FI89723C - Foerfarande foer framstaellning av vaevnadsplasminogenaktivator, kodande rekombinant-dna daerav och en transformanscell - Google Patents

Foerfarande foer framstaellning av vaevnadsplasminogenaktivator, kodande rekombinant-dna daerav och en transformanscell Download PDF

Info

Publication number
FI89723C
FI89723C FI853761A FI853761A FI89723C FI 89723 C FI89723 C FI 89723C FI 853761 A FI853761 A FI 853761A FI 853761 A FI853761 A FI 853761A FI 89723 C FI89723 C FI 89723C
Authority
FI
Finland
Prior art keywords
tpa
utpa
recombinant dna
dna
cdna
Prior art date
Application number
FI853761A
Other languages
English (en)
Swedish (sv)
Other versions
FI89723B (fi
FI853761A0 (fi
FI853761L (fi
Inventor
Cha-Mer Wei
Nancy Hsiung
Vermuri B Reddy
Jeffrey F Lemontt
William Dackowski
Richard Douglas
Edward S Cole
Jr Richard D Purcell
David Tai-Yui Lau
Original Assignee
Genzyme Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Genzyme Corp filed Critical Genzyme Corp
Publication of FI853761A0 publication Critical patent/FI853761A0/fi
Publication of FI853761L publication Critical patent/FI853761L/fi
Application granted granted Critical
Publication of FI89723B publication Critical patent/FI89723B/fi
Publication of FI89723C publication Critical patent/FI89723C/fi

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • C12N9/50Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25)
    • C12N9/64Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue
    • C12N9/6421Proteinases, e.g. Endopeptidases (3.4.21-3.4.25) derived from animal tissue from mammals
    • C12N9/6424Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12N9/6456Plasminogen activators
    • C12N9/6459Plasminogen activators t-plasminogen activator (3.4.21.68), i.e. tPA
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • C12Y304/21Serine endopeptidases (3.4.21)
    • C12Y304/21069Protein C activated (3.4.21.69)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2795/00Bacteriophages
    • C12N2795/00011Details
    • C12N2795/14011Details ssDNA Bacteriophages
    • C12N2795/14111Inoviridae
    • C12N2795/14141Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2795/14143Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/001Vector systems having a special element relevant for transcription controllable enhancer/promoter combination
    • C12N2830/002Vector systems having a special element relevant for transcription controllable enhancer/promoter combination inducible enhancer/promoter combination, e.g. hypoxia, iron, transcription factor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/70Vector systems having a special element relevant for transcription from fungi
    • C12N2830/702Vector systems having a special element relevant for transcription from fungi yeast
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2830/00Vector systems having a special element relevant for transcription
    • C12N2830/80Vector systems having a special element relevant for transcription from vertebrates
    • C12N2830/85Vector systems having a special element relevant for transcription from vertebrates mammalian

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Control Of Ac Motors In General (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

