ES2336444T3 - Obtencion y empleo de ginotecas de anticuerpos humanos ("bancos de anticuerpos humanos"). - Google Patents
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Abstract
Procedimiento para la obtención de bibliotecas de anticuerpos humanos; caracterizado porque se aísla el ARNm a partir de linfocitos B humanos periféricos, no activados y se transcribe en el ADNc, a continuación se amplifica el ADNc, que codifica anticuerpos, por medio de una reacción en cadena de polimerasa RCP con ayuda de cebadores adecuados, llevándose a cabo a continuación una incorporación en plásmidos de expresión adecuados y a continuación se lleva a cabo la expresión del anticuerpo-ADNc en clones individuales, caracterizado porque la maqueta de los cebadores para la reacción inversa para la síntesis de la hebra, no codificante, del ADN de la cadena pesada está basada en secuencias de IgM y porque se posibilita, por medio del empleo de diversos cebadores para la síntesis de la hebra, no codificante, la obtención de un tipo de anticuerpo, que está constituido por los dominios variables y por los primeros dominios constantes.
Description
Obtención y empleo de genotecas de anticuerpos
humanos ("bancos de anticuerpos humanos").
La invención se refiere a la obtención y al
empleo de genotecas de anticuerpos humanos (AK). A partir de una
mezcla de linfocitos B humanos se traduce su ARNm en ADNc mediante
el empleo de oligo-dT-cebadores. A
continuación tiene lugar una amplificación de los ADNc específicos
de los AK mediante una reacción en cadena de polimerasa (RCP,
Polymerase Chain Reaction) con utilización de secuencias cebadoras
de oligonucleótidos adecuadas. Por medio de la expresión de estos
ADNc amplificados, específicos de los AK, en un vector de expresión
bacteriano, por ejemplo en un vector pFMT, que se describe a
continuación, en E. coli, está disponible, por lo tanto, una
biblioteca de anticuerpos humanos con un amplio repertorio para
llevar a cabo la exploración ("screenen") con antígenos
seleccionados
in vitro.
in vitro.
Se estima que el sistema inmune de los seres
humanos, o bien de los mamíferos, tiene entre 10^{6} y 10^{8}
anticuerpos diferentes. Este número de anticuerpos es suficiente
para generar una reacción inmune del cuerpo tanto contra todos los
antígenos que existen en la naturaleza así como, también, contra los
antígenos sintéticos. Si se tiene en consideración así mismo que
con frecuencia varios anticuerpos reaccionan con el mismo antígeno,
se establece el repertorio de los anticuerpos realmente diferentes
más bien en el intervalo comprendido entre 10^{6} y 10^{7}.
Hasta el presente han sido obtenidos los
anticuerpos específicos siempre a partir de una inmunización con el
antígeno correspondiente, por ejemplo por medio de una inyección del
antígeno en el organismo o por medio de una incubación de células
del bazo in vitro con estos antígenos. En el caso de los
anticuerpos policlonales pueden aislarse a continuación las
inmunoglobulinas a partir del suero y a partir de las mismas pueden
obtenerse los anticuerpos específicos por ejemplo por medio de
procedimientos de absorción. Los anticuerpos monoclonales son
aislados a partir de los sobrenadantes celulares o bien a partir del
lisado celular de las células tumorales del bazo (células de
hibridoma) clonadas, fusionadas con linfocitos B individuales. Los
procedimientos que han sido citados precedentemente no son
adecuados, de manera especial, para la obtención de anticuerpos
humanos específicos o bien de anticuerpos monoclonales humanos.
La presente invención se plantea por
consiguiente la tarea de desarrollar un método accesible en general
para la generación de anticuerpos monoclonales humanos específicos
(huMAK's) o de fragmentos de anticuerpos, que contengan los puntos
de enlace con el antígeno.
Se ha encontrado que los huMAK's buscados o sus
fragmentos, que contienen los dominios variables, que se enlazan
con los antígenos, pueden ser aislados a partir de genotecas de
inmunoglobulina humana. En primer lugar se partió de una mezcla de
linfocitos B humanos no activados cuyo ARNm es aislado y es
traducido en ADNc con ayuda de
oligo-dT-cebadores. Una
amplificación específica de la población de anticuerpos ADNc dentro
del conjunto de ADNc obtenido se consiguió por medio de la
utilización de la RCP. Con esta finalidad se emplearon determinados
oligonucleótido-"cebadores", que son homólogos con respecto a
las secuencias conservadas sobre ambos extremos del
anticuerpo-ADNc (véase más adelante y los ejemplos).
