ES2246498T3 - Aislados antivirales obtenidos de sanguijuelas. - Google Patents
Aislados antivirales obtenidos de sanguijuelas.Info
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Abstract
SE PROPORCIONAN METODOS, SUSTANCIAS Y COMPOSICIONES DERIVADOS DE SANGUIJUELAS, BACTERIAS ASOCIADAS A SANGUIJUELAS O COMBINACIONES DE ELLAS PARA PREVENIR INFECCIONES DE LAS CELULAS DEL HUESPED POR RETROVIRUS. MAS ESPECIFICAMENTE, LA INVENCION ESTA RELACIONADA CON LA INHIBICION DE LA REPLICACION DEL VIH. ASI, LA INVENCION PROPORCIONA METODOS Y SUSTANCIAS PARA EL TRATAMIENTO Y LA PREVENCION DE LA INFECCION POR EL VIH Y DEL SIDA. LOS COMPUESTOS O MEZCLAS PUEDEN OBTENERSE POR TECNICAS DE EXTRACCION DE SOLVENTES U ETAPAS DE SEPARACION, Y SE ENSAYARON DE LA SIGUIENTE MANERA. SE INOCULARON DOS AISLADOS DE VIH FORMADOR DE SINCITIO, HIVAMS55 Y HIVAMS37, EN CELULAS MONONUCLEARES EN SANGRE PERIFERICA Y EN MONOCITOS. DURANTE 14 DIAS, SE CONTROLARON LOS EFECTOS CITOPATICOS (ECP) INDUCIDOS POR EL VIH (FORMACION DE SINCITIO) Y LA PRODUCCION DEL VIRUS DETERMINADA POR ELISA DE CAPTURA DEL ANTIGENO P24, TRAS LA ADICION DE EXTRACTOS DE CABEZA DE SANGUIJUELA. LOS RESULTADOS DE ESTOS ENSAYOS CON LA SUSTANCIA O SUSTANCIAS INHIBIDORAS DEL VIH PARCIALMENTE PURIFICADAS FUERON LOS SIGUIENTES: 3 FRACCIONES INHIBIERON TANTO LA FORMACION DE SINCITIO COMO EL ANTIGENO P24 EN UN 1100 % CON UNA CONCENTRACION DE 0,067 M, 0,5 M Y 0,17 M, RESPECTIVAMENTE, EN LOS DOS AISLADOS DE VIH. UNA CUARTA FRACCION SUFRIO UNA SERIE DE DILUCIONES E INHIBIO TANTO EL ECP COMO EL ANTIGENO P24 EN UN 100 % A PARTIR DE LA CONCENTRACION DE 0,5 M EN LOS DOS AISLADOS DE VIH.
Description
Aislados antivirales obtenidos de
sanguijuelas.
La presente invención se refiere al campo de
compuestos anti-virales, por ejemplo, en el campo de
enfermedades inmunes, particularmente enfermedades inmunes
adquiridas, más en particular a infecciones con virus de la
inmunodeficiencia humana.
Se describió una nueva inmunodeficiencia humana
con infecciones y malignidades oportunistas en 1981. Se descubrió
que el agente causante era un retrovirus, el Virus de la
Inmunodeficiencia Humana (VIH). La patogénesis de la enfermedad
comienza con la alteración y final agotamiento de las células de
linfocitos T4, conduciendo a una destrucción progresiva del sistema
inmune.
VIH es un retrovirus, que consta de un genoma de
ARN encapsulado rodeado por una membrana central de doble capa. Un
descubrimiento temprano fue la variación de las secuencias de
nucleótidos de ciertas partes del genoma, especialmente en el gen de
la cubierta (Shaw, y col, 1986).
Los genes gag y pol de VIH se traducen como dos
poliproteínas (Pr55gag y Pr160gag-pol) (Jacks, y
col, 1988). Estas se escinden posteriormente por la acción de una
proteasa codificada por el virus en cuatro proteínas estructurales
gag del núcleo del virión (p17, p24, p7 y p6) (Veronese, FD., y
col., 1987), y las enzimas codificadas por pol esenciales para la
replicación del retrovirus (proteasa, transcriptasa inversa,
ribonucleasa H, y endonucleasa).
El componente gp120 del precursor glicoproteico
del núcleo viral gp160 se une a CD4, un receptor celular del
subconjunto de células T susceptible con alta afinidad (Berman, y
col, 1989). Por lo tanto, el reconocimiento viral y la fusión de
CD4 con gp120 es un suceso fundamental en el ciclo infeccioso. Debe
observarse, sin embargo, que otros factores también pueden jugar un
papel: Los anticuerpos que neutralizan el bucle V3 de gp120 evitan
la infección incluso cuando no inhiben la unión a CD4 (Rusche, y
col, 1985), y
La infección productiva de monocitos, en ausencia
de proliferación y síntesis de ADN de linfocitos T, puede suceder y
sirve como depósitos de larga vida relativa del virus (Weinberg, y
col, 1991).
El desarrollo de fármacos frente a infección con
VIH hasta ahora se ha dirigido a evitar la fusión entre la proteína
de membrana CD4 y gp120 viral y a evitar por tanto la mediación de
VIH en la entrada al citoplasma de linfocitos T4. La vacunación con
gp120 recombinante (rgp120) condujo a la protección de chimpancés de
infección con VIH (Berman PW., y col, 1990). La fusión citopática de
células CD4 (sincitios) sucede en la expresión de gp120 en la
membrana plasmática. CD4 soluble bloquea la secreción y la expresión
en la superficie de gp120 evita dicha fusión celular (Buonocore
& Rose, 1990).
Otros intentos de desarrollar fármacos frente a
la infección con VIH hasta ahora se han centrado en la inhibición de
la transcriptasa inversa (RT) de VIH y la proteasa de VIH. RT es la
diana de AZT, el primer fármaco anti-VIH en uso
clínico. Se descubrió que un derivado de TIBO, R82150, inhibía el
50% de RT de VIH a una concentración de 3,1 \muM y 4,9 \muM
respectivamente para cepas virales diferentes (Pauwels, y col,
1990).
