ES2265653T3 - Variantes del factor neurotrofico ciliar humano (hcntf) con un intervalo de accion diferente del de la molecula de tipo silvestre. - Google Patents
Variantes del factor neurotrofico ciliar humano (hcntf) con un intervalo de accion diferente del de la molecula de tipo silvestre. Download PDFInfo
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Abstract
VARIANTES DE FACTOR NEUROTROFICO CILIAR HUMANO QUE SE CARACTERIZAN POR LA SUSTITUCION DE FENILALANINA 152 Y/O DE LISINA 155 POR ALANINA. ESTAS VARIANTES TIENEN PROPIEDADES BIOLOGICAS QUE LAS HACEN IMPORTANTES COMO PRINCIPALES PRINCIPIOS ACTIVOS DE MEDICAMENTOS PARA EL TRATAMIENTO DE ENFERMEDADES Y DE PATOLOGIAS QUE AFECTAN AL SISTEMA NERVIOSO U OTRAS PATOLOGIAS QUE IMPLIQUEN LA RESPUESTA DE LAS CELULAS AL CNTF. LA FIGURA 2 ILUSTRA LOS RESULTADOS DE LA ESTIMULACION DE LA SECRECION DE HAPTOGLOBINA DE CELULAS HEPG2 POR EL CNTF Y LAS VARIANTES DESCRITAS EN LA PRESENTE INVENCION.
Description
Variantes del factor neurotrófico ciliar humano
(hCNTF) con un intervalo de acción diferente del de la molécula de
tipo silvestre.
La presente invención se refiere al campo de la
neurología. Son objeto de la invención, mutantes del factor
neurotrófico ciliar humano (hCNTF) que muestran un intervalo de
acción diferente del de la molécula de tipo silvestre. Estas
variantes se caracterizan por el hecho de que tienen una capacidad
fuertemente reducida para interaccionar con el receptor LIF (LIFR).
Como consecuencia, tienen una actividad biológica extremadamente
reducida sobre la mayoría de las células que responden a CNTF. Sin
embargo, mantienen una alta actividad biológica sobre ciertas
células neuronales, probablemente por causa de la expresión última
de grandes cantidades de LIFR y/o receptor \alpha de CNTF
(CNTFR\alpha) unidos a la membrana. Esta propiedad puede usarse
para reducir los efectos secundarios periféricos resultantes de la
administración de CNTF.
El factor neurotrófico ciliar humano (hCNTF) es
una neurocitoquina de 23 kDa. Se expresan en las células de Schwann
y en los astrocitos, y ejerce potentes efectos estimuladores sobre
la supervivencia y diferenciación de diversas células neuronales y
gliales (tanto in vitro como in vivo), incluyendo
neuronas motoras, neuronas sensoriales, neuronas simpáticas,
neuronas del hipocampo y oligodendrocitos (1, 2). El papel
fisiológico de CNTF podría parecer que es el de actuar como un
factor implicado en la prevención de la degeneración neuronal
después de una lesión (2). Esta acción protectora, que el CNTF ha
mostrado in vivo en muchas células nerviosas, ha dado
esperanzas para su aplicación clínica en el tratamiento de
enfermedades neurodegenerativas humanas (3).
Además de su acción neuroprotectora, sin
embargo, se ha observado que el CNTF provoca también in vivo
una amplia diversidad de efectos, constituidos por la pérdida de
peso y anorexia, respuesta de fase aguda y fiebre. Hay por lo tanto,
un problema en el uso farmacológico de CNTF por causa de estos
efectos secundarios.
Al igual que otros factores del crecimiento, y
en particular citoquinas, el CNTF ejerce sus acciones a través de la
unión, ensamblaje secuencial, y activación de un complejo receptor
de múltiples subunidades (4, 5). El complejo receptor del que CNTF
forma parte, se compone de seis subunidades (de forma similar al
caso de la interleuquina 6) (6). El complejo se compone de dos
moléculas de CNTF, dos moléculas específicas de
receptor-\alpha, que forman un enlace de baja
afinidad con el CNTF (CNTFR\alpha) y dos subunidades de
transducción de la señal (LIFR y gp130) (7). Los sitios del CNTF
implicados en la unión con gp130 y con el receptor específico pueden
identificarse por analogía con la interleuquina 6 (8, 9). El sitio
de enlace para CNTF y el receptor LIF (LIFR) todavía no se ha
identificado. La Solicitud de Patente de Publicación Internacional
WO 96/01319 (Cancer Research Campaign Technology Limited) describe
proteínas que son variantes del factor inhibidor de la leucemia
humano (hLIF) con afinidades de unión al receptor LIF y al receptor
gp130 alteradas.
La alineación múltiple de secuencias de CNTF se
ser humano, de conejo, de rata y de ratón, con otras secuencias de
citoquina que se unen al receptor LIF (tales como LIF, oncostatina M
y CT-1) revela la presencia de dos restos amino
conservados dentro del diseño estructural conocido como D1. Los dos
aminoácidos son fenilalanina en la posición 152 y lisina en la
posición 155. Como se mostrará con más detalle en los siguientes
ejemplos, los dos aminoácidos forman parte del sitio de enlace del
LIFR. En base a esta idea, se generaron mutantes de CNTF en los que
los aminoácidos se sustituyeron por alanina, y las secuencias de,
tanto la molécula de tipo silvestre (SEC ID Nº: 1) como los mutantes
objeto de la presente invención, se dan en la Tabla 1 (por razones
de simplicidad no se da la secuencia completa de aminoácidos, sólo
las posiciones de aminoácidos de 152 a 167). Aunque la bibliografía
indica que uno de los dos mutantes (Lys155Ala/CNTF) es completamente
inactivo sobre neuronas de gallina (10), se evaluó la actividad
biológica de los dos mutantes, y se demostró que, contrariamente a
los informes previos (10), actúan como potentes agonistas sobre el
receptor de membrana de ciertas células neuronales, mientras que su
actividad biológica se reduce fuertemente cuando están unidas al
receptor LIF o al receptor soluble de CNTF. Una posible
interpretación de este fenómeno puede ser la siguiente: puesto que
los efectos biológicos de estas moléculas dependen de las
concentraciones de CNTFR\alpha y receptor LIF, se amplifican
cuando la concentración local de receptor es muy alta, como es el
caso en receptores que están unidos a la membrana celular de ciertas
poblaciones de células neuronales.
