ES2296201T3 - Secuencia novedosa para mejorar la expresion de acido nucleico. - Google Patents
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Abstract
Una molécula de ácido nucleico recombinante, que comprende una secuencia de ácido nucleico tiene una actividad anti-represora seleccionada del grupo que consiste de: a) SEQ. ID. NO. 66, b) fragmentos de SEQ. ID. NO. 66 en donde el fragmento tiene actividad anti-represora, c) secuencias que son al menos 70% idénticas en secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde dichas secuencias tienen actividad anti-represora; y d) el complemento de uno cualesquiera de a) hasta c); dicha molécula de ácido nucleico recombinante comprende además un casete de expresión, dicho casete de expresión comprende un promotor heterólogo ligado a un ácido nucleico de interés, y en donde dicho ácido nucleico de interés codifica preferiblemente todo o parte de una proteína de interés.
Description
Secuencia novedosa para mejorar la expresión del
ácido nucleico.
La invención se relaciona al campo de biología
molecular y biotecnología. Más específicamente la presente
invención se relaciona a medios y métodos para mejorar la producción
de uno o más ácidos nucleicos que pueden codificar proteínas en una
célula hospedadora.
Las proteínas se pueden producir en varias
células hospedadoras para un amplio rango de aplicaciones en
biología y biotecnología, por ejemplo como biofarmacéuticos. Los
métodos para la producción están bien establecidos y generalmente
implican la expresión en una célula hospedadora de un ácido nucleico
(también referido como "transgen") que codifica la proteína de
interés. Un problema asociado con la expresión de transgenes es que
es impredecible, prevenir de la alta probabilidad de que el transgen
se vuelva inactivo debido a silenciamiento del gen (McBurney y
colaboradores, 2002), y por lo tanto muchos clones de células
hospedadoras deben ser probados para expresión alta del transgen.
Además, una vez que el clon se ha establecido, la expresión del
transgen a menudo no es estable y el silenciamiento de la expresión
del transgen durante el cultivo de células hospedadoras prolongado
es un fenómeno observado comúnmente. En células de vertebrados esto
puede ser provocado por formación de heterocromatina en la
ubicación del cromosoma del transgen, lo cual previene la
transcripción del transgen (Whitelaw y colaboradores, 2001). El
silenciamiento del transgen es estocástico; esto puede ocurrir
brevemente después de integración del transgen en el genoma, o
solamente después de un número de divisiones de la célula. Esto
resulta en poblaciones de células heterogéneas después de cultivo
prolongado, en el cual algunas células continúan para expresar
niveles altos de proteína recombinante mientras otras expresan bajos
o indetectables niveles de la proteína (Martin & Whitelaw,
1996, McBurney y colaboradores, 2002). Una línea de células que se
usa para producción de proteína heteróloga se deriva de una célula
sencilla, todavía a menudo se escala, y se mantiene por períodos
prolongados, a densidades de células en exceso de diez millones de
células por ml en cultivos de 1,000 litros o más. Estas poblaciones
de células grandes (10^{14} - 10^{16} células)
están propensas a serias declinaciones en la productividad debido al silenciado del transgen (Migliaccio y colaboradores, 2000, Strutzenberger y colaboradores, 1999).
están propensas a serias declinaciones en la productividad debido al silenciado del transgen (Migliaccio y colaboradores, 2000, Strutzenberger y colaboradores, 1999).
Una posibilidad para superar los problemas
descritos anteriormente es emplear las secuencias llamadas STAR en
el sistema de expresión. Una variedad de las secuencias STAR se han
descrito en WO 03/004704. Estas secuencias se pueden usar para
mejorar la predicción, rendimiento y/o estabilidad de la producción
de proteína que usa constructor de expresión en varios tipos de
células hospedadoras (WO 03/004704; Kwaks y colaboradores,
2003).
La publicación internacional WO 03/106674
describe el uso de secuencias STAR para expresión de ácido nucleico
que codifica proteínas recombinantes en varias líneas de
células.
La publicación internacional WO 03/106674
describe el uso de secuencias STAR para expresión de ácido nucleico
que codifica proteínas multiméricas, tales como anticuerpos.
La presente invención propone el proporcionar
medios y métodos alternativos para mejorar la producción de
proteína.
La invención proporciona moléculas de ácido
nucleico recombinantes, células, métodos y su uso según las
reivindicaciones.
Las secuencias que tienen actividad
anti-represora como se usa en la presente son
secuencias que son capaces de por lo menos en parte de
contrarrestar el efecto represivo de las proteínas HP1 o HPC2 cuando
estas proteínas se atan a ADN. Las secuencias que tienen actividad
anti-represora (algunas veces también son referidas
como secuencias anti-represoras o elementos
anti-represores en la presente) apropiadas para la
presente invención, se han descrito en WO 03/004704, incorporada en
la presente por referencia, y se forman secuencias "STAR" ahí
(cuando una secuencia es referida como una secuencia STAR en la
presente, esta secuencia tiene actividad
anti-represora de acuerdo con la invención). Como un
ejemplo sin limitación, las secuencias de 65 elementos
anti-represores, llamadas STAR1-65
(ver WO 03/004704) se presentan en la presente como SEQ. ID. Nos.
1-65, respectivamente.
De acuerdo con la invención, un fragmento
funcional o derivado de un elemento anti-represor
dado se considera equivalente para el elemento
anti-represor, cuando este todavía tiene actividad
anti-represora. La presencia de la actividad
anti-represora puede ser verificada fácilmente por
la persona experta en la técnica, por ejemplo por el ensayo
descrito a continuación. Los fragmentos funcionales o derivados se
pueden obtener fácilmente por una persona experta en la técnica de
biología molecular, mediante inicio con una secuencia
anti-represora dada, y haciendo eliminaciones,
adiciones, sustituciones, inversiones y lo similar (ver, por
ejemplo, WO 03/004704). Un fragmento funcional o derivado también
comprende ortólogos de otras especies, los cuales se pueden
encontrar usando las secuencias anti-represoras
conocidas por métodos conocidas por la persona experta en la técnica
(ver, por ejemplo, WO 03/004704). De ahí, la presente invención
abarca fragmentos de las secuencias anti-represoras,
en donde los fragmentos todavía tienen actividad
anti-represora. Para fragmentos de una secuencia
dada, el por ciento de identidad se refiere a aquella porción de la
secuencia nativa de referencia que se encuentra en el fragmento. La
invención también abarca secuencias que son por lo menos 70%
idénticas en secuencia de nucleótidos a las secuencias que tienen
actividad anti-represora o a fragmentos funcionales
de estas que tienen actividad anti-represora,
mientras que estas secuencias que son por lo menos 70% idénticas
todavía tienen la actividad anti-represora de
acuerdo con la invención. Preferiblemente, las secuencias son por lo
menos 80% idénticas, más preferiblemente por lo menos 90% idénticas
y todavía más preferiblemente por lo menos 95% idénticas a la
secuencia nativa de referencia o fragmento funcional de esta.
Las secuencias que tienen actividad
anti-represora de acuerdo con la invención se pueden
obtener por varios métodos, que incluyen pero no se limitan a la
clonación del genoma humano o de los genomas de otros organismos, o
por ejemplo, por ampliación de secuencias
anti-represoras conocidas directamente de un genoma
por el uso del conocimiento de las secuencias, por ejemplo, por
PCR, o pueden ser sintetizadas químicamente en parte o
totalmente.
Las secuencias que tienen actividad
anti-represora, y fragmentos funcionales o derivados
de estas, se definen estructuralmente en la presente por su
secuencia y además se definen funcionalmente como secuencias que
tienen actividad anti-represora, la cual se puede
determinar con el ensayo descrito a continuación.
Cualquier secuencia que tiene actividad
anti-represora de acuerdo con la presente invención
debe ser capaz por lo menos de sobrevivir el siguiente ensayo
funcional (ver WO 03/004704, ejemplo 1, incorporado en la presente
por referencia). Las células Humanas U-2 OS (ATCC
HTB-96) son transfectadas de forma estable con el
plásmido pTet-Off (Clontech
K1620-A) y con ácido nucleico que codifica una
proteína de fusión LexA-represor que contiene el
dominio de enlace al ADN LexA y la región de codificación de
cualquiera de HP1 o HPC2 (proteínas del grupo Drosophila Polycomb
que reprimen la expresión del gen cuando se hace en extensiones
laterales al ADN; el ensayo trabaja con cualquier proteína de
fusión) bajo control del sistema regulador transcripcional
Tet-Off (Gossen & Bujard, 1992). Estas células
son referidas a continuación como las células reporteras para el
ensayo de actividad anti-represora. Un plásmido
reportero, el cual proporciona resistencia a la higromicina,
contiene una secuencia poliligadora posicionada entre cuatro sitios
operadores LexA y el promotor SV40 que controla el gen de
resistencia a la zeocina. La secuencia a ser evaluada para actividad
anti-represora puede ser clonada en el poliligador.
La construcción de un plásmido reportero apropiado, tal como
pSelect, se describe en el ejemplo 1 y la Fig. 1 de WO 00/004704.
El plásmido reportero se transfecta en las células reporteras, y las
células se cultivan bajo selección de higromicina (25 \mug/ml;
selección para presencia del plásmido reportero) y represión de
tetraciclina (doxiciclina, 10 ng/ml; que previene la expresión de la
proteína de fusión de represor de LexA). Después de 1 semana de
crecimiento bajo estas condiciones, la concentración de doxiciclina
se reduce a 0.1 ng/ml (o menor) para inducir el gen represor de
LexA, y después de 2 días la zeocina se agrega a 250 \mug/ml. Las
células se cultivan por 5 semanas, hasta que los cultivos de control
(transfectados con plásmido de reportero vacío, esto es que carece
de una secuencia anti-represora clonada en el
poliligador) son exterminados por la zeocina (en este plásmido de
control el promotor SV40 se representa por la proteína de fusión de
represor de LexA que se hace en extensiones laterales a los sitios
de operación LexA, que resulta en expresión de zeocina insuficiente
en las células para sobrevivir a la selección de zeocina). Una
secuencia tiene actividad anti-represora de acuerdo
con la presente invención si, cuando la secuencia se clona en el
poliligador del plásmido reportero, las células reporteras
sobreviven la selección de 5 semanas bajo zeocina. Las células de
las colonias todavía se pueden propagar en medio nuevo que contiene
zeocina después de la selección de zeocina de 5 semanas,
considerando que las células transfectadas con plásmidos reporteros
que carecen de secuencias anti-represoras no se
pueden propagar en medio nuevo que contiene zeocina. Cualquier
secuencia no capaz de conferir el crecimiento después de 5 semanas
en zeocina en este ensayo, no califica como una secuencia que tiene
actividad anti-represora, o fragmento funcional o
derivado funcional de este de acuerdo con la presente invención.
Como un ejemplo, las secuencias límite conocidas tales como aquellas
evaluadas por Van der Valg y colaboradores, (2000), que incluyen
Drosophila scs (Kellum y Schedl, 1991), 5'-HS4 de la
ubicación cromosomal \beta-globina de pollo
(Chung y colaboradores, 1993, 1997) o Regiones de Enlace a la Matriz
(MARs, por sus siglas en inglés) (Phi-Van y
colaboradores, 1990), no sobrevive este ensayo.
Además, se prefiere que la secuencia
anti-represora o fragmento funcional o derivado de
estos confiere una proporción mayor de los clones que sobreexpresan
el reportero cuando flanquean un gen reportero (por ejemplo,
luciferasa, GFP) el cual está integrado en el genoma de células
U-2 OS o CHO, comparado a cuando el gen reportero
no está flanqueado por secuencias anti-represoras, o
flanqueado por secuencias que bloquean represión más débil tal como
Drosophila scs. Esto se puede verificar usando por ejemplo el vector
pSDH, o vectores similares, como se describen en el ejemplo 1 y
Fig. 2 de WO 03/004704.
Los elementos anti-represores de
la invención pueden tener por lo menos una de tres secuencias para
producción de proteínas: (1) incrementan la predicción de
identificación de las líneas de células hospedadoras que expresan
una proteína en niveles industrialmente aceptables; (2) resultan en
líneas de células hospedadoras con rendimientos de proteína
aumentados; y/o (3) resultan en líneas de células hospedadoras que
exhiben producción de proteína más estable durante el cultivo
prolongado. Cada uno de estos atributos se discute en más detalle a
continuación:
(1) predicción aumentada: la integración de
casetes de expresión de transgen puede ocurrir en posiciones
aleatorias en todo el genoma de la célula hospedadora. Sin embargo,
la mayoría del genoma es heterocromatina transcripcionalmente
silencioso. Cuando los casetes de expresión incluyen elementos
anti-represores que flanquean el transgen, la
posición de integración tiene un efecto reducido en expresión. Los
elementos anti-represores dañan la capacidad de
heterocromatina adyacente para silenciar el transgen.
Consecuentemente, la proporción de células hospederos que contienen
transgen con niveles de expresión aceptables se incrementa.
Verdaderamente, la incorporación de resultados de secuencias
anti-represoras en el establecimiento de hasta 10
veces más colonias, comparado con las mismas secuencias
anti-represoras que carecen de transgen, cuando la
misma cantidad de ADN es transfectada.
(2) Rendimiento: Han sido medidos los niveles de
expresión de proteína en poblaciones primarias de células
hospedadoras recombinantes, directamente después de la integración
del transgen. El nivel de expresión de individuos en las diferentes
poblaciones varía. Sin embargo, cuando los transgenes se protegen
por elementos anti-represores, la variabilidad se
reduce. Esta variabilidad reducida es la más visible en aquellos
clones menores que son recuperados que tienen niveles menores de
expresión. Además, las poblaciones con elementos
anti-represores comúnmente tienen individuos con
expresión sorprendentemente alta. Estos individuos de rendimiento
alto son favorables para la producción de proteínas, ya sea para
propósitos de cosecha o para propósitos de cambio del fenotipo de
la célula o un organismo que comprende las células.
