ES2208973T3 - Celulas encapsuladas productoras de anticuerpos. - Google Patents
Celulas encapsuladas productoras de anticuerpos.Info
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Abstract
LA PRESENTE INVENCION SE REFIERE A UNAS CAPSULAS QUE ENCAPSULAN CELULAS PRODUCTORAS DE ANTICUERPOS Y AL USO DE DICHAS CAPSULAS Y CELULAS ENCAPSULADAS, RESPECTIVAMENTE, PARA LA IMPLANTACION IN VIVO CON VISTAS A UNA ADMINISTRACION A LARGO PLAZO O PROLONGADA DE ANTICUERPOS QUE TIENEN UN INTERES TERAPEUTICO.
Description
Células encapsuladas productoras de
anticuerpos.
La presente invención se refiere a células
encapsuladas productoras de anticuerpos, especialmente anticuerpos
pertenecientes a las diversas clases de inmunoglobulinas; IgM, IgD,
IgGs, IgE e IgA, y el uso de dichas células encapsuladas para
implantación in vivo destinada al suministro a largo plazo o
suministro prolongado de anticuerpos de interés terapéutico.
El suministro sistémico de anticuerpos
citostáticos o citotóxicos específicos de tumores por células
transformadas por ingeniería genética injertadas a pacientes puede
ser muy valioso para tratamientos de vigilancia
anti-cáncer a largo plazo a fin de prevenir la
recidiva después de un tratamiento primario tal como cirugía,
quimio- o radioterapia. Dicho enfoque podía utilizarse también para
tratamiento de enfermedades víricas graves, tales como el SIDA, si
se suministran anticuerpos neutralizantes del virus o anticuerpos
tóxicos para las células productoras del virus. Adicionalmente, el
suministro sistémico a largo plazo de anticuerpos puede ser útil
también para propósitos más fundamentales tales como el desarrollo
de nuevos modelos animales de enfermedades autoinmunes en las
cuales la respuesta humoral contribuye al desarrollo de la
enfermedad (Rose, N.R. y Bona, C., Immunol. Today, Vol. 14,
426-430 (1993)). Otra posible aplicación implica el
desarrollo de una nueva técnica de ablación celular útil para
estudiar in vivo diversos caminos de diferenciación y/o la
importancia biológica de subconjuntos específicos de células
mediante la liberación en el torrente sanguíneo de anticuerpos
citotóxicos que reconocen marcadores de membrana específicos de
tipos de células. En esta situación, los anticuerpos podrían
destruir células diana, por ejemplo después de un paso específico
de diferenciación, inmediatamente subsiguiente a la aparición de
antígenos cognatos en la superficie de las células que se
diferencian.
Se ha demostrado recientemente que - por la
utilización de transferencia de genes retrovíricos - varios tipos
de células (con inclusión de los fibroblastos de la piel, células
miogénicas, hepatocitos y queratinocitos), susceptibles de
modificación genética y de ser injertadas a pacientes, pueden
producir anticuerpos que retienen la especificidad y la afinidad del
anticuerpo originario (Noel, D. et al., Hum. Gene Ther., Vol. 8,
1219-1229 (1997)). Adicionalmente, el injerto de
células miogénicas transformadas por ingeniería genética permite el
suministro sistémico de anticuerpos clonados en el ratón durante al
menos varios meses. Aunque estas observaciones prestan apoyo a la
idea de que la transformación por ingeniería genética de células de
los pacientes puede ser útil para terapias génicas a largo plazo
basadas en anticuerpos, varias cuestiones limitan potencialmente la
aplicación clínica de una tecnología de este tipo. En primer lugar,
dicho enfoque terapéutico exigiría mucho trabajo y consumiría mucho
tiempo. En segundo lugar, la modificación genética estable de
células de los pacientes utiliza actualmente infección retrovírica
ex vivo seguida por injerto autólogo a fin de evitar el
rechazo de las células no coincidentes en MHC (MHC = complejo
principal de histocompatibilidad) por el sistema inmune. Esto
reduce la versatilidad del método dado que las células
transformadas por ingeniería genética procedentes de un individuo
no pueden ser utilizadas para otro. En tercer lugar, la
transferencia génica eficiente y la expresión a largo plazo de
transgenes en células que pueden utilizarse en protocolos de terapia
génica son cuestiones que no han sido resueltas todavía por
completo (Crystal, R.G., Science, Vol. 270,
404-410 (1995); Harris, J.D. y Lemoine, N.R., Trends
Genet., Vol. 12, 400-405 (1996); Vile, R.G. et al.,
Mol. Biotechnol., Vol. 5, 139-158 (1996)).
En este contexto, la implantación de células
transformadas por ingeniería genética encapsuladas en dispositivos
inmunoprotectores en pacientes puede representar un enfoque más
versátil y eficaz en costes. Por una parte, dicho método permitiría
la utilización del mismo lote de células no coincidentes en MHC
(seleccionadas posiblemente
in vitro para expresión óptima de anticuerpos) para varios pacientes y, por otra parte, la implantación de cápsulas es una operación quirúrgica muy simple. Adicionalmente, una técnica de este tipo podría ofrecer también la posibilidad de extirpación quirúrgica fácil de las células productoras de anticuerpos en caso de que el tratamiento precise ser terminado.
in vitro para expresión óptima de anticuerpos) para varios pacientes y, por otra parte, la implantación de cápsulas es una operación quirúrgica muy simple. Adicionalmente, una técnica de este tipo podría ofrecer también la posibilidad de extirpación quirúrgica fácil de las células productoras de anticuerpos en caso de que el tratamiento precise ser terminado.
