ES2346570T3 - Combinacion immunoestimulante para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis c. - Google Patents

Combinacion immunoestimulante para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis c.

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ES2346570T3 ES06830863T ES06830863T ES2346570T3 ES 2346570 T3 ES2346570 T3 ES 2346570T3 ES 06830863 T ES06830863 T ES 06830863T ES 06830863 T ES06830863 T ES 06830863T ES 2346570 T3 ES2346570 T3 ES 2346570T3
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Abstract

La presente invención se refiere a una combinación inmuno-estimuladora para la profilaxis y tratamiento de la hepatitis C, caracterizada porque comprende : un agonista de TLR3, un agonista de CD40 y la proteína NS3 del virus de la hepatitis C. Por otro lado, la invención se refiere a las composiciones farmacéuticas que comprendan dicha combinación inmunoestimuladora, al uso de las mismasy a un kit compuesto por dichas composiciones farmacéuticas. Porúltimo, la presente invención se refiere a un método para producir una respuesta inmune frente al virus de la hepatitis C, y a una vacuna frente a dicho virus.

Description

Combinación inmunoestimulante para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis C.
Campo técnico de la invención
La presente invención se refiere a una combinación inmunoestimulante para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis C, que incorpora la proteína NS3 del VHC, junto con adyuvantes seleccionados por su capacidad de inducir respuestas específicas CD8+ y CD4+ potentes y duraderas frente al virus VHC.
Estado de la técnica
Con una prevalencia mundial estimada de más de 170 millones de personas infectadas, la infección por el virus de la hepatitis C (VHC) supone hoy una pesada carga para la salud pública. Prevalencia que presumiblemente permanecerá invariable en los próximos años.
La infección por el VHC se caracteriza por una elevada tendencia a la cronicidad. El VHC persiste en un 70% de los individuos infectados, de los que un 20% desarrollan cirrosis y un 2,5% evolucionan hasta producir cáncer hepático.
La herramienta terapéutica de referencia actual son los protocolos terapéuticos basados en la utilización del interferón. Sin embargo, estas terapias antivirales resultan económicamente costosas, relativamente tóxicas y solamente eficaces en el 50-60% de los pacientes tratados. Es por tanto necesario y deseable desarrollar nuevas estrategias terapéuticas que sean más eficaces y que toleren mejor los pacientes.
Una revisión actualizada sobre el VHC puede encontrarse en Nature ("Insights: Hepatitis C". Nature 2005, Supplements; Vol. 436, No. 7053, pág. 929-978).
Aunque, lamentablemente, todavía no disponemos de una vacuna eficaz frente al virus de la hepatitis C, hay datos y evidencias experimentales que inducen a pensar que una vacuna eficaz es posible. Aunque se sintetizan anticuerpos antivirales en respuesta a la infección, el estado crónico se caracteriza por la ausencia de respuestas inmunes celulares por parte de células T citotóxicas (CD8+) y T colaboradoras (CD4+). Así, se postula que el VHC ha desarrollado estrategias que le permiten evadir específicamente las respuestas inmunes antivirales, donde la potencia y calidad de las respuestas T citotóxicas y T colaboradoras determina si los pacientes se recuperarán (bien espontáneamente o en respuesta a un tratamiento) o desarrollarán la infección crónica.
El principal objetivo de cualquier vacuna es estimular la inmunidad adquirida específica de antígeno, cuyos mediadores son los linfocitos B y T. En este contexto, las células presentadoras de antígeno (APC) desempeñan una función importante en la iniciación de las respuestas inmunes específicas y en particular en la activación de linfocitos T. Las APC, principalmente las células dendríticas, capturan antígenos en los órganos periféricos y, tras recibir un estímulo de activación, migran a los órganos linfáticos. Allí, las células dendríticas presentan superficialmente, unidos a moléculas propias del complejo mayor de histocompatibilidad MHC, los productos peptídicos derivados de la degradación de los antígenos (epítopos) y simultáneamente producen quimiocinas y citoquinas para atraer y activar células T. El proceso de activación de células dendríticas, también conocido como maduración, está caracterizado por una expresión elevada de moléculas MHC (señal 1), moléculas coestimulantes (señal 2) y citoquinas polarizadoras como interleucina-12 (IL-12) (señal 3). La maduración se induce por factores como componentes de patógenos o moléculas de hospedador que son frecuentes en los procesos de inflamación o daño celular. Estos factores actúan sobre las células dendríticas a través de receptores específicos para productos derivados de microorganismos, como los receptores de tipo TLR (receptor de tipo peaje), receptores para citoquinas (TNF-\alpha, IL-1, IFN-\alpha) o receptores para ligandos en la superficie de las células (por ejemplo, CD40).
La estimulación y activación de las distintas poblaciones de células T mediante las APC está restringida por el tipo de moléculas MHC por una parte, y, por otra por las características de los epítopos que forman complejos con dichas moléculas MHC. Así, por ejemplo, se han identificado determinados fragmentos de proteínas virales que inducen específicamente la activación de linfocitos T citotóxicos CD8+ (CTL), conocidos como epítopos de linfocitos o células T CD8+ o epítopos CD8+; o epítopos que inducen específicamente la activación de linfocitos T colaboradores CD4+ (HTL), epítopos CD4+. La base de datos "HCV Immunology Database" (http://hcv.lanl.gov/content/immuno/immuno-main.html) compila los epítopos para linfocitos T, tanto de CTL CD8+ como de HTL CD4+, identificados sobre la base de proteínas virales de distintas cepas y aislados del virus de la hepatitis C.
El desarrollo de protocolos de inmunización basados en la utilización de epítopos en forma de péptidos requiere por tanto la selección previa de aquellos péptidos que son adecuados para cada individuo, en función de las moléculas MHC que presente. Esto supone que, dependiendo del MHC de cada individuo, tendría que seleccionarse una combinación particular de péptidos que pudieran comportarse como epítopos en ese contexto. La utilización de antígenos grandes permite superar este problema, puesto que habitualmente son poliepitópicos y dentro de su secuencia presentan diversos epítopos, tanto para CTL CD8+ como para HTL CD4+, que pueden presentar moléculas MHC de diferentes individuos. De este modo, puede utilizarse un único antígeno como vacuna en individuos con diversos MHC.
