WO2023020637A1 - Antigenos quimericos para el control de coronavirus y composiciones que los comprenden - Google Patents

Antigenos quimericos para el control de coronavirus y composiciones que los comprenden Download PDF

Info

Publication number
WO2023020637A1
WO2023020637A1 PCT/CU2022/050009 CU2022050009W WO2023020637A1 WO 2023020637 A1 WO2023020637 A1 WO 2023020637A1 CU 2022050009 W CU2022050009 W CU 2022050009W WO 2023020637 A1 WO2023020637 A1 WO 2023020637A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
protein
rbd
chimeric antigen
chimeric
sars
Prior art date
Application number
PCT/CU2022/050009
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Mario Pablo ESTRADA GARCÍA
Yamila CARPIO GONZÁLEZ
Ileanet ÁVALOS OLIVERA
Elsa Maria RODRÍGUEZ RODRÍGUEZ
Thailin LAO GONZÁLEZ
Original Assignee
Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia filed Critical Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia
Publication of WO2023020637A1 publication Critical patent/WO2023020637A1/es

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • A61P31/14Antivirals for RNA viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511Organic adjuvants
    • A61K2039/55516Proteins; Peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/20Fusion polypeptide containing a tag with affinity for a non-protein ligand
    • C07K2319/21Fusion polypeptide containing a tag with affinity for a non-protein ligand containing a His-tag
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/33Fusion polypeptide fusions for targeting to specific cell types, e.g. tissue specific targeting, targeting of a bacterial subspecies
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/15011Lentivirus, not HIV, e.g. FIV, SIV
    • C12N2740/15041Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/20011Coronaviridae
    • C12N2770/20034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Abstract

Antígenos quiméricos que comprenden un segmento que consiste en el dominio de unión al receptor de la proteína S1 o en la proteína N de dicho virus y el segmento extracelular de la proteína CD154 humana, así como composiciones vacunales contra el coronavirus SARS-CoV2 que comprenden al menos uno de esos antígenos y un adyuvante. Uso de los antígenos quiméricos para la fabricación de una composición vacunal contra SARS-CoV2. Método para la inducción de respuesta inmune contra el SARS-CoV2 en un individuo que lo necesita donde se administra una cantidad farmacéuticamente efectiva de al menos un antígeno quimérico que comprende el dominio de unión al receptor de la proteína S1 o la proteína N de dicho virus y el segmento extracelular de la proteína CD154 humana.

