ES2204129T3

ES2204129T3 - Uso de derivados del acido 2-hidroxi-4-trifluorometilbenzoico como inhibidores de la activacion del factor de transcripcion nuclear nf- (k)b.

Info

Publication number: ES2204129T3
Application number: ES99920872T
Authority: ES
Inventors: Manuel Merlos Roca; Alberto Fernandez De Arriba; Fernando Cavalcanti De Maria; Agusti Miralles Acosta; Mariano Sanchez Crespo; Julian Garcia Rafanell; Javier Forn Dalmau
Original assignee: J Uriach y Cia SA
Current assignee: Noucor Health SA
Priority date: 1998-05-27
Filing date: 1999-05-26
Publication date: 2004-04-16
Anticipated expiration: 2019-05-26
Also published as: AU3828699A; KR20070006943A; US20030032630A1; EP1082962B1; NO20005981D0; ES2136581B1; JP2002516283A; WO1999061030A1; DK1082962T3; KR20010052404A; CA2332863A1; US6414025B1; DE69910019D1; EP1082962A1; ES2136581A1; KR100762156B1; PT1082962E; KR100713601B1; BR9911598A; ATE245987T1

Abstract

La invención se refiere al uso de derivados del ácido 2-hidroxi-4-trifluorometilbenzoico para inhibir la activación del factor de transcripción NF-kappaB. La invención se refiere también a la utilización de derivados del ácido 2-hidroxi-4-trifluorometilbenzoico para la preparación de medicamentos para el tratamiento o prevención de patologías asociadas a la activación del NF-kappaB y/o la expresión de genes dependientes o regulados, al menos en parte, a través del NF-kappaB en mamíferos, incluido el hombre.

Description

Uso de derivados del ácido 2-hidroxi-4-trifluorometilbenzoico.

Sector de la técnica

La presente invención se refiere al uso de derivados del ácido 2-hidroxi-4-trifluorometilbenzoico para la manufactura de un medicamento para el tratamiento de las enfermedades reivindicadas.

Descripción del estado de la técnica

El control de la expresión de proteínas juega un papel clave tanto en el mantenimiento del normal funcionamiento de las células y por extensión de los organismos, como en el desarrollo de procesos patológicos. Este control se realiza a través de los llamados factores de transcripción. Uno de estos factores es el conjunto de proteínas conocido como el factor de transcripción nuclear NF-\kappaB, formado por una familia de complejos diméricos íntimamente relacionados. El NF-\kappaB existe en forma inactiva en el citoplasma de muchos tipos de células. En respuesta a un estímulo, se activa y se transloca al núcleo, donde se une al ADN y regula la transcripción de diferentes genes. La activación del NF-\kappaB puede ser inducida por diferentes agentes como citocinas inflamatorias (por ejemplo, el factor de necrosis tumoral-alfa (TNF-\alpha) y la interleucina-1beta (IL-1\beta)), mitógenos, lipopolisacáridos bacterianos (LPS), virus, agentes oxidantes (por ejemplo, H_{2}O_{2} y ozono), ésteres de forbol y luz ultravioleta. Entre los diferentes genes cuya expresión se halla regulada a través del NF-\kappaB se encuentran muchos genes implicados en la respuesta inmune e inflamatoria. Así, entre otros, el NF-\kappaB regula la expresión de citocinas proinflamatorias como IL-1\beta, interleucina-2 (IL-2), interleucina-6 (IL-6), TNF-\alpha y factor estimulante de la formación de colonias de granulocitos y macrófagos (granulocyte-macrophage colony stimulating factor, GM-CSF); quimiocinas como interleucina-8 (IL-8), RANTES, proteína inflamatoria de los macrófagos-1\alpha (macrophage inflammatory protein-1\alpha, MIP-1\alpha), proteína quimiotáctica de los monocitos-1 (monocyte chemotactic protein-1, MCP-1) y eotaxina; enzimas inflamatorios como la óxido nítrico sintasa inducible (iNOS), ciclooxigenasa-2 (COX-2), 5-lipoxigenasa (5-LO) y fosfolipasa A_{2} citosólica (cPLA_{2}); moléculas de adhesión como la molécula de adhesión intercelular-1 (intercellular adhesion molecule-1, ICAM-1), la molécula de adhesión vascular-1 (vascular cell adhesion molecule-1, VCAM-1) y E-selectina; y receptores como el receptor de la interleucina-2 y el receptor de células T (P.J. Barnes y I.M. Adcock, Trends Pharmacol. Sci. 1997, 18, 46-50).

Se ha asociado disfunciones en la activación del NF-\kappaB y sus genes dependientes con diversas patologías como inflamación aguda, shock séptico, rechazo de trasplantes, daño por radiación, daño por isquemia y reperfusión y enfermedades neurodegenerativas (P.A. Baeuerle y T. Henkel, Annu. Rev. Immunol. 1994, 12, 141-179), asma y otras enfermedades inflamatorias crónicas (P.J. Barnes y I.M. Adcock, Trends Pharmacol. Sci. 1997, 18, 46-50), osteoporosis (Y. Abu-Amer y M. Mehrad Tondravi, Nature Med. 1997, 3(11), 1189-1190), y cáncer (M.A. Sovak y cols., J. Clin. Invest. 1997, 100 (12), 2952-2960). Asimismo, se han detectado niveles elevados de NF-\kappaB en tejido sinovial de pacientes con artritis reumatoide (H. Asahara y cols., Biochem. Mol. Biol. Int., 1995, 37(5), 827-32), en muestras de sistema nervioso central de enfermos de esclerosis múltiple (D. Gveric y cols., J. Neuropathol. Exp. Neurol. 1998, 57(2), 168-78) y en muestras de tejido aterosclerótico (K. Brand y cols., J. Clin. Invest. 1996, 97(7), 1715-22), y se ha visto que el péptido amiloide \beta, que se deposita en placas de enfermos de Alzheimer, activa el NF-\kappaB en células del sistema nervioso central (C. Behl y cols., Cell 1994, 77, 817-827). También se ha observado un gran incremento de la translocación nuclear de NF-\kappaB en neuronas dopaminérgicas de enfermos de Parkinson (S. Hunot y cols., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1997, 94(14), 7531-7536). Igualmente, se ha descrito que el NF-\kappaB interviene en la activación transcripcional de virus como el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), citomegalovirus, adenovirus y herpesvirus.

Por otro lado, se ha demostrado que las citocinas, enzimas inflamatorios, moléculas de adhesion y otras proteínas cuya expresión se halla regulada por el NF-\kappaB juegan un papel importante en un amplio abanico de patologías como inflamación; asma; síndrome del distrés respiratorio del adulto (adult respiratory distress syndrome, ARDS); enfermedades inmunoinflamatorias y autoinmunes como artritis reumatoidea, esclerosis múltiple, psoriasis, enfermedad inflamatoria intestinal, lupus y glomerulonefritis; artrosis; shock séptico; aterosclerosis; cáncer; osteoporosis; parto prematuro; rechazo de trasplantes; enfermedades neurodegenerativas como la demencia, incluido la enfermedad de Alzheimer, la enfermedad de Parkinson y la esclerosis lateral amiotrófica; e infecciones víricas.

A la vista de lo anterior, los agentes que sean capaces de modular la actividad del factor de transcripción NF-\kappaB y/o la expresión de genes dependientes de este factor de transcripción podrían ser de gran utilidad como agentes terapéuticos para el tratamiento o prevención de las patologías anteriormente citadas. Es por ello que es de gran interés encontrar agentes que sean capaces de regular la actividad del NF-\kappaB.

El ácido 2-acetiloxi-4-trifluorometilbenzoico, más conocido por su Denominación Común Internacional (DCI) triflusal, es un inhibidor de la agregación plaquetaria comercializado para el tratamiento de enfermedades tromboembólicas bajo la marca Disgren®. Su principal metabolito, el ácido 2-hidroxi-4-trifluorometilbenzoico (conocido también por las siglas HTB), posee también una notable actividad como antiagregante plaquetario. Ambos compuestos se hallan descritos en la patente US 4,096,252.

