ES2628874T3 - Análisis genómico fetal a partir de una muestra biológica materna - Google Patents
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Abstract
Un método para determinar al menos una parte del genoma de un feto no nacido de una mujer embarazada, teniendo el feto un padre y una madre que es la mujer embarazada, y teniendo el padre un genoma paterno con haplotipos paternos y teniendo la madre un genoma materno con haplotipos maternos, comprendiendo el método: (a) analizar una pluralidad de moléculas de ácido nucleico a partir de una muestra biológica obtenida de la mujer gestante, donde la muestra biológica contiene una mezcla de ácidos nucleicos maternos y fetales y en la que analizar una molécula de ácido nucleico incluye: (i) identificar una localización de la molécula de ácido nucleico en el genoma humano; y (ii) determinar un alelo respectivo de la molécula de ácido nucleico; (b) determinar un alelo paterno heredado por el feto del padre en cada una de una primera pluralidad de loci, las localizaciones identificadas de los ácidos nucleicos de la muestra biológica determinada en (a) (i) incluyendo la primera pluralidad de loci, donde la primera pluralidad de loci está en un mismo cromosoma, en el que el genoma materno es heterocigótico en la primera pluralidad de loci; (c) determinar cada uno de los dos haplotipos maternos de la primera pluralidad de loci; (d) basado en los alelos determinados de las moléculas de ácido nucleico en la primera pluralidad de loci, un sistema informático que determina cantidades de alelos respectivos en cada uno de la primera pluralidad de loci; (e) comparar cantidades relativas de los alelos respectivos de las moléculas de ácido nucleico en más de un locus de la primera pluralidad de loci; y (f) basándose en la comparación, determinando cuál de los dos haplotipos maternos es heredado por el feto no nacido de la madre en la porción del genoma cubierta por la primera pluralidad de loci.
Description
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Nature 2005; 437: 376-380), la plataforma ABI SOLiD (McKernan KJ et al. Genome Res 2009; 19: 1527-1541), la plataforma de secuenciación de una sola molécula de Helicos (Harris TD et al. Science 2008; 320: 106-109), la secuenciación en tiempo real utilizando moléculas de polimerasa única (Science 2009; 323: 133-138) y la secuenciación de nanoporos (Clarke J. et al. Nat Nanotechnol. 2009; 4: 265-70). En una realización, la secuenciación masivamente paralela se realiza sobre un subconjunto aleatorio de moléculas de ácido nucleico en la muestra biológica.
En algunas realizaciones, puede ser beneficioso obtener una secuencia leída de cada molécula tan larga como sea posible. Una limitación de la longitud de las lecturas de secuenciación que se puede conseguir es la naturaleza de las moléculas de ácido nucleico en la muestra biológica materna. Por ejemplo, se sabe que la mayoría de las moléculas de ADN en el plasma materno consisten en fragmentos cortos (Chan KCA et al Clin Chem 2004; 50: 8892). Además, la longitud de lectura debe equilibrarse con la fidelidad del sistema de secuenciación a largas longitudes de lectura. Para algunos de los sistemas mencionados anteriormente, podría ser preferible obtener secuencias de ambos extremos de la molécula, la llamada secuenciación de extremo pareado. Como ilustración, un enfoque consiste en realizar 50 pb de secuenciación desde cada extremo de una molécula de ADN, dando como resultado un total de 100 pb de secuencia por molécula. En otra realización, puede realizarse 75 pb de secuenciación desde cada extremo de una molécula de ADN, dando como resultado un total de 150 pb de secuencia por molécula.
Después de realizar la secuenciación, las secuencias se alinean de nuevo con un genoma humano de referencia. Como las realizaciones dilucidan las variaciones genómicas heredadas por un feto no nacido de sus padres, el algoritmo de alineación puede ser capaz de hacer frente a las variaciones de secuencia. Un ejemplo de dicho paquete de software es el software Efficient Large-Scale Alignment of Nucleotide Databases (ELAND) producido por Illumina. Otro ejemplo de dicho paquete de software es el SOAP (programa de alineación de oligonucleótidos cortos) y SOAP2 (Li R et al. Bioinformatics 2008; 24: 713-714; Li R et al. Bioinformatics 2009; 25: 1966-1967).
La cantidad de secuenciación de ADN que puede necesitar ser realizada puede depender de la resolución a la que el mapa genético fetal o la secuencia genómica fetal puede necesitar ser construida. En general, cuantas más moléculas se secuencien, mayor será la resolución. Otro determinante de la resolución del mapa genético fetal o de la secuencia genómica fetal en un nivel o profundidad de secuenciación del ADN es la concentración fraccionada de ADN fetal en la muestra biológica materna. En general, cuanto mayor sea la concentración fraccionada de ADN fetal, mayor será la resolución del mapa genético fetal o secuencia genómica fetal que puede ser elucidada a un nivel dado de secuenciación de ADN. Como la concentración fraccional de ADN fetal en el plasma materno es mayor que en el suero materno, el plasma materno es un tipo de muestra biológica materna más preferido que el suero materno para algunas realizaciones.
El rendimiento de los métodos basados en secuenciación mencionados anteriormente puede aumentarse con el uso de la indexación o la codificación de códigos de barras. Así, una muestra o un índice o código de barras especıfico para el paciente se puede añadir a fragmentos de ácido nucleico en una biblioteca de secuenciación del ácido nucleico particular. A continuación, se mezclan una serie de tales bibliotecas, cada una con una muestra o índice o código de barras específico del paciente, y se secuencian entre sí. Después de las reacciones de secuenciación, los datos de secuenciación pueden recogerse de cada muestra o paciente basándose en el código de barras o índice. Esta estrategia puede aumentar el rendimiento y, por tanto, la rentabilidad de las realizaciones de la presente invención.
En una realización, las moléculas de ácido nucleico en la muestra biológica pueden seleccionarse o fraccionarse antes de la genotipificación cuantitativa (por ejemplo, secuenciación). En una variante, las moléculas de ácido nucleico se tratan con un dispositivo (por ejemplo, un microarray) que puede unirse preferentemente a moléculas de ácido nucleico a partir de loci seleccionados en el genoma (por ejemplo, la región del cromosoma 7 que contiene el gen CFTR). Entonces, la secuenciación puede realizarse preferentemente sobre moléculas de ácido nucleico capturadas por el dispositivo. Este esquema permitirá dirigir la secuencia hacia la región genómica de interés. En una realización de este esquema se puede usar un sistema de captura de secuencias de Nimblegen (www.nimblegen.com/products/seqcap/index.html) o un Sistema Agilent SureSelect Target Enrichment (www.opengenomics.com/SureSelect_Target_Enrichment_System), o plataformas similares. En algunas realizaciones, las moléculas de ácido nucleico de las regiones seleccionadas del genoma se someten a secuenciación aleatoria.
En otra realización, la región genómica de interés en la muestra biológica puede amplificarse primero mediante un conjunto o conjunto múltiple de cebadores de amplificación. A continuación, el genotipado cuantitativo, por ejemplo, la secuenciación, puede realizarse sobre los productos amplificados. En una implementación de este esquema, se puede usar el sistema RainDance (www.raindancetech.com/technology/pcr-genomics-research.asp). En algunas realizaciones, las moléculas de ácido nucleico amplificadas se someten a secuenciación aleatoria.