Description

ANTIGENOS QUIMERICOS PARA EL CONTROL DE CORONAVIRUS Y COMPOSICIONES QUE LOS COMPRENDEN
Campo de la técnica
La presente invención se encuadra dentro del campo de las vacunas para humanos, en particular para la protección contra el virus SARS-CoV2. La protección se logra mediante proteínas quiméricas que comprenden proteínas de dicho virus, como la nucleoproteína (N) o el dominio de unión al receptor de angiotensina II (ACE2) de la glicoproteína de la espícula (S), conocido como dominio RBD (del inglés, receptor binding domain). Estas proteínas se fusionaron al dominio extracelular del CD154 humano. Los antígenos quiméricos se emplean en la fabricación de composiciones vacunales que confieren protección temprana contra el virus SARS-CoV2.
Estado de la técnica anterior
Los coronavirus (CoVs) pertenecen a la subfamilia Othocoronavirinae, en la familia Coronaviridae del orden Nidovirales, según el décimo informe sobre taxonomía de virus del Comité International de Taxonomía de Virus. Los Othocoronavirinae se componen de cuatro géneros, incluidos alfacoronavirus (alfa-CoV), betacoronavirus (beta-CoV), gammacoronavirus (gamma-CoV) y deltacoronavirus (delta-CoV) (King, A. M. Q., et al. Arch. Virol. (2018), 163: 2601-2631). Los CoVs Alpha y Beta tienen la capacidad de infectar a los mamíferos; por ejemplo: murciélagos, cerdos, gatos y ratones (Kudelova, M., et al. Microb. Ecol. (2015), 70: 785-794.; Cui, J., et al. Nat. Rev. Microbiol. (2019), 17: 181-192). Los CoVs Gamma y Delta infestan preferiblemente a las aves, aunque se ha demostrado también su capacidad para infestar a algunos mamíferos (Ma, Y., et al. mBio (2015), 6:e00064).
Vahos CoVs afectan a los humanos, causando infecciones respiratorias leves y resfriados. No obstante, los brotes pandémicos de infecciones más severas causadas por estos virus han aumentado su prevalencia en los últimos años. El CoV conocido como SARS (del inglés, Severe Acute Respiratory Syndrome), CoV beta Linaje B, causó la primera pandemia del siglo XXI en los años 2002-2003. Esta pandemia tuvo su epicentro en China. El CoV conocido como MERS (del inglés, Middle East Respiratory Syndrome), CoV beta Linaje C, emergió una década después y las infecciones continúan en el Medio Oriente. En el año 2019, solo 7 años después del brote de MERS, el virus SARS-CoV2 (CoV beta Linaje B) que produce la enfermedad conocida como Covid-19 emergió en China causando una pandemia de proporciones devastadoras (Saif, L.J., EMJ. 2020; D0l/10.33590/emj/200324). Su ocurrencia no constituyó un hecho inesperado, debido a que los científicos previamente identificaron el SARS-like CoV en murciélagos, al igual que el SARS (Li , W et al. (2005). Science 310, 676-679. doi: 10.1126/science.1118391 ; Ng OW, Tan YJ. Hum Vaccine Immunother. 2017; 13(1):186-9). En febrero del 2020, la Organización Mundial de la Salud (OMS) convocó a investigadores a nivel mundial para definir la agenda de investigación de medicamentos y vacunas contra el SARS-CoV2, a través de un proyecto de investigación y desarrollo conocido como R&D Blueprint.
SARS-CoV2 tiene un genoma de ácido ribonucleico (ARN), simple cadena y orientación positiva. Este genoma tiene 29,88 Kb y contiene aproximadamente 12 marcos de lectura abiertos. Como todos los CoV, estos genes codifican 4 proteínas estructurales mayoritarias: la nucleocápside (N) asociada al genoma de ARN y 3 proteínas de membrana: que son la glicoproteína de la espícula (S), la glicoproteína integral de membrana (M) y la proteína de la envoltura (E). Se conoce que en personas convalecientes de COVID-19 la mayor parte de la respuesta de anticuerpos neutralizantes, y una parte importante de la respuesta celular contra SARS-CoV2, se dirige contra la proteína S (Brouwer PJM, et al. Science 2020, 369(6504): 643-50). Sin embargo, investigaciones previas con otros CoV han implicado a la proteína S en fenómenos patológicos de inmunoamplificación, tanto en modelos animales como en la clínica (Lambert P, et al. Vaccine. 2020, 38(31):4783-91). La proteína S es una molécula de considerable tamaño (141 kDa), cuya forma activa es un trímero, está muy glicosilada (entre 17-22 sitios de N-glicosilación y un número variable de sitios de O-glicosilación) (Shajahan A, et al. Glycobiology 2020, 30(12): 981-988) y su conformación es mantenida por 13 puentes disulfuro (Kumar S, et al. Virus Disease. 2020, 31 (1): 13-21). Por ello, su expresión en sistemas heterólogos es compleja.
La proteína S contiene un dominio de unión al receptor (RBD), el cual comprende aproximadamente desde la cisteína 336 hasta la cisteína 525, y tiene una masa molecular aproximada de 25 kDa. Este dominio está involucrado en la unión viral y la fusión a la membrana celular, e induce anticuerpos neutralizantes que bloquean la unión al receptor de angiotensina II (ACE2) presente en las células del huésped. Hasta la fecha, el dominio RBD constituye el blanco fundamental para el desarrollo de las vacunas de subunidades contra SARS-CoV2 (Cheng et al. Current Tropical Medicine Reports (2020), 7:61-64). La reciente aparición de nuevas vahantes circulantes del virus, debido a mutaciones en el dominio RBD, ha suscitado importantes preocupaciones sobre la eficacia geográfica y temporal de las vacunas (Garcia-Beltran, W.F., et al. Cell (2021), 184: 2372-2383). Por otra parte, la proteína N es la proteína más abundante del virus, es altamente conservada e inmunogénica (Gong, Y., et al., J. Virol. (2020), 94: e01925-19).
El 10 de mayo del 2021 se contabilizaban 97 candidatos vacunales en ensayos clínicos, y 183 en ensayos preclínicos, según el sitio oficial de la QMS. En el desarrollo de las vacunas contra SARS-CoV2 se están utilizando diversas tecnologías y plataformas, tales como ácidos nucleicos (ácido desoxirribonucleico (ADN) y ARN), vectores virales (replícateos y no replícateos), virus inactivado, virus vivo atenuado, vacunas de subunidades proteicas, partículas semejantes a virus y vectores virales replícateos o no replícateos, conjuntamente con células presentadoras de antígenos. Algunas de estas tecnologías se habían utilizado para desarrollar vacunas para otros CoVs (como el SARS y el MERS) y se habían probado en animales. Las rutas de administración de las vacunas han sido en su mayoría: oral, nasal o parenteral (subcutánea, intramuscular o intradérmica), siguiendo diferentes dosis y esquemas de vacunación. Cada tipo de vacuna tiene ventajas y desventajas con respecto a la inmunogenicidad, seguridad, facilidad de uso y eficacia.
A diferencia de las vacunas vivas atenuadas o inactivadas, que involucran a todo el patógeno, las vacunas de subunidades basadas en proteínas virales recombinantes individuales reducen la posibilidad de reacciones adversas. Sin embargo, estas vacunas presentan desafíos potenciales, como una inmunogenicidad débil y la necesidad de adyuvantes de refuerzo inmunológico y dosis múltiples (Hansson M., et al. Biotechnol. Appl. Biochem. (2000), 32: 95). Por otra parte, investigaciones previas demostraron que las modificaciones post-traduccionales en determinadas proteínas virales son cruciales para la inmunogenicidad de los antígenos en humanos, enfatizando la necesidad de sistemas confiables y efectivos para expresar antígenos recombinantes en células humanas (Lorenzo, E. et al., AMB Express 2019, 9: 139). CD154 tiene una función importante en la interacción de las células T con otras células del sistema inmune y en la diferenciación de células T (van Kooten C Y Banchereau J. J Leukoc Biol (2000), 67: 2-17; Ma DY y Clark EA. Semin Immunol (2009), 21 :265- 72). El uso de CD154 como adyuvante molecular ha sido explorado por varios grupos de investigación, empleando múltiples estrategias. En su mayoría, estas estrategias están basadas en adenovirus o vacunas de ADN (Cao J,et al. Vaccine (2010), 28:7514-22; Gómez, C.E., et al. Vaccine (2009), 27:3165-74; Yao, Q., et al. Vaccine 2010; 28:8147-56).
Un número significativo de estrategias de desarrollo de candidatos vacunales están basadas en RBD, la mayoría de los candidatos vacunales se basa en proteínas monoméricas (aunque algunos de los candidatos se sustentan también en proteínas multiméricas). Se han empleado estrategias de conjugación química a proteínas portadoras y/o nanopartículas basadas en polímeros con propiedades inmunoestimuladoras. Sin embargo, sigue siendo de interés el diseño y obtención de nuevos antígenos vacunales contra coronavirus, que prevengan o disminuyan en impacto de la infección desde tiempos tempranos post - inmunización, con el menor número de dosis posible, y que proporcionen protección a largo plazo mediante la activación de la respuesta de memoria, así como protección contra las nuevas cepas que se generan debido a mutaciones en el dominio RBD.
Explicación de la invención
La presente invención resuelve el problema antes mencionado al proveer antígenos quiméricos contra el coronavirus SARS-CoV2 que comprenden a) un segmento que consiste en el dominio de unión al receptor (RBD) de la proteína S1 o en la proteína N de dicho virus y b) el segmento extracelular de la proteína CD154 humana. Los antígenos quiméricos de la invención comprenden en su secuencia de aminoácidos una molécula estimuladora del sistema inmune, lo que propicia el desarrollo de una respuesta temprana, que protege a los humanos frente a la infección por el SARS- CoV2.
En una materialización de la invención, el dominio RBD de la proteína S1 del virus SARS-CoV2 presente en los antígenos quiméricos consiste en los aminoácidos 324 al 533 de dicha proteína. En una realización de la invención, adicionalmente, los antígenos quiméricos comprenden un segmento de seis residuos histidina y un espaciador entre el segmento que consiste en RBD o en la proteína N de dicho virus y el segmento extracelular de la proteína CD154.
En una realización particular, los antígenos quiméricos poseen una estructura modular, donde se disponen i) un segmento del dominio RBD de la proteína S de SARS-CoV2, ¡i) un segmento que comprende una secuencia de 6 histidinas, iii) un espaciador que consiste en 4 repeticiones de los aminoácidos Gly-Gly-Gly-Gly-Ser, y iv) el dominio extracelular del CD154 humano, dispuestos en ese mismo orden. En una materialización de la invención, el antígeno quimérico se caracteriza porque el segmento que consiste en el RBD de la proteína S1 posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 1 y el segmento extracelular de la proteína CD154 posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 3 (GeneBank Accesión NM_000074; aminoácidos 51-260). En una realización particular, dicho antígeno quimérico posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 4 en el Listado de Secuencias. En la invención a este antígeno quimérico se le denomina RBD-CD154.