Los presentes inventores han encontrado que, sorprendentemente, tanto el triflusal como su metabolito, el HTB, inhiben la activación del NF-\kappaB. Asimismo, se ha encontrado que ambos compuestos son potentes inhibidores de la expresión de genes regulados transcripcionalmente por el NF-\kappaB. Debido a esta nueva actividad ahora descubierta, el triflusal y el HTB son potencialmente útiles en el tratamiento o prevención de patologías en las que la activación del NF-\kappaB y sus genes dependientes se halla implicada, como las anteriormente citadas.

Explicación de la invención

La presente invención se basa en el descubrimiento de que el triflusal y su metabolito, el HTB, son potentes inhibidores de la activación del factor de transcripción NF-\kappaB. Como se ha mencionado anteriormente, el NF-\kappaB es un factor de transcripción ubicuo que actúa uniéndose al ADN, activando de este modo la expresión de diferentes genes, muchos de ellos relacionados con la respuesta inmune e inflamatoria. La presente invención demuestra que el triflusal y el HTB inhiben la activación del NF-\kappaB inducida por diferentes agentes como TNF-\alpha, inmunocomplejos y LPS en diferentes tipos de células, como células endoteliales de vena de cordón umbilical humano (human umbilical vein endothelial cells, HUVEC), macrófagos y monocitos. Asimismo, se demuestra también que el triflusal y el HTB inhiben la expresión de diversas proteinas en cuya regulación transcripcional interviene el NF-\kappaB, como por ejemplo VCAM-1, iNOS, COX-2, MCP-1 y TNF-\alpha. Por ello, el triflusal y el HTB son útiles como agentes terapéuticos o preventivos en aquellas situaciones patológicas en las que participa el NF-\kappaB y/o las proteinas cuya expresión se halla regulada por este factor de transcripción.

El triflusal y el HTB se pueden representar de una forma genérica mediante la fórmula I:

1

donde R representa hidrógeno (HTB) o COCH_{3} (triflusal).

Es objeto de la presente invención el uso de un compuesto de fórmula I o una sal farmacéuticamente aceptable o un profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de patologías asociadas con la activación del factor de transcripción NF-\kappaB y/o la expresión de genes dependientes de este factor de transcripción.

La presente invención proporciona el uso de un compuesto de fórmula I o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de enfermedades inmunoinflamatorias y autoinmunes como artritis reumatoidea y otras enfermedades de tipo artrítico, esclerosis múltiple, psoriasis, enfermedad inflamatoria intestinal, lupus y glomerulonefritis; artrosis; cáncer; inflamación; asma o síndrome del distrés respiratorio del adulto; shock séptico; osteoporosis; parto prematuro; infecciones víricas y rechazo de trasplantes.

Las sales farmacéuticamente aceptables de un compuesto de fórmula I incluyen cualquiera de las sales utilizadas habitualmente en química farmacéutica, como por ejemplo las sales con cationes inorgánicos como sodio, potasio, calcio, magnesio, litio, aluminio, zinc, etc. así como las sales formadas con amoníaco y otras aminas farmacéuticamente aceptables.

A lo largo de la presente descripción, se entiende por profármaco de un compuesto de fórmula I cualquier compuesto precursor de un compuesto de fórmula I que es capaz de metabolizarse y liberar in vivo un compuesto de fórmula I, es decir el triflusal o el HTB.

Por NF-\kappaB se entiende cualquier miembro de la familia de proteínas conocidas por este nombre.

Por gen dependiente y/o regulado, al menos en parte, a través del factor de transcripción NF-\kappaB se entiende cualquier gen que posea en su región promotora uno o más puntos de unión con el NF-\kappaB. La lista de genes regulados por el NF-\kappaB mencionada anteriormente en el apartado "Descripción del Estado de la técnica" se cita solamente a modo de ejemplo.

Por patología asociada a la activación del factor de transcripción NF-\kappaB y/o la expresión de genes dependientes de este factor de transcripción se entiende cualquier enfermedad o estado patológico donde intervenga, al menos en parte, la activación del NF-\kappaB y/o las proteinas cuya expresión (es decir la expresión del gen que las codifica) se halla regulada por este factor de transcripción.

El término enfermedad inflamatoria intestinal incluye tanto colitis ulcerosa como la enfermedad de Crohn así como cualquier otro tipo de variante de enfermedad inflamatoria intestinal.

El término rechazo de trasplantes se refiere tanto al rechazo de trasplantes de tejidos, como por ejemplo la enfermedad de injerto contra huésped, como de órganos.

Procedimientos para preparar el triflusal o el HTB se hallan descritos en la patente americana antes citada (US 4,096,252).

Como se ha dicho anteriormente, los compuestos de fórmula I inhiben la activación del factor de transcripción NF-\kappaB y por tanto pueden utilizarse para inhibir dicha activación en mamíferos, preferiblemente en seres humanos. La dosis de un compuesto de fórmula I necesaria para modular la activación del factor de transcripción NF-\kappaB por las enfermedades reivindicadas dependerá de la patología tratada, de la gravedad de los síntomas, de la edad y peso corporal del paciente así como de la vía de administración elegida. Cualquier entendido en la materia podrá fácilmente determinar las dosis adecuadas en función de estos factores sin tener que recurrir a una excesiva experimentación. En terapia humana, generalmente las dosis estarán comprendidas entre aproximadamente 30 mg y aproximadamente 3000 mg al día de un compuesto de fórmula I, que podrán ser administrados en una o varias unidades de dosis. Dependiendo de la patología concreta a tratar y de la situación del paciente, sin embargo, podrían ser necesarias dosis fuera de este rango, que como ya se ha mencionado antes podrán ser determinadas por un entendido en la materia sin necesidad de excesiva experimentación.

Los compuestos de fórmula I pueden ser administrados en forma de cualquier formulación farmacéutica, la naturaleza de la cual, como es bien sabido, dependerá de la vía de administración y de la naturaleza de la patología a tratar. Estas composiciones farmacéuticas se pueden preparar por técnicas convencionales, empleando excipientes o vehículos compatibles y farmacéuticamente aceptables. Ejemplos de estas composiciones incluyen cápsulas, comprimidos, jarabes, polvos y granulados para la formación de soluciones extemporáneas, preparaciones inyectables, etc. Una vía preferida de administración de los compuestos de fórmula I es por vía oral. Por ejemplo, pueden administrarse en forma de cápsulas de gelatina dura que contengan por ejemplo 50, 100, 200, 300, 400 ó 500 mg de un compuesto de fórmula I o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo.

Breve descripción de las figuras

La Figura 1 ilustra el efecto inhibidor del triflusal y HTB sobre la activación del factor de transcripción NF-\kappaB inducida por TNF-\alpha en cultivos de células endoteliales de vena de cordón umbilical humano (HUVEC).

La Figura 2 ilustra el efecto inhibidor del triflusal y HTB sobre la activación del factor de transcripción NF-\kappaB inducida por inmunocomplejos (IC) en macrófagos de rata.

La Figura 3 (A y B) ilustra el efecto inhibidor del HTB sobre la activación del factor de transcripción NF-\kappaB inducida por lipopolisacárido bacteriano (LPS) en células mononucleares de sangre periférica humana.

La Figura 4 ilustra el efecto inhibidor del triflusal y HTB sobre la expresión del ARNm de VCAM-1 inducida por TNF-\alpha en HUVEC.

La Figura 5 ilustra el efecto inhibidor del HTB (5A) y triflusal (5B) sobre la producción de nitrito inducida por inmunocomplejos en macrófagos de rata.