También se puede realizar una etapa de fraccionamiento por tamaños sobre las moléculas de ácido nucleico en la muestra biológica. Dado que se sabe que el ADN fetal es más corto que el ADN materno en el plasma materno (Li y col Clin Chem 2004; 50: 1002-1011; Solicitud de Patente de EE.UU. 20050164241; Solicitud de Patente de EE.UU. 20070202525), la fracción de menor tamaño molecular se puede cosechar y luego ser utilizada para la
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particular, entonces se puede suponer que los segmentos de secuencia entre los loci son iguales que los del haplotipo materno. Debido a la ocurrencia de recombinación meiótica, el haplotipo final heredado por el feto puede consistir en un mosaico de 'segmentos de haplotipos' originarios de uno de estos dos cromosomas homólogos. Las realizaciones pueden detectar tal recombinación.
La resolución en la que se podría detectar tal recombinación depende del número y distribución de los marcadores genéticos que se haya determinado en el ADN constitucional del padre y la madre, y el umbral que se utiliza en el subsiguiente análisis bioinformático (utilizando por ejemplo el SPRT) . Por ejemplo, si la comparación sugiere que el alelo heredado de la madre en cada uno de un primer conjunto de loci consecutivos corresponden al primer haplotipo, entonces se determina que el primer haplotipo se hereda para la localización genómica correspondiente al primer conjunto de loci. Si un segundo conjunto de loci consecutivos sugieren que el segundo haplotipo se hereda, entonces se determina que el segundo haplotipo se hereda para la localización genómica correspondiente al segundo conjunto de loci.
En una realización, cuando se analizan una pluralidad de loci, el haplotipo puede determinarse con mayor precisión. Por ejemplo, los datos estadísticos de un loci pueden no ser determinantes, pero cuando se combinan con los datos estadísticos de otros loci, se puede determinar qué haplotipo se hereda. En otra realización, cada loci puede analizarse independientemente para hacer una clasificación y, a continuación, las clasificaciones pueden analizarse para proporcionar una determinación de qué haplotipo se hereda para una región dada.
En una realización, puede realizarse un procedimiento estadístico para determinar la dosificación de haplotipo relativa (por ejemplo, si uno de estos haplotipos está sobrerepresentado respecto al otro haplotipo). El umbral de clasificación para este procedimiento estadístico puede ajustarse dependiendo de la concentración fraccional de ADN fetal. En general, una mayor concentración fraccionada de ADN fetal puede permitir que el umbral se alcance con menos moléculas. El umbral de clasificación también puede ajustarse dependiendo del número de segmentos clasificados con éxito que se desee alcanzar a través del genoma o de las regiones genómicas de interés.
Haciendo referencia de nuevo a la FIG. 1, en el paso 180, el genoma fetal puede ser analizado para mutaciones. Por ejemplo, se pueden usar realizaciones para buscar un panel de mutaciones que causan enfermedades genéticas en una población particular. Ejemplos de mutaciones que pueden detectarse usando realizaciones se pueden encontrar en la Herencia Mendeliana en Línea en el Hombre (www.ncbi.nlm.nih.gov/omim/getmorbid.cgi). Estas mutaciones pueden ser buscadas durante las etapas 140-160; o como un paso separado como se describe en este documento. Por ejemplo, en familias en las que el padre es portador de una o más mutaciones que están ausentes en la madre, entonces la mutación o las mutaciones podrían ser buscadas a partir de los datos analíticos (por ejemplo, datos de secuenciación) de la muestra biológica materna.
Aparte de la detección de la mutación real, también podrían buscarse marcadores genéticos polimórficos que están vinculados al alelo mutante o de tipo salvaje en el padre o la madre. Por ejemplo, el análisis de RHDO puede revelar que el feto ha heredado el haplotipo de la madre que se sabe que lleva una mutación para una enfermedad. Las realizaciones de la invención también pueden usarse para el diagnóstico prenatal no invasivo de enfermedades causadas por deleciones de regiones cromosómicas, p. ej., la supresión del Sudeste Asiático que causa la alfatalasemia. En el escenario en el que tanto el padre como la madre son portadores de la deleción, si el feto es homocigótico para la deleción y si se realiza una secuenciación masivamente paralela en el ADN plasmático materno, entonces debería haber una reducción en las frecuencias de las secuencias de ADN procedentes de la región suprimida en el plasma materno.
B. Ejemplo
Esta sección describe un ejemplo de realizaciones (por ejemplo, del método 100) aplicadas al polimorfismo de un solo nucleótido (SNP) en el que la madre es heterocigótica. Los alelos SNP en el mismo cromosoma forman un haplotipo, con la madre teniendo un par homólogo de cada cromosoma, y por lo tanto dos haplotipos. Para ilustrar cómo se realiza tal determinación, considérese un segmento en el cromosoma 3, por ejemplo, como se muestra en la FIG. 2.
La FIG. 2 muestra dos haplotipos para el padre y dos haplotipos para la madre de un segmento particular de su respectivo código genómico. Cinco SNPs se encontraron dentro de este segmento en el que el padre y la madre fueron homocigotos y heterocigotos, respectivamente, para todos los 5 de estos SNPs. Los dos cromosomas homólogos del padre poseían el mismo haplotipo (Hap), es decir, A-G-A-A-G (de arriba a abajo en la Figura 2). Por simplicidad, los haplotipos paternos se llaman Hap I y Hap II, teniendo en cuenta que ambos son idénticos para este conjunto de 5 SNPs. Para la madre se observaron dos haplotipos: Hap III, A-A-A-G-G y Hap IV, G-G-G-A-A.
Los SNPs en este ejemplo podrían ser clasificados en dos tipos. La FIG. 3 muestra los dos tipos de SNP según las realizaciones de la presente invención. El tipo A consiste en aquellos SNP en los que los alelos paternos eran los mismos que en el haplotipo materno III. El tipo B consiste en aquellos SNPs en los que los alelos paternos eran los mismos que en el haplotipo materno IV.
Estos dos tipos de SNPs pueden requerir un manejo matemático ligeramente diferente. Por lo tanto, en el escenario de Tipo A, la herencia fetal del haplotipo III daría lugar a la sobrerepresentación del haplotipo III, en relación con el
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del 20%, ya que esto representa el límite más alto de concentración de ADN fetal en el primer trimestre. Cuanto mayor es la concentración de ADN fetal, más se espera que se superponga entre las curvas de distribución del alelo menor para el cual la madre es homocigótica para el alelo principal contra aquella cuando la madre es heterocigótica. Por lo tanto, es más específico para derivar los puntos de corte para el menor número de alelos utilizando una mayor concentración de ADN fetal para la predicción de SNP informativos.
La FIG. 13A muestra una distribución predicha para los recuentos del alelo menos abundante con un número total de 173 moléculas y una concentración fraccionada de ADN fetal del 20%. En una realización, basándose en esta distribución, un criterio de corte de menos de 40 para los recuentos del alelo menos abundante puede ser adecuado para identificar los SNP informativos. Como los recuentos para el alelo A son 10, el locus SNP no. 1 se considera "informativo" para el cálculo de la concentración fraccionada de ADN fetal.
La FIG. 13B muestra una distribución predicha para los recuentos del alelo menos abundante con un número total de 121 moléculas y una concentración fraccionada de ADN fetal del 20%. En una realización, basándose en esta distribución, un valor de corte inferior a 26 para los recuentos del alelo menos abundante puede ser adecuado para identificar los SNP informativos. Como el número de recuentos para el alelo T es 9, el locus SNP no. 2 se considera "informativo" para el cálculo de la concentración fraccionada de ADN fetal.
La FIG. 12 muestra una distribución predicha para los recuentos del alelo menos abundante con un número total de 134 moléculas y una concentración fraccionada de ADN fetal del 20%. En una realización, basándose en esta distribución, un valor de corte inferior a 25 para los recuentos del alelo menos abundante puede ser adecuado para identificar los SNP informativos. Como el número de recuentos para el alelo T es 62, el locus SNP no. 3 se considera como "no informativo" y no se usaría para el cálculo de la concentración fraccional de ADN fetal.