(3) Estabilidad incrementada: Los elementos
anti-represores aumentan la estabilidad de
transgenes en líneas de células hospedadoras recombinantes mediante
asegurar que los transgenes no son silenciados transcripcionalmente
durante cultivo prolongado. Las pruebas comparativas muestran que,
bajo condiciones en las cuales los transgenes que no están
protegidos por elementos anti-represores son
silenciados progresivamente (5-25 pasos en cultivo),
los transgenes protegidos con elemento
anti-represor continúan para ser expresados en
niveles altos. Esto es una ventaja en la producción industrial de
moléculas proteinaceas, en la cual el cultivo de células continúa
por períodos prolongados, de unas pocas semanas hasta muchos meses.
Similarmente, la estabilidad de expresión en períodos prolongados
puede ser ventajosa en plantas o animales con fenotipos alterados
como una consecuencia de expresión recombinante de transgenes
protegidos anti-represores.
La presente invención proporciona una secuencia
novedosa que tiene actividad anti-represora, la cual
fue STAR67 acuñada (SEQ. ID. No. 66). Esta secuencia
anti-represora todavía aumenta fuertemente la
expresión cuando esta se coloca solamente secuencia arriba de un
promotor que conduce la expresión de un gen de interés, como es
evidente de los ejemplos propuestos en la presente, considerando que
hasta ahora las secuencias anti-represoras potentes
conocidas tales como STAR6 o STAR7 aparentan proporcionar mucha
menos ventaja en esta configuración (funcionan especialmente bien
cuando flanquean un transgen, esto es cuando están presentes en
ambas corrientes la 5' y la 3' del transgen). De ahí, STAR67
proporciona una alternativa para conocer todavía secuencias
anti-represoras, y cuando se colocan secuencia
arriba de un promotor aparenta tener beneficio aumentado cuando se
compara a aquellas secuencias anti-represoras
conocidas. La STAR67 no es un bloqueador mejorado, en contraste con
otras secuencias anti-represoras evaluadas para
esta propiedad (Kwaks y colaboradores, 2003), que proporcionan otra
diferencia entre STAR67 y otras secuencias
anti-represoras descritas anteriormente. También, la
STAR67 puede operar de una manera bidireccional, como se muestra en
el ejemplo 7. De acuerdo con la invención, la presencia de la
secuencia STAR67 en un casete de expresión proporciona predicción
mejorada y/o rendimiento y/o estabilidad de expresión. Se demuestra
en la presente que STAR67 es funcional en combinación con varios
promotores, y en diferentes líneas de células.
Una molécula de ácido nucleico de acuerdo con la
invención, que comprende STAR67, puede estar en cualquier formato,
por ejemplo, como fragmento de ADN, opcionalmente presente en un
vector de clonación tal como un plásmido, preferiblemente un vector
de expresión, y se puede usar por ejemplo para propósitos de
clonación que usa tecnología de ADN recombinante estándar. En
modalidades preferidas de la invención, el ácido nucleico comprende
un casete de expresión, el cual es útil para expresar secuencias de
interés, por ejemplo, en células hospedadoras.
Un "casete de expresión" como se usa en la
presente es una secuencia de ácido nucleico que comprende por lo
menos un promotor ligado funcionalmente a una secuencia de la cual
la expresión es deseada, cuya secuencia de la cual la expresión es
deseada preferiblemente es una estructura de lectura abierta que
codifica toda o parte de una proteína de interés. El promotor
preferiblemente es un promotor heterólogo con respecto al ácido
nucleico de interés, por lo cual un promotor heterólogo se define
como un promotor el cual no es el promotor natural de la secuencia
de interés. En otras palabras, alguna forma de intervención humana,
por ejemplo, clonación molécula, se ha usado en cualquier momento
para hacer la combinación funcional de un promotor heterólogo con
un ácido nucleico de interés, y se entiende fácilmente en este
contexto que un promotor heterólogo se puede derivar del mismo o de
un organismo diferente como la secuencia de interés.
Preferiblemente, un casete de expresión además contiene secuencias
de terminación de transcripción y poliadenilación. Otras secuencias
reguladoras tales como mejoradores también pueden ser incluidas. Las
unidades de expresión de acuerdo con la invención además comprenden
por lo menos una secuencia anti-represora, tal como
STAR67. En ciertas modalidades preferidas la secuencia
anti-represora, preferiblemente STAR67, se coloca
secuencia arriba del promotor, preferiblemente de tal manera que
menos de 2 kb están presentes entre la terminación 3' de la
secuencia anti-represora y el inicio de la
secuencia promotora. En modalidades preferidas, menos de 1 kb, más
preferiblemente menos que 500 nucleótidos (nt), todavía más
preferiblemente menos que alrededor de 200, 100, 50, ó 30 nt están
presentes entre la terminación 3' de la secuencia
anti-represora y el inicio de la secuencia
promotora. En ciertas modalidades preferidas, la secuencia
anti-represora se clona directamente secuencia
arriba del promotor, que resulta solamente en alrededor de
0-20 nt entre la terminación 3' de la secuencia
anti-represora y el inicio de la secuencia
promotora.
Para obtener la expresión de las secuencias de
ácido nucleico que codifican proteína recombinante, es bien sabido
por aquellos expertos en la técnica que las secuencias capaces de
conducir la expresión, pueden ser ligadas funcionalmente a las
secuencias de ácido nucleico que codifican la proteína, resultando
en moléculas de ácido nucleico recombinante que codifican una
proteína recombinante en el formato de expresión. En general, la
secuencia del promotor está colocada secuencia arriba de las
secuencias que codifican la proteína de interés. Los vectores de
expresión útiles están disponibles en la técnica, por ejemplo, las
series de vectores pcADN y pEF de Invitrogen, pMSCV y
pTK-Hyg de BD Sciences, pCMV-Script
de Stratagene, etc.
Cuando la secuencia que codifica el polipéptido
de interés se inserta apropiadamente con referencia a secuencias
que gobiernan la transcripción y traslación del polipéptido
codificado, el casete de expresión que resulta es útil para
producir la proteína de interés, referida como expresión. Las
secuencias que conducen la expresión puede incluir promotores,
mejoradores y similares, y combinaciones de estos. Estas deben ser
capaces de funcionar en las células hospedadoras, que conduce de
esa manera la expresión de las secuencias de ácido nucleico que
están ligadas funcionalmente a ellas. La persona experta en la
técnica está consciente de que varios promotores se pueden usar
para obtener la expresión de un gen de interés en las células
hospedadoras. Los promotores pueden ser constitutivos o regulados y
se pueden obtener de varias fuentes, que incluyen virus, fuentes
procarióticas o eucarióticas, o diseñados artificialmente. La
expresión de los ácidos nucleicos de interés puede ser del promotor
natural o derivados de este o de un promotor completamente
heterólogo (Kaufman, 2000). Algunos promotores bien conocidos y muy
usados para expresión de células eucarióticas comprenden promotores
derivados de virus, tales como adenovirus, por ejemplo, el promotor
E1A, promotores derivados de citomegalovirus (CMV), tales como el
promotor tempranamente inmediato CMV (IE) (referido en la presente
como el promotor CMV) (obtenible por ejemplo de pcADN, Invitrogen),
promotores derivados de Simian Virus 40 (SV40) (Das y colaboradores,
1985), y similares. Los promotores apropiados pueden ser también
derivados de células eucarióticas, tales como promotores
metalotioneina (MT), factor de elongación 1\alpha
(EF-1\alpha) (Gill y colaboradores, 2001),
promotor C o UB6 de ubiquitina (Gill y colaboradores, 2001; Schorpp
y colaboradores, 1997), promotor de actina, un promotor de
inmunoglobulina, promotores de choque de calor, y similares. Algunos
promotores preferidos para obtener la expresión en células
eucarióticas, tal como promotores apropiados en la presente
invención, son el promotor CMV, un promotor
EF1-alfa de mamífero, un promotor ubiquitina de
mamífero tal como un promotor de ubiquitina C, o un promotor SV40
(por ejemplo, obtenible de pIRES, cat. No. 631605, BD Sciences). La
evaluación para la función del promotor y tensión de un promotor es
una materia de rutina para una persona experta en la técnica, y en
general puede por ejemplo, abarcar la clonación de un gen de prueba
tal como lacZ, luciferasa, GFP, etc., junto con la secuencia
promotora, y la prueba para expresión del gen de prueba. Por
supuesto, los promotores pueden ser alterados por eliminación,
adición, mutación de secuencias ahí dentro, y ser evaluados para
funcionalidad, para encontrar secuencias promotoras nuevas,
atenuadas o mejoradas.
Un casete de expresión de acuerdo con la
invención puede ser monocistrónico, bicistrónico o multicistrónico.
El término "gen bicistrónico", se define como un gen capaz de
proporcionar una molécula de ARN que codifica dos
proteínas/polipéptidos. El término "gen monocistrónico" se
define como un gen capaz de proporcionar una molécula de ARN que
codifica una proteína/polipéptido. El término "multicistrónico"
se define como un gen capaz de proporcionar una molécula de ARN que
codifica dos o más proteínas/polipéptidos, y un gen bicistrónico
por lo tanto está abarcado dentro de la definición de un gen
multicistrónico. Un "gen" como se usa en la presente invención
puede comprender ADN cromosomal, cADN, ADN artificial, combinaciones
de estos, y similares, y también puede estar en la forma de otro
ácido nucleico, por ejemplo, ARN. En ciertas modalidades, una unidad
de expresión de proteína comprende un gen multicistrónico. Las
unidades que comprenden varios cistrones se pueden transcribir como
un ARNm único. La traslación de la segunda y más regiones de
codificación presentes en ese ARN se puede lograr en varias formas,
que incluyen el uso de sitios de reiniciación de traslación o sitios
de entrada de ribosoma interna, de los cuales el último es el
preferido. Una ventaja de las unidades bi- o
multi-cistrónicas puede ser una selección fácil de
clones que expresan una proteína de interés, mediante la colocación
del ácido nucleico que codifica una proteína marcadora
seleccionable en secuencia abajo de ácido nucleico que codifica
una proteína o polipéptido de interés.
Para la producción de proteínas multiméricas,
dos o más casetes de expresión se pueden usar. Esta modalidad ha
demostrado dar buenos resultados, por ejemplo, para la expresión de
la cadena pesada y ligera de anticuerpos. De acuerdo con la
invención, por lo menos uno de los casetes de expresión, pero
preferiblemente cada uno de ellos, debe comprender una secuencia
STAR. En otra modalidad, las subunidades diferentes o partes de una
proteína multimérica están presentes en un casete de expresión
sencillo.
En lugar de o además de la presencia de una
secuencia anti-represora colocada secuencia arriba
de un promotor en un casete de expresión, ha demostrado ser
altamente benéfico para proporcionar una secuencia
anti-represora en ambos lados de un casete de
expresión, de tal manera que el casete de expresión que comprende el
transgen está flanqueado por dos secuencias
anti-represoras, las cuales en ciertas modalidades
son esencialmente idénticas una a la otra. Por supuesto, también se
puede hacer con STAR67, para obtener un casete de expresión
flanqueado por dos secuencias STAR67. También son posibles las
posiciones alternativas de una secuencia STAR67 sencilla en un
casete de expresión, por ejemplo, detrás del transgen,
preferiblemente detrás de la terminación transcripcional y de la
señal de poliadenilación, con la terminación 3' de la secuencia
STAR67 enfrente del transgen.
Un casete de expresión de acuerdo con la
invención opcionalmente puede comprender un gen marcador de
selección. El término "marcador de selección o marcador
seleccionable" comúnmente se usa para referirse a un gen y/o
proteína cuya presencia puede ser detectable directa o
indirectamente en una célula, por ejemplo, un gen y/o una proteína
que inactiva un agente de selección y protege la célula hospedadora
de los efectos inhibidores de crecimiento o letales del agente (por
ejemplo, un gen y/o proteína de resistencia antibiótica). Otra
posibilidad es que el marcador de selección induce fluorescencia o
un depósito de color (por ejemplo, proteína fluorescente verde y
derivados, luciferasa, lacZ fosfatasa alcalina, etc.). En ciertas
modalidades, un marcador de selección usado para la invención es
zeocina, y para selección se usa un segundo casete de expresión
puromicina. La persona experta en la técnica conocerá que otros
marcadores de selección están disponibles y se pueden usar, por
ejemplo, neomicina, blasticidina, puromicina, bleomicina,
higromicina, dhfr, etc. El término "selección" comúnmente se
define como el proceso de uso de un marcador de selección/marcador
seleccionable y un agente de selección para identificar células
hospedadoras con propiedades genéticas específicas (por ejemplo, que
las células hospedadoras contienen un transgen integrado en su
genoma). Está claro para una persona experta en la técnica que
combinaciones numerosas de marcadores de selección son posibles. Un
ejemplo de un antibiótico posible se proporciona anteriormente. El
antibiótico que es particularmente ventajoso es zeocina, debido a
que la proteína de resistencia de zeocina
(zeocina-R) actúa por enlazamiento del fármaco y lo
vuelve a producir inocuo. Por lo tanto es fácil titular la cantidad
de fármaco que extermina células con niveles bajos de expresión de
zeocina-R, mientras que permite a los expresores
altos sobrevivir. Todas las otras proteínas de resistencia
antibiótica en uso común son enzimas, y así actúan catalíticamente
(no 1:1 con el fármaco). Cuando una selección de dos etapas se
realiza, es por lo tanto ventajoso usar una proteína de resistencia
antibiótica con ese modo de enlace 1:1 de acción. Por lo tanto, el
antibiótico zeocina es un marcador de selección preferido. Por
conveniencia el antibiótico zeocina puede en un método de selección
de dos etapas combinarse con, por ejemplo, puromicina, blasticidina
o higromicina, el cual puede por ejemplo estar presente en un gen
monocistrónico.
