FR2719049A1 - Multireprésentation d'un analogue peptidique du substrat de la DPPIV, notamment de type KPR, afin d'inhiber l'entrée du HIV dans les cellules. - Google Patents
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Abstract
L'invention concerne une molécule comportant une pluralité des motifs répétés, notamment du type KPR, susceptibles d'être reconnus par une ectoprotéine (à la surface des cellules) notamment par le récepteur CD26 (encore appelé enzyme DPPIV) ces motifs étant tous portés par une matrice peptidique autorisant leur présentation multiple à l'enzyme et présentant une affinité pour celle-ci. Cette molécule constitue le principe actif d'une composition inhibant l'entrée de HIV dans des cellules, notamment pour le traitement d'une infection due à ce rétrovirus.
Description
MULTIREPRESENTATION D'UN ANALOGUE PEPTIDIQUE DU
SUBSTRAT DE LA DPPIV, NOTAMMENT DE TYPE KPR, AFIN
D'INHIBER L'ENTREE DU HIV DANS LES CELLULES
La présente demande concerne des inhibiteurs de l'infection par un rétrovirus HIV, comportant un analogue peptidique du substrat de la DPPIV ou/et des motifs conservés dans la boucle V3 de la glycoproteine
d'enveloppe d'un retrovirus du type HIV.
Le virus humain de l'immuno-déficience (HIV) est l'agent étiologique du syndrome d'immuno-déficience
acquise (SIDA) et de troubles qui lui sont apparentés.
Jusqu'à présent deux types distincts mais apparentés de rétrovirus, le type HIV-1 et le type HIV-2 ont été identifiés. L'infection des lymphocytes T CD4+, des monocytes et des macrophages par HIV, nécessite l'interaction des produits du gène env du virus avec le récepteur CD4 cellulaire (Klatzman D, et al. Nature
1984; 312:767-768).
Le gène env de HIV code pour une polyprotéine précurseur qui est clivée par une protéase cellulaire,
conduisant à la production de glycoprotéines extra-
cellulaires ou de surface (SU) et transmembranaires (TM) (Eiden LE, et al.Immunol. Today 1992; 13:201-206). La protéine de surface, par le biais d'interactions non covalentes avec la protéine transmembranaire est exposée à la surface des cellules
infectées ou à la surface des particules virales.
Le récepteur CD4 est une glycoprotéine composée d'une région extracellulaire amino-terminale contenant quatre domaines apparentés à la famille des immunoglobulines et d'une région carboxy- terminale contenant les domaines transmembranaire et
cytoplasmique (Eiden et al). Le premier domaine amino-
terminal de la molécule CD4 apparaît être le site
principal de liaison des protéines de surface de HIV.
En conséquence, cette liaison induit un changement de conformation du complexe SU-TM (complexe formé par les glycoprotéines de surface et transmembranaires) permettant l'interaction du domaine amino- terminal de la protéine transmembranaire avec la membrane cellulaire, causant ainsi la fusion des membranes virale et cellulaire (Marsh M, et al Immunol. Today 1988; 8:369-371); Eiden LE et al. Immunol. Today 1992
13:201-206; Putney S. et al TIBS 1992; 17:191-196).
Cependant avant la fusion, la protéine de surface pourrait subir une modification par clivage protéolytique, qui dans le cas de la protéine de surface de HIV-1 (GP120) semble -même si la preuve directe n'en a pas encore été rapportée- avoir lieu au niveau du troisième domaine variable, communément appelé "boucle V3", c'est-à-dire le domaine principal de neutralisation (PND) (Moore JP, et al AIDS 1991;
:S21-S33).
Différentes observations ont jusqu'à présent permis de penser que la boucle V3 joue un rôle critique dans l'infection par HIV-1: 1) Des anticorps neutralisants produits naturellement chez des patients séropositifs pour HIV-1 sont principalement dirigés contre la boucle V3 (Goudsmit J, et al. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1988; 85:4478- 4482), 2) Des anticorps monoclonaux spécifiques de la boucle V3 n'affectent pas la liaison de la gpl20 au récepteur CD4 mais bloquent le processus de fusion (Kinney-Thomas E, et al. AIDS 1988; 2:25-29); 3) Des mutations dans la boucle V3 génèrent des virions dont le caractère infectieux est réduit (Grimaila RJ, et al. J. Virol. 1992; 66:1875-1883); 4) Des mutations dans la boucle V3 modifient le
tropisme cellulaire (Chesebro B, et al. J. Virol.
1992; 66:6547-6554) et suscitent une modification dans le phénotype de HIV en tant que virus induisant un syncytium ou n'induisant pas un syncytium (De Jong JJ,
et al. J. Virol. 1992; 66:6777-6780).
La boucle V3 contient de 35 à 41 acides amines dont les cystéines aux deux extrémités sont reliées, par un pont disulfure formant une boucle. La boucle V3 contient des résidus basiques conservés et en outre la séquence à proximité des cystéines liées, est similaire dans la plupart des isolats. (Clements GJ, et al. AIDS Res. Hum. Retroviruses 1991; 7:3- 16). Par conséquent, il semble qu'il existe une pression de sélection pour
conserver les séquences spécifiques dans la boucle V3.
Les anticorps monoclonaux dirigés contre des peptides (15-mer) représentant le sommet ("crown") de la boucle V3 ont la capacité de neutraliser HIV-1 (Langedijk JPM, et al. J. Gen. Virol. 1991; 72:25192526), cela suggère que les résidus d'acides aminés du sommet de la boucle sont impliqués dans les interactions
fonctionnelles de la boucle V3.
Jusqu'à présent aucune preuve directe n'a pu être établie concernant le fait que le clivage de la boucle V3 serait essentiel pour l'infection par HIV, bien que la gpl20 purifiée ait pu être clivée en fragments de 50 et 70 kDa par différentes protéases: la trombine et la tryptase clivent le site tryptique (GPGR 4 AFVT), alors que la cathepsine E clive un site chymotrypsine-like
(GPGRAF X VT) (Clements GJ, et al. AIDS Res. Hum.
Retroviruses 1991; 7:3-16).
Les inventeurs se sont intéressés à une séquence particulière de la boucle V3 de la glycoprotéine de surface de l'enveloppe du rétrovirus HIV-1, distincte de celles qui ont fait l'objet d'expériences dans l'art antérieur, et aux séquences correspondantes des rétrovirus HIV-2 et SIV. Ils ont observé qu'un très grand nombre d'isolats identifiés de HIV, notamment HIV-1 (plus de 90%) présentent un motif peptidique constitué par la séquence d'acides aminés Gly-Pro-Gly (Glycine - Proline - Glycine ou selon le code à une lettre GPG) et plus particulièrement un motif Gly-Pro, conservé. Ce motif GP ou GPG reste en outre inchangé in vivo pendant plusieurs années chez des individus infectés par HIV-1, alors que d'autres substitutions apparaissent dans la boucle V3 (Holmback et coll. J.
