ES2225094T3 - Procedimiento para controlar el tamaño de liposomas. - Google Patents
Procedimiento para controlar el tamaño de liposomas.Info
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Abstract
Procedimiento para preparar una composición liposómica que comprende liposomas que tienen un tamaño deseado, comprendiendo el procedimiento (i) determinar una cantidad de disolvente lipídico requerida para lograr el tamaño deseado de liposomas a partir de un perfil de tamaño de liposomas como una función de la cantidad de disolvente lipídico en una mezcla de hidratación del disolvente lipídico y un segundo disolvente con el que el disolvente lipídico es miscible, y (ii) hidratar un lípido formador de vesículas disuelto en dicha cantidad determinada de disolvente lipídico con el segundo disolvente para formar la mezcla de hidratación, estando dicha cantidad determinada de disolvente lipídico comprendida entre 10 y 50 por ciento en peso.
Description
Procedimiento para controlar el tamaño de los
liposomas.
La presente invención se refiere a un
procedimiento para preparar una composición liposómica, el cual
proporciona control sobre el tamaño de los liposomas resultantes. La
invención se refiere además a composiciones preparadas según dicho
procedimiento.
Los liposomas son partículas acuosas esféricas
que están rodeadas por al menos una bicapa lipídica totalmente
cerrada, y que tienen típicamente un diámetro de alrededor de 70 nm
hasta 1.000 nm. Durante la última década los liposomas se han hecho
importantes como vesículas para transportar agentes farmacéuticos y
cosméticos. Tales agentes están encerrados en el compartimiento
acuoso, o se integran en la bicapa lipídica de los liposomas,
dependiendo de la hidrofilia del agente.
Los procedimientos para preparar liposomas ya son
conocidos en la técnica. Las vesículas de múltiples laminillas, esto
es, los liposomas que tienen más de una bicapa lipídica, se preparan
de la forma más simple depositando el lípido o lípidos formadores de
vesículas a partir de un disolvente orgánico en una película delgada
sobre la pared de un matraz mediante evaporación giratoria a presión
reducida. Se añade un tampón acuoso, y los lípidos se hidratan a una
temperatura por encima de la temperatura de fusión cristalina del
lípido, o por encima de la temperatura de fusión cristalina más
elevada del componente con el punto de fusión más alto en la mezcla
lipídica. La adición del tampón acuoso está acompañado con
agitación, por ejemplo, agitación mecánica, ultrasonidos, movimiento
de remolino, para obtener una suspensión de liposomas.
Después de la formación de los liposomas, éstos
se reducen al tamaño debido para obtener una distribución más
pequeña y/o más uniforme del tamaño de partículas. Un procedimiento
habitual para reducir el tamaño es la extrusión de la suspensión
liposómica a través de una serie de filtros con dimensiones
determinadas. Como alternativa, los liposomas se reducen de tamaño
sometiendo a ultrasonidos a la suspensión para romper los liposomas
en partículas más pequeñas.
Las vesículas de una única laminilla pequeñas y
grandes (SUV y LUV) son liposomas con una bicapa lipídica, y se
pueden preparar mediante un número de técnicas. Las SUV tienen
típicamente diámetros en el intervalo de 20-50 nm, y
se pueden formar mediante inyección rápida de una disolución diluida
de lípido en etanol en una fase acuosa, el denominado procedimiento
de inyección en etanol. Otra técnica para formar las SUV es
sometiendo vigorosamente a ultrasonidos a las vesículas de múltiples
laminillas. Las vesículas grandes de una sola laminilla pueden tener
un tamaño de varios cientos de nanometros hasta varios micrómetros,
y se forman típicamente mediante un procedimiento de evaporación de
fase inversa, en el que el disolvente orgánico de una emulsión de
agua en aceite de lípido, tampón y orgánico, se elimina a presión
reducida.
El documento WO 91/16039 describe un
procedimiento para la preparación de suspensiones liposómicas
acuosas que contienen sustancias activas, preparándose las
suspensiones a partir de una disolución de una sustancia formadora
de liposomas, o una mezcla de tales sustancias, en un alcohol
inferior con un máximo de tres átomos de carbono y una fase acuosa.
Los ingredientes activos se disuelven o suspenden en la disolución
lipídica y/o la fase acuosa. El procedimiento se caracteriza porque
la fase acuosa se incorpora, por mezclamiento, en la disolución
alcohólica, y el alcohol inferior se elimina por destilación a
vacío. Si es necesario, la suspensión liposómica se liofiliza.
En consecuencia, es un objetivo de la invención
proporcionar un procedimiento para preparar liposomas con un
diámetro deseado.
Es otro objetivo de la invención proporcionar un
procedimiento para obtener liposomas que tienen un tamaño
seleccionado.
Es un objetivo adicional de la invención
proporcionar un procedimiento para controlar el tamaño de liposomas
mediante la selección de la composición de la composición de
hidratación.
Según la presente invención, se proporciona un
procedimiento para preparar una composición liposómica que comprende
liposomas que tienen un tamaño deseado, comprendiendo el
procedimiento (i) determinar una cantidad de disolvente lipídico
requerida para lograr el tamaño deseado de liposomas a partir de un
perfil de tamaño de liposomas como una función de la cantidad de
disolvente lipídico en una mezcla de hidratación del disolvente
lipídico y un segundo disolvente con el cual el disolvente lipídico
es miscible, y (ii) hidratar un lípido formador de vesículas
disuelto en dicha cantidad determinada de disolvente lipídico con el
segundo disolvente para formar la mezcla de hidratación, estando
dicha cantidad determinada de disolvente lipídico entre
10-50 por ciento en peso.
En una realización, el disolvente lipídico es un
alcohol, tal como metanol, etanol o butanol.
El lípido formador de vesículas es, en otra
realización, un lípido formador de vesículas cargado, tal como el
lípido catiónico DODAC o el lípido aniónico DSPE. En otra
realización, el lípido formador de vesículas es un lípido de
vesículas neutro.
En aún otra realización, la hidratación incluye
además hidratar un lípido formador de vesículas derivatizado con una
cadena de polímero hidrófobo, tal como polietilenglicol.
El segundo disolvente en el procedimiento de la
invención, en una realización preferida, es agua.
En otra realización, la hidratación incluye
hidratar un agente terapéutico con el segundo disolvente. Como
alternativa, la hidratación puede incluir además hidratar un agente
terapéutico con el disolvente lipídico.
En una realización preferida, el agente
terapéutico es un radiosensibilizador con una o más cadenas
acílicas. Un radiosensibilizador derivatizado preferido es
dipalmitoil-5-yodo-2-desoxiuridina.
En otra realización, el agente terapéutico es un
ácido nucleico.
La invención incluye un procedimiento para
obtener liposomas que tienen un tamaño mínimo de partículas,
mezclando un lípido formador de vesículas en un disolvente lipídico,
y añadiendo un segundo disolvente para lograr una cantidad de
disolvente lipídico mayor que 10 por ciento en peso y menor que
alrededor de 50 por ciento en peso, en el que la cantidad de
disolvente lipídico se selecciona para obtener liposomas más
pequeños en tamaño que los liposomas que se preparan a partir de una
formulación similar excepto que tienen una cantidad de disolvente
lipídico menor que 10 por ciento en peso o mayor que 50 por ciento
en peso.
