ES2310239T3 - Polimorfismos mitocondriales ligados a una predisposicion para el desarrollo de cicatrizacion o fibrosis inadecuadas. - Google Patents

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Abstract

Un procedimiento in vitro para diagnosticar o detectar una predisposición para una afección al menos parcialmente caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas, comprendiendo el procedimiento examinar el gen de ARNr16s del genoma mitocondrial de un sujeto de interés para detectar la presencia de un polimorfismo genético o mutación ligada al desarrollo de la afección.

Description

Polimorfismos mitocondriales ligados a una predisposición para el desarrollo de cicatrización o fibrosis inadecuadas.
La presente invención se refiere a procedimientos para realizar pruebas genéticas de muestras para determinar la presencia de polimorfismos o mutaciones que están ligados a una predisposición genética para desarrollar afecciones al menos parcialmente caracterizadas por una cicatrización o fibrosis inadecuadas.
Una cicatriz es una estructura morfológica anormal que es el resultado de una lesión o herida previa (por ejemplo una incisión, una escisión o un trauma). Las cicatrices están compuestas de un tejido conectivo que es predominantemente una matriz de colágeno de tipos 1 y 3 y fibronectina. La cicatriz puede estar constituida por fibras de colágeno en una organización anormal (como se ven en las cicatrices de la piel) o puede ser, una acumulación anormal de tejido conectivo (como se ve en las cicatrices del sistema nervioso central o en la cicatrización patológica de la
piel).
La cicatrización es una consecuencia habitual del proceso de curación en la mayoría de los tejidos de animales y seres humanos. En la piel, las cicatrices pueden adoptar la forma de una depresión por debajo de la superficie de la piel o pueden estar elevadas y sobresalir de la superficie de la piel. Las cicatrices hipertróficas son una forma más grave de cicatrización que puede surgir en determinadas afecciones o en determinados individuos. Las cicatrices hipertróficas están elevadas por encima de la superficie normal de la piel y contienen un exceso de colágeno que queda dispuesto según una organización anormal. Un queloide es una forma de cicatrización patológica que no sólo está elevada por encima de la superficie de la piel, sino que también se extiende más allá de los límites de la lesión original. En un queloide hay un exceso de tejido conectivo que está organizado de manera anormal predominantemente en bandas vorticiales de tejido colagenoso.
Se cree que existen predisposiciones genéticas para formar una cicatrización inadecuada y particularmente patológica (por ejemplo, cicatrices hipertróficas y queloides). Por ejemplo, las razas afrocaribeñas y mongoloides son particularmente propensas a desarrollar cicatrices queloides. Además pueden desarrollarse en familias una predisposición a desarrollar cicatrices hipertróficas y queloides.
Existen numerosas situaciones médicas en las que la formación de cicatrices representa un problema. Son ejemplos de tales situaciones las cicatrices de la piel en las que una excesiva formación de tejido cicatrizal puede ser perjudicial para la función tisular y particularmente cuando se produce contracción cicatrizal (por ejemplo quemaduras de la piel y heridas que deterioran la flexibilidad de una articulación). Es también muy deseable la reducción de la cicatrización para la piel cuando son importantes las consideraciones cosméticas. En la piel, las cicatrices hipertróficas o queloides (particularmente en las razas afrocaribeñas y mongoloides) pueden ocasionar deterioro funcional y cosmético y existe una necesidad de impedir su presentación. La formación de tejido cicatrizal derivada de los injertos de piel tanto en los sitios donantes como en los sitios de aplicación de piel artificial también puede ser problemática y necesita minimizarse o evitarse. Dada la importancia de la cicatrización en tales situaciones, podrá apreciarse que existe una necesidad de estar en condiciones de hacer pruebas a un sujeto para investigar si será o no será susceptible a desarrollar una cicatrización inadecuada.
Además de las cicatrices de la piel, la cicatrización o fibrosis interna puede ser muy perjudicial y se incluyen ejemplos específicos:
(i) Dentro del sistema nervioso central, la cicatrización glial puede impedir la reconexión neuronal (por ejemplo, tras una neurocirugía o de lesiones que penetran en el cerebro).
(ii) La cicatrización en el ojo puede ser perjudicial. En la córnea, la cicatrización puede dar lugar a opacidad anormal y conducir a problemas de visión o incluso a la ceguera. En la retina, la cicatrización puede ocasionar alabeo o desprendimiento de retina y como consecuencia ceguera. La cicatrización después de la curación de las heridas en operaciones para aliviar la presión en el glaucoma (por ejemplo en la cirugía de filtración del glaucoma) da como resultado en el fracaso de la cirugía, por lo que el humor acuoso no puede drenarse y por consiguiente vuelve el glaucoma.
(iii) La formación de tejido cicatrizal en el corazón (por ejemplo, tras una cirugía o de un infarto de miocardio) puede dar lugar a una función cardíaca anormal.
(iv) Las operaciones que involucran al abdomen o a la pelvis, a menudo dan lugar a adherencias entre vísceras. Por ejemplo, las adherencias entre elementos del intestino y la pared corporal pueden formar y causar retorcimiento del circuito intestinal, lo que conduce a isquemia, gangrena y a la necesidad de un tratamiento de emergencia (en caso de no tratarse, pueden incluso ser fatales). Asimismo, los traumatismos o incisiones en los intestinos pueden llevar a la formación de tejido cicatrizal y la contracción cicatrizal en las constricciones puede causar oclusión del lumen de los intestinos, lo que nuevamente puede representar un riesgo para la vida.
(v) La cicatrización en la pelvis en la región de las trompas de Falopio puede llevar a la infertilidad.
(vi) La cicatrización después de lesiones en los músculos puede dar como resultado una contracción anormal y por consiguiente una función muscular pobre.
(vii) La formación de tejido cicatrizal o fibrosis después de lesiones en los tendones y ligamentos puede dar como resultado una importante pérdida de la función.
El hecho de que exista una serie de afecciones médicas que son conocidas como trastornos fibróticos está relacionado con lo expuesto anteriormente, en los que el desarrollo de un exceso de tejido fibrótico, conduce a una desorganización patológica y a un mal funcionamiento del tejido. Los trastornos fibróticos están caracterizados por la acumulación de tejido fibroso (predominantemente colágenos) de manera anormal dentro del tejido. La acumulación de tales tejidos fibrosos puede dar como resultado una diversidad de enfermedades. Estas enfermedades no necesariamente tienen que estar ocasionadas por cirugía, lesión traumática o heridas. Los trastornos fibróticos son usualmente crónicos. Los ejemplos de trastornos fibróticos incluyen la cirrosis del hígado, fibrosis hepática, glomerulonefritis, fibrosis pulmonar, fibrosis quística, esclerodermia, fibrosis de miocardio, fibrosis tras el infarto de miocardio, fibrosis del sistema nervioso central tras un ictus o de trastornos neurodegenerativos (por ejemplo la Enfermedad de Alzheimer), vitreorretinopatía proliferativa (PVR) y artritis.
Como en el caso de la cicatrización, se cree que hay una influencia genética en el desarrollo de muchos trastornos fibróticos o en la gravedad de los mismos. En algunos casos, la influencia genética puede ser directamente responsable del desarrollo del trastorno mientras que para otros trastornos fibróticos puede haber un factor genético que influya en el desarrollo fibrótico que es secundario a la causa primaria del trastorno (por ejemplo, en la fibrosis quística).
Un ejemplo de un trastorno que incluye fibrosis y del que también se cree que está influenciado por la genética, es la enfermedad de Dupuytren (DD).
La DD es una fibromatosis palmar nodular que ocasiona contractura progresiva y permanente de los dedos. La DD es un trastorno irreversible, progresivo con una alta tasa de recurrencia tras la excisión quirúrgica. Con frecuencia es familiar y es común en los individuos de extracción norteeuropea. Más del 25% de los varones de razas célticas de más de 60 años de edad presentan signos de DD y se considera que es una de los trastornos hereditarios más comunes del tejido conectivo en los caucásicos.
Hasta el momento no se ha identificado en la bibliografía gen individual alguno como responsable de esta afección. Además, no está claro si la DD es una afección oligogénica compleja o un sencillo desorden mendeliano monogénico. Por consiguiente, la identificación de loci genéticos susceptibles proporcionaría un enfoque ideal para desvelar el componente hereditario de esta enfermedad común y sería también valiosa en el posterior desarrollo de estrategias de tratamiento y manejo de la DD.
De lo expuesto anteriormente se apreciará que existe una necesidad de ser capaces de evaluar a los individuos en cuanto a su susceptibilidad para desarrollar afecciones al menos parcialmente caracterizadas por fibrosis o cicatrización inadecuada y también de evaluar el pronóstico para un individuo que padezca de una afección de este tipo. Una manera en la que esto puede enfocarse es proceder a la identificación de los polimorfismos o mutaciones de un gen que puedan estar asociados a una determinada afección médica. Una vez identificados, tales polimorfismos o mutaciones pueden proporcionar información útil a los médicos que necesiten manejar, tratar o establecer una susceptibilidad para desarrollar una afección. Una manera en la que puede usarse la información es en el desarrollo de una prueba
genética.
El análisis genético puede definirse como la prueba analítica del ácido nucleico de un paciente para determinar si el ADN de un paciente contiene mutaciones (o polimorfismos) que ocasionen o incrementen la susceptibilidad a desarrollar una afección o que estén en asociación con el gen que ocasiona la afección y sean por consiguiente potencialmente indicativos de una predisposición para esa afección.
La detección temprana de una predisposición para desarrollar una afección constituye la mejor oportunidad para la intervención médica. La identificación genética temprana del riesgo puede mejorar el pronóstico de un paciente mediante una intervención temprana antes de que se manifiesten los síntomas clínicos.
En los casos en que los pacientes con síntomas similares se tratan con el mismo tratamiento con éxito variable, el análisis genético puede diferenciar pacientes con una base genética de los que desarrollan los síntomas sin tenerla, conduciendo de este modo a la necesidad potencial de diferentes enfoques de tratamiento.
Es un objetivo de la presente invención proporcionar procedimientos de selección genética para indicar un riesgo o una predisposición a desarrollar afecciones que estén al menos parcialmente caracterizadas por fibrosis o cicatrización inadecuadas.
De acuerdo con un primer aspecto de la presente invención se proporciona un procedimiento in vitro para diagnosticar o detectar una predisposición a desarrollar una afección al menos parcialmente caracterizada por la fibrosis o cicatrización inadecuadas, el procedimiento comprende el examen del ARNr16s del genoma mitocondrial de un sujeto de interés para detectar la presencia de un polimorfismo o mutación genéticos ligados al desarrollo de la afección.
El procedimiento de acuerdo con el primer aspecto de la invención permite al investigador identificar un sujeto que expresa polimorfismos o mutaciones genéticas en el ARNr16s del genoma mitocondrial para determinar aquellos sujetos que tienen o están en mayor riesgo de desarrollar una afección al menos parcialmente caracterizada por una fibrosis o cicatrización inadecuadas. Esto permite poner en marcha acciones adecuadas para prevenir o disminuir la probabilidad de inicio de la afección o para permitir el tratamiento de la misma. El procedimiento también es útil para establecer un pronóstico para un sujeto que tiene diagnóstico de una afección particular.
Se entiende por "polimorfismo" una región de un gen o de elementos reguladores del mismo, en la que la secuencia de bases de nucleótidos puede variar entre individuos. Existe un genotipo predominante a menudo que representa la forma habitual, o tipo salvaje, de un gen con subseries de una población que tienen un polimorfismo que confiere un genotipo distinto. Ciertos polimorfismos pueden ser predominantes en los individuos de determinadas extracciones étnicas o de zonas geográficas específicas. Un polimorfismo puede no afectar a la función del gen; puede conducir a la aparición de diferencias en la función del gen; puede producir un producto génico inactivo; o puede modular la producción del producto del gen.
Se entiende por "mutación" una región de un gen o de elementos reguladores del mismo, donde la secuencia de bases de nucleótidos varía respecto al genotipo usual (es decir el tipo salvaje). La mutación puede ser una sustitución, adición o deleción de bases. Una mutación puede no afectar a la función del gen; puede conducir a la aparición de diferencias en la función del gen; puede producir un producto de gen inactivo; o puede modular la producción del producto del gen.
Se entiende por "elementos reguladores" al ADN que está involucrado en la regulación de la transcripción del gen. Por ejemplo, las secuencias de unión al factor de transcripción, la caja TATA y en particular el promotor de PL y PH1. El promotor de PL y PH1 es un promotor predominante localizado en la región de control que incluye un bucle (D) de desplazamiento e influye en la transcripción de todos los genes mitocondriales.
Se entiende por "genoma mitocondrial" al material genético encontrado dentro de la mitocondria de las células de un sujeto analizado. Este material genético incluye todos los genes y particularmente las secuencias codificadoras y los elementos reguladores de los mismos.
El genoma mitocondrial es un ADN circular de doble hebra de 16.558 pares de bases (menos que 10-5 veces el tamaño del genoma nuclear) compartimentalizado dentro de cada mitocondria. El ADN mitocondrial (ADNmt) está típicamente presente en 10-3-10-4 copias en cada célula. Existen sin embargo, 102 copias en el espermatozoide y 105 en el oocito.
