ES2886013T3 - Método para formar una superficie autodescontaminante - Google Patents
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Abstract
Un método para formar una superficie autodescontaminante mediante la formación de un recubrimiento en la superficie de un objeto, en donde dicho recubrimiento se forma mediante la disposición de una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo en combinación con un organosilano en dicha superficie, en donde dicho organosilano es cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio; 3-aminopropiltrihidroxisilano o 3-cloropropiltrihidroxisilano, y en donde dicho recubrimiento se forma mediante la disposición primero en dicha superficie de dicho organosilano seguido de la disposición de una mezcla de dicha solución de ácido peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo sobre dicho organosilano.
Description
DESCRIPCIÓN
Método para formar una superficie autodescontaminante
Campo de la invención
Las modalidades generalmente se refieren a una composición química y un método que usa esa composición para formar una superficie autodescontaminante. En determinadas modalidades, la composición química comprende un fotocatalizador. En determinadas modalidades, el fotocatalizador comprende un residuo de óxido de titanio. En determinadas modalidades, la composición química comprende un organosilano.
Antecedentes de la invención
En una publicación titulada "Evaluation of Two Organosilane Products for Sustained Antimicrobial Activity on High-Touch Surfaces in Patient Rooms, American Journal of Infection Control 42 (2014) 326-8, se informa, entre otras cosas, "[A] lo mejor de nuestro conocimiento, el nuestro es el primer ensayo controlado publicado de la aplicación de compuestos de organosilano a superficies de alto contacto en las habitaciones de los pacientes como una estrategia para reducir el nivel de contaminación microbiana de las superficies ambientales entre limpiezas diarias." Id. en 327. Los autores encontraron que los dos organosilanos no eran efectivos para ningún tipo de eficacia antimicrobiana sostenida. "En conclusión, nuestro estudio no pudo demostrar una actividad antimicrobiana sostenida para ninguno de los productos organosilanos probados cuando se aplicaron a superficies de alto contacto". Id. en 328.
WO 2007/012026 A1 describe un aparato que comprende una capa de alto albedo y una capa autolimpiante. WO 2012/037615 A1 describe un agente antimicrobiano que tiene una molécula de base de silano anclada por enlaces covalentes para anclar el agente a una superficie. JP 2006136782 A describe una composición de fotocatalizador y un miembro de fotocatalizador. JP 2006136782 A describe un miembro de aluminio fotocatalizador. WO 2012/142621 A1 describe una composición y método para formar una superficie autodescontaminante.
Breve descripción de las figuras
La invención se comprenderá mejor a partir de la lectura de la siguiente descripción detallada tomada junto con las figuras en los cuales se usan designadores de referencia similares para designar elementos similares, y en los cuales:
La Figura 1 muestra gráficamente el número de infecciones hospitalarias por C. difficile en la UCI de1Hospital Glendale Memorial desde enero de 2012 hasta febrero de 2014;
La Figura 2 muestra gráficamente el número de infecciones hospitalarias por C. difficile en e1Hospital Glendale Memorial (excluida la UCI) desde enero de 2012 hasta febrero de 2014; y
La Figura 3 ilustra la estación de esterilización 300 de los Solicitantes.
Descripción detallada de las modalidades preferidas
La invención está dirigida a un método de acuerdo con la reivindicación 1. Además, está dirigido a un uso de acuerdo con la reivindicación 5. La invención se describe en modalidades preferidas en la siguiente descripción con referencia a las Figuras, en las cuales números iguales representan elementos iguales o similares. La referencia a lo largo de esta especificación a "una modalidad", "una modalidad", o un lenguaje similar significa que una característica, estructura o característica particular descrita en relación con la modalidad se incluye en al menos una modalidad de la presente invención. Por tanto, las apariencias de las frases "en una modalidad", "en una modalidad" y un lenguaje similar a lo largo de esta especificación pueden, pero no necesariamente, hacer referencia a la misma modalidad.
Las características, estructuras o características descritas de la invención pueden combinarse de cualquier manera adecuada en una o más modalidades. En la siguiente descripción, se enumeran numerosos detalles específicos para proporcionar una comprensión completa de las modalidades de la invención. Un experto en la técnica relevante reconocerá, sin embargo, que la invención puede ponerse en práctica sin uno o más de los detalles específicos, o con otros métodos, componentes, materiales, etc. En otros casos, las estructuras, materiales u operaciones bien conocidos no se muestran o describen en detalle para evitar oscurecer aspectos de la invención.
En ciertas modalidades de la invención, se forma un recubrimiento en la superficie de un objeto, donde ese recubrimiento comprende una pluralidad de enlaces titanio-oxígeno, donde ese recubrimiento se forma mediante la disposición en la superficie una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo (colectivamente "Residuos de Titanio-Oxígeno").
En determinadas modalidades, los Residuos de Oxígeno de Titanio de los Solicitantes comprenden hasta aproximadamente un total de una carga por ciento en peso de la mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol
de anatasa modificado con peroxo. En determinadas modalidades, los Residuos de Oxígeno de Titanio de los Solicitantes comprenden aproximadamente 0,5 por ciento en peso de solución de ácido de peroxotitanio en combinación con aproximadamente 0,5 por ciento en peso de sol de anatasa modificado con peroxo.
Un método para preparar tanto la solución de ácido de peroxotitanio como el sol de anatasa modificado con peroxo se describe en Journal of Sol-Gel Science and Technology, septiembre de 2001, volumen 22, Número 1 a 2, págs.
33 a 40. Esta publicación describe, entre otros, el Esquema de Reacción 1, que se muestra inmediatamente a continuación, que resume el procedimiento sintético tanto para la solución de ácido de peroxotitanio como para el sol de anatasa modificado con peroxo.
En una modalidad del método de los Solicitantes, la formulación de recubrimiento de los Solicitantes comprende una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo. En otra modalidad del método de los Solicitantes, se forma un recubrimiento sobre la superficie de un objeto, donde ese recubrimiento comprende una pluralidad de enlaces titanio-oxígeno en combinación con una pluralidad de enlaces silicio-oxígeno, y donde ese recubrimiento se forma mediante la eliminación de una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo, en combinación con un organosilano en la superficie.
En ciertas modalidades, se forma un recubrimiento que comprende una pluralidad de enlaces titanio-oxígeno en combinación con una pluralidad de enlaces silicio-oxígeno mediante la disposición primero en la superficie un organosilano seguido de la disposición de una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo sobre el organosilano.