En una realización preferida, el perfil del
tamaño de los liposomas como función del contenido de disolvente
lipídico en la mezcla de hidratación se obtiene midiendo el diámetro
de los liposomas en la mezcla de hidratación, y repitiendo las
etapas de hidratación y de medición a diferentes cantidades de
disolvente lipídico para obtener el perfil. Basándose en el perfil,
se selecciona la cantidad de disolvente lipídico requerida para
lograr un diámetro seleccionado de partículas de liposomas.
Estos y otros objetivos y características de la
invención se pondrán más claramente de manifiesto a partir de la
lectura de la siguiente descripción detallada de la invención,
considerada conjuntamente con los dibujos adjuntos.
Las Figuras 1A-1B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de huevo,
colesterol, cloruro de
N,N-dioleoil-N,N-dimetilamonio
(DODAC) y ceramida derivatizada con polietilenglicol de
peso molecular 2000 daltons (PEG
C_{10}-ceramida) con un oligonucleótido atrapado,
en las que la composición de cada suspensión se indica en el
diagrama de fases de la Fig. 1A, y el diámetro medio de partículas,
en nm, de los liposomas en cada suspensión se representa
gráficamente en la Fig. 1B como función tanto del porcentaje en peso
de lípido como del porcentaje en peso de etanol;
las Figuras 2A-2B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de soja
parcialmente hidrogenada, colesterol, DODAC y un lípido neutro
derivatizado con mPEG (mPEG-DS), y que contienen un
oligonucleótido atrapado, en las que la composición de cada
suspensión se indica en el diagrama de fases de la Fig. 2A, y el
diámetro medio de partículas, en nm, de los liposomas en cada
suspensión se representa en la Fig. 2B como una función tanto del
porcentaje en peso de lípido como el porcentaje en peso de
etanol;
las Figuras 3A-3B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de soja
parcialmente hidrogenada, colesterol, DODAC y un lípido aniónico
(diestearoilfosfatidil-etanolamina, DPSE)
derivatizado con metoxi-polietilenglicol
(mPEG-DSPE), y que tienen un oligonucleótido
atrapado, en las que la composición de cada suspensión se indica en
el diagrama de fases de la Fig. 3A, y el diámetro medio de
partículas, en nm, de los liposomas en cada suspensión se representa
gráficamente en la Fig. 3B, como una función tanto del porcentaje en
peso del lípido como del porcentaje en peso de etanol;
las Figuras 4A-4B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de soja
parcialmente hidrogenada, colesterol y mPEG-DSPE, en
las que la composición de cada suspensión se indica en el diagrama
de fases de la Fig. 4A, y el diámetro medio de partículas, en nm, de
los liposomas de cada suspensión se representa en la Fig. 4B como
una función tanto del porcentaje en peso de lípido como del
porcentaje en peso de etanol;
las Figuras 5A-5B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de soja
parcialmente hidrogenada y colesterol, en las que la composición de
cada suspensión se indica en el diagrama de fases de la Fig. 5A, y
el diámetro medio de partículas, en nm, de los liposomas de cada
suspensión se representa en la Fig. 5B como una función tanto del
porcentaje en peso de lípido como del porcentaje en peso de
etanol;
las Figuras 6A-6B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de soja
parcialmente hidrogenada, colesterol y mPEG-DSPE, en
las que la composición de cada suspensión se indica en el diagrama
de fases de la Fig. 6A, y el diámetro medio de partículas, en nm, de
los liposomas de cada suspensión se representa en la Fig. 6B como
una función tanto del porcentaje en peso de lípido como del
porcentaje en peso de etanol;
las Figuras 7A-7B corresponden a
suspensiones liposómicas preparadas con fosfatidilcolina de soja
parcialmente hidrogenada y colesterol, en las que la composición de
cada suspensión se indica en el diagrama de fases de la Fig. 7A, y
el diámetro medio de partículas, en nm, de los liposomas de cada
suspensión se representa en la Fig. 7B como una función tanto del
porcentaje en peso de lípido como del porcentaje en peso de
etanol;
la Fig. 8 es un esquema de reacción sintético
para la síntesis de
3',5'-dipalmitoil-5-yodo-2'-desoxiuridina;
la Fig. 9 es un gráfico del tamaño de liposomas,
en nm, como función del porcentaje en peso de etanol durante la
hidratación de lípidos liposómicos compuestos de HSPC,
mPEG-DSPE y dpIUdR; y
la Fig. 10 es un diagrama de fases para la
formación de liposomas que incluyen dpIUdR en etanol, agua, y
muestra una región preferida de operación.
"Lípido formador de vesículas" se refiere a
cualquier lípido capaz de formar parte de una composición micelar o
liposómica estable, e incluye típicamente una o dos cadenas
hidrocarbonadas acílicas hidrófobas o un grupo esteroide, y puede
contener un grupo químicamente reactivo, tal como una amina, ácido,
éster, aldehído o alcohol, en su grupo de cabeza polar.
"Disolvente lipídico" se refiere a cualquier
disolvente capaz de disolver a un líquido formador de vesículas, a
cualquier temperatura.
"Segundo disolvente" se refiere a un
disolvente que es completa o parcialmente miscible, en alguna
proporción, con el disolvente lipídico.
"dpIUdR" se refiere a
3',5'-dipalmitoil-5-yodo-2'-desoxiuridina.
"DODAC" se refiere al lípido catiónico
cloruro de
N,N-dioleoil-N,N-dimetilamonio.
"mPEG-DSPE" se refiere a
diestearoilfosfatidil-etanolamina (DPSE)
derivatizada con metoxi-polietilenglicol
(mPEG). El mPEG puede tener un peso molecular entre 500-20.000 daltons, preferiblemente entre 1.000-5.000 daltons.
(mPEG). El mPEG puede tener un peso molecular entre 500-20.000 daltons, preferiblemente entre 1.000-5.000 daltons.
"mPEG-DS" se refiere a un
lípido neutro formador de vesículas derivatizado con mPEG.
En un aspecto, la invención incluye un
procedimiento para preparar liposomas en el que se controla el
tamaño de partículas de los liposomas. En otro aspecto, el
procedimiento proporciona un medio para obtener liposomas que tienen
un tamaño deseado de partículas, y un medio para obtener una
suspensión liposómica que tiene un tamaño mínimo de partículas.
Estos aspectos se describirán ahora por medio de los Ejemplos
1-8.