En algunas realizaciones, usando la ecuación f = 2 x p/(p + q), la concentración fraccional de ADN fetal se puede calcular usando los recuentos de alelos para SNP 1 y 2 y combinados. Los resultados se muestran a continuación.
- Cálculo basado en el locus SNP
- Concentración fraccional de ADN fetal
- 1.
- 10 X 2-(10 + 163) = 11,6%
- 2.
- 9 X 2-(9 + 112) = 14,9%
- 1. y 2.
- (10+9) x 2-(10 + 9 + 163 + 112) = 12,9%
D. Determinación de la Cobertura Profunda del Genoma Fetal
Además de obtener una concentración fraccionada, las realizaciones pueden determinar un porcentaje de cobertura del genoma fetal que el procedimiento analítico (por ejemplo, la secuenciación) en la etapa 1010 ha logrado. En algunas realizaciones, pueden utilizarse loci informativos para determinar el porcentaje de cobertura. Por ejemplo, se puede usar cualquiera de los ejemplos anteriores. En una realización, pueden usarse los loci en los que el feto es un heterocigoto obligado. En otra realización, se pueden usar los loci en los que se determina que el feto es heterocigótico y la madre es homocigótica (por ejemplo, usando el método 1100).
Los fragmentos que se han asignado a los loci informativos se pueden utilizar para determinar una proporción de la cobertura. En una realización, se determina una proporción de loci de la primera pluralidad de loci en la que se detecta un primer alelo respectivo a partir de los resultados de la secuenciación. Por ejemplo, si el feto es TA en un locus y la madre es AA en el locus, entonces el alelo T debe ser detectado en los resultados de secuenciación si ese locus ha sido secuenciado. Por lo tanto, la proporción del genoma fetal que se ha secuenciado a partir de la muestra biológica se puede calcular sobre la base de esta proporción. En una realización, la proporción de los primeros loci donde se ve el alelo fetal específico puede tomarse como el porcentaje de cobertura del genoma fetal. En otras realizaciones, la proporción puede ser modificada en base a donde están los loci. Por ejemplo, se puede determinar un porcentaje de cobertura para cada cromosoma. Como otro ejemplo, el porcentaje se puede estimar en menos que la proporción si los primeros loci no forman una buena representación del genoma. Como otro ejemplo, puede proporcionarse un intervalo en el que la proporción es un extremo del intervalo. Mientras que un alto porcentaje, es decir, aproximándose al 100%, significa una cobertura cercana a completa del genoma fetal, la mayoría de las enfermedades genéticas pueden diagnosticarse con una cobertura mucho menor que 100%, p. ej. 80%, o 50%, o menos.
VI. Sininformacion previa del genoma materno y paterno
En las secciones anteriores, algunas realizaciones han determinado un mapa genético de un feto (o una porción de un genoma fetal) cuando se conocen los haplotipos de la madre y los genotipos del padre. Otras realizaciones han demostrado que la concentración fraccionada de ADN fetal puede determinarse analizando el ADN plasmático
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conocida por los expertos en la técnica podría ser utilizada. De hecho, aparte del genotipado, el ADN de la capa leucocítica del padre y la madre también puede someterse a secuenciación, ya sea sobre una base de genoma completo o para regiones genómicas seleccionadas. Además, se podría usar cualquier fuente de ADN constitucional (por ejemplo, ADN de células bucales, ADN de folículo piloso, etc.) del padre y la madre estableciendo los genotipos parentales.
La muestra CVS se analizó para proporcionar un estándar para la comparación con el mapa genético fetal deducido del análisis de plasma materno. Además, para este experimento, el genotipo de la muestra CVS también puede usarse para construir el haplotipo de la madre para el análisis RHDO. En este escenario, el uso del genotipo CVS para este propósito de construcción de haplotipos sólo se utilizó con fines ilustrativos. En una aplicación clínica de las realizaciones, el haplotipo materno puede ser construido a través del análisis de otros individuos de la familia, por ejemplo, un descendiente anterior, un hermano, los padres u otros familiares de la madre. Los haplotipos maternos de las regiones cromosómicas de interés también pueden construirse por otros métodos bien conocidos por los expertos en la técnica, algunos de los cuales se mencionan en este documento.
Para realizaciones seleccionadas, también se pudo determinar el haplotipo del padre del feto no nacido a analizar. Esta información puede ser particularmente útil para la dosificación relativa de haplotipos para regiones cromosómicas en las que tanto el padre como la madre son heterocigotos.
2. Secuencia masiva paralela del ADN plasmático materno
El ADN plasmático obtenido de la madre se sometió a secuenciación masiva paralela utilizando la plataforma Illumina Genome Analyzer. Se realizó la secuenciación en pares de las moléculas de ADN plasmático. Cada molécula se secuenció en cada extremo para 50 pb, totalizando así 100 pb por molécula. Los dos extremos de cada secuencia se alinearon con el genoma humano repetido-no enmascarado (Hg18 NCBI.36 descargado de UCSC http://genome.ucsc.edu) utilizando el programa SOAP2 del Beijing Genomics Institute de Shenzhen (soap.genomics.org.cn) (Li R et al. Bioinformatics 2009, 25 (15): 1966-7) La tabla, FIG. 25B, enumera las estadísticas de alineación de las primeras 20 celdas de flujo. Así, con 20 células de flujo, más de 3.932 millones de lecturas se alinearon con el genoma humano de referencia.
3. Cálculo de las concentraciones fraccionales de ADN fetal
Como se mencionó anteriormente, la concentración fraccionada de ADN fetal en la muestra de plasma materno se puede calcular a partir de los datos de secuenciación. Una forma era analizar los SNPs en los que el padre y la madre eran homocigóticos, pero para diferentes alelos entre sí. Para tales SNPs, el feto sería un heterocigoto obligado para un alelo paternalmente heredado y uno heredado de madre. En una realización, se puede usar cualquiera de los métodos de cálculo descritos en la sección V. En este ejemplo, se realizaron cálculos sobre los datos acumulativos a través de diferentes loci genéticos polimórficos que cumplían la configuración del genotipo parental (es decir, ambos progenitores eran homocigóticos, pero para alelos diferentes) en diferentes cromosomas. Las concentraciones fraccionales de ADN fetal calculadas para SNPs situados en cromosomas diferentes se enumeran en la columna de la derecha de la FIG. 26. Como puede verse en la tabla, las concentraciones fraccionarias determinadas para SNPs situados en cromosomas diferentes se correlacionan muy estrechamente entre sí.
Como experimento de control de calidad, también se investigaron aquellos SNPs en los que la madre era homocigótica y el padre heterocigótico, a partir del análisis Affymetrix SNP 6.0 de las muestras de la capa leucocitaria (columna media de la figura 26). Se puede observar que a una profundidad suficiente de la secuenciación del ADN, las concentraciones fraccionales de ADN fetal medidas a partir de este análisis eran muy similares a las medidas para SNPs en las que tanto el padre como la madre eran homocigóticos pero para alelos diferentes.