39723
Menetelmä kudosplasminogeeniaktivaattorin valmistamiseksi, sitä koodaava yhdistelmä-DNA ja transformanttisoluja Tämä keksintö koskee yhdistelmä-DNA-molekyyliä, 5 menetelmää ihmisen kohtukudoksen plasminogeeniaktivaatto-riproteiinin (uTPA) valmistamiseksi yhdistelmä-DNA-teknii-kalla sekä menetelmässä käytettyä transformanttisolua.
Rijken et ai. Biochim. Biophys. Acta 580, (1979) 140 kuvaavat uTPA:n, yksiketjuisen tsymogeenisen, veren 10 plasmiinilla kaksiketjuiseksi aktivoituvan, fibriinihyyty-miä liuottamaan pystyvän entsyymin osittaista puhdistamista. uTPA on siten epäilemättä hyödyllinen terapeuttisena tuotteena liuottamaan hyytymiä potilaissa, jotka kärsivät erilaisista verisuonisairauksista, erityisesti sydänlihak-15 sen infarkteista, joista on seurauksena hyytymiä sydämen sisällä ja sen ympärillä.
Yhdistelmä-DNA-tekniikkaa on aiemmin käytetty mRNA:n valmistamiseen syöpäsolulinjasta (Bowesin melanoo-masoluista) ja mRNAsta on käytetty Bowesin TPA:ta koodaa-20 van cDNAsn valmistamiseen Goeddelin et ai. EP-hakemuksessa 0093619 kuvaamalla tavalla.
Keksinnön yleisenä ominaispiirteenä on aktiivia ihmisen kohdun TPA:ta koodaava cDNA-sekvenssi.
Esitellään edelleen replikoituva ekspressiovektori, 25 joka pystyy transformoidussa isäntäsolussa ilmentämään aktiivia ihmisen kohdun TPA:ta koodaavan DNA-sekvenssin, ja vektorilla transformoitu isäntäsolu, esim. hiiva- tai ni-: säkässolu.
Transformoitua soluviljelmää käytetään tuottamaan 30 uTPAsta, joka ei sisällä muita ei-ihmisperäisiä proteiineja, ja joka voidaan puhdistaa 97 paino-%rsesti vapaaksi muista ei-uTPA-proteiineista.
uTPA puhdistetaan nisäkässolujen viljelyalustasta, tai hiivan kyseessä ollen solumateriaaliuutteesta menetel-35 mällä, jonka ensimmäisenä vaiheena valinnaisesti on neste- 89723 2 neste-uutto, jolla poistetaan osa alustan ei-uTPA-proteii-neista ja saadaan tuote, jonka spesifinen uTPA-aktiivisuus on kasvanut.
Neste-neste-uutto tehdään sekoittamalla viljely-5 alusta tai uute kahden erilaisen vesiliukoisen polymeeri-yhdisteen kanssa, jolloin muodostuu kaksifaasinen seos, jossa vähintään 65 paino-% uTPAssta on toisessa faasissa ja vähintään 40 tilavuus-% alustan tai uutteen vedestä on toisessa faasissa. Puhdistus- ja konsentrointivaiheina 10 voivat olla myös ultrasuodatus ja/tai hydrofobinen affini-teettikromatografia. On edullista, jos menetelmään kuuluu vielä affiniteettikromatografiavaihe, jossa uTPA sidotaan anti-uTPA-vasta-aineeseen.
uTPAsta koodaavat ekspressiovektorit, jotka geenin 15 alkuperästä (normaali ihmisen kohtukudos) johtuen jäljittelevät uTPArn normaalia biosynteesiä ihmisissä (glykosy-laatioreaktiot mahdollisesti mukaan lukien eukaryoottisia isäntäsoluja käytettäessä), joten proteiinituote käyttäytyy luonnollisella tavalla ihmispotilaissa.
20 Lisäksi esitetään eukaryoottisoluissa tuotettuja osittain tai ei lainkaan glykosyloituja TPA-molekyylejä; näiden modifioitujen TPA-molekyylien etuna on pitempi puoliintumisaika .
Keksinnön mukaisille tuotteille ja menetelmille on 25 tunnusomaista se, mitä patenttivaatimuksissa esitetään.
Seuraavassa kuvataan keksinnön edulliset suoritusmuodot. Piirroksissa:
Kuvio 1 on ihmisen kohdun TPA-geenin ja sen reuna-alueiden emäsjärjestyksen kaavamainen esitys; kohdun TPA-30 geenin ja Bowesin melanoomasolujen TPA-geenin väliset erot on osoitettu.
Kuvio 2 on täydellisen uTPArn cDNA-sekvenssin konstruoinnin kaavamainen esitys.
Kuvio 3 on keksinnön mukaisen hiivan (Saccharomyces 35 cerevisiae) ekspressiovektorin kaavamainen esitys.
3 89723
Kuvio 4 on toisen keksinnön mukaisen hiivan eks-pressiovektorin kaavamainen esitys.
Kuvio 5 on nisäkkään ekspressiovektorin konstruoinnin kaavamainen esitys.
5 Kuvio 6 on toisen nisäkkään ekspressiovektorin kaa vamainen esitys.
Kuvio 7 on kolmannen nisäkkään ekspressiovektorin kaavamainen esitys.
Kuvio 8 on ihmisen kohdun TPA-geenin emäsjärjestyk-10 sen kaavamainen esitys, josta N-glykosylaatiokohdat ilmenevät .
Ihmisen kohdun TPA:n cDNA:n synteesi
Ihmisen kohdun TPA:ta koodaava cDNA valmistettiin ja kloonattiin seuraavien päävaiheiden mukaisesti: 15 1) kokonais-mRNA eristettiin ihmisen kohtukudoksesta; 2) uTPA-mRNA rikastettiin kokonais-mRNA:sta; 3) cDNA:n 3'- ja 5'-sekvenssit syntetisoitiin TPA-mRNA:sta; 4) cDNA:n 3'- ja 5'-sekvenssit yhdistettiin täydelliseksi 20 cDNA-sekvenssiksi välittävässä plasmidivektorissa.
uTPA-mRNA:n eristys mRNA eristettiin ihmisen kohtukudoksesta seuraavasti. Noin 30 g ihmisen kohtukudosta 40 ml:ssa guanidiini-tiosyanaattiliuosta sisältäen 4 M guanidiinitiosyanaattia, : 25 IM 2-merkaptoetanolia, 50 mM natriumasetaattia (pH 5,0) ja 1 mM EDTA:ta jauhettiin kudoshomogenisaattorissa. Sitten lisättiin 1 g CsCl:a ml:aan homogenaattia ja homoge-naattia sentrifugoitiin kierrosnopeudella 3000 min-1 10 minuutin ajan. Supernatantti laskettiin kerroksena 15 30 ml:aan "CsCl-vaimenninta", joka sisälsi 50 mM natriumase-taattia (pH 5,0), 1 mM EDTA:ta, ja 1,592 g CsCl:a ml:ssa liuotinta 50 ml putkissa ja seosta sentrifugoitiin kierrosnopeudella 45 000 min-1 20 °C:ssa 24 h ajan. RNA:n sisältävä valkoinen kerros kerättiin, CsCl-liuos laimennet- ‘ 35 tiin kolminkertaiseksi vedellä ja RNA saostettiin lisää- 4 8 9 723 mällä kaksi tilavuutta etanolia -20 °C:ssa. Saostuma kerättiin sentrifugoimalla. CsCl-kontaminaatio poistettiin toistamalla liuotus- ja saostusvaihe. Noin 11 mg puhdistettua RNA:ta saatiin talteen.
5 Puhdistettu RNA pantiin affiniteettikolonniin, joka
sisälsi 1 ml oligo-dT-selluloosaa väkevässä suolapuskuris-sa [10 M Tris-puskuria (pH 8,0), 0,5 M NaCl:a ja 0,2 % natriumdodekyylisulfaattia] ja konsentroitiin etanolisaos-tuksella ja saatiin 300 μg konsentroitua RNArta. RNA liuo-10 tettiin 200 μΐ^αη liuosta, jossa oli 0,1 M Tris-HCl:a (pH
7,5), 1 mM EDTAsta, 1 % natriumdodekyylisulfaattia ja 50 % formamidia, SW41-putkissa. Putkia sentrifugoitiin kierros-nopeudella 35 000 min"1 15 °C:ssa 16 tunnin ajan. Fraktiot kerättiin ja RNA:n koko kussakin fraktiossa määritettiin 15 sisäisillä 3H-leimatuilla 4S-, 18S- ja 28S-markkereilla.
TPA-mRNA:ta sisältävät fraktiot identifioitiin Northern blotting -analyysillä käyttäen 3JP-leimattua koe-tinta ja yhdistettiin. mRNA kerättiin talteen gradientista laimentamalla yhtä suurella tilavuudella 0,4 M NaOAc-liu-20 osta (pH 5) ja saostettiin etanolilla 2,5 kertaa laimennettua gradienttiliuosta suuremmassa tilavuudessa. Talteen kerättyä RNA:ta vielä kontaminoiva formamidi poistettiin toistamalla liuotus ja saostus.
uTPA:n cDNAtn 3'-sekvenssin valmistaminen 25 uTPA:n cDNAsn ensimmäinen säie valmistettiin eris tetystä RNA:sta seuraavasti. Kokonaistilavuudeltaan 50 μΐ liuoksessa, joka sisälsi 50 mM Tris-HCl:a pH 8,3, 50 mM KC1, 8 mM MgCl2, 1 mM dATP:ta, dCTP:tä, dGTP:tä ja dTTP:tä kutakin, 25 μς/ιηΐ oligo-dT12_18:a, 50 μg/ml aktinomysiini - 30 D:tä, 30 mM 2-merkaptoetanolia, 0,5 mCi/ml dCTP:tä, 50 yksikköä RNasiinia ja 40 yksikköä AMV-käänteiskopioijaent-syymiä, RNA:ta inkuboitiin 37 °C:ssa 1 tunnin ajan ja reaktio pysäytettiin lisäämällä 20 mM EDTA:ta. Reaktioseos pantiin sen jälkeen Sephadex G-100-kolonniin, joka oli 35 tasapainotettu 10 mM:lla Tris-HCl:a (pH 8,0), 1 mM:lla 5 89723 EDTAsta ja 0,1 %:lla natriumdodekyylisulfaattia ja esikro-matografoitu 50 μς:1ΐ3 E. colin tRNArta.
mRNA-cDNA-hybridin sisältävät fraktiot yhdistettiin ja saostettiin etanolilisäyksellä. Talteen kerättyä hybri-5 diä käsiteltiin 0,5 N NaOHtlla 37 °C:ssa usean tunnin ajan, neutraloitiin jääetikalla ja saostettiin etanolilla.
Nukleotiditrifosfaatit poistettiin saostamalla väkevällä suola-etanoliliuoksella seuraavasti. DNA liuotettiin ensin 20:stä 50:een μ1:33η vettä ja yhtä suuri tila-10 vuus 4 M ammoniumasetaattia lisättiin. Sitten lisättiin kaksi tilavuutta etanolia ja liuosta pidettiin -70 °C:ssa yli yön. Liuoksen annettiin lämmetä huoneen lämpötilaan ja sentrifugoitiin DNA:n pelletoimiseksi. Tämä menettely toistettiin vielä kaksi kertaa ja pelletti pestiin sitten 15 kerran 70 %:isella etanolilla, jolloin saatiin suurta osaa TPA-geenin 3'-päätä vastaavan cDNAsn puhdas ensimmäinen säie.
cDNAsn ensimmäistä säiettä käytettiin cDNA:n toisen säikeen synteesissä kokonaistilavuudeltaan 100 μ1:η liuok-20 sessa, joka sisälsi 50 mM HEPES-puskuria (pH 6,9), 10 mM MgCl2:a, 2 mM DTT:tä, 70 mM KCl:a, 0,5 mM dATP:tä, dCTPstä, dGTP:tä ja dTTP:tä kutakin. Seokseen lisättiin 20 yksikköä DNA-polymeraasin Klenow-fragmenttia 15 °C:ssa 20 tunnin kuluessa. DNA uutettiin fenolin ja kloroformin seoksella 25 (1:1, v/v) ja saostettiin etanolilla.