La Figura 6 ilustra el efecto del triflusal y HTB sobre la COX-2 inducida por LPS en células mononucleares humanas: (6A) efecto inhibidor del triflusal sobre la expresión de COX-2; (6B) efecto inhibidor del HTB sobre la expresión de COX-2; (6C) inhibición de la producción de prostaglandina E_{2} (PGE_{2}) producida por triflusal; (6D) inhibición de la producción de PGE_{2} producida por HTB.

La Figura 7 ilustra el efecto inhibidor del triflusal administrado por vía oral sobre la expresión de COX-2 (7A) y la producción de PGE_{2} (7B) en un modelo de inflamación inducido por carragenina en rata.

La Figura 8 ilustra el efecto inhibidor del HTB sobre la expresión de MCP-1 inducida por inmunocomplejos (IC) en la línea monocítica humana THP-1.

La Figura 9 ilustra el efecto inhibidor del triflusal y HTB sobre la expresión de TNF-\alpha inducida por lipopolisacárido bacteriano (LPS) en células mononucleares de sangre periférica humana.

\newpage

Los siguientes ejemplos ilustran la utilidad del triflusal y el HTB como inhibidores de la activación del NF-\kappaB y sus genes dependientes. Las siguientes abreviaturas se han utilizado en los ejemplos:

EDTA:	ácido etilendiamintetraacético
DTT:	1,4-ditiotreitol
pb:	pares de bases
PBS:	tampón fosfato salino (phosphate-buffered saline)
RT-PCR:	reacción de cadena de la polimerasa transcriptasa inversa
	(reverse transcriptase polymerase chain reaction)
dNTP:	desoxirribonucleósidos trifosfato
ADN:	ácido desoxirribonucleico
ARN:	ácido ribonucleico
MTT:	azul de tiazolio
TBS:	tampón Tris salino (Tris-buffered saline)
ATP:	adenosil trifosfato
DMSO:	dimetilsulfóxido
SFB:	suero fetal bovino

Ejemplo 1 Inhibición de la activación del NF-\kappaB inducida por TNF-\alpha en HUVEC A. Cultivo celular

Las células endoteliales de vena de cordón umbilical humano (HUVEC) fueron obtenidas por el procedimiento de Dejana y cols. (J. Cell Biol 1987, 104(5), 1403-1411), mediante el tratamiento del cordón umbilical con 0,2% de colagenasa P de C.histolyticum (Boehringer Manheim GmbH, Manheim, Alemania) durante 20 minutos a 37ºC. Posteriormente, se cultivaron las células en el medio M199 (Flow Lab, Herts, U.K.) con 100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina, 2,5 \mug/ml de anfotericina B y 20% de suero fetal bovino. El cultivo inicial fue realizado en frascos de 25 cm^{2} de plástico. Después de 24 horas se lavaron las células para extraer aquellas células no adheridas a la superficie del frasco. A continuación se añadió el mismo medio de cultivo reconstituido con 10% de suero fetal bovino, 50 \mug/ml de factor suplementario de crecimiento endotelial y 100 \mug/ml de heparina. Después de 5-7 días de cultivo, las células llegaron a la confluencia y fueron despegadas de la superficie del frasco con 0,05% de tripsina y 0,02% de EDTA (Flow Lab). La reacción fue inhibida con la adición de suero fetal bovino y posteriormente las células se lavaron y resembraron en medio de cultivo. Las células crecieron hasta la confluencia en frascos cubiertos con gelatina. Las células usadas en los experimentos pertenecían a los estadios 2-7.

B. Tratamiento de las células HUVEC con TNF-\alpha y ensayo de modificación de la movilidad electroforética (Electrophoretic Mobility Shift Assay, EMSA)

En este experimento, las células HUVEC fueron preincubadas con Triflusal y HTB, a concentraciones en ambos casos de 2 y 4 mM. Posteriormente estas células fueron estimuladas con 100 U/ml de TNF-\alpha (Genzyme Diagnostics, Cambridge, MA USA) durante 90 minutos. A continuación, las células HUVEC fueron lavadas en tampón de lisis hipotónico frío (10 mM tampón HEPES-KOH, pH 7,9, 10 mM KCl, 1,5 mM MgCl_{2}, 0,5 mM DTT (1,4-ditiotreitol), 0,5 mM fluoruro de fenilmetilsulfonilo, 5 \mug/ml aprotinina, 5 \mug/ml leupeptina y 0,6% Nonidet P-40) y mantenidas en hielo durante 10 minutos. Posteriormente, se aplicó una fuerte agitación con vortex durante 10 segundos. Las células no lisadas se eliminaron por centrifugación a 1000 x g durante 10 minutos. Los núcleos se aislaron por centrifugación a 15000 x g durante 1 minuto en una microcentrífuga. El pellet nuclear se resuspendió en un tampón de extracción altamente salino (25% glicerol y 0,5 M KCl). El extracto nuclear se obtuvo mediante una centrifugación durante 30 minutos a 105000 x g en una ultracentrífuga Optima Tl (Beckmann) usando un rotor TLA 100.2. Un oligonucleótido de 22 pb de doble cadena que contenía secuencias de NF-\kappaB fue usado como sonda. Esta sonda fue marcada en su extremo terminal con (\gamma-^{32}P)ATP mediante el enzima T4 polinucleótido quinasa y purificada por minicolumna de cromatografía. La secuencia \kappaB utilizada fue, 5'-AGTTCAGGGGAATTTCCCAGGC-3' y su complementario 5'-GCCTGGGAAATTCCCCTGAACT-3'. 10 \mug de la proteína nuclear purificada fueron incubados durante 20 minutos en hielo con la sonda marcada radiactivamente (2-6 x 10^{4} cpm) en 25 \mul de tampón de reacción compuesto por 2 \mug de poli(dI-dC), 10 mM Tris HCl pH 7,5, 100 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM DTT, 8% Ficoll y 4% glicerol. Los complejos nucleoprotein- oligonucleótido fueron resueltos por electroforesis en un gel de poliacrilamida no desnaturalizante en tampón Tris-borato/EDTA durante 3 horas a 175 V y a 4ºC. El gel fue secado y autorradiografiado con una pantalla intensificadora a -80ºC y de 2 a 12 horas. La especificidad del complejo ADN(sonda)-proteína fue confirmada por la competición de la sonda marcada con ^{32}P con un exceso 300 veces superior de sonda no marcada, con lo cual no se observó presencia de sonda marcada en el complejo ADN-proteína (datos no mostrados). La muestra señalada como control corresponde a células incubadas durante 90 minutos en ausencia de TNF-\alpha.

C. Resultados

Los resultados de este experimento se muestran en la figura 1. Tanto triflusal como HTB inhiben de forma concentración-dependiente la activación de NF-\kappaB inducida por TNF-\alpha en HUVEC.

Ejemplo 2 Inhibición de la activación del NF-\kappaB inducida por inmunocomplejos (IC) en macrófagos de rata A. Aislamiento y cultivo de macrófagos peritoneales de rata

Se extrajeron células de la cavidad peritoneal de rata y se resuspendieron en medio de cultivo DMEM sin suero al que se había añadido previamente 100 U/ml de penicilina, 100 \mug/ml de estreptomicina, 50 \mug/ml de gentamicina, 2 mM de glutamina y 0,5 mM de L-arginina. Las células se incubaron 2 horas en placas de cultivo a 37ºC y aquellas que no se adhirieron a las placas se eliminaron mediante tres lavados consecutivos con el mismo medio fresco. Más del 95% de las células adheridas a la placa resultaron ser macrófagos, como se comprobó por su capacidad para fagocitar partículas de zimosan y marcaje no específico de esterasa. Los macrófagos se mantuvieron a 37ºC en una atmósfera de 5% CO_{2} y dos horas después se eliminaron las células en suspensión y los macrófagos peritoneales adheridos a la placa se incubaron con 100 \mug/ml de Inmunocomplejos IgG/ovoalbúmina preparados a partir de antisuero de conejo durante dos horas en presencia o ausencia (vehículo) de triflusal o HTB (4 mM, ambos).