En ciertas modalidades, se forma un recubrimiento que comprende una pluralidad de enlaces titanio-oxígeno en combinación con una pluralidad de enlaces silicio-oxígeno al disponer primero una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo en la superficie, seguido de la disposición de un organosilano sobre la mezcla de la solución de ácido de peroxotitanio y solución de anatasa modificada con peroxo.
Se describe un organosilano que comprende organosilano 1
Tanto R1 como R2 pueden ser alquilo. R1 puede ser alquilo y R2 puede ser alquilo con un residuo amino. R1 puede ser alquilo y R2 puede comprender un grupo amonio cuaternario. R1 puede ser alquilo y R2 puede comprender un residuo cloro. R1 puede ser alquilo y R2 puede ser seleccionado del grupo que consiste en -O-CH3 y -O-CH2-CH3.
En determinadas modalidades, el organosilano de los Solicitantes comprende un trihidroxisilano 2. En determinadas modalidades, R2 es alquilo. En otras modalidades, R2 es alquilo con un residuo amino. En otras modalidades más, R2 comprende un grupo amonio cuaternario. En otras modalidades más, comprende un residuo de cloro. El organosilano de acuerdo con la invención se selecciona del grupo que consiste en cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio, no y 3-cloropropiltrihidroxisilano.
El organosilano puede comprender un silanotriol 2, en donde R2 es alquilo. El organosilano puede comprender un silanotriol 2, en donde R2 es alquilo con un residuo amino. El organosilano puede comprender un silanotriol 2, en donde R2 es alquilo con un grupo amonio cuaternario.
Como apreciarán los expertos en la técnica y como se muestra en la Ecuación (1), los ésteres de sililo, tal como el éster de sililo 1, son fácilmente hidrolizables en un silanotriol correspondiente, tal como el silanotriol 2. Incluso la exposición a la humedad atmosférica es suficiente para hidrolizar el éster de sililo 1 en silanotriol 2.
Un silsesquioxano es un compuesto de organosilicio 3. R2 puede ser alquilo. R2 puede ser alquilo con un residuo amino. R2 puede ser alquilo con un residuo de cloro. R2 puede ser alquilo con un grupo amonio cuaternario.
3
En ciertas modalidades, después de la aplicación del silanotriol 2 de los Solicitantes a una superficie dura, es decir, una pared, una puerta, una mesa o una superficie blanda, es decir, ropa de cama, cortinas, cojines de muebles, un recubrimiento resultante dispuesto en la superficie dura/superficie blanda comprende una pluralidad de estructuras de silsesquioxano 3. En ciertas modalidades, después de la aplicación del silanotriol 2 de los Solicitantes en combinación con dióxido de titanio a una superficie dura, es decir, una pared, una puerta, una mesa o una superficie blanda, es decir, ropa de cama, cortinas, cojines de muebles, un recubrimiento resultante dispuesto en la superficie dura/superficie blanda comprende una pluralidad de estructuras de silsesquioxano 3 en combinación con los Residuos de Titanio-Oxígeno de los Solicitantes.
Los siguientes ejemplos se presentan para ilustrar más a los expertos en la técnica cómo hacer y usar la invención. Sin embargo, estos ejemplos no pretenden ser limitaciones del alcance de la invención.
EJEMPLO I
Se realizó un estudio en el Hospital Glendale Memorial and Health Center en Glendale, CA (el "Estudio de1Hospital Glendale Memorial"). El Centro cuenta con una unidad de cuidados intensivos (UCI) de 24 camas. El estudio se realizó entre el 10 de mayo y el 30 de septiembre de 2013.
El estudio del Hospital Glendale Memorial se diseñó para evaluar las propiedades antimicrobianas de la composición y el método de recubrimiento de los Solicitantes, en donde el método empleado utilizó un recubrimiento inicial de organosilano de los Solicitantes seguido de una sobrepulverización de dióxido de titanio. Toda la UCI se sometió al régimen de pulverización de dos etapas para tratar todos los objetos de cada habitación, incluidas las superficies duras (camas, bandejas, barandales, paredes, etc.) y superficies blandas (cortinas, sillas cubiertas de tela y vinilo, telas tejidas, etc.). telas no tejidas, marroquinería). El objetivo del Estudio de1Hospital Glendale Memorial fue evaluar la eficacia antimicrobiana de la composición de recubrimiento de los Solicitantes en una aplicación práctica en un entorno de atención médica.
Cada superficie se recubrió primero por pulverización electrostática a temperatura ambiente mediante el uso de una composición acuosa formada mediante la mezcla de cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxilililpropil amonio 6 al 3,6 por ciento en peso en agua.
Aproximadamente quince (15) minutos después del recubrimiento por pulverización electrostática mediante el uso de la mezcla acuosa de cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6, la mayor parte del agua se había evaporado lo cual dejó un recubrimiento que comprende al menos noventa por ciento en peso (90 % en peso) de cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio_6, a continuación, cada superficie luego se recubrió por pulverización electrostática a temperatura ambiente mediante el uso de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes. Después de aproximadamente 15 minutos, la mayor parte del agua en la segunda deposición por pulverización se había evaporado lo cual dejó un recubrimiento que comprendía al menos el noventa por ciento en peso (90 % en peso) de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes.
Las superficies tratadas se mantuvieron a temperatura ambiente durante la deposición por pulverización del cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6 acuoso, y durante la deposición por pulverización de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes. Ninguno de los objetos tratados se sometió a ningún tratamiento térmico elevado en donde la superficie tratada se calentó a una temperatura superior a aproximadamente la temperatura ambiente durante o después de la finalización del régimen de recubrimiento por pulverización de los Solicitantes.
Los solicitantes han encontrado que mediante el uso de su protocolo de recubrimiento por pulverización de dos etapas descrito anteriormente, después de la evaporación del agua de los Residuos de Óxido de Titanio depositados por pulverización y la evaporación de la porción de agua del cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio acuoso depositado por pulverización, el peso combinado de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes y de cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio dispuesto en una superficie tratada se midió como 1 178 g/m2 (0,76 mg/in2).
Se realizó un muestreo microbiano inicial de varios fómites para evaluar los niveles de bacterias en varias superficies hospitalarias antes de seleccionar los sitios de estudio. Después de la revisión, se seleccionaron 95 sitios para el estudio en la UCI. Cada uno de los noventa y cinco (95) sitios específicos en la UCI fueron seleccionados para muestreo recurrente en las semanas 1, 2, 4, 8 y 15, después de la aplicación de la composición de los Solicitantes. Los sitios seleccionados incluían barandillas de cama, controles de cama, mesas con bandejas y paredes más arriba de los lavabos. También se colectaron muestras de las dos estaciones de enfermería de la UCi y el vestíbulo de espera, incluidos mostradores, teléfonos, teclados de computadora, apoyabrazos de sillas y mesas auxiliares. Todos los artículos móviles se etiquetaron y codificaron discretamente durante el transcurso del estudio para que se pudieran muestrear los mismos objetos.
