ES2652615T3 - Soporte de biopsia seccionable de micrótomo para orientar muestras de tejido - Google Patents

Abstract

Un dispositivo histológico de soporte de muestras de tejido, para orientar y retener muestras de tejido durante su procesamiento, imbibición y seccionamiento con un micrótomo, que comprende un estuche para tejido, incluyendo el estuche para tejido una pared inferior perforada y al menos una pared lateral perforada, para definir un espacio de recepción de muestras de tejido, estando formado el estuche por un material que pueda seccionarse exitosamente con un micrótomo y que sea resistente a la degradación por los disolventes y productos químicos que se utilizan para fijar, procesar y teñir tejido, incluyendo el estuche para tejidos un primer y segundo canales alargados (130a) para recibir al menos una muestra (100) de tejido, estando separados el primer y segundo canales (130a) entre sí por una estructura de separación, estando conectada la estructura de separación con la pared inferior y extendiéndose hacia arriba desde la misma, e incluyendo un elemento de anclaje que incluye una superficie orientada hacia la pared inferior para anclar la estructura de separación en un material de imbibición, durante un proceso de seccionamiento con micrótomo, y estando configurada la estructura de desviación de muestras de tejido para extenderse hacia dentro del primer y segundo canales (103a), para retener la muestra o muestras de tejido contra la pared inferior durante el procesamiento y la imbibición, pudiendo adicionalmente seccionarse exitosamente con el micrótomo la estructura de desviación de muestras de tejido, caracterizado por que el dispositivo comprende adicionalmente unas uñas (140, 142) en lados opuestos del primer y segundo canales (130a), para sujetar la muestra o muestras de tejido en una orientación deseada.

Description

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tejido.

La Fig. 28 es una vista en perspectiva superior de un estuche susceptible de ser seccionamiento con micrótomo, que sujeta un dispositivo de orientación de tejido construido de acuerdo con otra realización.

5 La Fig. 29 es una vista en perspectiva superior de un estuche susceptible de ser seccionamiento con micrótomo, que sujeta un dispositivo de orientación de tejido construido de acuerdo con otra realización.

Descripción detallada de las realizaciones ilustrativas

La realización de las Figs. 15 y 16 está de acuerdo con la invención.

Las diversas realizaciones de estuches para tejido, soportes o dispositivos de orientación resultan especialmente útiles cuando los histotécnicos trabajan con muestras especialmente pequeñas y delicadas, para las cuales es 15 importante una orientación precisa durante el proceso de histopatología. Un tipo de biopsia que presenta tales requisitos es una biopsia con aguja. Debido a que las biopsias con aguja son mucho menos invasivas que las obtenidas mediante cirugía, y que proporcionan un diagnóstico prematuro de la enfermedad, se han vuelto extremadamente populares en la medicina actual. Una parte importante de las biopsias de diagnóstico se efectúa con un dispositivo de biopsia con aguja. Debido a que las agujas pueden ser largas y delgadas, puede llegarse a muchos de los órganos o patología corporales a través de procedimientos percutáneos guiados por radiografía. Las biopsias cilíndricas con aguja son parte rutinaria de los procedimientos de diagnóstico de la próstata, el cuello uterino, el hígado y el tiroides, por ejemplo. Tales dispositivos están construidos para cortar y retener una muestra cilíndrica, dentro del taladro interior de la aguja metálica hueca. Posteriormente se expulsa la muestra cilíndrica, y se coloca en formalina para su transporte al laboratorio. Dado que las muestras son muy largas y delgadas, tienden a

25 curvarse y a doblarse cuando se fijan en la solución de formalina. Si no se sujetan adecuadamente estas biopsias largas y serpenteantes, de manera que queden planas contra la parte inferior del soporte de tejido antes del seccionamiento, ciertas porciones pequeñas de la biopsia podrían pasar inadvertidas en el portaobjetos de diagnóstico final, dado que pueden quedar situadas en el bloque de parafina por encima del área seccionada.