B. Ensayo de la modificacion de la movilidad electroforetica (EMSA)

Una vez terminada la incubación los macrófagos se lavaron dos veces con PBS y se determinó el grado de activación (unión al ADN) del factor de transcripción NF-\kappaB mediante la técnica de EMSA, descrita detalladamente en el Ejemplo 1.

C. Resultados

En la figura 2 se muestran los resultados obtenidos con triflusal y HTB en este experimento. Se muestra un ejemplo representativo de los obtenidos en dos experimentos independientes. Tanto el triflusal como el HTB inhiben de forma pronunciada la activación del NF-\kappaB inducida por inmunocomplejos en macrófagos de rata.

Ejemplo 3 Inhibición de la activación del NF-\kappaB inducida por lipopolisacárido bacteriano (LPS) en células mononucleares de sangre periférica humana (peripheral blood mononuclear cells, PBMC) A. Aislamiento y cultivo de células mononucleares humanas

Las células mononucleares (PBMC) fueron obtenidas a partir de sangre de voluntarios sanos del Hospital de Sant Pau (Barcelona) que no habían ingerido ningún tipo de fármaco antinflamatorio durante un periodo no inferior a las dos semanas previas a la extracción. Se partió de un volumen aproximado de 80 ml de sangre humana heparinizada (10 U/ml) que se diluyó (1:1) con PBS (pH 7,4; Dulbecco) sin calcio, ni magnesio ni bicarbonato sódico.

En tubos Falcon de 50 ml se pipetearon 15 ml de una solución de Ficoll (d = 1,077 a 20ºC; Biochrom KG). Sobre esta solución se añadió cuidadosamente un volumen aproximado de 25 ml por tubo de la sangre previamente diluida con PBS y se centrifugaron a 1200 g durante 20 minutos. Las células mononucleares se concentran en una interfase blanca entre el plasma y la solución de Ficoll. Se extrajo esta interfase con una pipeta Pasteur y se diluyó 1:1 en PBS. Se centrifugó a 300g durante 10 min. El precipitado resultante se resuspendió en 50 ml de PBS y se volvió a centrifugar a 200 g durante 10 min, con el fin de eliminar la contaminación por plaquetas. Por último, el precipitado de esta centrifugación se resuspendió en 20 ml de medio de cultivo RPMI 1640 (GibcoBRL) con un 10% de suero fetal bovino.

Las PBMC aisladas se analizaron mediante una tinción Wright-Giemsa estándar para comprobar que mostraban una morfología de células mononucleares normales y determinar los distintos tipos celulares aislados (una media de 90% de linfocitos y 10% de monocitos). Previamente a los distintos tratamientos se analizó la viabilidad celular mediante la prueba de exclusión del azul Tripan. Las células se diluyeron a una concentración de 2,5 millones/ml con medio RPMI al 10% de suero fetal bovino y se incubaron (37ºC, 5% CO_{2}) 1 hora en placas de 6 pocillos (2 ml/pocillo, 5 millones de PBMC) sin añadir ningún fármaco (control) o añadiendo HTB (1-3 mM). A continuación las células se incubaron durante 10 minutos más en presencia de 10 \mug/ml de lipopolisacárido de E.coli (LPS, serotipo 026:B6; Sigma). Una vez terminada la incubación, se tomó una muestra (100 \mul) para efectuar un recuento celular y controles de viabilidad mediante la capacidad de conversión de la sal soluble de tetrazolio, MTT, en el producto insoluble formazán por las deshidrogenasas mitocondriales(test de MTT). Se realizaron además incubaciones de las células con HTB (3 mM) pero sin añadir LPS. En todos los casos la viabilidad fue igual o superior al 95%.

B. Ensayo de la modificación de la movilidad electroforética (EMSA)

Una vez terminada la incubación las PBMC se lavaron dos veces con PBS y se determinó el grado de activación (unión al ADN) del factor de transcripción NF-\kappaB mediante la técnica de EMSA, descrita detalladamente en el Ejemplo 1.

C. Resultados

En la figura 3 se muestran los resultados obtenidos con HTB en este experimento. Se muestra un ejemplo representativo de los obtenidos en dos experimentos independientes. El HTB inhibe de forma pronunciada la activación del NF-\kappaB inducida por LPS en PBMC humanas.

Ejemplo 4 Inhibición de la expresión de VCAM-1 en HUVEC inducida por TNF-\alpha A. Síntesis de la primera cadena de ADNc y PCR de VCAM-1

Los cebadores (primers) utilizados para la detección del ARNm de VCAM-1 por RT-PCR fueron diseñados a partir de la secuencia del gen humano (EMBL/GenBank AC: M30257), usando la versión 9.1 del programa Wisconsin, Genetics Computer Group (GCG), Madison, Wisconsin. Fueron las secuencias 5'-TGTCACTGTAAGCTGCAAG-3' y 5'-TTCCAGCCTGGTTAATTC-3', correspondientes a los nucleótidos 1090-1108 y 1589-1572 (L. Osborn y cols., Cell 1989, 59(6), 1203-1211). El ARN total de las células cultivadas es extraido según el método de isotiocianato de guanidinio (P. Chomczynski y N. Sacchi, Anal Biochem. 1987, 162(1), 156-159). La primera cadena de ADNc es sintetizada a partir del ARN total mediante una reacción de transcripción inversa. La reacción se realiza con 0,2 mg/ml de ARN total (precalentado a 68ºC durante 10 minutos), 2,5 \mul H_{2}O, 20 U de inhibidor de ARNasa ribonucleica, 4 \mul de tampón 5X, 2 \mul de 0,1 M DTT, 4 \mul de dNTP 2,5 mM, 1 \mul de hexanucleótidos 0,1 mM y 200 U de transcriptasa inversa del virus de la leucemia murina de Moloney. La reacción se realiza a 37ºC, durante 60 minutos y con un volumen de 20 \mul. El ADNc de VCAM-1 se amplifica por PCR en una reacción conteniendo 2 \mul de ADN, 10 \mul de H_{2}O, 2,5 \mul de tampón 10X,0,75 \mul de MgCl_{2} 50 mM, 1,0 \mul de dNTP 2,5 mM, 1,25 \mul de cada uno de los cebadores (sentido y antisentido) y 0,25 \mul de Taq ADN polimerasa 5 U/ml. El control negativo se realiza con agua, incluyéndose en cada una de las reacciones de PCR. Las condiciones de amplificación son las siguientes: un ciclo inicial de desnaturalización a 94ºC durante 5 minutos, y a continuación 30 ciclos compuestos por: desnaturalización a 94ºC durante 30 segundos, unión de los cebadores (annealing) a 59ºC durante 30 segundos, y extensión a 72ºC durante 1 minuto; finalmente se realizó un ciclo de extensión a 72ºC durante 7 minutos. La cantidad relativa de cada ADNc amplificado se determina por la densidad de las bandas teñidas con bromuro de etidio y analizadas por el sistema de documentación Gel Doc y el software Molecular Analyst de Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA. La expresión de \beta-actina se usa como control para el ensayo de la expresión de un gen expresado constitutivamente.

En concreto, se estudió el efecto de Triflusal (4 mM) y HTB (4 mM) en la regulación de la expresión del ARNm de la molécula VCAM-1 inducida por TNF-\alpha (100 U/ml) en HUVEC. Así, las células fueron incubadas en presencia o ausencia de TNF-\alpha y con Triflusal y HTB. Una hora después, el ARN total fue extraido y sometido a la reacción de transcripción inversa. Posteriormente, se realizó una reacción de amplificación por PCR con los cebadores diseñados para las secuencias de las moléculas VCAM-1 y \beta-actina humana. Los productos de PCR fueron separados por electroforesis en un gel de agarosa al 1,8% y cuantificados posteriormente. El peso molecular de los productos de amplificación fue determinado a partir de la migración electroforética de los marcadores de ADN.