Para funcionamiento óptimo, los poros de las
cápsulas deben satisfacer dos criterios. En primer lugar, tienen
que ser suficientemente grandes para permitir que las moléculas de
interés, tales como anticuerpos, salgan y permitir la entrada y
difusión eficiente de los nutrientes necesarios para la
supervivencia celular. En segundo lugar, aquéllos tienen que ser lo
bastante pequeños para prevenir que las células encapsuladas
abandonen las cápsulas e impedir la entrada de células del sistema
inmune del hospedador.
La encapsulación de células en estructuras
permeables que permitan la liberación de ciertas moléculas
biológicamente activas pero proteja las células productoras de
estas moléculas del sistema inmune del hospedador ha tenido cierto
éxito (para una revisión, véase Chang, P.L. en Somatic Gene Therapy,
P.L. Chang, ed. (CRC Press, Boca Ratón), p. 203-223
(1995)). Células que se han modificado genéticamente para producir
la hormona del crecimiento humano (hGH) (Tai, I.T. y Sun, A.M.,
FASEB J. 7, 1061-1069 (1993)) o una forma secretada
de adenosina-desaminasa humana (Hughes et al., Hum.
Gene Ther. 5, 1445-1455 (1994)) han sido
encapsuladas. En estos dos estudios citados, se encapsularon células
en microcápsulas de
poli-L-lisina-alginato
y se demostró que las células sobrevivían durante largos periodos
en cultivo. Esto fue acompañado por la producción a largo plazo de
la enzima u hormona. Ulteriormente, se demostró que después del
transplante de las microcápsulas en ratones, las células se
mantenían viables durante un año y continuaban produciendo hGH, lo
que demuestra que las cápsulas protegen las células transfectadas
contra la destrucción por el sistema inmune del hospedador. No
obstante, se comunicó también que las cápsulas de
polilisina-alginato inducen una respuesta
inflamatoria (Pueyo, M.E. et al., J. Biomater. Sci. Polym. Ed.,
Vol. 5, 197-203 (1993);
Vanden-bossche, G.M. et al., J. Pharm. Pharmacol.,
Vol. 45, 115-120 (1993)).
La encapsulación de células ha sido consignada
también utilizando otros materiales. Células de riñón de cría de
hámster modificadas genéticamente para producir el factor de
crecimiento de los nervios han sido encapsuladas en
poliacrilonitrilo/cloruro de vinilo e implantadas en cerebro
de rata. Las células encapsuladas sobrevivieron durante al menos 6
meses y continuaron produciendo NGF (Winn et al., Proc. Acad. Sci.
USA 91, 2324-2328 (1994) y Deglon et al., Gene
Ther., 2, 563 (1995)).
Células de hibridoma de rata que secretan un mAb
dirigido contra IL-4 murino han sido encapsuladas
en alginato e implantadas, intraperitoneal y
subcutáneamente, en ratones (Savelkoul, H.F. et al., J. Immunol.
Methods, Vol. 170, 185-196 (1994)). Sin embargo,
los niveles de anticuerpos suministrados en el torrente sanguíneo
disminuyeron al cabo de 14 días como consecuencia del deterioro de
las cápsulas. Además, en este sistema se observó un 100% de
incidencia de desarrollo de ascitis 30 días después de la
implantación como resultado de la liberación de células procedentes
de las cápsulas a la cavidad intraperitoneal.
Han sido encapsulados con éxito hepatocitos en un
complejo polielectrolítico de sulfato de celulosa y
poli(dimetildialilamonio) (Stange et al., Biomat. Art.
Cells & Immob. Biotech. 21, 3443-352 (1993)).
Más del 90% de los hepatocitos encapsulados retenían su viabilidad,
y en contraste con los hepatocitos desarrollados como monocapas,
las células encapsuladas exhibían una actividad metabólica
incrementada.
Los mismos materiales de encapsulación se han
utilizado para encapsulación de células de hibridoma productoras de
anticuerpos (Merten et al., Cytotechnology
7:121-130, (1991). Las cápsulas se prepararon a
partir de una solución de celulosa-sulfato de sodio
(1,5%) y cloruro de
poli(dimetil-dialilamonio (solución al 2%).
Se ensayó la influencia de parámetros variables del proceso de
encapsulación sobre las características de las cápsulas, el
crecimiento de las células, y la producción de anticuerpos
monoclonales, y se demostró que la encapsulación utilizando
celulosa-sulfato de sodio como polianión y cloruro
de poli-dimetil-dialilamonio, como
policatión, es una herramienta adecuada para la preparación de
cápsulas útiles para el cultivo de células de mamífero a densidades
elevadas.
Como resumen de lo que se conoce de la técnica
anterior, o bien la implantación in vivo de las células
encapsuladas productoras de anticuerpos para suministro a largo
plazo y/o la liberación prolongada de anticuerpos para terapia no
se describen, ni siquiera se sugieren, o la implantación de cápsulas
ha dado como resultado efectos secundarios graves tales como, v.g.,
respuestas inflamatorias.
Así pues, es un objeto de la presente invención
proporcionar cápsulas que contienen células productoras de
anticuerpos, que permiten la liberación de los anticuerpos de las
cápsulas, y que no provocan respuesta inflamatoria después de su
implantación en un hospedador.