Los dispositivos de biopsia cilíndrica están diseñados comúnmente para una aguja de calibre 16. Utilizando un tubo hipodérmico inoxidable de pared ultrafina, el diámetro interior de un calibre estándar 16 producirá un corte de muestra de 1,4 mm de diámetro. Si bien se anticipa que las muestras serán más pequeñas y con un mayor diámetro, este es, en promedio, uno de los tamaños de muestra de biopsia cilíndrica que más se utilizan. Las biopsias cilíndricas extremadamente pequeñas, como las inferiores a 0,50 mm, pueden requerir una manipulación especial y

35 el uso de un material celular resiliente, para sujetar las muestras de tejido contra el plano de sección inferior del estuche.

Las Figs. 1 y 2 ilustran en general un conjunto 10, que comprende un estuche 12 para muestras de tejido soportado dentro de un bastidor 14. La conexión entre el estuche 12 para tejido y el bastidor 14 puede lograrse de muchas maneras diferentes, como cualquiera de las maneras descritas en la patente y solicitudes citadas. También debe observarse que el estuche 12 puede configurarse de cualquier manera adecuada a modo de soporte de tejido, y que el bastidor 14 puede configurarse de cualquier manera adecuada. Cualquiera de las configuraciones, cualidades, características y materiales divulgados para los soportes (por ejemplo, estuches) de tejido y los bastidores de la patente y solicitudes citadas pueden emplearse para el estuche 12 y el bastidor 14. En la realización mostrada, el

45 estuche 12 es poroso o está perforado, y está retenido de manera desmontable en el bastidor 14, y el bastidor 14 está configurado adicionalmente para poder asegurar el mismo de forma desmontable dentro de un mandril de micrótomo (no mostrado). El bastidor 14 generalmente incluye un interior, definido entre las paredes exteriores 14a, 14b, 14c, 14d circundantes, y el estuche 12 está dimensionado y configurado para poder encajar el mismo en el interior por fricción o "por presión", y para moverse dentro del mismo entre al menos una primera y una segunda posiciones, de nuevo, como se analiza de forma general en la patente y solicitudes citadas y con los mismos fines.

En la Fig. 1 se muestra la primera posición del estuche 12, mientras que la segunda posición es una posición en la que la porción inferior o fondo del estuche 12 queda expuesto por debajo de la porción inferior del bastidor 14, como

55 se observa en la Fig. 3, para permitir seccionar con un micrótomo el estuche 12, la muestra de tejido, y el bloque 11 de parafina mientras se sujeta el bastidor 14 en el mandril de micrótomo. El procedimiento general de procesado, imbibición y seccionamiento se analiza en la patente y solicitudes citadas. El estuche 12, y otras estructuras seccionables con micrótomo descritas en el presente documento, pueden estar formados con perfluoroalcoxietileno (PFA) de acuerdo con las patentes y solicitudes citadas.

Una tapa 12a del estuche 12 puede acoplarse con un cuerpo 12b del estuche 12, mediante una bisagra 16. La tapa 12a también puede encajarse a presión en una posición cerrada, como se muestra en la Fig. 2, mediante el enganche de unas uñas o conectores salientes 13 del cuerpo 12b del estuche con una brida exterior 15 de la tapa 12a, situada en cada uno de los cuatro lados de la tapa 12a. La tapa 12a soporta unas pestañas flexibles 18 de 65 desviación, y un material celular resiliente 20 (Fig. 6) que puede ser, por ejemplo, un material de espuma de celdas abiertas, tal como una espuma que incluya al menos uno de un poliéter o un poliuretano y que puede ser una