B. Resultados

Los resultados obtenidos en este experimento se muestran en la figura 4. Tanto triflusal como HTB a una concentración 4 mM producen una inhibición completa de la expresión del ARNm de VCAM-1 inducida por TNF-\alpha en HUVEC. La falta de actividad sobre la expresión del ARNm de \beta-actina evidencia la selectividad de los compuestos ensayados por el factor de transcripción NF-\kappaB.

Ejemplo 5 Inhibición de la expresión de iNOS en macrófagos peritoneales de rata inducidos por inmunocomplejos A. Determinación de la producción de no por macrófagos peritoneales de rata

Se obtuvieron células peritoneales de rata que se resuspendieron en un medio de cultivo DMEM sin suero y suplementado con antibióticos. Los macrófagos se aislaron por su capacidad para adherirse a las placas de cultivo tras 2 horas de incubación a 37ºC. Las células no adherentes se descartaron y se comprobó por su capacidad para fagocitar partículas de zimosan y marcaje no específico de esterasa que el 95% de las células adheridas eran macrófagos. Las placas de cultivo se mantuvieron a 37ºC en una atmósfera de 5% CO_{2}, y los macrófagos peritoneales adheridos a la placa se incubaron con 100 \mug/ml de inmunocomplejos de IgG/ovoalbumina en presencia o ausencia (Control) de triflusal o HTB (0,1-20 mM, ambos). Los fármacos se añadieron 10 minutos antes de la adición de IgG/ovoalbúmina y la producción de NO se determinó como el nitrito presente al cabo de 24 horas.

B. Determinación del no y nitrito

La expresión de iNOS se midió de forma indirecta como producción de NO. El NO liberado por los cultivos de macrófagos se determinó indirectamente mediante la acumulación de nitritos. A un mililitro de cultivo celular (0,5 millones de células en medio sin rojo fenol) se le añadió 100 \mul de una solución de 1 mM de ácido sulfanílico y 100 mM HCl (concentración final). Tras incubar la mezcla durante cinco minutos, se aspiró el medio y se centrifugó en una microcentrífuga de eppendorf. Se añadieron 50 \mul de naftilendiamina (1 mM en la mezcla) y después de 15 minutos de incubación se midió la absorbancia de la muestra a 548 nm comparándola con un patrón de NaNO_{2}. La producción de NO se expresó como nmoles de NO_{2}^{-}/mg de proteína.

C. Resultados

Los resultados obtenidos en este experimento se muestran en la figura 5A para el HTB y en la figura 5B para el triflusal. Los puntos representan la media \pm error estándar de la media (EE) de 7 a 9 experimentos por duplicado. Las Cl_{50} calculadas para el triflusal y el HTB a partir de las gráficas correspondientes fueron 1,13 \pm 0,12 y 1,84 \pm 0,34 mM, respectivamente.

Resultados similares se obtuvieron al incubar los macrófagos con LPS en lugar de inmunocomplejos.

Ejemplo 6 Inhibición de la expresión de COX-2 inducida por lipopolisacárido bacteriano (LPS) en células mononucleares de sangre periférica humana (PBMC) A. Aislamiento y cultivo de células mononucleares humanas

Las células mononucleares (PBMC) fueron obtenidas a partir de sangre de voluntarios sanos del Hospital de Sant Pau (Barcelona) que no habían ingerido ningún tipo de fármaco antiinflamatorio durante un periodo no inferior a las dos semanas previas a la extracción. Se partió de un volumen aproximado de 80 ml de sangre humana heparinizada (10 U/ml) que se diluyó (1:1) con PBS (pH 7,4; Dulbecco) sin calcio, ni magnesio ni bicarbonato sódico.

En tubos Falcon de 50 ml se pipetearon 15 ml de una solución de Ficoll (d = 1,077 a 20ºC; Biochrom KG). Sobre esta solución se añadió cuidadosamente un volumen aproximado de 25 ml por tubo de la sangre previamente diluida con PBS y se centrifugaron a 1200 g durante 20 minutos. Las células mononucleares se concentran en una interfase blanca entre el plasma y la solución de Ficoll. Se extrajo esta interfase con una pipeta Pasteur y se diluyó 1:1 en PBS. Se centrifugó a 300 g, 10 min. El precipitado resultante se resuspendió en 50 ml de PBS y se volvió a centrifugar a 200 g durante 10 min con el fin de eliminar la contaminación por plaquetas. Por último, el precipitado de esta centrifugación se resuspendió en 20 ml de medio de cultivo RPMI 1640 (GibcoBRL) con un 10% de suero fetal bovino.

Las PBMC aisladas se analizaron mediante una tinción Wright-Giemsa estándar para comprobar que mostraban una morfología de células mononucleares normales y determinar los distintos tipos celulares aislados (una media de 90% de linfocitos y 10% de monocitos). Las células se diluyeron a una concentración de 2,5 millones /ml con medio RPMI al 10% de suero fetal bovino y se incubaron (37ºC, 5% CO_{2}) 19 horas en placas de 6 pocillos (2 ml/pocillo, 5 millones de PBMC). Las incubaciones se realizaron en presencia de 10 \mug/ml de lipopolisacárido de E.coli (LPS, serotipo 026:B6; Sigma) sin añadir ningún fármaco (control) o añadiendo además Triflusal o HTB (0,1-5 mM). Previamente a la incubación se realizaron pruebas de viabilidad celular mediante la prueba de exclusión del azul Tripan. Una vez terminada la incubación, se tomó una muestra (100 \mul) para efectuar un recuento celular y controles de viabilidad mediante la capacidad de conversión de la sal soluble de tetrazolio, MTT, en el producto insoluble formazán por las deshidrogenasas mitocondriales (test de MTT). Se realizaron además incubaciones de las células con HTB y Triflusal a iguales concentraciones pero sin añadir LPS. En todos los casos la viabilidad fue igual o superior al 95% tanto al principio del experimento como al cabo de 19 horas de incubación.

B. Ensayos de inmunoblot

Una vez terminada la incubación, las células se centrifugaron 5 min a 1000g. Se recogió el sobrenadante y se guardó a -70ºC para la posterior determinación de niveles de prostaglandina E_{2} como índice de la actividad COX-2, y el precipitado se resuspendió en 5 ml de PBS y se volvió a centrifugar (5 min, 1000 g). El precipitado de esta última centrifugación se resuspendió en 50 \mul de tampón de lisis celular (PBS con 1% de Nonidet P-40 y 1 mM de EDTA) y se incubó en hielo 15 minutos. La mezcla resultante se centrifugó a 20000 g 15 min y se recuperó el sobrenadante, del cual se extrajeron 5 \mul que se diluyeron 1/20 con PBS para la determinación de la concentración de proteína, mediante el Reactivo de Ensayo de Proteínas BCA (Pierce).

El sobrenadante restante fue entonces mezclado 1:1 con tampón de carga de electroforesis (Tris 50 mM; SDS 2% p/v; glicerol 10% v/v; \beta-mercaptoetanol, 50 \mul/ml y azul de bromofenol, 2 mg/ml) y hervido durante 5 min. Las muestras fueron centrifugadas a 10000g durante 2 min y posteriormente sometidas a una electroforesis discontínua en un gel SDS-Poliacrilamida (4% gel concentrador/7,5% gel separador) a una intensidad variable y un voltaje fijo de 200 V, hasta que el frente se acerca a unos milímetros del final del gel (1 hora, aproximadamente).

Las proteínas se transfirieron a una membrana de nitrocelulosa, mediante un sistema refrigerado TE 22 Mighty Small Transfer Unit (Hoefer), a un voltaje de 100 V durante 2 horas. Una vez finalizada la transferencia, las membranas se dejaron toda la noche en agitación a 4ºC en tampón de bloqueo (1:4 leche en polvo descremada en TBS con Tween 20 al 0,1%).