También es posible combinar un marcador de
selección antibiótico con un marcador de selección el cual
proporciona la inducción de fluorescencia o el cual proporciona un
depósito de color. Diferentes promotores se pueden usar mientras
que sean funcionales en las células usadas.
En ciertas modalidades un casete de expresión se
proporciona con un Sitio de Enlace de Ribosoma Interno (débil)
(IRES, por sus siglas en inglés) como un ejemplo de un sitio de
iniciación de traducción de proteína con una eficiencia de
traducción reducida, por ejemplo, entre la estructura de lectura
abierta de la proteína de interés y la estructura de lectura
abierta del marcador de selección. La traducción de proteínas de los
elementos IRES es menos eficiente que la traducción dependiente de
la capa: la cantidad de proteína de rangos de estructuras de
lectura abiertas dependientes de IRES (ORF) de menos que 20% hasta
50% de la cantidad del primer ORF (Mizuguchi y colaboradores,
2000). Además, la mutación de elementos IRES puede atenuar su
actividad, y disminuir la expresión de los ORF dependientes de IRES
a menos de 10% del primer ORF (López de Quinto &
Martínez-Salas, 1998, Rees y colaboradores, 1996).
Cuando el ORF dependiente de IRES codifica una proteína de marcador
seleccionable, su nivel relativo bajo de traducción significa que
los niveles absolutos altos de transcripción deben ocurrir con el
propósito de que la célula hospedadora recombinante sea
seleccionada. Por lo tanto, los aislados de células hospedadoras
recombinantes seleccionables expresarán, por necesidad, cantidades
altas del mARN de transgen. Puesto que la proteína recombinante se
traduce del ORF dependiente de la capa, se puede producir en
abundancia lo que resulta en rendimientos de producto altos.
Los sistemas de expresión convencionales son
moléculas de ADN en la forma de un plásmido recombinante o un
genoma viral recombinante. El plásmido o el genoma viral se
introducen en células (hospedadoras eucarióticas) y preferiblemente
se integra en sus genomas por métodos conocidos en la técnica. En
modalidades preferidas, la presente invención también usa estos
tipos de moléculas de ADN para suministrar su sistema de expresión
de transgen mejorado. Una modalidad preferida de la invención es el
uso de ADN de plásmido para suministro del sistema de expresión. Un
plásmido contiene un número de componentes: componentes
convencionales, conocidos en la técnica, son un origen de
replicación y un marcador seleccionable para propagación del
plásmido en células bacteriales; un marcador seleccionable que
funciona en células eucarióticas para identificar y aislar células
hospedadoras que portan un sistema de expresión de transgen
integrado; ácido nucleico que codifica la proteína de interés, cuya
transcripción de nivel alto se lleva por un portador que es
funcional en células eucarióticas (por ejemplo, el
promotor/mejorador inmediatamente temprano principal de
citomegalovirus humano, pCMV (Boshart y colaboradores, 1985); y
terminadores transcripcionales (por ejemplo, el sitio de
poliadenilación SV40 (Kaufman & Sharp, 1982) para el transgen
de interés y el marcador seleccionable. El vector usado puede ser
cualquier vector que es apropiado para ADN de clonación y que se
puede usar para transcripción de un ácido nucleico de interés.
Cuando las células hospedadoras se usan se prefiere que el vector es
un vector de integración. Alternativamente, el vector puede ser un
vector de replicación episomalmente.
Algunas representaciones esquemáticas sin
limitación de configuraciones posibles de casetes de expresión se
proporcionan en la Fig. 1. Esto es la configuración de los elementos
de ADN de los casetes de expresión en el plásmido además después de
integración en el genoma. El constructo A contiene una unidad de
expresión que abarca una estructura de lectura abierta que codifica
una proteína (Gene). Está en secuencia arriba del EMCV IRES
atenuado (Martínez-Salas y colaboradores, 1999;
Mizuguchi y colaboradores, 2000; Rees y colaboradores, 1996), y de
la estructura de lectura abierta que codifica la proteína marcadora
seleccionable de resistencia de zeocina (zeo). El casete de gen
tiene el terminador transcripcional SV40 en sus terminales 3' (t).
Este transgen bicistrónico se transcribe en niveles altos del
promotor CMV. El constructo B se deriva del constructo A, pero
STAR67 se clona ahora en secuencia arriba del promotor CMV. El
constructo C se deriva del contracto B, pero ahora dos elementos
anti-represores (en este caso STAR7) se clonan para
flanquear el casete completo.
Se muestra en la presente que la combinación de
un primer elemento anti-represor en secuencia arriba
de un promotor y que flanquea el casete de expresión por otras dos
secuencias anti-represoras proporciona resultados
superiores. En particular, cuando un promotor SV40 se usa en células
CHO, la expresión es todavía muy alta en la ausencia de secuencias
anti-represoras, pero es considerablemente mejorada
cuando STAR67 se coloca en secuencia arriba del promotor, y el
casete de expresión completo se flanquea por dos elementos
anti-represores, tal como STAR6, STAR7, o STAR
40.
Por lo tanto es un objetivo de la presente
invención proporcionar una molécula de ácido nucleico recombinante
que comprende un casete de expresión que comprende (desde 5' hasta
3'): secuencia anti-represora A - promotor -
ácido
nucleico que codifica una proteína de interés - secuencia anti-represora B, caracterizada en que el casete de expresión además comprende una secuencia anti-represora C entre las secuencias anti-represoras A y B. En una modalidad preferida, la secuencia anti-represora C está presente en secuencia abajo del promotor, en una configuración como se describe anteriormente bajo el encabezado "casete de expresión". El casete de expresión entre las secuencias anti-represoras A y B además pueden comprender los elementos como se describen anteriormente por los casetes de expresión, por ejemplo, secuencia terminador de transcripción, señal de poliadenilación, gen marcador de selección, mejorador, etc. y puede ser monocistrónico, bicistrónico o multicistrónico como se describe anteriormente. Dos o las tres secuencias anti-represoras A, B y C pueden ser las mismas, o las tres pueden ser diferentes. Las secuencias anti-represoras A y B pueden ser las mismas o diferentes de la secuencia anti-represora C. En ciertas modalidades, las secuencias anti-represoras A y B son (esencialmente) idénticas una a la otra. En una modalidad, la secuencia anti-represora C es STAR67, o un fragmento funcional o derivado de este. Las secuencias anti-represoras A y B pueden ser cualquier secuencia anti-represora, y en ciertas modalidades comprende una de SEQ. ID. Nos. 1-65, o fragmentos funcionales o derivados de esta. En ciertas modalidades, el casete de expresión contiene un gen multicistrónico, y en modalidades preferidas de esta el gen multicistrónico comprende una secuencia que codifica una proteína de interés y un gen marcador de selección. Alternativamente, un gen marcador de selección está presente bajo control de un promotor separado.
nucleico que codifica una proteína de interés - secuencia anti-represora B, caracterizada en que el casete de expresión además comprende una secuencia anti-represora C entre las secuencias anti-represoras A y B. En una modalidad preferida, la secuencia anti-represora C está presente en secuencia abajo del promotor, en una configuración como se describe anteriormente bajo el encabezado "casete de expresión". El casete de expresión entre las secuencias anti-represoras A y B además pueden comprender los elementos como se describen anteriormente por los casetes de expresión, por ejemplo, secuencia terminador de transcripción, señal de poliadenilación, gen marcador de selección, mejorador, etc. y puede ser monocistrónico, bicistrónico o multicistrónico como se describe anteriormente. Dos o las tres secuencias anti-represoras A, B y C pueden ser las mismas, o las tres pueden ser diferentes. Las secuencias anti-represoras A y B pueden ser las mismas o diferentes de la secuencia anti-represora C. En ciertas modalidades, las secuencias anti-represoras A y B son (esencialmente) idénticas una a la otra. En una modalidad, la secuencia anti-represora C es STAR67, o un fragmento funcional o derivado de este. Las secuencias anti-represoras A y B pueden ser cualquier secuencia anti-represora, y en ciertas modalidades comprende una de SEQ. ID. Nos. 1-65, o fragmentos funcionales o derivados de esta. En ciertas modalidades, el casete de expresión contiene un gen multicistrónico, y en modalidades preferidas de esta el gen multicistrónico comprende una secuencia que codifica una proteína de interés y un gen marcador de selección. Alternativamente, un gen marcador de selección está presente bajo control de un promotor separado.
En ciertas modalidades, una cuarta secuencia
anti-represora D puede estar presente entre las
secuencias A y B STAR. En una modalidad tal, la secuencia
anti-represora D está preferentemente posicionada
secuencia arriba del ácido nucleico que codifica la proteína de
interés. Nuevamente, esta secuencia anti-represora D
puede ser la misma o diferente de las otras secuencias
anti-represoras en la molécula de ácido nucleico
recombinante, puede ser cualquier secuencia
anti-represora, y en ciertas modalidades se
selecciona de cualquiera de SEQ. ID. NOs. 1-66, o
fragmentos funcionales o derivados de estas.
Como por lo menos algunas secuencias
anti-represoras puede ser direccional (WO
00/004704), las secuencias anti-represoras que
flanquean el casete de expresión (secuencias
anti-represoras A y B) se pueden colocar
beneficiosamente en dirección opuesta con respecto a la otra, tal
que la terminación 3' de cada una de estas secuencias
anti-represoras se enfrenta hacia dentro al casete
de expresión (y a cada otro). De ahí, en modalidades preferidas, el
lado 5' de un elemento anti-represor enfrenta el
ADN/cromatina del cual la influencia en el transgen está para ser
disminuido por el elemento anti-represor. Para una
secuencia anti-represora en secuencia arriba de un
promotor en un casete de expresión, la terminación de 3' enfrenta el
promotor. Las secuencias de los elementos
anti-represoras (SEQ. ID. Nos. 1-66)
en la lista de secuencia se dan en dirección 5' hasta 3', a menos
que se indique de otra manera.
Las moléculas de ácido nucleico que comprenden
secuencias STAR y/o casetes de expresión de acuerdo con la presente
invención se pueden usar para mejorar la expresión del ácido
nucleico, preferiblemente en células hospedadoras. Los términos
"célula"/"célula hospedadora" y "línea de
célula"/"línea de célula hospedadora" se definen comúnmente
respectivamente como una célula y poblaciones homogéneas de esta que
se pueden mantener en cultivo de célula por métodos conocidos en la
técnica, y que tienen la capacidad de expresar proteínas
heterólogas u homólogas. Una célula hospedadora de acuerdo con la
presente invención preferiblemente es una célula eucariótica, más
preferiblemente una célula mamífera, tal como una célula de roedor o
una célula de humano o fusión entre células diferentes. En ciertas
modalidades sin limitación, la célula hospedadora es un
osteosarcoma U-2 OS, CHO (ovario de hámster chino),
HEK 293, mieloma HuNS-1, retinoblastoma
WERI-Rb-1, BHK, Vero, mieloma de
ratón no secretor Sp2/0-Ag 14, mieloma de ratón sin
secreción NS0, carcinoma de glándula adrenal
NCI-H295R o una célula PER.C6®. En ciertas
modalidades de la invención, una célula hospedadora es una célula
que expresa por lo menos E1A, y preferiblemente también E1B, de un
adenovirus. Como ejemplos sin limitación, una célula tal se puede
derivar de, por ejemplo, células humanas, por ejemplo, de riñón
(ejemplo: células HEK 293, ver Graham y colaboradores, 1977),
pulmón (por ejemplo, A549, ver por ejemplo, WO 98/39411) o retina
(ejemplo: células HER marcada bajo la marca comercial PER.C6®, ver
la Patente de EUA No. 5,994,128), o de amniocitos (por ejemplo,
N52.E6, descritos en la Patente de EUA No. 6,558,948), y
similarmente de otras células. Los métodos para obtener las células
se describen por ejemplo, en la Patente de EUA No. 5,994,128 y la
Patente de EUA No. 6,558,948. Las células PER.C6® para el propósito
de la solicitud presente significan células de un paso en secuencia
abajo o secuencia arriba o un descendente de un paso en secuencia
abajo o secuencia arriba de células como se depositan bajo ECACC
no. 96022940. Previamente se ha mostrado que las células son
capaces de expresión de proteínas en niveles altos (por ejemplo, WO
00/63403), y Jones y colaboradores,
2003).
2003).
Las células hospedadoras que expresan la
proteína deseada de acuerdo con la invención se pueden obtener por
introducción de una molécula de ácido nucleico, preferiblemente en
la forma de un casete de expresión de acuerdo con la invención,
dentro de las células. En una modalidad alternativa, la secuencia
STAR67 se direcciona para integración en una región cromosomal para
mejorar la expresión de un gen de interés que ya está integrado
dentro del genoma, por ejemplo, un gen que ocurre naturalmente,
opcionalmente bajo control de un promotor heterólogo que fue
dirigido en secuencia abajo del gen para regular la expresión del
gen. Preferiblemente las células hospedadoras son de un clon
estable que se puede seleccionar y propagar de acuerdo con
procedimientos estándar conocidos para la persona experta en la
técnica. Un cultivo de tal clon es capaz de producir proteína
recombinante de interés. Las células de acuerdo con la invención
preferiblemente son capaces de crecer en cultivo de suspensión en
medio libre de suero.