El descubrimiento de que estas moléculas ejercen
una actividad biológica sobre las células neuronales que expresan
receptores unidos a membrana y que, por el contrario muestran una
actividad biológica extremadamente débil cuando interaccionan con el
receptor soluble, indica que las moléculas que están modificadas en
las posiciones indicadas, pueden usarse para reacción específica con
células neuronales sin causar efectos secundarios periféricos
mediados por el enlace al receptor soluble.
Son por lo tanto, objeto de la presente
invención variantes del factor neurotrófico ciliar humano (hCNTF),
caracterizadas por la sustitución de la fenilalanina 152 y/o de la
lisina 155 por alanina y por el hecho de que comprenden en
particular una secuencia de aminoácidos elegida entre las secuencias
indicadas en SEC ID Nº: 3 a SEC ID Nº: 5 y SEC ID Nº: 7. La
Solicitud de Patente Europea EP 0749980 A1 (Sumitomo Pharmaceuticals
Co. Ltd.) describe una modificación de un hCNTF, en la que el resto
de aminoácido de la secuencia de aminoácidos que corresponde al
menos al resto de aminoácido 153 de la secuencia de aminoácidos de
un hCNTF natural, se ha sustituido por otro resto de aminoácido.
Las moléculas representadas por SEC ID Nº: 3 a
SEC ID Nº: 5 tienen una capacidad reducida para enlazarse al
receptor LIF y para activarlo por medio del CNTFR\alpha soluble, y
por el contrario actúan como agonistas del CNTFR de ciertas células
neuronales. La molécula representada por SEC ID Nº: 7 actúa como un
antagonista competitivo para el enlace del receptor
CNTFR\alpha.
La presente invención alcanza también
preparaciones farmacéuticas que hacen uso de estas moléculas para el
tratamiento de enfermedades o patologías del sistema nervioso, o de
otras patologías que implican células que responden a CNTF,
incluyendo enfermedades o patologías del sistema nervioso que causan
daño al propio sistema nervioso.
La Tabla 2 muestra los datos relativos a las
actividades de unión al receptor CNTFR\alpha de los diversos
mutantes de CNTF. Se determinó la concentración de proteína
necesaria para inhibir al 50% (IC50) la unión de DNTF biotinilado o
MUT-DH biotinilado al CNTFR\alpha inmovilizado. La
unión relativa es la proporción (IC50 de CNTF)/(IC50 de proteína
ensayada).
Proteína | Unión Relativa |
SEC ID Nº: 1* | 1,0 |
SEC ID Nº: 2* | 41\pm4 |
SEC ID Nº: 3 | 32\pm11 |
SEC ID Nº: 4 | 42\pm2 |
SEC ID Nº: 5 | 0,9\pm0,1 |
SEC ID Nº: 6* | 1,0\pm0,1 |
SEC ID Nº: 7 | 51\pm19 |
* Estas secuencias se citan solamente para comparación. |
La Figura 1 muestra los resultados que se
refieren a los ensayos de unión de varios complejos receptores, de
los que forman parte las moléculas variantes de CNTF que contienen
las subunidades gp130 y LIFR. Cada ensayo se realizó para dos
cantidades diferentes de moléculas variantes (1 ó 0,1 mg, como se
indica en el encabezamiento de cada columna). En cada figura, la
última columna representa el control negativo en el que el ensayo se
realizó en ausencia de moléculas variantes. (A) el ensayo de unión
para los complejos que contenían las variantes originales
MUT-DH, Phe152Ala/MUT-DH,
Lys155Ala/MUT-DH,
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH y el CNTF de tipo
silvestre (indicados como MUT-DH, AK/DH, FA/DH,
AA/DH y wt, respectivamente) y el CNTFR\alpha con la subunidad del
receptor gp130. (B) Ensayo de unión para los complejos que
contenían las variantes MUT-DH,
Phe152Ala/MUT-DH, Lys155Ala/MUT-DH,
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH y el CNTF de tipo
silvestre (indicados como MUT-DH, AK/DH, FA/DH,
AA/DH y wt, respectivamente) y el CNTFR\alpha con la subunidad del
receptor LIFR. (C). Ensayo de unión para los complejos que contenían
las variantes MUT-DH,
Phe152Ala/MUT-DH, Lys155Ala/MUT-DH,
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH y el CNTF de tipo
silvestre (indicados como MUT-DH, AK/DH, FA/DH,
AA/DH y wt, respectivamente) y el complejo LIAR/CNTFR\alpha con la
subunidad del receptor gp130.
La Figura 2 muestra los resultados de la
estimulación de la producción de haptoglobina en las células HepG2
por CNTF y variantes de CNTF. Los experimentos se realizaron en
ausencia (A) o en presencia de receptor CNTFR\alpha soluble a una
concentración de 800 ng/ml (B). Las proteínas ensayadas fueron: CNTF
(\medcirc), Lys155Ala/CNTF (FA-CNTF) (\Box),
Lys155Ala/MUT-DH (FADH-CNTF)
(\blacksquare), Phe152Ala/MUT-DH
(AKDH-CNTF) (\ding{115}) y
Phe152Ala/Lys155Ala/
MUT-DH (AADH-CNTF) (\ding{116}). Los datos se expresan como un porcentaje del efecto máximo de CNTF para normalizar las diferencias entre los diferentes experimentos.