En una implementación, cuando se observaba una concordancia cercana de las concentraciones fraccionales de ADN fetal a partir de estos dos tipos de SNPs, se podía concluir que se estaba cerca de la cobertura de secuenciación completa del genoma fetal. En un aspecto, a una menor profundidad de cobertura, las concentraciones fraccionales de ADN fetal medidas para SNPs en las que la madre era homocigótica y el padre era heterocigótico eran superiores a las medidas para SNPs en las que tanto el padre como la madre eran homocigóticos, pero para alelos diferentes. A una menor profundidad de cobertura, la ausencia de un alelo paternalmente único a partir de los resultados de la secuenciación puede tener dos causas posibles: (i) que el feto no había heredado este alelo del padre; y/o (ii) que el feto había heredado este alelo del padre, pero que entonces este alelo faltaba en los resultados de la secuenciación debido a que la profundidad de la secuenciación no era suficiente.
4a. Cálculo del porcentaje de cobertura del genoma fetal
Además, como se mencionó anteriormente, el porcentaje del genoma fetal que se había analizado mediante secuenciación del ADN plasmático materno se pudo determinar mirando el subconjunto de SNPs en los que el padre y la madre eran homocigóticos, pero para alelos diferentes. En esta familia, 45.900 SNPs en la matriz Affymetrix SNP 6.0 pertenecían a este subconjunto. El porcentaje de cobertura del genoma fetal podría deducirse mediante el
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- Enriquecimientoobjetivo SNP informativo no. del genoma completo Recuentos alelos compartidos de Recuentos de alelos específicosfetales Concentración fraccional de ADN fetal
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imagen23 3.064 33,4%
- M6028
-
No
110.730
16.778
imagen24 3.114 31,3%
- M6029
-
No
107.362
19.889
imagen25 3.404 29,2%
- M6043
-
No
110.321
21.070
imagen26 4.369 34,4%
3. Comparación de muestras con y sin enriquecimiento de la diana
En algunas realizaciones, la profundidad de la cobertura de secuencia representaba el número medio de veces que
5 cada base había sido secuenciada en una región particular. En esta realización, se calculó la profundidad de secuencia de la región diana dividiendo el número total de bases secuenciadas dentro de la región diana por la longitud de región diana (3,05 Mb). Para las regiones cubiertas por el kit de enriquecimiento, la cobertura media de la secuencia fue 0,19 veces para las muestras no enriquecidas y 54,9 veces para las muestras enriquecidas, lo que indica una media de 289 veces el enriquecimiento. A esta profundidad de secuenciación, sólo el 4,0% de los alelos
10 fetales específicos dentro de la región diana se detectaron antes del enriquecimiento diana (véase la tabla a continuación). En comparación, el 95,8% de ellos se volvieron detectables después del enriquecimiento de la diana (véase la tabla a continuación). Por lo tanto, el enriquecimiento de la diana aumentó mucho la tasa de detección de los alelos específicos fetales dentro de la región diana.
A continuación, se comparan las concentraciones fraccionales de ADN fetal basado en los recuentos de lectura de
15 todos los SNP informativos dentro de la región diana para cada muestra, con y sin enriquecimiento. Sin el enriquecimiento diana, el número de lecturas específicas fetales variaba de 0 a 6 para las cuatro muestras (véase la tabla a continuación). Debido a la baja cobertura de la secuencia, el muestreo inadecuado de las moléculas de ADN fetal evitaría una estimación precisa de la concentración fraccional de ADN fetal. Con el enriquecimiento diana, se observó un número mucho mayor de recuentos de alelos específicos fetales (511-776) y de contajes de alelos
20 compartidos (2570 ~ 3922) dentro de la región diana (véase la tabla a continuación). Los porcentajes de ADN fetal fueron calculados como 35,4%, 33,2%, 26,1% y 33,0%, consistente con los porcentajes de ADN fetal estimados por los datos del genoma en las muestras no enriquecidas (véase la tabla más abajo). Estos resultados indicaron que las moléculas de ADN materno y fetal se enriquecieron en una grado similar dentro de la región diana.
- Muestra
- Enriquecimiento de la diana Número de SNP informativos dentro de la región seleccionada Número de alelos específicos fetales detectables Tasa de detección del alelo fetal específico Recuentos de alelos compartidos Recuentos de alelos específicos fetales Concentración fraccional de ADN fetal
- M6011
- No 63 6 9,5% 13 6 63,2%
- M6028
- No 61 2 3,3% 6 2 50,0%
- M6029
- No 69 2 2,9% 11 2 30,8%
- M6043
- No 65 0 0,0% 15 0 0,0%
- M6011
- Sí 63 60 95,2% 3072 661 35,4%
- M6028
- Sí 61 60 98,4% 2570 511 33,2%
- M6029
- Sí 69 66 95,7% 3835 575 26,1%
- M6034
- Sí 65 61 93,9% 3922 776 33,0%
28
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US8609338B2 (en) | 2006-02-28 | 2013-12-17 | University Of Louisville Research Foundation, Inc. | Detecting fetal chromosomal abnormalities using tandem single nucleotide polymorphisms |
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US20080050739A1 (en) | 2006-06-14 | 2008-02-28 | Roland Stoughton | Diagnosis of fetal abnormalities using polymorphisms including short tandem repeats |
EP2029779A4 (en) | 2006-06-14 | 2010-01-20 | Living Microsystems Inc | HIGHLY PARALLEL SNP GENOTYPING UTILIZATION FOR FETAL DIAGNOSIS |
WO2009105531A1 (en) * | 2008-02-19 | 2009-08-27 | Gene Security Network, Inc. | Methods for cell genotyping |
US8709726B2 (en) * | 2008-03-11 | 2014-04-29 | Sequenom, Inc. | Nucleic acid-based tests for prenatal gender determination |
WO2009146335A1 (en) * | 2008-05-27 | 2009-12-03 | Gene Security Network, Inc. | Methods for embryo characterization and comparison |
CN104732118B (zh) | 2008-08-04 | 2017-08-22 | 纳特拉公司 | 等位基因调用和倍性调用的方法 |
US8962247B2 (en) * | 2008-09-16 | 2015-02-24 | Sequenom, Inc. | Processes and compositions for methylation-based enrichment of fetal nucleic acid from a maternal sample useful for non invasive prenatal diagnoses |
US8476013B2 (en) | 2008-09-16 | 2013-07-02 | Sequenom, Inc. | Processes and compositions for methylation-based acid enrichment of fetal nucleic acid from a maternal sample useful for non-invasive prenatal diagnoses |
US9524369B2 (en) | 2009-06-15 | 2016-12-20 | Complete Genomics, Inc. | Processing and analysis of complex nucleic acid sequence data |