El Ejemplo 1 describe la preparación de una
suspensión de liposomas en la que los lípidos que forman los
liposomas estaban compuestos de fosfatidilcolina de huevo (EPC),
colesterol, DODAC y PEG C_{20}-ceramida, en una
relación molar 50:25:15:10. Los lípidos se disolvieron en etanol. Se
hidrataron partes alícuotas de la mezcla de lípidos con una
disolución acuosa que contiene 20 mg/ml de un oligonucleótido de 34
bases de longitud, para formar seis suspensiones liposómicas con
concentraciones variables de etanol. Las composiciones de las
suspensiones se indican en el diagrama de fases de la Fig. 1A, y,
como se puede ver, tienen aproximadamente 0,6 por ciento en peso de
lípido o aproximadamente 6 por ciento en peso de lípido. Los
porcentajes en peso de etanol en el lípido de 0,6% fueron 9,5, 19,3
y 39. Los porcentajes en peso de etanol en el lípido de 6% fueron
5,9, 15,8 y 35,5. La Tabla 1 en el Ejemplo 1 resume la composición
de cada suspensión liposómica.
El diámetro medio de partículas de cada
suspensión se midió mediante dispersión de luz cuasiestática, justo
después de la hidratación. Los resultados se dan en la Tabla 1
(véase Ejemplo 1 a continuación), y se representan gráficamente en
la Fig. 1B frente al porcentaje en peso de lípido y el porcentaje en
peso de etanol. Como se observa en la Figura, para cada una de las
composiciones en los dos niveles de lípidos (0,6% en peso y 6% en
peso), hay un intervalo de disolvente lipídico en el que se minimiza
el diámetro de los liposomas. Para los liposomas que tienen
aproximadamente 0,6% en peso de lípidos, desde alrededor de
12-35% en peso de etanol el tamaño de partículas de
los liposomas es menor que 100 nm. Para los liposomas que tienen
aproximadamente 6% en peso de lípidos, el efecto de un tamaño mínimo
de partículas a un intervalo seleccionado de etanol es más evidente,
puesto que el tamaño de los liposomas se minimiza entre
6-35 por ciento en peso de etanol.
El Ejemplo 2 proporciona un ejemplo adicional del
procedimiento de la invención, en el que se controla el tamaño de
partículas de los liposomas mediante la composición de la mezcla de
hidratación, por ejemplo, mediante la cantidad de disolvente
lipídico y de segundo disolvente. En este ejemplo, se prepararon
liposomas compuestos de fosfatidilcolina de soja parcialmente
hidrogenada (PHSPC), colesterol, DODAC y
mPEG-DS, en una relación molar 50:25:15:10. Los
lípidos se disolvieron en etanol y se hidrataron con una disolución
acuosa que contiene un oligonucleótido de 34 bases de longitud. Se
prepararon nueve suspensiones liposómicas de composición variable de
la mezcla de hidratación, y cada composición se muestra en el
diagrama de fases en la Fig. 2A.
El diámetro medio de las partículas de los
liposomas en cada suspensión se midió justo después de la
hidratación, y nuevamente después del almacenamiento durante toda la
noche a 5ºC. Los resultados se muestran en la Tabla 2 a
continuación, y los diámetros medidos justo después de la
hidratación se representan gráficamente en la Fig. 2B como una
función del porcentaje en peso de etanol y del porcentaje en peso de
lípido. Como se observa en la figura, hay una fuerte relación entre
la cantidad de disolvente lipídico y el tamaño de los liposomas. Más
específicamente, hay un intervalo en el que se minimiza el diámetro
de los liposomas. Este intervalo, para esta mezcla lipídica
particular, cae entre 5-30 por ciento en peso de
etanol. El tamaño más pequeño de los liposomas se obtuvo con 12,9
por ciento en peso de etanol, aumentando el tamaño de los liposomas
a medida que la cantidad de etanol aumenta o disminuye desde 12,9
por ciento en peso.
En consecuencia, en un aspecto, la invención
incluye un procedimiento para obtener liposomas que tienen un
diámetro mínimo llevando a cabo un estudio como se establece en el
Ejemplo 2. Esto es, un lípido formador de vesículas, o mezcla de
lípidos, se solvata con un disolvente lipídico y se hidrata con un
segundo disolvente para formar los liposomas. Se varía el porcentaje
de disolvente lipídico en la mezcla de hidratación resultante, y se
determinan los tamaños de los liposomas. Se establece un perfil de
tamaño de liposomas como función del contenido de disolvente
lipídico, para determinar la composición de la mezcla de hidratación
que da como resultado el diámetro mínimo de los liposomas. Se
apreciará que el perfil se puede usar para determinar el diámetro
mínimo de los liposomas a una concentración particular de disolvente
lipídico, y también para determinar el contenido de disolvente
lipídico en la composición de hidratación para lograr cualquier
tamaño deseado de liposomas.
Se realizaron estudios adicionales en apoyo de la
invención para examinar el efecto de la composición lipídica en el
procedimiento. En el Ejemplo 3, se formaron liposomas usando un
conjugado de lípido PEG monoaniónico, cargado,
mPEG-DSPE. Se prepararon nueve suspensiones
liposómicas, y la composición de cada una se muestra en el diagrama
de fases de la Fig. 3A. Se determinó el tamaño de partículas en cada
suspensión mediante dispersión de luz, y los valores se dan en la
Tabla 3, más abajo, y se representan gráficamente en la Fig. 3B. Al
observar la Fig. 3B es fácilmente manifiesta la correlación entre el
tamaño de los liposomas y el contenido de disolvente lipídico, en la
que, a los porcentajes de etanol entre alrededor de
15-35, se minimiza el diámetro de los liposomas.
En los Ejemplos 1-3, las
composiciones liposómicas incluyeron un lípido neutro formador de
vesículas, o un lípido aniónico formador de vesículas, y un lípido
catiónico formador de vesículas. Para uso en la invención, son
adecuados cualquiera de los lípidos formadores de vesículas
conocidos por los expertos en la técnica, e incluyen aquellos
lípidos que pueden formar espontáneamente vesículas bicapas en
agua, como se ejemplifica mediante los fosfolípidos, con el resto
hidrófobo en contacto con la región hidrófoba interior de la
membrana bicapa, y el resto del grupo de cabeza orientado hacia la
superficie polar exterior de la membrana.
Los lípidos formadores de vesículas de este tipo
son preferiblemente aquellos que tienen dos cadenas hidrocarbonadas,
típicamente cadenas acílicas, y un grupo de cabeza, ya sea polar o
no polar. Hay una variedad de lípidos sintéticos formadores de
vesículas y lípidos de origen natural formadores de vesículas,
incluyendo los fosfolípidos, tales como fosfatidilcolina,
fosfatidiletanolamina, ácido fosfatídico, fosfatidilinositol, y
esfingomielina, en los que las dos cadenas hidrocarbonadas tienen
típicamente entre alrededor de 14-22 átomos de
carbono de longitud, y tienen grados variables de insaturación. Los
lípidos y fosfolípidos anteriormente descritos cuyas cadenas
acílicas tienen grados variables de saturación se pueden obtener
comercialmente o se pueden preparar según procedimientos publicados.
Otros lípidos adecuados incluyen glicolípidos, cerebrósidos y
esteroles, tales como colesterol.