Virol. 1993, 67:1612-1619).
De plus, l'ensemble des isolats identifiés de
HIV-1, HIV-2 et SIV présentent à l'extrémité N-
terminale de la boucle V3 un motif dipeptidique conservé RP (Arginine Proline). Par ailleurs, pour HIV-2 et SIV, on trouve aussi un motif dipeptidique conservé RP (Arginine-Proline) ou KP (Lysine- Proline), à l'extrémité C-terminale de la boucle V3. Par ailleurs, pour SIV MND, on trouve aussi un motif dipeptidique EP (Acide glutamique - Proline) dans la
boucle V3.
En dehors de la boucle V3, dans le cas de HIV-1, on trouve plusieurs motifs conservés, par exemple les séquences IPI (Isoleucine-ProlineIsoleucine), GPC (Glycine-Proline-Cystéine),PPG(Proline-Proline- Glycine), situés respectivement aux acides aminés 185 et 208,de SU et 411 de TM, par rapport à la séquence consensus de
Myers et al (1992).
Les inventeurs ont démontré qu'une protéine cellulaire de surface interagit avec les glycoprotéines de l'enveloppe de HIV ou de SIV, en particulier au
niveau de la boucle V3 et est susceptible de la cliver.
Ce clivage aurait lieu en un site non identifié comme tel jusqu'à la présente invention. La protéine cellulaire de surface est la dipeptidyl peptidase IV (DPPIV) également appelée antigène ou récepteur CD26 (Barclay AN, et al. (1993). Facts book. London: Harcourt Brace Jovanich). Dans la littérature, la DPPIV/CD26 est également appelée: DPIV, DAPIV, SGP-115/107, Tal et Ta103. La DPPIV est une protéase de surface cellulaire (EC 3.4.14.5) qui possède en général une activité d'exopeptidase et dans certaines conditions une activité d'endopeptidase (Nagatsu T, et al. Anal. Biochem. 1976; 74:466-476 - Kudo M, et al J. Biochem. 1985; 97:1211-1218 Kenny AJ, et al. Biochem. J. 1976; 155:169-182). Son activité enzymatique peut être testée par le clivage de dipeptides synthétiques couplés au substrat chromogène p-nitroanilide (para-nitroanilide), ces peptides ayant une séquence X-Pro-p-nitroanilide, pour produire un peptide X-Pro et de la p- nitroaniline (Nagatsu T, et al. Anal. Biochem 1976; 74:466-476) X pouvant être un résidu acide aminé, notamment Glycine (Gly), Alanine (Ala), Lysine (Lys), Arginine (Arg), Acide Glutamique
(Glu), Acide Aspartique (Asp) ou même Proline (Pro).
L'antigène CD26 est largement exprimé sous la forme d'une glycoprotéine transmembranaire de 110 à 120 kDa, qui est identique à la sérine protéase de surface cellulaire appelée dipeptidyl peptidase IV. Cette enzyme qui est généralement considérée comme une exopeptidase, clive des dipeptides dans la partie amino-terminale de substrats polypeptidiques, dès lors que l'avant-dernier résidu est un résidu proline;
c'est-à-dire que cette enzyme permet le clivage de X-
P-polypeptide, P étant un résidu Proline, lorsque X est un acide aminé Nterminal libre (Kudo M, et al. J. Biochem. 1985; 97:1211-1218). En outre, la DPPIV a été décrite comme capable de catalyser un clivage
"endopeptidase-like", après un motif dipeptidique "GP-
like" au sein de peptides synthétiques (Kenny AJ, et al. Biochem. J. 1976; 155:169-182) et de se fixer au collagène (Beauvois B, et al. I. Marcel Dekker (Eds.) New York, 1991). La DPPIV lie le collagène mais cette liaison de la DPPIV au collagène n'affecte pas son activité enzymatique (Hanski C, et al. Exp. Cell Res. 1988; 178:64-72), suggérant ainsi l'existence de sites d'accrochage et catalytique dans différents domaines de
DPPIV/CD26.
La DPPIV est une glycoprotéine comportant plusieurs chaînes oligosaccharidiques liées à des résidus N. La séquence hydrophobe près de l'extrémité amino-terminale (peptide signal) de cette ectoenzyme, fonctionne comme un domaine d'ancrage a la membrane, les 6 acides aminés N-terminaux formant un domaine cytoplasmique et l'extrémité carboxyterminale de la protéine constituant le domaine extracellulaire (Ogata S, et al. J. Biol. Chem. 1989; 264:3596-3601 - Hong W, et al. J. Cell Biol. 1990; 111:323-328). Cette enzyme existe dans une grande variété de tissus y compris dans des organes lymphoides et non-lymphoides (Gorrel MD, et al. Cell. Immunol. 1991; 134:205-215). Elle est exprimée sur les membranes apicales de cellules épithéliales (bordures en brosse et surfaces canaliculaires), endothéliales, certains lymphocytes T, des cellules folliculaires dendritiques et des macrophages (Gorrel MD, et al Cell. Immunol. 1991; 134:205-215 - McCaughan et al. 1990 Hepatology 11,
547-558. - Sannes PL, et al J. Histochem. Cytochem.
1983; 31:684-690). L'activité enzymatique a été détectée sur différentes lignées cellulaires humaines d'origine T et B, de même que sur des monocytes du sang périphérique (Beauvois B, et al. I. Marcel Dekker (Eds.) New York, 1991). L'expression de DPPIV/CD26 est faible dans les lymphocytes T au repos, mais elle augmente considérablement après leur activation; pour cette raison, DPPIV/CD26 est considéré comme un antigène d'activation des lymphocytes T. On utilisera indifféremment les expressions DPPIV
ou CD26 dans la suite du texte.
L'identification d'un nouveau mécanisme impliquant le récepteur CD26 comme médiateur de l'infection chez l'homme par un rétrovirus du SIDA, et plus particulièrement son implication dans l'entrée du rétrovirus dans les cellules telles que les lymphocytes T, les monocytes et les macrophages, permet de définir de nouveaux moyens pour lutter contre l'infection par un rétrovirus HIV ou SIV, et en particulier donne accès à de nouveaux inhibiteurs de l'infection des cellules
par le rétrovirus.