La inhibición de la proteasa de VIH se describe,
por ejemplo, en los documentos EP 541168, US5.196.438, y en el
documento WO092/08701. La inhibición de proteasas da como resultado
la producción de partículas virales no infecciosas y proteínas
precursoras gag y gag-pol no procesadas (Kohl, y
col, 1988; Loeb, y col, 1990). Las recientes descripciones que se
centran en la inhibición de la proteasa de VIH o RT de VIH en la
bibliografía de patentes son: los documentos WO 95/20384, WO
95/16688, WO94/06454, EP 0666755, EP 0666842, WO 95/14011, y muchos
más.
Se ha aislado un intervalo de VIH antigénicamente
distintos (incluso en un individuo) que provocan un problema
principal en el desarrollo de fármacos frente a VIH. Además, muchos
fármacos que parecen prometedores in vitro sufren del hecho
de que el virus es capaz de escapar de su efecto in vivo por
mutagénesis rápida.
La presente invención proporciona un nuevo grupo
de sustancias capaces de inhibir el Virus de la Inmunodeficiencia
Humana, que puede por tanto usarse para prevenir o combatir la
infección con VIH y/o SIDA.
Durante el ensayo en laboratorio de un intervalo
recientemente descubierto de inhibidores de proteasa de sanguijuelas
(véase, documento EP 94117053.2 y EP 95103637.5) se definieron
inhibidores de elastasa, quimiotripsina, tripsina, plasmina y
trombina potentes. Como la escisión proteolítica de los precursores
gag y env en el ciclo de replicación de VIH es una etapa importante,
se investigó si los inhibidores recientemente descritos tendrían un
efecto en dicha replicación del virus. El desarrollo de inhibidores
es un fundamento en el desarrollo de fármacos
anti-virales. El objetivo de dicho estudio fue
evaluar la capacidad antiviral de los inhibidores de proteasa, que
eran el asunto de los documentos EP 94117053.2 y EP 95103637.5, en
aislados primarios de VIH en la mayoría de los sistemas de ensayo
biológico de células primarias.
Se concluyó en las solicitudes de patente
anteriores, que la capacidad anti-viral estaba de
hecho presente en los inhibidores descritos. Sin embargo, ahora se
ha descubierto sorprendentemente, que una sustancia o grupo de
sustancias anti-virales mucho más potentes residía
en las extracciones con alcohol etílico de sanguijuela y cabeza de
sanguijuela originales. Estas sustancias o grupos de sustancias que
contenían dicha actividad sorprendente son el asunto de la presente
invención. Se han purificado y caracterizado las sustancias.
El documento US 5 246 715 describe inhibidores de
la agregación de plaquetas de la sangre obtenidos de la saliva de
sanguijuelas de la familia Hirudinidae con un peso molecular
menor de 2000 Da.
La presente invención, por tanto, proporciona un
procedimiento para obtener un aislado o compuesto que tiene
actividad inhibidora para virus, por ejemplo, para un virus de la
inmunodeficiencia humana, obtenido de sanguijuelas del filo
uniramia por técnicas de extracción con disolvente y que tiene un
peso molecular de 300-600, preferiblemente
400-500 Dalton. Preferiblemente, el compuesto se
obtiene de la subclase de euhirudinae, en particular se
obtiene del suborden hirudiniformes, preferiblemente el orden de
arhynchobdelidae. Son más preferidos los compuestos que se
obtienen de la familia hirudinidae, en particular aquellos
que se obtienen del género Limnatis, en particular la
especie L. nilotica. L. nilotica (Savigny, 1820, como el siguiente
de Autrum 1936) se describe como una "sanguijuela nasal" o
sanguijuela del caballo (Mouquin-Tandon 1846). Se
descubrió que estaba presente en toda el área litoral del
Mediterráneo (Harant, 1929; Jarry, 1959). Vive en fuentes naturales
y "oueds", y alimentos de ganado, perros y hombres (Blaise,
1874/5; Neveu & Lemaire, 1938; Turner, 1969; Keegan, y col,
1970).
Asombrosamente, los hábitos de alimentación de
esta sanguijuela difiere de otras sanguijuelas hematófagas.
Permanece unida a su huésped (cavidad nasal y laríngea) durante
periodos prolongados (semanas a meses). El animal se alimenta de su
huésped repetidamente. Se ha observado que la bebida de ganado
estaba infectada con estas sanguijuelas, que no se desprenden cuando
el ganado está bebiendo agua. Sólo las sanguijuelas gruesas, gordas,
de tamaño adulto se desprenden en dichas ocasiones. Por lo tanto,
está claro que esta Especie de sanguijuela está casi libre de
sustancias antigénicas o inmunogénicas en sus producciones mucosa y
de la glándula salival. Informes de animales huésped que mueren de
esta especie de sanguijuela mencionan la anemia como una causa
habitual, pero no se ha descrito un efecto antigénico directo. En un
aspecto la invención, por tanto, proporciona compuestos que tienen
actividad inhibidora de VIH que se puede obtener de la sanguijuela
Limnatis nilotica o fragmentos o derivados de dichos compuestos que
tienen actividad similar.
Dichos compuestos pueden obtenerse de todas las
partes y secreciones corporales de la sanguijuela, incluyendo saliva
y secreciones del intestino, intestinales y de la piel y mucus.
La fuente más adecuada para los compuestos de
acuerdo con la invención es probablemente la extracción con
disolvente de las cabezas de las sanguijuelas, o compuestos
asociados con estas cabezas.
La presente invención también proporciona un
procedimiento para obtener un compuesto que tiene actividad
inhibidora del virus de la inmunodeficiencia humana que comprende
deshidratar tejido de sanguijuela, preferiblemente cabezas de
sanguijuela, o secreciones preferiblemente saliva, opcionalmente
liofilizar el extracto resultante, suspender el material
liofilizado en una solución acuosa, centrifugar el material para
obtener un sedimento, cargar el sobrenadante resultante en un
columna de fraccionamiento por tamaño, eluir la columna con una
solución acuosa, recoger las fracciones del material eluido,
ensayar las fracciones para la actividad inhibidora del virus de la
inmunodeficiencia humana y recoger las fracciones activas.