En otra materialización de esta invención el antígeno quimérico comprende: i) un segmento correspondiente a la proteína N de SARS-CoV2, ¡i) un segmento que comprende una secuencia de 6 histidinas, iii) un espaciador de 4 repeticiones de los aminoácidos Gly-Gly-Gly-Gly-Ser, y iv) el dominio extracelular del CD154 humano, dispuestos en ese mismo orden. En una realización de la invención, el antígeno quimérico se caracteriza porque el segmento que consiste en la proteína N posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 2 y el segmento extracelular de la proteína CD154 posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 3. En una realización particular, dicho antígeno quimérico posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 5. En la invención a este antígeno quimérico se le denomina N-CD154.
La secuencia de seis residuos histidina permite la purificación de los antígenos quiméricos mediante cromatografía de afinidad a quelatos metálicos. La incorporación del espaciador tiene la función de aportar un determinado grado de relajamiento a la cadena polipeptídica, que garantiza el plegamiento tridimensional de la estructura proteica. En la obtención de las proteínas quiméricas de la invención se pretende que la conformación tridimensional de los segmentos correspondientes a los antígenos de SARS-CoV2 presentes en los antígenos quiméricos sea similar a la nativa.
Los antígenos quiméricos se pueden producir por vía del ADN recombinante, como se ha demostrado en los ejemplos de la invención. En una materialización de la misma, sin que se limite su alcance, los antígenos quiméricos se obtienen en el sobrenadante de cultivo de células de mamíferos transformadas.
En una materialización de la invención, los antígenos vacunales quiméricos son obtenidos mediante la tecnología del ADN recombinante. En la invención, se generaron las vahantes RBD-CD154 y N-CD154 en células embrionarias de riñón HEK-293, empleando vectores lentivirales para la transformación celular. El sistema de expresión empleado permitió que las proteínas quiméricas se produjeran en su forma glicosilada, lo que favorece la obtención de las moléculas con la estructura tridimensional adecuada.
Es objeto de la invención una composición vacunal contra el virus SARS-CoV2 que comprende al menos un antígeno quimérico que comprende a) un segmento que consiste en el RBD de la proteína S1 o en la proteína N de dicho virus y b) el segmento extracelular de la proteína CD154 humana, y un adyuvante farmacéuticamente aceptable. En una realización de la invención, el adyuvante farmacéuticamente aceptable es un compuesto de aluminio. En una materialización, la composición vacunal se formula para ser administrada a los humanos por una ruta sistémica.
En una realización particular, la composición vacunal comprende un primer antígeno quimérico que comprende un segmento que consiste en el RBD de la proteína S1 y un segundo antígeno quimérico que comprende la proteína N. Esta combinación de antígenos tiene el propósito de incrementar la eficacia de la vacunación respecto a nuevas vahantes del virus, debido a mutaciones en el dominio RBD. Dichas composiciones vacunales pueden ser administradas a los humanos de manera simultánea o secuencial en el curso de un esquema de inmunización.
Las composiciones vacunales que comprenden estas proteínas quiméricas confieren protección temprana contra el SARS-CoV2. Dicha protección está mediada por una respuesta inmune de tipo humoral y celular. También se observa un acortamiento en el tiempo en el que se inducen los anticuerpos neutralizantes. La respuesta generada permite la neutralización rápida y eficaz del virus.
A pesar de la inclusión de vahos segmentos en las construcciones genéticas, sorprendentemente, los antígenos vacunales contra SARS-CoV2 de la presente invención conservan las propiedades antigénicas e inmunogénicas similares al dominio RBD o a la proteína N del virus nativo. La inmunización con las moléculas quiméricas, producidas en sistemas de expresión como las células HEK-293, conduce a una repuesta inmune potente y temprana. El segmento proveniente de CD154 mantiene su actividad biológica y, aun dentro de los antígenos quiméricos, actúa como adyuvante molecular que estimula el sistema inmune de los animales vacunados, produciendo una respuesta inmune protectora después de dos dosis de vacuna.
En otro aspecto, la invención revela el uso de los antígenos quiméricos mencionados para la fabricación de una composición vacunal contra el virus SARS-CoV2. Además, es objeto de la presente invención un método para la inducción de respuesta inmune contra el virus SARS-CoV2 en un individuo que lo necesita donde se administra una cantidad farmacéuticamente efectiva de al menos un antígeno quimérico que comprende a) un segmento que consiste en el RBD de la proteína S1 o en la proteína N de dicho virus y b) el segmento extracelular de la proteína CD154 humana, y un adyuvante farmacéuticamente aceptable. En una realización de la invención, en el método para la inducción de respuesta inmune contra el SARS-CoV2 se administra un antígeno quimérico que comprende un segmento que consiste en RBD de la proteína S1 y un antígeno quimérico que comprende la proteína N en el mismo esquema de inmunización. En una realización particular, ambos antígenos se administran simultáneamente en el individuo que lo necesita.
En otro aspecto, la invención revela un método para la inducción de respuesta inmune contra el SARS-CoV2 que se caracteriza porque se administra a un individuo que lo necesita una cantidad farmacéuticamente efectiva de una composición vacunal que comprende la(s) proteína(s) quimérica(s) antes descritas y excipientes o diluentes farmacéuticamente aceptables.
Breve descripción de las figuras
Figura 1. Análisis mediante western blotting de la proteína quimérica RBD-CD154 obtenida en el sobrenadante de cultivo de células HEK-293. A) western blotting empleando un anticuerpo monoclonal (AcM) anti His conjugado a peroxidasa (Sigma), donde las proteínas se separaron en condiciones reductoras en la electroforesis. B) western blotting empleando IgG purificadas, a partir de un suero de paciente convaleciente al SARS-CoV-2, y anti-lgG humana conjugado a peroxidasa como anticuerpo secundario, donde las proteínas se separaron en condiciones no reductoras en la electroforesis. Carril 1 : Patrón de peso molecular, carriles 2-4: Células transfectadas con el plasmidio pL6twBlast-RBD-CD154, carril 5: Células transfectadas con pCMV-GFP (Addgene) como control negativo. Las flechas indican la proteína de interés a la talla esperada y agregados de proteína de mayor peso molecular en condiciones no reductoras.
Figura 2. Análisis mediante western blotting de la proteína quimérica N-CD154 obtenida en el sobrenadante de cultivo de células HEK-293 A) western blotting empleando un AcM anti - proteína N conjugado a peroxidasa (CIGB Santi Spiritus, Cuba), B) western blotting empleando IgG purificadas a partir de un suero de paciente convaleciente al SARS-CoV-2 y anti-lgG humana conjugado a peroxidasa como anticuerpo secundario. Carril 1 : Patrón de peso molecular. Carril 2: Células transfectadas con el plasmidio pL6twBlast-N-CD154, y condiciones reductoras en la electroforesis, carril 3: Células transfectadas con el plasmidio pL6twBlast-N-CD154, y condiciones no reductoras en la electroforesis. Las flechas indican la proteína de interés a la talla esperada y agregados de proteína de mayor peso molecular en condiciones no reductoras.
Figura 3. Respuesta de IgG en ratones determinada dos semanas después de la reinmunización con diferentes antígenos. Las inmunizaciones se realizaron en los días 0 y 21. (A) Respuesta generada contra el dominio RBD, (B) Respuesta generada contra la proteína N. Se realizó un test de comparación múltiple de Dunn. Diferentes letras representan diferencias estadísticamente significativas. Se representan las medias geométricas y el intervalo de confianza del 95%.
Figura 4. Inhibición de la unión al receptor ACE2 por los sueros de ratón obtenidos dos semanas después de la re-inmunización con los antígenos quiméricos. Las inmunizaciones se realizaron en los días 0 y 21 . Se realizó un test de comparaciones múltiples de Dunn. Diferentes letras representan diferencias estadísticamente significativas.
Figura 5. Porciento de células B en los centros germinales en muestras tomadas 7 días después de la inmunización de ratones. El porciento de células B se determinó mediante citometría de flujo. Se realizó un ANOVA seguido de un test de comparación múltiple de Tukey. Diferentes letras representan diferencias estadísticamente significativas. CG: centros germinales.
Figura 6. Respuesta de IgG generada contra la proteína N (A) y contra RBD (B) en los días 21 , 28, 35, 42 y 63 en Macaca fascicularís inmunizados con los antígenos quiméricos. Se realizó un test de comparación múltiple de Dunn. Diferentes letras representan diferencias estadísticamente significativas.
Figura 7. Inhibición de la unión de RBD al receptor ACE2 por los sueros obtenidos de los primates Macaca fascicularís inmunizados con proteína quimérica RBD-CD154, las proteínas quiméricas RBD-CD154 y N-CD154 administradas de forma simultánea (RBD+N), y proteína RBD, obtenidas en HEK-293. La línea discontinua representa el 60% de inhibición de la unión de RBD a ACE2.
Figura 8. Respuesta celular en Macaca fascicularís determinada como porciento de linfocitos T CD8+IFNy+ (A), TCD8+TNFa+ (B), T CD4+IFNy+ (C) y TCD4+TNFa+ (D). Se realizó un test de comparación múltiple de Dunn. Diferentes letras representan diferencias estadísticamente significativas. Las determinaciones se realizaron mediante citometría de flujo.
Exposición detallada de modos de realización / Ejemplos de realización Ejemplo 1. Obtención de los segmentos génicos que codifican para el dominio RBD de la proteína S, la proteína N y el dominio extracelular del CD154 humano y clonación en el plasmidio pDisplay.