Kaksisäikeistä cDNA:ta käsiteltiin Sl-nukleaasilla hiusneularakenteiden poistamiseksi 100 μ1:η kokonaistilavuudessa, joka sisälsi 30 mM NaOAcra (pH 4,5), 0,3 M
NaCl:a, 4,5 mM ZnClsa ja 50 yksikköä Sl-nukleaasia huoneen - 30 lämpötilassa 30 minuutin ajan. Reaktio pysäytettiin lisää mällä EDTA:ta ja 1 M Tris-HCl:a, pH 8,0, loppukonsentraa-tioihin 10 mM ja 0,1 M, vastaavasti. DNA puhdistettiin fenoli-kloroformi-uutolla ja toistamalla etanolisaostus väkevässä suolaliuoksessa edellä kuvattuun tapaan.
35 Puhdistettu kaksisäikeinen cDNA-sekvenssi kloonat- 6 S 9 7 2 3 tiin seuraavasti. Kaksisäikeinen cDNA hännitettiin ensin oligo-dC:llä 100 μ1:η reaktiotilavuudessa, joka sisälsi 60 mM kakodylaattia, 0,14 M Tris-puskuria (pH 7,6), 1 mM di-tiotreitolia, 0,1 mM dCTP:tä ja 0,2 uCi/μΙ (3H)dCTP:tä.
5 Kymmenen mM CoCl2:a lisättiin viimeiseksi loppukonsentraa-tioon 1 mM ja 50 yksikköä terminaalista deoksitransferaasia lisättiin 15 °C:ssa 10 minuutin aikana. Reaktio pysäytettiin lisäämällä EDTAita 10 mM:n ja natriumdodekyy-lisulfaattia 0,1 %:n loppukonsentraatioon ja seos laimen-10 nettiin kaksinkertaiseksi vedellä. Reaktioseos pantiin sitten agaroosigeelielektroforeesiin ja 500 ep:n tai sitä pidemmät cDNA-fragmentit kerättiin geelistä talteen.
Oligo-dC-häntäinen cDNA liitettiin oligo-dG-häntäi-seen Pstlillä linearisoituun pBR322-DNA:hän, 0,5 ml:n ko-15 konaistilavuudessa, joka sisälsi 15 mM Tris-HCl:a (pH
7,5), 150 mM NaClsa ja 1 mM EDTA:ta, 10 minuutin käsittelyllä 65 °C:ssa, sitten 2 tunnin käsittelyllä 42 °C:ssa. Yhdistettyä DNA:ta käytettiin transformoimaan 2,5 ml kompetentteja E. coli (MC1061) -soluja, joita oli esikäsitel-20 ty CaCl2:lla ja pidetty jäädytettyinä. Solujen ja DNA:n seosta pidettiin jäissä 20 minuutin ajan, lämpöshokattiin 7 minuuttia 37 °C:ssa, inkuboitiin sitten 20 tilavuudessa L-lientä 37 °C:ssa 45 minuuttia ja siirrettiin 15 μg/ml tetrasykliiniä sisältäville L-maljoille.
25 Yhdistelmäkloonit siirrettiin nitroselluloosasuoti- mille ja yksi erä suotimia pantiin tetrasykliinimaljoille elävien kloonien varastoksi. Toinen yhdistelmäkloonien replikaatteja sisältävä suodinerä pantiin kloramfenikoli-maljoille 37 °C:seen yön ajaksi plasmidiamplifikaatiota 30 varten. Suotimia käsiteltiin DNA:n saamiseksi esiin. Suotimia esihybridisoitiin 50 % formamidia, 3XSSC:tä, 5X Den-hart'sia, 0,1 % natriumdodekyylisulfaattia ja 100 μg/ml E. colin tRNA:ta sisältävässä liuoksessa 42 °C:ssa 2 tunnin ajan tai kauemmin. TPA:n cDNA-sekvenssin sisältävä 32P-lei-35 mattu koetin lisättiin esihybridisaatioliuokseen ja sen 7 n o n o 7
O ? / z O
annettiin hybridisoitua suotimilla olevan DNA:n kanssa 42 °C:ssa 18 tunnin ajan tai kauemmin. Suotimia pestiin sitten neljä kertaa 3XSSC:ssä, 0,1 %:isessa SDSissä 65 °C:ssa 30 minuutin ajan ja vielä kerran 3XSSC:ssä huoneen 5 lämpötilassa 30 minuutin ajan. Suotimet kuivattiin ilmassa ja asetettiin sitten vahvistussuodattimella varustetulle Kodak XAR-5-röntgenfilmille -70 °C:seen 16 tunniksi.
Kymmenen positiivisiksi oletettua kloonia eristettiin, subkloonattiin ja seulottiin uudelleen edellä kuvat-10 tua menetelmää käyttäen. Ainoastaan ne kloonit, jotka antoivat toistuvasti positiivisia signaaleja, analysoitiin pilkkomalla restriktio-endonukleaasilla. pUPA327:ksi nimetty klooni sisälsi suurimman, 2,15 ke:n cDNA-insertin.
uTPA-cDNA:n 5'-sekvenssin valmistaminen 15 Koska suurimmassakaan cDNA-kloonissa ei ollut ko
konaista uTPAsta koodaavaa sekvenssiä, seuraavaa menettelyä noudatettiin puuttuvan 5'-sekvenssin eristämiseksi. mRNA eristettiin yllä kuvatulla tavalla, paitsi että koko-valintaa ei tehty. cDNA:n ensimmäinen säie syntetisoitiin 20 sitten alukkeenlaajennusmenetelmällä seuraavasti. TPA-cDNA:n 72 ep:n Pstl-fragmentti (nukleotidit 552-624) liitettiin mRNA:hän 100 μ1:η reaktioseoksessa, joka sisälsi 80 % formamidia, 10 mM PIPES-puskuria (pH 6,4), 0,4 M
NaCl:a, 0,25 μς 72 ep:n fragmenttia ja 70 μ9 mRNA: ta. 25 Seosta lämmitettiin 85 °C:seen 5 minuutiksi ja sitä inku-boitiin 50 °C:ssa 20 tunnin ajan hybridin muodostamiseksi. DNA-RNA -hybridi kerättiin talteen laimentamalla puskuri-liuos vedellä kolminkertaiseksi ja saostamalla etanolilla -20 °C:ssa yli yön. mRNA:n liuotus ja saostus toistettiin . 30 vielä kerran kontaminaation poistamiseksi. cDNA:n ensim mäisen säikeen synteesiolosuhteet olivat samat kuin 3'-sekvenssiä syntetisoitaessa, paitsi että oligo-dT jätettiin pois.
cDNA:n toinen säie syntetoitiin käyttäen synteet-35 tistä pentadekameeriä, CTGTGAAGCAATCAT:tä DNA-polymeraasi- _ C) ,Λ Π Λ 7 8 'ί Ζ> / /5 Ι:η Klenow-fragmentin alukkeena (nukleotidit 1-15). Viisisataa ng pentadekameeria liitettiin cDNA:n ensimmäiseen säikeeseen 100 μ1:383 liuosta, joka sisälsi 50 mM HEPES-puskuria (pH 6,9), 10 mM MgCl:a ja 70 mM KCl:a 65 °C:ssa 5 5 minuutin ajan, 60 °C:sta 43 °C:seen 15 minuutin ajan, 43 °Csssa 15 minuutin ajan ja sen jälkeen seosta pidettiin jäissä ennen käyttöä. Kaksisäikeinen cDNA syntetoitiin ja kloonattiin olennaisesti 3'-sekvenssin valmistuksesta yllä annetun kuvauksen mukaan.
10 Maljaviljelyn, seulonnan ja subkloonauksen jälkeen identifioitiin pUPA432:ksi nimetty klooni, joka sisälsi puuttuvan 5'-koodaussekvenssin ja jolla oli yhteistä aluetta klooni pUPA372:n kanssa 60 ep:n verran.
Tävspituisen uTPA-cDNA;n konstruointi 15 Ennen ihmisen kohdun TPAsta koodaavan kokonaisen cDNA-kloonin valmistusta, geenin 5'- ja 3'-osat sekventoi-tiin. Tämä tehtiin analysoimalla klooni pUPA432 (5'-koo-daussekvenssi) ja pUPA372 (3'-koodaussekvenssi) käyttäen Maxam-Gilbertin kemiallisen hajotusmenetelmän ja Sangerin 20 dideoksinukleotidiketjun päätemenetelmän yhdistelmää. Tulokseksi saatu nukleotidisekvenssi on esitetty kuviossa 1.
Sen jälkeen kun geenin sekvenssi oli määritetty, täydellinen cDNA-geeni konstruoitiin kuviossa 2 esitettyyn tapaan. Plasmidia pUPA432 (5'-sekvenssi) digestoitiin en-25 sin yhdistelmällä Bgll-Bglll. 400 ep:n BglI-BglII-frag-mentti eristettiin polyakryyliamidigeelistä ja se digestoitiin edelleen Haelllslla osittain. Tulokseksi saatu BglI-HaeIII-fragmentti (nukleotidit 117-387) puhdistettiin polyakryyliamidigeelielektroforeesilla. Fragmentti Pstl-30 Narl (nukleotidit 321-448) eristettiin yhdistetyllä Pstl-ja Narl-digestiolla ja sitä seuranneella geelielektro-foreesilla. Tätä fragmenttia digestoitiin edelleen HaeIII:lla 61 ep:n Haelll-Narl-fragmentin valmistamiseksi. Sekä Bglll-Haelll- että Haelll-Narl-fragmentit kloonat-35 tiin yhdistetyllä BamHI-Narl-digestiolla linearisoituun 9 -:9723 pBR322:een. Syntyneestä, pUPA-Bglll/Narl:ksi nimetystä kloonista eristettiin Bglll-Narl-fragmentti (nukleotidit 117-448) ja suuremmat BglII-SalI-fragmentit.
Plasmidin pUPA372 Bglll-paikka nukleotidissa 2091 5 muunnettiin Sali-paikaksi digestoimalla plasmidia Bgll:llä, muodostamalla tylpät päät DNA-polymeraasi I:llä, lisäämällä Sali-kytkijöitä ja tuottamalla sitten pUPA-372-Sall kloonaamalla E. colissa. Tätä seurannut pUPA372-Sall:n pilkkominen Narl-Sall-kaksoisdigestiolla tuotti 10 Narl-Sall-fragmentin (nukleotidit 448-2091).
Seuraavaksi rakennettiin kohdun TPA:n cDNA:n joh-tosekvenssi pUPA432:sta poistamalla siitä G-C-häntä ja lisäämällä Sali-kohta. Tämä Sali-kohta lisättiin eristämällä cDNA Pstl-digesteistä, katkaisemalla 5'-kääntymättö-15 män alueen kohdalta SfaNIsllä, muodostamalla tylpät päät DNA-polymeraasi Isllä, lisäämällä Sali-kytkijä, digestoimalla Sallin ja Bglllsn yhdistelmällä ja kloonaamalla BamHI-Sall-kaksoisdigestiolla linearisoidussa pBR322-vek-torissa. Valmistettu kohdun TPA:n alkusekvenssi erotettiin 20 vektorista yhdistetyllä XhoII- ja Sall-digestiolla. Tämä
SalI-BglII-fragmentti (nukleotidit 7-117) silmukoitiin Sall-Bglll-fragmenttiin (nukleotidit 117-2091), joka oli muodostettu yhdistämällä yllä kuvatut Bglll-Narl-, Narl-Sall- ja Bglll-Sall-fragmentit.
25 Ligaation ja transformaation jälkeen täyspituinen kohdun TPA-geeni reunustavine Sall-alueineen kloonattiin pUC9-vektorissa. Tätä pUC9-uTPA-plasmidia käytettiin välittäjänä ekspressiovektorien jatkokonstruoinnissa.