La presente invención comprende, entre otras
cosas, lo siguiente, aisladamente o en combinación:
Cápsulas que encapsulan células productoras de
anticuerpos para uso en el tratamiento de enfermedades o trastornos
sensibles a los anticuerpos producidos por dichas células,
comprendiendo dichas cápsulas un núcleo que contiene dichas células
y una pared porosa de cápsula que rodea dicho núcleo que es
permeable a los anticuerpos producidos por dichas células, y estando
formada dicha cápsula por un polisacárido o derivado de
polisacárido que contiene grupo sulfato, o por un polímero
sintético que contiene grupo sulfonato, y un policatión;
cápsulas como las indicadas anteriormente en las
cuales dicho polisacárido o derivado de polisacárido que contiene
grupo sulfato se selecciona del grupo que comprende sulfato de
celulosa, acetato-sulfato de celulosa, sulfato de
carboximetil-celulosa, sulfato de dextrano o sulfato
de almidón;
cápsulas como las indicadas anteriormente en las
cuales dicho polímero sintético que contiene grupo sulfonato es una
sal poliestireno-sulfonato;
cápsulas como las indicadas anteriormente en las
cuales dicho policatión es un polímero con grupos amonio
cuaternario;
cápsulas como las indicadas anteriormente en las
cuales dicho polímero con dichos grupos amonio cuaternario se
selecciona de polidimetildialilamonio o
polivinilbencil-trimetilamonio;
cápsulas como las indicadas anteriormente en las
cuales dicho polisacárido que contiene grupo sulfato es sulfato de
celulosa y dicho policatión es polidimetildialilamonio;
cápsulas como las indicadas en cualquiera de los
párrafos anteriores en las cuales dichas células productoras de
anticuerpos han sido modificadas genéticamente para producir
anticuerpos clonados;
cápsulas como las indicadas en cualquiera de los
párrafos anteriores en las cuales dichos anticuerpos pertenecen a
las clases de inmunoglobulinas IgA, IgM, IgG, IgD o IgE;
cápsulas como las indicadas en cualquiera de los
párrafos anteriores en las cuales dichos anticuerpos se seleccionan
de anticuerpos que se fijan a un marcador de la superficie vírica,
una célula de cáncer, un linfocito T o B implicado en los efectos
patológicos de una enfermedad autoinmune, un marcador de superficie
de un parásito o un antígeno deletéreo circulante;
cápsulas como las indicadas anteriormente en las
cuales dicho anticuerpo tiene un efecto neutralizante;
cápsulas como las indicadas anteriormente para
implantación en un cuerpo animal, con inclusión de un humano;
cápsulas como las indicadas anteriormente para
implantación intraperitoneal o subcutánea;
uso de las cápsulas como las indicadas en
cualquiera de los párrafos anteriores para producir una composición
farmacéutica;
una composición farmacéutica que comprende
cápsulas como las indicadas en cualquiera de los párrafos
anteriores.
De acuerdo con la presente invención, se
proporcionan cápsulas que contienen células productoras de
anticuerpos, que permiten la liberación de los anticuerpos de las
cápsulas, y que no provocan respuesta inflamatoria después de
implantación en un hospedador.
Las células encapsuladas de acuerdo con la
invención pueden prepararse por suspensión de las células
productoras de anticuerpos en una solución acuosa de un
polielectrólito (v.g. seleccionado de polisacáridos o derivados de
polisacáridos que contienen grupo sulfato o de polímeros sintéticos
que contienen grupo sulfonato), después de lo cual la solución en
forma de partículas preformadas se introduce en un baño de
precipitación que contiene una solución acuosa de un
polielectrólito con carga opuesta (tal como por ejemplo un polímero
con grupos amonio cuaternario).
Polisacáridos o derivados de polisacáridos que
contienen grupo sulfato incluyen sulfato de celulosa,
acetato-sulfato de celulosa, sulfato de
carboximetilcelulosa, sulfato de dextrano o sulfato de almidón en
forma de una sal, especialmente una sal de sodio. El polímero
sintético que contiene grupo sulfonato puede ser una sal
poliestireno-sulfonato, preferiblemente una sal de
sodio.
Los polímeros con grupos amonio cuaternario
incluyen polidimetildialilamonio o
polivinilbencil-trimetilamonio, en la forma de una
sal del mismo, preferiblemente una sal cloruro.
En una realización preferida de la invención, las
células productoras de anticuerpos están encapsuladas en un
complejo constituido por un complejo formado a partir de sulfato de
celulosa y polidimetildialilamonio.
Métodos para la preparación de las cápsulas de
sulfato de celulosa utilizadas para la preparación de las cápsulas
de acuerdo con la invención han sido descritos detalladamente en el
documento DE A1 40 21 050. Asimismo, la síntesis del sulfato de
celulosa ha sido descrita en esta solicitud de patente. Métodos
para una caracterización exhaustiva de las cápsulas de sulfato de
celulosa han sido abordados en profundidad por H. Dautzenberg et
al., Biomat., Art. Cells & Immob. Biotech., Vol. 21,
399-405 (1993). Cápsulas de sulfato de celulosa y
su preparación han sido descritas también en el documento GB 2 135
954. Las propiedades de las cápsulas de celulosa, a saber, su
tamaño, el tamaño de sus poros, el espesor de pared y las
propiedades mecánicas dependen de varios factores tales como por
ejemplo las circunstancias físicas en las cuales se han preparado
las cápsulas, la viscosidad del baño de precipitación, su
concentración iónica, la temperatura, la rapidez de adición de la
suspensión células/sulfato de celulosa, la constitución del sulfato
de celulosa, y otros parámetros descritos por el grupo de
Dautzenberg.