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espuma completamente reticulada. En el presente documento, "totalmente reticulada" significa que al menos sustancialmente todas las celdas de la espuma están abiertas. Tal espuma se divulga en la Publicación de Solicitud de Patente de Estados Unidos n.º 2008/0138854. Como se muestra en las Figs. 2 y 3, pueden colocarse una o más muestras 40a, 40b, 40c, 40d de tejido alargadas en unos canales o surcos 30a, 30b, 30c, 30d para tejido, porosos o 5 perforados, que pueden definir un rebaje o área interior delimitado por una estructura de separación a cada lado, en la forma de unas paredes laterales 32, y que incluye una pared inferior 34. Como se muestra adicionalmente en la Fig. 2, las respectivas paredes laterales 32 están conectadas con unas paredes superiores 33. Estas paredes superiores 33 proporcionan elementos de anclaje al bloque 11 de material de imbibición (por ejemplo, parafina) endurecido, durante el proceso de seccionamiento con micrótomo. Es decir, tal como se deduce a partir de la situación del conjunto 10, preparado para un micrótomo, que se muestra en la Fig. 3, en la que la cuchilla del micrótomo se desplazará paralelamente a las paredes inferiores 34, inicialmente se cortan o se "rectifican" estas paredes inferiores 34, y luego se rebanan las paredes laterales 32 y las muestras 40a-d en conjunto con cortes delgados de cinta de la parafina 11 endurecida. Las paredes laterales se retendrán firmemente en el bloque de parafina, como resultado de la función de anclaje proporcionada por las paredes superiores 33 más profundamente

15 embebidas, que están conectadas integralmente con las paredes laterales 32. El lado o superficie inferior de las paredes superiores 33 enganchará con la parafina endurecida, impidiendo de este modo que la pared superior 33 y las paredes laterales 32 se salgan de la parafina durante el corte. Si durante el seccionamiento se desprendieran o descascarillaran porciones del estuche, estas porciones del material del estuche podrían dañar gravemente o incluso destruir la una o más muestras de tejido. El elemento de anclaje (las paredes 34, en este ejemplo) evita que las paredes laterales 32 "descascarillen" o degraden de otro modo la calidad de los cortes delgados de cinta que se están obteniendo del estuche 12, la parafina endurecida 11 y las muestras 40a-d. Cabe observar que la pared inferior 34 puede tener secciones discretas, como se muestra en la Fig. 3, asociadas con cada canal, o puede ser continua como se muestra y describe más adelante.

25 En uso, se colocan la una o más muestras 40a, 40b, 40c, 40d de tejido dentro de los canales interiores 30a-d. Luego se cierra la tapa 12a del estuche y se encaja a presión en su sitio, de modo que las pestañas 18 y, opcional o alternativamente, el material celular resiliente (por ejemplo, espuma) 20 (Fig. 6), se apoye contra las muestras 40a-d de tejido y las atrape contra la pared inferior 34, como se muestra en la Fig. 2. En este momento, puede someterse el conjunto 10 con las muestras 40a-d de tejido atrapadas a una operación de procesamiento de tejido convencional, que utilice vacío, calor y productos químicos para eliminar los fluidos intersticiales del interior de las muestras 40a-d de tejido y reemplace dichos fluidos con un material endurecible, tal como parafina fundida. Como se mencionó anteriormente, durante estas etapas de procesamiento, la naturaleza porosa de la espuma u otro material celular resiliente 20 (Fig. 6), en caso de utilizarse, permite que los fluidos alcancen las muestras 40a-d de tejido y se infiltren por completo en las mismas. Adicionalmente, la espuma 20 atrapa las muestras 40a-d de tejido de forma que

35 queden planas contra la pared inferior 34 sin producir artefactos o marcas en el tejido, que pudieran interferir con un posterior análisis con microscopio. Cabe observar que pueden elegirse diferentes tipos de material celular resiliente, por ejemplo en función del tipo de tejido a procesar y analizar. Por ejemplo, pueden sujetarse y procesarse exitosamente muestras pequeñas de tejido mucoso utilizando la espuma T-50, analizada en la Publicación de Estados Unidos n.º 2007/0138854, mientras que otros tipos de tejido, tal como el tejido graso, pueden tratarse mejor con otro tipo de material celular resiliente.