Hiivan ekspressiovektorit 30 On mahdollista valmistaa sellaisia hiivan ekspres- siovektoreita, joissa hiivan promoottori- ja signaalisek-venssi edeltävät kypsää proteiinia koodaavaa uTPA-cDNA-aluetta (ja josta puuttuu uTPA:n signaalialue) tai vaihtoehtoisesti vektorissa voi olla hiivan promoottori-, mut-35 ta ei hiivan signaalialuetta, jolloin uTPA-cDNA koodaa 10 ”723 epäkypsää proteiinia, jossa TPA:n signaalialue on mukana. Toisin sanoen signaalisekvenssi voi olla peräisin joko hiivasta tai uTPAssta. Paitsi että alla kuvatut nimenomaiset vektorit ilmentävät pikemminkin aktiivista uTPA:ta 5 kuin muita proteiineja, ne valmistettiin käyttämällä samanlaisia menetelmiä kuin ne, joita Lemontt et ai. ovat kuvanneet US-patenttihakemuksissa 636 365 ja 629 202, jotka liitetään tähän viitteinä. Siksi ainoastaan vektorien rakenne esitetään, ei niiden konstruoinnin yksityiskohtia. 10 Hiivan signaalin sisältävä vektori
Viitaten kuvioon 3, hiivan ekspressiovektori pYBDT-6 koostuu seuraavista DNA-fragmenteista (alkaen ainoasta BamHI-kohdasta ja siirtyen vastapäivään):
Bam-Bglll, sisältäen hiivan PH05-promoottori- ja 15 signaalisekvenssin ja 9 emäsparia synteettistä DNA:ta, joka koodaa Gly(-6), Ala(-5), Arg(-4), kuten kuviossa 1 on esitetty, tämä fragmentti on pituudeltaan noin 0,6 ke.
Bglll-Sall, sisältäen yllä kuvatun kohtuperäisen TPAsn cDNA:n; tämä fragmentti koodaa kypsää proteiinia ja 20 sisältää lisäksi noin 0,4 ke 3'-kääntymätöntä aluetta; tämä fragmentti on noin 1,975 ke:n pituinen.
SalI-(SalI/XhoI), sisältäen TRPI-"pääte"-alueen, joka alunperin oli TRPI-geenin Hindlll-Bglll-fragmentti; tämä fragmentti on noin 0,240 ke:n pituinen.
25 (SalI/XhoI)-XhoI, sisältäen TRPI-geenin EcoRI-
Bglll-fragmentin.
XhoI-XhoI; tämä on AMPR- ja ORI-alueet sisältävä pBR322-fragmentti; tämä noin 2,1 ke:n fragmentti vastaa karkeasti pBR322-kartan aluetta kohdasta 2246 kohtaan 30 4361.
XhoI-BamHI; tämä fragmentti on 2 mikronin renkaan noin 2,2 ke:n EcoRI-fragmentti, ”B"-muotoa.
TPA-signaalin sisältävä vektori
Viitaten kuvioon 4, hiivan ekspressiovektori 35 pYBDT-10 on identtinen pYBDT-6:n kanssa kahta fragmenttia n 9 7 2 3 lukuunottamatta s 1) BamHI-Bglll-fragmentin sijasta pYBDT-10:ssä on BamHI-Sall, sisältäen PH05-promoottorialueen, johon 3'-in-sertiokohta on Sali-kytketty; tämä fragmentti on noin 0,52 5 ke pitkä.
2) Bglll-Sall-fragmentin sijasta pYBDT-10:ssä on Sali-Sali, joka sisältää epäkypsää proteiinia koodaavan kohdun TPA:n cDNA:n, signaalialue mukaan lukien.
Nisäkässolujen ekspressiovektorit 10 Hiivan ekspressiovektoreiden lisäksi voidaan tehdä nisäkässolujen ekspressiovektoreita ihmisen kohdun TPA:n valmistusta varten. Kuten hiivan ollessa kyseessä, erilaisia lisä-DNA-fragmentteja voidaan käyttää kohdun TPA: n DNA:n kopioinnin ja kääntämisen, samoin kuin isäntäsolun 15 transformaation aikaansaamiseksi.
Nyt kuvataan ne erityiset ekspressiovektorit, joita käytetään valmistettaessa ihmisen kohdun TPA:ta viljellyissä nisäkässoluissa. Kuvattuja vektoreita säilytetään E. colin kannassa RF322 ennen niiden käyttöä isäntä-nisä-20 kässolujen transformoinnissa.
Plasmidi CL2 8-uTPA-BPV
Viitaten kuvioon 5, nisäkässolun ekspressiovektori CL28-uTPA-BPV, jonka uTPA-geeni on hiiren metallotioneii-ni-(MT)promoottorin säätelyn alaisena ja jonka isäntäsolut 25 transformoituvat härän papilloomaviruksella (BPV), konst ruoidaan seuraavasti.
Kaksi lähtöplasmidia ovat pUC9-uTPA (joka sisältää TPA-geenin; kuvattu yllä) ja pCL28-Xho, pCL28:n johdannainen [kuvattu pJYmmT(E):nä Hamerin et ai. artikkelissa, J. 30 Mol. Applied Gen. 1, (1983) 273], josta SV40-DNA on poistettu ja jossa Xhol-restriktiokohta Bglll-kohdan sijasta on lähellä MT-promoottoria.
Plasmidia pUC9-uTPA digestoitiin Sali:11a ja uTPA-geenin sisältävä 2098 ep:n fragmentti insertoitiin CL28-35 Xho:n Xhol-kohtaan, jolloin muodostui pCL28-uTPA, jossa “! 0 7 0 7 12 o 'J / Zö uTPA-geeni on MT-promoottorin ja MT-rakennegeenin välissä.
Seuraavassa vaiheessa koko BPV-genomin sisältävää plasmidia pB2-2 digestoitiin BamHI:llä ja Sall:llä, jolloin saatiin koko BPV-genomin ja alueen pBR322:n DNA:sta 5 sisältävä fragmentti. Tämä fragmentti insertoitiin BamHI-ja Sall-digestiolla linearisoituun pCL28-uTPA:han, jolloin saatiin plasmidi pCL28-uTPA-BPV.
Plasmidi pBMTH-uTPA
Viitaten kuvioon 6, nisäkässolun ekspressiovektori 10 BMTH valmistettiin käyttäen yllä kuvattua CL28-uTPA:ta ja Dean Hamerilta, National Institutes of Health, Bethesda, Maryland, saatua pBMTHI:stä. Plasmidi pBMTHI sisältää MT-rakennegeenin ja MT-promoottorin, jota reunustaa toisella puolella 69 % BPV:n transformointialueesta ja toisella 15 puolella loput 39 % BPVsstä.
pBMTHI:n MT-geenin sisältävä HindIII-fragmentti poistettiin ja korvattiin pCL28-uTPA:n Hindlll-fragmentil-la, joka sisältää uTPA-geenin MT-geenin insertoituna, jolloin saatiin plasmidi pBMTH-uTPA.
20 Plasmidi pCAT
Viitaten kuvioon 7, plasmidi pUPA372 (kohdun TPA-cDNA-plasmidi, joka sisältää uTPA-sekvenssejä 372 ep:stä lähtien ja loppusekvenssin kuten kuviossa 1 on esitetty) katkaistiin BglII:lla ja EcoRI:llä ja liitettiin viruspe-25 räiseen Bcll:llä ja EcoRI:llä pilkottuun SV40-DNA:han. Ligaatioseos kloonattiin pBR322:n EcoRI-kohtaan, jolloin saatiin plasmidi pTPA-A.
uTPA:n kopiointisuunnan muuttamiseksi plasmidi pCL28-uTPA (kuvio 5) katkaistiin HindIII:lla ja liitettiin 30 uudelleen yhteen liuoksen DNA-konsentraation ollessa suu ri. Valikoinnin ja EcoRI ja BamHI-pilkkomisen jälkeen se-lektoitiin yhdistelmäplasmidi pCL28XTH3.
Sekä pTPA-A:ta että pCL28XTH3:a digestoitiin Smal:llä ja BamHI:llä ja liitettiin yhteen, jolloin saa-35 tiin CL28XTH3A, jossa 237 ep:n SV40-DNA-fragmentti korvaa 13 S9723 pCL28XTH3:n 1,5 ke:n metallotioneiinifragmentin. Tässä rakenteessa uTPA:n ilmentyminen riippuu MT-promoottorin käytöstä ja uTPA-geenistä alaspäin (MT-rakennegeenin tultua hävitetyksi) SV40-aikaisista poly-A-signaalisekvensseistä 5 ainoastaan.
Plasmidit pCL28XTH3A ja pB2-2 (kuvattu yllä) katkaistiin BamHIillä ja Sall:llä ja pB2-2:n BPV-DNA inser-toitiin BamHI-Sall-fragmenttina. Tulokseksi saatu rakenne on pCAT.
10 Nisäkässolujen transformointi pCL28-uTPA-BPV- eli pBMTH-uTPA-plasmidi-DNA vietiin hiiren C127-soluihin käyttäen Wiglerin et ai.
(1977), Cell 11, 223, transfektiotekniikan muunnelmaa seuraavasti .
15 5 pg DNA:ta lisättiin 0,5 ml:aan 240 mM CaCl2-liuos- ta, jossa oli 10 pg lohen maidin DNA:ta kantajana. Tämän liuoksen annettiin kuplia yhtä suureen tilavuuteen 2xHBS:ää (280 mM NaCl, 20 mM Hepes-puskuria ja 1,5 mM nat-riumfosfaattia), jonka pH oli 7,1. Kalsiumfosfaatin annet-20 tiin muodostua 30 minuutin ajan huoneen lämpötilassa ja 5 x 105 C127-solua maljattiin 24 tuntia ennen transfek-tiota. Kalsiumfosfaattisaostuman muodostuessa solujen kasvualusta vaihdettiin. Kalsiumfosfaattisaostuma lisättiin soluihin ja seosta inkuboitiin 6-8 h ajan 37 °C:ssa. DNA 25 poistettiin ja soluja käsiteltiin 20 % glyserolia sisältävällä fosfaatilla puskuroidulla suolaliuoksella (PBS), (pH 7), 1-2 minuutin ajan huoneen lämpötilassa. Solut pestiin PBS-liuoksella ja 10 ml Dulbeccon modifioitua mediumia, joka sisälsi 10 % vasikkasikiön seerumia (MA Biologi-30 cals), penisilliiniä/streptomysiiniä ja 10 mM glutamiinia (GIBCO) lisättiin. Alusta vaihdettiin 24 h myöhemmin ja joka 3. - 4. päivä sen jälkeen. Pesäkkeitä voitiin havaita 14-21 päivän kuluttua ja ne eristettiin kloonausrengasme-netelmällä 21 päivän kuluttua. Pesäkkeet hajotettiin ana-35 lyysiä varten.
'\ -λ Π Λ 7 14 ~ ^ / Ζ
Transformoituja soluja viljeltiin konventionaalisia menetelmiä käyttäen ja uTPA korjattiin talteen jatkuvasti viljelyalustasta konventionaalisia menetelmiä käyttäen.
Transformoidut pCL28-uTPA-BPV- eli pBMTH-uTPA 5 -plasmidia sisältävät solut voivat säilyä jopa 60 päivää konfluentissa soluviljelmässä, jos alusta vaihdetaan joka 24. - 28. tunti. Solut kahdentuvat jatkuvasti pullossa tai pyörivässä pullossa ollen kasvuominaisuuksiltaan transformoitujen solujen kaltaisia. Transformoidut C127-solut, 10 jotka sisältävät pCAT-plasmidia, säilyvät soluviljelmässä lyhyemmän ajan, mutta tuottavat uTPA:ta nopeammin.
Voimakkaan, uTPA:n tuotantoa BPV-vektorissa säätelevän metallotioneiinipromoottorin (joka mahdollistaa DNA:n kopioluvun amplifikaation) ja BPVsllä transformoi-15 tujen solujen jatkuvan kasvun ominaisuuksien yhdistelmä tarjoaa optimaalisen systeemin uTPA:n tuotannon laajentamiseen.
Hiivasolujen transformaatio
Isäntä-hiivasolut (Saccharomyces cerevisiae) trans-20 formoitiin käyttäen hiivan ekspressiovektoreita tavallis ten menetelmien mukaan, yleisesti Beggs'in Nature 275 (1978) 104-109, kuvaamaan tapaan. Isäntäsoluissa on trpl-mutaatio, joka aiheuttaa tryptofaaniauksotrofian, kun taas plasmideissa on toiminnallinen TRPI-geeni. Transformantit 25 selektoidaan siten tryptofaaniprototrofeina. Transformoi tuja isäntä-hiivasoluja viljeltiin normaalilla hiivan vil-jelyalustalla käyttäen yleisesti Botsteinin ja Davisin luvussa "Principles and Practice of Recombinant DNA Research with Yeast", teoksessa "The Molecular Biology of 30 the Yeast Saccharomyces: Metabolism and Gene Expression", ss. 607-636, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY 1982, kuvaamaa menetelmää.