Cada uno de los sitios se cultivó antes de la aplicación del método de los Solicitantes y en 1 semana (6 a 8 días), 2 semanas (13 a 17 días), 4 semanas (29 a 32 días), 8 semanas (59 a 62 días), 15 semanas (104 a 107 días) después de la aplicación. Algunos objetos se eliminaron y no estaban disponibles para cultivo en algunos de los puntos de tiempo posteriores.
Se tomaron muestras de áreas de 100 cm2 mediante el uso de una barra de esponja que contenía caldo Letheen (3M, St. Paul, MN) para neutralizar cualquier desinfectante residual. Después de la colección, las muestras se colocaron inmediatamente en bolsas de hielo y se enviaron durante la noche a la Universidad de Arizona. Una vez recibido, el caldo se extrajo de la barra de esponja mediante agitación manual, y luego se ensayaron 4 mL de caldo extraído mediante el uso de medios selectivos para el aislamiento de las diversas bacterias. Las muestras se cultivaron para detectar bacterias totales, Clostridium difficile, Staphylococcus aureus resistente a la meticilina (MRSA), enterococcus resistente a la vancomicina (VRE) y Enterobacteriaceae resistente a carbapenemasas (CRE). Los métodos de prueba para cada organismo se presentan en la Tabla 5.
TABLA 5
Organismo Método de cultivo Condiciones de Análisis más extenso incubación
Bacterias totales) Extender el 24 °C durante 5 días
recubrimiento en medio
R2A (BD Diagnostics,
Sparks, MD.
C. difficile Incubación durante 7 Condiciones anaeróbicas Se mezcló una alícuota de días con caldo de a 37 °C durante un 2 mL con cantidades taurocolato de sodio al máximo de 5 días. iguales de etanol absoluto. 0,1 % y cicloserina- Las bacterias se
cefoxina fructosa concentraron por centrifugación y se usaron sedimentos para inocular agar cicloserina-cefoxtina fructosa.
MRSA Agar tripticasa de soja 35 °C durante 24 a 48 Se aislaron colonias B-modificado con 5 % de horas hemolíticas y se
sangre de oveja, subcultivaron en agar de 10 mg/L de colistina y soja con tripticasa sin
25 mg/ácido naladíxico enmiendas y se incubaron mediante el método de a 35 °C durante 24 a 48 placa extendida horas.
CRE Prueba de Hodge 35 °C durante 24 horas
modificada;
Agar Muller Hinton
VRE Agar bilis esculina 37 °C en incubadora de Tinción de Gram, prueba azida CO2 durante 24 a 48 de catalasa
horas
*de un volumen original de 4 mL de eluato en barra de esponja. Se usó un volumen de 0,1 mL de este eluido para cada ensayo.
El número promedio de bacterias totales detectadas por 100 cm2 en todas las ubicaciones y las reducciones porcentuales en el número total de bacterias después del tratamiento se muestran en la Tabla 6.
TABLA 6
Promedio (media aritmética) del número total de bacterias (unidades formadoras de colonias) en 100 cm2 de fómites y reducción porcentual después del tratamiento_____ Línea base* Semanas después del tratamiento
1 2 4 8 15
Número de 95 81 64 64 64 45 Muestras
Número 233064 98 80 43 2247 3320 promedio de
bacteria
% de NA 99,96 99,97 99,98 99,04 98,58
reducción
NA = no aplicable. *= antes del tratamiento
Como puede verse, el número de bacterias fue siempre un 99,9 % menor después del tratamiento durante cuatro semanas, un 99 % después de ocho semanas y todavía casi un 99 % después de 15 semanas.
Además, significativamente el número de sitios que contienen más de 10000 UFC/100 cm2 se redujo del 71,5 % de los sitios antes del tratamiento a cero durante las siguientes ocho semanas y después de incluso 15 semanas solo el 11,1 % de los sitios excedió este número como se muestra en la Tabla 7.
TABLA 7
Porcentaje de unidades formadoras de colonias de bacterias totales por
100 cm1 que excede el valor indicado______________________________________ UPC Línea base* Semanas después del
tratamiento
1 2 4 8 15
>100 71,5 11,1 17,2 12,8 51,2 33,3
>1000 51,5 2,4 1,5 0 17,1 24,4
>10000 25,2 0 0 0 4,6 11,1
*= antes del tratamiento
Se realizó un Análisis de Varianza con remuestreo (ANOVA) para cada etapa entre las concentraciones de la línea base para los fómites muestreados y las concentraciones de intervención para los mismos fómites para determinar diferencias estadísticamente significativas basadas en una región de rechazo del 5 %. En base a los valores p (<0,0005), hubo una diferencia de significación estadística entre las concentraciones de la línea base y las concentraciones de fómites durante las 15 semanas completas del estudio.
El porcentaje de muestras en las cuales se aislaron bacterias resistentes a los antibióticos en los diferentes sitios muestreados se muestra en la Tabla 8.
TABLA 8
Aislamiento de bacterias resistentes a los antibióticos
(porcentaje de sitios positivos)__________________
Línea base*
<c
Semanas después del
tratamiento
1 2 4 8 15
Número 95 81 64 64 64 45
de muestras
VRE 14 0 0 0 1 0
MRSA 7 0 0 0 0 0
CRE 3 0 0 0 0 0
C. diffidle 0 0 0 0 0 0
Porcentaje 25 0 0 0 1,5 0
general
* antes del tratamiento
Se aislaron bacterias resistentes a los antibióticos de todas las áreas de estudio durante el muestreo de la línea base, excepto C. diffidle. VRE fue el organismo aislado con mayor frecuencia.
Antes del tratamiento, se aislaron bacterias resistentes a los antibióticos en el 25 % de los sitios muestreados. Después del tratamiento, no se aislaron bacterias antibióticas hasta la semana 8, cuando se encontró VRE en 1 muestra (de un apoyabrazos de silla) de 64 muestras (1,5 %).
El presente estudio demuestra que el uso del método de los Solicitantes redujo el número de bacterias en los fómites en más del 99 % durante 8 semanas después de un solo tratamiento (Tabla 6).