Las cápsulas de acuerdo con la invención se
pueden preparar suspendiendo las células productoras de anticuerpos
en una solución que contiene 0,5-50%,
preferiblemente 0,5-5%, de
celulosa-sulfato de sodio y 5% de suero de ternero
fetal en una solución acuosa, preferiblemente un tampón. Esta
resuspensión se vierte luego gota a gota por medio de un sistema de
dosificación (v.g. sistema de chorro de aire o sistema
piezoeléctrico) en un baño de precipitación que contiene una
solución agitada de 0,5-50%, preferiblemente
0,5-10% de cloruro de
polidimetil-dialilamonio en una solución acuosa,
preferiblemente un tampón. La formación de las cápsulas tiene lugar
en cuestión de milisegundos y las cápsulas que contienen las
células se mantienen en el baño de precipitación durante 30
segundos a 5 minutos, y se lavan después. La rapidez de este método
asegura que las células no se someten indebidamente a estrés
durante el procedimiento total (Stange et al., Biomat. Art. Cells
& Immob. Biotech. 21, 343-352 (1993)).
Las cápsulas de acuerdo con la invención tienen
un diámetro variable entre 0,01 y 5 mm, pero preferiblemente están
comprendidas entre 0,1 y 3 mm. En consecuencia, pueden prepararse
cápsulas que contengan un número variable de células. Utilizando el
proceso de encapsulación de acuerdo con la invención, hasta
10^{10}, pero preferiblemente 10^{3}-10^{7}
células productoras de anticuerpos pueden encapsularse en el
complejo polielectrolítico.
Las cápsulas compuestas de sulfato de celulosa y
polidimetildialilamonio tienen propiedades mecánicas excelentes y
pueden fabricarse con un diámetro y tamaño de poro
consistentes.
Las células encapsuladas pueden cultivarse en un
medio de cultivo de células normal (cuya naturaleza depende de las
células encapsuladas) en condiciones estándar de humedad,
temperatura y concentración de CO_{2}. Durante este periodo de
cultivo, la producción de anticuerpos por las cápsulas en el medio
de cultivo de células puede demostrarse con tecnología de
Transferencia Western o Elisa, utilizando antígenos específicos, y
puede cuantificarse ulteriormente empleando segundos anticuerpos
conjugados a colorantes fluorógenos.
Después de un periodo adecuado en cultivo
(normalmente no inferior a 1 hora y que no excede de 30 días), las
cápsulas que contienen las células pueden implantarse por medios
quirúrgicos, sea directamente, o por inyección utilizando una
jeringuilla en diversas áreas del cuerpo.
Los anticuerpos producidos por las células
encapsuladas de acuerdo con la invención pueden estar basados en
cualquier clase de inmunoglobulina útil para terapia, con
inclusión, pero sin limitación, de anticuerpos modificados
genéticamente.
Las células encapsuladas de acuerdo con la
invención pueden ser células obtenidas de pacientes o de cualquier
otra fuente, con inclusión de células humanas y animales, que han
sido modificadas genéticamente para la producción de anticuerpos
clonados.
Las células encapsuladas y las cápsulas,
respectivamente, se utilizan especialmente para la implantación en
un cuerpo animal vivo, con inclusión de un humano, para el
tratamiento de enfermedades o trastornos sensibles a los
anticuerpos liberados de dichas cápsulas. Después de la implantación
de las cápsulas en un cuerpo animal por vía intraperitoneal y
subcutánea, se ha encontrado que las cápsulas, especialmente las
cápsulas de sulfato de celulosa, ofrecen una ventaja obvia con
respecto a resistencia mecánica en comparación, por ejemplo, con
cápsulas de alginato, dado que se han encontrado intactas tanto como
10 meses después de la implantación con indiferencia de si se
implantan por vía subcutánea o por vía intraperitoneal.
Adicionalmente, se ha observado que los implantes
subcutáneos e intraperitoneales de cápsulas de sulfato de celulosa
que contienen células revelaban diferencias al menos con respecto a
dos puntos. En primer lugar, la cantidad de anticuerpos liberada en
el torrente sanguíneo era notablemente mayor en la primera
situación. Una explicación muy verosímil de esta diferencia reside
en el hecho de que las cápsulas se vascularizan rápidamente cuando
se implantaban por vía subcutánea y no se vascularizan en absoluto
cuando se implantan por vía intraperitoneal. El efecto beneficioso
de la vascularización podría ser doble, facilitando en primer lugar
la absorción del anticuerpo por la sangre y asegurando en segundo
lugar un mejor suministro de nutrientes que favorece la
supervivencia celular, dado que se observó reproduciblemente que la
viabilidad de las células dentro de las cápsulas implantadas por vía
intraperitoneal era menor. Además de una vascularización extensa,
que demostraba la ausencia total de alteraciones significativas
durante los 10 meses del seguimiento, la aglomeración de células
dentro de una bolsa de tejido conectivo después de la implantación
subcutánea permitiría la extirpación de las cápsulas por una
ablación quirúrgica fácil en un solo paso del neo-órgano total en
caso de que esto resultara necesario. Por último, es importante
subrayar que el desarrollo de fibrosis aislante alrededor de las
cápsulas de sulfato de celulosa implantadas no es sistemático. Esta
observación contrasta con lo que ha sido consignado en el caso de
las microcápsulas de
alginato-poli(L)-alginato,
alrededor de las cuales se desarrollaba una reacción del hospedador
con fibrosis, probablemente como resultado de la potente activación
de los macrófagos por el polímero encapsulante (Pueyo, M.E. et al.,
J. Biomater. Sci. Polym. Ed., Vol. 5, 197-203
(1993)).