Con el objetivo de obtener la proteína quimérica RBD-CD154, se amplificó el fragmento de 631 pb que codifica para el dominio RBD de la proteína S del virus SARS-CoV2 (codifica para los aminoácidos 324-533 de dicha proteína, identificado como SEQ ID NO: 1). Por separado, con el objetivo de obtener la proteína quimérica N-CD154, se amplificó el gen de 1257 pb que codifica para la nucleoproteína N del mismo virus (la proteína N se identifica como SEQ ID NO: 2). En ambos casos la amplificación se realizó mediante la técnica de transcripción reversa y reacción en cadena de la polimerasa (RT-PCR, del inglés Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction). Se empleó como templado ARN total purificado a partir del suero de un paciente positivo al SARS-CoV2. Los oligonucleótidos se diseñaron a partir de la secuencia del genoma viral del aislamiento SARS-CoV2/human/CHN/KMS1/2020, anotado en la base de datos del Centro Nacional de Información en Biotecnología de Estados Unidos (en inglés “National Center for Biotechnology Information", abreviado NCBI), número de acceso MT226610. El fragmento de 630 pb que codifica para el dominio extracelular del CD154 humano (SEQ ID NO: 3) se obtuvo mediante PCR, a partir del plasmidio pCMV3-CD40LG-His (Sino Biological).
Para construir los genes quiméricos RBD-CD154 y N-CD154, se insertaron primeramente los nucleótidos que codifican para la cola de 6 residuos de histidina y el espaciador en los sitios de restricción Sma \-Sac II del sitio de clonación múltiple del plasmidio pDisplay (Invitrogen), mediante el empleo de oligonucleótidos sintéticos. Posteriormente, se insertó el fragmento que codifica para el dominio extracelular del CD154 humano, obtenido por PCR, en los sitios Sac W-Sal I. Los genes que codifican para la proteína N y el dominio RBD se insertaron en los sitios Bgl ll-Sma I, y se obtuvieron los vectores pDisplay-N-CD154 y pDisplay-RBD-CD154, respectivamente. Se verificó la funcionalidad de las unidades transcripcionales mediante transfección transitoria en células de la línea HEK-293 (del inglés, human embryonic kidney, ATCC CRL-1573), con el empleo de polietileneimina (PEI) como agente de transfección. Se demostró, mediante electroforesis unidimensional en gel de poliacrilamida (SDS- PAGE) y western blotting, que las proteínas quiméricas RBD-CD154 y N-CD154 se producen en el sobrenadante de cultivo y que son reconocidas por un anticuerpo monoclonal (AcM) anti His (A7058, Sigma).
Ejemplo 2. Construcción de los vectores lentivirales y obtención de los lentivirus.
Con el objetivo de obtener líneas celulares de HEK-293 establemente transfectadas, que produzcan de forma constitutiva las proteínas quiméricas RBD-CD154 (SEQ ID NO: 4) y N-CD154 (SEQ ID NO: 5) en el sobrenadante de cultivo, se generaron vectores lentivirales que contenían los genes de interés. Estos vectores se utilizaron, posteriormente, para construir lentivirus quiméricos, que constituyen los agentes de transducción. Se emplearon vectores lentivirales de tercera generación: el vector pL6twBlast (que contiene el gen que confiere resistencia a blasticidina) como vector de transferencia y los plásmidos auxiliadores: pLP1 , pLP2 y pVSVG. Debido a que el vector de transferencia pL6twBlast no contiene promotor, se amplificó por PCR, a partir de las construcciones intermedias generadas en pDisplay, la unidad transcripcional que comprende el promotor/potenciador del citomegalovirus humano (CMV) y los genes RBD o N fusionados al dominio extracelular del CD154 humano mediante un segmento de histidinas y el espaciador. Para amplificar la unidad transcripcional que contiene la proteína N, se emplearon oligonucleótidos específicos y se incorporó el sitio Xma I en el oligonucleótido 3’. Posteriormente, se digirió el producto de PCR con esta enzima, y se clonó en el vector pL6twBlast en los sitios Xma I y EcoR \/. En el caso de la unidad transcripcional que contiene RBD, se siguió una estrategia similar pero incorporando el sitio Pst I en el oligonucleótido 3’. Posteriormente, se digirió el producto de PCR con esta enzima, y se clonó en el vector pL6twBlast en los sitios Pst \ y EcoR M. Como resultado, se obtuvieron los plasmidios pL6twBlast-N-CD154 y pL6twBlast-RBD-CD154. Las secuencias de aminoácidos de los polipéptidos mencionados se resumen en la Tabla 1.
Tabla 1. Resumen de los polipéptidos mencionados.
Figure imgf000012_0001
Los plasmidios obtenidos se purificaron, secuenciaron y se verificó la producción de las proteínas quiméricas mediante transfección transitoria, con el empleo de PEI como agente de transfección. A las 72 horas se colectó el sobrenadante, y se realizó el análisis mediante SDS-PAGE y western blotting, empleando: a) un AcM antiHis (Sigma), b) IgG purificadas a partir de un suero humano positivo al SARS-CoV2 (CIGB Santi Spiritus, Cuba) o c) un AcM generado contra la proteína N recombinante obtenida en Escherichia coli (CIGB Santi Spiritus, Cuba). Como resultado de este ensayo, se corroboró la obtención de las proteínas quiméricas en el sobrenadante de cultivo y la funcionalidad de las unidades transcripcionales (Figuras 1 y 2). Además, se demostró que las proteínas RBD-CD154 y N-CD154 son reconocidas por las IgG purificadas a partir de un suero de paciente convaleciente al virus SARS-CoV2, lo que sugiere que la conformación de los segmentos de RBD y de proteína N en los polipéptidos quiméricos es similar a la conformación que tienen en las proteínas nativas del virus. Este resultado fue sorprendente, dado que la fusión de las proteínas virales al CD154 pudo cambiar la conformación de las mismas y, por tanto, afectar su reconocimiento por los anticuerpos de un paciente, inducidos tras la infección con el virus. Además, se observó la formación de agregados moleculares de alto peso en condiciones no reductores (Figuras 1 y 2), que podrían incrementar la inmunogenicidad de las mismas.
Teniendo en cuenta estos resultados, se procedió a la obtención de las partículas lentivirales. Para esto, se sembraron 5 frascos T 75 cm2 de células HEK-293T (ATCC, CRL-3216) por cada construcción, en medio DMEM F-12 (del inglés, Dulbecco's Modified Eagle Medium/Nutrient Mixture F-12) suplementado con 10% de Suero Fetal Bovino (SFB), 48 horas antes, con el objetivo de tener 70-80% de confluencia celular en el momento de la transfección. Para transfectar y obtener las partículas lentivirales, se empleó una proporción pL6twBlast-N-CD154 (o pL6twBlast-RBD-CD154): pipi : plp2: pVSV-G de 2: 1 : 1 : 1 (m: m: m: m) y una proporción 1 :1 de PEI 160 000 y ADN. Esta mezcla de PEI-ADN se añadió a las células en medio DMEM F-12 sin SFB. Posteriormente, las células se incubaron por 6 horas a 37°C y 5% de CO2. Pasado ese tiempo, se añadió al medio de cultivo de las células transfectadas el SFB a una concentración final del 10%, y se incubaron las mismas durante 72 horas a 37°C y 5% de CO2. A las 72 horas, se colectó el sobrenadante de cultivo de las células transfectadas, y se precipitaron los lentivirus contenidos en este, mediante el empleo del reactivo LentiX concentrator (Invitrogen) y centrifugación. Las partículas lentivirales se cuantificaron con el empleo del juego de reactivos DAVIH-Ag P24 (Cuba), y se almacenaron a -80 °C hasta su uso.
Ejemplo 3. Transducción lentiviral, clonaje celular y purificación de proteínas.
La transducción lentiviral se efectuó en placas de 24 pozos, sembradas con células HEK-293 (ATCC CRL-1573) a una densidad celular de 2 x 104 células por pozo, en 2 mL de medio DMEM con 10% SFB. Los lentivirus se añadieron a diferentes multiplicidades de infección (50 y 100), empleando dos réplicas por condición. Posteriormente, las células se incubaron por 16 horas a 37 °C en 5% de CO2. Pasado ese tiempo, el medio de transducción fue reemplazado por 2 mL de medio fresco que contenía blasticidina, a una concentración final de 6 ug/mL. Las colonias resistentes a blasticidina se transfirieron a placas de 12 pozos, a los 14 días. En este momento todas las células controles (células que no fueron transducidas con el lentivirus quimérico y que se cultivaron en medio de cultivo con antibiótico a la misma concentración que las células transducidas) tuvieron 100% de mortalidad. Tres semanas después, se realizó el clonaje mediante el método de dilución limitante en placas de 96 pocilios (Costar), con el objetivo de obtener una célula por pocilio. Como resultado de este procedimiento, se seleccionaron 14-16 clones, en los cuales se verificó la producción de la proteína de interés (RBD-CD154 o N-CD154), mediante un ensayo inmunoenzimático (ELISA, del inglés Enzyme-linked immunosorbent assay). Teniendo en cuenta el resultado del ELISA, se escogieron 6 clones de células productoras de cada proteína quimérica para su expansión, congelación y adaptación a medio libre de suero y proteínas CDM4 (HyClone CDM4HEK293, Cytiva), que se realizó gradualmente. Primero, se redujo el porciento de SFB del medio DMEM F-12 de 10% a 2,5%. Luego, se realizaron de 3 a 4 cambios del medio de cultivo con diferentes proporciones de los medios CDM4/DMEM-F12 (25/75, 50/50, 75/25 y 100/0), cada 72 horas.
Con el objetivo de purificar las proteínas quiméricas RBD-CD154 y N-CD154, a partir del sobrenadante de cultivo de los clones transformados, este se centrifugó y se mezcló con tampón fosfato salino (TFS: 137 mM NaCI; 2,7 mM KCI, 10 mM Na2HPÜ4, y 1 ,8 mM KH2PO4), en una proporción 1 :1 , y se filtró empleando filtros de 0,2 pm. Se aplicó la muestra en una columna de purificación XK16, empaquetada con una matriz de agarosa Ni-NTA (Qiagen). Se realizó un paso de lavado con TFS que contenía 20 mM de imidazol, y la elución con TFS con 250 mM de imidazol. Las diferentes fracciones se chequearon por SDS-PAGE y Western blotting. Las proteínas quiméricas RBD-CD154 y N-CD154 se obtuvieron con más de 85% de pureza. Además, se verificó la identidad de las proteínas purificadas, mediante espectrometría de masas, y en el caso de la proteína quimérica RBD-CD154 también se verificó la unión al receptor ACE2, mediante ELISA y Biacore.
Ejemplo 4. Ensayos de unión de la proteína quimérica RBD-CD154 al receptor ACE2.