Dentro de las diferentes proteínas del VHC, core y NS3 presentan una gran inmunogenicidad, y en aquellos individuos que se reponen de la infección, se detectan potentes respuestas CTL CD8+ y HTL CD4+ frente a ellas. Sin embargo, existen datos que muestran que core también puede tener efectos deletéreos para las células del sistema inmunitario cuando está en contacto con ellas, lo que no la hace aconsejable como antígeno en estrategias de vacunación. Por otro lado, NS3 es una proteína que apenas ha demostrado este tipo de efecto y podría ser un buen candidato como un antígeno para la inducción de respuestas CTL CD8+ y HTL CD4+.
En este sentido, el documento WO 2002/014362 A2 presenta el uso de la proteína NS3 de VHC como un antígeno en la fabricación de vacunas para la profilaxis y el tratamiento de la infección por VHC. NS3 puede acompañarse de una ribavirina adyuvante, que puede encontrarse en la misma composición farmacéutica o en una diferente. Adicionalmente, la administración adyuvante puede ser simultánea a la del antígeno o en diferente momento. Este documento, sin embargo, no demuestra que la rivabirina potencie la respuesta inmune de CD8 frente a NS3.
Los HTL CD4+ desempeñan una función en la inmunidad adquirida, entre otros mecanismos mediante la activación de las APC, la activación de CTL y la inducción de memoria. En particular, se ha descrito que las células CD4+ específicas para el VHC son necesarias para el mantenimiento de los CTL antivirales (Grakoui A. et al; "HCV persistence and immune evasion in the absense of memory T cell help"; Science, 2003; 302:659-662). Por lo tanto, una vacuna eficaz frente al virus de la hepatitis C debe proporcionar la máxima potencia en la inducción de respuestas no solamente CTL CD8+, sino también de respuestas HTL CD4+. Dicha vacuna requerirá, por lo tanto, una selección de antígenos específicos que proporcione dichas respuestas.
Sin embargo, no parece que una combinación de antígenos sea por sí sola capaz de proporcionar una vacuna eficaz frente al VHC. Puesto que la maduración de células dendríticas es un requisito para la iniciación y activación eficaz de linfocitos T, dicha vacuna podría beneficiarse con la inclusión en la combinación inmunoestimulante de algunos adyuvantes, que estimularían la maduración de las células dendríticas. Como adyuvantes, podrían utilizarse ligandos de los receptores TLR, de receptores de citoquinas o de receptores para ligandos intercelulares ya citados, o mejor aún una combinación sinérgica de dichos adyuvantes.
De esta manera, por ejemplo, Rouas et al. (International Immunology, May 2004, 16 (5):767-773) describe el uso in vitro de mCD40L, IFN-\gamma y poli(I:C), un ligando sintético de TLR3, en una composición farmacéutica que produce células dendríticas maduras. Este muestra que las células dendríticas que maduran con poli(I:C) son las únicas que secretan IL-12p70 después de la estimulación con CD40L, que no se produce tras la maduración con IFN-\gamma. También describe la maduración de células dendríticas cuando se han incubado tanto con CD40L como con poli(I:C). Las células dendríticas maduras son muy importantes en la respuesta inmune ya que la IL-2 que estas secretan activa tanto linfocitos Th1 como linfocitos T citotóxicos.
Además, el documento US2004/0141950 describe combinaciones inmunoestimulantes que incluyen un agonista de TLR y un agonista de moléculas de las superfamilias del factor de necrosis tumoral (TNF) o de sus receptores (TNFR), que pueden incluir también un antígeno. Entre las numerosas combinaciones posibles presenta la combinación de un ligando de CD40 (un anticuerpo anti-CD40) y de poli(I:C), una combinación para la que se demuestra un efecto sinérgico en la expansión de linfocitos T CD8+. Asimismo, Ahonen et al. (J. Exp. Med. 2004; 199:775-784) presentan datos sobre la capacidad sinérgica de agonistas de TLR/CD40 para inducir la expansión y diferenciación de CTL CD8+ específicos de antígeno de una manera que es independiente de los linfocitos T CD4+. Aunque estos trabajos describen la capacidad de TLR/CD40 para activar linfocitos T CD8+ de memoria específica de antígeno, dichos trabajos no permiten establecer si la combinación de agonistas de TLR/CD40 puede además estimular las respuestas HTL CD4+.
En el caso de la infección por VHC, se han encontrado claras diferencias en las respuestas HTL CD4+ cuando se comparan pacientes infectados con pacientes que han podido eliminar la infección. Sin embargo, aunque con menor intensidad que en los pacientes curados, en los pacientes infectados todavía son detectables las respuestas CTL CD8+. Por lo tanto, aunque los CTL se comportan como una población efectora importante en el aclaramiento de la infección por VHC, las células CD4+ también desempeñan una función importante en el control de la enfermedad. Además, se ha descrito que la inducción de linfocitos T CD4+ es importante para el mantenimiento de las respuestas antivirales de CTL (Grakoui A. et al; "HCV persistence and immune evasion in the absense of memory T cell help"; Science, 2003; 302:659-662). Estos datos sugieren que para la vacunación y terapia de las enfermedades virales debidas a VHC, es importante la inducción de respuestas antivirales potentes y duraderas tanto CD8+ como CD4+.
Es por tanto un objetivo de la presente invención seleccionar combinaciones inmunoestimulantes de antígenos y adyuvantes adecuadas para la profilaxis y tratamiento de la hepatitis C, que proporcionarán una estimulación de respuestas tanto CD8+ como CD4+ que sean más potentes, completas y duraderas.
Descripción detallada de la invención
Un primer objetivo de la invención se refiere a una combinación inmunoestimulante para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis C, en adelante denominada como la combinación inmunoestimulante de la invención, que comprende un agonista de TLR3, un agonista de CD40 o una secuencia de ADN que lo codifica, y un polipéptido que comprende la proteína NS3 del virus de la hepatitis C o un fragmento de dicha proteína NS3 con capacidad para inducir respuestas CD8+ y CD4+.