US20120185176A1 (en) | 2009-09-30 | 2012-07-19 | Natera, Inc. | Methods for Non-Invasive Prenatal Ploidy Calling |
CA2779695C (en) | 2009-11-05 | 2016-05-24 | The Chinese University Of Hong Kong | Fetal genomic analysis from a maternal biological sample |
EP2504448B1 (en) * | 2009-11-25 | 2016-10-19 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Methods and compositions for detecting genetic material |
EP3088532B1 (en) | 2009-12-22 | 2019-10-30 | Sequenom, Inc. | Processes and kits for identifying aneuploidy |
EP3382037B1 (en) * | 2010-01-19 | 2021-02-17 | Verinata Health, Inc. | Methods for determining fraction of fetal nucleic acids in maternal samples |
WO2011090556A1 (en) | 2010-01-19 | 2011-07-28 | Verinata Health, Inc. | Methods for determining fraction of fetal nucleic acid in maternal samples |
AU2011207561B2 (en) | 2010-01-19 | 2014-02-20 | Verinata Health, Inc. | Partition defined detection methods |
US9323888B2 (en) | 2010-01-19 | 2016-04-26 | Verinata Health, Inc. | Detecting and classifying copy number variation |
EP2513341B1 (en) * | 2010-01-19 | 2017-04-12 | Verinata Health, Inc | Identification of polymorphic sequences in mixtures of genomic dna by whole genome sequencing |
US9260745B2 (en) | 2010-01-19 | 2016-02-16 | Verinata Health, Inc. | Detecting and classifying copy number variation |
US20120100548A1 (en) | 2010-10-26 | 2012-04-26 | Verinata Health, Inc. | Method for determining copy number variations |
US10388403B2 (en) | 2010-01-19 | 2019-08-20 | Verinata Health, Inc. | Analyzing copy number variation in the detection of cancer |
US20110312503A1 (en) | 2010-01-23 | 2011-12-22 | Artemis Health, Inc. | Methods of fetal abnormality detection |
US11339429B2 (en) | 2010-05-18 | 2022-05-24 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal ploidy calling |
US9677118B2 (en) | 2014-04-21 | 2017-06-13 | Natera, Inc. | Methods for simultaneous amplification of target loci |
US11326208B2 (en) | 2010-05-18 | 2022-05-10 | Natera, Inc. | Methods for nested PCR amplification of cell-free DNA |
US11408031B2 (en) | 2010-05-18 | 2022-08-09 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal paternity testing |
US11332785B2 (en) | 2010-05-18 | 2022-05-17 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal ploidy calling |
US11322224B2 (en) * | 2010-05-18 | 2022-05-03 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal ploidy calling |
US11939634B2 (en) | 2010-05-18 | 2024-03-26 | Natera, Inc. | Methods for simultaneous amplification of target loci |
AU2011255641A1 (en) | 2010-05-18 | 2012-12-06 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal ploidy calling |
US20190010543A1 (en) | 2010-05-18 | 2019-01-10 | Natera, Inc. | Methods for simultaneous amplification of target loci |
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CA2802111A1 (en) * | 2010-07-23 | 2012-01-26 | Esoterix Genetic Laboratories, Llc | Identification of differentially represented fetal or maternal genomic regions and uses thereof |
US8700338B2 (en) | 2011-01-25 | 2014-04-15 | Ariosa Diagnosis, Inc. | Risk calculation for evaluation of fetal aneuploidy |
US20130040375A1 (en) | 2011-08-08 | 2013-02-14 | Tandem Diagnotics, Inc. | Assay systems for genetic analysis |
US11031095B2 (en) | 2010-08-06 | 2021-06-08 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Assay systems for determination of fetal copy number variation |
US11203786B2 (en) | 2010-08-06 | 2021-12-21 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Detection of target nucleic acids using hybridization |
US10533223B2 (en) | 2010-08-06 | 2020-01-14 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Detection of target nucleic acids using hybridization |
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US10167508B2 (en) | 2010-08-06 | 2019-01-01 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Detection of genetic abnormalities |
US20120034603A1 (en) | 2010-08-06 | 2012-02-09 | Tandem Diagnostics, Inc. | Ligation-based detection of genetic variants |
US20130261003A1 (en) | 2010-08-06 | 2013-10-03 | Ariosa Diagnostics, In. | Ligation-based detection of genetic variants |
CN108899091B (zh) | 2010-11-30 | 2022-04-15 | 香港中文大学 | 与癌症相关的遗传或分子畸变的检测 |
WO2012078792A2 (en) * | 2010-12-07 | 2012-06-14 | Stanford University | Non-invasive determination of fetal inheritance of parental haplotypes at the genome-wide scale |
AU2011348100B2 (en) | 2010-12-22 | 2016-08-25 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal paternity testing |
US11270781B2 (en) | 2011-01-25 | 2022-03-08 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Statistical analysis for non-invasive sex chromosome aneuploidy determination |
US8756020B2 (en) * | 2011-01-25 | 2014-06-17 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Enhanced risk probabilities using biomolecule estimations |
US20120190021A1 (en) * | 2011-01-25 | 2012-07-26 | Aria Diagnostics, Inc. | Detection of genetic abnormalities |
US10131947B2 (en) | 2011-01-25 | 2018-11-20 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Noninvasive detection of fetal aneuploidy in egg donor pregnancies |
US9994897B2 (en) | 2013-03-08 | 2018-06-12 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Non-invasive fetal sex determination |
AU2011358564B9 (en) | 2011-02-09 | 2017-07-13 | Natera, Inc | Methods for non-invasive prenatal ploidy calling |
CA2826748C (en) | 2011-02-09 | 2020-08-04 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Method of detecting variations in copy number of a target nucleic acid |
CA3160848A1 (en) | 2011-02-24 | 2013-03-28 | The Chinese University Of Hong Kong | Molecular testing of multiple pregnancies |
DK3567124T3 (da) * | 2011-04-12 | 2022-03-07 | Verinata Health Inc | Opløsning af genomfraktioner ved anvendelse af polymorfisme-optællinger |
GB2484764B (en) | 2011-04-14 | 2012-09-05 | Verinata Health Inc | Normalizing chromosomes for the determination and verification of common and rare chromosomal aneuploidies |
US9411937B2 (en) | 2011-04-15 | 2016-08-09 | Verinata Health, Inc. | Detecting and classifying copy number variation |
US20140235474A1 (en) | 2011-06-24 | 2014-08-21 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non invasive assessment of a genetic variation |
WO2013028739A1 (en) * | 2011-08-25 | 2013-02-28 | Complete Genomics | Phasing of heterozygous loci to determine genomic haplotypes |