Los aislados obtenidos por los procedimientos de
la invención tienen indudablemente una actividad
anti-viral. Sin desear unirse a una teoría, se
supone -por ejemplo, en base a los datos de ensayo analíticos de
este documento a continuación- que la actividad
anti-viral puede atribuirse a un ingrediente activo
que tiene la fórmula general
Ar^{1}-espaciador-Ar^{2}, en la
que Ar^{1} es un anillo aromático de seis miembros, que está
preferiblemente sustituido en posición para, por ejemplo, con un
grupo hidroxilo o un grupo amino, pudiendo el anillo de seis
miembros estar también sustituido en las otras posiciones con, por
ejemplo, grupos alquilo C_{1-4}, y halógenos; en
la que el espaciador contiene un grupo alquileno
C_{3-8} acoplado a través de un grupo hidrófilo,
tal como un grupo amido, a Ar^{1}; y en la que Ar^{2} es un
sistema de 2 anillos heteroaromático basado en átomos de carbono y
nitrógeno (teniendo el sistema de 2 anillos 9 o 10 átomos (sistemas
de anillo tipo purina o naftaleno)), pudiendo estar sustituido el
sistema de anillo con, por ejemplo, grupos alquilo
C_{3-8}, grupos hidroxi, grupos amino, halógenos
etc.; así como sales de adición, solvatos y dímeros de estos
aislados.
Sin embargo, no se puede descartar que otros
ingredientes de los aislados obtenidos sean los inhibidores potentes
o compuestos anti-virales o atribuirlo a la
actividad mostrada.
Preferiblemente, dicho procedimiento comprende
adicionalmente someter a las fracciones activas a una etapa de
separación adicional, preferiblemente usando una columna de HPLC.
Los aislados o compuestos obtenidos por estos procedimientos que se
han aislado hasta ahora tienen un bajo peso molecular. Cuando se
ensayaron estos compuestos para su capacidad inhibidora, se
descubrió que los compuestos o mezclas de compuestos de acuerdo con
la invención tienen actividad anti-viral en
general, por ejemplo, actividad inhibidora del virus de la
inmunodeficiencia humana en el intervalo micromolar. Se ha
descubierto, por ejemplo, que el aislado inhibe completamente la
formación de sincitio inducida por el virus de la inmunodeficiencia
humana o producción de p24 a concentraciones de 0,5 \muM,
preferiblemente 0,17 \muM, más preferiblemente 0,067 \muM. La
invención proporciona adicionalmente el uso de estos compuestos o
mezclas en la prevención o combate de infecciones con VIH y/o SIDA
y por tanto también proporciona una composición farmacéutica que
comprende al menos un compuesto de acuerdo con la invención y un
vehículo adecuado para su administración. En base al tipo y cantidad
de actividad de los compuestos y las cantidades toleradas, que
pueden determinarse en estudios animales usando dosis en aumento,
el especialista en la técnica será capaz de desarrollar estas
formulaciones farmacéuticas.
La administración puede conseguirse de cualquier
manera adecuada, aunque para algunos compuestos en aplicaciones
sistémicas pueden preferirse vías parenterales. Las dosificaciones
para estas sustancias pueden tomarse de la bibliografía y diseñarse
en base a actividades específicas de las sustancias, el peso
molecular de las sustancias, el peso del sujeto a tratar, el tipo de
aplicación, etc. La dosificación habitualmente estará entre 0,1
pg/kg y 10 mg/kg de peso corporal. Los excipientes adecuados son
bien conocidos en la técnica y varían de agua para inyección a
proteínas vehículo tales como albúmina de suero para, por ejemplo,
preparaciones liofilizadas y sustancias inertes tales como manitol,
celulosa y dextrano para comprimidos y granulados. El modo más
fácil es, por supuesto, proporcionar simplemente los compuestos en
agua estéril (o solución salina) para inyección.
Durante el trabajo de investigación con
inhibidores de proteasa obtenidos de L. nilotica, se observó
sorprendentemente que, cercana a la actividad de inhibición de la
replicación de VIH de los inhibidores de proteasa mencionados
anteriormente, otra fracción, obtenida de extractos con etanol de
cabezas de L. nilotica, era mucho más potente. Este grupo de
sustancias se llama SILIAVIR en la presente descripción.
En un sistema de ensayo biológico con células
primarias, que se describe adicionalmente a continuación, se
concluyó, que el extracto de cabeza de sanguijuela completa
mostraba una inhibición de la replicación de VIH dependiente de
dosis en dos aislados de VIH separados, siendo casi completa a una
concentración de 0,5 \muM (véase Tabla 1 y Tabla 2 de la Figura
1).
Los procedimientos en etapas de aislamiento y
purificación adicionales, condujeron finalmente a un grupo de
compuestos activos también llamados sustancias en este documento,
que tienen un peso molecular alrededor de 0,5 kD, que muestra, por
ejemplo, inhibición de la replicación de VIH al 100% a dichas
concentraciones bajas como 0,06 \muM.
Los efectos biológicos medidos aún no se han
relacionado con una de las estrategias conocidas en el desarrollo de
fármacos frente a virus, en particular retrovirus, y más
específicamente frente a VIH. Sin embargo, cualquiera de estas
estrategias bien conocidas podría estar implicada (por ejemplo,
inhibición de RT, sCD4, gp120 sustituto, inhibición de la proteasa
de VIH). Otros posibles medios de activación no están excluidos
(por ejemplo, aunque sin limitación: efectos en las células, así
como efectos en los virus estimulantes, o la combinación de ambos),
y se están investigando.
La presente invención revela las etapas de
aislamiento y purificación, en combinación con el sistema de ensayo
biológico en células primarias, que conduce a este grupo de
sustancias nuevas y únicas, que tienen las actividades específicas
descritas.
Se inocularon PBMC estimuladas con
fitohemaglutinina (PHA) de donantes sanos con dos aislados de VIH
diferentes (HIVAms 37 e HIVAms 55). Después de una exposición de dos
horas a los aislados de VIH, el inóculo se retiró y se añadieron
concentraciones seriadas de Siliavir a los cultivos. El medio se
cambió dos veces a la semana, se añadieron PBMC estimuladas con PMA
reciente cada semana. Los revestimientos tamponantes se exploran de
manera rutinaria para contaminantes virales y se usan sólo cuando
son negativos para estos contaminantes. La producción de virus en
los cultivos se controló con un ELISA de captura de p24, detectando
la proteína del núcleo p24 de VIH. Los cultivos también se
controlaron para la existencia de efectos citopáticos (formación de
sincitio).