Un "agonista de TLR3" se refiere a un ligando que puede combinarse o unirse con los receptores TLR3 ("receptor de tipo peaje 3") y producir una respuesta celular. TLR3 es un receptor para ARN bicatenario que transmite señales que activan NF-\kappaB y la producción de interferones (IFN) de tipo I (IFN-\alpha e IFN-\beta) y que estimula la maduración de las células dendríticas. Los ratones que carecen de la expresión de TLR3 mostraron una reducción en sus respuestas a poli(I:C) -un ligando de TLR3 similar al ARN bicatenario generado durante la replicación de los virus del tipo del VHC-, junto con la resistencia al efecto letal de poli(I:C) cuando están sensibilizados con D-galactosamina y una reducción en la producción de citoquinas inflamatorias (Alexopoulou et al. Nature, 2001, Vol. 413, págs. 732-738). En una realización particular de la invención, dicho ligando de TLR3 puede ser un ARN bicatenario viral o una doble cadena de ácido poliinosínico-policitidílico, poli(I:C).
Un "agonista CD40" se refiere a un ligando, que puede combinarse o unirse con los receptores CD40 induciendo de la misma manera una respuesta celular. CD40 es una molécula que se expresa en la membrana de diferentes tipos celulares, tales como linfocitos B o células presentadoras de antígeno (macrófagos, células dendríticas, etc.). El ligando natural de CD40 (CD40L o CD154) se expresa principalmente en linfocitos T que se han activado tras el reconocimiento del antígeno. La interacción de CD40L con la CD40 presente en la célula presentadora de antígeno induce la maduración de ésta. Este fenómeno, de manera similar a los estímulos que provienen de patógenos, hace que la célula presentadora de antígeno tenga una mayor capacidad para inducir respuestas inmunitarias. Así, el agonista de CD40 de la composición inmunoestimulante de la invención, se refiere por una parte al ligando CD40L o a un fragmento de dicho CD40L que conserva la capacidad de unirse a CD40 e inducir una respuesta celular o inmune. En una realización particular el ligando puede ser un anticuerpo específico frente a CD40 (anti-CD40) o un fragmento del mismo que conserve la capacidad de unirse a CD40. Además, el ligando de CD40 o su fragmento puede estar presente en la combinación inmunoestimulante bien en forma de proteína o también como un ácido nucleico recombinante (ADN) que codifica dicho ligando, por ejemplo en un vector viral para terapia génica o transferencia.
Un "antígeno" se refiere a cualquier sustancia que es capaz de inducir una respuesta inmune, tanto humoral como celular, en el organismo de un individuo (un hombre o un animal), o que puede inducir una respuesta inmune celular (expansión, activación y/o maduración de células inmunes, producción de citoquinas o anticuerpos) cuando entra en contacto con células inmunitarias. En particular, un antígeno puede ser una proteína viral, un péptido o fragmento de dicha proteína viral, una proteína recombinante de dichas proteínas virales o incluso un péptido sintético capaz de inducir las respuestas señaladas.
Un "epítopo inductor de CD8+" se refiere a un fragmento o cadena polipeptídica parcial de un antígeno que es capaz de inducir específicamente la activación de linfocitos T citotóxicos CD8+ (CTL). Un "epítopo inductor de CD4+" se refiere a un fragmento o cadena polipeptídica parcial de un antígeno que es capaz de inducir específicamente la activación de linfocitos T colaboradores CD4+ (HTL).
La "proteína NS3" se refiere a la proteína no estructural NS3 del virus de la hepatitis C, una proteína de 67 kDa que incluye 2 dominios, una serina proteinasa que abarca los 189 aminoácidos del extremo N-terminal y un dominio con actividad helicasa nucleósido trifosfatasa que abarca los 442 aminoácidos del extremo C-terminal. La secuencia de la proteína NS3 incluida en el polipéptido de la combinación inmunoestimulante de la invención puede corresponder a cualquier cepa o aislado del virus de la hepatitis C, en particular cualquier cepa o aislado del virus de la hepatitis C humana. En una realización particular, el polipéptido, que comprende la proteína NS3 se ha obtenido por tecnología recombinante. En una realización específica no limitante de la invención, se utiliza una proteína NS3 recombinante con la secuencia SEC. ID. Nº: 1 (correspondiente a los números de acceso a Genebank DQ068198.1 y AAY84763.1, VRL 28-NOV-2005). También se ha utilizado otra secuencia de proteína recombinante SEC. ID. Nº: 2 (correspondiente al número de acceso a Genebank D90208).
En otra realización alternativa de la invención, también es posible utilizar un polipéptido que comprende un fragmento de la proteína NS3, de tal manera que dicho fragmento es capaz de inducir respuestas CD4+ y CD8+. Por lo tanto, dicho fragmento deberá incluir al menos un epítopo inductor de CD8+ y un epítopo inductor de CD4+.
En una realización específica, la combinación inmunoestimulante de la invención comprende poli(I:C), un anticuerpo anti-CD40 y un polipéptido que contiene la proteína NS3.
En una realización preferida de la invención, todos los componentes que tiene la combinación inmunoestimulante forman parte de la misma composición farmacéutica, donde cada uno de los componentes se encuentra presente en cantidades farmacéuticamente aceptables. Además, la invención también se refiere a dicha composición farmacéu-
tica.
En otra realización específica de la presente invención, los componentes de la combinación inmunoestimulante se encuentran formando parte de al menos dos composiciones farmacéuticas. De la misma manera, la invención se refiere al uso de dicha combinación inmunoestimulante caracterizado por que dichas composiciones farmacéuticas se administran simultáneamente. En otra realización de la invención, el uso de dicha combinación inmunoestimulante se caracteriza por que dichas composiciones farmacéuticas se administran en momentos diferentes, mediante la misma vía de administración o mediante vías diferentes. Así, una realización específica de la invención se refiere a un kit para la administración de la combinación inmunoestimulante anteriormente descrita, caracterizado por que comprende al menos dos composiciones farmacéuticas diferentes.
En otro aspecto, la invención se refiere a un método para producir una respuesta inmune frente al virus de la hepatitis C caracterizado por que consiste en la administración de una combinación estimulante anteriormente definida, en una cantidad eficaz para inducir una respuesta inmune. En una realización preferida, el método de la invención consiste en un tratamiento profiláctico. En una realización más preferida el método de la invención consiste en un tratamiento terapéutico.
Finalmente, la invención también se refiere a una vacuna frente al virus de la hepatitis C, caracterizada por que comprende una combinación inmunoestimulante anteriormente definida y que constituye el objetivo de la presente invención.