Les inventeurs ont plus particulièrement montré que la DPPIV est un corécepteur pour HIV, qui est susceptible de lier la boucle V3, et/ou d'autres régions dans les glycoprotéines de l'enveloppe virale SU et TM. Cette étape concernant l'interaction du complexe SU/TM avec DPPIV/CD26 est essentielle pour la
pénétration de HIV dans les cellules T CD4.
L'invention a donc pour objet des inhibiteurs de l'infection par un rétrovirus HIV, comportant une pluralité de motifs susceptibles d'être reconnus par une ectoprotéine (à la surface des cellules) notamment par le récepteur CD26 (encore appelé enzyme DPPIV) ces motifs étant tous portés par une matrice peptidique ou
non autorisant leur présentation multiple à l'enzyme.
Dans ce qui suit, il sera fait référence à l'ensemble de ces motifs ainsi présentés à l'enzyme sous
l'expression "motifs répétés".
La matrice permettant la présentation multiple d'un motif choisi, est définie par rapport à sa
capacité à rendre accessible le susdit motif.
Il est important de remarquer que l'expression "peptidique(s)", telle qu'utilisée dans le présent contexte, qu'il s'agisse des "motifs répétés peptidiques" ou de la "matière peptidique", s'entend comme couvrant tant des molécules purement peptidiques (en tant qu'elles sont à base de résidus d'acides aminés naturels) que des molécules dérivées des précédentes par remplacement de tout ou partie de ses résidus d'acides aminés naturels par des isomères optiques de ces acides aminés naturels ou même par des groupes "non peptidiques"' (conduisant par exemple à des "pseudo-peptides"), dès lors que ces remplacements n'entraînent pas une altération sensible des propriétés pertinentes desdits motifs répétés (notamment leur capacité à être reconnus par l'enzyme DPPIV) ou de la matrice (notamment capacité de présentation desdits
motifs répétés à l'enzyme).
Selon un premier mode de réalisation des produits de l'invention la matrice peptidique portant les "motifs répétés" contient des résidus d'acides aminés possédant une fonction réactive non engagée dans une liaison peptidique avec des résidus voisins d'acides aminés, ces fonctions réactives intervenant dans la fixation desdits motifs répétés sur cette matrice. De préférence, la matrice peptidique comprend des résidus d'acides aminés de type lysine (K), les susdits motifs
répétés étant alors greffés sur les groupes epsilon-
amino d'une partie au moins de ces résidus lysine.
D'autres résidus d'acides aminés peuvent également être mis en oeuvre pour le greffage des susdits motifs répétés, tels que l'arginine ou encore des résidus glutamyle qui porte une fonction carboxyle non engagée dans les liaisons peptidiques avec d'autres acides
aminés de la matrice.
La matrice peut être synthétique et par conséquent préparée par synthèse chimique notamment en utilisant la synthèse en phase solide telle que décrite par Merrifield. Une première molécule intéressante dans le cadre de la réalisation de l'invention est par exemple caractérisée en ce que la matrice peptidique comprend l'enchaînement d'acides aminés suivant: K X1 K X2 X3 dans lequel X1 est, de préférence, la lysine, la valine, l'alanine ou l'acide glutamique ou l'isoleucine, X2 et X3 représentent la glycine ou la
proline et sont différents l'un de l'autre.
Les motifs répétés peuvent dans ce cas être liés aux fonctions e-amino des résidus lysine, notamment par des liaisons peptidiques, et peuvent être présentés dans un même plan ou au contraire dans des plans différents. De même ces motifs peuvent être liés du même côté de la matrice par rapport au résidu lysine ou
de façon opposée.
Le résidu d'acides aminés X1 peut, le cas échéant,
être supprimé.
D'autres matrices peptidiques intéressantes pour la réalisation des molécules de l'invention, comprennent un enchainement d'acides aminés choisi parmi les séquences suivantes
K X1 K G P
K X1 K K G P
K X1 K G P K X4 K
K X1 K G P K X4 K G C,
K K
I I
K X1 K G P
K X, K P G
K X1 K K P G
K X1 K P G K X4K
K X1 K P G K X4K G C
K K
I I
K X1 K P G
K X1 K X4 K X1K
K X1 K X4 K X1 K G C
dans lesquels X1 est facultatif et peut être la lysine, la valine, l'alanine, l'acide glutamique ou l'isoleucine et X4 est facultatif et peut être l'acide
glutamique, la valine, l'alanine ou l'isoleucine.
Ces matrices permettent la présentation de l'espace selon des configurations variées des motifs répétés.
La présence d'un résidu C à l'extrémité COOH-
terminale, et/ou de résidus G et C au niveau de la matrice permet le couplage spécifique éventuel à une
structure de type "carrier" ou à des liposomes.
Ainsi les motifs répétés peuvent être liés au résidu lysine suivant un plan, certains se trouvant le cas échéant perpendiculaires les uns par rapport aux
autres ou de chaque côté de la matrice.
De préférence, les acides aminés contenus dans la
matrice peptidique sont sous la forme dextrogyre.
Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, les liaisons peptidiques entre les acides aminés de la matrice sont modifiées notamment pour améliorer leur résistance à l'hydrolyse par les
protéases in vivo.
Le nombre de motifs répétés liés au résidus lysine
de la matrice peut varier considérablement.
Ce nombre peut être déterminé en fonction du nombre de résidus lysine présents sur la matrice peptidique et peut être adapté de façon à optimiser leur capacité à inhiber l'entrée du virus dans les lymphocytes in vivo, et en tenant compte de l'influence de la présence d'un nombre accru de motifs sur l'éventuelle toxicité in vivo des molécules ainsi obtenues. Avantageusement, le nombre de motifs répétés présentés par la matrice est compris entre 2 et 8, de
préférence entre 4 et 6 motifs, par exemple 5 motifs.
Le cas échéant, il sera tenu compte du nombre d'acides aminés contenus dans le motif répété pour déterminer le nombre de motifs liés à la matrice peptidique. Les modifications des liaisons entre les acides aminés des motifs répétés et/ou de la matrice il peptidique peuvent être de différentes natures. Une modification appropriée peut être réalisée au niveau de la liaison peptidique, afin d'empêcher le clivage de cette liaison et donc afin de diminuer ou de supprimer
la sensibilité aux peptidases.
Les techniques habituelles de modification des
liaisons peptidiques peuvent être mises en oeuvre.