Los lípidos catiónicos también son adecuados para
uso en los liposomas de la invención, en los que el lípido catiónico
se puede incluir como un componente minoritario de la composición
lipídica, o como un componente mayoritario o como el único
componente. Tales lípidos catiónicos tienen típicamente un resto
lipófilo, tal como un esterol, una cadena acílica o diacílica, y en
los que el lípido tiene una carga global neta positiva.
Preferiblemente, el grupo de cabeza del lípido tiene la carga
positiva. Ejemplos de lípidos catiónicos incluyen cloruro de
N,N-dioleoil-N,N-dimetilamonio
(DODAC);
1,2-dioleoiloxi-3-(trimetilamino)propano
(DOTAP); bromuro de
N-[1-(2,3-ditetradeciloxi)propil]-N,N-dimetil-N-hidroxietilamonio
(DMRIE); bromuro de
N-[1-(2,3-dioleoiloxi)propil]-N,N-dimetil-N-hidroxietilamonio
(DORIE); cloruro de
N-[1-(2,3-dioleoiloxi)propil]-N,N,N-trimetilamonio
(DOTMA);
3-[N-(N',N'-dimetilaminoetano)carbamoil]colesterol
(DC-Chol); y bromuro de dimetildioctadecilamonio
(DDAB).
El lípido catiónico formador de vesículas también
puede ser un lípido neutro, tal como dioleoilfosfatidiletanolamina
(DOPE), o un lípido anfipático, tal como un fosfolípido,
derivatizado con un lípido catiónico, tal como polilisina u otros
lípidos poliamínicos. Por ejemplo, el lípido neutro (DOPE) se puede
derivatizar con polilisina para formar un lípido catiónico.
\newpage
También se contemplan otros lípidos que se
incorporan establemente en bicapas lipídicas, e incluyen esteroides,
tales como colesterol.
También en los Ejemplos 1-3 se
incluyó un lípido formador de vesículas derivatizado con un polímero
hidrófilo en la mezcla lipídica. Como se ha descrito, por ejemplo en
la Patente U.S. nº 5.013.556, la inclusión de tal lípido
derivatizado en la composición liposómica forma un revestimiento en
la superficie de cadenas poliméricas hidrófilas alrededor del
liposoma. El revestimiento de superficie de las cadenas poliméricas
hidrófilas es eficaz para aumentar el tiempo de vida de la
circulación sanguínea in vivo de los liposomas, cuando se
compara con los liposomas que carecen de tal revestimiento. Son
adecuados otros polímeros hidrófilos conjugados con cualquiera de
los lípidos citados anteriormente, e incluyen polivinilpirrolidona,
polivinilmetiléter, polimetiloxazolina, polietiloxazolina,
polihidroxipropiloxazolina, polihidroxipropilmetacrilamida,
polimetacrilamida, polidimetilacrilamida, poli(metacrilato de
hidroxipropilo), poli(acrilato de hidroxietilo),
hidroximetilcelulosa, hidroxietilcelulosa, polietilenglicol,
poliaspartamida y secuencias de péptidos hidrófilos. Los polímeros
se pueden emplear como homopolímeros o como copolímeros de bloques o
aleatorios, como se describe en las Patentes U.S. nº 5.395.619 y nº
5.631.018. Una cadena polimérica hidrófila preferida es
polietilenglicol (PEG), preferiblemente como una cadena de PEG que
tiene un peso molecular entre 500-10.000 daltons,
más preferiblemente entre 1.000-5.000 daltons.
También se prefieren como polímeros hidrófilos los análogos de PEG
terminados en sus extremos con grupos metoxi o etoxi, comercialmente
disponibles en una variedad de tamaños de polímeros, por ejemplo,
120-20.000 daltons.
La preparación de lípidos formadores de vesículas
derivatizados con polímeros hidrófilos se ha descrito, por ejemplo,
en la Patente U.S. nº 5.395.619. También se ha descrito la
preparación de liposomas que incluyen tales lípidos derivatizados,
en los que se incluye en la formulación liposómica entre
1-20 por ciento en moles de tal lípido
derivatizado.
El lípido formador de vesículas, o mezcla de
lípidos, seleccionado se solvata en un "disolvente lipídico".
Como se usa aquí, "disolvente lipídico" se refiere a un
disolvente orgánico en el que son solubles los componentes lipídicos
del liposoma, a cualquier temperatura. Los ejemplos de disolventes
lipídicos incluyen alcoholes, tales como metanol, etanol, butanol,
etc., y polioles de bajo peso molecular, tales como glicerol,
propilenglicol, y etilenglicol. Los lípidos se añaden al disolvente
en la relación molar deseada, y se mezclan hasta que se disuelven,
con calentamiento si es necesario. Entonces se añade una cantidad de
un segundo disolvente a la mezcla de disolvente lipídico para formar
una mezcla de hidratación. El segundo disolvente, como se usa aquí,
se refiere a un disolvente que es miscible con el disolvente
lipídico en alguna proporción, y preferiblemente es miscible con el
disolvente lipídico en la mezcla de hidratación resultante. El
segundo disolvente se añade a la mezcla de disolvente lipídico en
una cantidad suficiente para llevar al porcentaje en peso del
disolvente lipídico hasta un punto seleccionado entre alrededor de
10-50 por ciento en peso, más preferiblemente en un
intervalo de porcentaje en peso de disolvente lipídico de
15-45, lo más preferible en un intervalo de
porcentaje en peso de disolvente lipídico de 20-40,
para obtener liposomas que tienen un tamaño deseado, como se
describe anteriormente.
Los Ejemplos 4-8 describen
estudios adicionales que usan mezclas lipídicas de liposomas sin
lípido catiónico (DODAC) y sin polinucleótido. En el Ejemplo 4, se
prepararon mezclas lipídicas de HSPC, colesterol y
mPEG-DSPE, en una relación molar de 50,6:40,3:5,1.
Las mezclas se hidrataron con un disolvente acuoso para formar nueve
suspensiones liposómicas con un contenido variable de etanol a las
tres concentraciones lipídicas (0,9, 3,1 y 4,7% en peso). Las
composiciones se muestran en el diagrama de fases de la Fig. 4A, y
se dan en la Tabla 4 más abajo. Los tamaños de los liposomas se
midieron y se representaron gráficamente en la Fig. 4B como función
del contenido de lípido y de etanol. A los tres porcentajes de
lípidos, el tamaño de los liposomas se minimiza a concentraciones de
etanol entre alrededor de 5-35 por ciento en peso de
etanol.
El Ejemplo 5 proporciona una mezcla lipídica que
no incluye un lípido derivatizado con un polímero hidrófilo. En el
Ejemplo 5, se usó la mezcla lipídica del Ejemplo 4, excepto el
mPEG-DSPE (relación molar HSPC:colesterol de
53,1:46,9), para preparar nueve suspensiones liposómicas a
porcentajes en peso de lípido de 0,9, 2,9 y 4,3. El contenido de
etanol varió entre 4-39 por ciento en peso, y la
composición de cada suspensión preparada se indica en el diagrama de
fases de la Fig. 5A. En la Fig. 5B se muestran los tamaños de
partículas como una función del contenido de lípido y de etanol, y,
como se puede observar, el procedimiento de la invención para
controlar el tamaño de los liposomas mediante la composición de la
mezcla de hidratación, y especialmente mediante el contenido del
disolvente lipídico, es evidente incluso en ausencia del lípido
derivatizado. Como antes, entre 5-35 por ciento en
peso de disolvente lipídico, el tamaño de los liposomas se
correlaciona con el contenido de disolvente lipídico.