MUT-DH (AADH-CNTF) (\ding{116}). Los datos se expresan como un porcentaje del efecto máximo de CNTF para normalizar las diferencias entre los diferentes experimentos.
La Figura 3 muestra los resultados de la
estimulación de la actividad de colina acetil transferasa (Cat) en
las células IMR-32. Las proteínas ensayadas fueron:
CNTF (\medcirc), FA-CNTF) (\Box),
FADH-CNTF) (\blacksquare),
AKDH-CNTF) (\ding{115}), y
AADH-CNTF) (\ding{116}). Los datos se expresan
como un porcentaje del efecto máximo de CNTF para normalizar las
diferencias entre los diferentes experimentos.
La Figura 4 muestra las propiedades antagonistas
del mutante Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH en las
células HepG2. La Figura 4A muestra el efecto de aumentar las dosis
de CNTF sobre la actividad de la colina acetil transferasa (Cat) en
las células IMR-32 en ausencia (\bullet) y en
presencia de las siguientes concentraciones de
Phe152Ala/Lys155Ala/
MUT-DH (en mg/ml): 0,01 (\medcirc), 0,1 (\blacksquare), 1 (\Box), 10 (\ding{115}). La Figura 4B muestra el efecto de aumentar las concentraciones de Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH sobre la respuesta inducida por 3 ng/ml de CNTF.
MUT-DH (en mg/ml): 0,01 (\medcirc), 0,1 (\blacksquare), 1 (\Box), 10 (\ding{115}). La Figura 4B muestra el efecto de aumentar las concentraciones de Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH sobre la respuesta inducida por 3 ng/ml de CNTF.
Hasta ahora se ha dado una descripción general
de la presente invención. Con la ayuda de los siguientes ejemplos,
se dará ahora una descripción más detallada de realizaciones
específicas, para dar una mejor comprensión de los objetos,
características, ventajas y procedimientos operativos de la presente
invención.
Bacterias TOP10 de E. coli, transformadas
usando los plásmidos
pRSET-AKDH-CNTF,
pRSET-FADH-CNTF,
pRSET-AADH-CNTF, respectivamente,
que contenían las secuencias de nucleótidos que codifican,
respectivamente, la variante AKDH-CNTF, que contiene
la secuencia de aminoácidos SEC ID Nº: 3, la variante
FADH-CNTF, que contiene la secuencia de aminoácidos
SEC ID Nº: 4, y la variante AADH-CNTF, que contiene
la secuencia de aminoácidos SEC ID Nº: 6, se presentaron el 24 de
junio de 1996, con la National Collections of Industrial and Marine
Bacteria Ltd. (NCIMB), Aberdeen, Scotland, UK, con los números de
acceso 40809, NCIMB 40810 y NCIMB 40811.
Se introdujeron mutaciones en el CNTF humano o
en la molécula variante MUT-DH
(Ser166Asp/Gln167His/
CNTF) mediante PCR inversa, usando un procedimiento conocido en la técnica (11), usando como plantillas los vectores pRSET-CNTF o pRSET-MUT-DH. Para las reacciones de PCR se usaron los siguientes cebadores:
CNTF) mediante PCR inversa, usando un procedimiento conocido en la técnica (11), usando como plantillas los vectores pRSET-CNTF o pRSET-MUT-DH. Para las reacciones de PCR se usaron los siguientes cebadores:
cebador sentido usado para todos los
mutantes
- 5'-CTGTGGGGCCTAAAGGTGCTG-3'
cebador antisentido para mutantes Phe152Ala (el
codón correspondiente a Ala152 se indica en negrita)
- 5'-CGCCTTCTCAAAGAGACCACCATCTCCAAC-3'
cebador inverso para los mutantes Phe152Ala
/Lys155Ala (los codones correspondientes a Ala152 y Ala155 se
indican en negrita)
- 5'-CGCCTTCTCAGCGAGACCACCATCTCCAAC-3'
Las reacciones de PCR se realizaron usando la
plantilla de ADN (pRSET-CNTF o
pRSET-MUT-DH; 10 fmol) y los
cebadores (cada uno 1 mM) en 100 ml de volumen de reacción que
contenían 2 unidades de Taq ADN polimerasa (Boehringer Mannheim) y
10 ml de tampón para una reacción de PCR 10x. La amplificación se
realizó durante 25 ciclos de 1 minuto a 94ºC, 1 minuto a 45ºC y 12
minutos a 72ºC. Los cuatro desoxinucleótidos (250 mM) y 20 unidades
de polimerasa I de E. coli "fragmento de Klenow" se
añadieron a 95 ml de la mezcla amplificada, y la mezcla de reacción
se incubó a 37ºC durante 30 minutos. El ADN se aisló usando el
sistema de purificación "Wizard™ PCR preps" y se fosforiló
mediante incubación con 20 unidades de polinucleótido quinasa de T4
(Promega) de acuerdo con las instrucciones del fabricante. El
producto se corrió después sobre gel de agarosa (0,7%) y se
purificó después usando un kit Qiaex (Qiagen), después se le hizo
experimentar una reacción de ligasa usando 12 unidades de ligasa de
T4 a 16ºC durante 20 horas. La mezcla de reacción se usó para
transformar células competentes de E. coli de la cepa HB2151.