La maqueta del cebador para la reacción inversa para la síntesis de
la hebra no codificante del ADN de la cadena pesada está basada en
secuencias IgM (subclase III, puesto que ésta abarca la mayoría de
las secuencias IgM). Las moléculas IgM están presentes en los
linfocitos B no activados con mayor frecuencia que todas las otras
clases de inmunoglobulinas. Las secuencias de IgG son
preponderantes, por el contrario, en los linfocitos B activados,
cuyo repertorio de anticuerpos diferentes es mucho menor. En el
caso de una biblioteca IgG existiría por otra parte el peligro de
que dominase en la biblioteca un IgG expresado de forma
especialmente intensa o un número reducido de los mismos.
Se llevaron a cabo, de manera conveniente, hasta
30 episodios de amplificación. Los oligonucleótidos-"cebadores"
contienen puntos de restricción adecuados con objeto de insertar el
ADN amplificado por ejemplo en el plásmido de expresión del
anticuerpo pFMT (véase más adelante). Este plásmido de expresión
posibilita la expresión de anticuerpos-ADNc y a
continuación la secreción de los productos de expresión en bacterias
(E. coli). El anticuerpo-operón del plásmido
contiene las secuencias de los fragmentos variables tanto de las
cadenas pesadas así como, también, de las cadenas ligeras de un
anticuerpo. Las secuencias "conductoras" adecuadas procedentes
del fragmento aminoterminal de una proteína bacteriana posibilitan
la secreción de los fragmentos de anticuerpo. Las secuencias
"conductoras" son escindidas durante la secreción por un enzima
bacteriano. Durante la secreción de los productos
anticuerpos-ADNc se asocian las cadenas ligeras y
las cadenas pesadas del anticuerpo (con o sin dominios constantes
limítrofes). De este modo, se forma un anticuerpo o un fragmento de
anticuerpo, que contiene un punto funcional de enlace con el
antígeno. De la misma manera, han sido descritos por otros autores
constructos similares para anticuerpos individuales (Better et
al. (1988), Science 240, 1041, y Skerras & Plückthun (1988),
Science 240,1038).
La amplificación del ADN, que codifica
fragmentos variables de anticuerpos, ha sido descrita ciertamente
por otros autores (Orlandi et al. (1989), Proc. Nati. Acad.
Sci. 86, 3833; Sastry et al., (1989) Proc. Nati. Acad. Sci.
86, 5728; Ward et al. (1989), Nature 341, 544); Huse et
al. (1989), Science 246, 275). Sin embargo se aisló en este
caso el ARNm, que codifica entre otras cosas también anticuerpos, a
partir de células de hibridoma o de linfocitos del bazo después
del tratamiento con un antígeno determinado. Por consiguiente se
emplearán en aquél caso también secuencias cebadoras que únicamente
están basadas en secuencias IgG. Naturalmente en aquél caso es
ventajoso para buscar el mayor número posible de clones de
anticuerpo-ADN, que procedan de linfocitos
activados. Con cebadores procedentes de secuencias IgG son mucho
mayores las probabilidades de encontrar clones, que contengan ADN
codificadores de anticuerpos contra el antígeno inyectado. Así mismo
debe añadirse que en los trabajos existentes han sido sintetizados
anticuerpos-ADN murinos y, por consiguiente no
humanos y que han sido amplificados además con exclusión de las
regiones de la cadena lambda.
En la presente invención son utilizadas, por el
contrario, secuencias cebadoras que son homologas con respecto a
las secuencias de los dominios constantes del
IgM-ADNc. De este modo la invención puede ser
realizada del mejor modo posible, es decir que puede ponerse a
disposición una gran variedad de anticuerpos, concretamente todo el
repertorio de anticuerpos, en forma de una biblioteca. La expresión
preferentemente en E. coli proporciona entonces la
biblioteca de anticuerpos humanos buscada, en la que se encuentran
los anticuerpos humanos buscados o bien los fragmentos de los
anticuerpos mediante exploración de los clones bacterianos con el
antígeno elegido.