Los análisis se realizaron en un biosensor BIACORE X (General Electric). Como tampón de corrida se utilizó TFS. El procedimiento de inmovilización se realizó a 25 °C, a un flujo de 5 pL/min. La superficie de un chip CM5 se activó con la aplicación de 35 pL de una solución de 1-etil-3-(3 dimetilaminopropil) carbodiimida (Sigma- Aldrich) a 0,2 mol/L y N-hidroxisuccinimida (Sigma-Aldrich) a 50 mmol/L, en agua. Seguidamente, se aplicó una solución de ACE2-Fc murino (30 pg/mL) en acetato de sodio a 10 mmol/L; pH 5,0. Al finalizar ese paso, se realizó una inyección de 35 pL de etanolamina 1 mol/L; pH 8,0; para bloquear los grupos NH2 que permanecían activados. En el canal que se empleó como control negativo, se realizaron solamente las inyecciones de activación y el bloqueo con etanolamina, empleando el mismo flujo y volumen de inyección. Cada muestra se aplicó a un flujo de 10 pL/min por 120 s, luego se sustituyó por tampón de corrida y se registró la disociación durante otros 120 s. Para la regeneración de la superficie, se aplicaron 5 pL de NaOH 10 mM en agua. Para el análisis cinético, cada muestra se aplicó en diluciones seriadas desde 2 pM a 0,015 pM. Cada experimento se repitió tres veces con resultados similares. El análisis de los resultados se realizó mediante el programa BIAevaluation V4.1 (General Electric™). Se determinaron las velocidades de asociación (ka) y disociación (kd), así como la constante de afinidad (KD) de la interacción estudiada, a partir de un ajuste de Langmuir 1 :1. Esto se realizó en correspondencia con estudios de BIACORE previamente reportados para este par ligando-receptor, en formatos similares de experimento (Wang Q, et al. Cell (2020), 181 : 894-904; Jun Lan, et al. Nature (2020), 581 : 215-220.).
Se calculó la velocidad de asociación (ka=1 ,51 E+04 1/Ms), la velocidad de disociación (kd=4,63E 07 1/s), las unidades de resonancia magnética (Rmax=4,12E+01 RU) y la constante de disociación o afinidad (KD=3,63E-11 M). Los resultados demuestran que la proteína quimérica RBD-CD154 se une al receptor ACE2 inmovilizado, por lo que se mantiene su conformación en TFS a pH fisiológico. Otro aspecto importante es que la fusión al dominio extracelular del CD154 humano, por el extremo carboxilo, no afecta su capacidad de unión a ACE2. Este resultado fue sorprendente, esta proteína de fusión no existe en la naturaleza, y la incorporación de aminoácidos en uno de sus extremos pudiera afectar la conformación del segmento RBD, y por tanto la capacidad neutralizante de los anticuerpos que se generan mediante la inmunización con este antígeno quimérico.
Ejemplo 5. Evaluación de la respuesta inmune inducida en ratones por las proteínas quiméricas RBD-CD154 o N-CD154.
Con el objetivo de evaluar la inmunogenicidad de las proteínas quiméricas obtenidas, se inmunizaron ratones Balb/C hembras, de 6-8 semanas, de entre 15-18 gramos de peso. Como adyuvante se empleó Alhydrogel (Hidróxido de aluminio, Branntag Biosector), a una concentración final de 1 ,44 mg/mL. La adyuvación se realizó durante 16 horas a 4 °C. La inmunización se realizó por vía subcutánea, en un volumen de 0,1 mL con una dosis de 10 ug de antígeno/animal.
Se establecieron 5 grupos experimentales, de 15 animales cada uno: Grupo 1 : Se administró RBD-CD154, Grupo 2: Se administró N-CD154, Grupo 3: Se co-administró RBD-CD154 y N-CD154 (N+RBD) en sitios diferentes de manera simultánea, Grupo 4: Placebo (TFS y adyuvante), Grupo 5: Se administró RBD. Para este y otros ensayos, la proteína RBD se obtuvo en el sobrenadante de cultivo de células HEK- 293, mediante transfección transitoria, y se purificó mediante cromatografía de afinidad a quelatos metálicos (IMAC), debido a que está fusionada a un segmento de 6 histidinas en el C-terminal.
Las inmunizaciones se realizaron en los días 0 y 21. Las extracciones de sangre se realizaron los días 0 y 35. A partir de la sangre, se realizó la extracción del suero, mediante centrifugación a 10 000 x g por 10 min a 4 °C. Los títulos de IgG específicos generados se determinaron mediante ELISA, recubriendo placas High binding (Costar) con la proteína RBD (obtenida en células HEK-293) a una concentración de 10 pg/mL, o con proteína N (obtenida en E. coli) a una concentración de 5 pg/mL, respectivamente. Estas placas se bloquearon con 3% de leche descremada en TFS- Tween 0,05% durante 1h a 37°C. A continuación, se realizaron 4 lavados con TFS- Tween 0,05% y se aplicaron en la placa 100 pL de diluciones del suero desde 1 :500 hasta 1 :32 000. Se incubó a 37°C durante 2 h. Se realizaron 4 lavados con TFS- Tween 0,05% y se adicionaron 100 pL de un AcM anti-lgG de ratón conjugado a peroxidasa (Sigma) diluido en solución de bloqueo, a una dilución de trabajo 1 :10000. Se incubó durante 1 h a 37°C. Después de 4 lavados, las reacciones se revelaron empleando una solución sustrato con tetrametilbencidina (TMB) y peróxido de hidrógeno, durante 10 min, a temperatura ambiente. Después de detener la reacción, las absorbancias de los pocilios se midieron a una longitud de onda de 450 nm en un lector de placas (SUMA, Centro de Inmunoensayo, Cuba). Se definió como título, la dilución del suero donde la absorbancia fue mayor o igual que el doble de la absorbancia del suero pre-inmune.
Los resultados de los títulos de IgG específicos para RBD mostraron que en los animales inmunizados con la proteína quimérica RBD-CD154 (Grupo 1), y en los que recibieron las proteínas RBD-CD154 y N-CD154 en co-administración simultánea (Grupo 3), se obtuvieron títulos promedio superiores a 1 : 27 000. En estos grupos todos los ratones tuvieron títulos de anticuerpos. En el caso del grupo inmunizado con la proteína RBD no se obtuvieron títulos de IgG estadísticamente significativos en el día 35 (2 semanas después de la re-inmunización), lo que demuestra una mayor inmunogenicidad de la proteína quimérica RBD-CD154, en comparación con la proteína RBD sin el adyuvante molecular y obtenida en las mismas células (Figura 3A).
En los grupos inmunizados con la proteína quimérica N-CD154 (Grupo 2) y con las proteínas quiméricas RBD-CD154 y N-CD154 (Grupo 3) se obtuvieron títulos promedio contra la proteína N superiores a 1 :26 000. Este experimento demostró que las proteínas quiméricas RBD-CD154 y N-CD154, que comprenden el adyuvante molecular CD154, son capaces de inducir altos títulos de anticuerpos, tanto cuando se co-administran como cuando son administradas individualmente (Figura 3B).
También se midió la capacidad de estos sueros de inhibir la unión de la proteína RBD al receptor ACE2. Con este objetivo, se recubrió una placa de 96 pocilios (Costar) con la proteína de fusión ACE2-Fc murino (CIM, Habana) a una concentración de 5 ug/mL, durante 16 horas a 4°C, empleando un volumen de 50 pL por pocilio. En otra placa de 96 pocilios de cultivo, se añadieron 60 pL de una dilución 1 :50 de los sueros a evaluar, en tampón TFS-Tween 20 al 0,05% con leche descremada al 0,2% y se preincubó con el conjugado RBD-Fc humano - peroxidasa de rábano picante, a una dilución 1 :12 500 (dilución final del suero 1 :100). Se incubó la mezcla durante 1 h a 37 °C. Se lavó la placa de ELISA recubierta con ACE2-Fc murino 3 veces con TFS- Tween 20 al 0,1%. Se bloqueó con leche al 2% en TFS-Tween 20 al 0,05% con un volumen de 150 uL por pozo, por 1 hora a 37 °C. Pasado ese tiempo, se lavó la placa y se añadieron 50 pL de la mezcla de muestras y conjugado. Se incubó 1 h a 37 °C. Después de lavar 4 veces, las reacciones se revelaron empleando una solución sustrato con TMB y peróxido de hidrógeno, durante 10 min a temperatura ambiente. Después de detener la reacción, las absorbancias de los pocilios se midieron a una longitud de onda de 450 nm en un lector de placas (SUMA, Centro de Inmunoensayo, Cuba). El porciento de inhibición de la unión a ACE2 se determinó en comparación con la U máxima, donde se encontraban todos los componentes de la reacción excepto el suero. Es importante señalar que hay una correlación entre la capacidad de inhibición de la unión al receptor ACE2 de los sueros policlonales y el ensayo de neutralización viral in vitro (Zang J, et al. Cell Discov 2020, 6:61). Por lo tanto, el ensayo de inhibición se puede considerar un “marcador surrogado” de la capacidad neutralizante de los sueros.
Los resultados mostraron porcientos de inhibición de la unión a ACE2 superiores al 60% en el suero del 73-80% de los ratones co-inmunizados con las dos proteínas quiméricas o con la proteína quimérica RBD-CD154 sola, respectivamente (Figura 4). Estos porcientos de inhibición fueron superiores a los obtenidos en el grupo inmunizado con RBD. En este grupo solo se detectaron títulos de IgG específicos para RBD en el suero de 5 animales, y solo el suero de un animal mostró un porciento de inhibición de la unión a ACE2 mayor del 60% (Figura 4). Estos resultados demuestran que al inmunizar con la proteína quimérica RBD-CD154 obtenida en células HEK-293 o co-inmunizar con las proteínas quiméricas N-CD154 y RBD- CD154, obtenidas en esa misma línea celular, se genera una respuesta de anticuerpos de mayor capacidad neutralizante. También se observó una mayor homogeneidad de la respuesta inmune evaluada en estos dos grupos que la observada al inmunizar con la proteína RBD sola.
Ejemplo 6. Evaluación del porciento de células B presente en los centros germinales de los ratones inmunizados.
Los centros germinales son estructuras microanatómicas en los órganos linfoides secundarios. En general, las reacciones que ocurren en los centros germinales son fundamentales para la inducción de respuestas de células B duraderas y de alta calidad. Recientemente, se demostró que una inmunización con ARN mensajero (ARNm) que codifica para RBD del SARS-CoV2 provocó una respuesta de células auxiliares foliculares en los centros germinales, específicas del SARS-CoV2, así como células plasmáticas de larga duración y células B de memoria (Lederer, K., et al. Immunity (2020), 53:1281-1295). Sin embargo, esta respuesta muy deseada para una vacuna eficiente no se logró con la vacuna de proteína recombinante en ese mismo estudio.
Para evaluar el porciento de células B presente en los centros germinales de los ratones inmunizados con las proteínas quiméricas de la invención, se inmunizaron ratones Balb/C hembras, de 6-8 semanas, de entre 15 y 18 gramos de peso. Se empleó como adyuvante Alhydrogel, a una concentración final de 1 ,44 mg/mL. La adyuvación se realizó durante 16 horas a 4 °C. La inmunización se realizó por vía intramuscular, en un volumen de 0,1 mL, empleando una dosis de 10 ug de antígeno/animal. Se establecieron 6 grupos experimentales, de 10 animales cada uno: Grupo 1 : Placebo (TFS y adyuvante), Grupo 2: antígeno quimérico N-CD154, Grupo 3: antígeno quimérico RBD-CD154, Grupo 4: co-administración de los antígenos quiméricos RBD-CD154 y N-CD154 (N+RBD) simultáneamente, Grupo 5: RBD, y Grupo 6: N (proteína obtenida en el sobrenadante de cultivo de células HEK- 293 mediante transfección transitoria y purificada mediante IMAC debido a que tiene una secuencia de 6 histidinas en el extremo C-terminal).
