression du gène codant l'antagoniste du récepteur à l'IL-1 alpha (IL- IRA) (+ 45 %, + 29 %, + 40 % respectivement).
Concernant les facteurs de croissance épidermique, les cires de Criste marine, de Cistus monspeliensis et de Lavandula : stoechas augmentent de respectivement + 74 %, + 195 % et + 53 % l'expression du gène codant pour un facteur de réponse à l'EGF (ERF1), la cire de Cistus monspeliensis augmente de 57 % l'expression du gène codant pour le récepteur EGFR et les cires de Criste marine, d'Hélichrysum italicum et de Lavandula stoechas augmentent de respectivement + 120 %, + 140 % et + 194 % l'expression du gène codant le facteur de croissance HB-EGF.
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<tb>
<tb> marqueur <SEP> T <SEP> CRIST <SEP> CISTE <SEP> HELI <SEP> LAV <SEP> RA
<tb> UR <SEP> UR <SEP> % <SEP> UR <SEP> % <SEP> UR <SEP> % <SEP> UR <SEP> %
<tb> ublquitrn <SEP> 551.1 <SEP> 671.5 <SEP> 122 <SEP> 652.2 <SEP> 118 <SEP> 694. <SEP> 4 <SEP> 126 <SEP> 645.1 <SEP> 117
<tb> glyceraldehyde <SEP> 3-phosphate <SEP> 29. <SEP> 7 <SEP> 36.4 <SEP> 122 <SEP> 35.9 <SEP> 121 <SEP> 31.8 <SEP> 107 <SEP> 46. <SEP> 3 <SEP> 156
<tb> dehydrogenase <SEP> (G3PDH)
<tb> cellular <SEP> retinoic <SEP> acid-binding <SEP> 3.5 <SEP> 7.4 <SEP> 213 <SEP> 6. <SEP> 5 <SEP> 186 <SEP> 9. <SEP> 9 <SEP> 283 <SEP> 5.0 <SEP> 143 <SEP> +
<tb> protein <SEP> Il <SEP> (CRABP-II)
<tb> desmoplakine <SEP> 1 <SEP> & <SEP> Il <SEP> (DPI <SEP> & <SEP> 33.7 <SEP> 20.1 <SEP> 60 <SEP> 38.1 <SEP> 113 <SEP> 6.7 <SEP> 20 <SEP> 8.8 <SEP> 26DPII)
<tb> desmoplakine <SEP> II <SEP> (DP3) <SEP> 68.4 <SEP> 47.1 <SEP> 69 <SEP> 21. <SEP> 4 <SEP> 31 <SEP> 28. <SEP> 1 <SEP> 41 <SEP> 41.0 <SEP> 60
<tb> transglutaminase <SEP> 1 <SEP> (TGM1) <SEP> 30.6 <SEP> 10.8 <SEP> 35 <SEP> 15.0 <SEP> 49 <SEP> 12. <SEP> 0 <SEP> 39 <SEP> 17.1 <SEP> 56cytokeratine <SEP> 1 <SEP> (CK1) <SEP> 389.9 <SEP> 23.2 <SEP> 6 <SEP> 25.0 <SEP> 6 <SEP> 12.3 <SEP> 3 <SEP> 35.7 <SEP> 9
<tb> cytokeratine6 <SEP> (CK6) <SEP> 127.1 <SEP> 78.2 <SEP> 62 <SEP> 27.2 <SEP> 21 <SEP> 115.7 <SEP> 91 <SEP> 119.2 <SEP> 94interleukine-1 <SEP> alpha <SEP> (IL-1A) <SEP> 3.4 <SEP> 3.0 <SEP> 88 <SEP> 2.8 <SEP> 83 <SEP> 2.8 <SEP> 83 <SEP> 2.6 <SEP> 78 <SEP> +
<tb> interleukine-1 <SEP> beta <SEP> (IL-1B) <SEP> 2.4 <SEP> 3.1 <SEP> 126 <SEP> 2.3 <SEP> 96 <SEP> 2.2 <SEP> 91 <SEP> 2.2 <SEP> 89
<tb> interleukine-1 <SEP> receptor <SEP> 9.1 <SEP> 13. <SEP> 3 <SEP> 145 <SEP> 11. <SEP> 8 <SEP> 129 <SEP> 7.4 <SEP> 81 <SEP> 12.8 <SEP> 140
<tb> antagonist <SEP> protein <SEP> (IL-1RA)
<tb> epidermal <SEP> growth <SEP> factor <SEP> 1.0 <SEP> 1.4 <SEP> 132 <SEP> 1.6 <SEP> 157 <SEP> 1.1 <SEP> 106 <SEP> 1.3 <SEP> 125
<tb> receptor <SEP> (EGFR)
<tb> EGF <SEP> response <SEP> factor <SEP> 1 <SEP> 9.8 <SEP> 17.1 <SEP> 174 <SEP> 28.9 <SEP> 295 <SEP> 9.9 <SEP> 100 <SEP> 15.0 <SEP> 153
<tb> (ERF1)
<tb> heparin-binding <SEP> EGF-like <SEP> 5.7 <SEP> 12.5 <SEP> 220 <SEP> nd <SEP> nd <SEP> 13.7 <SEP> 240 <SEP> 16.7 <SEP> 294 <SEP> +
<tb> growth <SEP> factor <SEP> (HBEGF)