También debe observarse que las etapas de procesamiento pueden tener lugar antes de ensamblar con el bastidor 14 el estuche 12 para tejidos. Tras completar el procesamiento de tejidos, puede moverse el estuche 12 para tejidos a una segunda posición, como se muestra en la Fig. 3, exponiendo la porción 30 de contención por 45 debajo de la superficie inferior 14e del bastidor 14. Luego se colocan el estuche 12 y el bastidor 14 dentro de un molde adecuado (no mostrado), y se embeben en parafina de modo que el conjunto completo, que incluye la porción 30 de contención inferior expuesta, quede embebido dentro de un bloque endurecido 11 de cera de parafina. El molde (no mostrado) generalmente puede coincidir con el contorno del fondo del estuche 12, aunque la porción del molde que rodea la porción 30 de contención será preferentemente cuadrada en vez de redonda. Esto ayuda durante la posterior producción de cortes de cinta. Por lo tanto, esta parte del procedimiento puede ser similar a la divulgada en la patente y solicitudes citadas. Como se analiza en las mismas, puede utilizarse entonces el bastidor 14 a modo de accesorio para montar el conjunto 10 embebido en un mandril de micrótomo, y obtenerse el número necesario de cortes de la cara inferior expuesta 11a del bloque 11 (Fig. 3), hasta que se hayan obtenido suficientes secciones para llegar a las muestras 40a-d. Los cortes o cintas de micrótomo que contengan las

55 muestras de tejido se montarán de forma apropiada en un portaobjetos de microscopio, y se teñirán y se cubrirán con una tapa.

La Fig. 4 es una vista en sección transversal esquemática que ilustra una muestra 40b de tejido alargada, posicionada mediante un canal o surco 30b del estuche 12. La muestra 40b de tejido se muestra antes de su sujeción o retención en plano contra la superficie inferior interior del canal 30b.

Las Figs. 5 y 6 ilustran respectivamente dos realizaciones diferentes de un estuche 12 y 12'. El estuche 12 solo incluye unas pestañas 18, para enganchar y sujetar la muestra 40b de tejido contra la superficie interior inferior del canal 30b. El estuche 12' incluye unas pestañas 18 algo más cortas, que enganchan con el material celular 65 resiliente, tal como la espuma 20 completamente reticulada de celdas abiertas, enganchando luego la espuma o entrando en contacto con las muestras 42b de tejido alargadas, contenidas en el canal 30b. Opcionalmente, pueden

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separación con otras configuraciones resultan aceptables, siempre que permitan que la parafina se infiltre alrededor del tejido, no atrapen burbujas, y no sean tan grandes como para impedir que el micrótomo lleve a cabo un seccionamiento de alta calidad, del tejido contenido y embebido en un bloque de material de imbibición endurecido.

5 A modo de ejemplo, la Fig. 22 muestra una biopsia 270 por rasurado con una lesión cutánea 272. La Fig. 23 representa la transección de la biopsia 270 en dos mitades 270a, 270b y de la lesión 272 en dos partes 272a, 272b, utilizando una cuchilla 274. La Fig. 24 muestra una vista lateral que representa la orientación adecuada de las biopsias 270a, 270b de piel, en relación con el plano de seccionamiento 280 del micrótomo. Como se muestra en la Fig. 25, una vez embebidas, cortadas y colocadas en un portaobjetos 290 de vidrio, el patólogo examinará las secciones teñidas. Obsérvese que se ha mantenido la orientación entre las muestras 270a, 270b de tejido y el plano de seccionamiento 280 durante todo el proceso. Puede utilizarse un número 292 de identificación, para identificar el portaobjetos 290 y las muestras 270a, 270b de tejidos.