US8712697B2 (en) | 2011-09-07 | 2014-04-29 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Determination of copy number variations using binomial probability calculations |
EP2764458B1 (en) | 2011-10-06 | 2021-04-07 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
US10196681B2 (en) | 2011-10-06 | 2019-02-05 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
US9984198B2 (en) | 2011-10-06 | 2018-05-29 | Sequenom, Inc. | Reducing sequence read count error in assessment of complex genetic variations |
US9367663B2 (en) | 2011-10-06 | 2016-06-14 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
US10424394B2 (en) | 2011-10-06 | 2019-09-24 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
AU2013209499B2 (en) | 2012-01-20 | 2018-05-10 | Sequenom, Inc. | Diagnostic processes that factor experimental conditions |
US9238836B2 (en) | 2012-03-30 | 2016-01-19 | Pacific Biosciences Of California, Inc. | Methods and compositions for sequencing modified nucleic acids |
WO2013130848A1 (en) * | 2012-02-29 | 2013-09-06 | Natera, Inc. | Informatics enhanced analysis of fetal samples subject to maternal contamination |
EP3757210B1 (en) * | 2012-03-02 | 2022-08-24 | Sequenom, Inc. | Methods for enriching cancer nucleic acid from a biological sample |
US9892230B2 (en) | 2012-03-08 | 2018-02-13 | The Chinese University Of Hong Kong | Size-based analysis of fetal or tumor DNA fraction in plasma |
WO2013138527A1 (en) | 2012-03-13 | 2013-09-19 | The Chinese University Of Hong Kong | Methods for analyzing massively parallel sequencing data for noninvasive prenatal diagnosis |
US20150094210A1 (en) | 2012-05-14 | 2015-04-02 | Bgi Diagnosis Co., Ltd. | Method, system and computer readable medium for determining base information in predetermined area of fetus genome |
US10504613B2 (en) | 2012-12-20 | 2019-12-10 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
US10289800B2 (en) | 2012-05-21 | 2019-05-14 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Processes for calculating phased fetal genomic sequences |
US9920361B2 (en) | 2012-05-21 | 2018-03-20 | Sequenom, Inc. | Methods and compositions for analyzing nucleic acid |
US20150105267A1 (en) * | 2012-05-24 | 2015-04-16 | University Of Washington Through Its Center For Commercialization | Whole genome sequencing of a human fetus |
US11261494B2 (en) | 2012-06-21 | 2022-03-01 | The Chinese University Of Hong Kong | Method of measuring a fractional concentration of tumor DNA |
US10497461B2 (en) | 2012-06-22 | 2019-12-03 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
CN110777195A (zh) * | 2012-07-13 | 2020-02-11 | 生命技术公司 | 采用一组snp的人身份识别 |
CA2878979C (en) * | 2012-07-13 | 2021-09-14 | Sequenom, Inc. | Processes and compositions for methylation-based enrichment of fetal nucleic acid from a maternal sample useful for non-invasive prenatal diagnoses |
AU2013292287A1 (en) | 2012-07-19 | 2015-02-19 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Multiplexed sequential ligation-based detection of genetic variants |
US20140065621A1 (en) * | 2012-09-04 | 2014-03-06 | Natera, Inc. | Methods for increasing fetal fraction in maternal blood |
US20140067355A1 (en) * | 2012-09-06 | 2014-03-06 | Ancestry.Com Dna, Llc | Using Haplotypes to Infer Ancestral Origins for Recently Admixed Individuals |
US9732390B2 (en) | 2012-09-20 | 2017-08-15 | The Chinese University Of Hong Kong | Non-invasive determination of methylome of fetus or tumor from plasma |
US10706957B2 (en) | 2012-09-20 | 2020-07-07 | The Chinese University Of Hong Kong | Non-invasive determination of methylome of tumor from plasma |
KR20230145530A (ko) * | 2012-09-20 | 2023-10-17 | 더 차이니즈 유니버시티 오브 홍콩 | 혈장으로부터 태아 또는 종양 메틸롬의 비침습적 결정 |
US10482994B2 (en) * | 2012-10-04 | 2019-11-19 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
US9977708B1 (en) * | 2012-11-08 | 2018-05-22 | 23Andme, Inc. | Error correction in ancestry classification |
US9213947B1 (en) | 2012-11-08 | 2015-12-15 | 23Andme, Inc. | Scalable pipeline for local ancestry inference |
US10643738B2 (en) | 2013-01-10 | 2020-05-05 | The Chinese University Of Hong Kong | Noninvasive prenatal molecular karyotyping from maternal plasma |
CN105190656B (zh) | 2013-01-17 | 2018-01-16 | 佩索纳里斯公司 | 用于遗传分析的方法和系统 |
US20130309666A1 (en) | 2013-01-25 | 2013-11-21 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
SG10201609080WA (en) | 2013-02-28 | 2016-12-29 | Univ Hong Kong Chinese | Maternal plasma transcriptome analysis by massively parallel rna sequencing |
EP2971100A1 (en) | 2013-03-13 | 2016-01-20 | Sequenom, Inc. | Primers for dna methylation analysis |
AU2014231358A1 (en) * | 2013-03-15 | 2015-09-24 | The Chinese University Of Hong Kong | Determining fetal genomes for multiple fetus pregnancies |
FI2981921T3 (fi) | 2013-04-03 | 2023-03-09 | Sequenom Inc | Menetelmiä ja prosesseja geneettisten variaatioiden ei-invasiiviseen arviointiin |
CA2909479A1 (en) * | 2013-05-09 | 2014-11-13 | F. Hoffmann-La Roche Ag | Method of determining the fraction of fetal dna in maternal blood using hla markers |
KR20230082691A (ko) | 2013-05-24 | 2023-06-08 | 시쿼넘, 인코포레이티드 | 유전적 변이의 비침습 평가를 위한 방법 및 프로세스 |
KR102447079B1 (ko) | 2013-06-21 | 2022-09-23 | 시쿼넘, 인코포레이티드 | 유전적 변이의 비침습 평가를 위한 방법 및 프로세스 |
US20150004601A1 (en) * | 2013-06-28 | 2015-01-01 | Ariosa Diagnostics, Inc. | Massively parallel sequencing of random dna fragments for determination of fetal fraction |
GB201318369D0 (en) * | 2013-10-17 | 2013-12-04 | Univ Leuven Kath | Methods using BAF |
GB2534067B (en) | 2013-08-30 | 2021-07-21 | Personalis Inc | Methods and systems for genomic analysis |
US10262755B2 (en) | 2014-04-21 | 2019-04-16 | Natera, Inc. | Detecting cancer mutations and aneuploidy in chromosomal segments |
WO2015048535A1 (en) | 2013-09-27 | 2015-04-02 | Natera, Inc. | Prenatal diagnostic resting standards |
US10577655B2 (en) | 2013-09-27 | 2020-03-03 | Natera, Inc. | Cell free DNA diagnostic testing standards |
WO2015051275A1 (en) | 2013-10-03 | 2015-04-09 | Personalis, Inc. | Methods for analyzing genotypes |
EP4258269A3 (en) | 2013-10-04 | 2024-01-10 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
CN111863131A (zh) | 2013-10-07 | 2020-10-30 | 塞昆纳姆股份有限公司 | 用于非侵入性评估染色体改变的方法和过程 |
WO2015138774A1 (en) | 2014-03-13 | 2015-09-17 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