Sen sijaan, että isäntä-hiivasolujen transformoin-tiin käytettäisiin rengasplasmideja pYBDT-6 ja pYBDT-10, 35 nämä vektorit voidaan linearisoida ennen transformaatiota r. r *7 f'. 7 15 j / 7 Z 0 käyttäen pBR322-sekvenssin poistavaa XhoI:tä ja käyttää linearisoitua vektoria transformaatioon; rengas muotoutuu uudelleen isäntä-hiivasolussa. Tämän menettelytavan potentiaalisena etuna on kaikkien vektorin kopiolukua mahdolli-5 sesti pienentävien tai muuten uTPAsn ilmentymistä häiritsevien bakteeriperäisten sekvenssien eliminointi.
uTPA:n uutto ia puhdistus kasvualustasta
Hiivan aktiivinen kohdun TPA kerätään talteen uutteista, jotka on valmistettu hajottamalla solut mekaani-10 sesti lasihelmiä käyttäen. Yhdistelmä-nisäkässolujen tuottama aktiivinen kohdun TPA kerätään talteen isäntäsolujen viljelyalustasta. Aktiivisen uTPArn puhdistukseen solu-uutteista tai viljelyalustasta kuuluu yleisesti seuraavat vaiheet: 1) neste-neste-uutto tai alustava suodatusvaihe; 15 2) hydrofobinen affiniteettikromatografia; 3) vasta-aine- affiniteettikromatografia; ja 4) geelisuodatuskromatogra-fia. Yksityiskohtaisemmin nämä vaiheet suoritetaan seuraavasti.
Neste-neste-uutto 20 Ensimmäinen vaihe voi olla neste-neste-uutto tai, edullisemmin, alustava suodatusvaihe. Yleisesti neste-neste-uutto tehdään yhdistämällä viljelyalusta kahden vesiliukoisen polymeeriyhdisteen, esimerkiksi dekstraanin (Dextron) ja polyetyleeniglykolin kanssa, jolloin muodos-25 tuu kaksi kerrosta, joista toinen heitetään pois. (Neste-neste-uutto on tunnettu proteiiniuuttomenetelmä, jota on kuvattu esimerkiksi artikkelissa Johansson et ai., Eur. J. Biochem. 33 (1978) 379-386).
Neste-neste-uuttovaiheessa on edullista laimentaa 30 seerumitonta tai seerumia sisältävää uTPAsta 0,1 %:iin (v/v) saakka sisältävää alustaa Tween 80:llä ja lisätä sitten jauhemaista dekstraania (Dextron) ja loppukonsent-raatioon 4 % (40 g/1).
Dekstraania (Dextron) sekoitetaan, kunnes se liuke-35 nee ja sitten lisätään polyetyleeniglykoli (PEG) 6000:tta s g 7 o i 16 S 1 loppukonsentraatioon 12 % (120 g/1). Liuosta sekoitetaan hyvin ja sentrifugoidaan 200 ml:n pulloissa kierrosnopeu-della 1200 min"1 jäähdytetyssä international-tyyppisessä sentrifugissa 10 minuutin ajan faasien erottamiseksi.
5 Ylempi faasi dekantoidaan ja alempi dekstraanifaasi kerätään. Alkuperäisestä uTPA-aktiivisuudesta saadaan talteen 75 % ja alkuperäisestä proteiinimäärästä noin 40 %. Liuos konsentroituu 6-kertaisesti ja sen tilavuus pienenee yli 50 %. Neste-neste-uuttomenettely on tehokas huolimatta 10 siitä, että mukana on solujätteitä ja kompleksisia kasvutekijöitä, esimerkiksi epidermaalista kasvutekijää, trans-ferriiniä ja insuliinia, joita on usein seerumia sisältävissä kasvualustoissa.
On havaittu, että vaikka edellä kuvattua neste-nes-15 te-uuttovaihetta voidaan käyttää, voidaan myös ilmastoitu väliaine ensin selkeyttää, ennen seuraavaa hydrofobista affiniteettikromatografiavaihetta, yksinkertaisemmalla tavalla viemällä ilmastoitu väliaine 3 mikronin profiili-suotimen läpi. Saadulle kirkkaalle väliaineelle suorite-20 taan sitten, ilman konsentrointivaihetta, hydrofobinen af-finiteettikromatografiakäsittely, kuten seuraavassa esitetään.
Hydrofobinen affiniteettikromatografia Tässä vaiheessa edellä saadussa materiaalissa oleva 25 uTPA sidotaan väriaineeseen, esimerkiksi Trisacrylblue (LKB), Macrosorb Blue tai CM Affi-Gel -blue (Bio-Rad), joka pystyy sitomaan uTPAsn, mutta ei eräitä muita vilje-lyalustan proteiineja. [Affi-Gel-blue-väriainetta on käytetty erilaisessa, ihmisen neuroblastoomasolulinjasta 30 eristetyn plasminogeeniaktivaattorin puhdistusmenetelmässä (NH2 )2S04-saostuksen ja p-aminobentsaminidiini-Sepharose-kromatografiän yhteydessä; Biochim. Biophys. Acta 704 (1980) 450-460).
Tämä vaihe on edullista suorittaa seuraavasti. Jos . 35 ensimmäisessä vaiheessa suoritettiin neste-neste-uutto, 17 "9725 edellisestä vaiheesta saadun dekstraanifaasin tilavuus kaksinkertaistetaan lisäämällä vettä viskositeetin pienentämiseksi. Muuten suodatettua kirkasta väliainetta käytetään ilman laimentamista tai konsentrointia. Viisikymmentä 5 ml fosfaatilla puskuroidulla 0,1 % Tween:iä sisältävällä suolaliuoksella, pH 7,2, tasapainotettua Trisacryl blue (LKB) -matriisia lisätään litraan liuosta. Liuosta sekoitetaan varovasti 4 °C:ssa 2 tunnin ajan ja pestään sitten yhtenä eränä fosfaatilla puskuroidulla suolaliuoksella, 10 joka sisältää 0,1 % Tween:iä, pH 7,2, ja liuoksella, joka sisältää 0,5 M NaCl:a, 0,02 M fosfaattia, 0,01 % Tween:iä, pH 7,2. TPA-pitoinen materiaali kaadetaan sitten geelisuo-datuskolonniin kuormituskertoimen ollessa 50 % ja ajetaan kolonnin läpi lineaarisella nopeudella 85 cm/h. Materiaali 15 eluoidaan Tris-acryl blue-matriisista liuoksella, jossa on 3,0 M KSCN:a, 0,02 M fosfaattia, 0,01 % Tween:iä, pH 7,2.
Liuos konsentroituu tässä vaiheessa nelinkertaisesti edellisiin vaiheisiin verrattuna. Tämä uTPA:n sitominen suoraan dekstraanifaasista mahdollistaa myös nopean suola-20 konsentraation muutoksen ja puhdistaa uTPA:ta.
Yllä esitetyssä eluutiovaiheessa voidaan käyttää 3 M KSCNsn sijasta muita suoloja, esimerkiksi NaCl:a. NaCl-gradientti 0,15:stä 3,0:aan M esimerkiksi puhdistaa paremmin, mutta konsentraation kustannuksella.
25 Kuten yllä on mainittu, Trisacryl blue:n lisäksi voidaan käyttää myös muita matriiseja tässä vaiheessa. Yksi esimerkki on CM Affi-Gel blue (BioRad), joka sitoo uTPAsn yhtä hyvin ja josta uTPA eluoituu samaan tapaan kuin Trisacryl blue-matriisista.
30 Reagenssien konsentraatioita voidaan muunnella yllä esitettyjen kahden puhdistusvaiheen jokaisessa kohdassa. Neste-neste-uuttovaiheessa käytettyjä dekstraani- ja PEG-konsentraatioita voidaan esimerkiksi muuttaa niin, että uTPA-aktiivisuus siirtyy (ylempään) PEG-faasiin (alemman) 35 dekstraanifaasin sijasta; tällöin dekantoitu materiaali ib 89725 säästettäisiin ja alempi faasi heitettäisiin pois.
Affiniteettikromatografia
Seuraavana, pääasiallisena puhdistusvaiheena on kiinteään kantaja-affiniteettikromatografiakolonniin immo-5 bilisoitujen anti-TPA-vasta-aineiden käyttöön perustuva affiniteettikromatografia. Joko polyklonaalisia tai mono-klonaalisia, konventionaalisin menetelmin valmistettuja anti-TPA-vasta-aineita voidaan käyttää.
Affiniteettikromatografiavaihe on edullista tehdä 10 seuraavasti. Trisacryl-matriisista eluoitua materiaalia dialysoidaan 1,0 M NaCl:a, 0,01 % Tween:iä, 0,02 M fosfaattia sisältävää liuosta (pH 7,4) vastaan KSCN:n poistamiseksi. Materiaali steriilisuodatetaan sitten 0,22 mikronin suotimen läpi. Eluantin annetaan sitten kulkea hyvin 15 hitaasti, 4 °C:ssa kaiken eluentin sisältämän uTPA-aktii-visuuden sitomaan pystyvän monoklonaalisen anti-TPA-vasta-aine - Sepharose-matriisin yli (vasta-aine saatiin tri Keld Dano'lta, University Copenhagen, Inst. PathiAnatomy, monoklonaaliset anti-TPA-vasta-aineet on kaupallisesti 20 saatavissa, Bioscott Ltd, Scotland, tai American Diagnos-tica). Vasta-aine liitetään CNBr-aktivoituun Sepharose'en, 5 mg vasta-ainetta/ml hartsia, 100 ml:n pylväässä. Vasta-ainematriisi esitasapainotetaan liuoksessa, joka sisältää 0,1 M Tris-puskuria, 0,1 % Triton X-lOOta, pH 8,0, pestään 25 liuoksella, joka sisältää 1,0 M NaClsa, 0,1 % Triton X-100:a, 0,05 M Tris-puskuria, pH 8,0 ja eluoidaan liuoksella, joka sisältää 3,0 M NH4SCN 0,1 % Triton X-100:a, 0,05 M Tris-puskuria, pH 8,0. (Triton X-100 voidaan viimeisessä vaiheessa korvata Tween-80:lla samanlaisin tuloksin). Elu-30 ointi suoritetaan lineaarisella nopeudella 12 cm/h, jolloin saanto on yli 90 %.
Yhden ml fraktioita kerätään ja pääosa uTPA-aktii-visuudesta eluoituu ensimmäisiin 3seen 4sään kolonnitila-vuuteen.
35 uTPAsta sisältävä materiaali voidaan panna vasta- 19 S9723 aine - Sepharose-matriisiin suolakonsentraation ollessa jopa 1,5 M NaCl:a vaikuttamatta sitomistehokkuuteen. uTPA voidaan eluoida alentamalla pH:ta noin 2,5:een esimerkiksi 0,1 M glysiinillä 3 M NH2SCN:n sijasta, mutta on edullisem-5 paa käyttää NH2SCN:a, koska se mahdollistaa uTPAsn talteenoton pienemmässä tilavuudessa, koska neutralointia ei tarvita. NH2SCN pitää proteiinin lisäksi stabiloivammassa ympäristössä.