Los niveles de bacterias se redujeron en un 99,9 % 4 semanas después del tratamiento. Los niveles promedio generales de bacterias nunca volvieron a los observados antes del tratamiento. El número de bacterias aumentó entre 8 y 15 semanas después del tratamiento, pero el recuento bacteriano promedio en todas las superficies tratadas fue todavía menor al 90% después de 15 semanas. No se observaron valores más arriba de 10000 UFC/100 cm2 durante 4 semanas después del tratamiento vs. 25,2% de pretratamiento e incluso después de 15 semanas solo el 11,1 % de los valores superaron esta cantidad.
No se aislaron bacterias resistentes a los antibióticos hasta 8 semanas después del tratamiento, y luego a niveles más bajos que los observados antes del tratamiento (Tabla 8). No se aisló MRSA o CRE incluso después de 15 semanas después del tratamiento y VRE solo después de 8 semanas. No se aisló C. diffidle durante la línea base o después del tratamiento. Sin embargo, C. difficile se aisló en el cribado inicial usado para seleccionar los sitios de muestreo.
En conclusión, se encontró que los efectos antimicrobianos resultantes del uso de la composición y el método de los Solicitantes persistieron durante 15 semanas en la reducción del número total de bacterias y bacterias resistentes a los antibióticos tanto en superficies duras como blandas dentro de una UCI. Las superficies duras incluían superficies de metal desnudas, superficies metálicas pintadas, superficies recubiertas de epoxi, superficies de madera sin pintar, superficies de madera pintadas y vidrio.
La eficacia antimicrobiana de quince semanas demuestra que la composición de los Solicitantes forma un recubrimiento sobre una superficie tratada, donde ese recubrimiento es tanto antiincrustante como antimicrobiano. La composición de los Solicitantes y el recubrimiento resultante formado a partir de la misma pueden generar superficies autodescontaminantes que comprenden propiedades antiincrustantes y antimicrobianas, de esta manera se proporciona una ruta rentable para minimizar la transmisión de enfermedades a través de superficies de alto contacto en aplicaciones sanitarias e industriales.
La Figura 1 muestra gráficamente el número de infecciones hospitalarias por C. difficile en la UCI de1Hospital Glendale Memorial desde enero de 2012 hasta febrero de 2014. La Figura 1 indica que, con la excepción de septiembre de 2013, no hubo infecciones hospitalarias por C. difficile originadas en la UCI durante el período de mayo de 2013 a noviembre de 2013. Por tanto, la Figura 1 muestra que hubo una sola infección hospitalaria por C. difficile originada en la UCI durante el período de seis meses de mayo de 2013 a noviembre de 2013.
La Figura 1 muestra además que, aparte del período de seis meses de mayo de 2013 a noviembre de 2013, no hubo otro período de 6 meses durante los 25 meses de enero de 2012 a febrero de 2014 en donde solo se originó una única infección hospitalaria por C. difficile en la UCI. Todas las superficies de la UCI se trataron como se describe anteriormente durante la primera semana de mayo de 2013 como parte del Estudio de1Hospital Glendale Memorial. La Figura 2 muestra gráficamente el número de infecciones hospitalarias por C. difficile en e1Hospital Glendale Memorial (excluida la UCI) desde enero de 2012 hasta febrero de 2014. La Figura 2 indica que, con excepción de abril de 2013, hubo entre 1 y 8 infecciones hospitalarias por C. difficile cada mes durante el período de 25 meses en áreas hospitalarias fuera de la UCI. Durante el período de mayo de 2013 a noviembre de 2013, la Figura 2 muestra que hubo un total de 20 infecciones hospitalarias por C. difficile originadas fuera de la UCI en e1Hospital Glendale Memorial.
Las Figuras 1 y 2 muestran que, durante el período de mayo de 2013 a noviembre de 2013, se originó una sola infección hospitalaria por C. difficile en la UCI del Hospital Glendale Memorial, y se originaron un total de 20 infecciones hospitalarias por C. difficile fuera de la UCI en el Hospital Glendale Memorial.
Los solicitantes han encontrado que pueden disponer el cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio y los residuos de óxido de titanio de los solicitantes, mediante deposición por pulverización o mediante recubrimiento por inmersión, sobre un apósito antes de usar ese apósito para cubrir una herida. Como apreciarán los expertos en la técnica, un apósito es una compresa o compresa estéril que se aplica a una herida para promover la curación y/o prevenir daños adicionales. Un apósito está diseñado para estar en contacto directo con la herida, a diferencia de un vendaje, que se usa con mayor frecuencia para mantener un apósito en su lugar. En ciertas modalidades, los apósitos para heridas de los Solicitantes incluyen lo siguiente: alginatos y otros apósitos gelificantes de fibras que incluyen cuerdas y láminas, apósitos compuestos, apósitos de espuma con y sin borde adhesivo, gasa con y sin borde adhesivo, hidrocoloides, apósitos absorbentes especiales con y sin bordes adhesivos, películas transparentes, láminas y cuerdas de apósitos de colágeno, láminas de hidrogel con y sin borde adhesivo, tiras de embalaje de algodón, gasa en rollo, cinta de papel, cinta de seda, vendajes de compresión (elásticos, de punto/tejidos), vendajes autoadhesivos (elásticos, sin punto/sin tejido).
EJEMPLO II
El ejemplo comparativo II dispone los componentes de la composición de los Solicitantes sobre una superficie diana en orden inverso. Más específicamente, en este Ejemplo II, los Solicitantes primero disponen los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes sobre la superficie diana, se evapora la porción acuosa de la primera deposición por pulverización y luego disponen el cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6 sobre los Residuos de Óxido de Titanio dispuestos anteriormente.
Las muestras de prueba de este Ejemplo II se prepararon mediante el uso del Procedimiento enumerado inmediatamente a continuación. En determinadas modalidades, las muestras tratadas se almacenaron durante al menos cuatro (4) semanas antes de la inoculación con varios organismos.
La TABLA 9 enumera los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con E. coli. La TABLA 10 enumera los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con MS-2. La TABLA 11 enumera los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con MRSA.
En resumen, las TABLAS 9, 10 y 11, demuestran que la primera disposición de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes sobre una superficie diana seguida por la disposición del cloruro de
octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6 sobre el recubrimiento de residuos de óxido de titanio formado anteriormente genera una superficie autodescontaminante.
Procedimiento
Ponerse guantes esterilizados.
Preparar las muestras de prueba limpiándolas primero con alcohol ISP y dejándolos secar.
Limpiar las muestras de prueba con un limpiador de superficies mediante el uso de un paño de microfibra.
Sostener el pulverizador a unas ocho (8) pulgadas de la superficie a limpiar.
Pulverizar y dejar reposar durante 1 a 3 minutos y limpiar, si el área está extremadamente sucia, dejar que el limpiador repose más tiempo o aplicar una segunda pulverización y limpiar.