La Fig. 26, que es una sección transversal a través de un estuche seccionable 280 de procesamiento de tejidos, que

15 sostiene un dispositivo 200 de orientación, muestra la orientación de las biopsias 270a, 270b de lesiones de piel. Las muestras 270a, 270b se mantienen en posición vertical y perpendiculares al plano de seccionamiento 280, como se muestra en la Fig. 5. Como se muestra adicionalmente, el dispositivo 200 de orientación de tejidos se encaja a presión en el estuche 280, y se retiene o bloquea en su sitio mediante unas pestañas 256, 258 situadas en lados opuestos del dispositivo 200. Como se mencionó anteriormente, estas pestañas 256, 258 pueden introducirse en una estructura adecuada del estuche, tal como unas aberturas del estuche 280, para efectuar un bloqueo. El estuche incluye una tapa 282, de manera similar a los estuches descritos anteriormente. La tapa 282 puede encajarse a presión hacia abajo, para obtener una posición bloqueada contra el lado superior del dispositivo 200 de orientación de tejido para asegurarse de que los pies 262 del dispositivo 200 de orientación, así como las muestras 270a, 270b de tejido, queden sujetos contra la pared inferior 280a del estuche 280 en el plano de

25 seccionamiento 284. De esta manera, debe comprenderse que las secciones pueden efectuarse con un micrótomo situado en paralelo al plano de seccionamiento 284, una vez que se haya embebido la porción 286 de contención de estuche, ensamblada con el dispositivo 200 de orientación y las muestras 270a, 270b de tejido, en un bloque de material tal como parafina, como se describe en la patente y solicitudes citadas.

Se han previsto muchas configuraciones diferentes del dispositivo de orientación, que resuelven los problemas de orientación para diferentes tipos de tejido. Aunque el dispositivo de orientación mostrado en las Figs. 20 y 21 está dirigido a biopsias de piel alargadas y muy delgadas, no resultaría útil si las biopsias son demasiado gruesas como para colocarlas cómodamente entre los brazos de sujeción. Para muestras de tejido más grandes, se divulgan espacios más anchos y diferentes configuraciones de alineación.

35 La Fig. 27 muestra un dispositivo 300 de orientación de tejidos, construido con la mayoría de las mismas características mostradas en las Figs. 20 y 21 y retenido en un estuche 280 seccionable con micrótomo. Cuenta con tres pasos centrales alargados 302 que pueden aceptar tejido. Estos pasos 302 están formados por unos brazos 304 de sujeción largos, generalmente paralelos. Los brazos 304 están conectados entre sí por unas paredes laterales 306, y no por la columna central de la Fig. 20. De nuevo, cada brazo 304 de sujeción tiene una configuración serpenteante u ondulada con dientes que enganchan el tejido, para asegurar que el tejido quede sujeto de forma segura y no se desplace durante el procesamiento. Este diseño permite al técnico utilizar el área central para tejidos que puedan ser más gruesos que los utilizados en el dispositivo 200 de orientación, que se muestra en la Fig. 20. Debido a que estos brazos 304 de sujeción son tan largos, es posible desviarlos más por su

45 centro que por los extremos. Algunas muestras de tejido tienen forma de cuña. La porción más gruesa de la cuña puede colocarse en las secciones centrales de los brazos 304 de sujeción. La porción más delgada de la cuña se mantendrá apretada firmemente hacia la periferia del paso 302, en la que los brazos 304 están sujetos a las paredes laterales 306. Unos brazos externos 308 de bloqueo, con unos elementos 309 de bloqueo, sujetan el dispositivo 300 en la porción 286 de contención del estuche 280. La Fig. 27A muestra una vista superior del dispositivo 300 de orientación, con unos tejidos 310 y 312 en forma de cuña instalados en el área central del dispositivo de orientación de tejido, mostrado en la Fig. 27.