En la tabla 1 se han reunido oligonucleótidos
cebadores adecuados para llevar a cabo la amplificación. Las
posiciones de los cebadores, precedentemente citados, sobre las
cadenas \mu, kappa y lambda se han representado esquemáticamente
en la tabla 2. En los ejemplos siguientes se han descrito las
construcciones biológicas moleculares en detalle, entre las cuales
también se encuentra el vector de expresión, es decir el plásmido de
expresión del anticuerpo pFMT. La invención se refiere, por
consiguiente, a bibliotecas de anticuerpos humanos preparadas
mediante transcripción del ARNm a partir de linfáticos B humanos no
activados (periféricos) por medio de
oligo-dT-ceb adores, seguido de una
amplificación por medio de una RCP con utilización de secuencias,
que contienen cebadores, homologas con respecto a las regiones
conservadas de IgM-ADNc y a continuación
incorporación en un plásmido de expresión adecuado para llevar a
cabo la expresión en microorganismos, preferentemente en el vector
de expresión pFMT para llevar a cabo la expresión en E.
coli. En una forma preferente de realización se incorpora,
además, una secuencia, que codifica un péptido marcador, por ejemplo
una secuencia "TAG" de tal manera que los productos de la
expresión pueden ser detectados de manera sencilla con anticuerpos
monoclonales establecidos frente al péptido marcador (Wehland et
al., (1984), EMBO J. 3,1295).
De igual modo, la invención abarca el empleo de
las bibliotecas de anticuerpos humanos precedentes para llevar a
cabo el aislamiento de los anticuerpos humanos buscados o bien de
fragmentos de anticuerpos con puntos funcionales para el enlace de
antígenos mediante exploración "screenen" con antígenos
seleccionados y así mismo abarca procedimientos para llevar a cabo
el aislamiento de los anticuerpos humanos citados o sus fragmentos
que se enlazan con los antígenos así como también abarca
procedimientos para la obtención de las citadas bibliotecas de
anticuerpos humanos.
La invención abarca, así mismo, vectores de
expresión con las propiedades del plásmido de expresión del
anticuerpo pFMT.
Los ejemplos siguientes desarrollan
adicionalmente la invención sin limitarla. Por último la invención
está contenida en las reivindicaciones.
\vskip1.000000\baselineskip
Se eligió el plásmido pKK233-2
(Amann und Brosius, (1985) Gene 40, 183 y Straus und Gilbert, (1985)
Proc. Nati. Acad. Sci. 82, 2014) como vector básico para la
formación del vector de expresión de anticuerpos (figura 1).
Como paso previo a la incorporación del
anticuerpo-operón se cortó el plásmido con SalI y
BamHI, se rellenaron los extremos con polimerasa Klenow y se
ligaron. De este modo se eliminaron estos dos puntos de restricción
y el ADN situado entremedias. Por otra parte se segmentó el plásmido
con HindIII, se rellenaron los extremos con la polimerasa Klenow y
se ligó con enlazadores BamHI. Por medio de esta operación se
eliminó el punto de restricción HindIII y se insertó un punto
BamHI. En este plásmido modificado se insertó el anticuerpo ADN. En
la figura 3 se muestra una vía de construcción esquemática del
anticuerpo-operón que codifica un anticuerpo ARNm
bicistrónico. Con objeto de posibilitar la secreción del anticuerpo
se utilizó la secuencia "conductora" del enzima bacteriano
pectatliasa. La secuencia "conductora" de este enzima ha sido
ya empleada para la expresión y para la secreción de un anticuerpo
ratón-humano quimérico
(Fab-Fragment, Better et al., en el lugar
indicado) así como el fragmento variable de un anticuerpo
"humanizado" (Ward et al., en el lugar indicado; Huse
et al., en el lugar indicado). Se sintetizaron a partir de
varios oligonucleótidos (tabla 4) el ADN para la primera secuencia
"conductora" (P_{1} por delante de la cadena pesada) y la
secuencia para un segundo punto de enlace de ribosomas (RBS) y una
segunda secuencia "conductora" (P_{2} por delante de la
cadena ligera).