Limpiar la superficie con una esponja o paño limpio y húmedo.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Con las manos enguantadas, examinar las muestras para comprobar la consistencia.
Primera Cubierta: aplicación de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes.
Añadir los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes al recipiente del aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana. Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Enjuagar la pistola pulverizadora con agua destilada antes de aplicar los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes (a menos que se use 2 pulverizadores, uno para cada producto).
Segunda Cubierta: aplicación de organosilano
Añadir el cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6 al recipiente del aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana. Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Limpiar la pistola pulverizadora con agua destilada según las especificaciones del fabricante después de cada día de uso.
TABLA 9
TABLA 10
TABLA 11
EJEMPLO III
El Ejemplo Comparativo III dispone simultáneamente una mezcla de organosilano de los Solicitantes y de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes sobre la superficie de una pluralidad de muestras de prueba. Más específicamente, en este Ejemplo III, los Solicitantes disponen simultáneamente de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes y de cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6 sobre una superficie de cada muestra de prueba.
Las muestras de prueba de este Ejemplo III se prepararon mediante el uso del Procedimiento enumerado inmediatamente a continuación. En determinadas modalidades, las muestras tratadas se almacenaron durante al menos cuatro (4) semanas antes de la inoculación con varios organismos.
La TABLA 12 enumera los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con E. coli. La TABLA 13 enumera los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con MS-2. La TABLA 14 enumera los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con MRSA.
En resumen, las TABLAS 12, 13 y 14 demuestran que la disposición simultánea de los Residuos de Titanio-Oxígeno de los Solicitantes y el organosilano de los Solicitantes sobre una superficie diana genera una superficie autodescontaminante.
Procedimiento
Ponerse guantes esterilizados.
Preparar las muestras de prueba limpiándolas primero con alcohol ISP y dejándolos secar.
Limpiar las muestras de prueba con un limpiador de superficies mediante el uso de un paño de microfibra.
Sostener el pulverizador a unas ocho (8) pulgadas de la superficie a limpiar.
Pulverizar y dejar reposar durante 1 a 3 minutos y limpiar, si el área está extremadamente sucia, dejar que el limpiador repose más tiempo o aplicar una segunda pulverización y limpiar.
Limpiar la superficie con una esponja o paño limpio y húmedo.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Con las manos enguantadas, examinar las muestras para comprobar la consistencia.
Preparar la Solución Combinada
En un recipiente medido combinar 50 %
de mezcla acuosa de cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio y mezcla acuosa al 50 % de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes.
Mezclar bien.
Recubrimiento
Añadir la mezcla de [00092] al recipiente aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana. Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Limpiar la pistola pulverizadora con agua destilada según las especificaciones del fabricante después de cada día de uso.
TABLA 12
TABLA 13
TABLA 14
EJEMPLO IV
El Ejemplo IV utiliza (3-aminopropil) trimetoxisilano en agua como el único organosilano. Al ser este el caso, este Ejemplo VI utiliza NO organosilano(s) que comprende(n) un residuo de amonio cuaternario. El (3-aminopropil) trietoxisilano se hidroliza rápidamente a (3-aminopropil)trihidroxisilano) 7 cuando se mezcla con agua.
Las muestras de prueba de este Ejemplo IV se prepararon mediante el uso del Procedimiento enumerado inmediatamente a continuación. En determinadas modalidades, las muestras tratadas se almacenaron durante al menos cuatro (4) semanas antes de la inoculación con varios organismos.
Los solicitantes han encontrado que mediante el uso de su protocolo de recubrimiento por pulverización de dos etapas descrito a continuación, después de la evaporación del agua de los residuos de óxido de titanio depositados por pulverización y la evaporación de la porción de agua del (3-aminopropil)trihidroxisilano) acuoso depositado por pulverización, el peso combinado de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes y de (3-aminopropil)trihidroxisilano) dispuesto en una superficie tratada se midió como 1,22 mg/in2.
Los solicitantes han encontrado que pueden disponer de (3-aminopropil)trihidroxisilano y de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes, mediante deposición por pulverización o mediante recubrimiento por inmersión, sobre un apósito antes de usar ese apósito para cubrir una herida. Como apreciarán los expertos en la técnica, un apósito es una compresa o compresa estéril que se aplica a una herida para promover la curación y/o prevenir daños adicionales. Un apósito está diseñado para estar en contacto directo con la herida, a diferencia de un vendaje, que se usa con mayor frecuencia para mantener un apósito en su lugar. En ciertas modalidades, los apósitos para heridas de los Solicitantes incluyen lo siguiente: alginatos y otros apósitos gelificantes de fibras que incluyen cuerdas y láminas, apósitos compuestos, apósitos de espuma con y sin borde adhesivo, gasa con y sin borde adhesivo, hidrocoloides, apósitos absorbentes especiales con y sin bordes adhesivos, películas transparentes, láminas y cuerdas de apósitos de colágeno, láminas de hidrogel con y sin borde adhesivo, tiras de embalaje de algodón, gasa en rollo, cinta de papel, cinta de seda, vendajes de compresión (elásticos, de punto/tejidos), vendajes autoadhesivos (elásticos, sin punto/sin tejido).
Las TABLAS 15, 16 y 17 enumeran los datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con E. coli. En resumen, las TABLAS 15, 16 y 17 demuestran que la disposición de un recubrimiento de 3-aminopropil)trihidroxisilano sobre una superficie diana y luego la disposición de TiO2 sobre ese recubrimiento de 3-aminopropil)trihidroxisilano genera una superficie autodescontaminante.
Procedimiento
Ponerse guantes esterilizados.
Preparar las muestras de prueba limpiándolas primero con alcohol ISP y dejándolos secar.
Limpiar las muestras de prueba con un limpiador de superficies mediante el uso de un paño de microfibra.
Sostener el pulverizador a unas ocho (8) pulgadas de la superficie a limpiar.
Pulverizar y dejar reposar durante 1-3 minutos y limpiar, si el área está extremadamente sucia, dejar que el limpiador repose más tiempo o aplicar una segunda pulverización y limpiar.
Limpiar la superficie con una esponja o paño limpio y húmedo.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Con las manos enguantadas, examinar las muestras para comprobar la consistencia.
Preparar la dilución para el (3-aminopropil)trietoxisilano
Preparar una solución al 10% de 3-aminopropil)trietoxisilano en metanol (MeOH) (10 mL de silano en 100 mL de MeOH).
Preparar trietanolamina como una solución al 10 % en MeOH.