On citera notamment sans caractère limitatif les
modifications de la liaison peptidique -CONH-
conduisant à la formation d'une liaison réduite (CH2NH), rétro inverso (NHCO), méthylène-oxy (CH2-O), thiométylène (CH2-S), carba (CH2CH2), cétométhylène
(CO-CH2), hydroxyéthylène (CHOH-CH2) ou Aza (N-N).
Les motifs répétés préférés utilisés pour réaliser les molécules de l'invention devront renfermer au moins deux et avantageusement trois charges positives que l'on pourra choisir parmi les possibilités suivantes: - le groupement a, NH2 du motif - le groupement a, NH2 de 1'a aminohexanoic acid - le groupement E aminé de la lysine et le groupement 6 aminé de l'ornithine et plus généralement les groupements a, >, a, 6 et E aminés (a, 7 diaminobutyric acid; a, P diamino propionic acid)
- le groupement guanidino de l'arginine.
Avantageusement ces deux charges seront séparées par au moins un résidu acide aminé neutre tel que Gly, Pro, Ala. Les motifs auront par exemple pour séquence,
RP, KP, PK, PR, RK, KR, KPR, RPK, PKR, PRK.
KGR, RPR, AHxPR, pyrKR, RPGR, KPGR, GPGR, GPGRAF,
KRPGNK, RPGNK, KRPRQ...
Les séquences ci-après désignées sont décrites au moyen du code dit à une lettre utilisé pour désigner les acides aminés selon le tableau suivant: Code a une lettre Acide Aminé A Alanine R Arginine N Asparagine D Acide Aspartique C Cysteine Q Glutamine E Acide Glutamique G Glycine H Histidine I Isoleucine L Leucine K Lysine M Méthionine F Phényalanine P Proline S Sérine T Threonine W Thryptophane Y Tyrosine V Valine AHx a aminohexanoic acid pyr pyroglutamic acid
Pour les besoins de cette description on a eu (ou aura
encore) recours au "code" suivant: X N'importe quel acide aminé Une molécule particulièrement préférée (ne faisant intervenir que des "vraies" liaisons peptidiques) pour la réalisation de l'invention répond à la formule suivante:
R R R R
P P P P
K K K K 5(KPR)TASS
I I I I
R P K - K K K G P K E K G C
Selon une variante, les motifs répétés lies aux résidus lysine de la matrice peptidique peuvent être
semblables ou de nature différente.
Ainsi on pourra tenir compte dans le choix des motifs répétés liés à la matrice peptidique des variations de la séquence de la boucle V3 de différents
isolats du rétrovirus HIV.
De plus, ces motifs répétés peuvent être choisis de façon telle qu'ils comprennent à la fois un épitope B et un épitope T de la glycoprotéine externe
d'enveloppe d'un rétrovirus HIV.
Selon une autre variante de réalisation de l'invention, la molécule est caractérisée en ce que la matrice peptidique est remplacée par une molécule fonctionnellement équivalente choisie parmi les polyamines, par exemple le Tris (2-aminoethyle) amine ou des dendrimères (R. Wolf, Fréquence Chimie p. 13-17,
Molécules de grande taille).
L'invention a par ailleurs pour objet une composition susceptible d'inhiber l'infection due à un rétrovirus humain de type HIV, notamment de type HIV-1 ou HIV-2, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre
de principe actif, une molécule ci-dessus définie.
Une telle composition est en particulier définie par sa capacité à inhiber l'interaction entre le récepteur cellulaire CD26 (DPPIV) et la glycoprotéine externe d'enveloppe d'un rétrovirus du type HIV, cette interaction manifestant l'incapacité alors acquise par le rétrovirus à pénétrer dans les lymphocytes CD4, comme l'atteste l'absence de formation de syncitia et d'induction de l'apoptose, comme on l'observe dans des cultures témoins. Il y lieu de noter que le mécanisme d'action des inhibiteurs selon l'invention ne fait normalement pas intervenir une inhibition de l'activité enzymatique de la DDPIV, laquelle n'est normalement pas affectée. L'invention vise également l'utilisation d'une molécule telle que définie précédemment pour la préparation d'un médicament pour le traitement d'une infection dûe à un rétrovirus humain de type HIV, notamment en empêchant la fusion de membranes cellulaires. D'une façon générale, entrent dans le cadre de l'invention une composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif une
molécule telle que définie ci-dessus.
Cette composition pharmaceutique peut être utilisée pour le traitement ou la prévention de l'infection par le rétrovirus HIV, notamment en tant
que composition immunogène (vaccin).
D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaissent dans les exemples et les
figures qui suivent.
On connait dans l'état de la technique les molécules du type TASP (template assembled synthetic protein) développées pour transférer les caractéristiques spécifiques d'une enzyme à des molécules facilement accessibles et ainsi pour construire de nouvelles protéines et enzymes (Mutter M.
Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 24 (1985) 639-653).
Sur cette base, une construction a été définie et synthétisée, que l'on a appelée molécule TASS (en
anglais, "template assembled synthetic substrate").
Dans une molécule de ce type, la matrice est utilisée pour former une région d'ancrage cavalent d'un peptide (par exemple le peptide K-P-R) qui inhibe, en temps que monomère à une molarité relativement forte
(10 mM), l'entrée de HIV dans les cellules CD4+.
a) Structure de la molécule
RR RR
PP PP
KK KK
I I I I
RPK-KKKGPKEKGC
b) Réactifs chimiques Le dichlorométhane (DCM) et l'acide trifluoroacétique (TFA) ont été obtenus sous forme
redistillée auprès de Neosystem (Strasbourg, France).
Le N,N-diméthylformamide (DMF) et le diisopropyléthylamine (DIEA) ont été achetés auprès de
SDS (Peypin, France).
Le tert-butyl-methyl-ether (MTBE), le benzotriasolyl-oxytris(diméthylamino)-phosphonium hexafluorophosphate (réactif BOP) et le hydroxybenzotriazole (HOBt) proviennent de Fluka (Mulhouse, France). Les acides aminés protégés proviennent de Neosystem (Strasbourg, France). La résine PAM Boc Cys (4 Me Bzl) vient de A.B.I. (Roissy, France). Le fluorure d'hydrogène provient de Prodair
(Strasbourg, France).
c) Assemblage de la matrice Boc Boc Boc Boc
I I I I 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1
Boc K K K G P K E K G C - PAM Résine
I I I
Clz O-CHX 4-MeBzl L'assemblage de la chaîne peptidique protégée a été réalisé en utilisant la méthode de synthèse en phase solide selon Merrifield (1963, J. Am. Chem. Soc. , 2149-2153) avec un synthétiseur peptidique à canon multiple travaillant en mode semi-automatique (Neimark, J. et Briand J.P. (1993) Peptide Res., 6,219-228). Cent soixante mg (0,1 mmole) de résine PAM Boc Cys (4-MeBzl) (substitution 0, 6 meq/g) ont été placés dans un récipient de réaction de 20 ml. La déprotection du groupe protecteur Boc a été réalisée dans 60% de TFA dans du DCM pendant 30 min, puis la résine a été lavée
deux fois avec du DCM et trois fois avec 5 ml de DMF.