Se reconoce a las mitocondrias como componentes importantes y vitales del citoplasma de las células eucariotas. Las mitocondrias son responsables de la generación de energía en forma de trifosfato de adenosina (ATP) a través del proceso de fosforilación oxidativa (OXPHOS). Las mitocondrias también tienen una función en la regulación de la muerte celular programada, o apoptosis. La membrana mitocondrial interna contiene un número de factores promotores de la apoptosis tales como cyt c, Smac, DIABLO, AIF y caspasas. La apertura de los poros de transición de permeabilidad mitocondrial causa hinchazón de la membrana y liberación de estos factores apoptóticos al interior del citoplasma celular.
En comparación con el genoma nuclear, el ADNmt es extremadamente compacto con sólo 1 kb de secuencia no codificadora conocido como bucle de desplazamiento (bucle D). El bucle D forma un tríplex y es el sitio de origen de la replicación mitocondrial. No hay intrones y el ADNmt no está cubierto por histonas protectoras como el ADN nuclear. El genoma mitocondrial está unido a la membrana mitocondrial interna próximo a la cadena
respiratoria.
El ADNmt comprende 13 genes codificadores de proteínas. La secuencia completa del ADNmt humano es conocida por los expertos en la técnica como la Secuencia de Referencia de Cambridge (CRS) (Anderson y col., Nature, 9 de abril de 1981; 290 (5806): 457-465). Recientemente se ha secuenciado nuevamente el ADNmt y se ha revisado además la CRS (Andrews y col., Nat Genet, octubre de 1999; 23 (2): 147).
Las secuencias del ADNmt pueden variar típicamente en unos 50 nucleótidos (0,3%) entre seres humanos no relacionados. Usualmente existe una única variante de secuencia de ADNmt en todas las células de la mayoría de los seres humanos. A esto se lo denomina homoplasmia.
Sin embargo, la tasa de mutaciones en el ADNmt humano es 10-20 veces la del ADN nuclear. Se cree que esta tasa de mutación se debe en parte en fallos de corrección de las enzimas ADNmt polimerasas. Además, la cadena respiratoria es una potente fuente de radicales libres de oxígeno que se cree causan mutaciones en el ADNmt.
Las variaciones en la secuencia del ADNmt puede ser hereditarias o pueden crearse in situ (somáticas).
Los trastornos mitocondriales están entre los grupos más comunes de errores congénitos del metabolismo con una incidencia estimada de 1 cada 10.000 nacimientos vivos. Las afecciones mitocondriales están relacionadas con enfermedades en el sistema mitocondrial de fosforilación oxidativa (OXPHOS), la ruta que conduce a la producción del ATP. En este complejo sistema OXPHOS están implicadas ochenta y cinco proteínas codificadas por el genoma mitocondrial y el nuclear, de ahí la diversidad de fenotipos clínicos que pueden verse en mutaciones genéticas del sistema OXPHOS.
Existen cuatro diferencias fundamentales entre la genética mendeliana y la mitocondrial, que incluyen la herencia por linaje materno, poliplasmia, heteroplasmia y efecto umbral. El fenotipo y la expresión clínica de una mutación de ADNmt patogénica específica están afectados por la posición de la mutación dentro del genoma mitocondrial pero también por la proporción de mitocondrias mutantes con respecto a las de tipo salvaje dentro de la células. A esto se lo denomina algunas veces carga mutacional; el grado de heteroplasmia para una mutación de ADNmt dentro de la célula.
El efecto umbral se refiere a un número crítico de ADN mutados que es necesario que estén presentes para que se produzca una disfunción mitocondrial. El umbral hallado en una expresión bioquímica podría tener 60% de mutaciones como deleciones del ADNmt y 95% de mutaciones en el ARNt. Los requerimientos energéticos de un tejido específico podrían afectar el grado de disfunción tisular.
Las mutaciones del ADNmt comprenden mutaciones puntuales (sustituciones) y reorganizaciones (deleciones y duplicaciones) pero no mutaciones del sitio de empalme, ya que no hay intrones. Se cree que las mutaciones puntuales se heredan comúnmente por vía materna pero las reorganizaciones son con frecuencia esporádicas.
Sólo las hembras transmiten rasgos con base mitocondrial (mutaciones mitocondriales heredadas). Un rasgo se transmite directamente de generación en generación. Esto sugiere herencia dominante pero difiere de la genética mendeliana clásica. Tanto machos como hembras se ven afectados. Las hembras transmiten el rasgo a toda su descendencia, lo que no concuerda con la transmisión de genes en el núcleo. La visión de consenso, por consiguiente, es que bajo condiciones normales el ADNmt de los mamíferos se hereda exclusivamente por línea materna. Hay una eliminación selectiva del ADNmt del espermatozoide en cruces intraespecies, aunque las mitocondrias del espermatozoide contribuyen con el cigoto en la fertilización. Por consiguiente, todos los hijos de una hembra son clónicos para el ADNmt. La transmisión maternal clónica y una aumentada tasa de mutación contribuyen a acumular nuevas mutaciones de ADNmt dentro de la población.
Homoplasmia se refiere a la presencia del ADNmt idéntico que se encuentra normalmente en una célula individual. En comparación, la heteroplasmia es la coexistencia de mitocondrias que contienen secuencias genómicas diferentes (ADNmt de tipo salvaje y mutante) en la misma célula. La heteroplasmia puede implicar la presencia de una mutación perjudicial en el ADNmt aunque también pueden existir polimorfismos heteroplásmicos benignos. Durante la división celular, el ADNmt se replica a sí mismo, pero a diferencia de los genes nucleares, las nuevas moléculas mitocondriales se segregan pasivamente en las células hijas. Una mutación mitocondrial es un cambio aleatorio en una única molécula. Con el tiempo, la segregación de oportunidades lleva a la proliferación de mutantes en una célula. Pueden encontrarse diferentes niveles de heteroplasmia para mutaciones mitocondriales individuales en diversos tejidos por la segregación pasiva del ADNmt en la división celular. En los seres humanos, la heteroplasmia mitocondrial está asociada con enfermedades. La gravedad de algunas afecciones patogénicas tales como trastornos neuromusculares se correlaciona con un elevado número de ADNmt mutantes en el músculo esquelético (tejido postmitótico). Por consiguiente, una variedad de fenotipos clínicos desde asintomáticos hasta gravemente afectados están asociados con niveles variables de heteroplasmia dentro de un linaje.
En algunos tejidos y órganos puede tener lugar la selección y conducir a un nivel reducido o aumentado de ADN mutante. En este modelo, la selección negativa disminuirá el nivel de un mutante en el transcurso del tiempo, mientras que los niveles de ADNmt mutante pueden aumentar durante la vida en tejidos particulares. En algunos tejidos los altos niveles de carga de mutación se han asociado con progresión de enfermedades. Las mitocondrias defectuosas con una carga de mutación aumentada pueden proliferar selectivamente (tal vez como parte de un proceso compensador) en respuesta a un defecto de la cadena respiratoria. Esta selección positiva puede llevar a niveles aumentados de ADNmt mutante dentro de un tejido postmitótico tal como el músculo.
Una característica especial de la enfermedad mitocondrial es la heterogeneidad que se encuentra en la afección clínica desde órganos únicos hasta enfermedades multisistémicas. Se conocen más de 50 mutaciones patógenas del ADNmt por sustitución de bases. Las sustituciones de bases están divididas en mutaciones sin sentido que afectan los 13 genes que codifican proteínas y aquellas que afectan al ARNr y al ARNt con efectos globales sobre la síntesis proteica mitocondrial. Se han encontrado muchas más reorganizaciones de ADNmt (deleciones e inserciones) en una diversidad de trastornos degenerativos.
Las mutaciones mitocondriales más comúnmente dadas a conocer son A3243G presente en MELAS (miopatía, encefalopatía, acidosis láctica y episodios análogos al ictus), AS344G en MERFF (epilepsia mioclónica, fibras rojas rasgadas), T8993G/C en NARP (neuropatía, ataxia, neuritis pigmentosa), neuropatía óptica congénita de Leber (LHON) y en el síndrome de Leigh. Las mutaciones en el genoma nuclear podrían también afectar la función mitocondrial al inactivar el sistema OXPHOS o desestabilizar el ADNmt. Por ejemplo en la ataxia de Friedreich.
Existen evidencias acumuladas que indican que la implicación de las mutaciones mitocondriales que llevan a trastornos hereditarios pueden ser la base de un gran porcentaje de los trastornos heterogéneos, comunes, de inicio tardío tales como el deterioro neurosensitivo y la diabetes y otros trastornos relacionados con la edad. La Tabla 1 presenta una variedad de trastornos clínicos bien caracterizados que pueden estar ligados a una diversidad de mutaciones del ADNmt.
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TABLA 1
1
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Los inventores formaron una hipótesis de que el desarrollo de una afección al menos parcialmente caracterizada por la fibrosis o cicatrización inadecuadas (por ejemplo, DD) puede estar ligado a mutaciones o polimorfismos en el genoma mitocondrial. La hipótesis se basó en la observación de que algunos de DD demuestran enfermedades heredadas por vía materna. Como los trastornos mitocondriales se heredan por vía materna, decidieron probar su hipótesis comparando el ADNmt de los sujetos con DD con el de sujetos control.
Los inventores llevaron a cabo experimentos para someter a selección el genoma mitocondrial para polimorfismos o mutaciones que pueden estar asociados con una afección al menos parcialmente caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas. Habiendo establecido tal asociación, los inventores establecieron que el ADN tomado de un sujeto puede analizarse para ayudar a establecer un diagnóstico de la afección o para establecer si un sujeto está o no predispuesto a desarrollar tal afección.
La afección puede ser una forma de cicatrización patológica de la piel (por ejemplo, cicatrización hipertrófica o formación de queloides) o una cicatriz o fibrosis interna como se ha mencionado anteriormente. Alternativamente la afección puede ser una enfermedad fibrótica o un trastorno fibrótico, también como se ha mencionado anteriormente.
El procedimiento de la invención puede usarse para ayudar a diagnosticar o detectar trastornos fibróticos de la piel tales como:
La esclerodermia
La esclerosis sistémica
El síndrome Crest
La esclerosis tuberosa con manchas en la piel
El colagenoma cutáneo familiar
Los trastornos metabólicos e inmunológicos de la piel (porfiria cutánea tardía, enfermedad crónica de injerto versus huésped)
La facsitis eosinofílica
El lupus eritematoso discoide, la dermatomiositis
La enfermedad mixta del tejido conectivo
La fibrosis cutánea inducida por fármacos - bleomicina, PVC, silicatos
La enfermedad de Peyronie
La fibrosis submucosa oral
La fibrosis inducida tras exposiciones alimentarias y medioambientales.
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El procedimiento también es útil en el diagnóstico o la detección de trastornos fibróticos de otros órganos. Estos incluyen:
La fibrosis pulmonar/cardíaca
La cirrosis/fibrosis hepática
La fibrosis renal
La fibrosis del tracto gastrointestinal
La fibrosis inducida por fármacos (por ejemplo tras un trasplante de órgano)
La fibrosis del sistema nervioso central y periférico
La fibrosis del sistema vascular (de venas y arterias)
La fibrosis del tracto genitourinario masculino y femenino
Ginecológicos (fibrosis de las trompas de Falopio, fibromas uterinos).
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El procedimiento del primer aspecto de la invención es particularmente adecuado para diagnosticar o detectar una predisposición a contraer la Enfermedad de Dupuytren (DD).
Los estudios se realizaron (como se resume con más detalle en los Ejemplos) en ADNmt aislado de miofibroblastos. En muchos estudios se ha demostrado que los miofibroblastos son una célula clave responsable de la contracción tisular en DD y también se ha informado que contienen un gran número de mitocondrias.
Los inventores usaron Cromatografía Líquida de Alto Rendimiento Desnaturalizante (DHPLC) en combinación con el Sistema de Análisis de Fragmentos de Ácido Nucleico Transgenomic WAVE (WAVE System) para investigar polimorfismos o mutaciones en el genoma mitocondrial. Estos aparatos pueden usarse en una técnica automática de alta eficacia, coste efectiva para la detección de mutaciones desconocidas (Jones y col., Human Mutation 2001; 17(3): 233-234.). La técnica usa una matriz de perlas de divinilbenceno disponible comercialmente (DNASep, Transgenomic Inc. Ne, EEUU) y una HPLC de fase inversa con par iónico para detectar especies de ADN heterodúplex presentes en muestras que contienen una mutación, que se forman posteriormente a la amplificación por PCR. La elución diferencial de hetero y homodúplex puede producirse mediante la aplicación de condiciones parcialmente desnaturalizantes (por ejemplo, por medio de la elevación de la temperatura). En un punto donde el ADN comienza a fundirse la diferencia de contenido helicoidal de especies homo y heterodúplex puede maximizarse cambiando de esta manera el grado en el que cada especie se une a la matriz. Esta elución diferencial de especies homo y heterodúplex lleva a un cambio en los patrones del cromatograma y por consiguiente a la identificación de la presencia de una mutación. Es importante destacar que, a diferencia de otras técnicas, la DHPLC es capaz de detectar niveles extremadamente bajos de mutantes dentro de una población de tipo salvaje. Esta capacidad de la DHPLC la hace adecuada para la exploración del genoma mitocondrial.
Como se ilustra en el Ejemplo 1, los inventores encontraron que ciertos polimorfismos o mutaciones en el ADNmt se correlacionan significativamente con el desarrollo de afecciones al menos parcialmente caracterizadas por fibrosis o cicatrización inadecuadas. Los ejemplos de polimorfismos o mutaciones de preferencia que pueden detectarse según la invención se encuentran en las siguientes posiciones en el genoma mitocondrial:
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(a) Mutaciones en la región ARNr16s del genoma mitocondrial
Los inventores encontraron que las mutaciones en la región ARNr16s del genoma mitocondrial están correlacionadas con afecciones según el procedimiento de la invención.
La mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 342 pb (es decir, en las posiciones 3192-3533 del genoma) del gen de ARNr16s con la siguiente secuencia de nucleótidos:
2
Como alternativa, la mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 442 pb (es decir en las posiciones 2415-2856 del genoma) del gen de ARNr16s con la siguiente secuencia de nucleótidos:
3
Una mutación de mayor preferencia se encuentra en la posición 2839 del genoma mitocondrial. Esta mutación representa una inserción de un nucleótido timidina (T) después del nucleótido Guanosina (G) (G2839G/T). El ejemplo 1 ilustra que 16 de 18 muestras de pacientes con DD tenían el genotipo GT mientras que todos los controles (CW) tenían el genotipo salvaje (G).
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(b) Mutaciones en los polipéptidos del Complejo I de la Cadena Respiratoria
La NADH-quinona oxidorreductasa (Complejo I) es uno de los tres complejos enzimáticos transducción de energía de la cadena respiratoria en la mitocondria. Es el punto de entrada para la fracción más importante de electrones que atraviesa la cadena respiratoria y da como resultado eventualmente la reducción del oxígeno. Se presume que el Complejo I es uno de los sistemas enzimáticos unidos a membrana más intrincados, que se conocen hasta la fecha, está compuesto por al menos 43 polipéptidos distintos. De éstos, 7 están codificados por el ADNmt (ND 1,2, 3, 4, 4L, 5 y 6).
La mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 179 pb (es decir en las posiciones 3429-3607 del genoma) del gen de ND1 con la siguiente secuencia de nucleótidos:
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4
Como alternativa, la mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 242 pb (es decir en las posiciones 3608-3849 del genoma) del gen de ND1 con la siguiente secuencia de nucleótidos:
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Como alternativa, la mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 470 pb (es decir en las posiciones 3959-4428 del genoma) del gen de ND1 con la siguiente secuencia de nucleótidos:
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Se encontró un patrón de DHPLC llamativo en la región ND2 en el 94% de los casos que solo estuvo presente en el 45% de los controles. Esto indicó que estaba presente una mutación ligada a las afecciones según la invención.
Se encontraron otras dos mutaciones nuevas en la región ND2 (en las posiciones A4916G y G5045A) en sujetos con DD y pueden detectarse en un análisis de acuerdo con la presente invención.
La mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 396 pb (es decir en las posiciones 4846-5241 del genoma) del gen de ND2 con la siguiente secuencia de nucleótidos:
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Como alternativa, la mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 531 pb (es decir en las posiciones 4180-4710 del genoma) del gen de ND2 con la siguiente secuencia de nucleótidos:
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(c) Mutaciones en los polipéptidos del Complejo III (Citocromo b) de la Cadena Respiratoria
Se encontraron múltiples mutaciones nuevas en pacientes con DD que mostraron un patrón de DHPLC muy similar entre al menos dos sujetos. Estos cambios de secuencias no estaban presentes en ninguno de los controles. La mayoría de los cambios encontrados por secuenciación revelaron la nueva presencia de heteroplasmia que incluyó G15274C/G; A15282C/A; G15319C/G; T15332C/T: G15336G/C; T15339T/C; T15362C/T y 15434insC. Todos estos cambios estaban en la región del Citocromo b.
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(d) Mutaciones en los polipéptidos del Complejo IV (Citocromo c oxidasa) de la Cadena Respiratoria
Se encontró un cambio prominente en el patrón de DHPLC de pacientes con DD dentro de las posiciones 6688 y 6849 del genoma (la región CO I). Todos los sujetos con DD tuvieron un patrón de DHPLC con un pico único mientras que sólo el 27% de las muestras de control tuvieron un patrón similar.
La mutación puede estar contenida dentro de un fragmento de 162 pb (es decir en las posiciones 6688-6849 del genoma) del gen de CO I con la siguiente secuencia de nucleótidos:
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El trabajo adicional ha establecido que los sujetos con otros trastornos fibróticos (por ejemplo, esclerodermia o fibrosis renal) y los sujetos susceptibles de desarrollar cicatrización grave/patológica (por ejemplo queloides) también tienen una alta frecuencia de estas mutaciones. Por consiguiente, el polimorfismo o mutación puede examinarse según el procedimiento de la invención para diagnosticar o detectar una predisposición a desarrollar una diversidad de afecciones al menos parcialmente caracterizadas como fibrosis o cicatrización inadecuadas.
Pueden usarse diversas técnicas para detectar polimorfismos o mutaciones de acuerdo con el procedimiento de la invención.
Una técnica de preferencia es DHPLC. La técnica está descrita con más detalle en el Ejemplo. Puede usarse o adaptarse la técnica de DHPLC de Van Den Bosch y col. (Nucleic Acids Res 15 de octubre de 2000; 28(20): E89) para el uso de acuerdo con el procedimiento de la invención.
Otra técnica de preferencia implica la Digestión con Enzimas de Restricción (RED) y se basa en el hecho de que los polimorfismos o mutaciones pueden conducir a la producción de fragmentos de ADN de distintos tamaños tras el tratamiento con una enzima de restricción (por la introducción o deleción de un sitio de restricción). Estos fragmentos pueden visualizarse en geles y el polimorfismo identificarse en base al número y tamaño (es decir, de la distancia recorrida en el gel) de los fragmentos de una muestra de ADN obtenida de un sujeto.
Resulta de preferencia que el ADNmt se aísle y a continuación se amplifique previo a la detección del polimorfismo o mutación. De preferencia esta amplificación se efectúa por medio de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR). Por ejemplo, un procedimiento de preferencia de acuerdo con la invención conocido como el procedimiento del polimorfismo de la longitud del fragmento de restricción por PCR (PCR-RFLP) y supone la amplificación por PCR del ADN que contiene el polimorfismo o mutación previo a la RED y su posterior análisis. Para algunos polimorfismos ni el alelo de tipo salvaje ni el alelo mutante suprime o introduce un sitio de enzima de restricción. Cuando éste es el caso, puede introducirse un sitio de enzima de restricción diseñando específicamente cebadores de PCR que introduzcan sitios de restricción en el producto amplificado. El sitio enzimático introducido permite establecer una diferenciación entre los alelos polimórficos y los de tipo salvaje mediante análisis del tamaño. Por ejemplo si los productos de restricción del producto amplificado se analizan mediante electroforesis en gel (en gel de agarosa o de poliacrilamida, por ejemplo), los alelos con el sitio de la enzima de restricción introducido producirán una banda extra en el gel.
Otras técnicas que pueden usarse para detectar polimorfismos según la presente invención incluyen:
(1) La secuenciación directa de la región polimórfica de interés (por ejemplo, usando kits disponibles comercialmente tales como el Cy5TM Thermo Sequenase^{TM} dye terminator kit - Amersham Pharmacia Biotech);
(2) La Hibridación de Oligonucleótidos Específica de Secuencia (SSO) (que incluye la transferencia de puntos o de líneas de moléculas de ADN amplificado que comprenden la región polimórfica; la hibridación con sondas marcadas que están diseñadas para que sean específicas para cada variante polimórfica; y la detección de dicha marca-
ción);
(3) El Análisis de Heterodúplex y del polimorfismo de conformación de hebra única (SSCP) (que supone el análisis de las disposiciones de las bandas de electroforesis de moléculas de ADN desnaturalizado amplificado que comprenden la región polimórfica);
(4) El Cebado Específico de Secuencia (SSP) [también descrito como Sistema de Mutación Refractario a la Amplificación (ARMS)];
(5) La exploración de Mutaciones [por ejemplo usando el kit de exploración de mutaciones PASSPORTTM (Amersham Pharmacia Biotech)];
(6) El Análisis por Escisión Química de Cadenas con Apareamientos Erróneos;
(7) El Análisis no Isotópico por Digestión con ARNasa (Ambion Ltd.);
(8) El Análisis por Escisión Enzimática de Cadenas con Apareamientos Erróneos; y
(9) El Análisis de Extensión de Nucleótidos Individuales.
Cuando es necesario amplificar por medio de PCR, se necesita diseñar los cebadores de PCR para que sean adecuados para amplificar una región alrededor del polimorfismo o mutación relevante.
La serie 6 de cebadores de PCR (véase Ejemplo 1 y SEC ID Nº 9 y SEC ID Nº 10 a continuación) son cebadores de preferencia para detectar mutaciones en el gen de ARNr16s. La amplificación con estos cebadores puede continuar con la digestión con la enzima de restricción Ddel (para generar fragmentos de ADN más pequeños) como se describe en el Ejemplo 1.
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Cebador directo de la serie 6 de cebadores: 5' ctc act gtc aac cca aca cag g 3' (SEC ID Nº 9).
Cebador inverso de la serie 6 de cebadores: 5' tgt gtt gtg ata agg gtg gag ag 3' (SEC ID Nº10)
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Los cebadores adecuados para amplificar específicamente la mutación en la posición 2839 se presentan a continuación como SEC ID Nº 11 y SEC ID Nº 12.
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Cebador directo: 5' tgc att aaa aat ttc ggt tgg 3' (SEC ID Nº 11) (longitud 21 pb; No GC7; No AT14; %GC 33%; Tm = 48,81)
Cebador inverso: 5' tgt cct gat cca aca tcg ag 3' (SEC ID Nº 12) (longitud 20 pb; No GC10; No AT10; %GC 50%; Tm = 54,22)
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Pueden usarse los cebadores de SEC ID Nº 11 y SEC ID Nº 12 para amplificar la región del genoma mitocondrial que contiene la mutación de la posición 2839. A continuación puede secuenciarse el ADNmt para identificar el genotipo (es decir una técnica de secuenciación directa).
El ADNmt puede aislarse de muestras de sangre o tejido (por ejemplo cabello, frotis bucales orales, uñas o piel) o de otras fuentes adecuadas usando procedimientos convencionales. De preferencia el ADN se aísla de sangre entera o granulocitos, fascia palmar, fascia plantar o fascia peniana. También representan una fuente de ADNmt de preferencia los miofibroblastos para analizar de acuerdo con el procedimiento de la invención.
De preferencia el procedimiento se usa para examinar el ADNmt de un ser humano. Sin embargo se apreciará que el ADN derivado de sujetos animales de interés veterinario también pueden analizarse de acuerdo con el procedimiento de la invención.
Una predicción o diagnóstico basado en el procedimiento según la presente invención depende de que se establezca una asociación entre una afección particular y el polimorfismo específico o mutación en cuestión. Los inventores establecieron tales asociaciones llevando a cabo otros experimentos y realizando análisis estadísticos. Contar con datos basados en los análisis de asociación permite al clínico interpretar la importancia de los genotipos identificados secuenciando el ADN de acuerdo con el procedimiento de la invención. El clínico puede entonces tomar una decisión con respecto a la probabilidad de que un paciente desarrolle o presente una determinada enfermedad o un determinado trastorno. Tal conocimiento es importante para manejar clínicamente afecciones específicas asociadas con la fibrosis o cicatrización inadecuadas. Se apreciará que los datos relativos a la asociación de un determinado genotipo en particular con una afección pueden proporcionarse a un usuario del procedimiento según la invención (por ejemplo, un técnico o un clínico) incorporando una hoja de datos como parte de un kit (véase a
continuación).
El análisis genético puede llevarse a cabo en un período prenatal, perinatal o postnatal cuando se desee analizar si es probable que un neonato o un niño haya heredado una predisposición a desarrollar una afección al menos parcialmente caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas. Esto es particularmente útil cuando se cree que hay un historial familiar de desarrollo de la afección.
El análisis es particularmente útil para analizar sujetos previos a la operación. Los resultados de un análisis de este tipo son útiles para establecer si podría o no haber complicaciones en la curación en el caso de un sujeto que deba ser sometido a cirugía (por ejemplo, cicatrización hipertrófica, formación de queloides o cicatrización/fibrosis
interna).
El análisis es también útil previo a establecer un régimen terapéutico para tratar una afección con características de cicatrización o fibrosis inadecuadas. Un médico clínico pueden usar los resultados del análisis de acuerdo con la invención como ayuda en la selección de los medicamentos a usar y de la dosificación de los mismos.
Resulta de mayor preferencia que el procedimiento de la invención se use para analizar sujetos con un historial familiar de desarrollo de una afección al menos parcialmente caracterizada por una cicatrización o fibrosis
inadecuadas.
Los diversos elementos necesarios para que un técnico lleve a cabo el procedimiento del primer aspecto de la invención pueden incorporarse en un kit. Por consiguiente, de acuerdo con un segundo aspecto de la presente invención se proporciona un kit que comprende:
A) Cebadores de PCR para amplificar polimorfismos genéticos en el ARNr16s del genoma mitocondrial que están ligados a una afección caracterizada por cicatrización o fibrosis inadecuadas;
B) Muestras de ADN de control de genotipo conocido para cada polimorfismo, y
C) Una ficha de datos que perfile el nexo existente entre un polimorfismo particular y una afección al menos parcialmente caracterizada por cicatrización o fibrosis inadecuadas.
Resulta de preferencia que el kit comprenda cebadores específicos para una secuencia diana del ADN de la muestra que se sabe contiene un polimorfismo o mutación de interés. Por ejemplo, los cebadores de PCR adecuados para un kit para obtener el genotipo de la mutación G2838G/T son los cebadores de SEC ID Nº 9 y SEC ID Nº 10 o los cebadores de SEC ID Nº 11 y SEC ID Nº 12.