Combinar la solución de trietanolamina y la solución de 3-aminopropil)trietoxisilano en una proporción de 1:1 en una placa de agitación a temperatura ambiente (es decir, 100 mL de solución de trietanolamina añadida a 100 mL de solución de 3-aminopropil)trietoxisilano.
Primera Cubierta: aplicación de (3-aminopropil)trietoxisilano
Añadir la mezcla de [000116] al recipiente aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana. Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Enjuagar la pistola pulverizadora con agua destilada antes de aplicar los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes (a menos que se use 2 pulverizadores, uno para cada producto).
Segunda Cubierta: aplicación de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes.
Añadir los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes al recipiente del aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana. Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Limpiar la pistola pulverizadora con agua destilada según las especificaciones del fabricante después de cada día de uso.
TABLA 15
TABLA 16
TABLA 17
EJEMPLO V
El Ejemplo V mezcla (3-cloropropil)trimetoxisilano en agua. El (3-doropropil)trimetoxisilano se hidroliza inmediatamente a (3-doropropN)trihidroxisilano 8 cuando se mezcla con agua.
Al ser este el caso, este Ejemplo V utiliza NO organosilano(s) que comprende(n) un residuo de amonio cuaternario. Además, este Ejemplo VII utiliza NO organosilano(s) que comprende(n) un residuo amino.
Las muestras de prueba de este Ejemplo V se prepararon mediante el uso del Procedimiento que se enumera inmediatamente a continuación. En determinadas modalidades, las muestras tratadas se almacenaron durante al menos cuatro (4) semanas antes de la inoculación con varios organismos.
Los solicitantes han encontrado que pueden disponer de (3-cloropropil)trihidroxisilano y de los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes, mediante deposición por pulverización o mediante recubrimiento por inmersión, sobre un apósito antes de usar ese apósito para cubrir una herida. Como apreciarán los expertos en la técnica, un apósito es una compresa o compresa estéril que se aplica a una herida para promover la curación y/o prevenir daños adicionales. Un apósito está diseñado para estar en contacto directo con la herida, a diferencia de un vendaje, que se usa con mayor frecuencia para mantener un apósito en su lugar. En ciertas modalidades, los apósitos para heridas de los Solicitantes incluyen lo siguiente: alginatos y otros apósitos gelificantes de fibras que incluyen cuerdas y láminas, apósitos compuestos, apósitos de espuma con y sin borde adhesivo, gasa con y sin borde adhesivo, hidrocoloides, apósitos absorbentes especiales con y sin bordes adhesivos, películas transparentes, láminas y cuerdas de apósitos de colágeno, láminas de hidrogel con y sin borde adhesivo, tiras de embalaje de algodón, gasa en rollo, cinta de papel, cinta de seda, vendajes de compresión (elásticos, de punto/tejidos), vendajes autoadhesivos (elásticos, sin punto/sin tejido).
Las TABLAS 18, 19 y 20 enumeran datos de eficacia para las muestras tratadas después de la inoculación con E. coli. En resumen, las TABLAS 18, 19 y 20 demuestran que la disposición de un recubrimiento de (3-cloropropil)trihidroxisilano en una superficie diana seguida de la disposición de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes sobre el recubrimiento de (3-cloropropil)trihidroxisilano genera una superficie autodescontaminante. Procedimiento
Ponerse guantes esterilizados.
Preparar las muestras de prueba limpiándolas primero con alcohol ISP y dejándolos secar.
Limpiar las muestras de prueba con un limpiador de superficies mediante el uso de un paño de microfibra.
Sostener el pulverizador a unos 20,3 cm (ocho (8) pulgadas) de la superficie a limpiar.
Pulverizar y dejar reposar durante 1 a 3 minutos y limpiar, si el área está extremadamente sucia, dejar que el limpiador repose más tiempo o aplicar una segunda pulverización y limpiar.
Limpiar la superficie con una esponja o paño limpio y húmedo.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Con las manos enguantadas, examinar las muestras para comprobar la consistencia.
Preparar una Dilución de Organosilano para el (3-cloropropil)trimetoxisilano
Preparar una solución al 10% de (3-cloropropil)trimetoxisilano en metanol (MeOH) (10 mL Silano en 100 mL. MeOH).
Preparar la solución de trietanolamina como una solución al 10 % en MeOH.
Combinar la solución de trietanolamina y la solución de (3-cloropropil)trimetoxisilano en una proporción de 1:1 en una placa de agitación a temperatura ambiente (es decir, 100 mL de tretanolamina añadidos a 100 mL. (3-cloropropil)trimetoxisilano).
Primera Cubierta: aplicación de (3-cloropropil)trimetoxisilano
Añadir la mezcla de [000149] al recipiente del aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana.
Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Enjuagar la pistola pulverizadora con agua destilada antes de aplicar los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes (a menos que se use 2 pulverizadores, uno para cada producto).
Segunda Cubierta: aplicación de Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes.
Añadir los Residuos de Óxido de Titanio de los Solicitantes al recipiente del aplicador.
Sujetar firmemente el conjunto de manguera de líquido/tapa de botella en el recipiente.
Conectar la manguera de aire del compresor a la conexión de aire del aplicador de pulverización.
Conectar la manguera de líquido a la conexión de líquido en el aplicador de pulverización.
Enchufar el cable de alimentación en un receptáculo apropiado. Encender el compresor de aire.
La distancia de pulverización óptima es de al menos 91,4 a 121,9 cm (36 a 48 pulgadas) de la superficie diana. Sostener la pistola pulverizadora en ángulo recto con la superficie diana y pulverizar.
La superficie diana apenas debe brillar con la pulverización. No sobresaturar la superficie.
Dejar que la superficie se seque por completo.
Limpiar la pistola pulverizadora con agua destilada según las especificaciones del fabricante después de cada día de uso.
TABLA 18
TABLA 19
TABLA 20
EJEMPLO VI
El Ejemplo Comparativo VI utiliza tres (3) formulaciones de recubrimiento sin ningún compuesto que contenga óxido de titanio. Una primera de las tres formulaciones de recubrimiento identificadas en este Ejemplo VI como ABS 2015E utiliza cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio 6 como el organosilano. Una segunda de las tres formulaciones de recubrimiento identificadas en este Ejemplo VI como ABS 2020E utiliza (3-aminopropil)trihidroxisilano) 7 como el organosilano. Un tercera de las tres formulaciones de recubrimiento identificadas en este Ejemplo VI como ABS 2030E utiliza (3-cloropropil)trihidroxisilano) 8 como el organosilano. En este Ejemplo VI se utilizó el método del Ejemplo IV del Párrafo [000105] hasta el Párrafo [000124] relativo a la deposición por pulverización de un silano sobre muestras de prueba. En este Ejemplo VI no se utilizó el método del Párrafo [000125] hasta e incluido el Párrafo [000134] relativo a la deposición por pulverización de los Residuos de Oxígeno de Titanio.