Les acides aminés 2 à 9 utilisés pour construire la matrice ont été protégés en position a-amino avec un groupe Fmoc. Les groupements protecteurs de chaîne latérale utilisés étaient: le cyclohéxyle ester (Glu
4), le chlorobenzyloxycarbonyle (Lys 9), le t-
butyloxycarbonyle (Lys 3, 5, 8). La lysine en position
a été introduite sous forme d'un dérivé Boc Lys Boc.
Le cycle utilisé pour l'incorporation de chaque dérivé d'acide aminé est le suivant: Etape Réactif Durée de l'étape Volume Déprotection 25% pipéridine 3 x 4 min 5 ml / DMF Rinçage 5 x DMF 5 x 15 sec 5 ml Couplage Fmoc acide aminé 20 min 2 ml eq BOP 5 eq HoBt 5 eq DIEA 10 eq Rinçage 3 x DMF 3 x 15 sec 5 ml Le contrôle avec le test à la ninhydrine a montré que tous les couplages étaient complets en 20 min et
aucun recouplage n'a été nécessaire.
d) Assemblage multiple du tripeptide KPR sur la matrice Les groupes protecteurs Boc de la résine PAM de la matrice ont été clivés dans 60% de TFA/DCM pendant 1 min (prélavage) et 30 min, puis la résine a été lavée avec du DCM et du DMF. La nouvelle substitution de la résine était de 3 meq/g (0,5 mmole de groupes aminés dans le récipient de réaction). L'élongation des chaînes peptidiques a été obtenue en utilisant 4 eq en excès de Fmoc Arg (Pmc), Fmoc Gly et Fmoc Lys (Boc). Le temps de déprotection des groupes de protection Fmoc a été élevé à 3 x 7 min dans 25% d'un mélange pipéridine/DMF. A la fin de la synthèse et après la dernière étape de déprotection, la résine a été lavée avec du DCM et séchée sous azote. Les groupes protecteurs Pmc et Boc des dérivés de l'arginine et de la lysine ont ensuite été clivés avec le réactif de King (King, D. Field, C. et Fields, G. (1990). Int. J. Pept. Protein Res. 36, 255-266) pendant 2h30 et la résine a été lavée à nouveau avec du DCM et séchée sous
un flux d'azote.
e) Clivage final en présence de fluorure d'hydrogène Le peptide fixé à la résine (620 mg) finalement obtenu a été testé avec 10 ml de HF et 1 ml d'anisol à 0 C pendant 45 min. Après le retrait du fluorure d'hydrogène sous vide, la résine a été lavée avec de l'éther et le peptide a été élue avec 8 ml de TFA pur et précipité à nouveau avec du MTBE. Après centrifugation, le culot de centrifugation a été
dissous dans 10 ml d'eau et lyophylisé.
f) Analyse et purification de la molécule L'homogénéité du produit final a été vérifiée au moyen d'une étape analytique sur une colonne en phase inverse du type C18 nucléoside (150 x 4,6 mm) en utilisant un système tampon TEAP. Le gradient linéaire détecté à 201 nm était de 1 à 21% en 20min. Après lyophilisation, 190 mg de la molécule ont été obtenus. 100 mg ont été utilisés pour les expériences d'inhibition, 20 mg ont été utilisés pour être couplés à des liposomes et 70 mg ont été fortement
purifiés sur une colonne Delta pak C18.
Activité biologique de la molécule 5(KPR)TASS a) Effet de la molécule 5(KPR)TASS sur l'activité
DPP IV
Dans cet essai, l'activité mettant en jeu l'affinité de cette molécule pour que l'enzyme DPPIV n'interfère pas sensiblement avec l'activité enzymatique de la DDPIV, contrairement à l'inhibiteur (ALBA 2) connu pour inhiber cette activité et utilisé à des fins de comparaison, comme en témoignent les résultats des essais comparatifs qui suivent et qui permettent l'appréciation de leurs effets respectifs sur cette activité. Ces effets ont été mesurés par étude du clivage de GP-pNA dans un tampon peptidase, dans les conditions expérimentales décrites par Callebaut et al, 1993, Science, 24 Dec. 1993, appliquées à une lignée de cellules T humaines, CEM, infectée par le virus HIV-1 LAI, et ce en présence de la molécule 5(KPR)TASS et de l'inhibiteur ALBA 2. Les résultats de ces essais apparaissent dans le tableau suivant, relatif aux Valeurs de IC50 des inhibiteurs peptidiques testés, sur l'activité DPP IV Peptide Concentration inhibitrice à 50% Enzyme solubilisée Enzyme à la surface des cellules ** *** **KPR0,2 m*** *** 10 m************** *** KPR 0,2 mM 10 mM (KPR)TASS 1 mM 5 - 10 mM
ALBA2 0,2 M 1 M
*****************************************************************
ALBA 2: Lys(Z(N02)-pyrrolidid HCL K: Lys; P: Pro; R: Arg Comparé à ALBA 2, la molécule 5(KPR)TASS est 5 000 à 000 fois moins active pour l'inhibition de
l'activité DPP IV.
b) Inhibition de l'entrée de HIV-1 par la molécule 5(KPR)TASS L'entrée de HIV-1 LAI a été testée par infection de cellules CEM pendant 1 h. Le virus extracellulaire a été éliminé par traitement avec la trypsine et l'internalisation de HIV a été suivie en testant la
concentration de p25 (Callebaut et al, 1993, précité).
Inhibition de l'entrée de HIV par 5 (KPR)TASS Peptide p25 internalisée % Inhibition pg/105 cellules
Aucun 280 -
KPR 5 mM 156 44 KPR lOmM 45 84
(KPR)TASS 10 MM 175 38
(KPR)TASS 25 MM 111 60
(KPR)TASS 50 MM 53 81
(KPR)TASS 100 MM 27 90
(KPR)TASS 200 SM < 1 > 99
Héparine 100 pg/ml < 1 > 99 Conclusion: la molécule 5 (KPR)TASS est un inhibiteur puissant de l'entrée de HIV. La valeur de la IC50 est d'environ 10 gM. Ainsi comparé au monomère KPR, (KPR)TASS est 500 fois plus actif. On notera que à pM de 5 (KPR)TASS, l'activité enzymatique DPP IV
n'est pas affectée du tout.