Una proteína de interés de acuerdo con la
invención puede ser cualquier proteína, y puede ser una proteína
monomérica o una proteína multimérica. Una proteína multimérica
comprende por lo menos dos cadenas de polipéptido. Ejemplos sin
limitación de una proteína de interés de acuerdo con la invención
son enzimas, hormonas, cadenas de inmunoglobulina, proteínas
terapéuticas similares a proteínas anticáncer, proteínas de
coagulación de sangre tales como Factor VIII, proteínas
multifuncionales, tales como eritropoyetina, proteínas de
diagnóstico, o proteínas o fragmentos de estas útiles para
propósitos de vacunación, todas conocidas para la persona experta
en la técnica.
En ciertas modalidades, un casete de expresión
de la invención codifica una cadena pesada o ligera de
inmunoglobulina o un antígeno que enlaza parte, derivado y/o
análogo de éstas. En una modalidad preferida una unidad de expresión
de proteína de acuerdo con la invención se proporciona, en donde la
proteína de interés es una cadena pesada de inmunoglobulina. En
todavía otra modalidad preferida una unidad de expresión de proteína
de acuerdo con la invención se proporciona, caracterizada porque la
proteína de interés es una cadena ligera de inmunoglobulina. Cuando
estas dos unidades de expresión de proteína están presentes dentro
de la misma célula (hospedadora) una proteína multimérica y más
específicamente un anticuerpo se ensambla. De ahí, en ciertas
modalidades, la proteína de interés es una inmunoglobulina, tal
como un anticuerpo, la cual es una proteína multimérica.
Preferiblemente, un anticuerpo tal es un anticuerpo humano o
humanizado. En ciertas modalidades por lo tanto, es un anticuerpo
IgG, IgA, o IgM. Una inmunoglobulina puede ser codificada por las
cadenas pesadas y ligeras en diferentes casetes de expresión, o en
un casete de expresión simple, en donde el gen que codifica cada
cadena individual puede cada una estar bajo control de un promotor
separado en unidades de transcripción monocistrónicas, o
alternativamente ambas cadenas pueden ser codificadas en un gen
multicistrónico.
La proteína de interés puede ser de cualquier
fuente, y en ciertas modalidades es una proteína mamífera, una
proteína artificial (por ejemplo, una proteína de fusión o proteína
mutada), y preferiblemente es una proteína humana.
Obviamente, las secuencias y configuraciones
anti-represoras del casete de expresión de la
presente invención también se puede usar cuando el último objetivo
no es la producción de una proteína, pero el mismo ARN, por ejemplo
para la producción de cantidades aumentadas de ARN de un casete de
expresión, el cual se puede usar para propósitos de regulación de
otros genes (por ejemplo, ARNi, ARN antisentido), terapia de gen,
producción de proteína in vitro, etc.
En un aspecto, la invención proporciona un
método para expresar una secuencia de interés, preferiblemente que
codifica una proteína de interés, mediante proporcionar una célula
hospedadora con una molécula de ácido nucleico o casete de
expresión de acuerdo con la invención, que cultiva la célula y que
expresa la secuencia de interés.
El término "expresión" se usa comúnmente
para referirse a la producción de un producto o productos de ARN
específicos, o una proteína o proteínas específicas, en una célula.
En el caso de productos de ARN, se refiere al proceso de
trascripción. En el caso de productos de proteína, se refiere a los
procesos de transcripción, traducción y opcionalmente
modificaciones post-transcripcionales (por ejemplo,
glicosilación, formación de enlace de bisulfuro, etc.). En el caso
de proteínas secretadas, se refiere a los procesos de trascripción,
traducción, y opcionalmente modificación
post-transcripcional, seguida por secreción.
La introducción del ácido nucleico que se
expresa en una célula, se puede hacer por uno de varios métodos,
los cuales son conocidos para la persona experta en la técnica,
también dependiente del formato del ácido nucleico para ser
introducido. Los métodos incluyen pero no se limitan a transfección,
infección, inyección, transformación, y lo similar.
El cultivo de una célula se hace para hacer
posible metabolizar, y/o crecer y/o dividir y/o producir proteínas
recombinantes de interés. Esto se puede lograr por métodos bien
conocidos para personas expertas en la técnica, e incluye pero no
se limita a proporcionar nutrientes para la célula. Los métodos
comprenden crecimiento que adhieren a superficies, crecimiento en
suspensión, o combinaciones de estos. El cultivo se puede hacer por
ejemplo, en platos, botellas de rodillo o en birreactores, que usan
lotes, lotes de alimentación, sistemas continuos tales como
sistemas de perfusión, y lo similar. Con el propósito de lograr
producción a gran escala (continua) de proteínas recombinantes a
través de cultivo de célula se prefiere en la técnica tener células
capaces de crecer en suspensión, y se prefiere tener células capaces
de ser cultivadas en la ausencia de suero derivado de animal o
humano o componentes de suero derivado de animal o humano.
Las condiciones para crecimiento o
multiplicación de células (ver por ejemplo, Tissue Culture, Academic
Press, Kruse y Paterson, editores (1973)) y las condiciones para
expresión del producto recombinante se conocen para la persona
experta en la técnica. En general, los principios, protocolos, y
técnicas parciales para maximizar la productividad de los cultivos
de célula mamífera se pueden encontrar en Mammalian Cell
Biotechnology: a Practical Approach (M. Butler, ed., IRL Press,
1991). En una modalidad preferida, la proteína expresada se
recolecta (aísla), ya sea de las células o del medio de cultivo o de
ambos. Entonces se puede purificar además usando métodos conocidos,
por ejemplo, filtración, cromatografía de columna, etc., por métodos
generalmente conocidos para la persona experta en la técnica.
La presente invención describe un método
novedoso para la generación de células hospedadoras que expresan
dos polipéptidos de interés cuyo método da un resultado
sorprendentemente bueno, en que casi nada o ninguna colonia aparece
sin el uso de una secuencia anti-represora, mientras
que la presencia de una secuencia anti-represora
conduce a los clones que sobreviven a la selección, y estos clones
en general expresan dos polipéptidos de interés en niveles elevados
(ejemplo 7, Fig. 11). La invención por lo tanto proporciona un
método para la generación de una célula hospedadora que expresa dos
polipéptidos de interés, el método comprende: a) introducir en una
célula hospedadora una o más moléculas de ácido nucleico, la
molécula o moléculas de ácido nucleico juntas comprenden: (i) un
promotor ligado funcionalmente a una secuencia que codifica un
primer polipéptido de interés y un primer gen de marcador de
selección y (ii) un promotor ligado funcionalmente a una secuencia
que codifica un segundo polipéptido de interés y un segundo marcador
de selección y (iii) al menos una secuencia
anti-represora, elegida del grupo que consiste de
(a) cualquiera de SEQ. ID. NO. 1-66, (b) fragmentos
de cualquiera de SEQ. ID. NOs. 1-66, los fragmentos
tienen actividad anti-represora, (c) secuencias que
son al menos 70% idénticas a (a) o (b) y que tienen actividad
anti-represora y (d) el complemento de cualquiera de
(a)-(c); b) seleccionar una célula hospedadora al seleccionar
esencialmente de forma simultanea la expresión del primero y
segundo genes marcadores de selección. Las células hospedadoras
seleccionadas se pueden usar convenientemente para la expresión de
los dos polipéptidos al cultivar las células hospedadoras
seleccionadas. En una modalidad, dos moléculas de ácidos nucleicos,
una que contiene (i) y la otra que contiene (ii), se usan para la
introducción en la célula hospedadora. En esta modalidad, cada
molécula de ácido nucleico contiene preferiblemente al menos una
secuencia anti-represora. En otra modalidad, una
molécula de ácido nucleico sencilla que contiene a (i) y (ii) se
usa, la cual debe al menos contener una secuencia
anti-represora. Una ventaja de tener las secuencias
codificadoras para ambos polipéptidos en una molécula sencilla de
ácido nucleico es que solamente una preparación de ácido nucleico
se requiere antes de que se introduzca el ácido nucleico en las
células. Adicionalmente, en tal modalidad, es suficiente un evento
de integración sencillo para las secuencias codificadoras de ambos
polipéptidos con lo cual se elimina la posibilidad de que el ácido
nucleico que codifica al primer polipéptido se integre en una
ubicación diferente o con un número de copias diferentes que el que
codifica al segundo polipéptido. En modalidades preferidas, los dos
polipéptidos pueden formar parte de una proteína multimérica, tal
como una inmunoglobulina. Por lo tanto el método es particularmente
adecuado para la expresión de anticuerpos. Los dos promotores
pueden ser iguales o diferentes y pueden ser cualesquiera promotores
como se describe supra. Cuando la modalidad en una molécula
sencilla de ácido nucleico que contiene ambos (i) y (ii) se usa, la
dirección de las dos unidades de transcripción en la molécula
sencilla de ácido nucleico pueden ser por ejemplo, ser ambos
mismos, o en direcciones opuestas de cara uno con el otro, o en
direcciones opuestas cada uno seleccionando afuera. En el último
caso, se puede colocar la secuencia anti-represora
entre los dos promotores (ver por ejemplo, Fig. 11B). Además, se
pueden agregar secuencias anti-represoras al flanco
de una o ambas unidades de transcripción. Los genes marcadores
deben ser cada uno diferente y se pueden seleccionar por ejemplo de
los genes marcadores como se describen supra. En ciertas
modalidades, un marcador de selección es zeocina, y el otro
marcador de selección es, por ejemplo, puromicina. Sin embargo,
estará claro que otras combinaciones se pueden usar y están dentro
del alcance de este aspecto de esta invención. La expresión de los
marcadores debe ser preferiblemente dependiente de la expresión de
los polipéptido de interés. Esto se puede establecer al ligar la
expresión de los genes marcadores con aquella de los polipéptidos de
interés, por ejemplo, al usar genes multicistrónicos, por ejemplo,
con secuencias IRES, como se discute supra. La selección
"esencialmente simultanea" significa que al menos parte del
tiempo preferiblemente al menos un día, más preferiblemente al
menos dos días, todavía más preferiblemente al menos 5 días, ambos
agentes de selección están presentes lo cual se puede generar al
tener ambos agentes de selección agregados al medio de cultivo al
mismo tiempo o agregando al medio de cultivo que comprende ambos
agentes de selección (por ejemplo, ejemplo 7). Estará claro que al
agregar el segundo agente de selección solamente después de unas
cuantas horas o días al medio en donde ya esta presente el primer
agente de selección, resultará todavía en una selección,
esencialmente simultanea dentro del significado de la invención.
Esta situación se distingue de la situación en donde las células se
selecciona primero con el primer agente de selección y una vez que
se forman las colonias las células se seleccionan en un modo medio
por el cual el segundo agente de selección y no el primer agente de
selección sean agregado (selección consecutiva, por ejemplo,
ejemplo 5 y WO 03/106684). Al seleccionar ambos marcadores de
selección esencialmente de manera simultánea, se describe en la
presente sorprendentemente que se suministra una selección rápida y
fuerte por lo cual muchos clones de baja producción se eliminan, lo
que resulta en una carga fuertemente disminuida para encontrar un
clon con características deseables de expresión. Esto es
particularmente ventajoso para la industria biotecnológica, en
donde muchos usualmente cientos o incluso miles de colonias sean
seleccionadas antes de que se identifique un clon deseado que tenga
altos niveles de expresión.
La práctica de esta invención empleara a menos
de que se indique de otra manera técnicas convencionales de
inmunología, biología molecular, microbiología, biología celular y
ADN recombinante, las cuales están dentro de la experiencia en la
técnica. Ver por ejemplo, Sambrook, Fritsch y Maniatis, Molecular
Cloning: A Laboratory Manual, 2ª edición, 1989; Current Protocols
in Molecular Biology, Ausubel FM, y colaboradores, eds, 1987; the
series Methods in Enzymology (Academic Press, Inc.); PCR2: A
Practical Approach, MacPherson MJ, Hams BD, Taylor GR, eds, 1995;
Antibodies: A Laboratory Manual, Harlow y Lane, eds, 1988.
La invención se explica además en los siguientes
ejemplos. Los ejemplos no limitan la invención de ninguna manera.
Estos sirven meramente para clarificar la invención.
\vskip1.000000\baselineskip
Una secuencia anti-represora
novedosa se aísla usando una selección genética como se describe en
WO 03/004704, y esta secuencia novedosa se acuño como STAR67 (SEQ.
ID. NO. 66). Los efectos de STAR67 en la expresión de los
transgenes en las líneas celulares de mamíferos se probaron. Aquí se
describe la construcción de los diversos constructos.
\vskip1.000000\baselineskip
Tres plásmidos se crearon (Fig. 1):
- A)
- CMV-d2EGFP-ires-Zeo (CMV Control),
- B)
- STAR67-CMV-d2EGFP-ires-Zeo (CMV-STAR67),
- C)
- STAR7-STAR67-CMV-d2EGFP-ires-Zeo-STAR7 (CMV-STAR67 7/7)
\vskip1.000000\baselineskip
La construcción del constructo A se describe a
continuación. El plásmido pd2EGFP (Clontech 6010-1)
se modificó por inserción de una ligadura en el sitio BsiWI
para producir la ligadura pd2EGFP. La ligadura hecha al combinar
los oligonucleótidos GTACGGATATCAGATCTTTAATTAAG (SEQ. ID. NO. 67) y
GTACCTTAATTAAA
GATCTGATAT (SEQ. ID. NO. 68), introdujo los sitios para las endonucleasas de restricción PacI, BglII, y EcoRV. Se creó el sitio de clonación múltiple MCSII para la inserción de los elementos STAR. Luego los cebadores GATCA
GATCTGGCGCGCCATTTAAATCGTCTCGCGCGTTTCGGTGATGACGG (SEQ. ID. NO. 69) y AGGCGGATCC
GAATGTATTTAGAAAAATAAACAAATAGGGG (SEQ. ID. NO. 70) se usaron para amplificar una región de 0.37 kb desde pd2EGFP, la cual se insertó dentro del sitio BglII de pIRES (Clontech 6028-1) para producir el pIRES-stuf. Estos introducen sitios para las endonucleasas de restricción AscI y SwaI en MCSI, y actúan como un "fragmento de relleno)" para evitar la interferencia potencial con los elementos STAR y los promotores adyacentes. pIRES-stuf se digirió con BglII y FspI para liberar el fragmento de ADN compuesto del fragmento más firme, el promotor CMV, el elemento IRES (flanqueado por sitio de clonación múltiples MCS A y MCS B), y la señal de poliadenilación SV40. Este fragmento se ligó con la columna del vector de la ligadura pd2EGFP producida por digestión con BamHI y StuI, para producir la ligadura pIRES.