El kit puede comprender además:
D) Una enzima de restricción adecuada para generar fragmentos de la muestra de ADNmt;
E) Protocolos para amplificación por PCR, digestión con enzimas de restricción de productos de PCR y electroforesis en gel de agarosa de fragmentos de ADN; y
F) Tampones apropiados.
Los tampones proporcionados con el kit pueden estar en forma líquida y de preferencia se proporcionan en forma de alícuotas previamente medidas. Como alternativa, los tampones pueden estar en forma concentrada (o incluso en forma de polvo) para su dilución.
El kit puede comprender además recipientes de reacción adecuados, tubos de centrífuga, etc.
Los inventores encontraron que los moduladores de los productos de los genes del genoma mitocondrial pueden usarse para tratar cada una de las afecciones a que se hace referencia con relación al primer aspecto de la invención. Resulta de preferencia que los moduladores se usen para tratar le enfermedad de Dupuytren (DD).
Varias clases de compuestos pueden usarse como tales moduladores. Estos compuestos incluyen:
(i) inhibidores o activadores de los productos de los genes mitocondriales (por ejemplo, inhibidores alostéricos o competitivos);
(ii) compuestos que regulan la síntesis de productos de los genes mitocondriales;
(iii) compuestos que regulan la liberación de productos de los genes mitocondriales;
(iv) compuestos que regulan la tasa de inactivación o metabolismo de los productos de los genes mitocondria-
les;
(v) compuestos que regulan la expresión y/o transcripción de los productos de genes mitocondriales (por ejemplo, ribozimas o moléculas de ADN antisentido); y
(vi) anticuerpos o intracuerpos surgidos contra los productos de los genes mitocondriales.
Resulta de preferencia que el producto genético modulado el Complejo I de la cadena respiratoria; el Complejo III (Citocromo b) de la cadena respiratoria; o el Complejo IV (Citocromo C Oxidasa) de la cadena respiratoria. Resulta de mayor preferencia que el producto genético modulado sea ARNr16s.
Las moléculas antisentido, anticuerpos e intraanticuerpos de preferencia estar dirigidos contra una cualquiera de las secuencias SEC ID Nº 1 - 12.
Los moduladores pueden usarse para tratar afecciones existentes pero también pueden usarse cuando se considere médicamente necesario un tratamiento profiláctico. Por ejemplo, cuando se considera necesario iniciar una terapia antes de una cirugía electiva para evitar el desarrollo de cicatrización hipertrófica o queloides.
Los moduladores pueden tomar una cantidad de formas diferentes dependiendo, en particular de la manera en que se van a usar. Por consiguiente, por ejemplo, la composición puede estar en la forma un polvo, comprimido, cápsula, líquido, ungüento, crema, gel, hidrogel, aerosol, vaporizador, micela, parche transdérmico, liposoma o cualquier otra forma adecuada que pueda administrarse a una persona o a un animal. Podrá apreciarse que el vehículo de la composición de la invención será uno que tenga buena tolerancia para el sujeto al que se le administra y que permita la administración de los compuestos a este sujeto.
Los moduladores pueden usarse de varias maneras. Por ejemplo, puede ser necesaria la administración sistémica en cuyo caso el modulador puede estar contenido dentro de una composición que puede, por ejemplo, ingerirse por vía oral en la forma de un comprimido, cápsula o líquido. Como alternativa, la modulación puede administrarse por medio de inyección en el torrente sanguíneo. Las inyecciones pueden ser intravenosas (en bolo o por infusión) o subcutáneas (en bolo o por infusión). Los moduladores pueden también administrarse por inhalación (por ejemplo, por vía intranasal).
Resulta de preferencia que los moduladores sean para administración tópica al tejido afectado, o que se espera pueda estar afectado, por la afección.
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El modulador puede también incorporarse dentro de un dispositivo de liberación lenta o retardada. Tales dispositivos pueden, por ejemplo, insertarse sobre o bajo la piel y el modulador puede liberarse durante semanas o incluso meses. Tal dispositivo puede ser particularmente útil para pacientes con afecciones crónicas. Los dispositivos pueden ser particularmente ventajosos cuando se usa un modulador que normalmente podría requerir administración
frecuente.
Podrá apreciarse que la cantidad necesaria de un modulador está determinada por la actividad biológica y la biodisponibilidad que a su vez dependen del modo de administración, las propiedades fisicoquímicas del compuesto usado y de si el modulador se está usando como una monoterapia o en una terapia combinada. La frecuencia de administración estará influida también por los factores antes mencionados y particularmente la semivida del modulador dentro del sujeto que se está tratando.
Pueden usarse procedimientos conocidos, tales como los utilizados convencionalmente por la industria farmacéutica (por ejemplo, experimentación in vivo, ensayos clínicos, etc.), para establecer las formulaciones específicas de las composiciones y los regímenes terapéuticos precisos (tales como dosis diaria del modulador y la frecuencia de administración).
Un medio de preferencia de uso de los moduladores de proteínas o péptidos es administrar el modulador al tejido afectado por medio de terapia génica. Tal medio puede ser un sistema de administración para uso en una técnica de terapia génica, comprendiendo dicho sistema de administración una molécula de ADN que codifica una proteína que modula directa o indirectamente los productos de los genes del genoma mitocondrial, siendo dicha molécula de ADN capaz de ser transcrita para permitir la expresión de dicha proteína y de esta manera tratar una afección al menos parcialmente caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas.
Tales sistemas de administración son muy adecuados para alcanzar niveles sostenidos de una proteína que modula directa o indirectamente los productos de los genes del genoma mitocondrial durante un período de tiempo más prolongado que el posible para la mayoría de los regímenes terapéuticos convencionales. El sistema de administración puede usarse para inducir la expresión continua de la proteína a partir de células que se han transformado con la molécula de ADN. Por consiguiente, aún cuando la proteína tenga una semivida muy corta como un agente in vivo, pueden expresarse cantidades terapéuticamente eficaces de la proteína de manera continua desde el tejido
tratado.
Además, el sistema de administración puede usarse para proporcionar la molécula de ADN (y por consiguiente la proteína que es un agente terapéutico activo) sin la necesidad de usar vehículos farmacéuticos convencionales tales como los requeridos en comprimidos, cápsulas o líquidos.
El sistema de administración es tal que la molécula de ADN sea capaz de expresarse (cuando el sistema de administración se administra a un paciente) para producir una proteína que tiene actividad directa o indirectamente para modular la actividad de los productos de los genes mitocondriales. Se entiende por "directamente" que el producto de la expresión del gen per se tiene la actividad requerida. Se entiende por "indirectamente" que el producto de la expresión del gen sufre o media (por ejemplo, como una enzima) al menos otra reacción para proporcionar un modulador eficaz para tratar la afección.
La molécula de ADN puede estar contenida dentro de un vector adecuado para formar un vector recombinante. El vector puede ser por ejemplo un plásmido, cósmido o fago. Tales vectores recombinantes son muy útiles en los sistemas de administración de la invención para transformar células con la molécula de ADN.
Los vectores recombinantes pueden también incluir otros elementos funcionales, Por ejemplo, los vectores recombinantes pueden diseñarse de manera tal que el vector se replicará de manera autónoma en la célula. En este caso, pueden ser necesarios en el vector recombinante elementos que inducen la replicación del ADN. Como alternativa, el vector recombinante puede diseñarse de manera tal que el vector y la molécula de ADN recombinante se integren en el genoma de una célula. En este caso resultan deseables las secuencias de ADN que favorecen la integración buscada (por ejemplo de recombinación homóloga). Los vectores recombinantes pueden también tener ADN que codifique genes que puedan usarse como marcadores seleccionables en el proceso de clonación.
El vector recombinante puede también comprender además un promotor o regulador para controlar la expresión del gen según sea necesario.
La molécula de ADN puede (pero no necesariamente) ser una que se incorpore en el ADN de las células del sujeto que se está tratando. Las células indiferenciadas pueden transformarse de manera estable y dar lugar a la producción de células hijas genéticamente modificadas (en cuyo caso puede ser necesaria la regulación de la expresión en el sujeto, por ejemplo, con factores de transcripción específicos o activadores de genes). Como alternativa, el sistema de administración puede diseñarse para favorecer la transformación inestable o transitoria de células diferenciadas en el sujeto que se está tratando. Cuando éste es el caso, puede resultar menos importante la regulación de la expresión porque la expresión de la molécula de ADN se detendrá cuando mueran las células transformadas o detengan la expresión de proteínas (de manera ideal cuando la afección ha sido tratada o evitada).
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El sistema de administración puede proporcionar una molécula de ADN al sujeto sin la necesidad de incorporarla en un vector. Por ejemplo, la molécula de ADN puede incorporarse dentro de un liposoma o una partícula viral. Como alternativa, la molécula de ADN "desnuda" puede insertarse dentro de las células del sujeto por medios adecuados, por ejemplo por captación endocitótica directa.
La molécula de ADN puede transferirse a las células de un sujeto a tratar por transfección, infección, microinyección, fusión celular, fusión de protoplastos o bombardeo balístico. Por ejemplo, la transferencia puede ser por medio de transfección balística con partículas recubiertas de oro, liposomas que contienen la molécula de ADN, vectores virales (por ejemplo, adenovirus) y medios parar proporcionar captación directa del ADN (por ejemplo, endocitosis) por medio de la aplicación de la molécula de ADN directamente al cerebro por vía tópica o por inyec-
ción.
Resulta de preferencia que se usen procedimientos diseñados para apuntar a afecciones originadas por las mitocondrias para implementar los tratamientos descritos en este documento. por ejemplo, puede adoptarse un enfoque antigenómico usando ácidos nucleicos peptídicos (PNA). También pueden usarse terapias de reemplazo celular endógeno y terapias génicas alotrópicas para el tratamiento de enfermedades del ADNmt. Tal terapia ha sido revisada recientemente por Turnbull y Lightowlers (Nat. Genet. 30 de abril de 2002 30(4): 345-346) y podrá apreciarse que las técnicas terapéuticas descritas en ese documento (e incorporadas en este documento por referencia) pueden usarse en procedimientos de preferencia de tratamiento según la presente invención.
La invención se describirá además, sólo por medio de ejemplos, con referencia a los dibujos que acompañan, en los que:
La Figura 1 es una representación esquemática de la técnica de DHPLC modificada de Van Den Bosch y col. (Nucleic Acids Res 15 de octubre de 2000; 28(20): E89; supra) como se usa en el Ejemplo 1;
La Figura 2 es una representación esquemática del genoma mitocondrial que muestra la posición de las series de cebadores usadas para la amplificación en el Ejemplo 1;
La Figura 3 ilustra la amplificación con la serie de cebadores 2 de un producto de 331 pb del genoma mitocondrial que muestra la fidelidad aumentada de la polimerasa Optimase usada en el Ejemplo 1 comparada con la polimerasa Expand DNA (Roche) en la que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan Expand 2, Expand 2, Pho 12 y Pho 12;
La Figura 4 es un gráfico que ilustra mutantes por DHPLC identificados usando la serie de Cebadores 4 en el fragmento 3; en DD7 y DD12 comparado con el patrón WT en DD1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan los mutantes en DD7, DD12 y DD1, respectivamente;
La Figura 5 es un gráfico que ilustra mutantes por DHPLC identificados usando la serie de Cebadores 4 en el fragmento 3 en el Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan CW 19 comparado con CW 13;
La Figura 6 es un gráfico que ilustra mutantes por DHPLC identificados usando la serie de cebadores 5 en el Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan DD7, DD1 y CW3;
La Figura 7 es un gráfico que ilustra DHPLC para la mutación en 1690 pb identificada usando la serie de Cebadores 5 en el Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan DD1, CW19 y DD7;
La Figura 8 es un gráfico que ilustra DHPLC para la mutación en 1811 pb identificada usando la serie de Cebadores 5 en el Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan DD6, DD12, DD20, CW3, CW4, CW10, CW12 y DD7;
La Figura 9 es un gráfico que ilustra una muestra afectada frente a una muestra control con la mutación evidente como un patrón de doble pico aumentado en el fragmento 5 identificada usando la serie de Cebadores 6 del Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan DD5 y CW3:
La Figura 10 es un gráfico que ilustra mutantes por DHPLC identificados usando la serie de Cebadores 7 en el Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan DD1, DD2, DD11, DD14, DD17, DD18 y DD5;
La Figura 11 es un gráfico que ilustra mutantes por DHPLC identificados usando la serie de Cebadores 8 en el Ejemplo 1:
La Figura 12 es un gráfico que ilustra mutantes por DHPLC identificados usando la serie de cebadores 9 en el fragmento 4; en DD12, CW3 y CW10 en el Ejemplo 1;
La Figura 13 es un gráfico que ilustra un patrón de un pico encontrado en todas las muestras de DD mientras que sólo el 83% de los controles (CW) tienen el patrón de un pico identificado usando la serie de Cebadores 10 en el Ejemplo 1 en el que los dibujos dentro del gráfico desde la parte superior hasta la inferior representan CW5 y DD1:
y
La Figura 14 es un gráfico que ilustra mutantes de sitio de restricción por DHPLC identificados usando la serie de cebadores 16 en CW4 y CW6 en el Ejemplo1.
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Ejemplo 1
Identificación de mutaciones en el ADNmt ligadas con la enfermedad de Dupuytren
Las muestras se tomaron de un grupo de pacientes con enfermedad de Dupuytren (DD) y un grupo de control para investigar la correlación entre polimorfismo y la afección.