Se recuperó el ADN de las células bacterianas y la identidad de las
regiones que codificaban los mutantes de CNTF se estableció
secuenciando el ADN usando el protocolo Sequenase de USB.
Se descubrió que la secuencia que codifica
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH
(AADH-PCR1), contenía dos mutaciones adicionales
(Ala70Thr/Val146Gly). Para corregir estas mutaciones y volver a la
secuencia original se usó la siguiente estrategia: para eliminar la
mutación Val146Gly se amplificó un fragmento NcoI/PstI que
comprendía la secuencia codificante de CNTF desde la posición 1 a la
posición 163 usando el ADN de AADH-PCR1 como
plantilla, junto con los siguientes cebadores:
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{ sentido: \+ 5'-GTCACCATGGCTTTCACAGAGCATTCACCG-3'\cr antisentido: \+ 5'-AGCTCCTGCAGCACCTTTAGGCCCCACAGCGCCTTCTCAGCGAGACCACCATCTCC AAC \cr \+ \hskip0.3cm ATTAAT - 3' (el codón para Val146 se indica en negrita).\cr}
La reacción de PCR se continuó durante 30 ciclos
(94ºC durante 130 segundos; 50ºC durante 130 segundos; 72ºC durante
190 segundos) usando 2,5 unidades de polimerasa pfu clonada
(Stratagene). El producto de reacción se digirió con las enzimas
NcoI y PstI, sometidas a electroforesis sobre gel de agarosa al 0,7%
y purificadas usando el sistema de purificación "Wizard™ PCR preps
DNA" (Progema). El fragmento se subclonó después en el vector
pRSET-MUT-DH digerido con NcoI/PstI,
obteniendo de este modo la construcción AADH-PCR2.
Para eliminar la mutación Ala70Thr, se digirió ADN de
AADH-PCR2 con HindIII y el fragmento resultante (que
va desde el resto en posición 79 al resto en posición 200 del CNTF,
y por lo tanto excluye la mutación en la posición 70) se subclonó en
un vector pRSET-CNTF digerido con HindIII. El hecho
de que la secuencia verdaderamente codifica
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH se confirmó mediante
secuenciación directa de la secuencia de ADN.
La expresión de la proteína y el aislamiento de
los cuerpos de inclusión bacterianos, se consiguieron usando el
siguiente procedimiento: los vectores pREST-CNTF y
variante de pREST, se usaron para transformar células de E.
coli de la cepa BL21 (DE3) LysE (genotipo sin SupE). Los
transformantes se agitaron a 37ºC en un litro de caldo Luria que
contenía 0,1 mg/ml de ampicilina a un A_{600} de 0,8.
Posteriormente, se añadió isopropiltiogalactósido (0,4 mM) y se
continuó la incubación durante 3 horas más a 37ºC. Las bacterias se
recogieron después mediante centrifugación y se resuspendieron en 2
ml por gramo de perlas en tampón A (Tris-HCl 100 mM,
pH 7,5, EDTA 50 mM, PMSF 1mM, leupeptina 10 mg/ml). A esto se
añadieron 0,5 mg/ml de lisozima y sacarosa al 30% p/v. La suspensión
se incubó durante 1 hora a 30ºC. Después de la adición de un volumen
de tampón A, las bacterias se lisaron pasandolas dos veces
sucesivamente a través de la "French Press" a una presión de
800 bar. Los cuerpos de inclusión se aislaron mediante
centrifugación a 12000 x g durante 30 minutos. Las perlas se
resuspendieron en una solución de cloruro de guanidina 2 M y se
lavaron tres veces usando la misma solución, Las perlas finales se
resuspendieron en 5 ml de solución de cloruro de guanidina 8 M y se
diluyeron inmediatamente 4 veces en tampón A. Después de
centrifugación a 12000 x g durante 30 minutos, el sobrenadante se
dializó a 4ºC contra Tris-HCl 10 mM, EDTA 5 mM, DTT
0,1 mM pH 8, tres veces a concentraciones en disminución de cloruro
de guanidina (1 M, 0,5 M, 0 M, cada vez durante una noche entera) y
una vez contra Tris 20 mM, EDTA 0,1 mM, DTT 1 mM, NaCl 25 mM,
pH 8. El producto final dializado se limpió mediante centrifugación
a 12000 x g durante 30 minutos y se pasó a través de un filtro de
0,22 mm. La purificación posterior se realizó mediante HPLC, usando
una columna C4 (Vydac 214 TP, 2,2 x 25 cm, 10 mm) eluida a un caudal
de 30 ml/min. con un gradiente lineal de acetonitrilo al
40%-60%/ácido trifluoroacético al 0,1% en agua/ácido
trifluoroacético al 0,1%. Antes de retirar el disolvente mediante
liofilización, se añadió n-octilglucopiranósido al
0,1% (p/v) a los eluatos. La proteína se resuspendió en agua y se
almacenó a 4ºC.