GATCTGATAT (SEQ. ID. NO. 68), introdujo los sitios para las endonucleasas de restricción PacI, BglII, y EcoRV. Se creó el sitio de clonación múltiple MCSII para la inserción de los elementos STAR. Luego los cebadores GATCA
GATCTGGCGCGCCATTTAAATCGTCTCGCGCGTTTCGGTGATGACGG (SEQ. ID. NO. 69) y AGGCGGATCC
GAATGTATTTAGAAAAATAAACAAATAGGGG (SEQ. ID. NO. 70) se usaron para amplificar una región de 0.37 kb desde pd2EGFP, la cual se insertó dentro del sitio BglII de pIRES (Clontech 6028-1) para producir el pIRES-stuf. Estos introducen sitios para las endonucleasas de restricción AscI y SwaI en MCSI, y actúan como un "fragmento de relleno)" para evitar la interferencia potencial con los elementos STAR y los promotores adyacentes. pIRES-stuf se digirió con BglII y FspI para liberar el fragmento de ADN compuesto del fragmento más firme, el promotor CMV, el elemento IRES (flanqueado por sitio de clonación múltiples MCS A y MCS B), y la señal de poliadenilación SV40. Este fragmento se ligó con la columna del vector de la ligadura pd2EGFP producida por digestión con BamHI y StuI, para producir la ligadura pIRES.
La estructura de lectura abierta del gen
resistente a la zeocina se insertó en los sitios
BamHI/NotI en secuencia abajo de pIRES como sigue: El
ORF resistente a la zeocina se amplificó por PCR con los cebadores
GATCGGATCCTTC
GAAATGGCCAAGTTGACCAGTGC (SEQ. ID. NO. 71) y AGGCGCGGCCGCAATTCTCAGTCCTGCTCCTC (SEQ. ID. NO. 72) a partir del plásmido pCMV/zeo (Invitrogen, cat.no. V50120), digerido con BamHI y NotI, y ligado con la ligadura BamHI/NotI digerida por pIRES para producir el pIRES-link-zeo. LA ORF reportera de d2EGFP se introdujo en pIRES-link-zeo por amplificación de pd2EGFP (Clontech 6010-1) con los cebadores GATC
GAATTCTCGCGAATGGTGAGCAAGCAGATCCTGAAG (SEQ. ID. NO. 73) y AGGCGAATTCACCGGTGTT
TAAACTTACACCCACTCGTGCAGGCTGCCCAGG (SEQ. ID. NO. 74), y la inserción del casete EcoRI digerido con d2EGFP en el sitio EcoRI en el plásmido pIRES-link-zeo. Esto creó el constructo A, CMV-d2EGFP-IRES-Zeo (CMV Control).
GAAATGGCCAAGTTGACCAGTGC (SEQ. ID. NO. 71) y AGGCGCGGCCGCAATTCTCAGTCCTGCTCCTC (SEQ. ID. NO. 72) a partir del plásmido pCMV/zeo (Invitrogen, cat.no. V50120), digerido con BamHI y NotI, y ligado con la ligadura BamHI/NotI digerida por pIRES para producir el pIRES-link-zeo. LA ORF reportera de d2EGFP se introdujo en pIRES-link-zeo por amplificación de pd2EGFP (Clontech 6010-1) con los cebadores GATC
GAATTCTCGCGAATGGTGAGCAAGCAGATCCTGAAG (SEQ. ID. NO. 73) y AGGCGAATTCACCGGTGTT
TAAACTTACACCCACTCGTGCAGGCTGCCCAGG (SEQ. ID. NO. 74), y la inserción del casete EcoRI digerido con d2EGFP en el sitio EcoRI en el plásmido pIRES-link-zeo. Esto creó el constructo A, CMV-d2EGFP-IRES-Zeo (CMV Control).
STAR67 se clonó secuencia arriba del promotor
CMV, en el sitio AscI (alrededor de 15 nucleótidos permanecen entre
STAR67 y el promotor). Esto creo el constructo B,
STAR67-CMV-d2EGFP-ires-Zeo
(CMV-STAR67).
STAR67 también se probó en el contexto de un
casete que contiene también el STAR7 (SEQ. ID. NO. 7), se clonó
direccionalmente en los sitio 5' SalI y XbaI y los sitios 3' BglII y
PacI para flanquear el casete completo con STAR7. Este es el
constructo C (CMV-STAR67 7/7).
Se probó si la presencia de STAR67 adyacente a
los promotores CMV, EF1\alpha y UB6 tiene influencia en el nivel
de expresión de estos promotores en las células CHO. Los constructos
A y B (Fig. 1) descritos en el Ejemplo 1 se usan para este
propósito modificados por los promotores respectivos:
- 1
- CMV-d2EGFP-ires-Zeo (CMV Control)
- 2
- STAR67-CMV-d2EGFP-ires-Zeo (CMV-STAR67)
- 3
- EF1\alpha-d2EGFP-ires-Zeo (EF1\alpha Control)
- 4
- STAR67-EF1\alpha-d2EGFP-ires-Zeo (EF1\alpha-STAR67)
- 5
- UB6-d2EGFP-ires-Zeo (UB6 Control)
- 6
- STAR67-UB6-d2EGFP-ires-Zeo (UB6-STAR67).
\vskip1.000000\baselineskip
Los promotores UB6 y EF1\alpha se
intercambiaron por el promotor CMV en los plásmidos descritos en la
figura 1. El promotor UB6 se clonó como sigue. Un ADN de relleno
0.37 kb a partir del plásmido pd2EGFP se amplificó por PCR, como se
describe por el ejemplo 1, usando los cebadores ejemplificados por
SEQ. ID. NOs. 69 y 70. El ADN de relleno, resultante se clonó en el
sitio BglII de pUB6/V5-His [Invitrogen
V250-20], creando pUB6-stuf. A
partir de pUB6-stuf se clonó un fragmento de
AscI-SacI dentro del
CMV-d2EGFP-IRES-Zeo,
a partir del cual se removió el promotor CMV.
El promotor EF1\alpha se amplificó por PCR con
pEF1\alpha/V5-His [Invitrogen
V920-20] como plantilla, usando los cebadores
GATCGGCGCGCCATTTAAATCCGAAAAGTGCCACCTGACG (SEQ. ID. NO. 79) y
AGGCGGGACCCCC
TCACGACACCTGAAATGGAAG (SEQ. ID. NO. 80). El fragmento PCR se clonó en los sitios AscI y PpuMI del CMV-d2EGFP-IRES-Zeo, a partir del cual se removió el promotor CMV.
TCACGACACCTGAAATGGAAG (SEQ. ID. NO. 80). El fragmento PCR se clonó en los sitios AscI y PpuMI del CMV-d2EGFP-IRES-Zeo, a partir del cual se removió el promotor CMV.
La línea celular de ovario de hámster chino
CHO-K1 (ATCC CCL-61) se cultivo en
un medio HAMS-F12 + 10% de suero de ternera fetal
que contiene 2 mM glutamina, 100 U/ml penicilina y 100
microgramos/ml estreptomicina a 37ºC/5% de CO_{2}. Las células se
transfectaron con los plásmidos usando SuperFect (QIAGEN) como se
describe por el fabricante. Brevemente, se sembraron las células en
recipientes de cultivo y se hicieron crecer durante la noche hasta
70-90% de confluencia. Se combinó el reactivo
SuperFect con el ADN del plásmido a una relación de 6 microlitros
por microgramo (por ejemplo, para una caja petri de 10 cm, 20
microgramos de ADN y 120 microlitros de SuperFect) y se agregó a
las células. Después de la incubación durante la noche, se reemplazó
la mezcla de transfección con medio fresco y se incubaron las
células transfectadas además. Después de un cultivo durante la
noche, se trataron con tripsina las células y se sembraron en vasos
de cultivo frescos con medio fresco. Después de otra incubación
durante la noche, se agregó zeocina a una concentración de 50
\mug/ml y se cultivaron además las células. Después de otros tres
días, se reemplazó el medio fresco que contiene zeocina (100
\mug/ml) y se cultivaron además. Cuando se hicieron visibles las
colonias individuales (aproximadamente 10 días después de la
transfección) se removió el medio y se reemplazó con medio fresco
sin zeocina. Se aislaron los clones individuales y se transfirieron
a placas de 24 pozos en medio sin zeocina. Un día después del
aislamiento de las colonias se agregó zeocina al medio. La
expresión del gen reportero d2EGFP se evaluó aproximadamente 3
semanas después de la transfección. Los niveles de expresión d2EGFP
en las colonias se midieron después de periodos de dos semanas.
Después de las dos semanas iniciales posteriores a la transfección
cuando se efectuaron las primeras mediciones de d2EGFP, las
colonias se cultivaron en medio sin zeocina u otros antibióticos.
Esto continuó por el resto del experimento.
\vskip1.000000\baselineskip
La figura 2 muestra que la transfección del
constructo que contiene el STAR67 clonado secuencia arriba del
promotor CMV resultó en diversas colonias de CHO que expresan
niveles significativamente superiores de la proteína d2EGFP en
comparación con el control "vacío" sin STAR67, control CMV. El
promedio de la señal de d2EGFP en las 10 colonias transfectadas con
el plásmido de control CMV fue de 34, cuando se miden 25 días
después de la transfección. 60 días después de la transfección el
promedio de la señal de d2EGFP en estas 10 colonias se redujo a 13
lo que indica que la expresión no es estable con el tiempo. En
comparación, el promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias
transfectadas con el plásmido STAR67-CMV fue de 42
cuando se mide después de 25 días y de 32 medidas 60 días después
de la transfección. Así 60 días después de la transfección, un
constructo de CMV que abarca STAR67 transmite un factor de 2.5
superior al promotor CMV que impulsa el nivel de expresión de la
proteína reportera en los clones transfectados de manera estable. De
manera importante, 25 días después de la transfección después de la
primera medición, se retiró la presión de selección al cultivar las
colonias en medio sin zeocina. Así, las colonias que contienen el
constructo STAR67 son más estables con el tiempo en la ausencia de
la presión de selección que las colonias que no contienen un
constructo de STAR67.
La figura 3 muestra que la transfección del
constructo que contiene STAR67 clonado secuencia arriba del promotor
EF1\alpha resulto en diversas colonias de CHO que expresan
niveles significativamente superiores de la proteína d2EGFP en
comparación con el control "vacío" sin STAR67, control
EF1\alpha. El promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias
transfectadas con el plásmido de control EF1\alpha fue de 31,
cuando se mide 25 días después de la transfección. 60 días después
de la transfección el promedio de la señal d2EGFP en estas 10
colonias fue de 26. En comparación, el promedio de la señal d2EGFP
en las 10 colonias transfectadas con el plásmido
EF1\alpha-STAR67 fue de 60 cuando se mide después
de 25 días y 76 cuando se mide 60 días después de la transfección.
Así, ambos después de 25 y 60 días después de la transfección, un
constructo STAR67 que abarca EF1\alpha transmitió un factor de
2.9 superior al nivel de expresión impulsado por el promotor
EF1\alpha de la proteína reportera en clones transfectados de
manera estable.
La figura 4 muestra que la transfección del
constructo que contiene el STAR67 clonado cadena arriba del promotor
UB6 resulta en diversas colonias de CHO que expresan niveles
significativamente superiores de la proteína d2EGFP, en comparación
con el control "vacío" sin STAR67, control UB6. El promedio de
la señal d2EGFP en las 10 colonias transfectadas con el plásmido de
control UB6 fue de 51 cuando se mide 25 días después de la
transfección. 60 días después de la transfección el promedio de la
señal d2EGFP en estas 10 colonias fue de 29, lo que indica que la
expresión no estuvo estable con el tiempo. En comparación, el
promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias transfectadas con el
plásmido UB6-STAR67 fue de 218 cuando se mide
después de 25 días y 224 medida 60 días después de la transfección.
Así, 25 días después de la transfección un constructo de UB6 que
abarca STAR67 transmitió un factor de 4.3 mayor que el nivel de
expresión impulsado por el promotor UB6 de la proteína reportera en
clones transfectados de manera estable. Después de 60 días, este
factor fue de 7.7, debido a la inestabilidad de la expresión en las
colonias de control y la estabilidad en las colonias de
UB6-STAR67. De manera importante, 25 días después
de la transfección, después de la primera medición, se removió la
presión de selección al cultivar las colonias en un medio sin
zeocina. Así, las colonias que contienen el constructo de STAR67
son más estables con el tiempo en la ausencia de la presión de
selección que las colonias que no contienen un constructo de
STAR67.
En conclusión, STAR67 incrementa la expresión de
tres diferentes promotores, no relacionados.
Se probó si la presencia de STAR67 adyacente de
los promotores CMV, EF1\alpha y UB6 tiene influencia en el nivel
de expresión de estos promotores en otro tipo celular que las
células CHO, en particular las células PER.C6 humanas. Se usaron
los mismos constructos como en el ejemplo 1.