Ces résultats sont à rapprocher de ceux qui ont été rapportés par Schon et coll. 1991, qui ont constatés que le puissant inhibiteur de l'activité enzymatique de la DDP-IV que représente l'ALBA-2 n'inhibe pas la fonction de la CD26 au cours de l'activation des cellules T. c) Inhibition de l'infection par HIV-1 par 5
(KPR)TASS
Des cellules CEM ont été incubées (37 C, 30 min) avec différentes concentrations (200, 100, 50, 25 et MM) de 5 (KPR)TASS avant l'infection avec HIV-1 LAI. Les cellules infectées en presence de l'inhibiteur ont ensuite été cultivées pendant 4 jours et la production de virus a été testée en suivant la concentration de p25 dans le surnageant de culture. La production de HIV a été inhibée de façon considérable par la molécule 5 (KPR)TASS et cette inhibition était dépendante de la dose: plus de 90 % d'inhibition à 20 MM et autour de 50 % d'inhibition à 5 à 10 &M. Comme la production du virus était inhibée par 5 (KPR)TASS,
la formation de syncytia était également inhibée.
d) 5 (KPR)TASS inhibe la formation de syncytia Pour démontrer l'effet de 5(KPR) TASS sur la formation syncytia, les cellules CEM ont été d'abord infectées avec HIV-1 LAI avant l'addition de différentes concentrations de 5 (KPR)TASS. La production de virus et la formation de syncytia ont été suivies à 4 jours après l'infection. Comme la molécule 5 (KPR)TASS était ajoutée après l'infection (c'est à dire après l'entrée de HIV dans les cellules), la production de virus n'était pas affectée. Cependant la formation de syncytia était complètement inhibée à 200 pM, était inhibée à 75% à
MM et à 50% avec 50 pM de 5 (KPR)TASS.
Ces résultats confirment que 5(KPR)TASS est un inhibiteur de l'entrée, comme cela a été démontré dans la section c (c'est-à-dire en inhibant la fusion des membranes virales et cellulaires) et montrent de plus que 5(KPR)TASS est aussi un inhibiteur de la formation de syncytia en empêchant la fusion des membranes des
cellules infectées avec des cellules voisines.
e) La molécule 5 (KPR)TASS n'a pas d'effet toxique sur la croissance cellulaire Le nombre de cellules CEM ayant poussé en l'absence ou en présence de 100 MM de 5 (KPR)TASS
était comparable après 3 trois jours de culture.
f) Inhibition de l'infection par HIV-2 et SIV Les cellules (CEM clone 13; CEM 174, HUT 78) ont été incubées (37 C, 30mn) avec différentes concentrations (80, 40, 20 et 10 pM) de 5 (KPR)TASS avant l'infection avec HIV-2 ROD, HIV-2 EHO ou SIV mac. Les cellules infectées en présence de l'inhibiteur ont ensuite été cultivées pendant 4 jours et la production de virus a été testée en observant l'activité de la transcriptase inverse dans le surnageant de culture. La production de HIV-2 et SIV a
été inhibée de façon considérable par la 5 (KPR)TASS.
Les doses d'inhibition à 50 % ont été estimées environ
à 10-20 MM de la 5(KPR)TASS.
q) 5(KPR)TASS inhibe l'induction de la mort cellulaire ou l'apoptose Des cellules chroniquement infectées par le HIV-1 (par exemple, les cellules H9/IIIB; Resnick et al., 1986, K. Infect. Dis. 154, 1027-1030) à cause de l'expression du complexe gpl20/gp41 des glycoproteines d'enveloppe de HIV, peuvent être utilisées en tant que cellules effectrices pour induire l'apoptose dans des lymphocytes CD4+ (par exemple, les cellules MOLT-4 T4). En l'espace d'une vingtaine d'heures, de la coculture des cellules H9/IIIB dans MOLT-4-T4, l'apoptose est détectée dans les cellules MOLT-4 (Laurent-Crawford et al. 1992, in "Retrovirus of Human AIDS and Related Diseases, pp.35-41, VIIè Colloque des Cent Gardes). 5(KPR)TASS à une concentration de 50-100 pM est capable d'inhiber complètement l'induction de la mort cellulaire ou l'apoptose dans les cellules
MOLT-4.
h) Des inhibiteurs de l'activité DPP IV ne sont pas nécessairement inhibiteurs de l'entrée du VIH ALBA 2 (H-Lys-[Z(NO2)]-pyrrolidide) est un inhibiteur puissant de l'activité DPP IV (Schon et
coll., 1991, Biol. Chem. Hoppe-Seyler, 372, 305-311).
L'activité de la DPP IV à la surface des cellules est inhibée à 90 % à 20 gM et à 50 % à 1 gM. Contrairement à cette inhibition de l'activité enzymatique de la DPP IV, ALBA 2 n'exerce un effet ni sur l'entrée du VIH, ni sur la formation de syncytia, ni sur l'induction de l'apoptose, même à une concentration de 50 gM. La
concentration de 100 gM est toxique pour les cellules.
Au contraire, la molécule 5(KPR)TASS, qui n'exerce qu'un faible effet sur l'activité DPP IV, bloque
considérablement l'infection des cellules par le VIH.
Inhibiteur (IC50so) (IC50) Activité DPP IV Inhibition de l'entrée ALBA 2 i ^M pas d'effet à 50M (KPR)TASS 5mM 5jM IC50: dose de l'inhibiteur nécessaire pour une inhibition égale à 50 % Ces résultats suggèrent que l'activité catalytique de DPP IV/CD26 n'est pas nécessaire pour son fonctionnement dans l'infection des cellules par le VIH. Par ailleurs, la molécule 5(KPR)TASS qui n'affecte pas l'activité à des concentrations inférieures a 1 mM inhibe l'infection virale à plus de % à une dose de 100 MM et à 50 % à une dose d'environ 5 pM. Une explication logique de ces résultats est que la molécule 5(KPR)TASS a une forte affinité pour un site dans la DPPIV/CD26 (site d'accrochage) qui devrait être indépendant du site catalytique impliqué dans l'activité enzymatique. Du fait que KPR pourrait servir de substrat suggère aussi que le site catalytique et le site d'accrochage interagissent avec des structures peptidiques similaires. i) exemple de différents inhibiteurs pour l'infection par le HIV de type 5(KPR)TASS Les cellules CEM ont été incubées (37 C, 30 min) avant l'infection avec HIV-1 LAI avec différentes concentrations (de 50 à 0,5 jM). Les cellules infectées en présence de l'inhibiteur ont ensuite été cultivées pendant 4 jours et le production de virus a été évaluée en mesurant la concentration de p25 dans le surnageant de culture. Le tableau ci-dessous indique la concentration du peptide qui donne une inhibition d'au moins 90% et 50% de la production du virus. Concentration du peptide inhibant la production du HIV Peptide 90% 50% (KPR)TASS 20 gM 10 pM
(KGR)TASS 50 4M N.T.