A menudo se observan respuestas
anti-idiotípicas en pacientes tratados repetidamente
con dosis altas de anticuerpos monoclonales purificados, y en
ocasiones pueden neutralizar los efectos del tratamiento (Isaacs,
J.D., Semin. Immunol., Vol. 2, 449-456 (1990)).
Además, se ha demostrado también que el modo de administración de
los anticuerpos es un parámetro crucial con relación a la inducción
de respuestas anti-idiotípicas. Por ejemplo, se ha
consignado que las inyecciones subcutáneas e intradérmicas son
mucho más inmunógenas que la inyección intravenosa (Durrant, L.G.
et al., Cancer Inmunol. Immunother., Vol. 28, 37-42
(1989)). Así pues, es importante subrayar que no se ha observado
ninguna respuesta anti-idiotípica detectable contra
los anticuerpos monoclonales desarrollados en cuerpos animales
implantados con células encapsuladas en sulfato de celulosa que
liberen dichos anticuerpos.
Para resumir, los datos arriba expuestos
demuestran con claridad que la implantación de células encapsuladas
que liberan anticuerpos es adecuada para métodos de terapia
génico/celular a largo plazo basada en anticuerpos, dirigida
especialmente contra cánceres y enfermedades víricas.
De acuerdo con ello, en una realización preferida
de la invención, las células encapsuladas productoras de
anticuerpos se utilizan en terapia en casos en que es necesaria una
liberación sostenida de anticuerpos en un tratamiento a largo
plazo.
Situaciones de este tipo son por ejemplo
enfermedades causadas por infección crónica por virus, tal como
HIV, Hepatitis B, Herpes símplex, y Herpes genitalis.
Ciertas infecciones víricas dan como resultado la
exposición de marcadores o antígenos específicos en la superficie
celular. Tales marcadores de superficie pueden ser reconocidos
selectivamente por anticuerpos específicos que pueden modularse de
modo que sean tóxicos para las células infectadas por el virus.
Células encapsuladas productoras de tales anticuerpos pueden
aplicarse para tratamientos de infecciones víricas a largo
plazo.
En otra realización de la invención, se
proporcionan células encapsuladas productoras de anticuerpos
neutralizantes que reconocen y se fijan a marcadores o receptores
víricos en la superficie celular que interaccionan con los virus en
las fases iniciales de la infección vírica, proporcionando un efecto
de neutralización directo o indirecto de la infección vírica.
Los efectos neutralizantes pueden estar basados
en este caso en un bloqueo directo de la fijación y/o entrada del
virus en la célula y prevenir con ello la infección ulterior de
cualquier célula diana, o indirectamente en la lisis por el sistema
del complemento propio de los pacientes o en la presentación del
virus por los anticuerpos a las células del sistema inmune tales
como monocitos o macrófagos.
En una realización especial, la invención se
refiere al uso de las células encapsuladas de acuerdo con la
invención en el tratamiento de tumores.
En cualquier situación en la cual un tipo
específico de célula o un subconjunto específico de células capaz
de auto-renovación se vuelve tóxico o amenazante
para la vida de los seres humanos, pueden utilizarse para
eliminación de las células tumorales anticuerpos tóxicos
específicos de las células, modificados normal o genéticamente
mejorando su toxicidad, producidos por células encapsuladas para la
destrucción selectiva de células.
Otra aplicación de las cápsulas de acuerdo con la
invención es en el tratamiento de enfermedades autoinmunes graves
tales como la Esclerosis Múltiple y la Artritis Reumática, en las
cuales células T y B específicas responsables del efecto patológico
pueden ser eliminadas constantemente en tratamientos a largo plazo
por los anticuerpos tóxicos con especificidad celular producidos por
células encapsuladas.
En una realización adicional de la invención, se
proporcionan células encapsuladas productoras de anticuerpos contra
marcadores de superficie de parásitos tales como Plasmodium
falciparum, P. vivax o P. malariae.
La malaria es una de las tres enfermedades que
causan más muertes al año, además de TBC y HepB. La aplicación de
anticuerpos contra Plasmodium con la consecuencia de
marcación de los parásitos y atracción con ello de células del
sistema inmune para destruir los parásitos podría utilizarse como
una profilaxis no tóxica y no perjudicial para quienes viajan a
países con alto riesgo de infección por malaria.
Las células encapsuladas liberadoras de
anticuerpos pueden utilizarse también para producir una composición
farmacéutica que contenga una cantidad terapéuticamente eficaz de
las células junto con al menos un vehículo o diluyente
farmacéutico.
Los ejemplos siguientes ilustrarán la invención
adicionalmente, pero no deben interpretarse como limitantes:
Se utilizó para encapsulación la línea de células
de hibridoma, Tg10, preparada por fusión de células de mieloma de
ratón (P3-X63-Ag8.653) con células
del bazo procedentes de ratones inmunizados con hTg (Piechaczyk, M.
Chardes, T., Cot, M.C., Pau, B., y Bastide, J.M., Hybridoma, Vol.
4, No. 4, 361-367 (1985)). Las células Tg10
producen un anticuerpo monoclonal (mAb), denominado también Tg10,
contra la tiroglobulina humana. Las células se dejaron crecer en
RPMI 1640 (Gibco/BRL) complementado con 10% de FCS en presencia de
100 u. (= Unidades)/ml de estreptomicina, 100 u./ml de penicilina y
L-glutamina 2 mM. Células Tg10 encapsuladas en la
matriz de sulfato de celulosa (CSM) se cultivaron en las mismas
condiciones que las células libres.