Han sido obtenidos por Dr. G. Winter (Cambridge,
UK) anticuerpos ADNc, que codifican las regiones variables de las
cadenas pesadas y ligeras de un anticuerpo humano (HuVhlys o bien
HuVllys; Riechmann et al., (1988) J. Mol. Biol. 203, 825).
Se insertaron los puntos de restricción HindIII (HuVhlys) y EcoRV
(HuVllys) con objeto de posibilitar la inserción del anticuerpo
ADNc en el vector de expresión. Se introdujeron otros puntos de
restricción para Bañil (HuVhlys) y BstEII y respectivamente KpnI
(HuVllys), con objeto de intercambiar "en bloque" regiones
hipervariables. En el extremo de la secuencia
HuVhlys-ADNc se incorporó una señal de detención.
Se eliminó en la cadena ligera un punto BanII. Estas modificaciones
se llevaron a cabo por medio de una mutagénesis dirigida al punto
"site directed mutagenesis" en el bacteriófago M13mpl8 (Zoller
y Smith, Meth. Enzymol. 100, 468-500). En la tabla
5 se ha mostrado la secuencia del anticuerpo ADN confeccionado.
Para la inserción de la secuencia
"conductora" P_{1} (tabla 4) se sometió a digestión al
plásmido modificado pKK233-2 con los enzimas de
restricción NcoI y PstI y se insertó P_{1} entre estos puntos
(pKK233-2-P_{1}). Se llevaron a
cabo otras etapas de clonación hasta la última etapa con el plásmido
pUC18. El motivo se debe a que la presencia de fragmentos
individuales del anticuerpo-operón en el vector de
expresión influye negativamente sobre el crecimiento del anfitrión
bacteriano.
Como paso previo a la clonación en pUC18 tuvo
que ser eliminado su punto de restricción BamHI. Tras una digestión
con BamHI se rellenaron los extremos de las cadenas individuales con
el fragmento de Klenow y se volvieron a unir. Este plásmido
modificado se sometió a digestión a continuación con PstI y HindIII
y se ligó con P_{2} más RBS entre estos puntos de restricción
(pUC18-P_{2}). Por medio de esta operación
desaparece el punto de restricción original HindIII del plásmido y
se incorpora un nuevo punto de restricción HindIII. A continuación
se sometió a digestión al pUC18-p_{2} con PstI y
con HindIII y se ligó el ADN de la cadena pesada (inserto de
PstI-HindIII procedente de M13) en estos dos puntos
(pUC18-HP_{2}). Este plásmido se sometió a
digestión a continuación con EcoRV y con BamHI y se aportó por
ligadura el ADN de la cadena ligera (inserto de
EcoRV-BamHI procedente de M13)
(pUC18-HP_{2}L).
En una forma preferente de realización se aportó
por ligadura (tabla 4) una secuencia "TAG" en el nuevo punto de
corte HindIII. La secuencia "TAG" codifica el péptido
Glu-Glu-Gly-Glu-Glu-Phe
y es reconocido por el anticuerpo monoclonal YL 1/2 (Wehland et
al. (1984) EMBO J. 3, 1295). El plásmido resultante es
pUC-HTP_{2}L.
Para la inserción de HP_{2}L o bien de
HTP_{2}L en el vector de expresión se cortaron
pUC18-HP_{2}L o bien
PUC-HTP_{2}L con PstI y BamHI y el correspondiente
fragmento de restricción se ligó respectivamente en el plásmido
modificado pKK233-2-P_{1} en estos
dos puntos de restricción. En la tabla 6 se muestra una
representación esquemática del vector de expresión pFMT
confeccionado.
\vskip1.000000\baselineskip
Con objeto de enriquecer las células B
periféricas a partir de sangre humana, ésta se diluyó con fosfato
tamponado salino PBS ("phosphate buffered saline") 1:1 y se
centrifugó sobre una almohadilla de Ficoll^{R}(Pharmacia)
(1,077 kg/l). Las células de la interfase se lavaron dos veces con
PBS y se incubaron en medio RPMI, que contenía un 10% de suero de
ternera fetal, con un fondo de plástico (botella de cultivo) durante
una hora a 37ºC. Las células adherentes (monocitos y macrófagos) se
adhirieron sobre el recipiente de cultivo y de este modo pudieron
ser separadas de la preparación. Las células no adherentes se
reunieron por medio de una centrifugación y se homogeneizaron con
isotiocianato de guanidinio 4,4 M, mercaptoetanol al 5% y
lauroilsarcosina al 2%. El homogenato se centrifugó a continuación
sobre una almohadilla de CsCl 5,7 M durante 18 horas a 125.000 g.