La capacidad de las variantes de CNTF para
competir con el CNTF biotinilado (8 nM) para unirse al dominio
extracelular del receptor CNTFR\alpha se determinó en un ensayo de
unión a fase sólida, en presencia de gp130 soluble, como se ha
descrito en las publicaciones precedentes (19). Se revistieron
placas de cultivo de poliestireno de 96 pocillos "Microtiter"
con 100 ml de carbonato sódico 50 mM pH 9,5, que contenían 0,2 mg
del anticuerpo monoclonal 9E10, que se dirige contra un epítope
c-myc, y las placas se conservan después a 4ºC
durante una noche. Los pocillos se lavaron después cinco veces con
TBS (Tris-HCl 50 mM, pH 7,5, NaCl 150 mM) que
contenía Tween al 0,05% y se mantienen durante 90 minutos a
temperatura ambiente en TBSMT (Tris-HCl 50 mM, NaCl
150 mM, leche desnatada liofilizada al 5% (p/v)). Todas las
incubaciones posteriores se realizaron a temperatura ambiente en un
mezclador a una velocidad de 700 rpm, después de cada periodo de
incubación, los pocillos se lavaron con TBS que contenía Tween al
0,05% (cinco veces cada periodo). Se realizaron los siguientes
periodos de incubación: (1) 2 horas con 50 ml de TBSMT que contenía
10 mg de CNTFR\alpha-myc; (2) 1 hora con 50 ml de
TBSMT que contenía 200 ng de gp130-flag, CNTF
biotinilado 5 nM, y los diversos competidores y (3) 45 minutos con
50 ml de TBS, albúmina de suero bovino al 5% (p/v), Tween 20 al
0,05% (v/v) que contenía 0,8 mg/ml de avidina conjugada con
fosfatasa
alcalina.
alcalina.
La actividad de la fosfatasa alcalina se
determinó a 37ºC usando p-nitrofenil fosfato 1 mg/ml en
dietanolamina-HCl 1 M, pH 9,8, y la absorbancia a
405 nm se midió después de 40-60 minutos usando un
lector adecuado. En algunos experimentos, la molécula variante de
MUT-DH biotinilado (0,5 nM) se usó como ligando.
El ensayo de competición mostró que la
sustitución de los restos Phe152 y Lys155 por alanina, no modifica
la interacción con el receptor CNTFR\alpha. Los dos mutantes
Lys155Ala/CNTF y Phe152Ala/Lys155Ala/CNTF fueron equipotentes con la
molécula de tipo silvestre en la unión al receptor. Como se ha
informado anteriormente (18), la molécula MUT-DH es
aproximadamente 40 veces más potente que CNTF en la unión al
receptor. En este caso, también los mutantes Phe152Ala/
/MUT-DH, Lys155Ala/MUT-DH y
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH fueron equipotentes con
la molécula original (MUT-DH) en la unión al
receptor. Estos resultados, que se resumen para mayor claridad en la
tabla 2, demuestran que los restos Phe152 y Lys155 no participan en
la unión al receptor CNTFR\alpha.
Se sabe a partir de la bibliografía, que las
moléculas gp130 y LIFR son capaces de unirse independientemente al
complejo CNTF/CNTFR\alpha (11). Para evaluar la importancia
funcional de los restos del diseño D1, se ensayó la capacidad de las
variantes de CNTF para ensamblarse a los complejos receptores con
las diferentes subunidades. El enlace del complejo
citoquina/CNTFR\alpha con gp130 o LIFR marcados con ^{35}S se
determinó usado ensayos de inmunoprecipitación como se ha descrito
en la bibliografía (11). El receptor CNTFR\alpha soluble se
inmovilizó sobre proteína A-Sefarosa usando el
anticuerpo monoclonal 9E10 anti-myc y se incubó con
gp130 o LIFR soluble marcado con azufre ^{35}S, en ausencia o en
presencia de diferentes cantidades de variantes de CNTF (1 ó 0,1
mg). Después de lavar, el material unido se eluyó y se sometió a
SDS-PAGE.
Como se muestra en la figura 1A, la unión de
gp130 al complejo MUT-DH/CNTFR\alpha no está
influenciada por las sustituciones de Phe152A (columna AK/DH),
Lys155A (columna FA/DH) y Phe152A/Lys155A (columna AA/DH). En
contraste, como se ha visto en la figura 1B, las variantes que
llevaban estas sustituciones solas o conjuntamente fueron incapaces
de unirse al receptor LIFR. Para ensayar la capacidad de las
variantes para formar el complejo tripartito
CNTFR\alpha/gp130/LIFR, el receptor LIFR se inmovilizó sobre la
proteína A-Sefarosa y se incubó con CNTFR\alpha
soluble, gp130 soluble marcado con ^{35}S y con las variantes de
CNTF (en este caso el experimento se realizó también dos veces sobre
dos cantidades diferentes de las moléculas variantes, 1 ó 0,1
mg).
En línea con los dos primeros resultados, las
moléculas variantes fueron incapaces de unirse al complejo
CNTFR
\alpha/gp130/LIFR, lo que corresponde a la forma fisiológicamente activa del receptor de CNTF en la superficie celular (véase Figura 1C).
\alpha/gp130/LIFR, lo que corresponde a la forma fisiológicamente activa del receptor de CNTF en la superficie celular (véase Figura 1C).
Estos resultados muestran que Phe152 y Lys155,
forman parte del sitio de unión del receptor LIFR.
La actividad biológica se determinó en ensayos
basados en células, capaces de medir la capacidad de CNTF (o de los
mutantes) para ensamblar un complejo receptor funcional entre CNTF
soluble y receptores LIF celulares. La línea celular de hepatoma
humano HepG2 no expresa CNTFR\alpha, mientras que si expresa el
receptor LIF y responde solamente a altas concentraciones de la
citoquina, probablemente por causa de una interacción de baja
afinidad de CNTF con los receptores LIF celulares (18, 13). El
ensayo se realizó de la siguiente manera. En primer lugar, las
células HepG2 se cultivaron en placas de 96 pocillos hasta que
formaron una única capa confluyente, después se situaron en un
medio de cultivo mínimo que contenía dexametasona 1 mM (14) y se
trataron durante 24 horas con CNTF purificado o con las moléculas
variantes ensayadas. La cantidad de haptoglobina secretada por las
células en el medio de cultivo se determinó usando un ensayo
ELISA.