Tabla 21
UFC/mL
TABLA 22
Reducción Logarítmica
TABLA 23
Reducción Porcentual
La TABLA 21 enumera datos de UFC/mL para cada una de las tres formulaciones de recubrimiento, en donde cada formulación no incluía uno o más residuos de óxido de titanio. La TABLA 22 enumera los datos de Reducción Logarítmica para las tres formulaciones evaluadas, en las que cada formulación no incluía uno o más residuos de óxido de titanio. La TABLA 23 enumera los datos de Porcentaje de Reducción para las tres formulaciones utilizadas, en las que cada formulación no incluía uno o más residuos de óxido de titanio.
En las formulaciones de recubrimiento ABS 2015E, 2020E y 2030E, en dependencia de la estequiometría de la mezcla de trietanolamina y el organosilano, se forma una o especies poliméricas sobre una superficie tratada. En determinadas modalidades, y como se muestra en el Esquema de Reacción 2, la trietanolamina 9 y el organosilano 1 reaccionan para formar un polímero lineal 10.
En otras modalidades, y como se muestra en el Esquema de Reacción 3, la trietanolamina 9 y el organosilano 1 reaccionan para formar un polímero ramificado 11
ESQUEMA DE REACCIÓN 3
En otras modalidades, y como se muestra en el Esquema de Reacción 4, la trietanolamina 9 y el organosilano 1 reaccionan para formar un polímero reticulado 12.
En determinadas modalidades, el organosilano de los Solicitantes comprende tetraetilortosilicato 13. En determinadas modalidades y como se muestra en el Esquema de Reacción 5 y en dependencia de la estequiometría de los materiales de partida 9 y 13, el material polimérico reticulado 14 de los solicitantes se forma por reacción de tetraetilortosilicato 13 y trietanolamina 9. El esquema de Reacción 5 ilustra un único átomo de Si que tiene cuatro (4) cadenas de polímero diferentes que se originan a partir del mismo. Los expertos en la técnica apreciarán que el material polimérico reticulado 14 de los Solicitantes comprende una densidad de reticulación muy alta.
En determinadas modalidades y como se muestra en el Esquema de Reacción 6 y en dependencia de la estequiometría de los materiales de partida 15 y 13, el material polimérico reticulado 16 de los Solicitantes se forma por reacción de tetraetilortosilicato 13 y dietanolamina 13. El Esquema de Reacción 6 ilustra un único átomo de Si que tiene cuatro (4) cadenas de polímero diferentes que se originan a partir del mismo. Los expertos en la técnica apreciarán que el material polimérico reticulado 16 de los Solicitantes comprende una densidad de reticulación muy alta.
ESQUEMA DE REACCIÓN 6
EJEMPLO VII
Se recubrieron portadores de acero inoxidable con las soluciones que contienen 7,5 % de uno de los tres diferentes 16 compuestos de colina en H20, en donde R3 se selecciona del grupo que consiste en -H y -CO-CH3. Las colinas usadas incluyeron cloruro de colina, bitartrato de colina y cloruro de acetilcolina. Los portadores se recubrieron sumergiéndolos en una solución mediante el uso de fórceps y dejándolos secar por goteo durante la noche. Los portadores todavía no estaban completamente secos incluso después de 24 horas de tiempo de secado. Se añadieron a cada portador veinte (20) microlitros de cultivos 0/N de E. coli 25592 (cultivado a 37 °C durante 18 horas). Después de la inoculación de los portadores, los portadores se frotaron con caldo neutralizante D/E y se procesaron durante el punto de tiempo de la hora cero. Esto se repitió para los puntos de tiempo terrestres de 4 horas.
Las muestras colectadas se diluyeron luego en PBS y se sembraron 100 microlitros en placas de TSA y se dejaron durante toda la noche a 37 °C antes de contar y calcular la UFC/mL. Todos los portadores se probaron por duplicado y se realizaron dos experimentos (A y B en las tablas de datos) en conjunto. Todos los datos se representan como la media /- el SEM (error estándar) cuando corresponde.
Cuando se calculó en relación con el control cronometrado, el bitartrato de colina mostró la mayor destrucción en la superficie, con una reducción logarítmica de 2,39 en bacterias. El cloruro de acetilcolina y el cloruro de colina mostraron una reducción logarítmica de 1,85 y 1,40, respectivamente. Cuando se comparan con los resultados de las soluciones acuosas de aminopropil trietoxisilano (APTES) y las colinas a la misma concentración, está claro que estas soluciones son mucho más antimicrobianas que las colinas por sí solas. APTES cloruro de colina y APTES bitartrato de colina mostraron una reducción logarítmica de 3,36 y 3,38, respectivamente, en el punto de tiempo de 1 hora.
La TABLA 24 enumera los datos de eficacia antimicrobiana para las formulaciones de colina descritas más arriba en el momento To, es decir, inmediatamente después de la inoculación. La TABLA 25 enumera los datos antimicrobianos una (1) hora después de la inoculación.
TABLA 24
TABLA 25
Se recubrieron portadores de acero inoxidable con soluciones que contenían 7,5 % de cada compuesto de colina y 5 % aminopropiltrietoxisilano en H20 (ABS-2040 contiene cloruro de colina, mientras ABS-2041 contiene bitartrato de colina). Los portadores se recubrieron mediante el uso de un pulverizador electrostático y luego se dejaron secar. Los portadores todavía no estaban
completamente secos incluso después de 2 días de tiempo de secado. Se añadieron a cada portador veinte (20) microlitros de cultivos de E. coli cultivados a 37 °C durante 18 horas). Después de la inoculación de los portadores, los portadores se limpiaron con caldo neutralizante y se procesaron durante el punto de tiempo de la hora cero. Esto se repitió durante el punto de tiempo de 1 hora.
Las muestras colectadas se diluyeron luego en PBS y se sembraron 100 microlitros en placas de TSA y se dejaron 0/N a 37 °C antes de contar y calcular la UFC/mL. Todos los portadores se probaron por duplicado y se realizaron dos experimentos (A y B en la tabla de datos) en conjunto. Todos los datos se representan como la media /- el SEM (error estándar) cuando corresponde. Vale la pena señalar que las colonias en las placas de bitartrato de colina eran significativamente más pequeñas que las otras.