Vasta-aine -affiniteetti-vaiheen jälkeen voidaan 10 suorittaa hydrofobinen eli viimeistely-HPLC-vaihe tuotteen puhtausasteen kohottamiseksi yli 97 %:n.
Geelisuodatuskromatoqrafia Tässä vaiheessa poistetaan ne vähäiset suurimole-kyyliset epäpuhtaudet, jotka ovat immunoaffiniteettipyl-15 vään eluaatissa läsnä. Geeliaffiniteettipylväs täytetään Toyopearl TSK :11a ja eluoidaan 0,01 M fosfaatti-1,6 M NH4SCN-liuoksella ja seurataan A280 ja aktiivisuus. Huippuja vastaavat fraktiot analysoidaan edelleen geelielektrofo-reesilla, jonka jälkeen suoritetaan hopeavärjäys. Vali-20 tuille kootuille fraktioille suoritetaan Western blots-analyysi.
Puhdistuksen tarkkailu
Puhdistusta tarkkaillaan koko yllä esitetyn menettelyn ajan seuraavasti. Kunkin vaiheen fraktioista otet-25 tuja näytteitä laimennetaan liuoksella, joka sisältää 0,5 M NaCl:a, 0,01 % Tween:iä, 0,02 M fosfaattia, pH 7,4, ja niiden amidolyyttinen aktiivisuus määritetään S2251-kromo-geenisella substraatilla, joka on kytketty ihmisen plas-minogeeniaktivaattoriin fibrinogeenin mukanaollessa (ku-30 vattu artikkelissa Campbell et ai., Clin. Chem. 28 (1982) 1125-1128). dh20:lla laimennettujen näytteiden adsorbanssi 280 nm:ssa mitattiin. Puhdistusta seurataan myös ei-pel-kistävällä ja pelkistävällä SDS-polyakryyliamidigeelielek-troforeesilla.
35 Vasta-aine - Sepharose-kolonnista talteenotetussa 20 -9723 puhdistetussa uTPA:ssa on havaittavissa alle 3 %:n kontaminaatio SDS-PAGE-elektroforeesissa. Pelkistävissä olosuhteissa havaitaan jonkin verran 2-ketjuista TPA:ta (aktivoitu muoto; yksiketjuinen on edullinen muoto). 2-ketjui-5 sen yhdisteen muodostuminen voidaan estää lisäämällä Apro-tinin'ia puhdistusvaiheissa käytettyihin puskureihin.
Kohdun TPA:n ia kohdun TPA:n cDNA;n karakterisointi
Kuten yllä on mainittu, kuviossa 1 on esitetty kohdun TPAsn cDNA:n nukleotidisekvenssi cDNA:n koodaaman koh-10 dun TPA:n päätellyn aminohapposekvenssin ohella. Alustava preprosekvenssi vastaa aminohappoja -38:sta -l:een. Aminohappoja +1, -3 ja -6 edeltävät pystyviivat kuviossa 1 osoittavat katkeamiskohdat. Mahdolliset glykosylaatiokoh-dat on merkitty "CH0":lla Asn-tähteisiin. Plasmiinin kat-15 kaisukohta (josta yksiketjuinen uTPA muuntuu 2-ketjuisek-si) on osoitettu nuolella. Aktiivisessa keskuksessa sijaitseva seriiniproteaasien säilyvä sekvenssi on alleviivattu.
Kuvio 1 on esitetty yllä mainitussa Goeddelin et 20 ai. eurooppalaisessa patenttihakemuksessa 0 093 619 kuvatun Bowesin melanoomasolujen ja kohdun TPA:n cDNA-nukleo-tidisekvenssien väliset erot. Kohdat, joissa Bowesin DNAssta puuttuu nukleotidi, joka on kohdun cDNA:ssa, on merkitty "X":llä. Kohdat, joissa kohdun cDNA:sta puuttuvat 25 nukleotidit ovat Bowesin DNAsssa, on osoitettu "/":llä, jota seuraavat puuttuvat nukleotidit.
Osittain ia ei lainkaan qlvkosvloidut TPAit
Keksintö koskee, kuten edellä mainittiin, yhdis-telmä-DNA:11a tuotetun ihmisen uTPAsn lisäksi ekspressio-30 vektorin koodaamia TPA-molekyylejä, jotka tuotettuina isäntänisäkässolussa, eivät ole täydellisesti glykosyloi-tuneet.
Kuten kuviossa 8 esitetään, on ihmisen luonnollinen TPA N-glykosyloitu molekyyli kolmessa asparagiiniryhmässä 35 (asemissa 120, 187 ja 451). N-atomin kautta tapahtuvan 2i -9 72 5 glykosylaation signaali on Asn-X-(Ser tai Thr). Glykosy-laation estämiseksi yhdessä tai useammassa asemassa korvataan TPA:ta koodaavan DNA-molekyylin (asparagiinia koodaa-va) AAC- tai AAT-kodoni (glutamiinia koodaavalla) CAA-ko-5 donilla näissä asemissa. Nämä mutanttikohdat (A, B ja C kuviossa 8) muodostettiin, kuten alla kuvataan tarkemmin, in vitro mutageneesilla yhteensopimattomia alukkeita TCGGTGACTGTTCCTTTGAAGTAAATGTTGT, CAACGCGCTGCTTTGCCAGTTGGT-GCA, ja vastaavasti GTAGGCTGACCCTTGGCCCAAAGTAGCA käyttäen. 10 Myös mutantit A+B, A+C ja A+B+C muodostettiin käyt täen mutantin A yksisäikeistä DNA:ta templaattina. Rekombinoivat mutantit B ja C muodostivat mutantin B+C. Näin kaikki seitsemän mahdollista yhdistelmää ei lainkaan tai osittain glykolysoiduista ihmisen TPA-mutanteista on muo-15 dostettu.
Paikkaspesifinen mutageneesi
In vitro paikkaspesifinen mutageneesi suoritettiin käyttäen muunnelmaa Smith et ai.'in, Gene 8 (1979) 81-87, 99-106, kuvaamasta menetelmästä, kuten seuraavassa esite-20 tään.
Edellä kuvatut yhteensopimattomat oligonukleotidi-alukkeet valmistettiin Applied Biosystems automated synt-hesizer-laitteessa tavanomaisia menetelmiä käyttäen.
Ihmisen uTPAsta koodaava DNA kloonattiin faagiin 25 Ml3mpl8 (Pharmacia tai New England Biolabs). Yksisäikeistä faagi-DNA:ta, joka sisältää TPA-säikeen, käytettiin oli-gonukleotidiohjatun mutageneesin templaattina. Jokainen yhteensopimaton oligonukleotidialuke liitettiin templaat-tiin 65 °C:ssa, 10 min ja sen jälkeen huoneen lämpötilassa 30 10 min reaktioseoksessa, jossa oli 20 mM Tris-HCl, pH 7,5, 10 mM MgCl2, 50 mM NaCl, 1 mM ditiotreitolia, 0,2 p-moolia yksisäikeistä mpl8-TPA-DNA:ta, ja 20 p-moolia 5'-fosfory-loitua yhteensopimatonta oligonukleotidia. Reaktioseokseen lisättiin sitten yhtä suuri tilavuus PE-puskuria, jossa 35 oli 30 mM Tris-HCl, pH 7,5, 10 mM MgCl2, 2 mM merkapto- 22 2 ό etanolia, 1 mM dATPrta, dCTPsta, dGTPsta ja dTTPita, sekä 1 mM ATP:ta. Alukkeen pidentäminen suoritettiin lisäämällä 5-10 yksikköä DNA-polymeraasin Klenow-fragmenttia ja 3-4 yksikköä T4-ligaasia ja inkuboimalla 16 °C:ssa yön yli.
5 Reaktioseos laimennettiin ja sitä käytettiin kompe tenttien JMl05-solujen transformointiin. Faagipesäkkeet seulottiin in situ mutageenisella oligonukleotidipesäke-hybridisaatiolla käyttäen 32P-leimattua yhteensopimatonta aluketta haluttujen mutanttien seulomiseksi; menetelmä pe-10 rustuu siihen, että haluttu mutantti vastaa täysin aluketta, kun taas luonnollinen DNA sisältää yhden tai useamman yhteensopimattoman kohdan. Sopivissa hybridisaatio-olosuh-teissa näin ollen yhteensopimattoman alukkeen ja mutantin välinen hybridisaatioaste on suurempi kuin luonnollisen 15 DNA:n ja mutantin, ja tämän eron perusteella halutut mu-tantit valitaan.
Oletetut mutantit eristettiin ja karakterisoitiin restriktioendonukleaasihajotuksella ja DNA-sekventoinnil-la. Halutut mutantit kloonattiin ja ekspressoitiin pCL28-20 BPV -järjestelmällä, jota edellä kuvattiin luonnollisella uTPAslla, poistamalla sopivien Ml3mpl8-TPA-mutanttien replikoiva muoto liittämällä tämä DNA pCL28-BPV-ekspressio-vektoriin ja transformoimalla hiiren C127-soluja vektori-DNA:11a. Transformantit eristettiin ja seulottiin TPA:n 25 muodostuksen suhteen ELISA-analyysiä käyttäen. Suurin osa tuotetusta TPAssta erittyy viljelyalustaan, näin helpottaen puhdistusta.
Osittaisen tai kokonaan puuttuvan glykosylaation vaikutus TPA-molekyylien puoliintumisaikaan määritettiin 30 mittaamalla TPA-molekyylien puoliintumisajat ja vertaamalla ne toisiinsa sekä täydellisesti glykosyloidun TPA: n tunnettuun puoliintumisaikaan.
Puoliintumisajat mitattiin kaniineissa ottamalla niistä verinäytteet injektion jälkeen eri ajankohtina ja 35 mittaamalla läsnäolevan TPA:n aktiivisuus ja määrä käyt- ,·) Γκ f r 7 ° ? / z w 23 täen fibriinilevykoetta ja vastaavasti ELISA-analyysiä. Täydellisesti glykosyloidun TPA:n in vivo puhdistuma maksan kautta kiertäneestä verestä on hyvin nopea; biologinen puoliintumisaika on noin 2 minuuttia (Thromb. Haemostas. 5 46 (1981) 658). Tämän takia TPAsta ei yleensä annostella injektiona vaan suuren määrän infuusiona 3 tunnin kuluessa. Pitempi puoliintumisaika voi sallia injektiokäsittelyn mieluummin kuin infuusiokäsittelyn, koska hyytymän hajottamiseen tarvitaan pienempi määrä.
10 Talletteet
Seuraavat talletukset on tehty kokoelmaan Agricultural Research Culture Collection (NRRL), Peoria, IL, tai kokoelmaan American Type Culture Collection (ATCC), Rockville, MD: 15 pYBDT-6, jota säilytetään E. colissa, NRRL:n talletusnume-ro B-15883, 19.9.1984; pYBDT-10, jota säilytetään E. colissa, NRRL:n talletusnu-mero B-15884, 19.9.1984; pCAT:llä transformoituja hiiren C127-soluja, ATCC:n talle-20 tusnumero CRL8625, 28.9.1984.
Käyttö
Keksinnön mukainen uTPA sekoitetaan farmaseuttisesti hyväksyttävään kantaja-aineeseen, esimerkiksi suolaliuokseen, ja annetaan suun kautta tai suonensisäisesti 25 tai injektoidaan sairaisiin valtimoihin tai sydämeen.
Lääkkeen antotapa on yleispiirteiltään sama, jota käytetään kahta yleisesti käytettyä verihyytymiä hajottavaa entsyymiä, streptokinaasia ja urokinaasia annettaessa.