El Ejemplo 6 describe la preparación de
suspensiones liposómicas que usan una mezcla lipídica de HSPC,
colesterol y mPEG-DSPE, en una relación molar de
65,4:38,3:5,3. La composición de cada suspensión se muestra en el
diagrama de fases de la Fig. 6A, y los diámetros de los liposomas se
representan gráficamente en la Fig. 6B como una función de los
contenidos de lípido y de etanol. El tamaño de los liposomas se
minimiza cuando el contenido de etanol en la mezcla de hidratación
está entre alrededor de 5-35 por ciento en peso. El
tamaño mínimo de los liposomas a cada concentración de lípidos cae
entre alrededor de 15-20 por ciento en peso de
etanol, aumentando el tamaño de los liposomas a medida que aumenta o
disminuye el contenido de etanol de este intervalo.
El Ejemplo 7 describe la preparación de
suspensiones liposómicas como las del Ejemplo 6, excepto que se
omite el mPEG-DSPE (relación molar de HSPC:Chol de
59:41). El diagrama de fases de la Fig. 7A muestra la composición de
cada suspensión, y el tamaño de los liposomas se representa
gráficamente en la Fig. 7B, con resultados similares a los obtenidos
cuando mPEG-DSPE estaba presente en la mezcla
lipídica. Estos resultados, y los resultados del Ejemplo 5, muestran
que el control sobre el tamaño de los liposomas se proporciona
independientemente del tipo de lípidos presentes.
El procedimiento de la invención se puede usar
para preparar liposomas que atrapan una variedad de agentes
terapéuticos. El agente terapéutico se puede mezclar con los lípidos
y con el disolvente lipídico o con el segundo disolvente,
dependiendo de la naturaleza del agente, y de su solubilidad en los
disolución empleados. Los agentes contemplados varían ampliamente, e
incluyen tanto aplicaciones terapéuticas como aquellos para uso en
aplicaciones de diagnóstico. Los agentes terapéuticos incluyen
compuestos naturales y sintéticos que tienen las siguientes
actividades terapéuticas: antiangiogénica, antienvejecimiento,
antiartrítica, antiarrítmica, antibacteriana, anticolinérgica,
anticoagulante, antidiurética, como antídoto, antiepiléptica,
antifúngica, antiinflamatoria, antimetabólica, antimigraña,
antineoplásica, antiparasitaria, antipirética, antiataques,
antisérica, antiespasmódica, analgésica, anestésica,
beta-bloqueante, modificadora de la respuesta
biológica, reguladora del metabolismo óseo, cardiovascular,
diurética, enzimática, potenciadora de la fertilidad, promotora del
crecimiento, hemostática, hormonal, supresora hormonal, reductora de
hipercalcemia, reductora de hipocalcemia, reductora de hipoglicemia,
reductora de hiperglicemia, inmunosupresora, inmunopotenciadora,
relajante muscular, neurotransmisora, parasimpaticomimética,
simpaticomimética, extensora del plasma, expansora del plasma,
psicotrópica, trombolítica y vasodilatadora.
En una realización preferida, el agente atrapado
es un fármaco citotóxico, esto es, un fármaco que tiene un efecto
perjudicial o tóxico sobre las células. Los ejemplos citotóxicos
ejemplares incluyen los antibióticos antraciclínicos tales como
doxorrubicina, daunorrubicina, epirrubicina e idarrubicina, y
análogos de estos, tales como epirrubicina y mitoxantrona;
compuestos del platino, tales como cisplatino y carboplatino.
El agente atrapado también puede ser un ácido
nucleico, incluyendo ácido ribonucleico o análogos sintéticos,
análogos derivatizados a péptidos o que contienen una o más bases
sintéticamente modificadas o análogos de bases, o que contienen un
ligando incorporado como parte de la secuencia que incluye ADN
plásmido, oligonucleótidos sintéticos u otros oligoanálogos.
Se apreciará además que los liposomas pueden
incluir un ligando para seleccionar dianas, unido covalentemente al
extremo distante libre de la cadena polimérica hidrófila, que está
unida a su extremo próximo a un lípido formador de vesículas. Como
alternativa, para la composición que carece de un lípido
derivatizado con un polímero hidrófilo, los ligandos que seleccionan
dianas se pueden unir directamente a la superficie externa de los
liposomas uniéndose a un componente lipídico de la superficie. Hay
una amplia variedad de técnicas para unir un polímero hidrófilo
seleccionado a un lípido seleccionado y activar el extremo libre, no
unido del polímero para reacción con un ligando seleccionado, y en
particular se ha estudiado ampliamente el polímero hidrófilo
polietilenglicol (PEG) (Allen, T.M., et al., Biochemicia et
Biophysica Acta 1237:99-108 (1995);
Zalipsky, S., Bioconjugate Chem.,
4(4):296-299 (1993); Zalipsky, S., et al.,
FEBS Lett. 353:71-74 (1994); Zalipsky
et al., Bioconjugate Chemistry, 705-708
(1995); Zalipsky, S., en STEALTH LIPOSOMES (D. Lasic y F.
Martin, Eds.) Capítulo 9, CRC Press, Boca Raton, FL (1995)).
Generalmente, las cadenas de PEG se funcionalizan
para que contengan grupos reactivos adecuados para acoplamiento con,
por ejemplo, grupos sulfhidrilo, amino, y aldehídos o cetonas
(típicamente derivados de la oxidación suave de porciones de
hidratos de carbono de un anticuerpo), presentes en una amplia
variedad de ligandos, tales como los expuestos en la Solicitud PCT
nº 98/16202 y que se incorpora aquí como referencia. Los ejemplos de
tales grupos reactivos terminales de PEG incluyen maleimida (para la
reacción con grupos sulfhidrilo),
N-hidroxisuccinimida (NHS) o éster de carbonato con
NHS (para reacción con aminas primarias), hidrazida o hidrazina
(para la reacción con aldehídos o cetonas), yodoacetilo
(preferentemente reactivo con grupos sulfhidrilo) y ditiopiridina
(reactivo con grupos tiol). Los esquemas de reacción sintéticos para
activar PEG con tales grupos se exponen en las Patentes
U.S. nº 5.631.018, nº 5.527.528, nº 5.395.619, y las secciones
pertinentes que describen los procedimientos de reacciones
sintéticas se incorporan expresamente aquí como referencia.
El Ejemplo 8 describe la preparación de una
composición liposómica que contiene el radiosensibilizador dpIUdR.