Puesto que la secreción de haptoglobina está
mediada por el receptor celular LIFR se supone que las sustituciones
de aminoácidos que alteran la unión a este receptor conducirán a una
fuerte reducción en la actividad biológica de este tipo cuando se
compara con la molécula de tipo silvestre. En efecto, si la
sustitución de Phe152 o Lys155 por alanina da una actividad
biológica débil (aproximadamente el 20% con respecto al valor
máximo) a altas concentraciones, la sustitución simultanea de ambos
restos por alanina suprime completamente la actividad biológica,
incluso a altas concentraciones (figura 2A). En presencia de
CNTFR\alpha soluble, las células que llevan receptores LIFR y
gp130, se vuelven sensibles a concentraciones bajas de CNTF, debido
a la formación del complejo receptor completo. Como puede observarse
a partir de la figura 2B, el aumento en la concentración de
CNTFR\alpha exógeno, conduce a un cambio en la respuesta celular
hacia concentraciones bajas de CNTF y sus variantes.
Pasando a los análisis del comportamiento de
variantes sencillas, puede decirse que los mutantes Lys155Ala/CNTF
(FA-CNTF) y Lys155Ala/MUT-DH
(FADH-CNTF) tienen una actividad biológica que se
reduce fuertemente pero no se suprime totalmente. Por otro lado, la
sustitución por alanina del resto Phe152 (AKDH-CNTF)
reduce la actividad biológica de la molécula a un alcance menor que
la sustitución del resto Lys155, y la sustitución simultánea de
ambos restos (AADH-CNTF) suprime totalmente esta
actividad, incluso a altas concentraciones de tanto el receptor como
la citoquina.
Para determinar los efectos de las variantes
sobre el receptor neuronal de CNTF unido a membrana, las moléculas
se ensayaron para su capacidad para estimular esta actividad en
células de neuroblastoma humano (IMR-32) usando
procedimientos conocidos a partir de la bibliografía (15, 22). Estas
células expresan de forma constitutiva el receptor CNTFR\alpha. Se
descubrió que los receptores unidos a membrana de
IMR-32, eran menos sensibles que el receptor soluble
al efecto de las mutaciones sencillas en las posiciones 152 y 155.
El mutante Phe152Ala/MUT-DH era tan activo como la
citoquina de tipo silvestre, y las variantes Lys155Ala/CNTF y
Lys155Ala/MUT-DH se mostraron verdaderamente como
potentes agonistas. Sin embargo, en este caso también la sustitución
simultánea de los dos restos dio como resultado una pérdida total de
actividad biológica.
La alta actividad biológica de los mutantes
Phe152Ala y Lys155Ala en las células IMR-32 se debe
probablemente a la alta concentración local de subunidades de
receptor sobre la superficie de la célula. De hecho, se espera que
los mutantes de CNTF con una capacidad de unión al receptor LIFR
reducida, continúen manteniendo una actividad estimuladora potente
sobre otras poblaciones neuronales que expresan altos niveles de
complejos receptores de membrana, como por ejemplo los que
participan en las funciones motoras. Se cree que los efectos
secundarios resultantes de la administración de CNTF, por ejemplo
respuesta de fase aguda, están mediados por la acción que el
receptor CNTFR\alpha circulante ejerce sobre las células que
expresan el receptor LIFR (por ejemplo hepatocitos). Por lo tanto,
se espera que los mutantes de CNTF que muestran actividad débil
cuando interaccionan con el receptor soluble y por el contrario
muestran un alto nivel de actividad biológica cuando la interacción
es con los complejos receptores unidos a la membrana de la célula,
tengan una acción neuronal más específica, reduciendo los efectos
secundarios periféricos.
Se espera que los mutantes de CNTF que hayan
perdido la capacidad de unirse al receptor LIF, pero sean capaces
aún de ensamblar CNTFR\alpha y gp130 actuarán como antagonistas
competitivos. La inhibición de la actividad biológica de CNTF por
estos mutantes se ensayó en células IMR-32 usando el
procedimiento descrito en el Ejemplo 2. La proteína variante
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH provoca un cambio en la
curva de respuesta de CNTF hacia concentraciones altas de la
molécula agonista, demostrando que actúa como un antagonista
competitivo sobre el receptor CNTFR\alpha unido a membrana. Se
obtuvo una inhibición del 50% de la actividad de Cat inducida por
una dosis subsaturante de CNTF, con un exceso de 70 veces de
Phe152Ala/Lys155Ala/MUT-DH (Figura 4B).
Las mutaciones se introdujeron en las secuencias
de CNTF humano o S166D/Q167H/CNTF (DH-CNTF) mediante
PCR inversa (Hemsley y col., 1989), usando los vectores
pRSET-CNTF o
pRSET-MUT-DH (Solicitud de Patente
Italiana RM9500380) como plantillas. Los cebadores de
oligonucleótidos sintéticos se construyeron para situarlos "back
to back" ("espalda contra espalda") sobre el dúplex, con los
extremos 5' yuxtapuestos y los extremos 3' orientados para la
extensión en orientaciones opuestas alrededor del círculo del
plásmido. Los cebadores usados fueron:
cebador antisentido para FA-CNTF
y FADH-CNTF:
- 5' CGCCTTCTCAAAGAGCCACCATCTCCAAC3'
cebador antisentido para
AKDH-CNTF:
- 5' CTTCTTCTCAGCGAGACCACCATCTCCAAC3'
cebador antisentido para AA-CNTF
y AADH-CNTF:
- 5' CGCCTTCTCAGCGAGACCACCATCTCCAAC3'
Estos cebadores mutantes se usaron en PCR junto
con el cebador sentido de tipo silvestre:
- 5' CTGTGGGGCCTAAAGGTGCTG3'
El ADN plantilla (10 fmol), y las series de
cebadores (cada uno 1 mM) se incubaron en 100 ml de volumen de
reacción que contenía Tris-HCl 100 mM, pH 8,3, KCl
500 mM, MgCl_{2} 15 mM, cada dNTP a 0,2 mM y dos unidades de Taq
polimerasa (Boehringer).