Las células B de los centros germinales se obtuvieron y cuantificaron de forma similar a lo descrito por Lederer et al. (Immunity (2020), 53: 1281-1295)). Los resultados que se grafican en la Figura 5 muestran que, después de una sola inmunización, no hay células B Fas+GL7+ detectadles en los centros germinales de los animales de los grupos placebo, RBD y N. En contraste, una población de células B de los centros germinales se detectó en los animales de los grupos inmunizados con una dosis de las proteínas quiméricas N-CD154 (4,46 ± 0,53), RBD-CD154 (5,02 ± 0,18) y del grupo que se inmunizó con una dosis de ambos antígenos quiméricos RBD-CD154 y N-CD154 (7,49 ± 0,39) simultáneamente, siendo superior en este último grupo. Estos resultados demuestran que las proteínas quiméricas tienen una capacidad superior de potenciar una respuesta de células B en los centros germinales, después de la administración de una dosis. Anteriormente, esto solo se había demostrado para vacunas basadas en ARNm de RBD, donde se observó que este mayor porciento de células B específicas en los centros germinales correlaciona de forma positiva con una producción mayor de anticuerpos neutralizantes (Lederer etal., Immunity (2020), 53: 1281-1295).
Ejemplo 7. Ensayo de inmunización con los antígenos quiméricos en primates no humanos.
Se realizó un ensayo de inmunización en monos de la especie Macaca fascicularís, del sexo masculino, de 3-4 años de edad y más de 2,5 Kg de peso. Este constituye el modelo animal apropiado para la respuesta funcional que se quería evaluar, debido a la identidad de secuencia entre la proteína CD154 del humano y la de los primates no humanos. Se emplearon 3 monos por grupo, y seis grupos experimentales. Los animales del Grupo 1 recibieron Placebo, los animales del Grupo 2 recibieron el antígeno quimérico N-CD154, los animales del Grupo 3 recibieron el antígeno quimérico RBD-CD154. En los animales del Grupo 4 se realizó la co-administración de los antígenos quiméricos N-CD154 y RBD-CD154 (N+RBD) simultáneamente, mientras que el Grupo 5 recibió el antígeno RBD y el Grupo 6 recibió el antígeno N. Las inmunizaciones se realizaron los días 0 y 21 del esquema, por vía intramuscular, con 25 pg de antígeno por dosis, en un volumen de 0,5 mL. Las extracciones de sangre para la obtención de suero se realizaron dos días antes de la primera inmunización y 21 , 28, 35, 42 y 63 días después de la primera dosis. Los títulos de IgG específica para el dominio RBD o la proteína N se determinaron mediante un ELISA similar al descrito en el Ejemplo 5, pero empleando diluciones de los sueros desde 1 :400 hasta 1 :409 600 y un AcM anti-lgG humana conjugado (Jackson Immunology Research) diluido en solución de bloqueo, a una dilución de trabajo de 1 :80000. Se definió como título de anticuerpos a la dilución del suero donde la absorbancia fue mayor o igual que el doble de la absorbancia del suero pre-inmune. Se asignó un título de IgG de 200 para todas aquellas muestras cuya absorbancia no superó el doble de la absorbancia del suero preinmune a la dilución del suero de 1 :400.
Los resultados, que se reflejan en la Figura 6A, muestran que desde los 21 días después de la primera inmunización se produjeron títulos de anticuerpos específicos contra la proteína N, en el grupo inmunizado con el antígeno quimérico N-CD154 y en el que recibió los dos antígenos, N-CD154 y RBD-CD154, administrados simultáneamente (RBD+N). Además, los títulos de IgG específica contra la proteína N fueron superiores, con significación estadística, en el grupo inmunizado con el antígeno quimérico N-CD154 y con las dos proteínas quiméricas N-CD154 y RBD- CD154 a la vez, respecto a los títulos encontrados en el grupo inmunizado con el antígeno N solo (Figura 6A).
Por su parte, los títulos de IgG específica contra RBD fueron superiores, con significación estadística, en el grupo inmunizado con el antígeno quimérico RBD- CD154 y en los animales inmunizados con los dos antígenos quiméricos administrados simultáneamente (RBD+N), en comparación con el grupo inmunizado con el antígeno RBD solo (Figura 6B). Se observó un incremento significativo de los títulos contra RBD en los grupos inmunizados con las proteínas quiméricas una semana después de la re-inmunización. Estos resultados demuestran que la incorporación del segmento de CD154 en los antígenos quiméricos aumentó la inmunogenicidad de los mismos.
La evaluación de la inhibición de la unión de RBD a su receptor ACE2, por los sueros de los animales inmunizados, se realizó siguiendo el procedimiento descrito en el Ejemplo 5. Este análisis mostró que a partir del día 35 del esquema de inmunización y hasta el día 63, todos los monos inmunizados con el antígeno quimérico RBD- CD154 y los que recibieron los dos antígenos quiméricos N-CD154 y RBD-CD154 (RBD+N) simultáneamente mostraron porcientos de inhibición de la unión a ACE2 superiores al 65% (Figura 7). Los sueros de los monos inmunizados con el antígeno RBD mostraron porcientos de inhibición de la unión a ACE2 inferiores, entre 35-65%. También se observó una menor dispersión de los valores en los grupos inmunizados con RBD-CD154 y con RBD+N.
Además del ensayo de inhibición de la unión RBD-ACE2, se llevó a cabo un ensayo de neutralización del virus, donde se evaluaron los sueros del día 35 del esquema de inmunización. Para el ensayo de neutralización viral, se emplearon dos vahantes del virus SARS-CoV2 (cepa Wuhan y cepa con la mutación D614G en el dominio RBD). Se sembraron un total de 20 000 células Vero E6 (ATCC) por pozo, en placas de 96 pocilios (COSTAR) en medio de cultivo MEM (del inglés, Eagle’s Minimal Essential Medium) suplementado con 2% de SFB (v/v). Los sueros a evaluar se inactivaron a 56 °C por 30 min. Posteriormente, se prepararon diluciones seriadas 1 :2 de los sueros en medio MEM suplementado con SFB 2%. La cepa de SARS-CoV2 a 100 TCIDso (carga viral que induce el 50% de ruptura de la monocapa de células Vero) fue incubada en presencia o ausencia del suero por 1 hora a 37 °C. Después, se añadieron las suspensiones virales a las células Vero. A las 96 horas, las células se inspeccionaron en un microscopio óptico, para evaluar los efectos citopáticos y se adicionó Rojo Neutro (Sigma). Después de tres lavados, el Rojo Neutro se disolvió con buffer de lisis (50% etanol, 1 % ácido acético) por 15 min a 25 °C. Por último, se realizó la lectura de la absorbancia a 540 nm. Se consideró título de neutralización la mayor dilución del suero evaluado que mostró un valor de absorbancia mayor que el valor de corte. El valor de corte se calculó como el promedio de los valores de la absorbancia de los pozos del control celular dividido entre dos. Los títulos de neutralización viral obtenidos frente a dos vahantes de SARS-CoV2 se muestran en las Tablas 2 y 3.
Tabla 2. Título de neutralización viral frente al virus SARS-CoV2 (vahante Wuhan) encontrado en los sueros obtenidos 14 días después de segunda dosis.
Figure imgf000021_0001
Tabla 3. Título de neutralización viral frente al virus SARS-CoV2 (vahante D614G) encontrado en los sueros obtenidos 14 días después de segunda dosis.
Figure imgf000022_0001
Como se esperaba, y en correspondencia con lo obtenido en el ensayo de inhibición de la unión de RBD al receptor ACE2 por los sueros de los animales inmunizados, los títulos de neutralización viral fueron mayores en los grupos inoculados con el antígeno quimérico RBD-CD154 y con los dos antígenos quiméricos N-CD154 y RBD-CD154 administrados simultáneamente (RBD+N), en comparación con los otros grupos donde los animales recibieron la formulación placebo o el antígeno RBD solo.
En resumen, los resultados indican que con la presencia del segmento de CD154 en el antígeno quimérico se genera en los primates una respuesta de anticuerpos no solo más vigorosa, si no de mejor calidad, que con el mismo antígeno recombinante sin ese segmento de CD154. Esto se reflejó en: 1) Mayores títulos de IgG específicos contra la proteína N y contra RBD, 2) Mayor porciento de inhibición de la unión de RBD al receptor ACE2 y 3) Mayores títulos de neutralización viral contra diferentes vahantes del virus.
Ejemplo 8. Respuesta celular específica en primates no humanos inmunizados con los antígenos quiméricos RBD-CD154 y N-CD154.
Este estudio se realizó en primates no humanos de la especie Macaca fascicularís. La inducción de células T que producen IFN-y y TNF-a, después de la inmunización, se determinó mediante citometría de flujo. Se aislaron los linfocitos de sangre periférica de los animales, en el día 35 del esquema de inmunización descrito en el Ejemplo 7, mediante un gradiente de Ficoll. Se sembraron 0,5-1 x 106 linfocitos por pocilio a una placa de 96 pozos de fondo redondo, por triplicado, y se cultivaron en medio de cultivo RPMI 1640 (del inglés, Roswell Park Memorial Institute) (Gibco) suplementado con 10% SFB, 100 U/rnL de penicilina-estreptomicina (Gibco), 1 mM piruvato de sodio (Gibco) y 50 pM p-mercaptoetanol (Sigma-Aldhch), en presencia de virus SARS-CoV2 (cepa CUT2010-2025/Cuba/2020) inactivado, durante 16-18 h. Se usó Concanavalina A (5 pg/ml, Sigma-Aldrich) para estimular las células del control positivo. Se añadió brefeldina A (10 pg/ml, BD Biosciences) al cultivo, 1 hora después de la adición de los estímulos. Después del cultivo, las células se recolectaron y se tiñeron primero con el colorante fluorescente IR (Jive/dead near-IR fluorescent dye, Invitrogen) durante 20 min, y luego con los anticuerpos monoclonales anti-CD3 PEcy7 (Clon SK7) (BD Biosciences) y anti-CD4 PEcy5 (Clon RPA-T4) (BD Pharmingen), durante 30 min. Posteriormente, las células se fijaron y se permeabilizaron para teñir con los anticuerpos monoclonales anti-IFN-y conjugado a PE (Clon 4S.B3) (BD Biosciences 561056) y anti-TNF-a conjugado a FITC (Clon mAb11) (Invitrogen), durante 40-50 min. Se adquirió un total de 2x105 linfocitos en un citómetro Gallios (Beckam Coulter), y los datos se analizaron utilizando el software Kaluza versión 1.2. Se ha demostrado que las células T CD4+ y CD8+ desempeñan una función importante en la protección contra el SARS-CoV2. Los resultados, que se resumen en la Figura 8, demuestran que la administración de la proteína quimérica N-CD54 y de las proteínas quiméricas N-CD154 y RBD-CD154 simultáneamente (N+RBD) produce un incremento significativo del porciento de células T productoras de IFN-y y TNF-a, al estimular con el virus, lo que indica una activación de la respuesta inmune de memoria. Estos resultados, junto a los mostrados para la respuesta de anticuerpos específicos con capacidad neutralizante (Ejemplo 7), evidencian una mayor respuesta en los individuos inmunizados con las dos proteínas quiméricas.