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1.1. Procedimientos
Los inventores modificaron la técnica de DHPLC de Van Den Bosch y col. (Nucleic Acids Res 15 de octubre de 2000; 28(20): E89) para explorar el genoma mitocondrial para mutaciones que puedan estar ligadas a la DD.
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1.1.1 Modificaciones a la técnica de DHPLC de Van Den Bosch y col.
Los inventores modificaron la técnica de DHPLC de Van Den Bosch y col. (supra) para permitir llevar a cabo la exploración de mutaciones de genoma mitocondrial de grandes muestras de poblaciones más rápidamente a costes razonables. Los cambios realizados se resumen en la Tabla 2.
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TABLA 2
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10
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En la Figura 1 se ilustra una representación esquemática del proceso, modificado sobre el de Van Den Bosch y col. La Figura 1 muestra una amplificación por PCR usando la polimerasa de ADN Optimase del genoma mitocondrial total usando una serie de 18 cebadores diseñados específicamente. En DHPLC de rutina se usan cuatro fragmentos de la serie de amplificación pero los catorce restantes sufren digestión por restricción para producir una variedad de fragmentos, que pueden a continuación someterse a DHPLC múltiplex usando un total de 29 parámetros diferentes (gradiente y temperatura). Las muestras positivas se indican por medio de un cambio en el patrón del cromatograma y las mutaciones presentes se verifican por secuenciación.
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1.1.1(a) La importancia del diseño del cebador
Todas las mejoras realizadas a la técnica de DHPLC de Den Bosch y col. se originan a partir del diseño de cebadores, que se diseñaron teniendo en cuenta los siguientes criterios:
1. Fragmentos individuales para DHPLC (no múltiplex) de la región hipervariable del genoma mitocondrial.
2. Consideración de los principales genes codificadores individuales.
3. Consideración de mutaciones conocidas que causan enfermedades.
En la Figura 2 se ilustran las posiciones de los cebadores y estos criterios. Con referencia a la exploración de la región hipervariable, se usaron 3 amplificaciones solapadas por PCR en lugar de un fragmento grande con posterior digestión por medio de enzimas de restricción como en la técnica original. La naturaleza hipervariable, aunque no codificante, de esta región lleva a grandes cantidades de de patrones de DHPLC positivos que se verificaron por secuenciación usando esta estrategia.
Aunque se necesitó un mayor número de PCR para la amplificación de todo el genoma que el usado en la técnica original, los inventores creen que esto valió la pena porque fue necesario adquirir menos enzimas de restricción (5 en lugar de 10) y lo que es más importante, se necesitaron menos condiciones para la exploración por DHPLC. La disminución en las condiciones de exploración de 65 a 29 fue un elemento que ahorró costes y tiempo real, que se acentúa con la necesidad de explorar grandes cantidades de muestras en un escenario de investigación como el de este proyecto.
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1.1.1(b) La importancia de la elección de las enzimas para PCR
Dada la naturaleza heteroplásmica de las poblaciones mitocondriales, una técnica de detección de mutaciones debe tener suficiente sensibilidad para encontrar pequeñas proporciones de una mutación en una población predominantemente de tipo salvaje. Teniendo esto en cuenta, un criterio clave para esta aplicación es la alta fidelidad en la preparación de las muestras por amplificación mediante PCR. Todas las enzimas Taq ADN polimerasa tienen un nivel inherente de errores de incorporación que dependen de su origen y del procedimiento de uso. Cada error de incorporación durante la amplificación mediante PCR es el equivalente de un heterodúplex aleatorio de bajo nivel, que puede visualizarse con la técnica de DHPLC. Por consiguiente, es recomendable mantener estos errores de incorporación en el nivel más bajo posible y así obtener la mayor posibilidad de éxito. Los inventores sustituyeron una nueva polimerasa de corrección (polimerasa de ADN Optimase, Transgenomic Inc), que ha demostrado tener niveles de fidelidad extremadamente altos. La Figura 3 muestra el patrón de WT obtenido para la serie de cebadores 2 usando la polimerasa Optimase comparado con la polimerasa de ADN Expand (Roche). El patrón de pico más agudo obtenido bajo las condiciones de desnaturalización parcial usando la polimerasa de ADN Optimase es indicativo de la mayor fidelidad de la enzima.
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1.1.2 Procedimiento Experimental 1.1.2(a) Recogida de muestras
Casos: En el estudio se enrolaron pacientes con enfermedad de Dupuytren (DD) heredada por vía materna (n =20). El intervalo de edades fue de entre 37 y 90 años con una media de edad de 56,9 años. Todos los casos eran caucásicos no relacionados de la región noroeste de Inglaterra; los casos de Dupuytren de RU se identificaron en su mayoría a través de códigos clínicos de informes operativos del South Manchester University Hospital Trust y del Wrightington Hospital en la región noroeste. Se realizó una historia clínica completa a cada paciente según proforma. Se examinaron ambas manos y pies de cada individuo. Todos los casos tenían diagnóstico confirmado de DD preoperatorio con la presencia de nódulos característicos de Dupuytren en la palma de la mano y/o dedos con contractura de la articulación metacarpofalángica (MCPJ) o de la articulación falángica proximal (PIPJ).
Controles: Todos los individuos de control (n=20) eran hombres y mujeres caucásicos sanos de edad, sexo y etnia coincidente seleccionados de la misma región del noroeste de Inglaterra. También se realizó una historia clínica completa según proforma. Se examinaron todas las cicatrices y ambas manos de cada individuo para descartar la presencia de cualquier trastorno fibrótico de la piel. Ninguno de los controles tenía evidencia de DD y no se informaron antecedentes familiares de DD.
Los comités de ética locales y de los hospitales dieron su aprobación para el estudio. Se obtuvieron consentimientos por escrito de todos los individuos.
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1.1.2 (b) Extracción de ADN
Se recogieron muestras de sangre de los sujetos usando una técnica de flebotomía convencional. Se recogieron 15 ml de sangre venosa de cada sujeto. Se extrajo el ADN de las células de sangre periférica usando un kit de extracción de ADN disponible comercialmente (Qiagen, RU). Se midieron las concentraciones de ADN y se diluyó en tampón hasta 100 ng/\mul usando tampón Qiagen estéril.
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1.1.2 (c) Diseño del cebador
Se diseñaron dieciocho series de cebadores para amplificar el genoma mitocondrial completo. El detalle de los fragmentos mitocondriales que amplifican se presenta en la Tabla 3 y las secuencias de los cebadores se muestran en la Tabla 4.
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TABLA 3 Detalles de cebadores, digestión por restricción y DHPLC usados para la exploración del genoma mitocondrial
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TABLA 4 Secuencias de cebadores para la amplificación del genoma mitocondrial
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Cuatro series de cebadores produjeron fragmentos que pudieron analizarse inmediatamente por DHPLC simple mientras que los restantes 14 cebadores amplificaron productos con un tamaño de fragmento de 800-2000b que se usaron en un análisis de DHPLC múltiplex tras la posterior digestión de restricción. Se combinaron los cebadores hacia adelante e inversos para cada serie de fragmentos a una concentración de 5 \muM para cada cebador.
Los cebadores de secuenciación usados para la verificación de mutación se obtuvieron de la serie de cebadores de amplificación original detallada anteriormente, diseñados usando el programa Primer 3 (htt://www.genome.wi.mit.
edu/cgi-bin/primer/primer3www.cgipr) o de la bibliografía (Levin y col. 1999).
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1.1.2 (d) Procedimiento de PCR
Las reacciones de PCR se realizaron en un volumen de 100 \mul que contenían aproximadamente 100 ng de ADN genómico como molde, cada dNTP en concentración de 200 \muM (Cruachem Ltd), 30 pmol de cada cebador hacia adelante e inverso, 2,5 unidades de polimerasa de ADN Optimase y 10 x tampón de reacción Optimase que contenía MgSO_{4} 1,5 mM (Transgenomic Ltd). la amplificación tuvo lugar usando un ciclador Tetrad Thermal MJ de investigación con las condiciones de los ciclos que se resumen en la Tabla 5. Se probó una pequeña cantidad (5 \mul) del producto de PCR en un gel de agarosa al 2% teñido con bromuro de etidio y se visualizó bajo luz ultravioleta.
TABLA 5 Condiciones de los ciclos de PCR
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1.1.2 (e) Digestión por enzimas de restricción
Se usaron las enzimas de restricción (AluI, DdeI, Hae III, MboI y MspI - New England Biolabs) para digerir los diversos fragmentos de PCR como se indica en la tabla 3. Se mezclaron 88,5 \mul del producto de PCR con 10 \mul del tampón de la enzima de restricción relevante y 1,5 \mul de la enzima de restricción. Las muestras se incubaron a 37ºC durante 2 horas y se probó una pequeña proporción (10 \mul) en un gel de agarosa al 2% teñido con bromuro de etidio. Las muestras que contenían un patrón de restricción aberrante se identificaron. Este cambio en el tamaño de los fragmentos creado por un cambio en el patrón de restricción podía llevar a una alteración de las temperaturas predichas del análisis por DHPLC. El hecho de que el genoma mitocondrial tenga una composición relativamente constante y de que se identificaran muy pocos mutantes del sitio de restricción no condujo a los investigadores a cambiar las temperaturas de análisis a las que se muestran en la tabla 3.
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1.1.2 (f) Formación de heterodúplex
Previo al análisis por DHPLC se sometieron todas las muestras a la etapa de formación de heterodúplex constituida por calentamiento a 95ºC durante 5 minutos y a continuación enfriamiento a una velocidad de 1,5ºC por minuto hasta alcanzar una temperatura de 25ºC usando el instrumento termociclador MJ Tetrad.
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1.1.2 (g) Análisis por DHPLC
El análisis de las muestras usando las temperaturas predichas (WAVEMAKER^{TM} software Transgenomic Inc, NE, EEUU) que se muestran en la Tabla 3 se llevó a cabo usando el Sistema de Análisis de Fragmento de Ácidos Nucleicos WAVE y tecnología DNASep Cartridge (Transgenomic lnc, NE, EEUU). La fase móvil en gradiente estaba constituida por Tampón A (Acetato de trietilamonio 0,1M pH 7,0) y Tampón B Acetato de trietilamonio 0,1M pH 7,0 y acetonitrilo al 25%). Estos eluyentes se mezclaron para producir un gradiente lineal con variación del Tampón B entre 45 y 67% durante un período de 12 minutos. Se adoptaron los procedimientos de lavado del cartucho recomendados para esta aplicación; un lavado de 0,5 minutos usando acetonitrilo al 75% al finalizar el gradiente lineal. Se inyectaron 10-15 \mul de muestra de manera rutinaria por análisis.
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1.1.2 (h) Secuenciación
La PCR para verificación de mutaciones por secuenciación se llevó a cabo como se resumió anteriormente la serie de cebadores relevante. Las muestras se trataron con ExoSaplT previo a la precipitación con etanol. La secuenciación por ciclos, según los protocolos de los fabricantes se realizó usando un secuenciador Applied Biosystems 3100.
1.2 Resultados 1.2.1 Región hipervariable
Tres series de cebadores (MT1-3) amplificaron la mayor parte de la región hipervariable (bucle D) del genoma mitocondrial. Esta región es no codificadora y se extiende desde 15887 hasta 648 pb del genoma mitocondrial. Es característicamente muy polimórfico.
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1.2.1 (a) Cebador 1
Esta serie de cebadores amplificó la región 15974-16409 pb, dando un fragmento de 436 pb. Se detectaron variaciones múltiples y no específicas en el patrón de DHPLC a través de las muestras afectadas y los controles. Estas variaciones representaron un gran número de mutaciones aleatorias. No hubo ningún patrón único dominante en ninguna de las muestras. Esto indicó que no había mutaciones obvias causantes de enfermedad. Estos hallazgos se reflejan en los resultados de secuenciación (resumidos en la Tabla 6). Se secuenciaron DD11, CW1, CW4 (WT) como muestras representativas.
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1.2.1 (b) Cebador 2
Esta serie de cebadores amplificó la región 16341-102 pb, dando un fragmento de 331 pb.
De manera algo sorprendente, a la luz de la naturaleza hipervariable de esta región, el análisis por DHPLC no dio cambios obvios entre la población afectada y la de control. No se enviaron muestras para secuenciación.
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1.2.1 (c) Cebador 3
Esta serie de cebadores 3 amplificó la región 29-480 pb, dando un fragmento de 452 pb. Los resultados de este fragmento de 452 pb fueron similares a los obtenidos con la serie de Cebadores 1. Los resultados de DHPLC mostraron un patrón de variabilidad de grado elevado que confirmó la naturaleza altamente polimórfica de esta región. Esto indicó que no había mutaciones causantes de enfermedad evidentes porque no hubo patrón dominante único presente en ninguna de las muestras. Los datos de secuenciación se resumen en la tabla 6.
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1.2.2 Región codificadora 1.2.2 (a) Cebador 4
Esta serie de cebadores cubre la región 368-1713 pb (que codifica 12sr ARN en 648-1601 pb) dando un producto de 1346 pb que se digirió con MboI para dar fragmentos de 211, 276, 372 y 487 pb. El diseño del cebador necesitó un grado de solapamiento para asegurar la total cobertura de la región mitocondrial y por consiguiente el comienzo del cebador 4 cubre 300 pb de la porción terminal de la región del bucle D.