Se purificó Tg10 mAb para sobrenadante de cultivo
de células Tg10 por cromatografía de afinidad (Durrant, LG et al.,
Cancer Immunol. Immunother., Vol. 28, 37-41
(1989)). Se produjo anticuerpo anti-idiotípico de
conejo contra el Tg10 mAb como ha sido descrito (Del Río, M. et al.,
Immunol. Invest., Vol. 24, 655-667 (1995)). Se
preparó el fragmento F(ab)'2 de Tg10 por electroforesis
después de escisión de Tg10 mAb con pepsina, y la pureza de las
preparaciones se controló por análisis SDS-PAGE
(Del Río, M. et al., Immunol. Invest., Vol. 24,
655-667 (1995)).
Se suspendieron 10^{7} células en 1 ml de una
solución salina tamponada que contenía 3,8% de
celulosa-sulfato de sodio y 5% de suero de ternero
fetal. La suspensión se vertió gota a gota en un baño de
precipitación que contenía 2,5% de
poli-dimetil-dialilamonio (PDDMDAAC)
en solución salina tamponada utilizando un sistema de dispensación
(sistema de chorro de aire). La formación de cápsulas tuvo lugar en
cuestión de milisegundos, seguida por constitución ulterior de una
capa interna para soporte mecánico, más porosa, constituida
esencialmente por sulfato de celulosa. Las cápsulas que contenían
las células se mantuvieron en el baño de precipitación durante 30
segundos a 5 minutos y se lavaron luego en DMEM (Stange et al.,
Biomat. Art. Cells & Immob. Biotech. 21,
3443-352 (1993)).
Se utilizaron para los estudios biológicos lotes
obtenidos para diferentes parámetros como se ha descrito arriba, es
decir, concentración de celulosa-sulfato de sodio,
flujo del sistema de chorro de aire y tiempo en el baño de
precipitación. Ejemplos representativos de las condiciones son, por
ejemplo: 2,5% de celulosa-sulfato de sodio, 2% de
polidimetil-dialilamonio, y 1 minuto en el baño de
precipitación, o 1,5% de celulosa-sulfato de sodio,
2% de polidimetil-dialilamonio, y 0,5 minutos en el
baño de precipitación, o 3% de celulosa-sulfato de
sodio, 3% de polidimetil-dialilamonio, y 2 minutos
en el baño de precipitación. Los parámetros exactos pueden
seleccionarse también teniendo en cuenta el tamaño exacto de las
cápsulas deseadas, el espesor de la pared capsular y otras
propiedades.
Se anestesiaron ratones C3H de 4 a 6 semanas
(IFFA-CREDO) utilizando 0,01 ml por gramo de peso
corporal de una solución que contenía 0,1% de xilazina (Rompun,
Bayer) y 10 mg/ml de cetamina (Imalgene, Rhone Merieux). Las
cápsulas se lavaron en solución salina tamponada con fosfato (NaCl
0,15 M, fosfato de Na 0,01 M, pH 7) antes de la implantación. Se
implantaron seis o veinte cápsulas CSM-Tg10 en los
ratones por vía intraperitoneal o subcutánea (zona abdominal). En
el último caso, las cápsulas se implantaron en uno o tres sitios en
agrupaciones de seis o siete cápsulas por sitio.
Para la generación de anticuerpos
anti-idiotípicos Tg10, se inyectaron hembras B6D2F1
de seis semanas (IFFA-CREDO) por vía intradérmica en
sitios múltiples utilizando 20 \mug por ratón de Tg10 mAb
purificado emulsionado en una relación volumétrica 1:1 de adyuvante
completo de Freund (Sigma). Se administraron dos inyecciones de
refuerzo de 20 \mug de Tg10 mAb purificado (10 \mug por vía
intraperitoneal y 10 \mug por vía intramuscular) en adyuvante
incompleto de Freund (Sigma) tres y cuatro semanas después de la
primera inmunización, respectivamente. Se sangraron los ratones
antes de cada inmunización y una semana después de la última.
Después de la coagulación, las muestras de sangre se centrifugaron a
6000 rpm durante 15 minutos y se guardaron partes alícuotas de
suero a -20ºC hasta su utilización. Cada muestra se suero se ensayó
en cuanto a la presencia de anticuerpo
anti-idiotípico contra Tg10 como se describe a
continuación.
Los anticuerpos Tg10 en los sobrenadantes de
cultivo de células y en los sueros de ratón se ensayaron por ELISA
utilizando tiroglobulina humana (hTg)
(UCB-Bioproducts) para el recubrimiento de placas de
microtitulación (Maxisorb, Nunc) como ha sido descrito (Piechaczyk,
M. et al., Hybridoma, Vol. 4, 361-367 (1985); Noel,
D. et al., J. Immunol. Meth., Vol. 193, 177-187
(1996)) y se midió la absorbancia a 450 nm utilizando el lector de
placas automático MR 5000 de Dynatech. Se utilizó Tg10 mAb
purificado por Proteína A Sepharose como estándar para la
determinación de la concentración. Los anticuerpos
anti-idiotípicos contra el Tg10 mAb se ensayaron
por ELISA utilizando Tg10 F(ab)'2 para el recubrimiento de
las placas de microtitulación (Del Río, M. et al., Immunol.