El ARN sedimentado se disolvió en H_{2}O bidestilada y se
precipitó durante la noche con etanol al 70% y con 1/20 en volumen
de LiCl 8 M a -20ºC.
Con objeto de obtener una pluralidad todavía
mayor de anticuerpos de diversa especificidad se mezclaron
preparaciones de ARN de respectivamente 500 ml de sangre de 20
personas diferentes.
\vskip1.000000\baselineskip
Se purificó el ARNm a través de
oligo-dT-sefarosa (estuche de la
firma Phärmacia) y se tradujo en ADNc con transcriptasa inversa
(estuche de la firma Amersham) y con
oligo-dT-cebador. Los productos se
emplearon directamente en la reacción en cadena de polimerasa
"polymerase chain reaction" (RCP). En las tablas 1 y
respectivamente 2 se han mostrado el cebador para la RCP y los
puntos de hibridación. Por medio de una combinación de los
\mu-ADN obtenidos bien con ADN kappa o con ADN
lambda en el vector pFMT se prepararon dos bancos diferentes de
expresión. El empleo de diversos cebadores para la síntesis de las
hebras no codificantes en la reacción en cadena de polimerasa
"polymerase chain reaction" posibilita la obtención de dos
tipos diversos de anticuerpos, que en uno de los casos únicamente
contienen los dominios variables, conteniendo en el otro caso
adicionalmente además un dominio constante (similar al fragmento
Fab de un anticuerpo). Para la RCP se hicieron reaccionar 4 \mul
de un ADNc de síntesis respectivamente con 0,2 nmol de los dos
cebadores en un volumen de 50 \mul. La carga de la reacción
contenía 100 mM de KC1, un 0,1% de gelatina y 2,5 U de polimerasa
Taq. Al cabo de 30 ciclos de polimerización, constituidos por 1
minuto a 95ºC, 2 minutos a 55ºC y 2 minutos a 72ºC, se precipitó con
etanol el ADN.
\vskip1.000000\baselineskip
El ADN precipitado se recogió en el tampón de
carga para geles de agarosa (0,1% de azul de bromofenol, 7% de
Ficoll^{R} [Pharmacia]) y se separó sobre un 2% de agarosa a 10
V/cm en tampón TBE (45 mM de tris-borato, pH 8,0,
10 mM de EDTA). El anticuerpo ADN sintetizado se identificó por
medio de su peso molecular y se eluyó a partir del gel. Después de
la precipitación con etanol se recogió dicho anticuerpo ADN en
tampón para el correspondiente enzima de restricción y se cortó con
el correspondiente enzima de restricción (Boehringer Mannheim)
(véanse las tablas 1 y 2). Después de una precipitación en etanol se
ligó en el vector pFMT cortado de la misma manera, como se ha
mostrado esquemáticamente en la tabla 7.
\vskip1.000000\baselineskip
Se transfirieron E. coli competentes con
plásmidos pFMT, que contienen la biblioteca de
anticuerpo-ADN insertada, se extendieron sobre
placas de agarosa y a continuación se incubaron con filtros de
nitrocelulosa, que estaban recubiertos con el antígeno buscado.
Después de la eliminación de los anticuerpos enlazados de manera
inespecífica, se identifican los clones activos con un anticuerpo
marcado contra la inmunoglobulina humana secretada por E.
coli. En la forma preferente de realización se utiliza para la
identificación de los clones buscados el anticuerpo monoclonal YL
1/2, que está dirigido contra la secuencia "TAG".
\vskip1.000000\baselineskip
Mapa de restricción del vector de expresión
pKK233-2 (Amann und Brosius, en el lugar
indicado)
Ptrc significa promotor
triptofano-lac híbrido
RBS significa puntos de enlace de los
ribosomas
rrnB significa ARN B ribosómico (5S ARN)
5S significa gen para 5S ARN (que contiene
rrnB)
\vskip1.000000\baselineskip
Como paso previo a la clonación del anticuerpo
ADN en el vector de expresión se llevan a cabo las siguientes
modificaciones:
1). Los puntos de restricción SalI y EcoRI se
separaron junto con el ADN situado entremedias.