Breve descripción de las figuras
Figura 1. La inmunización con anti-CD40 y poli(I:C) junto con la proteína NS3 induce respuestas T CD8+ y CD4+ multiepitópicas. Se inyectó 50 \mug de anti-CD40 (i.p) a ratones HHD (dos por grupo). Cuatro horas más tarde, se les inyectó 50 g de poli(I:C) (i.v.) y 500 \mug de proteína NS3 recombinante (i.p.) (SEC. ID. Nº: 1). Seis días más tarde se sacrificaron los animales y se extrajeron los esplenocitos para su estimulación in vitro con diferentes antígenos y el análisis de la respuesta inmunitaria inducida. (A) Las células se estimularon durante cinco días con los epítopos CD8+ 1073, 1406 o 1038 (10 \muM) en presencia de IL-2. Después, para cada grupo de esplenocitos, se midió la respuesta lítica frente a células diana que se cargaron (péptido; barras negras) o no (control; barras blancas) con el péptido correspondiente. Se mostraron los resultados obtenidos con un porcentaje efectoras:diana de 100:1. B). De la misma manera, los esplenocitos se cultivaron con diferentes concentraciones (0,1-10 \muM) de los péptidos 1073 (círculos negros), 1406 (triángulos blancos) o 1038 (triángulos negros) y en los sobrenadantes de cultivo obtenidos tras 48 h de estimulación se midió el contenido en IFN-\gamma mediante ELISA. (C) También se estimularon los esplenocitos durante 48 h con 5 o 1 \mug/ml de la proteína NS3 utilizada en la inmunización (SEC. ID. Nº: 1), con 1 \mug/ml de proteína NS3 producida en bacterias (SEC. ID. Nº: 3) o con medio de cultivo (control) para medir la respuesta CD4+. Tras este periodo de tiempo se recogieron los sobrenadantes y se midió por ELISA la cantidad de IFN-\gamma producida.
Figura 2. Medida de la cantidad de proteína NS3 necesaria para inducir respuestas T CD4+ y CD8+ en la inmunización con poli(I:C) y anti-CD40. Se inmunizaron ratones HHD (dos por grupo) con proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 1) (500, 250, 125 o 25 \mug/ratón) junto con poli(I:C) y anti-CD40, siguiendo el protocolo que se describe en la figura 1. También, se incluyó un grupo control inmunizado de la misma manera, que utilizaba como antígenos 5 \mug de NS3 (SEC. ID. Nº: 1) y 50 \mug de los péptidos 1073 y 1038, junto con poli(I:C) y anti-CD40. Seis días más tarde se sacrificaron los animales y se extrajeron los esplenocitos y se estimularon con los diferentes antígenos (A). Para medir la respuesta lítica inducida, las células se estimularon durante cinco días con el epítopo CD8+ 1073 (10 \muM) e IL-2. A continuación, se midió dicha respuesta enfrentando diferentes cantidades de células efectoras frente a un número fijo de células diana cargadas con los péptidos. Además, también se analizó la respuesta CD8+ que se había inducido, mediante la medida de la producción de IFN-\gamma. Para ello, las células se estimularon con diferentes concentraciones de los péptidos 1073 (B) y 1038(C). Las células también se estimularon con la proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 1) (D), para cuantificar la respuesta CD4+. Tras 48 h se midió la cantidad de IFN-\gamma presente en los sobrenadantes.
Figura 3. La inmunización con poli(I:C) y anti-CD40 junto con la proteína NS3 induce respuestas CD8+ y CD4+ en otras cepas de ratones con diferente MHC. Los ratones C57BL6 (que tienen moléculas MHC del tipo H-2b) (dos por grupo) recibieron una (cuadrados blancos) o dos (cuadrados negros) inmunizaciones con 100 \mug de NS3 (SEC. ID. Nº: 1) junto con poli(I:C) y anti-CD40 siguiendo el protocolo que se indica en la figura 1. Seis días después, los animales se sacrificaron y los esplenocitos se cultivaron con diferentes antígenos para medir las respuestas CD8+ y CD4+ inducidas. El epítopo de restricción H-2 Db 1629-1637 (GAVQNEVTL) (SEC. ID. Nº: 7) se utilizó para estimular los esplenocitos y medir respuestas CD8+ (A). La proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 1) (B) se utilizó como estímulo para determinar las respuestas CD4+. Después de dos días de cultivo, se recogieron los sobrenadantes y se midió la cantidad de IFN-\gamma producida.
Figura 4. La inmunización con la proteína NS3 junto con poli(I:C) y anti-CD40 induce respuestas CD8+ capaces de reconocer a células que expresan proteínas del VHC. (A) Se inyectó a ratones HHD (dos por grupo) 100 \mug de proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 2) más poli(I:C) y anti-CD40 como se indica en la figura 1. Seis días más tarde, se sacrificaron los animales y se estimularon sus esplenocitos con células T1/HCVcon (células T1 transfectadas con un plásmido que expresa las proteínas del VHC) tratadas con mitomicina, en presencia de IL-2. Tras cinco días de estimulación, se midió la capacidad de los esplenocitos para reconocer a las células T1/HCVcon en ensayos de actividad lítica. Para ello, diferentes cantidades de esplenocitos se enfrentaron a un número fijo de células T1/HCVcon (círculos negros) o de células control T1 sin transfectar (círculos blancos).
Figura 5. La inmunización con poli(I:C) y anti-CD40 junto con la proteína NS3 induce respuestas T CD4+ y CD8+ de larga duración. Se inyectó a ratones HHD (dos por grupo) 100 \mug de proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 2) más poli(I:C) y anti-CD40 como se indica en la figura 1. Dos semanas después, los animales recibieron una segunda inmunización en las mismas condiciones. Sesenta días después de la última inmunización los animales se sacrificaron y se extrajeron sus esplenocitos para el estudio de la respuesta T CD8+ y CD4+ de larga duración. (A) Los esplenocitos se estimularon con el epítopo CD8+ 1073 (10 \muM) o en ausencia de antígeno, y 48 h más tarde se recogieron los sobrenadantes de cultivo para medir la cantidad de IFN-\gamma producido. (B) Los esplenocitos se cultivaron durante 5 días con el péptido 1073 (10 \muM) e IL-2, y después se estudió su capacidad para lisar células diana cargadas con el péptido 1073. Para ello, se enfrentaron diferentes cantidades de células efectoras frente a un número fijo de células diana cargadas con el péptido 1073 (círculos negros) o sin cargar con péptido (círculos blancos). (C) Se estudió la respuesta CD4+ mediante la estimulación de los esplenocitos con la proteína NS3 (1 \mug/ml) (SEC. ID. Nº: 2) o en ausencia de antígeno. Tras 48 h se recogieron los sobrenadantes y se midió la cantidad de IFN-\gamma producido.