Las células PER.C6® se cultivaron en medio DMEM
+ piridoxina + suero de ternera fetal al 9% (no inactivado con
calor), 8.9 mM MgCl_{2} 100 U/ml penicilina y 100 microgramos/ml
estreptomicina a 37ºC/10% CO_{2}. Las células se transfectaron
con los plásmidos usando Lipofectamina 2000 (Invitrogen) como se
describe por el fabricante. Brevemente, se sembraron las células a
los 6 pozos y crecieron durante la noche hasta
70-90% de confluencia. Se combinó el reactivo de
lipofectamina con el ADN del plásmido a una relación de 15
microlitros por 3 microgramos (por ejemplo, para una caja petri de
10 cm, 20 microgramos de ADN y 120 microlitros de Lipofectamina) y
se agregó después de 30 minutos de incubación a 25ºC a las células.
Después de una incubación por 6 horas, se reemplazó la mezcla de
transfección con medio fresco y se incubaron además las células
transfectadas. Después de un cultivo durante la noche, se trataron
con tripsina las células y se sembraron (diluciones de 1:15, 1:30,
1:60, 1:120) en cajas de petri frescas (90 mm) con medio fresco con
zeocina agregado a una concentración de 100 \mug/ml y las células
se cultivaron además. Cuando se hicieron visibles las colonias, se
aislaron los clones individuales al raspar y transferir a placas de
24 pozos en medio con zeocina. Cuando se hicieron crecer hasta una
confluencia de \sim70%, se transfirieron las células a placas de 6
pozos. Se expandieron las colonias estables durante 2 semanas en
placas de 6 pozos antes de que se determinara la señal d2EGFP en un
citómetro de flujo XL-MCL Beckman Coulter. La media
de la señal d2EGFP se tomó como medida para el nivel de expresión
de d2EGFP. Se midieron las colonias por una segunda vez después de 2
semanas. Posteriormente se cultivaron además las colonias en
ausencia de zeocina.
La figura 5 muestra que la transfección del
constructo que contiene STAR67 clonado cadena arriba del promotor
CMV resulta en diversas colonias PER.C6 que expresan
significativamente niveles superiores de la proteína d2EGFP, en
comparación con el control "vacío" sin STAR67, control CMV. El
promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias transfectadas con el
plásmido de control CMV fue de 37, cuando se mide 30 días después de
la transfección. 60 días después de la transfección el promedio de
la señal d2EGFP en estas 10 colonias se redujo a 14, lo que indica
que la expresión no estuvo estable durante el tiempo. En
comparación, el promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias
transfectadas con el plásmido STAR67-CMV fue de 101
cuando se mide después de 30 días y 45 cuando se mide 60 días
después de la transfección. Así 60 días después de la transfección,
un constructo CMV que abarca STAR67 transmitió un factor de 3.2
superior al nivel de expresión impulsado por el promotor CMV de la
proteína reportera en clones transfectados de manera estable.
La figura 6 muestra que la transfección del
constructo que contiene STAR67 clonado cadena arriba del promotor
EF1\alpha resulto en un número de colonia PER.C6 que expresan
niveles significativamente superiores que la proteína d2EGFP cuando
se comparan con el control "vacío" sin STAR67, control
EF1\alpha. El promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias
transfectadas con el plásmido de control EF1\alpha fue de 5,
cuando se mide 30 días después de la transfección. 60 días después
de la transfección el promedio de la señal d2EGFP en estas 10
colonias fue de 6. En comparación, el promedio de la señal d2EGFP en
las 10 colonias transfectadas con el plásmido
EF1\alpha-STAR67 fue de 25 cuando se mide después
de 30 días y 20 cuando se mide 60 días después de la transfección.
Así, tanto después de 30 y de 60 días después de la transfección, un
constructo de EF1\alpha que abarca STAR67 transmitió un factor 4
veces mayor que el nivel de expresión impulsado por el promotor
EF1\alpha de la proteína reportera en clones transfectados de
manera estable.
La figura 7 muestra que la transfección del
constructo que contiene STAR67 clonado cadena arriba del promotor
UB6 resulto en un número de colonias PER.C6 que expresan niveles
significativamente superiores de la proteína d2EGFP, en comparación
con el control "vacío" sin STAR67, control UB6. El promedio de
la señal d2EGFP en las 10 colonias transfectadas con el plásmido de
control UB6 fue de 4, cuando se mide 30 días después de la
transfección. 60 días después de la transfección, el promedio de la
señal d2EGFP en estas 10 colonias fue de 2. En comparación, el
promedio de la señal d2EGFP en las 10 colonias transfectadas con el
plásmido US6-STAR67 fue de 27 cuando se mide
después de 30 días y de 18 cuando se mide 60 días después de la
transfección. Así, tanto después de 30 y 60 días después de la
transfección, un constructo UB6 que abarca STAR67 transmitió un
factor de 7 a 9 veces mayor que el nivel de expresión impulsado por
el promotor UB6 de la proteína reportera en clones transfectados de
manera estable.
Así, al colocar STAR67 cadena arriba del
promotor resultó en niveles de expresión de proteína
significativamente mayores en comparación con los constructos de
menos de STAR67, también en las células PER.C6. Así, STAR67
funciona en tipos de célula no relacionados diferentes.
Se probó si la presencia de STAR67 adyacente del
promotor SV40 tiene influencia en el nivel de expresión de este
promotor ya sea solo o en combinación con otro elemento
anti-represor en este ejemplo STAR7. Los constructos
que se usaron para este propósito (ver Fig. 8), son:
- 1
- SV40-d2EGFP-ires-Zeo (control SV40)
- 2
- STAR67-SV40-d2EGFP-ires-Zeo (SV40-STAR67)
- 3
- STAR7-SV40-d2EGFP-ires-Zeo-STAR7 (SV40-STAR7/7)
- 4
- STAR7-STAR67-SV40-d2EGFP-ires-Zeo-STAR7 (SV40-STAR67 7/7)
El promotor SV40 se amplificó por PCR con pIRES
como plantilla usando los cebadores TTGGTTGGGGCGCGC
CGCAGCACCATGGCCTGAAATAACCTCTGAAAGAGG (SEQ. ID. NO. 81) y TTGGTTGGGAGCTCAAGCTTT
TTGCAAAAGCCTAGGCCTCCAAAAAAGCCTCCTC (SEQ. ID. NO. 82). El fragmento PCR se clonó en los sitios AscI y SacI de CMV-d2EGFP-IRES-Zeo, a partir de los cuales se removió el promotor CMV. Las células CHO se transfectaron, se aislaron las colonias y se propagaron y se analizaron como en el ejemplo 2.
CGCAGCACCATGGCCTGAAATAACCTCTGAAAGAGG (SEQ. ID. NO. 81) y TTGGTTGGGAGCTCAAGCTTT
TTGCAAAAGCCTAGGCCTCCAAAAAAGCCTCCTC (SEQ. ID. NO. 82). El fragmento PCR se clonó en los sitios AscI y SacI de CMV-d2EGFP-IRES-Zeo, a partir de los cuales se removió el promotor CMV. Las células CHO se transfectaron, se aislaron las colonias y se propagaron y se analizaron como en el ejemplo 2.
La figura 8 muestra que la transfección del
constructo que contiene ya sea STAR67 clonado cadena arriba del
promotor SV40 (SV40-STAR67) o STAR7 clonado en el
flanco del constructo completo (SV40-STAR 7/7) no
resultó en colonias de CHO que expresen niveles significativamente
mayores que la proteína d2EGFP, en comparación con el control
"vacío" sin los elementos anti-represores
(control SV40). El promedio de la señal d2EGFP en las 18 colonias
transfectadas con el plásmido de control SV40 fue de 86, cuando se
mide 40 días después de la transfección. En comparación, el
promedio de la señal d2EGFP en las 18 colonias transfectadas con el
plásmido SV40-STAR67 fue de 82 cuando se mide
después de 40 días y el promedio de la señal d2EGFP en las 18
colonias transfectadas con el plásmido SV40-STAR
7/7 fue de 91 cuando se mide después de 40 días. Así, no se observó
ningún efecto importante de estos elementos
anti-represores sobre el promotor SV40 en las
células CHO.
Parece que los niveles de expresión del promotor
SV40 en estas células ya son bastante altos e incluso mucho mayores
que aquellos observados con el promotor CMV, el cual se consideró
que era un promotor muy fuerte. Esta alta expresión del respaldo en
ausencia de un elemento anti-represor usando el
promotor SV40 en las células CHO, puede expresar por que no se
observo ningún efecto importante del STAR6 solo o del STAR7 que
flanquea al transgen.
Sin embargo, el promedio de la señal d2EGFP en
las 18 colonias transfectadas con el plásmido
SV40-STAR67 7/7 fue de 209 cuando se mide después
de 40 días de colonias, el cual es un factor de 2.4 mayor que el
promedio de las 18 colonias de (86). Así, cuando el elemento STAR67
se usa en combinación con otro elemento
anti-represor, esto resulta en diversas colonias
CHO transfectadas de manera estable que muestran niveles de
expresión d2EGFP significativamente mayores.
Por lo tanto en esta configuración novedosa
(5'-STAR secuencia A - STAR secuencia C - promotor -
ácido nucleico que codifica una proteína de interés - STAR
secuencia B - 3', en donde en el ejemplo actual las secuencias STAR
A y B son la secuencia STAR 7 y STAR C es STAR67) los elementos STAR
parecen funcionar incluso mejor que en las configuraciones hasta
ahora descritas.
Se han hecho experimentos en los cuales los
elementos de flanqueo STAR7 se reemplazaron por el STAR6 de
elementos de flanqueo (SEQ. ID. NO. 6) o elementos de flanqueo
STAR4 (SEQ. ID. No. 4), en combinación con el STAR67 cadena arriba
del promotor SV (SV40-STAR67 6/6 y
SV40-STAR67 4/4, respectivamente, al usar la misma
nomenclatura como anteriormente) y se observó la expresión mejorada
también con estas combinaciones. Esto prueba que los elementos de
flanqueo STAR7 se pueden intercambiar por otras secuencias STAR, y
todavía la mejora de la configuración novedosa del casete de
expresión con las secuencias STAR se observa.
En el ejemplo 4, se mostró que la combinación de
STAR67 y STAR7 potenció los niveles de expresión de la proteína
d2EGFP en células CHO. Aquí se probó si la combinación de STAR67 y
STAR7 se puede usar para la producción de un anticuerpo. Se escogió
un anticuerpo contra la molécula EpCAM (Huls y colaboradores, 1999)
como proteína de prueba y se usó el promotor UB6.
El ADNc de cadena pesada
(HC-EpCAM) se clonó en un constructo que abarca el
promotor UB6. EL HC-EpCAM se acopló al gen de
resistencia a la zeocina por una secuencia IRES. El ADNc de cadena
ligera (LC-EpCAM) también se clonó en un constructo
que abarca el promotor UB6. El LC-EpCAM se acopló al
gen de resistencia de puromicina por una secuencia IRES. Juntos
estos dos plásmidos representan el control UB6 (HC+LC) (Fig. 9).
Para probar los efectos de STAR67 y STAR7,
STAR67 se clonó en ambos constructos HC+LC, cadena arriba de los
promotores UB6. STAR7 se clonó para flanquear los casetes completos,
ambos en los extremos 5' y 3' (Fig. 9). Estos dos plásmidos
representan STAR-STAR67-UB6 (HC+LC)
STAR7.
La línea celular de ovario de hámster chino
CHO-K1 (ATCC CCL-61) se transfectó y
se cultivó como en el ejemplo 2, usando zeocina (100 \mug/ml) y
puromicina (2.5 \mug/ml) para la selección. Un día después de la
transfección, la zeocina se agregó al medio de cultivo. Cuando se
volvieron visibles las primeras colonias (aproximadamente 7 días
después de la adición de zeocina) se retiro el medio de cultivo y se
reemplazó con medio de cultivo que contenía puromicina. Después de
aproximadamente 7 días, se aislaron las colonias y se transfirieron
a placas de 24 pozos, en medio de cultivo que contenían solamente
zeocina.
La figura 9 muestra que la transfección de los
constructos de anticuerpos que contienen STAR67 clonado cadena
arriba del promotor UB6 y los dos elementos STAR7 clonados para
flanquear los casetes completos resultaron en diversas colonias CHO
que expresan niveles significativamente superiores del anticuerpo
EpCAM (medida por ELISA usando un anticuerpo IgG
anti-humano) en comparación con el control
"vacío" sin STAR67 y STAR7, UB6 (HC+LC). El promedio de la
producción EpCAM en las 18 colonias transfectadas con el plásmido de
control UB6 (HC+LC) fue de 2.7 pg/célula/día, cuando se mide 25
días después de la transfección. Los agentes de selección de
zeocina y puromicina se removieron después de 25 días. 45 días
después de la transfección el promedio de la producción de EpCAM en
estas 18 colonias fue de 2.7 pg/célula/día. En comparación, el
promedio de la señal de producción de EpCAM en las 18 colonias
transfectadas con el plásmido
STAR7-STAR67-UB6
(HC+LC)-STAR7 fue de 6.7 cuando se miden después de
25 días y 7.7 pg/célula/día, cuando se mide 45 días después de la
transfección. Así, tanto después de 30 y 45 días después de la
transfección, un constructo UB6 que abarca STAR67/STAR7 transportó
un factor de 2.5 hasta 2.9 veces superior al promotor UB6 que
impulsa el nivel de expresión EpCAM en clones CHO transfectados de
manera estable.
Así, la colocación de STAR67 de cadena arriba
del promotor y dos elementos STAR7 para flanquear los casetes
resultó en niveles de expresión de anticuerpos EpCAM
significativamente mayores en las células CHO, en comparación con
los constructos menos STAR67/STAR7.