Invest., Vol. 24, 655-667 (1995)). Se incluyó en los
experimentos un antisuero anti-idiotípico de conejo
(Del Río, M. et al., Immunol. Invest., Vol. 24, 655- 667 (1995))
contra el Tg10 mAb como control positivo.
En primer lugar, se determinó si el proceso de
encapsulación y la matriz CS podrían ser tóxicos para las células
de hibridoma Tg10 o podrían afectar a la producción de anticuerpos.
Las células encapsuladas, puestas en condiciones de cultivo
celular, se sometieron a recuento en diversos momentos posteriores a
la encapsulación y después de la trituración de las cápsulas. La
viabilidad celular se controló utilizando el método de exclusión
con azul tripán. En paralelo, se ensayó la producción de Tg10 mAb
por ELISA. El medio de cultivo se reemplazó cada 24 horas.
Las principales observaciones fueron las
siguientes:
(i) cada cápsula, cuyo diámetro variaba de 0,5 a
2 mm con un valor medio de 1 mm, contenía un promedio de 2 x
10^{4} células Tg10 en el momento de la encapsulación,
(ii) se estimó que la viabilidad de las células
encapsuladas 4 días después de la encapsulación era al menos
80%,
(iii) la producción del Tg10 mAb era detectable
durante un periodo de 50 días,
(iv) se observó un aumento inicial en la
producción de anticuerpos que duraba 10 días y estaba en
correlación con la proliferación limitada de las células Tg10
dentro de las cápsulas (que no puede exceder de una o dos tandas de
división debido a las limitaciones de espacio),
(v) entre el día 10 y el día 20 comenzó una
disminución acusada en la producción de anticuerpos, que estaba en
correlación con el comienzo de la muerte celular.
Considerados en su conjunto, estos datos indican
que el proceso de encapsulación per se no es tóxico para las
células Tg10. En lugar de ello, la supervivencia de las células
dentro de la matriz CS parece verse favorecida, dado que las
células Tg10 cultivadas en paralelo en condiciones estándar de
cultivo pero sin sometimiento a pasos murieron dentro de 1 a 2
semanas.
A continuación, se abordó la cuestión de si el
suministro sistémico de Tg10 mAb podría conseguirse después de la
implantación de cápsulas en ratones. Se ensayaron implantes tanto
subcutáneos (zona abdominal) como intraperitoneales para determinar
qué localización permitiría un mejor suministro de anticuerpos al
torrente sanguíneo. Tres ratones C3H se implantaron
intraperitonealmente con seis cápsulas, y un solo ratón con 20
cápsulas. Análogamente, se implantaron tres ratones por vía
subcutánea con seis cápsulas y tres ratones con 20 cápsulas. La
concentración de anticuerpos Tg10 en el torrente sanguíneo se
observó subsiguientemente por ELISA.
Pudo observarse que la producción de
anticuerpos
(i) estaba correlacionada directamente con el
número de cápsulas implantadas,
(ii) alcanzaba un valor pico entre la segunda y
tercera semanas después de la implantación,
(iii) era reproduciblemente mayor cuando las
cápsulas se implantaban subcutáneamente, dado que podía alcanzar un
valor tan alto como 12,5 \mug/ml en comparación con 2,5 \mug/ml
en el caso de la implantación intraperitoneal,
(iv) podía detectarse durante tanto como 4 meses,
aunque la concentración de anticuerpos Tg10 en la sangre disminuía
progresivamente hasta solo varias decenas de ng/ml.
Por último, la disminución en la producción de
anticuerpos parece estar relacionada con la muerte progresiva de
las células encapsuladas. Se estimó que la viabilidad de las
células encapsuladas en cápsulas extirpadas de los ratones 2 meses
después del implante subcutáneo, era 20-30%, valor
que estaba en correlación con la reducción de la concentración de
anticuerpos.
Las cápsulas implantadas por vías intraperitoneal
y subcutánea se comportaban de modo diferente en lo referente a su
vascularización. Así, 2 meses después de la implantación, las
cápsulas implantadas por vía subcutánea aparecían envueltas en una
bolsa vascularizada constituida por tejido conectivo laxo. La
formación de tales neo-órganos tenía lugar con indiferencia de si
las cápsulas contenían o no células de hibridoma. En contraste,
cuando las cápsulas se implantaron por vía intraperitoneal, no
formaban agrupaciones sino que se mantenían móviles y no se observó
vascularización alguna.
A continuación, se ha investigado el comienzo de
la vascularización, y se ha examinado si el tratamiento de las
cápsulas con factores angiogénicos podría acelerar y/o aumentar la
vascularización de las cápsulas implantadas por vía subcutánea. Las
cápsulas se trataron con bFGF, un factor de crecimiento conocido
desde hace mucho tiempo por tener actividad angiogénica (Montesano,
R. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, Vol. 83,
7297-7301 (1986);
Thompson, J.A. et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
USA, Vol. 86, 7928-7832 (1989)) y/o colágeno de
rata tipo I (Sigma), como se ha descrito arriba, se implantaron y
se siguieron con respecto a su vascularización. No se observó
diferencia evidente alguna entre las diversas condiciones
experimentales ensayadas. Eran fácilmente visibles vasos sanguíneos
que se desarrollaban alrededor de las cápsulas tres días después de
la implantación, y la vascularización completa se alcanzó después de
2 a 3 semanas, cuando estaba presente una red de vasos sanguíneos
tanto alrededor como en el interior del neo-órgano, manteniéndose
estable durante al menos 10 meses.