Modo de realización de la invención
Los siguientes ejemplos, Sin ser en modo alguno limitantes, pretenden ilustrar la realización de la invención que constituye la presente solicitud de patente.
Material y métodos relativos Epítopos, antígenos y reactivos
Los péptidos o epítopos utilizados se sintetizaron manualmente en un sintetizador múltiple de péptidos empleando la química Fmoc (Wellings DA y Atherton E. Methods Enzymol 1997;289:44-67). Se empleó el ensayo de ninhidrina de Kaiser para controlar cada paso. Al final de la síntesis se escindieron y desprotegieron con ácido trifluoroacético y se lavaron con éter dietílico. La pureza de los péptidos fue siempre superior al 90% determinado por HPLC.
TABLA 1 Péptidos y epítopos sintetizados y utilizados en los ejemplos
1
La numeración del péptido o epítopo se refiere a su posición relativa HCVH, tomando como referencia la secuencia completa en la cepa H de la hepatitis C humana que habitualmente se toma como prototipo (Número de Acceso a GeneBank M67463). Así, por ejemplo, la base de datos "HCV Immunology Database" (http://hcv.lanl.gov/content/immuno/
immuno-main.html) compila los epítopos de linfocitos T, tanto de linfocitos T citotóxicos como T colaboradores, identificados en las proteínas virales de distintas cepas y aislados del virus de la hepatitis C, todos ellos ordenados también de acuerdo con su posición relativa respecto a la cepa H del virus de acuerdo con la referencia de GeneBank indicada.
Se ha utilizado como inmunógeno un polipéptido recombinante de 655 aminoácidos que contiene la secuencia completa de la proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 1; número de acceso a GeneBank AAY84763.1, VRL 28-NOV-2005; 631 aminoácidos). Así como los 631 aminoácidos de la proteína NS3, el polipéptido incluye también una cola con una secuencia c-myc, para la detección con el anticuerpo monoclonal anti-cmyc y una cola de Histidinas. La proteína se ha producido en Pichia pastoris. Se mantiene en suspensión en una solución de Tris 22,5 mM/Urea 3,76 M/NaCl 300 mM. La proteína se ha purificado mediante cromatografía en columna de Ni.
También se ha utilizado como inmunógeno otro polipéptido recombinante, que contiene los 635 aminoácidos que comprenden la secuencia completa de la proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 2; Número de acceso a GeneBank D90208). Así como los aminoácidos correspondientes a NS3, la poliproteína también contiene una cola de Histidinas para su purificación. La secuencia de ADN correspondiente a NS3 se obtuvo por digestion con Sal I y Not I del plásmido gWIZ, que contenía la secuencia de NS3 (proporcionado por la Dra. G Inchauspe, Lyon, Francia). El producto de la digestión se clonó entre los sitios BsrG I y Not I del plásmido pET-45b(+) (Novagen, Madison WI). Se expresó en E.coli y se purificó mediante cromatografía de afinidad en una columna de níquel seguida de una cromatografía de intercambio iónico.
De la misma manera, para los ensayos in vitro se ha utilizado como antígeno un polipéptido recombinante (Mikrogen; Número de catálogo 94302) que contiene los últimos 20 aminoácidos de la proteína no estructural NS2 y los 508 primeros aminoácidos de la proteína NS3 de VHC (SEC. ID. Nº: 3).
Como agonista de TLR3, se ha utilizado poli(I:C) obtenido de Amersham (Número de catálogo 27-4732-01).
Como agonista de CD40, se utilizaron anticuerpos anti-CD40, purificados a partir del hibridoma FGK-45 (Rolink, A., et al. Immunity 1996. 5:319-330).
Todos los reactivos contenían <1 unidad de endotoxina por mg de producto, determinado mediante el ensayo QCL-1000 de lisado del amebocito limulus (Bio Whittaker).
Ratones
Los ratones C57B1/6 de seis a ocho semanas se obtuvieron de Harlan. Se utilizaron también ratones HHD, transgénicos para las moléculas HLA-A2.1 humanas (Pascolo S et al. J. Exp. Med. 1997. 185: 2043-2051). Todos los animales se mantuvieron en condiciones libres de patógenos y se trataron de acuerdo con las normas de la institución.
Líneas celulares
Se utilizaron células T2 (Salter R et al. Immunogenetics. 1985 21: 235-246) como células diana para ensayos de liberación de cromo con linfocitos T citotóxicos (CTL) procedentes de ratones HHD.
Se utilizaron células T1, transfectadas con un plásmido portador de la región codificante del VHC (células T1/
HCVcon), para los ensayos de reconocimiento de células que expresaban las proteínas del VHC. Estas células las proporcionó el Dr. D. Moradpour (Freiburg, Alemania; Volk B, et al. J Gen Virol. 2005; 86: 1737-1746). Se utilizaron también células T1 sin transfectar (ATCC, nº de catálogo CRL-1991) como control.
Todas las células se cultivaron en medio completo (RPMI 1640 con 10% de suero bovino fetal, 100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina, 2mM de glutamina y 50 \muM de 2-mercaptoetanol). El medio de cultivo de la línea T1/HCVcon contenía también 2 mg/ml de G418 (Gibco).
Inmunización
Se inmunizaron grupos de dos ratones por vía i.p. con 50 \mug de anti-CD40. Cuatro horas más tarde, se les inyectó 50 \mug de poli(I:C) (i.v.) y diferentes cantidades de los antígenos: proteína NS3 o mezclas de NS3 con péptidos, (i.p.).