Se derivatizó
5-yodo-2'-desoxiuridina,
denominado aquí como IUdR, con un ácido graso de 16 carbonos, ácido
palmítico, en dos posiciones en el azúcar de ribosa de IUdR, como se
muestra en la Fig. 8. en el esquema de reacción mostrado en la
figura, y detallado en el Ejemplo 8A, se hizo reaccionar IUdR con un
pequeño exceso de cloruro de palmitoilo y catalizador de
4-dimetilpiridina en piridina o en
piridina/cloroformo como el disolvente para producir
3',5'-dipalmitoil-5-yodo-2'-desoxiuridina,
denominado aquí como dpIUdR.
Como se describe en el Ejemplo 8B, se disolvieron
los lípidos HSPC, mPEG-DSPE y dpIUdR en etanol, en
una relación molar de 89:5:6. Esta disolución madre de lípidos se
usó para preparar suspensiones liposómicas hidratando una cantidad
de la disolución lipídica con un segundo disolvente, un tampón
acuoso. Las suspensiones lipídicas se prepararon por triplicado a
porcentajes en peso finales de etanol de 8,1, 10,1, 12,2, 14,3,
16,5, 20,8, 25,3 y 44,1. El tamaño medio de los liposomas en cada
muestra se midió mediante dispersión de luz cuasiestática, y los
resultados se muestran en la Tabla 8.
A la vista de la última fila de la Tabla 8, es
manifiesto que hay un mínimo en el tamaño de partículas de los
liposomas a 16,5 por ciento en peso de etanol. Este dato se muestra
gráficamente en la Fig. 9, y es manifiesta la depresión en el tamaño
de los liposomas que comienza a alrededor de 10 por ciento en peso y
que termina a alrededor de 25 por ciento en peso. Un perfil tal como
aquél en la Fig. 9 del tamaño de lípidos como función del contenido
de etanol se puede emplear para determinar la cantidad de etanol
necesaria para obtener un tamaño particular de liposomas. Por
ejemplo, el tamaño mínimo de partículas de 106 nm se obtiene
hidratando la mezcla de lípido y etanol hasta 16,5 por ciento en
peso de etanol. Se obtiene un tamaño más grande de partículas
hidratando para lograr más o menos etanol, según el perfil. Al
establecer tal perfil, se determina la cantidad diana de disolvente
lipídico para lograr un tamaño mínimo de partículas o un tamaño
seleccionado de partículas para cualquier mezcla de lípidos y
disolventes, como se ilustrará posteriormente más abajo.
La Fig. 10 es un diagrama de fases que muestra la
región de operación para la formación de los liposomas según la
invención. En el diagrama, la región sombreada corresponde a la
formación de liposomas en la que la cantidad de disolvente lipídico
está entre alrededor de 10-50 por ciento en peso, y
el porcentaje en peso de los lípidos está entre
0,1-15. Dependiendo de la mezcla lipídica y del
disolvente lipídico, se puede determinar el punto en el que aparece
un mínimo en el tamaño de partículas de los liposomas dentro de la
región de operación. Las suspensiones liposómicas en la región de
operación son visualmente claras y contienen liposomas de tamaños
submicrométricos. Se apreciará que la región de operación variará
ligeramente según los componentes lipídicos, los disolventes y los
componentes de los fármacos. El experto en la técnica puede realizar
fácilmente un estudio como el expuesto en el Ejemplo 8B y en la
Tabla 8 para determinar la cantidad de disolvente lipídico que
produce un mínimo en el tamaño de los liposomas.
Los liposomas formados por el procedimiento
anteriormente descrito pueden tener, dependiendo de la cantidad de
disolvente lipídico en la mezcla de hidratación, un tamaño mínimo de
partículas. De este modo, en algunos casos, puede ser que no sea
necesario dimensionar posteriormente los liposomas vía extrusión u
otra técnica. En algunos casos, puede ser deseable procesar
posteriormente los liposomas, por ejemplo mediante extrusión. El
procedimiento de preparación es particularmente útil para la
incorporación de fármacos derivatizados con lípidos en liposomas, a
una relación de fármaco a lípido elevada, en la que la obtención de
un tamaño de partículas farmacéuticamente útil de entre
90-150 nm es difícil debido a la incapacidad para
extruir la mezcla, como se expone anteriormente. La formación de
liposomas según la invención supera esta limitación, puesto que los
liposomas tienen o están próximos al tamaño deseado de partículas
con la hidratación con el segundo disolvente, y se minimiza
cualquier procesamiento posterior del tamaño. De este modo, se puede
emplear una mayor carga de fármaco derivatizado con lípido, a la vez
que aún es posible lograr el tamaño deseado de los liposomas.
Esta característica de la invención se ilustra
mediante el estudio descrito en el Ejemplo 8C. Los liposomas se
prepararon usando los lípidos HSPC, mPEG-DSPE y
dpIUdR, en los que las cantidades molares de las formulaciones
fueron 89/5/6, 85/5/10, 80/5/15, 70/5/25 y 55/5/40. Los lípidos,
incluyendo el dpIUdR, se disolvieron en etanol, y después se
hidrataron con suficiente agua para llevar la concentración de
etanol en cada mezcla hasta 16,5 por ciento en peso (20 por ciento
en volumen). Cada suspensión liposómica se extruyó entonces como se
describe en el Ejemplo, y, después de la extrusión, se midió el
tamaño medio de partículas de los liposomas en cada suspensión. Los
resultados se muestran en la Tabla 9.
* la composición no se pudo extruir |
Se dimensionaron fácilmente liposomas que
contienen 6, 10 y 15 por ciento en moles de dpIUdR hasta alrededor
de 100 nm cuando se preparan según el procedimiento de la invención,
hidratando la mezcla lipídica hasta una cantidad de disolvente
lipídico que da un tamaño mínimo de partículas. De forma importante,
los lípidos se forman a un tamaño mínimo de partículas con una
relación de fármaco a lípido entre alrededor de 1,5 y 5, más
preferiblemente entre 2-4. En una realización
preferida de la invención, los liposomas que tienen el tamaño
deseado de partículas se preparan usando el procedimiento a una
relación de fármaco a lípido mayor que alrededor de 4, como se logra
con la composición lipídica que tiene 15 por ciento en moles de
dpIUdR.
A partir de lo anterior se puede apreciar cómo se
cumplen diversos objetos y características de la invención. La
preparación de los liposomas según el procedimiento proporciona un
medio para controlar el tamaño de las partículas en la suspensión.
Más específicamente, hay una relación entre el tamaño de los
liposomas y la composición de la mezcla de hidratación, es
decir, la cantidad de disolvente lipídico en la mezcla de
hidratación, a un porcentaje mayor que alrededor de 10 por ciento en
peso y menor que 50 por ciento en peso de disolvente lipídico. En
esta región, existe un mínimo en el tamaño de partículas de los
liposomas.
Los siguientes ejemplos ilustran el procedimiento
para controlar el tamaño de partículas de los liposomas vía la
composición de la mezcla de hidratación. Los ejemplos de ninguna
forma pretenden limitar el alcance y espíritu de la invención.