La mutación DEAF conocida está presente en esta región en la posición 1555. En las muestras analizadas no se observaron mutantes del sitio de restricción pero se identificaron mutantes por DHPLC como se muestra en las Figuras 4 y 5 (véanse las flechas). Se enviaron cinco muestras para secuenciación; mutantes por DHPLC DD1, DD7 y DD12 en el fragmento 3 y CW5 con una inserción potencial en el fragmento 2. Se secuenció CW3 como un control para estas regiones. Las mutaciones identificadas en estas muestras se resumen en la Tabla 6.
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1.2.2 (b) Cebador 5
Esta serie de cebadores cubre la región 1650-2841 pb dando un producto de 1192 pb que se digirió con Hae III para dar fragmentos de 273, 394 y 525 pb. No se observaron mutantes del sitio de restricción. Los mutantes por DHPLC se identificaron como se muestra en la Figura 6. El grado de desnaturalización dificultó la identificación del fragmento preciso que contenía el mutante y por consiguiente se realizó la secuenciación de los fragmentos dos y tres. Se enviaron tres muestras DD1, 6 y CW3 como representativas de cambios en el patrón de DHPLC con DD7 como patrón de referencia en esta región (Fig. 6). La mutación secuenciada en la posición 1690 en la muestra DD1 tenía un patrón de DHPLC similar como en CW19, que por consiguiente tiene probabilidad de contener esta mutación desconocida (Tabla 6 y Fig. 7). La mutación conocida en la muestra CW 3 en la posición 1811 pb (A>G) comparte su patrón de DHPLC con otras 6 muestras (CW4, 10 y 12: DD 6, 12, 20).
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1.2.2 (c) Cebador 6
Esta serie de cebadores cubre la región 2415-3811 pb dando un producto de 1397 pb que se digirió con DdeI para dar fragmentos de 125, 210, 278, 342 y 442 pb. El análisis de DHPLC mostró un cambio importante entre el control (CW) y la población afectada (DD) en el fragmento 5 como se ilustra en la Figura 9. En las muestras DD hubo un patrón de dos picos mucho más pronunciado en este fragmento comparado con las muestras de control que mostraron un pico principal y meseta. Se enviaron cuatro muestras como representativas para secuenciación, DD3 y DD11 con CW3 y CW5 como controles.
De cada 20 casos hubo 2 fallos de PCR. 16 de cada 18 muestras DD tuvieron un patrón de DHPLC mutante (G>GT en la posición 2839) en comparación en el patrón de referencia en todos los controles. Ninguno de los controles tuvo el patrón mutante. Esto representa una correlación significativa entre el mutante GT y la incidencia de DD. Por consiguiente, un procedimiento de preferencia según la invención detecta una mutación en la posición 2839 del genoma mitocondrial.
Se identificó otra mutación en una de las muestras de control CW3 en la posición T2706C. Esta no estuvo presente en ninguna de las muestras secuenciadas de los casos y controles.
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1.2.2 (d) Cebador 7
Esta serie de cebadores cubre la región 3429-4428 pb dando un producto de 1000 pb que se digirió con HaeIII para dar fragmentos de 109, 179, 242 y 470 pb. En las muestras no hubo mutantes del sitio de restricción presentes. El análisis por DHPLC mostró un cambio potencialmente interesante en siete de cada 20 muestras afectadas como se ilustra en la Figura 10. Es probable que el cambio esté localizado en algún sitio en los fragmentos 2, 3 ó 4. Se enviaron todas las muestras positivas (DD1, 2, 5, 11,14, 17, 18) para análisis de secuencia con CW1, 9 y 15 como muestras de control (véase Tabla 6 para mutaciones).
DD1, 2, 11, 14, 17, 18 mostraron todos un patrón de DHPLC diferente al patrón de referencia (Fig. 10). DD1 y 14 tienen el mismo patrón, sin embargo DD11 es diferente a todos los patrones en este grupo.
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1.2.2 (e) Cebador 8
Esta serie de cebadores cubre la región 4180-5488 pb dando un producto de 1309 pb que se digirió con MspI para dar fragmentos de 135, 247, 396 y 531 pb. No hay mutaciones conocidas de enfermedades informadas en esta región. No hubo mutante del sitio de restricción presente en la muestra analizada. El análisis por DHPLC mostró un cambio potencialmente interesante en 94% de los casos que tenían un patrón de dos picos comparado con 47% de los controles (Figura 11). Se enviaron tres muestras positivas (DD10,17 y 18) para análisis de secuencia con CW2 como muestras de referencia (véase Tabla 6).
Los inventores creen que el área 4180-4526 puede tener una mutación que será relevante para afecciones tales como DD ya que 2 de cada 3 muestras DD tenían cambios dentro de este área.
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1.2.2 (f) Cebador 9
Esta serie de cebadores cubre la región 5347-6382 pb dando un producto de 1036 pb que se digirió con HaeIII para dar fragmentos de 122, 190, 233 y 491 pb. No hay mutaciones conocidas de enfermedades en esta región. Tres muestras DD12, CW3 y CW10 mostraron la misma mutación del sitio de restricción que destruyó el sitio de escisión de HaeIII entre 5836-5839 pb (conocido). Esta mutación del sitio de restricción y un ejemplo de los mutantes por DHPLC (presentes en el Fragmento 4) pueden verse en la Figura 12.
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1.2.2 (g) Cebador 10
Esta serie de cebadores cubre la región 6318-7707 pb dando un producto de 1390 pb que se digirió con MspI para dar fragmentos de 117, 162, 253, 354 y 504 pb. En el fragmento 2, el 100% de las muestras DD tenían un patrón de un pico mientras que sólo el 27% de los controles tienen el patrón de un pico. En la Figura 13 se ilustra el cambio de patrón de DHPLC. Se enviaron siete muestras para secuenciación, 3 casos de DD (DD1, 12 y 20) y 4 controles (CW1, 3, 5 y 7). Sin embargo, la secuenciación no reveló cambios en la secuencia del fragmento 2 del cebador 10.
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1.2.2 (h) Cebador 11
Esta serie de cebadores cubre la región 7644-8784 pb dando un producto de 1141 pb que se digirió con HaeIII para dar fragmentos de 141, 181, 212, 243 y 364 pb. Hay dos mutaciones del sitio de restricción diferentes conocidas encontradas en las muestras que destruyen los sitios de HaeIII.
Las muestras DD10 y CW14 tienen el sitio de restricción destruido en 8250 pb (G>A). Se encontró otra mutación del sitio de restricción en la posición 7980 (A>G) en la muestra DD12. Hay una deleción de 9 pb (caccccctc) en las muestras DD1 7 y CW10 en la posición 8269-8277. Los dos mutantes del sitio de restricción y la deleción de 9 pb se confirmaron por secuenciación.
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1.2.2 (i) Cebador 12
Esta serie de cebadores cubre la región 8643-9458 pb dando un producto de 816 pb que se digirió con DdeI para dar fragmentos de 187, 239 y 390 pb. No hay mutantes del sitio de restricción en las muestras analizadas.
Se identificó una mutación desconocida presente en un caso y dos controles en la posición 8696 (G>A). También se encontró otra mutación puntual en un control solamente en la posición 9264 (C>T). No hubo otros cambios de patrón de DHPLC similares en la muestra.
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1.2.2 (j) Cebador 13
Esta serie de cebadores cubre la región 9397-11387 pb dando un producto de 201 pb que se digirió con AluI para dar fragmentos de 248, 312, 366, 487 y 588 pb. No hay mutaciones de enfermedades conocidas. Se identificaron dos mutantes del sitio de restricción DD17 y CW3 que destruyen el sitio de AluI 9643-9647 pb (conocido).
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1.2.2 (k) Cebador 14
Esta serie de cebadores cubre la región 11322-12582 pb dando un producto de 1531 pb que se digirió con HaeIII y vlspl para dar fragmentos de 178, 366, 435 y 552 pb. Existe una mutación conocida para la enfermedad LHON (neuropatía óptica hereditaria de Leber) (G11778A). No hay mutantes del sitio de restricción en este área.
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1.2.2 (l) Cebador 15
Esta serie de cebadores cubre la región 12753-13264 pb dando un producto de 512 pb. Este fue un simple fragmento de DHPLC que se analizó sin digestión de restricción a 59ºC. No hubo cambios evidentes en el patrón de DHPLC entre las poblaciones afectadas y de control.
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1.2.2 (m) Cebador 16
Esta serie de cebadores cubre la región 13172-14610 pb dando un producto de 1439 pb que se digirió con AluI y Ddel para dar fragmentos de 129, 177, 289, 382 y 462 pb. Existe dos mutaciones conocidas para la enfermedad LHON (neuropatía óptica hereditaria de Leber) (A14495G y T14484C). Hay tres mutantes del sitio de restricción en este área. Los dos primeros son mutaciones conocidas; el primero se encuentra en CW4, que destruye el sitio AluI 14014-14017 y un segundo en el sitio de AluI en 14303-14306. El tercer mutante del sitio de restricción es desconocido y se encuentra en la muestra CW6 que destruye el sitio de Ddel 14433-14437) que se muestra en la Figura 14 con un patrón de DHPLC aberrante en la muestra CW 19.
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1.2.2 (n) Cebador 17
Esta serie de cebadores cubre la región 14427-15590 pb dando un producto de 1164 pb que se digirió con MboI para dar fragmentos de 191,235, 297 y 441 pb. Se identificaron tres mutantes del sitio de restricción en DD12, CW13 y CW20 que destruyeron el sitio de MboI (14868-14871). Las mutaciones identificadas en DD18 se muestran en la Tabla 6.
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1.2.2 (o) Cebador 18
Esta serie de cebadores cubre la región 15424-16451 pb dando un producto de 1028 pb que se digirió con AluI para dar fragmentos de 218, 353 y 457 pb. No hay mutaciones conocidas pero se identificaron tres mutantes del sitio de restricción en DD17, CW9 y CW11 que crean un sitio de AluI en el fragmento 2 (15424-15776) separándolo en un producto de 165 y 188 pb (AGCT).
La secuenciación de DD17 identificó mutaciones en 15606 (A>G) y 15451 (G>T).
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La Tabla 6 resume las mutaciones identificadas en el Ejemplo 1 a través del genoma mitocondrial.
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TABLA 6
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15
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22
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1.3 Discusión 1.3.1 Mutaciones 1.3.1 (a) Bucle D o región hipervariable (Cebadores 1-4)
La presencia del sitio hipervariable en la región no codificadora del ADNmt humano se ha documentado bien en el pasado. Se cree que los sitios hipervariables representan puntos conflictivos ya que las mutaciones somáticas y de la línea germinal se producen de preferencia en este sitio. Se encontró que esta región es un punto conflictivo en cánceres de pulmón, vejiga y cabeza y cuello. Las mutaciones en esta región pueden estar relacionadas con la función del bucle D como sitio regulador para la replicación y expresión del ADNmt. No se conoce aún la característica única de estos sitios hipervariables que los hace puntos mutacionales tan conflictivos.
Los cebadores 1 a 3 cubren la mayor parte de la región del bucle D con los últimos 300 pb cubiertos por el cebador 4. Se observó un número de alteraciones y cambios de patrón presentes aleatoriamente a través del análisis por DHPLC para la serie de cebadores 1 y 3. Esto se refleja en los datos de secuenciación donde se observa un número de cambios tanto en las muestras de control como en las de casos. En general, no se encontraron mutaciones específicas de enfermedad en estas series de cebadores.
En el cebador 1, se encontraron 10 mutaciones conocidas en casos de DD y 5 mutaciones puntuales y 5 heteroplásmicas con 2 mutaciones puntuales desconocidas en los controles. También se encontraron dos mutaciones puntuales conocidas en casos y una en un control.
No hubo cambios evidentes en el patrón de DHPLC en el cebador 2 y por consiguiente no se enviaron muestras para secuenciación aunque, en la base de datos de referencia de polimorfismos mitocondriales (http://infinity.gen.emory.
edu/mitomap.html) había veinte mutaciones más informadas en esta región. La comparación de patrones de DHPLC, por ejemplo entre el cebador 1 y el 2 muestra variabilidad significativamente disminuida en el análisis del cebador 2 y en particular, no se identificaron cambios o alteraciones importantes del patrón. Además, estos cambios informados pueden no estar actualmente presentes dentro de la población de muestras.
En el cebador 3 se identificaron dos mutaciones puntuales desconocidas en los controles. Se identificaron dos mutaciones conocidas y una desconocida en el cebador 4, cuyas posiciones indicaron que pertenecían a la región del bucle D. Sólo dos de cada veinte casos demostraron este patrón de DHPLC, que estuvo ausente en todos los controles. Esto se confirmó por secuenciación. Como conclusión, no hay una gran correlación entre polimorfismos del bucle D y DD.
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1.3.1 (b) ARN Ribosómico - ARNr 12s,16s (Cebadores 4-6)
El cebador 4 cubre completamente el ARNr12s. El cebador 5 cubre la mayor parte del ARNr16s con el comienzo y el final de ARNr16s cubiertos por los cebadores 4 y 6 respectivamente. No se han encontrado mutaciones en la región de ARNr12s. No hay hallazgos sorprendentes en vista del hecho de que esta región no es un punto conflictivo tal como la región hipervariable y la incidencia de mutaciones debería ser menor. Existen sin embargo mutaciones de enfermedades informadas en la región de ARNr12s que incluyen los siguientes ejemplos; SNHL (1095C), DM (1310T, 1438T) y DEAF (1555G).