2). El punto de restricción HindIII se
transformó en un punto de restricción BamHI.
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(Tabla pasa a página
siguiente)
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\cr
\cr}
<110> Dade Behring Marburg GmbH
\vskip0.400000\baselineskip
<120> Preparación y empleo de genotecas de
anticuerpos humanos ("bancos de anticuerpos humanos
-Human-Antibody-Libraries")
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 1990/B005 - Ma 833
\vskip0.400000\baselineskip
<140> EP 04008412.1
\vskip0.400000\baselineskip
<141>
1991-01-28
\vskip0.400000\baselineskip
<150> EP91101095.7
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1991-01-28
\vskip0.400000\baselineskip
<160> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.1
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgaggtgcagc tgcaggagtc tgggggaggc tt
\hfill32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskiptgtctgcatc tgtrggagac agggtcacca tcamttg
\hfill37
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcctcagygtc tgggwcccca ggacagaggg tgaccatctc ctgc
\hfill44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgggtgggacg aagaagctta cttagggagg cagctcagca atcac
\hfill45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 45
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgggtgggacg aagaagctaa gcttgggagg cagctcagca atcac
\hfill45
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtgagggwtg ggatcctatg aacattctgt aggggccact gt
\hfill42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcacaggagac gagggggaaa agctttgggg cttatgcact ccc
\hfill43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcacaggagac gagggggaaa agctttgggg cggatgcact ccc
\hfill43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaacagaggcg gatcctcatt tcaactgctc atcagatggc gggaagatga agac
\hfill54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210>11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipagctcctcag aggasggcgg gatccgagtg acctagggg
\hfill39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 125
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcatgaaatac ctcttgccta cggcagccgc tggcttg
\hfill37
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipctgctgctgg cagctcagcc ggcgatggcg caagttcagc tgca
\hfill44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgccaagcttg aattcattaa agaggagaaa
\hfill30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211>
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttaactccat gaagtactta ctgccgaccg ctgcg
\hfill35
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 124
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
\hskip1cm
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgctcagccgg ctatggctga tatcggatcc
\hfill30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgcgggtctcc tgctgttggc g
\hfill21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipagcttgaaga aggtgaagaa ttctaatg
\hfill28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipagctcattag aattcttcac cttcttca
\hfill28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 120
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 407
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 113
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 381
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\vskip1.000000\baselineskip
Claims (3)
1. Procedimiento para la obtención de
bibliotecas de anticuerpos humanos; caracterizado porque se
aísla el ARNm a partir de linfocitos B humanos periféricos, no
activados y se transcribe en el ADNc, a continuación se amplifica el
ADNc, que codifica anticuerpos, por medio de una reacción en cadena
de polimerasa RCP con ayuda de cebadores adecuados, llevándose a
cabo a continuación una incorporación en plásmidos de expresión
adecuados y a continuación se lleva a cabo la expresión del
anticuerpo-ADNc en clones individuales,
caracterizado porque la maqueta de los cebadores para la
reacción inversa para la síntesis de la hebra, no codificante, del
ADN de la cadena pesada está basada en secuencias de IgM y porque se
posibilita, por medio del empleo de diversos cebadores para la
síntesis de la hebra, no codificante, la obtención de un tipo de
anticuerpo, que está constituido por los dominios variables y por
los primeros dominios constantes.
2. Procedimiento según la reivindicación 1,
caracterizado porque la expresión se lleva a cabo en el
plásmido pFMT de conformidad con la tabla 6.
3. Procedimiento para el aislamiento de
fragmentos de anticuerpos humanos específicos, caracterizado
porque se exploran bibliotecas de anticuerpos humanos, preparados
según la reivindicación 1 o 2, con antígenos específicos.
Applications Claiming Priority (4)
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Families Citing this family (42)
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|---|---|---|---|---|
| DK0440147T3 (da) † | 1990-02-01 | 2005-01-17 | Dade Behring Marburg Gmbh | Fremstilling og anvendelse af genbanker af humant antistof ("humant-antistof-biblioteker") |
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