Los siguientes materiales se obtuvieron a partir
de la fuente indicada: fosfatidilcolina de huevo (Avanti Polar
Lipids, Alabaster, AL); fosfatidilcolina de soja parcialmente
hidrogenada (Vernon Walden Inc., Green Village, NJ); colesterol
(Solvay Pharmaceuticals, Holanda); cloruro de
N,N-dioleoil-N,N-dimetilamonio
(DODAC) (Northern Lipids, Canadá); conjugado de PEG (Pm
2000)-ceramida (PEG
C_{20}-ceramida) (Northern Lipids, Canadá);
histidina (Seltzer Chemicals; Carlsbad, CA); etanol (Quantum
Chemical Co. Tuscola, IL). el mPEG-DSPE se preparó
como se describe en la bibliografía (por ejemplo, Zalipsky, S.,
et al, Bioconjugate Chem., 4:296-299
(1993)).
La QUELS, dispersión cuasielástica de la luz, se
realizó usando un Coulter modelo N4MD (Coulter Corporation, Miami,
FL) para el Ejemplo 1, y un Brookhaven Instruments Modelo
B1-200SM (Brookhaven Instruments Corporation,
Holtsville, NY) para los Ejemplos 2-7.
Se mezclaron 1975 mg de fosfatidilcolina
de huevo, 483,8 mg de colesterol, 436,9 mg de DODAC y 1337,5 mg
de PEG C_{20}-ceramida, con 5 ml de etanol, y se
calentó hasta alrededor de 65-70ºC hasta disolución.
La composición de esta disolución madre lipídica fue 51,7 por ciento
en peso de lípido y 48,3 por ciento en peso de etanol. La
concentración total de lípido fue 496 mmoles/ml.
Se disolvió un oligonucleótido que tiene
aproximadamente 34 bases en 10 mmolar de histidina, 0,9% de NaCl (pH
6,5) hasta una concentración de 20 mg/ml.
Se formaron suspensiones liposómicas inflando
alícuotas de la disolución lipídica con alícuotas de la disolución
madre de oligonucleótido. Ambas disoluciones madre se diluyeron
según fue necesario con sus respectivos disolventes justo antes del
mezclamiento, a fin de variar la concentración de etanol de la
mezcla mientras se mantiene una concentración fija de
oligonucleótido y de lípido. Se formaron seis suspensiones
liposómicas a partir de las disoluciones madre, y la composición de
cada mezcla se indica en el diagrama de fases de la Fig. 1A.
Después de mezclar, se determinó mediante
dispersión cuasielástica de la luz los diámetros medios de las
partículas de los liposomas en la suspensión. Los resultados se
muestran en la Tabla 1.
La Fig. 1B es un gráfico que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se mezclaron 1183 mg de fosfatidilcolina
de soja parcialmente hidrogenada, 290 mg de colesterol, 262 mg de
DODAC y 795 mg de mPEG-DS con 0,47 ml de etanol, y
se calentó hasta que se disolvió. La composición de esta disolución
madre lipídica fue 87,2 por ciento en peso de lípido y 12,8 por
ciento en peso de etanol.
Se preparó una disolución madre que contiene 20
mg/ml de un oligonucleótido de 34 bases, en disolución acuosa de 10
mmolar de histidina y 0,9% de NaCl, pH 6,5.
Las alícuotas de la disolución madre lipídica,
diluidas según fuera necesario con etanol, se hidrataron con
alícuotas de la disolución acuosa oligonucleotídica, diluida según
fuera necesario con la fase acuosa, y se tomaron para preparar
suspensiones de liposomas a las composiciones indicadas en la Fig.
2A.
Cada suspensión liposómica se caracterizó
midiendo el diámetro medio de partículas usando QELS justo después
de la hidratación y después de la incubación toda la noche a 5ºC.
Los resultados se muestran en la Tabla 2.
La Fig. 2B es un gráficO que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se mezclaron 394 mg de fosfatidilcolina
de soja parcialmente hidrogenada, 96,6 mg de colesterol, 87,4 mg
de DODAC y 275 mg de mPEG-DSPE con 2,147 ml de
etanol, y se calentó hasta que se disolvió. La composición de esta
disolución madre lipídica fue 33,5 por ciento en peso de lípido y
66,5 por ciento en peso de etanol.
Se preparó una disolución madre, que contiene 6,7
mg/ml de un oligonucleótido de 34 bases, en disolución acuosa de 10
mmolar de histidina y 0,9% de NaCl, pH 6,5.
Se tomaron alícuotas de la disolución madre
lipídica, diluida según sea necesario con etanol, e hidratadas con
alícuotas de la disolución acuosa oligonucleotídica, diluida según
sea necesario con la fase acuosa, para preparar suspensiones de
liposomas a las composiciones indicadas en la Fig. 3A.
Cada suspensión liposómica se caracterizó
midiendo el diámetro medio de partículas usando QELS justo después
de la hidratación. Los resultados se muestran en la Tabla 3.
La Fig. 3B es un gráfico que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se mezclaron 599,6 mg de fosfatidilcolina
de soja parcialmente hidrogenada, 257,2 mg de colesterol, y 214,2
mg de mPEG-DSPE con 1 ml de etanol, y se calentó
hasta que se disolvió. La composición de esta disolución madre
lipídica fue 57,6 por ciento en peso de lípido total en etanol.
Se preparó una fase acuosa para
hidratación, y contenía disolución acuosa 10 mmolar de histidina,
y 0,9% de NaCl, pH 6,5.
Se hidrataron alícuotas de la disolución madre
lipídica, diluida según sea necesario con etanol, con alícuotas de
la disolución acuosa, para preparar suspensiones de liposomas a las
composiciones indicadas en la Fig. 4A. Cada una de las composiciones
se preparó por triplicado.
Cada suspensión liposómica se caracterizó
midiendo el diámetro medio de partículas usando QELS justo después
de la hidratación. Los resultados se muestran en la Tabla 4.
La Fig. 4B es un gráfico que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se prepararon liposomas como se describe en el
Ejemplo 4, excepto que se omitió mPEG-DSPE para la
mezcla lipídica de liposomas. De este modo, se mezclaron 629,8 mg de
fosfatidilcolina de soja parcialmente hidrogenada y 272 mg de
colesterol con 1 ml de etanol, y se calentó hasta que se disolvió.
La composición de esta disolución madre lipídica fue 53,3 por ciento
en peso de lípido total en etanol.
Se hidrataron alícuotas de la disolución madre
lipídica, diluidas según sea necesario con etanol, con alícuotas de
la disolución acuosa (10 mmolar de histidina, 0,9% de NaCl, pH 6,5),
para preparar suspensiones de liposomas a las composiciones
indicadas en la Fig. 5A. Cada una de las composiciones se preparó
por triplicado.
Cada composición liposómica se caracterizó
midiendo el diámetro medio de partículas usando QELS justo después
de la hidratación. Los resultados se muestran en la Tabla 5.
La Fig. 5B es un gráfico que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se mezclaron 668,3 mg de
fosfatidilcolina de soja parcialmente hidrogenada, 222,3 mg de
colesterol y 222,6 mg de mPEG-DSPE con 1 ml de
etanol, y se calentó hasta que se disolvió. La composición de esta
disolución madre lipídica fue 55,5 por ciento en peso de lípido
total en etanol.