No se desarrollaba respuesta inflamatoria alguna
detectable al nivel de las
cápsulas CS que contenían
células Tg10
implantadas
Se examinaron ratones en cuanto al desarrollo de
posibles respuestas inflamatorias desencadenadas por las cápsulas
implantadas. No se observó respuesta inflamatoria alguna, inmediata
o retardada, detectable macroscópicamente en la proximidad de las
cápsulas después de la implantación intraperitoneal ni de la
subcutánea. Era también digna de mención la ausencia de cambios en
la vascularización de las cápsulas incluso 10 meses después de la
implantación subcutánea.
No era detectable respuesta
anti-idiotípica humoral contra el
anticuerpo Tg10 liberado por las células
encapsuladas
Se investigó también la posibilidad de que se
hubiera desarrollado una respuesta humoral contra el anticuerpo
Tg10 en los ratones implantados con células de hibridoma
encapsuladas. Como control positivo para estos experimentos se
utilizó un suero de conejo caracterizado previamente que contenía
anticuerpos anti-Tg10 (Del Río, M. et al., Immunol.
Invest., Vol. 24, 655-667 (1995)). Adicionalmente,
se inmunizó una serie de ratones con el anticuerpo monoclonal
purificado en presencia de adyuvante de Freund, como se ha descrito
arriba. De trece ratones inyectados, seis desarrollaron una
respuesta anti-idiotípica clara que indicaba que
los ratones no son intrínsecamente refractarios a la inducción de
una respuesta de este tipo. En contraste, no se detectó respuesta
anti-idiotípica alguna en ninguno de los ratones
implantados con cápsulas, con indiferencia de la concentración de
anticuerpo en sangre y del sitio de implantación. Estos datos
indican que la matriz de sulfato de celulosa no ejerce efecto
adyuvante evidente alguno que pudiera haber favorecido la inducción
de una respuesta neutralizante humoral contra el anticuerpo
Tg10.
Para resumir, se ha observado que pueden
utilizarse cápsulas de sulfato de celulosa que contienen células de
hibridoma para suministrar anticuerpos monoclonales al torrente
sanguíneo de ratones inmunocompetentes durante al menos varios
meses cuando se implantan subcutáneamente o en la cavidad
intra-peritoneal. Los datos arriba presentados
indican que la implantación de cápsulas que contienen células
productoras de anticuerpos en pacientes puede permitir
potencialmente un suministro sistémico de anticuerpos a largo plazo
y puede ser útil por tanto en el desarrollo de tratamientos de
vigilancia para cánceres y enfermedades víricas graves.
Adicionalmente, la encapsulación de las células productoras de
anticuerpos en sulfato de celulosa es útil en métodos de terapia
génico/celular basados en anticuerpos.
Claims (14)
1. Una cápsula encapsulante de células
productoras de anticuerpos para uso en el tratamiento de
enfermedades o trastornos sensibles a los anticuerpos producidos
por dichas células, comprendiendo dicha cápsula un núcleo que
contiene dichas células y una pared capsular porosa que rodea dicho
núcleo, que es permeable a los anticuerpos producidos por dichas
células, estando formada dicha cápsula por un polisacárido o
derivado de polisacárido que contiene grupo sulfato o por un
polímero sintético que contiene grupo sulfonato, y un
policatión.
2. La cápsula de acuerdo con la reivindicación 1,
en la cual dicho polisacárido o derivado de polisacárido que
contiene grupo sulfato se selecciona del grupo que comprende
sulfato de celulosa, acetato-sulfato de celulosa,
sulfato de carboximetil-celulosa, sulfato de
dextrano o sulfato de almidón.
3. La cápsula de acuerdo con la reivindicación 1,
en la cual dicho polímero sintético que contiene grupo sulfonato es
una sal poliestireno-sulfonato.
4. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3 anteriores, en la cual dicho policatión es
un polímero con grupos amonio cuaternario.
5. La cápsula de acuerdo con la reivindicación 4,
en la cual dicho polímero con grupos amonio cuaternario se
selecciona de polidimetildialilamonio o
polivinilbencil-trimetilamonio.
6. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 2 y 4 a 5 anteriores, en la cual dicho
polisacárido que contiene grupo sulfato es sulfato de celulosa, y
dicho policatión es polidimetildialilamonio.
7. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 anteriores, en la cual dichas células
productoras de anticuerpos se han modificado genéticamente para
producir anticuerpos clonados.
8. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 7 anteriores, en la cual dichos anticuerpos
pertenecen a las clases de inmunoglobulinas IgA, IgM, IgG, IgD o
IgE.
9. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8 anteriores, en la cual dichos anticuerpos se
seleccionan de anticuerpos que se fijan a un marcador de la
superficie vírica, una célula de cáncer, un linfocito T o B
implicado en los elementos patológicos de una enfermedad autoinmune,
un marcador de superficie de un parásito o un antígeno deletéreo
circulante.
10. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 9, en la cual dicho anticuerpo tiene un efecto
neutralizante.
11. La cápsula de acuerdo con cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 10 anteriores, para implantación en un cuerpo
animal, con inclusión de un humano.
12. La cápsula de acuerdo con la reivindicación
11 para implantación intraperitoneal o subcutánea.
13. Uso de la cápsula de acuerdo con cualquiera
de las reivindicaciones 1 a 12 anteriores para producir una
composición farmacéutica.
14. Una composición farmacéutica que comprende la
cápsula de acuerdo con cualquiera de las reivindicaciones 1 a 12
anteriores.
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