Claims (8)

  1. 24 g 7 o z
  2. 1. Yhdistelmä-DNA-molekyyli, tunnettu siitä, että se koodaa ihmisen aktiivista kudosplasminogeeni- 5 aktivaattoria (TPA:ta), joka eroaa luonnossa esiintyvästä TPAssta, joka sisältää kuviossa 1 esitetyn aminohapposekvenssin, siinä, että ainakin yksi luonnossa esiintyvän DNA-molekyylin N-atomin välityksellä sidotun glykosylaati-on Asn-X-(Ser tai Thr)-signaalia koodaavan DNA-sekvenssin 10 kuviossa asemassa 114, 181 tai 445 esitetyistä aspara- giinikodoneista on paikkaspesifisellä mutageneesillä korvattu glutamiinikodonilla, joka kodonin korvaus estää gly-kosylaation signaalissa.
  3. 2. Patenttivaatimuksen 1 mukainen yhdistelmä-DNA- 15 molekyyli, tunnettu siitä, että yksi DNA-sekvenssin asparagiinikodoni on korvattu glutamiinikodonilla.
  4. 3. Patenttivaatimuksen 2 mukainen yhdistelmä-DNA-molekyyli, tunnettu siitä, että kaksi DNA-sekvenssin asparagiinikodonia on korvattu glutamiinikodonilla.
  5. 4. Patenttivaatimuksen 3 mukainen yhdistelmä-DNA- molekyyli, tunnettu siitä, että kaikki kolme DNA-sekvenssin asparagiinikodonia on korvattu glutamiinikodonilla.
  6. 5. Menetelmä ihmisen aktiivi-TPA:n tuottamiseksi, 25 josta puuttuu yksi, kaksi tai kaikki kolme ihmisen luonnossa esiintyvän TPA:n N-atomin välityksellä sitoutunutta hiilihydraattiryhmää, tunnettu siitä, että hiiren solu transformoidaan patenttivaatimuksen 1 mukaisella yh-distelmä-DNA-molekyyIillä, hiiren solut viljellään vilje- 30 lyalustassa olosuhteissa, joissa DNA-molekyyli ekspressoi- tuu tuottamaan TPAsta, ja TPA eristetään soluista tai vil-jelyalustasta.
  7. 6. Hiiren solu, tunnettu siitä, että se on transformoitu patenttivaatimuksen 1 mukaisella yhdistelmä-
  8. 35 DNA-molekyyIillä. O c . r\ r~f r> 7 Zb Λ / <£ 3
FI853761A 1984-10-01 1985-09-30 Foerfarande foer framstaellning av vaevnadsplasminogenaktivator, kodande rekombinant-dna daerav och en transformanscell FI89723C (fi)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US65677084A 1984-10-01 1984-10-01
US65677084 1984-10-01