Claims

23 REIVINDICACIONESANTIGENOS QUIMERICOS PARA EL CONTROL DE CORONAVIRUS Y COMPOSICIONES QUE LOS COMPRENDEN
1. Antígeno quimérico contra el coronavirus SARS-CoV2 que comprende a) un segmento que consiste en el dominio de unión al receptor de la proteína S1 o en la proteína N de dicho virus y b) el segmento extracelular de la proteína CD154 humana.
2. El antígeno quimérico según la reivindicación 1 donde el dominio de unión al receptor de la proteína S1 se caracteriza porque consiste en los aminoácidos 324 al 533 de dicha proteína.
3. El antígeno quimérico según la reivindicación 1 que adicionalmente comprende un un segmento de seis residuos histidina entre el segmento que consiste en el dominio de unión al receptor de la proteína S1 o en la proteína N de dicho virus y el segmento extracelular de la proteína CD154.
4. El antígeno quimérico según la reivindicación 1 que se caracteriza porque el segmento que consiste en el dominio de unión al receptor de la proteína S1 posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 1 y el segmento extracelular de la proteína CD154 posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 3.
5. El antígeno quimérico según la reivindicación 4 que se caracteriza porque posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 4.
6. El antígeno quimérico según la reivindicación 1 que se caracteriza porque el segmento que consiste en la proteína N posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 2 y el segmento extracelular de la proteína CD154 posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 3.
7. El antígeno quimérico según la reivindicación 6 que se caracteriza porque posee una secuencia de aminoácidos que se identifica como SEQ ID NO: 5.
8. El antígeno quimérico según la reivindicación 1 que se caracteriza porque se obtiene en el sobrenadante de cultivo de células de mamíferos.
9. Composición vacunal contra el virus SARS-CoV2 caracterizada porque comprende al menos un antígeno quimérico de cualquiera de las reivindicaciones 1-8 y un adyuvante farmacéuticamente aceptable. La composición vacunal según la reivindicación 9 que se caracteriza porque el adyuvante farmacéuticamente aceptable es un compuesto de aluminio. La composición vacunal según la reivindicación 9 que se caracteriza porque se formula para ser administrada por ruta sistémica. La composición vacunal según la reivindicación 9 que se caracteriza porque comprende un antígeno quimérico que comprende un segmento que consiste en el dominio de unión al receptor de la proteína S1 y un antígeno quimérico que comprende la proteína N. Uso del antígeno quimérico de cualquiera de las reivindicaciones 1-8 para la fabricación de una composición vacunal contra el virus SARS-CoV2. Método para la inducción de respuesta inmune contra el virus SARS-CoV2 en un individuo que lo necesita donde se administra una cantidad farmacéuticamente efectiva de al menos un antígeno quimérico de cualquiera de las reivindicaciones 1-8 y un adyuvante farmacéuticamente aceptable. El método de la reivindicación 14 donde se administra un antígeno quimérico que comprende un segmento que consiste en el dominio de unión al receptor de la proteína S1 y un antígeno quimérico que comprende la proteína N en el mismo esquema de inmunización. El método de la reivindicación 15 donde ambos antígenos se administran simultáneamente en el individuo que lo necesita.
PCT/CU2022/050009 2021-08-20 2022-08-18 Antigenos quimericos para el control de coronavirus y composiciones que los comprenden WO2023020637A1 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CU2021000070A CU20210070A7 (es) 2021-08-20 2021-08-20 Antígenos quiméricos para el control de coronavirus y composiciones que los comprenden
CU2021-0070 2021-08-20

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2023020637A1 true WO2023020637A1 (es) 2023-02-23

Family

ID=83690216

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/CU2022/050009 WO2023020637A1 (es) 2021-08-20 2022-08-18 Antigenos quimericos para el control de coronavirus y composiciones que los comprenden

Country Status (2)

Country Link
CU (1) CU20210070A7 (es)
WO (1) WO2023020637A1 (es)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007056266A2 (en) * 2005-11-07 2007-05-18 Sidney Kimmel Cancer Center Cd40 ligand fusion protein vaccine
EP1994943A2 (en) * 2006-02-28 2008-11-26 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia (Cigb) Chimeric vaccine antigens against classical swine fever virus
WO2022101302A1 (en) * 2020-11-12 2022-05-19 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Antibodies conjugated or fused to the receptor-binding domain of the sars-cov-2 spike protein and uses thereof for vaccine purposes

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2007056266A2 (en) * 2005-11-07 2007-05-18 Sidney Kimmel Cancer Center Cd40 ligand fusion protein vaccine
EP1994943A2 (en) * 2006-02-28 2008-11-26 Centro De Ingenieria Genetica Y Biotecnologia (Cigb) Chimeric vaccine antigens against classical swine fever virus
WO2022101302A1 (en) * 2020-11-12 2022-05-19 INSERM (Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale) Antibodies conjugated or fused to the receptor-binding domain of the sars-cov-2 spike protein and uses thereof for vaccine purposes