La Fig. 28 muestra otra realización del dispositivo 320 de orientación de tejidos donde se proporcionan dos espacios alargados, respectivamente entre los brazos externos 322 y un brazo central 324, para la alineación de tejidos. Las

55 muestras 330 y 332 de tejido mostradas en este caso representan tejidos de la vesícula biliar, que deben orientarse sobre el borde. Las biopsias alargadas, como las producidas con herramientas de biopsia con aguja, también podrían utilizarse en un dispositivo 320 de alineación como el representado en la Fig. 28. Este diseño presenta unos brazos 322, 324 de sujeción algo más rígidos que los dispositivos de las Figs. 20 y 27, y unos pasos más estrechos para acomodar las muestras 330, 332 de tejido largas y estrechas. El dispositivo 320 incluye unos brazos resilientes 334, 336 a encajar en el fondo o espacio de contención de un estuche seccionable 340, que tenga una tapa articulada 342 como se divulga, por ejemplo, en las patentes y/o solicitudes de patente anteriormente incorporadas.

La Fig. 29 muestra otro dispositivo 350 de orientación de tejidos, con pasos aún más grandes entre los brazos 352, 354 de sujeción. Estos pasos para tejido podrán utilizarse cuando sea deseable segregar el tejido en mitades 65 separadas. Esto se hace a menudo en casos de enfermedad con estadios en áreas específicas de un órgano pequeño. Por ejemplo, si se extirpa la próstata, puede segregarse la mitad izquierda con respecto a la mitad

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derecha, para asegurarse de que el patólogo pueda diferenciar los márgenes del tejido limpio entre las dos mitades. Al igual que en las realizaciones anteriores, se proporcionan brazos 360, 362 de bloqueo para encajar presión o por fricción el dispositivo 350 en la porción de contención o fondo 286 del estuche 280.

5 A modo de resumen, los brazos ondulados, sinuosos o serpenteantes de los dispositivos de orientación permiten sujetar cuidadosamente el tejido de forma orientada, pero también permiten eliminar las burbujas de aire durante el proceso de imbibición y la infiltración de parafina y productos químicos de procesamiento. Las características periféricas de los dispositivos de orientación, tales como los brazos externos resilientes, enganchan con el estuche seccionable para evitar el desplazamiento del dispositivo de orientación y de las muestras de tejido, durante el procesamiento y la imbibición. Otras características establecen una distancia mínima entre el tejido y las paredes laterales del estuche, para un seccionamiento adecuado y una disposición adecuada de los portaobjetos para microscopio. Los pies de separación de los dispositivos de orientación están posicionados para soportar el tejido a lo largo de los brazos de sujeción, de modo que el tejido no pueda desplazarse por debajo de los brazos y quede suelto o mal posicionado. Los brazos alargados de sujeción de tejido son flexibles, pero proporcionan soporte para

15 mantener la orientación adecuada del tejido durante el procesamiento y la imbibición. La flexibilidad de los brazos de sujeción ayuda a instalar el tejido en el dispositivo de orientación. Los dientes de enganche de tejido situados en los brazos de sujeción pueden tener una configuración unidireccional, que permita insertar el tejido en una dirección pero que impida cualquier posible retroceso del tejido durante las etapas de inserción, y también durante las etapas de procesamiento hidráulico del tejido. Los dientes también ayudan a separar el tejido de los brazos, para permitir la infiltración completa de los fluidos de procesamiento y la parafina.

Aunque la presente invención se ha ilustrado mediante la descripción de diversas realizaciones ilustrativas, y aunque estas realizaciones se han descrito con cierto detalle, los expertos en la materia darán fácilmente con ventajas y modificaciones adicionales. Las diversas características divulgadas en el presente documento pueden utilizarse por

25 sí mismas, o en cualquier combinación dependiendo de las necesidades y preferencias del usuario. la muestra 100 de tejido se ha procesado, embebido y microtomizado de acuerdo con el análisis anterior. La muestra 100 seccionada se ilustra de manera que se observen los márgenes "m" de la lesión "/", y la profundidad "d".