Se identificó una mutación ya conocida en la posición 1811 pb en el ARNr16s, que estuvo presente en 3 casos y 4 controles. Además, se identificó una mutación en la posición 1690 en un caso con un patrón de DHPLC similar en un control - con probabilidad de ser la misma secuencia. La distribución de estas mutaciones (1690 y 1811 pb) entre los casos y los controles no parece mostrar ninguna importancia con DD.
Se identificó una mutación heteroplásmica desconocida en la posición 2839 pb que era un cambio de pares de base G a G/T en la región del ARNr16s de la mitocondria. El cambio de patrón de DHPLC fue claramente evidente en aproximadamente en el 90% de los casos y estuvo ausente en todos los controles. Como se indicó anteriormente, esta mutación demostró una relación importante con DD. Por consiguiente esta mutación representa una mutación de mayor preferencia que puede analizarse según el procedimiento de la invención.
Se identificó también una mutación nueva en un único control, que no estaba presente en ninguna de las otras muestras secuenciadas. La elevada prevalencia del cambio de patrón de DHPLC y su marcada diferenciación entre casos y controles puede indicar potencialmente importancia de enfermedades. Se presume que una mutación heterosplásmica en ARNr16s altera la síntesis mitocondrial de proteínas.
Se han descrito otras mutaciones conocidas de enfermedades en la región de ARNr16s. Estas incluyen las siguientes, síndrome de Rett (2835T), MELAS (3093G) y ADPD (3196A).
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1.3.1 (c) ARNt
Se encontraron tres muestras (una DD y dos de control) donde se había destruido el sitio de restricción de HaeIII en 5837 pb que dieron lugar a la distribución de fragmentos diferentes. La secuencia de corte era GGCC. La posición de esta mutación se encuentra dentro de la región codificadora del ARNt entre ND2 y COI. Al buscar en la base de datos mitomap Enfermedades de Sustitución de Bases de ADN Mitocondrial para mutaciones de ARNr y ARNt (http://www.gen.emory.edu/cgi-bin/MITOMAP/bin/tb19gen.pl), resulta evidente que la mutación en la posición 5837 no se había informado previamente. Esta mutación está en una frecuencia relativamente baja en las muestras analizadas y está presente en casos y en controles, por consiguiente no parece tener importancia para la
DD.
Se encontró una deleción de 9 pb desconocida en la posición 8260-8277, que se encuentra en el ARNt (K) en un caso y en un control. Es interesante destacar que se había informado previamente una deleción de 9 pb en las posiciones 8271-8281 (http://www.gen.emory.edu/cgi-bin/MITOMAP/bin/tb110gen.pl); sin embargo, esta deleción informada no está exactamente en la misma localización pero se superpone con la que encontraron los inventores. Existe una mutación publicada dentro de esta región (A7445G) asociada con queratoderma palmoplantar (PPK). PPK afecta las palmas y las plantas y se supone que es un trastorno genético heterogéneo de la piel.
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1.3.1 (d) Subunidades de polipéptidos OXPHOS
Complejo I: (Cebador 7,8,13,14,15,16)
Cadena 1-6 de la NADH deshidrogenasa (ubiquinona) (ND1, 2, 3, 4, 4L, 5 y 6)
Se encontró un patrón sorprendente de DHPLC en la región ND2 en el 94% de los casos que solo estaba presente en 45% de los controles. También se encontraron dos mutaciones nuevas en las posiciones A4916G y G5045A en dos casos que también estaban presentes en la región ND2.
La NADH-quinona oxidorreductasa (complejo I) es uno de los tres complejos enzimáticos transductores de energía de la cadena respiratoria en la mitocondria. Es el punto de entrada para la principal fracción de electrones que atraviesan la cadena respiratoria y dan lugar eventualmente a la reducción del oxígeno. Se presume que el Complejo I es uno de los sistemas enzimáticos unidos a membrana más intrincados, que se conocen hasta la fecha, está compuesto por al menos 43 polipéptidos distintos. De éstos, 7 están codificados por el ADNmt
Se encontró un mutante del sito de restricción AluI en la posición 14015 en un control. Esta es una mutación conocida en la región ND5. Se encontró también otra mutación puntual A13220C en una muestra de control en ND5. Ninguna de las mutaciones en la región ND 5 estaban en la población afectada, por consiguiente se presume que no son importantes para enfermedades.
En la región ND6 se identificaron tres mutaciones diferentes, que estaban presentes en las muestras de control solamente. Se encontró un mutante conocido del sito de restricción AluI en la posición 14303 y un mutante nuevo del sitio de restricción Ddel en 14433 en otra muestra de control. Se identificó una única mutación de pares de bases en la posición A14586G en una muestra de control. Como no se presentaron mutaciones en las muestras afectadas, se presume que la región ND6 no está relacionada con DD.
Un gran número de enfermedades humanas mitocondriales involucran defectos estructurales y funcionales a nivel del complejo I de enzimas. Una diversidad de enfermedades neuromusculares, incluidas la epilepsia mioclónica y las fibras rojas rasgadas (MERRF); la encefalopatía mitocondrial, acidosis láctica y episodios análogos al ictus (MELAS); Oftalmoplejía Externa Crónica Plus (CEOP); síndrome de Kearns-Sayre (KSS); y casos de neuropatía óptica hereditaria de Leber (LHON) parecen estar asociadas con un defecto en el complejo I. El defecto identificado en la mayoría de tales casos es una mutación puntual en el ADNmt.
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Complejo II
Complejo de la succinato deshidrogenasa
Este complejo está codificado por ADN nuclear y por consiguiente no se explora como parte de la selección del ADNmt total.
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Complejo III: Cytb (Cebadores P17,18)
Complejo citocromo b-c1 ubiquinona-citocromo-c reductasa citocromo b - mitocondria
Se identificaron múltiples mutaciones nuevas en dos casos que mostraron un patrón de DHPLC muy similar. Estos cambios de secuencia no estaban presentes en ninguno de los controles. La mayoría de los cambios encontrados por secuenciación revelaron la presencia nueva de heteroplasmia que incluyó G15274C/G: A15282C/A; G15319C/G: T15332C/T; G15336G/C; T15339T/C; T15362C/T y 15434insC. Todos estos cambios estaban en la región Cytb. También se identificó un mutante conocido del sitio de restricción en un caso y en dos controles en la posición Mbol 14869. Aunque las múltiples mutaciones heteroplásmicas identificadas en los casos están presentes con una frecuencia baja, están ausentes en los controles y pueden por consiguiente tener cierta importancia para la enfermedad. La presencia de los mutantes de restricción no es específica de enfermedad ya que es más frecuente en la población de control.
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Complejo IV
Cadenas I-III de la citocromo-c oxidasa (CO I, II, III) (Cebadores 9,10,11,12,13)
Se encontraron cambios prominentes en el patrón de DHPLC en las muestras dentro de 6688 y 6849 de la región COI. Todos los casos tenían el patrón de pico único de tipo salvaje, mientras que sólo el 27% de las muestras de control tenían un patrón similar. Resulta sorprendente que la secuenciación no halla dado una sustitución evidente de pares de base dentro de esta región. Una hipótesis sería que la mutación está en un nivel muy bajo para identificarla por secuenciación.
Se confirmaron dos mutaciones de restricción por secuenciación localizadas en la región COII. La mutación de restricción en la posición 8250 está presente en un caso y en un control solamente. Existe una mutación de restricción única en la posición 7980 en un caso. La frecuencia y distribución de las mutaciones en esta región no son suficientes para estar asociadas a enfermedad.
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Complejo V
Proteínas 6 y 8 de la ATPasa Sintasa (Cebadores P11, 12)
Se identificó un cambio en el patrón de DHPLC en un caso y en dos controles en la posición G8696A que se confirmó por secuenciación. Este se localizó en la región ATPasa 6 del genoma mitocondrial. Existe una mutación de enfermedad conocida NARP (debilidad neurogénica, ataxia y retinitis pigmentosa) (T8993G) en esta región. Se asume que la mutación hallada no está relacionada con DD por su baja prevalencia entre los casos.
Se han relacionado una gran diversidad de afecciones a las mutaciones en los genes mitocondriales. Algunos de estos genes están localizados en el ADN nuclear (ADNn) o en el ADNmt. Los patrones de herencia de trastornos mitocondriales pueden también variar de materno, mendeliano y una combinación de los dos. Sólo se ha investigado el ADNmt en linajes heredados por vía materna para la presencia de mutaciones relacionadas con los casos y controles de este ensayo. La identificación de polimorfismos nuevos en la región de ARNr16s que está presente en más del 90% de los casos y ausente en los controles es un hallazgo importante. Es posible que esta mutación sea patogénica y pueda causar un defecto en la fosforilación oxidativa al interferir con la síntesis mitocondrial de proteínas.
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1.3.2 Tecnología
La técnica original para la identificación de mutaciones en el genoma mitocondrial usando una técnica DHPLC múltiplex (Van den Bosch y col. 2000) enfocó el tema de detección de mutaciones desde un punto de vista diagnóstico; para explorar unas pocas muestras de manera que sea insignificante la posibilidad de perder cualquier mutación de diagnóstico. Aunque este es el resultado ideal para cualquier proyecto de detección de mutaciones, no siempre resulta realista este ideal de hallar todas las mutaciones cuando se explora un gran área genómica con múltiples muestras. Sin embargo, la DHPLC es el mejor enfoque para llevar a cabo tales proyectos de exploración ya que necesita muy poco compromiso para el tamaño de muestra, por la automatización de los instrumentos, o para la precisión, por su capacidad para encontrar mutaciones de una manera independiente de la posición. Las publicaciones de análisis cegados asignan repetidas veces una eficacia de 95-100% en el hallazgo de mutaciones por medio del uso de DHPLC. Resulta importante destacar también que con respecto a la detección de la presencia de mutaciones heteroplásmicas, también se ha informado su capacidad para detectar la presencia incluso de cantidades pequeñas de heterodúplex que indican una mutación.
La detección de mutaciones por DHPLC es dependiente de la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) para amplificar el ADN genómico humano para análisis. Al igual que todas las enzimas, las Taq ADN polimerasas tiene una tasa de error inherente de aproximadamente 8,0 x 10^{-6} hasta 2 x 10^{-4}. Estos errores de incorporación por la Taq polimerasa se dejan sin corrección y se copian a continuación en ciclos posteriores de amplificación. Como alternativa, las enzimas polimerasa de corrección (Pfu y Pwo) tienen una tasa de error más baja de aproximadamente 1,3 x 10^{-6}. Cada error introducido en la amplificación puede considerarse equivalente a una mutación aleatoria de bajo nivel. Entre los sistemas normales de detección de mutaciones estos errores, aunque se replican en futuros ciclos de amplificación por PCR, estarán a un nivel considerablemente más bajo que una mutación heterocigota verdadera. Por esta razón la fidelidad de la enzima de PCR puede no ser un tema principal para la detección rutinaria de mutaciones excepto en casos extremos de nivel bajo de molde y condiciones de ciclos de PCR excesivas. Sin embargo, cuando se detectan mutaciones en poblaciones de ADN donde no hay una proporción igual de alelos de tipo salvaje y mutantes (muestra de tumores o detección mitocondrial, por ejemplo) la fidelidad de la enzima desempeñará una función importante. En casos extremos los niveles de mutación y errores por incorporaciones erróneas por la enzima de PCR pueden ser comparables.
Los errores de incorporación por la enzima Taq pueden verse en un cromatograma de DHPLC, a la temperatura de análisis del fragmento, como una meseta característica del pico principal. La DHPLC distingue las mutaciones como cambios con respecto a un patrón de referencia, una señal de mutación positiva no siempre es un patrón de pico definido. Estos últimos dos hechos tomados en conjunto pueden significar que pueden presentarse cambios muy pequeños en el patrón que podrían enmascarar los picos de incorporaciones erróneas que preceden al pico de referencia. Por esta razón, en particular cuando se explora el genoma mitocondrial, se ha elegido usar una polimerasa de corrección nueva (ADN polimerasa Optimase^{TM}, Transgenomic Inc. NE, EEUU) que ha mostrado tener el nivel más bajo de incorporaciones erróneas en comparación con otras polimerasas de corrección y basadas en Taq comercialmente disponibles. La Figura Y5 ilustra esta comparación calculando el porcentaje de heterodúplex formados usando una serie de enzimas comercialmente disponibles.
Como un sustrato para la amplificación por PCR, se ha aislado ADN genómico de la sangre de 40 muestras de casos y controles de edades y sexos coincidentes. La obtención de las muestras de sangre es relativamente no invasiva en comparación con la disección de tejidos y además pueden obtenerse cantidades razonables de material. Es importante destacar sin embargo con respecto a los síndromes mitocondriales que puede haber expresión específica de tejido en relación con enfermedades relacionadas con mitocondrias. Es por consiguiente posible que puedan no encontrarse en sangre los niveles más altos de mutaciones. Sin embargo, definitivamente las mutaciones patogénicas de ADNmt son probablemente heteroplásmicas y por esta razón no se necesitó mezclar las muestras con una muestra de referencia (de tipo salvaje) para asegurar la presencia de una afección heterocigota y de esta manera la detección de mutaciones. Además sería imposible encontrar un tipo salvaje verdadero por definición de la tasa de mutación relativamente elevada dentro del genoma mitocondrial si fuese necesario.