Durante los dos primeros días después del
aislamiento de las células, se cultivaron leucocitos sanguíneos
periféricos primarios en Medio de Dulbecco Modificado por Iscove
(IMDM), suplementado con suero de ternera fetal (FCS) al 10%,
polibrene (5 \mug/ml), fitohemaglutinina (5 \mug/ml), penicilina
(100 IU/ml) y estreptomicina (100 IU/ml). Los blastos de células T
después se cultivaron adicionalmente en IMDM suplementado con FCS
al 10%, polibrene (5 \mug/ml), IL-2 recombinante
(10 IU/ml), penicilina (100 IU/ml) y estreptomicina (100
IU/ml).
Se prepararon inóculos de alto título de dos
aislados de VIH que inducen sincitio primario. Los títulos de la
solución madre se determinaron en un ensayo TCID50.
Durante los dos primeros días después del
aislamiento de las células, se cultivaron leucocitos sanguíneos
periféricos primarios en Medio de Dulbecco Modificado por Iscove
(IMDM), suplementado con suero de ternera fetal (FCS) al 10%,
polibrene (5 \mug/ml), fitohemaglutinina (5 \mug/ml), penicilina
(100 IU/ml) y estreptomicina (100 IU/ml). Los blastos de células T
después se cultivaron adicionalmente en IMDM suplementado con FCS al
10%, polibrene (5 \mug/ml), IL-2 recombinante (10
IU/ml), penicilina (100 IU/ml) y estreptomicina (100 IU/ml).
Se inocularon un total de 10^{7} PBMC
estimuladas con PHA con 10^{4} TCID50/ml de los aislados de VIH
primarios en un volumen de 1 ml durante 2 horas a 37ºC. Después de
2 horas, las células se lavaron en un volumen total de 30 ml.
Después de centrifugación, el sobrenadante se desechó para retirar
el virus no absorbido. Las células se resuspendieron posteriormente
a una concentración final de 10^{6}/ml. De cada suspensión
celular se transfirieron alícuotas de 100 \mul que contenían
10^{5} células a pocillos de una placa de cultivo tisular de 96
pocillos. Se hicieron diluciones de fracciones de Siliavir de
soluciones madre de 1 \muM, en medio de cultivo de modo que
después de la adición de 50 \mul a cada pocillo las
concentraciones finales en los pocillos fueron 0,063 \muM, 0,125
\muM, 0,25 \muM, y 0,5 \muM. Las células que recibieron medio
solo sirvieron como cultivos de control no tratados. Cada
concentración se analizó cuatro veces. Las células se cultivaron en
una atmósfera humidificada a 37ºC, CO_{2} al 5%. La adición de
10^{5} PBMC estimuladas con PHA recientes y medio se realizó en
el día 7. En paralelo, se añadió una nueva dosis de las mismas
concentraciones de Siliavir.
En los días 4 y 7, los cultivos se analizaron
para cualquier efecto citopático inducido por VIH reflejado por la
presencia de sincitios. En los días 7, y 14, se recogieron 30
\mul del sobrenadante del cultivo para analizar la presencia de
antígeno p24 en un ELISA de captura de antígeno p24. Para esto, dos
veces a la semana, se recogieron alícuotas de 30 \mul de los
cultivos y se inactivaron por la adición de 30 \mul de
Triton-X-100 al 0,2%. Se añadieron
15 \mul de esta mezcla a los pocillos de una placa ELISA de 96
pocillos revestida durante 2 horas a 37ºC con un anticuerpo
anti-p24 que había demostrado reconocer todos los
aislados de VIH. Se dejó el antígeno se uniera durante 2 horas a
37ºC. La unión de p24 se detectó con inmunoglobulina de conejo
anti-p24 marcada con peroxidasa de rábano rusticano
(90' a 37ºC). Después, se añadió el sustrato (TMB) y después de 20',
la reacción se paró por la adición de H_{2}SO_{4}.
Los resultados se presentan en las Tablas 1 y 2
(Figura 1). Las tablas se deben leer con lo siguiente en cuenta.
Para el cálculo del porcentaje de inhibición se
usó la siguiente fórmula
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+\hfil#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ producción de p24 en cultivos no tratados -\+\cr \+ producción
de p24 en cultivos expuestos a sustancia\+\cr Porcentaje de
inhibición = \+
--------------------------------------------------------------------
\+ x 100%\cr \+ producción de p24 en cultivos no
tratados\+\cr}
Los cultivos se consideraron positivos si:
Se observó formación de sincitios en al menos una
ocasión (los cultivos se examinaron dos veces a la semana) en
combinación con un contenido en antígeno p24 elevado en el
sobrenadante en al menos una ocasión.
- sincitio no observado en ninguno de los cuatro
cultivos replicados
\pm sincitio observado en uno de los cuatro
cultivos replicados
+ sincitio observado en dos de los cuatro
cultivos replicados
++ sincitio observado en tres de los cuatro
cultivos replicados
+++ sincitio observado en cuatro de los cuatro
cultivos replicados
Los efectos citopáticos inducidos por
VIH-1 (CPE), la producción de antígeno p24, y los
porcentajes de inhibición calculados se muestran en las Tablas 3 y 4
para la sustancia 1 y en las Tablas 1 y 2 para la sustancia 3.
Los datos para la producción de p24 representan
la media de cuatro cultivos replicados.
Los cultivos inoculados con 10^{2} TCID_{50}
permanecieron negativos para la producción de virus.
La sustancia tres, mencionada en estas tablas,
representa extracto de cabezas de sanguijuela completas. El
procesamiento, purificación y aislamiento del extracto se describen
a continuación.
Cada vez que tiene lugar una nueva etapa de
purificación (véase a continuación), se usa el sistema de ensayo
biológico describo como un "sistema de ensayo de afinidad"
para reducir adicionalmente las sustancias activas de la fracción
de extracto.