Estimulación de células esplénicas para la producción de citoquinas
Las células esplénicas se resuspendieron en medio completo y se sembraron a 8x10^{5} células/pocillo en 0,2 ml en placas de 96 pocillos con fondo en forma U, en ausencia o presencia de péptidos o de la proteína recombinante NS3 del VHC.
Dos días después, se recogieron los sobrenadantes para medir la presencia de IFN-\gamma mediante ELISA (BD-Pharmingen), siguiendo las instrucciones del fabricante.
Medida de la actividad lítica de CTL
Para medir las respuestas CTL, se incubaron los esplenocitos procedentes de animales inmunizados con péptidos (10 \muM) durante 2h a 37ºC, se lavaron dos veces y se cultivaron en placas de 24 pocillos a una confluencia de 7,5x10^{6} células/pocillo. En los experimentos realizados para medir el reconocimiento de células T1/HCVcon, se cultivaron 7,5x10^{6} esplenocitos de ratones HHD con 7,5x10^{5} células T1/HCVcon previamente tratadas con Mitomicina C (Sigma). En todos los casos, dos días más tarde, se añadió 2,5 U/ml de IL-2 (Boehringer-Mannhein GmbH, Germany) a los pocillos y 5 días después las células se recuperaron para realizar ensayos de liberación de cromo.
La actividad lítica se midió incubando durante 4h distintas cantidades de células efectoras con 3000 células diana T2 previamente cargadas con 51Cr, con y sin péptido (diana). En el caso de las células estimuladas con T1/HCVcon, las células efectoras se enfrentaron a células T1/HCVcon o T1, previamente cargadas con 51Cr. Los sobrenadantes de cultivo se recogieron tras 4h de incubación.
El porcentaje de lisis específica fue calculado según la fórmula:
(cpm_{experimental} - cpm_{espontánea})/(cpm_{máxima} - cpm_{espontánea}) x 100
donde la lisis espontánea (medida como cpm_{espontánea}) corresponde a células diana incubadas en ausencia de células efectoras y la lisis máxima (cpm_{máxima}) se obtiene incubando células diana con Triton x100 al 5%.
Ejemplo 1 La inmunización con anti-CD40 y poli(I:C) junto con la proteína NS3 induce respuestas T CD8+ y CD4+ multiepitópicas
La inmunización con anti-CD40 y poli(I:C) ha demostrado ser muy eficaz para la inducción de respuestas CD8+ mediante la utilización como inmunógenos de péptidos sintéticos que representan epítopos de células CD8+. Aunque esta estrategia induce respuestas potentes, se ha demostrado que cuando se coinmuniza con cantidades bajas de proteína NS3 (5 \mug/ratón), que induce la respuesta CD4+, aumenta la magnitud de la respuesta CD8+ y también aumenta la respuesta CD8+ de alta afinidad, es decir, aquella que reconoce concentraciones bajas de antígeno. Además, la inmunización con péptidos sólo es eficaz en aquellos individuos que tienen moléculas HLA de la misma restricción que los epítopos escogidos. Con objetivo de afrontar estos dos puntos, se estudió si la inmunización con cantidades mayores de proteína NS3 recombinante sería capaz de inducir respuestas, no sólo CD4+, sino también CD8+. Para ello se inmunizaron ratones con NS3 junto con poli(I:C) y anti-CD40 y se estudiaron las respuestas inducidas. Así, se inyectó i.p. 50 \mug de anti-CD40 a ratones HHD (dos por grupo). Cuatro horas más tarde, se les inyectó 50 \mug de poli(I:C) (i.v.) y 500 \mug de proteína NS3 recombinante (i.p.) (SEC. ID. Nº: 1). Seis días más tarde, se sacrificaron los animales y se extrajeron los esplenocitos. Con el objetivo de analizar la capacidad de NS3, cuando se formula en el adyuvante poli(I:C) + anti-CD40 para inducir respuestas T CD8+ y CD4+, se estimularon in vitro los esplenocitos con diferentes antígenos que activan específicamente estas poblaciones celulares. (A) Para analizar la respuesta CD8+, en un primer experimento se estimularon los esplenocitos durante cinco días con los epítopos CD8+ 1073, 1406 o 1038, en presencia de IL-2. Después, se midió para cada grupo de células estimuladas con un péptido, su capacidad para lisar células diana cargadas con el péptido correspondiente (barras negras) o células diana control sin péptido (barras blancas). La Figura 1A muestra los resultados que se obtienen con un porcentaje efectoras:diana de 100:1. (B) También se analizó la respuesta CD8+ inducida tras la inmunización con NS3 mediante estudio de la producción de IFN-\gamma frente a los mismos epítopos CD8+. Para ello se cultivaron los esplenocitos con diferentes cantidades de 1073 (círculos negros), 1406 (triángulos blancos) o 1038 (triángulos negros). Tras 48 h de cultivo, se recogieron los sobrenadantes y se midió el contenido en IFN-\gamma. (C) Con objetivo de analizar la respuesta CD4+ inducida, se estimularon los esplenocitos con la proteína NS3 utilizada en la inmunización (SEC. ID. Nº: 1). Además, también se estimularon las células con proteína NS3 comercial producida en bacterias (SEC. ID. Nº: 3). De la misma manera que en el punto anterior, el grado de activación se midió mediante la producción de IFN-\gamma.
En primer lugar, se pudo comprobar que este antígeno era capaz de inducir respuestas CD8+, que podrían detectarse tanto en ensayos de liberación de cromo (Figura 1A) como mediante la inducción de la producción de IFN-\gamma (Figura 1B). Además, esta respuesta fue multiepitópica, dirigiéndose frente a varios epítopos CD8+, que se han caracterizado dentro de la secuencia de NS3 (por ejemplo: péptidos 1073, 1406 y 1038). Finalmente, también se comprobó que era capaz de inducir respuestas CD4+, que reconocían a la proteína NS3 utilizada en la inmunización y la proteína NS3 comercial producida en bacterias (Figura 1C). La respuesta frente a esta última fue menor, presumiblemente debido al hecho de que existían algunos cambios en la secuencia de ambas proteínas y a que la proteína expresada en bacterias era más corta, con lo que se podrían perder algunos epítopos reconocidos por los linfocitos T CD4+.