Las membranas bloqueadas se incubaron 1 hora en agitación con un anticuerpo policlonal de cabra contra COX-2 humana (Santa Cruz Biotechnology, Inc.) y una vez lavadas se incubaron 1 hora más con un segundo anticuerpo marcado con peroxidasa de rábano (Rabbit Anti-goat IgG-Horseradish Peroxidase, Immunopure, Pierce) y el anticuerpo unido a la proteína se visualizó mediante quimioluminiscencia (ECL, Amershan).

Posteriormente, los sobrenadantes de cada experimento que se habían conservado a -70ºC se descongelaron y se valoró la cantidad de PGE_{2} en solución utilizando kits de ELISA específicos (Amershan-Biotrak RPN22).

C. Resultados

En la figura 6 se muestran los resultados obtenidos en este experimento.

Los resultados mostrados corresponden a dos inmunoblots representativos de los obtenidos en cinco experimentos independientes (Fig. 6A: triflusal; Fig. 6B: HTB) y a la media \pm EE de la cuantificación de PGE_{2} en los sobrenadantes de los cultivos correspondientes a dichos experimentos (Fig. 6C: triflusal; Fig. 6D: HTB). Tanto el triflusal como el HTB inhiben de forma concentración-dependiente la expresión de COX-2 y la producción de PGE_{2}.

Ejemplo 7 Inhibición de la expresión de COX-2 en células de exudado inflamatorio de rata A. Metodología general

Para llevar a cabo este estudio se han utilizado ratas Lewis (175-200 g). Las ratas se distribuyeron al azar en grupos de 5 animales. A cada grupo se les produjo un "saco de aire" ("air pouch") por la inyección subcutánea e interescapular de 20 ml de aire estéril. Para mantener el saco de aire, cada dos días se les inyectó 10 ml de aire adicional. Transcurridos 7 días de la inyección inicial de aire, a cada grupo se le administró en el saco de aire, 2 ml de una solución de carragenina al 1% para producir una reacción inflamatoria. El compuesto a ensayar se administra por vía oral 30 min. antes de la administración de carragenina. Los animales se sacrificaron 6 horas más tarde y se procedió a valorar el volumen de exudado. El tipo y número de células presentes se determinó con una tinción estándar de Wright-Giemsa y un contador de células Coulter Counter, respectivamente. El exudado fue centrifugado a 400 x g a 4ºC durante 7 min y la concentración de PGE_{2} se determinó mediante una técnica de inmunoensayo enzimático (Amershan-Biotrak RPN222). El sedimento celular se resuspendió en 2 ml de NaCl 0,85% frío. Para eliminar la contaminación con glóbulos rojos las células fueron sometidas a una lisis celular selectiva mediante la adición de 6 ml de agua fría durante 20 segundos. Para restablecer la isotonía de la suspensión celular se adicionaron 2 ml de NaCl 3,5%. Finalmente, la suspensión celular se centrifugó en las mismas condiciones descritas anteriormente y el sedimento se resuspendió en tampón de lisis a una densidad de 2x10^{8} células para realizar los estudios de inmunoblot (ver Ejemplo 6).

B. Resultados

Los resultados se muestran en la figura 7. La Fig. 7A corresponde a un inmunoblot representativo y la Fig. 7B muestra la media \pm EE de la cuantificación de PGE_{2} en el exudado de rata (n = 4). La administración oral de triflusal (3-30 mg/kg) inhibe de forma dosis-dependiente la expresión de la COX-2 en las células presentes en el exudado y la producción de PGE_{2}.

Ejemplo 8 Inhibición de la expresión de la proteína quimiotáctica de monocitos-1 (MCP-1) inducida por inmunocomplejos en la línea monocítica humana THP-1 A. Cultivo celular y determinación de niveles de MCP-1

Las células de la línea monocítica humana THP-1 (3x10^{6} células/pozo) se cultivaron en placas de plástico con medio de cultivo RPMI 1640 al que se añadió penicilina (100 U/ml), estreptomicina (100 \mug/ml), gentamicina (50 \mug/ml), glutamina (2 mM) y un 2% de suero fetal bovino inactivado por calor. Las células se cultivaron en presencia de HTB (2 y 4 mM) o vehículo y se activaron con 100 \mug/ml de agregado de inmunocomplejo (A-IgG). La aparición de MCP-1 soluble se determinó mediante ELISA con un kit comercial (R&D Systems Inc.; Minneapolis, MN). El límite de detección del sistema fue de 5 pg/ml.

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B. Resultados

Los resultados obtenidos en esta prueba se muestran en la figura 8. El HTB, tanto a una concentración de 4 mM como de 2 mM, produce una inhibición completa de la expresión de MCP-1 inducida por inmunocomplejos en THP-1.

Ejemplo 9 Inhibición de la expresión de TNF-\alpha inducida por lipopolisacárido bacteriano (LPS) en células mononucleares de sangre periférica humana (PBMC) A. Aislamiento y cultivo de células mononucleares humanas

Las células mononucleares (PBMC) fueron obtenidas a partir de sangre de voluntarios sanos del Hospital de Sant Pau (Barcelona) según el protocolo descrito en el ejemplo 3. Las células se diluyeron a una concentración de 2 millones/ml con medio RPMI al 10% de suero fetal bovino y se incubaron (37ºC, 5% CO_{2} con triflusal, HTB o vehículo (DMSO) en presencia de 10 \mug/ml de lipopolisacárido de E.coli (LPS, serotipo 026:B6; Sigma) durante 19 horas. Seguidamente la suspensión celular se centrifugó a 2000 g durante 10 minutos a 4ºC, y el sobrenadante resultante se almacenó a -70ºC para su posterior análisis. El contenido de citocina se determinó mediante inmunoensayo enzimático, tras dilución 1/100 de las muestras.

B. Resultados

En la figura 9 se muestran los resultados obtenidos con triflusal y HTB en este experimento. Tanto triflusal como HTB (1 y 0,3 mM) producen una inhibición prácticamente completa de la producción de TNF-\alpha inducida por LPS. Los resultados se expresan como la media \pm error estándar de la media de 2-5 experimentos independientes, cada punto por triplicado.

Ejemplo 10 Inhibición de la activación de NF-\kappaB en células gliales de ratas post-natales de la estirpe Long Evans black-hooded A. Metodología general

El estudio se realizó en ratas postnatales (P9) de la estirpe Long Evans black-hooded. Cada grupo experimental lo constituyeron 6 animales que sufrieron una lesión experimental, más dos animales controles de la misma edad. La lesión experimental se realizó mediante la inyección intracortical (área sensitomotora) de N-metil-D-aspartato (NMDA), lo que provoca una intensa degeneración neuronal local. El triflusal (30 mg/kg) se administró por vía oral en tres dosis (desde el día 7 al 9) cada 24 horas. La reactividad glial se indujo por la inyección de NMDA al noveno día tras el nacimiento, una hora después de la última dosis de triflusal. A distintos tiempos (2-24h) tras esta última dosis, los animales se sacrificaron, se extrajeron los cerebros y se cortaron mediante un criostato y estas secciones se procesaron mediante técnicas inmunocitoquímicas e histoquímicas para evaluar la activación de NF-\kappaB en microglía y astroglía mediante doble marcaje: NF-\kappaB-lectina y NF-\kappaB-GFPA. Paralelamente se realizaron cortes vibratómicos para determinar el grado de reactividad microglial y astroglial mediante técnicas histioenzimáticas (B. Castellano y cols., J. Histochem. Cytochem., 1991, 39(5), 561-568).

B. Resultados

En los animales control, las neuronas corticales, pero no las células gliales, mostraron una activación constitutiva de NF-\kappaB. Esta activación basal es inhibida con el pretratamiento con triflusal. En aquellos animales a los que se les practicó una lesión excitotóxica con NMDA se produjo una rápida activación de NF-\kappaB en las células gliales. El pretratamiento con triflusal a 30 mg/kg p.o. inhibe por completo la activación de NF-\kappaB, tanto en astroglía como en microglía.