Publications (4)

Publication Number Publication Date
FI853761A0 FI853761A0 (fi) 1985-09-30
FI853761L FI853761L (fi) 1986-04-02
FI89723B FI89723B (fi) 1993-07-30
FI89723C true FI89723C (fi) 1993-11-10

Family

ID=24634490

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
FI853761A FI89723C (fi) 1984-10-01 1985-09-30 Foerfarande foer framstaellning av vaevnadsplasminogenaktivator, kodande rekombinant-dna daerav och en transformanscell

Country Status (14)

Country Link
US (1) US5344773A (fi)
EP (1) EP0178105B1 (fi)
JP (1) JPS61149094A (fi)
AT (1) ATE151111T1 (fi)
AU (1) AU599576B2 (fi)
DE (1) DE3588149T2 (fi)
DK (1) DK175327B1 (fi)
ES (3) ES8702945A1 (fi)
FI (1) FI89723C (fi)
IE (1) IE81135B1 (fi)
NO (1) NO175158C (fi)
NZ (1) NZ213647A (fi)
PT (1) PT81231B (fi)
ZA (1) ZA857574B (fi)

Families Citing this family (35)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0143081B1 (en) * 1983-11-21 1989-08-23 Ciba-Geigy Ag Synthesis of tissue plasminogen activator(tpa) by yeast
US5073494A (en) * 1985-04-22 1991-12-17 Genentech, Inc. Human tissue plasminogen activator substituted at position 275 or at positions 275 and 277
GB8528321D0 (en) * 1985-11-18 1985-12-24 Ciba Geigy Ag Modified fibrinolytic agents
JP2581668B2 (ja) * 1985-11-27 1997-02-12 三井東圧化学株式会社 ヒト正常細胞由来のヒト組織プラスミノ−ゲン活性化因子をコ−ドする新しいdna配列とそれを含むベクタ−及び細胞
AU605124B2 (en) * 1985-12-23 1991-01-10 Behringwerke Aktiengesellschaft Novel peptide plasminogen activators
US5837518A (en) * 1986-01-31 1998-11-17 Genetics Institute, Inc. Thrombolytic proteins
JP2527454B2 (ja) * 1986-01-31 1996-08-21 ジェネティックス・インスチチュ−ト・インコ−ポレ−テッド 新しい血栓溶解タンパク質
US5258298A (en) * 1986-01-31 1993-11-02 Genetics Institute, Inc. Deletion and glycosylation mutant of human tissue plasminogen activator
US5589361A (en) * 1986-03-18 1996-12-31 Genentech, Inc. Human tissue-type plasminogen activator variant
IE81073B1 (en) * 1986-03-18 2000-01-12 Genentech Inc Modified human tissue-type plasminogen activator and its preparation
ATE141646T1 (de) 1986-04-09 1996-09-15 Genzyme Corp Genetisch transformierte tiere, die ein gewünschtes protein in milch absondern
US5047241A (en) * 1986-07-11 1991-09-10 American Home Products Corporation Tris-Kringle plasminogen activator with novel K2 insert
JPH01500563A (ja) * 1986-07-16 1989-03-01 セルテック リミテッド 精製方法
US5580559A (en) * 1986-12-05 1996-12-03 Ciba-Geigy Corporation Hybrid plasminogen activator
US5242819A (en) * 1986-12-05 1993-09-07 Ciba-Geigy Corporation DNA molecules encoding hybrid proteins of tissue plasminogen activator and urokinase
EP0276846A3 (en) * 1987-01-29 1989-07-26 Zymogenetics, Inc. Colony-stimulating factor derivatives
US5376547A (en) * 1987-01-30 1994-12-27 American Home Products Corporation Des-epidermal growth factor plasminogen activators
JPH084501B2 (ja) * 1987-03-20 1996-01-24 エーザイ株式会社 糖鎖に関する変異tPA
EP0292009A1 (en) * 1987-05-22 1988-11-23 Zymogenetics, Inc. Fibrinolytic proteins
AU1668988A (en) * 1987-06-03 1988-12-08 Smithkline Beckman Corporation Purification of tpa
US6682733B1 (en) * 1987-06-18 2004-01-27 Roche Diagnostics, Gmbh Fibrinolytic enzymes
DE3726019A1 (de) * 1987-08-05 1989-02-16 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren zur abtrennung und reinigung von t-pa
US4963357A (en) * 1987-10-09 1990-10-16 Monsanto Company Tissue plasminogen activator modified by the substitution of Arg for Cys at position 73, methods and pharmaceutical compositions therefor
US5100666A (en) * 1987-10-09 1992-03-31 Monsanto Company Modified tissue plasminogen activator K2K2SP
US5244676A (en) * 1987-10-09 1993-09-14 Monsanto Company Modified tissue plasminogen activator with modified glycosylation site
US5037752A (en) * 1987-10-09 1991-08-06 Monsanto Company Modified tissue plasminogen activator substituted at cysteine-73 and lysine-277
US5270198A (en) * 1988-05-20 1993-12-14 Genentech, Inc. DNA molecules encoding variants of tissue plasminogen activators, vectors, and host cells
US5665583A (en) * 1988-08-12 1997-09-09 Arch Dev Corp Methods and materials relating to IMPDH and GMP production
US5714145A (en) * 1988-09-02 1998-02-03 Genentech, Inc. Tissue plasminogen activator having zymogenic or fibrin specific properties
US5262170A (en) * 1988-09-02 1993-11-16 Genentech, Inc. Tissue plasminogen activator having zymogenic or fibrin specific properties and substituted at amino acid positions 296-299, DNA molecules encoding them, vectors, and host cells
US5070021A (en) * 1989-01-10 1991-12-03 Monsanto Company Method of modifying oligosaccharide structure of tissue plasminogen activator
US5268273A (en) * 1990-12-14 1993-12-07 Phillips Petroleum Company Pichia pastoris acid phosphatase gene, gene regions, signal sequence and expression vectors comprising same
AU664469B2 (en) * 1992-06-03 1995-11-16 Genentech Inc. Tissue plasminogen activator glycosylation variants with improved therapeutic properties
US7299805B2 (en) * 2002-06-07 2007-11-27 Marctec, Llc Scaffold and method for implanting cells
EP2948167A4 (en) 2013-01-22 2016-10-19 Univ Tennessee Res Foundation TISSUE CLASMINE ACTIVATOR ANTIBODIES AND METHOD OF USE THEREOF

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4370417A (en) * 1980-04-03 1983-01-25 Abbott Laboratories Recombinant deoxyribonucleic acid which codes for plasminogen activator
US4419446A (en) * 1980-12-31 1983-12-06 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Recombinant DNA process utilizing a papilloma virus DNA as a vector
MX197183A (es) * 1982-05-05 1994-02-28 Genentech Inc Activador de plasminogeno de tejido humano
IL68561A (en) * 1982-05-05 1991-01-31 Genentech Inc Preparation of polypeptide with human tissue plasminogen activator function,processes for making it,and dna and transformed cell intermediates thereof
EP0125254A1 (en) * 1982-10-28 1984-11-21 Beecham Group Plc Enzyme derivatives and their use in the treatment of thrombosis
AU554862B2 (en) * 1982-12-14 1986-09-04 Implico B.V. Plasminogen activator isolated by affinity chromatography
AU572108B2 (en) * 1983-01-19 1988-05-05 Genentech Inc. Human tpa production using vectors coding for dhfr protein
EP0143081B1 (en) * 1983-11-21 1989-08-23 Ciba-Geigy Ag Synthesis of tissue plasminogen activator(tpa) by yeast
US4753879A (en) * 1984-08-27 1988-06-28 Biogen N.V. Modified tissue plasminogen activators
GB8528321D0 (en) * 1985-11-18 1985-12-24 Ciba Geigy Ag Modified fibrinolytic agents
AU605124B2 (en) * 1985-12-23 1991-01-10 Behringwerke Aktiengesellschaft Novel peptide plasminogen activators
IE81073B1 (en) * 1986-03-18 2000-01-12 Genentech Inc Modified human tissue-type plasminogen activator and its preparation

Also Published As

Publication number Publication date
NO853851L (no) 1986-04-02
ES554449A0 (es) 1987-07-01
AU599576B2 (en) 1990-07-26
IE852394L (en) 1986-04-01
NO175158C (no) 1994-09-07
DK441585D0 (da) 1985-09-30
ES8702945A1 (es) 1987-01-16
IE81135B1 (en) 2000-03-22
EP0178105A3 (en) 1988-11-17
NO175158B (no) 1994-05-30
EP0178105B1 (en) 1997-04-02
US5344773A (en) 1994-09-06
AU4814885A (en) 1986-04-10
PT81231B (pt) 1987-10-20
ES547416A0 (es) 1987-01-16
ES8801306A1 (es) 1988-01-01
ZA857574B (en) 1986-06-25
DK175327B1 (da) 2004-08-23
DE3588149T2 (de) 1997-10-09
JPS61149094A (ja) 1986-07-07
ES554450A0 (es) 1988-01-01
NZ213647A (en) 1989-05-29
FI89723B (fi) 1993-07-30
ES8706726A1 (es) 1987-07-01
FI853761A0 (fi) 1985-09-30
ATE151111T1 (de) 1997-04-15
PT81231A (en) 1985-11-01
EP0178105A2 (en) 1986-04-16
DK441585A (da) 1986-04-02
FI853761L (fi) 1986-04-02
DE3588149D1 (de) 1997-05-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
FI89723C (fi) Foerfarande foer framstaellning av vaevnadsplasminogenaktivator, kodande rekombinant-dna daerav och en transformanscell
US5278049A (en) Recombinant molecule encoding human protease nexin
FI104734B (fi) Menetelmä plasminogeenin valmistamiseksi
EP0235162B1 (en) Cdna and gene for human angiogenin (angiogenesis factor) and methods of expression
DE3689386T2 (de) Proteaseresistente Urokinase-Zusammensetzung, deren Herstellung und Verwendung.
WO1986006408A1 (en) HIGH YIElD PRODUCTION OF ACTIVE FACTOR IX
JP2645237B2 (ja) ハイブリッドプラスミノーゲンアクチベータをコードする遺伝子
JPS62111690A (ja) ヒト―プロテインcをコードする遺伝子
WO1989000192A1 (en) Production of kallikrein
US7163817B2 (en) Clot-specific streptokinase proteins possessing altered plasminogen activation characteristics and a process for their preparation
JP2739892B2 (ja) 活性なヒトtpaをコードする組換えdna分子
JPH05506354A (ja) 端が切り取られた軽鎖を有する活性プロテインc
US5242819A (en) DNA molecules encoding hybrid proteins of tissue plasminogen activator and urokinase
US5580559A (en) Hybrid plasminogen activator
Collen et al. K1K2Pu, a recombinant t-PA/u-PA Chimera with increased thrombolytic potency, consisting of amino acids 1 to 3 and 87 to 274 of human tissue-type plasminogen activator (t-PA) and amino acids 138 to 411 of human single chain urokinase-type plasminogen activator (scu-PA). Purification in centigram quantities and conditioning for use in man
JP2518832B2 (ja) 変形された組織プラスミノ−ゲンアクチベ−タ−
AU619803B2 (en) Rearranged tissue plasminogen activators and method for producing same
JPS62289199A (ja) ヒトプロテインs
JPH022338A (ja) 真核細肪中での同時発現
JPH02273179A (ja) 新規な血栓溶解蛋白質,その製造法および該蛋白質からなる医薬
SI8810195A (sl) Hibridni proteini

Legal Events

Date Code Title Description
FG Patent granted

Owner name: GENZYME CORPORATION

BB Publication of examined application
FG Patent granted

Owner name: GENZYME CORPORATION

MA Patent expired