(PKR)TASS 50 SM N.T.
(RPK)TASS 10 MM 1 M
(KPCH2-N-PR) TASS* 1 pM 0,5 gM
* La liaison peptidique entre KP est réduite.
N.T. non testé h) le site de reconnaissance du peptide (KPR)TASS dans CD26 Les anticorps 1F7 contre la CD26 (C. Morimoto, DanaFarber Cancer Institute, Boston USA) bloquent l'entrée du virus HIV (Callebaut et al., Science, 262, 2045-2050) sans inhiber l'activité enzymatique de la CD26. Ces résultats ont suggéré que le site d'interaction de la CD26 avec l'enveloppe du HIV se situe en dehors du site de reconnaissance du substrat de l'activité peptidase de CD26. Cette suggestion est en accord avec l'action de la peptide 5(KPR)TASS qui à la concentration de 50 4M inhibe plus de 90 % de l'entrée du virus sans affecter l'activité enzymatique. Pour démontrer si le site d'action de la (KPR)TASS est le même que celui de l'anticorps 1F7, nous avons effectué l'expérience suivante: les cellules MOLT une lignée de lymphocytes T humain (CD4+ et CD26+) ont été incubées (5 min à température ambiante) avec ou sans addition de 50 gM de 5(KPR)TASS ou 50 gM de ALBA 2 (qui inhibe l'activité enzymatique mais pas l'entrée du virus). Les anticorps ont eté ajoutés ensuite tels que MAb 1F7 anti CD26, MAb BA5 un autre anticorps anti CD26 (Immunotech) qui n'affecte pas l'entrée du HIV, MAb OKT4 anti-CD4 (Ortho Diagnostics Systems), MAb ALBl anti CD45 (Immunotech) (tyrosine phosphatase associée avec CD26) et les cellules sont incubées à 4 C pendant 1 h. Les cellules sont ensuite lavées et analysées par FACS (abréviation de l'expression anglaise "Fluorescence- activated cell sorting analysis" ou "analyse par fluorescence de catégories de cellules activées"): voir la figure 1 fournissant les spectres caractéristiques résultant de l'analyse par FACS de la reconnaissance du CD26 (par MAb 1F7 et MAb BA5), CD4 (par MAb OKT4) et CD45 (par MAb ALBl) à la surface des cellules MOLT en l'absence ou en présence de 5 (KPR)TASS (cité comme S13) et ALBA2. Les résultats montrent que 5(KPR)TASS (cité sous le nom S13) inhibe la reconnaissance de CD26 par MAb 1F7 tandis que la reconnaissance de CD26 par MAb BA5 n'est pas affectée, indiquant ainsi que l'épitope de MAb 1F7 est bien le site d'interaction de (KPR)TASS. Il est intéressant de noter que ALBA 2 qui n'affecte pas l'entrée du virus ne modifie pas la reconnaissance de la CD26 par l'anticorps 1F7 ou par BA5. L'effet de 5(KPR)TASS sur l'épitope de MAb 1F7 c'est à dire CD26 est spécifique car la reconnaissance des autres antigènes de surface tels que CD4 et CD26
ne sont pas modifiés par 5(KPR)TASS.
Conclusion Le complexe glycoprotéine formant l'enveloppe du virus et comportant la protéine de surface SU (gpl20) et la protéine transmembranaire TM (gp41), joue un rôle important dans l'infection par le VIH; la gpl20 contient le site de fixation au CD4, et la gp41 le motif peptidique nécessaire au processus de fusion membranaire. L'association non-covalente de la gp120 et la gp41 forme un complexe conformationnel qui est essentiel pour les deux fonctions principales du complexe gpl20/41; l'entrée du noyau (core) du virus dans les cellules par fusion des membranes virale et cellulaire, et l'induction de l'effet cytopathogène par fusion des membranes des cellules infectées (exprimant le complexe gpl20/gp41 à la surface) avec
celles des cellules voisines.
L'expression du complexe gpl20/gp41 à la surface des cellules infectées conduit à une interaction avec les molécules CD4 des cellules voisines non infectées, qui entraîne un effet cytopathogène caractéristique du
VIH (Laurent-Crawford et al., 1993, AIDS Res. Hum.
* Retroviruses 9, 761-773): formation de syncytia (cellules multinucléées générées par la fusion des cellules infectées avec les cellules non infectées) et/ou la mort cellulaire par apoptose (fragmentation de la chromatine au niveau des liens internucléosomiques). Le fait que les différentes fonctions du complexe d'enveloppe gpl20/gp41: 1) l'entrée virale; 2) la formation des syncytia; 3) l'induction de l'apoptose sont inhibées par la molécule 5(KPR)TASS suggère que dans ces différentes fonctions du complexe gpl20/gp41, cette molécule inhibe l'interaction de la boucle V3 avec une protéine de surface, par exemple, la
DPPIV/CD26.
(KPR)TASS est un inhibiteur potentiel de l'entrée de HIV et de l'infection. Il présente très peu d'effet, à supposer qu'il puisse même être constaté, sur l'activité enzymatique DPP IV. Ainsi on peut penser que 5 (KPR)TASS agit principalement sur le site de reconnaissance du substrat (c'est-à-dire la boucle V3 de la gpl20) sans affecter le site catalytique de la molécule CD26. Une des explications de l'activité plus importante de 5 (KPR)TASS par rapport au monomère KPR pourrait être trouvée dans le fait que la molécule CD26 existerait sous forme d'un multimère d'ou également une présentation également plus efficace d'un multimère de type KPR plus efficace. Le résidu KPR dans la molécule TASS peut également être remplacé par d'autres peptides pour former des variants de cet inhibiteur, par exemple:
RPK, RPR, PKR, KGR.