Se deshidrataron un total de 15 g de cabezas
cortadas de Limnatis nilotica congeladas en alcohol etílico al 94% a
temperatura ambiente. Se hicieron tres cambios de un total de 134
ml, después de lo cual se añadieron 400 ml de agua destilada, y el
extracto se liofilizó posteriormente en viales. Se recogió un total
de aproximadamente 90 mg de material liofilizado. (También se pueden
usar, como alternativa, cabezas picadas de estas sanguijuelas, o
usar las secreciones mucosas activadas de sanguijuelas vivas,
sumergiéndolas, por ejemplo, durante 10 minutos en alcohol etílico
al 4% a temperatura ambiente).
El material liofilizado (aproximadamente 90 mg)
primero se suspendió en 4,55 ml de agua destilada. Después de ello,
se añadieron tres porciones de 4,55 ml de agua destilada. Después se
diluyó adicionalmente el 50% de esta suspensión (9,1 ml) con 30 ml
de agua destilada, el otro 50% se almacenó a -20ºC. La suspensión
se dividió entre dos tubos de centrifugación y se centrifugaron. El
sedimento se almacenó a -20ºC. El 50% del sobrenadante también se
almacenó a -20ºC. El otro 50% del sobrenadante se cargó en una
columna de Sephadex G-75 (longitud 180 cm, diámetro
1,85 cm). El eluyente es agua destilada, el tamaño de fracción:
aproximadamente 4-7 ml; el flujo se ajustó de
aproximadamente 0,5 a 1 ml/min. Se tomaron muestras de un total de
149 fracciones y se midió la absorción a 214 nm. Se redujo el flujo
en la columna de su ajuste inicial de 1 ml/min a aproximadamente
0,5 ml/min y el tamaño de fracción disminuyó de 7 ml iniciales a 4
ml (fracción 1 a 25:aproximadamente 7 ml; fracción 26 a 29:
aproximadamente 6 ml; fracción 30 a 79:aproximadamente 5 ml y
fracción 80-149: aproximadamente 4 ml). Fue visible
una ligera opalescencia en las fracciones 19 a 24, mientras que fue
visible una precipitación en las fracciones 95 a 108. En base al
diagrama de absorción (Figura 2) y SDS-PAGE (Figura
3) se hicieron las siguientes combinaciones para ensayos
adicionales:
fracción 16 a 29 (aproximadamente 83 ml); nombre
de la muestra: 3A
fracción 30 a 75 (aproximadamente 230 ml);
nombre de la muestra: 3B
fracción 76 a 97 (aproximadamente 92 ml); nombre
de la muestra: 3C
fracción 98 a 130 (aproximadamente 132 ml);
nombre de la muestra: 3D.
La precipitación encontrada en la combinación 98
a 130 se almacenó a -20ºC.
El material total a través del gel de filtración
es aprox. 50% x 50% de 90 mg = aprox. 22,5 mg.
Las Muestras A a D se presentaron para ensayo con
el sistema de ensayo biológico usando células primarias como se ha
descrito, estimada cada muestra a 5 mg (pérdidas incluidas).
La estimación del peso de sustancia de las
muestras, es la siguiente:
Muestra 3A: 83 ml, que contenían 5 mg,
concentración 60 \mug/ml.
Muestra 3B: 230 ml, que contenían 5 mg,
concentración 22 \mug/ml.
Muestra 3C: 92 ml, que contenían 5 mg,
concentración 54 \mug/ml.
Muestra 3D: 132 ml, que contenían 5 mg,
concentración 38 \mug/ml.
De la Muestra 3A se añadió una fracción de 0,625
ml a 2,9 ml de agua destilada, 1 ml de medio de Dulbecco Modificado
por Iscove (IMDM) concentrado 5 veces y 0,5 ml de suero de Ternera
Fetal (FCS), dando como resultado de este modo una solución con una
concentración de 1 \muM.
De la Muestra 3B se añadió una fracción de 1,7 ml
a 1,8 ml de agua destilada, 1 ml de IMDM concentrado 5 veces y 0,5
ml de FCS, dando como resultado de este modo una solución con una
concentración de 1 \muM.
De la Muestra 3C se añadió una fracción de 0,694
ml a 2,8 ml de agua destilada, 1 ml de IMDM concentrado 5 veces, y
0,5 ml de FCS, dando como resultado de este modo una solución con
una concentración de 1 \muM.
De la Muestra 3D se añadió una fracción de 0,987
ml a 2,5 ml de agua destilada, 1 ml de IMDM concentrado 5 veces, y
0,5 ml de FCS, dando como resultado de este modo una solución con
una concentración de 1 \muM.
Todas las fracciones se filtraron a través de un
filtro de 0,22 \muM antes de su uso.
Los resultados se representan en las tablas y
adjuntos a estas. La Muestra 3A se representa en las Tablas 3 y 4 en
la Figura 4, la Muestra 3B en las Tablas 5 y 6 en la Figura 5, la
Muestra 3C en las Tablas 7 y 8 en la Figura 6, y la Muestra 3D en
las Tablas 9 y 10 en la Figura 7.
Resultados del ensayo biológico de las Muestras
3A a 3D.
Sólo la Muestra 3D mostró una inhibición de la
replicación de ambos aislados de virus en estudio dependiente de
dosis. La inhibición fue completa (100%) a una concentración de
0,125 \muM.
La Muestra 3D, que originalmente constaba de 132
ml, de los que se usó casi 1 ml en el sistema de ensayo biológico,
se analizó adicionalmente por HPLC en un sistema TFA.
El sistema TFA-HPLC comprende una
columna de nucleosil 10C18 que tiene una longitud de 150 mm y un
diámetro de 2 mm en un aparato HP 1090M, por la que el flujo es a
una velocidad de 350 \mul/min. El eluyente es un gradiente de A
al 100%/B al 0% a B al 100% y A al 0% en 120 minutos por lo que el
eluyente A es TFA al 0,05% (ácido trifluoroacético) en agua
destilada y el eluyente B es TFA al 0,03% en acetonitrilo.