Todos los elementos hasta aquí conocidos de STAR
que se probaron para esa propiedad incluyendo STAR6 y STAR7, son
bloqueadores intensificadores (WO 03/004704, Kwaks y colaboradores,
2003). Se prueba la actividad del bloqueador intensificador al
colocar un elemento STAR entre un intensificador fuerte y un
promotor. Aquí se probó si también STAR67 es un bloqueador
intensificador.
El gen d2EGFP se amplifica por PCR usando
cebadores TTGGTTGGTCATGAATGGTGAGCAAGGGCGAG
GAGCTGTTC (SEQ.ID.NO. 75) y ATTCTCTAGACTACACATTGATCCTAGCAGAAGCAC (SEQ.ID.NO. 76) y se clonan en un promotor pGL3 plásmido (Promega) usando los sitios de restricción NcoI y XbaI para reemplazar el gen Luciferasa para crear el promotor GFP del plásmido pGL3. Un ligador (creado al combinar en sus pares base el oligo CGATATCTTGGAGATCTACTAGTGGCGCGCCTTGGGCTAGCT (SEQ.ID.NO. 77) y GATCAGCTAGCC
CAAGGCGCGCCACTAGTAGATCTCCAAGATATCGAGCT(SEQ.ID.NO. 78), se clonó en los sitios SacI y BglII para crear sitios de clonación múltiples. El sitio BglII original se destruyó durante la ligación del ligador, creando un sitio BglII único nuevo dentro del ligador de ADN. El potenciador SV40 se cortó del plásmido pGL3 básico (Promega) usando BsaBI y BamHI y se clona en el promotor GFP de ligador pGL3 usando los sitios EcoRV y BglII que crean el plásmido pGL3-potenciador-promotor-GFP. El elemento STAR40 (SEQ. ID. NO. 40) se colocó cadena arriba del potenciador SV40 usando sitios KpnI y SacI para prevenir la acción del potenciador en secuencias cadena arriba. Finalmente, los elementos anti-represores STAR6, STAR7 y STAR67 se colocaron entre el potenciador SV40 y el promotor mínimo SV40 usando los sitios de restricción SpeI y AscI.
GAGCTGTTC (SEQ.ID.NO. 75) y ATTCTCTAGACTACACATTGATCCTAGCAGAAGCAC (SEQ.ID.NO. 76) y se clonan en un promotor pGL3 plásmido (Promega) usando los sitios de restricción NcoI y XbaI para reemplazar el gen Luciferasa para crear el promotor GFP del plásmido pGL3. Un ligador (creado al combinar en sus pares base el oligo CGATATCTTGGAGATCTACTAGTGGCGCGCCTTGGGCTAGCT (SEQ.ID.NO. 77) y GATCAGCTAGCC
CAAGGCGCGCCACTAGTAGATCTCCAAGATATCGAGCT(SEQ.ID.NO. 78), se clonó en los sitios SacI y BglII para crear sitios de clonación múltiples. El sitio BglII original se destruyó durante la ligación del ligador, creando un sitio BglII único nuevo dentro del ligador de ADN. El potenciador SV40 se cortó del plásmido pGL3 básico (Promega) usando BsaBI y BamHI y se clona en el promotor GFP de ligador pGL3 usando los sitios EcoRV y BglII que crean el plásmido pGL3-potenciador-promotor-GFP. El elemento STAR40 (SEQ. ID. NO. 40) se colocó cadena arriba del potenciador SV40 usando sitios KpnI y SacI para prevenir la acción del potenciador en secuencias cadena arriba. Finalmente, los elementos anti-represores STAR6, STAR7 y STAR67 se colocaron entre el potenciador SV40 y el promotor mínimo SV40 usando los sitios de restricción SpeI y AscI.
La línea de célula de ovario de hámster chino
CHO-K1 (ATCC CCL-61) se transfecta
como en el ejemplo 2. Un día después de la transfección, los
niveles de d2EGFP se miden en un flujocitómetro Epics XL (Beckman
Coulter).
La Fig. 10 muestra que STAR67 no es bloqueador
potenciador, mientras que STAR6 y STAR7 actúan como bloqueadores
potenciadores en el mismo ensayo. El STAR6, STAR7 y STAR67 se
clonaron entre el potenciador SV40 y un promotor SV40 mínimo cadena
arriba del gen d2EGFP. Cuando no se clona el elemento STAR entre el
potenciador y el promotor se presenta la activación transcripcional
fuerte (arbitrariamente colocado al 100%). Cuando STAR6 o STAR7 se
coloca entre el potenciador y el promotor, la transcripción cae
hasta niveles de respaldo, lo que indica que STAR6 y STAR7 son
bloqueadores potenciadores potentes. En contraste, cuando STAR67 se
clonó entre el potenciador y el promotor con relación a los niveles
de transcripción todavía fueron del 80% del control, lo que indica
que STAR67 no es un buen bloqueador potenciador, esto está en
contraste con STAR6 y STAR 7, así como otros elementos
anti-represores, como se describe previamente (WO
03/004704, Kwaks y colaboradores, 2003).
En el ejemplo 5 se muestra que la combinación de
STAR67 y STAR7 aumenta los niveles de expresión del anticuerpo
EpCAM en células CHO, en el contexto de dos distintos plásmidos, que
contienen las cadenas pesada y ligera. En este ejemplo se prueba
que STAR67 podrá usarse para la producción del anticuerpo EpCAM
cuando ambas cadenas pesada y ligera se colocan en un plásmido. Se
usa una selección simultánea para cada marcador seleccionable.
El ADNc de cadena pesada
(HC-EpCAM) está bajo el control del promotor UB6 y
se acopla al gen de resistencia Zeocina por una secuencia IRES. El
ADNc de cadena ligera (LC-EpCAM) está bajo el
control del promotor CMV y se acopla al gen de resistencia a la
puromicina por una secuencia IRES. Básicamente estos son los
constructos usados en el ejemplo 5. Estos dos casetes de expresión
se colocaron en un plásmido, de tal manera que la transcripción de
las dos unidades de expresión tiene direcciones opuestas. En el
plásmido de control los promotores UB6 y CMV se separaron por ADN
de relleno de 500 bp (EpCAM Control) (Fig. 10). En otro plásmido, el
STAR67 se colocó entre el promotor UB6 y CMV (EpCAM STAR67) (Fig.
10).
La línea de células de ovarios de hámster chino
CHO-K1 (ATCC CCL-61) se transfectó y
cultivo como en el ejemplo 2, usando zeocina (100 \mug/ml) y
puromicina (2.5 \mug/ml) para selección. En el ejemplo 5, se usó
la selección consecutiva para ambos marcadores. En contraste, ambos
agentes de selección se presentaron en el medio de cultivo
simultáneamente. Un día después de la transfección, la zeocina y
puromicina se agregaron al medio de cultivo. El medio de selección
se presentó hasta que las colonias se aislaron (aproximadamente 14
días después de la transfección). Después de que las colonias se
aislaron y se transfectaron a placas de 24 pozos, las células se
cultivaron en presencia de zeocina y puromicina.
La Fig. 11 muestra que la transfección del
constructo de anticuerpo que contiene el STAR67 clonado entre los
promotores UB6 y CMV que resulta en un número de colonias CHO que
expresan el anticuerpo EpCAM (medido por ELISA usando un anticuerpo
IgG antihumano). El promedio de la producción EpCAM en las 19
colonias transfectadas con el plásmido EpCAM STAR67 fue 9.8
pg/célula/día, cuando se mide 25 días después de la
transfección.
En contraste, sorprendentemente no sobrevivieron
colonias de la transfección con el plásmido de control EpCAM.
Cuando la selección se realizó ya sea con zeocina o puromicina
solamente, las colonias de control EpCAM sobrevivieron. Sin
embargo, cuando la presión de selección se incrementó al colocar la
presión de selección tanto en la cadena pesada como ligera, estas
condiciones permiten que sólo las colonias que sobreviven tengan el
STAR67 presente en el plásmido transfectado.
Los resultados también muestran que la
incorporación de STAR67 tienen un efecto benéfico en dos promotores,
los promotores UB6 y CMV, que se colocan cadena arriba y cadena
debajo de un elemento STAR67. Esto indica que STAR67 puede operar
en una manera bi-direccional.
La diferencia entre el plásmido EpCAM de control
y EpCAM STAR67 es el negro-blanco en el sentido de
que sólo la transfección de EpCAM STAR67 resulta en el
establecimiento de colonias, cuando la presión de selección es
alta. Esto abre una oportunidad para usar esta configuración de
plásmido para identificar la región en STAR67 que es responsable de
mediar este efecto. Las porciones traslapadas, más pequeñas de
STAR67 se colocan entre los promotores UB6 y CMV, conduciendo la
molécula EpCAM. Cuando una porción de STAR67 es funcional, las
colonias sobrevivirán cuando se usan simultáneamente tanto zeocina
como puromicina como agente de selección. Cuando una porción de
STAR67 no es funcional, no sobrevivirán colonias bajo condiciones de
selección idénticas.
Por lo tanto, cuando se coloca STAR67 cadena
arriba del promotor resulta en niveles de expresión de anticuerpo
EpCAM significativamente mayores en células CHO, en comparación con
constructos que carecen de tales elementos
anti-represores. Un experimento similar se realizó
con el promotor SV40 para conducir la expresión de las cadenas
pesada y ligera del anticuerpo anti-EpCAM. En otros
experimentos, STAR67 se intercambia por otras secuencias STAR. En
experimentos adicionales, la orientación de las dos unidades de
expresión que codifican las cadenas pesada y ligera se cambian de
tal manera que ambas están en la misma dirección. En otro
experimento, las unidades de expresión para las cadenas pesada y
ligera se colocan en moléculas de ácido nucleico diferentes
respectivamente (como en el ejemplo 5), y los clones resultantes se
seleccionan simultáneamente para ambos marcadores seleccionables.
En otro experimento, el tipo de célula hospedadora varía. Las
combinaciones de estas variaciones se hacen.
Fig. 1. Diagrama esquemático de la
invención.
A) gen bicistrónico que contiene (desde 5' hasta
3') un transgen (que codifica por ejemplo el gen d2EGFP), un IRES,
y un marcador seleccionable (zeo, que confiere resistencia a la
zeocina) bajo control del promotor CMV. La unidad de expresión
tiene el terminador SV40 transcripcional en su extremo 3' (t). El
nombre del constructo es
CMV-d2EGFP-ires-Zeo
(CMV Control).
B) constructo como en A, pero ahora STAR 67 SE
clona cadena arriba del promotor CMV. El nombre del constructo es
STAR67-CMV-d2EGFP-ires-Zeo
(CMV-STAR67).
C) constructo como en B, pero elementos STAR7 de
cadena arriba y cadena abajo se clonan para flanquear el constructo
completo. El nombre del constructo es
STAR7-STAR67-CMV-d2EGFP-ires-Zeo-STAR7
(CMV-STAR67 7/7).
Fig. 2. STAR67 mejora la expresión d2EGFP que
conduce CMV en células CHO. La media de la señal d2EGFP para 10
colonias estables independientes se agrupa para los constructos
indicados en células CHO. A) CMV Control; B)
STAR67-CMV.X(10): niveles de expresión d2EGFP
promedio de las 10 colonias. Ver el ejemplo 2 para detalles.
Fig. 3. STAR67 mejora la expresión d2EGFP
conducida por EF1\alpha en células CHO. Igual que en la Fig. 2,
pero ahora con el promotor EF1\alpha. A) EF1\alpha Control; B)
STAR67- EF1\alpha.
Fig. 4. STAR67 mejora la expresión d2EGFP
conducida por UB6 en células CHO. Igual que en las Figs. 2 y 3,
pero ahora con promotor UB6. A) UB6 Control; B)
STAR67-UB6.
Fig. 5. STAR67 mejora la expresión d2EGFP
conducida en CMV en células PER.C6. Igual que en la Fig. 2, pero
ahora en células PER.C6. A) CMV Control; B)
STAR67-CMV.
Fig. 6. STAR67 mejora la expresión d2EGFP
conducida por EF1\alpha en células PER.C6. Igual que en la Fig.
3, pero ahora en células PER.C6. A) EF1\alpha Control; B)
STAR67-EF1\alpha.
Fig. 7. STAR67 mejora la expresión d2EGFP
conducida en UB6 en células PER.C6. Igual que en la Fig. 4, pero
ahora en células PER.C6. A) UB6 Control; B)
STAR67-UB6.
Fig. 8. STAR67 mejora la expresión d2EGFP
conducida en SV40 en células CHO-K1 en combinación
con otro elemento STAR. Igual como en la Fig. 2, pero ahora usando
el promotor SV40 en células CHO, y los constructos indicados. La
media de la señal d2EGFP se agrupa por 18-20
colonias estables independientes 60 días después de la transfección.
A) SV40 Control, SV40-STAR67,
SV40-STAR7/7; B) SV40 Control y
SV40-STAR67 7/7. Ver el ejemplo 4 para detalles.
Fig. 9. STAR67 mejora los niveles de expresión
conducidos por UB6 del anticuerpo EpCAM en células
CHO-K1. Ver ejemplo 5 para detalles. A) constructos
sin elementos STAR; B) constructos con STAR67 cadena arriba del
promotor y elementos STAR7 de flanqueo. La concentración de
anticuerpo anti-EpCAM se presenta como
pg/célula/día. X(18): nivel de producción promedio de las 18
colonias.
Fig. 10. STAR67 no es bloqueador potenciador,
mientras que STAR 6 y 7 lo son. Ver ejemplo 6 para detalles.