Se preparó una fase acuosa para
hidratación, y contenía disolución acuosa 10 mmolar de histidina y
0,9% de NaCl, pH 6,5.
Se hidrataron alícuotas de la disolución madre
lipídica, diluida según sea necesario con etanol, con alícuotas de
la disolución acuosa, para preparar suspensiones de liposomas a las
composiciones indicadas en la Fig. 6A. Cada una de las composiciones
se preparó por triplicado.
Cada composición liposómica se caracterizó
midiendo el diámetro medio de partículas usando QELS justo después
de la hidratación. Los resultados se muestran en la Tabla 6.
La Fig. 6B es un gráfico que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se prepararon liposomas como se describe en el
Ejemplo 6, excepto que se omitió mPEG-DSPE para la
mezcla lipídica de liposomas. De este modo, se mezclaron 629,8 mg de
fosfatidilcolina de soja parcialmente hidrogenada y 272 mg de
colesterol con 1 ml de etanol, y se calentó hasta que se disolvió.
La composición de esta disolución madre lipídica fue 54,3 por ciento
en peso de lípido total en etanol.
Se hidrataron alícuotas de la disolución madre
lipídica, diluidas según sea necesario con etanol, con alícuotas de
la disolución acuosa (10 mmolar de histidina, 0,9% de NaCl, pH 6,5),
para preparar suspensiones de liposomas a las composiciones
indicadas en la Fig. 7A. Cada una de las composiciones se preparó
por triplicado.
Cada composición liposómica se caracterizó
midiendo el diámetro medio de partículas usando QELS justo después
de la hidratación. Los resultados se muestran en la Tabla 7.
La Fig. 7B es un gráfico que muestra el diámetro
medio de partículas, en nm, como una función tanto del porcentaje en
peso de lípido como del porcentaje en peso de etanol.
Se añadió lentamente cloruro de palmitoilo a una
disolución de desoxiuridina en piridina o en piridina/cloroformo y
4-dimetilpiridina como catalizador. La disolución se
mezcló hasta que se puso de color amarillo, y después se dejó
reposar toda la noche para precipitarla. La mezcla se disolvió en
cloroformo, y se lavó con disolución al 10% acuosa de ácido cítrico
y disolución saturada de bicarbonato de sodio. Se eliminó el
cloroformo, y se añadió metanol para producir un precipitado blanco,
identificado como
3',5'-dipalmitoil-5-yodo-2'-desoxiuridina
(rendimiento de 66%). El esquema de reacción sintética se muestra en
la Fig. 8
Se disolvieron los lípidos fosfatidilcolina de
soja hidrogenada (HSPC) y diestearoilfosfatidilcolina derivatizada
con metoxi-polietilenglicol
(DSPE-mPEG) y dpIUdR, en una relación molar de
89/5/6, en etanol a 70ºC hasta que se logró la disolución total
(alrededor de 1 hora). Esta disolución madre lipídica, después de
diluirla según sea necesario para mantener una concentración fija de
lípido, se hidrató con una disolución al 10% de sacarosa a 70ºC para
variar la concentración de 8-44 por ciento en peso.
Cada una de las mezclas liposómicas se agitó durante una hora para
formar suspensiones liposómicas. El tamaño de partículas de los
liposomas de cada mezcla se determinó usando dispersión
cuasielástica de la luz, y los resultados se muestran en la Tabla
8.
Se disolvieron los lípidos fosfatidilcolina de
soja hidrogenada (HSPC) y diestearoilfosfatidilcolina derivatizada
con metoxi-polietilenglicol
(DSPE-mPEG) y dpIUdR, en una relación molar de
89/5/6, 85/5/10, 80/5/15, 70/5/25 y 55/5/40 en etanol a 70ºC hasta
que se logró la disolución total (alrededor de 1 hora). Las mezclas
lipídicas se hidrataron con suficiente disolución al 10% de
sacarosa, a 70ºC, para lograr un contenido de etanol de 16,5 por
ciento en peso en la mezcla de hidratación (20% (v/v) de etanol).
Las mezclas se agitaron durante una hora antes de extruirlas.
Las suspensiones liposómicas se extruyeron a
través de membranas de policarbonato para lograr un tamaño uniforme
de 100 nm. Las suspensiones se diafiltraron entonces frente a
disolución al 10% de sacarosa para reducir la concentración de
etanol por debajo de 400 ppm. Las suspensiones se ultrafiltraron
entonces hasta una concentración por encima de la concentración del
fármaco diana, se analizaron para determinar la concentración del
fármaco y se diluyeron para conseguir el objetivo añadiendo tampón
de histidina 10 mM y ajustando el pH hasta 6,5.
Los tamaños de partículas de los liposomas se
midieron mediante dispersión cuasielástica de la luz, y los
resultados se muestran en la Tabla 9.
Claims (10)
1. Procedimiento para preparar una composición
liposómica que comprende liposomas que tienen un tamaño deseado,
comprendiendo el procedimiento (i) determinar una cantidad de
disolvente lipídico requerida para lograr el tamaño deseado de
liposomas a partir de un perfil de tamaño de liposomas como una
función de la cantidad de disolvente lipídico en una mezcla de
hidratación del disolvente lipídico y un segundo disolvente con el
que el disolvente lipídico es miscible, y (ii) hidratar un lípido
formador de vesículas disuelto en dicha cantidad determinada de
disolvente lipídico con el segundo disolvente para formar la mezcla
de hidratación, estando dicha cantidad determinada de disolvente
lipídico comprendida entre 10 y 50 por ciento en peso.
2. Procedimiento según la reivindicación 1, en el
que el perfil de tamaño de liposomas como una función del contenido
de disolvente lipídico en la mezcla de hidratación se obtiene
midiendo el diámetro de los liposomas en la mezcla de hidratación, y
repitiendo las etapas de hidratación y de medición a diferentes
cantidades de disolvente lipídico para obtener el perfil.
3. Procedimiento según la reivindicación 1 o
reivindicación 2, en el que el disolvente lipídico es un
alcohol.
4. Procedimiento según la reivindicación 3, en el
que el disolvente lipídico es metanol, etanol o butanol.
5. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el lípido formador de
vesículas es un lípido cargado formador de vesículas, o un lípido
neutro formador de vesículas, y/o se derivatiza con una cadena de
polímero hidrófilo.
6. Procedimiento según la reivindicación 5, en el
que el lípido formador de vesículas se derivatiza con una cadena de
polímero hidrófilo, en el que la cadena de polímero hidrófilo es
polietilenglicol.
7. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que el segundo disolvente es
agua.
8. Procedimiento según cualquiera de las
reivindicaciones anteriores, en el que se hidrata un agente
terapéutico con el disolvente lipídico o el segundo disolvente.
9. Procedimiento según la reivindicación 8, en el
que el agente terapéutico es un ácido nucleico o un
radiosensibilizador derivatizado con una o más cadenas acílicas.
10. Procedimiento según la reivindicación 9, en
el que el agente terapéutico es
dipalmitoil-5-yodo-2-desoxiuridina.
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