<tb> vascular <SEP> endothelial <SEP> growth <SEP> 6.0 <SEP> 11.9 <SEP> 199 <SEP> 9. <SEP> 4 <SEP> 158 <SEP> 3.1 <SEP> 52 <SEP> 7. <SEP> 6 <SEP> 127
<tb> factor <SEP> precursor <SEP> (VEGF)
<tb> vascular <SEP> endothelial <SEP> growth <SEP> 3-1 <SEP> 6.8 <SEP> 221 <SEP> 8.8 <SEP> 286 <SEP> 5.9 <SEP> 191 <SEP> 4.8 <SEP> 155
<tb> factor <SEP> receptor <SEP> 1 <SEP> (VEGFR1)
<tb>
<tb> marqueur <SEP> T <SEP> CRIST <SEP> CISTE <SEP> HELI <SEP> LAV <SEP> RA
<tb> UR <SEP> UR <SEP> % <SEP> UR <SEP> % <SEP> UR <SEP> % <SEP> UR <SEP> %
<tb> ublquitrn <SEP> 551.1 <SEP> 671.5 <SEP> 122 <SEP> 652.2 <SEP> 118 <SEP> 694. <SEP> 4 <SEP> 126 <SEP> 645.1 <SEP> 117
<tb> glyceraldehyde <SEP> 3-phosphate <SEP> 29. <SEP> 7 <SEP> 36.4 <SEP> 122 <SEP> 35.9 <SEP> 121 <SEP> 31.8 <SEP> 107 <SEP> 46. <SEP> 3 <SEP> 156
<tb> dehydrogenase <SEP> (G3PDH)
<tb> cellular <SEP> retinoic <SEP> acid-binding <SEP> 3.5 <SEP> 7.4 <SEP> 213 <SEP> 6. <SEP> 5 <SEP> 186 <SEP> 9. <SEP> 9 <SEP> 283 <SEP> 5.0 <SEP> 143 <SEP> +
<tb> protein <SEP> Il <SEP> (CRABP-II)
<tb> desmoplakine <SEP> 1 <SEP> & <SEP> Il <SEP> (DPI <SEP> & <SEP> 33.7 <SEP> 20.1 <SEP> 60 <SEP> 38.1 <SEP> 113 <SEP> 6.7 <SEP> 20 <SEP> 8.8 <SEP> 26DPII)
<tb> desmoplakine <SEP> II <SEP> (DP3) <SEP> 68.4 <SEP> 47.1 <SEP> 69 <SEP> 21. <SEP> 4 <SEP> 31 <SEP> 28. <SEP> 1 <SEP> 41 <SEP> 41.0 <SEP> 60
<tb> transglutaminase <SEP> 1 <SEP> (TGM1) <SEP> 30.6 <SEP> 10.8 <SEP> 35 <SEP> 15.0 <SEP> 49 <SEP> 12. <SEP> 0 <SEP> 39 <SEP> 17.1 <SEP> 56cytokeratine <SEP> 1 <SEP> (CK1) <SEP> 389.9 <SEP> 23.2 <SEP> 6 <SEP> 25.0 <SEP> 6 <SEP> 12.3 <SEP> 3 <SEP> 35.7 <SEP> 9
<tb> cytokeratine6 <SEP> (CK6) <SEP> 127.1 <SEP> 78.2 <SEP> 62 <SEP> 27.2 <SEP> 21 <SEP> 115.7 <SEP> 91 <SEP> 119.2 <SEP> 94interleukine-1 <SEP> alpha <SEP> (IL-1A) <SEP> 3.4 <SEP> 3.0 <SEP> 88 <SEP> 2.8 <SEP> 83 <SEP> 2.8 <SEP> 83 <SEP> 2.6 <SEP> 78 <SEP> +
<tb> interleukine-1 <SEP> beta <SEP> (IL-1B) <SEP> 2.4 <SEP> 3.1 <SEP> 126 <SEP> 2.3 <SEP> 96 <SEP> 2.2 <SEP> 91 <SEP> 2.2 <SEP> 89
<tb> interleukine-1 <SEP> receptor <SEP> 9.1 <SEP> 13. <SEP> 3 <SEP> 145 <SEP> 11. <SEP> 8 <SEP> 129 <SEP> 7.4 <SEP> 81 <SEP> 12.8 <SEP> 140
<tb> antagonist <SEP> protein <SEP> (IL-1RA)
<tb> epidermal <SEP> growth <SEP> factor <SEP> 1.0 <SEP> 1.4 <SEP> 132 <SEP> 1.6 <SEP> 157 <SEP> 1.1 <SEP> 106 <SEP> 1.3 <SEP> 125
<tb> receptor <SEP> (EGFR)
<tb> EGF <SEP> response <SEP> factor <SEP> 1 <SEP> 9.8 <SEP> 17.1 <SEP> 174 <SEP> 28.9 <SEP> 295 <SEP> 9.9 <SEP> 100 <SEP> 15.0 <SEP> 153
<tb> (ERF1)
<tb> heparin-binding <SEP> EGF-like <SEP> 5.7 <SEP> 12.5 <SEP> 220 <SEP> nd <SEP> nd <SEP> 13.7 <SEP> 240 <SEP> 16.7 <SEP> 294 <SEP> +
<tb> growth <SEP> factor <SEP> (HBEGF)
<tb> vascular <SEP> endothelial <SEP> growth <SEP> 6.0 <SEP> 11.9 <SEP> 199 <SEP> 9. <SEP> 4 <SEP> 158 <SEP> 3.1 <SEP> 52 <SEP> 7. <SEP> 6 <SEP> 127
<tb> factor <SEP> precursor <SEP> (VEGF)
<tb> vascular <SEP> endothelial <SEP> growth <SEP> 3-1 <SEP> 6.8 <SEP> 221 <SEP> 8.8 <SEP> 286 <SEP> 5.9 <SEP> 191 <SEP> 4.8 <SEP> 155
<tb> factor <SEP> receptor <SEP> 1 <SEP> (VEGFR1)
<tb>
Claims (15)