CN106460070B (zh) | 2014-04-21 | 2021-10-08 | 纳特拉公司 | 检测染色体片段中的突变和倍性 |
WO2016011414A1 (en) | 2014-07-18 | 2016-01-21 | Illumina, Inc. | Non-invasive prenatal diagnosis of fetal genetic condition using cellular dna and cell free dna |
US20160026759A1 (en) * | 2014-07-22 | 2016-01-28 | Yourgene Bioscience | Detecting Chromosomal Aneuploidy |
JP2017522908A (ja) | 2014-07-25 | 2017-08-17 | ユニヴァーシティ オブ ワシントン | セルフリーdnaを生じる組織及び/又は細胞タイプを決定する方法、並びにそれを用いて疾患又は異常を識別する方法 |
WO2016019042A1 (en) | 2014-07-30 | 2016-02-04 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for non-invasive assessment of genetic variations |
CN104182655B (zh) * | 2014-09-01 | 2017-03-08 | 上海美吉生物医药科技有限公司 | 一种判断胎儿基因型的方法 |
CN104232778B (zh) * | 2014-09-19 | 2016-08-17 | 天津华大基因科技有限公司 | 同时确定胎儿单体型及染色体非整倍性的方法及装置 |
US10612080B2 (en) * | 2014-09-22 | 2020-04-07 | Roche Molecular Systems, Inc. | Digital PCR for non-invasive prenatal testing |
US10125399B2 (en) | 2014-10-30 | 2018-11-13 | Personalis, Inc. | Methods for using mosaicism in nucleic acids sampled distal to their origin |
CN105648045B (zh) * | 2014-11-13 | 2019-10-11 | 天津华大基因科技有限公司 | 确定胎儿目标区域单体型的方法和装置 |
CN105648044B (zh) * | 2014-11-13 | 2019-10-11 | 天津华大基因科技有限公司 | 确定胎儿目标区域单体型的方法和装置 |
CN104561311B (zh) * | 2015-01-04 | 2016-08-17 | 北京大学第三医院 | 一种来自人辅助生殖胚胎发育早期出生安全性预测的试剂盒 |
CN104561309B (zh) * | 2015-01-04 | 2017-04-19 | 北京积水潭医院 | 一种来自人辅助生殖囊胚植入前进行出生安全性预测的试剂盒 |
US10364467B2 (en) | 2015-01-13 | 2019-07-30 | The Chinese University Of Hong Kong | Using size and number aberrations in plasma DNA for detecting cancer |
CN107109324B (zh) * | 2015-01-16 | 2019-11-08 | 深圳华大基因股份有限公司 | 确定胎儿核酸含量的方法和装置 |
ES2908347T3 (es) | 2015-02-10 | 2022-04-28 | Univ Hong Kong Chinese | Detección de mutaciones para cribado de cáncer y análisis fetal |
US10424396B2 (en) * | 2015-03-27 | 2019-09-24 | Sentieon Inc. | Computation pipeline of location-dependent variant calls |
US11479812B2 (en) | 2015-05-11 | 2022-10-25 | Natera, Inc. | Methods and compositions for determining ploidy |
JP6873921B2 (ja) * | 2015-05-18 | 2021-05-19 | カリウス・インコーポレイテッド | 核酸の集団を濃縮するための組成物および方法 |
WO2017004612A1 (en) * | 2015-07-02 | 2017-01-05 | Arima Genomics, Inc. | Accurate molecular deconvolution of mixtures samples |
EP3325663B1 (en) | 2015-07-20 | 2020-08-19 | The Chinese University Of Hong Kong | Methylation pattern analysis of haplotypes in tissues in dna mixture |
ES2960201T3 (es) | 2015-07-23 | 2024-03-01 | Univ Hong Kong Chinese | Análisis de los patrones de fragmentación del ADN acelular |
IL285795B (en) | 2015-08-12 | 2022-07-01 | Univ Hong Kong Chinese | Sequencing a single molecule of DNA. plasma |
IL293187B2 (en) | 2015-09-22 | 2024-03-01 | Univ Hong Kong Chinese | Accurate quantification of a fetal DNA fragment using deep-shallow sequencing of maternal plasma DNA |
GB201518665D0 (en) | 2015-10-21 | 2015-12-02 | Singapore Volition Pte Ltd | Method for enrichment of cell free nucleosomes |
CN105335625B (zh) * | 2015-11-04 | 2018-02-16 | 和卓生物科技(上海)有限公司 | 胚胎植入前的遗传学检测装置 |
CN105926043B (zh) * | 2016-04-19 | 2018-08-28 | 苏州贝康医疗器械有限公司 | 一种提高孕妇血浆游离dna测序文库中胎儿游离dna占比的方法 |
US20170321270A1 (en) * | 2016-05-06 | 2017-11-09 | Counsyl, Inc. | Noninvasive prenatal diagnostic methods |
US11299783B2 (en) | 2016-05-27 | 2022-04-12 | Personalis, Inc. | Methods and systems for genetic analysis |
CA3030890A1 (en) | 2016-07-27 | 2018-02-01 | Sequenom, Inc. | Genetic copy number alteration classifications |
CA3037366A1 (en) | 2016-09-29 | 2018-04-05 | Myriad Women's Health, Inc. | Noninvasive prenatal screening using dynamic iterative depth optimization |
US11485996B2 (en) | 2016-10-04 | 2022-11-01 | Natera, Inc. | Methods for characterizing copy number variation using proximity-litigation sequencing |
EP3535415A4 (en) | 2016-10-24 | 2020-07-01 | The Chinese University of Hong Kong | TUMOR DETECTION METHODS AND SYSTEMS |
TWI675918B (zh) * | 2016-11-18 | 2019-11-01 | 香港中文大學 | 基於單倍型之通用非侵入性單基因疾病產前檢測 |
US10011870B2 (en) | 2016-12-07 | 2018-07-03 | Natera, Inc. | Compositions and methods for identifying nucleic acid molecules |
WO2018140521A1 (en) | 2017-01-24 | 2018-08-02 | Sequenom, Inc. | Methods and processes for assessment of genetic variations |
SG11201906397UA (en) | 2017-01-25 | 2019-08-27 | Univ Hong Kong Chinese | Diagnostic applications using nucleic acid fragments |
EP3585889A1 (en) | 2017-02-21 | 2020-01-01 | Natera, Inc. | Compositions, methods, and kits for isolating nucleic acids |
WO2018175907A1 (en) | 2017-03-24 | 2018-09-27 | Counsyl, Inc. | Copy number variant caller |
WO2018209222A1 (en) * | 2017-05-12 | 2018-11-15 | Massachusetts Institute Of Technology | Systems and methods for crowdsourcing, analyzing, and/or matching personal data |
KR102145417B1 (ko) * | 2017-05-24 | 2020-08-19 | 지니너스 주식회사 | 무세포 핵산으로부터 수득된 서열 분석 데이터에 대한 배경 대립인자의 빈도 분포를 생성하는 방법 및 이를 이용하여 무세포 핵산으로부터 변이를 검출하는 방법 |
WO2019010410A1 (en) * | 2017-07-07 | 2019-01-10 | Massachusetts Institute Of Technology | SYSTEMS AND METHODS OF GENETIC IDENTIFICATION AND ANALYSIS |
WO2019014455A2 (en) * | 2017-07-12 | 2019-01-17 | Ande Corporation | PATTERN RECOGNITION SYSTEM |
CN109280697B (zh) * | 2017-07-20 | 2022-04-26 | 天昊生物医药科技(苏州)有限公司 | 利用孕妇血浆游离dna进行胎儿基因型鉴定的方法 |
WO2019028462A1 (en) | 2017-08-04 | 2019-02-07 | Billiontoone, Inc. | TARGET-ASSOCIATED MOLECULES FOR CHARACTERIZATION ASSOCIATED WITH BIOLOGICAL TARGETS |
WO2019028470A2 (en) | 2017-08-04 | 2019-02-07 | Billiontoone, Inc. | DETERMINING AND ANALYZING SEQUENCING OUTPUTS USING TARGET-ASSOCIATED MOLECULES IN QUANTIFICATION ASSOCIATED WITH BIOLOGICAL TARGETS |
US11519024B2 (en) | 2017-08-04 | 2022-12-06 | Billiontoone, Inc. | Homologous genomic regions for characterization associated with biological targets |
CN107545153B (zh) * | 2017-10-25 | 2021-06-11 | 桂林电子科技大学 | 一种基于卷积神经网络的核小体分类预测方法 |
JP7047373B2 (ja) | 2017-12-25 | 2022-04-05 | トヨタ自動車株式会社 | 次世代シーケンサー用プライマー並びにその製造方法、次世代シーケンサー用プライマーを用いたdnaライブラリー並びにその製造方法、及びdnaライブラリーを用いたゲノムdna解析方法 |
PT3735470T (pt) | 2018-01-05 | 2024-01-31 | Billiontoone Inc | Modelos de controlo de qualidade para garantir a validade dos ensaios baseados em sequenciamento |
EP3781714A1 (en) | 2018-04-14 | 2021-02-24 | Natera, Inc. | Methods for cancer detection and monitoring by means of personalized detection of circulating tumor dna |
CA3105349A1 (en) | 2018-05-03 | 2019-11-07 | The Chinese University Of Hong Kong | Size-tagged preferred ends and orientation-aware analysis for measuring properties of cell-free mixtures |