La amplificación continuó a través de un ciclo
de desnaturalización a 94ºC (1 min), templando a 45ºC (1 min) y
extensión de los cebadores a 72ºC (12 min) para un total de 25
ciclos. Se analizaron cinco porciones de un microlitro de la muestra
generadas por PCR, en un gel de agarosa (0,7%) para determinar la
eficacia de la amplificación. El resto (95 ml) se trató con
fragmento de Klenow de polimerasa I de E. coli (20 unidades)
y los cuatro dNTP a la concentración final de 250 mM cada uno. La
mezcla de reacción se incubó a 37ºC durante 30 minutos. Se aisló
ADN de doble cadena de las mezclas de reacción de PCR usando el
sistema de purificación de ADN Wizard PCR preps (Promega) y se
fosforiló en el extremo 5' mediante incubación con 20 unidades de la
polinucleótido quinasa de T4 (Promega) y ATP 1 mM.
Las muestras de ADN fosforilado se sometieron
después a electroforesis en geles de agarosa (0,7%), y las bandas
apropiadas se extirparon y se purificaron usando un kit de
purificación de ADN Quiagen. Se usó un volumen de 10 microlitros de
ADN (de un total de 25 ml) en una reacción de ligasa que contenía
tampón de ligamiento de extremo romo convencional y ADN ligasa de T4
(12 unidades). Las mezclas de ligamiento se incubaron durante una
noche a 16ºC, y después se calentaron a 65ºC y se usaron para
transformar células competentes top10 de E. coli. Los
transformantes se aislaron y la identidad de los clones se confirmó
mediante análisis de secuencia de ADN.
Se descubrió que las secuencias que codifican
AA-CNTF y AADH-CNTF contenían 2
mutaciones adicionales (probablemente debidas a errores inducidos
por PCR) en los nucleótidos 208 y 435. La última mutación se eliminó
mediante PCR usando los siguientes cebadores sentido y
antisentido:
\newpage
sentido:
- 5'GTCACCATGGCTTTCACAGAGCATTCACCG3'
antisentido
- 5'AGCTCCTGCAGCACCTTTAGGCCCCACAGCGCCTTCTCAGCGAGACCACCATCTCCAACATT AAT3'
La PCR se realizó durante 30 ciclos de 140 seg.
a 94ºC, 140 seg. a 50ºC, y 190 seg. a 72ºC usando 2,5 unidades de
ADN polimerasa pfu (Stratagene), de acuerdo con las instrucciones
del fabricante. Los productos de PCR se aislaron como se ha descrito
anteriormente, se digirieron con NcoI (el sitio situado en el
nucleótido 2 de la secuencia que codifica CNTF) y PstI (sitio en el
nucleótido 484 de la se secuencia codificante) y se subclonaron en
los vectores pRSET-CNTF o
pRSET-DH-CNTF digeridos con
NcoI/PstI. Este procedimiento dió origen a vectores que contenían la
secuencia que codificaba AA-CNTF o
AADH-CNTF, con una mutación que permanecía en el
nucleótido 208. Esta mutación se eliminó mediante digestión de los
vectores con HindIII (sitio situado en el nucleótido 233 y al final
de la secuencia codificante), y la sustitución del fragmento de
restricción grande (que comprendía los nucleótidos 1 a 233) por el
fragmento correspondiente de pRSET-CNTF.
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11. De Serio A., Graziani R.,
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12. Savino R., Lahm A.,
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Ciliberto G. (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA
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13. Savino R., Ciapponi L.,
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Ciliberto G. (1994) EMBO J. 13:
5863-5870.
14. Robinson R.C., Grey L.M.,
Staunton D., Vankelekom H., Vernallis A.B.,
Moreau J.F., Stuart D.I., Heath J.K. y
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77:1101-1116.
15. Bazan E. (1991)
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16. Hemsley A., Arnheim N.,
Toney M.D., Cortopassi G. y Galas D.J.
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17:6545-6551.
17. Masiakowsky P., Liu H.,
Radziejewsky C., Lottspeich F., Oberthuer W.,
Wong V., Lindsay R.M., Furth M.E. y
Panayotatos N. (1991) J. Neurochem.
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18. Saggio I., Gloaguen I.,
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3045-3054.
19. Saggio I., Paonessa G.,
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20. Baumann H., Ziegler S.F.,
Mosley B., Morella K.K., Pajovic S. y
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8417.
21. Baumann H., Ziegler S.F.,
Mosley B., Morella K.K., Pajovic S. y
Gearing D.P. (1993) J.Biol.Chem. 268:
8414-8417.
8414-8417.
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152:35-39.
23. Rabinovsky E.D., Browder
D.P., y McManaman J.L. (1994) J. Neurosci. Res.
38:127-133.
INFORMACIÓN GENERAL
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- SOLICITANTE: INSTITUTO DI RECERCHE DI BIOLOGIA MOLECOLARE P.ANGELETTI S.p.A.
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TÍTULO DE LA INVENCIÓN: "VARIANTES DEL FACTOR NEUROTRÓFICO CILIAR HUMANO (hCNTF) CON UN INTERVALO DE ACCIÓN DIFERENTE DEL DE LA MOLÉCULA DE TIPO SILVESTRE".