Esta muestra, que constaba de aproximadamente 130
ml, se liofilizó, después de retener 1400 \mul. La sustancia
liofilizada se resuspendió en 1 ml de agua destilada y se
centrifugó. Se examinó el 0,1% del sobrenadante en HPLC analítica
(véase el resultado en el gráfico 95E038 en la Figura 8), y el 10%
del sobrenadante se separó después de HPLC preparativa (véase el
resultado en el gráfico 95E043 en la Figura 9). Cinco fracciones se
aislaron, liofilizaron, resuspendieron en agua, y liofilizaron otra
vez. Estas fracciones se llamaron 3D1, 3D2, 3D3, y 3D4 (véase
Figura 10), la fracción 3D5 se almacenó a -20ºC. Las muestras de las
fracciones 3D3 y 3D4 se analizaron por análisis de secuencia, y no
se detectó ninguna secuencia en ninguna fracción.
Las fracciones 3D1, 3D2, 3D3 y 3D4 se presentaron
para ensayo en el sistema de ensayo biológico como se ha descrito
anteriormente. La estimación de las cantidades de fracción después
de HPLC, y en base a la cromatografía, fue respectivamente: 120
\mug, 30 \mug, 50 \mug y 50 \mug.
Los resultados del ensayo de la inhibición de la
replicación de VIH con estas fracciones se representan en las Tablas
11 a 18 (Figuras 1-18).
Se concluyó que las subfracciones 3D3 y 3D4
mostraron un efecto inhibidor en la replicación de los dos aislados
de VIH primarios. La inhibición por la subfracción 3D3 fue completa
a una concentración de 0,25 \muM. La inhibición por la
subfracción 3D4 fue completa a una concentración de 0,063
\muM.
Las fracciones 3D3 y 3D4 se analizaron
adicionalmente por HPLC.
Por lo tanto, de la Muestra 3D (como se ha
especificado anteriormente) se tomó dos veces un 10% como material
de partida. Se realizaron dos realizaciones de HPLC preparativa
(misma técnica que antes) (véase cromatograma
95E058-2, Figura 19). Se aislaron por separado 10
fracciones (Nº 1 a 10) en los tiempos de elución de 22 y 32 minutos
(véase cromatograma con las fracciones en la Figura 20). Cuatro de
estas fracciones, Nº 6, 7, 8 y 9 se liofilizaron, resuspendieron en
agua destilada y liofilizaron otra vez y se presentaron otra vez
para ensayo en el sistema biológico como se ha descrito
anteriormente.
La estimación de cantidades de fracción dio: 1
\mug, 39 \mug, 7,5 \mug y 2,5 \mug respectivamente. Tres
fracciones (6, 8 y 9) se disolvieron en 1 ml de medio (IMDM) + FCS
al 10%, dando como resultado de este modo soluciones madre de 0,2
\muM para la fracción 5, 1,5 \muM para la fracción 8, y 0,5
\muM para la fracción 9. El 50% de estas soluciones madre se
añadió a 100 \mul de medio, proporcionando concentraciones
finales de 0,067 \muM para la fracción 6, de 0,5 \muM para la
fracción 8, y de 0,17 \muM para la fracción 9. Se hizo un
intervalo de dilución sólo de la fracción 7 (0,5 \muM, 0,25
\muM, 0,125 \muM y 0,063 \muM).
Estas cuatro fracciones ahora se rellamaron:
\alpha, \beta, \gamma y \delta respectivamente.
Los resultados fueron: inhibición de la
replicación de VIH completa (100%) para las fracciones \alpha,
\beta, \gamma y \delta a la concentración ensayada. Se
observó una inhibición dependiente de dosis para la fracción
\beta, siendo completa a una concentración de 0,5 \muM (véanse
Tablas 19 a 22 en las Figuras 21-24).
En un experimento adicional, se demostró, que de
la fracción \beta, podían aislarse varias fracciones. Por lo
tanto, se pasó la fracción 3D4\beta, aislada de cromatografía en
HPLC 95E058-2, en una RT-HPLC en
acetato de amonio.
La etapa de HPLC comprende la misma columna
descrita para TFA-HPLC al mismo caudal, siendo el
eluyente también un gradiente que va desde A al 100% y B al 0% a B
al 100% y A al 0% en 120 minutos, por lo que A y B en este sistema
son acetato de amonio al 0,1% en agua destilada a pH=6 (A) y
acetonitrilo al 100% (B).
El resultado de esta nueva cromatografía se
muestra en cromatograma: 95E070 (véase Figura 25).
La espectrometría de masas de las fracciones 3d3
y 3d4 (subfracciones 1 a 10) mostraron moléculas con masas entre 400
y 500 Dalton.
Las subfracciones 4, 5, 6, 8 y 10 se presentaron
para ensayarlas en el mismo sistema de ensayo biológico como se ha
descrito anteriormente.
Los resultados de ensayo mostraron baja actividad
de inhibición de la replicación de VIH para las subfracciones 4, 5,
6 y 10 hasta una concentración de 0,06 \muM. Las subfracciones 8
mostraron una inhibición de la replicación de VIH dependiente de
dosis con una inhibición del 100% para HIVams55 y una inhibición
del 90% para HIVams37 a una concentración de 0,046
\muM.
La subfracción 8 experimentó una serie de ensayos
para espectrometría de masas. Se determinó que esta subfracción
constaba de una mezcla de dos moléculas con masas de 426 y 440
D.
Las medidas de EN/EMEM para la subfracción
8^{426} y 8^{440} mostraron producciones positivas de las
siguientes masas: ambas tuvieron un grupo de 120 D, un grupo
de 17 D, un grupo de 18 D, y un grupo de 11D.
Difieren en un grupo de 42 D para 8^{426}, frente a un grupo de 56
D para 8^{440}. No se detectaron iones negativos.
La espectrometría de masas de otras fracciones en
las Muestras 3d3 y 3d4 (subfracciones 1 a 10) mostraron moléculas
con masas de aproximadamente 500 Dalton.
Se ejecutó una Espectrometría de Masas de Alta
Resolución por Electronebulización (EN-EMAR) sobre
las sustancias que mostraron inhibición de la replicación de VIH
(subfracción 8, Siliavir). Estas se definieron anteriormente en
este documento por procedimientos de aislamiento, purificación y
ensayo biológico.
Por lo tanto se usó el 10% de la subfracción 8 de
HPLC 95E085 (solubilizada en TFA al 0,1%).