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Ejemplo 2 La administración de 25 \mug de NS3 recombinante junto con poli(I:C) y anti-CD40 es suficiente para inducir respuestas T CD4+ y CD8+
Se sabía de experimentos anteriores, que con 5 \mug de NS3 se inducían respuestas CD4+ pero no CD8+ y por ello se quiso descubrir la cantidad mínima de NS3 que sería suficiente para inducir respuestas T CD8+. Para ello se inmunizaron ratones HHD con 500, 250, 125 y 25 \mug de NS3 (SEC. ID. Nº: 1). También se incluyó como control un grupo inmunizado con péptidos que correspondían a epítopos CD8+, que inducirían respuestas CD8+, más 5 \mug de NS3 (SEC. ID. Nº: 1), que induciría respuestas CD4+. Para ello, en cada grupo de animales inmunizado con una dosis de NS3 se realizó un análisis de la respuesta CD8+ y la respuesta CD4+. La respuesta CD8+ se analizó como la capacidad para lisar células diana cargadas con el epítopo CD8+ 1073 (Fig. 2A), junto con la capacidad de producir IFN-\gamma respecto a diferentes concentraciones de los epítopos CD8+ 1073 (Fig. 2B) y 1038 (Fig. 2C). Las respuestas CD4+ se midieron mediante la capacidad para producir IFN-\gamma respecto a diferentes concentraciones de NS3 (SEC. ID. Nº: 1) (Fig. 2D). Este experimento demostró que todas las cantidades de NS3 ensayadas fueron capaces de inducir respuestas CD8+, cuando se estudiaron las respuestas líticas frente al péptido 1073 (Fig. 2A), siendo la dosis de 25 \mug la que indujo respuestas de menor intensidad. Además, todas las dosis fueron capaces de inducir la producción de IFN-\gamma frente a los epítopos 1073 (Fig. 2B) y 1038 (Fig. 2C), lo que indicaba que incluso cuando se reducían las dosis se mantenía la capacidad de inducir respuestas multiepitópicas. Finalmente, y como se esperaba, todas ellas indujeron respuestas CD4+. Puesto que, en la mayoría de los casos, la respuesta inducida era menor cuando se utilizaban 25 \mug de NS3, para experimentos posteriores se escogió una dosis de 100 \mug/ratón, dosis a partir de la cual ya no se observaba un aumento de la inducción de respuestas.
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Ejemplo 3 La inmunización con poli(I:C) y anti-CD40 junto con la proteína NS3 induce respuestas CD8+ y CD4+ en otras cepas de ratones con diferente MHC
Puesto que en un antígeno tan grande como la proteína NS3, es posible encontrar epítopos CD4+ y CD8+ que pueden presentar diferentes moléculas de MHC, se estudió la capacidad de este protocolo de inmunización para inducir respuestas CD4+ y CD8+ en otra cepa de ratón con moléculas de MHC diferentes. Para ello, se inmunizaron ratones C57/Bl6, que tienen moléculas MHC de restricción H-2b, con 100 \mug de NS3 (SEC. ID. Nº: 1). Con el objetivo de mejorar las respuestas, un grupo recibió una única inmunización y otro grupo recibió una segunda inmunización de refuerzo. En primer lugar, se midió la respuesta CD8+, como la producción de IFN-\gamma frente al péptido 1629-1637 (SEC. ID. Nº: 7), que contiene un epítopo CD8+ presentado por las moléculas MHC de clase I H-2 Db. Como se puede ver en la Figura 3A, en ambos grupos de ratones se indujo una respuesta detectable, aunque los niveles fueron considerablemente mayores en el grupo que había recibido dos inmunizaciones (cuadrados negros) que en el que recibió una inmunización (cuadrados blancos). La respuesta CD4+, medida como producción de IFN-\gamma frente a la proteína NS3 recombinante (SEC. ID. Nº: 1), también se detectó en los dos grupos (Figura 3B) y de nuevo se demostró que dos inmunizaciones (cuadrados negros) indujeron respuestas más potentes que una única inmunización (cuadrados blancos).
Ejemplo 4 La inmunización con proteína NS3 junto con poli(I:C) y anti-CD40 induce respuestas CD8+ capaces de reconocer a células que expresan las proteínas del VHC
Con el objetivo de estudiar si la inmunización utilizando proteína NS3 junto con poli(I:C) y anti-CD40 sería capaz de inducir respuestas que podrían matar potencialmente a células infectadas con el VHC, se utilizó un modelo in vitro de células diana transfectadas con un plásmido que expresaba las proteínas del VHC (T1/HCVcon). Estas células expresaron los mismos péptidos que expresaría una célula infectada con el VHC en sus moléculas MHC de clase I; por lo tanto, se podría asumir como una respuesta frente a las últimas cualquier respuesta frente a ellas. La proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 1) utilizada en los experimentos de las figuras 1 a 3 corresponde a una cepa viral diferente a la cepa viral que está presente en las células T1/HCVcon. Estas dos cepas presentan algunas diferencias en los epítopos CD8+ estudiados hasta ahora. Con el objetivo de optimizar la capacidad de reconocimiento de los epítopos CD8+ presentes en las células T1/HCVcon, se utilizó para este experimento una proteína NS3 (SEC. ID. Nº: 2) como inmunógeno, cuya secuencia tenía un grado de homología mayor que la proteína presente en las células T1/HCVcon. Seis días después de la inmunización de ratones HHD con 100 \mug de NS3, los esplenocitos se estimularon con células T1/HCVcon. La capacidad de reconocimiento de células T1/HCVcon se analizó en ensayos de actividad lítica. Para ello, se enfrentaron los esplenocitos estimulados a células T1/HCVcon y a células T1 de control. Como se muestra en la figura 4, la inmunización con NS3 indujo respuestas con una capacidad mayor de lisar las células T1, que expresaban proteínas del VHC (círculos negros), que la inmunización con las células de control T1 (círculos blancos).