- 3) Produit cosmétique selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce qu'il se présente sous la forme d'une cire végétale.
- 4) Procédé de fabrication d'un produit. cosmétique, caractérisé en ce que l'on extrait des composés lipidiques de plantes appartenant aux familles des apiacées, des cistacées, des astéracées ou des lamiacées par co-extraction au C02 supercritique en présence d'un solvant composé de triglycérides d'origine végétale.
- 5) Procédé de fabrication selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'on extrait les composés lipidiques de l'une ou de plusieurs des plantes Crithmum maritimllm, Cistus monspeliensis, Hélichrysum italicum et Lavandula stoechas.
- 6) Procédé de fabrication selon la revendication 4 ou 5, caractérisé en ce que l'on ajoute aux dits composés lipidiques une huile d'origine végétale solide à température ambiante.
- 8) Produit pharmaceutique selon la revendication 7, caractérisé en ce que les extraits lipidiques sont obtenus à partir d'une ou de plusieurs des plantes Crithmum maritimum, Cistus monspeliensis, Hélichrysum italicum et Lavandula stoechas.
- 9) Produit pharmaceutique selon la revendication 7 ou 8, caractérisé en ce qu'il se présente sous la forme d'une cire végétale.
- 10) Procédé de fabrication d'un produit pharmaceutique destiné à un traitement dermatologique, caractérisé en ce que l'on extrait des composés lipidiques de plantes appartenant aux familles des apiacées, des cistacées, des astéracées ou des lamiacées par co-extraction au CO2 supercritique en présence d'un solvant composé de triglycérides d'origine végétale.Il) Procédé de fabrication selon la revendication 10, caractérisé en ce que l'on extrait les composés lipidiques de l'une ou de plusieurs des plantes Crithmum maritimum, Cistus monspeliensis, Hélichrysum italicum et Lavandula stoechas.
- 12) Procédé de fabrication selon la revendication 10 ou Il, caractérisé en ce que l'on ajoute aux dits composés lipidiques une huile d'origine végétale solide à température ambiante.
- 13) Additif alimentaire à effet cosmétique, caractérisé en ce qu'il comprend des extraits lipidiques de plantes appartenant aux familles des apiacées, des cistacées, des astéracées ou des lamiacées.
- 16) Procédé de fabrication d'un additif alimentaire, caractérisé en ce que l'on extrait des composés lipidiques de plantes appartenant aux familles des apiacées, des cistacées, des astéracées ou des lamiacées par co-extraction au C02 supercritique en présence d'un solvant composé de triglycérides d'origine végétale.
- 17) Procédé de fabrication selon la revendication 16, caractérisé en ce que l'on extrait les composés lipidiques de l'une ou de plusieurs des plantes Crithmum maritimum, Cistus monspeliensis, Hélichrysum italicum et Lavandula stoechas.
- 18) Procédé de fabrication selon la revendication 16 ou 17, caractérisé en ce que l'on ajoute aux dits composés lipidiques une huile d'origine végétale solide à température ambiante.
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