Fig. 11. STAR67 aumenta los niveles de expresión
de anticuerpo conducidos por UB6 y CMV en células CHO establemente
transfectadas. Ver ejemplo 7 para detalles. A) molécula de ADN
sencilla que contiene la cadena pesada anti-EpCAM
(HC) y cadena ligera (LC), cada uno siendo un promotor, y cada uno
ligado a un gen marcador seleccionable diferente (la selección
simultánea se usó para ambos marcadores): constructo sin elementos
STAR. No se encontraron colonias; B) mismo constructo con STAR67
entre los dos promotores. La concentración de anticuerpo
anti-EpCAM se presenta como
pg/célula/día.X(19): nivel de producción promedio de las 19
colonias.
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expresión de ácido nucleótido
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
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\vskip1.000000\baselineskip
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<160> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> PatentIn versión 3.2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 749
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
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<211> 883
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 3
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<211> 2126
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR3
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 3
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\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 4
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<211> 1625
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR4
\newpage
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<400> 4
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<210> 5
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<211> 1571
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR5
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 6
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<211> 1173
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR6
\newpage
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<400> 6
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<210> 7
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<211> 2101
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR7
\newpage
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<400> 7
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<210> 8
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<211> 1821
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR8
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 8
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<210> 9
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<211> 1929
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR9
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 9
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<210> 10
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<211> 1167
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR10
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<220>
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<221> características diversas
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<222> (452)..(1143)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n es a, c, g, o t en diversas
posiciones
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<400> 10
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR11
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<400> 11
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR12
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<223> secuencia de STAR13
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<220>
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<223> secuencia de STAR14
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<223> secuencia de STAR15
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<212> ADN
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<220>
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<220>
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<223> secuencia de STAR17
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<223> secuencia de STAR20
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<213> Homo sapiens
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<213> Homo sapiens
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<223> secuencia de STAR22
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR23
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR24
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR25
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR26
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<223> secuencia de STAR27
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<223> secuencia de STAR28
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<213> Homo sapiens
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<223> secuencia de STAR30
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<221> características diversas
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<222> (159)..(1696)
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<223> n es a, c, g, o t en diversas
posiciones
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<400> 31
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<212> ADN
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<400> 32
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<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1368
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
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<220>
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<223> secuencia de STAR33
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR34
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<211> 1193
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<212> ADN
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\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR35
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
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<222> (312)..(1191)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n es a, c, g, o t en diversas
posiciones
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 36
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<211> 1712
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR36
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<211> 1321
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR37
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<400> 37
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<210> 38
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<211> 1445
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<212> ADN
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<213> Homo sapiens
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
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<223> secuencia de STAR38
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<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (348)..(949)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n es a, c, g, o t en diversas
posiciones
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
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<210> 39
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<211> 2331
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<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
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<223> secuencia de STAR39
\vskip1.000000\baselineskip
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<400> 39
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<210> 40
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<211> 1071
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR40
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1135
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 735
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1227
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1586
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR44
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1981
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR45
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 45
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1859
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR46
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 46
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 47
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1082
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 47
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 48
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1242
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR48
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 48
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 49
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1015
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR49
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 49
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2355
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR50
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2289
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1184
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 53
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1431
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR53
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 53
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 54
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 975
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 54
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 501
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 56
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 741
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR56
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 56
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 57
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1365
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 57
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 58
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1401
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR58
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 58
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 866
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR59
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 59
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 60
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 2067
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR60
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (92)..(1777)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n es a, c, g, o t en diversas
posiciones
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 60
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 61
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1470
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR61
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (130)..(976)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> n es a, c, g, o t en diversas
posiciones
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 61
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 62
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1011
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR62
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 62
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 63
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1410
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR63
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 63
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 64
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1414
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR64
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 64
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 65
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1310
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR65
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 65
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 66
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1917
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Homo sapiens
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> características diversas
\vskip0.400000\baselineskip
<223> secuencia de STAR67
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 66
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 67
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligo para hacer ligador que
contiene MCII de pdEGFP-ligado
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 67
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtacggatat cagatcttta attaag
\hfill26
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 68
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligo para hacer ligador que
contiene MCII de pdEGFP-ligado
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 68
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgtaccttaat taaagatctg atat
\hfill24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 69
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificación de 0.37
kb del pd2EGFP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 69
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgatcagatct ggcgcgccat ttaaatcgtc tcgcgcgttt cggtgatgac gg
\hfill52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 70
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificación de 0.37
kb del pd2EGFP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 70
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaggcggatcc gaatgtattt agaaaaataa acaaataggg g
\hfill41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 71
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar el gen ORF
resistente a la zeocina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 71
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgatcggatcc ttcgaaatgg ccaagttgac cagtgc
\hfill36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 72
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar el gen ORF
resistente a la zeocina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 72
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaggcgcggcc gcaattctca gtcctgctcc tc
\hfill32
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 73
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar d2EGFP
ORF
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 73
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgatcgaattc tcgcgaatgg tgagcaagca gatcctgaag
\hfill40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 74
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 52
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar d2EGFP
ORF
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 74
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaggcgaattc accggtgttt aaacttacac ccactcgtgc aggctgccca gg
\hfill52
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 75
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar gen
d2EGFP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 75
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttggttggtc atgaatggtg agcaagggcg aggagctgtt c
\hfill41
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 76
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar gen
d2EGFP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 76
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipattctctaga ctacacattg atcctagcag aagcac
\hfill36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligo para preparar ligador para
crear MCS en pGL3-promotor-GFP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 77
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipcgatatcttg gagatctact agtggcgcgc cttgggctag ct
\hfill42
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 78
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 50
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligo para preparar ligador para
crear MCS en pGL3-promotor-GFP
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 78
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgatcagctag cccaaggcgc gccactagta gatctccaag atatcgagct
\hfill50
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 79
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificación de
promotor EF-1alfa
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 79
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipgatcggcgcg ccatttaaat ccgaaaagtg ccacctgacg
\hfill40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 80
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificación de
promotor EF-1alfa
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 80
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipaggcgggacc ccctcacgac acctgaaatg gaag
\hfill34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 81
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 51
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificación de
promotor SV40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 81
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttggttgggg cgcgccgcag caccatggcc tgaaataacc tctgaaagag g
\hfill51
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 82
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 55
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Artificial
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificación de
promotor SV40
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 82
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
\hskip-.1em\dddseqskipttggttggga gctcaagctt tttgcaaaag cctaggcctc caaaaaagcc tcctc
\hfill55
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Cambios en las secuencias:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Secuencias 67 y 68:
\vskip0.400000\baselineskip
<223> oligo para hacer ligador que
contiene MCSII de pd2EGFP-ligado
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Secuencias 71 y 72:
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar el ORF del
gen de resistencia a la zeocina
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Secuencias 73 y 74:
\vskip0.400000\baselineskip
<223> cebador para amplificar el ORF de
d2EGFP
Claims (20)
1. Una molécula de ácido nucleico recombinante,
que comprende una secuencia de ácido nucleico tiene una actividad
anti-represora seleccionada del grupo que consiste
de:
a) SEQ. ID. NO. 66,
b) fragmentos de SEQ. ID. NO. 66 en donde el
fragmento tiene actividad anti-represora,
c) secuencias que son al menos 70% idénticas en
secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde dichas secuencias
tienen actividad anti-represora; y
d) el complemento de uno cualesquiera de a)
hasta c);
dicha molécula de ácido nucleico recombinante
comprende además un casete de expresión, dicho casete de expresión
comprende un promotor heterólogo ligado a un ácido nucleico de
interés, y en donde dicho ácido nucleico de interés codifica
preferiblemente todo o parte de una proteína de interés.
2. Una molécula de conformidad con la
reivindicación 1, en la que dicha secuencia de ácido nucleico que
tiene una actividad anti-represora se sitúa cadena
arriba del promotor en dicho casete de expresión.
3. Una molécula de conformidad con la
reivindicación 2, en la que dicha secuencia que tiene una actividad
anti-represora y dicho promotor se separan por menos
de 2 kb.
4. Una molécula de conformidad con cualesquiera
de las reivindicaciones precedentes, en la que dicho ácido nucleico
que codifica una proteína de interés está presente en un gen
multicistrónico que codifica además un gen marcador
seleccionable.
5. Una molécula de conformidad con cualesquiera
de las reivindicaciones precedentes, que comprende además al menos
otra secuencia que tiene una actividad
anti-represora, eligiéndose dicha al menos otra
secuencia de
a) cualesquiera de las SEQ. ID. NOs.
1-65,
b) fragmentos de cualesquiera de las SEQ. ID.
NOs. 1-65, en donde dichos fragmentos tienen
actividad anti-represora, y
c) secuencias que son al menos 70% idénticas en
secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde las secuencias tienen
actividad anti-represora, y
d) el complemento de uno cualesquiera de a)
hasta c).
6. Una molécula de ácido nucleico recombinante,
que comprende un casete de expresión que comprende:
5'-secuencia
anti-represora A - promotor - ácido nucleico que
codifica todo o parte de una proteína de interés - secuencia
anti-represora B - 3' en donde las secuencias
anti-represoras A y B pueden ser la misma o
diferente y se eligen del grupo que consiste en
(i) cualesquiera de las SEQ. ID. NOs.
1-65,
(ii) fragmentos de cualesquiera de las SEQ. ID.
NOs. 1-65, en donde dichos fragmentos tienen
actividad anti-represora,
(iii) secuencias que son al menos 70% idénticas
en secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde dichas secuencias
tienen actividad anti-represora, y
(iv) el complemento de uno cualesquiera de (i)
hasta (iii), caracterizado en que dicho casete de expresión
comprende además entre las secuencias
anti-represoras A y B una secuencia que tiene una
actividad anti-represora elegida del grupo que
consiste en
a) SEQ. ID. NO. 66,
b) fragmentos de SEQ. ID. NO. 66 en donde dicho
fragmento tiene actividad anti-represora,
c) secuencias que son al menos 70% idénticas en
secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde dichas secuencias
tienen actividad anti-represora; y
d) el complemento de uno cualesquiera de a)
hasta c).
7. Una célula, que comprende la molécula de
conformidad con cualesquiera de las reivindicaciones
1-6.
8. La célula de conformidad con la
reivindicación 7, que es una célula de mamífero.
9. La célula de conformidad con la
reivindicación 8, que es una célula CHO.
10. Un método para producir una proteína de
interés, que comprende cultivar una célula que comprende una
molécula de ácido nucleico recombinante que codifica la proteína de
interés para expresar dicho ácido nucleico que codifica la proteína
de interés en la célula, caracterizado porque dicha molécula
de ácido nucleico recombinante comprende una secuencia de ácido
nucleico que tiene una actividad anti-represora
seleccionada del grupo que consiste en:
a) SEQ. ID. NO. 66,
b) fragmentos de SEQ. ID. NO. 66 en donde dicho
fragmento tiene actividad anti-represora,
c) secuencias que son al menos 70% idénticas en
secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde dichas secuencias
tienen actividad anti-represora; y
d) el complemento de uno cualesquiera de a)
hasta c).
11. Un método de conformidad con la
reivindicación 10, que comprende además aislar dicha proteína de
interés.
12. Un método de conformidad con la
reivindicación 10 u 11, en donde dicha secuencia de ácido nucleico
que tiene una actividad anti-represora se sitúa
cadena arriba del promotor que controla la expresión de la proteína
de interés.
13. Un método de conformidad con la
reivindicación 12, en el que dicha secuencia que tiene una actividad
anti-represora y dicho promotor se separan por
menos de 2 kb.
14. Un método de conformidad con cualesquiera de
las reivindicaciones 10 hasta 13, en el que dicho ácido nucleico
que codifica una proteína de interés está presente en un gen
multicistrónico que codifica además un gen marcador
seleccionable.
15. Un método de conformidad con cualesquiera de
las reivindicaciones 10 hasta 14, en el que dicha célula es una
célula de mamífero.
16. Un método de conformidad con la
reivindicación 15, en el que dicha célula es una célula CHO.
17. Uso de una secuencia de ácido nucleico que
tiene actividad anti-represora seleccionada del
grupo que consiste en:
a) SEQ. ID. NO. 66,
b) fragmentos de SEQ. ID. NO. 66 en donde dicho
fragmento tiene actividad anti-represora,
c) secuencias que son al menos 70% idénticas en
secuencia de nucleótidos al a) o b) en donde dichas secuencias
tienen actividad anti-represora; y
d) el complemento de uno cualesquiera de a)
hasta c), para incrementar la expresión de un ácido nucleico de
interés.
18. Un método para generar una célula
hospedadora que expresa dos polipéptidos de interés, comprendiendo
el método:
a) introducir en una célula hospedadora una o
más moléculas de ácido nucleico, la molécula de ácido nucleico o
moléculas en conjunto comprenden:
(i) un promotor ligado funcionalmente a una
secuencia que codifica un primer polipéptido de interés y un primer
gen marcador seleccionable, y
(ii) un promotor ligado funcionalmente a una
secuencia que codifica un segundo polipéptido de interés y un
segundo gen marcador seleccionable, y
(iii) al menos una secuencia que tiene una
actividad anti-represora, elegida del grupo que
consiste en
(a) SEQ. ID. NO. 66,
(b) fragmentos de la SEQ. ID. NO.66, los
fragmentos tienen una actividad anti-represora,
(c) secuencias que son al menos 70% idénticas al
(a) o (b) y que tienen actividad anti-represora,
y
(d) el complemento de cualesquiera de (a) -
(c);
b) seleccionar una célula hospedadora al
seleccionar esencialmente de manera simultánea para la expresión
del primero y segundo genes marcadores seleccionables.
19. Un método para expresar dos polipéptidos de
interés, comprendiendo el método: cultivar una célula hospedadora
obtenida por el método de conformidad con la reivindicación 18 para
expresar el primero y segundo polipéptidos, y opcionalmente aislar
dichos polipéptidos.
20. El método de conformidad con la
reivindicación 18 ó 19, en el que dichos dos polipéptidos son parte
de una proteína multimérica.
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