Ejemplo 11 Prevención por triflusal de la muerte neuronal inducida en cocultivos de neuronas y astrocitos por deprivación de oxígeno/glucosa (oxygen/glucose deprivation, OGD) A. Metodología general

Para realizar este estudio se ha utilizado un modelo de isquemia neuronal in vitro, basado en cocultivos de neuronas y células gliales. Se realizaron cultivos primarios de astrocitos de tipo 1 obtenidos a partir de ratas Wistar recién nacidas (1 día). Los astrocitos se sembraron en placas de 60 mm, recubiertas con poli-D-lisina. Una vez que estas células alcanzaron la confluencia (aproximadamente 11 días) se sembró sobre ellas neuronas primarias de rata y se dejaron crecer durante 10 días. Además, se prepararon cultivos de cada uno de los dos tipos celulares por separado.

A la mitad de los cultivos se los sometió a cuatro horas de deprivación de glucosa y oxígeno (OGD), seguido por un periodo de 24 horas de recuperación. Tanto las células sometidas a OGD como las controles se trataron al inicio de la OGD con 0, 10 y 30 \mug/ml de triflusal en un grupo de experimentos y 0, 20 y 100 \mug/ml de HTB en otro. Al finalizar las 24 horas de recuperación, se determinó la liberación al medio de lactato deshidrogenasa (LDH) como medida de la muerte celular, así como el grado de apoptosis de los cultivos (mediante la técnica de TUNEL) y el número total de neuronas y astrocitos presentes en el cocultivo (mediante la tinción de Hoescht).

B. Resultados

En los cultivos sometidos a OGD se observó tanto un fuerte incremento en la liberación de LDH como en el número de neuronas apoptóticas, comparados con los controles. Las distintas concentraciones de triflusal o HTB probadas en este estudio inhibieron por completo ambos efectos. Por lo tanto, en este modelo tanto triflusal como su metabolito HTB pueden prevenir la apoptosis y degeneración neuronal provocada por la deprivación de oxígeno y glucosa.

Ejemplo 12 Inhibición de la artritis inducida por adyuvante en la rata A. Inducción de la artritis

La artritis inducida por adyuvante se caracteriza por el desarrollo, a partir del día 14 de la inyección del adyuvante, de una inflamación crónica de origen inmunológico en diversas articulaciones, con acumulación de células inflamatorias y liberación de citocinas.

Para llevar a cabo este estudio se han utilizado ratas Lewis macho, de peso comprendido entre 100 y 150 g. Antes de iniciar el estudio se sometieron a un período de aclimatación de al menos 5 días. Los animales se mantuvieron en ayunas durante las 18 horas previas a su utilización, con agua ad libitum.

Durante el tiempo que duró el estudio se permitió el libre acceso de los animales al agua de bebida, excepto en los períodos de observación.

Se randomizaron diferentes lotes de 5 animales (Blanco, Control y Triflusal). La duración de este protocolo fue de 28 días. El día 1 del estudio se indujo la artritis por la administración subplantar de 0,1 ml de una emulsión formada por 10 mg de M. butyricum y 10 ml de adyuvante de Freund incompleto (Difco) en la pata derecha trasera de los animales en los lotes Control y Triflusal. A los animales Blancos se les administró 0,1 ml de adyuvante de Freund incompleto. El triflusal se administró diariamente desde el día 1 del estudio a una dosis de 10 mg/kg p.o. en Tween 80 (1%). El día 28 del desarrollo de la artritis se valoró el volumen de la pata contralateral a la de la inyección del adyuvante de los animales con un pletismómetro UGO BASILE 7150. La inhibición del incremento del volumen se calculó de la siguiente forma:

% Inh. = 100 - ((T-B)/(C-B)) * 100

Donde: T = grupo Triflusal; C = grupo Control; y B = grupo Blanco

B. Resultados

La administración oral de triflusal durante 28 días a la dosis de 10 mg/kg inhibió un 63,1\pm8,0% el incremento de volumen de origen inmunológico inducido por M. butyricum y adyuvante en los animales controles.

Ejemplo 13 Estudio de la viabilidad de diferentes líneas celulares después de la administración de HTB A. Metodología general

Diferentes líneas celulares obtenidas de la American Type Culture Collection (ATCC) fueron mantenidas en cultivo a 37ºC y en una atmósfera al 5% de CO_{2}. Cada línea celular se hizo crecer en un medio de cultivo adecuado y dentro de la fase exponencial (Tabla I).

TABLA I

Línea celular	Medio crecimiento
U-937	RPMI 1640 + 10% SFB
(linfoma histiocítico humano)
143.98.2	DMEM + 10% SFB
(osteosarcoma humano)
1321N1	DMEM + 5% SFB + 0,5% Penicilina-Estreptomicina
(astrocitoma humano)
Jurkat	RPMI 1640 + 10% SFB
(leucemia aguda de células T humana)
COLO 205	RPMI 1640 + 10% SFB
(adenocarcinoma de colon humano)

Para realizar los estudios de viabilidad celular se utilizaron placas de 24 pozos donde se incubaron 0,5x106 células/ml (para estudios de 24 horas), 0,25x10^{6} células/ml (para estudios de 48 horas) o 0,125x10^{6} células/ml (para estudios de 72 horas). A continuación se añadió diferentes concentraciones de HTB (1-3 mM) y se incubaron las células durante diferentes periodos de tiempo (37ºC, 5% CO_{2}). Una vez terminada la incubación, se extrajo el sobrenadante de cada pocillo, y se lavaron las células con medio de cultivo sin suero fetal bovino. Seguidamente, se extrajo el sobrenadante y se añadieron 200 \mul de medio de cultivo sin suero fetal bovino en cada pozo. También se adicionaron 20 \mul de substrato para medir la viabilidad celular. Este método se basa en la capacidad que poseen las células vivas para transformar el substrato incoloro en una substancia coloreada excretada al sobrenadante (EZ4U, Biomedica Gmbh.). Después de incubar las células durante 1 hora a 37ºC y 5% CO_{2} , se recogieron 200 \mul de sobrenadante y se midió la absorbancia a 450 nm. También se midió la absorbancia a 620 nm como medida del valor inespecífico existente.

B. Resultados

Los resultados de la medición de la viabilidad celular se muestran en la Tabla II. La incubación con HTB lleva a la muerte celular de las diferentes líneas tumorales ensayadas. Esta muerte celular se produce de una forma concentración y tiempo dependientes.

TABLA II Porcentaje de viabilidad celular

U-937	0 horas	2 horas	5 horas	24 horas	48 horas	72 horas
1 mM HTB	100	100	98,8	74,4	39,6	4,8
3 mM HTB	100	96,1	92,6	13,9	7,5	N.D.

JURKAT	0 horas	2 horas	5 horas	24 horas	48 horas	72 horas
1 mM HTB	100	100	76,8	11,3	3,6	1,6
3 mM HTB	100	100	62,6	6,2	5,4	N.D.

1321N1	0 horas	2 horas	5 horas	24 horas	48 horas	72 horas
1 mM HTB	100	99,7	94,2	87,5	67,6	N.D.
3 mM HTB	100	85,3	67,2	62,2	17,8	N.D.

COLO 205	0 horas	2 horas	5 horas	24 horas	48 horas	72 horas
1 mM HTB	100	100	87,2	84,8	37,4	7,6
3 mM HTB	100	94,5	69,2	39,6	14,3	N.D.

143.98.2	0 horas	2 horas	5 horas	24 horas	48 horas	72 horas
1 mM HTB	100	100	100	93,9	83,2	50,4
3 mM HTB	100	98,1	82,7	52,2	16,1	N.D.

N.D.: no determinado

Los resultados de los ensayos descritos en los ejemplos 1, 2 y 3 demuestran que el triflusal y el HTB inhiben la activación del factor de transcripción NF-\kappaB. Se demuestra también que esta inhibición es independiente del agente inductor y del tipo de célula. Estos resultados demuestran la utilidad de triflusal y HTB en el tratamiento o prevención de aquellas patologías en las que el NF-\kappaB se halle implicado.