Se encontraron dos moléculas separadas como
fracciones principales. Una de estas dos moléculas tuvo la masa de
426,164300 D (subfracción 8^{426} o Siliavir^{426}), la otra de
las dos moléculas con la masa de 440,1816 D (subfracción 8^{440}
o Siliavir^{440}). (Véase Figura 26). El experimento se ejecutó
con un instrumento Finnigan-MAT 900 al poder de
resolución de R = 10.000. Por consiguiente, se ejecutó una
espectrometría de masas secuencial
(CL-EM)^{n}, y que confirmó los
descubrimientos anteriores de medidas EN-EMEM.
Se ejecutó RMN con un instrumento Varian Unity
500 Mhz sobre Siliavir. Se preparó una muestra a partir del nuevo
material base para la que se prepararon extractos con etanol de
cabeza de sanguijuela sin tratar como antes. El material base
liofilizado se resuspendió con 50 ml de H_{2}O. Se realizó una
etapa de separación para separar las masas por debajo y por encima
de 3 kD. Por lo tanto, esta solución resuspendida se volvió a
repartir entre 8 tubos centriprep-3 (kD) y se
centrifugaron 4 veces. Los filtrados de cada etapa de filtración se
combinaron, liofilizaron y por consiguiente se resuspendieron en
HAc al 50%.
Posteriormente, como se describió anteriormente
en este documento, se realizó HPLC preparativa sobre el filtrado
resuspendido. Columna 7,7 x 250 mm (Nucleosil 10C18; flujo ajustado
a 2 ml/min; detección a 254 nm o 280 nm, sistema TFA; eluyente A es
TFA al 0,05%; eluyente B es TFA al 0,05% en acetonitrilo al 100%;
gradiente: B al 0% a B al 100% en 60 minutos). La fracción entre
24,2 y 27 minutos se recogió por separado (Véase HPLC analítica de
la Figura 27) y se liofilizó.
Esta fracción, separada, se resuspendió en 500
\mul de Hac al 50%, y se pasó otra vez a HPLC, con el sistema de
acetato de amonio. (Columna 7,7 x 250 mm; Nucleosil 10C18, flujo
ajustado a 2 ml/min, detección a 254 nm; sistema de Acetato de
Amonio (A.A.); eluyente A es A.A. al 0,1% en H_{2}O a pH=6;
eluyente B es acetonitrilo al 100% en 60 minutos).
Como esta muestra mostró una precipitación
dependiente de tiempo, se centrifugó y el sobrenadante y el
sedimento se analizaron por separado (Véase Figura 28 para el
cromatograma del sobrenadante, y Figura 29 para el cromatograma del
sedimento, que se resuspendió en 1,6 ml de HAC al 50%).
Las fracciones que eluyeron entre 24 y 27 minutos
tanto del pase del sobrenadante en HPLC como el pase del sedimento
en HPLC se recogieron, se combinaron y se liofilizaron. Se muestra
un cromatograma de HPLC analítica de este material recogido, que
consta tanto del componente Siliavir^{426} como Siliavir^{440},
en la Figura 30.
El material descrito se preparó y se resuspendió
con D_{2}O y DAc al 50% para su pase en el instrumento Varian
Utility 500 Mhz. Por separado, el sedimento resuspendido de la
Figura 29 anterior también se pasó por separado en el mismo
instrumento. Se hicieron diferentes tipos de Espectros de RMN (de
Protones, C13, DQCosy, y Noesy). Los resultados se muestran en las
Figuras 31-41 para los espectros de ambos
componentes juntos, mientras que los resultados para el sedimento
resuspendido (donde un componente, supuestamente Siliavir^{426},
está presente al 85% en la muestra, y el otro componente,
supuestamente Siliavir^{440}, está presente al 15%) se muestran
en las Figuras 42-49.
El instrumento usado para este experimento fue un
ISIDS-130 (Akhashi). La preparación del material de
ensayo se realizó con ambos componentes (Siliavir^{426} y
Siliavir^{440}). Los espectros mostraron picos para C, N, y O.
Además, se muestra un pico de Si, que probablemente deriva del
material de la columna de HPLC aunque no se puede excluir que
derive del compuesto activo. La presente de S en el espectro puede
atribuirse a un derivado del compuesto, por ejemplo, una sal, pero
también puede ser una contaminación. No se encontró P.
Se analizan los resultados de las medidas de RMN
sobre el material de ensayo que consta de la mezcla de los dos
componentes (como se muestra en las Figuras 31-41) y
de las medidas de RMN sobre el material que consta del 85% de un
componente y el 15% del otro componente (como se muestra en las
Figuras 42-49).
Un singlete a 9,3 ppm se correlaciona en HSQC a
148 ppm. Este puede ser un CH aromático aislado entre 2 N.
Dos dobletes a 6,75 y 7,54 ppm: 2 x 2 parejas de
protones con 8,5 Hz. Esta constante es comparable con tirosina, y
por lo tanto esto apunta a un anillo aromático sustituido en
posición para.
Este fragmento de fenilo tiene dos sustituyentes,
probablemente no directos a C ya que la interacción se pierde en el
espectro Noesy.
Dos singletes a 3,5 y 3,7 ppm: 2 x 3 protones.
Sin interacciones DQCosy y/o Noesy. Se correlaciona en HSQC a
aproximadamente 30 ppm. Estos son probablemente grupos
N-CH_{3}, y probablemente no grupos
O-CH_{3}. A causa de su posición en el campo
inferior, un sistema de anillo Z heteroaromático dimetilado, por
ejemplo, un fragmento tipo xantina (un alcaloide de purina), es una
probable explicación para estos picos junto con el pico de 9,3
ppm.
Un triplete a 3,7 ppm: 2 protones. Se
correlaciona en DQCosy con un multiplete a 1,72 ppm (2 protones);
este multiplete se correlaciona con el multiplete a 1,46 ppm (2
protones).
Un triplete a 3,4 ppm: 2 protones. Se
correlaciona en DQCosy con un multiplete a 1,65 ppm (2 protones);
este multiplete se correlaciona con el mismo multiplete a 1,46 ppm
(2 protones).