Las Figs. 15 y 16 son vistas en perspectiva seccionada, que ilustran la muestra 100 de tejido de la Fig. 13 emplazada en un canal 130a, y el uso de unas uñas 140, 142 en voladizo, y preferentemente resilientes, desviadas la una hacia la otra en lados opuestos del canal 130a. Estas uñas 140, 142 tienen varias funciones. Durante la inserción de la muestra 100 de tejido en el canal 130a, utilizando unas pinzas, las uñas 140, 142 agarran la muestra 100 de tejido para evitar que se mueva y se salga del canal, mientras el usuario está colocando y orientando la misma. Con este fin, las uñas 140, 142 mostradas tienen una configuración dentada unidireccional,

35 para mantener con precisión y fiabilidad la presentación y orientación originales de la muestra 100 de tejido, según lo establecido por el usuario durante la colocación, durante el resto de las operaciones de procesamiento e imbibición. De esta manera, las uñas resilientes 140, 142 pueden acomodar muestras de tejido de diversos tamaños. Adicionalmente a las uñas 140, 142, unas pestañas 150 de tapa y/u otra estructura de desviación mantienen la superficie 104a de la muestra 100 desviada contra la superficie interior inferior o de fondo del canal 130a. La Fig. 15 ilustra una vista ampliada de uno de los canales 130a, sujetando la muestra 100 de tejido, mientras que la Fig. 16 ilustra una vista similar que muestra todo el estuche 160 sujeto dentro de un bastidor 170, y en la posición inferior o exterior del estuche 160 con relación al bastidor 170, en la que el estuche 160 queda expuesto con fines de imbibición y seccionamiento con micrótomo, como se mencionó previamente.

45 Las Figs. 17-19 ilustran otra realización de un estuche 180 seccionable con micrótomo, para sujetar muestras 181, 182 de tejido alargadas en la orientación adecuada a lo largo de un procesamiento, imbibición y seccionamiento con micrótomo de tejidos. Obsérvese que la muestra 182 de tejido es más larga que las muestras 181, como se analizará a continuación. Esta realización es similar en muchos aspectos a la realización analizada en conexión con la Fig. 1. Como se ilustra mejor en las Figs. 18 y 19, el estuche 180 tiene una sola pared inferior 184 continua, en lugar de las secciones de pared inferior ilustradas en conexión con la primera realización (Fig. 2). Unos respectivos elementos 185 de separación de tejido se extienden hacia arriba y están formados integralmente con la pared inferior 184, y definen unos canales 186 de recepción de tejido o surcos entre los mismos. La porción 187 de contención de tejido del estuche presenta un ancho "w", que es inferior al correspondiente ancho de la porción de contención de tejido mostrada en la Fig. 2. Así, las distancias d1 y d2 entre el

55 lateral de un molde (no mostrado), que contendrá el estuche 180, y el lateral de la porción 187 de contención de tejido son mayores en la realización de las Figs. 17-19. Por lo tanto, el anclaje del estuche 180 dentro de la parafina 11 es más estable.

Se proporcionan unos respectivos miembros o barras 190 de soporte, y conectan entre sí los miembros 185 de separación escalonados y verticales. Esto se observa mejor en las Figs. 17 y 18. Por lo tanto, las barras 190 proporcionan unos elementos de anclaje profundo en la parafina. Es decir, cuando se cortan con la cuchilla de micrótomo porciones delgadas de los miembros 185 de separación, después de “rectificar” la pared inferior 184 con la cuchilla, las barras 190 sujetan firmemente en el bloque de parafina las porciones restantes de los miembros 185, y no "desconcharán" a medida que se cortan las cintas. Los miembros 185 están espaciados a lo largo de los 65 canales 186, para permitir la infiltración del material de imbibición de modo que enganche con el lado o superficie inferior de las barras 190. Adicionalmente, la estructura de soporte central presenta uno o más espacios o

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