\vskip0.800000\baselineskip
- (iii)
- NÚMERO DE SECUENCIAS: 7
\vskip0.800000\baselineskip
- (iv)
- DIRECCIÓN POSTAL:
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- DIRECCIÓN: Societa' Italiana Brevetti
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- CALLE: Piazza di Pietra, 39
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- CIUDAD: Roma
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- PAÍS: Italia
\vskip0.500000\baselineskip
- (E)
- CÓDIGO POSTAL: I-00168
\vskip0.800000\baselineskip
- (v)
- FORMA LEGIBLE POR ORDENADOR
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TIPO DE SOPORTE: Floppy disk 3,5'' 1,44 MBYTES
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- ORDENADOR: PC compatible con IBM
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- SISTEMA OPERATIVO: PC-DOS/MS-DOS Rev. 5.0
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- SOFTWARE: Microsoft Word 6.0
\vskip0.800000\baselineskip
- (viii)
- INFORMACIÓN DEL AGENTE
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: DI CERBO Mario (Dr.)
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- REFERENCIA: RM/X88808/PC-DC
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- INFORMACIÓN DE TELECOMUNICACIONES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- TELÉFONO: 06/6785941
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TELEFAX: 06/6794692
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TELEX: 612287 ROPAT
\vskip1.000000\baselineskip
(1) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 1
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- ASPECTO: desconocido
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia para CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 1
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Phe Glu Lys Lys Leu Trp Gly Leu Lys Val Leu
Gln Glu Leu Ser Gln}
\vskip1.000000\baselineskip
(2) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 2
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: desconocida
\vskip0.800000\baselineskip
- (ii)
- TIPO DE MOLÉCULA: proteína
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: (Ser166Asp/Gln167His)hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia para CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 2
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Phe Glu Lys Lys Leu Trp Gly Leu Lys Val
Leu Gln Glu Leu Asp His}
\vskip1.000000\baselineskip
(3) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 3
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: desconocida
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE:(Phe152Ala/Ser166Asp/Gln167His)hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia para CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 3
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ala Glu Lys Lys Leu Trp Gly Leu Lys Val Leu
Gln Glu Leu Asp His}
\vskip1.000000\baselineskip
(4) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 4
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: desconocida
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE:(Lys155Ala/Ser166Asp/Gln167His)hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia de CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 4
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Phe Glu Lys Ala Leu Trp Gly Leu Lys Val Leu
Gln Glu Leu Asp His}
\vskip1.000000\baselineskip
(5) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 5
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: desconocida
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: (Phe152Ala/Lys155Ala)hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia para CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 5
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ala Glu Lys Ala Leu Trp Gly Leu Lys Val Leu
Gln Glu Leu Ser Gln}
\vskip1.000000\baselineskip
(7) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 7
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: desconocida
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE:(Phe152Ala/Lys155Ala/Ser166Asp/Gln167His)hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia para CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 7
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Ala Glu Lys Ala Leu Trp Gly Leu Lys Val Leu
Gln Glu Leu Asp His}
\vskip1.000000\baselineskip
(6) INFORMACIÓN SOBRE LA SECUENCIA SEC ID
Nº: 6
\vskip0.800000\baselineskip
- (i)
- CARACTERÍSTICAS DE LA SECUENCIA
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- LONGITUD: 16 aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- TIPO: aminoácidos
\vskip0.500000\baselineskip
- (C)
- TIPO DE CADENA: sencilla
\vskip0.500000\baselineskip
- (D)
- TOPOLOGÍA: desconocida
\vskip0.800000\baselineskip
- (ix)
- CARACTERÍSTICAS ADICIONALES
\vskip0.500000\baselineskip
- (A)
- NOMBRE: (Lys155Ala)hCNTF
\vskip0.500000\baselineskip
- (B)
- INFORMACIÓN ADICIONAL: secuencia para CNTF humano de la posición 152 a la posición 167.
\vskip0.800000\baselineskip
- (xi)
- DESCRIPCIÓN DE LA SECUENCIA SEC ID Nº: 6
\vskip1.000000\baselineskip
\sa{Phe Glu Lys Ala Leu Trp Gly Leu Lys Val Leu
Gln Glu Leu Ser Gln}
Claims (8)
1. Una variante del factor neurotrófico
ciliar humano (hCNTF), donde dicha variante se caracteriza
por la sustitución de fenilalanina 152 y/o lisina 155 por alanina y
que comprende una secuencia de aminoácidos seleccionada entre la
secuencia indicada en SEC ID Nº: 3, SEC ID Nº: 4, SEC ID Nº: 5 o SEC
ID Nº: 7.
2. La variante de hCNTF de la
reivindicación 1, donde dicha variante comprende SEC ID Nº: 3.
3. La variante de hCNTF de la
reivindicación 1, donde dicha variante comprende SEC ID Nº: 4.
4. La variante de hCNTF de la
reivindicación 1, donde dicha variante comprende SEC ID Nº: 5.
5. La variante de hCNTF de la
reivindicación 1, donde dicha variante comprende SEC ID Nº: 7.
6. Una composición farmacéutica que
comprende como principio activo al menos uno de una variante del
factor neurotrófico ciliar humano (hCNTF) de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, y un vehículo
farmacéuticamente aceptable.
7. La variante de hCNTF de acuerdo con
una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, para uso en
terapia.
8. Uso de la variante de hCNTF de
acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5 o de la
composición de la reivindicación 6, para la fabricación de un
medicamento para el tratamiento de enfermedades
neurodegenerativas.
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IT1291114B1 (it) * | 1997-03-20 | 1998-12-29 | Angeletti P Ist Richerche Bio | Varianti del fattore neurotrofico ciliare (cntf) con migliorata selettivita' al recettore, e metodo per la loro selezione |
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