Los resultados del ejemplo 4 demuestran que el triflusal y el HTB inhiben la expresión de VCAM-1. Se ha descrito que el gen de VCAM-1 tiene puntos de unión al NF-\kappaB (C. Weber y cols., Arterioscler. Thromb. 1994, 14(10), 1665-1673). Se ha demostrado que moléculas de adhesión como VCAM-1 están implicadas en patologías como la aterosclerosis (K.D. O'Brien y cols., J. Clin. Invest. 1993, 92, 945-951), artritis reumatoidea, lupus, esclerosis múltiple, enfermedad inflamatoria intestinal, asma, rinitis alérgica y metástasis de tumores. Al inhibir la activación del factor NF-\kappaB y la expresión de VCAM-1, tanto el triflusal como el HTB podrían ser de especial utilidad en el tratamiento o prevención de las enfermedades mediadas por VCAM-1 como todas las arriba mencionadas y muy especialmente la aterosclerosis.

En el ejemplo 5 se demuestra que triflusal y HTB inhiben también la expresión de iNOS, que está regulada a nivel transcripcional, al menos en parte, por el NF-\kappaB (U. Förstermann y cols., Biochem. Pharmacol. 1995, 50(9), 1321-1332). Se ha demostrado que la iNOS está implicada en patologías como inflamación, shock séptico, enfermedad inflamatoria intestinal y enfermedades neurodegenerativas como demencia y enfermedad de Parkinson (J. E. Ogden y P.K. Moore, Trends Biotechnol. 1995, 13(2), 70-78). Al inhibir la activación del factor NF-\kappaB y la expresión de iNOS, el triflusal y el HTB podrían ser de especial utilidad en el tratamiento o prevención de las enfermedades mediadas por la iNOS y en especial inflamación, shock séptico, enfermedad inflamatoria intestinal y enfermedades neurodegenerativas como demencia y enfermedad de Parkinson.

Los resultados de los ejemplos 6 y 7 demuestran que el triflusal y HTB inhiben la expresión de la COX-2 tanto in vitro como in vivo. Se ha descrito que el gen que codifica la COX-2 tiene puntos de unión al NF-\kappaB (S.B. Appleby y cols., Biochem. J. 1994, 302, 723-727). Se ha relacionado la COX-2 con patologías como artritis reumatoidea y otras enfermedades de tipo artrítico, artrosis, parto prematuro, demencia, especialmente la enfermedad de Alzheimer (T.A. Sandson y O. Felician, Exp. Opin. Invest. Drugs 1998, 7(4), 519-526) y cáncer (M. Oshima y cols., Cell 1996, 87(5), 803-809; K. Subbaramaiah y cols., Cancer Res. 1996, 56(19), 4424-4429). Al inhibir la activación del factor NF-\kappaB y la expresión de la COX-2, el triflusal y el HTB podrían ser de especial utilidad en el tratamiento o prevención de patologías mediadas por la COX-2 y más especialmente artritis reumatoidea y otras enfermedades de tipo artrítico, artrosis, parto prematuro, demencia y cáncer.

Los resultados del ejemplo 8 demuestran que el HTB inhibe también la expresión de MCP-1, que está regulada a nivel transcripcional, al menos en parte, por el NF-\kappaB (T. Martin y cols., Eur. J. Immunol. 1997, 27(5), 1091-1097). Se ha descrito que una producción excesiva o no regulada de MCP-1 está implicada en patologías como glomerulonefritis (B.H. Rovin y cols., Lab. Invest. 1994, 71(4), 536-542), artritis reumatoidea (P.M. Villiger y cols., J. Immunol. 1992, 149(2), 722-727), fibrosis pulmonar (H.N. Antoniades y cols., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1992, 89(12), 5371-5375), restenosis, asma, psoriasis, enfermedad inflamatoria intestinal, esclerosis múltiple y rechazo de trasplantes, y constituye el factor quimiotáctico más potente detectado en placas de ateroma ricas en macrófagos (S. Yla-Herttuala y cols., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1991, 88(12), 5252-5256). Al inhibir la activación del factor NF-\kappaB y la expresión de MCP-1, el triflusal y el HTB podrían ser de especial utilidad en el tratamiento o prevención de las enfermedades mediadas por la MCP-1 como las arriba mencionadas.

Los resultados del ejemplo 9 demuestran que triflusal y HTB inhiben también la expresión del TNF-\alpha, que está regulada a nivel transcripcional, al menos en parte, por el NF-\kappaB (J. Yao y cols, J. Biol. Chem. 1997, 272(28), 17795-17801). Se ha descrito que una producción excesiva o no regulada de TNF-\alpha está implicada en un amplio abanico de patologías como artritis reumatoidea, espondilitis reumatoidea, artritis gotosa y otras enfermedades artríticas, artrosis, sepsis, shock séptico, shock endotóxico, síndrome de shock tóxico, síndrome del distrés respiratorio del adulto, malaria cerebral, enfermedad inflamatoria pulmonar crónica, silicosis, sarcoidosis pulmonar, fibrosis pulmonar, hepatitis, osteoporosis y otras enfermedades relacionadas con la resorción ósea, daño por reperfusión, rechazo de trasplantes, esclerosis múltiple, lupus, fiebre y mialgias debidas a infecciones, caquexia, síndrome de la inmunodeficiencia adquirida (SIDA), enfermedad inflamatoria intestinal y piresis (L. Sekut y K.M. Connolly, Drug News Perspect. 1996, 9(5), 261-269). Al inhibir la activación del factor NF-\kappaB y la expresión de TNF-\alpha, el triflusal y el HTB podrían ser de especial utilidad en el tratamiento o prevención de las enfermedades mediadas por el TNF-\alpha como las arriba mencionadas.

Los resultados de los ejemplos 11, 12 y 13 demuestran adicionalmente la utilidad del triflusal y HTB para el tratamiento o prevención de enfermedades neurodegenerativas, artritis y cáncer, respectivamente.

Las concentraciones en las que se observan efectos en los experimentos descritos en los ejemplos 1 a 13 se alcanzan a las dosis terapéuticas de triflusal empleadas habitualmente en humanos por vía oral.

Sin querer quedar vinculados por lo que aquí se expresa, se cree que la inhibición de la expresión de proteinas como VCAM-1, iNOS, COX-2, MCP-1 y TNF-\alpha por parte del triflusal y el HTB está mediada, al menos en parte, por una inhibición de la activación del factor de transcripción NF-\kappaB. Esto no obstante, se sabe que la expresión de los genes que codifican estas proteinas puede ser activada por otros agentes. Al haber demostrado que tanto triflusal como HTB inhiben la expresión de estos genes (tanto in vitro como in vivo, en el caso de la COX-2), ambos productos podrían ser útiles también en el tratamiento o prevención de patologías en las que exista una elevada expresión de estos genes independiente de NF-\kappaB.

Claims

1. Uso de un compuesto de fórmula I

2

donde R representa hidrógeno o COCH_{3}, o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de enfermedades inmunoinflamatorias o autoinmunes.

2. Uso según la reivindicación 1 donde la enfermedad inmunoinflamatoria o autoinmune es una enfermedad seleccionada de entre artritis reumatoidea y otras enfermedades de tipo artrítico, esclerosis múltiple, psoriasis, enfermedad inflamatoria intestinal, lupus y glomerulonefritis.

3. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de la artrosis.

4. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención del cáncer.

5. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de la inflamación.

6. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención del asma o el síndrome del distrés respiratorio del adulto.

7. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención del shock séptico.

8. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para la prevención de parto prematuro.

9. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de la osteoporosis.

10. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención de infecciones víricas.

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11. Uso de un compuesto de fórmula I según se ha definido en la reivindicación 1 o una sal farmacéuticamente aceptable o profármaco del mismo para la manufactura de un medicamento para el tratamiento o prevención del rechazo de trasplantes.