Se eligió amplificar el genoma mitocondrial con un total de 18 fragmentos superpuestos usando la polimerasa Optimase. Cuatro de estos fragmentos se diseñaron para someterlos a DHPLC "normal" con una variación de tamaños desde 331 hasta 550 pb. En particular, tres de estos fragmentos se extienden en la región hipervariable; al dividir estos en reacciones de PCR individuales hará más fácil este enfoque de reconocimiento y verificación con DHPLC. Las restantes catorce reacciones de PCR que cubren el resto de la región codificadora del genoma se someten a digestión de restricción con una combinación de 5 enzimas de restricción para producir combinaciones de fragmentos de DHPLC múltiplex que se analizan a un intervalo de temperaturas. El genoma mitocondrial tiene una composición de GC relativamente constante que hace que el intervalo de temperaturas necesarias para tal exploración por DHPLC sea menor que el sería normalmente necesario para otros genomas. Podría decirse también que la exactitud de la DHPLC para localizar mutaciones puede atribuirse principalmente a su capacidad para encontrar mutaciones en un intervalo de temperaturas. En la técnica original es importante la elección de exploraciones repetidas en intervalos de un grado. Los inventores creen que este nivel de exploración es muy conservador y puede ser aceptable para un enfoque de diagnóstico donde resulta crítica la certeza con respecto al diagnóstico del paciente. La capacidad para detectar mutaciones con intervalos de al menos 2-3ºC o con ventanas de temperaturas significativamente mayores en combinación con el rediseño de la serie de cebadores permite achicar la elección de temperaturas desde 65 análisis diferentes hasta 29 condiciones para explorar todos los fragmentos del genoma mitocondrial.
El criterio fundamental a considerar cuando se utiliza DHPLC para la detección de mutaciones es estar seguro al llamar a las mutaciones como cambios definidos en el patrón. Se ha mostrado que se alcanzan las mayores eficacias para encontrar mutaciones cuando ésta llamada de cambio de patrón se realiza en su nivel más simple. Es importante destacar que incluso pequeños cambios en la forma del pico pueden estar correlacionados con la presencia de una mutación. No resulta estrictamente posible en un contexto de exploración localizar un cambio de patrón con una base de ADN particular o un cambio de posición ya que los patrones obtenidos han mostrado ser dependientes del cambio de bases, del contexto de secuencia local y total de los fragmentos. Esto podría argumentarse es aún más crítico con respecto a la localización de mutaciones en poblaciones mitocondriales por los razonamientos anteriormente discutidos. Una dificultad añadida es la verificación de la mutación que normalmente se produce por secuenciación. La secuenciación considerará cada posición de base y llamará la base que predomina en esa posición como la secuencia de lectura correcta. Si "ve" dos bases en cualquier posición puede llamar a la base como N; y el control posterior del electroforetograma determinará a continuación la naturaleza heterocigota de esa posición. Desafortunadamente cuando las bases en una posición no tienen igual magnitud pueden no significar N. Se ha mostrado que la secuenciación tiene dificultades para reconocer heterocigocidad en un nivel menor al 30%. Con respecto a esta investigación sin embargo, los inventores tienen una situación donde podrán detectar mutaciones en un nivel extremadamente bajo pero tendrán dificultades para verificar por secuenciación. Hasta un punto, esto ha sido sorteado por el control individual de las lecturas de secuencias para detectar heteroplasmia; siendo prueba de esto la identificación de la mutación heteroplásmica en el cebador 6. En casos extremos otras publicaciones han mostrado que ha sido necesario clonar el ADN potencialmente mutante y posteriormente secuenciar grandes cantidades de clones individuales para verificar potenciales mutantes. Una estrategia alternativa sería recoger la porción de heterodúplex del ADN mutante enriqueciendo de esta manera la población de secuenciación para el alelo mutante con la esperanza de que el nivel fuera tal que permitiera obtener la llamada correcta de secuencia.
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1.3.3 La importancia del Mutante G2839G/T
Se cree que hay cuatro criterios principales que avalan el papel deletéreo de una nueva mutación. En primer lugar, la mutación no debe ser un polimorfismo neutral; en segundo lugar el cambio de bases debe afectar una región conservada durante la evolución y funcionalmente importante; en tercer lugar las mutaciones deletéreas son usualmente heteroplásmicas y en cuarto lugar el grado de heteroplasmia en los miembros de diferentes familias tiene que estar de acuerdo con la gravedad de los síntomas.
Con respecto al primer criterio, se ha controlado a través de las bases de datos de mitocondrias existentes y no se ha podido localizar la mutación G2389G/T. Los inventores creen por consiguiente que representa un polimorfismo nuevo. Aunque la relación con DD es clara, los inventores no están seguros de la importancia funcional de este polimorfismo funcional. Una investigación bioinformática está aún en proceso para determinar su importancia funcional y evolutiva. Este polimorfismo particular es heteroplásmico y está ausente en toda la población de control. No se ha determinado el grado de heteroplasmia dentro de los linajes familiares usados en este estudio, sin embargo, el examen clínico de los miembros afectados de algunos de los linajes usados demuestra una diversidad de expresión fenotípica en
DD.
Las mutaciones mitocondriales que dan lugar a deterioro funcional en la cadena respiratoria son patogénicas. Sin embargo, la relación de genotipo y fenotipo en el ADNmt y los trastornos afectados son difíciles de entender. No resulta claro porqué los defectos en la ruta metabólica que dan lugar a crisis de energía pueden presentarse con tal variedad de síntomas y diversidad de tejidos y órganos. La misma mutación de ADNmt puede producir fenotipos muy diferentes y mutaciones diferentes pueden producir fenotipos similares. Esto puede ser por las relaciones variables entre tipo salvaje y mutante de ADNmt, al efecto de modulación de otros genes mitocondriales y nucleares y a los diferentes umbrales de expresión bioquímica para el tejido y la mutación particular involucrada.
La acumulación de cambios de bases en el ADNmt se produce durante una escala de tiempo corta para generar polimorfismos dentro de poblaciones de la misma base étnica, tal como caucásicos. Hay polimorfismos de ADNmt distintivos de diferentes poblaciones de seres humanos y existe la presencia de polimorfismos heteroplásmicos dentro de un individuo. Sin embargo, la mayoría de los individuos son homoplásmicos, lo que según se presume surge de un grave cuello de botella en el desarrollo del oocito.
Se ha propuesto que los ADNmt con mutaciones sustanciales se replican más rápidamente y por consiguiente tienen una ventaja selectiva sobre los ADNmt normales. Esto puede explicar la observación de que se hallan encontrado elevadas proporciones de ADNmt mutado en tejidos específicos tales como el músculo en comparación con otros tejidos como el hígado con una menor proporción de mutaciones. Se presume que el porcentaje de ADNmt mutado aumenta con la edad en el músculo. Si el número total de fibras musculares no cambia de manera apreciable después del nacimiento, la replicación del ADNmt está disociada de la división celular y hay una selección positiva para la células defectuosas con ADNmt mutado. Se cree que la variación en la edad de inicio de se debe al porcentaje de ADNmt presente en el nacimiento y después del nacimiento, es la tasa de acumulación de ADNmt mutado comparado con los ADNmt normales.
Una serie de estudios interesantes han proporcionado evidencias para futuros tratamientos de enfermedades mitocondriales. Los PNA son ácidos nucleicos peptídicos específicos de secuencia que han mostrado unión selectiva al ADNmt e inhibición de la replicación del ADNmt. Estos agentes pueden reducir el porcentaje del ADNmt mutante hasta un nivel inferior al umbral en la célula y como resultado pueden llevar a la corrección del defecto bioquímico mitocondrial.
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1.4 Conclusiones
Se usó una técnica mejorada de Cromatografía Líquida de Alto Rendimiento Desnaturalizante (DHPLC) múltiplex para seleccionar el genoma mitocondrial completo en veinte casos de enfermedad de Dupuytren con un patrón de herencia transmitido por vía materna y veinte controles coincidentes caucásicos.
Usando este enfoque se confirmó un número de mutaciones conocidas y lo que es más importante se identificaron varias mutaciones desconocidas. Una proporción de estas mutaciones nuevas estaban en la región del bucle D y en el complejo I, III y V solo en los casos de DD.
Lo más interesante, resultó claramente evidente una mutación heteroplásmica desconocida en la posición 2839 pb que era un cambio de pares de bases G a G/T en la región de ARNr16s en aproximadamente 90% de los casos de DD y que estaba ausente en todos los controles. Esta mutación puede afectar la síntesis mitocondrial de proteínas de una manera específica de tejido.
La técnica de DHPLC usada en la invención es un procedimiento sólido y preciso para predecir mutaciones mitocondriales y los inventores pudieron identificar mutaciones previamente conocidas y algunas mutaciones nuevas relacionadas con enfermedad. Entender la base genética detallada de la enfermedad de Dupuytren es fundamental para proporcionar consejo de diagnóstico y pronóstico futuro a los pacientes y para desarrollar regímenes terapéuticos nuevos para el tratamiento de esta afección. Este es el primer informe de un estudio de DD y mutaciones mitocondriales usando DHPLC.
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Ejemplo 2
Habiendo establecido una correlación entre una afección caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas y un genotipo conferido por el polimorfismo de ADNmt 2839, se repitió el procedimiento del Ejemplo 1 para seleccionar sujetos según el procedimiento del primer aspecto de la invención para establecer el genotipo del sujeto.
Un médico clínico puede usar los resultados del análisis genético a continuación para proporcionar consejo médico a individuos que tienen la mutación. Por ejemplo, los individuos asintomáticos en los que se descubre el alelo mutante puede recibir consejo sobre su riesgo aumentado de desarrollar una afección caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas. Si es adecuado, puede aconsejarse a tales individuos a realizar cambios en el estilo de vida y/o recibir tratamiento profiláctico. Puede aconsejarse a los individuos que tienen la mutación 2839, que ya están sufriendo la afección caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas, que ajusten su medicación o hábitos ya que están potencialmente en riesgo de desarrollar una forma más grave de la afección.

Claims (15)

1. Un procedimiento in vitro para diagnosticar o detectar una predisposición para una afección al menos parcialmente caracterizada por fibrosis o cicatrización inadecuadas, comprendiendo el procedimiento examinar el gen de ARNr16s del genoma mitocondrial de un sujeto de interés para detectar la presencia de un polimorfismo genético o mutación ligada al desarrollo de la afección.
2. Un procedimiento según la reivindicación 1 en el que se examina una región alrededor de la posición 2839 del genoma mitocondrial para detectar la presencia de un polimorfismo o una mutación.
3. Un procedimiento según la reivindicación 2 en el que se examina una inserción de un nucleótido timidina (T) después del nucleótido guanosina (G) (G2839G/T) en la posición 2839 del genoma mitocondrial.
4. El procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1-3 en el que la afección es la enfermedad de Dupuytren.
5. El procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1-3 en el que la afección es un queloide o cicatriz hipertrófica.
6. El procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1-3 en el que la afección es una cualquiera de esclerodermia; esclerosis sistémica; síndrome de Crest; esclerosis tuberosa con manchas en la piel; colagenoma cutáneo familiar; trastornos metabólicos e inmunológicos de la piel; facsitis eosinofílica; lupus eritematoso discoide; dermatomiositis; enfermedad mixta del tejido conectivo; fibrosis cutánea inducida por fármacos; fibrosis submucosa oral; fibrosis inducida tras exposiciones alimentarias y medioambientales; fibrosis pulmonar/cardíaca; cirrosis/fibrosis hepática; fibrosis renal; fibrosis inducida por fármacos; fibrosis del sistema nervioso central y periférico; fibrosis del sistema vascular; fibrosis del tracto genitourinario masculino y femenino; y fibrosis ginecológicas.
7. El procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 1-3 en el que la afección es una cualquiera de cirrosis hepática, fibrosis hepática, glomerulonefritis, fibrosis pulmonar, fibrosis quística, esclerodermia, fibrosis miocárdica, fibrosis tras el infarto de miocardio, y fibrosis del sistema nervioso central tras un ictus o trastornos neurodegenerativos.
8. Un procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones anteriores en el que el ADN mitocondrial se aísla de muestras de sangre o tejidos tomados del sujeto y a continuación se examina para detectar la presencia de un polimorfismo genético o mutación ligada al desarrollo de la afección.
9. Un procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones anteriores en el que el ADN mitocondrial se amplifica antes de examinarlo para detectar la presencia de un polimorfismo genético o mutación.
10. El procedimiento según la reivindicación 9 en el que el ADN mitocondrial se amplifica usando la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR).
11. El procedimiento según la reivindicación 10 en el que se usa un par de cebadores de PCR de SEC ID Nº 9 y 10 o un par de cebadores de SEC ID Nº 11 y 12 para amplificar el ADN mitocondrial.
12. Un procedimiento según cualquiera de las reivindicaciones anteriores en el que el genoma mitocondrial se examina por digestión de restricción y análisis de tamaño.
13. Un kit, para uso en el procedimiento según una cualquiera de las reivindicaciones 10-12, que comprende:
A) Cebadores de PCR para amplificar polimorfismos genéticos o mutaciones en el gen de ARNr16s mitocondrial que están ligados a una afección caracterizada por cicatrización o fibrosis inadecuadas;
B) Muestras de ADN de control de genotipo conocido para cada polimorfismo o mutación, y
C) Una ficha de datos que perfile el nexo existente entre un polimorfismo particular y una afección al menos parcialmente caracterizada por cicatrización o fibrosis inadecuadas.
14. El kit según la reivindicación 13 en el que los cebadores de PCR son como se definió en la reivindicación 11.
15. El kit según las reivindicaciones 13 o 14 en el que el kit comprende además una enzima de restricción adecuada para generar fragmentos de ADN.
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