Ejemplo 5 La inmunización con poli(I:C) y anti-CD40 junto con la proteína NS3 induce respuestas T CD8+ y CD4+ de larga duración
Una de las principales propiedades que debe tener un protocolo de vacunación es su capacidad de inducir respuestas inmunitarias de larga duración, de modo que la protección conferida por la inmunización pueda persistir a largo plazo. Para estudiar si la inmunización con anti-CD40 y poli(I:C) junto con la proteína NS3 sería capaz de inducir este tipo de respuesta, se inmunizaron ratones HHD con 100 \mug de NS3 de acuerdo con el protocolo descrito en el ejemplo 1. Con el objetivo de reforzar la respuesta, después de 15 días, los animales recibieron una dosis de refuerzo en las mismas condiciones. Sesenta días después de la segunda inmunización, se sacrificaron los animales y sus esplenocitos se estimularon con diferentes antígenos para analizar las respuestas T CD8+ y CD4+ que persistían en ese momento. Para estudiar la respuesta T CD8+, se estimularon las células con el epítopo 1073 y se midió la producción de IFN-\gamma y la actividad lítica. Como se muestra en la figura 5A, sesenta días después de la segunda inmunización, los esplenocitos de los ratones inmunizados con anti-CD40 y poli(I:C) junto con la proteína NS3, fueron capaces de producir grandes cantidades de IFN-\gamma cuando se estimulaban con el péptido 1073, pero no en ausencia de antígeno. Además, estas células fueron capaces de lisar células diana pulsadas con el péptido 1073 (círculos negros), pero no células diana que no contenían antígeno (círculos blancos) (Figura 5B). Finalmente, también se estudió la respuesta CD4+, utilizando como antígeno la proteína NS3 usada en la inmunización. La Figura 5C muestra que este protocolo de inmunización también induce potentes respuestas CD4+ de larga duración, que reconocen específicamente a NS3.
<110> PROYECTO DE BIOMEDICINA CIMA S.L.
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<120> COMBINACIÓN INMUNOESTIMULANTE PARA PROFILAXIS Y TRATAMIENTO DE HEPATITIS C
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<130> 055009
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<160> 7
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<210> Versión de Patente 3.1
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<211> 631
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<212> PRT
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<213> Virus hepatitis C
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<220>
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<221> MISC_FEATURE
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<223> Proteína no estructural NS3
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<400> 1
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2
3
4
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<210> SEC ID. Nº: 2
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<211> 635
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<212> PRT
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<213> Virus hepatitis C
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<220>
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<221> MISC_FEATURE
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<223> Proteína no estructural NS3
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<400> 2
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5
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8
9
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<210> SEC ID. Nº: 3
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<211> 528
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<212> PRT
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<213> Secuencia Artificial
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<220>
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<223> Proteína recombinante quimérica obtenida de las proteínas NS2 y NS3 del virus de la hepatitis C.
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<400> 3
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10
11
12
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<210> SEC ID. Nº: 4
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<211> 10
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<212> PRT
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<213> Virus de la hepatitis C
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<220>
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<221> misc_feature
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<223> Epítopo 1038-1047 correspondiente a la proteína viral NS3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
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\hskip1cm
13
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> SEC ID. Nº: 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Virus de la hepatitis C
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Epítopo 1073-1081 correspondiente a la proteína viral NS3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
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\hskip1cm
14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> SEC ID. Nº: 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Virus de la hepatitis C
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> misc_feature
\vskip0.400000\baselineskip
<223> Epítopo 1406-1415 correspondiente a la proteína viral
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
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\hskip1cm
15
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> SEC ID. Nº:7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 9
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<212> PRT
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<213> Virus de la hepatitis C
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
16

Claims (18)

1. Una combinación inmunoestimulante para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis C, caracterizada por que comprende:
a)
un agonista de TLR3,
b)
un agonista de CD40 o una secuencia de ADN que lo codifica y
c)
un polipéptido, que comprende la proteína NS3 del virus de la hepatitis C, o un fragmento de dicha proteína NS3 con capacidad para inducir respuestas CD8+ y CD4+.
\vskip1.000000\baselineskip
2. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 1, caracterizada por que el agonista de CD40 se selecciona de entre un anticuerpo anti-CD40, CD40L y fragmentos de los anteriores que conservan su capacidad para unirse a CD40.
3. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 2, caracterizada por que el agonista de CD40 es un anticuerpo anti-CD40.
4. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 1, caracterizada por que comprende:
a)
poli(I:C),
b)
un anticuerpo anti-CD40 y
c)
un polipéptido que contiene la proteína NS3.
\vskip1.000000\baselineskip
5. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 3 ó 4, caracterizada por que el polipéptido que contiene la proteína NS3 es un polipéptido con SEC ID. Nº: 1.
6. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizada por que todos los componentes forman parte de una única composición farmacéutica.
7. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizada por que todos los componentes forman parte de al menos dos composiciones farmacéuticas diferentes.
8. Uso de una combinación inmunoestimulante de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7 en la preparación de una medicina para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis C.
9. Uso de una combinación inmunoestimulante definida en cualquiera de las reivindicaciones 1-7 en la preparación de una medicina para la profilaxis y el tratamiento de la hepatitis C.
10. Uso de una combinación inmunoestimulante de acuerdo con las reivindicaciones 8 ó 9, caracterizada por que dicha medicina comprende al menos dos composiciones farmacéuticas adecuadas para la administración simultánea.
11. Uso de una combinación inmunoestimulante de acuerdo con las reivindicaciones 8 ó 9, caracterizada por que dicha medicina comprende al menos dos composiciones farmacéuticas adecuadas para la administración por separado.
12. Uso de una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 11, caracterizada por que dichas composiciones farmacéuticas son adecuadas para la administración por separado mediante distintas vías.
13. Una composición farmacéutica que contiene una combinación inmunoestimulante descrita en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizada por que cada uno de los componentes está presente en cantidades farmacéuticamente aceptables.
14. Un kit para la administración de una combinación inmunoestimulante descrita en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, caracterizado por que comprende al menos dos composiciones farmacéuticas diferentes como se define en la reivindicación 13, conteniendo cada una de ellas al menos uno de los componentes a), b) o c) de dicha combinación inmunoestimulante como se define en la reivindicación 1.
15. Una combinación inmunoestimulante definida en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7, en una cantidad eficaz para inducir una respuesta inmune frente al virus de la hepatitis C.
16. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 15, para uso como tratamiento profiláctico.
17. Una combinación inmunoestimulante de acuerdo con la reivindicación 15, para uso como tratamiento terapéutico.
18. Una vacuna frente al virus de la hepatitis C, caracterizada por que comprende una combinación inmunoestimulante definida en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 7.
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