US11814750B2 (en) | 2018-05-31 | 2023-11-14 | Personalis, Inc. | Compositions, methods and systems for processing or analyzing multi-species nucleic acid samples |
US10801064B2 (en) * | 2018-05-31 | 2020-10-13 | Personalis, Inc. | Compositions, methods and systems for processing or analyzing multi-species nucleic acid samples |
US11525159B2 (en) | 2018-07-03 | 2022-12-13 | Natera, Inc. | Methods for detection of donor-derived cell-free DNA |
CN113056563A (zh) * | 2018-09-03 | 2021-06-29 | 拉莫特特拉维夫大学有限公司 | 识别血液中基因异常的方法及系统 |
WO2020131699A2 (en) | 2018-12-17 | 2020-06-25 | Natera, Inc. | Methods for analysis of circulating cells |
CN109887548B (zh) * | 2019-01-18 | 2022-11-08 | 臻悦生物科技江苏有限公司 | 基于捕获测序的ctDNA占比的检测方法及检测装置 |
CN111560424A (zh) * | 2019-02-13 | 2020-08-21 | 广州医科大学附属第一医院 | 可检测的目标核酸、探针、确定胎儿f8基因单体型的方法及应用 |
CA3130810A1 (en) | 2019-03-25 | 2020-10-01 | The Chinese University Of Hong Kong | Determining linear and circular forms of circulating nucleic acids |
AU2020262082A1 (en) * | 2019-04-22 | 2021-11-25 | Personal Genome Diagnostics Inc. | Methods and systems for genetic analysis |
DK3916105T3 (da) * | 2019-08-14 | 2023-04-17 | Bgi Genomics Co Ltd | Fremgangsmåde og indretning til bestemmelse af en føtal nukleinsyrekoncentration i blodet af en gravid kvinde |
CA3110884A1 (en) | 2019-08-16 | 2021-02-25 | The Chinese University Of Hong Kong | Determination of base modifications of nucleic acids |
CN112466397A (zh) * | 2019-09-09 | 2021-03-09 | 深圳乐土生物科技有限公司 | 一种用于亲缘关系检测的方法和装置 |
JP7311934B2 (ja) * | 2020-02-05 | 2023-07-20 | ザ チャイニーズ ユニバーシティ オブ ホンコン | 妊娠中の無細胞断片を使用する分子分析 |
CN111312332B (zh) * | 2020-02-13 | 2020-10-30 | 国家卫生健康委科学技术研究所 | 基于hla基因的生物信息处理方法、装置及终端 |
US11817176B2 (en) | 2020-08-13 | 2023-11-14 | 23Andme, Inc. | Ancestry composition determination |
US20230307130A1 (en) * | 2020-11-08 | 2023-09-28 | The Johns Hopkins University | Methods and related aspects for analyzing chromosome number status |
CN112575077A (zh) * | 2020-12-23 | 2021-03-30 | 东莞市妇幼保健院 | 一种胎儿显性遗传病新发突变的无创基因检测方法及应用 |
EP4326905A1 (en) | 2021-04-22 | 2024-02-28 | Natera, Inc. | Methods for determining velocity of tumor growth |
WO2023014597A1 (en) | 2021-08-02 | 2023-02-09 | Natera, Inc. | Methods for detecting neoplasm in pregnant women |
WO2023133131A1 (en) | 2022-01-04 | 2023-07-13 | Natera, Inc. | Methods for cancer detection and monitoring |
Family Cites Families (28)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB9704444D0 (en) | 1997-03-04 | 1997-04-23 | Isis Innovation | Non-invasive prenatal diagnosis |
US6664056B2 (en) * | 2000-10-17 | 2003-12-16 | The Chinese University Of Hong Kong | Non-invasive prenatal monitoring |
US6927028B2 (en) | 2001-08-31 | 2005-08-09 | Chinese University Of Hong Kong | Non-invasive methods for detecting non-host DNA in a host using epigenetic differences between the host and non-host DNA |
NZ535045A (en) | 2002-03-01 | 2008-04-30 | Ravgen Inc | Rapid analysis of variations in a genome |
US6977162B2 (en) * | 2002-03-01 | 2005-12-20 | Ravgen, Inc. | Rapid analysis of variations in a genome |
RU2200761C1 (ru) | 2002-04-01 | 2003-03-20 | Московский НИИ педиатрии и детской хирургии | Набор рекомбинантных плазмидных днк рyai 11-19, рyai 2-45, рys 37 и рyai 7-29 для определения происхождения добавочных или маркерных (мини-) хромосом человека |
US20070178478A1 (en) | 2002-05-08 | 2007-08-02 | Dhallan Ravinder S | Methods for detection of genetic disorders |
US7727720B2 (en) * | 2002-05-08 | 2010-06-01 | Ravgen, Inc. | Methods for detection of genetic disorders |
JP2006521086A (ja) | 2003-02-28 | 2006-09-21 | ラブジェン, インコーポレイテッド | 遺伝子疾患の検出方法 |
US8394582B2 (en) * | 2003-03-05 | 2013-03-12 | Genetic Technologies, Inc | Identification of fetal DNA and fetal cell markers in maternal plasma or serum |
EP1524321B2 (en) | 2003-10-16 | 2014-07-23 | Sequenom, Inc. | Non-invasive detection of fetal genetic traits |
US7645576B2 (en) | 2005-03-18 | 2010-01-12 | The Chinese University Of Hong Kong | Method for the detection of chromosomal aneuploidies |
US20070122823A1 (en) | 2005-09-01 | 2007-05-31 | Bianchi Diana W | Amniotic fluid cell-free fetal DNA fragment size pattern for prenatal diagnosis |
GB0523276D0 (en) * | 2005-11-15 | 2005-12-21 | London Bridge Fertility | Chromosomal analysis by molecular karyotyping |
PL1981995T5 (pl) | 2006-02-02 | 2019-10-31 | Univ Leland Stanford Junior | Nieinwazyjne genetyczne badania przesiewowe płodu metodą analizy cyfrowej |
DK1996728T3 (da) * | 2006-02-28 | 2011-08-15 | Univ Louisville Res Found | Detektering af føtale chromosomale abnormiteter under anvendelse af tandem-enkeltnukleotid-polymorfismer |
EP2029779A4 (en) | 2006-06-14 | 2010-01-20 | Living Microsystems Inc | HIGHLY PARALLEL SNP GENOTYPING UTILIZATION FOR FETAL DIAGNOSIS |
US20100112590A1 (en) * | 2007-07-23 | 2010-05-06 | The Chinese University Of Hong Kong | Diagnosing Fetal Chromosomal Aneuploidy Using Genomic Sequencing With Enrichment |
HUE030510T2 (hu) | 2007-07-23 | 2017-05-29 | Univ Hong Kong Chinese | Magzati kromoszómális aneuploidia diagnosztizálása genomszekvenálás alkalmazásával |
CN104732118B (zh) * | 2008-08-04 | 2017-08-22 | 纳特拉公司 | 等位基因调用和倍性调用的方法 |
EP2379746B1 (en) | 2008-12-22 | 2017-03-08 | Celula Inc. | Methods and genotyping panels for detecting alleles, genomes, and transcriptomes |
CA2779695C (en) * | 2009-11-05 | 2016-05-24 | The Chinese University Of Hong Kong | Fetal genomic analysis from a maternal biological sample |
EP3406737B1 (en) * | 2009-11-06 | 2023-05-31 | The Chinese University of Hong Kong | Size-based genomic analysis |
US9260745B2 (en) | 2010-01-19 | 2016-02-16 | Verinata Health, Inc. | Detecting and classifying copy number variation |
AU2011255641A1 (en) | 2010-05-18 | 2012-12-06 | Natera, Inc. | Methods for non-invasive prenatal ploidy calling |
US20120190021A1 (en) | 2011-01-25 | 2012-07-26 | Aria Diagnostics, Inc. | Detection of genetic abnormalities |
CA3160848A1 (en) | 2011-02-24 | 2013-03-28 | The Chinese University Of Hong Kong | Molecular testing of multiple pregnancies |
AU2014231358A1 (en) | 2013-03-15 | 2015-09-24 | The Chinese University Of Hong Kong | Determining fetal genomes for multiple fetus pregnancies |
-
2010
- 2010-11-05 CA CA2779695A patent/CA2779695C/en active Active
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