La Tabla 26 enumera los datos de eficacia antimicrobiana en el momento To, es decir, inmediatamente después de la inoculación. La TABLA 27 enumera los datos antimicrobianos una (1) hora después de la inoculación. La TABLA 28 enumera los datos antimicrobianos cuatro (4) horas después de la inoculación.
TABLA 26
TABLA 27
TABLA 28
Se recubrieron portadores de acero inoxidable con soluciones que contienen 15 % de cada compuesto de colina y 5 % de aminopropiltrietoxisilano en H2O (ABS-2040 contiene cloruro de colina, mientras que ABS-2041 contiene bitartrato de colina). Los portadores se recubrieron mediante el uso de un pulverizador electrostático y luego se dejaron secar. Los portadores todavía no estaban completamente secos incluso después de 2 días de tiempo de secado. Se añadieron a cada portador 20 microlitros de cultivos de E. coli 25592 cultivados a 37 °C durante 18 horas. Después de la inoculación de los portadores, los portadores se frotaron con caldo neutralizante D/E y se procesaron durante el punto de tiempo de la hora cero. Esto se repitió para los puntos de tiempo terrestres de 4 horas.
Las muestras colectadas se diluyeron luego en PBS y se sembraron 100 microlitros en placas de TSA y se dejaron 0/N a 37 °C antes de contar y calcular la UFC/mL. Todos los portadores se probaron por duplicado y se realizaron dos experimentos (A y B en la tabla de datos) en conjunto. Todos los datos se representan como la media /- el SEM (error estándar) cuando corresponde.
La Tabla 29 enumera los datos de eficacia antimicrobiana en el momento To, es decir, inmediatamente después de la inoculación. La TABLA 30 enumera los datos antimicrobianos una (1) hora después de la inoculación. La TABLA 31 enumera los datos antimicrobianos cuatro (4) horas después de la inoculación.
TABLA 29
TABLA 30
TABLA 31
Con referencia ahora a la Figura 3, la estación de esterilización 300 de los Solicitantes comprende un conjunto de paso que tiene dos lados opuestos 310 y 320 que están unidos por la parte superior 330. En la modalidad ilustrada de la Figura 3, el lado 310 comprende una pluralidad de emisores de luz UV 311, 312, 313, 314, 315, 316 y 317, donde esa pluralidad de emisores de UV está orientada hacia el interior, es decir, la parte del espacio para caminar, de la estación de esterilización 300. En otras modalidades, la estación de esterilización 300 de los Solicitantes comprende menos de siete (7) emisores de UV por lado. En otras modalidades más, la estación de esterilización de los Solicitantes comprende más de siete (7) emisores de UV por lado.
El lado 320 está formado de manera similar para incluir una pluralidad de emisores de UV, donde cada uno de esos emisores de UV está orientado hacia el interior, es decir, la parte del espacio para caminar, de la estación de esterilización 300. La pluralidad de emisores de UV dispuestos en la parte interior del lado 310 tiene una relación de enfrentamiento con la pluralidad de emisores de UV dispuestos en la parte interior del lado 320.
Además, en la modalidad ilustrada de la Figura 3, la parte superior 330 comprende una pluralidad de emisores de UV, es decir, emisores de UV 332 y 334, donde esos emisores de UV están orientados hacia abajo. En otras modalidades, la parte superior 330 comprende más de dos (2) emisores de UV.
La modalidad ilustrada de la Figura 3 muestra a un médico que camina a través de la estación de esterilización 300. El médico lleva un traje médico, cuyas diversas piezas se han recubierto en la superficie exterior con la composición de recubrimiento de los Solicitantes. Cuando el médico camina por la estación de esterilización 300, la pluralidad de emisores de UV dispuestos en los lados 310 y 320, y la pluralidad de emisores de UV dispuestos en la parte superior 330, se activan de esta manera lo cual maximiza el efecto fotocatalítico del recubrimiento de los Solicitantes. La mejora de la actividad fotocatalítica del recubrimiento maximiza la producción de especies de oxígeno atómico de alta energía en la superficie de las piezas del traje de limpieza, de esta manera, se esterilizan eficazmente las superficies exteriores de todos los artículos de la ropa de limpieza.
Claims (8)
1. Un método para formar una superficie autodescontaminante mediante la formación de un recubrimiento en la superficie de un objeto, en donde dicho recubrimiento se forma mediante la disposición de una mezcla de solución de ácido de peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo en combinación con un organosilano en dicha superficie, en donde dicho organosilano es cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio; 3-aminopropiltrihidroxisilano o 3-cloropropiltrihidroxisilano, y en donde dicho recubrimiento se forma mediante la disposición primero en dicha superficie de dicho organosilano seguido de la disposición de una mezcla de dicha solución de ácido peroxotitanio y sol de anatasa modificado con peroxo sobre dicho organosilano.
2. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en donde el organosilano es (3-aminopropil)trihidroxisilano.
3. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en donde el organosilano es (3-cloropropil)trihidroxisilano.
4. El método de acuerdo con la reivindicación 1, en donde la superficie se recubre por pulverización electrostática a temperatura ambiente y el organosilano es cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio.
5. Uso de un recubrimiento formado en una superficie hospitalaria por el método de acuerdo con la reivindicación 1 para mantener una reducción del 99,9 % de las bacterias totales en dicha superficie hospitalaria durante un máximo de 4 semanas, o para mantener una reducción del 99 % de las bacterias totales en dicha superficie hospitalaria durante un máximo de 8 semanas, en donde el organosilano es cloruro de octadecilaminodimetiltrihidroxisililpropil amonio.
6. Uso de un recubrimiento formado en una superficie por el método de la reivindicación 2 para reducir una inoculación inicial de E. coli en dicha superficie en más del 99,9986 % después de un tiempo de contacto de 1 hora en dicha superficie, o para reducir una inoculación inicial de E. coli en dicha superficie en más del 99,987 % después de un tiempo de contacto de 4 horas en dicha superficie.
7. Uso de un recubrimiento formado en una superficie por el método de la reivindicación 3 para reducir una inoculación inicial de E. coli en dicha superficie en un 99,994 % después de un tiempo de contacto de 1 hora en dicha superficie, o para reducir una inoculación inicial de E. coli en dicha superficie en más del 99,987 % después de un tiempo de contacto de 4 horas en dicha superficie.
8. El uso de la reivindicación 5, en donde dicha superficie hospitalaria comprende una superficie de metal desnuda, una superficie de metal pintada, una superficie recubierta con epoxi, una superficie de madera sin pintar, una superficie de madera pintada o una superficie de vidrio.
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