Le tripeptide KPR est un des motifs conservés dans la boucle V3, précisément trouvé dans la partie C-terminale de la boucle V3 de certains VIH-2. En raison de la présence du dipeptide KP, KPR pourrait servir comme un substrat de l'enzyme DPPIV/CD26. Par ailleurs, nous avons démontré que le tripeptide KPR monomère à 10 mM inhibe l'entrée de VIH et aussi inhibe l'activité de la DPPIV. Sur ces données, nous avons ici démontré que la présentation multimérique de ce tripeptide KPR (par exemple 5(KPR-TASS) augmente considérablement l'efficacité de cette molécule pour inhiber l'entrée de VIH, la formation de syncytia et l'induction de l'apoptose. Mais à la concentration (10-200gM) de 5(KPR)TASS quand l'infection virale est inhibée, l'activité enzymatique n'est pas affectée. Ce n'est qu'à une concentration de 1-10mM de 5(KPR)TASS,
que l'activité de la DPPIV est inhibée.
Enfin, les peptides de type 5(KPR)TASS semblent interagir avec CD26 dans une région qui constitue 1'epitope de l'anticorps monoclonal anti- CD26, MAb 1F7.
Claims (19)
1. Molécule comprenant une pluralité de motifs ou "motifs répétés" susceptibles d'être reconnus par une ectoprotéine (à la surface des cellules) notamment par le récepteur CD26 (encore appelé enzyme DPPIV) ces motifs étant tous portés par une matrice peptidique autorisant leur présentation multiple à l'enzyme et
présentant une affinité pour celle-ci.
2. Molécule selon la revendication 1, caractérisée en ce que la matrice peptidique portant les "motifs répétés" contient des résidus d'acides aminés possédant une fonction réactive non engagée dans une liaison peptidique avec des résidus voisins d'acides aminés, ces fonctions réactives intervenant dans la fixation desdits motifs répétés sur cette matrice. 3. Molécule selon la revendication 2, caractérisée en ce qu'elle comprend des résidus d'acides aminés de type lysine, les susdits motifs
répétés étant alors greffés sur les groupes epsilon-
amino d'une partie au moins de ces résidus lysine.
4. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 3, caractérisée en ce que la
matrice peptidique comprend l'enchaînement d'acides aminés suivant: K X1 K X2 X3 dans lequel X1 est la lysine, la valine, l'alanine ou l'isoleucine, X2 et X3 représentent la glycine ou la proline et sont
différents l'un de l'autre.
5. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 4, caractérisée en ce que la
matrice peptidique comprend un enchaînement d'acides aminés choisi parmi les séquences suivantes:
K X1 K G P
K X1 K K G P
K X1 K G P K X4 K
K X1 K G P K X4 K G C,
K K
I I
K X1 K G P
K X1 K P G
K X1 K K P G
K X1 K P G K X4K
K X1 K P G K X4K G C
K K
I I
K X1 K P G
K X1 K X4 K X1K
K X1 K X4 K X1 K G C
dans lesquels X1 est facultatif et peut être la lysine, la valine, l'alanine ou l'isoleucine et X4 est facultatif et peut être l'acide glutamique, la valine,
l'alanine ou l'isoleucine.
6. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 5, caractérisée en ce que les
acides aminés de la matrice sont sous forme dextrogyre
ou levogyre.
7. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 6, caractérisée en ce que la
matrice peptidique comprend entre 2 et 8 motifs répétés, de préférence entre 4 et 6 motifs, notamment motifs. 8. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 7, caractérisée en ce que les
liaisons peptidiques entre tout ou partie des acides aminés des motifs sont modifiées de façon à prévenir
leur hydrolyse enzymatique.
9. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 8, caractérisée en ce que le motif
répété répond à la séquence KPR.
10. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 8, caractérisée en ce que le motif
répété comprend une séquence choisie parmi les suivantes ou correspond à l'une de ces séquences:
RPK, RPR, PKR, KGR, GP, RP, KP, DP, EP, GPG, RPG,
KPG, DPG, EPG, GPGRAF, KRPGNK, RPGNK, KRPRQ, EPGNK.
11. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 10, caractérisée en ce qu'elle
répond à la formule suivante:
R R R R
P P P P
K K K K
I I I I
R P K - K K K G P K E K G C.
12. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 10, caractérisée en ce qu'elle
comprend plusieurs motifs répétés différents.
13. Molécule selon l'une quelconque des
revendications 1 à 12, caractérisée en ce que la
matrice peptidique est remplacée par une molécule fonctionnellement équivalente choisie parmi les polyamines, par exemple le Tris (2 aminoethyle) amine
ou les dendrimères.
14. Composition susceptible d'inhiber l'infection due à un rétrovirus humain de type HIV, notamment de type HIV-1 ou HIV-2 ou SIV, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, une
molécule selon l'une quelconque des revendications 1 à
13. 15. Composition selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'elle a la capacité d'inhiber l'interaction entre le récepteur cellulaire CD26 ou DPPIV et la glycoprotéine externe d'enveloppe du rétrovirus HIV, de préférence sans affecter l'activité
enzymatique de la DPPIV CD26.
16. Utilisation d'une molécule selon l'une
quelconque des revendications 1 à 13 pour la
préparation d'un médicament pour le traitement d'une
infection due à un retrovirus humain de type HIV.
17. Composition selon la revendication 16, caractérisée en ce qu'elle a la capacité d'inhiber l'entrée des particules du VIH en empêchant la fusion
des membranes cellulaire et virale.
18. Composition selon la revendication 16, caractérisée en ce qu'elle a la capacité d'inhiber la fusion des cellules infectées avec des cellules voisines. 19. Composition selon la revendication 16, caractérisée en ce qu'elle a la capacité d'inhiber l'induction de la mort cellulaire par l'apoptose en empêchant l'interaction du complexe des glycoprotéines
d'enveloppe gpl20/gp41 avec les cellules cibles.
20. Composition pharmaceutique, caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, une
molécule selon l'une quelconque des revendications 1 à
13. 21. Utilisation d'une molécule selon l'une
quelconque des revendications 1 à 13, pour la
préparation d'un médicament capable d'inhiber l'interaction entre le récepteur cellulaire CD26 ou DPPIV et la glycoprotéine externe d'enveloppe du
rétrovirus HIV.
22. Composition immunogène, caractérisée en ce qu'elle comprend, à titre de principe actif une
molécule selon l'une quelconque des revendications 1 à
13.
Priority Applications (6)
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| AU24125/95A AU2412595A (en) | 1994-04-22 | 1995-04-21 | Multirepresentation of a peptide analogue of the dppiv substrate, especially of the kpr type, to inhibit the entry of hiv in cells |
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