Non-Patent Citations (36)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ALAN GONZLEZ POSE ET AL: "Subunit influenza vaccine candidate based on CD154 fused to HAH5 increases the antibody titers and cellular immune response in chickens", VETERINARY MICROBIOLOGY, ELSEVIER BV, NL, vol. 152, no. 3, 17 May 2011 (2011-05-17), pages 328 - 337, XP028270707, ISSN: 0378-1135, [retrieved on 20110525], DOI: 10.1016/J.VETMIC.2011.05.033 *
ÁVALOS ILEANET ET AL: "Chimeric Antigen by the Fusion of SARS-CoV-2 Receptor Binding Domain with the Extracellular Domain of Human CD154: A Promising Improved Vaccine Candidate", VACCINES, vol. 10, no. 6, 3 June 2022 (2022-06-03), pages 897, XP055979511, DOI: 10.3390/vaccines10060897 *
BROUWER PJM ET AL., SCIENCE, vol. 369, no. 6504, 2020, pages 643 - 50
CHENG ET AL., CURRENT TROPICAL MEDICINE REPORTS, vol. 7, 2020, pages 61 - 64
CONG, Y. ET AL., J. VIROL., vol. 94, 2020, pages e01925 - 19
CUI, J. ET AL., NAT. REV. MICROBIOL., vol. 17, 2019, pages 181 - 192
GARCIA-BELTRAN, W.F. ET AL., CELL, vol. 184, 2021, pages 2372 - 2383
GÓMEZ, C.E. ET AL., VACCINE, vol. 27, 2009, pages 3165 - 74
GONZÁLEZ ALAÍN ET AL: "New antigen against avian influenza virus based on the fusion of the exposed domains of the H5 subtype hemagglutinin and the Gallus gallus CD154 protein", BIOTECNOLOGIA APLICADA, 1 January 2012 (2012-01-01), pages 275 - 278, XP055979707, Retrieved from the Internet <URL:http://scielo.sld.cu/pdf/bta/v29n4/bta09412.pdf> [retrieved on 20221109] *
GUPTA SACHIN ET AL: "Vaccination with a fusion protein that introduces HIV-1 gag antigen into a multitrimer CD40L construct results in enhanced CD8+ T cell responses and protection from viral challenge by vaccinia-gag", JOURNAL OF VIROLOGY (ONLINE), AMERICAN SOCIETY FOR MICROBIOLOGY, US, vol. 88, no. 3, 1 February 2014 (2014-02-01), pages 1492 - 1501, XP009179457, ISSN: 1098-5514, DOI: 10.1128/JVI.02229-13 *
HANSSON M. ET AL., BIOTECHNOL. APPL. BIOCHEM., vol. 32, 2000, pages 95
HASHEM ANWAR M ET AL: "A highly immunogenic, protective, and safe adenovirus-based vaccine expressing Middle East respiratory syndrome coronavirus S1-CD40L fusion protein in a transgenic human dipeptidyl peptidase 4 mouse model", JOURNAL OF INFECTIOUS DISEASES, vol. 220, no. 10, 4 July 2019 (2019-07-04), US, pages 1558 - 1567, XP055855073, ISSN: 0022-1899, Retrieved from the Internet <URL:http://academic.oup.com/jid/article-pdf/220/10/1558/30120825/jiz137.pdf> DOI: 10.1093/infdis/jiz137 *
JUN LAN ET AL., NATURE, vol. 581, 2020, pages 215 - 220
KING, A. M. Q. ET AL., ARCH. VIROL., vol. 163, 2018, pages 2601 - 2631
KUDELOVA, M. ET AL., MICROB. ECO!., vol. 70, 2015, pages 785 - 794
KUMAR S ET AL., VIRUS DISEASE, vol. 31, no. 1, 2020, pages 13 - 21
LAMBERT P ET AL., VACCINE, vol. 38, no. 31, 2020, pages 4783 - 91
LEDERER, K. ET AL., IMMUNITY, vol. 53, 2020, pages 1281 - 1295
LEI LEI ET AL: "CD40L-adjuvanted DNA vaccine carrying EBV-LMP2 antigen enhances anti-tumor effect in NPC transplantation tumor animal", CENTRAL EUROPEAN JOURNAL OF IMMUNOLOGY, vol. 43, no. 2, 1 January 2018 (2018-01-01), pages 117 - 122, XP055979575, ISSN: 1426-3912, DOI: 10.5114/ceji.2018.77379 *
LI, W ET AL., SCIENCE, vol. 310, 2005, pages 676 - 679
LORENZO, E. ET AL., AMB EXPRESS, vol. 9, 2019, pages 139
MA DYCLARK EA, SEMIN IMMUNOL, vol. 21, 2009, pages 265 - 72
MA, Y. ET AL., MBIO, vol. 6, 2015, pages e00064
MARLIN ROMAIN ET AL: "Targeting SARS-CoV-2 receptor-binding domain to cells expressing CD40 improves protection to infection in convalescent macaques", NATURE COMMUNICATIONS, 19 February 2021 (2021-02-19), pages 1 - 29, XP055879416, Retrieved from the Internet <URL:https://assets.researchsquare.com/files/rs-244682/v1/7becd25e-ba60-47bd-ac7a-8ecca60d16b1.pdf?c=1637595522> [retrieved on 20220114], DOI: 10.1038/s41467-021-25382-0 *
NG OWTAN YJ, HUM VACCINE IMMUNOTHER, vol. 13, no. 1, 2017, pages 186 - 9
SHAJAHAN A ET AL., GLYCOBIOLOGY, vol. 30, no. 12, 2020, pages 981 - 988
SIELING PETER ET AL: "Th1 Dominant Nucleocapsid and Spike Antigen-Specific CD4+ and CD8+ Memory T Cell Recall Induced by hAd5 S-Fusion + N-ETSD Infection of Autologous Dendritic Cells from Patients Previously Infected with SARS-CoV-2", MEDRXIV, 6 November 2020 (2020-11-06), pages 1 - 44, XP055845509, Retrieved from the Internet <URL:https://www.medrxiv.org/content/10.1101/2020.11.04.20225417v1.full.pdf> [retrieved on 20210928], DOI: 10.1101/2020.11.04.20225417 *
STONE G W ET AL: "Multimeric soluble CD40 ligand and GITR ligand as adjuvants for human immunodeficiency virus DNA vaccines", JOURNAL OF VIROLOGY, THE AMERICAN SOCIETY FOR MICROBIOLOGY, US, vol. 80, no. 4, 1 February 2006 (2006-02-01), pages 1762 - 1772, XP002711225, ISSN: 0022-538X, DOI: 10.1128/JVI.80.4.1762-1772.2006 *
SUÁREZ MARISELA ET AL: "A single dose of the novel chimeric subunit vaccine E2-CD154 confers early full protection against classical swine fever virus", VACCINE, ELSEVIER, AMSTERDAM, NL, vol. 35, no. 34, 5 July 2017 (2017-07-05), pages 4437 - 4443, XP085133832, ISSN: 0264-410X, DOI: 10.1016/J.VACCINE.2017.05.028 *
TAMMING LEVI A. ET AL: "DNA Based Vaccine Expressing SARS-CoV-2 Spike-CD40L Fusion Protein Confers Protection Against Challenge in a Syrian Hamster Model", FRONTIERS IN IMMUNOLOGY, vol. 12, 12 January 2022 (2022-01-12), XP055979509, DOI: 10.3389/fimmu.2021.785349 *
VAN KOOTEN C YBANCHEREAU J, J LEUKOC BIOL, vol. 67, 2000, pages 2 - 17
WANG NING ET AL: "Subunit Vaccines Against Emerging Pathogenic Human Coronaviruses", FRONTIERS IN MICROBIOLOGY, vol. 11, 28 February 2020 (2020-02-28), XP055843968, DOI: 10.3389/fmicb.2020.00298 *
WANG Q ET AL., CELL, vol. 181, 2020, pages 894 - 904
WEI LI: "Synergistic antibody induction by antigen-CD40 ligand fusion protein as improved immunogen", CANCER RESEARCH, WILEY-BLACKWELL PUBLISHING LTD, GB, vol. 115, no. 2, 31 March 2005 (2005-03-31), pages 215 - 222, XP071275201, ISSN: 0019-2805, DOI: 10.1111/J.1365-2567.2005.02141.X *
YAO, Q. ET AL., VACCINE, vol. 28, 2010, pages 8147 - 56
ZANG J ET AL., CELL DISCOV, vol. 6, 2020, pages 61

Also Published As

Publication number Publication date
CU20210070A7 (es) 2023-03-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP6294828B2 (ja) インフルエンザウイルスワクチンおよびその使用
TWI486359B (zh) 可用作誘發抗原專一性t細胞反應之免疫原性增強劑之融合蛋白
CN113164586B (zh) 免疫组合物及其制备方法与应用
JP5942296B2 (ja) 少なくとも1つのcxxcモチーフを含むポリペプチドと異種抗原とを含む医薬組成物、及びその使用
JP2023524054A (ja) ベータコロナウイルスの予防と治療
US11352416B2 (en) Mosaic chimeric viral vaccine particle
US6432679B1 (en) Enhancement of B cell activation and immunoglobulin secretion by co-stimulation of receptors for antigen and EBV Gp350/220
KR20190056382A (ko) 안정화된 그룹 2 인플루엔자 헤마글루티닌 줄기 영역 삼량체 및 그의 용도
WO2021254270A1 (zh) 基于细胞膜展示冠状病毒免疫原以诱导中和抗体的方法
KR20220010478A (ko) 기도 감염의 치료 또는 예방용 서브유닛 백신
JP2021511077A (ja) インフルエンザウイルスワクチン及びその使用
CA2900318C (en) Induction of cross-reactive cellular response against rhinovirus antigens
CN113151184A (zh) 基于细胞膜展示冠状病毒免疫原以诱导中和抗体的方法
WO2022135563A1 (zh) 同时诱导抗多种病毒的免疫应答的方法
KR20230084478A (ko) 면역원성 코로나 바이러스 융합 단백질 및 관련 방법
TW202206598A (zh) 對抗SARS-CoV-2之疫苗及其製品
JP4382163B2 (ja) ターゲッティング分子を用いた免疫応答の増強
Corigliano et al. Plant heat shock protein 90 as carrier-adjuvant for immunization against a reporter antigen
Liu et al. A bacterially expressed SARS-CoV-2 receptor binding domain fused with cross-reacting material 197 a-domain elicits high level of neutralizing antibodies in mice
Tong et al. C3d enhanced DNA vaccination induced humoral immune response to glycoprotein C of pseudorabies virus
WO2023020637A1 (es) Antigenos quimericos para el control de coronavirus y composiciones que los comprenden
WO2023018817A1 (en) Truncated influenza neuraminidase and methods of using the same
JP2018052953A (ja) インフルエンザウイルスワクチンおよびその使用
TW201736599A (zh) 靶向豬蘭格素(langerin)之抗原
CN113801206A (zh) 利用受体识别域诱导抗新冠病毒中和抗体的方法

Legal Events

Date Code Title Description
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application

Ref document number: 22789152

Country of ref document: EP

Kind code of ref document: A1

NENP Non-entry into the national phase

Ref country code: DE