Se concluye a partir de estos tripletes y
multipletes que esto puede apuntar a un fragmento
X1-(CH_{2})_{5}-X5, en el que X_{1} y
X_{2} son lo más probablemente N, en base a las posiciones de
cambio químico de los CH_{2} alfa.
Señales a 1,2 y 1,4 ppm: probablemente artefactos
o contaminación.
Los átomos de azufre no parecen estar presentes a
partir de estos espectros de RMN.
Las señales de RMN de los dos componentes
muestran que estos son isómeros. Sólo difieren 14,0173 D, que puede
representar sólo CH_{2}. Por lo tanto, se concluye que Siliavir
440 es igual a Siliavir ^{426} más CH_{2}.
La presencia de los siguientes grupos se concluye
o supone:
Un anillo aromático sustituido en posición para,
masa = 76 + Y_{1} + Y_{2}.
Sistema AB en el anillo aromático, por ejemplo de
fórmula:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en la que Y_{1} puede ser, por
ejemplo, -OH, -CH_{2}OH, -N=C=O o -C(O)H, mientras
que Y_{2} puede ser un átomo de oxígeno, un grupo NH, un grupo N
sustituido con alquilo C_{1-3} o alquilo
(sustituido) C_{1-3},
C=O.
\newpage
Un fragmento pentano en el componente 426,
posiblemente hexano en el componente 440, por ejemplo, de
fórmula:
en la que X_{1} y X_{2} pueden
ser, por ejemplo: C, N, NCH_{3}, NSO_{4},
y
X_{3} a X_{4} pueden ser, por ejemplo: H,
NH_{2}, N=C=O o X_{3}+X_{4}, X_{5}+X_{6},
X_{7}+X_{8}, X_{9}+X_{10}, X_{11}+X_{12},
X_{13}+X_{14} pueden ser juntos un oxígeno a un grupo =NH.
Un heterociclo aromático metilado, por ejemplo,
fragmento tipo xantina, con dos grupos CH_{3}, por ejemplo, del
tipo:
en el que Z_{1}, Z_{2},
Z_{5}, Z_{7} pueden ser, por ejemplo: C, H, CH_{2}OH, OH,
NCO_{3}; y Z_{3}, Z_{4}, Z_{6}, Z_{8} pueden ser, por
ejemplo: C, H, CH_{3}, OH,
CH_{2}OH.
Un C-H entre dos N.
En base a las suposiciones anteriores, los
compuestos activos pueden ser compuestos de los tipos:
\global\parskip0.970000\baselineskip
en los que "\bullet" es un
átomo de carbono con uno o dos átomos de
hidrógeno.
Se puede concluir que la inhibición de la
replicación de VIH esta fuertemente presente en un grupo de
sustancias, que pueden atribuirse a aislados o moléculas separadas,
o combinación de moléculas en este grupo. El grupo de sustancias se
describe anteriormente en este documento por procedimientos para el
aislamiento y ensayo biológico.
El grupo de sustancias que contiene la inhibición
de la replicación de VIH comprende, por ejemplo:
3D3 y 3D4 como se ha descrito. Las moléculas
contenidas en este grupo de sustancias para la mayor parte tienen
pesos moleculares de alrededor de 500 Dalton.
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Claims (16)
1. Un procedimiento para obtener un compuesto que
tiene actividad anti-viral que comprende aplicar
una técnica de extracción con disolvente a un tejido o secreción de
una sanguijuela del filo uniramia y aislar un compuesto que tiene
actividad anti-viral y un peso molecular en el
intervalo de 300 a 600 Dalton.
2. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 1, en el que se aísla un compuesto que tienen
actividad inhibidora de VIH.
3. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 2, en el que se aísla un compuesto que tiene
actividad inhibidora de VIH en el intervalo micromolar.
4. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 3, en el que se aísla un compuesto que tiene una
actividad inhibidora de formación de sincitio inducida por VIH o
producción de p24 a una concentración de 0,5 \muM.
5. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 4, en el que se aísla un compuesto que tiene
actividad inhibidora de formación de sincitio inducida por VIH o
producción de p24 a una concentración de 0,17 \muM.
6. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 5, en el que se aísla un compuesto que tiene
actividad inhibidora de formación de sincitio inducida por VIH o
producción de p24 a una concentración de 0,067 \muM.
7. Un procedimiento de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1-6, en el que se aísla un
compuesto que tiene un peso molecular en el intervalo de 400 a 500
Dalton.
8. Un procedimiento de acuerdo con una cualquiera
de las reivindicaciones 1-7, en el que el compuesto
se aísla de una sanguijuela de la subclase euhirudinae.
9. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 8, en el que el compuesto se aísla de una
sanguijuela del suborden hirudiniformes orden
arhynchobdelidae.
10. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 9, en el que el compuesto se aísla de una
sanguijuela de la familia hirudinidae.
11. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 10, en el que el compuesto se aísla de una
sanguijuela del género Limnatis.
12. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 11, en el que el compuesto se aísla de un
sanguijuela de la especie Limnatis nilotica.
13. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 1-12, en el que
el compuesto se aísla de las cabezas de sanguijuelas.
14. Un procedimiento de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicación 1-13, que comprende
la deshidratación y extracción con disolvente de dicho tejido o
secreción de sanguijuela, opcionalmente liofilizar el extracto
resultante, suspender el material resultante en una solución
acuosa, centrifugar el material para obtener un sedimento, cargar
el sobrenadante resultante en una columna de fraccionamiento por
tamaño, eluir la columna con una solución acuosa, recoger
fracciones del material eluido, ensayar las fracciones para la
actividad anti-viral, recoger las fracciones
activas, someter opcionalmente las fracciones activas a una etapa
de separación adicional y asilar un compuesto que tiene actividad
anti-viral y un peso molecular en el intervalo de
300 a 600 Dalton.
15. Un procedimiento de acuerdo con la
reivindicación 14, en el que dicha etapa de separación adicional es
sobre una columna de HPLC.
16. Un procedimiento para preparar una
composición farmacéutica o medicamento que tiene actividad
anti-viral que comprende obtener un compuesto que
tiene actividad anti-viral por el procedimiento de
una cualquiera de las reivindicaciones 1-15 y
combinar el compuesto resultante con un vehículo adecuado para su
administración.
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